JP6064231B2 - がん治療および診断のための標的遺伝子としてのsuv39h2 - Google Patents
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Description
本願は、2011年6月3日に出願された米国仮特許出願第61/493,235号の恩典を主張し、その全内容は参照によって本明細書に組み入れられる。
SETドメインを含むヒストンメチルトランスフェラーゼであり、H3K9リジン残基をメチル化することが知られている。Suv39h2は、ヒトSUV39H2のマウスホモログであり、第二のマウスSuv39h遺伝子として単離されて特徴づけされ、Suv39h1と59%の同一性を有することが明らかになっている(非特許文献16)。Suv39h2の発現は、成体の精巣に限られており、内因性Suv39h2タンパク質の免疫局在性により、精子形成の初期ステージにおいて第一減数分裂前期中にヘテロクロマチンに富化された分布が明らかになる。中パキテン期の間に、Suv39h2は、XY体に存在するサイレンス化された性染色体のクロマチン中に特異的に蓄積する。さらに、Suv39h2のヒストンメチルトランスフェラーゼ活性は、雄性減数分裂の間の高位のクロマチンダイナミックスの調節において重要な役割を果たすように見える(非特許文献16)。
しかしながら、現在まで、ヒト発がんにおけるSUV39H2脱調節の重要性の示唆あるいは証明は存在しなかった。
引用文献リスト
特許文献
非特許文献
Strahl BD et al. Nature 2000; 403: 41−45
[非特許文献2]
Kouzarides T et al.Cell 2007; 128:693−705
[非特許文献3]
Huertas D et al. Epigenetics 2009; 4: 31−42
[非特許文献4]
Luco RF et al. Science 2010; 327: 996−1000
[非特許文献5]
Kouzarides T et al. Curr Opin Genet Dev 2002; 12: 198−209
[非特許文献6]
Peterson CL et al. Curr Biol 2004; 14:R546−551
[非特許文献7]
Cho HS et al. Cancer Res 2010
[非特許文献8]
Hamamoto R et al. Nat Cell Biol 2004;6:731−40
[非特許文献9]
Hamamoto R et al. Cancer Sci 2006;97:113−8
[非特許文献10]
Yoshimatsu M et al. Int J Cancer 2011; 128: 562−573
[非特許文献11]
Hayami S et al. Int J Cancer 2011; 128: 574−586
[非特許文献12]
Kunizaki M et al. Cancer Res 2007;67:10759−65
[非特許文献13]
Silva FP et al. Oncogene 2008;27:2686−92
[非特許文献14]
Tsuge M et al. Nat Genet 2005;37:1104−7
[非特許文献15]
Allis CD et al. Cell 2007; 131: 633−636
[非特許文献16]
O’Carroll D et al. Mol Cell Biol 2000; 20: 9423−9433
[非特許文献17]
Martin C et al. Nat Rev Mol Cell Biol 2005;6:838−49
[非特許文献18]
Schneider R et al. Trends Biochem Sci 2002;27:396−402.
本発明は、SUV39H2およびその発がんにおける役割に関する。したがって、本発明は、がん、特に肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍の検出、診断、治療および/もしくは予防のための新規組成物および方法に関する。本発明はまた、がんの予防および治療の一方あるいは両方に有用な候補物質のスクリーニング方法に関する。
本発明の中心は、SUV39H2遺伝子はがん細胞において過剰発現しており、SUV39H2遺伝子に対する二本鎖分子によるSUV39H2のノックダウンはがん細胞の増殖の有意な抑制をもたらすという発見である。このような二本鎖分子は、センス鎖とアンチセンス鎖とから構成されることができ、ここで、センス鎖は、配列番号19および20からなる群から選択される標的配列に相当するヌクレオチド配列を含み、アンチセンス鎖は、そのセンス鎖に相補的な配列を含み、また、ここで、この分子のセンスおよびアンチセンス鎖は、互いにハイブリダイズして二本鎖分子を形成する。
[1] 対象におけるがんを検出または診断するため、あるいはがんを発症する素因を決定するための方法であって、対象由来生物学的試料におけるSUV39H2遺伝子の発現レベルを決定する方法を含み、ここで、該遺伝子の正常対照レベルと比較した該レベルの増加が、該対象ががんに罹患しているかまたはがんを発症するリスクを有することを示し、
該発現レベルが、以下からなる群より選択される方法によって決定される、前記方法:
(a) SUV39H2遺伝子のmRNAを検出する方法;
(b) SUV39H2遺伝子によってコードされるタンパク質を検出する方法;および
(c) SUV39H2遺伝子によってコードされるタンパク質の生物学的活性を決定する方法;
[2] 前記増加が正常対照レベルより少なくとも10%高い、前記[1]に記載の方法;
[3] 対象由来生物学的試料が、生検標本、唾液、痰、血液、血清、血漿、胸水または尿である、前記[1]に記載の方法;
[4] 以下からなる群より選択される試薬を含む、がんを検出あるいは診断するため、あるいはがんを発症する素因を決定するためのキット
(a) SUV39H2遺伝子のmRNAを検出するための試薬;
(b) SUV39H2遺伝子によってコードされるタンパク質を検出するための試薬;
(c) SUV39H2遺伝子によってコードされるタンパク質の生物学的活性を検出するための試薬;
[5] 前記試薬が、SUV39H2遺伝子の転写物に対するプローブである、前記[4]に記載のキット;
[6] 前記試薬が、SUV39H2遺伝子によってコードされるタンパク質に対する抗体である、前記[4]記載のキット;
[7] 検出されるべき生物学的活性が、細胞増殖促進活性またはメチルトランスフェラーゼ活性である、前記[1]〜[3]のいずれか1項記載の方法または前記[4]〜[6]のいずれか1項記載のキット;
[8] 前記がんが、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍からなる群から選択される、前記[1]〜[3]のいずれか1項記載の方法または前記[4]〜[6]のいずれか1項に記載のキット;
[9] 以下の工程を含む、がんの治療もしくは予防の一方あるいは両方、またはがん細胞増殖の阻害のための候補物質のスクリーニング方法:
(a) 試験物質を、SUV39H2ポリペプチドあるいはその機能的等価物と接触させる工程;
(b) 前記ポリペプチドまたはその機能的等価物と試験物質との間の結合活性を検出する工程;および
(c) 前記ポリペプチドあるいはその機能的等価物に結合する試験物質を選択する工程;
[10] 以下の工程を含む、がんの治療もしくは予防の一方あるいは両方、またはがん細胞増殖の阻害のための候補物質のスクリーニング方法:
(a) 試験物質を、SUV39H2遺伝子を発現する細胞と接触させる工程;および
(b) 試験物質の非存在下における発現レベルと比較してSUV39H2遺伝子の発現レベルを低減させる試験物質を選択する工程;
[11] 以下の工程を含む、がんの治療もしくは予防の一方あるいは両方、またはがん細胞増殖の阻害のための候補物質のスクリーニング方法:
(a) 試験物質を、SUV39H2ポリペプチドあるいはその機能的等価物と接触させる工程;
(b) 工程(a)のポリペプチドあるいはその機能的等価物の生物学的活性を検出する工程;
(c) 前記試験物質の非存在下で検出された生物学的活性と比較して前記ポリペプチドあるいはその機能的等価物の生物学的活性を抑制する試験物質を選択する工程;
[12] 生物学的活性が、細胞増殖促進活性またはメチルトランスフェラーゼ活性である、前記[11]に記載の方法;
[13] 以下の工程を含む、がんの治療もしくは予防の一方あるいは両方、またはがん細胞増殖の阻害のための候補物質のスクリーニング方法:
(a) 試験物質を、SUV39H2遺伝子の転写調節領域およびこの転写調節領域の制御下で発現されるレポーター遺伝子を含むベクターが導入された細胞と接触させる工程;
(b) 前記レポーター遺伝子の発現または活性レベルを測定する工程;および
(c) 前記試験物質の非存在下におけるレベルと比較して前記レポーター遺伝子の発現活性またはレベルを低減させる試験物質を選択する工程;
[14] 以下の工程を含む、がんの治療もしくは予防の一方あるいは両方、またはがん細胞増殖の阻害のための候補物質のスクリーニング方法:
(a) 試験物質を、SUV39H2遺伝子、および表7および表8に示す遺伝子から選択された下流遺伝子を発現する細胞と接触させる工程;
(b) 前記下流遺伝子の発現レベルを検出する工程;
(c) 前記試験物質の非存在下において検出される発現レベルと比較して前記下流遺伝子の発現レベルを変更する試験物質を選択する工程;
[15] SUV39H2遺伝子の下流遺伝子が、表7に示される遺伝子から選択され、かつ、工程(c)が、前記試験物質の非存在下において検出される発現レベルと比較して前記下流遺伝子の発現レベルを増加させる試験物質を選択する工程である、前記[14]に記載の方法;
[16] SUV39H2遺伝子の下流遺伝子が、表8に示される遺伝子から選択され、かつ、工程(c)が、前記試験物質の非存在下において検出された発現レベルと比較して前記下流遺伝子の発現レベルを低減させる試験物質を選択する工程である、前記[14]に記載の方法;
[17] がんが、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍からなる群から選択される、前記[9]〜[16]のいずれか1項に記載の方法;
[18] センス鎖およびアンチセンス鎖を含む二本鎖分子であって、このセンス鎖は、配列番号19または20の標的配列に相当するヌクレオチド配列を含み、かつ、このアンチセンス鎖は、前記標的配列に相補的なヌクレオチド配列を含み、前記センス鎖および前記アンチセンス鎖は、相互にハイブリダイズして二本鎖分子を形成し、この二本鎖分子は、SUV39H2遺伝子を発現する細胞に導入された場合、SUV39H2遺伝子の発現を阻害する、二本鎖分子;
[19] 二本鎖分子が、約19〜約25ヌクレオチド長である、前記[18]に記載の二本鎖分子;
[20] 前記二本鎖分子が、一本鎖ヌクレオチド配列を介して連結されたセンス鎖およびアンチセンス鎖を含む単一ポリヌクレオチド分子である、前記[18]に記載の二本鎖分子;
[21] 前記二本鎖分子が、一般式:
5’−[A]−[B]−[A’]−3’または5’−[A’]−[B]−[A]−3’
式中、[A]は配列番号19また20の標的配列に相当するヌクレオチド配列を含むセンス鎖、[B]は約3〜約23ヌクレオチドからなるヌクレオチド配列、および[A’]は前記標的配列に相補的なヌクレオチド配列を含むアンチセンス鎖である、前記[20]に記載の二本鎖分子;
[22] 前記[18]〜[21]のいずれか1項記載の二本鎖分子をコードするベクター;
[23] センス鎖核酸およびアンチセンス鎖核酸を含むベクターであって、前記センス鎖核酸は、配列番号19また20のヌクレオチド配列を含み、前記アンチセンス鎖核酸は、前記センス鎖に相補的なヌクレオチド配列から構成され、前記センス鎖および前記アンチセンス鎖の転写物は、互いにハイブリダイズして二本鎖分子を形成し、前記ベクターは、SUV39H2遺伝子の発現を阻害する、ベクター;
[24] 対象におけるがんの治療もしくは予防の一方あるいは両方の方法であって、この方法は、前記対象に、医薬的有効量のSUV39H2遺伝子に対する二本鎖分子または前記二本鎖分子をコードするベクターを投与する工程を含み、前記二本鎖分子は、SUV39H2遺伝子を発現する細胞に導入された場合、SUV39H2遺伝子の発現ならびに細胞増殖を阻害する、方法;
