JP5604766B2 - 多能性細胞の神経分化のための方法および培地 - Google Patents
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Description
本発明は、多能性細胞、特にヒト多能性細胞の神経同調分化のための方法および培地に関する。
幹細胞、特にヒト胚性幹細胞(hES細胞)は、その内在特性のために、第一にその自己複製能により細胞の準無限のプールを提供でき、第二に全ての神経系譜細胞型を含めた任意の細胞系譜にin vitroで分化できるという二つの長所を示す。
本発明は、BMPシグナル伝達経路の阻害剤;およびTGF/アクチビン/nodalシグナル伝達経路の阻害剤を含む培養培地に関する。
本発明は、BMPシグナル伝達経路の阻害剤およびTGF/アクチビン/nodalシグナル伝達経路の阻害剤を含む培養培地に関する。
− エネルギー基質としての、グルコース、ガラクトースまたはピルビン酸ナトリウムなどの炭素源;
− 必須アミノ酸;
− ビオチン、葉酸、B12などのビタミン;
− 核酸前駆体として少なくともプリンおよびピリミジン;
− 無機塩;
− セレンなどの自然老化を制限することが知られている分子;
− 還元型グルタチオン(GSH)、アスコルビン酸、またはカタラーゼもしくはスーパーオキシドジスムターゼなどの活性酸素の解毒に関与する酵素などの抗酸化剤;
− コリン、イノシトールなどのリン脂質前駆体、またはコルチコステロンなどのコレステロール誘導体;
− リノール酸、リノレン酸および/またはリポ酸などの独特な脂肪酸;
− アルブミンおよび/またはヘパリンなどの担体タンパク質;
− 場合により、インスリンおよび/またはトランスフェリンおよび/またはIGF−1レセプターアゴニストなどの他のタンパク質またはペプチド
を含有する。
本発明の別の局面は、神経前駆体集団を産生させるための方法に関し、ここで該方法は、上記培養培地で多能性細胞を培養する段階を含む。
− フィーダー細胞の存在下で多能性細胞、好ましくはES細胞を培養すること;
− 該多能性細胞、好ましくはES細胞のクラスターを、好ましくはRock阻害剤、好ましくはY27632の存在下で調製すること;
− 該多能性細胞、好ましくはES細胞をフィーダー細胞の影響から断ち切るために、低付着性皿の中でフィーダー細胞の不在下で該クラスターを数時間、好ましくは4〜10時間、さらに好ましくは5〜8時間、なおさらに好ましくは約6時間培養すること;
− ポリオルニチンおよびラミニンがコーティングされた皿にRock阻害剤の存在下で懸濁物を蒔くこと;
− 培地を1日おきに本発明の培地に取り替えること
を含む、神経前駆体を得るための方法に関する。
a.上記方法により神経前駆体集団を産生させること;
b.神経幹細胞の均一集団を安定化させること;
c.該神経幹細胞集団をニューロンに分化させること
の段階を含む。
a)本発明の神経前駆体集団またはニューロン集団を被験化合物の存在下で培養すること;
b)段階a)で培養された細胞の生存率を、該被験化合物の不在下で培養された上記と同義の神経前駆体集団またはニューロン集団の生存率と比較すること
を含む。
材料および方法
培地およびサイトカイン
N2B27培地は、Yingら、2003に記載された。N2B27は、DMEM−F12/Neurobasal(1:1)、N2サプルメント(1:100°)、B27サプルメント(1:50°)(共にInvitrogenから入手)の混合物であった。NFSは、N2B27、ノギン(200ng〜500ng/mlの濃度範囲、RD SystemsまたはPreprotech製)、SB431542(10〜20μM、Tocris製)、5ng/ml FGF2(Preprotech)から構成された。Rock阻害剤Y27632は、Calbiochem製であり、EGFおよびBDNFは、RD systems製であった。
ヒトES細胞(Hues24(XY)、およびH9(XX)、WiCell Research Institute)を、不活性化マウス線維芽細胞(ATCCからのSTO系)層上で維持した。hES細胞は、20%ノックアウト血清リプレースメント(KSR)、1mM非必須アミノ酸、0.55mM 2−メルカプトエタノール、および10ng/mlリコンビナントヒトFGF2(全てInvitrogen製)を補充したDMEM/F12/Glutamax中で培養した。培養物に毎日養分を与え、5〜7日毎に手作業で継代した。40〜60代の間で細胞を使用した。
Takahashiら、2007に記載された再プログラミング技法によりにより、研究室で人工多能性幹細胞系GMO3862を得た。簡潔には、c−myc、Oct−4、Sox2およびKlf4を発現しているレトロウイルスベクターを線維芽細胞にトランスダクションした。
