JP5717030B2 - 有核赤血球の脱核方法及び脱核誘導剤 - Google Patents
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Description
なお、本出願は、参照によりここに援用されるところの、日本国特許出願の特願2009-040781からの優先権を請求する。
従って、大量に赤血球を製造するには、赤血球前駆細胞の大量増殖が必要で、そのためには、「細胞株(赤血球前駆細胞株)」の樹立が必要であった。
さらに、長田らのグループにより、「DNase IIノックアウトマウスの胎児では成熟赤血球が出来ず、重篤な貧血を引き起こし、胎児肝臓のマクロファージDNase IIは赤血球分化のサポートとして重要であること」が報告されている(参照:非特許文献2)。
該大量培養が可能になったことにより、赤血球前駆細胞を直接体内に輸血する方法も考えられる。しかし、該前駆細胞は有核であるため癌化の問題など安全性の面が非常に危惧される。実際には、該前駆細胞をさらに分化させて脱核し、無核となった成熟赤血球を得るための誘導方法が必要である。
前記成熟赤血球の製造方法では、脱核を誘導する因子は培地に添加されておらず、培養初期に添加される分化誘導因子により赤血球前駆細胞を分化させ、それに伴う自然な成熟として脱核が誘導されている。
加えて、今後、ヒトiPS又はES細胞から大量の有核赤血球を誘導可能となり、短時間で赤血球の脱核を誘導するための方法が必要になると考えられる。
より詳しくは、短時間に赤血球分化の最終段階である脱核を誘導する因子を提供することを課題とする。
「1.分離した有核赤血球をプロオピオメラノコルチン(POMC)由来の化合物を含む培養液で培養することを特徴とする有核赤血球の脱核方法。
2.前記化合物は、以下のいずれか1から選ばれる前項1に記載の有核赤血球の脱核方法。
(1)POMC
(2)ACTH
(3)MSH
(4)LPH
(5)エンドルフィン
(6)CLIP
(7)上記(1)〜(6)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
3.前記化合物は、以下のいずれか1から選ばれる前項1に記載の有核赤血球の脱核方法。
(1)ACTH
(2)α-MSH
(3)CLIP
(4)上記(1)〜(3)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
4.前記化合物は、以下のいずれか1から選ばれる前項1に記載の有核赤血球の脱核方法。
(1)配列番号1に記載のペプチド
(2)配列番号2に記載のペプチド
(3)配列番号3に記載のペプチド
(4)配列番号4に記載のペプチド
(5)配列番号5に記載のペプチド
(6)配列番号6に記載のペプチド
(7)配列番号7に記載のペプチド
(8)配列番号8に記載のペプチド
(9)配列番号9に記載のペプチド
(10)配列番号10に記載のペプチド
(11)配列番号11に記載のペプチド
(12)配列番号12に記載のペプチド
(13)配列番号13に記載のペプチド
(14)配列番号14に記載のペプチド
(15)配列番号15に記載のペプチド
(16)配列番号16に記載のペプチド
(17)配列番号17に記載のペプチド
(18)配列番号18に記載のペプチド
(19)配列番号19に記載のペプチド
(20)上記(1)〜(19)のいずれか1を含むペプチド
(21)上記(1)〜(19)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
(22)上記(1)〜(19)のいずれか1のペプチドと90%以上の相同性を有し、かつ該ペプチドと実質的同質の有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
(23)上記(1)〜(19)のいずれか1のペプチドにおいて、1〜5個のアミノ酸が置換、欠損、挿入及び/又は付加しており、かつ該ペプチドと実質的同質の有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
5.前記化合物は、以下のいずれか1から選ばれる前項1に記載の有核赤血球の脱核方法。
(1)配列番号1に記載のペプチド
(2)配列番号2に記載のペプチド
(3)配列番号3に記載のペプチド
(4)配列番号11に記載のペプチド
(5)配列番号12に記載のペプチド
(6)上記(1)〜(5)のいずれか1を含むペプチド
(7)上記(1)〜(5)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
(8)上記(1)〜(5)のいずれか1のペプチドと90%以上の相同性を有し、かつ該ペプチドと実質的同質の有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
(9)上記(1)〜(5)のいずれか1のペプチドにおいて、1〜5個のアミノ酸が置換、欠損、挿入及び/又は付加しており、かつ該ペプチドと実質的同質の有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
6.前記化合物の培養液中の濃度が、0.01〜20.0μMであることを特徴とする前項1〜5のいずれか1に記載の有核赤血球の脱核方法。
7.前項1〜6のいずれか1に記載の脱核方法で得られた脱核赤血球。
8.POMC由来の化合物を含む脱核誘導剤。
9.前記化合物は、以下のいずれか1から選ばれる前項8に記載の脱核誘導剤。
(1)POMC
(2)ACTH
(3)MSH
(4)LPH
(5)エンドルフィン
(6)CLIP
(7)上記(1)〜(6)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
10.前記化合物は、以下のいずれか1から選ばれる前項8に記載の脱核誘導剤。
(1)ACTH
(2)α-MSH
(3)CLIP
(4)上記(1)〜(3)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