[25] 二本鎖分子が、前記[18]〜[21]のいずれか1項記載の二本鎖分子である、前記[24]に記載の方法;
[26] ベクターが、前記[22]または[23]記載のベクターである、前記[24]に記載の方法;
[27] がんの治療もしくは予防の一方あるいは両方のための組成物であって、この組成物は、医薬的有効量のSUV39H2遺伝子に対する二本鎖分子または前記二本鎖分子をコードするベクターおよび医薬的に許容可能なキャリアを含み、前記二本鎖分子は、SUV39H2遺伝子を発現する細胞に導入された場合、SUV39H2遺伝子の発現ならびに細胞増殖を阻害する、組成物;
[28] 二本鎖分子が、前記[18]〜[21]のいずれか1項記載の二本鎖分子である、前記[27]に記載の組成物;
[29] ベクターが、前記[22]または[23]記載のベクターである、前記[27]に記載の組成物。
本明細書において言及される各刊行物、特許あるいは特許出願の開示は、その全体が参照により具体的に組み入れられる。しかしながら、本明細書におけるいずれも、先行発明により本発明がこのような開示より先行する権利を与えられないことの認容として解釈されるべきものではない。
本明細書で用いられる「1つの(a)」、「1つの(an)」、および「その(the)」という単語は、特記しない限り「少なくとも1つの」を意味する。
「ポリペプチド」、「ペプチド」、および「タンパク質」という用語は本明細書において互換的に用いられ、アミノ酸残基のポリマーを指す。本用語は、天然アミノ酸ポリマーに加えて、1つまたは複数のアミノ酸残基が修飾残基であるか、または非天然残基、例えば対応する天然アミノ酸の人工的な化学的模倣体である、アミノ酸ポリマーに適用される。
アミノ酸は、本明細書において、IUPAC−IUB生化学命名法委員会 (Biochemical
Nomenclature Commission)によって推奨される公知の3文字表記または1文字表記でよぶことができる。
特記しない限り、「がん」という用語は、SUV39H2遺伝子を過剰発現しているがんを指す。SUV39H2遺伝子を過剰発現しているがんとしては、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍が挙げられるが、これらに限らない。
本発明は、少なくとも部分的には、SUV39H2をコードする遺伝子が非がん性組織と比較していくつかのがんにおいて過剰発現されているという発見に基づいている。SUV39H2(the suppressor of variegation 3-9 homolog 2)は、KMT1B (Allis CD、et al、 Cell 2007;131: 633−636)とも呼ばれており、H3K9を選択的にメチル化するSET−ドメイン含有メチルトランスフェラーゼである。
したがって、SUV39H2タンパク質の生物学的活性を保持するあらゆるポリペプチドは、本発明の文脈において、その機能的等価物であるものとして考えられる。たとえば、SUV39H2ポリペプチドの機能的等価物は、ネイティブなSUV39H2ポリペプチドの細胞増殖促進活性および/あるいはメチルトランスフェラーゼ活性を保持していてもよい。本発明の文脈において、SUV39H2ポリペプチドの機能的等価物は、多形変異体、種間ホモログ、およびこれらのポリペプチドのアレルによってコードされるものを含む。
et al.、 Proc Natl Acad Sci USA 79: 6409−13 (1982))。したがって、当業者は、単一のアミノ酸もしくは低割合のアミノ酸(すなわち、5%未満、より好ましくは3%未満、さらにより好ましくは1%未満)を変更する、アミノ酸配列に対する個々の付加、欠失、挿入および置換、あるいは「保存的改変」と考えられるようなものであって、タンパク質の変更が同様の機能を有するタンパク質をもたらすものは、本発明の文脈において許容可能であることを認識するであろう。したがって、SUV39H2ポリペプチドの機能的等価物は、天然ヒトSUV39H2ポリペプチド配列において1、2あるいはそれ以上のアミノ酸が付加、挿入、欠失および/または置換されているアミノ酸配列を有していてもよい。
1) アラニン(A)、グリシン(G);
2) アスパラギン酸(D)、グルタミン酸(E);
3) アスパラギン(N)、グルタミン(Q);
4) アルギニン(R)、リジン(K);
5) イソロイシン(I)、ロイシン(L)、メチオニン(M)、バリン(V);
6) フェニルアラニン(F)、チロシン(Y)、トリプトファン(W);
7) セリン(S)、スレオニン(T);および
8) システイン(C)、メチオニン(M)(たとえば、Creighton、Proteins 1984参照)。
Biotechnology 6: 1204−10 (1988))、6個のHis(ヒスチジン)残基を含有する6xHis、10xHis、インフルエンザ凝集素(HA)、ヒトc−myc断片、VSP−GP断片、p18HIV断片、T7−タグ、HSV−タグ、E−タグ、SV40T抗原断片、lckタグ、α−チューブリン断片、B−タグ、タンパク質C断片等との融合物が挙げられる。SUV39H2ポリペプチドに融合することができるタンパク質の例としては、GST(グルタチオン−S−トランスフェラーゼ)、インフルエンザアグルチニン(HA)、イムノグロブリン定常領域、β−ガラクトシダーゼ、MBP(マルトース結合タンパク質)、等が含まれる。
さらに、SUV39H2ポリペプチドの機能的等価物は、多型変異体、種間ホモログ、およびこれらのポリペプチドのアレルによってコードされるものを除外しない。
たとえば、ハイブリダイゼーション技術(SambrookおよびRussell、 Molecular Cloning: A Laboratory Manual、 3rd ed.、 Cold Spring Harbor Lab. Press、 2001)が知られている。当業者は、ヒトSUV39H2ポリペプチドをコードするヒトSUV39H2 DNA配列(たとえば、配列番号21、23、25、27または29)の全体または一部と高い相同性(すなわち、配列同一性)を有するDNAを容易に単離することができ、単離されたDNAからヒトSUV39H2ポリペプチの機能的等価物を単離することができる。
したがって、本発明において使用されるSUV39H2ポリペプチドの機能的等価物としては、ストリンジェントな条件下でヒトSUV39H2ポリペプチドをコードするDNA配列の全体または一部とハイブリダイズするDNAによってコードされるポリペプチドが含まれる。これらの機能的等価物としては、ヒトSUV39H2ポリペプチドに相当する哺乳類のホモログ(たとえば、サル、マウス、ラット、ウサギまたはウシSUV39H2遺伝子によってコードされるポリペプチド)が挙げられる。
(1) Peptide Synthesis、 Interscience、 New York、 1966;
(2) The Proteins、 Vol. 2、 Academic Press、 New York、 1976;
(3) ペプチド合成,丸善,1975;
(4) ペプチド合成の基礎と実験,丸善,1985;
(5) 医薬品の開発(続 第14巻)ペプチド合成,広川書店,1991;
(6) WO99/67288;および
(7) Barany G. & Merrifield R.B.、 Peptides Vol. 2、 "Solid Phase Peptide Synthesis"、 Academic Press、 New York、 1980、 100−118.
SUV39H2ポリペプチドおよびその機能的等価物は、インビトロ翻訳系を用いてインビトロで作製することもできる。
本発明は、SUV39H2はがんの診断マーカーとして役立つことができ、したがって、それに関連するがんの検出に用途が見い出されるという発見に関する。ここで明らかにされるように、SUV39H2遺伝子の発現は、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍(図1、3、6、10および表6)において特異的かつ有意に上昇する。したがって、ここで同定されたSUV39H2遺伝子、ならびにその転写および翻訳生成物は、上記のがんのためのマーカーとして、および試料中のSUV39H2遺伝子の発現を測定することにより、診断的利用性が見いだされる。これらのがんは、対象由来試料中のSUV39H2遺伝子の発現レベルを正常試料におけるそれと比較することにより、診断または検出することができる。具体的には、本発明は、対象由来試料におけるSUV39H2遺伝子の発現レベルを測定することによりがんを診断または検出する方法を提供する。本発明の方法により診断または検出されるがんの例としては、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍が挙げられる。本発明の文脈において、肺癌は、NSCLCおよびSCLCを含む。さらに、NSCLCは、肺腺癌(ADC)、肺扁平上皮癌(SCC)および肺大細胞癌(LCC)を含む。
[1] 対象におけるがんの検出あるいは診断方法であって、対象由来生物学的試料におけるSUV39H2遺伝子の発現レベルを決定する工程を含み、ここで、この遺伝子の正常対照レベルと比較しての、前記レベルの増加は、この対象ががんに罹患しているあるいはがんを発症するリスクを有することを示す、方法、または対象におけるがんの検出あるいは診断方法であって、以下の工程を含む方法:
(i) 対象由来生物学的試料を単離または回収する工程、
(ii) SUV39H2遺伝子の発現レベルを測定または決定するために、この対象由来生物学的試料を、SUV39H2ポリヌクレオチドとハイブリダイズするオリゴヌクレオチドあるいはSUV39H2ポリペプチドと結合する抗体と接触させる工程、および
(iii) この接触に基づいてSUV39H2遺伝子の発現レベルを測定または決定する工程、ここで、SUV39H2遺伝子の正常対照レベルと比較しての前記レベルの増加は、この対象ががんに罹患しているあるいはがんを発症するリスクを有することを示す、方法;
[2] 測定された試料発現レベルが、正常対照レベルより少なくとも10%高い前記[1]記載の方法;
[3] 発現レベルは以下から選択される方法によって検出される、前記[1]または[2]記載の方法:
(a) SUV39H2遺伝子のmRNAを検出する方法、
(b) SUV39H2遺伝子によってコードされるタンパク質を検出する方法、および
(c) SUV39H2遺伝子によってコードされるタンパク質の生物学的活性を検出する方法;
[4] 前記生物学的活性が、細胞増殖促進活性またはメチルトランスフェラーゼ活性である、前記[3]記載の方法;
[5] 前記発現レベルが、mRNAに対するプローブによってmRNAを検出することにより決定される、前記[3]記載の方法;
[6] 前記発現レベルが、前記タンパク質に対する抗体によってタンパク質を検出することにより決定される、前記[3]記載の方法;
[7] がんが、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍癌からなる群から選択される、前記[1]〜[6]のいずれか1項に記載の方法;
[8] 対象由来の生物学的試料が、生検標本、唾液、痰、血液、血清、血漿、胸水または尿試料である、前記[1]〜[7]のいずれか1項に記載の方法;
[9] 対象由来の生物学的試料が、上皮細胞を含む、前記[1]〜[8]のいずれか1項に記載の方法;
[10] 対象由来の生物学的試料が、がん細胞を含む、前記[1]〜[9]のいずれか1項に記載の方法;および
[11] 対象由来の生物学的試料が、がん性上皮細胞を含む、前記[1]〜[10]のいずれか1項記載の方法。
本発明の方法は、好ましくは、診断されるべき対象から入手あるいは回収した生物学的試料を利用する。あらゆる生物学的材料は、SUV39H2遺伝子の目的の転写または翻訳生成物を含むことができる限りにおいて、決定のための生物学的試料として使用することができる。好適な対象由来生物学的試料の例としては、生検標本のような体組織、ならびに、血液、痰および尿のような体液が挙げられるが、これらに限らない。好ましくは、生物学的試料は、上皮細胞、より好ましくはがん性上皮細胞あるいはがん性であることが疑われる組織由来の上皮細胞を含む、細胞集団を含有している。さらに、必要な場合には、この細胞は、得られた体組織および体液から精製され、その後、生物学的試料として使用してもよい。
