JP5821127B2 - Protein crystallization analyzer and protein crystallization analysis method - Google Patents
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Description
本発明は、タンパク質結晶化分析装置及びタンパク質結晶化分析方法に係り、特にタンパク質溶液の光散乱計測による結晶化状態の分析を行うタンパク質結晶化分析装置及びタンパク質結晶化分析方法に関する。 The present invention relates to a protein crystallization analyzer and a protein crystallization analysis method, and more particularly to a protein crystallization analyzer and a protein crystallization analysis method for analyzing a crystallization state by light scattering measurement of a protein solution.
従来から、タンパク質に代表される生体高分子の機能を解明するために、結晶構造解析の技術が必要不可欠となっている。
生体高分子の結晶構造は、核磁気共鳴（ＮＭＲ）測定、Ｘ線回折測定、また中性子線回折測定等を用いて解析される。
解析された結晶構造のデータを用いて、生体高分子の高次構造や機能の解析を行うことができる。
このような結晶構造の解析及び評価は、いかに良質の生体高分子の結晶を作製するかに大きく依存する。
Conventionally, crystal structure analysis techniques have become indispensable for elucidating the functions of biopolymers typified by proteins.
The crystal structure of the biopolymer is analyzed using nuclear magnetic resonance (NMR) measurement, X-ray diffraction measurement, neutron diffraction measurement, or the like.
Using the data of the analyzed crystal structure, it is possible to analyze the higher order structure and function of the biopolymer.
Such analysis and evaluation of the crystal structure greatly depends on how to produce a high-quality biopolymer crystal.
ここで、タンパク質の結晶作製は、通常、タンパク質の過飽和溶液に沈殿剤（結晶化剤）等を添加して行われる。
しかしながら、タンパク質の結晶化条件は、タンパク質の溶液濃度、沈殿剤（結晶化剤）の種類や濃度、緩衝液の種類、ｐＨ値、溶液温度等の、様々な要因を考慮する必要がある。
Here, protein production is usually performed by adding a precipitant (crystallization agent) or the like to a supersaturated solution of protein.
However, protein crystallization conditions need to take into consideration various factors such as protein solution concentration, type and concentration of precipitant (crystallization agent), buffer type, pH value, solution temperature, and the like.
このため、従来から、試行錯誤を繰り返し、又は網羅的に試験を行い、対象のタンパク質を結晶化させるための結晶化条件を探索する方法が用いられていた。
たとえば、従来、タンパク質の濃度を一定にし、沈殿剤（結晶化剤）の濃度を変化させた溶液試料について、結晶化要件を求める試験をしていた。また、例えば、沈殿剤（結晶化剤）の濃度を一定にして、タンパク質の濃度を変化させた溶液試料について、試験をしていた。その他にも、例えば、沈殿剤（結晶化剤）の種類を変えた場合の溶液試料に対して試験をしていた。
For this reason, conventionally, a method has been used in which trial and error are repeated or exhaustively tested to search for crystallization conditions for crystallizing the target protein.
For example, conventionally, a solution sample in which the concentration of a protein is kept constant and the concentration of a precipitating agent (crystallization agent) is changed has been tested for crystallization requirements. In addition, for example, a solution sample in which the concentration of the precipitant (crystallization agent) was kept constant and the protein concentration was changed was tested. In addition, for example, a test was performed on a solution sample in the case where the type of the precipitant (crystallization agent) was changed.
しかしながら、溶液中におけるタンパク質の結晶成長速度は、一般的には大変遅い。
従って、結晶化する条件下であっても、光学顕微鏡等で結晶生成が確認できるまでには、少なくとも数日から数週間が必要である。
また、タンパク質の種類や作製条件によっては、数ヶ月以上を要することもある。
ところが、従来は、実際に結晶を作成することで、対象となる個々のタンパク質にとって最適な結晶化条件の探索をしていた。
However, the protein crystal growth rate in solution is generally very slow.
Accordingly, even under crystallization conditions, it takes at least several days to several weeks before crystal formation can be confirmed with an optical microscope or the like.
In addition, depending on the type of protein and production conditions, it may take several months or longer.
However, in the past, an optimum crystallization condition for each target protein has been searched by actually creating a crystal.
このように、一般的に、タンパク質結晶の作製は、網羅的な非能率的手法によって行われている。
この効率を高めるため、従来から、タンパク質濃度と沈殿剤（結晶化剤）濃度との関係を調べた図、いわゆる「相図」が作成されてきた。
Thus, in general, protein crystals are produced by a comprehensive inefficient method.
In order to increase this efficiency, a diagram in which the relationship between the protein concentration and the precipitating agent (crystallization agent) concentration has been studied, so-called “phase diagram” has been created.
たとえば、特許文献１及び非特許文献１を参照すると、タンパク質の結晶化状態を表す相図として、ニワトリ卵白リゾチームの相図が記載されている。
特許文献１及び非特許文献１に記載の相図は、タンパク質濃度及び沈殿剤（結晶化剤）濃度を用いた相図である。
この相図では、結晶化条件を示す状態として、結晶化溶液のｐＨ値と温度が一定である場合の、沈殿剤（結晶化剤）濃度に対するリゾチームの濃度の関係が、相図として記載されている。この相図は、タンパク質結晶作製の方針として利用されている。
For example, referring to
The phase diagrams described in
In this phase diagram, the relationship between the concentration of lysozyme and the concentration of the precipitant (crystallization agent) when the pH value and temperature of the crystallization solution are constant is shown as a phase diagram as a state indicating crystallization conditions. Yes. This phase diagram is used as a policy for producing protein crystals.
より具体的には、特許文献１及び非特許文献１を参照すると、ニワトリ卵白リゾチームの結晶化溶液の相図が記載されている。
特許文献１に記載の相図は、ｐＨ４．７に調整された酢酸―酢酸ナトリウム緩衝液を使用して、温度２９５Ｋ（２２℃）でニワトリ卵白リゾチームとその沈殿剤（結晶化剤）の塩化ナトリウムを含む結晶化溶液に対して、リゾチームが結晶化するか否かが、結晶化法の一つである透析法によって調査されたものである。
また、非特許文献１に記載の相図は、ｐＨ４．５に調整されたリン酸緩衝液を使用して、温度２９３Ｋ（２０℃）でニワトリ卵白リゾチームとその沈殿剤（結晶化剤）の塩化ナトリウムを含む結晶化溶液に対して、リゾチームが結晶化するか否かが、結晶化法の一つである透析法によって調査されたものである。
これらの相図においては、結晶化が進行せずタンパク質の結晶作製に適さない濃度条件、及び溶液中に一度に多数のタンパク質微結晶が生成される濃度条件が記載されている。
そして、上記の２つの濃度領域に挟まれた中間領域である準安定領域では、例えば、結晶核形成の原因となる埃などの混入や、振動、圧力、磁界、電界、光等の結晶化に影響を及ぼす外部からの刺激がなければ、結晶化が進行しない。また、この準安定領域では、溶液中に少数個のタンパク質微結晶が形成されると、結晶が大型化しやすいという特徴がある。
従って、ＮＭＲやＸ線や中性子線によりタンパク質を構造解析するために用いる大型で良質な結晶を作製するためには、この準安定領域の濃度条件下で行うことが好ましい。よって、この準安定領域の濃度領域を見出すことが、タンパク質結晶を作製する上で最も重要である。
More specifically, referring to
The phase diagram described in
In addition, the phase diagram described in Non-Patent
In these phase diagrams, there are described concentration conditions that are not suitable for the production of protein crystals because crystallization does not proceed, and concentration conditions in which a large number of protein microcrystals are produced in a solution at a time.
In the metastable region, which is an intermediate region sandwiched between the two concentration regions, for example, dust contamination that causes crystal nucleation and crystallization of vibration, pressure, magnetic field, electric field, light, etc. Crystallization will not proceed without external stimuli affecting it. In addition, this metastable region is characterized in that if a small number of protein microcrystals are formed in a solution, the crystals are likely to be large.
Therefore, in order to produce a large, high-quality crystal used for structural analysis of proteins by NMR, X-rays or neutrons, it is preferable to carry out under the metastable region concentration conditions. Therefore, finding the concentration region of this metastable region is the most important in producing protein crystals.
従来の相図は、結晶化のための条件が分かっているタンパク質の結晶を大量に作成するといった分野では、非常に有効な方法である。
しかしながら、相図を作成するためには、各溶液の濃度条件を変化させて、実際にタンパク質結晶を作製することが必要である。このため、様々な各濃度条件について結晶化するかどうかを調べなければならず、タンパク質の結晶化を時間経過で観察する必要があった。
よって、相図の作成自体に多大な時間と労力が必要である状況は変わらず、相図は、新規のタンパク質の結晶を製造する用途にはあまり用いられていなかった。
The conventional phase diagram is a very effective method in the field of producing a large number of protein crystals whose conditions for crystallization are known.
However, in order to create a phase diagram, it is necessary to actually produce protein crystals by changing the concentration conditions of each solution. For this reason, it was necessary to investigate whether to crystallize under various concentration conditions, and it was necessary to observe protein crystallization over time.
Therefore, the situation where a great deal of time and effort is required for the creation of the phase diagram itself has not changed, and the phase diagram has not been used much for the purpose of producing new protein crystals.
このように、非能率的で多大な時間を要するタンパク質の結晶作製において、タンパク質結晶化溶液の状態を正確に把握し分析できれば、効率的な結晶作製が可能となる。 Thus, in the production of inefficient and time-consuming protein crystals, efficient crystal production becomes possible if the state of the protein crystallization solution can be accurately grasped and analyzed.
ここで、従来から、溶媒中でブラウン運動している微粒子からの散乱光を計測し、その散乱光の時間的振舞いから、微粒子の粒度分布を調べる動的光散乱（Ｄｙｎａｍｉｃ Ｌｉｇｈｔ Ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ、ＤＬＳ）法（光子相関法）が、コロイド等のような微粒子の分析に用いられている。
このような粒子ブラウン運動によるＤＬＳ法では、粒径の大きな粒子はゆっくり揺らぎ、小さな粒子は速く揺らぐという特性を測定する。この特性から、粒子サイズが評価できる。
ＤＬＳ法は、タンパク質分子が含まれる溶液の計測・評価にも用いられている。ＤＬＳ法によれば、溶液中におけるタンパク質分子の状態を、光散乱計測によって非破壊的に測定が可能である。
Here, conventionally, a dynamic light scattering (DLS) method is used in which scattered light from fine particles moving in a Brownian motion in a solvent is measured and the particle size distribution of the fine particles is examined from the temporal behavior of the scattered light. (Photon correlation method) is used to analyze fine particles such as colloids.
In the DLS method based on such particle Brownian motion, a characteristic that a particle having a large particle diameter fluctuates slowly and a small particle fluctuates quickly is measured. From this characteristic, the particle size can be evaluated.
The DLS method is also used for measurement and evaluation of solutions containing protein molecules. According to the DLS method, the state of protein molecules in a solution can be measured nondestructively by light scattering measurement.
また、特許文献２を参照すると、生体高分子含有溶液からの生体高分子の結晶化条件を探査する方法であって、生体高分子含有溶液と半透膜で隔てられた溶液に、溶液の物理化学的性質を変化させる物質を連続的又は断続的に添加して、前記生体高分子含有溶液の物理化学的性質を連続的又は断続的に変化させ、その間の、生体高分子含有溶液の状態を、連続的又は断続的にモニターすることで、生体高分子の結晶化条件を探査する方法が開示されている（以下、従来技術１とする）。
具体的には、従来技術１は、光散乱法によって、タンパク質を含む溶液の状態をモニターする方法とその装置について開示されている。従来技術１では、結晶化条件を連続的に最適化しながら検索するため、結晶化条件を見逃す可能性が、従来法に比べて低いという効果がある。
Further, referring to
Specifically, Prior
また、特許文献３を参照すると、目的タンパク質を結晶化するタンパク質結晶化過程を解析するタンパク質溶液結晶化過程の解析装置であって、目的タンパク質を含む溶液が収容されている容器を支持する支持部と、該支持部に支持されている前記容器内の観測対象に対してラマン励起用レーザ光を照射するレーザ部と、共焦点ラマン分光分析顕微鏡と、該共焦点ラマン分光分析顕微鏡からのラマン分光光をスペクトル解析するスペクトル解析部とを有するタンパク質溶液結晶化過程の解析装置が記載されている（以下、従来技術２とする。）。
すなわち、従来技術２では、物質に光を入射した際に、散乱光に入射光の波長とは異なる波長の光であるラマン分光光が含まれる「ラマン効果」を用いた、タンパク質溶液の結晶化過程を解析する装置が開示されている。
従来技術２では、従来は人の目で行っていたタンパク質結晶化判別作業を分光学的に行うことができるようになるため、タンパク質結晶化段階の客観的な判断を行うことができるという効果がある。
Further, referring to
That is, in the
In the
一方、上述のＤＬＳ法のような動的光散乱法以外に、従来より静的光散乱（Ｓｔａｔｉｃ Ｌｉｇｈｔ Ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ、ＳＬＳ）法が用いられている。これは、タンパク質溶液からの散乱光をある散乱角度、例えば、特に、溶液に照射する光に対し直角、すなわち、散乱角９０°において散乱光を測定し、その溶液濃度と散乱光強度の関係に基づいて、タンパク質溶液を分析する。
たとえば、非特許文献２及び非特許文献３には、ＳＬＳ法による装置を用いたタンパク質溶液の分析について記述されている。
On the other hand, in addition to the dynamic light scattering method such as the DLS method described above, a static light scattering (SLS) method has been conventionally used. This is because the scattered light from the protein solution is measured at a certain scattering angle, for example, at a right angle to the light irradiating the solution, that is, at a scattering angle of 90 °, and the relationship between the solution concentration and the scattered light intensity is measured. Based on the analysis of the protein solution.
For example, Non-Patent
ここで、タンパク質の結晶化は、溶液中でタンパク質が均一に分散し溶解している単分散状態に対して、沈殿剤（結晶化剤）の添加、溶液温度の変化、紫外線照射、磁場や電場の印加、外部からの衝撃の付与等の刺激によって、タンパク質が物理化学的状態を変化させ、これによってタンパク質分子が凝集し、結晶核形成から微結晶形成へと結晶が成長していくと解釈されている。 Here, protein crystallization is performed by adding a precipitating agent (crystallization agent), changing the solution temperature, irradiating with ultraviolet rays, applying a magnetic field or electric field to the monodispersed state in which the protein is uniformly dispersed and dissolved in the solution. It is interpreted that the protein changes the physicochemical state due to stimulation such as application of external force and external impact, which causes protein molecules to aggregate and crystal growth from crystal nucleation to microcrystal formation. ing.
溶液中ではタンパク質分子やその凝集体は、周囲の溶媒、例えば多くの場合、水と強く結合し、タンパク質凝集体の中に溶媒が入り込んでいる。つまり、タンパク質凝集体の形成に、入り込んだ溶媒が分子間の凝集結合を媒介するという役割を担っている。
水は、その分子Ｈ2Ｏが大きな電気双極子モーメントをもった極性溶媒である。このため、水溶性タンパク質分子と近接し、タンパク質のアミノ酸側鎖基と結合して、水溶液中で固有の水和構造を形成する。
つまり、タンパク質分子の凝集体が成長して形成されるタンパク質結晶中には、溶媒が含まれる。このタンパク質結晶の溶媒含有量は、６０％を超えることも多く、結晶格子内におけるタンパク質分子間の結合は、ほとんど溶媒を介している状態となっている。
従って、タンパク質凝集体が溶媒中に存在する溶液系の光散乱は、コロイド等のように、内部に溶媒を介した結合を持たない微粒子が溶媒中に単分散状態で存在する場合とは、異なった特性を示す。
つまり、溶媒との結合が小さいコロイド等の微粒子の分散液系に比べて、タンパク質凝集体は、溶液中で溶媒を介し結合している。このため、タンパク質凝集体の散乱光の強度は、溶媒自身からの光散乱と顕著な差が現れにくい。
また、タンパク質溶液のＤＬＳ法による測定から、タンパク質は、分子量の異なる分子の混合物である多分子系よりも、単一の組成をもつ分子の単分散系の方が結晶化し易いとされている。しかしながら、この単分散系では、さらに溶媒自身とタンパク質の光散乱と顕著な差が現れにくいという問題があった。
すなわち、タンパク質凝集体による散乱光は、一般に微弱で検出が難しいという問題があった。
In solution, protein molecules and aggregates thereof are strongly bound to a surrounding solvent such as water in many cases, and the solvent enters the protein aggregate. In other words, the solvent that has entered the formation of protein aggregates plays a role of mediating the aggregation bond between molecules.
Water is a polar solvent whose molecular H 2 O has a large electric dipole moment. For this reason, it adjoins to a water-soluble protein molecule and binds to an amino acid side chain group of the protein to form a unique hydrated structure in an aqueous solution.
That is, a solvent is contained in the protein crystal formed by growing aggregates of protein molecules. The solvent content of the protein crystal often exceeds 60%, and the bonds between protein molecules in the crystal lattice are almost mediated by the solvent.
Therefore, light scattering in a solution system in which protein aggregates are present in a solvent is different from the case where fine particles that do not have a bond via a solvent inside, such as colloids, are present in a monodispersed state in the solvent. Show the characteristics.
That is, protein aggregates are bound in a solution via a solvent as compared to a dispersion system of fine particles such as colloid having a small bond with a solvent. For this reason, the intensity of the scattered light of the protein aggregate is unlikely to show a significant difference from the light scattering from the solvent itself.
In addition, from the measurement by DLS method of protein solution, it is said that proteins are more easily crystallized in a monodisperse system of molecules having a single composition than in a multimolecular system which is a mixture of molecules having different molecular weights. However, in this monodispersed system, there is a further problem that a remarkable difference does not easily appear between the solvent itself and the light scattering of the protein.
That is, the scattered light from protein aggregates is generally weak and difficult to detect.
また、従来のＤＬＳ法によるタンパク質溶液の分析は、通常、低濃度のタンパク質溶液を対象に行われていた。
つまり、従来のＤＬＳ法は、タンパク質結晶化で用いられるような高濃度のタンパク質結晶化溶液には、適用できなかった。
これは、非特許文献２及び非特許文献３に記載の、従来のＳＬＳ法による装置を用いたタンパク質溶液の分析でも同様であった。
Moreover, the analysis of the protein solution by the conventional DLS method was normally performed for the low concentration protein solution.
That is, the conventional DLS method cannot be applied to a high-concentration protein crystallization solution used in protein crystallization.
