JP5639768B2 - Novel Spoxazomicin A substance and process for producing the same - Google Patents

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Description

本発明は、トリパノソーマ原虫の増殖阻害活性を有するため動物薬、医薬品に有効な新規Spoxazomicin A物質およびその製造法に関する。   The present invention relates to a novel Spoxazomicin A substance effective for animal drugs and pharmaceuticals because it has the growth inhibitory activity of Trypanosoma protozoa and a method for producing the same.

トリパノソーマ症にはアフリカ地域で流行しているアフリカ睡眠病と南米地域で流行しているシャーガス病とがある。アフリカ睡眠病またはヒトアフリカトリパノソーマ症と呼ばれるトリパノソーマ症は、再興原虫感染症であり、年間推定感染者が1830万人以上で年間死亡者が約5万人に及ぶとされている。特にヒトに寄生するトリパノソーマ原虫類は、ガンビアトリパノソーマ原虫(Trypanosoma brucei gambiense)とローデシアトリパノソーマ原虫(T.b.rhodesiens)との2種類に分類され、前者は慢性睡眠病、後者は急性睡眠病を引き起こす。これらの感染症は、感染末期には中枢神経系に原虫が移行し、トリパノソーマ原虫感染者の80%以上が昏睡状態に陥り、死に至るという死亡率の高い感染症である。これらのトリパノソーマ原虫はアフリカにのみ生息するツェツェバエによって媒介される。   Trypanosomiasis includes African sleeping sickness prevalent in the African region and Chagas disease prevalent in the South American region. Trypanosomiasis, which is called African sleeping sickness or human African trypanosomiasis, is a reemerging protozoan infection, with an estimated annual infection of more than 18.3 million and approximately 50,000 deaths annually. In particular, Trypanosoma protozoa parasitic on humans are classified into two types: Trypanosoma brucei gambiense and Rhodesia trypanosomes (T. b. Rhodesiens). The former causes chronic sleep disease and the latter causes acute sleep disease. . These infectious diseases are highly infectious diseases in which protozoa are transferred to the central nervous system at the end of infection, and more than 80% of those infected with Trypanosoma protozoa fall into a coma and die. These Trypanosoma protozoa are mediated by tsetse flies that only inhabit Africa.

さらに、ガンビアトリパノソーマ原虫及びローデシアトリパノソーマ原虫は人畜共通寄生種でもあり、ウシ、ウマ、ヒツジ等の家畜及びガゼルやヌー等の野生動物にも寄生する。これらの動物は保有宿主となるが発症しない。また、ヒトに寄生せず、家畜動物に寄生するその他のトリパノソーマ原虫も存在する。Trypanosoma亜属の原虫であるT.brucei brucei(ナガナ病)、Duttonella亜属の原虫であるT. vivax vivax(ズーマ病)等があり、これらの原虫が感染すると動物種により致死的な感染経過をたどる。これらもツェツェバエによって媒介される。   Furthermore, the Gambia trypanosomes and Rhodesia trypanosomes are also common animal and livestock parasites, and infest livestock such as cattle, horses and sheep, and wild animals such as gazelle and wildebeest. These animals serve as reservoirs but do not develop. There are also other Trypanosoma protozoa that do not infest humans and infest livestock animals. T. is a protozoan of the subgenus Trypanosoma brucei brucei (Nagana disease), a protozoan of the subgenus Duttonella. There are vivax vivax (Zuma disease) and the like, and when these protozoa are infected, they follow a lethal course of infection depending on the animal species. These are also mediated by tsetse flies.

ツェツェバエが生息する地域は、アフリカ大陸のサハラ砂漠以南の東海岸から西海岸の36カ国1,000万平方kmに及ぶ地域であり、1億5,000万頭以上の家畜動物がこれらのトリパノソーマ症の脅威に曝されている現状である。さらに、アブ、サシバエ等の吸血昆虫の機械的伝搬等により動物に感染するツェツェバエ非媒介性トリパノソーマ原虫類として、Trypanosoma亜属の原虫であるT.evansi(スーラ病)、T.equiperdum(媾疫病)等がある。特にスーラ病はアフリカ、中南米、東南アジア、中国、中近東、インド等世界的流行がみられる。スーラ病は、近年さらに流行が拡大傾向にあり、日本への侵入を最も警戒する必要がある動物トリパノソーマ症である。   The region where tsetse flies inhabit 10 million square kilometers in 36 countries on the west coast from the east coast south of the Sahara Desert on the African continent, and more than 150 million domestic animals have these trypanosomiasis The current situation is exposed to threats. Further, as a tsetse fly non-transmissible trypanosoma protozoan that infects animals by mechanical transmission of blood-sucking insects such as abs and flies, T. is a protozoan of the subgenus Trypanosoma. evansi (Sura disease), T. et al. There is an equiperdum. Surah's disease is particularly prevalent in Africa, Central and South America, Southeast Asia, China, the Middle East and India. Surah's disease is an animal trypanosomiasis that has become more prevalent in recent years and that needs to be most alert to invasion of Japan.

これらのトリパノソーマ原虫類に対する既存のヒトの抗トリパノソーマ原虫剤としては、過去半世紀の間、スラミン(1923年開発)、ペンタミジン(1939年開発)、メラルソプロール(1953年開発)等の古典的薬剤及びエフロニチン(1978年開発)等の化学合成医薬品が長く用いられていた。   Existing human antitrypanosomiasis against these trypanosoma protozoa include classical drugs such as suramin (development in 1923), pentamidine (development in 1939), meralsoprole (development in 1953) for the past half century. Chemo-synthetic pharmaceuticals such as Ephronitin (developed in 1978) have long been used.

