JP5908832B2 - 構築されたウィルス性ペプチド組成物及び使用方法 - Google Patents
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Description
本研究の一部は、国立衛生研究所(National Institute of Health)の所内研究プログラム(Intramural Research Program)である、グラントNo.1R01 AI084102によって支援された。政府は本発明にある特定の権利を有している。
本出願は、表題が「ウィルス感染症の治療のための組成物及び方法」である、国際出願日2009年1月23日のPCT特許出願/PCT/US2009/000438号と関連していて、これはその全てが参照により、本明細書に取り込まれている。本出願は2009年6月18日に出願された米国仮特許出願第61/218,209号の優先権を主張し、これはその全てが参照により、本明細書に取り込まれている。
れぞれのグリコタンパク質は膜近位細胞外ドメイン領域(NPER)によってウィルス表面に拘束される。この6螺旋バンドルモチーフは多くのウィルスファミリー内に保存されていて、フィロウィルス(エボラ)(Malashkevich, V.N., et al., PNAS, 1999, 96: 2662-2667; Weissenhorn, W., et al., Molecular Cell, 1998, 2(5): p. 605-616)、オルソミクソウィルス(インフルエンザ)(Wilson, I.A., J.J. Skehel, and D.C. Wiley, Nature, 1981. 289: 366-37; Bullough, P.A., et al., Nature, 1994. 371(6492): p. 37-43)、コロナウィルス(SARS)(Xu, Y.H., et al., Journal of Biological Chemistry, 2004. 279: 49414-49419)、パラミクソウィルス(HRSV)(Zhao, X., et al., PNAS, 2000. 14172-14177)及びレトロウィルス(HIV)(Chan, D.C. et al., Cell, 1997. 89: 263-27; Weissenhorn, W., et al., Nature, 1997. 387: 426-430)を包含
する。
ウィルスクレード及び菌株幅を有するこれらのBNAbは、モノクローナル抗体2F5及び4E10(HIV−1感染個体の不死化B細胞由来)及びZ13el(クレードB−感染個体由来の骨髄RNAを用いて親和性−成熟ファージ提示ライブラリー(affinity-matured phage display library)から選択)を包含し、それぞれはgp41の膜近接外部領域(MPER)を標的にしている(Nelson et al., An affinity enhanced neutralizing antibody against the MPER of human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1) gp41 recognizes an epitope between those of 2F5 and 4E10. J. Virol. 81, 4033-4043)。
MPERは、抗体に接近しやすいが、めったに自然感染の間にBNAbを誘発しない。
る、配列番号1に示される配列上の位置に対応している位置によって定義付けられる。構造的に拘束されたペプチドの配列は配列番号1に記載の配列と、特にHIV MPERド
メインの配列について、合致させることができる。配列アラインメントを実施する方法は当業者に周知である。更に、螺旋内の対応するアミノ酸は、公的に入手可能な多くのコイル検出プログラムを用いて決定できる。配列番号1でもたらされる配列を参照すると、アミノ酸のスタックドカラムは、例えば、次のアミノ酸グループを包含している:Glu−662、Lys−665、Trp−666、Leu669、及びTrp672;Leu−663、Trp−666、Ala−667、及びTrp−670;Asp−664、Ala−667、Ser−668、及びAsn−671;Lys−665、Ser−668、Leu−669、及びTrp−672;Trp−666、Leu−669、及びTrp−670;Ala−667、Trp−670、及びAsn−671;Ser−668、Asn−671、及びTrp−6721;Ile−675、Trp−678、及びTyr−681;Asn−676、Leu−679、及びIle−682;Thr−677、Trp−680、及びLys−683;Ile−675、Trp−678、Trp−679、及びIle−682;Thr−676、Leu−679、Trp−680、及びLys−683;Asn−677、Trp−680、Tyr−681;Trp−678、Tyr−681、Ile−682;Leu−679、Ile−682、及びLys−683;又はこれらの相同体。
相互作用面は、本発明によって提供される螺旋ペプチド上の1つの面の例である。相互作用面内のアミノ酸は、配列番号1上の位置Thr−627、Trp−628、Trp−631、Asp−632、Arg−633、Ile−635、Tyr−638、Ile−642、Leu−645、Ile−646、Ser−649、Gln−650、Gln−652、Gln−653、Glu−654、Lys−655、Asn−656、Glu−657、Glu−659、Leu−660、Glu−662、及びLeu−663に対応するアミノ酸を包含するか、又は配列番号1上の位置Trp−628、Trp−631、Ile−635、Tyr−638、Ile−642、Leu−645、Ser−649、Gln−652、Asn−656、Glu−659、及びLeu−663に対応するアミノ酸に更に限定されてもよい。
組成物は対象の免疫応答を刺激するためのワクチンとして有用である。組成物は単離されて予防及び/又は治療薬剤として用いられる構造的に拘束されたペプチドに対する抗体を作成するためにも用いることができる。抗体は、治療薬剤としてを包含する多くの適用の何れかで使用するために対象又は実験動物から直接単離できる。或いは、モノクローナル抗体を製造するために、対象又は実験動物からB細胞を採取し、骨髄腫細胞のような不死細胞と融合することができる。
%のみであった。従って、合成gp41−由来HR−2ペプチドは溶液中で圧倒的に無秩序であり、生物活性構造の有意な欠失を反映している。
している引例を参照されたい。これらの全ては参照により本明細書に取り込まれている)。gp41及び/又はgp120タンパク質の全長をBNAbsの作成に用いる試みは同様に不成功である。用いた抗原に結合する抗体を同定しても、この抗体は広範囲中和機能を有していない。
本明細書で用いられる、ワクチン組成物中の本発明の構造的に拘束されたペプチドと共に用いるための「アジュバント」は、抗原又は免疫原、或いは担体に結合している抗原又は免疫原と混合したときに、抗体応答を増大するために注入された物質を蓄積又は隔絶することを助ける物質と理解される。アジュバントは、フロインド(Freund's)完全及び不完全アジュバント、CpG−ODN、Imject Alum、Ribiアジュバント、
及び当該技術分野で公知のその他のものを包含する。
ドを用いて産生又は選択される。好ましい実施態様では、BNAbは、本発明の構造的に拘束されたペプチドを用いて産生又は選択され、そして抗体は2F5、Z13el、及び4E10抗体の何れかの対合重鎖及び対合軽鎖を包含していない。一実施態様では、BNAbは、本発明の構造的に拘束されたペプチドを用いて産生又は選択され、そして抗体は2F5、Z13el、及び4E10抗体の何れかの対合重鎖及び対合軽鎖由来の相補性決定領域(CDR)を包含していない。
面は「a」及び「d」位のアミノ酸を包含している(図3を参照されたい)。別の実施態様では、改変ポリペプチドは、Leu−556、Leu−565、Val−570、Gly−572、及びArg−579を有するgp41 HR−1ドメインを含有している(Lu, M., et al., J. Vir, 2001. 75(22); p. 11146-11156)。MPERの必須アミノ酸は
例えば、Trp−672、Phe−673、及びThr−676を包含する(Dawson et al, J Vir, 2006, 80(4), p1680-7)。当然のことながら、ペプチドによって形成される
相互作用面は免疫原としてのペプチドの活性を必要としていない。
ドメインでは、相互作用面は「a」及び「d」位のアミノ酸を包含し(図3)、一方、HIVgp41 HR1ドメインは、例えば、HR−2と相互作用する位置の及びHR1−
HR1相互作用に関わるa及びd位のアミノ酸を包含する(図3を参照されたい)。7個繰り返し及び相互作用面残基を同定する方法は当該技術分野で周知であって本明細書に記載されている。
知であって本明細書に記載されている。一実施態様では、HR−1ドメインは配列番号3〜9に記載の配列と30%又はそれ以上同一のアミノ酸配列を有している。
出によって明らかにされるように、ヒト対象中にHIV抗体、HIV抗原、及び/又はHIV核酸が明らかに存在することと理解される。
X7、X8、X9...を有し、アミノ酸Xがそれぞれの位置において独立して選ばれる場合、X1とX4の間、又はX1とX5の間、又はX1とX8の間の架橋は、X2とX5の間、又はX2とX6の間、又はX2とX9の間等の架橋のように有用である。複数の架橋(例えば2、3、4又はそれ以上)の使用も意図される。複数の架橋の使用は安定化、ペプチドの最適化、特に幾つかのgp41融合ペプチドの場合として、ペプチドの長さを増大するために有効である。従って、本発明は、ポリペプチド配列内に1つ以上の架橋を組み込むことを包含する。複数の架橋の使用は安定化、ペプチドの最適化、特に幾つかのgp41融合ペプチドの場合として、ペプチドの長さを増大するために有効である。従って、本発明は、ポリペプチド配列内に1つ以上の架橋を組み込むことを包含する。
の間隔)複数ラウンド投与が十分な免疫応答の生成に必要であってよい。
細胞は正常動物、形質転換動物、自発的に生じる遺伝子変化を有する動物、並びに/又は遺伝性及び/又は誘発性疾患或いは病気を有している動物から単離できる。
