JP5483108B2 - γ線を利用したマメ科植物の栽培方法 - Google Patents
γ線を利用したマメ科植物の栽培方法 Download PDFInfo
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Description
本発明は、γ線を利用したマメ科植物の栽培方法に関し、特に、実生時期を経過した後、植物体に、特定範囲の線量率でγ線を照射する工程を含む、マメ科植物の栽培方法に関する。
ダイズ等のマメ科植物は、人類の主食である穀物の１つであり、全世界で約２億トン生産されている。ダイズ等のマメ科植物は、食用の他、植物油や家畜飼料の原料としても広く利用され、一部では、バイオエネルギーとしての利用も試みられており、年々その生産量は増大している。このような需要の増大に対する１つの対応策は遺伝子工学的な手法で生産性の高いダイズを作製することである。しかし、このような遺伝子工学的な手法で作り出された植物は、生物の多様性の保全及び持続可能な利用に悪影響を及ぼす可能性があり、遺伝子工学的手法によらずに生産性を増大できる手法に対する要求が増大しつつある。
ところで、１９７８年にミズーリ大学のトーマス・Ｄ・ラッキーによって、放射線ホルミシス効果が提唱された後、とうもろこし、アルファルファ、ダイズ、エンドウマメ、ジャガイモ、チューリップ、ユリ、オオムギ、インゲン等の様々な植物についても、γ線等の放射線によるホルミシス効果に関する報告がなされている（非特許文献１）。これらの報告の中には、種子、塊根、実生の状態で、所定量の放射線を照射すると、成長が促進される等の効果が得られることを提示するものがある。但し、線量は様々であり、線量率や、照射期間などについては言及されておらず、照射によって得られる効果も様々である。このため、そのデータの有効性については議論が多いのが現状である。
この文献にはまた、小麦の１品種（Ｂａｎｋｕｔ）に５００Ｒ（他の条件は不明）のγ線を照射したところ、クロロフィルが増加したこと、トウモロコシの交雑種（ＶＩＲ２５）に５００〜１０００Ｒ（他の条件は不明）のγ線を照射したところ、クロロフィル及びアスコルビン酸が増加したこと、並びにジャガイモの２品種（Ｋｉｓｒａｒｏｄａｌ ｒｏｚｓａ及びＧｕｌｌｂａｂａ）にそれぞれ４００Ｒ及び６００Ｒ（他の条件は不明）のγ線を照射したところ、アスコルビン酸が増加したことを示す報告がある。また、ダイズその他の植物に１−１６ｋＲのγ線を照射したところ（他の条件は不明）、ビタミンＣ量が増加したことを示す報告や、トマト種子に８００Ｒのγ線を照射する（他の条件は不明）ことによりポリフェノール及びオキシダーゼ活性が増加したことを示す報告がある。これらの報告でも線量率や、照射期間などのγ線照射の詳細な条件は検討されておらず、その再現性については疑問がある。
最近では、マメ科植物の発芽後の若い苗への急照射で０．４Ｇｙ程度から、成長や莢付きが低減してくるが、莢の大きさなどには変化がないという報告がある（非特許文献２）。また、チェルノブイリ周辺での汚染地域で土壌中に放射線核種がある中で生育したダイズは収穫される豆が小さいなどの報告もある（非特許文献３）。
なお、本願明細書で引用した文献は参照により本願明細書に組み込む。
なお、本願明細書で引用した文献は参照により本願明細書に組み込む。
放射線ホルミシス Lucky 著 ソフトサイエンス社
Zaka, R., et al.,Science of the Total Envuronment 320, 121-129(2004)
Danchenko, M., et al., Journal of Proteome Research 8(6), 2915-2922(2009)
昆野昭晨、ダイズの子実生産機構の生理学的研究、 農技研報告．D27：139-295(1976)
E.N.Morandi,L.M.Casano and L.M. Reggiardo, Post-flowering photoperiodic effect on reproductive efficiency and seed growth in soybean, Field Crops Research 18, 227-241, 1988
J.D. Cure, R.P.Patterson, C.D. Raper, Jr., and W.A.Jackson, Assimilate Distribution in Soybeans as Affected by Photoperiod During Seed Development, Crop Science, 22:1245-1250, 1982.