11.前記化合物は、以下のいずれか1から選ばれる前項8に記載の脱核誘導剤。
(1)配列番号1に記載のペプチド
(2)配列番号2に記載のペプチド
(3)配列番号3に記載のペプチド
(4)配列番号4に記載のペプチド
(5)配列番号5に記載のペプチド
(6)配列番号6に記載のペプチド
(7)配列番号7に記載のペプチド
(8)配列番号8に記載のペプチド
(9)配列番号9に記載のペプチド
(10)配列番号10に記載のペプチド
(11)配列番号11に記載のペプチド
(12)配列番号12に記載のペプチド
(13)配列番号13に記載のペプチド
(14)配列番号14に記載のペプチド
(15)配列番号15に記載のペプチド
(16)配列番号16に記載のペプチド
(17)配列番号17に記載のペプチド
(18)配列番号18に記載のペプチド
(19)配列番号19に記載のペプチド
(20)上記(1)〜(19)のいずれか1を含むペプチド
(21)上記(1)〜(19)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
(22)上記(1)〜(19)のいずれか1のペプチドと90%以上の相同性を有し、かつ該ペプチドと実質的同質の有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
(23)上記(1)〜(19)のいずれか1のペプチドにおいて、1〜5個のアミノ酸が置換、欠損、挿入及び/又は付加しており、かつ該ペプチドと実質的同質の有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
12.前記化合物は、以下のいずれか1から選ばれる前項8に記載の脱核誘導剤。
(1)配列番号1に記載のペプチド
(2)配列番号2に記載のペプチド
(3)配列番号3に記載のペプチド
(4)配列番号11に記載のペプチド
(5)配列番号12に記載のペプチド
(6)上記(1)〜(5)のいずれか1を含むペプチド
(7)上記(1)〜(5)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
(8)上記(1)〜(5)のいずれか1のペプチドと90%以上の相同性を有し、かつ該ペプチドと実質的同質の有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
(9)上記(1)〜(5)のいずれか1のペプチドにおいて、1〜5個のアミノ酸が置換、欠損、挿入及び/又は付加しており、かつ該ペプチドと実質的同質の有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
13.造血系幹細胞又は赤血球前駆細胞をPOMC由来の化合物を含む培養液で培養することを特徴とする脱核赤血球の培養及び/又は増幅方法。
14.前記培養液にはサイトカインを含んでいることを特徴とする前項13に記載の脱核赤血球の培養及び/又は増幅方法。
15.前記化合物は、以下のいずれか1から選ばれる前項13又は14に記載の脱核赤血球の培養及び/又は増幅方法。
(1)POMC
(2)ACTH
(3)MSH
(4)LPH
(5)エンドルフィン
(6)CLIP
(7)上記(1)〜(6)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
16.前記化合物は、以下のいずれか1から選ばれる前項13又は14に記載の脱核赤血球の培養及び/又は増幅方法。
(1)ACTH
(2)α-MSH
(3)CLIP
(4)上記(1)〜(3)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
17.前記化合物は、以下のいずれか1から選ばれる前項13又は14に記載の脱核赤血球の培養及び/又は増幅方法。
(1)配列番号1に記載のペプチド
(2)配列番号2に記載のペプチド
(3)配列番号3に記載のペプチド
(4)配列番号4に記載のペプチド
(5)配列番号5に記載のペプチド
(6)配列番号6に記載のペプチド
(7)配列番号7に記載のペプチド
(8)配列番号8に記載のペプチド
(9)配列番号9に記載のペプチド
(10)配列番号10に記載のペプチド
(11)配列番号11に記載のペプチド
(12)配列番号12に記載のペプチド
(13)配列番号13に記載のペプチド
(14)配列番号14に記載のペプチド
(15)配列番号15に記載のペプチド
(16)配列番号16に記載のペプチド
(17)配列番号17に記載のペプチド
(18)配列番号18に記載のペプチド
(19)配列番号19に記載のペプチド
(20)上記(1)〜(19)のいずれか1を含むペプチド
(21)上記(1)〜(19)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
(22)上記(1)〜(19)のいずれか1のペプチドと90%以上の相同性を有し、かつ該ペプチドと実質的同質の有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
(23)上記(1)〜(19)のいずれか1のペプチドにおいて、1〜5個のアミノ酸が置換、欠損、挿入及び/又は付加しており、かつ該ペプチドと実質的同質の有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
18.前記化合物は、以下のいずれか1から選ばれる前項13又は14に記載の脱核赤血球の培養及び/又は増幅方法。
(1)配列番号1に記載のペプチド
(2)配列番号2に記載のペプチド
(3)配列番号3に記載のペプチド
(4)配列番号11に記載のペプチド
(5)配列番号12に記載のペプチド
(6)上記(1)〜(5)のいずれか1を含むペプチド
(7)上記(1)〜(5)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