This was the same in the analysis of the protein solution using the conventional SLS method apparatus described in
また、従来技術１においては、従来の光散乱法による結晶化溶液状態の具体的な分析方法については開示されていなかった。すなわち、上述したように、タンパク質が完全には結晶化していない、タンパク質の凝集体による散乱光は微弱であるため、通常の散乱光の検出は難しかった。
このため、従来技術１は、単純に散乱光を検出した場合、ある程度大きくなった良／ 不良初期結晶の屈折による散乱光を得ていると考えられる（例えば、段落［００３０］等を参照）。
また、従来技術２についても、ある程度大きくなった微結晶を検出している（例えば、段落［００３５］の「これらのピーク強度の高さからタンパク質の微結晶である」等を参照）。
すなわち、従来技術１や従来技術２では、タンパク質が結晶化する前の状態のタンパク質結晶化溶液の分析については用いることができなかった。
Moreover, in the
For this reason, it is considered that the
Also, in the
That is, in the
しかしながら、結晶構造解析に用いるタンパク質結晶化溶液においては、目的のタンパク質とその結晶化剤を含むタンパク質結晶化溶液が、結晶核形成から微結晶形成へと結晶が成長する前の段階において分析できることが望まれていた。
つまり、光学顕微鏡等で観察できるようになるまでの大きさにタンパク質の微結晶が成長するまでに、タンパク質分子の凝集の程度を分析し、溶液中のタンパク質が結晶化が進行する方向にあるか否かの分析をすることが求められていた。
However, in the protein crystallization solution used for crystal structure analysis, the protein crystallization solution containing the target protein and its crystallization agent can be analyzed at a stage before the crystal grows from crystal nucleation to microcrystal formation. It was desired.
In other words, before the protein microcrystals grow to a size that can be observed with an optical microscope, the degree of aggregation of protein molecules is analyzed, and whether the protein in the solution is in the direction of crystallization. It was required to analyze whether or not.
本発明は、このような状況に鑑みてなされたものであり、上述の課題を解消することを課題とする。 This invention is made | formed in view of such a condition, and makes it a subject to eliminate the above-mentioned subject.
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、タンパク質の結晶化を分析するタンパク質結晶化分析装置において、タンパク質結晶化溶液の前方小角又は後方小角の散乱光を、散乱光検出部へと導く測定散乱光導入部と、前記測定散乱光導入部により導かれた前記散乱光を検出する散乱光検出部と、前記散乱光検出部で検出された前記散乱光の強度を解析し、前記タンパク質結晶化溶液におけるタンパク質の結晶化状態を分析する制御解析部とを備え、前記タンパク質結晶化溶液へ、コリメート光を入射させ、前記散乱光は、前記タンパク質結晶化溶液へ入射する光の透過光に対する散乱角度が１°〜１０°の前方小角散乱光、又は前記タンパク質結晶化溶液へ入射する光の反射光に対する散乱角度が１°〜１０°の後方小角散乱光であり、前記測定散乱光導入部は、前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光を導き、前記タンパク質結晶化溶液の入った溶液セルの光路長は１ｍｍ以下であり、結晶化の前段階状態にあるタンパク質凝集体の散乱特性を測定し、前記コリメート光は、レーザ光源により発生され、広がり角が全角度で１ｍｒａｄ以下であり、垂直入射で前記タンパク質結晶化溶液へ入射され、前記測定散乱光導入部が導く前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光は、測定する散乱光取込み角度が調整された散乱光のみが取り出され、前記制御解析部が分析する前記散乱光の強度は、前記散乱光検出部が所定の微小角ずつ回転されて測定された前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光であることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、測定する前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の散乱角度を変化させる測定散乱角制御部を備え、前記制御解析部は、前記測定散乱角制御部の散乱角度を制御し、前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の強度の値を解析し、前記測定散乱角制御部の散乱角度に対する前記タンパク質結晶化溶液の光散乱強度のデータ群を取得することを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の強度の値は、それぞれ前記散乱角度に対する前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の強度関数により求めることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の強度の値は、それぞれ前記散乱角度に対する前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の強度関数から求めた前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の強度の平均値であることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、前記制御解析部は、前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の時間的強度ゆらぎに基づいて、前記タンパク質結晶化溶液におけるタンパク質の結晶化状態を分析することを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、前記測定散乱光導入部は、前記タンパク質結晶化溶液と前記散乱光検出部の間に配置され、少なくとも２つ以上のスリット、ピンホール、又は虹彩絞りを含むことを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、前記溶液セルを固定する、透明ブロック及び支持台を含む測定試料部を備え、前記透明ブロックは、前記溶液セルを光学的に密着させることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、前記透明ブロックは、半円柱形プリズムであり、前記溶液セルへ平行光を入射するためのレンズ部を備えることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、前記溶液セルに入射する光の入射角度を調整制御するための入射角制御部を備えることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、前記タンパク質結晶化溶液に光を照射する光源を備えることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、前記光源は、単一光の光源であり、タンパク質分子に固有の光吸収帯から離れた波長領域の光源であることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、前記光源は、ダイオード励起固体レーザであることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、前記光源から出射される光の偏光状態を調整し、前記散乱光の検出に適するように、前記タンパク質結晶化溶液への入射光の光量を調整する、入射光調整部を備えることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、前記光源から出射される光の強度をモニターする入射モニター光検出部を備えることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析装置は、前記タンパク質結晶化溶液は、タンパク質と、該タンパク質の結晶化剤とを含むことを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析方法は、タンパク質の結晶化を分析するタンパク質結晶化分析方法において、タンパク質結晶化溶液に光を照射し、前記タンパク質結晶化溶液からの前方小角散乱光又は後方小角散乱光を測定し、前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の強度に基づいて、前記タンパク質結晶化溶液の状態を分析し、前記タンパク質結晶化溶液へ、コリメート光を入射させ、前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光は、前記タンパク質結晶化溶液へ入射する光の透過光に対する散乱角度が１°〜１０°の前方小角散乱光、又は前記タンパク質結晶化溶液へ入射する光の反射光に対する散乱角度が１°〜１０°の後方小角散乱光であり、前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光を導き、前記タンパク質結晶化溶液の入った溶液セルの光路長は１ｍｍ以下であり、結晶化の前段階状態にあるタンパク質凝集体の散乱特性を測定し、前記コリメート光は、レーザ光源により発生され、広がり角が全角度で１ｍｒａｄ以下であり、垂直入射で前記タンパク質結晶化溶液へ入射され、導く前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光は、測定する散乱光取込み角度が調整された散乱光のみが取り出され、分析する前記散乱光の強度は、所定の微小角ずつ回転されて測定された前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光であることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析方法は、前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の強度は、それぞれ散乱角度に対する前記前方小角散乱光の強度関数又は前記後方小角散乱光の強度関数であることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析方法は、前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の強度は、それぞれ散乱角度に対する前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の強度関数から得られる、前記前方小角散乱光の強度の平均値又は前記後方小角散乱光の強度の平均値であることを特徴とする。
本発明のタンパク質結晶化分析方法は、前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の時間的強度ゆらぎに基づいて、前記タンパク質結晶化溶液におけるタンパク質の結晶化状態を分析することを特徴とする。
The protein crystallization analyzer of the present invention is a protein crystallization analyzer for analyzing protein crystallization. Introducing measurement scattered light that guides scattered light of a small front angle or a small rear angle of a protein crystallization solution to a scattered light detection unit. And a scattered light detecting unit for detecting the scattered light guided by the measured scattered light introducing unit, and analyzing the intensity of the scattered light detected by the scattered light detecting unit, and analyzing the protein in the protein crystallization solution A control analysis unit for analyzing the crystallization state of the protein, collimated light is incident on the protein crystallization solution, and the scattered light has a scattering angle of 1 ° with respect to the transmitted light of the light incident on the protein crystallization solution. 10 ° forward small angle scattered light, or back small angle scattered light having a scattering angle of 1 ° to 10 ° with respect to the reflected light of the light incident on the protein crystallization solution. The diffused light guiding part guides the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light, and the optical path length of the solution cell containing the protein crystallization solution is 1 mm or less, and the protein aggregate is in a pre-stage state of crystallization. The collimated light is generated by a laser light source, the divergence angle is 1 mrad or less in all angles, is incident on the protein crystallization solution at normal incidence, and is guided by the measurement scattered light introducing unit. For the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light, only the scattered light whose scattered light capturing angle to be measured is adjusted is extracted, and the intensity of the scattered light analyzed by the control analysis unit is predetermined by the scattered light detection unit. The forward small-angle scattered light or the backward small-angle scattered light measured by being rotated by a minute angle .
The protein crystallization analyzer of the present invention includes a measurement scattering angle control unit that changes a scattering angle of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light to be measured, and the control analysis unit includes the measurement scattering angle control unit. The scattering angle is controlled, the intensity value of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light is analyzed, and a data group of the light scattering intensity of the protein crystallization solution with respect to the scattering angle of the measurement scattering angle control unit is acquired. It is characterized by that.
In the protein crystallization analyzer of the present invention, the intensity value of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light is obtained by an intensity function of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light with respect to the scattering angle, respectively. Features.
In the protein crystallization analyzer of the present invention, the value of the intensity of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light is obtained from the intensity function of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light with respect to the scattering angle, respectively. It is an average value of the intensity of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light.
In the protein crystallization analyzer of the present invention, the control analysis unit analyzes the crystallization state of the protein in the protein crystallization solution based on temporal intensity fluctuations of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light. It is characterized by that.
In the protein crystallization analyzer of the present invention, the measured scattered light introducing unit is disposed between the protein crystallization solution and the scattered light detecting unit, and includes at least two slits, a pinhole, or an iris diaphragm. It is characterized by that.
The protein crystallization analyzer of the present invention includes a measurement sample unit including a transparent block and a support base for fixing the solution cell, and the transparent block optically contacts the solution cell.
In the protein crystallization analyzer according to the present invention, the transparent block is a semi-cylindrical prism, and includes a lens unit for entering parallel light into the solution cell.
The protein crystallization analyzer of the present invention includes an incident angle controller for adjusting and controlling an incident angle of light incident on the solution cell.
The protein crystallization analyzer of the present invention comprises a light source for irradiating the protein crystallization solution with light.
In the protein crystallization analyzer of the present invention, the light source is a single light source, and is a light source in a wavelength region away from a light absorption band unique to protein molecules.
The protein crystallization analyzer of the present invention is characterized in that the light source is a diode-excited solid-state laser.
The protein crystallization analyzer of the present invention adjusts the polarization state of the light emitted from the light source, and adjusts the amount of incident light to the protein crystallization solution so as to be suitable for detection of the scattered light. An optical adjustment unit is provided.
The protein crystallization analyzer of the present invention includes an incident monitor light detection unit that monitors the intensity of light emitted from the light source.
In the protein crystallization analyzer of the present invention, the protein crystallization solution includes a protein and a crystallization agent for the protein.
The protein crystallization analysis method of the present invention is a protein crystallization analysis method for analyzing protein crystallization. The protein crystallization solution is irradiated with light, and forward small-angle scattered light or backward small-angle scattered light from the protein crystallization solution. And analyzing the state of the protein crystallization solution based on the intensity of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light, causing collimated light to enter the protein crystallization solution, and the forward small angle scattered light. Alternatively, the backward small-angle scattered light is scattered with respect to the forward small-angle scattered light having a scattering angle of 1 ° to 10 ° with respect to the transmitted light of the light incident on the protein crystallization solution, or the reflected light of the light incident on the protein crystallization solution. It is a back small angle scattered light having an angle of 1 ° to 10 °, and guides the front small angle scattered light or the back small angle scattered light, and enters the protein crystallization solution. Optical path length of the solution cell is at 1mm or less, the scattering properties of the protein aggregates in a pre-stage state of crystallization was measured, the collimated light is generated by laser light source, divergence angle in 1mrad less in all angles The forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light that is incident and guided to the protein crystallization solution at normal incidence is extracted only from the scattered light whose scattered light capturing angle to be measured is adjusted and analyzed. Is characterized in that it is the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light measured by being rotated by a predetermined minute angle .
In the protein crystallization analysis method of the present invention, the intensity of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light is an intensity function of the forward small angle scattered light or an intensity function of the backward small angle scattered light with respect to a scattering angle, respectively. Features.
In the protein crystallization analysis method of the present invention, the intensity of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light is obtained from the intensity function of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light with respect to the scattering angle, respectively. It is an average value of the intensity of scattered light or an average value of the intensity of the back small angle scattered light.
The protein crystallization analysis method of the present invention is characterized by analyzing a crystallization state of a protein in the protein crystallization solution based on temporal intensity fluctuations of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light.
本発明によれば、タンパク質結晶化溶液の前方小角又は後方小角の散乱光を検出することで、微結晶が生じていない準安定領域であるか否かについて分析するタンパク質結晶化分析装置Ｘを提供することができる。 According to the present invention, there is provided a protein crystallization analyzer X for analyzing whether or not it is a metastable region where no microcrystals are generated by detecting scattered light at a small front angle or a small rear angle of a protein crystallization solution. can do.
＜実施の形態＞
〔タンパク質結晶化分析装置Ｘの構成〕
図１を参照して、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘの概略構成について説明する。
本実施形態のタンパク質結晶化分析装置Ｘは、主な構成として、光源１と、入射光調整部２と、測定試料部３と、入射角制御部４と、散乱光検出部５と、入射モニター光検出部６と、測定散乱光導入部７と、測定散乱角制御部８と、制御解析部９とを備える。ここで、図１においては、点線の矢印は光信号の流れを、実線の矢印は制御信号及び観測に係る電気信号の流れの例を示している。
<Embodiment>
[Configuration of Protein Crystallization Analyzer X]
A schematic configuration of a protein crystallization analyzer X according to an embodiment of the present invention will be described with reference to FIG.
The protein crystallization analyzer X of the present embodiment includes, as main components, a
本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘは、目的のタンパク質と沈殿剤等の結晶化剤を含むタンパク質結晶化溶液に対して、結晶化溶液からの静的光散乱、及び動的光散乱の計測、特に前方小角光散乱又は後方小角光散乱の計測に基づいて、溶液中におけるタンパク質結晶化の状態を分析する装置である。
すなわち、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘは、測定対象のタンパク質結晶化溶液へ光を入射し、前方小角又は後方小角における散乱光を計測して、タンパク質結晶化溶液からの前方小角散乱光又は後方小角散乱光の放射角度の強度分布（ＳＬＳ）、又はその時間的強度変化（ＤＬＳ）によって、タンパク質結晶化溶液の状態を分析する。
The protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention is configured to perform static light scattering from a crystallization solution and dynamic analysis of a protein crystallization solution containing a target protein and a crystallization agent such as a precipitant. This is an apparatus for analyzing the state of protein crystallization in a solution based on measurement of light scattering, particularly measurement of forward small-angle light scattering or backward small-angle light scattering.
That is, the protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention makes light incident on the protein crystallization solution to be measured, measures the scattered light at the front small angle or the rear small angle, The state of the protein crystallization solution is analyzed by the intensity distribution (SLS) of the emission angle of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light, or its temporal intensity change (DLS).
なお、本実施形態において、「前方小角光散乱」とは、測定対象となるタンパク質結晶化溶液へ入射する光の透過光に対する散乱角が１０°程度以下、特に６°以下における溶液からの散乱光であることを示す。
また、同様に「後方小角光散乱」とは、測定対象の溶液へ入射する光の反射光に対する散乱角が１０°程度以下、特に６°以下における溶液からの散乱光であることを示す。
In the present embodiment, “frontal small angle light scattering” means scattered light from a solution having a scattering angle with respect to transmitted light of light incident on a protein crystallization solution to be measured of about 10 ° or less, particularly 6 ° or less. Indicates that
Similarly, “backward small-angle light scattering” indicates that the light is scattered from the solution when the scattering angle of the light incident on the solution to be measured with respect to the reflected light is about 10 ° or less, particularly 6 ° or less.
光源１は、分析する対象となるタンパク質結晶化溶液から散乱光を発生させるために、タンパク質結晶化溶液へ入射させる光を発生させる光源である。
光源１は、タンパク質結晶化溶液からの散乱光、特に前方小角散乱光又は後方小角散乱光を効率よく発生させる機能を有している。
光源１は、タンパク質結晶化分析装置Ｘの本体を駆動させる電源（図示せず）によって点灯される。
光源１に適した光源としては、例えば、各種ガスレーザ、半導体レーザ（ｓｅｍｉｃｏｎｄｕｃｔｏｒ ｌａｓｅｒ、ｄｉｏｄｅ ｌａｓｅｒ、ＬＤ）、ダイオード励起固体（Ｄｉｏｄｅ−ｐｕｍｐｅｄ ｓｏｌｉｄ−ｓｔａｔｅ、ＤＰＳＳ）レーザ、及び発光ダイオード（Ｌｉｇｈｔ Ｅｍｉｔｔｉｎｇ Ｄｉｏｄｅ、ＬＥＤ）等を用いることができる。
さらにまた、対象タンパク質結晶化溶液からの散乱光が比較的大きい場合では、上記の光源よりも低輝度の光源、例えば白色光源から分光器によって得られる単色光も利用できる。
The
The
The
Examples of the light source suitable for the
Furthermore, when the scattered light from the target protein crystallization solution is relatively large, monochromatic light obtained by a spectroscope from a light source having a lower brightness than the above light source, for example, a white light source, can be used.
光源１として、より好ましい光源は、高輝度のレーザ光源であって、高いコヒーレンス長を持った、シングル縦モードの単一波長を発振するレーザ光源が特に好ましい。
このレーザ光源としては、例えば、ＤＰＳＳレーザを用いることができる。ＤＰＳＳレーザは、レーザ光発振に必要な光共振器を内蔵した、小型なレーザ光源である。
ＤＰＳＳレーザは、低電力で高効率の安定な高出力レーザが得られるという特長がある。このため、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘの光源として特に適切である。
As the
As this laser light source, for example, a DPSS laser can be used. The DPSS laser is a small laser light source incorporating an optical resonator necessary for laser light oscillation.
The DPSS laser has a feature that a stable and high-power laser with low power and high efficiency can be obtained. Therefore, it is particularly suitable as a light source for the protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention.
