JP6137169B2 - 新規抗ヒトｉｌ−２３受容体抗体 - Google Patents

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Description

本発明は、新規な抗ヒトＩＬ−２３受容体抗体に関する。詳細には、本発明の新規抗ヒトＩＬ−２３受容体抗体は、従来の抗ヒトＩＬ−２３受容体抗体と比較して活性及び／又は種交差性において優れた抗ヒトＩＬ−２３受容体抗体である。
インターロイキン−２３（ＩＬ−２３とも称する）は樹状細胞等から産生されるサイトカインであり、２つのサブユニット（すなわち、ＩＬ−２３に特有のｐ１９サブユニットと、ＩＬ−１２においてもそのコンポーネントとなるｐ４０サブユニット）から構成されるヘテロ二量体サイトカインである（非特許文献１）。ＩＬ−２３は、ＩＬ−２３受容体（ＩＬ−２３Ｒとも称する）に結合することによって細胞内へシグナルを導入する（非特許文献２）。ＩＬ−２３Ｒは、ＩＬ−２３Ｒサブユニットと、ＩＬ−１２受容体においてもそのコンポーネントとなっているＩＬ−１２Ｒβ１サブユニットから構成される、ヘテロ二量体受容体である。なお、ＩＬ−１２受容体は、ＩＬ−１２Ｒβ１サブユニットとＩＬ−１２Ｒβ２サブユニットとの複合体であり、ＩＬ−２３はＩＬ−１２受容体には結合しないことが知られている（非特許文献１）。
ＩＬ−２３は乾癬、クローン病（ＣＤ）や潰瘍性大腸炎（ＵＣ）等の炎症性腸疾患（ＩＢＤ）、全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）、関節リウマチ（ＲＡ）、強直性脊椎炎（ＡＳ）、ベーチェット病、癌、並びにぶどう膜炎、ドライアイ、加齢黄斑変性やバセドウ病眼症等の眼科疾患等の疾患に深く関与することが知られている。乾癬は慢性の皮膚角化疾患であり、患者皮膚ではＩＬ−２３発現の亢進が観察されている（非特許文献３）。
炎症性腸疾患（ＩＢＤ）は、クローン病（ＣＤ）、潰瘍性大腸炎（ＵＣ）に代表される慢性再発性の疾患であり、消化管の機能や構造の変性をもたらす。ＣＤ患者の腸管炎症部位粘膜固有層マクロファージがＩＬ−２３を旺盛に産生することが知られており（非特許文献４）、免疫細胞などからのＩＬ−２１、ＩＬ−２２、ＩＬ−１７といったサイトカインを誘導しＩＢＤの炎症病態成立に寄与すると考えられている（非特許文献５）。
全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）は免疫系の亢進により、全身のさまざまな場所に、多彩な症状を引き起こし、発熱、全身倦怠感などの炎症を思わせる症状と、関節、皮膚、内臓などにおける様々な症状が一度に、あるいは次々に起こってくる疾患である。このＳＬＥ病態とＩＬ−２３Ｒ陽性Ｔリンパ球数について、正の相関が存在することが報告されている（非特許文献６）。またＳＬＥ患者血中のＩＬ−２３が健常人と比較して有意に亢進していることが知られており（非特許文献７）、ＩＬ−２３がＳＬＥに関与することが示唆されている。
強直性脊椎炎（ＡＳ）は主に脊椎及び仙腸関節に病変を生じる慢性炎症性疾患である。ＡＳ患者血液におけるＩＬ−２３が健常人に比較して有意に上昇していることが知られており、このことはＡＳの病因としてＩＬ−２３が関与することを示唆するものである（非特許文献８）。
ベーチェット病は種々のサイズの血管に多発する炎症、すなわち血管炎を特徴とする慢性炎症性疾患であり、免疫系の異常、好中球活性化がその病態に関与すると考えられている。こうした再発性の血管異常は数日から数カ月持続する場合があり、年に数回再発する場合もある。こうしたベーチェット病患者においてＩＬ−２３は疾患活動性と有意な相関があり、また、関連病態であるぶどう膜炎患者の血清ではＩＬ−２３発現の亢進が確認されており（非特許文献９）、このような病態におけるＩＬ−２３の寄与も示唆されている。
関節リウマチ（ＲＡ）は慢性の自己免疫性疾患であり、関節の変形、強い痛みをもたらす。ＲＡ患者の滑液及び血清ではＩＬ−２３が増加しており(非特許文献１０)、ＲＡ治療薬であるＴＮＦブロッカー投与患者において血清中ＩＬ−２３量は病態の程度と相関する(非特許文献１１)、ＲＡ患者の滑膜で抗ＩＬ−２３Ｒ抗体はＴＮＦ−α及びＩＬ−６の産生を抑制すること（非特許文献１２）からもその病態への関連が示唆されている。
ぶどう膜炎、ドライアイ、加齢黄斑変性やバセドウ病眼症は炎症が関与する眼科疾患であり、ぶどう膜炎患者の血清、ドライアイ患者の結膜上皮、加齢黄斑変性患者の房水、バセドウ病眼症患者の血清で、ＩＬ−２３タンパク又は遺伝子の発現が増加しており（非特許文献１３、１４、１５、１６）、それら病態へのＩＬ−２３の関連が示唆されている。
癌について、ＩＬ−２３は癌の成長及び進展に関与していること（非特許文献１７）、ＩＬ−２３を欠損したマウスで移植した癌の進展が抑制されることから（非特許文献１８）、その病態へのＩＬ−２３の関連が示唆されている。
従って、ＩＬ−２３Ｒに特異的に結合し、ＩＬ−２３による種々の作用を阻害する活性を有するモノクローナル抗体を開発することができれば、ＩＬ−２３が病態形成に関与する各種疾患の治療、予防、診断に有用であることが期待される。
現在までに研究が進められてきたヒトＩＬ−２３Ｒに対して機能阻害作用を示す抗体としては、マウスモノクローナル抗体であるｍ２０Ｄ７（特許文献１）、そのヒト化モノクローナル抗体であるｈｕｍ２０Ｄ７（特許文献１）や、ラットモノクローナル抗体である８Ｂ１０（特許文献１）、そのヒト化モノクローナル抗体（特許文献２）が報告されている。その中でもｈｕｍ２０Ｄ７は最も詳細に検討がなされており、ＩＬ−２３受容体を発現する樹立培養細胞であるＫｉｔ２２５細胞のシグナル伝達阻害を用いた実験結果から、実際の細胞反応においてその効果が明らかにされている。
しかし、従来の抗体は有効性の観点から細胞におけるＩＬ−２３シグナル伝達に対する中和活性は十分とはいえない。
抗体医薬の有効投与量を規定する主な要因としては、抗体がもつリガンドと受容体との結合阻害活性や、体内に存在する抗原の量が挙げられるが、結合阻害活性を向上させることは投与量の低減に繋がり、結果として患者の経済的な負担や医療コストの低減にも繋がる極めて有益な改良であると言える。また、たとえ抗体が抗原（リガンド、受容体など）に対する高い結合活性を有していても、その抗体が目的とする中和活性を強く発揮できるとは限らない。なぜなら、抗体がリガンドと受容体との結合を強く阻害するには、それに適した抗原中の部位を抗体が占有しなければならないからである。すなわち、抗体医薬の薬効を評価する上で、抗体がもつ中和活性の強さが非常に重要となる。
また、医薬品を開発する上で動物を用いた安全性評価は極めて重要である。医薬品開発に関する国際的ガイドラインＩＣＨ−Ｓ６には「安全性評価は、通常二種類の適切な動物種を使用するように計画される必要がある。しかし、正当な理由が示されていれば、一種類の適切な動物のみで十分である場合がある（例えば、適切な動物種が一種類しか確認されていない場合やバイオ医薬品の生物学的特性が十分に解明されている場合）」との記載がある。このように、医薬品開発にはヒト以外に通常一種以上の適切な動物種での試験が要求されるが、抗体医薬の開発においてヒト以外の動物種での試験を行うためには、その抗体がヒト以外の動物種由来の抗原に対しても交差性を有することが必要となる。しかし、一般的に、モノクローナル抗体の選択性は高く、高い活性を保持しつつ種交差性を示す抗体を取得することは容易ではない。
こうしたことから、従来の抗体よりも中和活性が強く、かつ種交差性を有する抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体を取得することが、ヒトに投与して各種疾患の治療及び予防に利用するためには必要である。
WO2008/106134 WO2010/027767
Oppmann B et al, Immunity. 2000 Nov;13(5):715-25. Parham C et al, J Immunol. 2002 Jun 1;168(11):5699-708. Lee E et al, J Exp Med. 2004 Jan 5;199(1):125-30. Kamada N et al, J Clin Invest. 2008;118:2269-2280. Sarra M et al, Inflamm Bowel Dis. 2010 Oct;16(10):1808-1813. Puwipirom H et al, Arthritis Res Ther. 2010 Nov 29;12(6):R215. Mok MY et al, J Rheumatol. 2010 Oct;37(10):2046-52. Mei Y et al, Clin Rheumatol. 2011 Feb;30(2):269-73. Habibagahi Z et al, Mod Rheumatol. 2010 Apr;20(2):154-9. Kim HR et al, Rheumatology (Oxford). 2007 Jan;46(1):57-6 Kageyama Y et al, Rheumatol Int. 2007 Dec;28(2):137-43 Hillyer P et al, Rheumatology (Oxford). 2009 Dec;48(12):1581-9 Chi W et al, Invest Ophthalmol Vis Sci. 2008 Jul;49(7):3058-64. De Paiva CS et al, Mucosal Immunol. 2009 May;2(3):243-53. Sasaki S et al, Invest Ophthalmol Vis Sci. 2012 Jun 5;53(7):3424-30. Kim SE et al, Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2012 Oct;250(10):1521-6. Grivennikov SI et al, Nature. 2012 Nov 8;491(7423):254-8. Langowski JL et al, Nature. 2006 Jul 27;442(7101):461-5.
