JP5774264B2 - 肥満および糖尿病、ならびにそれらに関連する病態の処置のため、ならびに血中glp−1レベルを増大させることによって緩和される病態の処置のための、併用療法 - Google Patents
肥満および糖尿病、ならびにそれらに関連する病態の処置のため、ならびに血中glp−1レベルを増大させることによって緩和される病態の処置のための、併用療法 Download PDFInfo
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Description
本発明は、肥満症及び糖尿病並びにそれらに関連する病態を処置又は予防する組成物及び方法に関する。本発明は更に、哺乳動物の血中GLP−1レベルを増大させる組成物及び方法にも関する。本発明は又、GLP−1分泌促進物質を遮蔽するためにGタンパク質共役受容体を使用する方法にも関する。
以下の考察は、本発明の理解を容易にすることを意図するものであるが、本発明の従来の技術であることを意図するものでも、認めるものでもない。
肥満症は、先進国で最も多く見られる代謝性疾患である。国民の間で健康への教育や取組みが行われているにもかかわらず、肥満症の罹患率は上昇を続けており、米国では30%を超える成人が肥満であり、60%を超える成人が過体重又は肥満である。世界保健機構は、世界中で10億人を超える成人が過体重であり、その内の少なくとも3億人が肥満であると推定している。肥満症は、高血圧症、うっ血性心筋症、冠状性心疾患、脳卒中、脂肪異常症、代謝症候群、及び2型糖尿病[Bays, Obesity Research (2004) 12:1197−1211]、並びに早期死亡を含むがこれらに限定されない広範な共存症に罹患する危険性をもたらすか、又はそれを著しく増大させる。従って、世界的な肥満症の流行を減少させる治療選択肢となる安全且つ有効な坑肥満薬に対する医学的な需要は未だに満たされていない。
グルカゴン様ペプチド−1(GLP−1)は、プログルカゴンの翻訳後修飾から誘導され、腸管内内分泌細胞により分泌されるインクレチンホルモンである。GLP−1は、特異的Gタンパク質共役受容体(GPCR)、即ちGLP−1Rを介してその作用を媒介する。GLP−1は、グルコースホメオスタシスを調節するホルモンとして特徴付けられるのが最も良い。GLP−1は、グルコース依存インスリン分泌を刺激し、膵臓β細胞の質量を増大させることが示されている。GLP−1は又、胃内容排出率を減少させ、満腹を促進することも示されている。2型糖尿病において血液グルコースを制御するGLP−1ペプチド作動薬の効能は、体重を減少させるのに効能を有するのと同じく[非特許文献1]、幾つかの臨床研究において実証されている[例えば、非特許文献2を参照]。
ボンベシンは、カエルの皮膚から単離された14アミノ酸ペプチドである。ボンベシン受容体サブタイプ−3 BRS−3 Gタンパク質共役受容体(BRS−3;例えば、ヒトBRS−3、ジェンバンク(登録商標)受入番号受入番号AAA35604及びそのアレル;例えば、マウスBRS−3、ジェンバンク受入番号AY288423及びそのアレル)は、胃放出ペプチド受容体(GPR−R)及びニューロメディンB受容体(NMB−R)に対して約50%の相同性を示し、共にボンベシン様受容体グループを形成する。BRS−3は、視床下部及び子宮を含めた組織において選択的に発現される。BRS−3の活性化により、BRS−3がGqに結合するのと一貫して、細胞内イノシトール−1,4,5−三リン酸塩(IP3)の蓄積が増大する。最近の研究では、BRS−3ノックアウトマウスは、肥満症、糖尿病、及び高血圧を発症している[非特許文献7]。
ジペプチジルペプチダーゼIV(DPP−IV、EC3.4.14.5)は、ペプチドホルモン、ニューロペプチド、及びケモカインを含む広範なペプチド基質に対して触媒作用を示す。グルコース依存インスリン分泌を刺激し、血液グルコースホメオスタシスを促進するインクレチングルカゴン様ペプチドI(GLP−1)及びグルコース依存インスリン分泌性ポリペプチド(GIP)は、位置2のアラニンにおいてDPP−IVにより迅速に開裂され、その生物学的活性は非活性化される。DPP−IV活性の薬理学的減衰及び遺伝的減衰の両方とも、in vivoでのインクレチン作用の増大、インスリンの増大、及び血液グルコースの低下に関連する。DPP−IV活性の遺伝的減衰は、肥満症への耐性を提供し、インスリン感度を向上させることが示されている。第2世代DPP−IV阻害剤、LAF237(それぞの開示内容全体が参考として本明細書に組み入れられている、Ahren, et al., J Clin Endocrinol Metab (2004) 89:2078−2084;及びVillhauer, et al., T Med Chem (2003) 46:2774−2789)が、現在、2型糖尿病について段階3の臨床試行にあり、追加のDPP−IV阻害剤が、臨床的に開発されている。
GPCRは、共通の構造モチーフを共有し、それぞれが膜をスパンする(各スパンは数字によって識別される;即ち、膜貫通−1(TM−1)、膜貫通−2(TM−2)等)7つのαらせん体を形成する22〜24の疎水性アミノ酸の7つの配列を有する。膜貫通らせん体は、細胞膜の外面又は「細胞外」面の上において膜貫通−2と膜貫通−3の間、膜貫通−4と膜貫通−5の間、及び膜貫通−6と膜貫通−7の間のアミノ酸の鎖によって接合される(これらはそれぞれ「細胞外」領域1、2及び3(EC−1、EC−2、及びEC−3)と呼ばれる)。膜貫通らせん体は又、細胞膜の内面又は「細胞内」面の上において、膜貫通−1と膜貫通−2の間、膜貫通−3と膜貫通−4の間、及び膜貫通−5と膜貫通−6の間においてアミノ酸の鎖によって接合される(これらはそれぞれ「細胞内」領域1、2及び3と呼ばれる)。受容体の「カルボキシ」(「C」)末端は、細胞内の細胞内空間にあり、受容体の「アミノ」(「N」)末端は、細胞の外部の細胞外空間にある。
Zander, et al., Lancet (2002) 359:824−830 Nauck, et al., Drug News Perspect (2003) 16:413−422 Bose, et al., Diabetes (2005) 54:146−151 During, et al., Nat Med (2003) 9:1173−1179 Greig, et al., Ann N Y Acad Sci (2004) 1035:290−315 Mentlein, Expert Opin Investig Drugs (2005) 14:57−64 Ohki−Hamazaki, et al., Nature (1997) 390:165−169