入射光調整部２は、光源本体から出射された光の偏光状態、及び光量を調整する機能を備える部位である。
入射光調整部２の詳細については、後述する。
The incident
Details of the incident
測定試料部３は、測定対象のタンパク質結晶化溶液を収容する溶液セル３０と、その溶液セル３０を支持する指示部材、及び溶液セル３０へ平行光を導くためのレンズ等の光学素子から構成されている。
測定試料部３には、タンパク質結晶化溶液からの散乱光、特に前方小角散乱光又は後方小角散乱光を測定するための適切な光学的配置が施されている。
また、測定試料部３は、溶液セル３０（図３Ａ）内のタンパク質結晶化溶液３１（図３Ａ）へ、ビーム光が平行状態になるよう光学調整を行ったコリメートビーム光等を入射させ、溶液セル３０の透過光や反射光の影響を少なくし、タンパク質結晶化溶液からの前方小角散乱光又は後方小角散乱光、特に前方小角散乱光を効率よく放射させ測定できるように構成されている。
さらに、測定試料部３は、レンズやプリズム等の光学部位を備えていてもよい。
The
The
In addition, the
Furthermore, the
入射角制御部４は、タンパク質結晶化溶液の溶液セル３０へ入射する光の入射角度を調整・設定する機能を備える部位である。
後述するように、タンパク質結晶化溶液の溶液セル３０（図３Ａ）は、電動の回転ステージ（例えば、＜ＵＲＬ＝”ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｓｉｇｍａ−ｋｏｋｉ．ｃｏｍ／ｉｎｄｅｘ＿ｓｄ．ｐｈｐ？ｌａｎｇ＝ｊｐ＆ｓｍｃｄ＝Ｃ０６０２０３”＞を参照）であるθ回転ステージ１４（図２）上に載せられる。入射角制御部４は、このθ回転ステージ１４の回転軸を入射光の光軸上に設定する。
The incident
As will be described later, the protein crystallization solution solution cell 30 (FIG. 3A) has a motorized rotation stage (e.g., <URL = "http://www.sigma-koki.com/index_sd.php?lang=jp&smcd= C060203 ">)) is mounted on the θ rotation stage 14 (FIG. 2). The incident
散乱光検出部５は、タンパク質結晶化溶液から放射される散乱光を検出し、散乱光強度を測定するための光検出器である。
具体的には、散乱光検出部５は、タンパク質結晶化溶液による散乱光の検出に適した光検出器であり、各種の光センサを用いることができる。
The scattered
Specifically, the scattered
入射モニター光検出部６は、タンパク質結晶化溶液３１への入射光の強度をモニターする機能を備える光検出器である。
入射モニター光検出部６は、光源１から出射される光の時間的強度変化の影響を受けないように、安定にタンパク質結晶化溶液からの散乱光強度を計測するために用いられる。具体的に、入射モニター光検出部６は、入射光の一部を分割するためのビームスプリッタ等の光分割素子、例えば、カバーガラス等の薄いガラス平板を備え、この光分割素子によって分けられた一部の入射モニター光を検出するための光センサを備えている。さらに、入射モニター光検出部６は、光センサからの電気信号（アナログ信号）を増幅するための増幅器を備えている。
入射モニター光検出部６により、入射光をモニターすることで、入射光の時間的変動による散乱光の測定誤差を除去し、高精度の散乱光計測が可能となる。このために、入射モニター光検出部６により得られたモニター光の強度をＩ0とし、タンパク質結晶化溶液３１から測定された散乱光強度Ｉｓとの比、すなわち、Ｉｓ／Ｉ0を得て、相対的散乱光強度として測定することができる。
The incident monitor
The incident monitor
By monitoring the incident light by the incident monitor
なお、光源１が特に安定して動作する場合、特に入射光をモニターしなくてもよく、従って、入射モニター光検出部６を設置する必要はない。この場合には、相対的散乱光強度のデータとしては、測定された散乱光強度Ｉｓ自身を用いる。
ここで、光源１の発生ノイズが、例えば１０Ｈｚ〜２ＭＨｚの周波数範囲において、光出力に対して数％程度以下、特に１％以下であり、また、出射光強度の変動が例えば８時間で５％程度以下、特に３％程度以下のような場合であって、しかもタンパク質結晶化溶液の散乱光が極微弱ではなく、高いＳＮ比で散乱光計測が行える場合は、光源１が特に安定して動作するものとして、入射モニター光検出部６を設置しなくてもよい。
このように、使用する光源の出力値や出力の安定性、及び測定対象のタンパク質結晶化溶液の３１の散乱光強度に応じて、入射モニター光検出部６の設置・使用の有無を選択することが可能である。
In addition, when the
Here, the noise generated by the
In this manner, whether to install or use the incident monitor
なお、測定するタンパク質結晶化溶液からの散乱光の強度が特に微弱であり、計測のＳＮ比が良好でない場合には、微弱信号の計測法の一つである、いわゆるロックイン検出法を用いることができる。ロックイン検出法では、所定周波数で変調した光をタンパク質結晶化溶液３１に入射し、溶液からの散乱光の中で入射光の変調周波数と同期した信号成分のみを適宜増幅して検出する。
また、入射光の変調方法としては、光源の駆動ドライバーに変調信号を入力させ、光源から出射される光を直接変調する方法、あるいは、入射光の光路中に適宜周波数で光を通過・遮断する機構、例えばライトチョッパーを設置する方法を採用できる。光源の駆動ドライバーによって入射光を変調できない場合でも、ライトチョッパーによる入射光の変調は可能である。
光変調によるタンパク質結晶化溶液の散乱光の計測は、特に、微弱な散乱光の強度角度分布、すなわち、静的散乱光の計測に適した方法である。
If the intensity of the scattered light from the protein crystallization solution to be measured is particularly weak and the SN ratio of the measurement is not good, a so-called lock-in detection method, which is one of the weak signal measurement methods, is used. Can do. In the lock-in detection method, light modulated at a predetermined frequency is incident on the
As a method of modulating incident light, a modulation signal is input to a drive driver of the light source, and light emitted from the light source is directly modulated, or light is allowed to pass / block at an appropriate frequency in the optical path of incident light. A mechanism, for example, a method of installing a light chopper can be employed. Even when the incident light cannot be modulated by the driving driver of the light source, the incident light can be modulated by the light chopper.
The measurement of scattered light of a protein crystallization solution by light modulation is a method particularly suitable for measuring the intensity angle distribution of weak scattered light, that is, static scattered light.
測定散乱光導入部７は、タンパク質結晶化溶液から放射される散乱光、特に前方小角散乱光又は後方小角散乱光を、所定の散乱角度で散乱光検出部５へ導く部位である。
具体的には、測定散乱光導入部７は、溶液セル３０からの散乱光を正確に測定できるように、所定の前方小角又は後方小角の散乱角度で、測定すべき散乱光を散乱光検出部５へ導く。
また、測定散乱光導入部７は、他の散乱光や、迷光となる光学素子等からの他の散乱光が、散乱光検出部５へ入射するのを防止するように構成する。これは、タンパク質結晶化溶液と溶液セルからの前方小角散乱光又は後方小角散乱光の測定では、前方小角散乱光又は後方小角散乱光に比べて強度の著しく大きい透過光、及び反射光が測定の妨害となるためである。
The measured scattered
Specifically, the measurement scattered
The measured scattered
測定散乱角制御部８は、散乱光検出部５及び測定散乱光導入部７の、溶液セル３０に対する角度位置を設定・変化させる機能を備える部位である。
測定散乱角制御部８は、測定散乱角制御部８は、タンパク質結晶化溶液３１（図３Ａ）からの散乱光に対して測定する散乱角度を設定し制御することができる。
具体的には、測定散乱角制御部８は、所定の散乱角度範囲、特に前方小角の散乱角度において、タンパク質結晶化溶液３１（図３Ａ）からの、散乱角に対する散乱光の強度関数（散乱光強度分布）を測定する。
また、測定散乱角制御部８は、所定の散乱角度、特に前方小角の散乱角度で散乱光の時間的強度変化（時間的強度ゆらぎ）を測定することもできる。
The measurement scattering
The measurement scattering
Specifically, the measured scattering
Further, the measurement scattering
制御解析部９は、散乱光検出部５によって検出された散乱光による電気信号（アナログ信号）を増幅することで散乱光の強度を計測し、測定された散乱光の強度に応じた電気信号（アナログ信号）をデジタル信号に変換する部位である。この際、制御解析部９は、散乱光の計測では、タンパク質結晶化溶液からの散乱光が微弱な散乱光であっても、散乱光データとして取り扱えるように演算を行う。
また、制御解析部９は、入射モニター光検出部６により得られた、モニターした入射光の光強度に応じた電気信号（アナログ信号）をデジタル信号に変換することもできる。
さらに、制御解析部９は、測定したデータの記録、呼び出し、相対的散乱光強度の算出、データのグラフ化等の、測定データを演算・処理する機能を備える。これにより、タンパク質結晶化溶液の散乱光を解析、分析する。
また、制御解析部９は、入射角制御部４及び測定散乱角制御部８により、測定試料部３に入射する入射光の角度と、測定散乱光導入部７に導かれる散乱光の角度とを制御する。
The
The
Furthermore, the
Further, the
なお、入射光調整部２と、入射角制御部４と、入射モニター光検出部６と、測定散乱角制御部８とに関しては、いずれかを備えない構成とすることも可能である。
また、光源１をタンパク質結晶化分析装置Ｘに加えず、外部の装置から入射光を取得するように構成することも可能である。
Note that the incident
Moreover, it is also possible to configure so as to acquire incident light from an external device without adding the
（タンパク質結晶化分析装置Ｘの各機器の詳細構成）
次に、図２を参照して、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘを構成する各部について、より具体的に、好ましい各構成機器についての詳細な説明をする。
(Detailed configuration of each device of protein crystallization analyzer X)
Next, with reference to FIG. 2, detailed description will be given of each of the components constituting the protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention more specifically and preferable.
光源１は、光源のデバイスが小型であれば、タンパク質結晶化分析装置Ｘへの組み込みが容易となる。また、光源１に高効率の低電力駆動のレーザ光源を用いた場合、光源部からの発熱に対する特別な冷却対処を施す必要がなくなるため好適である。
光源１は、光散乱法によるタンパク質溶液の結晶化分析に適する光の波長を用いる。この波長としては、測定対象のタンパク質分子に固有の光吸収帯から離れた波長領域であることが好ましい。これは、タンパク質分子の吸収帯付近では、タンパク質凝集体による弾性散乱光が結晶化溶液中に他のタンパク質に吸収され、結晶化溶液から放射される測定散乱光の強度が著しく低下する恐れがあるためである。
このような光の波長の例として、まず、金属イオンを含まず、可視光領域に光吸収がないタンパク質等では、可視域であればどのような波長の光でも使用できる。なお、このようなタンパク質では、水溶液が無色透明に見える。
これに対して、金属イオンを含むタンパク質の多くは、可視光領域にも、これらの金属イオンに由来した光吸収のバンドがある。このような可視域に吸収帯を持つタンパク質の場合には、好ましくは、それらの吸収帯から離れた、吸収帯の波長領域の吸収が比較的小さい波長の光を用いる。なお、このような金属イオンを含むタンパク質や、様々な低分子を結合させたタンパク質、及びアミノ酸を修飾させた補欠分子を含むタンパク質などでは、結晶化溶液が呈色している。
また、多くのタンパク質には、チロシン（Ｔｙｒ）、トリプトファン（Ｔｒｐ）、フェニルアラニン（Ｐｈｅ）等の芳香族アミノ酸に由来する２８０ｎｍ付近の紫外波長域に大きな吸収帯がある。このため、これらの吸収帯から離れた波長領域を用いる必要がある。
さらに、測定対象のタンパク質が光吸収の無い、もしくは小さい波長域では、より短波長の光がタンパク質分子やその集合体でより強く散乱されるために、検出感度の面から、測定で用いる光源としては、できるだけ短波長であることが好ましい。
これは、光吸収が無いか小さい波長域において、タンパク質の屈折率は、波長が短くなるにつれて単調に大きくなる正常分散を示し、従って、より短波長で散乱強度が高いレーリー散乱（Ｒａｙｌｅｉｇｈ ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ）を示すためである。
一方、タンパク質の強い吸収帯付近では、その屈折率（複素屈折率の実部）が異常分散によって、著しく変化する。従って、タンパク質の強い吸収帯付近では、より短波長の波長が、散乱光測定の光波長として適するとは限らない。
なお、レーリー散乱は、光の波長より小さい粒子径の粒子による光の散乱であり、例えば、空が青く見えるのは、太陽光が大気でレーリー散乱されることによる。
The
The
As an example of the wavelength of such light, first, in a protein or the like that does not contain metal ions and does not absorb light in the visible light region, light of any wavelength can be used in the visible region. In such proteins, the aqueous solution appears colorless and transparent.
On the other hand, many proteins containing metal ions also have light absorption bands derived from these metal ions in the visible light region. In the case of such a protein having an absorption band in the visible region, it is preferable to use light having a wavelength that is far from the absorption band and has a relatively small absorption in the wavelength region of the absorption band. Note that the crystallization solution is colored in proteins including such metal ions, proteins in which various low molecules are bound, and proteins including prosthetic molecules in which amino acids are modified.
Many proteins have a large absorption band in the ultraviolet wavelength region near 280 nm derived from aromatic amino acids such as tyrosine (Tyr), tryptophan (Trp), and phenylalanine (Phe). For this reason, it is necessary to use a wavelength region away from these absorption bands.
Furthermore, in the wavelength range where the protein to be measured has no light absorption or a small wavelength, light of shorter wavelengths is more strongly scattered by protein molecules and aggregates thereof. Is preferably as short as possible.
This shows normal dispersion in which the refractive index of a protein monotonously increases as the wavelength becomes shorter in the wavelength range where there is no light absorption, and therefore, Rayleigh scattering with higher scattering intensity at shorter wavelengths. It is for showing.
On the other hand, in the vicinity of a strong absorption band of protein, the refractive index (real part of the complex refractive index) changes significantly due to anomalous dispersion. Therefore, near the strong absorption band of protein, a shorter wavelength is not always suitable as the light wavelength for scattered light measurement.
Rayleigh scattering is light scattering by particles having a particle diameter smaller than the wavelength of light. For example, the sky looks blue due to the fact that sunlight is Rayleigh scattered in the atmosphere.
上述のように、光源１では、測定対象のタンパク質の吸収特性に応じて、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘで使用する光源の波長を選択する。
光源１の出力には、特に制限はなく、測定対象のタンパク質結晶化溶液の散乱光自身の強度、使用する散乱光検出部５の光検出器の感度、及び散乱光計測で使用する増幅器の増幅度などに依存する。また、光源１は、駆動電源と光源本体を装置に組み込む上で適したサイズであることが好ましく、例えば数ｍＷ〜数十ｍＷ程度のレーザ光源が適する。
また、光源から出射される光の偏光性には、特に制限はなく、直線偏光や円偏光、及び楕円偏光などの偏光した光が利用でき、無偏光であっても良い。その中で特に、ＴＥ（ｓ）偏光やＴＭ（ｐ）偏光などの直線偏光が利用しやすい。また、タンパク質結晶化溶液のような溶液系の場合には、ＴＥ（ｓ）偏光の入射光による散乱光がより強いことが多いので、好ましくはＴＥ（ｓ）偏光に設定して使用する。しかしながら、タンパク質結晶化溶液の光散乱は、ＴＥ（ｓ）偏光に限定した現象ではないので、ＴＥ（ｓ）偏光の入射光でなくてもよい。
光源１には、光源本体内部で偏光させる機構を持った光源が使用できるが、光源の出射側の外部に、直線偏光素子、１／２波長板、１／４波長板などの偏光素子を設置して、対象タンパク質結晶化溶液に入射する光の偏光状態を調整することも可能である。この調整は、後述するように、入射光調整部２にて行うことができる。
光源１から、タンパク質結晶化溶液３１（図３Ａ）へ入射させるビーム光（入射光）は、平行な光、すなわちコリメート光が適する。入射光の広がり角は、できる限り小さくし、全角度で１ｍｒａｄ程度以下が好ましい。入射光自身の広がり角が大きすぎる場合、レンズ等で入射光を平行光にしようとしても、光ビーム径の拡大を避けられず、タンパク質結晶化溶液からの散乱光を高精度に角度分布測定するには適さない。
入射光のビームの形状には、特に制限はないものの、円形の光ビームを用いると、対称性が高く散乱光の受光や光軸調整が容易であるため特に好ましい。しかしながら、入射光のビームの形状は、楕円形や長方形状等であっても良い。この場合、入射光のビームの形状によって、使用する溶液セル３０の形状、測定散乱光導入部７を構成するスリット、ピンホール、虹彩絞り、及びこれらの組み合わせを用いて、透過させる光のビーム形状、散乱光検出部５の受光部の形状等を決定する。
高精度の散乱光計測には入射光の安定性が要求され、使用する光源の出力安定度は、１時間当たり数％程度以下であることが好ましい。さらに、散乱光の計測では、入射光の強度変化をモニターすることにより、入射光変動は除去できる。
光源１の本体と駆動電源とは、それらを装置に組み込むので、できるだけ小型であることが好ましい。駆動電源が光源本体と一体化した場合、それらが別個でケーブルで接続されている場合の機器があるが、どちらの場合でも装置に組み込める程度のサイズであれば、問題がない。
As described above, in the
The output of the
In addition, the polarization of light emitted from the light source is not particularly limited, and polarized light such as linearly polarized light, circularly polarized light, and elliptically polarized light can be used, and may be unpolarized light. Among them, in particular, linearly polarized light such as TE (s) polarized light and TM (p) polarized light is easily used. Further, in the case of a solution system such as a protein crystallization solution, scattered light due to incident light of TE (s) polarized light is often stronger, so that it is preferably set to TE (s) polarized light. However, the light scattering of the protein crystallization solution is not a phenomenon limited to TE (s) polarized light, and thus may not be TE (s) polarized incident light.
As the
The beam light (incident light) incident from the
The shape of the incident light beam is not particularly limited, but a circular light beam is particularly preferable because of its high symmetry and easy reception of scattered light and optical axis adjustment. However, the shape of the incident light beam may be elliptical or rectangular. In this case, depending on the shape of the incident light beam, the shape of the
High-precision scattered light measurement requires the stability of incident light, and the output stability of the light source used is preferably about several percent or less per hour. Furthermore, in the measurement of scattered light, incident light fluctuations can be removed by monitoring the intensity change of the incident light.