C.K.Martin, D.K. Cassel, and E.J.Kamprath, Irrigation and tillage effects on soybean yield in a coastal plain soil. Agronomy Journal. 71：592-594(1979)
豆の辞典、渡辺篤二監修 幸書房
McBlain, B. A. and R. L. Bernard. A new gene affecting the time of flowering and maturity in soybean. J. Hered. 78：160-162(1987)
Palmer, R. G. and T. C. Kilen. 5-5.6.1 Flowering and maturity. p.152-155.In: J. R. Wilcox (ed.). Soybean: Improvement, Production, and Uses. 2nd ed. Agronomy 16. ASA,CSSA,SSSA. Madison, WI. (1987)
農林水産研究文献解題 No.27 大豆自給率向上に向けた技術開発 （２）生殖成長 http://rms1.agsearch.agropedia.affrc.go.jp/contents/kaidai/daizuNo27/27_m.html
このような放射線利用に関する研究の実態から、日本では、ジャガイモの芽の生育抑制や食物の殺菌処理などに使用されているに過ぎず、食品に供される植物の育成に放射線は利用されていない。また、放射線利用に関する規制が比較的緩やかな諸外国でも同様であり、世界的にみても実用レベルで食品に供される植物の育成に放射線は利用されていないのが現状である。
しかし、放射線利用により食品等に供する植物の増産が可能となれば、遺伝子工学的な手法で作り出された植物による問題を解消する増産のための新たな選択肢を提供することができる。また、放射線照射により、植物中である特定の物質を増産させることができれば、当該物質を効率的に生産する生物学的方法を提供することができる。
本発明は、上述のような本願の出願当時における技術水準から全く予想し得なかったマメ科植物の種子を増産し得る条件並びにマメ科植物に特定の物質を増産させることができる条件を発見したことに基づく。すなわち、総線量のみならず、照射時期と線量率について詳細な検討を行なったところ、実生時期を経過した後、総線量０．５〜１０．０Ｇｙで、０．０４〜０．４Ｇｙ／日の範囲の線量率でγ線を植物体に照射することで、非照射の場合に比べ種子を大きくし莢の平均重量を増大し得ることを見出した。また、同範囲の総線量で、０．０５〜０．０８Ｇｙ／日のさらに狭い特定範囲の線量率でγ線を植物体に照射すると、個体当たりの莢数をも増加し、１個体当たりから収穫される莢重量を顕著に増大し得ることを見出した。さらには、同範囲の総線量で、線量率０．０４〜０．４Ｇｙ／日、より好ましくは、線量率０．１〜０．３Ｇｙ／日又は０．０５〜０．０８Ｇｙ／日で、γ線を照射すると、栽培されたマメ科植物から得られる種子の特定の代謝物質が非照射の場合に比べ増加することを見出した。
かくして、本発明は、その一の実施の形態において、実生時期を経過した後、植物体に、総線量０．５〜１０．０Ｇｙで、線量率０．０４〜０．４Ｇｙ／日、０．１〜０．３Ｇｙ／日、又は０．０５〜０．０８Ｇｙ／日で、γ線を照射することを特徴とする、マメ科植物の栽培方法、この方法で栽培されたマメ科植物及びそれから得られる種子を提供する。本発明はまた、他の実施の形態において、上記の特定条件で栽培されたマメ科植物の種子又はその破砕物若しくは抽出物を、例えば、アスコルビン酸、システイン、シスチン、ピルビン酸、ＮＡＤＨ、乳酸、グルタミン酸、ニコチン酸（ナイアシンとも呼ばれる）、芳香族アミノ酸（トリプトファン、チロシン、フェニルアラニン）からなる群から選択される少なくとも１種の物質の供給源として使用して、食品、動物用飼料、医薬、化粧品、その他の工業製品及びこれら製品のための原料などの組成物を製造する方法を提供する。
