JP5885266B2 - 結合系 - Google Patents
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Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
- G01N33/54353—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals with ligand attached to the carrier via a chemical coupling agent
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K17/00—Carrier-bound or immobilised peptides; Preparation thereof
- C07K17/14—Peptides being immobilised on, or in, an inorganic carrier
Description
・合成基材を提供するステップと、
・金属イオンが標的分子と錯体化されない形で、基材と結合すべく金属イオンを提供するステップと、
・標的分子の不在下で金属イオンを基材と接触させることにより、基材が金属イオンの配位部位に結合された配位錯体を形成するステップと、
・基材との配位錯体中の金属イオンの実質的にすべてがオリゴマー金属錯体の形態をとるように、基材の存在下で金属イオンからオリゴマー金属錯体を形成するステップと、
を含み、それにより、標的分子を上に固定化すべく基材を適合化する。
・金属イオンが標的分子と錯体化されない形で、基材と結合すべく金属イオンを提供するステップと、
・金属イオンの実質的にすべてがオリゴマー金属錯体の形態をとるように、基材の不在下で金属イオンからオリゴマー金属錯体を形成するステップと、
・標的分子の不在下でオリゴマー金属錯体を基材と接触させることにより、基材がオリゴマー金属錯体の金属イオンの配位部位に結合された配位錯体を形成するステップと、
を含み、それにより、標的分子を上に固定化すべく基材を適合化する。
・合成基材およびその上に固定化される標的分子を提供するステップと、
・金属イオンの実質的にすべてがオリゴマー金属錯体の形態で提供される形で、基材および標的分子と結合可能な金属イオンを提供するステップと、
・オリゴマー金属錯体を標的分子および基材と接触させることにより、基材および標的分子が、オリゴマー金属錯体の金属イオンの配位部位に結合された、かつオリゴマー金属錯体が、標的分子を基材と連結させるように配置された、配位錯体を形成するステップと、
を含み、それにより、基材上に標的分子を固定化する、合成基材上に標的分子を固定化する方法を提供する。
・標的分子を上に固定化すべく合成基材を提供するステップと、
・金属イオンの実質的にすべてがオリゴマー金属錯体の形態で提供される形で、基材および標的分子と結合可能な金属イオンを提供するステップと、
・オリゴマー金属錯体を基材と接触させることにより、基材がオリゴマー金属錯体の金属イオンの配位部位に結合された配位錯体を形成するステップと、
を含み、それにより、標的分子を上に固定化すべく前記基材を適合化する、標的分子を上に固定化すべく合成基材を適合化する方法を提供する。
・合成基材およびその上に固定化される標的分子を提供するステップと、
・オリゴマー金属錯体およびモノマー金属錯体の形態の金属イオンの形で、基材および標的分子と結合可能な金属イオンを提供するステップと、
・オリゴマー金属錯体が標的分子および基材と優先的に結合する条件下で金属錯体を標的分子および基材と接触させることにより、基材および標的分子が、オリゴマー金属錯体の金属イオンの配位部位に結合された、かつオリゴマー金属錯体が、標的分子を基材と連結させるように配置された、配位錯体を形成するステップと、
を含み、それにより、基材上に標的分子を固定化する、標的分子を合成基材上に固定化する方法を提供する。
・合成基材を提供するステップと、
・金属イオンが標的分子と錯体化されない形で、基材と結合すべく金属イオンを提供するステップと、
・標的分子の不在下で金属イオンを基材と接触させることにより、基材が金属イオンの配位部位に結合された配位錯体を形成するステップと、
・基材との配位錯体中の金属イオンの実質的にすべてがオリゴマー金属錯体の形態をとるように、基材の存在下で金属イオンからオリゴマー金属錯体を形成するステップと、
を含み、それにより、標的分子を上に固定化すべく基材を適合化する。
・金属イオンが標的分子と錯体化されない形で、基材と結合すべく金属イオンを提供するステップと、
・金属イオンの実質的にすべてがオリゴマー金属錯体の形態をとるように、基材の不在下で金属イオンからオリゴマー金属錯体を形成するステップと、
・標的分子の不在下でオリゴマー金属錯体を基材と接触させることにより、基材がオリゴマー金属錯体の金属イオンの配位部位に結合された配位錯体を形成するステップと、
を含み、それにより、標的分子を上に固定化すべく基材を適合化する。
・金属イオンの実質的にすべてがオリゴマー金属錯体の形態をとる形で、基材および標的分子と結合可能な配位部位を有する金属イオン
を含む、標的分子を基材上に固定化するための組成物を提供する。
・金属イオンの実質的にすべてがオリゴマー金属錯体の形態で提供される形で、基材および標的分子に結合される配位部位を有する金属イオン
を含む、サンプル中のアナライトを検出するための合成基材を提供する。
・以上に記載されるかつ標的分子を上に固定化して有する基材を提供するステップと、
・標的分子がアナライトに結合する条件で、基材をアナライトの存在または不在が決定されるサンプルと接触させるステップと、
・標的分子がアナライトに結合したかを決定するステップと、