本発明の課題は、従来の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体と比較して活性及び／又は種交差性において優れた抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体を提供することにある。
すなわち、本発明は、医学上又は産業上有用な物質及び方法として以下の発明を含むものである。
（１）以下の１）〜４）のいずれかから選択される、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
１）配列番号１０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号１８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体；
２）配列番号１０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体；
３）配列番号１４に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体；並びに
４）配列番号１４に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号１８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
（２）配列番号１０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号１８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、上記（１）に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
（３）配列番号１０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、上記（１）に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
（４）配列番号１４に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、上記（１）に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
（５）配列番号１４に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号１８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、上記（１）に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
（６）前記抗体の重鎖定常領域がヒトＩｇγ１定常領域である、上記（１）〜（５）のいずれかに記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
（７）前記抗体の軽鎖定常領域がヒトＩｇκ定常領域である、上記（１）〜（５）のいずれかに記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
（８）前記抗体の重鎖定常領域がヒトＩｇγ１定常領域であり、前記抗体の軽鎖定常領域がヒトＩｇκ定常領域である、上記（１）〜（５）のいずれかに記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
（９）配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び配列番号２０に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、上記（２）に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
（１０）配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び配列番号８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、上記（３）に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
（１１）配列番号１６に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び配列番号８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、上記（４）に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
（１２）配列番号１６に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び配列番号２０に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、上記（５）に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
（１３）上記（１）〜（１２）のいずれかに記載の抗体の重鎖可変領域をコードする配列を含む、ポリヌクレオチド。
（１４）上記（１）〜（１２）のいずれかに記載の抗体の軽鎖可変領域をコードする配列を含む、ポリヌクレオチド。
（１５）上記（１３）及び／又は（１４）に記載のポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
（１６）上記（１５）に記載の発現ベクターで形質転換された宿主細胞。
（１７）以下の（ａ）及び（ｂ）からなる群より選択される、上記（１６）の宿主細胞。
（ａ）上記（１）〜（１２）のいずれかの抗体の重鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドと該抗体の軽鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドとを含む発現ベクターで形質転換された宿主細胞；及び
（ｂ）上記（１）〜（１２）のいずれかの抗体の重鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドを含む発現ベクターと該抗体の軽鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドを含む発現ベクターで形質転換された宿主細胞。
（１８）上記（１６）又は（１７）に記載の宿主細胞を培養し、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体を発現させる工程を包含する、上記（１）〜（１２）のいずれかに記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体を生産する方法。
（１９）上記（１）〜（１２）のいずれかに記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体を含む、眼科疾患、炎症性腸疾患、又は乾癬の治療剤。
（２０）上記（１）〜（１２）のいずれかに記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体の治療有効量を投与する工程を包含する、眼科疾患、炎症性腸疾患、又は乾癬を予防又は処置するための方法。
（２１）眼科疾患、炎症性腸疾患、又は乾癬の予防又は処置に使用するための、上記（１）〜（１２）のいずれかに記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
本発明によって、従来の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体と比較して活性及び／又は種交差性において優れた抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体が提供される。本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体は、ヒトＩＬ−２３Ｒの機能阻害により、強力な免疫細胞抑制作用を有するものであり、ヒトＩＬ−２３が病態形成に関与する各種疾患の予防又は治療に有用である。そして、このような本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体は、投与量の低減、投与間隔の拡大、投与方法の改善（例えば、皮下注射剤）等の臨床適用における優れた改善をもたらし、治療有効性及び患者コンプライアンスの改善に大きく寄与するものである。また、抗体がヒト以外の動物（特に、医薬品開発に使用される動物）由来の抗原に対して種交差性を有することは、その抗体を医薬品として開発するにあたって必要とされる動物を用いた安全性試験を可能とし、それ故に、投与対象となるヒトの安全性確保にも大きく寄与するものである。
以下に、本発明について詳述する。
本発明者らは、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体の作製において相当の創意検討を重ねた結果、従来の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体と比較して活性及び／又は種交差性において優れた抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体を作製することに成功した。
抗体分子の基本構造は、各クラス共通で、分子量５万〜７万の重鎖と２〜３万の軽鎖から構成される。重鎖は、通常約４４０個のアミノ酸を含むポリペプチド鎖からなり、クラスごとに特徴的な構造をもち、ＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥに対応してγ、μ、α、δ、ε鎖とよばれる。さらにＩｇＧには、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４が存在し、それぞれγ１、γ２、γ３、γ４とよばれている。軽鎖は、通常約２２０個のアミノ酸を含むポリペプチド鎖からなり、Ｌ型とＫ型の２種が知られており、それぞれλ、κ鎖とよばれる。抗体分子の基本構造のペプチド構成は、それぞれ相同な２本の重鎖及び２本の軽鎖が、ジスルフィド結合（Ｓ−Ｓ結合）及び非共有結合によって結合され、分子量１５万〜１９万である。２種の軽鎖は、どの重鎖とも対をなすことができる。個々の抗体分子は、常に同一の軽鎖２本と同一の重鎖２本からできている。