例えば、サハラ以南のアフリカに住んでいる対象、静注薬物乱用者、同性愛の男性、及びその他の個人は、一般住民よりHIV感染及びAIDSに感受性がある。予防は、HIV感染又はAIDSの典型的な発病年齢又はその増大する活性危険性の開始後時間の延長を包含できる。予防は、HIV感染からAIDSへの進行を遅延することも包含する。予防は、HIV感染又はAIDSを予防するための本発明の化合物の投与後に全ての対象におけるHIV感染又はAIDSの進行が除去されることを必要としていない。予防は薬剤又は治療薬の1用量以上の投与を必要とする。
一実施態様では、小分子は天然のアミノ酸及び/又はヌクレオチドのみを含有しているポリペプチド又は核酸を包含しない。
’s Pharmaceutical Sciences (Mack Pub. Co., Easton, PA, 1985) に記載されているような何れかの方法で製造できる。非経口投与のための製剤は、一般的な賦形剤として、例えば、滅菌水又は食塩水、ポリエチレングリコールのようなポリアルキレングリコール、植物起源の油、水素化ナフタレン糖を含有できる。特に、生物適合性、生物分解性のラクチドポリマー、ラクチド/グリコリドコーポリマー、又はポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンコーポリマーは、ある特定の薬剤の放出を調節するために有用な賦形剤である。
記号
一態様では、本発明は、安定化ウィルスα螺旋7個繰り返しドメイン(例えば、HR−1、HR−2、HR様、又はHR類縁体、例えば、配列番号3〜16、26〜40、45〜48、56〜63、及び71〜74、並びに部分的な17〜25、49〜57、64〜70、75〜89に記載の配列)を有している構造的に拘束されたペプチド又はこれらの活性断片;又は少なくとも1つの安定化α螺旋、安定化ねじれ部分、及び安定化310螺旋を有する膜近接外領域(MPER、配列番号17〜25、41〜43、49〜57、64〜70及び75〜89の1部分に記載の配列)又はこれらの活性断片;又はMPER、或いはそれらの少なくとも1つの活性断片に連結している、安定化ウィルスα螺旋7個繰り返し2ドメインを有するペプチド又はこれらの活性断片に関する。
一実施態様では、HR−2 7個繰り返しドメイン部分のカルボキシ(C)末端は、同
じウィルス由来が好ましいが、随意に異なったウィルス由来でもよい、MPER部分のN−末端と結合している。
一実施態様では、MPERに隣接している7個繰り返しドメインα螺旋は、プロリン又はその他の螺旋破壊残基の挿入によってHR/MPER接合部で終結する。この修飾ポリペプチドはHRドメイン及び/又はMPERドメインのキメラを含有していてもよい。適切なウィルスα螺旋7個繰り返しドメイン及びMPERドメインは、細胞接着又は侵入の直接的に又は間接的に関わっている螺旋ドメインを有するウィルスから得ることができる。
適切なパラインフルエンザウィルス7個繰り返し及びMPERドメインは、配列番号7、14、及び94に記載の配列と30%又はそれ以上同一であるものを包含し、α螺旋を形成して、相互作用面のような選択面の少なくとも2つの残基が配列番号7、14、及び94に記載の配列のそれと同一であるか又はその同類置換である。7個繰り返しの面を同定する方法は当該技術分野において周知であって、本明細書に記載さている。
更に、インフルエンザAウィルス(A/Aichi2/68株)の7個繰り返しドメインは、残基379〜436、387〜453、及び380〜456に生じる。同様に、383〜471残基は酸性のpH下で伸張したコイルドコイルであることが Carr 及び Kim
によって示された(Carr and Kim, 1993, Cell 73:823-832)。本発明の方法で用いるた
めのペプチドの配列は配列番号7、14、及び94に記載の配列と30%又はそれ以上同一であるものを包含して、α螺旋を形成する。あるいは、修飾フィロウィルスペプチド7個繰り返しドメインは、面、例えば、相互作用面の残基が配列番号7、14、及び94に記載の配列のそれと同一であるか、又はその同類置換である限り、30%を越えて異なっていてもよい。7個繰り繰り返しの面を同定する方法は当該技術分野で周知であって、本明細書に記載されている。
本発明の修飾ポリペプチドは、HIV−1(配列番号1)由来のgp160のアミノ酸残基638〜673及び626及び662にそれぞれ対応して、
YTSLIHSLIEESQNQQEKNEQELLELDKWASLWNWF 及び
MTWMEWDREINNYTSLIHSLIEESQNQQEKNEQELLE
の(アミノからカルボキシ末端へ読んで)、それぞれ36個及び37個のアミノ酸配列を有している、HR−2ペプチド(配列番号1のアミノ酸638〜661)を包含する。
更に、本発明の修飾ペプチドは、HR−1類縁体に対応するアミノ酸配列を有しているペプチドを包含する。HR−1は強力な抗ウィルス活性を示す38−及び51−アミノ酸のペプチドを包含し、そして配列番号1に記載の配列のHIV−1膜貫通(TM)gp41の、それぞれ残基553〜590及び542〜592に対応する。
MPERペプチドは非エンベロープウィルスによって保存される。多様なHIV株由来のHR−2/MPERドメインの複数配列を図2Cに示す。HIV及びSARS MPE
Rドメインの配列配置も図2Cに示す。MPERは、HR−2螺旋、ねじれ、及び310螺旋ドメインと接続しているα螺旋を包含している構造を有することが可能なアミノ酸配列を有していると特徴付けられている。しかしながら、MPERドメインは感染の過程で実質的な構造変化を受けることが知られている。従って、感染の過程でペプチドが経験する構造変化は、中和抗体、例えば、広範囲中和抗体を作成するのに有用である異なったエピトープを示すことができる。
アミノ酸置換は、保存特性又は非保存特性のものであってよい。保存(同類)アミノ酸置換は、HR−1ペプチド配列の1つ又はそれ以上のアミノ酸を、類似した電荷、大きさ、及び/又は疎水性特性のアミノ酸で置換すること、例えば、グルタミン酸(E)をアスパラギン酸(D)に、アスパラギン酸(D)をアスパラギン(N)に、及びグルタミン酸(E)のグルタミン(Q)にするアミノ酸置換から成っている。非保存(非同類)置換は、HR−1ペプチド配列の1つ又はそれ以上のアミノ酸を、非類似の電荷、大きさ、及び/又は疎水性特性を有するアミノ酸で置換すること、例えば、グルタミン酸(E)をバリン(V)にする置換から成っている。置換は、同類又は非同類の非天然アミノ酸の使用も包含できる。
このような欠失は、ペプチド配列の単一の連続した部分又は1つ以上の分離した部分を含む。そのような欠失によっても抗融合又は抗ウィルス活性を未だに示すペプチドがもたらされる限り、1つ又はそれ以上のこのような欠失を全長の又は切断したHR−1、HR−2、又はMPERペプチドに導入することができる。
上記の全長の及び切断したHR−1、HR−2、又はMPERペプチドの類縁体に対応するペプチドは、他のエンベロープした又は非エンベロープのウィルス中で見い出すことができる。本明細書で用いられる用語「HR−1、HR−2、又はMPER類縁体」は、非HIVウィルス中で、7個繰り返し類縁ドメイン又はMPERドメインを有していると確認又は同定されたペプチドを示す。7個繰り返し類縁ポリペプチドを同定する方法は当該技術分野において公知である。例えば、タンパク質配列及びそれらの構造モデルからコイルドコイルを認識する能力を有する、対合残基相関に基づく生物情報プログラム(例えば、ch.embnet.org/software/COILS_form.htmlのワールドワイドウェブ上)である(参照により本明細書に取り込まれている、Lupas, A., et al. Science 1991. 252: 1162-1164 を参照されたい)。更に、このような修飾ペプチドは抗融合又は抗ウィルス活性を示す
。MPERドメインを同定する方法は当該技術分野において公知であって、本明細書に説明されている基準を用いて実施することができる。
本発明の修飾ポリペプチドは構造的に拘束された(例えば、安定化、架橋化)螺旋及び/又はねじれドメインであり、そして/又は生理的条件から取り出すと生物活性形態を失う天然配列と比較して、ペプチドの構造柔軟性を限定するために天然の及び/又は非天然のアミノ酸を組み込む、天然の(すなわち、野生型又はその他の天然に生じる)配列と比べて1つ又はそれ以上のアミノ酸配列修飾を含有している。ポリペプチドは炭化水素架橋のような少なくとも1つの分子鎖を含有していることが好ましい。炭化水素架橋化は米国特許出願公開第2005/0250680号明細書に記載されていて、これはその全てが参照により本明細書に取り込まれている。
質中の骨格配列によって安定化されて、それが螺旋構造、例えばα螺旋構造の形成及び/又は保持を促進する。文脈から切り離した解釈をすると、α螺旋ペプチドモチーフは、広げることができて、生物活性の損失をもたらす。重要な課題は、その天然のα螺旋構造を促進及び/又は保持を含むα螺旋ペプチドを開発すること、及びタンパク質分解、酸及び熱分解に抵抗できて、インビボで原形を保つ、ペプチドを製造することである。
R3は、アルキル、アルケニル、アルキニル、[R4--K--R4]n(それぞれは0〜6個のR5で置換されている)である。
R4は、アルキル、アルケニル、又はアルキニルである。
R5は、ハロ、アルキル、OR6、N(R6)2、SR6、SOR6、SO2R6、CO2R6、R6、蛍光部分、又は放射性同位元素である。
Kは、O、S、SO、SO2、CO、CO2、CONR6、又は
R6は、H、アルキル、又は治療薬剤である。
nは、1〜4の整数である。
xは、2〜10の整数である。
それぞれのyは独立して、0〜100の整数である。
zは、1〜10(例えば、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10)の整数である。
それぞれのXaaは独立してアミノ酸である。
ある場合は、yが独立して、3と15の間の整数である。
ある場合は、yが独立して、1と15の間の整数である。
ある場合は、R1及びR2がそれぞれ独立して、H又はC1〜C6アルキルである。
ある場合は、R1及びR2がそれぞれ独立して、C1〜C3アルキルである。
ある場合は、少なくとも1つのR1及びR2がメチルである。例えば、R1及びR2の両方がメチルである。
ある場合は、R3がC11アルキルであって、xが6である。
ある場合は、R3がアルケニル(例えば、C8アルケニル)であって、xが3である。
ある場合は、xが6であって、R3がC11アルケニルである。
ある場合は、R3が直鎖のアルキル、アルケニル、又はアルキニルである。
ある場合は、R3が、--CH2--CH2--CH2--CH=CH--CH2--CH2--CH2--である。