を含み、それにより、サンプルがアナライトを含有するかを決定する、サンプルがアナライトを含有するかを決定する方法を提供する。
・金属イオンの実質的にすべてがオリゴマー金属錯体の形態をとる形で、基材および標的分子と結合可能な配位部位を有する金属イオン
を含む、標的分子を基材上に固定化するためのキットを提供する。
モノマークロムイオンを用いたビーズ基材上への標的分子の結合を、0%のモノマー形を含有するオリゴマークロム錯体の一例と比較した。
簡潔に述べると、過塩素酸クロム六水和物(2.3g)を50mLの精製水に溶解させ、すべての固体が溶解するまで十分に混合した。Beckman Coulter ProteomeLab PA800キャピラリー電気泳動(CE)装置およびその推奨プロトコルを用いて、この溶液が2.1のpHを有し約99%のモノマーであることを見いだした。
ビス(3−アミノプロピル)ジエチルアミンを有する過塩素酸クロム。
ProMagカルボキシル末端磁気ビーズ(Cat.No.PMC3N/9080)は、Bangs,IN,USAから供給された。ビーズを準備するために、室温に達するようにしてビーズを30秒間撹拌し、次いで、さらに60秒間超音波処理する。2×50μLのビーズ濃縮液を2×1.7mLのマイクロチューブ中に分配する。チューブを磁気ラック上に1分間配置して、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。ビーズペレットにチューブごとに50μLのそれぞれのクロム溶液を添加する。回転させながら室温で1時間放置する。
ローターからクロム活性化Bangs ProMagビーズを採取し、懸濁液を30秒間撹拌する。チューブを磁気ラック上に1分間配置して、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。各チューブに50μlの50mM MES緩衝液(pH5.2)を添加する。撹拌、上清除去、およびMES添加をさらに2回繰り返す。上清除去後、50mM MES中の50μlの1.0mg/ml Fc特異的ヤギ抗マウスポリクローナル抗体(Lampire Biological,Cat.No.7455527,USA)をビーズペレットに添加する。ビーズ溶液を30秒間撹拌する。回転させながらチューブを室温で1時間インキュベートする。
以下の手順に従って磁気ビーズ上で抗体負荷アッセイを行った。簡潔に述べると、材料および方法は、記載のとおりである。
抗体カップリングビーズ。
検出抗体: マウスIgG−FITC(2mgs/ml、Jackson,USA)
洗浄緩衝液: 10mM PBS、pH7.4、0.05%Tween20含有
アッセイ緩衝液: 10mM PBS、pH7.4、1%BSA、0.05%Tween20含有
マイクロプレート: 96ウェルMillipore0.42μmフィルタープレート(Millipore,USA)
2.5μlの各ビーズサンプルを45μlのアッセイ緩衝液中に希釈する。少なくとも30秒間撹拌した後、40μlの懸濁液を除去し、760μlのアッセイ緩衝液中に再希釈する。10μg/mlの使用濃度になるようにマウスIgG−FITC検出抗体をアッセイ緩衝液中に希釈する。希釈ビーズ懸濁液を少なくとも30秒間撹拌した後、100μlの抗体被覆ビーズをウェルに添加する。真空濾過装置を用いてビーズ溶液をウェルから除去する。50μlの検出抗体を適切なウェルに添加した後、暗所でプレート振盪機上で室温で60分間インキュベートする。真空濾過装置を用いて検出抗体溶液をウェルから除去する。200μlの洗浄緩衝液をプレートの各ウェルに添加し、プレートをプレート振盪機上に30秒間配置する。200μlの上清をウェルから除去する。200μlの洗浄緩衝液を各ウェルに添加し、FACS Canto II(BD Biosciences,USA)でビーズの読取りを行う。
モノマークロムイオンを用いて磁気ビーズに結合されたヤギ抗マウス抗体をオリゴマークロムイオンの場合と比較したところ、マウス抗体に結合する能力は非常に異なることがわかった。同一条件下で、オリゴマー配合物は、マウス抗体への結合が5倍であった(図2参照)。アミン添加剤は、2つの可能な作用機構によりオリゴマー化を開始しうる。特定的には、潜在的金属イオン間架橋を可能にしうる4つのアミノ基がビス(3−アミノプロピル)ジエチルアミン錯体中に存在する。さらに、4.3のpHは、金属イオン間の加水分解性結合の形成を可能にしうる。
a. クロムのダイマーおよびトリマーの分画
Spiccia,L.,Marty W and Giovanoli,R.Hydrolytic Trimer of Chromium(III).Synthesis through Chromite Cleavage and Use in the Preparation of the”Active”Trimer Hydroxide,Inorganic Chemistry,1988,27,2660−2666、およびStunzi,H.and Marty,W.Early Stages of the Hydrolysis of Chromium(IIl)in Aqueous Solution.1.Characterization of a Tetrameric Species,Inorganic Chemistry,1983,22,2145−2150に記載の手順に従って、クロムのダイマー、トリマー、および他のオリゴマーを分画した。
ビーズを準備するために、室温に達するようにしてビーズを20秒間撹拌し、次いで、さらに20秒間超音波処理する。ビーズは、単一の単分散粒子として懸濁させなければならない。いずれの凝集体ビーズが観測された場合にも、凝集体が観測されなくなるまで、撹拌および超音波処理を繰り返す。100μLのビーズ濃縮液を1.7mLマイクロチューブ中に分配する。ビーズ溶液を14,000rpmで3分間遠心分離し、その後、チューブを取り出し、それを軽く叩いてチューブの側面のビーズを取り除き、次いで、さらに5分間遠心分離する。ビーズペレットから上清を注意深く除去し廃棄する。ビーズペレットにカラムから溶出した100μLのクロムオリゴマー溶液を添加する。添加、超音波処理、および撹拌の後、ときどき攪拌しながら懸濁液を60分間放置する。この時点後、ビーズを脱イオン水中で3回洗浄する。