鎖内Ｓ−Ｓ結合は、重鎖に四つ（μ、ε鎖には五つ）、軽鎖には二つあって、アミノ酸１００〜１１０残基ごとに一つのループを成し、この立体構造は各ループ間で類似していて、構造単位あるいはドメインとよばれる。重鎖、軽鎖ともにＮ末端に位置するドメインは、同種動物の同一クラス（サブクラス）からの標品であっても、そのアミノ酸配列が一定せず、可変領域とよばれており、各ドメインは、それぞれ、重鎖可変領域（ＶH）及び軽鎖可変領域（ＶL）とよばれている。これよりＣ末端側のアミノ酸配列は、各クラスあるいはサブクラスごとにほぼ一定で定常領域とよばれている（各ドメインは、それぞれ、ＣH１、ＣH２、ＣH３あるいはＣLと表される）。
抗体の抗原決定部位はＶH及びＶLによって構成され、結合の特異性はこの部位のアミノ酸配列によっている。一方、補体や各種細胞との結合といった生物学的活性は各クラスＩｇの定常領域の構造の差を反映している。軽鎖と重鎖の可変領域の可変性は、どちらの鎖にも存在する３つの小さな超可変領域にほぼ限られることがわかっており、これらの領域を相補性決定領域（ＣＤＲ；それぞれＮ末端側からＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）と呼んでいる。可変領域の残りの部分はフレームワーク領域（ＦＲ）とよばれ、比較的一定である。
本発明者らが作製に成功した本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体は、以下のいずれかの特徴を有する抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体である。
１）配列番号１０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号１８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
２）配列番号１０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
３）配列番号１４に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
４）配列番号１４に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号１８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
具体的には、本発明者らは、ヒトモノクローナル抗体開発技術「ベロシミューン」（ＶｅｌｏｃＩｍｍｕｎｅ ａｎｔｉｂｏｄｙ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ；Ｒｅｇｅｎｅｒｏｎ社（米国特許６５９６５４１号））マウスを用いて抗体を作製し、各種生物学的活性試験及び物性試験を用いた抗体のスクリーニングによって、本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体を同定することに成功した。ベロシミューン技術では、内因性の免疫グロブリン重鎖及び軽鎖の可変領域が対応するヒト可変領域で置換されたトランスジェニックマウスを目的の抗原（例えば、ヒトＩＬ−２３Ｒ）で免疫した後、抗体を発現するマウスのリンパ系細胞を取得し、マウスミエローマ細胞と細胞融合することによってハイブリドーマを作製する。次いで、このハイブリドーマ細胞を、目的の抗原に特異的に結合する抗体を産生するか否かについてスクリーニングする。ここで産生される抗体は、ヒト抗体の可変領域とマウス抗体の定常領域を有する抗体（キメラ抗体とも称する）である。次いで、目的の抗原に特異的に結合する抗体が同定された場合、そのハイブリドーマ細胞から抗体の重鎖及び軽鎖の可変領域をコードするＤＮＡを単離し、そのＤＮＡを所望のクラスのヒト抗体重鎖及び軽鎖の定常領域をコードするＤＮＡにそれぞれ連結する。このようにして得られた重鎖及び軽鎖をコードする遺伝子を細胞内（例えば、ＣＨＯ細胞）で発現させて、抗体分子を産生する。当該方法により作製された抗体の重鎖及び軽鎖は、ヒト免疫グロブリン遺伝子に由来する「完全ヒト型」抗体の重鎖及び軽鎖である。
本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体は、本願明細書に開示される、その重鎖可変領域及び軽鎖可変領域の配列情報に基づいて、当該分野で公知の方法を使用して、当業者によって容易に作製され得る。好ましくは、本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体は、その重鎖可変領域及び軽鎖可変領域をヒト抗体の重鎖定常領域及び軽鎖定常領域にそれぞれ連結して、完全ヒト型抗体として作製することができる。具体的には、本発明の抗体の重鎖可変領域アミノ酸配列（配列番号１０、又は配列番号１４）をコードする塩基配列を有する重鎖可変領域遺伝子断片、及び本発明の抗体の軽鎖可変領域アミノ酸配列（配列番号６、又は配列番号１８）をコードする塩基配列を有する軽鎖可変領域遺伝子断片を作製する。そして、この可変領域遺伝子をヒト抗体の適当なクラスの定常領域遺伝子と連結させて完全ヒト型抗体遺伝子を作製する。次いで、この抗体遺伝子を適当な発現ベクターに連結し、培養細胞中に導入する。最後にこの培養細胞を培養して培養上清からモノクローナル抗体を得ることができる。
本発明の抗体の重鎖可変領域及び軽鎖可変領域のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する各遺伝子断片は、例えば、該重鎖可変領域及び軽鎖可変領域のアミノ酸配列に基づいてデザインされた塩基配列に基づき、当該分野で公知の遺伝子合成方法を利用して合成することが可能である。このような遺伝子合成方法としては、ＷＯ９０／０７８６１に記載の抗体遺伝子の合成方法等の当業者に公知の種々の方法が使用され得る。また、本発明の抗体の可変領域遺伝子断片を一旦取得すれば、この遺伝子断片の所定の部位に変異を導入することによって、本発明の他の抗体を取得することも可能である。このような変異導入方法としては、部位特異的変異誘発法（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｅｄｉｔ．Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．（１９８７）Ｐｕｂｌｉｓｈ．Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ Ｓｅｃｔｉｏｎ ８．１−８．５）等の当業者に公知の種々の方法が使用され得る。
次いで、上記の可変領域遺伝子断片とヒト抗体の定常領域遺伝子とを連結させて完全ヒト型抗体遺伝子を作製する。使用されるヒト抗体の定常領域は、どのようなサブクラスの定常領域（例えば、重鎖としてγ１、γ２、γ３又はγ４、軽鎖としてλ又はκ鎖の定常領域）も選択可能であり得るが、好ましくは重鎖定常領域としてはヒトＩｇγ１が、また、軽鎖定常領域としてはヒトＩｇκを用いることができる。
この完全ヒト型抗体遺伝子の作製につづく、抗体遺伝子の発現ベクターへの導入、発現ベクターの培養細胞への導入、培養細胞の培養、抗体の精製等については、当該分野で公知の種々の方法を使用して行うことができる。
上記のようにして得られた抗体遺伝子と連結される発現ベクターとしては、例えば、ＧＳベクターｐＥＥ６．４やｐＥＥ１２．４（Ｌｏｎｚａ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ社）が挙げられるが、抗体遺伝子を発現することができるものであれば特に制限されない。また、ＡＧ−γ１やＡＧ−κ（例えば、ＷＯ９４／２０６３２を参照）等の予めヒトＩｇ定常領域遺伝子を有する発現ベクターに上記の可変領域遺伝子断片を導入して抗体遺伝子を発現することもできる。
上記の発現ベクターは、例えば、リン酸カルシウム法、エレクトロポレーション法等により、培養細胞中に導入される。
発現ベクターを導入する培養細胞としては、例えば、ＣＨＯ−Ｋ１ＳＶ細胞、ＣＨＯ−ＤＧ４４細胞、２９３細胞等の培養細胞が使用でき、これを常法により培養すればよい。
上記培養後、培養上清中に蓄積された抗体は、各種カラムクロマトグラフィー、例えば、プロテインＡ又はプロテインＧカラムを用いた各種クロマトグラフィーにより精製することができる。
本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体は、ヒトＩＬ−２３Ｒに結合する抗体である。得られた抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体のヒトＩＬ−２３Ｒに対する結合活性を測定する方法としては、ＥＬＩＳＡ（Ｅｎｚｙｍｅ ｌｉｎｋｅｄ ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ）やＦＡＣＳ（Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ−ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｃｅｌｌ ｓｏｒｔｉｎｇ）等の方法がある。例えば、ＥＬＩＳＡを用いる場合、ヒトＩＬ−２３Ｒ（配列番号２１）の細胞外ドメインと免疫グロブリンＦｃとの融合タンパク質をＥＬＩＳＡプレートに固定化し、これに対して抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体を添加して反応させた後、西洋わさびペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）等の酵素で標識した抗ＩｇＧ抗体等の二次抗体を反応させ、洗浄した後、その活性を検出する試薬（例えば、ＨＲＰ標識の場合、ＢＭ−Ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ ＥＬＩＳＡ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ（ＰＯＤ）（ロシュダイアグノスティック社））等を用いた活性測定により、二次抗体の結合を同定する。また、他の動物由来のＩＬ−２３Ｒ（例えば、サルＩＬ−２３Ｒ）を用いて、これらに対する結合活性を測定することによって、本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体の種交差性を評価することができる。