The main body of the
入射光調整部２は、偏光素子２ａ、及び光量調整フィルター２ｂから構成される。偏光素子２ａは、光源１から放射される光の偏光状態を調整する部位である。また、光量調整フィルター２ｂは、光源１から放射される光及び測定溶液に入射する入射光の強度を調整するＮＤフィルター等である。
より具体的に説明すると、光源１から出射された光は、測定対象のタンパク質結晶化溶液３１（図３Ａ）からの散乱光計測に適用するために、光量と偏光性を調整することが好ましい。上述したように、溶液の散乱光測定では、入射光は無偏光であってもよく、入射光の偏光性は必ずしも重要ではない。しかしながら、光源１から出射される光は、光源１の本体内部に偏光素子を備え、出射時には既に偏光性を持っている場合があるため、入射光調整部２により偏光性を適切に調整した方が、より再現性の良いデータが得られることが多い。
偏光素子２ａとしては、光源１から出射される光が無偏光である場合には、入射光の偏光性を調整するための各種の偏光板や偏光フィルターを利用する。この際、タンパク質結晶化分析のためには、偏光の消光比１／５００程度であっても、十分用いることができる。また、出射光が既に直線偏光している場合には、偏光素子２ａとして、１／２波長板等を用いることができる。これにより、偏光方向を任意の角度に設定でき、光学系に対して、電界ベクトルが水平であるＴＭ（ｐ）偏光、又は垂直であるＴＥ（ｓ）偏光を得られる。
また、光量調整フィルター２ｂとして、各種のフィルター、例えば、金属薄膜フィルター、誘電体フィルター等を用いることができる。光量調整フィルター２ｂは、透過率０．１％〜５０％までのＮＤフィルター等を用いることで、入射光の光量を容易に調整できる。光量調整フィルター２ｂの透過率は、光検出器の検出感度や検出信号の増幅率などに応じて求める。つまり、光量調整フィルター２ｂにより、光源１から出射される光の光量を、測定対象のタンパク質結晶化溶液３１からの散乱光が良好なＳＮ比で得られるように調整する。
The incident
More specifically, the light emitted from the
As the
Moreover, various filters, for example, a metal thin film filter, a dielectric filter, etc. can be used as the light
ここで、光源１からの出射された光を、測定対象の溶液セル３０に入射光として導入するために光路変更を行うことが好適である。
入射光光路変更部１５は、この光路変更のための、一群のミラー、プリズム、レンズ等の光学デバイスである。
具体的には、例えば、光源１からの出射光に対して入射角４５度で平面ミラーに入射するように、２枚一組の平面ミラー１５ａ、１５ｂを配置し、各々の平面ミラーで直角に光路変更させ、光を反転方向させるように構成できる。このようなミラーの配置によって、溶液セル３０へ入射光を導入するための光軸調整（アライメント）が容易になり、入射光学系の小型化が可能となるため、タンパク質結晶化分析装置Ｘを小型化することができる。
また、この入射光光路変更部１５において、入射光の一部を分岐して入射光をモニターすることも可能である。この入射光の分岐には、例えば、透過光と反射光を分路させるハーフミラー等を用いることができる。
たとえば、図２によると、入射光光路変更部１５の平面ミラー１５ａ、１５ｂの間に、ビームスプリッタ等の光分割素子、例えば、カバーガラス等の薄いガラス平板やハーフミラー等であるビームスプリッタ６ｂを備える構成が可能である。この場合、ビームスプリッタ６ｂからの反射光を、光センサー等である入射モニター光検出器６ａで検出することで、入射モニター光検出部６として機能させることができる。
なお、入射モニター光検出部６としては、入射光調整部２に光センサーを備えたり、その他の光路上の部位に光センサーを備えるような構成も可能である。
Here, it is preferable to change the optical path in order to introduce the light emitted from the
The incident light optical
Specifically, for example, a set of two
In addition, the incident light optical
For example, according to FIG. 2, a light splitting element such as a beam splitter, for example, a thin glass flat plate such as a cover glass or a
The incident monitor
さらに、ロックイン検出法による散乱光の検出を行うために、光源１から測定試料部３までの光路中に、光変調器１６とロックインアンプ１７とを備えることもできる。
光変調器１６は、溶液セル３０に入射される光を周期的にチョッピングするライトチョッパー等であり、周波数に応じて光量を変調する光変調器である。
ロックインアンプ１７は、溶液セル３０のタンパク質結晶化溶液３１からの散乱光を光検出部５で検出した信号を増幅する増幅器（アンプ）である。
このロックインアンプ１７は、光変調器１６にてチョッピングされた入射光に係る散乱光の信号を、光変調器１６の周波数を参照信号として増幅する「ロックイン検出法」の増幅に用いることもできる。
Further, in order to detect scattered light by the lock-in detection method, an
The
The lock-in
The lock-in
ここで、光路変更された入射光は、入射角制御部４により角度を調整した上で、溶液セル３０に導入する。そして、この溶液セル内のタンパク質結晶化溶液３１（図３Ａ）からの散乱光が、測定散乱角制御部８により角度を調整されて、測定散乱光導入部７に導入される。
このような角度の調整のため、入射角制御部４と測定散乱角制御部８とを、電動の回転ステージを用いて構成可能である。
この構成としては、例えば、２つの回転ステージの回転軸を一致させ、２段組に重ね合わせることによって一体化した、独立に回転移動できる２段回転ステージ（以下、θ−２θ回転ステージと呼ぶ）を用いることができる。
このθ−２θ回転ステージとしては、θ回転ステージ１４と２θ回転ステージ１８とを用いて構成することができる。
Here, the incident light whose optical path has been changed is introduced into the
In order to adjust such an angle, the incident
As this configuration, for example, a two-stage rotary stage that can be independently rotated and rotated by aligning the rotation axes of two rotary stages and superimposing them in a two-stage set (hereinafter referred to as a θ-2θ rotary stage). Can be used.
This θ-2θ rotation stage can be configured using a
たとえば、入射角制御部４としては、溶液セル３０へ入射する光の入射角を調整制御するための溶液セル３０を搭載したθ回転ステージ１４を用いて構成することができる。θ回転ステージ１４上には、溶液セル３０の回転軸合わせ調整機構、例えば２軸平面ステージ（ＸＹ軸ステージ）を備える。溶液セル３０の中心軸がθ回転ステージ１４の回転軸に一致するように、支持部材上の溶液セル３０の位置調整を行い、θ回転ステージ１４上に固定する。
また、測定散乱角制御部８としては、上記θ回転ステージの回転軸に一致した回転軸を持った２軸平面ステージである２θ回転ステージ１８を用いて構成することができる。この際、散乱光検出部５、及び測定散乱光導入部７は、２θ回転ステージ１８の回転軸と同じ軸で回転移動できるように、溶液セル３０から所定距離だけ離して２θ回転ステージ１８上に設置する。
より詳細に説明すると、このような構成の場合、溶液セル３０は、θ回転ステージ１４の回転軸上付近、例えば、θ回転ステージ１４の中央部に設置される。また、散乱光検出部５、及び測定散乱光導入部７は、２θ回転ステージ１８の回転軸から離れた位置に設置される。この際、例えば、散乱光検出部５及び測定散乱光導入部７は、２θ回転ステージ１８に取り付けた板状のアーム上に設置される。
For example, the incident
The measurement scattering
More specifically, in the case of such a configuration, the
さらに、入射角制御部４及び測定散乱角制御部８は、それぞれθ回転ステージ１４及び２θ回転ステージ１８の角度位置を電動にて制御するための回転ステージ駆動制御器であるドライバー４ａ、８ａを備える。
ドライバー４ａ、８ａは、制御解析部９のパーソナルコンピュータ（Ｐｅｒｓｏｎａｌ Ｃｏｍｐｕｔｅｒ、ＰＣ）であるＰＣ９ｂによって制御される。
なお、入射角制御部４及びθ回転ステージ１４を備えない構成とすることも可能である。この場合、測定試料部３の溶液セル３０を、測定散乱角制御部８を構成する２θ回転ステージ１８の中心軸上に設置し、入射光が常に所定の入射角、例えば、垂直入射で溶液セル３０に入射するように固定する。
Further, the incident
The
It is also possible to adopt a configuration in which the incident
測定試料部３の溶液セル３０は、タンパク質結晶化溶液を収容し、散乱光を計測するための容器（溶液セル）である。溶液セル３０は、θ回転ステージ１４上に固定される。
溶液セル３０は、測定対象の溶液が微量で、高濃度であっても、溶液からの散乱光を効率良く放出させるように構成する。
溶液セル３０の具体的な構造について後述する。
The
The
A specific structure of the
ここで、溶液セル３０へ入射する入射光としては、平行光、すなわちコリメート光が好ましい。
これは、溶液セル３０の入射側の側壁面が、曲率を有する曲面である場合、コリメート光でない非平行光がタンパク質結晶化溶液３１（図３Ａ）を通過すると、溶液セル３０へ入射する際にこの入射側の曲面で屈折し、溶液からの散乱光の放射角強度分布を正確に測定することが困難となるためである。
また、溶液セル３０の透過側の側壁面が曲面である場合も、溶液を通過した透過光が、溶液セル３０の出射側曲面で屈折し、屈折して非平行となった透過光は、前方小角散乱光又は後方小角散乱光の検出を妨げる恐れがある。
このため、入射光及び透過光の広がり角を可能な限り低く抑えることが好ましい。
Here, the incident light incident on the
This is because when the incident side wall surface of the
Further, even when the side wall surface on the transmission side of the
For this reason, it is preferable to keep the spread angle of incident light and transmitted light as low as possible.
測定散乱光導入部７は、調整された角度での散乱光のみを取り出す部位である。このため、測定散乱光導入部７は、タンパク質結晶化溶液３１を通過した透過光、及び溶液セル３０の入射側の光路上に設置された各光学素子等からの散乱光などの迷光を避けて、散乱光検出部５に導く。
測定散乱光導入部７は、所定距離を隔てて平行に置かれた複数の光学素子である、スリット群、ピンホール群、または虹彩絞り群、又はこれらの組み合わせから構成される。これは、１つのスリットやピンホール、又は虹彩絞りを溶液セル３０と散乱光検出部５との間に配置しただけでは、他の散乱光を防止することは困難だからである。
測定散乱光導入部７は、例えば光学台での使用に適した複数の金属製のスリット板であるスリット群１１等により構成され、溶液セル３０と散乱光検出部５との間の所定距離を隔てた直線上に配置される。
散乱光を測定する散乱光取込み角度は、溶液セル３０と散乱光検出部５の間に配置した測定散乱光導入部７の光学素子の位置と開口径に依存する。
タンパク質結晶化溶液へ照射されるコリメート光のビーム径が十分小さく、溶液からの散乱光が点光源の放射と近似できる場合において、例えば、測定散乱光導入部７として、例えば、６０ｍｍ間隔で２つの虹彩絞り群が設置され、後方の虹彩絞りがタンパク質結晶化溶液３１から１８０ｍｍ離れた位置にあり開口径が１ｍｍφである場合、測定される散乱光の取り込み角度は、立体角で約２．４×１０−５ｓｒである。この値は、平面角では約０．３２°に相当する。
The measured scattered
The measurement scattered
The measurement scattered
The angle at which the scattered light is measured for measuring the scattered light depends on the position and the aperture diameter of the optical element of the measured scattered
In the case where the beam diameter of the collimated light irradiated to the protein crystallization solution is sufficiently small and the scattered light from the solution can be approximated to the radiation of a point light source, for example, as the measurement scattered
測定散乱光導入部７に導入された散乱光は、散乱光検出部５にて検出され、例えば、ロックインアンプ１７内の増幅器により適宜増幅され、アナログ電圧信号としてＡ／Ｄ変換器９ａに入力される。
散乱光検出部５を構成する主要な散乱光検出素子としては、使用する光の波長に対し十分な分光感度を持ち、タンパク質結晶化溶液の微弱な散乱光を検出できる十分な受光感度を持った光検出素子が適する。
散乱光検出部５に適用できる好ましい光検出素子としては、フォトダイオード（ＰＤ、Ｐｈｏｔｏ Ｄｉｏｄｅ）や光電子増倍管（ＰＭＴ、Ｐｈｏｔｏｍｕｌｔｉｐｌｉｅｒ Ｔｕｂｅ）等が挙げられる。比較的強い散乱光の場合には、例えばｐｎ接合型ＰＤ、特にＳｉフォトダイオードが好ましく、散乱光を安定に測定するために逆バイアス動作で散乱光の検出を行う。
また、微弱散乱光の場合、例えばＰＭＴ、特に高圧電源回路を内蔵した小型のメタルパッケージＰＭＴが好ましい。さらに、アバランシェ増倍現象を用いて受光感度を上昇させたフォトダイオードであるアバランシェフォトダイオードを用いることもできる。
The scattered light introduced into the measured scattered
The main scattered light detection element constituting the scattered
As a preferable light detection element applicable to the scattered
In the case of weakly scattered light, for example, a PMT, particularly a small metal package PMT with a built-in high-voltage power supply circuit is preferable. Furthermore, an avalanche photodiode, which is a photodiode whose light receiving sensitivity is increased by using the avalanche multiplication phenomenon, can also be used.
また、タンパク質結晶化溶液３１の散乱光強度を静的に測定する静的散乱光（ＳＬＳ、Ｓｔａｔｉｃ Ｌｉｇｈｔ Ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ）測定では、例えば、光変調器１６としてライトチョッパーを用いて、ロックインアンプ１７との組み合わせたロックイン検出法によって、微弱な散乱光を高感度に計測することができる。このような光変調によるロックイン検出法の場合、使用する散乱光検出部５の光検出器の応答速度や周波数特性のような応答性に関して配慮する必要がある。
なお、光源の出力が安定であり、ある程度のパワーを持った、例えば数十ｍＷ程度以上の光源を使用して、タンパク質結晶化溶液から検出に十分な強度の散乱光が得られる場合には、上記のロックイン検出法を用いなくても、タンパク質結晶化溶液のＳＬＳ測定を十分に行うことが可能である。この場合、従って本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘにおいて、光変調器１６であるライトチョッパーと、ロックインアンプ１７とを除くことができ、分析装置を簡略化できる。
Further, in static scattered light (SLS) measurement in which the scattered light intensity of the
In addition, when the output of the light source is stable and has a certain level of power, for example, using a light source of about several tens of mW or more, scattered light with sufficient intensity for detection can be obtained from the protein crystallization solution. Even without using the above lock-in detection method, it is possible to sufficiently perform SLS measurement of a protein crystallization solution. In this case, therefore, in the protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention, the light chopper that is the
一方、タンパク質結晶化溶液の散乱光の時間的変化の測定（動的散乱光（ＤＬＳ、Ｄｙｎａｍｉｃ Ｌｉｇｈｔ Ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ）測定とも呼ぶ）を行う場合には、散乱光検出部５の応答性を考慮し、適切な検出器を選択する。
応答性に優れた光検出器としては、ｐｎ接合間に真性半導体層を持ったＰＩＮフォトダイオード、アバランシェフォトダイオード、及びＰＭＴ等が挙げられ、測定する散乱光のゆらぎ時間やゆらぎ周波数に応じて光検出器を選択する。
On the other hand, when measuring the temporal change in the scattered light of the protein crystallization solution (also referred to as dynamic light scattering (DLS) measurement), the response of the scattered
Photodetectors with excellent responsiveness include PIN photodiodes, avalanche photodiodes, and PMTs that have an intrinsic semiconductor layer between pn junctions. Select a detector.
図２によると、散乱光検出部５からの散乱光の信号が増幅されたアナログの出力電圧信号は、アナログ／デジタル（Ａ／Ｄ）変換インタフェースであるＡ／Ｄ変換器９ａを介してデジタル信号に変換される。直接ＰＣ９ｂは、直接、このデジタル信号を測定データとして取り込むことができる。この際には、Ａ／Ｄ変換インタフェースの入力許容レベル以内に散乱光のアナログ電圧信号の増幅度を調整し、直接、Ａ／Ｄ変換器９ａをへ測定信号を入力する。
この構成では、電圧計測器を必要としないので計測機器の省略化ができるため好適である。
また、ライトチョッパーである光変調器１６とロックインアンプ１７とを組み合わせてロックイン検出法によって散乱光測定をする場合、まず、散乱光検出部５からの変調電気信号を前段増幅器（プリアンプ、図示せず）で増幅する。この上で、ロックインアンプ１７により、増幅された変調電圧信号の変調同期成分がさらに増幅され、計測される。この場合でも、ロックインアンプ１７からのアナログ出力信号をＡ／Ｄ変換器９ａを通じてＰＣ９ｂに散乱光データを取り込むことができる。
According to FIG. 2, the analog output voltage signal obtained by amplifying the scattered light signal from the scattered
This configuration is preferable because it does not require a voltage measuring instrument, so that the measuring device can be omitted.
Further, when the scattered light measurement is performed by the lock-in detection method by combining the
なお、散乱光の電気信号を、Ａ／Ｄ変換器９ａで直接入力せず、別途、増幅器（図示せず）によって適宜増幅し、電圧計測器（図示せず）で計測してもよい。
この増幅器としては、散乱光検出部５からの電気信号が電流信号であれば、電流―電圧変換型増幅器を、電圧信号であれば、電圧―電圧型増幅器を使用する。これにより、散乱光強度に比例した電圧信号が得られ、電圧計測器によって計測される。
電圧計測器としては、各種のアナログ電圧計、デジタルマルチメータ、エレクトロメータなどが使用できる。
増幅器からの出力データは、ＵＳＢ、ＧＰＩＢ通信、ＲＳ２３２Ｃ通信等のインタフェースを介して制御解析部９のＰＣ９ｂへ取り込むことができる。
The electric signal of the scattered light may not be directly input by the A /
As this amplifier, a current-voltage conversion type amplifier is used if the electrical signal from the scattered
Various analog voltmeters, digital multimeters, electrometers, etc. can be used as the voltage measuring instrument.
The output data from the amplifier can be taken into the
ＰＣ９ｂは、ＰＣ／ＡＴ互換機やＭＡＣ互換機等のＰＣやハンドヘルドデバイス等であり、タンパク質結晶化溶液の散乱光に関する計測・収集したデータを分析し、例えば補助記憶装置であるハードディスク等に記憶する機能を備える。
また、ＰＣ９ｂは、計測したデータをグラフとして表示部（ディスプレイ）やプリンタ（図示せず）に画像として表示する機能を備えている。
The
Further, the
（本発明の実施の形態に係る溶液セル３０の構成）
次に、図３Ａの側断面図と図３Ｂの概正面図とを参照して、本発明の実施の形態に係る測定試料部３の溶液セル３０の構成の一例について説明する。
溶液セル３０は、上述したように、光散乱計測のためにタンパク質結晶化溶液を収容するための溶液セルである。
溶液セル３０は、具体的には、例えば２つの透明な溶液セル基板である平板状基板３２、３３で適宜厚さを持った平板状のスペーサー３４を挟み、このスペーサー３４によって形成される基板間の間隙にタンパク質結晶化溶液３１を注入し保持する、サンドイッチ型構造で構成される。
これにより、スペーサー３４と平板状基板３２、３３とは、タンパク質結晶化溶液３１を保持する容器になる。
(Configuration of the
Next, an example of the configuration of the
As described above, the
Specifically, the
Thereby, the
溶液セル３０の平板状基板３２、３３の材料としては、入射光側と散乱光放射側で、測定光領域で透過性に優れた光学材料が好ましい。具体的には、溶液セル３０の材料は、各種透明ガラスや透明プラスチックなどが適切である。
ガラスは、可視光領域で透過性が高く、均質性に優れ、化学的に安定している材料である。特に、ＢＫ−７やパイレックス（登録商標）等のホウ珪酸ガラス、及び紫外線領域にも高い透過性を有する石英ガラスが特に好ましい。
プラスチックは、硬いガラスと異なり、容易に曲げられるフレキシブルな材料である。光透過性に優れ、化学的に安定なプラスチック材料としては、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、ポリ塩化ビニリデン、及びポリエチレン等の重合高分子化合物が好ましい。
As a material for the
Glass is a material that is highly transparent in the visible light region, excellent in homogeneity, and chemically stable. In particular, borosilicate glass such as BK-7 and Pyrex (registered trademark), and quartz glass having high transparency in the ultraviolet region are particularly preferable.
