JP5760247B2 - 癌患者の術後の予後又は転移可能性を予測するための組成物及び方法 - Google Patents

Description

本発明は、癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測するための組成物又は方法に関する。

本発明はまた、培養癌細胞を用いて癌転移抑制剤をスクリーニングするための方法に関する。

癌は、遺伝子と環境因子が複雑に絡んだ多因子疾患である。化学療法、放射線療法、外科療法、免疫療法などの種々の治療法が実施されているが、癌の発症メカニズムの複雑さゆえに、中期及び末期癌の治療や癌転移の抑制については必ずしも十分な効果が達成されているとはいえない。

一方、癌の早期発見と早期治療によって多くの癌患者が完治又は延命していることも事実である。癌の診断には、例えば細胞診、組織診、内視鏡、画像診断、癌マーカーによる生化学的診断などの方法が採用されており、特に早期癌の検出のために多方面からの研究が活発に行われている。

癌の治療や再発を妨げる大きな原因の１つが、癌の転移である。癌の運動能と浸潤能のために癌は原発巣から別の組織に遠隔転移し増殖する。この転移メカニズムの全体像は、ほとんど解明されていない。癌が悪性化するにつれて、また癌の摘出に際して、癌は転移し易くなり、その結果癌の再発が起こるため、癌の転移を防ぐことが、癌の早期診断法や有効な治療法の開発とともに、医療現場で重要な課題となっている。

現在、いくつかの癌転移関連遺伝子が報告されているが、そのほとんどはディファレンシャル・ディスプレー法によって発見されている。この方法は発現パターンの差異に基づいて目的遺伝子を検出するものであるが、この方法によって見出された遺伝子の多くは、多くの組織や細胞中で共通して一定量発現する遺伝子、いわゆるハウスキーピング遺伝子である。本質的に癌転移に関わる遺伝子を特定することができるならば、癌転移を抑制する薬剤の開発に繋がることが期待される。

癌転移抑制剤として、例えばヒトＶＥＧＦ受容体Ｆｌｔ−１を介する情報伝達を阻害する物質（特許文献１）、細胞接着阻害活性を有するペプチド（特許文献２）、プリンレセプター作働機能を有するプリン系化合物（特許文献３）などが知られている。また、癌の転移に関わる遺伝子の研究から、マトリックス分解酵素や血管内皮増殖因子とその受容体などが転移に関わることが示唆されている。例えば癌転移関連遺伝子として、マウス細胞株から発見された癌転移関連遺伝子が報告されている（特許文献４）。

近年、ｍＲＮＡを標的とした遺伝子抑制技術の癌治療への応用が試みられようとしている。そのような遺伝子抑制技術には、例えばアンチセンス法、リボザイム、ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）などが含まれる（非特許文献１）。特に、ＲＮＡｉは特異性が高いため、その医療への応用のための基礎研究が急速に進行しており、その標的としてウイルス性疾患、癌、遺伝性疾患などに注目が集まっている（非特許文献２）。

特開２００３−２６１４６０ 特開平０９−１４３０７６号公報 特開平７−０８２１５６号公報 再表９８／０４５４３１ 関大輔ら，実験医学２２巻１４号（増刊），８９〜９８頁，２００４年，羊土社 実験医学２２巻４号「ＲＮＡｉのサイエンス」，２００４年，羊土社

これまでに、ある特定の遺伝子又はポリペプチドが癌の転移に関連している可能性が提案されてきたが、実験室レベルでは転移に関連していても他の系では転移との関連が確認できなかった、或いは阻害剤を開発して臨床応用しても十分な効果が得られなかった、という多くの事象が存在した。

このような状況において、本発明者らは、転移が単一遺伝子によって起こるものではなく、複数の遺伝子群の協調的な相互作用によって起きることに着目し、癌転移関連遺伝子マーカーの同定、並びに該遺伝子マーカーと癌患者の術後の予後又は転移可能性との関係について検討した。

本発明の目的は、癌転移関連遺伝子群をマーカーとして癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測する方法及び組成物を提供することである。

本発明の別の目的は、癌転移関連遺伝子又はその転写産物の阻害又は抑制について、癌転移抑制剤をスクリーニングする方法を提供することである。

本発明者らが開発した高転移性ヒト肺癌細胞株とその低転移性親株との間で、網羅的遺伝子発現解析を行い、転移性獲得に関わると考えられる両者の間で発現差を示す遺伝子群を同定し、さらに、ヒト癌患者において転移・再発に関わる可能性を、複数の癌腫について異なるマイクロアレイプラットフォームを用いて採取された網羅的遺伝子発現データを用いて検討した。その結果、複数の癌腫において、同定した遺伝子群の発現プロファイルによって癌患者群が２群間に大別され、かつ、その２群間に外科手術後の生存期間（又は、予後）に有意な差異の存在を示すことが判明した。

発明の概要
本発明は、要約すると、次のような特徴を有する。
（１）癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測する方法であって、該患者由来の生物学的検体中の、配列番号１〜４５に示される塩基配列又はその変異配列を含む癌転移関連遺伝子マーカーの少なくとも１つの発現レベル又はその転写若しくは翻訳産物レベルを、該マーカーに対応するプローブを用いて測定し、術後の予後がより良い又は転移可能性がより低い患者群と術後の予後がより悪い又は転移可能性がより高い患者群との間の相対的な該レベルの差を指標にして、術後の予後又は転移可能性を判定することを含む、上記方法。
（２）前記癌転移関連遺伝子マーカーが、配列番号２８〜４５に示される塩基配列又はその変異配列からなるとき、前記患者は、術後の予後がより良い又は転移可能性がより低い患者として識別される、上記（１）に記載の方法。
（３）前記癌転移関連遺伝子マーカーが、配列番号１〜２７に示される塩基配列又はその変異配列からなるとき、前記患者は、術後の予後がより悪い又は転移可能性がより高い患者として識別される、上記（１）に記載の方法。
（４）前記プローブが、配列番号１〜４５に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、それに相補的なポリヌクレオチド、それらの変異体、それらにストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチド、或いは１５以上の連続した塩基を含むそれらの断片からなる群から選択される、上記（１）〜（３）のいずれかに記載の方法。
（５）前記プローブが、配列番号１〜４５に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド又はその変異体によってコードされるポリペプチドからなる群から選択されるポリペプチド又はその断片に対する抗体又はその断片である、上記（１）〜（３）のいずれかに記載の方法。

（６）前記抗体が、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体又はペプチド抗体である、上記（５）に記載の方法。
（７）前記癌が固形癌である、上記（１）〜（６）のいずれかに記載の方法。
（８）前記固形癌が肺癌又は乳癌である、上記（７）に記載の方法。
（９）配列番号１〜４５に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、それに相補的なポリヌクレオチド、それらの変異体、それらにストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチド、或いは１５以上の連続した塩基を含むそれらの断片からなる群から選択される少なくとも１つのプローブを含む、癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測するための組成物。
（１０）配列番号２８〜４５に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、それに相補的なポリヌクレオチド、それらの変異体、それらにストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチド、或いは１５以上の連続した塩基を含むそれらの断片からなる群から選択される少なくとも１つのプローブを含む、癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測するための組成物。

（１１）配列番号１〜２７に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、それに相補的なポリヌクレオチド、それらの変異体、それらにストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチド、或いは１５以上の連続した塩基を含むそれらの断片からなる群から選択される少なくとも１つのプローブを含む、癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測するための組成物。
（１２）配列番号１〜４５に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド又はその変異体によってコードされるポリペプチドからなる群から選択されるポリペプチド又はその断片に対する抗体又はその断片からなる群から選択される少なくとも１つのプローブを含む、癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測するための組成物。
（１３）配列番号２８〜４５に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド又はその変異体によってコードされるポリペプチドからなる群から選択されるポリペプチド又はその断片に対する抗体又はその断片からなる群から選択される少なくとも１つのプローブを含む、癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測するための組成物。
（１４）配列番号１〜２７に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド又はその変異体によってコードされるポリペプチドからなる群から選択されるポリペプチド又はその断片に対する抗体又はその断片からなる群から選択される少なくとも１つのプローブを含む、癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測するための組成物。
（１５）前記プローブがキットの形態で含まれる、上記（９）〜（１４）のいずれかに記載の組成物。

（１６）前記プローブがマイクロアレイの形態で含まれる、上記（９）〜（１１）のいずれかに記載の組成物。
（１７）培養癌細胞を用いて、配列番号１〜２７のいずれかの塩基配列を含む癌転移関連遺伝子又はその転写産物の阻害又は抑制について、或いはヒト培養癌細胞の運動能及び／又は浸潤能の阻害又は抑制について、候補薬剤をスクリーニングすることを含む、癌転移抑制剤のスクリーニング方法。
（１８）培養癌細胞を準備し、該細胞を候補薬剤の存在下で培養し、前記癌転移関連遺伝子又はその転写産物の発現の阻害又は抑制について、或いは培養癌細胞の運動能及び／又は浸潤能の阻害又は抑制について、候補薬剤をスクリーニングすることを含む、上記（１７）に記載の方法。

本発明者らは、今回、同定された４５種類の癌転移関連遺伝子マーカーが、複数の癌腫において癌患者の術後の予後又は転移可能性を判定しうる上で非常に有用であることを見出した。これらのマーカーを指標とすることによって、癌患者の術後予後及び癌転移の可能性を予測することができるため、患者に対する治療計画の策定、癌に対する治療成績の向上、並びに転移癌による再発の防止と予後の管理のために大いに役立つことが期待できる。さらにまた、培養癌細胞において、上記マーカーを指標として、その発現を調節する薬剤をスクリーニングすることも可能になり、これによって、癌転移を抑制又は防止する薬剤の開発に導くことができる。

