JP6068154B2 - 上皮バリア機能増強剤 - Google Patents
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Description
(1)サッカロマイセス・セレビシエまたはその抽出物を含有することを特徴とする上皮バリア機能増強剤。
(2)前記サッカロマイセス・セレビシエが、DNY004MR(受託番号NITE P−1493)株またはDNY005MR(受託番号NITE P−1494)株であることを特徴とする前記(1)に記載の上皮バリア機能増強剤。
(3)サッカロマイセス・セレビシエまたはその抽出物を含有することを特徴とするクローディン−4産生促進剤。
(4)前記サッカロマイセス・セレビシエが、DNY004MR(受託番号NITE P−1493)株またはDNY005MR(受託番号NITE P−1494)株であることを特徴とする前記(3)に記載のクローディン−4産生促進剤。
(5)サッカロマイセス・セレビシエDNY004MR(受託番号NITE P−1493)株またはDNY005MR株(受託番号NITE P−1494)株。
<ヤマモモ果実からの酵母の分離>
(米麹エキスの調製)
市販の米麹に2.5倍容の蒸留水を加え、55℃で一晩加温した後にろ過したろ液を使用前にBrixを10%となるように希釈し、L−乳酸を添加してpHを3.5に調整し、米麹エキスとした。
(YPD培地の調製)
酵母エキス1%、ポリペプトン1%、D−グルコース2%としてYPD培地を調製した。また、YPD寒天プレートはYPD培地に寒天を1.5%添加して調製した。
(ヤマモモ果実からの酵母の分離)
オートクレーブ滅菌した米麹エキスにヤマモモ果実を添加して25℃で静置培養した。微生物による沈殿と発泡が確認された米麹エキス培養液を少量取り、新しい米麹エキスに添加し25℃で3日間培養した。この培養液をYPD寒天プレートに接種して3日間培養し、単一のコロニーを得た。得られたコロニーを別のYPD寒天プレートに引き伸ばして3日間25℃で培養した。コロニー形成を確認後、TTC含有培地(0.5%D−グルコース、0.05% 2,3,5−トリフェニルテトラゾリウムクロライド、1% 寒天)を重層した。コロニーが濃い赤色を呈したものを選抜し、アピCオクサノグラム・酵母様真菌の同定キット(シスメックス・ビオメリュー社製)および26S rDNAの塩基配列解析による同定試験に供した。その結果、2株の酵母がサッカロマイセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)と判定され、それぞれ株名をDNY004MR、DNY005MRとした。2012年12月21日に独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに寄託し、それぞれ、サッカロマイセス・セレビシエDNY004MR(受託番号NITE P−1493、受託日2012年12月21日)株およびDNY005MR(受託番号NITE P−1494、受託日2012年12月21日)株なる受託番号を得た。
[製造例2]
サッカロマイセス・セレビシエDNY004MR、サッカロマイセス・セレビシエ DNY005MR、サッカロマイセス・セレビシエ JCM2223、サッカロマイセス・セレビシエ JCM1499、サッカロマイセス・セレビシエ JCM1818、又はサッカロマイセス・セレビシエ JCM2214(酵母)をYPD液体培地に接種して25℃で3日間静置培養した後、遠心分離して酵母菌体を回収した。菌体を蒸留水で2回洗浄した後、酵母菌体を水に懸濁し75℃〜95℃で4時間加熱し抽出した。遠心分離した上澄みをφ0.2μmフィルターでろ過し、凍結乾燥し、抽出物を得た。
[製造例3]
市販のドライイースト(日清フーズ社製)1さじをYPD液体培地に懸濁させ、一晩25℃で静置した後、その培養液1白金耳をYPD寒天プレート上に引き伸ばして単独コロニーを得ることによって日清スーパーカメリヤを用意した。酵母を日清スーパーカメリヤとした以外は、製造例2と同様にして抽出物を得た。
[製造例4]
サッカロマイセス・セレビシエDNY004MR、サッカロマイセス・セレビシエ DNY005MR、サッカロマイセス・セレビシエ JCM2223、サッカロマイセス・セレビシエ JCM1499、サッカロマイセス・セレビシエ JCM1818、又はサッカロマイセス・セレビシエ JCM2214(酵母)をYPD液体培地に接種して25℃で3日間静置培養した後、遠心分離して酵母菌体を回収した。菌体は蒸留水で2回洗浄し、凍結乾燥させた。乾燥酵母菌体は−20℃で保存し、細胞培養試験に供する直前に95℃で10分間加熱して死滅させた。