(8)上記(1)〜(5)のいずれか1のペプチドと90%以上の相同性を有し、かつ該ペプチドと実質的同質の有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
(9)上記(1)〜(5)のいずれか1のペプチドにおいて、1〜5個のアミノ酸が置換、欠損、挿入及び/又は付加しており、かつ該ペプチドと実質的同質の有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
19.前項13〜18のいずれか1に記載の脱核赤血球の培養及び/又は増幅方法で得られた脱核赤血球。
20.In vitroにおいて、有核赤血球に発現しているメラノコルチンレセプターのMC1R, MC2R, MC3R, MC4R及び/又はMC5Rに作用して脱核を誘導することを特徴とする脱核誘導剤。
21.In vitroにおいて、有核赤血球に発現しているメラノコルチンレセプターのMC1R, MC2R, MC3R, MC4R及び/又はMC5Rに作用して脱核を誘導することを特徴とする有核赤血球の脱核方法。」
これにより、血液の製造期間の短縮が可能になり、有核赤血球の輸血に伴う癌化の危険性を除くことが可能となる。すなわち、安全な血液を短時間かつ安定して得ることができ、医療技術への貢献は非常に大きい。
本発明の「造血系幹細胞」は、あらゆる種類の血球に分化する能力を有するとともに造血再構築能を有する細胞である。主に骨髄、臍帯血、脾臓あるいは肝臓中に存在し、微量ながら末梢血にも存在する。なお、「幹細胞」は、多能性造血系幹細胞及びこれから分化した骨髄系幹細胞(CFU−GEMM)を意味する。これら細胞はCD34、CD133陽性細胞である。
造血系幹細胞は、自体公知の方法で得ることができる。例えば、上記記載の骨髄、臍帯血、脾臓、肝臓又は末梢血に存在する造血系幹細胞を細胞分離装置(フローサイトメトリー等)から分離することで得られることができる。
より詳しくは、造血系幹細胞は、造血系幹細胞表面抗原(例えば、CD34)に結合する市販の抗体を用い、当業者に周知の方法を用いて単離することができる。例えば、該抗体は、磁性ビーズに結合され、そして免疫学的方法が、所望の細胞型を回収するために利用される。好ましくは、造血系幹細胞は、CD34陽性細胞の形態である。実際、CD34は、造血系幹細胞の標準マーカーとして知られている。
CD34陽性細胞の分離は、多くの様々な方法により達成できる。最も広く使用されるものは、固体支持体上に固定された抗CD34抗体(Cellpro, Baxter, Myltenyi)に当該細胞を結合させることに基づく陽性免疫学的選別である。他の選別方法は、細胞系列特異的細胞表面抗原の発現に基づいてCD34陽性細胞から、CD34を発現しない細胞の全てを単離するネガティブ選別を含む。加えて、培養される造血系幹細胞は、胚性幹細胞からex vivoで産生することもできる(参照:WO 01/34776、US 6,613,568)。
また、例えば、ヒト臍帯血CD34陽性細胞(独立行政法人理化学研究所のCell Bankから入手可能)を利用することができる。
本発明の「赤血球前駆細胞」は、造血系幹細胞から各系統の血液細胞が分化形態学的には同定できないが、すでに赤血球系の一方向の血液細胞にしか分化し得ない細胞を意味する。
具体的には血小板コロニー形成細胞(CFU−MEG)、好酸球コロニー形成細胞(CFU−EO)、顆粒球単球コロニー形成細胞(CFU−GM)、赤血球形成細胞(BFU−E、CFU−E)、T前駆細胞、B前駆細胞などである。これらはいずれもCD34陽性細胞である。
赤血球前駆細胞は、自体公知の方法で得ることができる。例えば、上記記載の骨髄、臍帯血、脾臓、肝臓又は末梢血に存在する赤血球前駆細胞を細胞分離装置(フローサイトメトリー等)から分離することで得られる。
加えて、マウスES細胞から赤血球前駆細胞に誘導する方法も知られている(参照:非特許文献3)。
よって、本発明で使用する造血系幹細胞または赤血球前駆細胞は、下記記載の方法を利用して得ることもできる。
(1)哺乳動物由来のストローマ細胞と造血系幹細胞を共培養することにより造血系幹細胞を増殖する方法(参照:特開平10-295369)。
(2)ヒト臍帯血から得られる造血支持能を有する細胞を体外で増幅させて造血系幹細胞を得る方法(参照:特開2002-6520)。
(3)ヒト造血系幹細胞または赤血球前駆細胞を、ヒト胎盤組織または臍帯組織由来のストローマ細胞の共存下で培養する方法(参照:特開2004-222502)。
(4)子宮内膜細胞を用いた造血系幹細胞または赤血球前駆細胞の培養及び増幅方法(参照:特表2007-525231)。
本発明の「有核赤血球」は、脱核をした赤血球(成熟赤血球)と区別するために使用する。
有核赤血球の調製方法は、多種報告されており自体公知の方法が利用することができる。例えば、国際公開WO2004/012750に記載の「採集した全血に水溶性高分子化合物を添加して選択促進的に赤血球を凝集沈降させる方法」を利用することができるが、特に限定されない。
加えて、臍帯血由来の造血幹細胞又は赤血球前駆細胞を有核赤血球に分化させる方法も知られている(参照:非特許文献4)。
本発明の「POMC由来の化合物」は、POMC、MSH(α-、β-、γ-MSH)、ACTH、LPH(γ-、β-LPH)、エンドルフィン(α、β、γ-エンドルフィン)若しくはCLIP、又はそれらの保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、若しくはアセチル化誘導体を対象とする。
なお、保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、若しくはアセチル化誘導体は、自体公知の方法で得ることができる。
なお、POMC は、メラノサイト刺激ホルモン(MSH)、アドレノコルチコトロピン(ACTH)、リポトロピン(LPH)、CLIP並びにβエンドルフィンの前駆体である。これら全てのホルモンは、ただ1つの大きな前駆体POMCから切断されて、生成される(参照:図1)。
Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-Gly-Lys-Lys-Arg-Arg-Pro-Val-Lys-Val-Tyr-Pro-Asn-Val-Ala-Glu-Asn-Glu-Ser-Ala-Glu-Ala-Phe-Pro-Leu-Glu-Phe(配列番号1)
ACTH1-24(ACTHの1番から24番目の配列)は、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-Gly-Lys-Lys-Arg-Arg-Pro-Val-Lys-Val-Tyr-Pro(配列番号2)
ACTH1-10(ACTHの1番から10番目の配列)は、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly(配列番号13)
ACTH1-14(ACTHの1番から14番目の配列)は、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-Gly(配列番号14)
ACTH1-16(ACTHの1番から16番目の配列)は、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-Gly-Lys-Lys(配列番号15)
ACTH1-17(ACTHの1番から17番目の配列)は、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-Gly-Lys-Lys-Arg(配列番号16)
ACTH4-10(ACTHの4番から10番目の配列)は、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly(配列番号17)
ACTH7-38(ACTHの7番から38番目の配列)は、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-Gly-Lys-Lys-Arg-Arg-Pro-Val-Lys-Val-Tyr-Pro-Asn-Val-Ala-Glu-Asn-Glu-Ser-Ala-Glu-Ala-Phe-Pro-Leu-Glu(配列番号18)
ACTH4-9(ACTHの4番から9番目の配列)は、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp(配列番号19)
α-MSHは、Acetyl基を含む以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Acetyl-(N)-Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2(配列番号3)
β-MSHは、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Ala-Glu-Lys-Lys-Asp-Glu-Gly-Pro-Tyr-Arg-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Ser-Pro-Pro-Lys-Asp(配列番号4)
γ-MSHは、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Tyr-Val-Met-Gly-His-Phe-Arg-Trp-Asp-Arg-Phe-Gly(配列番号5)
γ-LPHは、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Tyr-Gly-Gly-Phe-Met-Thr-Ser-Glu-Lys-Ser-Gln-Thr-Pro-Leu-Val-Thr-Leu(配列番号6)
β-LPHは、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Tyr-Gly-Gly-Phe-Met-Thr-Ser-Glu-Lys-Ser-Gln-Thr-Pro-Leu-Val-Thr-Tyr-Gly-Gly-Phe-Met-Thr-Ser-Glu-Lys-Ser-Gln-Thr-Pro-Leu-Val-Thr(配列番号7)
α-エンドルフィンは、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Tyr-Gly-Gly-Phe-Met-Thr-Ser-Glu-Lys-Ser-Gln-Thr-Pro-Leu-Val-Thr-Tyr-Gly-Gly-Phe-Met-Thr-Ser-Glu-Lys-Ser-Gln-Thr-Pro-Leu-Val-Thr(配列番号8)
β-エンドルフィンは、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Tyr-Gly-Gly-Phe-Met-Thr-Ser-Glu-Lys-Ser-Gln-Thr-Pro-Leu-Val-Thr-Leu-Phe-Lys-Asn-Ala-Ile-Ile-Lys-Asn-Ala-Tyr-Lys-Lys-Gly-Glu(配列番号9)
γ-エンドルフィンは、以下のアミノ酸残基からなるペプチドである。
Tyr-Gly-Gly-Phe-Met-Thr-Ser-Glu-Lys-Ser-Gln-Thr-Pro-Leu-Val-Thr-Leu(配列番号10)
Arg-Pro-Val-Lys-Val-Tyr-Pro-Asn-Gly-Ala-Glu-Asp-Glu-Ser-Ala-Glu-Ala-Phe-Pro-Leu-Glu-Phe(配列番号11)
例えば、ACTHにおいて、クジラは配列番号1と同じ配列であるが、ブタでは配列番号の1の31番目のSerがLeuになっており、ヒツジ、ウシでは配列番号1の33番目のGluがGlnになっている。
本発明では、各種間において異なるMSH(α-、β-、γ-MSH)、ACTH、LPH(γ-、β-LPH)、エンドルフィン(α、β、γ-エンドルフィン)及びCLIPもPOMC由来の化合物として含める。