さらに、SUV39H2遺伝子の発現レベルに加えて、他のがん関連遺伝子、たとえば、がんにおいて異なって発現されることが知られている遺伝子の発現レベルもまた、診断を確認するために決定してもよい。
上述した用途を容易にするために、本発明は、がんを診断するための診断試薬を提供する。このような試薬は、以下のものから選択することができる:
(a) SUV39H2遺伝子のmRNAを検出するための試薬;
(b) SUV39H2タンパク質を検出するための試薬;および
(c) SUV39H2タンパク質の生物学的活性を検出するための試薬。
(a) 本発明の二本鎖分子、
(b) それをコードするDNA、または
(c) それをコードするベクター。それらのすべては以下において詳細に論じられる。
(a) 治療すべきがんを有することが疑われる対象から得られたがん細胞または組織におけるSUV39H2の発現レベルを決定する工程;
(b) このSUV39H2の発現レベルを正常対照レベルと比較する工程;
(c) そのSUV39H2の発現レベルが正常対照レベルと比較して増加している場合、その対象が治療すべきがんを有すると診断する工程;および
(d) 工程(c)において、その対象が治療すべきがんを有すると診断される場合、がん治療のためにその対象を選択する工程。
(a) 治療すべきがんを有することが疑われる対象から得られたがん細胞または組織におけるSUV39H2の発現レベルを決定する工程;
(b) SUV39H2の発現レベルをがん性対照レベルと比較する工程;
(c) そのSUV39H2の発現レベルががん性対照レベルと同様または等価である場合、その対象が治療すべきがんを有すると診断する工程;および
(d) 工程(c)において、その対象が治療すべきがんを有すると診断される場合、がん治療のためにその対象を選択する工程。
i) 治療すべきがんを有する対象から得られたがん細胞または組織におけるSUV39H2の発現レベルを決定する工程;
ii) このSUV39H2の発現レベルを、正常対照と比較する工程;および
iii) 正常対照と比較してSUV39H2を過剰発現するがんを有する対象に、
(a) 本発明の二本鎖分子、
(b) それをコードするDNA、および
(c) それをコードするベクター
からなる群から選択される少なくとも1つの成分を、投与する工程。あるいは、本発明はまた、
(a) 本発明の二本鎖分子、
(b) それをコードするDNA、および
(c) それをコードするベクター
からなる群から選択される少なくとも1つの成分を含む、SUV39H2を過剰発現するがんを有する対象に投与する用途のための医薬組成物を提供する。言い換えれば、本発明は、さらに、
(a) 本発明の二本鎖分子、
(b) それをコードするDNA、または
(c) それをコードするベクター
で治療すべき対象を同定する方法を提供する。
本発明の方法によって治療されるべき対象は、好ましくは哺乳類である。例示的な哺乳類としては、たとえば、ヒト、非ヒト霊長類、マウス、ラット、イヌ、ネコ、ウマ、およびウシが挙げられるが、これらに限らない。
本発明によれば、対象から得られたがん細胞または組織におけるSUV39H2の発現レベルは、当技術分野において公知の方法を用いて、たとえば転写(核酸)生成物レベルで、決定される。たとえば、ハイブリダイゼーション法(たとえば、ノーザンハイブリダイゼーション)、チップまたはアレイ、プローブ、RT−PCRを用いてSUV39H2の転写生成物レベルを決定することができる。
翻訳生成物に基づいてSUV39H2遺伝子の発現レベルを検出する別の方法として、SUV39H2タンパク質に対する抗体を用いる免疫組織化学的解析を介して染色の強度を測定してもよい。具体的には、この測定において、強い染色は、タンパク質の存在/レベルの増加を示し、同時に、SUV39H2遺伝子の高い発現レベルを示す。
SUV39H2ポリペプチドおよび/またはそれをコードするポリヌクレオチドの検出または測定のための方法は、上記のとおりに例示されることができる。
本発明は、がんを診断あるいは検出するためのキットを提供する。好ましくは、がんは、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍からなる群から選択されてもよい。
本発明のキットは、対象由来生物学的試料におけるSUV39H2遺伝子の発現レベルを検出するための少なくとも一つの試薬を含み、この試薬は、以下のものからなる群から選択されてもよい:
(a) SUV39H2遺伝子のmRNAを検出するための試薬;
(b) SUV39H2タンパク質を検出するための試薬;および
(c) SUV39H2タンパク質の生物学的活性を検出するための試薬。
SUV39H2遺伝子、SUV39H2ポリペプチドあるいはそれらの機能的等価物、またはその遺伝子の転写調節領域を用いて、SUV39H2遺伝子の発現またはSUV39H2ポリペプチドの生物学的活性を変更する物質をスクリーニングすることが可能である。このような物質は、がんのようなSUV39H2過剰発現に関連する疾患を治療もしくは予防するための医薬の候補として用いてもよい。したがって、本発明は、SUV39H2遺伝子、SUV39H2ポリペプチドまたはそれらの機能的等価物、またはSUV39H2遺伝子の転写調節領域を用いる、がんの治療もしくは予防の一方あるいは両方のための候補物質のスクリーニング方法を提供する。
さらに、スクリーニングされた試験物質がタンパク質である場合、そのタンパク質をコードするDNAを得るために、そのタンパク質のアミノ酸配列の全体を、そのタンパク質をコードする核酸配列を推定するために決定してもよく、または得られたタンパク質の部分アミノ酸配列を、その配列に基づくプローブとしてオリゴDNAを調製するために解析して、そのプローブを用いてタンパク質をコードするDNAを得るためにcDNAライブラリーをスクリーニングしてもよい。得られたDNAは、がんまたはその術後再発を治療もしくはは予防するためまたはがん細胞増殖阻害のための候補である試験物質を調製することにおけるその有用性を確認される。ここで記載されるスクリーニングにおいて有用な試験物質としては、SUV39H2タンパク質に特異的に結合する抗体、またはインビボにおいて元のタンパク質の生物学的活性を欠くその部分ペプチドが挙げられる。
SUV39H2タンパク質の発現レベルあるいは生物学的活性のいずれかの抑制が、がん細胞の増殖の抑制をもたらすことがここで明らかにされる。したがって、ある物質がSUV39H2の発現および/または活性を抑制する場合、このような抑制は、対象における潜在的な治療効果を示す。本発明の文脈において、潜在的な治療効果は、妥当な期待を伴う臨床的な有効性を指す。このような臨床的有効性の例としては、以下のものが挙げられるが、それらに限らない:
(a) SUV39H2遺伝子の発現の低減、
(b) 対象におけるがんの大きさ、罹患率、または転移能の低減、
(c) がん形成の予防、または
(d) がんの臨床的症状の予防または緩和。
試験物質ライブラリーの構築は、求めている特性を有することが公知の化合物の分子構造、および/またはSUV39H2の分子構造の知見によって容易になる。さらなる評価に好適な試験物質の予備的スクリーニングの一つのアプローチは、試験物質とその標的間の相互作用のコンピュータモデリングである。
試験物質のコンビナトリアルライブラリーは、公知の阻害剤に存在するコア構造の知識を含む、合理的薬剤設計プログラムの一部として作製してもよい。このアプローチは、ライブラリーが妥当なサイズに維持されることを可能にし、ハイスループットスクリーニングを容易にする。あるいは、簡便な、特に短いポリマー分子ライブラリーを、そのライブラリーを構成する分子ファミリーのすべての順列を単に合成することにより構築してもよい。この後者のアプローチの例は、6アミノ酸の長さのすべてのペプチドのライブラリーである。このようなペプチドライブラリーは、すべての6アミノ酸配列の順列を含むことができる。このタイプのライブラリーは、直線的コンビナトリアル化学ライブラリーと呼ばれる。
84−6を参照) が挙げられるが、これらに限らない。化学的多様性ライブラリーを生じるための他の化学を用いることもできる。このような化学としては、以下のものが挙げられるが、これらに限らない: ペプチド(たとえば、国際公開公報WO91/19735)、コードされるペプチド(たとえば、WO93/20242)、ランダムバイオオリゴマー(たとえば、WO92/00091)、ベンゾジアゼピン類(たとえば、米国特許第5,288,514号)、ヒダントイン、ベンゾジアゼピン類およびジペプチド類のようなダイバーソマー類(DeWitt et al.、 Proc Natl Acad Sci USA 1993、 90:6909−13)、ビニル様(vinylogous)ポリペプチド(Hagihara et al.、 J Amer Chem Soc 1992、 114: 6568)、グルコース骨格を有する非ペプチド性ペプチド模倣体(Hirschmann et al.、 J Amer Chem Soc 1992、114: 9217−8)、低化合物ライブラリーの類似有機合成(Chen et al.、 J. Amer Chem Soc 1994、 116: 2661)、オリゴカルバメート(Cho et al.、 Science 1993、 261: 1303)、および/またはペプチジルホスホネート(Campbell et al.、 J Org Chem 1994、 59: 658)、核酸ライブラリー (Ausubel、Current Protocols in Molecular Biology 1995 supplement; Sambrook et al.、 Molecular Cloning: A Laboratory Manual、 1989、 Cold Spring Harbor Laboratory、 New York、 USAを参照されたい)、ペプチド核酸ライブラリー(たとえば、米国特許第5,539,083号を参照されたい)、抗体ライブラリー(たとえば、 Vaughan et al.、 Nature Biotechnology 1996、 14(3):309−14およびPCT/US96/10287を参照されたい)、糖質ライブラリー(たとえば、Liang et al. 、 Science 1996、 274: 1520−22; 米国特許第5,593,853号を参照されたい)、および有機低分子ライブラリー(たとえば、ベンゾジアゼピン類、 Gordon EM. Curr Opin Biotechnol. 1995 Dec 1;6(6):624−31.;イソプレノイド類、米国特許第5,569,588号;チアゾリジノン類およびメタチアザノン類、米国特許第5,549,974号;ピロリジン類、米国特許第5,525,735号および第5,519,134号;モルホリノ化合物、米国特許第5,506,337号;ベンゾジアゼピン類、5,288,514、等を参照されたい)。
他の候補:
別のアプローチは、組み換えバクテリオファージを用いてライブラリーを作製する。「ファージ法」(Scott & Smith、 Science 1990、 249: 386−90; Cwirla et al.、 Proc Natl Acad Sci USA 1990、 87: 6378−82; Devlin et al.、 Science 1990、 249: 404−6)を用いて、非常に大きいライブラリーを構築することができる(たとえば、106〜108化学物質)。第二のアプローチは、主として化学的方法を用い、そのうち、Geysen法(Geysen et al.、 Molecular Immunology 1986、 23:709−15; Geysen et al.、 J Immunologic Method 1987、 102: 259−74); およびFodorらの方法(Science 1991、 251:767−73)が例示的である。Furkaら(14th International Congress of Biochemistry 1988、 Volume #5、 Abstract FR:013; Furka、 Int J Peptide Protein Res 1991、 37: 487−93)、Houghten(米国特許第4,631,211号)およびRutterら(米国特許第5,010,175号)は、アゴニストまたはアンタゴニストとして試験することができるペプチドの混合物を製造する方法を記載する。