本発明は、一定量のBRS−3作動薬と一定量のジペプチジルペプチダーゼ(DPP−IV)阻害剤との組み合わせに関し、それにより、組み合わせは、その量のBRS−3作動薬単独又はその量のDPP−IV阻害剤単独によって提供される場合より対象における血中グルコースレベルを低下させる効果を提供し、又糖尿病及びそれに関連する病態を処置又は予防するためのこのような組み合わせの使用に関する。本発明は、一定量のBRS−3作動薬と一定量のジペプチジルペプチダーゼIV(DPP−IV)阻害剤の組み合わせに関し、それにより、組み合わせは、その量のBRS−3作動薬単独又はその量のDPP−IV阻害剤単独によって提供される場合より対象における血中GLP−1レベルを増大させる効果を提供し、又、血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を処置又は予防し、或いはGLP−1が欠損している対象における血中GLP−1レベルを増大させるためのこのような組み合わせの使用に関する。本発明は又、GLP−1分泌促進物質を遮蔽するためにBRS−3Gタンパク質共役受容体を使用する方法にも関する。
(a)Gタンパク質共役受容体を発現する宿主細胞又は宿主細胞の膜と試験化合物を接触させ、Gタンパク質共役受容体が、
(i)配列番号2のアミノ酸1〜335と、
(ii)配列番号2のアミノ酸1〜399と、
(iii)配列番号2のアミノ酸2〜335と、
(iv)配列番号2のアミノ酸2〜399と、
(v)受容体が配列番号2のアミノ酸位置1においてメチオニン残基を備えないことを条件とする配列番号2のアミノ酸2〜335と、
(vi)受容体が配列番号2のアミノ酸位置1においてメチオニン残基を備えないことを条件とする配列番号2のアミノ酸2〜399と、
(vii)ヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドによってコードされるGタンパク質共役受容体のアミノ酸配列であって、前記ヌクレオチド配列が、特有のプライマー配列番号3及び配列番号4を使用して、ヒトDNAサンプルに対しポリメラーゼ鎖反応(PCR)を実施することからなるプロセスによって得ることが可能な配列である、アミノ酸配列と、
(viii)ヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドによってコードされるGタンパク質共役受容体のアミノ酸配列であって、前記ヌクレオチド配列が、配列番号1の相補体に対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズされる配列であるアミノ酸配列と、
(ix)(i)〜(viii)の何れか1つの生物学的活性フラグメントからなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、手順;並びに
(b)受容体の機能性を刺激する試験化合物の能力を判定する手順、を含み、
受容体の機能性を刺激する試験化合物の能力によって、試験化合物が、ボディマスを減少させるのに有用なGLP−1分泌促進物質又は化合物であるか、或いは血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を予防又は処置するのに有用な化合物であることが表される。
(c)手順(b)において該受容体の機能性を刺激する化合物を、哺乳動物の腸内分泌細胞とin vitroで接触させる手順;及び
(d)化合物が哺乳動物の腸内分泌細胞からのGLP−1の分泌を刺激するかを判定する手順、を含み、
哺乳動物の腸内分泌細胞からのGLP−1の分泌を刺激する試験化合物の能力によって、試験化合物が、ボディマスを減少させるに有用な試験化合物がGLP−1分泌促進物質又は化合物であるか、或いは血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を処置又は予防するのに有用な化合物であることが表される。特定の実施形態において、哺乳動物の腸内分泌細胞は、GLUTag腸内分泌L細胞系統である。
(c)手順(b)において受容体の機能性を刺激する化合物を哺乳動物に投与する手順;及び
(d)化合物が哺乳動物の血中GLP−1レベルを増大させるかを判定する手順、を含み、
化合物が哺乳動物の血中GLP−1レベルを増大させる試験化合物の能力によって、試験化合物が、ボディマスを減少させるのに有用なGLP−1分泌促進物質又は化合物であるか、或いは血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を処置又は予防するのに有用な化合物であることが表される。特定の実施形態において、哺乳動物は、非ヒト哺乳動物である。
(a)試験化合物の存在下又は非存在下において、Gタンパク質共役受容体を、この受容体に対する必要に応じて標識された既知のリガンドに接触させ、Gタンパク質共役受容体が、
(i)配列番号2のアミノ酸1〜335;
(ii)配列番号2のアミノ酸1〜399;
(iii)配列番号2のアミノ酸2〜395;
(iv)配列番号2のアミノ酸2〜399;
(v)受容体が配列番号2のアミノ酸位置1においてメチオニン残基を備えないことを条件とする配列番号2のアミノ酸2〜335;
(vi)受容体が配列番号2のアミノ酸位置1においてメチオニン残基を備えないことを条件とする配列番号2のアミノ酸2〜399;
(vii)ヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドによってコードされるGタンパク質共役受容体のアミノ酸配列であって、前記ヌクレオチド配列が、特有のプライマー配列番号3及び配列番号4を使用して、ヒトDNAサンプルに対しポリメラーゼ鎖反応(PCR)を実施することからなるプロセスによって得られる配列である、アミノ酸配列;
(viii)ヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドによってコードされるGタンパク質共役受容体のアミノ酸配列であって、このヌクレオチド配列は、配列番号1の相補体にストリンジェントな条件下でハイブリダイズされる配列である、アミノ酸配列;及び
(ix)(i)〜(viii)の何れか1つの生物学的活性フラグメントからなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、手順;
(b)前記既知のリガンドと前記受容体の間の複合体を検出する手順;並びに
(c)前記複合体が、試験化合物が存在しない場合より、試験化合物が存在する状態において少ないかを判定する手順、を含み、
前記判定によって、試験化合物が、ボディマスを減少させるのに有用なGLP−1分泌促進物質又は化合物である、或いは血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を処置又は予防するのに有用な化合物であることが表される。
(d)存在する状態においてより少ない前記複合体が手順(c)において形成される化合物を哺乳動物の腸内分泌細胞とin vitroで接触させる手順;並びに
(e)化合物が哺乳動物の腸内分泌細胞からのGLP−1の分泌を刺激するかを判定する手順、を含み、
化合物が哺乳動物の腸内分泌細胞からのGLP−1の分泌を刺激する能力によって、試験化合物が、ボディマスを減少させるのに有用なGLP−1分泌促進物質又は化合物である、或いは血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を処置又は予防するのに有効な化合物であることが表される。特定の実施形態において、哺乳動物の腸内分泌細胞は、GLUTag腸内分泌L細胞系統である。
(d)存在する状態においてより少ない前記複合体が手順(c)において形成される化合物を哺乳動物に投与する手順;及び
