JP6312145B2 - ポリフェノール化合物含有植物体の生産方法、ポリフェノール化合物含有植物体中のポリフェノール化合物量を増加させる方法、及びトリカフェオイルキナ酸含有植物体中のトリカフェオイルキナ酸量を増加させる方法 - Google Patents

Description

本発明は、ポリフェノール化合物含有植物体の生産方法、ポリフェノール化合物含有植物体中のポリフェノール化合物量を増加させる方法、トリカフェオイルキナ酸含有植物体中のトリカフェオイルキナ酸量を増加させる方法、及びトリカフェオイルキナ酸含有植物体に関する。

ポリフェノール化合物は、茶樹、コーヒーノキ、サツマイモ、春菊、ゴボウ、大豆、ブドウ等の植物の葉、茎、花、実、種等に含まれている。ポリフェノール化合物は、分子内に複数のフェノール性水酸基を有する物質の総称である。ポリフェノール化合物は、抗酸化作用を有していることから、多くの健康食品、化粧品等に用いられている。

植物体中のポリフェノール化合物の含有量を高める試みは、従来からなされており、種々報告されている。
例えば、特許文献１には、栽培中のサニーレタスに対して、夜間に波長４００ｎｍ〜５００ｎｍの青色光を照射することで、ポリフェノール化合物の一種であるアントシアニンの含有量を高めることができるとの記載がある。
特許文献２には、人工照明下で水耕栽培して生育させた野菜の養液を収穫直前に水に置き換え、かつ、１日に１７時間以上の光を照射する水耕栽培を１日以上継続することで、野菜中のポリフェノール化合物の含有量を高めることができるとの記載がある。
特許文献３には、植物体地上部成長点及び根部を完全に除去した植物体を挿し木することで、ポリフェノール含有量の高い収穫物を得ることができるとの記載がある。

近年では、ポリフェノール化合物の一種であるカフェオイルキナ酸化合物が、認知症の予防、抗肥満、抗高血糖、抗高血圧、抗腫瘍、抗菌等の種々の生理活性を有することが報告され、俄かに注目されている。特にトリカフェオイルキナ酸は、カフェオイルキナ酸化合物の中でも高い生理活性を有しており、様々な疾患に対する有効性が小動物を用いた試験により実証されている（例えば、非特許文献１参照）ことから、その利用価値は高いといえる。

したがって、ポリフェノール化合物の植物体中での含有量を高めることができれば、ポリフェノール化合物が有する生理活性の更なる有効利用を図ることが可能となる。

特開２００３−２０４７１８号公報 国際公開２０１０／１４０６３２号 特開２００７−１４２９５号公報

吉元 誠、「サツマイモの機能性成分，特にポリフェノールについて」、食品と技術、２００８年８月号、ｐｐ１０−１８

しかしながら、特許文献１に記載された方法では、サニーレタス中のアントシアニンの含有量を増加させることはできるものの、その増加は僅少である。特許文献２に記載された方法は、野菜の栽培方法が水耕栽培に限られるため、野菜の生産性を高めることが困難である。特許文献３に記載された方法では、植物体地上部成長点を完全に除去する必要があるため、作業が非常に煩雑となる。即ち、特許文献１〜３に記載されたいずれの方法も、植物体中のポリフェノール化合物を効率良く増加させる観点からは、十分な方法とはいえない。

本発明は、上記のような事情に鑑みてなされたものであり、本来含有する量よりもポリフェノール化合物量が増加した植物体を効率良く生産することができるポリフェノール化合物含有植物体の生産方法を提供することを課題とする。
また、本発明は、ポリフェノール化合物含有植物体中のポリフェノール化合物量を増加させる方法、及びトリカフェオイルキナ酸含有植物体中のトリカフェオイルキナ酸量を増加させる方法を提供することを課題とする。
さらに、本発明は、本来含有する量よりもトリカフェオイルキナ酸量が増加したトリカフェオイルキナ酸含有植物体を提供することを課題とする。

本発明は、以下の通りである。
［１］ サツマイモ以外のイモ類、ヒルガオ科植物、及びキク科植物からなる群より選ばれる生長したポリフェノール化合物含有植物体の根部を除去する根部除去工程と、上記根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存する保存工程と、を含む、上記根部除去工程に供する植物体よりもポリフェノール化合物量が増加したポリフェノール化合物含有植物体の生産方法。
［２］ 上記根部除去工程において根部を除去するポリフェノール化合物含有植物体が、カフェオイルキナ酸化合物含有植物体であり、上記根部除去工程に供するカフェオイルキナ酸化合物含有植物体よりもカフェオイルキナ酸化合物量を増加させる［１］に記載の生産方法。
［３］ 上記根部除去工程において根部を除去するポリフェノール化合物含有植物体が、トリカフェオイルキナ酸含有植物体であり、上記根部除去工程に供するトリカフェオイルキナ酸含有植物体よりもトリカフェオイルキナ酸量を増加させる［１］に記載の生産方法。

［４］ 上記保存工程における保存期間は、２日間〜３５日間である［１］〜［３］のいずれか１つに記載の生産方法。
［５］ 上記保存工程における保存期間は、３日間〜７日間である［１］〜［４］のいずれか１つに記載の生産方法。
［６］ 上記保存工程は、上記根部を除去した植物体に光照射することを含む［１］〜［５］のいずれか１つに記載の生産方法。
［７］ 上記光照射における光の照度は、１，０００ｌｕｘ以上である［６］に記載の生産方法。
［８］ 上記保存工程における保存温度は、２０℃〜３５℃である［１］〜［７］のいずれか１つに記載の生産方法。

［９］ 上記保存工程は、上記根部を除去した植物体の少なくとも一部を、水又は水を含ませた用土の少なくとも一方に配置して保存することを含む［１］〜［８］のいずれか１つに記載の生産方法。
［１０］ 上記保存工程は、上記根部を除去した植物体の少なくとも一部を、水に配置して保存した後、用土に配置して保存することを含む［１］〜［９］のいずれか１つに記載の生産方法。
［１１］ 上記植物体が、ヒルガオ科植物である［１］〜［１０］のいずれか１つに記載の生産方法。
［１２］ 上記ヒルガオ科植物が、サツマイモである［１１］に記載の生産方法。

［１３］ サツマイモ以外のイモ類、ヒルガオ科植物、及びキク科植物からなる群より選ばれる生長したポリフェノール化合物含有植物体の根部を除去する根部除去工程と、上記根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存する保存工程と、を含む、ポリフェノール化合物含有植物体中のポリフェノール化合物量を増加させる方法。
［１４］ サツマイモ以外のイモ類、ヒルガオ科植物、及びキク科植物からなる群より選ばれる生長したトリカフェオイルキナ酸含有植物体の根部を除去する根部除去工程と、上記根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存する保存工程と、を含む、トリカフェオイルキナ酸含有植物体中のトリカフェオイルキナ酸量を増加させる方法。

本発明によれば、本来含有する量よりもポリフェノール化合物量が増加した植物体を効率良く生産することができるポリフェノール化合物含有植物体の生産方法を提供することができる。
また、本発明によれば、ポリフェノール化合物含有植物体中のポリフェノール化合物量を増加させる方法、及びトリカフェオイルキナ酸含有植物体中のトリカフェオイルキナ酸量を増加させる方法を提供することができる。
さらに、本発明によれば、本来含有する量よりもトリカフェオイルキナ酸量が増加したトリカフェオイルキナ酸含有植物体を提供することができる。

以下、本発明の具体的な実施形態について詳細に説明するが、本発明は、以下の実施形態に何ら限定されるものではなく、本発明の目的の範囲内において、適宜変更を加えて実施することができる。

本明細書において「〜」を用いて示された数値範囲は、「〜」の前後に記載される数値をそれぞれ最小値及び最大値として含む範囲を意味する。
本明細書において、組成物中の各成分の量は、各成分に該当する物質が組成物中に複数存在する場合には、特に断らない限り、組成物中に存在する複数の物質の合計量を意味する。
本明細書において「工程」との語は、独立した工程だけではなく、他の工程と明確に区別できない場合であってもその工程の所期の目的が達成されれば、本用語に含まれる。

本明細書において「根部」とは、水分及び栄養分の吸収を行う植物体の部分を意味する。「根部」は、植物体を土耕栽培する場合には、少なくともその一部が土壌中にあり、水耕栽培する場合には、少なくともその一部が水（又は水耕液）中にある。
本明細書において「地上部」とは、上記「根部」以外の植物体の部分を意味する。「地上部」は、茎又は幹、光合成及び水の蒸散を行う葉等を備える。