Unlike hard glass, plastic is a flexible material that can be bent easily. Polymeric polymer compounds such as polyethylene terephthalate (PET), polyvinylidene chloride, and polyethylene are preferable as plastic materials that are excellent in light transmittance and chemically stable.
測定対象の溶液セル３０を通過する光路長は、短く、容量も微量であることが好ましい。これは、タンパク質結晶化溶液３１が高濃度の場合、溶液中の多重散乱の効果を可能な限り低減するためである。
具体的には、溶液セル３０の光路長として、溶液に入射する光のビーム径程度、例えば１ｍｍ以下、特に０．５ｍｍ以下が好ましい。このため、光散乱測定で使用するタンパク質結晶化溶液３１の容量は、数十μＬ程度以下が好ましい。具体的には２０〜３０μＬ程度以下で測定可能である。
なお、溶液セル３０として、透過光による光吸収測定用に市販されている角型や円筒形などの溶液セルを使用することも可能ではある。しかしながら、多くの市販の溶液セルの場合、溶液セル３０を通過する入射光の光路長は、例えば５ｍｍ〜１ｃｍ程度と長く、数ｍＬ以上の溶液を必要とするため、光吸収測定用の溶液セル３０として使用することは適さない。
It is preferable that the optical path length passing through the
Specifically, the optical path length of the
In addition, as the
タンパク質結晶化溶液３１は、測定・分析対象のタンパク質結晶化溶液である。
一般的に、タンパク質の結晶は、過飽和溶液から析出させて作製される。この際、通常は、タンパク質を含む溶液に塩類、有機溶媒、あるいは水溶性高分子などの沈殿剤（結晶化剤）を添加して、タンパク質溶液を過飽和状態にしてタンパク質を結晶化する。
このため、本実施形態のタンパク質結晶化溶液３１は、タンパク質と、タンパク質を結晶化するための沈殿剤（結晶化剤）とを含む溶液、或いは、それらを含む各溶液の組み合わせ（混合）である。また、タンパク質結晶化溶液３１には、ｐＨ値を制御するために、タンパク質の結晶化に適した緩衝液（バッファー）を使用する。
また、タンパク質結晶化溶液３１としては、バッチ法及び蒸気拡散法のいずれのタンパク質結晶化方法に係る試料溶液も用いることができる。ここで、バッチ法とは、例えば、タンパク質と沈殿剤（結晶化剤）とを混合させたタンパク質結晶化溶液を溶液セル３０内に封止して、タンパク質を結晶化させる方法である。また、蒸気拡散法とは、タンパク質含有溶液と沈殿剤（結晶化剤）含有溶液、及び緩衝液など必要な各溶液を溶液セル３０の中に離した状態で注入し封止して、タンパク質を結晶化させる方法である。
タンパク質結晶化溶液３１の封入方法としては、例えば、タンパク質とその沈殿剤（結晶化剤）を混合させた結晶化溶液作成し、溶液セル３０中に注入し封止することができる。
あるいは、例えば、先にタンパク質含有溶液を溶液セル３０に注入し、後に例えば光散乱計測による分析の直前に、溶液セル３０に設けた注入口から沈殿剤（結晶化剤）を含む溶液を注入してもよい。
この場合、例えば溶液セル３０に振動を与え、溶液セル３０中で両者の溶液を良く混合させる。なお、溶液セル３０に注入する各溶液の順序は、特に制限はなく、上述の説明とは逆であってもよい。
The
In general, protein crystals are prepared by precipitation from a supersaturated solution. In this case, normally, a protein, a salt, an organic solvent, or a precipitating agent (crystallization agent) such as a water-soluble polymer is added to the protein-containing solution to bring the protein solution into a supersaturated state to crystallize the protein.
For this reason, the
Moreover, as the
As a method for enclosing the
Alternatively, for example, the protein-containing solution is first injected into the
In this case, for example, the
平板状基板３２は、溶液セル３０に入射光が入射する側の部材である。また、反対側の平板状基板３３は、溶液セル３０から透過光が出射され、また散乱光が放射される側の部材である。
平板状基板３２及び平板状基板３３は、光透過性が高いことが望ましく、入射光や散乱光が吸収されない材料を選択することが好ましい。
また、平板状基板３２及び平板状基板３３は、同じ材料である必要は特になく、光透過性が高い材料であれば両者が異なった材料で構成してもよい。
同じ材料の透明部材で平板状基板３２、３３を用いた場合には、溶液セル３０において入射側と出射側の区別はなく、どちらから光を入射させてもよい。
平板状基板３２、３３としては、透明で均一な材料であれば良い。透明ガラス、透明プラスチック等を用いることができる。平板状基板３２及び平板状基板３３がガラスの場合は、ホウケイ酸ガラスや石英ガラス等が特に好ましく、顕微鏡用の薄いカバーガラス等が特に利用しやすい。この際、厚さ０．２ｍｍ程度以下のカバーガラスが特に好ましい。
The
The
The
When the
The
スペーサー３４としては、ガラスをはじめ、ポリスチレン、ポリプロピレン、フッ素ゴムやシリコンゴム等が適する。その中で、シリコンゴムが特に好ましく、シートやフイルムを使用する。シリコンゴムは、平板状基板３２、３３にガラス基板を用いた際の密着性も良好であり、スペーサーの材料として特に好ましい。また、シリコンゴムは、数十分間程度の測定時間であれば、隙間からの水分蒸発で結晶化溶液の各種溶質の濃度変化も問題にならない。
スペーサー３４は、例えば、平板状のシリコンゴムに、例えば円形や楕円形、及び長方形等の任意形状の溝孔を形成する。この上で、スペーサー３４を２つの平板状基板３２、３３で挟むことによって形成される溝孔空間に、タンパク質結晶化溶液３１を収容することができる。すなわち、この溝孔空間にタンパク質結晶化溶液３１を注入して保持することで、容器として機能する。この際、スペーサー３４にシリコンゴムを用いることで、タンパク質結晶化溶液３１を収容するための溝孔、溶液を注入するための注入口、あるいは排出するための排出口、及びそれらの流路などを容易に加工形成できる。
また、タンパク質結晶化溶液３１を収容するスペーサー３４の溝孔の大きさは、入射光のビームよりも大きくすることが好適である。これは、溝孔が入射光ビームの大きさよりも小さい場合、タンパク質結晶化溶液に照射する光の一部がスペーサー部分に当たり、溶液からの散乱光に加え、スペーサーから散乱光が生じることになり、散乱光測定の大きなノイズになるので、好ましくないためである。
As the
The
Moreover, it is preferable that the size of the groove of the
ここで、バッチ法によるタンパク質結晶化を行う際には、例えば、タンパク質含有溶液と沈殿剤（結晶化剤）含有溶液とを混合させたタンパク質結晶化溶液３１を溶液セル３０内に封じ込めた状態で光散乱計測を行う。
具体的には、上述のようにスペーサー３４内に溝孔を設け、２つの平板状基板３２、３３を用いてタンパク質結晶化溶液３１を封止する。この上で、タンパク質結晶化溶液３１の状態を光散乱法で計測する。
この際、溶液セル３０に溶液を注入した後、結晶化溶液からの蒸発を防止するために、例えばパラフィンオイル等でシールすることもできる。
数十時間以上の長時間、タンパク質溶液を溶液セル３０に保持した状態で使用する場合等では、さらに液漏れ防止のために２枚の平板状基板３２、３３とスペーサー３４との間をシリコングリース等でシールすることもできる。
さらに、溶液セル３０から溶液が漏れ出ないように、スペーサーと基板とを強く密着させ、場合によっては適宜の留め金具等で溶液セル３０をクリップする。また、溶液漏れを防止するために、例えばグリース等で密着する側面部分をシールすることが好適である。この漏れ防止用のグリースとしては、シリコングリースやフッ素グリース等が使用できる。
Here, when performing protein crystallization by the batch method, for example, a
Specifically, a groove is provided in the
At this time, after injecting the solution into the
In the case where the protein solution is used while being held in the
Further, the spacer and the substrate are closely adhered so that the solution does not leak from the
また、例えば、タンパク質を蒸気拡散法で結晶を行っている際には、バッチ法と同様に同一の溶液セル３０の中に必要な各溶液を離した状態で注入して、その後、封止し、光散乱計測により結晶化溶液状態を分析する。
なお、溶液セル３０内に予めタンパク質結晶化溶液を封止するバッチ法を使用せず、分析の際にタンパク質結晶化溶液を作製するためのタンパク質、沈殿剤（結晶化剤）、緩衝剤等の各物質を含む溶液を、溶液セル３０内に注入したり、排出したりできるようにして、タンパク質結晶化溶液の分析を行うことも可能である。このような構成の場合、溶液セル３０に溶液を注入、あるいは排出するための挿入口や排出口を備えるようにする。この場合、挿入口と排出口を用いて、タンパク質結晶化溶液の分析中に、各物質の濃度を調整したり、変化させたりして分析を行うことも可能になる。
For example, when protein is crystallized by the vapor diffusion method, each necessary solution is injected into the
In addition, without using a batch method in which the protein crystallization solution is sealed in the
〔散乱光の取得方法〕
次に、図４を参照して、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘによる溶液セル３０からの散乱光の取得方法について説明する。
図４は、図３Ａのタンパク質結晶化の溶液セル３０を使用した場合の測定試料部３の一例を示している。また、図４では、タンパク質結晶化の溶液セル３０における、入射光、透過光、及び散乱光の様子を表したもので、後述する、例えば半円柱形プリズム４０（図５）のような透明体ブロックを用いない場合の概念図である。
溶液セル３０への光入射に透明体ブロックを用いない場合、入射角制御部４のθ回転ステージ１４上の固定ホルダー等の所定の固定手段によりに溶液セル３０を固定する。
この上で、タンパク質結晶化溶液中を通過する光が平行になるように、溶液セル３０の入射側の側壁平面部分に平行な光を垂直に入射させる。
その入射角度の調整を入射角制御部４の溶液セル３０を載せ固定したθ回転ステージ１４によって行う。
タンパク質結晶化溶液３１からの前方小角散乱光又は後方小角散乱光の散乱角度分布（放射分布）を高精度に測定するためには、θ回転ステージ１４と２θ回転ステージ１８の回転の中心軸が一致する、すなわち共軸の回転軸であることが必要である。また両方の回転ステージ、特に前方小角散乱光又は後方小角散乱光の散乱角度分布を測定するために使用する２θ回転ステージ１８は、微小角度、例えば０．０２度程度で回転位置を制御することが好適である。
回転ステージを微小角度で制御するには、５相、あるいは２相のステッピング（パルス）モーター等で駆動する回転ステージが好ましい。
より高精度の回転角精度で位置決め制御をするためには、５相のステッピング（パルス）モーターが特に好ましい。たとえば、５相ステッピング（パルス）モーターでは、本体への信号１パルス当たり０．７２度の回転移動量（基本ステップ）が得られる。この上で、回転ステージの駆動で使用するギヤのギヤ比の設定にり、例えば０．００５度という高精度の回転ステップ角を設定することも可能である。
しかし、実際には、回転ステージの重量、搭載された散乱光検出部５やスリット群１１等の機器の重量、及び回転ギヤ等の結合状態等が原因で、必ずしも上記のような高精度の移動角度や回転位置決めが得られないことがある。このため、移動角度や回転位置決め等の性能としては、性能に余裕を持った回転ステージを使用することが好適である。
測定散乱角制御部８の２θ回転ステージ１８、及び入射角制御部４のθ回転ステージ１４の各制御は、各回転ステージのモーターを駆動するための駆動ドライバーであるドライバー４ａ、８ａ（図２）によって行う。具体的には、図２に示すように、それぞれ回転ステージ１４、１８を駆動するモーター駆動用のドライバー４ａ、８ａを、ＰＣ９ｂによって制御操作する。ＰＣ９ｂからドライバー４ａ、８ａへ、モーター駆動用ドライバーに制御信号を送ることで、回転移動角度、回転角による位置決め、散乱光の角度分布測定のためのステップ角度などの制御を行うことができる。
[Acquisition of scattered light]
Next, with reference to FIG. 4, the acquisition method of the scattered light from the
FIG. 4 shows an example of the
When the transparent body block is not used for light incidence on the
Then, parallel light is vertically incident on the side wall plane portion on the incident side of the
The incident angle is adjusted by the
In order to measure the scattering angle distribution (radiation distribution) of the forward small angle scattered light or backward small angle scattered light from the
In order to control the rotary stage at a minute angle, a rotary stage driven by a five-phase or two-phase stepping (pulse) motor or the like is preferable.
A five-phase stepping (pulse) motor is particularly preferable in order to perform positioning control with higher accuracy of rotational angle. For example, in a 5-phase stepping (pulse) motor, a rotational movement amount (basic step) of 0.72 degrees per pulse of a signal to the main body is obtained. On this basis, it is possible to set a highly accurate rotation step angle of, for example, 0.005 degrees by setting the gear ratio of the gear used for driving the rotary stage.
However, in actuality, due to the weight of the rotating stage, the weight of the mounted scattered
Each control of the
（透明体ブロックを用いた散乱光の取得方法の例）
ここで、図５を参照して、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘによる溶液セル３０からの散乱光の取得方法として、透明体ブロックを用いる例について説明する。
図５は、図３Ａのタンパク質結晶化の溶液セル３０を使用した測定試料部３における、入射光、透過光、及び散乱光の関係を表している。
透明体ブロックに溶液セル３０を装着する場合には、溶液へ入射する光が平行になるように、レンズ等を用いて光を透明体ブロック側へ入射させる。
図５の例のように透明体ブロックが半円柱形プリズム４０であり、図３Ａの例のように溶液セル３０が平板状である場合には、溶液セル３０を装着した半円柱形プリズム４０の入射側の所定位置に、例えば円筒面平凸レンズ（シリンドリカルレンズ）や球面凸レンズ等であるレンズ４１を設置し、透明体ブロック側から入射させる光がコリメートビーム光で溶液セル３０を通過するようにする。
(Example of how to obtain scattered light using a transparent block)
Here, with reference to FIG. 5, an example in which a transparent body block is used as a method of acquiring scattered light from the
FIG. 5 shows the relationship between incident light, transmitted light, and scattered light in the
When the
When the transparent body block is a
図５は、透明体ブロックとして、半円柱形プリズム４０を用いた場合における、入射光、透過光、及び散乱光の様子を示している。図５の例では、半円柱形プリズム４０の平面部分に、タンパク質結晶化のための溶液セル３０を密着固定している。また、溶液セル３０へ平行な光を入射させるために、半円柱形プリズム４０の曲面である側面側に適宜の焦点距離を持ったレンズ、例えば円筒面平凸レンズのレンズ４１（レンズ部）を配置している。
図５では、半円柱形プリズム４０を入射角制御部４のθ回転ステージ上１４に固定している。半円柱形プリズム４０は、例えば固定ホルダーを用いて固定する。
この上で、溶液セル３０は、所定の手段で半円柱形プリズム４０に装着し、半円柱形プリズム４０を介して光を入射させている。溶液セル３０は、半円柱形プリズム４０の平面部、具体的には半円柱形プリズムの側面平面へ、光学的に接続する接着方法によって張り合わせる。
半円柱形プリズム４０に溶液セル３０を光学的に接続させるには、半円柱形プリズム４０の材料と溶液セル３０の構成材料が例えばＢＫ−７ガラスなどのガラスである場合、ガラスの屈折率に等しい適宜の屈折率整合オイル等を用いて、半円柱形プリズム４０へ溶液セル３０を密着させ固定する。
屈折率接合オイルは、光学ガラス材料と同じ屈折率を持ち、粘性を有するが容易には固化しないオイルを用いる。特に、半円柱形プリズム４０と溶液セル３０の材料が、光学ガラス材料であれば、光学顕微鏡用の屈折率整合オイルを使用可能である。
これにより、接合部分で散乱光が発生しないようにでき、さらにまた、半円柱形プリズム４０に装着した溶液セル３０を容易に取り外しできるようにすることができる。
FIG. 5 shows the state of incident light, transmitted light, and scattered light when a
In FIG. 5, the
Then, the
In order to optically connect the
As the refractive index bonding oil, an oil having the same refractive index as that of the optical glass material and having viscosity but not easily solidified is used. In particular, if the material of the
Thereby, scattered light can be prevented from being generated at the joint portion, and the
また、半円柱形プリズム４０のような半円柱形等の湾曲した側面から光を入射させる場合、円筒面平凸レンズのレンズ４１として、適切な焦点距離と口径の凸レンズ等を入射側に備えるようにする。この円筒面平凸レンズのレンズ４１により、溶液セル３０中のタンパク質結晶化溶液３１を通過する光が平行になるように、入射光の形状を調整することができる。
たとえば、半円柱形プリズム４０が屈折率約１．５０のガラス製の半径１０ｍｍの半円柱形プリズムである場合、レンズ４１として、入射側に焦点距離１３０ｍｍであるシリンドリカルレンズ又は凸レンズを半円柱形プリズム４０の回転中心軸から距離約１６０ｍｍの位置に配置して、溶液セル３０に平行な入射光を入射させる。
溶液セル３０に入射する入射光は、溶液セル３０の入射側の面で光が屈折しないような入射角度で入射することが望ましい。溶液セル３０の入射側が入射光ビーム径に対して平面である場合には、溶液セル３０面での屈折が避けられる入射角、すなわち、垂直入射が特に好ましい。
従って、入射光が、溶液セル３０に密着させた半円柱形プリズム４０側から、溶液セル３０へ垂直に入射するように、入射角制御部４構成のθ回転ステージをステッピング（パルス）モーターで駆動することによって、溶液セル３０へ入射する光の入射角度を調整する。
In addition, when light is incident from a curved side surface such as a semi-cylindrical prism such as the
For example, when the
The incident light incident on the
Therefore, the θ rotation stage of the incident
なお、タンパク質結晶化溶液の散乱光測定では、光学プリズム等の透明体ブロック側から光を入射し、溶液セル３０側から散乱光を測定してもよい。また、反対に、溶液セル３０側へ光を入射し、透明体ブロック側から散乱光を測定してもよい。さらに、使用する透明体ブロックの形状、溶液セル３０の形状、及び入射光の形状などに応じて、いずれかの測定配置を選択することが好適である。
透明体ブロックとしては、光透過性が良ければ、特に材料に制限はない。しかしながら、溶液セル３０の構成材料と同じ、例えば透明性の良いガラスを用いることで、溶液セル３０に密着し装着することができる。
また、透明体ブロックとしては、例えば、半円柱形、台形、直方体形、及び立方体形等の光学プリズム等が使用できる。透明体ブロックが台形や直方体形や立方体形のプリズムであり、これらのプリズムの平面部よりコリメート光を垂直に入射させる場合には、透明体ブロックの入射側には、特にシリンドリカルレンズや球面凸レンズ等を設置する必要もなく、溶液セル３０が装着された台形プリズムへの入射光は、平行光ビームの状態で溶液セル３０へ入射させられる。
また、透明体ブロックは、入射角制御部４構成のθ回転ステージ１４に固定しておき、溶液セル３０を支持する機能を備えることもできる。
なお、入射角制御部４においてθ回転ステージ１４を用いない場合、透明体ブロックは、測定散乱角制御部８の２θ回転ステージ１８の中心軸上に設置しておき、溶液セル３０を支持する機能を備えることもできる。
In the scattered light measurement of the protein crystallization solution, light may be incident from the transparent block side such as an optical prism and the scattered light may be measured from the
The transparent body block is not particularly limited as long as the light transmittance is good. However, by using the same material as the constituent material of the
Moreover, as a transparent body block, optical prisms, such as a semi-cylinder shape, a trapezoid shape, a rectangular parallelepiped shape, and a cube shape, etc. can be used, for example. When the transparent block is a trapezoidal, rectangular parallelepiped, or cubic prism, and collimated light is incident vertically from the plane part of these prisms, the cylindrical block, spherical convex lens, etc. The incident light to the trapezoidal prism on which the
Further, the transparent body block may be fixed to the
When the
〔タンパク質結晶化溶液３１の測定・分析処理〕
次に、図６を参照して、タンパク質結晶化溶液の分析には、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘを用いて、散乱角を解析し、タンパク質結晶化溶液の結晶化状態を分析する測定・分析処理について記載する。
[Measurement and analysis of protein crystallization solution 31]
Next, referring to FIG. 6, for the analysis of the protein crystallization solution, the scattering angle is analyzed by using the protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention, and the protein crystallization solution is crystallized. Describes the measurement and analysis process for analyzing the state.