(e)化合物が哺乳動物の血中GLP−1レベルを増大させるかを判定する手順、からなり;
化合物が哺乳動物の腸内分泌細胞からのGLP−1の分泌を刺激する能力によって、試験化合物が、ボディマスを減少させるのに有用なGLP−1分泌促進物質又は化合物、或いは血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を処置又は予防するのに有効な化合物であることが表される。特定の実施形態において、哺乳動物は、非ヒト哺乳動物である。
本発明は、糖尿病及びそれに関連する病態を処置又は予防するためのある化合物又はその薬学的に許容される塩の組み合わせに関する。本発明は、ボディマスを減少させるためのある化合物又はその薬学的に許容される塩の組み合わせに更に関する。本発明は、肥満症及びそれに関連する病態を処置又は予防するためのある化合物又はその薬学的に許容される塩の組み合わせに更に関する。本発明は、血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を処置又は予防するためのある化合物又はその薬学的に許容される塩の組み合わせに更に関する。本発明は、試験化合物をGLP−1分泌促進物質として遮蔽するために本発明のGタンパク質共役受容体を使用する方法に更に関する。出願人は、BRS−3が、腸内分泌L細胞を生成する哺乳動物GLP−1によって発現されることを発見した。BRS−3は、GLP−1分泌促進物質受容体である。BRS−3の作動薬は、GLP−1分泌促進物質である。
化学群、成分、又は遊離基
「C1−5アシル」という用語は、カルボニルに結合されたC1−5アルキル遊離基を表し、アルキルの定義は、本明細書において記述されるものと同じ定義を有する。幾つかの例は、非限定的に、アセチル、プロピオニル、n−ブタノイル、イソ−ブタノイル、セク−ブタノイル、t−ブタノイル(即ち、ピバロイル)、ペンタノイル等を含む。
BRS−3は、哺乳動物のERS−3であることが好ましい。BRS−3は、齧歯類又は霊長類のBRS−3であることがより好ましい。BRS−3は、ヒトのBRS−3であることが最も好ましい。
本発明の新規の治療組み合わせにおいて有用なDPP−IV阻害剤は、DPP−IVについて許容可能に高い親和性を示す化合物を含む。DPP−IV阻害剤又は薬学的に許容される塩は、任意のDPP−IV阻害剤、より好ましくは選択的ジペプチジルペプチダーゼ阻害剤、最も好ましくは選択的DPP−IV阻害剤である。
例示及び非限定として、本発明によるBRS−3作動薬とDPP−IV阻害剤の例示的な組み合わせが、表Bの左列からBRS−3作動薬を選択し、表Bの右列からDPP−IV阻害剤を選択することによって提供される。表Bの左列からBRS−3作動薬を選択し、表Bの右列からDPP−IV阻害剤を選択することによって提供されるBRS−3作動薬とDPP−IV阻害剤の各個々の組み合わせが本発明の範囲内の別の実施形態であることが、明らかに考慮される。
、その量のBRS−3作動薬単独及びDPP−IV阻害剤単独が、対象における血中GLP−1レベルを増大させることについて治療として無効である、前記方法を特徴とする。
内因性ヒトBRS−3の完全長クローニング
BRS−3特異プライマー5’−ACAGAATTCAGAAGAAATGGCTCAAAGGCA−3’(配列番号3;EcoRI部位でのセンス、開始コドンとしてのATG)、及び、
5’−CATGGATCCTTGAAAAGCTAGAATCTGTCC−3’(配列番号4;BamHI部位でのアンチセンス、停止コドンのアンチセンスとしてのCTA)、及び、
テンプレートとしてヒト子宮cDNA(Clontech)を使用して、ポリヌクレオチドコード内因性ヒトBRS−3をクリーニングした。TaqPlus PrecisionDNAポリメラーゼ(Stratagene)を、手順2から手順4を25回繰り返して以下のサイクルによって増幅するために使用した:
94℃、3分;94℃、1分;56℃、1分;72℃、1分20秒;72℃、10分。
受容体の発現
種々の細胞が、Gタンパク質共役受容体の発現のための分野に利用可能であるが、哺乳動物細胞又はメラニン保有細胞が使用されることが最も好ましい。以下がその例であり;当業者は、技術者の要求に対して優先的に有益である技法を特定する能力を持つ。例えば、メラニン保有細胞に関する以下の実施例6を参照されたい。
1日目、293細胞の6×106/10cm皿をプレートアウトした。2日目、2つの反応管を用意する(各管についての以下の割合はプレート当たりである):0.5ml血清なしDMEM(Gibco BRL)において4μgDNA(例えば、pCMVベクター;受容体cDNAを有するpCMVベクター等)を混合することによって管Aを準備する;0.5ml血清なしDMEMにおいて24μLリポフェクタミン(Gibco BRL)を混合することによって管Bを準備する。管A及びBを倒置によって混和し(数回)、続いて室温にて30分〜45分間培養する。混和物は、「トランスフェクション混合物」と呼ばれる。プレートアウトした293細胞を1×PBSで洗浄し、続いて5ml血清なしDMEMを追加する。1mlのトランスフェクション混合物を細胞に追加し、続いて37℃/5%CO2において4時間培養する。トランスフェクション混合物を吸引によって除去し、続いて、10mlのDMEM/10%ウシ胎仔血清を追加する。細胞を37℃/5%CO2において培養する。48時間培養した後、細胞を回収し、分析に使用する。
約12×106の293細胞を15cm組織培養プレートの上にプレート(実施例アウトする。10パーセントのウシ胎仔血清及び1パーセントのピルビン酸ナトリウム、L−グルタミン、及び抗生物質を含むDME高グルコース培地で成長させる。293細胞のプレートアウト(又は〜80%までの細胞密度)を24時間続け、12μgのDNAを使用して(例えば、受容体cDNAを有するpCMVベクター)細胞をトランスフェクトする。12μgのDNAを60μLのリポフェクタミン及び血清のない2mlのDME高グルコース培地と組み合わせる。培地をプレートから吸引し、血清を有さない培地で細胞を1回洗浄した。DNA、リポフェクタミン、及び培地混合物を、血清のない10mlの培地と共にプレートに追加する。37℃で4時間〜5時間培養した後、培地を吸引し、25mlの血清含有培地を追加する。トランスフェクションから24時間後、培地を再び吸引し、血清を有する新規の培地を追加する。トランスフェクションから48時間後、培地を吸引し、約12×106の293細胞の最終濃度においてゲネチシン(G418薬剤)を含む血清を有する培地を追加し、15cm組織培養プレート上でプレートアウトする。10パーセントのウシ胎仔血清及び1パーセントのピルビン酸ナトリウム、L−グルタミン、及び抗生物質を含むDME高グルコース培地で成長させる。293細胞のプレートアウト(又は〜80%までの細胞密度)の24時間、12μgのDNAを使用して(例えば、受容体cDNAを有するpCMVベクター)細胞をトランスフェクトする。12μgのDNAを60μLのリポフェクタミン及び血清のない12mlのDME高グルコース培地と組み合わせる。培地をプレートから吸引し、血清を有さない培地で1回洗浄した。DNA、リポフェクタミン、及び培地混合物を、血清のない10mlの培地と共にプレートに追加する。37℃で4時間から5時間培養した後、培地を吸引し、25mlの血清含有培地を追加する。トランスフェクションから24時間後、培地を再び吸引し、血清を有する新規の培地を追加する。トランスフェクションから48時間後、培地を吸引し、500μg/mlの最終濃度においてゲネチシン(G418薬剤)を含む血清を有する培地を追加する。この段階で、トランスフェクション細胞は、G418抵抗性遺伝子を含む陽性トランスフェクション細胞の選択を受ける。選択が行われる4日から5日ごとに培地を交換する。選択中、細胞は成長して、安定したプールを生成する、又は安定したクローン選択のために分割する。