SUV39H2ポリペプチドあるいはその機能的等価物は、得られるポリペプチドが天然SUV39H2ポリペプチドの少なくとも1つの生物学的活性を保持する限り、他の物質にさらに連結されていてもよい。有用な物質としては、ペプチド類、脂質類、糖類および糖鎖、アセチル基、天然および合成ポリマー類、等が挙げられる。これらの種類の修飾は、付加的な機能を付与するためまたはポリペプチドおよび断片を安定化するために行なってもよい。
SUV39H2遺伝子、SUV39H2ポリペプチドまたはSUV39H2遺伝子の転写調節領域を用いて、SUV39H2遺伝子の発現またはSUV39H2ポリペプチドの生物学的活性を変更する物質を同定することができる。ここで明らかにされるように、SUV39H2遺伝子は、がんにおいて過剰発現され、がん細胞の増殖および/または生存に関与する。したがって、SUV39H2遺伝子の発現またはSUV39H2ポリペプチドの生物学的活性を変更する物質は、がんの治療剤候補になり得る。
支持体に対するタンパク質の結合は、たとえば、化学的結合および物理的吸着のような、慣例的方法にしたがって行なうことができる。あるいは、タンパク質は、そのタンパク質を特異的に認識する抗体を介して支持体に結合することができる。そのうえ、支持体に対するタンパク質の結合は、アビジンおよびビオチンを用いて行なってもよい。
さらに、本発明のスクリーニング方法において、SUV39H2ポリペプチドの生物学的活性を阻害する物質は、がんの治療剤候補としても同定することができる。
(a) SUV39H2遺伝子の発現の低減、
(b) 対象におけるがんの大きさ、罹患率、または転移能の低減、
(c) がんの形成の予防、または
(d) がんの臨床的症状の予防あるいは緩和。
本発明の過程において、SUV39H2遺伝子は、種々のがん、たとえば肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍においてで過剰発現するが、それにもかかわらず精巣を除く正常器官においてはほとんどあるいはまったく発現しないことが解明されている(図1、2、3、6、9、10および表3、4、5、6)。したがって、SUV39H2ポリペプチドを用いて、
本発明は、SUV39H2ポリペプチドに結合する物質をスクリーニングする方法を提供する。がんにおけるSUV39H2遺伝子の発現のため、SUV39H2ポリペプチドに結合する物質は、がん細胞の増殖を抑制し、したがってがんの治療および予防の一方あるいは両方に有用であることが期待される。したがって、本発明はまた、がん細胞の増殖を抑制する候補物質のスクリーニング方法、およびSUV39H2ポリペプチドを用いるがんの治療および予防の一方あるいは両方のための候補物質のスクリーニング方法を提供する。具体的には、一つの態様において、本発明のスクリーニング方法は、以下の工程を含む:
(a) 試験物質を、SUV39H2ポリペプチドあるいはその機能的等価物と接触させる工程;
(b) このポリペプチドあるいはその機能的等価物およびこの試験物質間の結合活性を検出する工程;および
(c) このポリペプチドあるいは機能的等価物に結合する試験物質を選択する工程。
(a) 試験物質を、SUV39H2ポリペプチドまたはその機能的等価物と接触させる工程;
(b) ポリペプチド(または機能的等価物)および試験物質間の結合を検出する工程;および
(c) (b)の結合を試験物質の潜在的治療効果と関連づける工程。
(a) 試験物質を、SUV39H2ポリペプチドまたはその機能的等価物と接触させる工程;
(b) ポリペプチドまたは機能的等価物および試験物質間の結合活性を検出する工程;および
(c) 潜在的治療効果および試験物質を関連づける工程、ここで潜在的治療効果は、物質がポリペプチドまたは機能的等価物に結合する場合に示される。
免疫沈降は、たとえば、文献における方法(HarlowおよびLane、Antibody、 511−52、 Cold Spring Harbor Laboratory publications、 New York (1988))にしたがって、行なうことができる。
本発明の過程において、SUV39H2遺伝子は、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍を含む種々のがんにおいて高度に過剰発現されることが明らかになっている。
さらに、低分子干渉RNA(siRNA)によるSUV39H2遺伝子の抑制は、がん細胞の増殖阻害および/または細胞死をもたらした。したがって、SUV39H2ポリペプチドががん細胞生存に関与し、したがって、SUV39H2ポリペプチドの生物学的活性を阻害する物質はがん治療のために好適な候補物質であることは明らかである。
したがって、本発明はまた、SUV39H2ポリペプチドの生物学的活性を指標として用いるSUV39H2関連がんの治療および予防の一方あるいは両方のための候補物質のスクリーニング方法を提供する。
例示的なSUV39H2関連がんとしては、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍が挙げられる。
がんの治療および予防の一方あるいは両方のための候補物質のスクリーニング方法であって、以下の工程を含む方法:
(a) 試験物質を、SUV39H2ポリヌクレオチドまたはその機能的等価物と接触させる工程;
(b) 工程(a)のSUV39H2ポリペプチドまたはその機能的等価物の生物学的活性を検出する工程;
(c) 工程(b)において検出された生物学的活性を、試験物質の非存在下で検出されたそれと比較する工程;
(d) SUV39H2ポリペプチドまたはその機能的等価物の生物学的活性を低減または阻害する試験物質を選択する工程。
(a) 試験物質を、SUV39H2ポリペプチドまたはその機能的等価物と接触させる工程;および
(b) 工程(a)のポリペプチドまたは機能的等価物の生物学的活性を検出する工程、および
(c) (b)の生物学的活性を試験物質の治療効果と関連づける工程。
(a) 試験物質を、SUV39H2ポリペプチドあるいはその機能的等価物と接触させる工程;
(b) 工程(a)のポリペプチドあるいはその機能的等価物の生物学的活性を検出する工程;および
(c) 潜在的な治療効果および試験物質を関連づける工程であって、ここで、潜在的な治療効果は、物質が、試験物質の非存在下において検出された上記ポリペプチドの生物学的活性と比較して、SUV39H2ポリペプチドあるいはその機能的等価物の生物学的活性を抑制する場合、示される。発現、結合および生物学的活性の文脈において、「抑制(する)」という用語は、「低減(する)」および「阻害(する)」という用語と互換的に使用され、部分的から完全にわたる効果を含む。したがって、ここで定義する「生物学的活性を抑制(する)」という語句は、その物質の非存在下と比較してSUV39H2の生物学的活性の少なくとも10%抑制、より好ましくは少なくとも25%、50%または75%抑制、そして最も好ましくは90%抑制を指す。上記のとおり、このようなSUV39H2関連がんの例としては、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍が挙げられる。
(a) 試験物質を、SUV39H2遺伝子を発現する細胞と接触させる工程;
(b) 細胞増殖促進活性を測定する工程;および
(c) 試験物質の非存在下における細胞増殖促進活性と比較して、細胞増殖促進活性を低減する試験物質を選択する工程。
好ましい態様において、本発明の方法は、さらに以下の工程を含むことができる:
(d) 検出可能なSUV39H2遺伝子をほとんどあるいはまったく発現しない細胞に対して実質的に効果を有さない試験物質を選択する工程。
[1] 以下の工程を含む、がんの治療および予防の一方または両方のための候補物質のスクリーニング方法:
(a) 試験物質を、SUV39H2ポリペプチドまたはその機能的等価物、基質およびコファクターと、基質のメチル化に好適な条件下で接触させる工程;
(b) 基質のメチル化レベルを検出する工程;および
(c) 試験物質の非存在下におけるメチル化レベルと比較して基質のメチル化レベルを低減する試験物質を選択する工程;
[2] 基質が、ヒストンまたは少なくとも1つのメチル化領域を含むその断片である、前記[1]に記載の方法;
[3] 基質が、ヒストンH3または少なくとも1つのメチル化領域を含むその断片である、前記[2]に記載の方法;
[4] メチル化領域が、ヒストンH3のリジン9である、前記[3]に記載の方法;
[5] コファクターが、S−アデノシルメチオニンである、前記[1]〜[4]のいずれか1項に記載の方法;
[6] ポリペプチドを、メチル化の増強剤の存在下で基質およびコファクターと接触させる、前記[1]〜[5]のいずれか1項に記載の方法;および
[7] メチル化の増強剤が、S−アデノシルホモシステインヒドロラーゼ(SAHH)である、前記[6]に記載の方法。
たとえば、SUV39H2ポリペプチドおよび基質は、好適なアッセイ条件下で、標識されたメチル化ドナーとインキュベートすることができる。ヒストンH3ペプチド(すなわち、ヒストンH3またはその断片)、およびS−アデノシル−[メチル−14C]−L−メチオニン、またはS−アデノシル−[メチル−3H]−L−メチオニンを、好ましくは、それぞれ基質およびメチルドナーとして、使用することができる。ヒストンH3ペプチドへの放射性標識の移転は、たとえば、SDS−PAGE電気泳動およびフルオログラフィによって検出することができる。あるいは、反応の後、ヒストンH3ペプチドは、ろ過によってメチルドナーから分離し、フィルター上に保持された放射性標識の量をシンチレーションカウンティングによって定量することができる。メチルドナーにつけることができる他の好適な標識は、色原性標識および蛍光標識のようなものであり、ヒストンおよびヒストンペプチドへのこれらの標識の移転の検出方法は、当技術分野において公知である。メチルトランスフェラーゼアッセイの例は、「実施例5:SUV39H2のメチルトランスフェラーゼ活性の阻害剤のスクリーニング」に記載される。
[1] 試験物質を、SUV39H2遺伝子を発現する細胞と接触させる工程;
[2] ヒストンH3 リジン9(H3K9)のメチル化レベルを検出する工程;および
[3] 試験物質の非存在下におけるメチル化レベルと比較してメチル化レベルを低減する試験物質を選択する工程。
(a) SUV39H2ポリペプチドまたはその機能的等価物を発現する細胞、およびSUV39H2ポリペプチドまたはその機能的等価物を発現しない対照細胞を、試験物質の存在下で培養する工程;
(b) SUV39H2ポリペプチドまたはその機能的等価物を発現する細胞および対照細胞の生物学的活性(細胞増殖またはメチルトランスフェラーゼ活性)を検出する工程;および
(c) 対照細胞においておよび試験物質の非存在下において検出された生物学的活性(細胞増殖促進活性またはメチルトランスフェラーゼ活性)と比較して、SUV39H2ポリペプチドあるいはその機能的等価物を発現する細胞における生物学的活性(細胞増殖またはメチルトランスフェラーゼ活性)を阻害する試験物質を選択する工程。
本発明は、SUV39H2遺伝子の発現を阻害する物質のスクリーニングをも提供する。SUV39H2遺伝子の発現を阻害する物質は、がん細胞(たとえば、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌または軟部腫瘍)の増殖を抑制し、したがって、がん(たとえば、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌または軟部腫瘍)の治療および予防の一方あるいは両方に有用であることが期待される。したがって、本発明はまた、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍細胞のようなSUV39H2遺伝子を過剰発現するがん細胞の増殖を抑制する物質のスクリーニング方法、および肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍のようなSUV39H2過剰発現に関連するがんの治療および予防の一方あるいは両方のための候補物質のスクリーニング方法を提供する。