Arg-Pro-Val-Lys-Val-Tyr-Pro(配列番号12)
本発明の「脱核誘導剤」は、上記いずれか1以上のPOMC由来の化合物を含む。なお、該誘導剤は、脱核誘導作用を維持するため又は誘導剤の安定化のために、必要に応じて、下記担体を含むこともできる。
本発明の「培養液(培地)」については、ES細胞、造血系幹細胞、赤血球前駆細胞、有核赤血球、網状赤血球、若しくは成熟赤血球が維持・生存でき、又はES細胞、造血系幹細胞若しくは赤血球前駆細胞が維持・生存・分化・成熟・自己複製するのに何ら阻害するものでなければ、如何なる培養液(培地)を用いることができる。
例えば、ナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、リン、塩素などの無機物、アミノ酸、ビタミン、ホルモン、抗生物質、サイトカイン、脂肪酸、糖または目的に応じてその他の化学成分もしくは血清のような生体成分を含有することもできる。
一例として DMEM 10%FBS (細胞培養のための抗生物質を含む)等を使用することができる。
本発明の「培養条件」は、温度、浸透圧、光などの物理的環境条件、及び酸素、炭酸ガス、pH、酸化還元電位などの化学的環境条件のいずれについても、ES細胞、造血系幹細胞、赤血球前駆細胞、有核赤血球、網状赤血球、若しくは成熟赤血球が維持・生存でき、又はES細胞、造血系幹細若しくは赤血球前駆細胞が維持・生存・分化・成熟・自己複製するのに何ら阻害するものでなければ、如何なる環境条件であってもよい。
温度については、20〜40℃、好ましくは約37℃である。
浸透圧については具体的には生理条件における浸透圧であり、好ましくは生理食塩水と等しい浸透圧である。
光としては暗室ほどの暗い条件であってもよいし、晴天時の外の明るさほどに明るくてもよい。
酸素濃度としては具体的には培養系が気相中の酸素濃度が10%の気相と接触している状態での溶存酸素濃度、又は気相中の酸素濃度が30%の気相と接触している状態での酸素濃度であってもよく、好ましくは気相中の酸素濃度が20%の気相と接触している状態での溶存酸素濃度の気相と接触している状態での酸素濃度である。
培養系における一般的なpHは、6.0〜8.0であり、好ましくは生理条件と同等のpHである。pHをコントロールするには二酸化炭素を用いてもよいし、他のいかなる緩衝液を用いてもよい。
炭酸ガスの濃度としては具体的には培養が5%の気相と接触している状態での溶存炭酸ガス濃度である。
細胞濃度(有核赤血球を含む)を培養液1ml中に1.0×103〜1.0×1010、好ましくは1.0×104〜1.0×109、より好ましくは1.0×105〜1.0×107、最も好ましくは約1.0×106に調製する。
そして、POMC由来の化合物を培養液中の最終濃度が0.1〜50μM、好ましくは0.5〜30μM、より好ましくは0.7〜20μM、最も好ましくは1.0〜10μMになるように添加する。なお、該化合物の添加時期は、培養開始時点でもよいが、培養途中に適宜追加しても良い。
培養温度は、33〜38℃が好ましく、CO2濃度は、約3〜7%が好ましい。
ラット胎児由来の有核赤血球における脱核誘導のための培養時間は、2〜24時間、好ましくは3〜12時間、より好ましくは4〜8時間である。
また、ヒト臍帯血由来の造血幹細胞の培養から脱核赤血球へは20日間を要するが(参照 非特許文献4)、本方法においては15日目頃から脱核を導き、16日目には半数以上の脱核を誘導できる。
なお、ヒトとラットにおけるに脱核に要する時間の違いは、胎児の発生に要する時間や赤血球の生存日数の違いによるものと考えられる。
造血系幹細胞又は赤血球前駆細胞を上記記載の方法により有核を有する赤血球に分化する。なお、分化の過程において、必要に応じて各種サイトカインを培養液中に導入する。次に、有核を有する赤血球が培養液中に存在する時期に、POMC由来の化合物を培養液中の最終濃度が0.1〜50μM、好ましくは0.5〜30μM、より好ましくは0.7〜20μM、最も好ましくは1.0〜10μMになるように添加する。なお、該化合物の添加時期は、培養開始時点でもよいが、培養途中に適宜追加しても良い。
本発明の「サイトカイン」は、細胞から放出され、細胞間相互作用を媒介するタンパク質性因子で、免疫応答の制御作用、抗腫瘍作用、抗ウイルス作用、細胞増殖・分化の調節作用などを示す物質を意味する。具体的には、インターロイキン−1(IL−1)、インターロイキン−2(IL−2)、インターロイキン−3(IL−3)、インターロイキン−4(IL−4)、インターロイキン−5(IL−5)、インターロイキン−6(IL−6)、インターロイキン−7(IL−7)、インターロイキン−8(IL−8)、インターロイキン−9(IL−9)、インターロイキン−10(IL−10)、インターロイキン−11(IL−11)、インターロイキン−12(IL−12)、インターロイキン−13(IL−13)、インターロイキン−14(IL−14)、インターロイキン−15(IL−15)、インターロイキン−16(IL−16)、インターフェロンα(IFN−α)、インターフェロンβ(IFN−β)、インターフェロンγ(IFN−γ)、顆粒球コロニー刺激因子(G−CSF)、顆粒球-単球コロニー刺激因子(GM−CSF)、単球コロニー刺激因子、顆粒球-マクロファージコロニー刺激因子、好酸球コロニー刺激因子、血小板コロニー刺激因子、幹細胞因子(SCF)、幹細胞増殖因子、flk2/flt3-リガンド、白血病阻害(阻止)因子、エリスロポエチン(EPO)、マクロファージ由来炎症性タンパク1α(MIP−1α)などが挙げられ、好ましくはインターロイキン−3、幹細胞因子(SCF)、Flt-3L、顆粒球コロニー刺激因子、顆粒球-マクロファージコロニー刺激因子、flk2/flt3-リガンド、MIP-1αまたはエリスロポエチンなどが挙げられる。