BRS3作動薬として候補化合物を遮蔽するための検定
BRS3作動薬として候補化合物を遮蔽する手法は、種々のものが利用可能である。以下がその例であり;当業者は、技術者の要求に対して優先的に有益である技法を特定する能力を持つ。Gタンパク質共役受容体の作動薬として化合物を遮蔽する検定は、当業者に周知である(例えば、国際出願第WO 02/42461号を参照)。
Gタンパク質共役受容体がリガンド結合又は構成活性化の結果として活性状態にある時、受容体は、Gタンパク質に結合し、GDPの放出及びその後のGタンパク質へのGTPの結合を刺激する。Gタンパク質受容体複合体のαサブユニットは、GTPaseとして作用し、GTPをGDPにゆっくり加水分解し、この時点で受容体は通常不活性化される。活性化受容体は、GDPをGTPと交換し続ける。非加水分解可能GTP類似体[35S]GTPγSを使用して、活性化受容体を発現する膜への[35S]GTPγSの結合の向上を実証することができる。活性化を測定するために[35S]GTPγS結合を使用する利点は、(a)一般に全てのGタンパク質共役受容体に適用可能である、(b)膜表面の近傍において、細胞内カスケードに影響を与える分子を拾い上げるする可能性を低くすることである。
幾つかの実施形態において、本発明のGタンパク質共役受容体を備え、且つ受容体の作動薬等の候補化合物の特定に使用される膜は、以下のように調製されることが好ましい。
「膜掻取り緩衝液」は、20mMのHEPES及び10mMのFDTA、pH7.4からなる;「膜洗浄緩衝液」は、20mMのHEPES及び0.1のmMEDTA、pH7.4からなる;「結合緩衝液」は、20mMのHEPES、100mMのNaC1及び10mMのMgCl2、pH7.4からなる。
手順を通して全材料を氷の上において維持する。まず、培地を細胞のコンフルエントな単層から吸引し、続いて、10mlの冷PBSで濯ぎ、続いて吸引する。その後、細胞を掻き取るために、5mlの膜掻取り緩衝液を追加する;これに続いて、細胞抽出物を50mlの遠心分離管に移す(4℃で17分間20,000rpmにおいて遠心分離する)。その後、上澄み液を吸引し、ペレットを30mlの膜洗浄緩衝液に再懸濁させ、続いて4℃で17分間20,000rpmにおいて遠心分離する。次いで、上澄み液を吸引し、ペレットを結合緩衝液に再懸濁させる。ついで、これをBrinkman PolytronTMホモジナイザーを使用して均質化する(全ての材料が懸濁するまでの15秒〜20秒のバースト)。本明細書では、これを「膜タンパク質」と呼ぶ。
均質化に続いて、ブラッドフォードタンパク質検定を使用して膜のタンパク質濃度を決定する(タンパク質は、約1.5mg/mlに希釈し、後の使用のために小分けし、凍結する(−80℃)ことができる。凍結している時、使用するプロトコルは以下のとおりである:検定の日に、凍結膜タンパク質を室温にて解凍し、続いて撹拌し、次いで約12×1,000rpmにおいて約5秒〜10秒間ポリトロンで均質化する。複数の製剤の場合、ホモジナイザーは、均質化の異なる準備間において完全に清浄されるべきであることに留意されたい)。
結合緩衝材(上記の通り);ブラッドフォード染料試薬;製造業者の指示(Biorad,カタログ番号500−0006)に従って、ブラッドフォードタンパク質標準を使用する。
2重管を準備し、一方は膜を含み、一方は制御「ブランク」としてである。それぞれ、800μLの結合緩衝液を含んでいた。その後、10μLのブラッドフォードタンパク質標準(1mg/ml)を各管に追加し、次いで10μLの膜タンパク質を1つの管にのみ追加する(ブランクには追加しない)。その後、200μLのブラッドフォード染料試薬を各管に追加し、続いてそれぞれを撹拌する。5分後、管を再び撹拌し、内部の材料をキュベットに移す。次いで、波長595において、CECIL3041分光光度計を使用して、キュベットを読み取る。
a.材料
GDP緩衝液は、37.5mlの結合緩衝液及び2mgのGDP(Sigma,cat.no.G−7127)からなっており、続いて結合緩衝液において一連の希釈を行い、0.2μMGDP(各ウェルのGDPの最終濃度は、0.1μMのGDPであった)を得た。候補化合物を備える各ウェルは、200μLの最終容積を有し、100μLのGDP緩衝液(最終濃度、0.1μMのGDP)、結合緩衝液における50μLの膜タンパク質、及び結合緩衝液における50μLの[35S]GTPγS(0.6nM)(10ml結合緩衝液当たり2.5μL[35S]GTPγS)からなる。
96ウェルプレート(実施例フォーマット(これらは、−80℃で凍結することができる)を使用して候補化合物を遮蔽することが好ましい。膜タンパク質(又は、制御として、対象GPCRを除く発現ベクターを有する膜)を懸濁するまで短時間均質化する。次いで、上述されたブラッドフォードタンパク質検定を使用して、タンパク質濃度を決定する。次いで、膜タンパク質(及び制御)を結合緩衝液において0.25mg/m1に希釈する(最終検定濃度、12.5μg/ウェル)。その後、100μLのGDP緩衝液をWallac ScintistripTM(Wallac)の各ウェルに追加した。次いで、5μLのピンツールを使用して、5μLの候補化合物をこのようなウェルに移す(即ち、200μLの全検定容積における5μLは、候補化合物の最終遮蔽濃度が10μMであるように、1:40の比率である)。再び、汚染を避けるために、各移動手順後、ピンツールを、水(1×)、エタノール(1×)、及び水(2×)を備える3つのリザーバにおいて濯がなければならない−過剰な液体は、各濯ぎ後、ツールからふるい落とされ、紙及びキムワイプで乾燥されるべきである。その後、50μLの膜タンパク質を各ウェルに追加し(対象GPCRを有さない膜を備える制御ウェルも使用した)、室温にて5分〜10分間事前培養した。その後、結合緩衝液における50μLの[35S]GTPγS(0.6nM)を各ウェルに追加し、続いて、室温にて60分間シェーカー上において培養する(再び、この例では、プレートをフォイルで覆った)。次いで、22℃で15分間4000RPMでプレートをスピンさせることによって、検定を停止する。次いで、プレートを8チャンネルマニホルドで吸引し、プレートカバーで封止する。次いで、設定条件「Prot.#37」を使用してWallac1450の上において、プレートを読み取る(製造業者の指示通り)。
