JP6327415B2 - 血小板製剤保存装置および血小板製剤の保存方法 - Google Patents
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Description
<血小板製剤保存装置>
本発明の実施形態に係る血小板製剤保存装置について説明する。図1は、本発明の実施形態に係る血小板製剤保存装置の一例を示す図である。図2は、血小板製剤保存容器と血小板製剤収容部とを示す図である。
次に、血小板製剤保存装置10が3次元クリノスタット11の回転を制御して擬似無重力状態を生成する場合の一例について説明する。図3は、血小板製剤保存装置10で定義された座標系を示す説明図である。なお、図3では、第1回転軸αおよび第2回転軸βがX0軸及びY0軸に対応する。本実施形態では、架台19に対して固定された不動の基準座標系{P0,X0,Y0,Z0}が定義される。また、外側フレーム15に対して固定された座標系{P1,X1,Y1,Z1}が定義され、内側フレーム14に対して固定された座標系{P2,X2,Y2,Z2}が定義される。なお、各座標系の原点は一致し、P0=P1=P2である。X0軸及びY0軸は水平方向を向き、Z0軸は鉛直下向きである。
ここで、M、Nは、任意の正の整数mに対して式(数12):
本発明の実施形態に係る血小板製剤の保存方法について説明する。本実施形態に係る血小板製剤の保存方法は、3次元クリノスタット11を用いて所定の温度領域で行う。
(実施例1)
日本白色種ウサギの血液(100ml)を採血した後、遠心重力を約400Gとして10分間遠心分離を行ない、沈殿した赤血球を除いた上清である多血小板血漿(platelet rich plasma:PRP)を採取した。この採取したPRPをOpticell(NUNC社製)中において、3次元クリノスタット11に設置した収容部材22内に収容して回転している状態(3次元回転条件)で、室温、72時間で保存した。なお、本実施例において、室温とは、血小板製剤を保存するために最適な温度領域であり、20℃以上24℃以下の範囲をいう。
比較例1では、PRPの保存条件を静止した状態(静置条件)に変更したこと以外は、実施例1と同様にして行った。
比較例2では、PRPの保存条件を水平に振盪した状態(水平振盪条件:BC−730 BIO CRAFT社製)に変更し、2次元の移動で保存したこと以外は、実施例1と同様にして行った。
採血直後のPRPと、各実施例および比較例の方法で保存した後のPRPとの血小板数、平均血小板容積(MPV)、血小板分布幅(PDW)、血餅退縮率、低浸透圧ショック回復率および血小板凝集反応を以下の方法で測定し、評価した。
採血直後のPRPと、各実施例および比較例の方法で保存した後のPRPとを、自動血球計数装置(F−820、シスメックス株式会社)を用いて、血小板数、MPVおよびPDWを測定した。血小板数、MPVは、試料を11個 作成してその平均値を求めた。PDWは、試料を8個作成してその平均値を求めた。
採血直後のPRPと、各実施例および比較例の方法で保存した後のPRP0.2mLに、トロンビン溶液5unit/mLを加え、よく混和した後、37度で30分静置した。その後、血餅退縮により生じた血清の重量を電子天秤で測定し、下記式(A)に基づいて血餅退縮率を求めた。血餅退縮率は、試料を6個作成 してその平均値を求めた。
血餅退縮率=血清重量/当初PRP重量×100(%) 式(A)
低浸透圧ショック回復率は、採血直後のPRPと、各実施例および比較例の方法で保存した後のPRPの濁度の変化により測定した。濁度の変化は、PRP0.4mLに蒸留水0.2mLを加え、CAF−100(日本分光社製)を用いて測定した5分間の濁度の変化により測定した。蒸留水を加えた直後の濁度の変化を100%とし、5分後に濁度が回復した割合を低浸透圧ショック回復率とした。低浸透圧ショック回復率は、試料を8個作成 してその平均値を求めた。
血小板凝集反応は、採血直後のPRPと、各実施例および比較例の方法で保存した後のPRP0.4mLに、10μMの濃度のアデノシンニリン酸(ADP)を添加して凝集反応を比濁法により測定した。血小板凝集反応は、試料を8個作成 してその平均値を求めた。