定義
本明細書中で使用する用語は、以下の意味を含む。
本明細書で使用する「術後予後」は、癌の手術後の患者の予後を、代表的には術後５年時点での生存率で判定することを意味する。予後は、癌の転移と深く関係しており、「予後が悪い」とは、癌の浸潤性、転移性又は進行度が高いことを意味し、一方、「予後が良い」とは、そのような浸潤性、転移性又は進行度が低いことを意味する。

本明細書で使用する「転移（ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ）」は、癌細胞が、その運動能と浸潤能によって、原発巣から遠隔部位の組織に移動し、そこで増殖し新生物を形成する一連の過程をいう。転移は、癌の再発を引き起すため、癌治療の大きな障害となっている。血管又はリンパ管内に浸潤した癌細胞は、種々の組織に居留して多発的に癌疾患を起こすことも知られている。本発明では、本発明の癌転移関連遺伝子マーカーが関わる限りいずれの転移も対象となるが、例えばリンパ節転移も対象としうる。

本明細書で使用する「患者」は、ヒト、イヌ、ネコを含む哺乳動物を指し、好ましい哺乳動物はヒトである。

本明細書で使用する「生物学的検体」は、哺乳動物（好ましくはヒト）から採取された組織、細胞又は体液を指し、好ましくは癌の組織又は細胞である。本発明においては、癌組織又は細胞において、術後の予後がより良い又は転移可能性がより低い患者群由来のものと、術後の予後がより悪い又は転移可能性がより高い患者群由来のものとの間で、本発明に関わる遺伝子マーカーの発現レベルに相対的な差異が認められる癌であればいずれの癌も対象となりうる。癌には、例えば、肺癌、乳癌、大腸癌、前立腺癌、胃癌、食道癌、肝臓癌、膵臓癌、腎臓癌、子宮体部・頚部癌、卵巣癌、膀胱癌、脳腫瘍、甲状腺癌、リンパ腫、精巣癌、骨肉腫、皮膚癌、黒色腫、血液癌（特に白血病）などが含まれるが、これらに限定されない。

本明細書で使用する「癌転移関連遺伝子マーカー」は、高転移性癌細胞株と低転移性癌細胞株との間で、発現レベルに差異のある遺伝子を同定することによって今回見出されたマーカーであり、本発明方法におけるような癌患者の術後予後又は転移可能性の判定等に使用することがきる。

本明細書で使用する「変異体」は、例えば突然変異、多型性、選択的スプライシングなどの生物学的事象、遺伝暗号の縮重などに起因して生じる変異体、生物種間のホモログなどを包含する。変異体には、本発明に関わる配列番号１〜４５によって示される塩基配列を含む遺伝子、或いは該遺伝子によってコードされるポリペプチド、の配列上に１若しくは複数、好ましくは１若しくは数個、の置換、欠失、付加、挿入などの変異を有する変異体、該配列又はその部分配列と８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９８％以上の同一性を有する配列からなる変異体、などが含まれる。ここで、「数個」とは、通常、１０個以下の整数を意味する。また、同一性（％）は、ギャップを導入した公知のＢＬＡＳＴやＦＡＳＴＡプラグラムを用いて決定することができる（Ｓ． Ｆ． Ａｌｔｓｃｈｕｌら， Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏ． ２１５：４０３−４１０，１９９０）。一般に、全塩基数に対する一致した塩基数の百分率として同一性（％）を算出できる。

本明細書で使用する「ストリンジェントな条件」は、以下のものに限定されないが、少なくとも８０％、好ましくは少なくとも９５％の同一性を有するヌクレオチド配列が互いにハイブリダイズするようなハイブリダイゼーション及び洗浄条件を意味し、例えばマイクロアレイ解析におけるハイブリダイゼーション及び洗浄条件は、１Ｍ塩化ナトリウム／０．５％（Ｗ／Ｖ）サルコシル／３０％ホルムアミド中、６０℃、１７時間のハイブリダイゼーション、その後、６×ＳＳＣ／０．００５％（Ｗ／Ｖ）トライトンＸ−１０２溶液中、室温、１０分間で一回、さらに、０．１×ＳＳＣ／０．００５％（Ｗ／Ｖ）トライトンＸ−１０２溶液中で０〜４℃に保ちながら５分間で一回の洗浄の条件である。ここで、１×ＳＳＣは１５０ｍＭ塩化ナトリウムと１５ｍＭクエン酸ナトリウム水溶液（ｐＨ７．２）である。ハイブリダイゼーションについては、Ｆ．Ｍ． Ａｕｓｂｅｌら， Ｓｈｏｒｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ（３版）Ａ Ｃｏｍｐｅｎｄｉｕｍ ｏｆ Ｍｅｔｈｏｄ ｓ ｆｒｏｍ Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， １９９５年， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， Ｉｎｃ．（米国）に記載されている。

詳細な説明
以下において、本発明をさらに詳細に説明する。
１．癌転移関連遺伝子マーカー
本発明のヒト癌転移関連遺伝子マーカーは、次のようにして見出された。
公知の転移性肺癌細胞株ＮＣＩ−Ｈ４６０（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）（親株）をマウスに皮下移植して肺転移を起こさせたのち、肺転移巣からの細胞の継代培養と、転移能に基づくマウスを用いたインビボ選択とによって、高転移癌細胞株ＬＮＭ３５を単離した（図１参照）。一方、ＮＣＩ−Ｈ４６０細胞から限界希釈法又は脱メチル化剤での処理などによって、さらに低転移性の癌細胞株を得ることができる。ＬＮＭ３５株は、培養細胞又はマウス移植試験において、運動能、浸潤能、リンパ節転移及び肺転移のいずれにおいても、親株又は低転移癌細胞株と比べて非常に高値を示した（図２参照）。

高転移癌細胞株ＬＮＭ３５と、親株又は低転移癌細胞株との間で、ジーンフィルターマイクロアレイ（ｇｅｎｅ ｆｉｌｔｅｒ ｍｉｃｒｏａｒｒａｙ； Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ社）による遺伝子発現差を調べることによって、配列番号１〜４５の塩基配列を含むヒト癌転移関連遺伝子を見出した。データバンク検索の結果、これらの遺伝子は、表１に示すように、Ｕｎｉｇｅｎｅ又はＧｅｎＢａｎｋに登録されているが、癌転移との関連性については知られていない。表１及び表２はそれぞれ、高転移性のＬＮＭ３５株で発現が高い遺伝子マーカー及び発現が低い遺伝子マーカーの配列番号、ＧｅｎＢａｎｋ受託番号(Accession number)、ＵｎｉＧｅｎｅ ＩＤ、遺伝子名(Gene symbol, Gene name)を示す。

上記のように同定された癌転移関連マーカーは、肺癌だけでなく、乳癌などの固形癌においてもマーカーとなりうる。これまで報告されたマーカーは特定の癌に特異的であったが、本発明のマーカーは種々の癌に共通のマーカーである点で驚くべきことであった。

このために、本発明方法の対象となる患者の癌には、例えば、肺癌、乳癌、大腸癌、前立腺癌、胃癌、食道癌、肝臓癌、膵臓癌、腎臓癌、子宮体部・頚部癌、卵巣癌、膀胱癌、脳腫瘍、甲状腺癌、リンパ腫、精巣癌、骨肉腫、皮膚癌、黒色腫などの固形癌が含まれる。さらに可能な癌として、血液癌（特に白血病）なども挙げられる。

本発明において、癌転移関連遺伝子マーカーには、配列番号１〜４５に示される塩基配列を含む遺伝子だけでなく、その変異体遺伝子も含まれる。通常、そのような変異体は、生体内で例えば突然変異、多型性、選択的スプライシングなどの生物学的事象の結果とし生じた変異体を含む。実際には、該遺伝子マーカーは、転写産物又は翻訳産物として核酸レベル又はタンパク質レベルで検出される。

転写産物の場合、それはｍＲＮＡ、ｃＲＮＡ又はｃＤＮＡとして検出される。細胞又は組織からフェノール／クロロホルム法などの方法で全ＲＮＡを抽出し、オリゴｄＴセルロースカラム法によってポリＡ（＋）ＲＮＡ又はｍＲＮＡを調製し、必要により、さらにｍＲＮＡからｃＤＮＡ、ｃＲＮＡを合成する。

翻訳産物の場合、それは上記遺伝子又はその変異体によってコードされるタンパク質又はその断片として検出される。

本発明に関わる上記癌関連遺伝子マーカーは、その発現パターンによって、外科手術後の癌患者の予後又は転移可能性の程度に対応して２群に大別される（図３〜図５参照）。

具体的には、癌転移関連遺伝子マーカーが、配列番号２８〜４５に示される塩基配列又はその変異配列からなるとき、患者は、術後の予後がより良い又は転移可能性がより低い患者として識別される。一方、癌転移関連遺伝子マーカーが、配列番号１〜２７に示される塩基配列又はその変異配列からなるとき、患者は、術後の予後がより悪い又は転移可能性がより高い患者として識別される。

２．予後又は転移可能性を予測するための組成物
本発明は、上記のとおり、癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測する方法を提供し、この方法は、該患者由来の生物学的検体中の、配列番号１〜４５に示される塩基配列又はその変異配列を含む癌転移関連遺伝子マーカーの少なくとも１つの発現レベル又はその転写若しくは翻訳産物レベルを、該マーカーに対応するプローブを用いて測定し、正常又は非癌の対照検体に対する有意なレベル差を指標にして、術後の予後又は転移可能性を予測することを含む。

本発明で使用されるプローブは、上記マーカーを検出可能なものであれば特に制限されないが、通常は、ポリヌクレオチド又は抗体である。したがって、このようなポリヌクレオチド又は抗体を含む組成物は、癌患者の術後の予後又は転移可能性を予測するために使用されうる。