スラミンは、ガンビアトリパノソーマ原虫及びローデシアトリパノソーマ原虫の感染初期に有効であるが腎毒性がある。   Suramin is effective early in the infection of Gambia trypanosomes and Rhodesia trypanosomes but is nephrotoxic.

ペンタミジンは、ガンビアトリパノソーマ原虫の感染初期に有効であるがローデシアトリパノソーマ原虫には無効であり、血圧低下や血糖減少の副作用がある。   Pentamidine is effective in the early stages of Gambia trypanosomiasis infection, but is ineffective against Rhodesia trypanosoma protozoa and has side effects of lowering blood pressure and reducing blood sugar.

砒素剤のメラルソプロールは血液脳関門を通過することにより、ガンビアトリパノソーマ原虫及びローデシアトリパノソーマ原虫の感染末期(中枢神経症)に有効であるが、中枢神経系への副作用が強いために脳症を起こす。また、メラルソプロールに対する耐性原虫株も出現している。   The arsenic agent melalsoprol is effective in the end stage of infection (central neurosis) of Gambia trypanosomes and rhodesia trypanosomes by crossing the blood-brain barrier, but causes encephalopathy due to strong side effects on the central nervous system . In addition, protozoan strains resistant to meralsoprol have also appeared.

エフロニチンは血液脳関門を通過することにより、メラルソプロールが効かない耐性のガンビアトリパノソーマ原虫の感染末期に有効であるが、ローデシアトリパノソーマ原虫には無効である。これらの薬剤は古く、有効性は徐々に低下している。また、動物のトリパノソーマ症の治療にはジミナゼン、スラミン、イソメタジウム、変異原性物質のホミジウム等が使用されてきた。特にこれらの薬剤が長期間大量に使用されてきたために、現在、薬剤耐性原虫が各地で出現し、これらの抗トリパノソーマ原虫剤としての有用性は著しく低下しており、大きな問題となっている。   Ephronitin is effective at the end of infection of resistant Gambia trypanosomiasis to which melansoprol does not work by passing through the blood-brain barrier, but is ineffective against Rhodesia trypanosoma protozoa. These drugs are old and their effectiveness is gradually declining. In addition, diminazen, suramin, isometadium, and mutagenic substances such as fomidium have been used for the treatment of trypanosomiasis in animals. In particular, since these drugs have been used in large quantities for a long period of time, drug-resistant protozoa are now appearing in various places, and their usefulness as anti-trypanosoma protozoa has been significantly reduced, which is a big problem.

アフリカ睡眠病では新規な薬剤の開発の遅れから、古典的な副作用の強い既存薬剤が治療に用いられているのが現状であり、いずれも世界規模で有効な新規な薬剤等の開発が求められている。このように、既存のヒトの抗トリパノソーマ原虫剤は原虫の種類及び感染のステージによって有効性が異なるものや薬剤耐性原虫株の出現がみられるものがある。抗トリパノソーマ原虫剤として、原虫の種類及び感染のステージを問わず有効な薬剤、ローデシアトリパノソーマ原虫や感染末期(中枢神経症)に特異性のある薬剤で、しかも副作用の少ない新規な骨格を持った抗トリパノソーマ原虫剤の開発が、地球規模で望まれている。   Because of the delay in the development of new drugs in African sleeping sickness, existing drugs with strong classical side effects are currently being used for treatment, and there is a need to develop new drugs that are effective globally. ing. Thus, existing human antitrypanosomiasis protozoa have different efficacy depending on the type of protozoa and the stage of infection, and some have emerged drug-resistant protozoan strains. Anti-trypanosoma protozoan, an effective drug regardless of the type of protozoa and the stage of infection, a drug specific to rhodesia trypanosoma protozoa and end stage infection (central neurosis), and has a novel skeleton with few side effects The development of trypanosoma protozoa is desired on a global scale.

トリパノソーマ症はトリパノソーマ原虫が宿主細胞内で増殖することによって引き起こされる。トリパノソーマ原虫の増殖を阻害する物質はトリパノソーマ症の発症を抑えるもしくは症状を緩和する抗トリパノソーマ薬として期待される。   Trypanosomiasis is caused by the growth of protozoan trypanosomes in host cells. Substances that inhibit the growth of Trypanosoma protozoa are expected to be anti-trypanosoma drugs that suppress or reduce the onset of trypanosomiasis.

そこで本発明者らは、微生物培養物中からトリパノソーマ原虫の増殖を阻害する物質の探索を続けた結果、放線菌K07−0460株の生産する新規Spoxazomicin A物質がその阻害活性を有することを見出し、この知見に基づいて本発明を完成するに至った。   Thus, as a result of continuing to search for substances that inhibit the growth of Trypanosoma protozoa from microbial cultures, the present inventors have found that a novel Spoxazomicin A substance produced by actinomycete K07-0460 has its inhibitory activity, The present invention has been completed based on this finding.

本発明はかかる知見に基づいて完成されたものであって、下記式(I)で表される新規Spoxazomicin A物質およびこのSpoxazomicin A物質を生産するストレプトスポランギウム・エスピー(Streptosporangium sp.)K07−0460(NITE P−864)を培地で培養し、培養物中にSpoxazomicin A物質を蓄積せしめ、該培養物からSpoxazomicin A物質を採取することを特徴とするSpoxazomicin A物質の製造法である。 The present invention has been completed based on such findings, and includes a novel Spoxazomicin A substance represented by the following formula (I) and Streptosporangium sp. K07- which produces this Spoxazomicin A substance . This is a method for producing Spoxazomicin A substance characterized in that 0460 (NITE P-864) is cultured in a medium, Spoxazomicin A substance is accumulated in the culture, and Spoxazomicin A substance is collected from the culture.