採血直後のPRPと、実施例1、および比較例1、2の方法で保存した後のPRPとの血小板数、MPV、PDW、血餅退縮率、低浸透圧ショック回復率および血小板凝集反応のそれぞれの評価結果を図4〜図10に示す。図4は、採血直後のPRPと、実施例1、および比較例1、2の方法で保存した後のPRPとの血小板数の評価結果を示す図であり、図5は、採血直後のPRPと、実施例1、および比較例1、2の方法で保存した後のPRPとのMPVの評価結果を示す図であり、図6は、採血直後のPRPと、実施例1、および比較例1、2の方法で保存した後のPRPとのPDWの評価結果を示す図であり、図7は、採血直後のPRPと、実施例1、および比較例1、2の方法で保存した後のPRPとの血餅退縮率の評価結果を示す図であり、図8は、採血直後のPRPと、実施例1、および比較例1、2の方法で保存した後のPRPとの低浸透圧ショック回復率の評価結果を示す図であり、図9は、採血直後のPRPと、実施例1、および比較例1、2の方法で保存した後のPRPとの血小板凝集反応の評価結果を示す図である。
図4に示すように、比較例1、2よりも実施例1の方が、採血直後のPRPの血小板数と近い値だった。血小板数の減少は、血小板の損傷の指標となる。静置条件下で、室温で72時間、PRPを保存した場合には、採血直後に比べて血小板数が減少する傾向が認められることから(比較例1参照)、静置条件で血小板製剤を保存した場合には、血小板の破壊が起きている可能性が考えられる。水平振盪条件または3次元回転条件で、室温で72時間、PRPを保存した場合には、静置条件で血小板製剤を保存した場合に比べて血小板数の減少を抑制する傾向が認められた(実施例1、比較例2参照)。特に、3次元回転条件でPRPを保存した場合の血小板数は、採血直後のPRPの血小板数とほぼ近い値に維持され、かつ、水平浸透条件に比べて有意に高い血小板数を維持されていた(実施例1参照)。よって、3次元回転条件でPRPを保存した場合には、血小板の破壊を抑制する傾向があることがわかった。
図5、図6に示すように、実施例1および比較例1、2のいずれの保存方法を用いて保存した後のPRPのMPVおよびPDWは、採血直後のPRPのMPVおよびPDWとほぼ近い値であり、ほとんど変化しなかった。MPVおよびPDWは、血小板の形態の変化を示す指標となる。よって、静置条件および水平振盪条件に代えて3次元回転条件で、室温で72時間、PRPを保存しても血小板の形態はこれまでの保存方法と同様に維持できていることがわかった。
図7に示すように、実施例1および比較例1、2のいずれの保存方法を用いて保存した後のPRPの血餅退縮率は、採血直後のPRPの血餅退縮率よりも低い値であったが、比較例1、2よりも実施例1の方が血餅退縮率は高い値になった。血餅退縮とは、凝固した血液(血餅)が体積を減少させ、血清を生じる反応である。この血清を生じる反応は、血小板が関与することから、血餅退縮率は、血小板の機能の指標となる。静置条件、水平振盪条件または3次元回転条件で、室温で72時間、PRPを保存しても、血小板の機能は低下しているため、PRPの保存方法の相違による差は明確には生じていない。しかし、比較例1、2よりも実施例1の方が血餅退縮率は高い値になったことから、静置条件および水平振盪条件よりも3次元回転条件でPRPを保存した場合の方が血小板の機能の低下は抑制傾向にあることがわかった。
図8に示すように、比較例1、2に比べて実施例1は、採血直後のPRPの低浸透圧ショック回復率とほぼ近い値であり、ほぼ同等の値であった。血小板は低浸透圧に曝されると、血小板の体積は一旦膨張するが、その後、血小板が収縮するため、血小板の体積は減少する。よって、静置条件および水平振盪条件に代えて3次元回転条件で、室温で72時間、PRPを保存すれば、採血直後のPRPとほぼ同等の機能を維持できていることがわかった。
図9に示すように、実施例1および比較例1、2のいずれの保存方法を用いて保存した後のPRPの血小板凝集反応は、採血直後のPRPの血小板凝集反応よりも低い値であったが、比較例1、2よりも実施例1の方が、保存後のPRPの血小板凝集反応は高かった。血小板の凝集は、止血に重要な反応であるため、血小板凝集反応は、血小板の機能の指標となる。静置条件または水平振盪条件でPRPを保存すると、採血直後のPRPに比べて血小板の凝集反応に関わる機能は低下させるといえる。比較例1、2よりも実施例1の方が血小板凝集反応は高い値になったことから、静置条件および水平振盪条件よりも3次元回転条件でPRPを保存した場合の方が血小板の血小板凝集反応に関する機能の低下はより抑えられるため、PRPの保存方法として好ましいといえる。特に、3次元回転条件でPRPを保存したPRPでは、ADPに対する血小板凝集反応は、水平振盪条件に比べ有意に高く、血小板の凝集反応に関する機能が維持されているといえる。よって、静置条件および水平振盪条件に代えて3次元回転条件で、室温で72時間、PRPを保存すれば、採血直後のPRPとほぼ同等の機能を維持できていることがわかった。
ヒト(20代〜40代成人男性5人 ) の血液を用いたこと以外は実施例1と同様にしてPRPを採取した。この採取したPRPをOpticell(NUNC社製)中において、3次元クリノスタット11に設置した収容部材22内に収容して回転している状態(3次元回転条件)で、7日間保存した。