ここで、本明細書中「実生」とは、種子植物の種子から発芽した幼植物であって子葉を残存している植物体を指し、「実生時期を経過後」とは、子葉を失い普通葉を有する時期を指す。また、本明細書中「花芽」とは、栄養成長を行なってきた成長点が生殖生長を行なう成長点に分化したもの、つまり花、花序の原基を意味し、「蕾」とは、花芽が発育し開花に近づいた状態のものを意味する。
なお、花芽形成の有無は、成長点のオートラジオグラフィーを撮ったり、細胞分裂像の変化をみることによって決定することができる。もっとも、栽培植物の多くについては、既に花芽形成時期、即ち生殖分化開始時期について知られているので（例えば、非特許文献８には、大豆の花芽分化は開花前２０日頃に行なわれるとある）、実用レベルでは、それに従えばよい。
また、１個体中の個々の花芽、蕾、花で見た場合その形成時期や開花時期は異なり、１個体で、花芽形成前の段階、花芽形成の段階、蕾形成の段階、及び開花の段階の内の２以上が混在し得る点には留意が必要である。本明細書で「開花前」、「蕾が形成される前」及び「花芽形成」という用語を用いる場合、特に言及がない限り、少なくとも１つの花が開花前であれば「開花前」とし、少なくとも１つの蕾が形成される前であれば「蕾が形成される前」とし、少なくとも１つの花芽が形成されれば「花芽形成」に該当するものとする。
本願明細書中「莢が充実する」とは、莢がその中にある種子によって十分に膨らんでいる状態を意味する。また、本明細書「莢が充実するまで」とは、少なくとも１つの莢が充実するまでを意味するが、本発明の方法による効果をより確実にする点では、γ線の照射を殆ど（８０％以上、好ましくは９０％以上）の莢が充実するまで行うことが好ましい。
また、本明細書中、「種子」とは、完熟の種子のみならず、未熟の種子をも含む。このような未熟の種子は、日本などで食用とされている。
また、本明細書中、「種子」とは、完熟の種子のみならず、未熟の種子をも含む。このような未熟の種子は、日本などで食用とされている。
また、本明細書において、線量率及び総線量は、線源（放射性物質）から放出されたガンマ線により直接又は間接的に空気を電離する能力を測定した空気吸収線量（Ｇｙ）から算出された値である。ガンマ線の線量及び線量率は、線源の核種、放射能、線源からの距離等から規定され、熱ルミネセンス線量計（ＴＬＤ）で測定した。より具体的には、γフィールド内で線源（６０Ｃｏ）から１０ｍ間隔毎、地上１ｍで熱ルミネセンス線量計（ＴＬＤ）で測ったのち、それをもとに回帰式：ｌｏｇ１０Ｙ（Ｇｙ／ｈ）＝Ａ＋Ｂ×ｌｏｇ１０Ｘ（ｍ）（式中、Ｙは検査日の１時間当たりの線量率であり、Ｘは線源からの距離である）を求めてＡ，Ｂを算出した。照射の際には、線源からの距離をこの回帰式に当て嵌め１時間当たりの線量率（Ｇｙ／ｈ）を算出し、これをもとに１日の線量率（後述する実施例ではＧｙ／８ｈを１日の線量率（Ｇｙ／ｄａｙ）とした）を算出した。総線量は、１日の線量率（Ｇｙ／ｄａｙ）×照射した日数により求めた。測定日からの減衰を考慮して、検査日の１時間当たりの線量率（Ｙ）は、（Ｙ）×（１／２）ｔ／Ｔ（Ｔは線源の半減期であり、ｔは検査日からの経過時間である）により補正した。
本発明の栽培方法によれば、通常の栽培方法による場合よりも大きな種子を収穫することができる。また、本発明の特に好ましい実施の形態によれば、大きな種子を収穫することができることに加え、個体当たりの莢数を増加することができ、個体当たりの種子の収穫量を増加することができる。また、本発明の栽培方法で得られたマメ科植物の種子は、特定の代謝物が増加しており、当該豊富化した物質を各種用途に利用することができる。
本発明による方法では、遺伝子工学的手法による食品の安全性の問題や植物の多様性確保の問題などを生じさせることなく、種子の収穫量を増加したり特定代謝物質の豊富化を達成することができる。また、従来行なわれてきた品種改良技術では、品種改良に非常に大きな労力や長い時間を要していたが、本発明は、このような障壁を取り除き簡易な方法で増産や改良を可能とする。