また、本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体は、ヒトＩＬ−２３Ｒに対する中和活性を有している。本明細書中で使用される場合、抗体の「中和活性」とは、ＩＬ−２３Ｒへの結合によりＩＬ−２３Ｒを介してもたらされる任意の生物活性を阻害する活性を意味し、ＩＬ−２３Ｒの１つ又は複数の生物活性を指標に評価することができる。このような中和活性としては、例えば、ＩＬ−２３Ｒ応答性細胞であるＫｉｔ２２５細胞の増殖阻害活性やヒトＩＬ−２３刺激ＳＴＡＴ３リン酸化阻害活性が挙げられ、後記実施例に記載されるような方法を用いることによって評価することができる。
抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体の各種安定性（例えば、熱安定性、長期保存安定性、高濃度安定性）を評価する方法としては、例えば、示差走査熱量測定や、抗体保存中の凝集体形成の測定を利用する方法が挙げられる。
好ましくは、本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体は、当該分野で公知の方法を用いて、配列番号１０又は１４に示される重鎖可変領域アミノ酸配列をコードする塩基配列を含むＤＮＡ、及び配列番号６又は１８に示される軽鎖可変領域アミノ酸配列をコードする塩基配列を含むＤＮＡを合成し、これらを適当なクラスのヒト抗体定常領域遺伝子、好ましくは重鎖についてはヒトＩｇγ１定常領域遺伝子、軽鎖についてはヒトＩｇκ定常領域遺伝子と連結して完全ヒト型抗体遺伝子を構築し、当該分野で公知の種々の方法を用いて、該完全ヒト型抗体遺伝子を発現ベクターへ導入し、該発現ベクターを培養細胞に導入して該培養細胞を培養し、得られる培養物から抗体を精製することによって、容易に取得することができる。好ましくは、配列番号１０又は１４に示される重鎖可変領域アミノ酸配列をコードする塩基配列を含むＤＮＡは、それぞれ配列番号９又は１３に示される塩基配列を含む。好ましくは、配列番号６又は１８に示される軽鎖可変領域アミノ酸配列をコードする塩基配列を含むＤＮＡは、それぞれ配列番号５又は１７に示される塩基配列を含む。
配列番号１０に示される重鎖可変領域とヒトＩｇγ１定常領域とを含む、本発明の好ましい抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体重鎖は、配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる重鎖である。配列番号１８に示される軽鎖可変領域とヒトＩｇκ定常領域とを含む、本発明の好ましい抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体軽鎖は、配列番号２０に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖である。好ましくは、配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体重鎖をコードする塩基配列を含むＤＮＡは、配列番号１１に示される塩基配列を含む。好ましくは、配列番号２０に示されるアミノ酸配列からなる抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体軽鎖をコードする塩基配列を含むＤＮＡは、配列番号１９に示される塩基配列を含む。配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる重鎖と、配列番号２０に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体としては、後記実施例に記載される完全ヒト型２５−３−２抗体が挙げられる。
配列番号１０に示される重鎖可変領域とヒトＩｇγ１定常領域とを含む、本発明の好ましい抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体重鎖は、配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる重鎖である。配列番号６に示される軽鎖可変領域とヒトＩｇκ定常領域とを含む、本発明の好ましい抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体軽鎖は、配列番号８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖である。好ましくは、配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体重鎖をコードする塩基配列を含むＤＮＡは、配列番号１１に示される塩基配列を含む。好ましくは、配列番号８に示されるアミノ酸配列からなる抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体軽鎖をコードする塩基配列を含むＤＮＡは、配列番号７に示される塩基配列を含む。配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる重鎖と、配列番号８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体としては、後記実施例に記載される完全ヒト型２５−３−１抗体が挙げられる。
配列番号１４に示される重鎖可変領域とヒトＩｇγ１定常領域とを含む、本発明の好ましい抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体重鎖は、配列番号１６に示されるアミノ酸配列からなる重鎖である。配列番号６に示される軽鎖可変領域とヒトＩｇκ定常領域とを含む、本発明の好ましい抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体軽鎖は、配列番号８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖である。好ましくは、配列番号１６に示されるアミノ酸配列からなる抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体重鎖をコードする塩基配列を含むＤＮＡは、配列番号１５に示される塩基配列を含む。好ましくは、配列番号８に示されるアミノ酸配列からなる抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体軽鎖をコードする塩基配列を含むＤＮＡは、配列番号７に示される塩基配列を含む。配列番号１６に示されるアミノ酸配列からなる重鎖と、配列番号８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体としては、後記実施例に記載される完全ヒト型２５−３−３抗体が挙げられる。
配列番号１４に示される重鎖可変領域とヒトＩｇγ１定常領域とを含む、本発明の好ましい抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体重鎖は、配列番号１６に示されるアミノ酸配列からなる重鎖である。配列番号１８に示される軽鎖可変領域とヒトＩｇκ定常領域とを含む、本発明の好ましい抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体軽鎖は、配列番号２０に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖である。好ましくは、配列番号１６に示されるアミノ酸配列からなる抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体重鎖をコードする塩基配列を含むＤＮＡは、配列番号１５に示される塩基配列を含む。好ましくは、配列番号２０に示されるアミノ酸配列からなる抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体軽鎖をコードする塩基配列を含むＤＮＡは、配列番号１９に示される塩基配列を含む。配列番号１６に示されるアミノ酸配列からなる重鎖と、配列番号２０に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体としては、後記実施例に記載される完全ヒト型２５−３−４抗体が挙げられる。
本発明は、本発明の抗体の重鎖可変領域及び軽鎖可変領域とを含み、活性を保持した、一本鎖可変領域フラグメント（ｓｃＦｖ）、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）2等の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメントをも包含する。また当業者であれば、本発明に基づいて、当該抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗体フラグメントと他のペプチドやタンパク質との融合抗体を作製することや、修飾剤を結合させた修飾抗体を作製することも可能である。融合に用いられる他のペプチドやタンパク質は、抗体の結合活性を低下させないものである限り特に限定されず、例えば、ヒト血清アルブミン、各種ｔａｇペプチド、人工ヘリックスモチーフペプチド、マルトース結合タンパク質、グルタチオンＳトランスフェラーゼ、各種毒素、その他多量体化を促進しうるペプチド又はタンパク質等が挙げられる。修飾に用いられる修飾剤は、抗体の結合活性を低下させないものである限り特に限定されず、例えば、ポリエチレングリコール、糖鎖、リン脂質、リポソーム、低分子化合物等が挙げられる。