(a) 試験物質を、SUV39H2遺伝子を発現する細胞と接触させる工程;
(b) この細胞におけるSUV39H2遺伝子の発現レベルを検出する工程;および
(c) 試験物質の非存在下で検出された発現レベルと比較して、SUV39H2遺伝子の発現レベルを低減する試験物質を選択する工程。
(a) 物質を、SUV39H2遺伝子を発現する細胞と接触させる工程;
(b) SUV39H2遺伝子の発現レベルを検出する工程;および
(c) 試験物質の潜在的治療効果を、工程(b)において検出された発現レベルと関連づける工程であって、ここで、潜在的治療効果は、試験物質が、試験物質の非存在下において検出された発現レベルと比較してSUV39H2遺伝子の発現レベルを低減する場合に示される。
(a) 試験物質を、SUV39H2遺伝子、および表7および表8に示される遺伝子から選択されるSUV39H2遺伝子の下流遺伝子を発現する細胞と接触させる工程;
(b) 下流遺伝子の発現レベルを検出する工程;および
(c) 試験物質の非存在下で検出された発現レベルと比較して、下流遺伝子の発現レベルを変更する試験物質を選択する工程。
(a) 試験物質を、SUV39H2遺伝子および表8に示す遺伝子から選択されるSUV39H2遺伝子の下流遺伝子を発現する細胞と接触させる工程;
(b) 下流遺伝子の発現レベルを検出する工程;および
(c) 試験物質の非存在下で検出された発現レベルと比較して、下流遺伝子の発現レベルを低減する試験物質を選択する工程。
(a) 試験物質を、SUV39H2遺伝子および表8に示す遺伝子から選択されるSUV39H2遺伝子の下流遺伝子を発現する細胞と接触させる工程;
(b) 下流遺伝子の発現レベルを検出する工程;および
(c) 潜在的な治療効果および試験物質を関連づける工程であって、ここで、潜在的な治療効果は、物質が、対照と比較して下流遺伝子の発現レベルを低減する場合に示される。
(a) 試験物質を、SUV39H2遺伝子および表7に示す遺伝子から選択されるSUV39H2遺伝子の下流遺伝子を発現する細胞と接触させる工程;
(b) 下流遺伝子の発現レベルを検出する工程、および
(c) 試験物質の非存在下で検出された発現レベルと比較して、下流遺伝子の発現レベルを増加する試験物質を選択する工程。
(a) 試験物質を、SUV39H2遺伝子および表7に示す遺伝子から選択されるSUV39H2遺伝子の下流遺伝子を発現する細胞と接触させる工程;
(b) 下流遺伝子の発現レベルを検出する工程、および
(c) 潜在的な治療効果および試験物質を関連づける工程であって、ここで、潜在的な治療効果は、物質が、対照と比較して下流遺伝子の発現レベルを増加する場合に示される。
(a) 試験物質を、SUV39H2遺伝子の転写調節領域およびその転写調節領域の制御下で発現されるレポーター遺伝子を含むベクターが導入されている細胞と接触させる工程;
(b) レポーター遺伝子の発現レベルまたは活性を検出する工程、および
(c) 試験物質の非存在下で検出された発現レベルまたは活性と比較してレポーター遺伝子の発現レベルまたは活性を低減する試験物質を選択する工程。
(a) 試験物質を、SUV39H2遺伝子の転写調節領域およびその転写調節領域の制御下で発現されるレポーター遺伝子を含むベクターが導入されている細胞と接触させる工程;
(b) レポーター遺伝子の発現レベルまたは活性を検出する工程、および
(c) 試験物質の潜在的治療効果を工程(b)で検出された発現レベルまたは活性と関連づける工程であって、潜在的治療効果は、試験物質の非存在下で検出される発現レベルまたは活性と比較して試験物質がレポーター遺伝子の発現レベルまたは活性を低減する場合、示される。
ここで用いる場合、「単離された二本鎖分子」という用語は、標的遺伝子の発現を阻害する核酸分子を指し、たとえば、低分子干渉RNA(siRNA;たとえば、二本鎖リボ核酸(dsRNA)または低分子ヘアピン型RNA(shRNA))および低分子干渉DNA/RNA(siD/RNA;たとえば、DNAおよびRNAの二本鎖キメラ(dsD/R−NA)またはDNAおよびRNAの低分子ヘアピン型キメラ(shD/R−NA))が挙げられる。
ここで、「二本鎖分子」は、「二本鎖核酸」、「二本鎖核酸分子」、「二本鎖ポリヌクレオチド」、「二本鎖ポリヌクレオチド分子」、「二本鎖オリゴヌクレオチド」および「二本鎖オリゴヌクレオチド分子」とも呼ばれる。
SUV39H2遺伝子のための標的配列としては、たとえば、配列番号19または20のヌクレオチド配列が挙げられる。
[1] 細胞に導入された場合、SUV39H2遺伝子のインビボ発現および細胞増殖を阻害する単離された二本鎖分子であって、センス鎖およびそれに相補的なアンチセンス鎖から構成され、相互にハイブリダイズして二本鎖分子を形成する分子;
[2] 二本鎖分子が、mRNAに作用し、配列番号19または20の標的配列にマッチングする、前記[1]に記載の二本鎖分子;
[3] センス鎖が、配列番号19または20の標的配列に相当する配列を含む、前記[1]に記載の二本鎖分子;
[4] 約100ヌクレオチド長未満である、前記[1]〜[3]のいずれか1項に記載の二本鎖分子;
[5] 約75ヌクレオチド長未満;である、前記[4]に記載の二本鎖分子
[6] 約50ヌクレオチド長未満である、前記[5]に記載の二本鎖分子;
[7] 約25ヌクレオチド長未満である、前記[6]に記載の二本鎖分子;
[8] 約19〜約25ヌクレオチド長である、前記[7]に記載の二本鎖分子;
[9] 介在性一本鎖により連結されたセンスおよびアンチセンス鎖の両方を有する単一ポリヌクレオチドから構成される、前記[1]〜[8]のいずれか1項に記載の二本鎖分子;
[10] 一般式5’−[A]−[B]−[A’]−3’または5’−[A’]−[B]−[A]−3’を有し、ここで、[A]は配列番号19または20の標的配列に相当する配列を含むセンス鎖であり;[B]は3〜23ヌクレオチドから構成される介在性一本鎖であり、かつ[A’]は標的配列に相補的な配列を含むアンチセンス鎖である、前記[9]に記載の二本鎖分子;
[11] RNAから構成される、前記[1]〜[10]のいずれか1項に記載の二本鎖分子;
[12] DNAおよびRNAの両方から構成される、前記[1]〜[10]のいずれか1項に記載の二本鎖分子;
[13] 分子が、DNAポリヌクレオチドおよびRNAポリヌクレオチドのハイブリッドである、前記[12]に記載の二本鎖分子;
[14] センスおよびアンチセンス鎖がそれぞれDNAおよびRNAから構成されている、前記[13]に記載の二本鎖分子;
[15] 分子がDNAおよびRNAのキメラである、前記[12]に記載の二本鎖分子;
[16] アンチセンス鎖の3’末端に隣接する領域、またはセンス鎖の5’末端に隣接する領域およびアンチセンス鎖の3’末端に隣接する領域の両方が、RNAである、前記[15]に記載の二本鎖分子;
[17] 隣接領域が9〜13ヌクレオチドから構成される、前記[16]に記載の二本鎖分子;および
[18] 分子が3’オーバーハングを含む、前記[2]に記載の二本鎖分子;
本発明の二本鎖分子は、以下においてさらに詳細に説明される。
このようなコンピュータプログラムは、以下のプロトコールに基づいて二本鎖分子のための標的ヌクレオチド配列を選択する。
1. 転写物のAUG開始コドンから始まって、下流をAAジヌクレオチド配列についてスキャンする。各AAおよびその3’隣接19ヌクレオチドの出現を潜在的siRNA標的部位として記録する。Tuschlらは、5’および3’非翻訳領域(UTRs)および開始コドンに近い領域(75塩基以内)に対するsiRNAを設計することを回避することを推奨しているが、これは、これらは調節タンパク質結合部位を豊富に含む可能性があり、およびUTR結合タンパク質および/または翻訳開始複合体がsiRNAエンドヌクレアーゼ複合体の結合と干渉する可能性があるためである。
2. 潜在的標的部位を適切なゲノムデータベース(ヒト、マウス、ラット、等)と比較し、他のコード配列に有意な相同性を有するあらゆる標的配列を考慮から除外する。ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/にてNCBIサーバー上に見出すことができるBLASTが使用される(Altschul SF et al.、 Nucleic Acids Res 1997 Sep 1、 25(17): 3389−402)。
3. 適格な標的配列を合成のために選択する。典型的には、いくつかの標的配列を、評価すべき遺伝子の長さに沿って選択する。
本発明の二本鎖分子は、単一の標的SUV39H2遺伝子配列に向けられていてもよく、または複数の標的SUV39H2遺伝子配列に向けられていてもよい。
センス鎖:
5’−[−−−DNA−−−]−3’
3’−(RNA)−[DNA]−5’
:アンチセンス鎖、
センス鎖:
5’−(RNA)−[DNA]−3’
3’−(RNA)−[DNA]−5’
:アンチセンス鎖、および
センス鎖:
5’−(RNA)−[DNA]−3’
3’−(−−−RNA−−−)−5’
:アンチセンス鎖。
CUUUGGUUGUUCAUGCACA−[B]−UGUGCAUGAACAACCAAAG(標的配列用 配列番号19)、およびCUGGAAUCAGCUUAGUCAA−[B]−UUGACUAAGCUGAUUCCAG(標的配列用 配列番号20)。
本発明に同様に含まれるのは、ここで記載される一またはそれ以上の二本鎖分子をコードするベクター、およびこのようなベクターを含む細胞である。具体的には、本発明は、以下の[1]〜[10]のベクターを提供する。
[1] 細胞に導入された場合、SUV39H2遺伝子のインビボ発現および細胞増殖を阻害する二本鎖分子をコードし、この分子はセンス鎖およびそれに相補的なアンチセンス鎖から構成され、相互にハイブリダイズして二本鎖分子を形成する、ベクター。
[2] 配列番号19または20の標的配列と一致する、mRNAに作用する二本鎖分子をコードする、前記[1]に記載のベクター;
[3] センス鎖が、配列番号19または20の標的配列に相当する配列を含む、前記[1]に記載のベクター;
[4] 約100ヌクレオチド長未満である二本鎖分子をコードする、前記[3]に記載のベクター;
[5] 約75ヌクレオチド長未満である二本鎖分子をコードする、前記[4]に記載のベクター;
[6] 約50ヌクレオチド長未満である二本鎖分子をコードする、前記[5]に記載のベクター;
[7] 約25ヌクレオチド長未満である二本鎖分子をコードする、前記[6]に記載のベクター;
[8] 約19〜約25ヌクレオチド長の二本鎖分子をコードする、前記[7]に記載のベクター;
[9] 二本鎖分子は、介在性一本鎖によって連結されたセンスおよびアンチセンス鎖の両方を有する単一ポリヌクレオチドから構成される、前記[1]〜[8]のいずれか1項に記載のベクター;
[10] 一般式5’−[A]−[B]−[A’]−3’または5’−[A’]−[B]−[A]−3’を有する二本鎖分子をコードし、ここで、[A]は配列番号19または20の標的配列に相当する配列を含むセンス鎖であり、[B]は3〜23ヌクレオチドから構成される介在性一本鎖であり、かつ[A’]は標的配列に対して相補的な配列を含むアンチセンス鎖である、前記[9]に記載のベクター。
本発明において、SUV39H2遺伝子に対するdsRNAsは、細胞増殖を阻害するその能力について試験された。SUV39H2遺伝子に対するdsRNAは、いくつかのがん細胞株における遺伝子の発現を効率的にノックダウンし、細胞増殖の抑制と同時に起こった(図4)。
[1] がん細胞の増殖を阻害するまたはがんを治療する方法であって、ここで、がん細胞またはがんは、SUV39H2遺伝子を発現し、この方法は、少なくとも1つのSUV39H2遺伝子に対する単離された二本鎖分子またはこの二本鎖分子をコードするベクターを投与する工程を含み、ここで、二本鎖分子は、SUV39H2遺伝子を過剰発現する細胞においてこの遺伝子の発現および細胞増殖を阻害し、ここで、この二本鎖分子は、センス鎖およびそれに相補的なアンチセンス鎖から構成され、互いにハイブリダイズして二本鎖分子を形成する、方法;
[2] 二本鎖分子が、配列番号19または20の標的配列に一致するmRNAに作用する、前記[1]に記載の方法;