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本発明はまた、請求項1記載のSpoxazomicin A物質を有効成分とするトリパノソーマ原虫の増殖阻害活性物質と、請求項1記載のSpoxazomicin A物質を有効成分とする抗トリパノソーマ原虫薬である。 The present invention also relates to a trypanosoma protozoan growth inhibitory active substance comprising the Spoxazomicin A substance according to claim 1 as an active ingredient, and an antitrypanosoma protozoan drug comprising the Spoxazomicin A substance according to claim 1 as an active ingredient.

本発明の前記式Iで表される新規Spoxazomicin A物質を生産するために使用される菌株としては、一例として、本発明者等によってラン科植物より新たに分離されたストレプトスポランギウム・エスピー(Streptosporangium sp.)K07−0460(NITE P−864)が挙げられる。   As an example of the strain used for producing the novel Spoxazomicin A substance represented by the above-mentioned formula I of the present invention, Streptosporangium sp. Streptosporangium sp.) K07-0460 (NITE P-864).

Streptosporangium sp.K07−0460の菌学的性状は以下の通りである。   Streptosporangium sp. The mycological properties of K07-0460 are as follows.

(I)形態的性質
本菌株は、オートミール寒天、シュークロース・硝酸塩寒天、スターチ無機塩類寒天などで良好に生育し、オートミール寒天およびシュークロース・硝酸塩寒天で胞子の着生がみられた。気菌糸の先端もしくは側生した胞子嚢柄上に直径約5μmの胞子嚢が認められ、その形態は球状である。
(I) Morphological properties The strain grew well on oatmeal agar, sucrose / nitrate agar, starch inorganic salt agar, etc., and spore formation was observed on oatmeal agar and sucrose / nitrate agar. A spore sac having a diameter of about 5 μm is observed on the tip of the aerial hyphae or on the lateral spore sac, and its form is spherical.

(II)各種培地上での性状
イー・ビー・シャーリング(E.B.Shirling)とデー・ゴットリーブ(D.Gottlieb)の方法(インターナショナル・ジャーナル・オブ・システィマティック・バクテリオロジー、16巻、313頁、1966年)によって調べた本生産菌の培養性状を表1に示す。色調は標準色として、カラー・ハーモニー・マニュアル第4版(コンテナー・コーポレーション・オブ・アメリカ・シカゴ、1958年)を用いて決定し、色票名とともに括弧内にそのコードを併せて記した。以下は特記しない限り、27℃、2週間目の各培地における肉眼での観察の結果である。
(II) Properties on various media Methods of EB Shirring and D. Gottlieb (International Journal of Systematic Bacteriology, Vol. 16, page 313) 1966), the culture properties of the production bacteria are shown in Table 1. The color tone was determined using the Color Harmony Manual 4th edition (Container Corporation of America Chicago, 1958) as a standard color, and the code was also written in parentheses along with the color chart name. The following are the results of observation with the naked eye in each medium at 27 ° C. for 2 weeks unless otherwise specified.

Figure 0005639768
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(III)生理学的諸性質
(1)メラニン色素の生成
(イ)チロシン寒天 陰性
(ロ)ペプトン・イースト・鉄寒天 陰性
(ハ)トリプトン・イースト液 陰性
(ニ)グルコース・ペプトン・ゼラチン培地(21〜23℃) 陰性
(2)硝酸塩の還元 陰性
(3)ゼラチンの液化(21〜23℃) 擬陽性
(グルコース・ペプトン・ゼラチン培地)
(4)スターチの加水分解 陽性
(5)脱脂乳の凝固(32℃) 陰性
(6)脱脂乳のペプトン化(32℃) 擬陽性
(7)生育温度範囲 13〜36℃
(8)炭素源の利用性(プリドハム・ゴトリーブ寒天培地)
利用する :D−グルコース、D−キシロース、D−マンニトール、
D−フルクトース
利用しない:L−アラビノース、ラフィノース、メリビオース、
L−ラムノース、myo−イノシトール、スクロース
(9)セルロースの分解 陰性
(III) Physiological properties (1) Formation of melanin pigment (b) Tyrosine agar negative (b) Peptone yeast / iron agar negative (c) Tryptone yeast liquid negative (d) Glucose / peptone / gelatin medium (21- Negative (2) Reduction of nitrate Negative (3) Liquefaction of gelatin (21-23 ° C) False positive (glucose, peptone, gelatin medium)
(4) Starch hydrolysis Positive (5) Coagulation of skim milk (32 ° C) Negative (6) Peptonization of skim milk (32 ° C) False positive (7) Growth temperature range 13-36 ° C
(8) Utilization of carbon source (Pridham Gotrib Agar)
Utilized: D-glucose, D-xylose, D-mannitol,
D-fructose not used: L-arabinose, raffinose, melibiose,
L-rhamnose, myo-inositol, sucrose (9) Cellulose degradation Negative

(IV)細胞の化学組成
細胞壁中にメソ型のジアミノピメリン酸を含む。全菌体糖としてマジュロースを含む。主要メナキノンはMK−9(H)とMK−9(H)である。細胞壁ムラミン酸はアセチル型である。ミコール酸は含まれない。
(IV) Cell chemical composition The cell wall contains meso-type diaminopimelic acid. Majurose is included as a whole cell sugar. The main menaquinones are MK-9 (H 2 ) and MK-9 (H 4 ). Cell wall muramic acid is acetyl type. Mycolic acid is not included.