このようにして得られた本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体は、必要によりさらに精製された後、常法に従って製剤化され、乾癬、関節リウマチ、全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）、クローン病や潰瘍性大腸炎等の炎症性腸疾患（ＩＢＤ）、強直性脊椎炎（ＡＳ）、ベーチェット病、癌、並びにぶどう膜炎、ドライアイ、加齢黄斑変性やバセドウ病眼症等の眼科疾患等のＩＬ−２３Ｒが病態形成に関連する疾患の治療に用いることができる。
本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体は、好ましくは、眼科疾患、炎症性腸疾患、又は乾癬の治療剤として用いることができる。これら治療剤等の剤型の例としては、注射剤、点滴用剤、点眼剤等の非経口剤とすることができ、静脈内投与、皮下投与、眼内投与、点眼投与等により投与することが好ましい。また、製剤化にあたっては、薬学的に許容される範囲で、これら剤型に応じた担体や添加剤を使用することができる。
上記製剤化に当たっての本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体の添加量は、患者の症状の程度や年齢、使用する製剤の剤型、あるいは抗体の結合力価等により異なるが、例えば、０．００１ｍｇ／ｋｇないし１００ｍｇ／ｋｇ程度を用いればよい。
本発明はまた、本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体をコードする配列を含むポリヌクレオチド及びそれを含む発現ベクターを提供する。本発明はまた、本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体の重鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチド、及び本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体の軽鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチド、並びにそれらのいずれか又は両方を含む発現ベクターを提供する。本発明の発現ベクターは、原核細胞及び／又は真核細胞の各種の宿主細胞中で本発明の抗体あるいはその重鎖可変領域及び／又は軽鎖可変領域をコードする遺伝子を発現し、これらポリペプチドを産生できるものであれば特に制限されない。例えば、プラスミドベクター、ウイルスベクター（例えば、アデノウイルス、レトロウイルス）等を挙げることができる。好ましくは、本発明の発現ベクターは、前述の本発明の抗体の重鎖又は軽鎖をコードする配列を含むポリヌクレオチドを含むか、あるいは本発明の抗体の重鎖をコードする配列を含むポリヌクレオチドと本発明の抗体の軽鎖をコードする配列を含むポリヌクレオチドを含む。
本発明の発現ベクターは、本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体あるいはその重鎖可変領域及び／又は軽鎖可変領域をコードする遺伝子に機能可能に連結されたプロモーターを含み得る。細菌中で本発明の抗体あるいはその重鎖可変領域及び／又は軽鎖可変領域をコードする遺伝子を発現させるためのプロモーターとしては、宿主がエシェリキア属菌の場合、例えば、Ｔｒｐプロモーター、ｌａｃプロモーター、ｒｅｃＡプロモーター、λＰＬプロモーター、ｌｐｐプロモーター、ｔａｃプロモーターなどが挙げられる。酵母中での発現用プロモーターとしては、例えば、ＰＨ０５プロモーター、ＰＧＫプロモーター、ＧＡＰプロモーター、ＡＤＨプロモーターが挙げられ、バチルス属菌での発現用プロモーターとしては、ＳＬ０１プロモーター、ＳＰ０２プロモーター、ｐｅｎＰプロモーターなどが挙げられる。また、宿主が哺乳動物細胞等の真核細胞である場合、ＳＶ４０由来のプロモーター、レトロウイルスのプロモーター、ヒートショックプロモーターなどが挙げられる。
宿主細胞として細菌、特に大腸菌を用いる場合、本発明の発現ベクターは、開始コドン、終止コドン、ターミネーター領域及び複製可能単位をさらに含み得る。一方、宿主として酵母、動物細胞又は昆虫細胞を用いる場合、本発明の発現ベクターは、開始コドン、終止コドンを含み得る。また、この場合、エンハンサー配列、本発明の抗体あるいはその重鎖可変領域又は軽鎖可変領域をコードする遺伝子の５’側及び３’側の非翻訳領域、分泌シグナル配列、スプライシング接合部、ポリアデニレーション部位、又は複製可能単位などを含んでいてもよい。また、目的に応じて通常用いられる選択マーカー（例えば、テトラサイクリン耐性遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、カナマイシン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子）を含んでいてもよい。
本発明はまた、本発明の抗体をコードする遺伝子あるいは本発明の抗体の重鎖可変領域をコードする遺伝子及び／又は本発明の抗体の軽鎖可変領域をコードする遺伝子が導入された形質転換体を提供する。このような形質転換体は、例えば、本発明の発現ベクターで宿主細胞を形質転換することにより作製できる。形質転換体の作製に用いられる宿主細胞としては、前記の発現ベクターに適合し、形質転換されうるものであれば特に限定されず、本発明の技術分野において通常使用される天然細胞あるいは人工的に樹立された細胞など種々の細胞（例えば、細菌（エシェリキア属菌、バチルス属菌）、酵母（サッカロマイセス属、ピキア属など）、動物細胞（例えば、ＣＨＯ）又は昆虫細胞（例えば、Ｓｆ９）など）が例示される。形質転換は自体公知の方法により行われ得る。
好ましくは、本発明の形質転換体は、本発明の抗体の重鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドと本発明の抗体の軽鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドとを含む発現ベクターで形質転換された宿主細胞であるか、又は、本発明の抗体の重鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドを含む発現ベクターと本発明の抗体の軽鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドを含む発現ベクターで形質転換された宿主細胞である。より好ましくは、本発明の形質転換体は、前述の本発明の抗体の重鎖をコードする配列を含むポリヌクレオチドと本発明の抗体の軽鎖をコードする配列を含むポリヌクレオチドとを含む発現ベクターで形質転換された宿主細胞であるか、又は、前述の本発明の抗体の重鎖をコードする配列を含むポリヌクレオチドを含む発現ベクターと本発明の抗体の軽鎖をコードする配列を含むポリヌクレオチドを含む発現ベクターで形質転換された宿主細胞である。
本発明はまた、本発明の抗体をコードする遺伝子あるいは本発明の抗体の重鎖可変領域をコードする遺伝子及び／又は本発明の抗体の軽鎖可変領域をコードする遺伝子を宿主細胞に発現させること、即ち、このような形質転換体を用いることを含む、本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体の生産方法を提供する。好ましくは、該方法で使用される宿主細胞は、前述の本発明の発現ベクターで形質転換された宿主細胞であり、該発現ベクターは、本発明の抗体の重鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドと本発明の抗体の軽鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドを、別々に又は同時に含んでもよい。
本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体の生産において、形質転換体は、栄養培地中で培養され得る。栄養培地は、形質転換体の生育に必要な炭素源、無機窒素源又は有機窒素源を含んでいることが好ましい。炭素源としては、例えば、グルコース、デキストラン、可溶性デンプン、ショ糖などが、無機窒素源又は有機窒素源としては、例えば、アンモニウム塩類、硝酸塩類、アミノ酸、コーンスチープ・リカー、ペプトン、カゼイン、肉エキス、大豆粕、バレイショ抽出液などが例示される。また所望により他の栄養素（例えば、無機塩（例えば、塩化カルシウム、リン酸二水素ナトリウム、塩化マグネシウム）、ビタミン類、抗生物質（例えば、テトラサイクリン、ネオマイシン、アンピシリン、カナマイシン等）など）を含んでいてもよい。
形質転換体の培養は自体公知の方法により行われる。培養条件、例えば、温度、培地のｐＨ及び培養時間は、適宜選択される。例えば、宿主が動物細胞の場合、培地としては、約５〜２０％の胎児牛血清を含むＭＥＭ培地（Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｖｏｌ．１２２，ｐ．５０１，１９５２）、ＤＭＥＭ培地（Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．８，ｐ．３９６，１９５９）、ＲＰＭＩ１６４０培地（Ｊ．Ａｍ．Ｍｅｄ．Ａｓｓｏｃ．，Ｖｏｌ．１９９，ｐ．５１９，１９６７）、１９９培地（ｐｒｏｃ．Ｓｏｃ．Ｅｘｐ．Ｂｉｏｌ．Ｍｅｄ．，Ｖｏｌ．７３，ｐ．１，１９５０）や化学合成培地（例えばＣＤ−ＣＨＯ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社））等を用いることができる。培地のｐＨは約６〜８であるのが好ましく、培養は通常約３０〜４０℃で約１５〜７２時間行なわれ、必要により通気や撹拌を行うこともできる。宿主が昆虫細胞の場合、例えば、胎児牛血清を含むＧｒａｃｅ’ｓ培地（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，Ｖｏｌ．８２，ｐ．８４０４，１９８５）等が挙げられ、そのｐＨは約５〜８であるのが好ましい。培養は通常約２０〜４０℃で１５〜１００時間行なわれ、必要により通気や撹拌を行うこともできる。宿主が細菌、放線菌、酵母、糸状菌である場合、例えば、上記栄養源を含有する液体培地が適当である。好ましくは、ｐＨが５〜８である培地である。宿主がＥ．ｃｏｌｉの場合、好ましい培地としてＬＢ培地、Ｍ９培地（Ｍｉｌｌｅｒら、Ｅｘｐ．Ｍｏｌ．Ｇｅｎｅｔ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，ｐ．４３１，１９７２）等が例示される。かかる場合、培養は、必要により通気、撹拌しながら、通常１４〜４３℃、約３〜２４時間行うことができる。宿主がＢａｃｉｌｌｕｓ属菌の場合、必要により通気、撹拌をしながら、通常３０〜４０℃、約１６〜９６時間行うことができる。宿主が酵母である場合、培地として、例えば、Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒ最小培地（Ｂｏｓｔｉａｎ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，Ｖｏｌ．７７，ｐ．４５０５，１９８０）が挙げられ、ｐＨは５〜８であることが望ましい。培養は通常約２０〜３５℃で約１４〜１４４時間行なわれ、必要により通気や撹拌を行うこともできる。