50mM酢酸緩衝液(pH5.0)中の100μg/mLの濃度のTSH捕捉抗体(OEM Concepts抗体、クローン#057−11003)を使用した。遠心沈降により上清のないプラグにした250μLのクロム被覆ビーズに250μLの抗体溶液を添加した。溶液を撹拌し、超音波処理し、そしてときどき攪拌しながら1時間放置した。溶液を150mM生理食塩水で1回洗浄した。アッセイを行う前、0.05%のアジドを含有する4℃の生理食塩水中に抗体カップリングビーズを貯蔵した。
推奨Luminex手順を用いて、抗TSHモノクローナル抗体(OEM Concepts抗体、クローン#057−11003)をLuminex xMAPマイクロスフェアにカップリングした。ビーズを室温に達するようにし、20秒間撹拌し、次いで、さらに20秒間超音波処理した。ビーズは、単一の単分散粒子として懸濁させなければならない。いずれの凝集体ビーズが観測された場合にも、凝集体が観測されなくなるまで、撹拌および超音波処理を繰り返す。100μLのビーズ濃縮液を1.7mLマイクロチューブ中に分配する。ビーズ溶液を14,000rpmで3分間遠心分離し、その後、チューブを取り出し、それを軽く叩いてチューブの側面のビーズを取り除き、次いで、さらに5分間遠心分離する。ビーズペレットから上清を注意深く除去し廃棄する。0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液pH6.3を用いて洗浄手順を繰り返す。
Luminex手順に従って、多重化ビーズ上でTSHアッセイを行った。簡潔に述べると、材料および方法は、記載のとおりである。
抗体カップリングビーズ: 10μLの濃縮液を590μLのアッセイ緩衝液に添加する。
検出抗体: EZ−リンク−スルホ−NHS−LC−ビオチン(Pierce)を用いて、検出抗TSHモノクローナル抗体(Medix Biochemica抗体、クローン#5403)をビオチン化した。使用溶液は、1%のBSAを含有する10mM PBS中20μg/mLであった。
1%のBSAを含有する10mM PBS中にTSH標準液を調製した。
ストレプトアビジン−R−フィコエリトリン: 1%のBSAを含有する10mM PBS中20μg/mL
洗浄緩衝液: 1%のBSAを含有する10mM PBS
アッセイ緩衝液: 4%のBSAを含有する10mM PBS
100μLの洗浄緩衝液を各ウェル中に配置し、徐々にウェルを空にするのに十分な真空を適用することにより、フィルタープレートをあらかじめ湿潤させる。20μLのTSH標準液を適切なマイクロリットルウェルに添加する。アッセイ緩衝液をゼロ(0uIU/ml)ウェルに添加する。10μLの希釈ビーズ混合物を適切なマイクロタイターウェルに添加する。暗所で室温で500rpmでフィルタープレートを1時間振盪し、次いで、20μLの抗TSH検出抗体溶液を適切なマイクロタイターウェルに添加する。暗所で室温で500rpmでフィルタープレートを30分間振盪し、次いで、20μLの希釈ストレプトアビジン−R−フィコエリトリン溶液を適切なマイクロタイターウェルに添加する。暗所で室温で500rpmでフィルタープレートを15分間振盪する。徐々にウェルを空にするのに十分な真空を適用することにより、溶液をウェルから除去する。100μLの洗浄緩衝液を各ウェル中に添加し、そして徐々にウェルを空にするのに十分な真空を適用する。洗浄手順を繰り返し、次いで、100μLの洗浄緩衝液を各ウェルに添加し、そして60秒間振盪する。プレートをLuminex XYP(商標)プラットフォーム中に装填し、読取りを行う。
表2に示されるように、異なるクロム種を用いて抗TSH抗体をLuminexビーズに結合させた場合、TSHアッセイの結果は顕著に異なる。モノマークロムイオンの場合のシグナルがより劣っていることから、抗体の結合が劣っているかまたはオリゴマー種が抗体上の異なる部位に結合してTSH抗原に対するその結合能力が変化しているかのいずれかが示唆される。
a. 異なるクロム溶液の形成。
クロムオリゴマー溶液(30%のモノマーを含有する)。簡潔に述べると、過塩素酸クロム六水和物(2.3g)を25mLの精製水に溶解させ、すべての固体が溶解するまで十分に混合した。同様に、190μlのエチレンジアミン溶液を25mLの精製水に添加した。溶液を組み合わせて、室温で一晩撹拌した。CEによれば、この溶液は約30%のモノマーを含有し、pHは約pH3.0で安定化される。脱イオン水で希釈することにより、100mMおよび10mMの両方の溶液を調製した。
Ademtechカルボキシル末端磁気ビーズ(Cat.No.0215)は、Ademtech,Fra.から供給された。ビーズを準備するために、室温に達するようにしてビーズを30秒間撹拌し、ビーズを再懸濁させる。200μlのストック懸濁液(10mgのマイクロスフェア)を1.5mlマイクロ遠心チューブに取り出す。チューブを磁気分離器上に少なくとも60秒間配置し、マイクロスフェアペレットを擾乱しないように注意して、Ademtech MasterBeads溶液を除去し廃棄する。磁気分離器からチューブを取り出して、マイクロスフェアを1.0mlの脱イオン水中に再懸濁させる。30秒間撹拌することによりマイクロスフェアを再懸濁させ、個別のチューブ中に4×250μlで分配する。チューブを磁気分離器上に少なくとも60秒間配置し、マイクロスフェアを洗浄溶液から完全に分離させる。マイクロスフェアペレットを擾乱しないように注意して、洗浄溶液を除去し廃棄する。