[製造例5]
酵母を日清スーパーカメリヤとした以外は、製造例4と同様にして乾燥酵母菌体を得た。
・ヒト正常表皮角化細胞(NHEK):東洋紡社製
EpiLife培地(Invitrogen社製)にヒト角化細胞増殖因子(HKGS、Invitrogen社製)を添加した増殖用培地にて37℃、5%CO2下で培養した。
・ヒト結腸癌由来細胞株(Caco−2):ATCC社製
高グルコース濃度のDMEM培地(Invitrogen社製)にMEM非必須アミノ酸溶液(Invitrogen社製)を100:1の割合で添加し、さらに牛胎児血清を5%となるように加え、DMEM増殖培地とした。この増殖培地を使用して37℃、5%CO2下で培養した。
NHEKまたはCaco−2をThinCertTM (greiner bio−one社製、直径13.85 mm、径孔0.4 μm、PETフィルター)に105個/ウェルずつ播種し、NHEKは3日間、Caco−2は3週間、それぞれの増殖培地(上層0.5 ml、下層1.5 ml)にて37℃で培養した。その後、酵母エキス(抽出物)また乾燥酵母菌体を所定の濃度添加した増殖培地を上層に添加し、さらに4日間培養した。経上皮電気抵抗値(TEER; transepitherial electrical resistance)は毎日、ミリセルERS−2(ミリポア社製)で計測した。結果は試験検体添加直前のTEER値を100%として計算した。なお、TEERは、上皮バリアの物理的強度を評価する値として用いた。
6ウェルプレートに2×105個のNHEKを播種し、EpiLife増殖培地で3日間培養した。試験検体を予め所定の濃度添加したEpiLife増殖培地に交換して、さらに24時間37℃で培養した。PBSで2回、細胞表面を洗浄した後、TRIzol (Invitrogen社製)で細胞を回収した。この細胞抽出液からRNAを抽出し、逆転写反応と定量性PCRに供することで各遺伝子のmRNA発現レベルを解析した。mRNA発現量はCyclophilin Aを内部標準遺伝子として標準化した。
乾燥酵母菌体がNHEKのTEERへ及ぼす影響について確認した。
[実施例1]
製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエDNY004MRの乾燥酵母菌体(100μg/mL)を、NHEKに添加して3日後、上皮バリア強度の指標である経上皮電気抵抗値(TEER)を測定した。
[実施例2]
製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエDNY005MRの乾燥酵母菌体(100μg/mL)を用いる以外は実施例1と同様にした。
[実施例3]
製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエJCM2223の乾燥酵母菌体(100μg/mL)を用いる以外は実施例1と同様にした。
[実施例4]
製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエJCM1499の乾燥酵母菌体(100μg/mL)を用いる以外は実施例1と同様にした。
[実施例5]
製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエJCM1818の乾燥酵母菌体(100μg/mL)を用いる以外は実施例1と同様にした。
[比較例1]
製造例5で得た日清スーパーカメリヤの乾燥酵母菌体(100μg/mL)を用いる以外は実施例1と同様にした。
[コントロール]
乾燥酵母菌体を添加しない以外は、実施例1と同様にした。
酵母抽出物がNHEKのTEERへ及ぼす経時的な影響について確認した。
[実施例6]
製造例2で得たサッカロマイセス・セレビシエDNY004MRの酵母抽出物(200μg/mL)を、NHEKに添加して4日の間、経時的にTEERを測定した。
[実施例7]
製造例2で得たサッカロマイセス・セレビシエDNY005MRの酵母抽出物(200μg/mL)を用いる以外は、実施例6と同様にした。
[実施例8]
製造例2で得たサッカロマイセス・セレビシエJCM2223の酵母抽出物(200μg/mL)を用いる以外は、実施例6と同様にした。
[コントロール]
酵母抽出物を添加しない以外は、実施例6と同様にした。