本実施形態のタンパク質結晶化分析装置Ｘは、前方小角散乱光又は後方小角散乱光により、タンパク質結晶化溶液を分析する装置である。
ここで、上述のように、光散乱計測によるタンパク質結晶化溶液の状態分析には、コロイド粒子のような微粒子の場合よりも、高感度かつ高精度の光散乱計測技術が要求される。
本発明の発明者らは、鋭意実験と開発を行った結果、結晶化の前段階状態にあるタンパク質凝集体の散乱特性が、コロイド等の微粒子、例えばシリカ微粒子等の散乱光特性とは大きく異なっていることを見いだした。
すなわち、例えば、米国国立標準技術研究所（ＮＩＳＴ）準拠標準粒子である、粒子径０．５μｍのシリカ粒子は、水中分散系による光散乱の散乱角度分布において、広い散乱角範囲で強い散乱光が生じる、球状微粒子による典型的レーリー散乱の放射パターンを示す。
これに対して、本発明の発明者らは、結晶化剤を含んだニワトリ卵白リゾチームの結晶化前段階状態における結晶化溶液では、上記の微粒子分散系よりも散乱光強度が微弱であるが、前方小角又は後方小角の光散乱が顕著に表れることを見いだした。
これは、結晶化の前段階状態にあるタンパク質凝集体は、タンパク質結晶化溶液中で周囲の溶媒と強く結合しているため、散乱光強度の放射角度分布、時間的変化等の光散乱の特性が、溶媒中に分散しているシリカ微粒子等の散乱光特性とは大きく異なっているためである。
The protein crystallization analyzer X of the present embodiment is an apparatus that analyzes a protein crystallization solution using forward small angle scattered light or backward small angle scattered light.
Here, as described above, the state analysis of the protein crystallization solution by light scattering measurement requires a light scattering measurement technique with higher sensitivity and higher accuracy than the case of fine particles such as colloidal particles.
The inventors of the present invention have conducted extensive experiments and developments, and as a result, the scattering properties of protein aggregates in the pre-crystallization state are greatly different from the scattered light properties of fine particles such as colloids, such as silica fine particles. I found out.
That is, for example, silica particles having a particle diameter of 0.5 μm, which are standard particles based on the National Institute of Standards and Technology (NIST), have strong scattered light in a wide scattering angle range in a scattering angle distribution of light scattering by an underwater dispersion system. The resulting Rayleigh scattering radiation pattern by spherical particles is shown.
In contrast, the inventors of the present invention, in the crystallization solution in the pre-crystallization stage of chicken egg white lysozyme containing a crystallization agent, the scattered light intensity is weaker than the above fine particle dispersion, It was found that light scattering at a small front angle or a small rear angle appears remarkably.
This is because the protein aggregates in the pre-crystallization state are strongly bound to the surrounding solvent in the protein crystallization solution, so the light scattering characteristics such as the radiation angle distribution of the scattered light intensity and temporal changes However, this is because the scattered light characteristics of the silica fine particles dispersed in the solvent are greatly different.
よって、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化溶液３１の測定・分析処理においては、上述した各部を用いて、タンパク質結晶化溶液３１の前方小角又は後方小角の光散乱、特に前方小角光散乱を測定する。これにより、タンパク質の結晶形成の前段階状態の分析を行う。
より具体的には、前方小角又は後方小角の光散乱、特に前方小角光散乱の測定によって、沈殿剤（結晶化剤）を含むタンパク質結晶化溶液３１中におけるタンパク質の凝集体、結晶核、微結晶などの結晶化形成の結晶化状態を推定する。これにより、溶液が結晶化する状態にあるかどうか、すなわち上述の準安定領域にあるか等についての分析を行う。
以下で、制御解析部９によりその他の各部を制御し、タンパク質結晶化溶液３１を測定・分析する処理の詳細について、図６を参照して説明する。
Therefore, in the measurement / analysis processing of the
More specifically, protein aggregates, crystal nuclei, and microcrystals in a
Hereinafter, the details of the process of measuring and analyzing the
（ステップＳ１０１）
まず、制御解析部９は、初期設定処理を行う。
具体的に説明すると、制御解析部９は、タンパク質結晶化溶液３１を光散乱計測によって分析するためタンパク質結晶化分析装置Ｘの初期設定を行う。
まず、制御解析部９は、入射角制御部４による試料測定部３の初期角度、測定散乱角制御部８による測定散乱光導入部７及び散乱光検出部５の初期角度、微小走査回転角度、終了条件、光源１の種類や波長、測定散乱光導入部７を含む光学系／回路系の構成、ロックイン解析をするか否か等について、実験を行うユーザーの設定等の入力を検知する。
また、制御解析部９は、タンパク質結晶化の結晶化条件が異なる溶液に対して、タンパク質結晶化溶液の前方小角光散乱を計測する。
このため、溶液試料となるタンパク質結晶化溶液３１について、所定温度において、タンパク質の濃度、沈殿剤（結晶化）の濃度や種類、使用する緩衝液（バッファー）のｐＨ値など、様々なタンパク質の結晶化条件についての情報を取得し設定する。この設定は、タンパク質結晶化溶液３１の溶液状態を分析する際に使用できる。
(Step S101)
First, the
More specifically, the
First, the
Further, the
For this reason, various protein crystals such as protein concentration, concentration and type of precipitating agent (crystallization), pH value of buffer solution (buffer) to be used, etc., at a predetermined temperature for the
（ステップＳ１０２）
次に、制御解析部９は、初期角度回転処理を行う。
具体的に、制御解析部９は、入射角制御部４により、測定試料部３を初期角度位置へ回転させる。また、制御解析部９は、測定散乱角制御部８により、測定散乱光導入部７及び散乱光検出部５についても、初期角度位置へ回転させる。
具体的には、制御解析部９は、入射角制御部４のドライバー４ａ（図２）を用いて、θ回転ステージ１４（図２）を初期角度位置まで回転させ、測定試料部３へ入射する光の入射角を、例えば、垂直入射の角度に設定する。また、制御解析部９は、測定散乱角制御部８のドライバー８ａ（図２）を用いて、２θ回転ステージ１８（図２）を初期角度位置まで回転させ、散乱光測定の開始角度に設定する。
(Step S102)
Next, the
Specifically, the
Specifically, the
（ステップＳ１０３）
次に、制御解析部９は、散乱光強度測定処理を行う。
この処理において、制御解析部９は、散乱光検出部５と入射モニター光検出部６とを用いて、タンパク質結晶化溶液３１からの散乱光強度を測定する。
また、ロックイン検出法を用いる場合、光変調器１６であるライトチョッパーと、ロックインアンプ１７による調整も行う。
(Step S103)
Next, the
In this process, the
When the lock-in detection method is used, adjustment by the light chopper that is the
（ステップＳ１０４）
次に、制御解析部９は、測定データ保存処理を行う。
具体的には、制御解析部９は、計測、解析された散乱角θｓに対するタンパク質結晶化溶液の光散乱強度のデータ群を、タンパク質結晶化溶液の結晶化についての分析データ（生データ）としてＨＤＤ等に記憶する。
また、制御解析部９は、光散乱強度のデータを、グラフとして直接、ディスプレイやプリンタやプロッタ等で描画して出力することもできる。
(Step S104)
Next, the
Specifically, the
The
（ステップＳ１０５）
次に、制御解析部９は、ステップ角度回転処理を行う。
具体的には、測定散乱角制御部８のドライバー８ａを用い、２θ回転ステージ１８を所定の微小角ずつ回転させる。
これにより、散乱光検出部５を、２θ回転ステージ１８によって、散乱光を測定する所定の前方小角になるように調整する。
後方小角散乱光の取得の場合にも、同様にドライバー８ａを用い、２θ回転ステージ１８により、散乱光検出部５を所定の後方小角で検出できるように調整する。
(Step S105)
Next, the
Specifically, using the
Thus, the scattered
Similarly, in the case of acquiring the small rear-angle scattered light, the
（ステップＳ１０６）
次に、制御解析部９は、測定する散乱角度が終了条件になったか否かを判定する。
具体的には、上述のように散乱光を所定の範囲で行うため、微小角の回転により、所定の散乱角の範囲になった場合、終了条件を満たすと判定する。
Ｙｅｓ、すなわち終了条件を満たす場合、制御解析部９は、処理をステップＳ１０７に進める。
Ｎｏ、すなわち終了条件を満たさない場合には、制御解析部９は、処理をステップＳ１０３に戻して、散乱光の測定を続ける。
(Step S106)
Next, the
Specifically, since the scattered light is performed in a predetermined range as described above, it is determined that the end condition is satisfied when the predetermined scattering angle is reached due to the rotation of the minute angle.
If Yes, that is, if the end condition is satisfied, the
No, that is, if the termination condition is not satisfied, the
（ステップＳ１０７）
次に、制御解析部９は、位置復帰処理を行う。
具体的には、制御解析部９は、測定散乱角制御部８のドライバー８ａを用い、２θ回転ステージ１８を、所定の元の位置に戻す。
(Step S107)
Next, the
Specifically, the
（ステップＳ１０８）
次に、制御解析部９は、散乱光解析処理を行う。
具体的には、制御解析部９は、得られた散乱角θｓに対するタンパク質結晶化溶液の光散乱強度のデータ群から、散乱光データを作成する。
このタンパク質結晶化溶液３１の散乱光データとしては、次のいずれかの算出値、あるいはこれらの組み合わせを採用する。
まず、入射側のモニター光の強度Ｉ0に対する、タンパク質結晶化溶液３１の測定された散乱光強度Ｉｓとの比、すなわち、Ｉｓ／Ｉ0を散乱光強度として得る。これは、相対的な散乱光強度であるものの、光源の出力が変動した場合でも、散乱光測定に影響を与えず、測定散乱光導入部７を構成するスリット群、ピンホール群、又は虹彩絞り群、あるいはこれらの組み合わせの配置やそれら各素子の開口径等を変更しなければ、タンパク質結晶化溶液の散乱光測定として、十分で再現性の良いデータが得られる。
また、使用する光源１が安定しており、出射光の出力変動の影響が問題にならない程に十分に小さい場合は、上述したように、入射光強度をモニターする必要がない。この場合は、タンパク質結晶化溶液の測定された散乱光強度Ｉｓ自身を散乱光強度として採用してもよい。
さらにまた、測定対象のタンパク質を含まないタンパク質結晶化溶液の溶媒、例えば緩衝液における散乱光強度を参照散乱光として、参照散乱光強度Ｉｒに対する、タンパク質結晶化溶液の散乱光強度Ｉｓとの比Ｉｓ／Ｉｒを相対的散乱光強度とすることも可能である。また、測定対象のタンパク質を含まないタンパク質結晶化溶液の溶媒、例えば緩衝液の散乱光測定値を、参照散乱光の値として用いても良い。これにより、タンパク質凝集体からの散乱光を高感度に検出できる。
従って、計測するタンパク質結晶化溶液の散乱光データとして、上述のどの算出値を選択するかは、使用する光源の性能、構築した入射調整部の光学系、測定試料部３の構造や配置、測定散乱光導入部の構成や配置、測定対象のタンパク質結晶化溶液の散乱光特性等に応じて好適に決定することができる。
(Step S108)
Next, the
Specifically, the
As the scattered light data of the
First, the ratio of the measured scattered light intensity Is of the
Further, when the
Furthermore, the ratio Is of the scattered light intensity Is of the protein crystallization solution to the reference scattered light intensity Ir, with the scattered light intensity in the solvent of the protein crystallization solution not containing the protein to be measured, for example, a buffer solution, as the reference scattered light Is / Ir may be the relative scattered light intensity. Further, a scattered light measurement value of a solvent of a protein crystallization solution that does not contain the protein to be measured, for example, a buffer solution, may be used as the value of the reference scattered light. Thereby, the scattered light from a protein aggregate can be detected with high sensitivity.
Therefore, which of the above-mentioned calculated values is selected as the scattered light data of the protein crystallization solution to be measured depends on the performance of the light source used, the optical system of the constructed incident adjustment unit, the structure and arrangement of the
また、制御解析部９は、動的散乱光についても解析できる。
具体的に説明すると、制御解析部９は、前方小角又は後方小角における散乱光強度の時間的変化を、所定の時間間隔で数十回から数百回程度で測定し、得られた散乱光強度の変動パターン（揺らぎ）のデータを解析する。
制御解析部９は、散乱光の揺らぎデータの解析を統計的方法により行い、揺らぎの周波数パワースペクトル及び自己相関関数を求める。この解析結果から、タンパク質結晶化溶液の状態を分析することができる。
解析に必要となる測定する動的散乱光の時間間隔や測定データの個体数等の測定条件は、分析対象のタンパク質の種類や濃度、沈殿剤（結晶化剤）の種類や濃度、その他の結晶化溶液の諸条件（ｐＨ値、緩衝液の種類、温度等）等に依存し、分析する上で最適な測定条件として適切に設定する。
In addition, the
Specifically, the
The
Measurement conditions such as the time interval of the dynamic scattered light to be measured and the number of individuals of measurement data required for analysis are the type and concentration of the protein to be analyzed, the type and concentration of the precipitant (crystallization agent), and other crystals. Depending on various conditions (pH value, type of buffer solution, temperature, etc.) of the chemical solution, it is appropriately set as an optimum measurement condition for analysis.
さらに、制御解析部９は、測定された散乱角θｓに対する散乱光強度Ｉｓのデータから、静的散乱光強度の平均値を求めることもできる。
また、制御解析部９は、より好ましくは、散乱ベクトル（大きさ）ｑに対する散乱光強度Ｉｓデータに基づいて静的散乱光強度の平均値を求める。さらに、制御解析部９は、散乱角θｓから、別の測定方法によって測定したタンパク質結晶化溶液３１の屈折率ｎの値を用いて、散乱ベクトル（大きさ）ｑを下記の式（１）から求めることもできる。
ｑ＝４πｎ／λ・ｓｉｎ（θｓ／２） …… 式（１）
ここで、タンパク質結晶化溶液３１の屈折率ｎは、光干渉法、全反射臨界角測定法、金属の光学的特性を利用した全反射減衰（ＡＴＲ）法等を用いて測定し、その値を用いることができる。
Furthermore, the
The
q = 4πn / λ · sin (θs / 2) (1)
Here, the refractive index n of the
その後、制御解析部９は、解析結果の最終的な出力を行う。
以上により、タンパク質結晶化溶液３１の測定・分析処理を終了する。
Thereafter, the
Thus, the measurement / analysis processing of the
以上のように構成することで、以下のような効果を得ることができる。
上述のように、タンパク質結晶化条件の探索においては、沈殿剤（結晶化剤）の添加や溶液濃度の変化等の条件が、溶液中で単分散状態にあるタンパク質分子同士が凝集し、結晶を形成する方向にあるか否かを判別することが必要である。
本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘは、各濃度や沈殿剤（結晶化剤）の種類等の条件を変えたタンパク質結晶化溶液３１に対して、得られた光散乱、特に前方小角光散乱又は後方小角光散乱による光散乱の測定データから、タンパク質結晶化の分析を行う。
これにより、光学顕微鏡等では結晶がまだ観察できないような、タンパク質結晶核成長の過程にある状態のタンパク質結晶化溶液３１のタンパク質溶液結晶化状態を分析、判別することができる。
つまり、タンパク質結晶化分析装置Ｘは、タンパク質結晶化溶液において、光学顕微鏡等でタンパク質の結晶核成長や微結晶形成が確認されるまでの前段階状態にあるにも関わらず、結晶化が進行する方向にあるか否かを簡単に分析できる。
With the configuration described above, the following effects can be obtained.
As described above, in the search for protein crystallization conditions, conditions such as addition of a precipitant (crystallization agent) and change in solution concentration cause aggregation of protein molecules in a monodispersed state in the solution, and It is necessary to determine whether it is in the direction of formation.
The protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention has obtained light scattering, particularly with respect to the
As a result, the protein solution crystallization state of the
That is, in the protein crystallization analyzer X, the crystallization proceeds in the protein crystallization solution even though the protein crystallization solution is in a previous stage until the crystal nucleus growth or microcrystal formation of the protein is confirmed by an optical microscope or the like. You can easily analyze whether it is in the direction.