8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、45、50、又はそれ以上の連続アミノ酸を含有する。それぞれの[Xaa]yは、7個繰り返し又は7個繰り返し様ドメイン、例えば、HIV−1 HR−1又はHR−2ドメイン、例えば、図5及び6の何れかに示されている
ポリペプチドの少なくとも5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、25又はそれ以上の連続アミノ酸を独立して含有できるペプチドである。[Xaa]Xは、7個繰り返し又は7個繰り返し様ドメイン、例えば、HIV−1 HR−1ドメイン又はHR−2、例えば、配列番号1〜14に記載の配列、
或いは図5又は6のアミノ酸配列を有しているポリペプチドの3又は6連続アミノ酸を含有してよいペプチドである。
〜23又は39〜140に記載の配列のアミノ酸配列を有しているポリペプチドの3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、25、30、35、40、45、又は50連続アミノ酸を含有でき、ここで2、3、又は6個のアミノ酸で隔てられている2個のアミノ酸は、R3を介して結合しているアミノ酸置換基で置換されている。従って、少なくとも2個のアミノ酸は連結アミノ酸又は連結アミノ酸置換基で置換できる。
従って、式(I)を
ドメイン又はHR−2ドメイン;又はMPERドメイン、例えば、配列番号10〜16、26〜40、45〜48、58〜63、及び71〜74に記載のアミノ酸配列、並びに17〜25、49〜57、64〜70、及び75〜140に記載の部分アミノ酸配列を有するポリペプチドの10(11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、30、35、40、45、50、又はそれ以上)連続アミノ酸を含有している架橋ポリペプチドを特徴としていて、ここで2、3、又は6個のアミノ酸で隔てられている2個のアミノ酸のα炭素はR3を介して結合していて、2個のα炭素のうちの1個はR1で置換され、他方はR2で置換され、そしてそれぞれがペプチド結合を介して更なるアミノ酸に結合している。
それぞれのnは独立して、1〜5の整数である。
xは、2、3、又は6である。
それぞれのyは独立して、0〜100の整数である。
zは、1〜10(例えば、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10)の整数である。
それぞれのXaaは独立してアミノ酸である。
R3は、アルキル、アルケニル、アルキニル;[R4--K--R4]n、又は天然アミノ酸の側鎖であり、それぞれは0〜6個のR5で置換されている。
R4は、アルキル、アルケニル、又はアルキニルである。
R5は、ハロ、アルキル、OR6、N(R6)2、SR6、SOR6、SO2R6、CO2R6、R6、蛍光部分、又は放射性同位元素である。
Kは、O、S、SO、SO2、CO、CO2、CONR6、又は
R6は、H、アルキル、又は治療薬剤である。
R7は、アルキル、アルケニル、アルキニル;[R4--K--R4]n、又は天然アミノ酸の側鎖であり、それぞれは0〜6個のR5で置換されている。
nは、1〜4の整数である。
xは、2〜10の整数である。
それぞれのyは独立して、0〜100の整数である。
zは、1〜10(例えば、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10)の整数である。
それぞれのXaaは独立して、アミノ酸である。
は本発明を限定しない。
本発明のペプチドは化学合成方法によって作成することができ、これらは当業者に周知であって本明細書に記載されている。例えば、Fields et al., Chapter 3 in Synthetic Peptides: A User’s Guide, ed. Grant, W. H. Freeman & Co., New York, N.Y., 1992, p. 77 を参照されたい。従って、例えば、Applied Biosystems Peptide Synthesizer Model 430A or 431 又は AAPPTEC multichannel synthesizer APEX 396 上で側鎖保護アミ
ノ酸を用いる、t−Boc或いはF−moc化学の何れかで保護したα−NH2と固相合成の自動化メリフィールド(Merrifield)技術を用いてペプチドを合成できる。
な方法によってペプチドを精製して特徴付ける。
本発明の構造的に拘束されたペプチドの、又は本発明の構造的に拘束されたペプチドに対して産生された抗体の、インビトロ或いはインビボで、又は好ましくは両方で、膜融合を阻害する及び/又は抗ウィルス活性を示す能力を評価する方法が、本明細書に記載されている。特に、このようなアッセイが以下に及び実施例中に記載されている。抗ウィルス活性を評価するための更なるアッセイは当業者に周知である。抗ウィルス活性を確認する方法は本発明を限定しない。
HIVを例にとってみると、無細胞HIVによるCD−4+細胞の感染を阻害するペプチドの又は抗体の能力を試験するために、逆転写酵素(RT)アッセイを用いることができる。このようなアッセイは、適切な濃度(すなわち、組織培養50%感染用量(ID50))のウィルス及びCD−4+細胞を、試験するペプチド又は誘導抗体の存在下で培養することを含有できる。当該技術分野で周知の培養条件を用いる。ペプチド又は抗体を加えていない対照培養に加えて、広範囲濃度のペプチド又は抗体を用いることができる。適切な培養期間(例えば、7日間)培養した後、標準的な手法を用いて無細胞上澄液を調製して、成功裏の感染を測定値としてRT活性の存在について試験する。RT活性は標準的な技術、例えば、Goff et al. (Goff, S. et al., 1981, J. Virol. 38:239-248) 及び/又は Willey et al. (Willey, R. et al., 1988, J. Virol. 62:139-147) に記載されてい
るもの等を用いて試験できる。これらの参考文献はその全てが参照により本明細書に取り込まれている。
記載されているような5−螺旋バンドルアッセイである。
感受性に影響を及ぼさないので(Ray, N., et al., Journal of Virology, 2007. 81(7): p. 3240-3250)、処置にはHIVの耐性株の進展を治療又は阻止できる、異なる構造的
に拘束されたgp41ポリペプチド又はそれを標的とする抗体の組み合わせを包含できることが意図されている。
することができる。例えば、RSVを多種の近交系マウスに経鼻的に投与できる。全ての系の肺の中にウィルスが再現するが、P/N、C57L/N及びDBA/2Nマウスにおいて最も高い力価が得られる。BALB/cマウスの感染は、リンパ球浸潤によって特徴つけられる無症候性細気管支炎及び肺組織の104〜105pfu/gの肺ウィルス力価をもたらす(Taylor, G. et al., 1984, Infect. Immun. 43:649-655)。RSVのコットン(Cotton)ラットモデルも周知である。コットンラットの鼻及び肺にウィルスが高力価で再現するが、あるとしてもごく僅かの炎症の兆候を引き起こす。修飾ウィルス性ペプチドの有効性を評価するための更なるアッセイは当業者に周知であって、例えば、合胞体形成又はウィルス感染の阻害を確認するアッセイを用いることである。
1つ又はそれ以上の本発明の構造的に拘束されたペプチドをHIV感染及びAIDSの予防及び/又は治療のための医薬組成物中で用いることができる。医薬用薬剤の組み合わせは、複雑で危険な疾患、例えば、HIV感染及びAIDS等の治療によく用いられている(プロテアーゼ阻害剤カクテル)。本明細書に提供されている治療及び予防方法は、構造的に拘束されたペプチドの組み合わせを用いて実施でき、これらは耐性の進展を予防するように選択及び組み合わせることができるか、或いは特定の株又は対象に感染しているウィルスの株に基づいて選択及び組み合わせることができる。同様に、ウィルスの高い変異頻度、及び多数の株に起因して、ペプチドの組み合わせはしばしば、ワクチンの製造のために用いられる。例えば、本発明の医薬組成物は、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、又はそれ以上の構造的に拘束されたペプチドを包含できる。構造的に拘束されたペプチドは、他の薬剤、例えば、抗ウィルス剤、ワクチンのアジュバント、DNAワクチンと組み合わせることができる。
例えば、本発明の医薬組成物は、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、又はそれ以上の抗体を包含できる。構造的に拘束されたペプチドに対して産生した抗体は、他の薬剤、例えば、抗ウィルス剤、ワクチンと組み合わせることもできる。
。
カプセル形態における経口投与のために、有用な希釈剤は乳糖及び乾燥トウモロコシ澱粉を包含する。水性懸濁液及び/又は乳剤を経口で投与する場合は、活性成分を油層に懸濁又は溶解でき、これを乳化剤又は懸濁化剤と混合する。所望により、特定の甘味剤及び/又は着香料及び/又は着色剤を添加することができる。
ス及び水を包含する。あるいは、医薬組成物は、担体に懸濁又は分散させた活性化合物を含有している適切なローション又はクリームと製剤化できる。更に別の実施態様では、医薬組成物は膣リングとして製剤化される。適切な担体は、これに限定されないが、鉱物油、モノステアリン酸ソルビタン、ポリソルベート60、セチルエステルワックス、セテアリルアルコール、2−オクチルドデカノール、ベンジルアルコール及び水を包含する。本発明の医薬組成物は、直腸坐薬製剤によって、又は適切な浣腸製剤で下部腸管に局所的に適用することもできる。局所用経皮パッチ及びイオントフォレティック投与も本発明に含まれる。一実施態様では、本発明の化合物を、性感染症、例えば、HIVの予防的治療として、膣内に投与する。
本発明のペプチドは、HIV感染の前及び、感染の初期段階による免疫系が全く未変化(例えば、十分に高いCD+4細胞数)であるか又は抗ウィルス剤での治療が成功しているHIV感染を有している可能性がある対象の両方で、ここにおいて宿主が本発明のペプチドに対して抗体を産生し、次いでウィルス(例えば、HIV、RSV、インフルエンザ、パラインフルエンザ、コロナウィルス、エボラウィルス)を、例えば、更なる感染を阻害し或いはウィルスに感染した細胞を取り除いて、中和するのに役立つ、ワクチンとして用いることができる。予防ワクチンとしての本発明のペプチドの投与は、従って、例えば細胞へ感染するウィルスの能力を阻害して、ウィルスを十分に中和する免疫応答を高めるのに有効な1つ又はそれ以上のペプチドの濃度を宿主に投与することを含んでいる。正確な濃度は投与すべき特定のペプチドによって決まるが、当業者に周知である、免疫応答の進展をアッセイする標準的な技術を用いて確認できる。ワクチンとして用いられるペプチドは通常筋肉内に投与される。しかしながら、抗ウィルスワクチンは、粘液の表面、例えば経口で、膣内に、直腸内に、経鼻で、経肺等でも投与でき、ウィルス侵入の通常部位に粘膜免疫応答を産生する。