脱核赤血球を保存(長期間も含む)する場合、自体公知の方法を用いることができる。保存の方法として、例えば凍結保存法が挙げられ、この場合必要に応じてセルバンカー(C)(日本全薬工業株式会社)、グリセリン、エチレングリコール、ジメチルスルホキシド(DMSO)、ショ糖、グルコース、ポリビニルピロリドン(PVP)、トレハロースなどの凍結防御剤を加え、プログラムフリーザーなどを用い緩速凍結を行い、その後液体窒素などの中に保存すればよい。
有核赤血球の表面には、ACTHの標的受容体であるメラノコルチンレセプターのMC2R及びMC5Rが発現していることが知られている。
本発明では、下記実施例6の結果より、ヒト由来の赤血球前駆細胞では、メラノコルチンレセプターであるMC1R, MC2R, MC3R, MC4R及び/又はMC5Rが発現していることを確認した。
よって、本発明では、有核赤血球のメラノコルチンレセプターのMC1R, MC2R, MC3R, MC4R及び/又はMC5Rに作用(結合)して脱核を誘導するアゴニストを含む。
加えて、本発明では、有核赤血球のメラノコルチンレセプターのMC2R及び/又はMC5Rに作用(結合)して脱核を誘導する有核赤血球の脱核方法も含む。
本実施例では、ACTH1-24がラット胎児由来の有核赤血球の脱核を誘導するかどうかを確認した。詳細は、以下の通りである。
実験飼育用ラットを交配させ、着床後13日齢の胎児12匹から末梢血を採取した。
採取した末梢血を室温、1,000×gで5分間遠心(遠心機; HITACHI/05PR-22)した。そして、クリーンベンチ内で血清を除去し、培養液10ml[10% FBS(SIGMA /CR1211)/RPMI−1640 Medium(c)(SIGMA /R8578)/1%ペニシリン・ストレプトマイシン(SIGMA/P4333)添加 ]に懸濁後、再度遠心し、上清を除き培養液に懸濁した。この作業を2回行い、最終的に10ml培養液に懸濁した末梢血培養用試料を作成した。
本試料を約10μl採取し、血球計算盤(Burker−Turk Deep 1/10mm/Erma Tokyo/7787)を用いて血球(細胞)濃度を確認後、計算値を基に希釈を行い2×106個/mlとなるように調整した。
本試料を培養液にて細胞濃度が1×106個/mlとなるよう調整し、これにACTH1-24(配列番号2:製造元:SIGMA社)を最終濃度1μM 、5μMとなるように添加し被験培養液とした。なお、ACTH1-24無添加画分をコントロールとした。
4穴チャンバー付スライドガラス(Chamber SlideTM System/Lab-Tek(登録商標)/177380)に前記の各種被験培養液を1mlずつ分注し、37℃、5%CO2の条件でインキュベーター(サクラ炭酸ガス培養器/SAKURA/IC−160)にて所定の時間培養した。
培養時間0時間、3時間、6時間ごとに最終濃度2%のグルタールアルデヒド(25%グルタールアルデヒド溶液/和光純薬工業株式会社/073-00536)で各種被験培養液を固定した。該培養液に核を染色するDAPI(DAPI solution 1 mg/ml/DOJINDO/340-07971)を総体積の1/20,000量滴下し、5分間振とう後、蛍光顕微鏡(OLYMPUS IX70)を用いてUV光源にて励起し、定点10か所を写真撮影した。そして、該写真の画面中の細胞をカウントした。
なお、脱核率は以下の通りに算出した。
脱核率(%)={脱核赤血球数/全細胞数(有核細胞[有核赤血球、間葉系幹細胞を含む]数+脱核赤血球数)}
上記実験結果を図2に示す。
1μM及び5μMのACTH1-24添加のどちらの画分でも6時間後には脱核を誘導できた。すなわち、ACTH1-24は短時間において赤血球の脱核を誘導することができる。
本実施例では、ACTH1-39がラット胎児由来の有核赤血球の脱核を誘導するかどうかを確認した。詳細は、以下の通りである。
実験飼育用ラット(♀)を2匹交配させ、着床後13日齢の胎児24匹から末梢血を採取した。採取した末梢血を室温、1,000×gで5分間遠心した。そして、クリーンベンチ内で血清を除去し、培養液10ml[10% FBS(SIGMA CR1211)/RPMI-1640 Medium(c)(SIGMA R8578) /1%ペニシリン・ストレプトマイシン(SIGMA P4333)添加 ]に懸濁後、再度遠心し、上清を除き培養液に懸濁した。この作業を2回行い、最終的に10ml培養液に懸濁した末梢血培養用試料を作成した。
本試料を約10μl採取し、血球計算盤を用いて血球(細胞)濃度を確認後、計算値を基に希釈を行い2×106個/mlとなるように調整した。
本試料を培養液にて細胞濃度が1×106個/mlとなるよう調整し、これにACTH1-39(配列番号1:製造元:SIGMA社)を最終濃度5μMとなるように添加し被験培養液とした。なお、ACTH1-39無添加画分をコントロールとした。
培養皿(MULTIWELLTM 48well/FALCON/35-3078 )に前記2種の被験培養液を250μlずつ分注し、37℃、5%CO2の条件でインキュベーターにて培養した。
添加(または無添加)後、培養3時間にて試料を採取し、最終濃度2%のグルタールアルデヒドで固定した。本被験培養液に核を染色するDAPIを滴下し、5分間振とう後、80μlを採取し、シランコーティングのスライドグラス(シランコーティングスライドグラス/DAKO/S3003)に載せ、蛍光顕微鏡を用いて検鏡した。液滴中央を中心として周辺を一定間隔で移動し、定点9か所を定め写真撮影した。この写真画像中の細胞をカウントし、9枚の平均値を算出した。
脱核率は実施例1と同様に算出した。
上記実験結果を図3に示す。
5μMのACTH1-39添加画分では、培養時間3時間でコントロールと比較して、脱核率が高かった。すなわち、ACTH1-39は添加後3時間で有核赤血球の脱核を誘導することができる。
また、5μMのACTH1-39の添加後、3時間培養した試料中の画像を図4に示す。