粗血漿膜と共に使用するように、細胞に基づく検定用に設計されたFlashPlateTMアデニリルシクラーゼキット(New England Nuclear;カタログ番号SMP004A)を修正することができる。FlashPlateウェルは、cAMPを認識する特定の抗体をも含むシンチラントコーティングを含んでもよい。ウェルにおいて生成されたcAMP遺伝子は、放射性cAMPトレーサをcAMP抗体に結合するための直接的な競合によって定量化することができる。以下は、受容体を発現する全細胞においてcAMPレベルの変化を測定する簡潔なプロトコルとして作用する。
a.CRE−Lucレポーター検定
製造業者の指示に従って、293及び293T細胞をウェル当たり2×104細胞の密度で96ウェルプレートの上にプレートアウトし、次の日、リポフェクタミン試薬(BRL)を使用してトランスフェクトした。以下のようにDNA/脂質混合物を各6ウェルのトランスフェクションのために調製した:100μLのDMEDにおける260ngのプラスミドDNAを100μLのDMEMにおける20μLの脂質と共に緩徐に混合する(260ngのプラスミドDNAは、200ngの8xCRE−Lucレポータープラスミド、本発明のGタンパク質共役受容体を含む50ngのpCMV又はpCMV単独、及び10ngのGPRS発現プラスミド[pcDNA3におけるGPRS(Invitrogen)からなる]。8XCRE−Lucレポータープラスミドを以下のように調製した:pβgal−ベーシックベクター(Clontech)のBglV−Hindill部位においてラットソマトスタチン促進剤(−71/+51)をクリーニングすることによって、ベクターSRIF−β−ガルを得た。cAMP応答要素の8のコピーを、アデノウィルステンプレートAdpCF126CCRE8からPCRによって獲得し(例えば、開示内容全体が参考として本明細書に組み入れられている、Suzuki, et al., Hum Gene Ther (1996) 7:1883−1893を参照)、Kpn−BglV部位においてSRIF−β3−ガルベクターにクリーニングし、8xCRE−β−ガルレポーターベクターを得た。8xCRE−β−ガルレポーターベクターのβ−ガラクトシダーゼ遺伝子をpGL3−ベーシックベクター(Promega)から得たルシフェラーゼ遺伝子とHirdIII−BamHI部において置き換えることによって、8xCRE−Lucレポータープラスミドを生成した。30分間室温にて培養した後、DNA/脂質混合物を400μLのDMEMで希釈し、100μLの希釈混合物を各ウェルに追加する。細胞培養物培養器において4時間培養した後、10%FCSを有する100μLのDMEMを各ウェルに追加する。次の日、トランスフェクション細胞を100のDMEMを、10%FCSを有する200μL/ウェルのDMEMで変化させる。8時間後、PBSで1回洗浄した後、ウェルを、フェノールレッドを有さない100μL/ウェルのDMEMに変化させる。次の日、製造業者の指示に従って、LucLiteTMレポーター遺伝子検定キット(Packard)を使用してルシフェラーゼ活性を測定し、1450MicroBetaTMシンチレーション及びルミネセンスカウンター(Wallac)の上で読み取る。
Gq刺激を検出する方法は、プロモーターにおいてAP1要素を含む遺伝子を活性化させるGq依存ホスホリパーゼCの既知の特性に依存する。CREBレポーター検定に関して上述されたプロトコルに従って、PathdetectTM AP−1シス−Reporting System(Stratagene、カタログ番号2−19073)を使用することができるが、リン酸カルシウム沈殿物の成分が、410ngのpAP1−Luc、80ngのpCMV受容体発現プラスミド、及び20ngのCMV−SEAPであったことは除く。
Gq刺激を検出する方法は、プロモーターにおいて血清応答因子を含む遺伝子を活性化させるさせるGq依存ホスホリパーゼCの既知の特性に依存する。PathdetectTM SRF−Luc−Reporting System(Stratagene)を使用して、例えばCOS7細胞におけるGq結合活性を検定することができる。即ち、製造業者の指示に従って、Mammalian TransfectionTMキット(Stratagene、カタログ番号200285)を使用して、細胞にシステムのプラスミド成分及び指示された発現プラスミドコード内因性又は非内因性GPCRをトランスフェクションする。製造業者の指示に従って、410ngのSRF−Luc、80ngのpCMV受容体発現プラスミド、及び20ngのCMV−SEAP(分泌されたアルカリホスファターゼ発現プラスミド;アルカリホスファターゼ活性は、サンプル間のトランスフェクション効率のばらつきを制御するために、トランスフェクション細胞の培地において測定される)をリン酸カルシウム沈殿物において組み合わせる。沈殿物の半分を96ウェルプレートの3つのウェルに均等に分配し、血清のない培地において24時間細胞の上に維持する。最後の5時間、細胞を例えば1μMの試験化合物で培養する。次いで、製造業者の指示に従って細胞を濯ぎ、ルシフェラーゼ活性について、LuclitTM キット(Packard、カタログ番号6016911)及び「Trilux 1450 Microbeta」液体シンチレーション及びルミネセンスカウンター(Wallac)を使用して検定する。GraphPad PrismTM 2.0a(GraphPad Software Inc.)を使用して、データを分析することができる。
1日目、本発明のGタンパク質共役受容体をトランスフェクトされる細胞を、24ウェルプレートの上に、通常は1×105細胞/ウェル(しかしこの数は最適化することができる)で培養することができる。2日目、50μL血清なしDMEM/ウェルにおける0.25μgのDNA(例えば、pCMVベクター;受容体cDNAを有するpCMVベクター等)及び50μL血清なしDMEM/ウェルにおける2μLのリポフェクタミンとまず混合することによって、細胞をトランスフェクトすることができる。溶液を緩徐に混合し、室温にて15分〜30分間培養する。細胞を0.5mlのPBSで洗浄し、400μLの血清なし培地をトランスフェクション培地と混合し、細胞に追加する。次いで、細胞を37℃/5%CO2において3〜4時間培養し、次いでトランスフェクション培地を除去し、1ml/ウェルの正規成長培地と置き換える。3日目、細胞に3H−ミオ−イノシトールで標識する。即ち、培地を除去し、細胞を0.5mlのPBSで洗浄する。次いで、0.5mlのイノシトールなし/血清なし培地(GIBCO BRL)を0.25μCiの3H−ミオ−イノシトール/ウェルと共に追加し/ウェル、細胞を37℃/%CO2で16時間〜18時間培養する。4日目、細胞を0.5mlのPBSで洗浄し、イノシトールなし/血清なし培地10μMパルギリン10mM塩化リチウム又は0.4mlの検定培地を含む0.45mlの検定培地及び50mμLの10×試験化合物を10μMの最終濃度に追加する。次いで、細胞を37℃で30分間培養する。次いで、細胞を0.5mlのPBSで洗浄し、200μLの新規/氷停止溶液(1MのKOH;18mMのホウ酸ナトリウム;3.8mMのEDTA)を追加する/ウェル。溶液を氷の上において5分〜10分間、又は細胞を溶解するまで維持し、次いで200の新規/氷停止中和ゾル(7.5%HCL)によって中和する。溶解産物を1.5mlエッペンドルフ管に移し、1mlのクロロホルム/メタノール(1:2)を追加する/管。溶液を15秒間撹拌し、上相をBiorad AG1−X8TM陰イオン交換樹脂(100〜200メッシュ)に追加する。まず、樹脂を1:1.25W/Vにおいて水で洗浄し、0.9mlの上相をカラムに装填する。カラムを10mlの5mMミオ−イノシトール及び10mlの5mMホウ酸ナトリウム/60mMギ酸ナトリウムで洗浄する。イノシトール三リン酸塩を2mlの0.1Mギ酸/1Mギ酸アンモニウムを有する10mlのシンチレーションカクテルを含むシンチレーションバイアルの中に溶出する。10mlの0.1Mギ酸/3Mギ酸アンモニウムで洗浄することによって、カラムを再生しddH2Oで2回濯ぎ、水において4℃で貯蔵する。