［ポリフェノール化合物含有植物体の生産方法］
本発明のポリフェノール化合物含有植物体の生産方法（以下、「植物体の生産方法」とも称する。）は、サツマイモ以外のイモ類、ヒルガオ科植物、及びキク科植物からなる群より選ばれる生長したポリフェノール化合物含有植物体（以下、単に「植物体」とも称する。）の根部を除去する根部除去工程と、上記根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存する保存工程と、を含む、上記根部除去工程に供する植物体よりもポリフェノール化合物量が増加したポリフェノール化合物含有植物体の生産方法である。
本発明の植物体の生産方法は、本発明の効果を損なわない範囲において、必要に応じて、根部除去工程及び保存工程以外の他の工程を含んでもよい。

本発明の植物体の生産方法では、生長したポリフェノール化合物含有植物体の根部を除去した後、この根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存するという簡便な方法により、本来含有する量よりもポリフェノール化合物量が増加した植物体を効率良く生産することができる。
本発明の植物体の生産方法では、根部除去工程に供する植物体よりもポリフェノール化合物量が、好ましくは１．１倍以上、より好ましくは１．３倍以上、更に好ましくは１．４倍以上増加した植物体を生産することができる。
また、本発明の植物体の生産方法では、根部除去工程に供する植物体よりもカフェオイルキナ酸化合物量が、好ましくは１．２倍以上、より好ましくは１．５倍以上、更に好ましくは２．０倍以上増加した植物体を生産することができる。
さらに、本発明の植物体の生産方法では、根部除去工程に供する植物体よりもトリカフェオイルキナ酸量が、好ましくは１．２倍以上、より好ましくは２．０倍以上、更に好ましくは３．０倍以上増加した植物体を生産することができる。

本発明の植物体の生産方法に適用し得るポリフェノール化合物含有植物体としては、サツマイモ以外のイモ類、ヒルガオ科植物及びキク科植物からなる群より選ばれる植物体が含まれる。
イモ類（但し、サツマイモを除く）の例としては、ジャガイモ、キャッサバ、タロイモ、サトイモ、ヤムイモ等が挙げられる。
ヒルガオ科植物の例としては、サツマイモ、ヒルガオ、アサガオ、ヨルガオ、ヨウサイ、ルコウソウ、ネナシカズラ、エボルブルス、エンサイ等が挙げられる。
キク科植物の例としては、キクイモ、ノコギリソウ、ゴボウ、ヨモギ、アスター、バッカリス、ヒナギク、キンセンカ、エゾギク、ベニバナ、ヤグルマギク、ネモフィラ、シュンギク、マーガレット、イソギク、チコリ、ムルチコーレ、チョウセンアザミ、アレチノギク、キバナコスモス、タンポポ、ダリア、ムラサキバレンギク、ヒメジョオン、フジバカマ、ツワブキ、ガーベラ、ハハコグサ、ミヤコワスレ、ヒマワリ、ヨメナ、レタス、センボンヤリ、カミツレ、シネラリア、フキ、ヤーコン、アキノキリンソウ、ノゲシ、ウルシニア、ヒャクニチソウ、アーティチョーク等が挙げられる。
上記の植物体は、いずれもカフェオイルキナ酸化合物（トリカフェオイルキナ酸を含む）を含み、本発明の植物体の生産方法に適用し得る。

本発明の植物体の生産方法に適用し得るポリフェノール化合物含有植物体は、上記の中でも、ヒルガオ科植物及びキク科植物からなる群より選ばれる植物体であることが好ましく、ヒルガオ科植物であることがより好ましく、サツマイモであることが更に好ましい。
本発明の植物体の生産方法に好ましく適用し得るサツマイモの例としては、ベニアズマ、ベニハルカ、ベニコマチ、紅赤、鳴門金時、シロユタカ、シロサツマ、コガネセンガン、ムラサキマサリ、アヤムラサキ、スイオウ、シモンイモ、タマアカネ等の他、高系１４号に由来の多くの品種を挙げることができる。また、未だ品種登録されていない種々の系統のサツマイモも、本発明の植物体の生産方法に適用し得る。

本発明の植物体の生産方法によって、増量し得る植物体中のポリフェノール化合物としては、カフェオイルキナ酸化合物、カフェオイルグルコース化合物、フェルロイルキナ酸化合物、シナリン、ロズマリン酸、カテキン化合物、イソフラボン化合物、ケルセチン、ルテオリン、アントシアニン化合物、プロアントシアニジン化合物、ルチン化合物、フラバンジェノール化合物、レスベラトロール化合物、タンニン酸化合物、エラグ酸、クルクミン、リグナン化合物、これらの配糖体等を挙げることができる。
本発明の植物体の生産方法において、通常の植物体の生産方法と比べて、より増量し得るポリフェノール化合物としては、カフェオイルキナ酸化合物が挙げられる。
カフェオイルキナ酸化合物の例としては、モノカフェオイルキナ酸（３−Ｏ−カフェオイルキナ酸、４−Ｏ−カフェオイルキナ酸、５−Ｏ−カフェオイルキナ酸、及び１−Ｏ−カフェオイルキナ酸）、ジカフェオイルキナ酸（３，４−Ｏ−ジカフェオイルキナ酸、３，５−Ｏ−ジカフェオイルキナ酸、４，５−Ｏ−ジカフェオイルキナ酸、１，３−Ｏ−ジカフェオイルキナ酸、１，４−Ｏ−ジカフェオイルキナ酸、及び１，５−Ｏ−ジカフェオイルキナ酸）、トリカフェオイルキナ酸（３，４，５−Ｏ−トリカフェオイルキナ酸、１，４，５−Ｏ−トリカフェオイルキナ酸、１，３，５−Ｏ−トリカフェオイルキナ酸、及び１，３，４−Ｏ−トリカフェオイルキナ酸）、及びテトラカフェオイルキナ酸（１，３，４，５−Ｏ−テトラカフェオイルキナ酸）が挙げられる。

ポリフェノール化合物の一種であるカフェオイルキナ酸化合物は、認知症の予防、抗肥満、抗高血糖、抗高血圧、抗腫瘍、抗菌等の種々の生理活性を有することが報告されている。本発明の植物体の生産方法では、ポリフェノール化合物含有植物体として、カフェオイルキナ酸化合物を含有する植物体を用いた場合に、上記のような種々の生理活性を有するカフェオイルキナ酸化合物の植物体中での含有量を顕著に増加させることができる。

また、本発明の植物体の生産方法では、ポリフェノール化合物含有植物体として、トリカフェオイルキナ酸を含有する植物体を用いた場合に、植物体中のトリカフェオイルキナ酸の含有量をより顕著に増加させることができる。
トリカフェオイルキナ酸は、カフェオイルキナ酸化合物の一種であり、カフェオイルキナ酸化合物の中でも、特に高い生理活性を有することが知られている。しかしながら、トリカフェオイルキナ酸を豊富に含有する植物は、これまで全く見出されていない。トリカフェオイルキナ酸は、それ自体が極めて希少な物質である。本発明の植物体の生産方法は、現存するトリカフェオイルキナ酸含有植物体に比して、トリカフェオイルキナ酸を高濃度で含有する植物体を生産することができるという顕著な効果も奏し得る。
以下、本発明の植物体の生産方法について、工程ごとに詳細に説明する。

＜根部除去工程＞
根部除去工程は、生長したポリフェノール化合物含有植物体の根部を除去する工程である。ここでいう「生長した」とは、植物の種類、品種等ごとに行われている通常の育成方法で植物体を育成し、植物体が十分に大きくなった状態、具体的には、以下の状態を意味する。例えば、サツマイモの場合には、サツマイモの地上部が４葉（４節）以上展開した状態、又は地上部が２０ｃｍ以上に伸長した状態を意味する。よもぎ及び春菊の場合には、地上部が１０ｃｍ以上に生育した状態を意味する。アーティチョーク及びレタスの場合には、本葉が４枚〜５枚以上出た状態を意味する。ゴボウの場合には、本葉が３枚〜４枚以上出た状態を意味する。サトイモの場合には、本葉が３枚以上出た状態を意味する。ジャガイモの場合には、地上部が１０ｃｍ以上に生育した状態を意味する。ヤーコンの場合には、地上部が１０ｃｍ以上に生育した状態を意味する。エンサイの場合には、地上部が１０ｃｍ以上に生育した状態を意味する。