[3] センス鎖が、配列番号19または20の標的配列に相当する配列を含む、前記[1]に記載の方法;
[4] 治療されるべきがんが、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍からなる群から選択される、前記[1]〜[3]のいずれか1項に記載の方法;
[5] 二本鎖分子が、約100ヌクレオチド長未満である、前記[1]〜[4]のいずれか1項に記載の方法;
[6] 二本鎖分子が、約75ヌクレオチド長未満である、前記[5]に記載の方法;
[7] 二本鎖分子が、約50ヌクレオチド長未満である、前記[6]に記載の方法;
[8] 二本鎖分子が、約25ヌクレオチド長未満である、前記[7]に記載の方法;
[9] 二本鎖分子が、約19〜約25ヌクレオチド長未満である、前記[8]に記載の方法;
[10] 二本鎖分子が、介在性一本鎖によって連結されたセンス鎖およびアンチセンス鎖の両方を含む単一ポリヌクレオチドから構成される、前記[1]〜[9]のいずれか1項に記載の方法;
[11] 二本鎖分子が、一般式5’−[A]−[B]−[A’]−3’または5’−[A’]−[B]−[A]−3’を有し、ここで[A]は配列番号19または20の標的配列に相当する配列を含むセンス鎖であり、[B]は3〜23ヌクレオチドから構成される介在性単一鎖であり、かつ、[A’]は標的配列に相補的な配列を含むアンチセンス鎖である、前記[10]に記載の方法;
[12] 二本鎖分子がRNAから構成される、前記[1]〜[11]のいずれか1項に記載の方法;
[13] 二本鎖分子がDNAおよびRNAの両方から構成される、前記[1]〜[12]のいずれか1項に記載の方法;
[14] 二本鎖分子が、DNAポリヌクレオチドおよびRNAポリヌクレオチドのハイブリッドである、前記[13]に記載の方法;
[15] センスおよびアンチセンス鎖ポリヌクレオチドが、それぞれDNAおよびRNAから構成されている、前記[14]に記載の方法;
[16] 二本鎖分子が、DNAおよびRNAのキメラである、前記[13]に記載の方法;
[17] アンチセンス鎖の3’末端に隣接する領域、またはセンス鎖の5’末端に隣接する領域およびアンチセンス鎖の3’末端に隣接する領域の両方が、RNAから構成される、前記[16]に記載の方法;
[18] 隣接領域が、9〜13ヌクレオチドから構成される、前記[17]に記載の方法;
[19] 二本鎖分子が3’オーバーハングを含む、前記[1]〜[18]のいずれか1項に記載の方法;
[20] 二本鎖分子が、トランスフェクション増強剤および医薬的に許容可能なキャリアを含む組成物中に含まれる、前記[1]〜[19]のいずれか1項に記載の方法;
[21] 二本鎖分子が、ベクターによってコードされる、前記[1]〜[20]のいずれか1項に記載の方法;
[22] ベクターによってコードされる二本鎖分子が、配列番号19または20の標的配列に一致するmRNAで作用する、前記[21]に記載の方法;
[23] ベクターによってコードされる二本鎖分子のセンス鎖が、配列番号19または20から選択される標的配列に相当する配列を含む、前記[21]に記載の方法;
[24] 治療されるべきがんが、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌(canter)または軟部腫瘍である、前記[21]〜[23]のいずれか1項に記載の方法;
[25] ベクターによってコードされる二本鎖分子が、約100ヌクレオチド長未満である、前記[21]〜[24]のいずれか1項に記載の方法;
[26] ベクターによってコードされる二本鎖分子が、約75ヌクレオチド長未満である、前記[25]に記載の方法;
[27] ベクターによってコードされる二本鎖分子が、約50ヌクレオチド長未満である、前記[26]に記載の方法;
[28] ベクターによってコードされる二本鎖分子が、約25ヌクレオチド長未満である、前記[27]に記載の方法;
[29] ベクターによってコードされる二本鎖分子が、約19〜約25ヌクレオチド長である、前記[28]に記載の方法;
[30] ベクターによってコードされる二本鎖分子が、介在性一本鎖によって連結されたセンス鎖およびアンチセンス鎖の両方を含む単一ポリヌクレオチドから構成される、前記[21]〜[29]のいずれか1項に記載の方法;
[31] ベクターによってコードされる二本鎖分子が、一般式5’−[A]−[B]−[A’]−3’または5’−[A’]−[B]−[A]−3’を有し、ここで、[A]は配列番号19または20の標的配列に相当する配列を含むセンス鎖であり、[B]は3〜23ヌクレオチドから構成される介在性一本鎖であり、かつ、[A’]は標的配列に相補的な配列を含むアンチセンス鎖である、前記[30]に記載の方法;および
[32] ベクターが、トランスフェクション増強剤および医薬的に許容可能なキャリアを含む組成物に含まれている、前記[21]に記載の方法。
特に、SUV39H2遺伝子の標的配列を含む二本鎖分子(すなわち、配列番号19または20)は、がんの治療のために特に好ましい。
本発明の二本鎖分子と組み合わせて投与するための好適な送達試薬としては、ミラストランジットTKO(Mirus Transit TKO)脂溶性試薬;リポフェクチン(lipofectin);リポフェクタミン(lipofectamine);セルフェクチン(cellfectin);またはポリカチオン類もしくはポリカチオン類(たとえば、ポリリジン)、またはリポソームが挙げられる。好ましい送達試薬は、リポソームである。
オプソニン化阻害部分は、多数の周知の技術のいずれかによってリポソーム膜に結合させることができる。たとえば、PEGのN−ヒドロキシサクシンイミドエステルは、ホスファチジル−エタノールアミン脂溶性アンカーに結合することができ、次に膜に結合することができる。同様に、デキストランポリマーは、Na(CN)BH3および30:12の比率のテトラヒドロフランおよび水のような溶剤混合物を60℃で用いる還元的アミノ化を介して、ステアリルアミン(stearylamine)脂溶性アンカーで誘導体化することができる。
(a) 本発明の二本鎖分子、
(b) それをコードするDNA、および
(c) それをコードするベクター。
治療すべきがんとしては、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍が挙げられるが、これらに限らない。
i) 治療すべきがんを有する対象から得られたがん細胞または組織におけるSUV39H2遺伝子の発現レベルを決定する工程;
ii) SUV39H2遺伝子の発現レベルを、正常対照と比較する工程;および
iii) 以下のものからなる群から選択される少なくとも1つの成分:
(a) 本発明の二本鎖分子、
(b) 前記二本鎖分子をコードするDNA、および
(c) 前記二本鎖分子をコードするベクター、
を、正常対照と比較してSUV39H2遺伝子を過剰発現するがんを有する対象に投与する工程。あるいは、本発明は、以下のものからなる群から選択される少なくとも1つの成分:
(a) 本発明の二本鎖分子、
(b) 前記二本鎖分子をコードするDNA、および
(c) 前記二本鎖分子をコードするベクター、
を含む、SUV39H2遺伝子を過剰発現するがんを有する対象への投与に使用するための医薬組成物をも提供する。言い換えれば、本発明は、以下のもの:
(a) 本発明の二本鎖分子、
(b) 前記二本鎖分子をコードするDNA、または
(c) 前記二本鎖分子をコードするベクター、
で治療されるべき対象を同定するための方法をさらに提供し、この方法は、対象由来がん細胞または組織中のSUV39H2遺伝子の発現レベルを決定する工程を含んでいてもよく、ここで、この遺伝子の正常対照レベルと比較したレベルの増加はこの対象が本発明の二本鎖分子で治療してもよいがんを有することを示す。
本発明の方法によって治療されるべき対象は、好ましくは哺乳類である。例示的な哺乳類としては、たとえば、ヒト、非ヒト霊長類、マウス、ラット、イヌ、ネコ、ウマ、およびウシが挙げられるが、これらに限らない。
本発明によれば、対象から得られたがん細胞または組織におけるSUV39H2遺伝子の発現レベルが決定される。この発現レベルは、当技術分野において公知の方法を用いて転写(核酸)生成物レベルで決定することができる。たとえば、ハイブリダイゼーション法(たとえば、ノーザンハイブリダイゼーション)、チップまたはアレイ、プローブ、RT−PCRは、SUV39H2遺伝子の転写生成物レベルを決定するために使用することができる。
たとえば、観察されたタンパク質(配列番号22、24、26、28または30)の量を決定してもよい。
翻訳生成物に基づいてSUV39H2遺伝子の発現レベルを検出するための別の方法として、SUV39H2タンパク質に対する抗体を用いる免疫組織化学解析を介して染色強度を測定してもよい。具体的には、この測定においては、強い染色は、タンパクの増加した存在/レベルを示し、同時に、SUV39H2遺伝子の高い発現レベルを示す。
SUV39H2ポリペプチドまたはそれをコードするポリヌクレオチドのいずれかまたは両方を検出または測定する方法は、上記のように例示することができる(がんの診断方法)。
上記に加えて、本発明はまた、本発明の二本鎖分子またはこの分子をコードするベクターを含む医薬組成物をも提供する。
本発明の文脈において、「組成物」という用語は、特定の成分を特定の量で含む生成物、ならびに、特定の量の特定の成分の組み合わせから直接的または間接的にもたらされる任意の生成物を指すために使用される。このような用語は、修飾語句「医薬(の)」(「医薬組成物」におけるように)に関して用いられる場合、活性成分、およびキャリアを形成する任意の不活性成分を含有する生成物、ならびに、任意の2以上の成分の組み合わせ、複合体形成または凝集から、または1以上の成分の解離から、または1以上の成分の他のタイプの反応もしくは相互作用から、直接的または間接的にもたらされる任意の生成物、を含む生成物、を含む生成物を包含することを意図される。したがって、本発明の文脈において、「医薬組成物」という用語は、本発明の分子または化合物と医薬的もしくは生理学的に許容可能なキャリアとを混合することにより製造された、任意の生成物を指す。
[1] がん細胞の増殖の阻害、およびがんの治療および予防の一方または両方のための組成物であって、ここで、がん細胞およびがんはSUV39H2遺伝子を発現し、SUV39H2遺伝子に対する単離された二本鎖分子または二本鎖分子をコードするベクターを含み、ここで、この二本鎖分子は、SUV39H2遺伝子の発現および細胞増殖を阻害し、ここで、この二本鎖分子は、センス鎖およびそれに対して相補的なアンチセンス鎖から構成され、相互にハイブリダイズして二本鎖分子を形成する、組成物;
[2] 二本鎖分子が、配列番号19または20の標的配列と一致するmRNAに対して作用する、前記[1]に記載の組成物;
[3] 二本鎖分子が、センス鎖が配列番号19または20の標的配列に相当する配列を含む、前記[1]に記載の組成物;
[4] 治療すべきがんが、肺癌、子宮頸癌、膀胱癌、食道癌、骨肉腫、前立腺癌および軟部腫瘍から選択される、前記[1]〜[3]のいずれか1項に記載の組成物;
[5] 二本鎖分子が、約100ヌクレオチド長未満である、前記[1]〜[4]のいずれか1項に記載の組成物;
[6] 二本鎖分子が、約75ヌクレオチド長未満である、前記[5]に記載の組成物;
[7] 二本鎖分子が、約50ヌクレオチド長未満である、前記[6]に記載の組成物;
[8] 二本鎖分子が、約25ヌクレオチド長未満である、前記[7]に記載の組成物;
[9] 二本鎖分子が、約19〜約25ヌクレオチド長である、前記[8]に記載の組成物;
[10] 二本鎖分子が、介在性一本鎖によって連結されたセンス鎖およびアンチセンス鎖を含む単一ポリヌクレオチドから構成される、前記[1]〜[9]のいずれか1項に記載の組成物;
[11] 二本鎖分子が、一般式5’−[A]−[B]−[A’]−3’または5’−[A’]−[B]−[A]−3’を有し、ここで、[A]は、配列番号19または20の標的配列に相当する配列を含むセンス鎖配列であり、[B]は、3〜23ヌクレオチドからなる介在性一本鎖であり、かつ[A’]は、標的配列に対して相補的な配列を含むアンチセンス鎖である、前記[10]に記載の組成物;
[12] 二本鎖分子がRNAから構成される、前記[1]〜[11]のいずれか1項に記載の組成物;