本発明は、完成した、包装した、そしてラベル付の医薬品又は実験試薬も包含する。製品は適当な瓶又は容器、例えば、密封されているガラス瓶又はその他の容器などの中に適切な使用説明書を包含している。医薬品は、例えば、第1容器内に単位剤形の本発明化合物、及び第2容器内に無菌水又は注射用アジュバントを含有できる。あるいは、単位剤形は、経口、経皮、経鼻、膣内、子宮頸部リング、又は局所送達に適している固体であってよい。
炭化水素架橋α螺旋ポリペプチドの合成
構造分析と化学合成の組み合わせ戦略を、修飾された、構造的に拘束されたペプチドを構築するために適用した。α,α−ジ置換アミノ酸の不斉合成を既に報告されているように実施した(Schafmeister, C.E., J. Po, and G.L. Verdine, Journal of the American Chemical Society, 2000. 122(24): p. 5891-5892; Walensky, L.D., et al., Science, 2004. 305(5689): p. 1466-1470)。2、3又は6アミノ酸を隣接する分離する位置、
すなわち、それぞれ「i、i+3」、「i、i+4」又は「i、i+7」位置で少なくとも2個の天然アミノ酸をα,α−ジ置換非天然アミノ酸で置換して、修飾ポリペプチド化合物を生成した。
位置a及びdにある残基はN36と直接相互作用するのに対して、残基e及びgは6螺旋バンドルの距離によってN36コアに接触する。残基b、f、及びcはα螺旋の反対面に限局しているので炭化水素架橋(複数も)で置換するために理想的に位置している。MPERドメインにおける炭化水素架橋の位置決めについても同様な選択を行った。
末端部分を別々に合成する。これらのポリペプチド断片は、超酸開裂樹脂上で、固相Fmoc化学及びルテニウム触媒オレフィンメタセシスを用いて生成するべきであり、これはN末端にFmocを有し、及びC末端アミド(C末端断片について)或いは遊離カルボン酸(中央及びN末端断片について)の何れかを有する完全に保護されたペプチドを生じる。これらの完全に保護された断片を逆相高速液体クロマトグラフィーで精製し、次いで、逐次的脱保護、カップリング、及び精製して全長の完全に保護されたポリペプチドを生成する。全体的な脱保護、次いで逆相高速液体クロマトグラフィーによって最終産物が生成し、これはLC/MS質量分析及びアミノ酸分析によって特徴付けられるだろう。
ル/樹脂g)を50ミリモルスケールで用いて、Apex396(Aapptec)自動ペプチ
ドシンセサイザー上でペプチドを産生した。標準的なFmocプロトコルを用いて20%ピペリジン/NMP中の脱保護を2×10分間行い、次いで連続してメタノールとジメチルホルムアミド(DMF)でペア洗浄を実施した。組み込まれた非天然アミノ酸を20%ピペリジン/NMP中で4×10分の培養処理を行って完全な脱保護を達成した。アミノ酸カップリングをFmoc保護化アミノ酸の0.4Mストック液、0.67Mの2−(6−クロロ−1H−ベンソトリアゾール−1−イル)−1,1,3,3−テトラメチルアミニウム・ヘキサフルオロリン酸(HCTU)、及び2MのN,N−ジイソプロピルエチルアミン(DIEA)を用いて実施すると、0.2M活性エステルが1mL(4当量)得られた。カップリング回数及び培養時間は、標準的な残基については2×30分で、オレフィンの非天然アミノ酸については2×45分で、そして非天然アミノ酸に続く残基については3×45分であった。オレフィンメタセシス工程は、最初に樹脂を1,2−ジクロロエタンで膨張させ、次いで1,2−ジクロロメタン(樹脂置換に基づいて0.20モル%)中のビス(トリシクロヘキシルホスフィン)−ベンジリデンルテニウム(IV)ジクロライド(第1世代グラブス触媒)の10mM溶液に2時間暴露する。架橋化反応を2回実施した。次いで、樹脂に結合したペプチドを1,2−ジクロロエタンで3回洗浄して窒素気流下で乾燥する。完成したペプチドを樹脂から開裂して、トリフルオロ酢酸(TFA)に基づく開裂カクテル、例えば、TFA/トリイソプロピルシラン(TIS)/水(95%、2.5%、2.5%)などに暴露して、メチル−tert−ブチルエーテルで沈殿させ、次いで凍結乾燥する。凍結乾燥したSAHBペプチドをC18カラムを用いて逆相HPLCで精製する。化合物を、陽イオンモードで電気スプレーして得られる質量分析を用いる、LC/MSで特徴付ける。定量は、ベックマン(Beckman)6300高性能アミノ
酸分析器上でアミノ酸分析により達成する。
架橋化して修飾したポリペプチドのα螺旋をそれらの非修飾対照物と円偏光二色性によって比較した。Aviv分光偏光計上20℃で、以下の標準測定パラメータを用いて、CDスペクトルを得た:波長、190〜260nm;ステップ分解能(step resolution)
、0.5nm;速度、20nm/秒;累積(accumulations)、10;応答、1秒;帯域
幅、1mm;路長、0.1cm。各ペプチドのα螺旋含量を、平均残基楕円率[θ]222obsをモデル螺旋ペプチドについて報告されている[θ]222obsで割って算出するか(Forood, B., E.J. Feliciano, and K.P. Nambiar, PNAS, 1993. 90(3): p. 838-842; J. Martin Scholtz, Biopolymers, 1991. 31(13): p. 1463-1470; Lawless, M.K., et al., Biochemistry, 1996. 35(42): p. 13697-13708)、或いは、例えば、異なった5つの二次構造比率(螺旋、平行及び逆平行βシート、β回転、及びランダムコイル)を推測するために Brohm によって開発されたCDNNソフトウェアを用いるAvivマシン
を用いて算出した。Protein Engineering, 1992. 5(3); p. 191-195。
細胞及びインビボ検討用に修飾ポリペプチドの活性を最適化するためにハイスループット技術を用いた。例えば、Apex396多チャンネルシンセサイザー(AAPPTEC; Louisville, Kentucky)を生物学的評価のためのポリペプチドライブラリーを作るために用い
た。ポリペプチド化合物を伸張、切断、又は天然及び選択非天然アミノ酸にわたるアミノ酸置換によって多様化して、識別的な架橋局在化を行って所望の生物物理学的及び生物化学的特性を最大化した。ライブラリーは、ハイスループットな固相Fmoc化学及びルテニウム触媒オレフィンメタセシス、並びにペプチド脱保護及び開裂を用いて生成した。ペプチドの精製は、逆相C18HPLCによって実施して生成物をLC/MS質量分析及びアミノ酸分析で特徴付けた。
構造的に拘束されたHIV−1gp41ペプチドの結合活性及び機能的効果を、蛍光偏光、合胞体融合、及びHIV感染性アッセイ(FPA)で評価した。平衡結合定数を、フルオレセインイソチオシアネート(FITC)標識化修飾ポリペプチド及び滴定された組み替え5螺旋バンドルタンパク質を用いる蛍光偏光アッセイで測定した。FPA実験を、BMG Labtech FLUOstar 最適マイクロプレートリーダー又は SpectraMax マイクロプレー
トリーダー(Molecular Devices)、及び GraphPad ソフトウェア(Prism)を用いる非線形回帰分析で測定された解離定数を用いて実施した。最初に Root et al. によって開発
された、組み替え5螺旋バンドルタンパク質は、短いペプチドリンカーによって連結している、gp41ヘアピンの三量体の核を含有する6つの螺旋のうちの5つを含有している(Root, M.J., M.S. Kay, and P.S. Kim, Science, 2001. 291(5505): p. 884-888)。5螺旋バンドルは第3番目のCペプチド螺旋を欠失していて、実験条件下で溶解性で、安定で、そして螺旋性であるので、FITC−修飾ポリペプチドの形態に6番目のCペプチドを組み込むことが、結合活性の直接測定を提供した。この方法で、ペプチド配列、架橋位置、及び架橋数が異なっている修飾ポリペプチドを、構造忠実度に代わるものとして最大結合活性についてスクリーニングすることができ、それによってBNAbを産生する免疫応答の刺激のために選択することができる。結合活性は、5螺旋バンドルをFITC標識化非修飾HIV融合阻害性ペプチドと結合して、次いで非標識化架橋gp41ペプチドを漸増濃度で添加した後、蛍光偏光を測定し、次いで上記のような、非線形回帰分析によってKiを算出する競合アッセイによって間接的に測定することもできる。
1gp41ポリペプチド又はそれを標的とする抗体の存在下でCf2Th−CD4−CCR5/CXCR4細胞に感染させるために用いることができる。48時間後に、細胞を溶解してルシフェラーゼ活性を定量する(Si, Z.H., M. Cayabyab, and J. Sodroski,. Journal of Virology, 2001. 75(9): p. 4208-4218 Si, Z.H., et al., PNAS, 2004. 101(14): p. 5036-5041)。同様な実験を両種性ネズミ白血病ウィルス(AMLV)を用いて実
施して、修飾ポリペプチド又は抗体の非特異的効果の何れかをモニターする。類似した対照アッセイを、本発明の非修飾又は非HIVポリペプチド、或いは対照抗体を用いて実施でき、これは当該技術分野で公知である。
HIV−1gp41構造化ペプチドのインビトロでのタンパク分解を、以下のパラメータを用いてLC/MS(Aglient 1200)で測定した:20μLの注入;0.6mLの流速;10分にわたるの水(0.1%のギ酸)から20〜80%のアセトニトリル(0.075%ギ酸)への勾配からなる15分の実行時間;4分の洗浄から開始勾配条件に戻る、及び0.5分の後時間。DAD信号を8nmの帯域幅で280nmにセットして、MSDは、スキャンモードを一方のチャンネルを(M+2H)/2、+1質量ユニットに、他方を(M+3H)/3、+1質量ユニットにセットした。それぞれのMSD信号の積分は>108カウントの曲線下領域を得た。反応試料は、DMSO(1mMのストック)中の5μLのペプチド、及び2mMのCaCl2を含有している50mMのリン酸緩衝液(pH7.4)からなる195μLの緩衝液で構成されていた。0時間時点で試料を注入した後、50ng/μLキモトリプシン(Sigma)の2μLを添加して、時間をかけて連続注入し