ローターからクロム活性化Ademtechビーズを採取し、懸濁液を30秒間撹拌する。チューブを磁気分離器上に少なくとも60秒間配置し、クロム活性化Ademtechビーズを溶液から完全に分離させる。マイクロスフェアペレットを擾乱しないように注意して、溶液を除去し廃棄する。チューブを磁気分離器から取り出し、0.01%のTween20を含有する250μlの脱イオン水中にマイクロスフェアを30秒間再懸濁させる。チューブを磁気分離器上に少なくとも60秒間配置し、ビーズを溶液から完全に分離させる。チューブを磁気分離器から取り出す。洗浄手順をもう1回繰り返す。
以下の手順に従って磁気ビーズ上で抗体負荷アッセイを行った。簡潔に述べると、材料および方法は、記載のとおりである。
抗体カップリングビーズ
検出抗体: マウス抗ウサギIgG−HRP(0.8mg/ml、Jackson,USA)
洗浄緩衝液: 10mM PBS、pH7.4、0.05%Tween20含有
アッセイ緩衝液: 10mM PBS、pH7.4、1%BSA、0.05%Tween20含有
マイクロプレート: 96ウェルポリプロピレン白色プレートU字形(BioScience,Germany)
Adem−Mag96プレートマグネット(Ademtech,France)
PS−atto−基材(Lumigen,USA)
10μlの各ビーズサンプルを90μlのアッセイ緩衝液中に希釈する。少なくとも30秒間撹拌した後、50μlの懸濁液を除去し、950μlのアッセイ緩衝液中に再希釈する。1.56ng/mlの使用濃度になるようにマウス抗ウサギIgG−HRP検出抗体をアッセイ緩衝液中に希釈する。希釈ビーズ懸濁液を少なくとも30秒間撹拌した後、50μlの抗体被覆ビーズをウェルに添加する。プレートをプレートマグネット上に5分間放置した後、ビーズ溶液をウェルから除去する。50μlの検出抗体を適切なウェルに添加した後、暗所でプレート振盪機上で室温で60分間インキュベートする。プレートマグネットを用いて検出抗体溶液をウェルから除去する。200μlの洗浄緩衝液をプレートの各ウェルに添加し、プレートをプレート振盪機上に30秒間配置する。200μlの上清をウェルから除去する。この洗浄をもう一度繰り返す。100μlのPS−attoを各ウェルに添加する。ルミネセンス法を用いたFLUOstar(BMG LABTECH,Germany)でビーズの読取りを行う。
異なるオリゴマー組成物は、基材に異なる特性を与える。pH3の10mMおよび100mMの過塩素酸クロム/エチレンジアミン錯体は両方とも、Brown運動の消失を伴ってビーズの凝集を引き起こした(図3および4参照)。同様に、pH4の100mM過塩素酸クロム/エチレンジアミン錯体もまた、Brown運動の消失を伴ってビーズの凝集を引き起こした(図5参照)。しかしながら、pH4の10mM濃度(CEによれば約10%のモノマーを含有する配合物)は、観察可能な凝集を示さず、未修飾ビーズに匹敵する十分なBrown運動を維持した(図6参照)。これらの実施例では、マウス抗ウサギ抗体−HRPを捕捉するヤギ抗マウス(GAM)ポリクローナル抗体の結合能力に差がなかったことから(図7参照)、pH4へのpH調整は、GAMカップリング反応に有害な影響を及ぼさなかったことが示唆される。
1つの特定のクロム塩および配位子を維持したまま、クロムオリゴマー表面への標的分子の結合に後続的に影響を及ぼす可能性がある異なる配位子濃度の影響を評価した。他の磁気ビーズを用いて過塩素酸クロム−エチレンジアミンを試験することにより、異なるエチレンジアミン濃度の影響を例示された。抗体結合は、負荷アッセイにより決定されるように配位子濃度によって変化しうる。
過塩素酸クロム六水和物(3×1.15g)を3×25mLの精製水中に溶解させ、すべての固体が溶解するまでバイアルを十分に振盪する。67、134、および167.5μlのエチレンジアミン溶液を3つのクロム溶液に添加する。添加時に沈殿を生じるであろう。得られた溶液をプラットフォームミキサー上で48時間振盪する。沈殿が観測されないことが望ましい。もし残留沈殿があれば、溶液の遠心分離および上清の保持により除去されたい。
BcMagカルボキシル末端磁気ビーズ(Cat.No.FB−101)はBioclone(CA,USA)から供給された。ビーズを準備するために、室温に達するようにしてビーズを30秒間撹拌し、次いで、さらに60秒間超音波処理する。ビーズは、単一の単分散粒子として懸濁させなければならない。いずれの凝集体ビーズが観測された場合にも、凝集体が観測されなくなるまで、撹拌および超音波処理を繰り返す。50μLのビーズ濃縮液を1.7mLマイクロチューブ中に分配する。すべてのチューブを磁気ラック上に1分間配置して、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。ビーズペレットに50μLの異なるクロム溶液(それぞれ、タイプX、Y、およびZで表される)を添加し、チューブを30秒間撹拌し、次いで、ときどき攪拌しながら懸濁液を60分間放置する。
ローターからクロム活性化BcMagビーズを採取し、懸濁液を30秒間撹拌する。12.5μlの各タイプの活性化ビーズを他のチューブ中に分注する。チューブを磁気ラック上に1分間配置して、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。チューブのビーズペレットに50μLの50mM MES緩衝液を添加する。撹拌し、mES緩衝液洗浄をさららに2回繰り返す。上清除去後、50μlの500μg/ml Fc特異的ヤギ抗マウスポリクローナル抗体(Lampire Biological,USA)を添加し、懸濁液を30秒間撹拌し、次いで、ときどき攪拌しながら懸濁液を60分間放置する懸濁液を30秒間撹拌した後、すべてのチューブを磁気ラック上に1分間配置して、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。チューブのビーズペレットに50μLの150mM生理食塩水を0.025%のProclin300溶液と共に添加する。撹拌し、生理食塩水溶液中で洗浄をさらに2回繰り返す。