より詳細に説明すると、タンパク質結晶化溶液３１が準安定領域の状態であれば、結晶核成長や微結晶形成が形成されると、結晶が大型化しやすい。このため、タンパク質の結晶作製は準安定領域の濃度条件下で行うことが好ましい。よって、この準安定領域となる濃度領域を見出すことがタンパク質結晶を作製する上で、最も重要である。
本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘは、従来のタンパク質結晶化条件の探索やタンパク質結晶作製のような非能率的な結晶化条件の網羅的手法とは異なり、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘは、タンパク質の結晶生成に要する時間を必要とせずに、タンパク質結晶化溶液の状態を分析でき、その溶液条件がタンパク質結晶化を促進する条件であるかどうかを判定できる。
従って、例えば、いくつかの結晶化条件を組み合わせた溶液試料に対して、光散乱計測を行い、得られた測定データを解析することで、タンパク質結晶化条件の探索が可能となる。つまり、数種類から数十種類程度の少数の溶液試料の測定であっても、タンパク質結晶化条件の探索ができる。
これにより、タンパク質の結晶核が成長し、光学顕微鏡等で微結晶が観察できるまでの長期の時間を待たずに、結晶形成前段階にある溶液状態において、設定した溶液条件でタンパク質の結晶化に進む方向にあるかどうか等の判断が短時間で行うことができる。すなわち、タンパク質の結晶化条件を比較的短時間に探索できる。
More specifically, if the
The protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention is different from the conventional methods for inefficient crystallization conditions such as searching for protein crystallization conditions and protein crystal preparation, and the implementation of the present invention. The protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention can analyze the state of the protein crystallization solution without requiring the time required for protein crystal formation, and whether the solution condition is a condition for promoting protein crystallization. Can be determined.
Therefore, for example, by performing light scattering measurement on a solution sample in which several crystallization conditions are combined, and analyzing the obtained measurement data, it is possible to search for protein crystallization conditions. That is, protein crystallization conditions can be searched even when measuring a small number of solution samples of several to tens of types.
As a result, protein nuclei grow and crystallize the protein under the set solution conditions in the solution state in the pre-crystal formation stage without waiting for a long time until microcrystals can be observed with an optical microscope or the like. It can be determined in a short time whether or not the vehicle is in the traveling direction. That is, protein crystallization conditions can be searched for in a relatively short time.
また、結晶構造解析に適した良質のタンパク質結晶を作製するには、高純度のタンパク質原料を使用する。タンパク質原料は大変貴重で高価であるために、コスト面から、分析に用いる溶液量が微量であることが好ましい。
ここで、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘは、溶液セル３０を通過する透過光の光路長は１ｍｍ程度以下であるため、分析に必要な溶液試料となるタンパク質結晶化溶液３１の容量が、数十μＬ程度以下で測定できる。
また、溶液セル３０にタンパク質結晶化溶液３１を封入した状態でタンパク質の結晶化の分析を行うことができる。このため、貴重な溶液試料を損なうことなく、タンパク質結晶化の状態を測定できる。
Moreover, in order to produce a high-quality protein crystal suitable for crystal structure analysis, a high-purity protein raw material is used. Since protein raw materials are very precious and expensive, it is preferable that the amount of the solution used for analysis is very small in terms of cost.
Here, in the protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention, since the optical path length of the transmitted light passing through the
Further, protein crystallization can be analyzed in a state where the
また、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘにおいて、タンパク質結晶化溶液３１からの計測する散乱光は、前方小角散乱光又は後方小角散乱光である。この前方小角散乱光又は後方小角散乱光からは、タンパク質結晶化溶液３１の結晶化状態に敏感な高感度の信号が得られる。
また、光源から得られる平行な光、すなわちコリメート光をタンパク質結晶化溶液３１へ入射させることによって、タンパク質結晶化溶液３１からの前方小角散乱光又は後方小角散乱光の、散乱角度に対する散乱光強度の関数、すなわち放射角度依存性（散乱光強度の角度分布）を計測することができる。
この計測された散乱光強度と放射角度依存性の信号やデータによって、高感度にタンパク質結晶化溶液３１における結晶化状態を調べることができる。
In the protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention, the scattered light measured from the
Further, by making parallel light obtained from a light source, that is, collimated light, incident on the
The crystallization state in the
また、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘは、入射角制御部４によって、タンパク質結晶化溶液３１の溶液セル３０へ入射する光の入射角度を適宜調整し、特に溶液セル３０の入射側の側面に垂直に光を入射するように、入射角度を調整することができる。また、入射光調整部２によって、タンパク質結晶化溶液３１へ入射する光の光量や偏光性を調整することができる。
これにより、タンパク質結晶化溶液３１の散乱光データを再現性良く、高い信頼性で得ることができる。
Further, the protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention appropriately adjusts the incident angle of light incident on the
Thereby, the scattered light data of the
また、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘは、溶液セル３０から放射される散乱光に対し、測定散乱光導入部７及び散乱光検出部５の角度位置を調整制御する測定散乱角制御部８を備えている。
これにより、溶液セル３０からの散乱光を好適な散乱角度で測定できる。
In addition, the protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention adjusts and controls the angular positions of the measured scattered
Thereby, the scattered light from the
以下、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘを用いて、タンパク質結晶化溶液の測定・分析処理を行った例を、実施例として説明する。
しかしながら、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
Hereinafter, an example in which a protein crystallization solution is measured and analyzed using the protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention will be described as an example.
However, the present invention is not limited to the following examples.
（溶液セル３０の構成）
本実施例においては、図３Ａ、Ｂで説明したのと同様の本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘの溶液セル３０を用いた。
ここで、タンパク質結晶化溶液３１としては、分析対象のタンパク質とその沈殿剤（結晶化剤）とを含む溶液を使用した。この分析対象のタンパク質は、タンパク質のニワトリ卵白リゾチームである。ニワトリ卵白リゾチームは、従来の相図が作成されているように、結晶化の諸条件が良く調査されており、分析対象として最適なタンパク質である。また、沈殿剤（結晶化剤）は、塩化ナトリウムを含む水溶液を用い、ｐＨ値を緩衝液（バッファー）である酢酸−酢酸ナトリウム緩衝液で調整した。
(Configuration of the solution cell 30)
In this example, the
Here, as the
平板状基板３２、３３は平板状の透明基板であり、薄い光学ガラス基板を用いた。
また、スペーサー３４として、透明の平板状基板３２及び平板状基板３３の間にタンパク質結晶化溶液３１を収容するために溝孔が形成されたシリコンゴムのスペーサーを用いた。具体的には、溶液セル３０の平板状基板３２及び平板状基板３３の間に、溝孔のあるスペーサー３４を挟むことによって、分析対象であるタンパク質結晶化溶液３１を収容した。
この上で、平板状基板３２又は平板状基板３３側から、タンパク質結晶化溶液３１へ光を入射し、反対側基板から散乱光を放射した。
The
Further, as the
Then, light was incident on the
図７は、タンパク質結晶化分析装置Ｘによって測定された、ニワトリ卵白リゾチーム結晶化溶液の静的光散乱分布（ＳＬＳ）のグラフである。縦軸は、散乱光強度として取得したＩｓ値を、入射モニター光検出部６による入射モニター光の強度Ｉ0で割って得られた値、すなわちＩｓ／Ｉ0を示す。横軸は、前方小角散乱角の角度θｓ（°）を示す。
測定試料としては、ニワトリ卵白リゾチーム（以下、リゾチームと呼ぶ）の濃度３０ｍｇ／ｍＬ、沈殿剤（結晶化剤）の塩化ナトリウムの濃度を０％、１．５％、３．０％について、図３Ａ、Ｂと同様の溶液セル３０にリゾチーム結晶化溶液を封止したバッチ法のタンパク質結晶化溶液３１を用いた。
タンパク質結晶化溶液を収容した溶液セル３０には、図５に示したのと同様に、半径１０ｍｍのＢＫ−７ガラス製の半円柱形プリズム４０の側面平面部に、ガラス材料と同じ屈折率の屈折率整合オイルで貼り付け、測定試料を装着した半円柱形プリズム４０をθ回転ステージ１４（図２）上に設置した。これに、図５のレンズ４１に対応する、焦点距離１３０ｍｍの円筒面平凸レンズ（シリンドリカルレンズ）により、半円柱形プリズム４０の球面部側面側から試料溶液であるタンパク質結晶化溶液３１へ、波長４７３ｎｍの、水平面に対し垂直に偏光した（ＴＥ（ｓ）偏光の）青色レーザ光を入射した。この上で、タンパク質結晶化溶液３１からの散乱光を、透過光の方向（前方）からの散乱角度２０°から３°までの前方小角散乱角の範囲で測定した。
FIG. 7 is a graph of static light scattering distribution (SLS) of a chicken egg white lysozyme crystallization solution measured by a protein crystallization analyzer X. The vertical axis indicates the value obtained by dividing the Is value acquired as the scattered light intensity by the intensity I 0 of the incident monitor light by the incident monitor
As a measurement sample, the concentration of chicken egg white lysozyme (hereinafter referred to as lysozyme) is 30 mg / mL, and the concentration of sodium chloride of the precipitating agent (crystallization agent) is 0%, 1.5%, and 3.0%. A batch method
The
図７のリゾチーム結晶化溶液の散乱光強度の散乱角依存性によると、リゾチームの沈殿剤（結晶化剤）である塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）の濃度３．０％の溶液の散乱光が、ＮａＣｌ濃度０％（無し）の溶液の散乱光に比べて、その散乱光強度が著しく大きいことが判る。特に、散乱角８°付近より小角、特に４°から６°付近の散乱角において、散乱光強度が著しく増大している。一方、ＮａＣｌ濃度１．５％の結晶化溶液の散乱光は、ＮａＣｌ濃度０％の溶液の散乱光曲線と比べてもあまり大きな相違が見られない。
上記の特性から、ＮａＣｌ濃度１．５％と３．０％とでは、リゾチーム結晶化溶液中のリゾチームの状態が大きく異なっており、散乱光強度が顕著に増大しているＮａＣｌ濃度３．０％の溶液では、リゾチームの結晶化が著しく進行していると判定できる。
１２°〜２０°の比較的大きな散乱角では、４°〜８°付近の散乱角が小角である散乱光特性ほどには、溶液中のＮａＣｌ濃度の相違による散乱光強度の差は現れていない。しかしながら、４°〜８°付近、特に４°〜６°付近の前方小角散乱角における散乱光で、リゾリーム結晶化溶液の状態の相違が敏感に現れることが分かる。
また、ＮａＣｌ濃度３．０％のリゾチーム結晶化溶液の散乱光の曲線には、特に、小さな変動が計測されている。この変動は、散乱光測定の際の迷光、及び散乱光計測の際の電気的ノイズ等に因るものではなく、結晶化溶液からの散乱光自身の揺らぎ、すなわち、溶液中のリゾチーム凝集体や微結晶等の散乱体の熱的揺らぎが原因で生じたものである。
４°〜６°付近の前方小角散乱角で、散乱光検出部５の光検出器として、高感度の光電子増倍管（ＰＭＴ）を用いて散乱光を検出し、ストレージ型（波形記録型）のオシロスコープでその散乱光による増幅電圧信号を観測したところ、散乱光が数十Ｈｚ程度以下の低周波領域において時間的に複雑に揺らいでいることが分かった。
一方、結晶化溶液の散乱光強度が小さい、１２°〜２０°の比較的大きな散乱角では、散乱光の揺らぎは小さい。このため、この揺らぎを良好なＳＮ比で測定するには、低ノイズの高性能増幅器等が必要であり、微小計測技術を必要とする。
According to the scattering angle dependency of the scattered light intensity of the lysozyme crystallization solution in FIG. 7, the scattered light of the solution having a sodium chloride (NaCl) concentration of 3.0%, which is a lysozyme precipitant (crystallization agent), has a NaCl concentration. It can be seen that the intensity of the scattered light is significantly higher than that of the 0% (none) solution. In particular, the scattered light intensity is remarkably increased at a smaller angle than the scattering angle of about 8 °, particularly at a scattering angle of about 4 ° to 6 °. On the other hand, the scattered light of the crystallization solution having a NaCl concentration of 1.5% does not show a great difference even when compared with the scattered light curve of the solution having a NaCl concentration of 0%.
From the above characteristics, the NaCl concentration of 1.5% and 3.0% is greatly different in the lysozyme state in the lysozyme crystallization solution, and the scattered light intensity is remarkably increased. In this solution, it can be determined that the crystallization of lysozyme is proceeding remarkably.
At a relatively large scattering angle of 12 ° to 20 °, the difference in scattered light intensity due to the difference in NaCl concentration in the solution does not appear as much as the scattered light characteristic in which the scattering angle in the vicinity of 4 ° to 8 ° is small. . However, it can be seen that the difference in the state of the lysozyme crystallization solution appears sensitively with scattered light at a forward small angle scattering angle of around 4 ° to 8 °, particularly around 4 ° to 6 °.
Further, in particular, small fluctuations are measured in the scattered light curve of the lysozyme crystallization solution having an NaCl concentration of 3.0%. This variation is not due to stray light in the scattered light measurement, electrical noise in the scattered light measurement, etc., but fluctuations of the scattered light itself from the crystallization solution, that is, lysozyme aggregates in the solution and This is caused by thermal fluctuations of scatterers such as microcrystals.
Scattered light is detected using a high-sensitivity photomultiplier tube (PMT) as a light detector of the scattered
On the other hand, at a relatively large scattering angle of 12 ° to 20 ° where the scattered light intensity of the crystallization solution is small, the fluctuation of the scattered light is small. For this reason, in order to measure this fluctuation with a good S / N ratio, a low-noise high-performance amplifier or the like is required, and a minute measurement technique is required.
さらに、図７のリゾチーム結晶化溶液の静的散乱光の測定データを、リゾチーム結晶化溶液のタンパク質濃度―沈殿剤（結晶化剤）濃度に係る相図と併せて考察すると、以下のことが分かる：
上述の特許文献１や非特許文献１に記載の相図によると、ＮａＣｌ濃度０％と、ＮａＣｌ濃度１．５％とは、相図中の実線よりもわずかに低濃度側、すなわち結晶化が進行しない濃度領域に位置していた。つまり、ＮａＣｌ濃度０％及び１．５％は、結晶化が進行しない濃度条件であり、具体的には、リゾチームの結晶作製には適していない濃度領域である。
ここで、図７に示すタンパク質結晶化溶液３１の散乱光特性において、ＮａＣｌ濃度０％（沈殿剤（結晶化剤）を含まない場合）と１．５％のリゾチーム溶液（３０ｍｇ／ｍＬ）では、大きな相違が見られなかった。
このような散乱光特性から、この濃度条件の溶液は結晶化が進行しない状態であると判断することができる。つまり、本実施例の結果は、相図に示される濃度位置と良く一致する。
Further, when the measurement data of the static scattered light of the lysozyme crystallization solution in FIG. 7 is considered together with the phase diagram related to the protein concentration-precipitation agent (crystallization agent) concentration of the lysozyme crystallization solution, the following can be understood. :
According to the phase diagrams described in
Here, in the scattered light characteristics of the
From such scattered light characteristics, it can be determined that the solution having this concentration condition is in a state where crystallization does not proceed. That is, the result of the present example agrees well with the concentration position shown in the phase diagram.
これに対して、図７に示すように散乱光強度が著しく増大するＮａＣｌ濃度３．０％の溶液は、特許文献１や非特許文献１に記載の相図で準安定領域に位置している。すなわち、相図によると、この濃度条件下では結晶化が進行するため、リゾチームの結晶作製に適した溶液状態である。従って、図７に示す顕著な散乱光の増大は、リゾチームの結晶化が進行する状態に対応していることが分かる。
さらにまた、相図において、一度に多数のタンパク質の微結晶が形成され、良質で大型のタンパク質結晶の作製には適さない過飽和の濃度領域、例えばＮａＣｌ濃度５．０％のリゾチーム溶液（３０ｍｇ／ｍＬ）の散乱光特性は、図７には示されていないが、その散乱強度がＮａＣｌ濃度３．０％の場合よりもさらに増大し、しかも小角散乱角だけでなく、全体的に広い散乱角度範囲（測定した散乱角２０°まで）で散乱光の増大が見られるようになる。また、この際、散乱光曲線には、新たに周期的な散乱ピークが現れた。これらの散乱ピークは、溶液中に形成されたサイズが光学顕微鏡で観測可能な数十μｍ程度以上の微結晶による光回折に拠るものである。光学顕微鏡で確認したところ、例えば、過飽和溶液であるＮａＣｌ濃度５．０％のリゾチーム溶液（３０ｍｇ／ｍＬ）では、実際に多数のリゾチーム微結晶を確認できた。
従って、この実施例により、本発明の実施の形態に係るタンパク質結晶化分析装置Ｘによって、タンパク質結晶化の状態分析に適した、前方小角散乱角における散乱光に対し高感度かつ高精度に測定が実現できることが分かる。また、測定された散乱光の特性から、タンパク質結晶化溶液の結晶化状態を分析することが可能である。さらに、散乱光の測定から、顕微鏡で観察可能な結晶が形成された場合のタンパク質結晶化溶液の結晶化状態の分析も可能である。
On the other hand, as shown in FIG. 7, a solution having a NaCl concentration of 3.0% in which the scattered light intensity is remarkably increased is located in the metastable region in the phase diagrams described in
Furthermore, in the phase diagram, a large number of protein microcrystals are formed at one time, and a supersaturated concentration region that is not suitable for production of high-quality and large protein crystals, for example, a lysozyme solution having a NaCl concentration of 5.0% (30 mg / mL). Although the scattered light characteristics of () are not shown in FIG. 7, the scattering intensity is further increased as compared with the case where the NaCl concentration is 3.0%, and not only the small angle scattering angle but also the entire wide scattering angle range. An increase in scattered light can be seen (up to a measured scattering angle of 20 °). At this time, a new periodic scattering peak appeared in the scattered light curve. These scattering peaks are due to light diffraction by microcrystals having a size of about several tens of μm or more that can be observed with an optical microscope. When confirmed with an optical microscope, for example, in a lysozyme solution (30 mg / mL) having a NaCl concentration of 5.0%, which is a supersaturated solution, a large number of lysozyme microcrystals were actually confirmed.
Therefore, according to this example, the protein crystallization analyzer X according to the embodiment of the present invention can measure with high sensitivity and high accuracy with respect to scattered light at a small forward scattering angle suitable for analyzing the state of protein crystallization. It can be seen that it can be realized. Further, it is possible to analyze the crystallization state of the protein crystallization solution from the characteristics of the measured scattered light. Furthermore, from the measurement of scattered light, it is possible to analyze the crystallization state of the protein crystallization solution when crystals that can be observed with a microscope are formed.