根部除去工程に供する植物体の育成方法は、特に限定されるものではなく、植物の種類等に応じて、公知の育成方法を選択することができる。根部除去工程に供する植物体は、水耕栽培により育成してもよく、土耕栽培により育成してもよい。根部除去工程に供する植物体は、例えば、以下の文献に記載されているような育成方法により育成することができる。
ジャガイモ：「農家が教えるジャガイモ・サツマイモつくり」、別冊 現代農業、農文協、２０１３年１０月号、ｐｐ９２−９６；サツマイモ：同誌、ｐｐ１５２−１７５；アーティチョーク：野菜の上手な育て方大辞典（２０１４）、監修 北条雅章、成美堂出版、ｐｐ８−９；シュンギク：同誌、ｐｐ３４−３５；レタス：同誌、ｐｐ８０−８１；ゴボウ：同誌、ｐｐ１６８−１６９；サトイモ：同誌、ｐｐ１７０−１７１；ヤーコン：同誌、ｐｐ１８６−１８７；エンサイ：同誌、ｐｐ２１２−２１３
根部を除去した後に、植物体中のポリフェノール化合物の含有量をより顕著に増加させる観点から、根部除去工程に供する植物体は、水及び肥料の存在下、十分な光照射の下で育成することが好ましい。

根部除去工程において、植物体の根部を除去する方法は、植物体の根の部分と茎の部分とを分離して、植物体から根の部分を取り除くことができれば、特に限定されるものではない。
植物体の根部を除去する手段としては、例えば、刃物等で切断する、手で折り取る等の手段が挙げられる。植物体の根部を除去する方法としては、一般的には、根部を含まないように茎を切断する方法が挙げられる。切断箇所は、植物体の種類により異なるため、一概に規定することはできない。植物体の収穫を複数回行い得るという観点から、根部除去工程では、主枝から脇芽を十分に伸長させた後、伸長させた部分を主枝の近くから切断することが好ましい。
茎を切断する場合の好ましい態様としては、例えば、鋭利な剪定ばさみ、剪定ナイフ、鎌、バリカン、チェーンソー等の刃物を用いて、茎に対して直交又は茎に対して傾斜角度を持って切断する態様が挙げられる。傾斜角度を持って茎を切断する場合、その傾斜角度は、特に規定されるものではない。
本発明の植物体の生産方法では、根部除去工程を経た後の植物体に、新たに根が生えてくることは、本発明の効果を得るための妨げになるものではない。

＜保存工程＞
保存工程は、根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存する工程である。ここでいう「水の存在下」とは、根部を除去した植物体がおかれた環境に水分があることを意味し、根部を除去した植物体が枯れない程度に水を吸収できれば、水蒸気を含む空間も含まれる。水蒸気を含む空間に根部を除去した植物体を保存する場合、その空間の水蒸気量は、植物が枯れずに保たれる水蒸気量であれば、特に限定されるものではない。植物が枯れずに保たれる水蒸気量は、植物体により変動するため、一概に規定することはできない。一般的には、根部を除去した植物体を保存する空間の水蒸気量の下限値は、３０℃において相対湿度が５０％である。
保存工程における「保存」とは、根部を除去した植物体が枯れない程度に鮮度を保持させることを意味し、特に育成する必要はない。保存工程では、根部を除去した植物体を、水蒸気を含む空間に放置してもよい。

保存工程は、根部を除去した植物体の鮮度を十分に保持させ、植物体中のポリフェノール化合物の含有量を顕著に増加させる観点から、好ましくは、根部を除去した植物体の少なくとも一部を、水又は用土の少なくとも一方に配置して保存することを含み、より好ましくは、根部を除去した植物体の少なくとも一部を、水に配置して保存した後、用土に配置して保存することを含む。
保存工程における保存方法の具体例としては、植物体の根部を除去した側の端部を、水に浸す保存方法、植物体の根部を除去した側の端部を、水を含ませた用土に挿す保存方法、植物体の根部を除去した側の端部を、水を含ませたスポンジ、脱脂綿等で覆う保存方法、密閉した空間に、水又は水を含ませたスポンジ、脱脂綿等と根部を除去した植物体とを置く保存方法などが挙げられる。

保存工程において、根部を除去した植物体の少なくとも一部を水に配置する場合、水に対して、水耕栽培等に使用される市販の液肥（例えば、ハイポネックス（登録商標）等）を加えてもよい。ここでいう「水」は、水道水又は水道水に含まれる程度の量のミネラルを含む水であり、肥料分を含まない水を意味する。
保存工程において、根部を除去した植物体の少なくとも一部を用土に配置する場合、用土に対して、土耕栽培等に使用される肥料を加えてもよい。ここでいう「用土」は、黒土、赤玉土、鹿沼土、軽石、バーミキュライト、ピートモス等の肥料分を含まない無肥用土を意味する。なお、肥料には、市販品を用いてもよい。

植物体中のポリフェノール化合物の含有量を顕著に増加させる観点からは、保存工程において、根部を除去した植物体に、新たに根が生えてきた後は、無施肥条件又は実質的に肥料を含まない低施肥条件で保存することが好ましい。ここでいう「実質的に肥料を含まない低施肥条件」とは、植物体の鮮度を保持するために必要な程度の肥料を含み、育成を目的とした量の肥料を含まない施肥条件を意味する。低施肥条件における施肥量は、通常の育成に使用される肥料の量の１／５以下であることが好ましく、１／１０以下であることがより好ましく、１／５０以下であることが更に好ましい。

保存工程における保存期間は、２４時間以上である。保存期間の上限は、特に限定されるものではない。保存期間が２４時間未満であると、植物体中に含有されるポリフェノール化合物を十分に増加させることができない。保存工程における保存期間は、好ましくは２日間〜３５日間である。
保存工程において、水に配置する（又は、水蒸気を含む空間に配置する）保存期間は、生産性及び経済性の観点から、１日間（２４時間）〜１４日間であることが好ましく、２日間〜１４日間であることがより好ましく、３日間〜７日間であることが更に好ましい。
保存工程では、ポリフェノール化合物の含有量が顕著に増加した植物体を効率良く生産する観点から、根部を除去した植物体の少なくとも一部を水に２日間〜１４日間配置することが好ましく、根部を除去した植物体の少なくとも一部を３日間〜７日間水に配置した後、好ましくは１日間〜６０日間、より好ましくは３日間〜４０日間、更に好ましくは７日間〜３０日間、特に好ましくは１４日間〜２１日間、用土に配置する。

保存工程は、植物体中のポリフェノール化合物の含有量を顕著に増加させる観点から、根部を除去した植物体に光照射することを含むことが好ましい。
根部を除去した植物体に照射する光源は、特に限定されるものではなく、太陽光であってもよいし、蛍光灯、キセノンランプ、水銀ランプ、ハロゲンランプ、ＬＥＤ（light-emitting diode）等の人工光源であってもよい。光源として、ＬＥＤを選択する場合には、植物体中のポリフェノール化合物の含有量を増加させる観点から、波長が４００ｎｍ〜５００ｎｍの青色ＬＥＤが好ましく用いられる。
１日当たりの光照射時間は、５時間〜２４時間であることが好ましく、８時間〜１６時間であることがより好ましく、１０時間〜１４時間であることが更に好ましい。
光照射における光の照度は、特に限定されるものではない。植物体中のポリフェノール化合物の含有量を顕著に増加させる観点から、光照射における光の照度は、１，０００ｌｕｘ以上であることが好ましく、１０，０００ｌｕｘ以上であることがより好ましい。
光の照度の上限値は、高すぎることで植物体に対して悪影響を及ぼさなければ、特に限定されるものでなく、所望により設定すればよい。一般的には、光の照度は、２００，０００ｌｕｘ以下であることが望ましい。

保存工程における保存温度は、植物体中のポリフェノール化合物の含有量を増加させる観点から、２０℃〜４０℃である。植物体中のポリフェノール化合物の含有量を顕著に増加させる観点からは、保存工程における保存温度は、２０℃〜３５℃であることが好ましい。

＜他の工程＞
本発明の植物体の生産方法は、本発明の効果を損なわない範囲において、必要に応じて、根部除去工程及び保存工程以外の他の工程を含んでもよい。

［トリカフェオイルキナ酸含有植物体］
本発明のトリカフェオイルキナ酸含有植物体は、上述した本発明の植物体の生産方法により生産され、トリカフェオイルキナ酸の含有量が、トリカフェオイルキナ酸含有植物体の葉身の乾燥質量１００ｇ当たり、好ましくは８０ｍｇ以上であり、より好ましくは２００ｍｇ以上であり、更に好ましくは３００ｍｇ以上であり、特に好ましくは５００ｍｇ以上である。
トリカフェオイルキナ酸を豊富に含有する植物は、これまで全く見出されていない。
本発明の植物体の生産方法では、ポリフェノール化合物含有植物体として、トリカフェオイルキナ酸を含有する植物体を用いることで、現存するトリカフェオイルキナ酸含有植物体に比して、トリカフェオイルキナ酸を高濃度で含有する植物体を実現することができる。