本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体は、上述のような形質転換体を培養し、該形質転換体から回収、好ましくは単離、精製することができる。単離、精製方法としては、例えば、塩析、溶媒沈澱法等の溶解度を利用する方法、透析、限外濾過、ゲル濾過、ドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル電気泳動など分子量の差を利用する方法、イオン交換クロマトグラフィーやヒドロキシルアパタイトクロマトグラフィーなどの荷電を利用する方法、アフィニティークロマトグラフィーなどの特異的親和性を利用する方法、逆相高速液体クロマトグラフィーなどの疎水性の差を利用する方法、等電点電気泳動などの等電点の差を利用する方法などが挙げられる。
本発明について全般的に記載したが、さらに理解を得るために参照する特定の実施例をここに提供するが、これらは例示目的とするものであって、本発明を限定するものではない。
市販のキット又は試薬等を用いた部分については、特に断りのない限り添付のプロトコールに従って実験を行った。
（実施例１：ヒト及びサルＩＬ−２３Ｒ−マウスＦｃ融合タンパク質の取得）
本発明者らは、抗ＩＬ−２３Ｒ抗体を作製するための抗原及びスクリーニング系材料として使用するために、ヒトＩＬ−２３Ｒ配列の細胞外部分配列（非特許文献１、配列番号２１の２４番目から３５３番目のアミノ酸）とマウスイムノグロブリンＦｃ領域との融合タンパク質（ヒトＩＬ−２３Ｒ−マウスＦｃ融合タンパク質）を作製した。具体的には、ＰＣＲ法によりプライマーＥＤ１４−１（配列番号２２）とＥＤ１４−２（配列番号２３）を用いてヒトＩＬ−２３Ｒの細胞外部分配列を増幅し、マウスＦｃ融合タンパク質発現用ベクターであるｐＦＵＳＥ−ｍＩｇＧ２Ａ−Ｆｃ２（ＩｎｖｉｖｏＧｅｎ社）のＥｃｏＲＩ及びＢｇｌＩＩサイトに挿入し、マウスＦｃ融合ＩＬ−２３Ｒ発現ベクターとした。ここで、ＰＣＲ法によって増幅された遺伝子内にはプライマーＥＤ１４−１配列内及びヒトＩＬ−２３Ｒ遺伝子配列内の２か所のＥｃｏＲＩサイトがあるが、部分消化及びアガロースゲル切出しによって、ヒトＩＬ−２３Ｒ遺伝子配列内のＥｃｏＲＩサイトが切断されていない遺伝子断片を得て、これを当該発現ベクターに挿入した。作製したベクターを、遺伝子導入試薬である２９３フェクチン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いてＦｒｅｅＳｔｙｌｅ ２９３細胞（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）へ遺伝子導入し、この細胞をＦｒｅｅＳｔｙｌｅ ２９３ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｍｅｄｉｕｍ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いた無血清培養系で培養後、ヒトＩＬ−２３Ｒ−マウスＦｃ融合タンパク質を含む培養上清を取得した。取得した培養上清からＨｉＴｒａｐＡカラム（ＧＥヘルスケアジャパン社）及び蛋白精製装置であるＡＫＴＡシステム（ＧＥヘルスケアジャパン社）を用いてタンパク質を精製し、以下の実験に使用した。また、同様の方法においてサルＩＬ−２３Ｒ配列の細胞外部分配列を用いて、サルＩＬ−２３Ｒ−マウスＦｃ融合タンパク質を取得した。
（実施例２：ヒトＩＬ−２３Ｒ発現２９３細胞の取得）
本発明者らは、抗ＩＬ−２３Ｒ抗体の結合性試験及び抗体取得のための細胞抗原として使用するために、全長ヒトＩＬ−２３Ｒ発現細胞を取得した。ＰＣＲ法によりプライマーＡＡ２６−Ｆｗ（配列番号２４）及びプライマーＡＡ１０−４（配列番号２５）を用いてヒトＩＬ−２３Ｒ遺伝子全長（非特許文献１、配列番号２１の全長）を増幅し、この遺伝子断片をクローニングベクターであるｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）へ挿入した。配列確認後、この遺伝子断片を哺乳類細胞発現用ベクターであるｐｃＤＮＡ３．１ベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）に組み換えた。このベクターをＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ２０００（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いてヒト樹立培養細胞である２９３細胞へ遺伝子導入した。この細胞をＧ４１８含有ＲＰＭＩ１６４０培地にて選択培養した後、限界希釈法にてモノクローン化した。その後、蛍光色素標識抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体（Ｒ＆Ｄシステムズ社）を用いたフローサイトメトリー測定により高い蛋白発現を示すクローンを選別することでヒトＩＬ−２３Ｒ発現細胞を取得した。
（実施例３：抗ＩＬ−２３Ｒ抗体産生ハイブリドーマの作製）
本発明者らは、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体を取得するため、ベロシミューンマウスに、免疫反応を惹起するアジュバントと共に、実施例１及び２でそれぞれ取得したヒトＩＬ−２３Ｒ−Ｆｃ融合タンパク質又はヒトＩＬ−２３Ｒ発現細胞を免疫した。マウスを数回免疫し、血中抗体価の上昇を確認し、最終免疫を行った。定法に従い、免疫したマウスの脾臓やリンパ節等を摘出しリンパ球を収集し、これをマウスミエローマ細胞ＳＰ２／０と細胞融合することでハイブリドーマを作製した。ハイブリドーマの限界希釈サンプルを作製し、モノクローン化を行った。各クローンについて、拡大培養を行った後に無血清培地であるＣＤハイブリドーマメディウム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）に培地変更し、約５日間培養した。得られた培養上清からプロテインＧスピンカラム（Ｐｒｏ−Ｃｈｅｍ社）を用いて抗体を精製した。
（実施例４：ＥＬＩＳＡアッセイ）
本発明者らは、抗体の抗原特異的結合活性を測定するために、抗原ＥＬＩＳＡを使用した。ヒト又はサルＩＬ−２３Ｒ−Ｆｃ融合タンパク質を、ヌンクマキシソープ白色３８４プレート（Ｍａｘｉｓｏｒｐ ３８４ ｐｌａｔｅ；Ｎｕｎｃ社）に５００ｎｇ／ｍＬの濃度で固相化した。ブロッキング剤（Ｂｌｏｃｋｉｎｇ Ｏｎｅ；ナカライテスク社）を添加し室温にて１時間静置した後、洗浄液（ＴＰＢＳ：０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０含有リン酸バッファー生理食塩水（ＰＢＳ））で２回洗浄し、精製抗体サンプルを、適宜希釈系列を作製して添加した。室温にて１時間インキュベートした後、ＴＰＢＳにて４回洗浄し、希釈液（Ｂｌｏｃｋｉｎｇ ＯｎｅをＰＢＳで２倍希釈したもの）で２０００倍に希釈したホースラディッシュぺルオキシダーゼ標識ウサギ抗マウスＩｇ抗体（ＨＲＰ−ｒａｂｂｉｔ ａｎｔｉ−ｍｏｕｓｅ Ｉｇ ａｎｔｉｂｏｄｙ；ＤＡＫＯ社）を添加した。室温にて１時間インキュベートした後、洗浄液で４回洗浄した。化学発光検出試薬であるＢＭ−Ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ ＥＬＩＳＡ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ（ＰＯＤ）（ロシュダイアグノスティック社）を４０μＬ加えて、その化学発光量をＥｎＶｉｓｉｏｎカウンター（パーキンエルマー社）で測定した。各抗体についてデュプリケートで試験を行い、ＥＣ５０を曲線当てはめにより分析した。本試験では、比較抗体として、ヒト化抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体ｈｕｍ２０Ｄ７（特許文献１）のＦｃ領域をマウスＦｃ領域で置換した融合抗体（以下、ｈｕｍ２０Ｄ７−ｍＦｃと称する）を用いた。なお、ここでｈｕｍ２０Ｄ７をマウスＦｃ領域との融合抗体としたのは、本評価系では二次抗体として抗マウスＩｇ抗体を用いるためであり、抗マウスＩｇ抗体がマウスＦｃ領域を認識することにより活性測定が可能となる。
この結果、２５−３と命名した抗体（キメラ抗体）が、ｈｕｍ２０Ｄ７−ｍＦｃと同様、ヒトＩＬ−２３Ｒに対する高い結合活性を有することが確認された（表１）。また、サルＩＬ−２３Ｒに対する結合については、ｈｕｍ２０Ｄ７−ｍＦｃがサルＩＬ−２３Ｒに対する結合活性を示さなかったのに対して、２５−３は、サルＩＬ−２３Ｒに対しても高い結合活性を有することが確認された（表２）。
表１：抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体のヒトＩＬ−２３Ｒに対する結合活性
Figure 0006137169