(V)16S rRNA遺伝子解析
16S rRNA遺伝子のうち約1400塩基の配列を決定し、DNAデータベースに登録され公開されているストレプトスポランギウム属に属する菌株およびその他の放線菌のデータを用い近隣結合法による系統解析の結果、本菌株はストレプトスポランギウム属に分類することが妥当である。
(V) 16S rRNA gene analysis A sequence of about 1400 bases in the 16S rRNA gene is determined, and a neighbor binding method using data of strains belonging to the genus Streptosporangium and other actinomycetes registered in the DNA database and published As a result of the phylogenetic analysis, it is appropriate to classify this strain into the genus Streptosporangium.

(VI)結論
以上、本菌の菌学的性状を要約すると次のとおりである。細胞壁中のジアミノピメリン酸はメソ型、全菌体糖にはマジュロースを含む。細胞壁ムラミン酸はアセチル型で、主要メナキノンはMK−9(H)とMK−9(H)である。ミコール酸を含有しない。直径約5μmの球状の胞子嚢を形成する。コロニーは赤色の色調を呈し、メラニン色素は産生しないが、赤色の可溶性色素を産生する。
(VI) Conclusion As described above, the bacteriological properties of this bacterium are summarized as follows. Diaminopimelic acid in the cell wall is meso-type, and whole cell sugar contains majurose. Cell wall muramic acid is acetyl type, and main menaquinones are MK-9 (H 2 ) and MK-9 (H 4 ). Does not contain mycolic acid. A spherical spore capsule having a diameter of about 5 μm is formed. The colony has a red color tone and does not produce a melanin pigment, but produces a red soluble pigment.

これらの結果および16S rRNA遺伝子の解析結果から、本菌株はバージーズ・マニュアル・オブ・システマティック・バクテリオロジー、4巻、1989年に基づくストレプトスポランギウム属に属する1菌種であると判断された。なお、本菌株はストレプトスポランギウム・エスピー(Streptosporangium sp.)K07−0460として、独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許生物寄託センターに寄託されている。寄託日は2010年1月18日であり、寄託番号は、NITE P−864である。   From these results and the analysis result of 16S rRNA gene, this strain was determined to be one strain belonging to the genus Streptosporangium based on the Burseys Manual of Systematic Bacteriology, Vol. 4, 1989. This strain was deposited as Streptosporangium sp. K07-0460 at the Patent Organism Depositary, National Institute of Technology and Evaluation. The deposit date is January 18, 2010, and the deposit number is NITE P-864.

Spoxazomicin A物質の理化学的性状は以下の通りである。
(1)性状:白色粉末
(2)分子量:336
(3)分子式:C1621
高速原子衝突イオン化による[M+H] 理論値(m/z)336.1445、実測値(m/z)336.1375
(4)比旋光度:[α] 31=−34.3°(c=0.1、メタノール)
(5)紫外部吸収極大λmax(メタノール中):304.0nm(1.16),260.5nm(1.14),251.0nm(1.36),243.5nm(1.43),208.0nm(1.98)に極大吸収を有する。なお、括弧内はlogεである。
(6)赤外部吸収極大νmax(KBr錠):3440,2921,1637,1367,1076cm−1に極大吸収を有する。
(7)プロトン核磁気共鳴スペクトル:重メタノール中の化学シフト(ppm)およびスピン結合定数(Hz)を表2に示す。
(8)カーボン核磁気共鳴スペクトル:重メタノール中の化学シフト(ppm)を表2に示す。
(9)溶剤に対する溶解性:クロロホルム、アセトン、メタノール、酢酸エチルに易溶。ノルマルヘキサン、水に難溶。
(10)呈色反応:ドラーゲンドルフ試液に陽性。
The physicochemical properties of Spoxazomicin A substance are as follows.
(1) Property: white powder (2) Molecular weight: 336
(3) Molecular formula: C 16 H 21 O 3 N 3 S
[M + H] + theoretical value (m / z) 336.1445, measured value (m / z) 336.1375 by fast atom collision ionization
(4) Specific rotation: [α] D 31 = −34.3 ° (c = 0.1, methanol)
(5) Ultraviolet absorption maximum λ max (in methanol): 304.0 nm (1.16), 260.5 nm (1.14), 251.0 nm (1.36), 243.5 nm (1.43), It has a maximum absorption at 208.0 nm (1.98). In the parentheses, log ε.
(6) Infrared absorption maximum ν max (KBr tablet): Maximum absorption at 3440, 2921, 1637, 1367, 1076 cm −1 .
(7) Proton nuclear magnetic resonance spectrum: Table 2 shows the chemical shift (ppm) and spin coupling constant (Hz) in deuterated methanol.
(8) Carbon nuclear magnetic resonance spectrum: Chemical shift (ppm) in deuterated methanol is shown in Table 2.
(9) Solubility in solvents: Easily soluble in chloroform, acetone, methanol and ethyl acetate. Normal hexane, hardly soluble in water.
(10) Color reaction: Positive for Dragendorf reagent.

Figure 0005639768
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表2の中で、sは一重線、dは二重線、mは多重線、Hはプロトンの数、Jはスピン結合定数(Hz)を示す。   In Table 2, s is a single line, d is a double line, m is a multiple line, H is the number of protons, and J is a spin coupling constant (Hz).