２．１ ポリヌクレオチドプローブ
具体的には、本発明に関わるポリヌクレオチドプローブは、（ｉ）配列番号１〜４５に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、（ｉｉ）（ｉ）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド、（ｉｉｉ）（ｉ）及び（ｉｉ）のポリヌクレオチドの変異体、（ｉｖ）（ｉ）又は（ｉｉ）のポリヌクレオチド或いは（ｉｉｉ）の変異体にストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチド、並びに（ｖ）前記ポリヌクレオチド又は変異体の１５以上の連続した塩基を含む断片からなる群から選択される少なくとも１個、好ましくは少なくとも２個、さらに好ましくは３〜４５個、例えば４〜４５個、５〜４５個のプローブを含む。

本発明に関わる癌転移関連遺伝子マーカーは、癌患者の予後の状態（生存者の割合）に応じて、次のように２つの群に分けることができる。

すなわち、グループ１は、癌患者の術後予後がより悪い場合であり、この群に関与するマーカーは、配列番号１〜２７の遺伝子群であり、一方、グループ２は、癌患者の術後予後がより良い場合であり、この群に関与するマーカーは、配列番号２８〜４５の遺伝子群である。

本明細書中で使用する「予後が良い」とは、癌の浸潤性、転移性又は進行度が高いことを意味し、このように判定される癌患者の５年生存者の割合は約７０％以上であるのに対して、「予後が悪い」とは、癌の浸潤性、転移性又は進行度が低いことを意味し、癌患者の５年生存者の割合は約５０％以下である。

本発明においては、それぞれの群に属する遺伝子マーカーのうち少なくとも１個、好ましくは少なくとも２個、さらに好ましくは３個〜全部、例えば４個〜全部、５個〜全部のマーカーについて、対応するプローブを用いて検査する。
グループ１に属するマーカーを検査するためのプローブには、配列番号１〜２７に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、それに相補的なポリヌクレオチド、それらの変異体、それらにストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチド、或いは１５以上の連続した塩基を含むそれらの断片からなる群から選択されるプローブが含まれる。

一方、グループ２に属するマーカーを検査するためのプローブには、配列番号２８〜４５に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、それに相補的なポリヌクレオチド、それらの変異体、それらにストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチド、或いは１５以上の連続した塩基を含むそれらの断片からなる群から選択されるプローブが含まれる。

このように、本発明には、これらのグループ１及びグループ２に関わる各プローブ群を含む組成物も包含される。

本発明において、プローブとしての変異体は、上記定義のとおり、配列番号１〜４５によって示される塩基配列に１若しくは複数、好ましくは１若しくは数個、の置換、欠失、付加、挿入などの変異を有する変異体、該配列と通常８０％以上、８５％以上、好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上、９８％以上の同一性を有する配列からなる変異体などを含む。

さらに、本発明において、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドは、上記定義のようなハイブリダイゼーション条件下で、上記（ｉ）から（ｉｉｉ）のポリヌクレオチド又は変異体にハイブリダイズすることが可能なものであれば、特に制限されないものとする。患者の個体によっては、突然変異、多型性、選択的スプライシングなどの生物学的事象により配列番号１〜４５によって示される塩基配列が変化した遺伝子をもつこともありえるために、そのようなポリヌクレオチドは、該遺伝子の検出を可能にする。

さらにまた、本発明において、ポリヌクレオチドの断片は、１５塩基数〜全塩基数未満のサイズを有する。断片は、この範囲の任意の塩基数、例えば２０塩基以上、３０塩基以上、５０塩基以上、７０塩基以上、１００塩基以上、１５０塩基以上、２００塩基以上、２５０塩基以上などの塩基数である。

本発明で使用されるポリヌクレオチドプローブは、慣用の化学的ＤＮＡ合成技術や遺伝子組換え技術によって合成されうる。

ポリヌクレオチドが約１００塩基以下のＤＮＡ分子であれば、ホスホアミダイト法を利用するＤＮＡ自動合成装置（例えばＡｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ、米国）を用いて合成することができる。

或いは、上記ポリヌクレオチドは、ｃＤＮＡクローニングによって作製することができる。対象の癌組織から全ＲＮＡを取得し、オリゴｄＴセルロースカラム処理によってポリＡ（＋）ＲＮＡを得たのち、逆転写酵素−ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）法によってｃＤＮＡライブラリーを作製し、このライブラリーから、ＧｅｎＢａｎｋやＵｎｉＧｅｎｅなどのデータバンクに登録された配列（表１及び表２）に基づいて予め作製したプローブ（１５以上、好ましくは３０以上、より好ましくは、５０〜１００又はそれ以上の塩基長）とのハイブリダイゼーションによりｃＤＮＡクローンを得ることができる。取得したクローンは、例えば市販されるような発現ベクターに組み込んだのち大腸菌、枯草菌などの適当な宿主細胞に導入し、宿主細胞を増殖することによって、或いはデータバンクに登録された配列に基づいて予め作製したプライマー（通常１５〜３０塩基、好ましくは１７〜２５塩基長）を使用し、かつ前記ｃＤＮＡクローンを鋳型とするポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって、増幅することができる。ｃＤＮＡクローニング及びＰＣＲ法の具体的手順や試薬等については、市販のキット、装置、試薬を使用することができるし、また、例えばＳａｍｂｒｏｏｋ Ｊら， Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，１９８９年， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ（米国）；Ｆ．Ｍ． Ａｕｓｂｅｌら， Ｓｈｏｒｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ（３版）Ａ Ｃｏｍｐｅｎｄｉｕｍ ｏｆ Ｍｅｔｈｏｄ ｓ ｆｒｏｍ Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， １９９５年， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， Ｉｎｃ．（米国）などに教示されている。

２．２ 抗体プローブ
本発明においては、抗体をプローブとして用いてもよい。抗体としては、次のものが挙げられる。
（ｉ）配列番号１〜４５に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド又はその変異体によってコードされるポリペプチドからなる群から選択されるポリペプチド又はその断片に対する抗体又はその断片、
（ｉｉ）配列番号１〜２７に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド又はその変異体によってコードされるポリペプチドからなる群から選択されるポリペプチド又はその断片に対する抗体又はその断片、並びに、
（ｉｉｉ）配列番号２８〜４５に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド又はその変異体によってコードされるポリペプチドからなる群から選択されるポリペプチド又はその断片に対する抗体又はその断片。

したがって、本発明は、上記の（ｉ）、（ｉｉ）及び（ｉｉｉ）に記載の抗体又はその断片、好ましくは（ｉｉ）及び（ｉｉｉ）の各々から選択される少なくとも１個、好ましくは少なくとも２個、さらに好ましくは３個〜全部、例えば４個〜全部、５個〜全部の抗体又はその断片、を含む組成物も包含する。

本発明で使用される抗体は、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、抗ペプチド抗体などを含む。また、抗体の断片には、Ｆａｂ、（Ｆａｂ'） _２ 、Ｆｄ、Ｆｖなどが含まれる。これらの抗体断片は、例えばパパイン、ペプシンなどのプロテアーゼによる抗体の限定分解によって得ることができる。

各遺伝子に対応するポリペプチド又はその断片を、タンパク質合成又は遺伝子組換え技術を用いて合成し、その結果得られたポリペプチド又はその断片を抗原としてウサギ、マウス、ラット、ウマ、ウシ、ヤギ、ヒツジなどの動物を免疫し、それらの抗原に対する抗体を産生し、精製する。

ポリクローナル抗体は、前記動物を１０〜３００μｇ程度の抗原で皮下に免疫し、さらに約２週間後に追加免疫し、初回免疫から約３週間〜１か月後に採血し、抗血清から目的のポリクローナル抗体を含むＩｇＧ成分を硫安分画、イオン交換クロマトグラフィーを使用して分離することを含む方法によって作製することができる。特異性を高めるために、得られたＩｇＧを、目的タンパク質をセルロース又はアガロースなどの担体に結合して作製されたカラムに結合させたのち、高塩濃度のバッファーで溶出し、透析や限外ろ過などの方法で脱塩して、特異的ポリクローナル抗体を得ることができる。抗体価は、通常の免疫測定法、例えば酵素免疫測定法（ＥＩＡ、ＥＬＩＳＡ）、放射性免疫測定法（ＲＩＡ）、蛍光抗体法などによって測定することができる。

モノクローナル抗体は、例えば以下の一般的方法によって作製することができる。
標的ポリペプチド又はその断片を、ポリクローナル抗体の作製と同様にマウス又はラット（例えばＢａｌｂ／ｃマウス）の皮下に投与し、１〜４週間間隔で、約２〜４回追加免疫を行う。抗体価が頭打ちになったとき、抗原を静脈内または腹腔内に注射し、最終免疫とする。２〜５日後、抗体産生細胞（例えば脾臓細胞又はリンパ節細胞）を採取する。次いで、抗体産生細胞を骨髄腫細胞株（好ましくはヒポキサンチン・グアニン・ホスホリボシル・トランスフェラーゼ（ＨＧＰＲＴ）欠損細胞株）に融合させてハイブリドーマ細胞を生成し、ＨＡＴ（ヒポキサンチン、アミノプテリン、チミン）選択を行う。細胞融合は、血清を含まないＤＭＥＭ、ＲＰＭＩ−１６４０培地などの動物細胞培養用培地中で、抗体産生細胞と骨髄腫細胞株とを約１：１〜 ２０：１の割合で混合し、ポリエチレングリコールなどの細胞融合促進剤の存在下で実施する。目的の抗体かどうかの確認は、上記の免疫測定法によって行うことができる。さらに、ハイブリドーマの増殖のために、マウスの腹腔内にハイブリドーマを約１,０００万個投与し、ハイブリドーマを増殖させたのち、１〜２週間後に腹水を採取する。抗体の精製は、硫安分画、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィー、ゲルクロマトグラフィーなどの方法を適宜組み合わせて行うことができる。