 表２：抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体のサルＩＬ−２３Ｒに対する結合活性
Figure 0006137169
（実施例５：抗体の配列決定）
前述のアッセイによって同定された抗体２５−３について、本発明者らはハイブリドーマから抗体の重鎖及び軽鎖をコードする遺伝子をクローニングした。各ハイブリドーマからＲＮＡを抽出し、ｃＤＮＡ増幅キット（ＳＭＡＲＴｅｒ ＲＡＣＥ ｃＤＮＡ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔ；Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて、ｃＤＮＡを作製した。次いで、ＰＣＲを用いて、重鎖及び軽鎖の可変領域を伸長及び増幅した。このＰＣＲ産物を直接シークエンサー（ＡＢＩ ＰＲＩＳＭ ３１００；Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社）で配列解析を行った。また、ＰＣＲ産物をｐＣＲ３．１−ＴＯＰＯ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）等のＰＣＲ産物サブクローニング用ベクターへ組み換えた後、遺伝子配列を解析して配列決定を行った。
決定された２５−３の重鎖可変領域の塩基配列を配列番号１に、アミノ酸配列を配列番号２に、２５−３の軽鎖可変領域の塩基配列を配列番号５に、アミノ酸配列を配列番号６にそれぞれ示す。
（実施例６：完全ヒト型抗体の作製）
前述の抗体は、可変領域がヒト由来であり、定常領域がマウス由来の抗体である。そこで、本発明者らは、ＧＳベクター（Ｌｏｎｚａ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ社）を用いて、重鎖及び軽鎖の両遺伝子を含む発現ベクターを構築し、完全ヒト型抗体を作製した。具体的には、抗体の重鎖可変領域遺伝子の５’側にシグナル配列を、そして３’側にヒトＩｇγ１の定常領域遺伝子（Ｍａｎ Ｓｕｎｇ Ｃｏら，（１９９２） Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｖｏｌ．１４８（４）：１１４９−１１５４）をそれぞれ繋げ、この重鎖遺伝子をＧＳベクターｐＥＥ６．４に挿入した。また、抗体の軽鎖可変領域遺伝子の５’側にシグナル配列を、そして３’側にヒトκ鎖の定常領域遺伝子（Ｍａｎ Ｓｕｎｇ Ｃｏら，前出）をそれぞれ繋げ、この軽鎖遺伝子をＧＳベクターｐＥＥ１２．４に挿入した。
作製した２５−３の完全ヒト型抗体（完全ヒト型２５−３）の重鎖の塩基配列を配列番号３に、アミノ酸配列を配列番号４に、該抗体の軽鎖の塩基配列を配列番号７に、アミノ酸配列を配列番号８にそれぞれ示す。
（実施例７：完全ヒト型抗体の改変体作製）
さらに、本発明者らは、前述の完全ヒト型２５−３について、その重鎖可変領域及び／又は軽鎖可変領域にアミノ酸変異を導入して、４種の該抗体の改変体（各々、完全ヒト型２５−３−１、完全ヒト型２５−３−２、完全ヒト型２５−３−３、完全ヒト型２５−３−４と称する）を作製した。
作製した完全ヒト型２５−３−１の重鎖可変領域の塩基配列を配列番号９に、アミノ酸配列を配列番号１０に、該抗体の軽鎖可変領域の塩基配列を配列番号５に、アミノ酸配列を配列番号６にそれぞれ示す。また、完全ヒト型２５−３−１の重鎖の塩基配列を配列番号１１に、アミノ酸配列を配列番号１２に、該抗体の軽鎖の塩基配列を配列番号７に、アミノ酸配列を配列番号８にそれぞれ示す。
作製した完全ヒト型２５−３−２の重鎖可変領域の塩基配列を配列番号９に、アミノ酸配列を配列番号１０に、該抗体の軽鎖可変領域の塩基配列を配列番号１７に、アミノ酸配列を配列番号１８にそれぞれ示す。また、完全ヒト型２５−３−２の重鎖の塩基配列を配列番号１１に、アミノ酸配列を配列番号１２に、該抗体の軽鎖の塩基配列を配列番号１９に、アミノ酸配列を配列番号２０にそれぞれ示す。
作製した完全ヒト型２５−３−３の重鎖可変領域の塩基配列を配列番号１３に、アミノ酸配列を配列番号１４に、該抗体の軽鎖可変領域の塩基配列を配列番号５に、アミノ酸配列を配列番号６にそれぞれ示す。また、完全ヒト型２５−３−３の重鎖の塩基配列を配列番号１５に、アミノ酸配列を配列番号１６に、該抗体の軽鎖の塩基配列を配列番号７に、アミノ酸配列を配列番号８にそれぞれ示す。
作製した完全ヒト型２５−３−４の重鎖可変領域の塩基配列を配列番号１３に、アミノ酸配列を配列番号１４に、該抗体の軽鎖可変領域の塩基配列を配列番号１７に、アミノ酸配列を配列番号１８にそれぞれ示す。また、完全ヒト型２５−３−４の重鎖の塩基配列を配列番号１５に、アミノ酸配列を配列番号１６に、該抗体の軽鎖の塩基配列を配列番号１９に、アミノ酸配列を配列番号２０にそれぞれ示す。
（実施例８：完全ヒト型抗体の発現及び精製）
各抗体の重鎖と軽鎖の遺伝子がそれぞれ挿入された前述のＧＳベクターを用いて、恒常的発現の方法で抗体発現を行った。恒常的発現は、各抗体の重鎖と軽鎖の遺伝子がそれぞれ挿入された前述のＧＳベクターをＮｏｔＩとＰｖｕＩで制限酵素切断し、Ｌｉｇａｔｉｏｎ−Ｃｏｎｖｅｎｉｅｎｃｅ Ｋｉｔ（ＮＩＰＰＯＮＧＥＮＥ社）又はＬｉｇａｔｉｏｎ−ｈｉｇｈ（ＴＯＹＯＢＯ社）を用いてライゲーションを行い、重鎖と軽鎖の両遺伝子が挿入されたＧＳベクターを構築した。この発現ベクターは、完全長の重鎖及び軽鎖とグルタミン合成酵素（Ｇｌｕｔａｍｉｎｅ ｓｙｎｔｈｅｔａｓｅ）をコードしており、ＣＨＯ−Ｋ１ＳＶ細胞にトランスフェクションにより抗体を発現させた。培養上清をプロテインＡ又はプロテインＧカラム（ＧＥヘルスケアジャパン社）で精製し、各完全ヒト型抗体の精製抗体を得た。
（実施例９：完全ヒト型抗体のＥＬＩＳＡアッセイ）
本発明者らは、前記実施例で作製した完全ヒト型抗体の抗原特異的結合活性を測定するために、抗原ＥＬＩＳＡを使用した。ヒト又はサルＩＬ−２３Ｒ−Ｆｃ融合タンパク質を、ヌンクマキシソープ白色３８４プレート（Ｍａｘｉｓｏｒｐ ３８４ ｐｌａｔｅ；Ｎｕｎｃ社）に５００ｎｇ／ｍＬの濃度で固相化した。ブロッキング剤（Ｂｌｏｃｋｉｎｇ Ｏｎｅ；ナカライテスク社）を添加し室温にて１時間静置した後、洗浄液（ＴＰＢＳ：０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０含有リン酸バッファー生理食塩水（ＰＢＳ））で２回洗浄し、精製抗体サンプルを、適宜希釈系列を作製して添加した。室温にて１時間インキュベートした後、ＴＰＢＳにて４回洗浄し、二次抗体として希釈液（Ｂｌｏｃｋｉｎｇ ＯｎｅをＰＢＳで２倍希釈したもの）で２０００倍に希釈したホースラディッシュぺルオキシダーゼ標識抗ヒトＩｇＧ抗体（ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ ＩｇＧ ａｎｔｉｂｏｄｙ；ＤＡＫＯ社）を添加した。室温にて１時間インキュベートした後、洗浄液で４回洗浄した。化学発光検出試薬であるＢＭ−Ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ ＥＬＩＳＡ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ（ＰＯＤ）（ロシュダイアグノスティック社）を４０μＬ加えて、その化学発光量をＥｎＶｉｓｉｏｎカウンター（パーキンエルマー社）で測定した。各抗体についてデュプリケートで試験を行い、ＥＣ５０を曲線当てはめにより分析した。
この結果、前記実施例で作製した本発明の完全ヒト型抗体が、ヒトＩＬ−２３Ｒに対する高い結合活性を有することが確認された（表３）。また、サルＩＬ−２３Ｒに対する結合については、ｈｕｍ２０Ｄ７がサルＩＬ−２３Ｒに対する結合活性を示さなかったのに対して、本発明の完全ヒト型抗体のいずれもが、サルＩＬ−２３Ｒに対しても高い結合活性を有することが確認された（表４）。
表３：完全ヒト型抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体のヒトＩＬ−２３Ｒに対する結合活性
Figure 0006137169
 表４：完全ヒト型抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体のサルＩＬ−２３Ｒに対する結合活性
Figure 0006137169
（実施例１０：ヒトＩＬ−２３誘導Ｋｉｔ２２５細胞増殖阻害アッセイ）
本発明者らは、完全ヒト型抗体の抗原特異的中和活性を測定するために、ＩＬ−２３に反応して増殖応答を示すＫｉｔ２２５細胞（非特許文献１）を用いて細胞増殖阻害活性検討を行った。このアッセイでは、ＩＬ−２存在下で継代培養を行ったＫｉｔ２２５細胞を、１０％ＦＢＳ及び１％ペニシリン・ストレプトマイシンを含有するＲＰＭＩ１６４０培地で３回洗浄してＩＬ−２を取り除いた後に、同培地で７５０００個／ｍＬとなるように細胞懸濁液を調製し、１００μＬ／ウェルで９６ウェルプレートに分注した。精製抗体サンプルについて、２０００ｎｇ／ｍＬをトップに上記の培地で４倍希釈系列を作製した後、細胞へ添加し、プレートミキサーで撹拌した。ヒトＩＬ−２３（Ｈｕｍａｎｚｙｍｅ社）を最終濃度２ｎｇ／ｍＬで添加し、撹拌後、３７℃、５％ＣＯ2下で５日間インキュベートした。抗体サンプルのかわりに上記の培地のみを添加した群をコントロール群として設定し、ＩＬ−２３添加群を１００％コントロール、ＩＬ−２３非添加群を０％コントロールとした。その後、細胞増殖数測定試薬ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ−Ｇｌｏ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）を用いて定量し、曲線当てはめによりそのＩＣ５０値を解析した。
その結果、本発明の完全ヒト型抗体のいずれもが、ｈｕｍ２０Ｄ７と比較して、ヒトＩＬ−２３誘導性の細胞増殖に対する高い中和活性を有することがわかった（表５）。
表５：完全ヒト型抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体のヒトＩＬ−２３誘導Ｋｉｔ２２５細胞増殖阻害活性
Figure 0006137169