[13] 二本鎖分子がDNAおよびRNAの両方から構成される、前記[1]〜[11]のいずれか1項に記載の組成物;
[14] 二本鎖分子が、DNAポリヌクレオチドおよびRNAポリヌクレオチドのハイブリッドである、前記[13]に記載の組成物;
[15] センスおよびアンチセンス鎖ポリヌクレオチドが、それぞれDNAおよびRNAから構成される、前記[14]に記載の組成物;
[16] 二本鎖分子がDNAおよびRNAのキメラである、前記[13]に記載の組成物;
[17] アンチセンス鎖の3’−末端に隣接する領域、またはセンス鎖の5’−末端に隣接する領域およびアンチセンス鎖の3’−末端に隣接する領域の両方が、RNAから構成される、前記[14]に記載の組成物;
[18] 隣接領域が9〜13ヌクレオチドで構成されている、前記[17]に記載の組成物;
[19] 二本鎖分子が3’オーバーハングを含む、前記[1]〜[18]のいずれか1項に記載の組成物;および
[20] 組成物が、トランスフェクション増強剤および医薬的に許容可能なキャリアを含有する、前記[1]〜[19]のいずれか1項に記載の組成物。
ここで用いる場合、「医薬組成物」は、ヒトおよび獣医学的用途のための製剤を包含する。
そのうえ、本発明の二本鎖分子は、本発明の組成物においてリポソームとして含有されていてもよい。リポソームの詳細については、「二本鎖分子を用いてがんを治療する方法」の項を参照されたい。
固体組成物のためには、従来の無毒性固体キャリア、たとえば、医薬等級の、マンニトール、ラクトース、スターチ、ステアリン酸マグネシウム、サッカリンナトリウム、滑石、セルロース、グルコース、スクロース、炭酸マグネシウム、等を用いることができる。
本発明は、SUV39H2遺伝子を発現するがんの治療における使用のための、本発明の二本鎖核酸分子または二本鎖核酸分子をコードするベクターをさらに提供する。
ここで以下において、本発明は、実施例を参照しながらより詳細に記載される。しかしながら、以下の材料、方法および実施例は、本発明の側面を説明するためだけのものであり、いかなる意味においても本発明の範囲を制限することを意図していない。したがって、ここで記載されたものと同様または等価の方法および材料は、本発明の実施または試験において使用することができる。
実施例
実施例1: 一般的な方法
組織試料およびRNA調製
膀胱組織試料およびRNA調製は、以前記載されたものである[ Wallard MJ、 et al、
Br J Cancer 2006; 94: 569−577]。簡単に述べると、膀胱腫瘍の膀胱切除術または経尿道的切除術(TURBT)を通じて、125の一次尿路上皮癌の外科的検体を集め、液体窒素中で急速凍結した(snap frozen)。正常な膀胱尿路上皮組織の28検体を、悪性腫瘍の証拠のない患者における巨視的に正常な膀胱尿路上皮の領域から集めた。ビメンチンは、主として間葉系に由来する細胞において発現され、間質マーカーとして使用された。ウロプラキンは尿路上皮分化マーカーであり、上皮由来腫瘍の90%までにおいて保存されている[Olsburgh J et al、 J Pathol 2003; 199: 41−49]。この研究のための組織の使用は、Cambridge shire Local Research Ethics Committeeにおいて承認された(Ref 03/018)。
この研究において使用されたがん細胞株は以下のとおりであった:肺腺癌(ADC) NCI−H1781、NCI−H1373、LC319、A549およびPC−14;肺扁平上皮癌(SCC) SK−MES−1、NCI−H2170、NCI−H520、NCI−H1703およびRERF−LC−AI;肺大細胞癌(LCC) LX1;小細胞肺癌(SCLC) SBC−3、SBC−5、DMS273およびDMS114;膀胱癌 SW780、RT4およびSCaBER。ヒト小気道上皮細胞(SAEC)、正常ヒト線維芽細胞(IMR−90、WI−38およびCCD−18Co)は、正常対照細胞として使用された。すべての細胞株は、10%ウシ胎児血清および1%抗生物質/抗真菌剤溶液(Sigma)を添加した適切な培地中で単層で増殖させた。すべての細胞は、5%CO2を含む(SW780以外のすべての細胞株)またはCO2を含まない(SW780)湿潤空気中、37℃で維持した。細胞は、製造者のプロトコールにしたがってFuGENE6(ROCHE、Basel、Switzerland)でトランスフェクトした。
ゲノム全体にわたるcDNAマイクロアレイは、the National Center for Biotechnology Information (NCBI)のUniGeneデータベースから選択された36,864個のcDNAを用いて確立された。このマイクロアレイシステムは、基本的に以前記載されたとおりに構築された[Kitahara O et al、 Cancer Res 2001; 61: 3544−3549]。簡単に述べると、cDNAsを、鋳型として種々のヒト器官から単離されたポリ(A)+RNAを用いてRT−PCRによって増幅した;アンプリコンの長さは200〜1100bpの範囲であり、反復配列またはポリ(A)配列を含まなかった。多くのタイプの腫瘍および相当する非腫瘍組織は、以前記載されたとおりに8マイクロメーター切片に調製された[Kitahara O et al、 Cancer Res 2001; 61: 3544−3549]。総数30,000〜40,000の個のがんまたは非がん性細胞は、製造者のプロトコールにしたがってEZカット(the EZ cut)システム(SL MicroTest GmbH、 Germany)を用いて選択的に回収された。総RNAの抽出、T7−ベース増幅、およびプローブの標識は、以前記載されたとおりに実施した[Kitahara O et al、 Cancer Res 2001; 61: 3544−3549]。各がん性および非がん性組織由来の2回増幅RNA(aRNA)の2.5マイクログラムの定量の測定(A measure)を、次にそれぞれCy3−dCTPまたはCy5−dCTPを用いて標識した。
以前記載されたように、125個の膀胱癌および28個の正常膀胱組織は、Cambridge Addenbrooke’s Hospitalにおいて調製された。定量的RT−PCR反応のため、GAPDH(ハウスキーピング遺伝子)、SDH(ハウスキーピング遺伝子)およびSUV39H2のすべてのための特異的プライマーを設計した(表1のプライマー配列)[ Yoshimatsu M et al、 Int J Cancer 2011; 128: 562−573]。PCR反応は、製造者のプロトコールにしたがってライトサイクラー(the LightCycler)(登録商標)480システム(Roche Applied Science、 Mannheim、 Germany)を用いて実施した。UNGを含まない50%サイバーグリーン(SYBR GREEN)ユニバーサルPCRマスターミックス(Applied Biosystem、Warrington、UK)、各50 nMのフォワードおよびリバースプライマー、および2マイクロリットルの逆転写されたcDNAを適用した。増幅条件は、95℃で5分、次にそれぞれ95℃で10秒、55℃で1分および72℃で10秒からなるサイクル45回であった。次いで、反応物を、95℃で15秒、65℃で1分加熱して融解曲線を作製し、50℃で10秒冷却した。標的遺伝子増幅のための反応条件は、上記のとおりであり、5ngの逆転写されたRNAの等価物を各反応に使用した。mRNAレベルはGAPDHおよびSDH発現に対して標準化された。
免疫組織化学解析は、以前記載されたとおりにシグマジェノシス(SIGMA GENOSYS)によって製造された特異的ポリクローナルウサギSUV39H2抗体を使用して実施した[Takawa M、 et al. Cancer Sci 2011;102:1298−305、 Toyokawa G、 et al. Neoplasia 2011;13:887−98、 Toyokawa G、 et al. Mol Cancer 2011;10:65]。すべての組織試料について、エンビジョンプラス(EnVision+)キット/西洋ワサビペルオキシダーゼ(Dako、 Glostrup、Denmark)を適用した。簡単に述べると、パラフィン包埋された腫瘍検体のスライドを、抗原回収溶液中、高圧下(125℃、30秒)、高pH9で処理し(S2367、 Dako Cytomation、 Carpinteria、 CA、USA)、ペルオキシダーゼブロッキング試薬で処理し、次いでタンパク質ブロッキング試薬で処理した(K130、 X0909、 Dako Cytomation)。組織切片は、ウサギ抗SUV39H2ポリクローナル抗体とともに、続いてHRP標識二次抗体(Dako Cytomation)とともにインキュベートした。抗原は、基質色素原を用いて可視化した(Dako liquid DAB chromogen; Dako Cytomation)。最後に、組織検体を、細胞質から核を識別するためにメイヤーの(Mayer’s)ヘマトキシリン(Muto pure chemicals Ltd、 Tokyo、Japan、 Hematoxylin QS、 Vector Laboratories)で20秒染色した。各腫瘍組織コア内の染色強度はほとんど均一であったため、SUV39H2染色の強度は、以下の判断基準にしたがって半定量的に評価された:陰性(腫瘍細胞において認識可能な染色なし)および陽性(腫瘍細胞の核の30%超において認識可能な褐色の染色)。
HeLa細胞は、pCAGGS−n3FC−SUV39H2を用いてトランスフェクトした(3xFLAG−SUV39H2)。トランスフェクションの48時間後、培養細胞を0.1Mリン酸緩衝液(pH7.4)中4%パラホルムアルデヒドによって室温で30分固定し、PBS中0.5%トリトン(Triton)X−100(Sigma)を用いて透過処理した。固定された細胞は、PBS中5%BSAを用いて1時間ブロッキングし、モノクローナルマウスFLAG抗体とともに4℃で一晩インキュベートした。次に、これらを、アレキサフルオール(Alexa Fluor)594接合化二次抗体(Molecular Probes)およびアレキサフルオール(Alexa Fluor)488 ファロイジン(Phalloidin) (Molecular Probes)とともにインキュベートした。核を、4’、6−ジアミジノ−2−フェニルインドール(DAPI)で染色した。染色された細胞を、ライカ(Leica)共焦点顕微鏡を用いて観察した。
siRNAオリゴヌクレオチド二重鎖は、ヒトSUV39H2転写物をターゲティングするためにSIGMA Genosysから購入した。siEGFP、 siFFLuc およびsiNegative Control(siNC)(これは3つの異なるオリゴヌクレオチド二重鎖の混合物である)を、対照siRNAとして使用した。これらのsiRNA配列を、表2に記載する。siRNA二重鎖(100nM 最終濃度)は、リポフェクタミン(Lipofectamine)2000(Invitrogen)を用いて72時間、肺および膀胱癌細胞株中にトランスフェクトされ、細胞生存率は、以前記載されたとおりにセルカウンティングキット−8(Cell Counting Kit-8)(Dojindo、 Kumamoto、 Japan)およびコロニー形成アッセイを用いて試験した[Sato N et al、 Cancer Res 2010; 70: 5326−5336]。
SW780およびA549細胞を、siSUV39H2(siSUV39H2#1およびsiSUV39H2#2)または対照siRNA(siEGFPおよびsiNC)で処理し、CO2インキュベーター中、37℃で72時間培養した。1×105細胞の定量をトリプシン処理によって回収し、製造者の指示書にしたがってヨウ化プロピジウム(PI)で染色した(Cayman Chemical、 Ann Arbor、 MI)。細胞は、「MultiCycle for Windows」ソフトウェア(BECKMAN COULTER)を備えたFACScan(BECKMAN COULTER、 Brea、 CA)によって詳細な細胞周期ステータスについて解析した。細胞周期のG0/G1、SおよびG2/M期にある細胞の割合は、少なくとも20,000個のゲートされていない細胞から決定した。