抗ペプチド抗体は、タンパク質の表面上のリニアーなペプチドに対する抗体であり、免疫学的特異性を高めることができる。そのようなペプチドは、例えばＫｙｔｅ−Ｄｏｏｌｉｔｔｌｅらの親水性−疎水性領域の推定法、Ｅｍｉｎｉらによるタンパク質分子上の特定ペプチド部位の表面に位置する確率、ポリペプチド鎖の折れ曲がり程度、例えばＣｈｏｕ−Ｆａｓｍａｎらなどのαヘリックス、βシート、ターンを表示するタンパク質の二次構造予測、等を単独で又は組み合わせて使用して推定しうる。次いで、推定されたペプチドは、ペプチド合成機を用いて合成することができる。

ここで、標的ポリペプチド（上記表１及び表２に示される遺伝子によってコードされる）の合成は、ｃＤＮＡクローンを発現ベクターに組み込み、該ベクターによって形質転換又はトランスフェクションされた原核又は真核宿主細胞を培養することによって該細胞又は培養上清から得ることができる。発現ベクターは市販のものを使用することができる。宿主細胞は、細菌などの原核細胞（例えば大腸菌、枯草菌、シュウドモナス属細菌など）、酵母（例えばサッカロマイセス属、ピチア属など）、昆虫細胞（例えばＳｆ細胞）、哺乳動物細胞（例えばＣＨＯ、ＣＯＳ、ＢＨＫ、ＨＥＫ２９３など）などを含む。また、ベクターは、プラスミド、コスミド、ファージなどからなり、標的ポリペプチドをコードするＤＮＡ、プロモーター、必要ならエンハンサー、ポリアデニル化シグナル、リボソーム結合部位、複製開始点、ターミネーター、選択マーカーなどを含むことができる。ポリペプチドの精製を容易にするために、標識ペプチド、例えば６〜１０残基のヒスチジンタグ、ＦＬＡＧ、ＧＦＰポリペプチドなどをコードするＤＮＡ配列を含有させることもできる。遺伝子組換え技術については、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（上記）、Ａｕｓｂｅｌら（上記）に記載されており、それらに記載の技術を本発明のために使用することができる。

上記のようにして得られた標的ポリペプチドは、ゲルろ過、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、等電点電気泳動、電気泳動、限外ろ過、塩析、透析などを適宜組み合わせて精製することができる。

標的ポリペプチド又はその断片の配列は、上記表１及び表２に記載されるＧｅｎＢａｎｋ又はＵｎｉＧｅｎｅ登録番号に基づいてＮＣＢＩ ＨｏｍｅＰａｇｅにアクセスすることによって入手可能である。

本発明の実施形態により、前記組成物は、キット又はマイクロアレイの形態であってもよく、すなわち、前記プローブは、キット又はマイクロアレイの形態で含まれる。

キットの場合、２つのグループの各遺伝子マーカー（表１及び表２）の１又は２以上から全数のマーカーを検出することが可能なポリヌクレオチド又は抗体を、個別に又は２以上を組み合わせて適当な容器に包装することができる。

抗体は、上記の方法で作製されるようなポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、抗ペプチド抗体などであるが、それらに限定されないものとする。抗体の種類は、いずれのタイプ、クラス、サブクラスでもよく、例えばＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＥ、ＩｇＤ、ＩｇＡ、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ１、ＩｇＡ２などを含む。また、抗体の断片は、Ｆａｂ、（Ｆａｂ'）_２、Ｆｃ、Ｆｄ、Ｆｖなどを含む。

キットにはさらに、ハイブリダイゼーションを行うための試薬類、例えばバッファー、逆転写酵素、標識二次抗体などを含有させてもよい。

マイクロアレイの場合、アレイは、ＤＮＡマイクロアレイ（ＤＮＡチップともいう）、組織アレイ又はタンパク質マイクロアレイである。

これらのマイクロアレイにはそれぞれ、プローブとしての上記のポリヌクレオチド或いは上記の抗体又はその断片が結合される。すなわち、アレイの表面に、上記遺伝子マーカー又は転写若しくは翻訳産物を検出することができる、遺伝子マーカー又はその変異体とハイブリダイズすることが可能なポリヌクレオチド、或いはそれらの遺伝子によってコードされるポリペプチド、又はその変異体若しくは誘導体と特異的に結合反応することができる抗体又はその断片が、プローブとして結合される。

アレイの基板としては、ガラス又は樹脂（ポリマー）が通常使用され、その表面に例えばポリＬ−リジン、シラン又は高密度化アミノ基が導入される。また、基板上へのポリヌクレオチド又は抗体の結合は、スポット法又はインクジェット法によって行われる。

変異体は、上記遺伝子又はポリペプチドの完全又は部分配列と、ヌクレオチド又はアミノ酸レベルで通常８０％以上、８５％以上、好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上、９８％以上の同一性を有するものである。

ポリペプチドの誘導体は、例えば、グリコシル化、リン酸化、硫酸化、アルキル化、アシル化などの化学修飾誘導体を含む。

３．予後又は転移可能性を予測する方法
本発明の方法は、癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測する方法であって、該患者由来の生物学的検体中の、配列番号１〜４５に示される塩基配列又はその変異配列を含む癌転移関連遺伝子マーカーの少なくとも１つの発現レベル又はその転写若しくは翻訳産物レベルを、該マーカーに対応するプローブを用いて測定し、術後の予後がより良い又は転移可能性がより低い患者群と術後の予後がより悪い又は転移可能性がより高い患者群との間の相対的な該レベルの差を指標にして、術後の予後又は転移可能性を判定することを含む。

ここで、発現レベルの差は、生物学的検体中の上記遺伝子の発現について、転写又は翻訳産物レベルで、術後の予後がより良い又は転移可能性がより低い患者群からの検体と、術後の予後がより悪い又は転移可能性がより高い患者群からの検体との間で該遺伝子の発現を比較したときの該遺伝子の発現の差異を意味する。

発現レベルの差を示す上記遺伝子を同定することによって、癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測することができる。

本発明によれば、遺伝子の発現レベルの差は、マーカーとしての該遺伝子又はそれに対応するポリペプチドの存在又は量を測定することによって行うことができる。したがって、単に２つの群に分類される各マーカーの存在を測定するだけで、癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測することができる。

生物学的検体は、癌患者の組織又細胞を含み、手術によって切除された癌組織、生検によって得られた組織又は細胞などである。
以下に、これらの２つの異なる方法について具体的に説明する。

３．１ ポリヌクレオチドによる方法
本発明に関わる４５個の遺伝子マーカーを検出するために、それらの各マーカーとハイブリダイズする上記ポリヌクレオチドを使用する。検出すべき遺伝子の数は、グループ毎に１又は２以上であり、好ましくは２以上、より好ましくは３から全数、例えば４から全数、５以上から全数である。検出すべき遺伝子の数が多いほど、予測の確度が向上する。

ハイブリダイゼーションは、マイクロアレイ法、ブロット法、例えばノーザンもしくはサザンブロット、ノーザンもしくはサザンハイブリダイゼーション法、ｉｎ ｓｉｔｕｅハイブリダイゼーション法、定量ＲＴ−ＰＣＲ法などの方法で実施することができる。好ましいハイブリダイゼーション法は、マイクロアレイ、定量ＲＴ−ＰＣＲ又はブロット法である。また、好ましいマイクロアレイの例は、ＤＮＡマイクロアレイ及びタンパク質マイクロアレイである。

ＤＮＡマイクロアレイ法では、上記の２つのグループの各遺伝子群（１〜全数）とハイブリダイズする核酸プローブを基板に結合したＤＮＡマイクロアレイを作製し使用する。

ＤＮＡマイクロアレイは、核酸プローブを固相化できるものであればいずれの種類の基板も使用できる。固相には、例えばガラス、ポリマーなどが含まれ、さらに核酸を共有結合するための反応性基を含むスペーサーやクロスリンカーを導入することができる。このようなチップは市販されているため、それらを使用することが望ましい。

核酸プローブの固相化は、特に制限はないが、一般的な方法、例えばスポッター又はアレイヤーと呼ばれる高密度分注機を用いてＤＮＡをスポットする方法、ノズルから液滴を噴射するインクジェット方式などの方法を用いて実施することができる。

生物学的検体中のＤＮＡ又はＲＮＡ、それから誘導されたｃＤＮＡ、ｃＲＮＡなどの核酸を、Ｃｙ染料（Ｃｒ３又はＣｙ５）などの蛍光物質で標識した核酸を、ＤＮＡマイクロアレイ上のプローブとハイブリダイズさせる。レーザースキャンによる読み取り装置を用いて蛍光強度を読み取り、コンピュータでデータを解析する。

ブロット法では、本発明の核酸プローブを放射性同位元素（例えば、^３２Ｐ及び^３５Ｓ）や蛍光物質（ローダミン誘導体、Ｃｙ染料など）などで標識したのち、ナイロンなどのポリマーメンブレンに転写した生物学的試料中のＤＮＡ又はＲＮＡ、それから誘導されたｃＤＮＡ、ｃＲＮＡなどの核酸との間でハイブリダイゼーションを行う。シグナルを、放射線検出器又は蛍光検出器を用いて検出し、その強度を測定する。