本発明の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体は、ヒトＩＬ−２３が病態形成に関与する各種疾患の予防又は治療に有用である。

Claims (23)

  1. 以下の（１）〜（４）のいずれかから選択される、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメントであって、該フラグメントは一本鎖可変領域フラグメント、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、又はＦ（ａｂ’） 2 である、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント。
    （１）配列番号１０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号１８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント；
    （２）配列番号１０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント；
    （３）配列番号１４に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント；並びに
    （４）配列番号１４に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号１８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント。
  2. 配列番号１０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号１８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、請求項１に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント。
  3. 配列番号１０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、請求項１に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント。
  4. 配列番号１４に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、請求項１に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント。
  5. 配列番号１４に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号１８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、請求項１に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント。
  6. 前記抗体又は抗体フラグメントの重鎖定常領域がヒトＩｇγ１定常領域である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント。
  7. 前記抗体又は抗体フラグメントの軽鎖定常領域がヒトＩｇκ定常領域である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント。
  8. 前記抗体又は抗体フラグメントの重鎖定常領域がヒトＩｇγ１定常領域であり、前記抗体又は抗体フラグメントの軽鎖定常領域がヒトＩｇκ定常領域である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント。
  9. 他のペプチド又はタンパク質と融合した、又は、修飾剤と結合した、請求項１〜８のいずれか１項に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント。
  10. 配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び配列番号２０に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、請求項２に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
  11. 配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び配列番号８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、請求項３に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
  12. 配列番号１６に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び配列番号８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、請求項４に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
  13. 配列番号１６に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び配列番号２０に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、請求項５に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
  14. 請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗体又は抗体フラグメントの重鎖可変領域をコードする配列を含む、ポリヌクレオチド。
  15. 請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗体又は抗体フラグメントの重鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチド、及び、請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗体又は抗体フラグメントの軽鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
  16. 以下の（ａ）及び（ｂ）からなる群より選択される、宿主細胞。
    （ａ）請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗体又は抗体フラグメントの重鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドと該抗体又は抗体フラグメントの軽鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドとを含む発現ベクターで形質転換された宿主細胞；及び
    （ｂ）請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗体又は抗体フラグメントの重鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドを含む発現ベクターと該抗体又は抗体フラグメントの軽鎖可変領域をコードする配列を含むポリヌクレオチドを含む発現ベクターで形質転換された宿主細胞。
  17. 以下の（ａ）及び（ｂ）からなる群より選択される、宿主細胞。
    （ａ）請求項１０〜１３のいずれか１項に記載の抗体の重鎖をコードする配列を含むポリヌクレオチドと該抗体の軽鎖をコードする配列を含むポリヌクレオチドとを含む発現ベクターで形質転換された宿主細胞；及び
    （ｂ）請求項１０〜１３のいずれか１項に記載の抗体の重鎖をコードする配列を含むポリヌクレオチドを含む発現ベクターと該抗体の軽鎖をコードする配列を含むポリヌクレオチドを含む発現ベクターとで形質転換された宿主細胞。
  18. 請求項１６に記載の宿主細胞を培養し、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメントを発現させる工程を包含する、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメントを生産する方法。
  19. 請求項１７に記載の宿主細胞を培養し、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体を発現させる工程を包含する、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体を生産する方法。
  20. 請求項１８に記載の方法で生産された抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメントであって、該フラグメントは一本鎖可変領域フラグメント、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、又はＦ（ａｂ’） 2 である、抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント。
  21. 請求項１９に記載の方法で生産された抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体。
  22. 他のペプチド及びタンパク質と融合した、又は、修飾剤と結合した、請求項２０又は２１に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント。
  23. 請求項１〜１３及び２０〜２２のいずれか１項に記載の抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体又は抗ヒトＩＬ−２３Ｒ抗体フラグメント及び薬学的に許容される賦形剤を含む、医薬組成物。
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