Spoxazomicin A物質の各種理化学的性状やスペクトルデータを検討した結果、Spoxazomicin A物質は前述の式(I)で表される構造であることが決定された。   As a result of examining various physicochemical properties and spectral data of Spoxazomicin A substance, it was determined that Spoxazomicin A substance has a structure represented by the aforementioned formula (I).

以上のとおり、Spoxazomicin A物質の各種理化学的性状について詳述したが、このような性質に一致する化合物はこれまで報告されておらず、Spoxazomicin A物質は新規物質であると決定した。   As described above, the various physicochemical properties of Spoxazomicin A substance have been described in detail. However, a compound that matches such a property has not been reported so far, and it was determined that Spoxazomicin A substance is a novel substance.

以上説明したように本発明は新規なSpoxazomicin A物質ならびに放線菌Spoxazomicin A株からの該物質の製造法を提供する。これにより、トリパノソーマ原虫の増殖を阻害する物質及びその製造法が提供される。   As described above, the present invention provides a novel Spoxazomicin A substance and a method for producing the substance from Actinomyces Spoxazomicin A strain. This provides a substance that inhibits the growth of Trypanosoma protozoa and a method for producing the same.

以下に実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。   Hereinafter, the present invention will be described in detail with reference to examples, but the present invention is not limited thereto.

本発明のSpoxazomicin A物質を製造するに当たっては、先ず放線菌に属するSpoxazomicin A物質を生産する能力を有する微生物を培養し、その培養物から分離・精製すればよい。本発明に用いることのできる菌株としては上記菌株、その変異株をはじめ、放線菌に属するSpoxazomicin A物質生産菌のすべてを使用することができる。   In producing the Spoxazomicin A substance of the present invention, first, microorganisms having the ability to produce Spoxazomicin A substance belonging to actinomycetes may be cultured, and separated and purified from the culture. As the strains that can be used in the present invention, the above strains, mutants thereof, and all Spoxazomycin A substance-producing bacteria belonging to actinomycetes can be used.

上記Spoxazomicin A物質生産に適した栄養源としては、放線菌の栄養源として使用し得るものであればよい。例えば、市販のペプトン、肉エキス、コーン・スティープ・リカー、綿実粉、落花生粉、大豆粉、酵母エキス、NZ−アミン、カゼインの水和物、硝酸ソーダ、硝酸アンモニウム、硫酸アンモニウム等の窒素源、グリセリン、スターチ、グルコース、ガラクトース、マンノース等の炭水化物、あるいは脂肪等の炭素源、及び食塩、リン酸塩、炭酸カルシウム、硫酸マグネシウム等の無機塩を単独あるいは組み合わせて使用することができる。   The nutrient source suitable for the production of Spoxazomicin A substance may be any nutrient source that can be used as a nutrient source for actinomycetes. For example, commercially available peptone, meat extract, corn steep liquor, cotton seed flour, peanut flour, soybean flour, yeast extract, NZ-amine, casein hydrate, nitrogen sources such as sodium nitrate, ammonium nitrate, ammonium sulfate, glycerin , Carbohydrates such as starch, glucose, galactose, and mannose, or carbon sources such as fat, and inorganic salts such as sodium chloride, phosphate, calcium carbonate, and magnesium sulfate can be used alone or in combination.

その他必要に応じて微量の金属塩、消泡剤として動・植・鉱物油等を添加することもできる。これらのものは生産菌を利用しSpoxazomicin A物質の生産の役だつものであればよく、公知の放線菌の培養材料はすべて用いることができる。またSpoxazomicin A物質の培養温度は、生産菌が発育しSpoxazomicin A物質を生産可能な範囲で適用することができる。培養は、以上に述べた条件を使用するSpoxazomicin A物質生産菌の性質に応じて適宜選択して行なうことができる。   In addition, if necessary, a trace amount of metal salt, vegetation / planting / mineral oil, etc. can be added as an antifoaming agent. Any of these may be used as long as they can play a role in the production of Spoxazomicin A substance using the produced bacteria, and all known actinomycete culture materials can be used. Moreover, the culture temperature of Spoxazomicin A substance can be applied as long as the producing bacteria grow and Spoxazomicin A substance can be produced. Culturing can be carried out by appropriately selecting according to the properties of Spoxazomicin A substance-producing bacterium using the conditions described above.

Spoxazomicin A物質は、培養液より酢酸エチル等の水不混和性の有機溶媒で抽出することができる。上述の抽出法に加え、脂溶性物質の採取に用いられる公知の方法、例えば吸着クロマトグラフィー、分配クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、薄層クロマトグラフィーよりのかき取り、遠心向流分配クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー等を適宜組み合わせあるいは繰り返すことによって純粋に採取することができる。   Spoxazomicin A substance can be extracted from the culture solution with a water-immiscible organic solvent such as ethyl acetate. In addition to the extraction methods described above, known methods used for collecting fat-soluble substances, such as adsorption chromatography, partition chromatography, gel filtration chromatography, scraping from thin layer chromatography, centrifugal countercurrent distribution chromatography, high speed It can be purely collected by appropriately combining or repeating liquid chromatography.