ローターからクロム活性化BcMagビーズを採取し、懸濁液を30秒間撹拌する。12.5μlの各タイプの活性化ビーズを他のチューブ中に分注する。チューブを磁気ラック上に1分間配置して、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。チューブのビーズペレットに50μLの50mM MES緩衝液を添加する。撹拌し、MES緩衝液洗浄をさらに2回繰り返す。上清除去後、50μlの500μg/ml 3A1−マウスモノクローナル抗体(Agen,Australia)を添加し、懸濁液を30秒間撹拌し、次いで、ときどき攪拌しながら懸濁液を60分間放置する。懸濁液を30秒間撹拌した後、すべてのチューブを磁気ラック上に1分間配置して、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。チューブのビーズペレットに50μLの150mM生理食塩水を0.025%のProclin300溶液と共に添加する。撹拌し、生理食塩水溶液中で洗浄をさらに2回繰り返す。
以下の手順に従って磁気ビーズ上で抗体負荷アッセイを行った。簡潔に述べると、材料および方法は、記載のとおりである。
抗体カップリングビーズ
検出抗体: ヤギ抗マウスIgG−R−フィコエリトリン(250μg ml、Sigma,USA)。
マウスIgG−FITC(2mgs/ml、Jackson,USA)
洗浄緩衝液: 10mM PBS、pH7.4、0.05%Tween20含有
アッセイ緩衝液: 10mM PBS、pH7.4、1%BSA、0.05%Tween20含有
マイクロプレート: PP白色、U形態(Greinerbio,USA)
2.5μlの各ビーズサンプルを60μlのアッセイ緩衝液中に希釈する。少なくとも60秒間撹拌した後、20μlの懸濁液を除去し、480μlのアッセイ緩衝液中に再希釈する。20μg/mlの使用濃度になるようにマウスIgG−FITC検出抗体をアッセイ緩衝液中に希釈する。1μg/mlの使用濃度になるようにヤギ抗マウスIgG−RPE検出抗体をアッセイ緩衝液中に希釈する。
図8に示されるように、マウスモノクローナル抗体−フルオレセインを捕捉するヤギ抗マウス(GAM)ポリクローナル抗体の結合能力は、GAM抗体を基材に結合するために使用されるクロムオリゴマー混合物が異なると変化する(それぞれ、タイプX、Y、およびZで表される)。
a. 異なるクロムオリゴマーの形成。
エチレンジアミンを有する過塩素酸クロム。
簡潔に述べると、過塩素酸クロム六水和物(2.3g)を25mLの精製水に溶解させ、すべての固体が溶解するまで十分に混合した。同様に、190μlのエチレンジアミン溶液を25mLの精製水に添加した。溶液を組み合わせて、室温で一晩撹拌した。CEによれば、この溶液は、ビス(3−アミノプロピル)ジエチルアミンと共に30%のモノマー過塩素酸クロムを含有する。pHは、2.3であった。
ProMagカルボキシル末端磁気ビーズ(Cat.No.PMC3N/9080)は、Bangs,IN,USAから供給された。ビーズを準備するために、室温に達するようにしてビーズを30秒間撹拌し、次いで、さらに60秒間超音波処理する。2×550μLのビーズ濃縮液を2×1.7mLのマイクロチューブ中に分配する。チューブを磁気ラック上に1分間配置して、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。ビーズペレットにチューブごとに550μLのそれぞれのクロムオリゴマー溶液を添加する。回転させながら室温で1時間放置する。
ローターからクロムオリゴマー活性化Bangs ProMagビーズを採取し、懸濁液を30秒間撹拌する。チューブを磁気ラック上に1分間配置して、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。各チューブに550μlの50mM MES緩衝液(pH5.2)を添加する。撹拌、上清除去、およびMES添加をさらに2回繰り返す。上清除去後、50mM MES中の550μlの1mg/ml Fc特異的ヤギ抗マウスポリクローナル抗体(Lampire Biological,Cat.No.7455527,USA)をビーズペレットに添加する。ビーズ溶液を30秒間撹拌する。回転させながらチューブを室温で1時間インキュベートする。
以下の手順に従って磁気ビーズ上で抗体負荷アッセイを行った。簡潔に述べると、材料および方法は、記載のとおりである。
抗体カップリングビーズ。
検出抗体: マウスIgG−FITC(2mgs/ml、Jackson,USA)
洗浄緩衝液: 10mM PBS、pH7.4、0.05%Tween20含有
アッセイ緩衝液: 10mM PBS、pH7.4、1%BSA、0.05%Tween20含有
マイクロプレート: 96ウェルMillipore0.42μmフィルタープレート(Millipore,USA)
2.5μlの各ビーズサンプルを50μlのアッセイ緩衝液中に希釈する。少なくとも30秒間撹拌した後、10μlの懸濁液を除去し、490μlのアッセイ緩衝液中に再希釈する。10μg/mlの使用濃度になるようにマウスIgG−FITC検出抗体をアッセイ緩衝液中に希釈する。希釈ビーズ懸濁液を少なくとも30秒間撹拌した後、50μlの抗体被覆ビーズをウェルに添加する。真空濾過装置を用いてビーズ溶液をウェルから除去する。50μlの検出抗体を適切なウェルに添加した後、暗所でプレート振盪機上で室温で60分間インキュベートする。真空濾過装置を用いて検出抗体溶液をウェルから除去する。200μlの洗浄緩衝液をプレートの各ウェルに添加し、プレートをプレート振盪機上に30秒間配置する。200μlの上清をウェルから除去する。100μlの洗浄緩衝液を各ウェルに添加し、FACS Canto II(BD Biosciences,USA)でビーズの読取りを行う。