細胞内カルシウム濃度を測定するための蛍光イメージングプレートリーダー(FLIPR)検定(例えば、G1関連受容体)
翌日の検定のために、対象受容体(実験)及びそれぞれのクローン系統からのpCMV(負の制御)安定トランスフェクション細胞を、完全培養培地(10%FBS、2mMのL−グルタミン、1mMのピルビン酸ナトリウムを有するDMEM)と共に5.5×104細胞/ウェルで、ポリ−D−リシン前処置96ウェルプレート(Becton−Dickinson、#356640)の中に接種する。Fluo4−AM(Molecular Probe、#F14202)培養緩衝液ストックを調製するために、1mgのFluo4−AMを467μLのDMSO及び467μLのプルオロニック酸(Molecular Probe、#P3000)に溶解し、20℃で1月貯蔵することができる1mMmp貯蔵溶液を得る。Fluo4−AMは、蛍光カルシウムインジケーター染料である。
MAPキナーゼ検定
MAPキナーゼ(ミトゲン活性化キナーゼ)を監視して、受容体活性化を評価することが可能である。MAPキナーゼは、幾つかの手法によって検出することができる。1つの手法は、非リン酸化(不活性)又はリン酸化(活性)のリン酸エステル化状態の評価に基づく。リン酸化タンパク質は、SDS−PAGEにおいてより緩慢な可動性を有し、従って、ウェスタンブロット法を使用して、非刺激タンパク質と比較することができる。或いは、リン酸化キナーゼの増大を検出するために使用できるリン酸タンパク質に特有な抗体が利用可能である(New England Biolabs)。何れも方法でも、細胞を試験化合物で刺激し、次いで、Laemmli緩衝液で抽出する。可溶性断片をSDS−PAGEゲルに加え、タンパク質をニトロセルロース又はイモビリンに電気泳動により移動させる。免疫活性帯を標準的なウェスタンブロット法によって検出する。可視信号又は化学ルミネセンス信号を膜上において記録し、濃度測定によって定量化することが可能である。
メラニン保有細胞技術
メラニン保有細胞は、下級脊椎動物に存在する皮膚細胞である。メラニン保有細胞は、メラノソームと呼ばれる色素細胞器官を含む。メラニン保有細胞は、Gタンパク質共役受容体(GPCR)活性化の際に微小管網に沿ってこれらのメラノソームを再分配することができる。この色素移動により、細胞の外見は明るくなるか、又は暗くなる。メラニン保有細胞では、Gi結合受容体の活性化の結果である細胞内cAMPのレベルの低下により、メラノソームは細胞の中心に泳動し、その結果、色は劇的に明るくなる。次いで、Gs結合受容体の活性化に続いてcAMPレベルが上昇する場合、メラノソームは再分配され、細胞は、再び暗くなる。Gq結合受容体の活性化の結果であるジアシルグリセロールのレベルの上昇も、この再分配を誘起することができる。更に、この技術は又、ある受容体チロシンキナーゼの研究にも適している。メラニン保有細胞の応答は、受容体活性化の数分以内に行われ、簡単且つ堅調な色の変化が起きる。応答は、従来の吸収ミクロプレートリーダー又は適度なビデオイメージングシステムを使用して容易に検出することができる。他の皮膚細胞とは異なり、メラニン保有細胞は、神経堤から誘導され、シグナリングタンパク質の完全な相補体を発現すると思われる。特に、細胞は、極めて広範囲のGタンパク質を発現し、従ってほぼ全てのGPCRを機能的に発現することができる。
放射性標識化合物
特定の実施形態において、本発明のGタンパク質共役受容体のリガンドとして既知の化合物は、放射性標識される。本明細書において記述される放射性標識化合物は、化合物を特定/評価するために、遮蔽検定において使用することができる。一般的に、新たに合成又は特定された化合物(即ち、試験化合物)は、既知の放射性標識リガンドと受容体の間の複合体の形成を低減する能力によって、既知の放射性標識リガンドが受容体に結合するのを低減する能力について評価することができる。本発明の化合物において組み込むことができる適切な放射性核種には、3H(Tとも書かれる)、11C、14C、18F、125I、82Br、123I、124I、125I、131I、75Br、76Br、15O、13N、35S、及び77Brが含まれるが、これらに限定されない。3H、14C、125I、131I、35S、82Brを組み込む化合物が、一般的には最も有用である。
受容体結合検定
試験化合物は、本発明のGタンパク質共役受容体のリガンドとして既知の化合物と受容体の間の複合体の形成を低減する能力について評価することができる。特定の実施形態において、既知のリガンドは放射性標識されている。既知の放射性標識リガンドは、化合物を特定/評価するために、遮蔽検定において使用することができる。一般的に、新たに合成又は特定された化合物(即ち試験化合物)は、既知の放射性標識リガンドと受容体の間の複合体の形成を低減する能力によって、既知の放射性標識リガンドを受容体に結合するのを低減する能力について評価することができる。
A.受容体の調製
293個の細胞に、60μlのリポフェクタミン(15cm皿当たり)を使用して本発明のGタンパク質共役受容体をコードするポリヌクレオチドを備える10μg発現ベクターを過渡的にトランスフェクトする。過渡的にトランスフェクトされた細胞を皿において培地変化と共に24時間培養し(75%コンフルエンシー)、10ml/皿のHepes−EDTA緩衝液(20mMHepes+10mMのEDTA、pH7.4)と共に除去する。次いで、細胞をBeckman Coulter遠心分離器において、17,000rpmで20分間遠心分離する(JA−25.50ローター)。その後、ペレットを20mMHepes+1mMのEDTA、pH7.4に再懸濁し、50mlダウンスホモジナイザーで均質化し、再び遠心分離する。上澄み液を除去した後、結合検定において使用するまで、ペレットを−80℃で貯蔵する。検定に使用する時、膜を氷の上で20分間解凍し、次いで10mLの培養緩衝液(20mMHepes、1mMのMgCl2、100mMのNaC1、pH7.4)を追加する。次いで、膜を撹拌して粗膜ペレットを再懸濁させ、Brinkmann PT−3100ポリトロンホモジナイザーで設定条件6において15秒間均質化する。BRLブラッドフォードタンパク質検定を使用して膜タンパク質の濃度を決定する。