定量ＲＴ―ＰＣＲ法では、生物学的検体中のＲＮＡから作製したｃＤＮＡを鋳型として標的の各遺伝子の領域が増幅できるように、プライマーをｃＤＮＡとアニーリングさせＰＣＲを行い、得られた二本鎖ＤＮＡを検出する。プライマーを予め放射性同位元素や蛍光物質で標識しておくか、或いは、ＰＣＲ産物をアガロースゲルで電気泳動し、エチジウムブロマイドなどで二本鎖ＤＮＡを染色するなどの方法で、標的遺伝子を検出、定量することができる。

ＰＣＲ条件は、例えば変性：９２〜９４℃で３０〜６０秒；アニーリング：５０〜５５℃で３０〜６０秒；伸長：６８〜７２℃で３０〜６０秒を１サイクルとして３０〜４０サイクルの反応を含む。逆転写酵素は、市販の酵素、例えばＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ（登録商標）ＩＩＩ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、米国）、ＡＭＶ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ （Ｐｒｏｍｅｇａ、米国）、Ｍ−ＭＬＶ（ＲＮａｓｅＨ⁻）（宝酒造、京都）などを使用することができる。

本発明において、ハイブリダイゼーションは、ＤＮＡ−ＤＮＡハイブリダイゼーション、ＤＮＡ−ＲＮＡハイブリダイゼーション、ＲＮＡ−ＲＮＡハイブリダイゼーションのいずれでもよい。

ハイブリダイゼーションは、通常、ストリンジェントな条件下で行われる。このような条件は、例えば、１Ｍ塩化ナトリウム／０．５％（Ｗ／Ｖ）サルコシル／３０％ホルムアミド中、６０℃、１７時間のハイブリダイゼーション、その後、６×ＳＳＣ／０．００５％（Ｗ／Ｖ）トライトンＸ−１０２溶液中、室温、１０分間で一回、さらに、０．１×ＳＳＣ／０．００５％（Ｗ／Ｖ）トライトンＸ−１０２溶液中で０〜４℃に保ちながら５分間で一回の洗浄を含む。或いは、別のハイブリダイゼーション条件は、例えば、約４５〜５０℃で２〜６×ＳＳＣ中でのハイブリダイゼーションと、それに続く、約５０〜６５℃での０．２〜２×ＳＳＣ／０．１〜１％ＳＤＳによる洗浄；或いは、６０〜６５℃で６×ＳＳＣ、Ｄｅｎｈａｒｄｔ溶液、０．２％ＳＤＳ中でのハイブリダイゼーションののち、６０〜６５℃での０．２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳによる洗浄を含む。ハイブリダイゼーションの条件及び方法については、例えば、Ａｕｓｕｂｅｌら， Ｃｕｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， １９８９, Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ａｎｄ Ｓｏｎｓ， ＵＳ）を参照することができる。

３．２ 抗体による方法
上記遺伝子の発現レベルの代替的測定法は、免疫学的方法である。
上記のように作製された抗体を、生物学的検体中の標的ポリペプチド又はその断片の検出のために使用することができる。

多数の抗体をマイクロアレイ基板上に結合したタンパク質マイクロアレイを作製することによって、或いは、多数の抗体をＰＶＤＦ膜などのフィルター上にドット状にスポットすることによって、一度に多数の標的ポリペプチドを検出又は定量することが可能になる。或いは、慣用の免疫学的測定法、例えば酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ、ＥＩＡ）、蛍光抗体法、放射性免疫測定法（ＲＩＡ）、発光免疫測定法、免疫比濁法、ラテックス凝集反応、ラテックス比濁法、赤血球凝集反応、粒子凝集反応またはウェスタンブロット法などによって、生物学的試料中の標的ポリペプチド又はその断片を検出又は定量することができる。

固相上で反応を行うときには、固相担体として、ポリスチレン、ポリカーボネート、ポリエチレンなどのポリマーの膜（フィルター）、プレート、チューブ、ストリップなど、ラテックス、磁性体などの粒子、などが含まれる。固相化は、物理的に或いは化学的に行うことができる。化学的結合のためには、例えばマレイル化試薬、臭化シアンなどの試薬で固相を処理し、タンパク質のアミノ基などと反応する官能基を固相に導入することができる。

標的の検出のために、抗体を標識してもよいし、或いは標識二次抗体を使用してもよい。標識としては、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼなどの酵素、フルオレセイン、ローダミン、それらの誘導体などの蛍光物質、ルシフェラーゼ系、ルミノール系などの発光物質、^３２Ｐ、^１２５Ｉ、^３５Ｓなどの放射性同位元素などが含まれる。標識化は、例えばグルタルアルデヒド法、マレイミド法、ピリジルジスルフィド法、クロラミンＴ法、ボルトンハンター法などを含む。

４．癌転移抑制剤のスクリーニング
本発明はさらに、培養癌細胞を用いて、配列番号１〜２７のいずれかの塩基配列を含む癌転移関連遺伝子又はその転写産物の阻害又は抑制について、或いは培養癌細胞の運動能及び／又は浸潤能の阻害又は抑制について、候補薬剤をスクリーニングすることを含む、癌転移抑制剤のスクリーニング方法を提供する。

具体的には、この方法は、培養癌細胞を準備し、該細胞を候補薬剤の存在下で培養し、前記癌転移関連遺伝子又はその転写産物の発現の阻害又は抑制について、或いは培養癌細胞の運動能及び／又は浸潤能の阻害又は抑制について、候補薬剤をスクリーニングすることを含む。

ヒト培養癌細胞、好ましくはヒト培養転移性癌細胞、の細胞株は、癌の種類によって特に制限されないものとし、例えば公知の転移性ヒト癌細胞株である、ＭｅＷｏ；悪性黒色腫細胞株、ＭＤＡ−ＭＢ−４３５；乳癌細胞株、ＬＮＣａＰ又はＰＣ−３；高転移性ヒト肺癌細胞株、ＬＮＭ３５；前立腺癌細胞株などが含まれ、本発明において使用できる。

本発明において、前記ヒト癌転移関連遺伝子又はその転写産物の発現の阻害又は抑制の程度は、候補薬剤を添加しない対照との比較実験によって判定できる。発現レベルは、癌細胞株から周知の方法（例えばフェノール／クロロホルム抽出及びエタノール沈殿、オリゴｄＴセルロースカラムクロマトグラフィーなど）で得た全ＲＮＡ又はｍＲＮＡ又はポリＡ（＋）ＲＮＡについて、或いは逆転写酵素−ＰＣＲ（ＲＴ−ＰＣＲ）法によってＲＮＡから合成されたｃＤＮＡについて、蛍光又は放射性標識したプローブを用いるハイブリダイゼーション法（例えばノーザンハイブリダイゼーション、サザンハイブリダイゼーション、ＤＮＡマイクロアレイ、組織マイクロアレイなど）によって決定することができる。或いは、発現レベルは、上記ヒト癌転移関連遺伝子によってコードされるポリペプチドの細胞内レベルを、該ポリペプチドに対する抗体又はその断片を用いる免疫測定法、ウエスタンハイブリダイゼーションなどによって測定することによって間接的に決定することができる。

前記プローブは、配列番号１〜４５の塩基配列又はそれと相補的な配列、或いはその連続する例えば約２０以上、約３０以上、５０以上、７０以上、１００以上、１５０以上、２００以上、２５０以上のヌクレオチドからなる配列、を有するＤＮＡである。プローブは、蛍光又は放射性標識を結合した標識プローブとするのが好ましい。蛍光性標識には、例えばフルオレサミン、ローダミン、それらの誘導体、Ｃｙ３、Ｃｙ５などが含まれる、放射性標識には、例えば放射性リン又はイオウ原子が含まれる。

免疫測定法は、抗原−抗体反応を利用する分析法であり、例えば酵素結合抗体法（例えばＥＬＩＳＡ）、蛍光抗体法、固相法、均一法、サンドイッチ法などを適宜組み合わせた方法によって行うことができる。これらの方法は、当業界で周知であり、その慣用技術を本発明で使用できる。

ヒト培養（転移性）癌細胞において、前記ヒト癌転移関連遺伝子又は対応するｍＲＮＡの発現が、候補薬剤の存在によって、候補薬剤無添加の対照と比べて、有意に阻害又は抑制される場合、該候補薬剤は癌転移抑制剤として同定しうる。

候補薬剤のスクリーニングはまた、ヒト培養癌細胞、好ましくは転移性癌細胞、の運動能及び／又は浸潤能の阻害又は抑制を調べることによっても見出すことができる。

癌細胞のインビトロにおける運動能アッセイあるいは浸潤能アッセイは、例えばトランスウェルチャンバー培養システムを用いて行うことができる。運動能アッセイにおいては、例えば２４ウェル細胞培養プレートに径８ミクロンの小孔を有するテレフタル酸ポリエチレン膜を有するインサート（ベクトンディキンソン社製）を挿入し、インサート内部の無血清細胞培地に転移性癌細胞株を接種し、２４時間培養した後、小孔を通過し膜下層に移動した細胞数をカウントすることによって行うことができる（Ｋｏｚａｋｉ Ｋら， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ６０：２５３５−４０，２０００）。浸潤能アッセイでは、同様のシステムを使用するが、細胞を接種する以前に膜上部をマトリゲルによって覆っておくことにより、計測することができる（Ｋｏｚａｋｉ Ｋら，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ６０：２５３５−４０，２０００）。

上記のアッセイにおいて、無血清細胞培地に候補薬剤を添加しておくことにより、転移性癌細胞の運動能及び／又は浸潤能を阻害又は抑制する候補物質が、癌転移抑制剤として同定しうる。

候補薬剤は、小分子、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、ヌクレオシド、オリゴヌクレオチド、ポリヌクレオチド、核酸（ＤＮＡ又はＲＮＡ）などを含むが、これらに限定されない。