5’−ブロモ−2’−デオキシウリジン(BrdU)フローキット(BD Pharmingen、San Diego、CA)を用いて、細胞周期動態を決定し、増殖している細胞のDNA中へのBrdUの取り込みを測定した。アッセイは、製造者のプロトコールにしたがって実施した。簡単に述べると、MEFs(1ウェル当たり1×105)を6ウェル組織培養プレートに72時間播種し、続いて10マイクロモルのBrdUを添加し、インキュベーションをさらに30分継続した。浮遊および付着細胞の両方を、1処理点当たり3個組のウェルからプールし、パラホルムアルデヒドおよび界面活性剤サポニンを含有する溶液中で固定し、37℃で1時間、DNAseとともにインキュベートした(30マイクログラム/試料)。FITC標識抗BrdU抗体(1:50希釈、洗浄緩衝液中;BD Pharmingen、San Diego、CA)を添加し、室温で20分、インキュベーションを継続した。細胞を、洗浄緩衝液で洗浄し、総DNAを7−アミノ−アクチノマイシンD(7−AAD;20マイクロリットル/試料)で染色し、続いてFACScan(BECKMAN COULTER)を用いてフローサイトメトリー解析を行い、総DNA含量(7−AAD)を、CXP解析ソフトウェアVer. 2.2 (BECKMAN COULTER)で決定した。
下流遺伝子を同定するためのマイクロアレイ解析および遺伝子オントロジー経路解析は、以前記載されたとおりに実施した[Yoshimatsu M et al、 Int J Cancer 2011; 128: 562−573]。精製された総RNAを、製造者の指示書にしたがって、標識し、アフィメトリックス(Affymetrix)「Gene Chip U133 Plus 2.0」オリゴヌクレオチドアレイ上でハイブリダイズさせた(Affymetrix、Santa Clara、CA)。プローブシグナル強度は、(RおよびBioconductorを用いて)RNAおよび分位によって標準化した。経路解析は、超幾何分布検定を用いて実施し、これはランダムにサンプリングされた別の遺伝子リストと比較した上方/下方調節される遺伝子セットおよび各G0カテゴリー間のオーバーラップの確率を計算する。同定された上方/下方調節される遺伝子に対する試験は、遺伝子オントロジーデータベースによって定義された「生物学的プロセス」(857カテゴリー)の各カテゴリーにおいてそれらが有意に富化されているかどうかを試験するために適用された(FDR<=0.05)。
臨床試料におけるSUV39H2の発現レベルを解析するために、16の正常および14の肺癌組織(9症例のNSCLCおよび5症例のSCLC)を用いてqRT−PCRを実施し、正常組織に対して肺癌組織においてSUV39H2が有意に上方調節されることを見出した(図1Aおよび1B)。正常組織のうちで、精巣のみが、肺癌組織のレベルに匹敵する高いSUV39H2発現レベルを示した。免疫組織化学解析は、SUV39H2のタンパク質発現レベルを評価するために行なわれ、精巣を除き、いくつかの正常組織において有意な染色が観察されなかった(図1C)。続く組織マイクロアレイ解析により、SUV39H2は64の肺癌症例のうち34例において陽性に染色され(53.1%;図2および表3)、正常生体器官においては有意な染色が観察されなかったこと(図2C)が示された。これらの結果は、SUV39H2は肺癌組織において高頻度で過剰発現され、一方、生体器官を含む正常組織におけるその発現は極めて低いように見えることを暗示する。SUV39H2発現と臨床的結果との関連を解析するために、本発明者らは、328のアーカイブのNSCLC症例を含むアレイ上で腫瘍組織マイクロアレイを実施した(図10)。SUV39H2は、217症例において陽性に染色され(66.16%)、111症例において陰性であった(33.84%)。一方、SUV39H2陽性と患者の特徴との間には有意な統計学的有意性は観察されなかった(表11)。
がん細胞増殖におけるSUV39H2の役割を調べた。qRT−PCRを、RNAレベルで種々の細胞株におけるSUV39H2の発現レベルを測定するために実施し、非がん性細胞と比較して肺および膀胱癌細胞において上昇したSUV39H2発現が確認された(図4Aおよび図6)。がん細胞におけるSUV39H2タンパク質の過剰発現は、ウェスタンブロッティングによって確認された(図4B)。がん細胞の増殖に対するSUV39H2ノックダウンの影響を試験するために、SUV39H2を標的とする2種の独立のsiRNAを調製し、それらの各々をがん細胞にトランスフェクトした。次いで、本発明者は、対照siRNAと比較してSUV39H2 siRNA処理後のSUV39H2発現の有意な抑制を確認した(siEGFPおよびsiNC;図4C)。これらのsiRNAでトランスフェクトされたがん細胞について行なった細胞増殖アッセイにより、肺癌細胞株A549および膀胱癌細胞株SW780における有意な増殖抑制が解明された(図4D)。これらのsiRNAは、検出不能なレベルのSUV39H2を発現する(図4A)正常細胞株CCD−18Co細胞にトランスフェクトされた場合、これらは、増殖に対して全く影響しなかった(図4D)。これは、これらの特異的siRNAでの処理によるがん細胞増殖の抑制が、正常細胞によって使用されるメカニズムを備えず、したがって、がん細胞に特異的な増殖メカニズムに直接作用することを暗示する。SUV39H2を標的とするsiRNAによるがん細胞の増殖抑制は、コロニー形成アッセイによって確認された(図4Eおよび図7A)。SUV39H2が発がん活性を有するかどうかを試験するために、本発明者は、クローン形成能アッセイを実施した。野生型SUV39H2(SUV39H2 Wt)ベクターおよび酵素不活化(dead)SUV39H2(SUV39H2 delta−SET)ベクターを、対照としてのモックベクターとともにCOS−7細胞中にトランスフェクトした。クローン形成能アッセイは、各培養について実施した(図4F)。野生型SUV39H2ベクターでトランスフェクトされた細胞は、酵素不活化SUV39H2ベクターまたはモック対照ベクターでトランスフェクトされた細胞よりも多くのコロニーを形成し、したがって、細胞において発がんを促進するのはSUV39H2のメチル化活性である。SUV39H2は、がんの進行の初期に過剰発現されるので、SUV39H2は、ヒト発がんにおける重大な役割を果たす可能性がある。siRNAによって誘導される増殖抑制のメカニズムをさらに評価するために、FACS解析を実施して、がん細胞の詳細な細胞周期ステータスを調べた。G1期のがん細胞の比率は、対照siRNAで処理された細胞と比較してsiSUV39H2で処理された細胞において有意に高かった一方、S期の細胞の比率は顕著に低減した(図5)。これらのデータは、SUV39H2ががん細胞の増殖調節、特にG1/S移行において重大な役割を果たすことを示す。
SUV39H2がヒト発がんにどのようにして寄与し得るかを同定するために、本発明者は、SUV39H2と関連する経路および下流遺伝子を探索した。SW780およびA549細胞におけるSUV39H2 siRNA処理の24時間後、マイクロアレイハイブリダイゼーション解析を、以前記載されたとおりに実施した[Yoshimatsu M、et al、
Int J Cancer 2011; 128: 562−573]。発現プロファイルは、アフィメトリックスの「HG−U133 Plus 2.0」アレイによって解析し、対照siRNA(siEGFPおよびsiFFLuc)で処理された細胞からのプロファイルと比較した。データは、SUV39H2のノックダウン後に146遺伝子が下方調節され、一方、64遺伝子が上方調節されることを示した:これらの210遺伝子は、SUV39H2阻害によって調節される下流遺伝子であると考えられた(図8、表7および表8)。遺伝子オントロジーデータベースによる下流候補のシグナル経路解析により、SUV39H2が、細胞周期調節およびクロマチン修飾のための経路を調節することが示唆された(表9)。重要なことに、質量分析解析により、細胞周期調節およびクロマチン機能に関与するタンパク質が、SUV39H2の相互作用パートナーとして同定された(表10)。したがって、SUV39H2の脱調節は、部分的にはヒストンおよびクロマチン機能の調節を通じて、ヒト発がんに寄与する可能性が高い。
GST融合SUV39H2(配列番号33;GST:アミノ酸位置1〜98、SUV39H2断片:アミノ酸位置99〜410)は、0.35mMビオチン化ヒストンH3ペプチド(配列番号31)、0.1mM S−アデノシル−L−[メチル−3H]メチオニンおよび試験物質とともに、メチルトランスフェラーゼ緩衝液(20mM トリス塩酸塩、50mM NaCl、10mM MgCl2、0.03% Tween−80および10mM DTT)中で、室温で1時間、20マイクロリットルの容量でインキュベートした。室温で1時間インキュベーション後、60マイクログラムのストレプトアビジン被覆PVTビーズを含有する20マイクロリットルのシンチレーション近接アッセイ(SPA)ビーズ緩衝液を添加することにより反応を停止させ、次いでビーズから発光された光をシンチレーションカウンターを使用して測定した。
DNAメチル化、共有結合的ヒストン修飾、ヌクレオソームポジショニングおよびmiRNAを含むエピジェネティックな修飾は、正常な哺乳動物発生および遺伝子発現の調節において重要な役割を果たす[Sharma S et al、 Carcinogenesis 2010; 31: 27−36]。正常な生理学的機能におけるエピジェネティックスの意義に加え、その脱調節は、がん[Sharma S et al、 Carcinogenesis 2010; 31: 27−36]、循環器系疾患[Turunen MP et al、 Biochim Biophys Acta 2009; 1790: 886−891]、代謝系疾患[Symonds ME et al. Nat Rev Endocrinol 2009;5:604−610]、および自己免疫性疾患[Javierre BM et al. Genome Res 2010;20:170−179]のような種々のタイプの疾患に深く関与する。エピジェネティックな変更の中で、異常ヒストン修飾は、がんの発生および進行に関与する[Chi P et al. Nat Rev Cancer 2010;10:457−469、 Portela A et al. Nat Biotechnol 2010;28:1057−1068]。アセチル化/脱アセチル化動態のヒト発がんとの関連は、ヒストン修飾の中で最も広く研究されてきたが[Cortez CC et al、Mutat Res 2008;647:44−51]、増加する大量の証拠は、ヒストンメチルトランスフェラーゼが発がんにも重要であることを示す[Schneider R et al. Trends Biochem Sci 2002;27:396−402]。
産業上の利用可能性
本発明者は、細胞増殖が、SUV39H2遺伝子を特異的標的とする二本鎖分子によって抑制されることを示した。したがって、SUV39H2遺伝子に対する二本鎖分子は抗がん医薬品の開発に有用である。
ここで記載された方法は、がんの予防、診断および治療のための付加的な分子標的の同定のためにも有用である。ここで提供されたデータは、がんの包括的な理解を増し、新規な診断戦略の開発を容易にし、かつ、治療薬および予防剤のための分子標的の同定のための手がかりを提供する。このような情報は、腫瘍形成のより深い理解に寄与し、がんの診断、治療、および最終的には予防のための新規な戦略を開発するための指標を提供する。
Claims (1)
- 以下の工程を含む、膀胱癌の治療および予防の一方または両方あるいは膀胱癌細胞増殖の阻害のための候補物質のスクリーニング方法:
(a) 試験物質を、ヒトSUV39H2ポリペプチドと接触させる工程;
(b) 工程(a)のポリペプチドの細胞増殖促進活性またはメチルトランスフェラーゼ活性を検出する工程;および
(c) 前記試験物質の非存在下で検出された細胞増殖促進活性またはメチルトランスフェラーゼ活性と比較して前記ポリペプチドの細胞増殖促進活性またはメチルトランスフェラーゼ活性を抑制する試験物質を選択する工程。
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