て正常なペプチドの量を定量した。アセチル化トリプトファンカルボキサミドの内部対照を100μM濃度で、各MSDデータ点を正規化するために用いた。時間に対するMSD領域のプロットが指数関数的減衰曲線を生じ、Prism ソフトウェア(GraphPad)を用いる非線回帰分析で半減期を測定した。これらのアッセイは、トリプシン及びペプシンを用いてそれらの適切な緩衝条件において実施することもできた。
ペプチドをマウスの血漿と37℃で培養(5〜10μg)するか、又は雄生C57/BL6マウスの尾静脈内に注射(10、20mg/kg)した。様々な時間間隔(例えば、0.5、1、2、4、8、12時間;各時点当りn=3)で、エクスビボ及びインビボ試料(後眼窩出血によって吸引)を定量のために処理した。エクスビボの血清安定性検討のために、ペプチドの半減期を、Prism ソフトウェア(GraphPad)を用いてプロットされた指数関数的減衰曲線の非線回帰分析で算出した。指示された時点におけるインビボ血漿濃度を、血漿半減期、ピーク血漿濃度、総血漿クリアランス、及び非コンパートメント解析を用いる分布の見掛け容量を算出するために用いた。誘導されたタンパク分解酵素耐性及びPK(薬物動態)プロファィルは、インビボ適用について最も安定な構造化HIV−1gp41ペプチドを選択するための基準として役立つ。提案された中和能を有する構造を繰り返し、機能的な結合活性を保持し、そして安定性試験で分解耐性プロファィルを示すペプチド構築物を、中和免疫原性試験へと進める。
異なった構造化HIV−1gp41ペプチド構築物の、中和抗体4E10、2F5、及びZ13e1(NIH AIDS Research and Reference Reagents Program)に対する相対親和性を直接測定して比較するためにFPAを用いた。抗体を、96ウェルのブラックコスター(black Costar)プレート中で結合緩衝液(50mMのTris、pH7.4、100mMのNaCl)中に連続希釈した後、FITC誘導体化されたペプチド(25nM)を添加した。結合活性が安定化するまで経時的に3通りの試料の結合等温線をモニタリングして平衡時間を最初に確認した。蛍光偏光(mPユニット)をBMG POLARstar Optima 又
は SpectraMax プレートリーダー(Moleculer Devices)上で測定し、そして Prism ソフトウェア(GraphPad)を用いて用量応答曲線の非線形回帰分析でKd値を算出した。対照MPERペプチドであるFITC−
ELDKWASLWNWFNITNWLWYIK−NH2 と結合している4E10抗体
のFPAを図12に示す。
一定濃度のビオチン化ペプチド及び4E10−IgGを可変濃度のgp41ペプチドと共に用い、競合的酵素結合アッセイ(ELISA)によって半数最大阻害濃度(IC50)を測定した。マイクロウェルを、4℃で1晩ニュートラアビジン(4μg/ml)を含有している50μLのPBSでコーティングした。ウェルを0.05%のツイーン20を含有しているPBSで2回洗浄して、PBS中の4%脱脂粉乳(NFDM)で45分間37℃でブロックした。一方、ビオチン化4E10ペプチドエピトープ、ビオチン−PEG2−
ELDKWASLWNWFNITNWLWYIK、(20nM)、IgG4E10(0.2nM)、及び競合ペプチド類縁体(10μMから始まる3倍希釈系列)の混合物を0.4%のNFDM、0.02%のツイーン及びPBS中で、別の96ウェルプレートで2時間37℃で培養した。ブロックしたプレートを洗浄した後、4E10、ビオチン化ペプチド及び競合構造化HIV−1gp41ペプチドの混合物をウェルに添加した。室温で20分後、ウェルを5回洗浄して、1:500希釈のヒツジ抗ヒトIgG F(ab’)2、ペルオキシダーゼ抱合体を添加した。室温で40分間培養した後、ウェルを5回洗浄して、製造会社の指示に従って50μlのテトラメチルベンジジン(TMB)溶液を添加して展開した。20分後、TMB溶液を含有しているウェルに50μlのH2SO4(2M)を添加して停止させて、450nmにおける吸光度をマイクロプレートリーダー(Molecular Devices)上で読み取った。半最大シグナル(IC50)に対応する競合ペプチドの
濃度を GraphPad Prism を用いて得られる結合曲線の内挿によって確認した。それぞれのペプチド競合体を、少なくとも2つの異なる実験で2通り試験した。
HIV−1感染性アッセイを公知の方法(Madani et al., 2007 Inhibition of human immunodeficiency virus envelope glycoprotein- mediated single cell lysis by low-molecular-weight antagonists of viral entry. J Virol, 81: 532-538;及び Si et al., 2001 Envelope glycoprotein determinants of neutralization resistance in a simian-human immunodeficiency virus (SHIV-HXBc2P 3.2) derived by passage in monkeys. J Virol, 75:4208-4218; 両者は参照により本明細書に取り込まれている)を用いて実施した。すなわち、HEK239T細胞を、HIV−1Gag−Polパッケージングタンパク質を発現するpCMVΔP1ΔenvpAプラスミド、エンベロープグリコタンパク質(例えば、HXBc2、ADA、HXBc2P3.2、YU2 HIV−1単離体又は対照A−MLVウィルス)を発現するプラスミド、及び蛍ルシフェラーゼレポーター遺伝子を含有しているベクター(DNA比1:1:3μg)で同時にトランスフェクトした。
トランスフェクト後24〜30時間にウィルスを含有している上澄液を採取し、ろ過し、等分して、−80℃で保存した。標的細胞を感染前24時間に6×103の密度で96ウェルプレートに蒔種した。Cf2Th−CD4−CCR5細胞を、ADA、YU2、及びA−MLVエンベロープグリコタンパク質を有するウィルスによる感染に用い、そしてCf2Th−CD4−CXCR4細胞をHXBc2、HXBc2P3.2、及びA−MLVのために用いた。感染の日に構造化ペプチド(0〜3μM)を組み替えウィルス(10,000RTユニット)に最終容量50μLで添加して、37℃で30分間培養した。次いで、培地を取り出して、標的細胞をウィルス−ペプチド混合物と37℃で48時間培養した。再び培地を取り出し、細胞を30μLの受動溶解緩衝液(Promega)及び3回の凍結
−解凍サイクルで溶解した。次いで、D−ルシフェリン(ルシフェリン緩衝液100μLに1mM保存したもの50μL)を各ウェルに添加し、ルシノメータ(EG&G Berthold)
を用いてルシフェラーゼ活性を測定した。
構造的に拘束されたgp41ペプチドをタンパク質担体(例えば、KLH)と結合させた後、ウサギを免疫化し、抗血清を採取して、ELISAによる免疫原性試験を行った。
所定の構造的に拘束されたgp41構築物に対して、非修飾テンプレートペプチド及び3種の代替的に結合している架橋類縁体を、中和免疫原性検討で比較する。第1日目に、前採血(〜5mL、血清)してすぐに、免疫原当り2兎のNZW雌性ウサギ(6〜8週齢)に一次筋肉内(IM)注射(フロインド完全、CpG−ODN、又はRibi アジュバント
と共に250μg)を、その後IMブースト(対応するアジュバント共に100μg)を21、42、63、84、及び105日目に、そして52、73、94、及び112日目に産生血液の採取を行う。特異的抗体産生力価をモニターリング及び比較するためにそれぞれの産生採血について直接ELISAアッセイを行う。すなわち、96ウェルのマイクロタイタープレートを個々のgp41免疫原(5μg/mL)で1晩4℃でコーティングする。ウェルを0.05%のツイーン20を含有しているPBSで2回洗浄して、37℃で45分間3%BSAでブロックする。次いで、ウサギ抗血清の連続希釈を3通りのプレートに添加して、37℃で2時間培養する。3回洗浄した後、PBS/1%BSA中のアルカリホスファターゼで標識したヒツジ抗ウサギIgGの1:500希釈液を加えて、プレートを室温で40分間培養する。ウェルを洗浄し、アルカリホスファターゼ基質に30分間暴露して、マイクロプレートリーダーによって405nmで分析する。
構造的に拘束されたgp41ペプチドによって誘発された高力価抗体の中和応答を評価するために、抗血清を中和アッセイで評価する。単一ラウンドの感染アッセイについて、Env−偽型ウィルス(pSG3ΔEnv骨格で皮膜されているgp160)のストックを239T細胞のトランスフェクションによって作成して、公知の方法を用いてTZM−bl細胞中で滴定する(Li et al. 2005. Human immunodeficiency virus type 1 env clones from acute and early subtype B infections for standardized assessments of vaccine-elicited neutralizing antibodies. J Virol, 79:10108-10125; Montefiori, 2005. Evaluating neutralizing antibodies against HIV, SIV, and SHIV in luciferase reporter gene assays. Curr Protoc Immunol, Chapter 12, Unit 12.11;両方は参照に
より、本明細書に取り込まれている)。ウィルス(200TCID50)を総容量150μLで3通りの血清試料の連続3倍希釈液と、96ウェル平底培養プレート中、37℃で1時間培養する。新たにトリプシン処理した細胞(75μg/mLのDEAEデキストランを含有している生育培地の100μL中に10,000細胞)を各ウェルに添加する。