図10に示されるように、同一のモル濃度で異なる配位子を用いると、異なるオリゴマー錯体が形成され、マウスモノクローナル抗体−フルオレセインを捕捉するヤギ抗マウス(GAM)ポリクローナル抗体の結合能力が変化する。
錯体中の電子供与条件の変化の影響ならびに標的分子結合およびその性能に及ぼすその後続的影響を調べるためのモデルとして、金属−基材錯体中に約30%のモノマー成分を有する配合物を使用した。MES緩衝液pH5.2とMES緩衝液pH7との比較により、異なる洗浄緩衝液の影響を例示した。表面結合クロムオリゴマーへの抗体結合は、負荷アッセイにより決定されるように、洗浄緩衝液pHの選択によって変化しうる。
約30%のモノマー成分を有する、過塩素酸クロムとエチレンジアミンとの錯体(実施例5a参照)を使用した。
M−270カルボキシル末端磁気ビーズ(Cat.No.143.16D)は、Dynal,IN,Norwayから供給された。ビーズを準備するために、室温に達するようにしてビーズを30秒間撹拌し、次いで、さらに60秒間超音波処理する。2×140μLのビーズ濃縮液を2×1.7mLマイクロチューブ中に分配する。チューブを磁気ラック上に1分間配置して、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。ビーズペレットに420μLの過塩素酸クロム/エチレンジアミン溶液を添加する。回転させながら室温で1時間放置する。
上清除去後、50mM MES(pH5.2またはpH7.0)中の50μlの0.5mg/ml Fc特異的ヤギ抗マウスポリクローナル抗体(Lampire Biological,Cat.No.7455527,USA)をビーズペレットに添加する。ビーズ溶液を30秒間撹拌する。回転させながらチューブを室温で1時間インキュベートする。
実施例5dですでに記載した手順に従って、磁気ビーズ上で抗体負荷アッセイを行った。
図11に示されるように、オリゴマー金属−基材錯体を形成した後かつGAMポリクローナル抗体の形態で標的分子を添加する前、pH条件を変化させることによる金属−基材錯体の後処理を用いて、オリゴマー金属組成物をさらに改変し、標的分子の結合および性能を後続的に変化させることが可能である。
約30%のモノマー成分を有する配合物をモデルとして用いて、基材の表面性が標的分子結合の性質およびその性能を有意に変化させうることを示した。
約30%のモノマー成分を有する、過塩素酸クロムとエチレンジアミンとの錯体(実施例5a参照)を、モデルとして使用した。
比較の目的のために、ヒドロキシル官能基およびカルボキシ官能基を有するシリカビーズを高分子ビーズと比較した。
Bangs,IN,USAからのProMag−COOH(Cat.No.PMC3N/9885)
Bangs,IN,USAからのSilica−OH(Cat No.SS06N)
Bangs,IN,USAからのSilica−COOH(Cat No.SC05H)
実施例5bに記載したのと同様な方法で、すべてのビーズを処理した。
上清除去後、50mM MES中の250μlの1mg/ml Fc特異的ヤギ抗マウスポリクローナル抗体(Lampire Biological,Cat.No.7455527,USA)をビーズペレットに添加する。ビーズ溶液を30秒間撹拌する。回転させながらチューブを室温で1時間インキュベートする。
実施例5dですでに記載した手順に従って、磁気ビーズ上で抗体負荷アッセイを行った。
ローターからクロムオリゴマー活性化ビーズ(250μl)を採取し、懸濁液を30秒間撹拌する(実施例参照6b)。チューブ(磁気ビーズ用)を磁気ラック上に1分間配置するか、またはチューブ(非磁気ビーズ用)を12,000SPRでマイクロ遠心分離機中に3分間配置し、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。各チューブに250μlの50mM MES緩衝液(pH5.2)を添加する。撹拌、上清除去、およびMES添加をさらに2回繰り返す。上清除去後、50mM MES中の250μlの0.5mg/mlストレプトアビジン(Prozyme,Cat.No.SA10,USA)をビーズペレットに添加する。ビーズ溶液を30秒間撹拌する。回転させながらチューブを室温で1時間インキュベートする。
以下の手順に従って、ストレプトアビジンカップリングビーズ上でビオチン−フィコエリトリン(ビオチン−RPE)負荷アッセイを行った。簡潔に述べると、材料および方法は、記載のとおりである。
ストレプトアビジンカップリングビーズ。
検出: ビオチン−PE(4mg/ml、Cat No.P811、Invitrogen,USA)
洗浄緩衝液: 10mM PBS、pH7.4、0.05%Tween20含有
アッセイ緩衝液: 10mM PBS、pH7.4、1%BSA、0.05%Tween20含有
マイクロプレート: 96ウェルMillipore0.42μmフィルタープレート(Millipore,USA)
5μlの各ビーズサンプルを25μlのアッセイ緩衝液中に希釈する。少なくとも30秒間撹拌した後、20μlの懸濁液を除去し、480μlのアッセイ緩衝液中に再希釈する。0.4μg/mlの使用濃度になるように検出ビオチン−RPEをアッセイ緩衝液中に希釈する。
図12に示されるように、表面が−OHまたは−COOHのいずれの官能基を有するかにかかわらず、オリゴマー金属錯体は、抗体をシリカ表面上に結合するのに有効である。この実施例は、オリゴマー金属錯体の1つの特定の配合物を用いた高分子ビーズで同等な性能を示す。同一のオリゴマー金属−基材錯体はまた、ストレプトアビジンの結合にも有効であるが、性能改善のプロファイルは、基材およびオリゴマー金属錯体の両方に依存する(図13参照)。