本発明の植物体の生産方法では、植物体中に含まれるカフェオイルキナ酸化合物の中でも、特に高い生理活性を有し、かつ、極めて希少な物質であるトリカフェオイルキナ酸の含有量が顕著に増加した植物体を実現することができる。
本発明の植物体の生産方法における根部除去工程及び保存工程を経たトリカフェオイルキナ酸含有植物体は、カフェオイルキナ酸化合物の総量に対するトリカフェオイルキナ酸の含有量が、根部除去工程に供するトリカフェオイルキナ酸含有植物体と比較して、好ましくは１．２倍以上、より好ましくは２．０倍以上、更に好ましくは３．０倍以上、特に好ましくは３．５倍以上となる。
ここでいうカフェオイルキナ酸化合物の例は、本発明の植物体の生産方法の項において説明したカフェオイルキナ酸化合物の例と同義であるため、ここでは説明を省略する。

植物体中のトリカフェオイルキナ酸の含有量は、下記の抽出方法及び定量方法により、確認することができる。なお、トリカフェオイルキナ酸以外のポリフェノール化合物についても、下記の抽出方法と同様の方法により抽出することができ、また、測定対象となるポリフェノール化合物の標準品を用いて検量線を作成することで、下記の定量方法と同様の方法により定量することができる。

＜トリカフェオイルキナ酸の抽出方法＞
本発明におけるトリカフェオイルキナ酸は、下記の２つの方法のうちのいずれかの方法を用いて抽出する。
１．植物体を凍結乾燥後、ミルを用いて、粉末状に粉砕する。植物体の凍結乾燥粉末５０ｍｇと８０v/v％エタノール水溶液５ｍＬとを１５ｍＬ容量のファルコンチューブに入れて、５分間煮沸する。煮沸後、４０℃以下に冷却した植物体を含むエタノール水溶液を、３０００ｒｐｍ（round per minute；以下同じ。）で１５分間遠心分離し、得られた上澄みを回収する。回収した上澄みを、孔径が０．４５μｍのシリンジフィルターで濾過し、得られた濾液を、下記の定量分析に用いる。
２．窒素雰囲気下、１ｃｍ〜２ｃｍに切断した生の植物体５ｇと９０v/v％エタノール水溶液５０ｍＬとを１００ｍＬ容量のナスフラスコに入れて、８０℃で１時間加熱する。加熱後、植物体を含むエタノール水溶液を、脱脂綿を用いて濾過し、濾液（第１の濾液）を回収する。濾過により得られた残渣を、９０v/v％エタノール水溶液２５ｍＬで洗浄し、濾液（第２の濾液）を回収する。第１の濾液及び第２の濾液を１００ｍＬ容量のメスシリンダーに入れ、１００ｍＬにメスアップした後、孔径が０．４５μｍのシリンジフィルターで濾過し、得られた濾液を、下記の定量分析に用いる。

＜トリカフェオイルキナ酸の定量方法＞
本発明におけるトリカフェオイルキナ酸は、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）を用いて分析し、絶対検量線法により定量する。ＨＰＬＣ分析条件を以下に示す。

〜ＨＰＬＣ分析条件〜
測定装置：Ｐｒｏｍｉｎｅｎｃｅ（送液ポンプ：ＬＣ−２０ＡＴ，デガッサー：ＤＧＵ−２０Ａ３，ＵＶ検出器：ＳＰＤ−２０Ａ，カラムオーブン：ＣＴＯ−２０ＡＣ、（株）島津製作所製）
カラム：ＴＳＫｇｅｌ ＯＤＳ−１００Ｖ ５μｍ（内径４．６ｍｍ×長さ１５０ｍｍ、東ソー（株）製）
移動相：Ａ液）０．２v/v％ギ酸−水、Ｂ液）０．２v/v％ギ酸−アセトニトリル
グラジエントサイクル：Ａ液＋Ｂ液＝１００％とし、Ｂ液の組成を示す。
Ｂ液＝ ２％→ １９％（０分→１６分）
Ｂ液＝ １９％→ ５２％（１６分→３２分）
Ｂ液＝ ５２％→１００％（３２分→３７分）
Ｂ液＝１００％→ ２％（３７分→４７分）
流量：１ｍＬ／分
カラム温度：４０℃
注入量：１０μＬ
検出波長：３３０ｎｍ

本発明におけるポリフェノール化合物の総量は、例えば、Islamら、J. Agric. Food Chem. 2002, 50, 3718-3722に記載されたFolin-Ciocalteu法により測定することができる。Folin-Ciocalteu法では、フォーリン試薬がフェノール性水酸基により還元されて呈色することを利用する測定方法である。具体的には、測定試料と、フォーリン試薬と、１０質量％炭酸ナトリウム水溶液とを混合し、６００ｎｍにおける吸光度を測定することにより、測定試料中に含まれるポリフェノール化合物の総量を測定する。なお、標準物質には、クロロゲン酸（５−Ｏ−カフェオイルキナ酸）を用いることができ、クロロゲン酸換算濃度として算出すればよい。

［ポリフェノール化合物含有植物体中のポリフェノール化合物量を増加させる方法］
本発明のポリフェノール化合物含有植物体中のポリフェノール化合物量を増加させる方法（以下、「ポリフェノール化合物の増加方法」とも称する。）は、サツマイモ以外のイモ類、ヒルガオ科植物、及びキク科植物からなる群より選ばれる生長したポリフェノール化合物含有植物体（以下、「ポリフェノール化合物含有植物体」とも称する。）の根部を除去する根部除去工程と、上記根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存する保存工程と、を含む方法である。
本発明のポリフェノール化合物の増加方法では、生長したポリフェノール化合物含有植物体の根部を除去した後、この根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存するという簡便な方法により、ポリフェノール化合物含有植物体中のポリフェノール化合物量を、本来含有する量よりも増加させることができる。
本発明のポリフェノール化合物の増加方法では、根部除去工程に供する植物体よりもポリフェノール化合物量を、好ましくは１．１倍以上、より好ましくは１．３倍以上、更に好ましくは１．４倍以上、特に好ましくは１．５倍以上増加させることができる。

本発明のポリフェノール化合物の増加方法に適用し得るポリフェノール化合物含有植物体は、本発明の植物体の生産方法の項において説明したポリフェノール化合物含有植物体と同義であり、好ましい例も同様であるため、ここでは説明を省略する。
また、本発明のポリフェノール化合物の増加方法における根部除去工程及び保存工程についても、本発明の植物体の生産方法の項において説明した根部除去工程及び保存工程と同義であり、好ましい例も同様であるため、ここでは説明を省略する。
本発明のポリフェノール化合物の増加方法は、本発明の効果を損なわない範囲において、必要に応じて、根部除去工程及び保存工程以外の他の工程を含んでもよい。

［カフェオイルキナ酸化合物含有植物体中のカフェオイルキナ酸化合物量を増加させる方法］
本発明のカフェオイルキナ酸化合物含有植物体中のカフェオイルキナ酸化合物量を増加させる方法（以下、「カフェオイルキナ酸化合物の増加方法」とも称する。）は、サツマイモ以外のイモ類、ヒルガオ科植物、及びキク科植物からなる群より選ばれる生長したカフェオイルキナ酸化合物含有植物体（以下、「カフェオイルキナ酸化合物含有植物体」とも称する。）の根部を除去する根部除去工程と、上記根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存する保存工程と、を含む方法である。
カフェオイルキナ酸化合物は、ポリフェノール化合物の中でも、高い生理活性を有する物質である。
本発明のカフェオイルキナ酸化合物の増加方法では、生長したカフェオイルキナ酸化合物含有植物体の根部を除去した後、この根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存するという簡便な方法により、カフェオイルキナ酸化合物含有植物体中のカフェオイルキナ酸化合物量を、本来含有する量よりも増加させることができる。
本発明のカフェオイルキナ酸化合物の増加方法では、根部除去工程に供する植物体よりもカフェオイルキナ酸化合物量を、好ましくは１．２倍以上、より好ましくは１．５倍以上、更に好ましくは２．０倍以上、特に好ましくは２．４倍以上増加させることができる。