本発明のサッカロマイセス・セレビシエの乾燥菌体が、角化細胞が分化する条件でも上皮バリア機能を強化させるかを調べた。
[実施例9]
カルシウムイオン濃度が1.8mMとなるように調製した培地を使用してNHEKを培養し、製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエDNY005MRの乾燥酵母菌体(100μg/mL)を添加した後、4日の間、TEERを経時的に計測した。
[実施例10]
製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエDNY005MRの乾燥酵母菌体(200μg/mL)を用いる以外は、実施例9と同様にした。
[コントロール]
乾燥酵母菌体を添加しない以外は、実施例9と同様にした。
乾燥酵母菌体がCaco−2のTEERへ及ぼす影響について確認した。
[実施例11]
3週間培養したCaco−2細胞に、製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエDNY004MRの乾燥酵母菌体(100μg/mL)を添加して3日後にTEERを測定した。
[実施例12]
製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエDNY005MRの乾燥酵母菌体(100μg/mL)を用いる以外は、実施例11と同様にした。
[実施例13]
製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエJCM2223の乾燥酵母菌体(100μg/mL)を用いる以外は、実施例11と同様にした。
[実施例14]
製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエJCM2214の乾燥酵母菌体(100μg/mL)を用いる以外は、実施例11と同様にした。
[コントロール]
乾燥酵母菌体を添加しない以外は、実施例11と同様にした。
酵母抽出物がCaco−2のTEERへ及ぼす影響について確認した。
[実施例15]
製造例2で得たサッカロマイセス・セレビシエDNY004MRの酵母抽出物(100μg/mL)を3週間培養したCaco−2へ添加して、1日毎に3日間、TEERを測定した。
[実施例16]
製造例2で得たサッカロマイセス・セレビシエDNY005MRの酵母抽出物(200μg/mL)を用いる以外は、実施例15と同様にした。
[実施例17]
製造例2で得たサッカロマイセス・セレビシエJCM2223の酵母抽出物(200μg/mL)を用いる以外は、実施例15と同様にした。
[コントロール]
酵母抽出物を添加しない以外は、実施例15と同様にした。
乾燥酵母菌体がNHEKの遺伝子(クローディン−4)発現へ及ぼす影響について確認した。
[実施例18]
製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエDNY004MRの乾燥酵母菌体(100、又は200μg/mL)をNHEKに処理し、24時間後に細胞を回収した。NHEKからRNAを抽出後、逆転写反応および定量性PCRに供し、mRNA発現量を解析した。
[実施例19]
製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエDNY005MRの乾燥酵母菌体(100、又は200μg/mL)を用いる以外は、実施例18と同様にした。
[実施例20]
製造例4で得たサッカロマイセス・セレビシエJCM2223の乾燥酵母菌体(100、又は200μg/mL)を用いる以外は、実施例18と同様にした。
[コントロール]
乾燥酵母菌体を添加しない以外は、実施例18と同様にした。
Claims (3)
- サッカロマイセス・セレビシエDNY004MR(受託番号NITE P−1493)株もしくはDNY005MR(受託番号NITE P−1494)株またはその抽出物を含有することを特徴とする上皮バリア機能増強剤。
- サッカロマイセス・セレビシエDNY004MR(受託番号NITE P−1493)株もしくはDNY005MR(受託番号NITE P−1494)株またはその抽出物を含有することを特徴とするクローディン−4産生促進剤。
- サッカロマイセス・セレビシエDNY004MR(受託番号NITE P−1493)株またはDNY005MR(受託番号NITE P−1494)株。
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