バックグラウンド対照のウェルは細胞のみを中に入れているのに対して、陽性対照ウェルは血清なしの細胞とウィルスを中に入れている。48時間培養した後、100μLの細胞を、Britelite Luminescence Reporter Gene Assay System (Perkin Elmer) を用いる蛍
光測定のために、96ウェルのブラックコスタープレートに移す。中和は、免疫前血清の存在下でウィルスによって誘発されるルシフェラーゼ活性と比較した、ウサギ抗血清の存在下でのルシフェラーゼ活性の減少パーセントとして算出する。特異性対照として、ウィルスの添加前に、抗血清を30μg/mLのペプチド免疫原と37℃で1時間培養して、ペプチド吸着による抗血清反応停止に起因する中和の減少パーセントを記載の通りに算出する(Vaine et al. 2008. Improved induction of antibodies against key neutralizing epitopes by human immunodeficiency virus type 1 gp120 DNA prime-protein boost vaccination compared to gp120 protein-only vaccination. J Virol, 82: 7369-7378
)。
構造化HIV−1gp41ペプチドの直接N末端結合(例えば、導入したシステインのチオールを介して)に加えて、炭化水素架橋のオレフィン誘導体化を実施して、構築物の提案された「中和面」を外に向けて、タンパク質又は脂質複合体(例えば、KLH14、ウシ血清アルブミン、コレラ毒素、ミセル)に対して隠れている非中和面を保持できるようにする(図14)。最初にオレフィンをジヒドロキシル化するために触媒的に四酸化オスミウムを用いた後、塩化チオニル又はカルボニルジイミダゾールを用いて環化した。次いで、求電子的な環状亜流酸塩又は炭酸塩をアジ化ナトリウムと反応させて、これをホスフィンを用いてアミンに還元する。次いで、チオールを導入する二官能性試薬3−チオプロピオン酸による反応を、担体(例えば、マレイミド−KLH)を結合するために用いる。別のアプローチとして、ペプチドを、中和抗体の認識を促進できる、脂質膜に関連して存在させることができる。例えば、ペプチドは1,3−ジパルミトイル−グリセロ−2−ホスホエタノールアミンに特異的に結合でき、これは次いでドデシルホスホコリン(CPC)と結合して免疫原連結ミセルを生成する。
欠失すると、HIV−1を中和するのに不十分なMPERペプチド結合活性を残存できる。従って、脂質機能性をMPERペプチドに組み込んで中和免疫原性を増強することができる。脂質特性を本発明者らの合成MPER抗原設計に導入するために、(1)MPERペプチドの1,3−ジパルミトイル−グリセロ−2−ホシホエタノールアミンへの特異的な結合、次いでこれをドデシルホスホコリン(DPC)と結合して免疫原連結ミセルを生成すること、(2)MPERペプチドのC末端へのミリストイル化リジン及びその他のリポペプチド複合体の組み込み、(3)疎水性及び脂質部分として炭化水素架橋自体を拡張すること[例えば、(S)−2−(4’−ペンテニル)アラニン及び(R)−2−(4’−オクテニル)アラニンを用いて11−炭素鎖(i,i+7)架橋を組み込んで誘導体化する]、及び(4)脂質−NTA−Ni−含有リポソームに結合するために、ヘキサ−ヒスチジンモチーフをSAH−MPER構築物のC末端に組み込んでMPER被覆リポソームを生成すること(図18B〜D)を包含する、幾つかの化学的手法を実施する。それぞれの場合に、SAH−MPERペプチドは脂質機能性に関連して存在していて、4E10に類似した特徴を有して抗体を引き出すように設計されている。
フルオレセイン化ペプチド(25nM)をHIV−1gp41HR−1及びHR−2ドメイン(又はRSV中の対応する配列)から誘導した5−螺旋タンパク質と示された濃度で、室温の結合緩衝液(50mMのリン酸ナトリウム、100mMのNaCl、pH7.5)中で培養した。
10分における結合活性を、POLARstar OPTIMA マイクロプレートリーダー(BMG Labtech)を用いる蛍光偏光で測定した。結合アッセイは3通りに実施して、Prism ソフトウェ
ア(GraphPad)を用いて結合等温線の非線形回帰分析によってKDsを確認した。
(R)−プロリン及びKOHのイソプロパノール溶液を調製し、そこに塩化ベンジルを加えて室温で3時間撹拌した。酸性を高めると収率89%で沈殿が単離できた。生成物を氷冷した塩化メチレンに溶解し、反応混合物に塩化チオニル及び2−アミノベンゾフェノンを加えて、10時間を超えて撹拌して室温まで温めた。塩基性を高めると収率81%で(R)−2−[N−(N’−ベンジルプロピル)アミノ]ベンゾフェノン(BPB)が得られた。KOHのMeOH溶液を、MeOH中のBPB、Ni(NO3)2−6H2O、アラニン混合物に、撹拌下、不活性ガス雰囲気下、40℃で滴下した。得られた混合物を2時間撹拌して、酸性を高めるとAla−Ni(II)−BPB−複合体が収率91%で得られた。(Tetrahedron:Asymmetry 9(1998) 4249-4252)
処理した後、(R)−(2’−プロペニル)アラニンをFmoc−OSuで保護すると、(R)−Fmoc−(2’−プロペニル)アラニンが93%の収率で得られた(2工程)。(Tetrahedron 56(2000)2577-2582)
HIVgp41−HR−2ペプチドの生物化学的特性を改善するために、T649vペプチドを切断して残基626〜645からなる20−merを得た(図4)。切断型安定化α螺旋(Stabilized Alpha Helix;SAH)−gp41化合物、SAH−gp41(626〜645)(A)、を高収率で成功裏に合成した。競合CDスペクトルの分析は、SAH−gp41(626〜645)(A)化合物について、その非架橋対応物と比較して、α螺旋含有量の著しい増大を明らかにした(48%対20%)。HIV合胞体形成アッセイにおける化合物の評価は、その非架橋誘導体と比較して、SAH−gp41(626〜645)(A)の著しく増大した阻害活性を明らかにした。従って、T649vの残基の40%を越える消去にもかかわらず、炭化水素架橋されたペプチドは、α螺旋性が殆ど無くて限られた抗合胞活性を有している20−mer gp41切断型を、有意な構造安
定性及び強力な抗合胞活性(IC90〜100nM)を有するα螺旋化合物に成功裏に変換した。
SAH−gp41ペプチドの活性を最適化するために、全長gp41−HR−2構築物に1つ又はそれ以上の炭化水素架橋を挿入することに基づく別の戦略を実行した(図10A及び10B)。非修飾エンフビルチド及びT649vはpH7の水性溶液中で、20%未満のα螺旋性を示し、主に非構造化体であった。架橋化誘導体の全ては、最大4.7倍の構造安定化を有し、相対的に増大したα螺旋含量を示した。1つ或いは2つの炭化水素架橋の挿入は一貫して円二色性スペクトルを、主に204nmに一重最大値を有するランダムコイルパターンから208及び22nmに二重最大値を有するα螺旋曲線に変換した。ペプチドテンプレート選択のために、一重C末端架橋は、一重N末端架橋より高度のα螺旋安定化をもたらした。選択した二重架橋SAH−gp41化合物は、N及びC末端一重架橋ペプチドの中間にあるα螺旋構造の増強を示した。ペプチドα螺旋性の増強はpH2で同様に観察され、そして多くの場合は、SAH−gp41化合物はpH7におけるより、pH2において更により螺旋性であった(図14も参照されたい)。
化合物 pH2における螺旋性% pH7における螺旋性%
SAH-gp41(626-662) 37 13
SAH-gp41(626-662)(F) 82 63
SAH-gp41(626-662)(C、F) 55 41
SAH-gp41(638-673) 49 19
SAH-gp41(638-673)(D) 79 23
SAH-gp41(638-673)(F) 57 30
SAH-gp41(638-673)(G) 61 48
SAH-gp41(638-673)(H) 66 26
SAH−gp41ペプチドの熱変性に対する耐性を評価するために、1〜91℃の温度範囲にわたって円二色性試験を実施した。HIV−1融合阻害ペプチドの選択した一重及び二重架橋は、91℃においてでさえ最大2.3倍のα螺旋性の増強を維持している、卓越した熱耐性であったα螺旋安定化をもたらしたことが観察された。
ペプチドの治療剤としての主な限界は、急速なタンパク質分解に対するそれらの感受性である。生物学的に活性なペプチド、エンフビチルドなどは、例えば、冗長で、広げられていて、プロテアーゼ部位が豊富であって特に脆弱である。ペプチドのα螺旋性を強化する共有結合架橋戦略の1つの重要な利点は、脆弱のアミノ結合をタンパク質分解から遮蔽することである。タンパク分解酵素は、ペプチドがアミドを加水分解するために伸張した配座をとることを必要としているので、炭化水素架橋によって生じる構造的な拘束は架橋したペプチドにタンパク分解酵素耐性をもたらすことができる。炭化水素架橋、特に二重架橋が36〜37merHIV−1融合ペプチドをタンパク質分解から保護できるか否かを確認するために、エンフビルチド、T649v、及びSAH−gp41ペプチドをインビトロでタンパク分解酵素に直接暴露した。特に架橋したペプチドに挑戦するために、gp41Hr−2ペプチドを、SAH−gp41(638〜673)については9〜11位そしてSAH−gp41(626〜662)については7位を含む、多数のコンセンサス開裂部位を開裂できるキモトリプシンを選択した。
化合物 半減期(分)
SAH−gp41(626−662) 14
SAH−gp41(626−662)(F) 102
SAH−gp41(626−662)(A) 79
SAH−gp41(626−662)(A、F) 301
SAH−gp41(626−662)(B、F) 1275
SAH−gp41(626−662)(C、F) 494
SAH−gp41(626−662)(D、F) 181
SAH−gp41(638−673) 15
SAH−gp41(638−673)(D) 32
SAH−gp41(638−673)(F) 21
SAH−gp41(638−673)(G) 128
SAH−gp41(638−673)(H) 201
SAH−gp41(638−673)(D、H) 510
SAH−gp41(638−673)(D、G) 1710
SAH−gp41(638−673)(F、H) 132
SAH−gp41(638−673)(D、F) 652
SAH−gp41(638−673)(E、G) 483
化合物 半減期(分)
SAH−gp41(626−662) 11
SAH−gp41(626−662)(F) 129