本発明のカフェオイルキナ酸化合物の増加方法に適用し得るカフェオイルキナ酸化合物含有植物体は、本発明の植物体の生産方法の項において説明したカフェオイルキナ酸化合物含有植物体と同義であり、好ましい例も同様であるため、ここでは説明を省略する。
また、本発明のカフェオイルキナ酸化合物の増加方法における根部除去工程及び保存工程についても、本発明の植物体の生産方法の項において説明した根部除去工程及び保存工程と同義であり、好ましい例も同様であるため、ここでは説明を省略する。
本発明のカフェオイルキナ酸化合物の増加方法は、本発明の効果を損なわない範囲において、必要に応じて、根部除去工程及び保存工程以外の他の工程を含んでもよい。

［トリカフェオイルキナ酸含有植物体中のトリカフェオイルキナ酸量を増加させる方法］
本発明のトリカフェオイルキナ酸含有植物体中のトリカフェオイルキナ酸量を増加させる方法（以下、「トリカフェオイルキナ酸の増加方法」とも称する。）は、サツマイモ以外のイモ類、ヒルガオ科植物、及びキク科植物からなる群より選ばれる生長したトリカフェオイルキナ酸含有植物体（以下、単に「植物体」とも称する。）の根部を除去する根部除去工程と、上記根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存する保存工程と、を含む方法である。
トリカフェオイルキナ酸は、ポリフェノール化合物の中でも、特に高い生理活性を有し、かつ、極めて希少な物質である。しかしながら、現存するトリカフェオイルキナ酸含有植物体中のトリカフェオイルキナ酸量は微量であり、トリカフェオイルキナ酸を豊富に含有する植物体は、見出されていない。
本発明のトリカフェオイルキナ酸の増加方法では、生長したトリカフェオイルキナ酸含有植物体の根部を除去した後、この根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存するという簡便な方法により、トリカフェオイルキナ酸含有植物体中のトリカフェオイルキナ酸量を、本来含有する量よりも増加させることができる。
本発明のトリカフェオイルキナ酸の増加方法では、根部除去工程に供する植物体よりもトリカフェオイルキナ酸量を、好ましくは１．２倍以上、より好ましくは２．０倍以上、更に好ましくは３．０倍以上、特に好ましくは３．５倍以上増加させることができる。

本発明のトリカフェオイルキナ酸の増加方法に適用し得るトリカフェオイルキナ酸含有植物体は、本発明の植物体の生産方法の項において説明したトリカフェオイルキナ酸含有植物体と同義であり、好ましい例も同様であるため、ここでは説明を省略する。
また、本発明のトリカフェオイルキナ酸の増加方法における根部除去工程及び保存工程についても、本発明の植物体の生産方法の項において説明した根部除去工程及び保存工程と同義であり、好ましい例も同様であるため、ここでは説明を省略する。
本発明のトリカフェオイルキナ酸の増加方法は、本発明の効果を損なわない範囲において、必要に応じて、根部除去工程及び保存工程以外の他の工程を含んでもよい。

以下、本発明を実施例により更に具体的に説明するが、本発明はその主旨を越えない限り、以下の実施例に限定されるものではない。
実施例において、化合物名は、表１に示す略称を使用した。

実施例では、３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、及び５−ＣＱＡを、「クロロゲン酸（ＣｈＡ）」と総称した。
また、実施例では、３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、及び４，５−ＤＣＱＡを、「ＤＣＱＡ」と総称した。
なお、実施例における「カフェオイルキナ酸化合物の総量」とは、３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、５−ＣＱＡ、３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡの総量を意味する。

〔ポリフェノール化合物の抽出方法〕
実施例において、植物体に含まれるポリフェノール化合物（イソケルセチン、３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、５−ＣＱＡ、３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）は、以下の方法により抽出した。

１．凍結乾燥した植物体からのポリフェノール化合物の抽出
凍結乾燥した植物体を、ミルを用いて粉末状に粉砕した。得られた植物体の凍結乾燥粉末５０ｍｇと８０v/v％エタノール水溶液５ｍＬとを１５ｍＬ容量のファルコンチューブに入れて、５分間煮沸した。煮沸後、４０℃以下に冷却した植物体を含むエタノール水溶液を、３０００ｒｐｍで１５分間遠心分離し、得られた上澄みを回収した。回収した上澄みを、孔径が０．４５μｍのシリンジフィルターで濾過し、濾液を得た。得られた濾液を下記の定量分析に用いた。

２．生の植物体からのポリフェノール化合物の抽出
窒素雰囲気下、１ｃｍ〜２ｃｍに切断した植物体５ｇと９０v/v％エタノール水溶液５０ｍＬとを１００ｍＬ容量のナスフラスコに入れて、８０℃で１時間加熱した。加熱後、植物体を含むエタノール水溶液を、脱脂綿を用いて濾過し、濾液（第１の濾液）を回収した。濾過により得られた残渣を、９０v/v％エタノール水溶液２５ｍＬで洗浄し、濾液（第２の濾液）を回収した。第１の濾液及び第２の濾液を１００ｍＬ容量のメスシリンダーに入れて、１００ｍＬにメスアップした後、孔径が０．４５μｍのシリンジフィルターで濾過し、濾液を得た。得られた濾液を下記の定量分析に用いた。

〔各ポリフェノール化合物の定量方法〕
実施例において、植物体に含まれるポリフェノール化合物（イソケルセチン、３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、５−ＣＱＡ、３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）の定量は、それぞれ高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）を用いた絶対検量線法により行った。ＨＰＬＣ分析条件を以下に示す。

〜ＨＰＬＣ分析条件〜
測定装置：Ｐｒｏｍｉｎｅｎｃｅ（送液ポンプ：ＬＣ−２０ＡＴ，デガッサー：ＤＧＵ−２０Ａ３，ＵＶ検出器：ＳＰＤ−２０Ａ，カラムオーブン：ＣＴＯ−２０ＡＣ、（株）島津製作所製）
カラム：ＴＳＫｇｅｌ ＯＤＳ−１００Ｖ ５μｍ（内径４．６ｍｍ×長さ１５０ｍｍ、東ソー（株）製）
移動相：Ａ液）０．２v/v％ギ酸−水、Ｂ液）０．２v/v％ギ酸−アセトニトリル
グラジエントサイクル：Ａ液＋Ｂ液＝１００％とし、Ｂ液の組成を示す。
Ｂ液＝ ２％→ １９％（０分→１６分）
Ｂ液＝ １９％→ ５２％（１６分→３２分）
Ｂ液＝ ５２％→１００％（３２分→３７分
Ｂ液＝１００％→ ２％（３７分→４７分）
流量：１ｍＬ／分
カラム温度：４０℃
注入量：１０μＬ
検出波長：３３０ｎｍ

〔ポリフェノール化合物の総量の測定方法〕
実施例において、植物体に含まれるポリフェノール化合物の総量の測定は、Folin-Ciocalteu法により行った。上記にて得られた濾液と、フォーリン試薬と、１０質量％炭酸ナトリウム水溶液とを混合し、測定試料を得た。得られた測定試料の６００ｎｍにおける吸光度を、マイクロプレートリーダー（ＳｐｅｃｔｒａＭａｘ Ｐｌｕｓ３８４、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅ社製）を用いて測定した。標準物質には、クロロゲン酸（５−Ｏ−カフェオイルキナ酸）を用い、測定毎に標準物質の検量線を作成した。作成した検量線により、植物体に含まれるポリフェノール化合物の総量をクロロゲン酸換算濃度として算出した。
なお、実施例における表中では、「ポリフェノール化合物の総量」を「総ポリフェノール」と表記した。

＜試験例１＞
屋外ハウス（太陽光下）にて土耕栽培し、生長したサツマイモの８節分の茎葉を、根部を含まないように切断し、収穫した。この収穫したサツマイモの茎葉を、花き類の鮮度を保持する場合と同様に、茎葉がしおれないようにハイポネックス（登録商標）（Ｎ−Ｐ−Ｋ＝６−１０−５）の１０００倍希釈溶液に、切断時の切り口が浸り、かつ、葉が浸からないように挿した。
このハイポネックス（登録商標）に挿したサツマイモの茎葉を、人工気象器（温度：３０℃、相対湿度：７０％、照度：２３，０００ｌｕｘ、１２時間日長（明期：６時〜１８時、暗期：１８時〜６時））内にて７日間保存した。
収穫直後（保存０日）のサツマイモの葉身、３日間保存して収穫したサツマイモの葉身、及び７日間保存して収穫したサツマイモの葉身をそれぞれ凍結乾燥し、ポリフェノール化合物を抽出し、サツマイモの葉身に含まれるポリフェノール化合物の総量の測定、並びに３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡの定量を行った。測定は、サツマイモの葉身の収穫部位を変えて２回行い、それぞれの測定試料を測定試料Ａ及び測定試料Ｂと称した。測定結果を表２〜表５に示す。なお、表２及び表３におけるポリフェノールの総量の単位は、ｇ ＣｈＡ換算量／１００ｇ Ｆ．Ｄ．Ｐ．（葉身の凍結乾燥粉末）であり、表４及び表５における各ポリフェノール化合物の含有量の単位は、ｇ／１００ｇ Ｆ．Ｄ．Ｐ．（葉身の凍結乾燥粉末）である。