有核細胞(図4中の「a」)、脱核途中の細胞(図4中の「b」)及び脱核後の赤血球(図4中の「c」)を確認することができた。なお、本試料は、有核赤血球及び間葉系幹細胞が混在している時期であり、顕微鏡下の形態観察では有核細胞(図4中の「a」)は、有核赤血球又は間葉系幹細胞のどちらであるかは区別できない。
本実施例では、CLIP及びα-MSHがラット胎児由来の有核赤血球の脱核を誘導するかどうかを確認した。詳細は、以下の通りである。
実験飼育用ラット(♀)を2匹交配させ、着床後13日齢の胎児24匹から末梢血を採取した。採取した末梢血を室温、1,000×gで5分間遠心した。クリーンベンチ内で血清を除去し、培養液10ml[10% FBS(SIGMA CR1211)/RPMI-1640 Medium(c) (SIGMA R8578)/1%ペニシリン・ストレプトマイシン(SIGMA P4333)添加]に懸濁後、再度遠心し、上清を除き培養液に懸濁した。この作業を2回行い、最終的に10ml培養液に懸濁した末梢血培養用試料を作成した。
本試料を約10μl採取し、血球計算盤を用いて血球(細胞)濃度を確認後、計算値を基に希釈を行い2×106個/mlとなるように調整した。
本試料を培養液にて細胞濃度が1×106個/mlとなるよう調整し、CLIP(配列番号11、製造元:SIGMA社)、α-MSH(配列番号3、製造元:SIGMA社)をそれぞれ最終濃度1μM 、5μMとなるように添加し、これを被験培養液とした。なお、無添加画分をコントロールとした。
8穴チャンバー付スライドガラス(Chamber Slide TM System/Lab-TekR/177402)に前記の各種被験培養液を250μlずつ分注し、37℃、5%CO2の条件でインキュベーターにて所定の時間培養した。3時間、6時間、9時間(5μMのみ)ごとに各種被験培養液を採取し、最終濃度2%のグルタールアルデヒドで該培養液を固定した。前記培養液に核を染色するDAPIを滴下し、5分間振とう後、蛍光顕微鏡を用いて検鏡し、無作為に視野像10か所を定め写真撮影した。この写真の画像中の細胞をカウントし、平均値を算出した。脱核率は実施例1と同様の方法で算出した。
1μMのCLIP添加画分及びα-MSH添加画分の結果を図5に示す。1μMのCLIP及びα-MSHの添加により、培養6時間から脱核を誘導することができた。
5μMのCLIP添加画分及びα-MSH添加画分の結果を図6に示す。5μMのCLIP及びα-MSHの添加により、培養3時間から脱核を誘導することができた。
本実施例では、ACTH1-24、ACTH1-39、CLIP又はα-MSHがヒト由来赤血球の脱核を誘導するかどうかを確認した。詳細は、以下の通りである。
ヒト由来のCD34陽性造血幹細胞(臍帯血由来、CD34陽性90%以上:Lonza社製品:http://catalog.takara-bio.co.jp/product/basic_info.asp?unitid=U100004262)を用い、HPGM培養液で培養した。最初の7日間は2×104〜2×105 Cell/mlの密度で、Stem cell factor 25 ng/ml, トロンボポイエチン 50 ng/ml及び Flt-3 ligand 50 ng/mlを添加して培養した。これを第Iフェーズとする。
次に、2×105 Cell/mlの密度で、エリスロポイエチン 3 U/ml, stem cell factor 25 ng/ml, IL3 10 ng/ml及びIL6 10 ng/ml添加して培養した。これを第IIフェーズとする。該第IIフェーズの4日目に5.0μM濃度のACTH1-24、ACTH1-39、CLIP又はα-MSHを添加して培養し、又は、0.5μM濃度のACTH1-24を添加して培養した。
上記ACTH1-24、ACTH1-39、CLIP及びα-MSHを添加して培養した第IIフェーズの9日目の赤血球を10%ホルマリンにて固定し、4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI)で染色した。蛍光顕微鏡下でランダムに10枚の写真を撮影し、有核赤血球と脱核赤血球を目視にカウントした。測定はブラインドで行った。脱核率は実施例1と同様の方法で算出した。この結果を図7に示す。
上記同様にACTH1-24、CLIP及びα-MSHを添加して培養した第IIフェーズ9日目血球のグリコホリンA(Gly A)と核(propidium iodide, PI)に対する二重染色を行い、フローサイトメトリー(自動細胞解析分離装置ファックスキャリバー/ベクトン・ディッキンソン社)にてGly A陽性/PI陰性(図9Bのフローサイトメトリーのデータで、4分割されたドットブロットのうち、左上のエリアがこれに相当する)の細胞を脱核細胞とし、前細胞数に対する脱核を測定した。この結果を図8に示す。
5.0 μM濃度のACTH1-24、ACTH1-39、CLIP又はα-MSHを添加して培養し、DAPI染色によって脱核率を算出した結果を図7に示す。
同様に、5.0 μM濃度のACTH1-24、CLIP又はα-MSHを添加して培養し、フローサイトメトリーによって脱核率を算出した結果を図8に示す。
図7及び図8の結果により、ACTH1-24、ACTH1-39、CLIP又はα-MSHをヒト胎児由来の有核赤血球に添加することにより、該有核赤血球の脱核を誘導させることができた。
本実施例では、「赤血球へ分化する細胞」中の「脱核赤血球」のパーセンテージを確認した。詳細は、以下の通りである。
実施例4と同様の培養方法において0.5 μM濃度のACTH1-24を添加し、フローサイトメトリーにより脱核率を測定した。
Gly Aは、赤芽球、網状赤血球及び成熟赤血球の表面マーカーである。そのため、未熟な赤血球も含まれるような血球細胞の集団において、「脱核赤血球」/「赤血球へ分化する細胞」のパーセンテージを測定する方法として、今回の方法を引用した(参照:Peng J. et al, 10; 314-321, Nat Cell Biol, 2008)。