候補薬剤としてのポリペプチド又はタンパク質には、例えば配列番号１〜２７に示される塩基配列又はその変異配列によってコードされるポリペプチド又はタンパク質に対する抗体又はその断片が含まれる。また、核酸には、配列番号１〜２７に示される塩基配列又はその変異配列に対応するｍＲＮＡを切断することが可能なリボザイム、ｓｉＲＮＡ（ｓｍａｌｌ ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ ＲＮＡ）などが含まれる。

ｓｉＲＮＡの配列を選択するために、例えば標的ｍＲＮＡの標的サイトの選択のための公知の知識、例えば、（ａ）ＧＣ含量が約３０〜約７０％、好ましくは約５０％である、（ｂ）すべてのヌクレオチドが均等であり、またＧが連続していない、（ｃ）アンチセンス鎖の５'末端のヌクレオチドがＡ、Ｕである、などの基準を使用することができる（Ｄ．Ｍ． Ｄｙｋｘｈｏｏｒｎら，Ｎａｔｕｒｅ Ｒｅｖ． Ｍｏｌ． Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ． （２００３），７７：７１７４−７１８１；Ａ． Ｋｈｖｏｒｏｖａら，Ｃｅｌｌ （２００３），１１５：２０９−２１６）。

また、候補薬剤としてのリボザイムは、触媒活性をもつＲＮＡであり、本発明に関わる標的ヒト癌転移関連遺伝子に対応するｍＲＮＡを切断する活性を有している。この切断によって該遺伝子の発現が阻害又は抑制される。リボザイムの切断可能な標的配列は、一般にはＮＵＸ（Ｎ＝Ａ，Ｇ，Ｃ，Ｕ；Ｘ＝Ａ，Ｃ，Ｕ）、例えばＧＵＣトリプレットを含む配列であることが知られている。本発明における標的ヒト癌転移関連遺伝子の配列番号１〜２７の塩基配列によってコードされる対応のｍＲＮＡ配列には、上記の候補トリプレットが存在しているため、候補トリプレットを含む切断すべきｍＲＮＡ配列部分に相補的な配列を含むリボザイムは、標的ｍＲＮＡの切断のために使用することができる。このようなリボザイムには、ハンマーヘッド型リボザイムが含まれる。ハンマーヘッド型リボザイムは、センサー部位を構成するヌクレオチド配列、センサー部位にＲＮＡが結合したときのみ安定にＭｇ^２＋イオンを捕捉する空洞を形成しうる領域を含むヌクレオチド配列、及び標的ＲＮＡの切断部位周辺の配列に相補的である領域を含むヌクレオチド配列を含むことができる。

本発明を以下の実施例によってさらに具体的に説明するが、本発明はそれらの実施例によって制限されないものとする。

（高転移ヒト肺癌細胞株（ＬＮＭ３５）の樹立）
ＮＣＩ−Ｈ４６０細胞（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎから入手）（親株）１×１０^７細胞／１００μｌ（ＲＰＭＩ １６４０細胞培地）を、ＳＣＩＤマウス（静岡実験動物研究所より購入）に皮下移植した。移植して４５日後に、癌細胞の肺転移を確認し、さらに肺転移巣からの癌細胞を別のマウスの皮下に移植し、肺転移巣からの癌細胞を、培養培地（１０％ウシ血清添加ＲＰＭＩ １６４０）中で初代培養を行った。この細胞を、別のマウスの皮下に移植し、同様に、肺転移巣からの癌細胞を培養した。さらに、２度のｉｎ ｖｉｖｏ ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ後の細胞をマウスの皮下に移植し、腋窩リンパ節からの癌細胞を培養培地（１０％ウシ血清添加ＲＰＭＩ １６４０）中で初代培養を行った。引き続いて９６ウェルプレートを用いた限界希釈法により、クローニングを行い、高転移株のＮＣＩ−Ｈ４６０−ＬＮＭ３５を得た（図１）。

これとは別に、親株であるＮＣＩ−Ｈ４６０細胞から限界希釈法により低転移株（Ｎ１５）を得ることができた。さらまた、ＬＮＭ３５株を、上記と同じ培養培地中、脱メチル化剤（５−アザ−２'−デオキシシチジン）（１μＭで２４時間）で処理することにより、低転移株（Ｌ２Ｄ２及びＬ２Ｄ３Ａ）を得ることができた。

上記の手順で得たＬＮＭ３５株及び親株について、細胞の運動能アッセイ及び浸潤能アッセイによる転移能、並びにマウスへの皮下移植による腋窩のリンパ節及び肺への転移能の強さを調べた。

運動能アッセイは、８μｍの微小孔をもつフィルターのトランスウェルチャンバーを用いて、２４時間の培養後に、フィルター裏側へ移動した細胞数をカウントする手順で行った。

浸潤能アッセイは、８μｍの微小孔をもつフィルターにマトリゲルをコートしたトランスウェルチャンバーを用いて、２４時間の培養後に、フィルター裏側へ移動した細胞数をカウントする手順で行った。
リンパ節及び肺への転移はそれぞれ、重量及び腫瘤の数によって判定した。

その結果、図２に示すように、ＬＮＭ３５株は、運動能、浸潤能がともに最も高値を示し、またリンパ節及び肺への転移も高値を示したことから、高転移癌細胞株であることを確認した。一方、親株はいずれも、非常に低い運動能、浸潤能、リンパ節転移、肺転移を示したことから、低転移癌細胞株であることを確認した。

（新規の癌転移関連遺伝子の検出）
ＧｅｎｅＦｉｌｔｅｒ Ｈｕｍａｎ Ｍｉｃｒｏａｒｒａｙｓ Ｒｅｌｅａｓｅ ＩとＲｅｌｅａｓｅ ＩＩ（登録商標）マイクロアレイ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を用いて、高転移性株ＬＮＭ３５株と親株Ｎ１５株との間で遺伝子発現差を示す特定の遺伝子の検出について検討した。

具体的に、このマイクロアレイでは、５μｇの全ＲＮＡを鋳型とし、オリゴ-ｄＴプライマーとＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＩＩ逆転写酵素を用いて、１００μＣｉの[^３３Ｐ]ｄＣＴＰ存在下で逆転写し、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製のｃＤＮＡマイクロアレイ（ＧｅｎｅＦｉｌｔｅｒ Ｈｕｍａｎ Ｍｉｃｒｏａｒｒａｙｓ Ｒｅｌｅａｓｅ ＩとＲｅｌｅａｓｅ ＩＩ）とハイブリダイズさせた。２Ｍ ｏｆ ｕｒｅａ， ０．１ ％ ｏｆ ＳＤＳ， ５０ｍＭ ｏｆ Ｎａ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒ （ｐＨ ７．０）， １５０ｍＭ ｏｆ ＮａＣｌ， １ｍＭ ｏｆ ＭｇＣｌ_２と０．２％ ＡｌｋＰｈｏｓ ＤＩＲＥＣＴ ｂｌｏｃｋｉｎｇ ｒｅａｇｅｎｔ （Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）による洗浄を行った後、マイクロアレイをイメージングプレート（富士写真フィルム社製）と２時間接触させ、ＢＡＳ５０００（富士写真フィルム社製）を用いてイメージングプレートをスキャンする事で、８，６４４個の遺伝子に相当する全１１，１６８スポットの発現プロファイルを２回取得した。

（バイオインフォマティクス解析）
ＬＮＭ３５とＮ１５それぞれ２回、計４回の発現プロファイルに於いて、発現量（スキャンしたスポットの値）が０．１以下のスポットについては、検出限界のため、解析対象から除外した。

非線形補正手法であるｌｏｗｅｓｓ手法を用いて、４回の発現プロファイルをｎｏｒｍａｌｉｚｅした後、ＬＮＭ３５とＮ１５のそれぞれについて、平均値を求めた。

ＬＮＭ３５とＮ１５の発現プロファイルを比較し、２ＳＤ（標準偏差の２倍）以上発現差があるスポットを抽出した。

さらに、抽出したスポットを対象に、ＬＮＭ３５で発現が亢進しているスポットでは、ＬＮＭ３５の２回の発現プロファイルの発現値が共に１．０より大きい、またＮ１５で発現が亢進しているスポットでは、Ｎ１５の２回の発現プロファイルの発現値が共に１．０より大きい、という条件に合致するスポットを検索したところ、４５個の遺伝子に相当するスポットが抽出された。

（患者症例）
５０の肺癌患者症例を、愛知県がんセンターの胸部外科（名古屋）で治癒的切除術を行い成功した患者のファイルから得た。すべての腫瘍標本をＯＣＴ化合物に包埋し、正規の検討部門からの必要な承認と患者からのインフォームドコンセントの書面を得たあとで−８０℃に保存した。

（発現プロファイルの取得）
腫瘍標本の凍結組織から、約７μｍ厚に約５０切片を削りだした。１０切片毎にギムザ染色し、病理医の指導のもと、腫瘍組織が大半を占める領域からＲＮｅａｓｙキット（Ｑｉａｇｅｎ社、米国）を用いて全ＲＮＡを抽出した。オリゴ-ｄＴプライマーとＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＩＩ逆転写酵素を用いて、１００μＣｉの[^３３Ｐ]ｄＣＴＰ存在下で約５μｇの全ＲＮＡを逆転写した。Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製のｃＤＮＡマイクロアレイ（ＧｅｎｅＦｉｌｔｅｒ Ｈｕｍａｎ Ｍｉｃｒｏａｒｒａｙｓ Ｒｅｌｅａｓｅ ＩとＲｅｌｅａｓｅ ＩＩ）とハイブリダイズさせた後、マイクロアレイをイメージングプレート（富士フィルム社製）と２時間接触させ、ＢＡＳ５０００（富士フィルム社製）を用いてイメージングプレートをスキャンすることで、８，６４４個の遺伝子に相当する全１１，１６８スポットの発現プロファイルを２回取得した。