表２及び表３に示すように、サツマイモの葉身に含まれるポリフェノールの総量は、順調に増加した。
一方、表には示していないが、上記の生長したサツマイモを、茎葉を切断せずに、更に７日間土壌で生育させたところ、サツマイモの葉身に含まれるポリフェノールの総量には、ほとんど変化が見られなかった。

また、表４及び表５に示すように、サツマイモの葉身に含まれる３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡの量は、順調に増加した。
一方、表には示していないが、上記の生長したサツマイモを、茎葉を切断せずに、更に７日間土壌で生育させたところ、サツマイモの葉身に含まれる３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡの量には、ほとんど変化が見られなかった。

＜試験例２＞
屋外ハウス（太陽光下）にて土耕栽培し、生長したサツマイモの８節分の茎葉を、根部を含まないように切断し、収穫した。この収穫したサツマイモの茎葉を、花き類の鮮度を保持する場合と同様に、茎葉がしおれないようにハイポネックス（登録商標）（Ｎ−Ｐ−Ｋ＝６−１０−５）の１０００倍希釈溶液に、切断時の切り口が浸り、かつ、葉が浸からないように挿した。
このハイポネックス（登録商標）に挿したサツマイモの茎葉を、人工気象器（温度：３０℃、相対湿度：７０％、無照明）内にて７日間保存した。
収穫直後（保存０日）のサツマイモの葉身、３日間保存して収穫したサツマイモの葉身、及び７日間保存して収穫したサツマイモの葉身をそれぞれ凍結乾燥し、ポリフェノール化合物を抽出し、サツマイモの葉身に含まれるポリフェノール化合物の総量の測定を行った。測定結果を表６に示す。なお、表６におけるポリフェノールの総量の単位は、ｇ ＣｈＡ換算量／１００ｇ Ｆ．Ｄ．Ｐ．（葉身の凍結乾燥粉末）である。

表６に示すように、サツマイモの葉身に含まれるポリフェノール化合物の総量は、無照明の条件下で順調に増加した。

＜試験例３＞
屋外ハウス（太陽光下）にて土耕栽培し、生長したサツマイモの８節分の茎葉を、根部を含まないように切断し、収穫した。この収穫したサツマイモの茎葉を、花き類の鮮度を保持する場合と同様に、茎葉がしおれないように水道水に、切断時の切り口が浸り、かつ、葉が浸からないように挿した。
この水道水に挿したサツマイモの茎葉を、貯蔵室（温度：３０℃、相対湿度：７０％、照度：２，０００ｌｕｘ、１２時間日長（明期：６時〜１８時、暗期：１８時〜６時））内にて３日間保存した。
収穫直後（保存０日）のサツマイモの葉身、及び３日間保存して収穫したサツマイモの葉身をそれぞれ凍結乾燥し、ポリフェノール化合物を抽出し、サツマイモの葉身に含まれるＴＣＱＡの定量を行った。測定結果を表７に示す。なお、表７におけるＴＣＱＡの含有量の単位は、ｇ／１００ｇ Ｆ．Ｄ．Ｐ．（葉身の凍結乾燥粉末）である。

表７に示すように、サツマイモの葉身に含まれるＴＣＱＡは、２，０００ｌｕｘの照度条件下で順調に増加した。

＜試験例４＞
屋外ハウス（太陽光下）にて土耕栽培し、生長したサツマイモ（品種：コガネセンガン、試験例１で用いたサツマイモとは異なる品種）の８節分の茎葉を、根部を含まないように切断し、収穫した。この収穫したサツマイモの茎葉を、花き類の鮮度を保持する場合と同様に、茎葉がしおれないようにハイポネックス（登録商標）（Ｎ−Ｐ−Ｋ＝６−１０−５）の１０００倍希釈溶液に、切断時の切り口が浸り、かつ、葉が浸からないように挿した。
このハイポネックス（登録商標）に挿したサツマイモの茎葉を、人工気象器（温度：３０℃、相対湿度：７０％、照度：２３，０００ｌｕｘ、１２時間日長（明期：６時〜１８時、暗期：１８時〜６時））内にて７日間保存した。
収穫直後（保存０日）のサツマイモの葉身、３日間保存して収穫したサツマイモの葉身、及び７日間保存して収穫したサツマイモの葉身をそれぞれ凍結乾燥し、ポリフェノール化合物を抽出し、サツマイモの葉身に含まれるポリフェノール化合物の総量の測定、並びに３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡの定量を行った。測定結果を表８〜表１０に示す。なお、表８におけるポリフェノールの総量の単位は、ｇ ＣｈＡ換算量／１００ｇ Ｆ．Ｄ．Ｐ．（葉身の凍結乾燥粉末）であり、表９及び表１０における各ポリフェノール化合物の含有量の単位は、ｇ／１００ｇ Ｆ．Ｄ．Ｐ．（葉身の凍結乾燥粉末）である。

表８に示すように、サツマイモ（品種：コガネセンガン）の葉身に含まれるポリフェノール化合物の総量は、順調に増加した。
また、表９及び表１０に示すように、サツマイモ（品種：コガネセンガン）の葉身に含まれる３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡの量は、順調に増加した。

＜試験例５＞
屋外ハウス（太陽光下）にて土耕栽培し、生長したサツマイモ（品種：ムラサキマサリ、試験例１で用いたサツマイモとは異なる品種）の８節分の茎葉を、根部を含まないように切断し、収穫した。この収穫したサツマイモの茎葉を、花き類の鮮度を保持する場合と同様に、茎葉がしおれないようにハイポネックス（登録商標）（Ｎ−Ｐ−Ｋ＝６−１０−５）の１０００倍希釈溶液に、切断時の切り口が浸り、かつ、葉が浸からないように挿した。
このハイポネックス（登録商標）に挿したサツマイモの茎葉を、人工気象器（温度：３０℃、相対湿度：７０％、照度：２３，０００ｌｕｘ、１２時間日長（明期：６時〜１８時、暗期：１８時〜６時））内にて３日間保存した。
収穫直後（保存０日）のサツマイモの葉身、及び３日間保存して収穫したサツマイモの葉身をそれぞれ凍結乾燥し、ポリフェノール化合物を抽出し、サツマイモの葉身に含まれるカフェオイルキナ酸化合物（３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、５−ＣＱＡ、３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）の定量を行った。測定結果を表１１及び表１２に示す。なお、表１１における３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡの含有量の単位、並びに表１２におけるカフェオイルキナ酸化合物の総量の単位は、いずれもｇ／１００ｇ Ｆ．Ｄ．Ｐ．（葉身の凍結乾燥粉末）である。

表１１及び表１２に示すように、サツマイモ（品種：ムラサキマサリ）の葉身に含まれる３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡの量、並びにカフェオイルキナ酸化合物の総量は、順調に増加した。

＜試験例６＞
屋外ハウス（太陽光下）にて土耕栽培し、生長したサツマイモ（品種：タマアカネ、試験例１で用いたサツマイモとは異なる品種）の８節分の茎葉を、根部を含まないように切断し、収穫した。この収穫したサツマイモの茎葉を、花き類の鮮度を保持する場合と同様に、茎葉がしおれないようにハイポネックス（登録商標）（Ｎ−Ｐ−Ｋ＝６−１０−５）の１０００倍希釈溶液に、切断時の切り口が浸り、かつ、葉が浸からないように挿した。
このハイポネックス（登録商標）に挿したサツマイモの茎葉を、人工気象器（温度：３０℃、相対湿度：７０％、照度：２３，０００ｌｕｘ、１２時間日長（明期：６時〜１８時、暗期：１８時〜６時））内にて７日間保存した。
収穫直後（保存０日）のサツマイモの葉身、及び７日間保存して収穫したサツマイモの葉身をそれぞれ凍結乾燥し、ポリフェノール化合物を抽出し、サツマイモの葉身に含まれるカフェオイルキナ酸化合物（３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、５−ＣＱＡ、３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）の定量を行った。測定結果を表１３及び表１４に示す。なお、表１３におけるＤＣＱＡ（３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、及び４，５−ＤＣＱＡ）及びＴＣＱＡの含有量の単位、並びに表１４におけるカフェオイルキナ酸化合物の総量の単位は、いずれもｇ／１００ｇ Ｆ．Ｄ．Ｐ．（葉身の凍結乾燥粉末）である。