完全に結合するために、適切に希釈した50μLの全容積(50mMトリスHCI(pH7.4)、10mMのMgCl2、及び1mMのEDTA;5−50μgのタンパク質を含む検定緩衝液において希釈)を96ウェルポリプロピレンマイクロタイタープレートに追加し、続いて、100u1の検定緩衝液及び50u1の既知の放射性標識リガンドを追加する。非特異的結合では、100μLの代わりに50μLの検定緩衝液を追加し、50μLの前記放射能標識つきの既知のリガンドを追加する前に、放射性標識されていない10uMの前記既知のリガンドの追加の50μLを追加する。次いで、プレートを室温にて60分〜120分培養する。ブランデル96ウェルプレートハーベスターでMicroplate Devices GF/Cユニフィルター(Unifilter)ろ過プレートを経て検定プレートをろ過することによって結合反応を終了し、続いて、0.9%NaClを含む50mMトリスHCl、pH7.4で洗浄した。次いで、ろ過プレートの底部を封止し、50u1のOptiphase Supermixを各ウェルに追加し、プレートの上部を封止し、プレオートをTrilux MicroBetaシンチレーションカウンターにおいて計数する。前記既知の放射性標識リガンドと前記受容体の間で形成される複合体がより少ないかを判定するために、100u1の検定緩衝液を追加する代わりに、100u1の適切に希釈した前記試験化合物を適切なウェルに追加し、次いで、50u1の前記既知の放射性標識リガンドを追加する。
BRS−3が細胞内のIP3の蓄積を増大
COS−7細胞に、cDNAコード内因性ヒトBRS−3を含むpCMV発現ベクター又はpCMVベクターのみを過渡的にトランスフェクトする。細胞内IP3蓄積を全リン酸イノシトールの蓄積として読み取った。
細胞におけるBRS−3発現のRT−PCR分析
細胞におけるBRS−3発現を判定するために、RT−PCRを使用した。GLUTagは、GLP−1生成マウス腸内分泌細胞L細胞系統である[Brubaker, et al., Endocrinology (1998) 139:4108−4114]
GLUTag細胞におけるBRS−3発現を以下のプライマーを使用してRT−PCRによって評価した:
5’−TCCCGCTCTCGATTATCTCTGTCT−3’(配列番号5;センス)、及び、
5’−TCCTCTCCCTTCTTGGCACTACTG−3’(配列番号6;アンチセンス)
PCRプライマー配列番号5及び配列番号6は、イントロンにわたってBRS−3を増幅するように選択され、それにより、cDNA(508bp)の増幅産物は、ゲノムDNAから容易に区別可能である。
GLUTAG細胞における細胞内IPE蓄積に対するBRS−3作動薬の効果
GLUTagは、GLP−1生成マウス腸内分泌細胞L細胞系統[Brubaker, et al., Endocrinology (1998) 139:4108−4114]である。GLUTag細胞における細胞内IP3蓄積レベルに対するBRS−3作動薬の効果を判定する。
GLUTAG細胞におけるGLP−1の分泌の刺激に対するBRS−3作動薬の効果
GLUTagは、GLP−1生成マウス腸内分泌細胞L細胞系統[Brubaker, et al., Endocrinology (1998) 139:4108−4114]である。GLUTag細胞におけるGLP−1の分泌の刺激に対するBRS−3作動薬の効果を判定する。
マウスの経口グルコース耐性試験(oGTT)において上昇した血中グルコースレベルを低下させることにおけるBRS03作動薬及びDPP−IV阻害剤の効果
マウスの経口グルコース耐性試験(oGTT)を本明細書において記述されるように実施する。
糖尿病及びそれに関連する病態を処置又は予防するBRS−3作動薬及びDPP−IV阻害剤の組み合わせ
本発明によるBRS−3作動薬を選択する。本発明によるDPP−IV阻害剤を選択する。
マウスにおけるグルコースチャレンジ試験後に血中GLP−1レベルを増大させることにおけるBRS−3作動薬及びDPP−IV阻害剤の効果
C57blk/6の雄マウス(8週齢)を18時間断食させ、各群についてn=6で12群に無作為に割り当てる。BRS−3作動薬[例えば、単独で使用される時治療上有効な約0.01mkg〜約1mkg(体重のキログラム当たりミリグラム化合物)の間の投与量における]、DPP−IV阻害剤[例えば、単独で使用される時治療上無効な約0.01mkg〜約1mkg(体重のキログラム当たりミリグラム化合物)の間の投与量における]、又はBRS−3作動薬及びDPP−IV阻害剤の組み合わせ(例えば、上記の治療上無効な量において)をマウスに経口でビヒクル(PET)と共に投与する。処置の30分後、3g/kgのグルコースの塊を経口で投与し、血漿を0分(グルコースの塊なし)、並びにグルコースの塊の2分後及び5分後に収集する。Linco Research Laboratory[Glucagon−Like Peptide−1(Active)ELISAキット、カタログ番号DGLP−35K]から購入したGLP−1ELISAキットを使用することによって、血漿GLP−1レベルを決定する。
BRS−3作動薬活性の酵母受容体
酵母細胞に基づくレポーター検定は、文献において以前に記載されている(例えば、Miret, et al., J Biol Chem (2002) 277:6881−6887;Campbell, et al., Bioorg Med Chem Lett (1999) 9:2413−2418;King, et al., Science (1990) 250:121−123;WO 99/14344;WO 00/12704;及び米国第6100042号を参照されたい)。簡潔には、酵母細胞は、内因性酵母G−α(GPA−1)が排除され、複数の技法を使用して構築されたGタンパク質キメラと置き換えられるように加工された。更に、内因性酵母α細胞GPCR、Ste3が、選択される哺乳動物GPCRが均質に発現することを見込むために、排除された。酵母では、真核細胞(例えば、ミトゲン活性化タンパク質キナーゼ経路)において保存されるフェロモンシグナリング導入経路の要素が、Fuslの発現を駆動する。β−ガラクトシダーゼ(LacZ)をFusl促進剤の(Fuslp)制御下に置くことによって、システムは発展し、それにより、受容体活性化が酵素の読出しをもたらす。
空のベクターで変換された酵母細胞の場合に対するBRS−3変換酵母細胞における蛍光信号色素分散の増大は、試験化合物がBRS−3受容体の機能性を刺激する化合物であることを示す。
Claims (17)
- ボディマスを減少させるのに有用なGLP−1分泌促進物質又は化合物、或いは血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を処置又は予防するのに有用な化合物を同定する方法であって、
(a)Gタンパク質共役受容体を発現する宿主細胞又は該宿主細胞の膜と、試験化合物とを接触させる手順であって、該Gタンパク質共役受容体が、
(i)配列番号2のアミノ酸1〜335;
(ii)配列番号2のアミノ酸1〜399;
(iii)配列番号2のアミノ酸2〜335;
(iv)配列番号2のアミノ酸2〜399;
(v)配列番号2のアミノ酸2〜335(但し、該受容体が配列番号2のアミノ酸位置1においてメチオニン残基を含まないことを条件とする);
(vi)配列番号2のアミノ酸2〜399(但し、該受容体が配列番号2のアミノ酸位置1においてメチオニン残基を含まないことを条件とする);