70〜80%の集密度に達したヒトES細胞培養物またはiPS培養物を使用して、NFS培地を使用した神経誘導を行った。コロニーを切り分け、Rock阻害剤Y27632(10μM、Calbiochem)を含むN2B27またはNFS培地中で手作業で剥離した。フィーダーの影響を完全に断ち切るために、クラスターを低付着性ペトリ皿に6時間移植した。最終的に、ポリオルニチンおよびラミニン(2μg/ml、Sigma)を予備コーティングされた培養皿の中で、hESまたはiPS懸濁物を同培地に1:1の比で蒔いた。翌日およびその後1日毎に培地をY27632不含NFS培地と交換した。
NFS培地中で誘導してから10日後に、神経幹細胞(NSC)を神経上皮構造外部に遊走させるために、神経前駆体を継代せずに、N2B27、EGF/FGF2(10ng/ml)およびBDNF(脳由来神経栄養因子、20ng/ml)から構成される増幅培地に移植した。NSC培養物が完全に集密になった場合に、トリプシンを用いて細胞を継代し、培養物をEGF/FGF2/BDNF培地に1:2の比でポリオルニチン/ラミニン上に再度蒔いた。神経細胞への終末分化は、ポリオルニチン/ラミニン上でN2B27+BDNF(EGFおよびFGF2不含)中で50000個細胞/cm2の密度でNSCを蒔くことにより誘導した。終末分化の2週間後に分析を行った。
トリプシンを用いて細胞を収集し、2%PFAで4℃で15分間固定した。PBS/0.1%サポニン溶液を使用してRTで10分間透過処理を行った。次に、同溶液を使用して、以下のように一次抗体を希釈した:フィコエリトリンに結合したマウスモノクローナルOCT4抗体(oct4−PE、1:10°、BD Biosciences)およびウサギ抗SOX2ポリクローナル抗体(1:500°、Chemicon)。細胞を一次抗体混合物にRTで45分間曝露した。SOX2未結合抗体を検出するために、AlexaFluo 488に結合した抗ウサギ二次抗体と共にRTで30分間追加的なインキュベーションを行った。Becton Dickinson FACScalibur(商標)フローサイトメーターを使用してFACS分析を行った。
細胞を4% PFAで4℃で15分間固定し、次にPBS/0.3% Triton X100溶液を使用してRTで10分間て透過処理した。一次抗体とのインキュベーションは、以下のようにPBS/TX100:ウサギポリクローナル抗PAX6(1:800°、Covance)、ウサギポリクローナル抗SOX2(1:1000°)、マウスモノクローナル抗OCT4(1:200°、Santa-cruz biotech.)、マウスモノクローナル抗サイトケラチン18(1:50°、Abcam)、マウスモノクローナル抗PAX3(1:50°、RD Systems)、マウスモノクローナル抗TUJ1およびマウスモノクローナル抗MAP2(1:1000°、共にCovance製)中で4℃で一晩行った。AlexaFluor二次抗体およびDAPI対比染色を室温で1時間適用した。Zeiss倒立顕微鏡を用いて検出を行った。
RNeasy Mini Kit(Qiagen)を製造業者の説明書にしたがって使用して合計RNAを単離した。ランダムプライマーを用いて合計500ngのRNAをSuperScript III(Invitrogen)でcDNAに逆転写した。LC480 Real-Timeシステム(Roche)でプローブとしてSYBR Greenを用いてリアルタイムQ−PCRを行った。閾値検出線(Ct値)で定量を行った。各ターゲット遺伝子のCtを、ハウスキーピング遺伝子としてのシクロフィリンのCtに対して標準化した。2−△△Ct法を使用して、各遺伝子の相対発現レベルを測定した。データを平均±SEMで表現した。プライマー配列を以下に一覧する。
N2B27における神経分化効率は、使用されるhES細胞系に依存して高度に変動する
本発明者らは、最初に、代替的な細胞運命の任意の公知の教示シグナルを培養培地から除去するだけで得られる神経分化の効率をモニタリングした。本発明者らは、接着性単層培養系におけるマウスおよびヒト胚性幹細胞の両方の神経分化を誘導するために以前に開発された合成培地であるN2B27培地を使用した(Ying et al., 2003; Lowell et al., 2006)。いくつかのナイーブhES細胞系の分化を一貫して分析するために、本発明者らは、OCT4およびSOX2転写因子に対する抗体を使用して細胞を染色し、次にFACS技法を用いて分析する系統計数プロトコールを開発した。