表１３及び表１４に示すように、サツマイモ（品種：タマアカネ）の葉身に含まれるＤＣＱＡ及びＴＣＱＡの量、並びにカフェオイルキナ酸化合物の総量は、順調に増加した。

＜試験例７＞
屋外ハウス（太陽光下）にて土耕栽培し、生長したサツマイモ（品種：高系１４号、試験例１で用いたサツマイモとは異なる品種）の８節分の茎葉を、根部を含まないように切断し、収穫した。この収穫したサツマイモの茎葉を、花き類の鮮度を保持する場合と同様に、茎葉がしおれないようにハイポネックス（登録商標）（Ｎ−Ｐ−Ｋ＝６−１０−５）の１０００倍希釈溶液に、切断時の切り口が浸り、かつ、葉が浸からないように挿した。
このハイポネックス（登録商標）に挿したサツマイモの茎葉を、人工気象器（温度：３０℃、相対湿度：７０％、照度：２３，０００ｌｕｘ、１２時間日長（明期：６時〜１８時、暗期：１８時〜６時））内にて３日間保存した。
収穫直後（保存０日）のサツマイモの葉身、及び３日間保存して収穫したサツマイモの葉身をそれぞれ凍結乾燥し、ポリフェノール化合物を抽出し、サツマイモの葉身に含まれるカフェオイルキナ酸化合物（３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、５−ＣＱＡ、３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）の定量を行った。測定結果を表１５及び表１６に示す。なお、表１５におけるＤＣＱＡ（３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、及び４，５−ＤＣＱＡ）及びＴＣＱＡの含有量の単位、並びに表１６におけるカフェオイルキナ酸化合物の総量の単位は、いずれもｇ／１００ｇ Ｆ．Ｄ．Ｐ．（葉身の凍結乾燥粉末）である。

表１５及び表１６に示すように、サツマイモ（品種：高系１４号）の葉身に含まれるＤＣＱＡ及びＴＣＱＡの量、並びにカフェオイルキナ酸化合物の総量は、順調に増加した。

＜試験例８＞
室内の蛍光灯（植物育成用蛍光灯 ビオルックス（登録商標）Ａ、ＮＥＣライティング社）下で土耕栽培したサツマイモ（品種：シロユタカ、試験例１で用いたサツマイモとは異なる品種）の８節分の茎葉を、根部を含まないように切断し、収穫した。なお、室内は、気温３０℃、相対湿度６０％になるように調節した。蛍光灯の照度は、サツマイモの苗の先端部が約６，０００ｌｕｘとなるように調整した。また、蛍光灯は、１２時間周期で、ＯＮ−ＯＦＦを行った。
この収穫したサツマイモの茎葉を、花き類の鮮度を保持する場合と同様に、茎葉がしおれないようにハイポネックス（登録商標）（Ｎ−Ｐ−Ｋ＝６−１０−５）の１０００倍希釈溶液に、切断時の切り口が浸り、かつ、葉が浸からないように挿した。このハイポネックス溶液に挿したサツマイモの茎葉を、上記と同じ室内環境下で、４日間保存した。
収穫直後（保存０日）のサツマイモの葉身、及び４日間保存して収穫したサツマイモの葉身を収穫し、収穫したそれぞれの生の葉身から、ポリフェノール化合物を抽出し、サツマイモの葉身に含まれるＴＣＱＡ及びイソケルセチンの定量を行った。測定結果を表１７に示す。なお、表１７におけるＴＣＱＡ及びイソケルセチンの含有量の単位は、ｇ／１００ｇ Ｄ．Ｐ．（葉身の乾燥粉末）であり、以下の方法により算出した換算係数を用いて、生の葉身の質量を乾燥した葉身の質量に換算した。
抽出に用いた生の葉身の一部についてサンプリングを行い、真空ポンプを用いて減圧下、８０℃で、重さが恒量になるまで乾燥を行った。乾燥前後の質量変化に基づき、生の葉身の質量を乾燥した葉身の質量に換算するための係数（換算係数）を算出した。

表１７に示すように、サツマイモ（品種：シロユタカ）の葉身に含まれるＴＣＱＡ及びイソケルセチンの量は、いずれも順調に増加した。

＜試験例９＞
室内の蛍光灯（植物育成用蛍光灯 ビオルックス（登録商標）Ａ、ＮＥＣライティング社）下で土耕栽培したエンサイ（ヒルガオ科植物）の８節分の茎葉を、根部を含まないように切断し、収穫した。なお、室内は、気温３０℃、相対湿度６０％になるように調節した。蛍光灯の照度は、エンサイの苗の先端部が約６，０００ｌｕｘとなるように調整した。また、蛍光灯は、１２時間周期で、ＯＮ−ＯＦＦを行った。
この収穫したエンサイの茎葉を、花き類の鮮度を保持する場合と同様に、茎葉がしおれないようにハイポネックス（登録商標）（Ｎ−Ｐ−Ｋ＝６−１０−５）の１０００倍希釈溶液に、切断時の切り口が浸り、かつ、葉が浸からないように挿した。このハイポネックス溶液に挿したエンサイの茎葉を、上記と同じ室内環境下で、２日間保存した。
収穫直後（保存０日）のエンサイの葉身、及び２日間保存して収穫したエンサイの葉身を収穫し、収穫したそれぞれの生の葉身から、ポリフェノール化合物を抽出し、エンサイの葉身に含まれるカフェオイルキナ酸化合物（３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、５−ＣＱＡ、３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）の定量を行った。測定結果を表１８に示す。なお、表１８におけるＣｈＡ（３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、及び５−ＣＱＡ）、ＤＣＱＡ（３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、及び４，５−ＤＣＱＡ）、及びＴＣＱＡの含有量の単位は、ｇ／１００ｇ Ｄ．Ｐ．（葉身の乾燥粉末）であり、試験例８と同様の方法により算出した換算係数を用いて、生の葉身の質量を乾燥した葉身の質量に換算した。

表１８に示すように、エンサイの葉身に含まれるカフェオイルキナ酸化合物（ＣｈＡ、ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）の量は、順調に増加した。

＜試験例１０＞
室内の蛍光灯（植物育成用蛍光灯 ビオルックス（登録商標）Ａ、ＮＥＣライティング社）下で土耕栽培した春菊（キク科植物）の茎葉（先端１５センチ）を、根部を含まないように切断し、収穫した。なお、室内は、気温３０℃になるように調節した。また、室内の湿度は、気温３０℃で飽和蒸気圧となるように調整した。蛍光灯の照度は、春菊の苗の先端部が約６，０００ｌｕｘとなるように調整した。また、蛍光灯は、１２時間周期で、ＯＮ−ＯＦＦを行った。
この収穫した春菊の茎葉を、花き類の鮮度を保持する場合と同様に、茎葉がしおれないようにハイポネックス（登録商標）（Ｎ−Ｐ−Ｋ＝６−１０−５）の１０００倍希釈溶液に、切断時の切り口が浸り、かつ、葉が浸からないように挿した。このハイポネックス溶液に挿した春菊の茎葉を、上記と同じ室内環境下で、２日間保存した。
収穫直後（保存０日）の春菊の葉身、及び２日間保存して収穫した春菊の葉身を収穫し、収穫したそれぞれの生の葉身から、ポリフェノール化合物を抽出し、春菊の葉身に含まれるカフェオイルキナ酸化合物（３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、５−ＣＱＡ、３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）の定量を行った。測定結果を表１９に示す。なお、表１９におけるＣｈＡ（３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、及び５−ＣＱＡ）、ＤＣＱＡ（３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、及び４，５−ＤＣＱＡ）、及びＴＣＱＡの含有量の単位は、ｇ／１００ｇ Ｄ．Ｐ．（葉身の乾燥粉末）であり、試験例８と同様の方法により算出した換算係数を用いて、生の葉身の質量を乾燥した葉身の質量に換算した。

表１９に示すように、春菊の葉身に含まれるカフェオイルキナ酸化合物（ＣｈＡ、ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）の量は、順調に増加した。