(vii)特異的プライマーである配列番号3及び配列番号4を使用してヒトDNAサンプルにおいてポリメラーゼ鎖反応(PCR)を実施することを含むプロセスによって得ることができるヌクレオチド配列によってコードされるGタンパク質共役受容体のアミノ酸配列;
(viii)配列番号1の相補体にストリンジェントな条件下でハイブリダイズするヌクレオチド配列によってコードされるGタンパク質共役受容体のアミノ酸配列;及び
(ix)(i)〜(viii)の何れか1つの生物学的活性フラグメント、
からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、手順;
(b)該受容体の機能性を刺激する該試験化合物の能力を判定する手順、
(c)手順(b)において該受容体の機能性を刺激する化合物を、哺乳動物の腸内分泌細胞とin vitroで接触させる手順;並びに、
(d)該化合物が該哺乳動物の腸内分泌細胞によるGLP−1の分泌を刺激するか否かを判定する手順、を含み;
該哺乳動物の腸内分泌細胞からのGLP−1の分泌を刺激する該試験化合物の能力は、
該試験化合物が、ボディマスを減少させるに有用なGLP−1分泌促進物質又は化合物であるか、或いは血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を処置又は予防するのに有用な化合物であることを表す、方法。 - 前記方法が、GLP−1分泌促進物質を同定するためのものである、請求項1に記載の方法。
- 前記宿主細胞が発現ベクターを含み、該発現ベクターが、Gタンパク質共役受容体をコードするポリヌクレオチドを含む、請求項1〜2の何れか1項に記載の方法。
- 前記判定が、セカンドメッセンジャーのレベルを測定することにより行われる、請求項1に記載の方法。
- 前記セカンドメッセンジャーが、イノシトール 1,4,5−三リン酸塩(IP3)、ジアシルグリセロール(DAG)、MAPキナーゼ活性、MAPK/ERKキナーゼキナーゼ−1(MEKK1)活性、及びCa2+からなる群から選択される、請求項4に記載の方法。
- 前記判定が、メラニン保有細胞検定を使用することにより、又は前記GPCRを含む膜へのGTPγSの結合を測定することにより行われる、請求項1に記載の方法。
- ボディマスを減少させるのに有用なGLP−1分泌促進物質又は化合物、或いは血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を処置又は予防するのに有用な化合物を同定する方法であって、
(a)試験化合物の存在下又は非存在下において、Gタンパク質共役受容体を、該受容体に対する必要に応じて標識された既知のリガンドと接触させる手順であって、該Gタンパク質共役受容体が、
(i)配列番号2のアミノ酸1〜335;
(ii)配列番号2のアミノ酸1〜399;
(iii)配列番号2のアミノ酸2〜335;
(iv)配列番号2のアミノ酸2〜399;
(v)配列番号2のアミノ酸2〜335(但し、該受容体が配列番号2のアミノ酸位置1においてメチオニン残基を含まないことを条件とする);
(vi)配列番号2のアミノ酸2〜399(但し、該受容体が配列番号2のアミノ酸位置1においてメチオニン残基を含まないことを条件とする);
(vii)特異的プライマーである配列番号3及び配列番号4を使用してヒトDNAサンプルにおいてポリメラーゼ鎖反応(PCR)を実施することを包含するプロセスによって得ることができるヌクレオチド配列によってコードされるGタンパク質共役受容体のアミノ酸配列;
(viii)配列番号1の相補体にストリンジェントな条件下でハイブリダイズされるヌクレオチド配列によってコードされるGタンパク質共役受容体のアミノ酸配列;及び
(ix)(i)〜(viii)の何れか1つの生物学的活性フラグメント、
からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、手順;
(b)該既知のリガンドと該受容体との間の複合体を検出する手順;
(c)該試験化合物の存在下で形成される該複合体が、該試験化合物の非存在下で形成されるよりも少ないか否かを判定する手順、
(d)その存在下の方が(c)において形成される該複合体が少ない化合物を、哺乳動物の腸内分泌細胞とin vitroで接触させる手順;並びに、
(e)該化合物が該哺乳動物の腸内分泌細胞によるGLP−1の分泌を刺激するか否かを判定する手順、を含み;
該哺乳動物の腸内分泌細胞からのGLP−1の分泌を刺激する能力は、該試験化合物が、ボディマスを減少させるのに有用なGLP−1分泌促進物質又は化合物であるか、或いは血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を処置又は予防するのに有効な化合物であることを表す、方法。 - 前記方法が、GLP−1分泌促進物質を同定するためのものである、請求項7に記載の方法。
- 前記受容体が組換え体である、請求項7〜8の何れか1項に記載の方法。
- 血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を処置または予防するのに有用なGLP−1分泌促進物質又は化合物を同定する方法であって、
(a)BRS−3作動薬を、哺乳動物の腸内分泌細胞とin vitroで接触させる手順;及び
(b)該BRS−3作動薬が、該哺乳動物の腸内分泌細胞からのGLP−1の分泌を刺激するか否かを判定する手順、
を含み、該BRS−3作動薬の、該哺乳動物の腸内分泌細胞からのGLP−1の分泌を刺激する能力は、該作動薬が、血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される病態を処置又は予防するのに有効なGLP−1分泌促進物質又は化合物であることを表す、方法。 - 血中GLP−1レベルを増大させることによって緩和される前記病態が、糖尿病、糖尿病に関連する病態、心筋梗塞、学習障害、記憶障害、及び神経変性障害からなる群から選択される、請求項10に記載の方法。
- 前記方法がGLP−1分泌促進物質を同定するためのものである、請求項10に記載の方法。
- 前記BRS−3作動薬が、ヒトBRS−3の作動薬である、請求項10に記載の方法。
- 前記BRS−3作動薬が低分子であり、該低分子が、モル当たり約10,000グラム未満の分子量を有し、ペプチド、ペプチドミメティック、アミノ酸、アミノ酸類似体、ポリヌクレオチド、ポリヌクレオチド類似体、ヌクレオチド、ヌクレオチド類似体、有機化合物、又は無機化合物(ヘテロ有機化合物、又は有機金属化合物を含む)、並びに、その塩、エステル、及び他の薬学的に許容される形態からなる群から選択される化合物である、請求項10〜13の何れか1項に記載の方法。
- 前記BRS−3作動薬が、経口活性である、請求項10〜14の何れか1項に記載の方法。
- 前記BRS−3作動薬が、選択的BRS−3作動薬である、請求項10〜15の何れか1項に記載の方法。
- 前記BRS−3作動薬が、10μM未満のEC50を有する、請求項10〜16の何れか1項に記載の方法。
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