本発明による方法では、遺伝子工学的手法による食品の安全性の問題や植物の多様性確保の問題などを生じさせることなく、種子の収穫量を増加したり特定代謝物質の豊富化を達成することができる。また、従来行なわれてきた品種改良技術では、品種改良に非常に大きな労力や長い時間を要していたが、本発明は、このような障壁を取り除き簡易な方法で増産や改良を可能とする。
以下に本発明の実施の形態を説明するが、本発明はその本質に反しない限り他の実施の形態をも含むものである。
本発明では、実生時期を経過した後、植物体にγ線を照射する。
従来は、マメ科植物を含む各種植物で、種子、塊根、実生の段階で各種放射線を照射する多くの試みがなされていたが（非特許文献１）、分化が進んだ実生段階後でのγ線の照射がマメ科植物の種子の増産を生じさせるという報告はこれまでなされていない。また、このようなγ線の照射が種子中の特定の物質を増加させるとの報告もこれまでなされていない。従って、本発明は、実生後の段階でγ線を植物体に照射することでこれらの現象を生じさせるという知見を初めて提示する。
従来は、マメ科植物を含む各種植物で、種子、塊根、実生の段階で各種放射線を照射する多くの試みがなされていたが（非特許文献１）、分化が進んだ実生段階後でのγ線の照射がマメ科植物の種子の増産を生じさせるという報告はこれまでなされていない。また、このようなγ線の照射が種子中の特定の物質を増加させるとの報告もこれまでなされていない。従って、本発明は、実生後の段階でγ線を植物体に照射することでこれらの現象を生じさせるという知見を初めて提示する。
後述する実施例で述べる通り、今回、花芽形成の付近、より具体的には、幾つかの蕾を確認できた時点でγ線の照射を開始することで、マメ科植物の種子を増産させ得ることが実証された。従って、少なくとも花芽が形成された時点からγ線の照射を開始すれば、種子の増産が可能になると考えられ、ほとんどの苗が花芽を形成する直前又は直後の時期からγ線の照射を開始することが好ましい。但し、今回の試験によれば、ある程度蕾が確認された時点で行なっても増産が可能であったため蕾形成前又はその直後（数日以内）でγ線の照射を開始しても種子の増産が可能になると考えられる。また、種子の大きさは、開花期以降の日照、水及び栄養条件によって影響を受けることが知られており（非特許文献４から７、１１）、開花期以降のγ線照射は種子の発育に関連する遺伝子の発現に何らかの影響を及ぼすことが予想される。従って、種子を大きくする点からすれば、蕾形成後開花前にγ線の照射を開始しても良いかもしれない。
いずれにせよ、種子の収穫量を増大させるには、花芽形成の数日前後でγ線の照射を開始することが好ましく、遅くとも蕾が形成される前にγ線の照射を開始することが好ましい。
また、莢数の増加は、花芽分化の期間、蕾形成の期間、及び莢形成の期間のいずれかでの放射線照射が寄与すると考えられるので、莢数を増加する点からは、γ線の照射を少なくとも蕾が形成されるまで行うことが好ましく、多数の蕾（例えば、１個体当たり予想される総蕾数の５０％以上）が形成されるまで行うことがより好ましく、莢が形成されるまで行うことが特に好ましいであろう。勿論、莢が充実するまで行ってもよい。
大きな種子を形成する観点からは、莢の充実までの期間でγ線により更に種子の大型化が進む可能性があるので、γ線の照射を、少なくとも莢の中の種子が膨らみ始めるまで行うことが好ましく、数個から１０個程度の莢が膨らみ始めるまで行うことがより好ましく、少なくとも１つの莢が充実するまで行うことが更に好ましく、総ての莢の内８０％以上の莢が充実するまで行うことが特に好ましいであろう。
大きな種子を形成する観点からは、莢の充実までの期間でγ線により更に種子の大型化が進む可能性があるので、γ線の照射を、少なくとも莢の中の種子が膨らみ始めるまで行うことが好ましく、数個から１０個程度の莢が膨らみ始めるまで行うことがより好ましく、少なくとも１つの莢が充実するまで行うことが更に好ましく、総ての莢の内８０％以上の莢が充実するまで行うことが特に好ましいであろう。