SAH−gp41(626−662)(A) 118
SAH−gp41(626−662)(A、F) 2040
SAH−gp41(626−662)(B、F) 930
SAH−gp41(638−673) 4
SAH−gp41(638−673)(D) 3
SAH−gp41(638−673)(G) 227
SAH−gp41(638−673)(D、G) 3320
SAH−gp41(638−673)(F、H) 920
雄生C57/BL6マウスに二重架橋SAH−gp41(626〜662)(A、F)或いは対応する非修飾ペプチドのどちらかの10mg/kgを静脈内投与又は経口強制投与した。30分時点に後眼窩出血によって採血した血液試料を、LC/MSによる血液検査を用いて定量した。血液中で測定したSAH−gp41(626〜662)(A、F)の濃度は、対応する非修飾ペプチドの測定濃度より6倍を越えて高かった。連続採血に基づく非コンパーティメント薬理学的分析は、エンフビルチドと比較して、SAH−gp41の10倍増大した曲線下面積を明らかにした。顕著に、経口投与後30分に、無傷のSAH−gp41(626〜662)(A、F)が血液中に測定可能濃度及び用量応答性濃度で検出されたのに対して、非修飾ペプチドは検出不能であった。両方のAUCは増大してクリアランスは約10倍減少した。
i、i+3架橋及び/又はi、i+4架橋を包含しているMPERペプチドを、ELISAアッセイによって、gp41ペプチドへの結合について競合する能力を試験した。図21Aに示したように、i、i+3架橋ペプチドは、類似した位置に架橋されている(例えば、配列番号136と配列番号135を比較されたい)i、i+4架橋ペプチドより、より効果的に結合について競合したが、両方の架橋誘導体は野生型MPERペプチドより優れていた。図21A及びBに示したi、i+3架橋及びi、i+4架橋の両方を含有しているペプチドを用いて更なる検討を実施した。これらの検討は、i、i+3架橋及びi、i+4架橋の両方を包含しているペプチドを用いる効果的な競合を明らかにした。
gp41による融合阻害活性に対する炭化水素架橋の機能的影響を評価するために、ルシフェラーゼに基づくHIV−1感染性アッセイで、SAH−gp41ペプチドを試験して、それらの非修飾対照物と比較した。3つの異なったHIV−1株、HXBc2、ADA、及びHXBc2P3.2由来のエンベロープグリコタンパク質を有する組み替えHIV−1、及び両種性ネズミ白血病ウィルス(A−MLV)エンベロープグリコタンパク質を有する陰性対照ウィルスを評価した。エンフビルチドと比較して、SAH−gp41(638−673)(D)及びSAH−gp41(638−673)(D、H)は3つのHIV−1株の全てにわたり3〜15倍増強された阻害活性を示した(図15)。エンフビルチドのC−末端上流11残基を終端させている37アミノ酸断片を包含しているHR−2ペプチド(図10A)である、T649vは、これらのアッセイでエンフビルチドより有意に高い抗HIV−1活性を示す。T649vに基づく架橋ペプチドの間の異なった抗ウィルス能を立証するために、初期R5耐性分離株(YU2)由来のエンベロープグリコタンパク質を有するウィルスに対して化合物をスクリーニングした。T649vと比較すると、SAH−gp41(626−662)(A)、SAH−gp41(626−662)(F)、及びSAH−gp41(626−662)(A、F)は増強した抗−YU2活性を明らかにした(図16B)。
R−1ペプチドとの相互作用を示さなかったのに対して、FITC−T649v及びFITC−SAH−gp41(626−662)(A、F)はそれぞれの突然変異HR1ペプチドと高次複合体を形成した(図16C〜E)。蛍光スキャン及び対応する濃度分析で明らかなように、FITC−SAH−gp41(626−662)(A、F)は、FTIC−T649vと比較して結合活性が最大2倍までも増大して、二重突然変異HR1ペプチドに効果的に結合した。対応するgp41HR1突然変異を有するHIV−1HXBc2エンベロープ構築物を用いる感染性アッセイにおいて、エンフビルチドは再び機能活性を示さなかったのに対して、T649v及びSAH−gp41(626−662)(A、F)はHIV感染性を用量応答的に抑制した(図16F〜G)。天然PAGE結合分析と一致して、SAH−gp41(626−662)(A、F)は、ヒトにおけるエンフビルチド活性を一様に無効にする変異に打ち勝って、T649vの1.5〜2.8倍の改善を示して、ウィルス感染を効果的に妨害した。
上記の方法を用いるFPAを実施して、gp41の明確な安定化抗原構造(SAS−gp41)構築物の中和抗体4E10、2F5、及びZ13el(NIH AIDS Research and Reference Reagent Program)に対する相対的親和性を直接測定して比較した。蛍光偏光
(mP単位)をBMG POLARstar Optima or SpectraMax プレートリーダー (Molecular Devices) 上で測定して、Kd値をPrism ソフトウェア(Graphpad)を用いて用量応答曲線の非線形回帰分析によって算出した。対照MPERペプチドFITC−ELDKWASLWNWFNITNWLWYIK−NH2に結合している4E10抗体のFPA分析の結果を図20に示す。
図7、10、及び12に示されているような、ペプチドを含有している構造的に拘束されたMPERドメインを上記のように、合成して、多種の方法を用いて分析した。構造的に拘束されたペプチドは、皆無かそれに近い螺旋構造を示す天然のペプチドと比較すると、α螺旋又は310螺旋のどちらかの螺旋構造を、ペプチドの適切な位置に有する傾向がより高い。構造的に拘束されたMPERペプチドは、競合的抗体結合ELISAアッセイで明らかにされたように、1つ又はそれ以上のBNAb、例えば2F5,Z13el、及び4E10などに対するより高い相対的親和性も有している(図21〜22)。
効果的なMPERに基づく免疫原を開発するための炭化水素架橋の適用は、中和能力のある構造の合成的再構築に依存している。そのようなものとして、SAS−gp41ペプチドの構造(複数も)を特徴つける多種の手法は、円二色性、X線結晶学、及び核磁気共鳴分光法を包含する。
正確なペプチド濃度が確認されたら、cm2/dmol/残基の単位で平均残基楕円率[θ]を式、[θ]=ミリ度/モル濃度/アミノ酸残基の数 から誘導する。平均残基楕円率に変換した後、式、螺旋%=100×[θ]222/max[θ]222(ここで、max[θ]222=−40,000×[1−(2.5/アミノ酸残基の数]である)を用いてα螺旋%を算出することができる。我々の分光計とセットになっている曲線適合CDDNソフトウェアを用いて、α螺旋、平行及び非平行βシート、β回転及びランダムコイルを包含する二次構造の相対比も算出した。
S−gp41ペプチドの結晶化条件は、Phoenix 結晶化ロボットを用いて組み立てた96ウェル蒸気拡散(sitting-drop)プレート(Crystal Quick, Hampton Research)を用いて
スクリーニングする。初期条件は、 HT Index Screen (Hampton Research)、JSCG+ Suite (Qiagen) 及び Pro-Complex Suite (Qiagen) を包含する。pH及び塩の変動並びに界面活性剤の濃度を含む、最適合に近いもののスクリーニングを、結晶生育の最適条件を決定するために実施する。結晶は、生成すると、取り出し、結晶化緩衝液で洗浄して、質量分析にかけて結晶内にペプチドが存在していることを確認する。次いで結晶を抗凍結剤に浸し、瞬間凍結して液体窒素中で保存する。適切な結晶をArgonne National Laboratory シンクロトロン施設で実験する。分子置換によって相を得た後、データ分析及び精密化を行う(Phaser, Phenix, and Coots ソフトウェア)。Fab/SAS−gp41の共複合体も公開されている条件(Cardoso, R. M. et al. Immunity, 2005. 22L p. 163-173; Ofek et al. J Virol, 2004. 78: p 10724-10737)に基づいて最初にスリーニングして同様な方法で試験できる。
AS−gp41ペプチドのスペクトルは、z−シールドグラジエント及び三重共鳴クリオプローブを備えたBruker Avance DRX 上600MHZで得られる。二次元のDQF−COSY、TOCSY、及びNOESYスペクトルを100%D2O及び90%H2O/10%D2O中で測定する。TOCSYデータセットは、40及び80分の混合時間で、NOESYスペクトルは、75、100、125、及び200分の混合時間で得られる。NMRデータセットはNMRPipeスペクトル分析パッケージで処理して、プロトン共鳴の割り当てはCara を用いて実施する。構造計算は標準的なプロトコールを用いるプログラ
ムCYANAで実施する。最終構造群は、最も低い標的機能、及びプログラムWHATCHECK及びPROCHECK_NMRを用いて測定したキラリティー及び立体化学に関して最も優れた総合値を有している、20の構造からなっている。構造はプログラムPYMOL及びMOLMOLを用いて表示及び分析する。
構造的に拘束されたgp41ペプチド、とりわけ結合アッセイにおいて、及び/又はウィルス融合及び感染性阻害検討において最も有効であると確認されたもの、をワクチン接種用の医薬製剤(例えば、担体タンパク質と組合せてアジュバントと共に投与される)を作成するために用いた。注射による投与(例えば、アジュバントと共に)、又は粘膜表面に投与のための製剤を従来の方法を用いて調製した。ワクチン接種前及び最初のワクチン接種後適切な間隔で、そして免疫原性試験のための追加免疫のワクチン接種の後に、動物から採血した。この方法のフローチャートが図6及び19Aに示される。血清を調製して1つ又はそれ以上の構造的に拘束されたペプチドに特異的に結合する抗体の存在について試験した。