＜試験例１１＞
室内の蛍光灯（植物育成用蛍光灯 ビオルックス（登録商標）Ａ、ＮＥＣライティング社）下で土耕栽培したサツマイモの４節分の茎葉を、根部を含まないように切断し、収穫した。なお、室内は、気温３０℃、相対湿度６０％になるように調節した。蛍光灯の照度は、サツマイモの苗の先端部が約６，０００ｌｕｘとなるように調整した。また、蛍光灯は、１２時間周期で、ＯＮ−ＯＦＦを行った。
収穫した生の葉身から、ポリフェノール化合物を抽出し、サツマイモの葉身に含まれるカフェオイルキナ酸化合物（３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、５−ＣＱＡ、３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）の定量を行った。測定結果を表２０に示す。なお、表２０におけるＣｈＡ（３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、及び５−ＣＱＡ）、ＤＣＱＡ（３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、及び４，５−ＤＣＱＡ）、及びＴＣＱＡの含有量、並びにカフェオイルキナ酸化合物の総量の単位は、ｇ／１００ｇ Ｄ．Ｐ．（葉身の乾燥粉末）であり、試験例８と同様の方法により算出した換算係数を用いて、生の葉身の質量を乾燥した葉身の質量に換算した。

＜試験例１２＞
室内の蛍光灯（植物育成用蛍光灯 ビオルックス（登録商標）Ａ、ＮＥＣライティング社）下で土耕栽培したサツマイモの４節分の茎葉を、根部を含まないように切断し、収穫した。なお、室内は、気温３０℃、相対湿度６０％になるように調節した。蛍光灯の照度は、サツマイモの苗の先端部が約６，０００ｌｕｘとなるように調整した。また、蛍光灯は、１２時間周期で、ＯＮ−ＯＦＦを行った。
この収穫したサツマイモの茎葉を、切断時の切り口が浸り、かつ、葉が浸からないように水に挿した。この水に挿したサツマイモの茎葉を、上記と同じ室内環境下で、６日間保存した。６日間保存したサツマイモの茎葉を、バーミキュライト（無肥用土）に植えて、上記と同じ室内環境下で、水を与えながら、更に１５日間保存した後、葉身を収穫した。
また、別の系として、無肥用土として、バーミキュライトの代わりに、黒土、赤玉土、又は軽石を用いて、上記と同じ室内環境下、収穫したサツマイモの茎葉を保存した後、葉身を収穫した。各系における保存期間を表２１に示す。

収穫した生の葉身から、ポリフェノール化合物を抽出し、サツマイモの葉身に含まれるカフェオイルキナ酸化合物（３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、５−ＣＱＡ、３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）の定量を行った。測定結果を表２２及び表２３（試験例１１に対する相対値）に示す。なお、表２２におけるＣｈＡ（３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、及び５−ＣＱＡ）、ＤＣＱＡ（３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、及び４，５−ＤＣＱＡ）、及びＴＣＱＡの含有量、並びにカフェオイルキナ酸化合物の総量の単位は、ｇ／１００ｇ Ｄ．Ｐ．（葉身の乾燥粉末）であり、試験例８と同様の方法により算出した換算係数を用いて、生の葉身の質量を乾燥した葉身の質量に換算した。

表２２及び表２３に示すように、いずれの系も、試験例１１（保存０日、収穫直後）と比較して、カフェオイルキナ酸化合物（ＣｈＡ、ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）の含有量が増加することが確認された。また、カフェオイルキナ酸化合物の中でも、特にＴＣＱＡの含有量の増加が顕著であった。

＜試験例１３＞
室内の蛍光灯（植物育成用蛍光灯 ビオルックス（登録商標）Ａ、ＮＥＣライティング社）下で土耕栽培したサツマイモの４節分の茎葉を、根部を含まないように切断し、収穫した。なお、室内は、気温３０℃、相対湿度６０％になるように調節した。蛍光灯の照度は、サツマイモの苗の先端部が約１０，０００ｌｕｘとなるように調整した。また、蛍光灯は、１２時間周期で、ＯＮ−ＯＦＦを行った。
この収穫したサツマイモの茎葉を、そのままの状態で、ビニール袋に入れて密閉した。ビニール袋の中には、水で湿らせた脱脂綿を入れて、水蒸気が存在する状態とした。そして、上記と同じ室内環境下で、７日間保存した後、葉身を収穫した。
収穫した生の葉身から、ポリフェノール化合物を抽出し、サツマイモの葉身に含まれるカフェオイルキナ酸化合物（３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、５−ＣＱＡ、３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、４，５−ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）の定量を行った。測定結果を表２４及び表２５（試験例１１に対する相対値）に示す。なお、表２４におけるＣｈＡ（３−ＣＱＡ、４−ＣＱＡ、及び５−ＣＱＡ）、ＤＣＱＡ（３，４−ＤＣＱＡ、３，５−ＤＣＱＡ、及び４，５−ＤＣＱＡ）、及びＴＣＱＡの含有量、並びにカフェオイルキナ酸化合物の総量の単位は、ｇ／１００ｇ Ｄ．Ｐ．（葉身の乾燥粉末）であり、試験例８と同様の方法により算出した換算係数を用いて、生の葉身の質量を乾燥した葉身の質量に換算した。

表２４及び表２５に示すように、試験例１１（保存０日、収穫直後）と比較して、カフェオイルキナ酸化合物（ＣｈＡ、ＤＣＱＡ、及びＴＣＱＡ）の含有量が増加することが確認された。また、カフェオイルキナ酸化合物の中でも、特にＴＣＱＡの含有量の増加が顕著であった。

Claims (14)

1. サツマイモ以外のイモ類、ヒルガオ科植物、及びキク科植物からなる群より選ばれる生長したポリフェノール化合物含有植物体の根部を除去する根部除去工程と、
   前記根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存する保存工程と、を含む、
   前記根部除去工程に供する植物体よりもポリフェノール化合物量が増加したポリフェノール化合物含有植物体の生産方法。
2. 前記根部除去工程において根部を除去するポリフェノール化合物含有植物体が、カフェオイルキナ酸化合物含有植物体であり、
   前記根部除去工程に供するカフェオイルキナ酸化合物含有植物体よりもカフェオイルキナ酸化合物量を増加させる請求項１に記載の生産方法。
3. 前記根部除去工程において根部を除去するポリフェノール化合物含有植物体が、トリカフェオイルキナ酸含有植物体であり、
   前記根部除去工程に供するトリカフェオイルキナ酸含有植物体よりもトリカフェオイルキナ酸量を増加させる請求項１に記載の生産方法。
4. 前記保存工程における保存期間は、２日間〜３５日間である請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載の生産方法。
5. 前記保存工程における保存期間は、３日間〜７日間である請求項１〜請求項４のいずれか１項に記載の生産方法。
6. 前記保存工程は、前記根部を除去した植物体に光照射することを含む請求項１〜請求項５のいずれか１項に記載の生産方法。
7. 前記光照射における光の照度は、１，０００ｌｕｘ以上である請求項６に記載の生産方法。
8. 前記保存工程における保存温度は、２０℃〜３５℃である請求項１〜請求項７のいずれか１項に記載の生産方法。
9. 前記保存工程は、前記根部を除去した植物体の少なくとも一部を、水又は水を含ませた用土の少なくとも一方に配置して保存することを含む請求項１〜請求項８のいずれか１項に記載の生産方法。
10. 前記保存工程は、前記根部を除去した植物体の少なくとも一部を、水に配置して保存した後、用土に配置して保存することを含む請求項１〜請求項９のいずれか１項に記載の生産方法。
11. 前記植物体が、ヒルガオ科植物である請求項１〜請求項１０のいずれか１項に記載の生産方法。
12. 前記ヒルガオ科植物が、サツマイモである請求項１１に記載の生産方法。
13. サツマイモ以外のイモ類、ヒルガオ科植物、及びキク科植物からなる群より選ばれる生長したポリフェノール化合物含有植物体の根部を除去する根部除去工程と、
    前記根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存する保存工程と、を含む、
    ポリフェノール化合物含有植物体中のポリフェノール化合物量を増加させる方法。
14. サツマイモ以外のイモ類、ヒルガオ科植物、及びキク科植物からなる群より選ばれる生長したトリカフェオイルキナ酸含有植物体の根部を除去する根部除去工程と、
    前記根部を除去した植物体を、水の存在下、２０℃〜４０℃で、２４時間以上保存する保存工程と、を含む、
    トリカフェオイルキナ酸含有植物体中のトリカフェオイルキナ酸量を増加させる方法。