錯体中の電子供与条件の変化の影響を調べるためのモデルとして、金属−基材錯体を形成するための、約30%のモノマー成分を有する配合物を使用した。実施例8では、pHおよびイオン強度の差を比較することにより、標的分子カップリング条件の影響を例示する。
約30%のモノマー成分を有する、過塩素酸クロムとエチレンジアミンとの錯体を使用した(実施例5a参照)。
M−270カルボキシル末端磁気ビーズ(Cat.No.143.16D)は、Dynal,IN,Norwayから供給された。ビーズを準備するために、室温に達するようにしてビーズを30秒間撹拌し、次いで、さらに60秒間超音波処理する。2×170μLのビーズ濃縮液を2×1.7mLマイクロチューブ中に分配する。チューブを磁気ラック上に1分間配置して、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。ビーズペレットに510μLのそれぞれのクロムオリゴマー溶液を添加する。回転させながら室温で1時間放置する。
上清除去後、同一のそれぞれのMES緩衝液中の50μlの0.5mg/ml Fc特異的ヤギ抗マウスポリクローナル抗体(Lampire Biological,Cat.No.7455527,USA)をビーズペレットに添加する。ビーズ溶液を30秒間撹拌する。回転させながらチューブを室温で1時間インキュベートする。
実施例5dですでに記載した手順に従って、磁気ビーズ上で抗体負荷アッセイを行った。
図14に示されるように、オリゴマー金属ビーズ錯体に対して異なるカップリング緩衝液を用いると、マウスモノクローナル抗体−フルオレセインを捕捉するヤギ抗マウス(GAM)ポリクローナル抗体の結合能力は変化する。
錯体中の電子供与条件の変化の影響および貯蔵条件に依存するオリゴマー金属−基材錯体の長期貯蔵に及ぼすその後続的影響を調べるためのモデルとして、金属−基材錯体を形成するための、約30%のモノマー成分を有する配合物を使用した。dH2OとMES緩衝液pH5.2とMES緩衝液pH7とを比較することにより、異なる洗浄緩衝液の影響を例示した。表面結合クロムオリゴマーへの抗体結合は、負荷アッセイにより決定されるように、貯蔵条件によって変化しうる。
約30%のモノマー成分を有する、過塩素酸クロムとエチレンジアミンとの錯体(実施例5a参照)を使用した。
シリカカルボキシル末端ビーズ(Inv.L080722G)は、Bangs,IN,USAから供給された。ビーズを準備するために、室温に達するようにしてビーズを30秒間撹拌し、次いで、さらに60秒間超音波処理する。2×600μLのビーズ濃縮液を2×1.7mLマイクロチューブ中に分配する。すべてのチューブを2000rpmのマイクロ遠心分離機中に5分間配置し、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。ビーズペレットに600μLのクロムオリゴマー溶液を添加する。回転させながら室温で1時間放置する。クロムオリゴマー活性化シリカビーズを3つのチューブに分配する。チューブ1では、0.025%のProClin300を有する200μLのdH2Oでビーズを洗浄し、さらに2回繰り返した。0.025%のProClin300を有する200μlのdH2O中にクロムオリゴマー活性化シリカビーズを貯蔵した。チューブ2では、0.025%のProClin300を有する200μLの50mM MES pH5.2でビーズを洗浄し、さらに2回繰り返した。0.025%のProClin300を有する200μlの50mM MES pH5.2中にクロムオリゴマー活性化シリカビーズを貯蔵する。チューブ3では、0.025%のProClin300を有する200μLの10mM PBS pH7.4中でビーズを洗浄し、さらに2回繰り返した。0.025%のProClin300を有する200μlの10mM PBS pH7.4中にクロムオリゴマー活性化シリカビーズを貯蔵する。
ローターからクロムオリゴマー活性化DynabeadsM−270ビーズを採取し、懸濁液を30秒間撹拌する。すべてのチューブを2000rpmのマイクロ遠心分離機中に5分間配置し、ビーズペレットから注意深く上清を除去し廃棄する。各チューブに50μLの50mM MES(pH5.2)を添加する。撹拌、上清除去、およびMES添加をさらに2回繰り返す。上清除去後、50mM MES(pH5.2)中の50μlの1mg/ml Fc特異的ヤギ抗マウスポリクローナル抗体(Lampire Biological,Cat.No.7455527,USA)をビーズペレットに添加する。ビーズ溶液を30秒間撹拌する。回転させながらチューブを室温で1時間インキュベートする。
実施例5dですでに記載した手順に従って、磁気ビーズ上で抗体負荷アッセイを行った。
Claims (30)
- 標的分子を上に固定化すべく合成基材を適合化する方法において、
・合成基材を提供するステップと、
・金属イオンが標的分子と錯体化されない形で、前記基材と結合すべく金属イオンを提供するステップと、
・標的分子の不在下で前記金属イオンを前記基材と接触させることにより、前記基材が前記金属イオンの配位部位に結合された配位錯体を形成するステップと、
・前記基材との前記配位錯体中の前記金属イオンの75%超がオリゴマー金属錯体の形態をとるように、前記基材の存在下で前記金属イオンからオリゴマー金属錯体を形成するステップと、
を含み、それにより、標的分子を上に固定化すべく前記基材を適合化し、
当該方法は、前記金属イオンが前記基材と接触する時に2つ以上の金属イオンを架橋すべく電子供与基を形成する条件を提供するステップを含み、それにより、前記基材の存在下で前記金属イオンからオリゴマー金属錯体を形成し、