図８は、上述の実施例におけるタンパク質結晶化溶液の静的光散乱強度の平均値と沈殿剤（結晶化剤）の関係を示すグラフである。
図８の横軸は結晶化剤であるなＮａＣｌ濃度を示している。また、図８の縦軸は、静的光散乱強度の平均値を散乱光強度の値として示している。この静的光散乱強度の平均値は、図７に示されるようなタンパク質結晶化溶液を測定した静的光散乱分布（θｓ―Ｉｓ）を基に、上述の式（１）により、散乱角θｓを波数ベクトルｑに変換し、ｑ―Ｉｓのデータにおいて、測定範囲のｑに関して散乱光強度Ｉｓを平均した値である。この値は、各溶液試料の静的光散乱強度を相対的に簡単に比較できる指標となる。
FIG. 8 is a graph showing the relationship between the average value of the static light scattering intensity of the protein crystallization solution and the precipitant (crystallization agent) in the above-mentioned Examples.
The horizontal axis of FIG. 8 shows the NaCl concentration as a crystallization agent. The vertical axis in FIG. 8 indicates the average value of the static light scattering intensity as the value of the scattered light intensity. The average value of the static light scattering intensity is calculated based on the static light scattering distribution (θs−Is) measured for the protein crystallization solution as shown in FIG. Is converted into a wave vector q, and in the q-Is data, the scattered light intensity Is is averaged with respect to q in the measurement range. This value is an index by which the static light scattering intensity of each solution sample can be compared relatively easily.
図８では、リゾチーム濃度２０ｍｇ／ｍＬ、及び３０ｍｇ／ｍＬの溶液において、沈殿剤（結晶化剤）のＮａＣｌ濃度０％（無し）、１．５％、及び３．０％の溶液試料に対して、静的散乱光強度の平均値を比較している。
リゾチーム濃度の小さい２０ｍｇ／ｍＬの溶液では、散乱光強度が、１．５％、３．０％とＮａＣｌ濃度の増加によって単調に比例して増大しているのに対して、リゾチーム濃度のより大きい３０ｍｇ／ｍＬでは、ＮａＣｌ濃度３．０％の溶液で急激な散乱光強度の増大を示している。
このことから、リゾチーム濃度の大きい３０ｍｇ／ｍＬで、ＮａＣｌ濃度１．５％と３．０％の付近で、溶液中におけるリゾチームの状態の変化、例えば凝集体形成や微結晶形成の促進などの結晶化の進行が起こることが推測できる。なお、これらの各溶液のリゾチーム及び結晶化剤の濃度条件は、特許文献１や非特許文献１に記載の相図によると、リゾチームの結晶作製に適する準安定条件の濃度領域に位置する。
In FIG. 8, in solutions with lysozyme concentrations of 20 mg / mL and 30 mg / mL, solution samples with NaCl concentrations of 0% (none), 1.5%, and 3.0% of the precipitating agent (crystallization agent) are shown. The average value of static scattered light intensity is compared.
In the 20 mg / mL solution having a small lysozyme concentration, the scattered light intensity increases monotonically in proportion to the increase in NaCl concentration of 1.5% and 3.0%, whereas the lysozyme concentration is larger. At 30 mg / mL, a sharp increase in scattered light intensity is shown in a solution having a NaCl concentration of 3.0%.
From this, at a high lysozyme concentration of 30 mg / mL, in the vicinity of NaCl concentrations of 1.5% and 3.0%, lysozyme state changes in the solution, for example, crystals such as promotion of aggregate formation and microcrystal formation It can be inferred that the progress of crystallization occurs. According to the phase diagrams described in
また、図８に示されるリゾチーム溶液の光散乱強度の平均値を、特許文献１や非特許文献１に記載の相図と照合すると、以下が判明する：
すなわち、これらの相図によると、ＮａＣｌ濃度に対してリゾチーム濃度の大きい３０ｍｇ／ｍＬ溶液の散乱光強度の増大が急激であるのは、リゾチーム濃度の低い２０ｍｇ／ｍＬに比べて、ＮａＣｌ濃度に対する準安定領域が狭いために、ＮａＣｌ濃度に対してより敏感にリゾチームの結晶化状態が変化したことが原因であると推定される。
従って、タンパク質結晶化溶液の各濃度、溶液温度、ｐＨ値等の諸条件を変化させ、タンパク質結晶化溶液の光散乱、特に前方小角光散乱又は後方小角光散乱を計測・解析することによって、タンパク質の状態図（相図）に相当するデータを収集できる。このため、実際にタンパク質の結晶を作成しなくても、測定した光散乱データを基に、相図に相当するタンパク質の状態図を作成することも可能である。
たとえば、溶液のｐＨ値、溶液温度、タンパク質濃度をそれぞれ一定の条件下で、沈殿剤（結晶化剤）の濃度を変化させた場合における前方小角光散乱又は後方小角光散乱を計測することができる。
また、例えば、溶液のｐＨ値、溶液温度、沈殿剤（結晶化剤）の濃度をそれぞれ一定の条件にして、タンパク質濃度を変化させた場合における、前方小角光散乱又は後方小角光散乱を計測することもできる。
また、タンパク質結晶化溶液の前方小角における静的光散乱（ＳＬＳ）の計測だけでなく、前方小角における動的光散乱（ＤＬＳ）の計測データからも、上述の実施例に示したようなタンパク質結晶化溶液の状態を分析することができる。
Further, when the average value of the light scattering intensity of the lysozyme solution shown in FIG. 8 is collated with the phase diagram described in
That is, according to these phase diagrams, the increase in the scattered light intensity of the 30 mg / mL solution having a large lysozyme concentration relative to the NaCl concentration is abruptly higher than the 20 mg / mL having a low lysozyme concentration. It is presumed that this is because the crystallization state of lysozyme changed more sensitively to the NaCl concentration because the stable region is narrow.
Therefore, by changing various conditions such as concentration of protein crystallization solution, solution temperature, pH value, etc., and measuring and analyzing light scattering of protein crystallization solution, especially forward small angle light scattering or backward small angle light scattering, protein Data corresponding to the state diagram (phase diagram) can be collected. For this reason, it is also possible to create a protein phase diagram corresponding to a phase diagram based on the measured light scattering data without actually creating a protein crystal.
For example, it is possible to measure forward small-angle light scattering or backward small-angle light scattering when the concentration of the precipitant (crystallization agent) is changed under constant conditions of solution pH value, solution temperature, and protein concentration. .
In addition, for example, the forward small angle light scattering or the backward small angle light scattering is measured when the protein concentration is changed under constant conditions of the pH value of the solution, the solution temperature, and the concentration of the precipitant (crystallization agent). You can also.
In addition to the measurement of static light scattering (SLS) at the front small angle of the protein crystallization solution, the protein crystal as shown in the above-described embodiment is also obtained from the measurement data of dynamic light scattering (DLS) at the front small angle. The state of the crystallization solution can be analyzed.
本発明は、タンパク質結晶化溶液の結晶化状態の分析装置及び分析方法を提供するため、産業上利用することができる。 INDUSTRIAL APPLICABILITY Since the present invention provides an apparatus and a method for analyzing the crystallization state of a protein crystallization solution, it can be used industrially.
１ 光源
２ 入射光調整部
２ａ 偏光素子
２ｂ 光量調整フィルター
３ 測定試料部
４ 入射角制御部
４ａ ドライバー
５ 散乱光検出部
６ 入射モニター光検出部
６ａ 入射モニター光検出器
６ｂ ビームスプリッタ
７ 測定散乱光導入部
８ 測定散乱角制御部
８ａ ドライバー
９ 制御解析部
９ａ Ａ／Ｄ変換器
９ｂ ＰＣ
１１ スリット群
１４ θ回転ステージ
１５ 入射光光路変更部
１５ａ、１５ｂ 平面ミラー
１６ 光変調器
１７ ロックインアンプ
１８ ２θ回転ステージ
３０ 溶液セル
３１ タンパク質結晶化溶液
３２、３３ 平板状基板
３４ スペーサー
４０ 半円柱形プリズム
４１ レンズ
Ｘ タンパク質結晶化分析装置
DESCRIPTION OF
DESCRIPTION OF
Claims (19)
タンパク質結晶化溶液の前方小角又は後方小角の散乱光を、散乱光検出部へと導く測定散乱光導入部と、
前記測定散乱光導入部により導かれた前記散乱光を検出する散乱光検出部と、
前記散乱光検出部で検出された前記散乱光の強度を解析し、前記タンパク質結晶化溶液におけるタンパク質の結晶化状態を分析する制御解析部とを備え、
前記タンパク質結晶化溶液へ、コリメート光を入射させ、
前記散乱光は、前記タンパク質結晶化溶液へ入射する光の透過光に対する散乱角度が１°〜１０°の前方小角散乱光、又は前記タンパク質結晶化溶液へ入射する光の反射光に対する散乱角度が１°〜１０°の後方小角散乱光であり、
前記測定散乱光導入部は、前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光を導き、
前記タンパク質結晶化溶液の入った溶液セルの光路長は１ｍｍ以下であり、
結晶化の前段階状態にあるタンパク質凝集体の散乱特性を測定し、
前記コリメート光は、レーザ光源により発生され、広がり角が全角度で１ｍｒａｄ以下であり、垂直入射で前記タンパク質結晶化溶液へ入射され、
前記測定散乱光導入部が導く前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光は、測定する散乱光取込み角度が調整された散乱光のみが取り出され、
前記制御解析部が分析する前記散乱光の強度は、前記散乱光検出部が所定の微小角ずつ回転されて測定された前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光である
ことを特徴とするタンパク質結晶化分析装置。 In a protein crystallization analyzer for analyzing protein crystallization,
A measurement scattered light introducing unit that guides the scattered light of the front small angle or the rear small angle of the protein crystallization solution to the scattered light detection unit;
A scattered light detection unit for detecting the scattered light guided by the measurement scattered light introduction unit;
Analyzing the intensity of the scattered light detected by the scattered light detection unit, and comprising a control analysis unit for analyzing the crystallization state of the protein in the protein crystallization solution,
Collimated light is incident on the protein crystallization solution,
The scattered light has a scattering angle of 1 with respect to the forward small angle scattered light having a scattering angle of 1 ° to 10 ° with respect to the transmitted light of the light incident on the protein crystallization solution, or with respect to the reflected light of light incident on the protein crystallization solution. It is a small angle scattered light from ° to 10 °,
The measurement scattered light introducing unit guides the front small angle scattered light or the rear small angle scattered light,
The optical path length of the solution cell containing the protein crystallization solution is 1 mm or less,
Measure the scattering properties of protein aggregates in the pre-crystallization state ,
The collimated light is generated by a laser light source, the spread angle is 1 mrad or less in all angles, and is incident on the protein crystallization solution at normal incidence,
The front small-angle scattered light or the rear small-angle scattered light guided by the measurement scattered light introduction unit is extracted only from the scattered light whose scattered light capturing angle to be measured is adjusted,
The intensity of the scattered light analyzed by the control analysis unit is the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light measured by rotating the scattered light detection unit by a predetermined minute angle. Crystallization analyzer.
前記制御解析部は、前記測定散乱角制御部の散乱角度を制御し、前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の強度の値を解析し、
前記測定散乱角制御部の散乱角度に対する前記タンパク質結晶化溶液の光散乱強度のデータ群を取得する
ことを特徴とする請求項１に記載のタンパク質結晶化分析装置。 A measurement scattering angle control unit that changes a scattering angle of the front small angle scattered light or the rear small angle scattered light to be measured,
The control analysis unit controls the scattering angle of the measurement scattering angle control unit, and analyzes the intensity value of the front small angle scattered light or the rear small angle scattered light,
The protein crystallization analyzer according to claim 1 , wherein a data group of light scattering intensity of the protein crystallization solution with respect to a scattering angle of the measurement scattering angle control unit is acquired.
ことを特徴とする請求項２に記載のタンパク質結晶化分析装置。 The protein according to claim 2 , wherein the intensity value of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light is obtained from an intensity function of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light with respect to the scattering angle, respectively. Crystallization analyzer.
ことを特徴とする請求項２に記載のタンパク質結晶化分析装置。 The value of the intensity of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light is the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light obtained from the intensity function of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light with respect to the scattering angle, respectively. The protein crystallization analyzer according to claim 2 , wherein the protein crystallization analyzer is an average value of the intensity of the protein.
ことを特徴とする請求項２乃至４のいずれか１項に記載のタンパク質結晶化分析装置。 Wherein the control analysis unit, on the basis of the temporal intensity fluctuations of the forward small-angle scattering light or the rear small-angle scattering light, according to claim 2 to 4, characterized in that analyzing the crystalline state of the protein in the protein crystallization solutions The protein crystallization analyzer according to any one of the above.
ことを特徴とする請求項１から５までのいずれか１項に記載のタンパク質結晶化分析装置。 The measuring scattered light introducing portion is arranged between the said protein crystallization solution scattered light detection section, at least two or more slits, pinholes, or claims 1-5, characterized in that it comprises an iris diaphragm The protein crystallization analyzer according to any one of the above.
前記透明ブロックは、前記溶液セルを光学的に密着させる
ことを特徴とする請求項１乃至６のいずれか１項に記載のタンパク質結晶化分析装置。 A measurement sample unit including a transparent block and a support base for fixing the solution cell,
The protein crystallization analyzer according to any one of claims 1 to 6 , wherein the transparent block optically contacts the solution cell.
ことを特徴とする請求項７に記載のタンパク質結晶化分析装置。 The protein crystallization analyzer according to claim 7 , wherein the transparent block is a semi-cylindrical prism, and includes a lens unit for allowing parallel light to enter the solution cell.
ことを特徴とする請求項１乃至８のいずれか１項に記載のタンパク質結晶化分析装置。 The protein crystallization analyzer according to any one of claims 1 to 8 , further comprising an incident angle control unit for adjusting and controlling an incident angle of light incident on the solution cell.
ことを特徴とする請求項１乃至９のいずれか１項に記載のタンパク質結晶化分析装置。 The protein crystallization analyzer according to any one of claims 1 to 9 , further comprising a light source for irradiating the protein crystallization solution with light.
ことを特徴とする請求項１０に記載のタンパク質結晶化分析装置。 11. The protein crystallization analyzer according to claim 10 , wherein the light source is a single light source, and is a light source in a wavelength region away from a light absorption band unique to protein molecules.
ことを特徴とする請求項１０又は１１に記載のタンパク質結晶化分析装置。 The protein crystallization analyzer according to claim 10 or 11 , wherein the light source is a diode-excited solid-state laser.
前記散乱光の検出に適するように、前記タンパク質結晶化溶液への入射光の光量を調整する、入射光調整部を備える
ことを特徴とする請求項１０乃至１２のいずれか１項に記載のタンパク質結晶化分析装置。 Adjusting the polarization state of the light emitted from the light source;
The protein according to any one of claims 10 to 12 , further comprising an incident light adjusting unit that adjusts the amount of incident light to the protein crystallization solution so as to be suitable for detection of the scattered light. Crystallization analyzer.
ことを特徴とする請求項１０乃至１３のいずれか１項に記載のタンパク質結晶化分析装置。 The protein crystallization analyzer according to any one of claims 10 to 13 , further comprising an incident monitor light detection unit that monitors the intensity of light emitted from the light source.
タンパク質と、該タンパク質の結晶化剤とを含む
ことを特徴とする請求項１乃至１４のいずれか１項に記載のタンパク質結晶化分析装置。 The protein crystallization solution is:
The protein crystallization analyzer according to any one of claims 1 to 14 , comprising a protein and a crystallization agent for the protein.
タンパク質結晶化溶液に光を照射し、
前記タンパク質結晶化溶液からの前方小角散乱光又は後方小角散乱光を測定し、
前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光の強度に基づいて、前記タンパク質結晶化溶液の状態を分析し、
前記タンパク質結晶化溶液へ、コリメート光を入射させ、
前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光は、前記タンパク質結晶化溶液へ入射する光の透過光に対する散乱角度が１°〜１０°の前方小角散乱光、又は前記タンパク質結晶化溶液へ入射する光の反射光に対する散乱角度が１°〜１０°の後方小角散乱光であり、
前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光を導き、
前記タンパク質結晶化溶液の入った溶液セルの光路長は１ｍｍ以下であり、
結晶化の前段階状態にあるタンパク質凝集体の散乱特性を測定し、
前記コリメート光は、レーザ光源により発生され、広がり角が全角度で１ｍｒａｄ以下であり、垂直入射で前記タンパク質結晶化溶液へ入射され、
導く前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光は、測定する散乱光取込み角度が調整された散乱光のみが取り出され、
分析する前記散乱光の強度は、所定の微小角ずつ回転されて測定された前記前方小角散乱光又は前記後方小角散乱光である
ことを特徴とするタンパク質結晶化分析方法。 In a protein crystallization analysis method for analyzing protein crystallization,
Irradiate protein crystallization solution with light,
Measure the front small angle scattered light or the back small angle scattered light from the protein crystallization solution,
Based on the intensity of the forward small-angle scattered light or the backward small-angle scattered light, the state of the protein crystallization solution is analyzed,
Collimated light is incident on the protein crystallization solution,
The forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light is a forward small angle scattered light having a scattering angle of 1 ° to 10 ° with respect to the transmitted light of the light incident on the protein crystallization solution, or light incident on the protein crystallization solution. The scattering angle with respect to the reflected light of the back is a small angle scattered light of 1 to 10 degrees,
Leading the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light,
The optical path length of the solution cell containing the protein crystallization solution is 1 mm or less,
Measure the scattering properties of protein aggregates in the pre-crystallization state ,
The collimated light is generated by a laser light source, the spread angle is 1 mrad or less in all angles, and is incident on the protein crystallization solution at normal incidence,
The forward small-angle scattered light or the backward small-angle scattered light to be guided is extracted only from the scattered light whose angle of scattered light to be measured is adjusted,
The protein crystallization analysis method, wherein the intensity of the scattered light to be analyzed is the forward small-angle scattered light or the backward small-angle scattered light measured by being rotated by a predetermined minute angle .
ことを特徴とする請求項１６に記載のタンパク質結晶化分析方法。 The protein according to claim 16 , wherein the intensity of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light is an intensity function of the forward small angle scattered light or an intensity function of the backward small angle scattered light with respect to a scattering angle, respectively. Crystallization analysis method.
ことを特徴とする請求項１６に記載のタンパク質結晶化分析方法。 The intensity of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light is obtained from the intensity function of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light with respect to the scattering angle, respectively, or the average value of the intensity of the forward small angle scattered light or the rear It is an average value of the intensity | strength of a small angle scattered light. The protein crystallization analysis method of Claim 16 characterized by the above-mentioned.
ことを特徴とする請求項１６に記載のタンパク質結晶化分析方法。 The protein crystallization analysis method according to claim 16 , wherein the crystallization state of the protein in the protein crystallization solution is analyzed based on temporal intensity fluctuations of the forward small angle scattered light or the backward small angle scattered light. .
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