（バイオインフォマティクス解析）
ｒａｎｋ-ｉｎｖａｒｉａｎｔ手法をもちいて取得した発現プロファイルを補正した後、２回の平均値から発現値を求めた。

（４５個の転移関連遺伝子の発現パターンと再発・死亡の関係）
ＬＮＭ３５とＮ１５の比較から抽出した４５遺伝子の類似性をもとに、愛知県がんセンターで肺癌の手術を受けた５０症例の肺癌患者のデータをクラスター解析した（図３Ａ）。

図中に赤色もしくは緑色で示されたドットは、個々の症例における各遺伝子の発現状態を示している。赤色はその遺伝子の発現が他の症例と比較して相対的に高いことを示しており、緑色はその遺伝子の発現が相対的に低いことを示している。また、図中の樹形図は類似性を示しており、類似度が高ければ樹形図の結びつきを示す枝は短く、類似度が低ければ樹形図の結びつきを示す枝は長くなる。類似度が高い症例から順に結び付け、最終的には１つの樹形図としてまとめられている。

５０症例の肺癌検体について、クラスタリング解析を行ったところ、左右２つの大群に分類された。左側の一群は発現が高い（赤いドットの）遺伝子の多くが、ＬＮＭ３５で発現が亢進している遺伝子であった。一方、右側の一群では、発現が高い遺伝子の多くが、ＬＮＭ３５で発現が抑制されている遺伝子であった。ここで、左側の一群をＦａｔａｌ群、右側の一群をＦａｖｏｒａｂｌｅ群として、この２群の予後についてカプランマイヤー生存率解析を行ったところ、有意差をもって（Ｐ＝０．０２３４）予後の差が検出された（図３Ｂ）。この結果、ＬＮＭ３５で発現が亢進している遺伝子群の発現が相対的に高い群（Ｆａｔａｌ群）の予後は悪く、ＬＮＭ３５で発現が抑制されている遺伝子群の発現が相対的に高い群（Ｆａｖｏｒａｂｌｅ群）の予後は良い、ということがヒト肺癌症例のデータを用いて、確認することができた。

Ｈａｒｖａｒｄ大で取得された６２症例の肺癌患者のデータを用いて、クラスター解析した結果を図４Ａに示した。

他施設で得られたデータを解析し、図３と同様の結果が得られるか検討した。Ｈａｒｖａｒｄ大のデータは我々のデータ取得手法とは異なる為、４５個の遺伝子中、３８個の遺伝子に関する発現情報のみ得る事が出来た。この３８個の遺伝子の発現情報を用いて、図３と同様の解析を行った。

６２症例の肺癌検体について、クラスタリング解析を行った所、左右２つの大群に分類された。右側の一群は発現が高い（赤いドットの）遺伝子の多くが、ＬＮＭ３５で発現が亢進している遺伝子であった。一方、左側の一群では、発現が高い遺伝子の多くが、ＬＮＭ３５で発現が抑制されている遺伝子であった。ここで、右側の一群をＦａｔａｌ群、左側の一群をＦａｖｏｒａｂｌｅ群として、この２群の予後についてカプランマイヤー生存率解析を行ったところ、有意差をもって（Ｐ＝０．０３８５）予後の差が検出された（図４Ｂ）。この結果、ＬＮＭ３５で発現が亢進している遺伝子群の発現が相対的に高い群（Ｆａｔａｌ群）の予後は悪く、ＬＮＭ３５で発現が抑制されている遺伝子群の発現が相対的に高い群（Ｆａｖｏｒａｂｌｅ群）の予後は良い、ということがハーバード大で取得されたヒト肺癌症例のデータを用いても、確認することができた。

オランダ国立癌研究所で取得された７９症例の乳癌患者のデータを用いて、クラスター解析した結果を図５Ａに示した。

他施設で得られたデータを解析し、肺癌以外の固形癌で、図３と同様の結果が得られるか検討した。オランダ国立癌研究所のデータは我々のデータ取得手法とは異なる為、４５個の遺伝子中、３７個の遺伝子に関する発現情報のみ得ることが出来た。この３７個の遺伝子の発現情報を用いて、図３と同様の解析を行った。

７９症例の乳癌検体について、クラスタリング解析を行った所、左右２つの大群に分類された。左側の一群は発現が高い（赤いドットの）遺伝子の多くが、ＬＮＭ３５で発現が亢進している遺伝子であった。一方、右側の一群では、発現が高い遺伝子の多くが、ＬＮＭ３５で発現が抑制されている遺伝子であった。ここで、左側の一群をＦａｔａｌ群、右側の一群をＦａｖｏｒａｂｌｅ群として、この２群の予後についてカプランマイヤー生存率解析を行ったところ、有意差をもって（Ｐ＝０．００３２）予後の差が検出された（図５Ｂ）。この結果、ＬＮＭ３５で発現が亢進している遺伝子群の発現が相対的に高い群（Ｆａｔａｌ群）の予後は悪く、ＬＮＭ３５で発現が抑制されている遺伝子群の発現が相対的に高い群（Ｆａｖｏｒａｂｌｅ群）の予後は良い、ということがオランダ国立癌研究所で取得されたヒト乳癌症例のデータを用いても、確認することができた。

（Ｃｏｘ比例ハザードモデルによる多変量解析）
ＬＮＭ３５とＮ１５の比較から抽出した４５遺伝子による予後指標の検討を行った（図６）。

４５遺伝子による術後予後の指標が、術後の予後因子として有効であるかどうかについて、ＣＯＸの比例ハザードモデルによる、年齢（６３歳以上/６３歳未満）、性別（男性/女性）、喫煙歴（喫煙歴なし/あり）、組織型（扁平上皮癌/非扁平上皮癌）、病期(ｐＳＴＡＧＥ)、転移シグネチャー（Ｆａｖｏｒａｂｌｅ/Ｆａｔａｌ）の６つの項目を用いた多変量解析により検討を行った。その結果、病期と４５遺伝子による転移シグネチャーの２項目のみが、術後予後因子として有効であるということが統計学的有意差をもって示された（病期：Ｐ=０.０１４、４５遺伝子による転移シグネチャー：Ｐ=０.０３９）。なお、図中、Ｈａｚａｒｄ ｒａｔｉｏはハザード比、９５％ＣＩは９５％信頼区間、Ｐ ｖａｌｕｅは危険率をそれぞれ示す。

（術後予後が良い又は悪い癌の識別例）
術後予後が良い又は悪い癌を分類するために、シグナル−ノイズ関数（ｓｉｇｎａｌ−ｔｏ−ｎｏｉｓｅ ｍｅｔｒｉｃｓ、Ｇｏｌｕｂら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｖｏｌ．２８６，ｐｐ５３１ ｔｏ５３７，１９９９）を用いた。癌症例群を、術後予後が良い癌の場合ｃｌａｓｓ１、術後予後が悪い癌の場合ｃｌａｓｓ２とそれぞれ規定した場合、シグナル−ノイズ統計値である重みＳは次式によって計算される。
Ｓ＝（μ_{ｃｌａｓｓ１}−μ_{ｃｌａｓｓ２}／σ_{ｃｌａｓｓ１}＋σ_{ｃｌａｓｓ２}）

ここで、各遺伝子について、μ_{ｃｌａｓｓ１}はｃｌａｓｓ１の全発現強度データの平均値を示し、μ_{ｃｌａｓｓ２}はｃｌａｓｓ２の全発現強度データの平均値を示し、σ_{ｃｌａｓｓ１}はｃｌａｓｓ１の全発現強度データの標準偏差を示し、σ_{ｃｌａｓｓ２}はｃｌａｓｓ２の全発現強度データの標準偏差を示す。

次に、遺伝子ｘに関する重み付き投票を、下記のＷｅｉｇｈｔｅｄ−Ｖｏｔｉｎｇ の計算式を用いて計算する。
Ｖ_ｘ＝Ｓ（Ｇ_ｘ−ｂ_ｘ）

ここで、Ｖ_Ｘは、遺伝子ｘに関する重み付き投票を示し、Ｓは上記式によって算出される重みを示し、Ｇ_Ｘは、遺伝子ｘの発現強度（又は発現レベル）を示し、ｂ_Ｘは、
ｂ_Ｘ＝（μ１＋μ２）／２
（ここで、μ１及びμ２は、それぞれｃｌａｓｓ１、ｃｌａｓｓ２の各平均値の平均を示す。）によって示され、２つの群の中心（すなわち、重心）を示す。

重心からのずれに応じて重みを加算していく手法により、各群のＶ_Ｘの総和が０より大きいとき、癌はｃｌａｓｓ１に分類され、Ｖ_Ｘの総和が０より小さいとき、癌はｃｌａｓｓ２に分類される、とすることができる。

例えば、ｃｌａｓｓ１に属するｓａｍｐｌｅ１，２，３，４及び５と、ｃｌａｓｓ２に属するｓａｍｐｌｅ６，７，８，９及び１０について、遺伝子（Ｇｅｎｅ）Ａ，Ｂ，Ｃ（以上、術後予後が良いと特徴付けられる遺伝子）、遺伝子（Ｇｅｎｅ）Ｘ，Ｙ，Ｚ（以上、術後予後が悪いと特徴付けられる遺伝子）の発現強度（又は発現レベル）を測定し、各群の５つのサンプルの各遺伝子の発現強度の平均値（μ）と標準偏差（σ）を算出し、さらに、上記の式から、重み（Ｓ）と重心（ｂ_Ｘ）を計算する。

型分類すべきｓａｍｐｌｅ Ａとｓａｍｐｌｅ Ｂについて、各遺伝子の発現強度（又は発現レベル）を測定し、上記式から重み（Ｓ）、Ｇ_ｘ−ｂ_ｘを計算して各Ｖ_Ｘを求め、さらに６つの遺伝子のＶ_Ｘの総和を求める。