本発明では、その一の実施の形態において、上記所定の期間、植物体に、線量率０．０４〜０．４Ｇｙ／日で、好ましくは線量率０．０４〜０．３Ｇｙ／日で、より好ましくは線量率０．０５〜０．２５Ｇｙ／日でγ線を照射する。従来は、マメ科植物を含め様々な植物の種子等にγ線を照射してホルミシス効果に関する試験結果が報告されていたが、いずれも線量以外の詳細な条件は検討されておらず、その効果も様々であった（非特許文献１）。従って、この特定範囲の低線量率でのγ線の照射は、マメ科植物の種子を大きく（乾燥重量で１．３倍以上）するための明確かつ具体的な条件を初めて提示する。
本発明はまた、好ましい実施の形態において、形成される莢数も増大し、個体当たりのまめ収穫量が増大する条件を提示する。具体的には、上記所定の期間、植物体に、線量率０．０５〜０．０８Ｇｙ／日、好ましくは０．０５〜０．０７Ｇｙ／日のより狭い範囲の線量率でγ線を照射することで、形成される莢数も増大し、個体当たりの収穫量を増大することができる。このような条件は、従来知られておらず、マメ科植物の種子が大きくなり且つ形成される莢数が増大する明確な条件を初めて提示する。
本発明は更に、他の実施の形態において、得られる種子中の特定の物質を豊富化する条件を提示する。具体的には、上記所定の期間、植物体に、線量率０．０４〜０．４Ｇｙ／日で、好ましくは線量率０．０４〜０．３Ｇｙ／日で、より好ましくは線量率０．０５〜０．２５Ｇｙ／日でγ線を照射すると、得られるマメ科植物の種子中で、アスコルビン酸、システイン、シスチン、ピルビン酸、ＮＡＤＨ、乳酸、グルタミン酸、ニコチン酸、及び芳香族アミノ酸（トリプトファン、チロシン、フェニルアラニン）からなる群から選択される少なくとも１種の物質が非照射の場合に比べ豊富化されることが見出された。
より具体的には、上記所定の期間、植物体に、線量率０．１〜０．３Ｇｙ／日、好ましくは線量率０．１５〜０．２５Ｇｙ／日、より好ましくは線量率０．１８〜０．２３Ｇｙ／日でγ線を照射すると、得られるマメ科植物の種子中で、ピルビン酸、グルタミン酸、及びシステイン等が非照射の場合に比べ豊富化されることが見出された。
更には、上記所定の期間、植物体に、線量率０．０５〜０．０８Ｇｙ／日、好ましくは０．０５〜０．０７Ｇｙ／日の範囲でγ線を照射することで、ＮＡＤＨ、アスコルビン酸、ニコチン酸、システイン、シスチン、及び芳香族アミノ酸（トリプトファン、チロシン、フェニルアラニン）等が非照射の場合に比べ豊富化されることが見出された。
より具体的には、上記所定の期間、植物体に、線量率０．１〜０．３Ｇｙ／日、好ましくは線量率０．１５〜０．２５Ｇｙ／日、より好ましくは線量率０．１８〜０．２３Ｇｙ／日でγ線を照射すると、得られるマメ科植物の種子中で、ピルビン酸、グルタミン酸、及びシステイン等が非照射の場合に比べ豊富化されることが見出された。
更には、上記所定の期間、植物体に、線量率０．０５〜０．０８Ｇｙ／日、好ましくは０．０５〜０．０７Ｇｙ／日の範囲でγ線を照射することで、ＮＡＤＨ、アスコルビン酸、ニコチン酸、システイン、シスチン、及び芳香族アミノ酸（トリプトファン、チロシン、フェニルアラニン）等が非照射の場合に比べ豊富化されることが見出された。
γ線の照射は、連続的に行なってもよく断続的におこなってもよいが、できるだけ連続的に行なうことが好ましい。また、日を隔てて照射する場合には、照射を数日空けて行なうことができるが、２日以下とすることが好ましい。
また、照射日の合計は、好ましくは１０日以上、より好ましくは１５日以上、さらに好ましくは２０日以上、特に好ましくは２５日以上とする。
また、照射日の合計は、好ましくは１０日以上、より好ましくは１５日以上、さらに好ましくは２０日以上、特に好ましくは２５日以上とする。