OCT4およびSOX2の両方を発現している細胞を胚性幹細胞とみなし、SOX2のみを発現している細胞を神経細胞として計数した。完全に陰性であるか、またはOCT4のみを発現している細胞を、他の種類の組織または層に分化したと称した。N2B27に入れてラミニン上に蒔いた8日後に、4系列のhES細胞系(Hues24、H9、VUB01、SA01)でFACS分析を行った。全ての細胞系で神経分化を得たが、SA01系について33.84%からVUB01系について82.33%まで、分化効率は、使用した細胞系に依存して高度に変動すると思われた(図1−A)。このことから、ES細胞の単層培養物の培養培地から教示因子を単に除去することが、神経系譜への分化の方向付けを最適に誘導するには不十分であることが示された。
この不均一性を説明するために、培地由来の教示シグナルが不在であるにもかかわらず、ES細胞の小塊/コロニー中に細胞内経路のオートクリンまたはパラクリン刺激が存在することがあり、それが、自己更新を維持または胚体外分化を誘導するために十分であると、本発明者らは仮定した。未分化ES細胞および胚体外組織の共存が、持続性SMAD活性化の典型的なシグネチャーでありうることから、本発明者らは、そのような活性化を誘導することが知られている二つの経路:TGFβ経路(アクチビン/Nodal経路としても知られている)およびBMP経路に焦点を当てた。
神経前駆体細胞(PAX6+/SOX1+/SOX2+)が一旦得られたならば(8〜10日間の分化後)、その増幅および神経「幹細胞」(NSC、図4A)としてのさらなる安定化を開始するために、神経管様構造をさらに適した別の合成培地に移植した。この培地は、以前に記載されており(Conti et al., 2005)その増幅性は、二つの分裂促進因子、すなわちEGF(上皮成長因子)およびFGF2(線維芽細胞成長因子2)の併用ならびに生存因子BDNF(脳由来成長因子)の場合による添加に基づいた。2日後に、神経幹細胞はロゼット構造から遊走し始め、形態的に同定可能になり始めた(図1B)。集密に達したとき、トリプシンを用いて培養物を通過させ、細胞を剥離し、1/2の比でポリオルニチン/ラミニン基層に再接種した。2または3回の継代後に、神経幹細胞の安定で均一な集団を得た。これらの細胞は、代替法を使用して得られたhES細胞由来神経幹細胞または胎児由来の放射状グリア様細胞に関して文献に記載されたSOX2、ネスチンおよびBlbpのようなマーカーと同じマーカーを発現した。それらがニューロンを生じる能力を試験するために、N2B27培地+20ng/mlのBDNF中でポリオルニチン/ラミニン基質にNSCを低密度(通常は50000〜100000個細胞/cm2)で蒔いた。神経突起の伸長は、増殖因子の中止から24時間以内に開始し、ニューロンは、4日後に明らかに同定可能となる。約10日後に最高率の分化が得られる(全集団の60%超)。結果として生じた培養物は、抑制性GABA作動性ニューロンと興奮性グルタミン酸作動性ニューロンの混合物から構成され、確定された領域同一性を有さない。本発明者らは、また、NSCからGFAP陽性アストロサイトへの自然分化も観察し、それは神経幹細胞が多能性であることを実証した。
本出願にわたり、様々な参考文献が、本発明が属する技術分野の現状を記載している。これらの参考文献の開示は、本開示への参照により本明細書に組み入れられる。
Claims (10)
- a)ノギンおよび
b)SB431542
を含む、培養培地。 - 該培養培地が、
a)炭素源;
b)必須アミノ酸;
c)ビタミン:
d)プリンおよびピリミジン;
e)無機塩;
f)自然老化を制限することが知られている分子;
g)抗酸化剤;
h)リン脂質前駆体;
i)独特な脂肪酸;ならびに
j)担体タンパク質
を含む、請求項1記載の培養培地。 - 請求項1〜2のいずれか一項記載の培養培地で多能性細胞を培養する工程を含む、神経前駆体集団を産生させるための方法。
- 多能性細胞が、ヒト多能性細胞である、請求項3記載の方法。
- 多能性細胞が、幹細胞である、請求項3または4記載の方法。
- 幹細胞が、胚性幹細胞である、請求項5記載の方法。
- 多能性細胞が、人工多能性細胞(IPS)である、請求項3または4記載の方法。
- 以下の工程:
a)請求項3〜6のいずれか一項記載の方法により神経前駆体集団を産生させること;
b)該神経前駆体集団をニューロンに分化させること
を含む、ニューロン集団を得るための方法。 - a)ノギンおよび
b)SB431542
を含む、細胞培養のためのキット。 - さらに、培地基を含む、請求項9記載の細胞培養のためのキット。
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