その結果、ｓａｍｐｌｅＡは、Ｖ_Ｘの総和が０より大きいため、ｃｌａｓｓ１と識別される。また、ｓａｍｐｌｅＢは、Ｖ_Ｘの総和が０より小さいため、ｃｌａｓｓ２と識別される。

本発明により、癌患者における癌転移の可能性と予後の予測ができるため、癌の治療計画と予後の管理に多大な貢献をもたらすことができる。

ヒト高転移肺癌細胞株ＬＮＭ３５の樹立手順を示す。 ＬＮＭ３５株とその親株との間の、培養細胞での運動能及び浸潤能、並びに、マウス移植後のリンパ節転移及び肺転移の割合の比較を示す。 愛知がんセンターの肺癌５０症例データに適用したとき、肺癌患者が、４５個の転移関連遺伝子の発現パターンと術後の生存者の割合との相関関係から、２つのグループに大別されることを示す。図３Ａは階層的クラスタリング解析の結果を示す。図３Ｂはカプランマイヤー生存率解析の結果を示す（横軸：月数）。 ハーバード大学の肺癌６２症例データ（Ｂｈａｔｔａｃｈａｒｊｅｅ Ａら，Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９８：１３７９０−９５，２００１）に適用したとき、肺癌患者が、４５個の転移関連遺伝子の発現パターンと術後の生存者の割合との相関関係について、２つのグループに大別されることを示す。図４Ａは階層的クラスタリング解析の結果を示す。図４Ｂはカプランマイヤー生存率解析の結果を示す（横軸：月数）。 オランダ国立癌研究所の乳癌７９症例データ（ｖａｎ'ｔＶｅｅｒ ＬＪら，Ｎａｔｕｒｅ ４１５：５３０−６，２００２）に適用したとき、乳癌患者が、４５個の転移関連遺伝子の発現パターンと術後の生存者の割合との相関関係について、２つのグループに大別されることを示す。図５Ａは階層的クラスタリング解析の結果を示す。図５Ｂはカプランマイヤー生存率解析の結果を示す（横軸：月数）。 術後５年生存の危険率に関する」Ｃｏｘ比例ハザードモデルによる多変量解析により決定された病期と独立した再発・死亡の予測因子を示す。

Claims (6)

1. 肺癌患者又は乳癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測する方法であって、該患者由来の生物学的検体中の、配列番号１〜２７、２９〜３４、３６、３７、３９〜４３に示される塩基配列を含む肺癌と乳癌の両方に共通する４０種の癌転移関連遺伝子マーカーの発現レベルを、該４０種のマーカーのそれぞれに対応するプローブを用いて測定し、術後の予後がより良い又は転移可能性がより低い患者群Ａと術後の予後がより悪い又は転移可能性がより高い患者群Ｂとの間の各マーカーについての相対的な該発現レベルの差を指標にして、術後の予後又は転移可能性を予測することを含み、ただし、
   （１）前記癌転移関連遺伝子マーカーが、該遺伝子の発現パターンに基づいてクラスタリング解析により決定された配列番号２９〜３４、３６、３７、及び３９〜４３に示される塩基配列又はその塩基配列と９５％以上の同一性を有する塩基配列からなる第１群の１３種のマーカーであり、かつ、前記生物学的検体中で該第１群のマーカーの発現レベルが、各マーカーについて相対的に高いとき、前記患者は、術後の予後がより良い又は転移可能性がより低い患者として識別される、及び、
   （２）前記癌転移関連遺伝子マーカーが、該遺伝子の発現パターンに基づいてクラスタリング解析により決定された配列番号１〜２７に示される塩基配列又はその塩基配列と９５％以上の同一性を有する塩基配列からなる第２群の２７種のマーカーであり、かつ、前記生物学的検体中で該第２群のマーカーの発現レベルが、各マーカーについて相対的に高いとき、前記患者は、術後の予後がより悪い又は転移可能性がより高い患者として識別される、
   ことを特徴とし、並びに、
   （１'）前記第１群の１３種のマーカーのそれぞれに対応するプローブが、（ａ１）配列番号２９〜３４、３６、３７、及び３９〜４３に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、（ｂ１）前記（ａ１）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド、（ｃ１）前記（ａ１）又は（ｂ１）のポリヌクレオチドの塩基配列において１若しくは数個の塩基の欠失、置換又は付加を有する塩基配列からなるポリヌクレオチド、（ｄ１）前記（ａ１）又は（ｂ１）のポリヌクレオチドの塩基配列と９５％以上の同一性を有する塩基配列からなるポリヌクレオチド、並びに（ｅ１）２０塩基以上から全塩基数未満の連続した塩基からなる、前記（ａ１）又は（ｂ１）のポリヌクレオチドの断片、からなる群から選択される、及び、
   （２'）前記第２群の２７種のマーカーのそれぞれに対応するプローブが、（ａ２）配列番号１〜２７に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、（ｂ２）前記（ａ２）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド、（ｃ２）前記（ａ２）又は（ｂ２）のポリヌクレオチドの塩基配列において１若しくは数個の塩基の欠失、置換又は付加を有する塩基配列からなるポリヌクレオチド、（ｄ２）前記（ａ２）又は（ｂ２）のポリヌクレオチドの塩基配列と９５％以上の同一性を有する塩基配列からなるポリヌクレオチド、並びに（ｅ２）２０塩基以上から全塩基数未満の連続した塩基からなる、前記（ａ２）又は（ｂ２）のポリヌクレオチドの断片、からなる群から選択される、
   ことを特徴とする、上記方法。
2. 以下の（１'）及び（２'）のプローブ：
   （１'）請求項１（１）に定義される第１群の１３種のマーカーのそれぞれに対応するプローブであって、（ａ１）配列番号２９〜３４、３６、３７、及び３９〜４３に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、（ｂ１）前記（ａ１）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド、（ｃ１）前記（ａ１）又は（ｂ１）のポリヌクレオチドの塩基配列において１若しくは数個の塩基の欠失、置換又は付加を有する塩基配列からなるポリヌクレオチド、（ｄ１）前記（ａ１）又は（ｂ１）のポリヌクレオチドの塩基配列と９５％以上の同一性を有する塩基配列からなるポリヌクレオチド、並びに（ｅ１）２０塩基以上から全塩基数未満の連続した塩基からなる、前記（ａ１）又は（ｂ１）のポリヌクレオチドの断片、からなる群から選択されるプローブ、並びに、
   （２'）請求項１（２）に定義される第２群の２７種のマーカーのそれぞれに対応するプローブであって、（ａ２）配列番号１〜２７に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、（ｂ２）前記（ａ２）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド、（ｃ２）前記（ａ２）又は（ｂ２）のポリヌクレオチドの塩基配列において１若しくは数個の塩基の欠失、置換又は付加を有する塩基配列からなるポリヌクレオチド、（ｄ２）前記（ａ２）又は（ｂ２）のポリヌクレオチドの塩基配列と９５％以上の同一性を有する塩基配列からなるポリヌクレオチド、並びに（ｅ２）２０塩基以上から全塩基数未満の連続した塩基からなる、前記（ａ２）又は（ｂ２）のポリヌクレオチドの断片、からなる群から選択されるプローブ、
   を有効成分として含む、請求項１に記載の方法で使用するための、かつ、肺癌患者又は乳癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測するための組成物。
3. 請求項１（１）に定義される第１群の１３種のマーカーのそれぞれに対応するプローブであって、（ａ１）配列番号２９〜３４、３６、３７、及び３９〜４３に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、（ｂ１）前記（ａ１）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド、（ｃ１）前記（ａ１）又は（ｂ１）のポリヌクレオチドの塩基配列において１若しくは数個の塩基の欠失、置換又は付加を有する塩基配列からなるポリヌクレオチド、（ｄ１）前記（ａ１）又は（ｂ１）のポリヌクレオチドの塩基配列と９５％以上の同一性を有する塩基配列からなるポリヌクレオチド、並びに（ｅ１）２０塩基以上から全塩基数未満の連続した塩基からなる、前記（ａ１）又は（ｂ１）のポリヌクレオチドの断片、からなる群から選択されるプローブを有効成分として含む、請求項１に記載の方法で使用するための、かつ、肺癌患者又は乳癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測するための組成物。
4. 請求項１（２）に定義される第２群の２７種のマーカーのそれぞれに対応するプローブであって、（ａ２）配列番号１〜２７に示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、（ｂ２）前記（ａ２）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド、（ｃ２）前記（ａ２）又は（ｂ２）のポリヌクレオチドの塩基配列において１若しくは数個の塩基の欠失、置換又は付加を有する塩基配列からなるポリヌクレオチド、（ｄ２）前記（ａ２）又は（ｂ２）のポリヌクレオチドの塩基配列と９５％以上の同一性を有する塩基配列からなるポリヌクレオチド、並びに（ｅ２）２０塩基以上から全塩基数未満の連続した塩基からなる、前記（ａ２）又は（ｂ２）のポリヌクレオチドの断片、からなる群から選択されるプローブを有効成分として含む、請求項１に記載の方法で使用するための、かつ、肺癌患者又は乳癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測するための組成物。
5. 請求項２〜４のいずれか１項に定義されるプローブを有効成分として含む、請求項１に記載の方法で使用するための、かつ、肺癌患者又は乳癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測するためのキット。
6. 請求項２〜４のいずれか１項に定義されるプローブを有効成分として含む、請求項１に記載の方法で使用するための、かつ、肺癌患者又は乳癌患者の術後の予後又は転移可能性をインビトロで予測するためのマイクロアレイ。

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