液体培地で培養したストレプトスポランギウム・エスピー(Streptosporangium sp.)K07−0460(NITE P−864)より、スターチ2.4%、グルコース0.1%、ペプトン[極東製薬工業(株)製]0.3%、カツオエキス[極東製薬工業(株)製]0.3%、酵母エキス[オリエンタル酵母工業(株)製]0.5%、炭酸水素カルシウム0.4%からなる液体培地(pH 7.0)が100ml入った500ml容三角フラスコに1ml植菌し、27℃で5日間振盪培養した。得られた種培養液をスターチ2.4%、グルコース0.1%、ペプトン[極東製薬工業(株)製]0.3%、カツオエキス[極東製薬工業(株)製]0.3%、酵母エキス[オリエンタル酵母工業(株)製]0.5%、炭酸水素カルシウム0.4%からなる液体培地(pH 7.0)が100ml入った500ml容三角フラスコ60本に各1mlずつ植菌し、27℃で5日間振盪培養した。   From Streptosporangium sp. K07-0460 (NITE P-864) cultured in a liquid medium, starch 2.4%, glucose 0.1%, peptone [manufactured by Kyokuto Pharmaceutical Co., Ltd.] 0 Liquid medium (pH 7) consisting of 0.3%, skipjack extract [manufactured by Kyokuto Pharmaceutical Co., Ltd.] 0.3%, yeast extract [manufactured by Oriental Yeast Co., Ltd.] 0.5%, calcium bicarbonate 0.4% 1.0) was inoculated into a 500 ml Erlenmeyer flask containing 100 ml, and cultured with shaking at 27 ° C. for 5 days. The obtained seed culture solution was starch 2.4%, glucose 0.1%, peptone [manufactured by Kyokuto Pharmaceutical Co., Ltd.] 0.3%, skipjack extract [manufactured by Kyokuto Pharmaceutical Co., Ltd.] 0.3%, Yeast extract [Oriental Yeast Industry Co., Ltd.] Inoculate 1 ml each into 60 500 ml Erlenmeyer flasks containing 100 ml of liquid medium (pH 7.0) consisting of 0.5% and calcium bicarbonate 0.4%. And cultured with shaking at 27 ° C. for 5 days.

培養の終了した500ml容三角フラスコ60本に、それぞれ100mlのエタノールを加えて1時間激しく撹拌した。次に、その抽出液中のエタノールを減圧留去し、得られた水溶液のpHをアンモニア水で10に調整した後、3000mlの酢酸ブチル、15000mlの0.1M塩酸の順で転溶させた。転溶物のpHをアンモニア水で10に調製した後に等量の酢酸エチルで抽出し、濃縮乾固して116.9mgの粗物質1を得た。粗物質1をクロロホルムで充填したシリカゲルカラム(φ17×50mm)にのせ、クロロホルム−メタノール(100:2)で溶出し、減圧濃縮により16.6mgの粗物質2を得た。粗物質2をメタノールに溶解し、高速液体クロマトグラフィーにてオクタデシルシリルカラム(φ20×250mm)に注入し、アセトニトリル−水(45:55)で溶出した。保持時間25.1分のピークを分取し、減圧濃縮により3.9mgの下記式Iで表すSpoxazomicin A物質を白色粉末として得た。   100 ml of ethanol was added to each of 60 500 ml Erlenmeyer flasks that had been cultured, and stirred vigorously for 1 hour. Next, ethanol in the extract was distilled off under reduced pressure, and the pH of the aqueous solution obtained was adjusted to 10 with aqueous ammonia, and then dissolved in the order of 3000 ml of butyl acetate and 15000 ml of 0.1 M hydrochloric acid. After adjusting the pH of the insoluble matter to 10 with aqueous ammonia, extraction with an equal amount of ethyl acetate and concentration to dryness gave 116.9 mg of crude substance 1. The crude substance 1 was placed on a silica gel column (φ17 × 50 mm) packed with chloroform, eluted with chloroform-methanol (100: 2), and concentrated under reduced pressure to obtain 16.6 mg of crude substance 2. Crude substance 2 was dissolved in methanol, injected into an octadecylsilyl column (φ20 × 250 mm) by high performance liquid chromatography, and eluted with acetonitrile-water (45:55). A peak with a retention time of 25.1 minutes was collected, and concentrated under reduced pressure to obtain 3.9 mg of Spoxazomicin A substance represented by the following formula I as a white powder.

Figure 0005639768
Figure 0005639768

本発明のSpoxazomicin A物質のin vitroでのトリパノソーマ原虫の増殖を阻害する活性について以下に述べる。   The activity of the Spoxazomicin A substance of the present invention for inhibiting the growth of Trypanosoma protozoa in vitro is described below.

試験原虫として、トリパノソーマ原虫のナガナ病の起因原虫Trypanosoma brucei brucei GUTat 3.1株(名古屋市立大学医学部藪義貞講師より分与可能)を用いた。原虫の維持継代は藪らの方法[Yabu Y,Koide T,Ohota N,Nose M,Ogihara Y.Continuous growth of bloodstream forms of Trypanosoma brucei brucei in axenic culture system containing a low concentration of serum. Southeast Asian J.Trop.Med.Public Health,29:591−595(1998)]を若干改変して行った。すなわち、24 well plateの各well内で、10%非動化牛胎児血清(FBS)、抗生物質及び種々の補給剤添加IMDM培地を用い、37℃にて5%CO−95%air下で培養を行い、1〜3日毎に培地交換して連続培養を行った。 As the test protozoa, Trypanosoma brucei brucei GUTat 3.1 strain (provided by a lecturer from Yoshitoshi Tsuji, Nagoya City University School of Medicine) was used. The maintenance passaging of the protozoa is performed according to the method of Yabu Y, Koide T, Ohota N, Nose M, Ogihara Y. et al. Continuous growth of bloodstream forms of Trypanosoma brucei brucei in axious culture system concentrating of the consortium. Southeast Asian J. et al. Top. Med. Public Health, 29: 591-595 (1998)] was slightly modified. That is, in each well of 24 well plate, using 10% non-immobilized fetal bovine serum (FBS), antibiotics and various supplemented IMDM medium, at 37 ° C. under 5% CO 2 -95% air. Culture was performed, and continuous culture was performed by exchanging the medium every 1 to 3 days.