前記電子供与基を形成する条件が、前記金属イオンが前記基材と接触する時に約4〜10のpHを提供することにより提供されることを特徴とする方法。 - 標的分子を上に固定化すべく合成基材を適合化する方法において、
・金属イオンが標的分子と錯体化されない形で、基材と結合すべく金属イオンを提供するステップと、
・前記金属イオンの75%超がオリゴマー金属錯体の形態をとるように、基材の不在下で前記金属イオンからオリゴマー金属錯体を形成するステップと、
・標的分子の不在下で前記オリゴマー金属錯体を前記基材と接触させることにより、前記基材が前記オリゴマー金属錯体の金属イオンの配位部位に結合された配位錯体を形成するステップと、
を含み、それにより、標的分子を上に固定化すべく前記基材を適合化し、前記基材との前記配位錯体中の金属イオンの75%超がオリゴマー金属錯体の形態をとり、
前記金属イオンが組成物の形態で提供され、かつ基材の不在下で前記金属イオンからオリゴマー金属錯体を形成するステップが、前記組成物中の2つ以上の金属イオンを架橋すべく電子供与基を形成する条件を前記組成物に提供するステップを含み、
前記電子供与基を形成する条件が、約4〜10のpHを前記組成物に提供することにより提供されることを特徴とする方法。 - 請求項1または2に記載の方法において、前記pH条件が、アルカリ塩を提供することにより提供されることを特徴とする方法。
- 請求項3に記載の方法において、前記アルカリ塩が、NaOH、KOH、またはNH4OHであることを特徴とする方法。
- 請求項4に記載の方法において、酸性基を有する化合物の形態で架橋配位子を提供するステップをさらに含むことを特徴とする方法。
- 請求項5に記載の方法において、前記酸性基が、カルボン酸基、スルホン酸基、リン酸基、エノール酸基、フェノール酸基、チオエノール酸基、またはチオフェノール酸基であることを特徴とする方法。
- 請求項5に記載の方法において、前記架橋配位子が、イミノ二酢酸、ニトリロ三酢酸、シュウ酸、またはサリチル酸であることを特徴とする方法。
- 請求項1または2に記載の方法において、前記pH条件が、塩基性基を有する化合物の形態で架橋配位子を添加することにより提供されることを特徴とする方法。
- 請求項8に記載の方法において、前記塩基性基がアミンまたはイミンであることを特徴とする方法。
- 請求項8に記載の方法において、前記架橋配位子が、イミダゾール、ベンゾイミダゾール、ヒスチジン、またはピリジンであることを特徴とする方法。
- 請求項8に記載の方法において、前記架橋配位子がエチレンジアミンであることを特徴とする方法。
- 請求項1乃至11の何れか1項に記載の方法において、前記金属イオンが遷移金属イオンであることを特徴とする方法。
- 請求項12に記載の方法において、前記遷移金属イオンが、ロジウム、白金、スカンジウム、アルミニウム、チタン、バナジウム、クロム、ルテニウム、マンガン、鉄、コバルト、ニッケル、銅、モリブデン、または亜鉛であることを特徴とする方法。
- 請求項13に記載の方法において、前記金属イオンが、鉄、コバルト、アルミニウム、クロム、またはルテニウムであることを特徴とする方法。
- 請求項14に記載の方法において、前記金属イオンがクロムIIIであることを特徴とする方法。
- 請求項8に記載の方法において、前記金属イオンが、前記架橋配位子を含む組成物の形態で提供されることを特徴とする方法。
- 請求項16に記載の方法において、前記組成物がクロム金属イオンとエチレンジアミンとを含むことを特徴とする方法。
- 請求項1乃至17の何れか1項に記載の方法において、前記組成物が、対イオンをさらに含むことを特徴とする方法。
- 請求項18に記載の方法において、前記対イオンが、塩化物イオン、酢酸イオン、臭素物イオン、硝酸イオン、過塩素酸イオン、リン酸イオン、ミョウバンイオン、または硫酸イオンであることを特徴とする方法。
- 請求項1乃至19に記載の方法において、前記基材との前記配位錯体中の金属イオンの80%超がオリゴマー金属錯体の形態をとることを特徴とする方法。
- 請求項20に記載の方法において、前記基材との前記配位錯体中の金属イオンの85%超がオリゴマー金属錯体の形態をとることを特徴とする方法。
- 請求項21に記載の方法において、前記基材との前記配位錯体中の金属イオンの90%超がオリゴマー金属錯体の形態をとることを特徴とする方法。
- 請求項22に記載の方法において、前記基材との前記配位錯体中の金属イオンの95%超がオリゴマー金属錯体の形態をとることを特徴とする方法。
- 請求項23に記載の方法において、前記基材との前記配位錯体中の金属イオンの98%超がオリゴマー金属錯体の形態をとることを特徴とする方法。
- 請求項24に記載の方法において、前記基材との前記配位錯体中の金属イオンの99%超がオリゴマー金属錯体の形態をとることを特徴とする方法。
- 請求項1乃至25の何れか1項に記載の方法において、前記オリゴマー錯体が2つ以上のタイプの金属イオンを含むことを特徴とする方法。
- 請求項1乃至26の何れか1項に記載の方法において、前記基材が、ビーズ、膜、マルチウェルプレート、スライド、またはキャピラリーカラムの形態をとることを特徴とする方法。
- 請求項1乃至27の何れか1項に記載の方法において、前記基材が、シリカ、ガラス、金、ポリプロピレン、ポリエチレン、またはポリビニルフルオリドから作製されることを特徴とする方法。
- 請求項27に記載の方法において、前記基材が、ヒドロキシル化シリカ表面、ポリ(ビニルアルコール)表面、またはメタクリレート表面を含むことを特徴とする方法。
- 請求項1乃至29の何れか1項に記載の方法において、前記基材が、カルボン酸官能基、アミド官能基、アミン官能基、ヒドロキシル官能基、またはアルデヒド官能基の電子供与基を含有することを特徴とする方法。
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