上記測定結果を図9に示す。図9Aの結果から明らかなように、赤血球へ分化する細胞中の約70%が脱核していることを確認した。
メラノコルチンレセプター(MC1R, MC2R, MC3R, MC4R, MC5R)は、ACTH及びα-MSHのレセプターとなることが知られている。また、ACTHは、MC1〜4Rと反応し、また、α-MSHはMC1〜5Rと反応することが知られている (参照:Raffin-Sanson et al, J Endocri, 149; 79-90, 2003, Entrez Gene in NCBI)。加えて、マウス胎児の血球にMC5Rが発現していること(参照:Nimura et al, 211; 1096-117, Anat Embryol, 2006)が知られている。
そこで、実施例4のヒト臍帯血由来のCD34陽性造血幹細胞から誘導された赤血球前駆細胞においても、各メラノコルチンレセプターが発現しているかを確認した。より詳しくは、赤血球前駆細胞のメラノコルチンレセプターのmRNA発現をRT-PCRにて確認した。詳細は、以下の通りである。
実施例4と同様に培養し、第IIフェーズ4日目の細胞を遠心分離にて採取した。トータルRNAを抽出し(RNAeasy, キアゲン社製品)、1μgのRNAよりRT-PCRを行った(Takara Ex Taq Hot Start Version, タカラバイオ社製品)。なお、プライマーと得られるproduct size は以下のとおりである。
MC2R: forward:ggcaaagacttgctttcctg(配列番号20)
reverse:cccacatgggaactaaatgg(配列番号21)
product size:467
MC5R: forward:tggcagtggcggacatgctg(配列番号22)
reverse:ggcgatgatggcccctgagc(配列番号23)
product size:260
上記mRNA発現結果を図10に示す。
図10の結果から明らかなように、赤血球前駆細胞では、メラノコルチンレセプターであるMC2R及び/又はMC5Rが発現していることを確認した。さらに、赤血球前駆細胞では、MC1R, MC3R,及びMC4Rが発現していることも確認した(図なし)。
以上により、本発明のプロオピオメラノコルチン(POMC)由来の化合物が有核赤血球のメラノコルチンレセプターのMC1R, MC2R, MC3R, MC4R及び/又はMC5Rに作用(結合)して脱核を誘導すると考えられる。
すなわち、有核赤血球のメラノコルチンレセプターのMC1R, MC2R, MC3R, MC4R及び/又はMC5Rに作用(結合)するアゴニストは、脱核誘導剤の有効成分となり得る。
以上の実施例1〜5の結果により、POMC由来の化合物であるACTH1-39、ACTH1-24、CLIP及びα-MSHでは、短時間で脱核を誘導することができた。
よって、本発明のPOMC由来の化合物は、短時間に哺乳類由来赤血球分化の最終段階の脱核を誘導することができた。
これにより、血液の製造期間を短縮可能になり、有核赤血球の輸血に伴う癌化の危険性を除くことが可能となる。すなわち、安全な血液を短時間・かつ安定して得ることができ、医療技術への貢献は非常に大きい。
Claims (3)
- 下記化合物のいずれか1以上を含む培養液で培養することを特徴とする有核赤血球の脱核方法。
(1)配列番号1に記載のペプチド
(2)配列番号2に記載のペプチド
(3)配列番号3に記載のペプチド
(4)配列番号11に記載のペプチド
(5)配列番号1に記載のペプチドと98%以上の相同性を有し、かつ有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
(6)配列番号1に記載のペプチドにおいて、1〜2個のアミノ酸が置換、欠損、挿入及び/又は付加しており、かつ有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
(7)上記(1)〜(6)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
(8)上記(1)〜(6)のいずれか1を含むペプチド
- 下記化合物のいずれか1以上を含む脱核誘導剤。
(1)配列番号1に記載のペプチド
(2)配列番号2に記載のペプチド
(3)配列番号3に記載のペプチド
(4)配列番号11に記載のペプチド
(5)配列番号1に記載のペプチドと98%以上の相同性を有し、かつ有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
(6)配列番号1に記載のペプチドにおいて、1〜2個のアミノ酸が置換、欠損、挿入及び/又は付加しており、かつ有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
(7)上記(1)〜(6)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
(8)上記(1)〜(6)のいずれか1を含むペプチド
- 造血系幹細胞又は赤血球前駆細胞を下記化合物のいずれか1以上を含む培養液で培養することを特徴とする脱核赤血球の培養及び/又は増幅方法。
(1)配列番号1に記載のペプチド
(2)配列番号2に記載のペプチド
(3)配列番号3に記載のペプチド
(4)配列番号11に記載のペプチド
(5)配列番号1に記載のペプチドと98%以上の相同性を有し、かつ有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
(6)配列番号1に記載のペプチドにおいて、1〜2個のアミノ酸が置換、欠損、挿入及び/又は付加しており、かつ有核赤血球の脱核誘導作用を持つペプチド
(7)上記(1)〜(6)のいずれか1に記載の保護化誘導体、糖鎖修飾体、アシル化誘導体、又はアセチル化誘導体
(8)上記(1)〜(6)のいずれか1を含むペプチド
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