In vitroでの本化合物の抗トリパノソーマ原虫活性の測定は、乙黒らの方法[Otoguro K,Ishiyama A,Namatame M,Nishihara A,Furusawa T,Masuma R,Takahashi Y,Shiomi K,Yamada H,Omura S.Selective and Potent in vitro antitrypanosomal activities of ten microbial metabolites.J.Antibiotics,61:372−378(2008)]に従って行った。すなわち、96 well plateの各wellに前培養された原虫浮遊液(原虫数2.0×10〜2.5×10個/mlに調整)95μlと化合物溶液(50% エタノール水溶液)5μlを添加し、混和後、37℃にて5%CO−95%air下で72時間培養を行った。 In vitro measurement of the anti-trypanosoma protozoan activity of this compound was carried out by the method of Otoguro et al. Selective and Potent in vitro antipanosomal activities of ten micrometabolites. J. et al. Antibiotics, 61: 372-378 (2008)]. That is, 95 μl of a protozoan suspension (adjusted to a number of protozoa of 2.0 × 10 4 to 2.5 × 10 4 / ml) pre-cultured in each well of 96 well plate and 5 μl of a compound solution (50% ethanol aqueous solution) After adding and mixing, the cells were cultured at 37 ° C. under 5% CO 2 -95% air for 72 hours.

培養終了後、原虫増殖の測定は96 well plateの各wellにAlamar Blue試薬(Sigma−Aldorich社製、米国)10μlを添加、混和し、37℃にて5%CO−95%air下で3〜6時間培養後、原虫の酸化還元電位を蛍光マイクロプレートリーダー(Bio−Tek社製、米国)にて励起波長528/20nm、蛍光波長590/35nmでの蛍光強度を測定することにより、原虫の増殖の有無を比色定量した。本化合物の50%原虫増殖阻止濃度(IC50値)は蛍光マイクロプレートリーダー付属softwareのKC−4(Bio−Tek社製、米国)の化合物濃度作用曲線より求めた。本化合物と既知の抗トリパノソーマ原虫剤の培養トリパノソーマ原虫に対する抗トリパノソーマ原虫活性は下記表3に示す通りであった。 After completion of the culture, protozoan growth was measured by adding 10 μl of Alamar Blue reagent (Sigma-Aldorich, USA) to each well of 96 well plate, mixing, and mixing at 37 ° C. under 5% CO 2 -95% air. After culturing for ˜6 hours, the redox potential of the protozoa is measured by measuring the fluorescence intensity at an excitation wavelength of 528/20 nm and a fluorescence wavelength of 590/35 nm with a fluorescence microplate reader (Bio-Tek, USA). The presence or absence of proliferation was colorimetrically determined. The 50% protozoa growth inhibitory concentration (IC 50 value) of this compound was determined from the compound concentration action curve of KC-4 (manufactured by Bio-Tek, USA) of software attached to a fluorescent microplate reader. The antitrypanosome protozoan activity of this compound and known antitrypanosome protozoan agents against cultured trypanosoma protozoa was as shown in Table 3 below.

培養トリパノソーマ原虫に対する既知の抗トリパノソーマ原虫剤としては、スラミン及びエフロニチン[(Prof. R. Brun,Swiss Tropical Institute,Basel,スイス国)より分与]がそれぞれ用いられた。   As known anti-trypanosoma protozoan agents for cultured Trypanosoma protozoa, suramin and eflonitin (provided by (Prof. R. Brun, Swiss Tropical Institute, Basel, Switzerland)) were used, respectively.

Figure 0005639768
Figure 0005639768

本発明のSpoxazomicin A物質はT.b.b.GUTat 3.1株に対する抗トリパノソーマ原虫活性(IC50値)は0.11μg/mlであり、その活性は既存の抗トリパノソーマ原虫剤と比較すると、スラミン及びエフロニチンの14〜21倍の優れた抗トリパノソーマ原虫活性を示した。 Spoxazomicin A material of the present invention is T.P. b. b. Antitrypanosoma protozoa activity (IC 50 value) against GUTat 3.1 strain is 0.11 μg / ml, and its activity is 14-21 times superior to that of existing antitrypanosoma protozoan agents compared with suramin and efronitin. It showed protozoan activity.

本発明のSpoxazomicin A物質の細胞毒性試験は、乙黒らの方法[Otoguro K,Kohana A,Manabe C,Ishiyama A,Ui H,Shiomi K,Yamada H,Omura S.Potent antimalarial activities of polyether antibiotic,X−206.J.Antibiotics,54:658−663,(2001)]に準じて行った。すなわち、宿主細胞のモデルとしてヒト胎児肺由来正常繊維芽細胞MRC−5細胞[Dr.L.Maes(Tibotec NV,Mechelen,ベルギー国)より分与可能]を10%牛胎児血清(FCS)及び抗生物質添加MEM培地にて維持、継代培養を行ったものを用いた。   The cytotoxicity test of the Spoxazomicin A substance of the present invention was carried out by the method of Otoguro et al. [Otoguro K, Kohana A, Manabe C, Shiyama A, Ui H, Shiomi K, Yamada H, Omura S. et al. Potential axial activities of polymer antibiotic, X-206. J. et al. Antibiotics, 54: 658-663, (2001)]. That is, human fetal lung-derived normal fibroblast MRC-5 cells [Dr. L. Maes (available from Tibotec NV, Mechelen, Belgium)] was maintained in 10% fetal calf serum (FCS) and MEM medium supplemented with antibiotics, and subcultured.