比較例3では、PRPの保存条件を水平に振盪した状態(水平振盪条件:BC−730 BIO CRAFT社製)に変更し、2次元の移動で保存したこと以外は、実施例2と同様にして行った。
図10は、採血直後のPRPと、実施例2および比較例3の方法で保存した後のPRPとの血小板数の評価結果を示す図であり、図11は、採血直後のPRPと、実施例2および比較例3の方法で保存した後のPRPとのMPVの評価結果を示す図であり、図12は、採血直後のPRPと、実施例2および比較例3の方法で保存した後のPRPとのPDWの評価結果を示す図であり、図13は、採血直後のPRPと、実施例2および比較例3の方法で保存した後のPRPとの血小板凝集反応の評価結果を示す図である。
図10に示すように、実施例2では、室温で7日間保存してもほぼ一定であったのに対し、比較例3では、経過日数とともに徐々に血小板数が減少する傾向が見られた。また、7日間経過後の実施例2血小板数と比較例3の血小板数との間では、血小板数に有意な差異が認められた。よって、3次元回転条件でPRPを保存した場合には、血小板の破壊を抑制することがわかった。
図11、図12に示すように、実施例2および比較例3のいずれの保存方法を用いて保存した後のPRPのMPVおよびPDWは、保存2日後から上昇する傾向が認められたが、実施例2および比較例3との間に有意な差異は認められなかった。
図13に示すように、実施例2および比較例3のいずれの保存方法を用いて保存した後のPRPの血小板凝集反応は、保存日数と共に減少する傾向が認められ、保存7日後にはほぼ認められなくなった。一方で、比較例3のPRPの血小板凝集反応の低下率の方は、実施例2PRPの血小板凝集反応の低下率に対して大きく、特に、保存5日後の実施例2PRPの血小板凝集反応と比較例3のPRPの血小板凝集反応との間には有意な差異が見られた。比較例3よりも実施例2の方が血小板凝集反応は高い値になったことから、水平振盪条件よりも3次元回転条件でPRPを保存した場合の方が、より高い凝集反応を示す傾向が認められるため、PRPの保存方法として好ましいといえる。特に、3次元回転条件でPRPを保存したPRPでは、ADPに対する血小板凝集反応は、水平振盪条件に比べ有意に高く、血小板の凝集反応に関する機能が維持されているといえる。よって、水平振盪条件に代えて3次元回転条件で、PRPを保存することにより、採血直後のPRPに対する機能の低下を抑えることができることがわかった。
11 3次元クリノスタット(回転装置)
12 血小板製剤収容部
13 保持部
14 内側フレーム(第1回転体)
15 外側フレーム(第2回転体)
16 脚部
17 第1モータ(第1駆動部)
18 第2モータ(第2駆動部)
19 架台
21 血小板製剤保存容器
23 試料封入部
24 仕切り部
26 蓋
31 回転角度検出器
32 回転角度検出器
33 モータ制御部(モータコントローラ)
34軌道生成部
35制御装置
Claims (4)
- 血小板製剤を保存する血小板製剤保存容器を収容する血小板製剤収容部と、
互いに直交する第1回転軸と第2回転軸とを含むn軸の回転軸(nは、2以上の整数)を含み、n軸の回転軸の回転速度を制御して、前記血小板製剤収容部を3次元でn軸回転(nは、2以上の整数)させ、擬似無重力状態を生成する回転装置と、
を有することを特徴とする血小板製剤保存装置。 - 請求項1において、
前記回転装置は、
前記血小板製剤収容部を保持する保持部と、
前記保持部が連結され、前記保持部を保持する第1回転体と、
前記第1回転体を前記第1回転軸の回りに回転させる第1駆動部と、
前記第1回転体を前記第1回転軸の回りに回転可能に保持する第2回転体と、
前記第2回転体を前記第1回転軸の軸心方向とは異なる方向に軸心方向を有する第2回転軸の回りに回転可能に保持する脚部と、
前記第2回転体を前記第2回転軸の回りに回転させる第2駆動部と、
を有することを特徴とする血小板製剤保存装置。 - 請求項1または2において、
前記血小板製剤収容部は、前記血小板製剤収容部の内部に複数の前記血小板製剤保存容器を仕切るための仕切り部を有することを特徴とする血小板製剤保存装置。 - 互いに直交する第1回転軸と第2回転軸とを含むn軸の回転軸(nは、2以上の整数)を含み、n軸の回転軸の回転速度を制御して、血小板製剤を保存する血小板製剤保存容器を3次元でn軸回転(nは、2以上の整数)させ、擬似無重力状態を生成しながら前記血小板製剤を保存することを特徴とする血小板製剤の保存方法。
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