最大力価は15,000未満でピークに達して、第4回接種後2週間である、14週まででさえ達成できなかった。これらのデータは、gp41HR2ドメインの天然α螺旋配座を反映する、SAH−HR2の形態が、相対的に構造化されていない野生型HR2ペプチドで免疫付与された後に検出できなかったことを示唆している。SAH−HR2−KLH応答が、gp41モチーフ自体ではなく炭化水素架橋の認識に由来する結果であるということを排除するために、SAH−HR2−KLH由来抗血清が野生型HR2ペプチドを認識するか否かをELISAアッセイで試験した。実際に、SAH−HR2−KLH由来抗体の野生型HR2ペプチドによる交差免疫反応性が存在して、SAH−HR2−KLHによって誘発された応答がgp41ペプチド配列に特異的であったことを提示した(図19C)。4580〜547000範囲の最大力価が、第4回接種の2週間後である、14週目までに達成された。SAH−HR2−KLHで免役した動物のうち2匹に関しては、その力価は、野生型HR2−KLHで免役したウサギ由来の最大力価さえ越えて、野生型HR2認識を達成した。従って本発明者らのウサギ免疫付与検討は、その天然の三次元形態内にペプチドモチーフを固定している構造化抗原が、より強力な抗体応答を生じさせるばかりではなく、この構造安定化なしに、得られる抗血清が天然gp41構造を本質的に認識できないことを示唆している。
B細胞をBNAbを産生する動物から採取でき、ハイブリドーマ細胞株を公知の方法を用いて産生できる。個々の細胞を同様にクローン化してBNAb活性を有するモノクローナル抗体を更に特徴付けることができる。
HIV感染の動物モデルを、(1)SAS−gp41ペプチドワクチン及び(2)SAS−gp41免疫付加に由来するBNab及び抗体産生の、感染の予防、抑制、或いは除去における治療有効性を評価するために用いた。このような動物モデル及び有効性検討の設計、実行並びに分析は当該技術分野で周知であって、HIV−1に感染したヒト化Rag2−/−ガンマc−/−(RAG−hu)マウス(Choudhary, S.K et al J Virol, 2009. Epub June 3; Berges et al. Retrovirol, 2006. 3: p 76)及びSIVに感染しているアカゲザル(Keele, B.F. et al. J Exp Med, 2009, 206: p 1117-1134; Gardner, M.B. et al J Med Primatol, 1989. 18: p. 321-328; Gardner, M.B. Adv Exp Med Biol, 1989. 251: 279-293; Ruprecht, R.M. Methods Mol Biol, 2009. 525: 559-566)の使用を
包含している。アカゲザルとヒトの間の密接な進化類似性によって、これらは、アカゲザル伝染性類似サル免疫不全ウィルス(SIV)及び著名な日和見感染疾患モデルのその他の例を臨床適用に用いる、ヒト免疫不全ウィルス(HIV)感染の免疫学を検討するために、特に適した動物モデルになる。特に、SIVとHIVの両者は、CD4タンパク質を一次受容体としてそしてケモカイン受容体を細胞侵入のコレセプターとして用いる霊長類のレンチウィルスである。SIVによる感染の後、殆どのアカゲザルはHIV誘発AIDSに類似した疾患を発症する;従って最近、アカゲザルのSIV感染はヒトHIV感染に対する最善の動物モデルであると考えられている。アカゲザルはSIV接種を用いるHIV/AIDSワクチン開発の前臨床標準と考えられている。ワクチン接種又は受動免疫療法用のBNabの開発のための主要なSAS−gp41抗原を、連邦規格及び承認された臨床試験プロトコール(例えば、Harro, C.D. et al, AIDS Res Hum Retroviruses, 2009. 25: p. 103-114; Gudmundsdotter, L. et al. Vaccine, 2009. May 29 epub ahead of print)に従ってヒト試験へ進めることができるだろう。
図23A〜Bは、i、i+4架橋を含有している典型的な炭化水素架橋RSV HR2
ドメインペプチド(A)及びFITC−SAH−RSVペプチド及び組み替えRSV5螺旋バンドルを用いる蛍光偏光結合分析の結果(B)を示す。これは、配列のどちらかの端の特定位置に架橋を加えても、重要な6螺旋バンドル形成を妨害しないことを裏付けている。実際に、架橋が、FITC−SAH−RSV及び5螺旋バンドルタンパク質の融合原性6螺旋バンドルに結合する能力を増大するものと考えられる。
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Claims (19)
- 6α−螺旋バンドルモチーフを有するウィルスのHR−2ドメイン由来及び/又はMPERドメイン由来のアミノ酸配列を含む構造的に拘束されたペプチドであって、
少なくとも下記の(1)〜(4)から選択されたいずれかのアミノ酸配列を含有しており、
(1)626〜673の領域又はその部分領域に対応するアミノ酸配列であって、626〜662の領域又は638〜673の領域に対応するアミノ酸配列を含み、かつ当該領域内の629と633(A)、632と636(B)、636と640(C)、640と644(D)、647と651(E)、653と657(F)、664と668(G)、666と670(H)、642と646(I)、654と658(J)、658と662(K)、630と634(A’)もしくは652と656(F’s)の少なくともいずれかの(i,i+4)の位置において炭化水素架橋されているアミノ酸配列、
(2)626〜662の領域の部分領域に対応するアミノ酸配列であって、626〜645の領域に対応するアミノ酸配列を含み、かつ当該領域内の少なくとも629と633(A)の(i,i+4)の位置において炭化水素架橋されているアミノ酸配列、
(3)662〜683の領域又はその部分領域に対応するアミノ酸配列であって、662〜681の領域に対応するアミノ酸配列を含み、かつ当該領域内の667と671、666と670、665と669、664と668、663と667、662と666、674と678、670と674、もしくは678と682の少なくともいずれかの(i,i+4)の位置、又は同680と683、679と682、678と681、677と680、676と679、675と678、もしくは674と677の少なくともいずれかの(i,i+3)の位置において炭化水素架橋されているアミノ酸配列、
(4)662〜683の領域の部分領域に対応するアミノ酸配列であって、671〜683の領域に対応するアミノ酸配列を含み、かつ当該領域内の少なくとも678と681の(i,i+3)の位置において炭化水素架橋がなされているアミノ酸配列、
ここで、前記HR−2ドメインとは、配列番号1に示されるHIVgp−160のアミノ酸配列の626〜661の領域に対応するアミノ酸配列からなる領域であり、前記MPERドメインとは、同662〜683の領域に対応するアミノ酸配列からなる領域であると定義される、
構造的に拘束されたペプチド。 - 前記(1)のアミノ酸配列が、626〜662の領域に対応するアミノ酸配列を含み、かつ当該領域内の629と633(A)もしくは653と657(F)の少なくともいずれかの(i,i+4)の位置において炭化水素架橋されているアミノ酸配列である、請求項1に記載の構造的に拘束されたペプチド。
- 前記(1)のアミノ酸配列が、638〜673の領域に対応するアミノ酸配列を含み、かつ当該領域内の640と644(D)及び666と670(H)の少なくともいずれかの(i,i+4)の位置において炭化水素架橋されているアミノ酸配列である、請求項1に記載の構造的に拘束されたペプチド。
- 前記(1)〜(4)から選択されたアミノ酸配列からなる領域が、前記1箇所の炭化水素架橋に加え、さらに他の(i,i+3)もしくは(i,i+4)の位置において炭化水素架橋されていることを特徴とする、請求項1〜3のいずれかに記載の構造的に拘束されたペプチド。
- 前記(3)で選択されたアミノ酸配列からなる領域が、(i,i+3)及び(i,i+4)の両方の位置において炭化水素架橋されていることを特徴とする、請求項4に記載の構造的に拘束されたペプチド。
- 前記(4)で選択されたアミノ酸配列のC末端に1以上のリジン(K)残基が付加されたアミノ酸配列を含有することを特徴とする、請求項1に記載の構造的に拘束されたペプチド。
- 前記炭化水素架橋の少なくとも1箇所がR3−S6対合、R6−S3対合、R3−S5対合及びR5−S3対合よりなる群から選ばれる対合を含有してなる、請求項1〜6のいずれかに記載の構造的に拘束されたペプチド。
- 前記ウィルスが、HIV−1もしくはその変異株,SIV又はRSVから選択されたウィルスである、請求項1に記載の構造的に拘束されたペプチド。
- 前記(1)のアミノ酸配列が、配列番号46〜48,50〜57,58〜63,64〜70,71〜74、141〜146に示されたいずれかのアミノ酸配列を含有してなる、請求項1〜8のいずれかに記載の構造的に拘束されたペプチド。
- 前記(2)のアミノ酸配列が、配列番号27のアミノ酸配列を含有してなる、請求項1〜8のいずれかに記載の構造的に拘束されたペプチド。
- 前記(3)のアミノ酸配列が、配列番号75〜89,90〜97,101〜105,135〜136に示されたいずれかのアミノ酸配列を含有してなる、請求項1〜8のいずれかに記載の構造的に拘束されたペプチド。
- 前記(4)のアミノ酸配列が、配列番号98〜100,138〜140に示されたいずれかのアミノ酸配列を含有してなる、請求項1〜8のいずれかに記載の構造的に拘束されたペプチド。
- 前記構造的に拘束されたペプチドが、前記HR−2ドメイン由来配列を含有する構造的に拘束されたペプチドと共に、前記MPERドメイン由来配列を含有する構造的に拘束されたペプチドのいずれをも含有しており、かつ、前者のC末側に後者が結合された構造を有していることを特徴とする、請求項1〜12の何れか一項に記載の構造的に拘束されたペプチド。
- 請求項1〜13の何れか一項に記載の構造的に拘束されたペプチドが、担体タンパク質と機能的に結合していることを特徴とする融合タンパク質。
- 請求項1〜13の何れか一項に記載の構造的に拘束されたペプチド又は請求項14に記載の融合タンパク質を含有する医薬組成物。
- 請求項1〜13の何れか一項に記載の構造的に拘束されたペプチド又は請求項14に記載の融合タンパク質を、免疫応答を促進するのに有効な用量で対象(ヒトを除く)に投与することを含有してなる、請求項1〜13の何れか一項に記載の構造的に拘束されたペプチドの何れかと特異的に結合する抗体を製造する方法。
- 請求項1〜13の何れか一項に記載の構造的に拘束されたペプチド又は、請求項14に記載の融合タンパク質を含有してなる、ウィルス感染の予防、改善又は治療のための医薬組成物。
- ウィルス感染がHIV感染を含有してなる、請求項17に記載の医薬組成物。
- 医薬組成物が、ウィルス融合又はウィルス感染性を阻害又は抑制する、請求項17又は18に記載の医薬組成物。
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