ヒト胎児肺由来正常繊維芽細胞MRC−5細胞を10%FCS−MEMにて1×10cell/mlになるように浮遊液を調整し、96 well plateに100μlを添加し混和後、37℃にて5%CO−95%air下で24時間培養を行った後、各wellに10%FCS−MEM90μlと本化合物の溶液(50% エタノール水溶液)10μlを添加し、混和後、前述のガス下で7日間培養を行った。MRC−5細胞の増殖の有無はMTT法にて比色定量した。本化合物の50%細胞増殖阻止濃度(IC50値)は化合物濃度作用曲線より求めた。その結果は下記表4の通りであった。 The human fetal lung-derived normal fibroblast MRC-5 cells were adjusted to 1 × 10 3 cells / ml with 10% FCS-MEM, and 100 μl was added to 96 well plate and mixed. After incubating under 5% CO 2 -95% air for 24 hours, add 90 μl of 10% FCS-MEM and 10 μl of this compound solution (50% ethanol aqueous solution) to each well, mix, Cultivation was carried out for 7 days. The presence or absence of proliferation of MRC-5 cells was colorimetrically determined by the MTT method. The 50% cell growth inhibitory concentration (IC 50 value) of this compound was determined from the compound concentration action curve. The results are shown in Table 4 below.

Figure 0005639768
Figure 0005639768

本発明のSpoxazomicin A物質のヒト胎児肺由来正常繊維芽細胞MRC−5細胞に対する細胞毒性(IC50値)は27.84μg/mlであり、抗トリパノソーマ原虫活性との選択毒性比(細胞毒性のIC50値/抗トリパノソーマ原虫活性のIC50値)は253であり、高い選択毒性を示した。 The cytotoxicity (IC 50 value) of Spoxazomicin A substance of the present invention to human fetal lung-derived normal fibroblast MRC-5 cells is 27.84 μg / ml, and the selective toxicity ratio (cytotoxic IC of cytotoxicity) with antitrypanosome protozoan activity. 50 value / IC 50 value of antitrypanosome protozoan activity) was 253, indicating high selective toxicity.

本発明のSpoxazomicin A物質の抗菌活性は以下のとおりである。濾紙円板(アドバンテック社製、直径6mm)にSpoxazomicin A物質の1mg/mlのメタノール溶液をそれぞれ10μl浸漬し、一定時間風乾して溶媒を除去後、表5の試験菌含菌寒天平板に張り付け、35℃で24時間培養後、濾紙円板の周りにできた生育阻止円の直径を表5に示した。   The antibacterial activity of Spoxazomicin A substance of the present invention is as follows. 10 μl each of 1 mg / ml methanol solution of Spoxazomicin A substance was immersed in a filter paper disc (Advantech, diameter 6 mm), air-dried for a certain period of time to remove the solvent, and affixed to the test bacteria-containing agar plate of Table 5. Table 5 shows the diameters of the growth inhibition circles formed around the filter paper disc after culturing at 35 ° C. for 24 hours.

Figure 0005639768
Figure 0005639768

本発明のSpoxazomicin A物質は、表5の微生物に対してほとんど抗菌活性を示さなかった。したがって、本発明のSpoxazomicin A物質はトリパノソーマ原虫の増殖を阻害する物質あるいは抗トリパノソーマ原虫剤などの薬剤として使用し得る。   The Spoxazomicin A substance of the present invention showed little antibacterial activity against the microorganisms in Table 5. Therefore, the Spoxazomicin A substance of the present invention can be used as a drug that inhibits the growth of Trypanosoma protozoa or an anti-trypanosoma protozoan agent.

Claims (5)

下記式Iで表される化合物であることを特徴とするSpoxazomicin A物質。
Figure 0005639768
Spoxazomicin A substance, which is a compound represented by the following formula I:
Figure 0005639768
請求項1に記載のSpoxazomicin A物質を生産するストレプトスポランギウム・エスピー(Streptosporangium sp.)K07−0460(NITE P−864)を培地で培養し、培養物中にSpoxazomicin A物質を蓄積せしめ、該培養物からSpoxazomicin A物質を採取することを特徴とするSpoxazomicin A物質の製造法。 Streptosporangium sp. K07-0460 (NITE P-864) , which produces Spoxazomicin A substance according to claim 1, is cultured in a medium, Spoxazomicin A substance is accumulated in the culture, A method for producing Spoxazomicin A substance, which comprises collecting Spoxazomicin A substance from a culture. ストレプトスポランギウム・エスピー(Streptosporangium sp.
)K07−0460(NITE P−864)株。
Streptosporangium sp.
) K07-0460 (NITE P-864) strain.
請求項1に記載のSpoxazomicin A物質を有効成分とするトリパノソーマ原虫の増殖阻害活性物質。 A Trypanosoma protozoan growth inhibitory active substance comprising the Spoxazomicin A substance according to claim 1 as an active ingredient. 請求項1に記載のSpoxazomicin A物質を有効成分とする抗トリパノソーマ原虫薬。 An antitrypanosoma protozoan drug comprising the Spoxazomicin A substance according to claim 1 as an active ingredient.
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