γ線の総線量は、照射日の合計にも依存することになるが、０．５〜１０．０Ｇｙ程度とすることが好ましく、０．８〜６．０Ｇｙ程度とすることがより好ましく、１．０〜２．０Ｇｙ程度とすることが特に好ましい。また、線量率が０．０４〜０．４Ｇｙ／日、０．０４〜０．３Ｇｙ／日又は０．１〜０．３Ｇｙ／日である場合には、総線量は、０．５〜１０．０Ｇｙであることが好ましく、１．０〜５．０Ｇｙ程度であることがより好ましく、線量率が０．０５〜０．２５Ｇｙ／日である場合には、総線量は０．８〜６．０Ｇｙ程度であることが好ましく、線量率が０．０５〜０．０８Ｇｙ／日である場合には、総線量は１．０〜２．０Ｇｙ程度であることが好ましく、線量率が０．０６〜０．０８Ｇｙ／日である場合には、総線量は１．３〜２．０Ｇｙ程度であることが好ましい。
なお、１０Ｇｙ以下の総線量は、ジャガイモの発芽防止や殺菌処理に用いるもの（発芽抑制は０．０５〜０．１５ｋＧｙ程度であり、腐敗菌病原菌の殺菌は１〜７ｋＧｙであり、調味料又は食品素材の殺菌は１０〜５０ｋＧｙである）と比較して極めて低い線量域であり、本発明は、その実用化に対する障壁も低いものと思われる。
１日の照射時間は一般的には照射による有効性と単位時間当たりでの高レベルの照射を回避する観点から、用いる線量率に応じて決定することが好ましい。例えば、線量率０．０５〜０．０８Ｇｙ／日で照射する場合であれば、少なくとも２時間以上の照射時間が確保されれば足りると考えられ、これを超える線量率で照射する場合には、４時間以上とすることが好ましく、７時間以上とすることが特に好ましい。
γ線の線源については特に制限はなく、例えば６０Ｃｏ、１９２Ｉｒ、１６９Ｙｂ、１７０Ｔｍ、７５Ｓｅ、１２４Ｓｂ、１５３Ｇｄ及び１３７Ｃｓを挙げることができる。
本発明の方法は、少なくともマメ科の植物であれば適用可能と考えられ（非特許文献１も参照）、マメ科の植物には、例えば、ダイズ属、ヘラマメ属、エンドウ属などの植物が含まれる。中でも放射線に対してある程度の耐性を有すると考えられるダイズ属の植物が好ましい。
日本では、ダイズ、インゲン、ササゲ、エンドウ、ラッカセイ、フジマメ、ナタマメ、シカクマメ、１６ササゲ等の未熟な種子や若い莢をそのまま食用とする食習慣があり、ダイズの未熟な種子は「エダマメ」と称されて一般的に食されている。また、「エダマメ」として食するために開発されたダイズの品種には、例えば、奥原早生、白鳥、さやむすめ、ビアフレンド、白獅子等の早生品種；富貴、涼翠、三河島、錦秋、夕涼み、湯あがり娘、福獅子等の中早生若しくは中生品種；あきよし、とよしろめ等の晩生品種；中生光黒、丹波黒、祝黒、早生黒頭巾、快豆黒頭巾、濃姫等の黒豆品種；だだちゃ豆、黒埼茶豆、滝姫、福成等のちゃまめ品種がある。
また、完熟した種子は、日本では、豆腐、味噌、納豆等の加工食品、或いは植物油の原料として利用されており、世界的にも、植物油や家畜飼料の原料として広く利用され、一部では、バイオエネルギーとしての利用も試みられている。
本発明は、このようなマメ科の植物の利用に寄与するものと思われ、ダイズ属の植物、特にダイズの早生種への適用は有効と思われる（なお、早晩性に関わる遺伝子については非特許文献９、１０、１１参照）。
本発明の方法で得られるマメ科植物は、後述する実施例で実証する通り、非照射の同じ植物に対して、種子の増大や莢数の増大といった表現型の点で差異が見られる。また、非照射の同じ植物に対して、タンパクの発現等の点でも差異を有し、後述するキャピラリー電気泳動−飛行時間型質量分析（ＣＥ−ＴＯＦＭＳ）よる詳細な分析によれば、本発明の方法によりγ線を照射した植物は、デオキシチミジン５−一リン酸（ｄＴＭＰ、チミジル酸）、２−アミノアジピン酸、ＮＡＤＨ、４−メチル−２−オキソペンタン酸、チアプロリン、システイン（Ｃｙｓ）、ピペコリン酸、乳酸、アスコルビン酸、シスチン、Ｎ−アセチルメチオニン、トリプトファン（Ｔｒｐ）、Ｎ−アセチル−β−アラニン、ニコチン酸、フルクトース１，６−二リン酸、２−オキソイソ吉草酸、グリセロホスホコリン、チロシン（Ｔｙｒ）、５−オキソプロリン、ピルビン酸、Ｓ−アデノシルホモシステイン、セリン（Ｓｅｒ）−グルタミン酸（Ｇｌｕ）、ホスホエノールピルビン酸、グルタミン酸（Ｇｌｕ）、トレハロース−６−ホスフェート、メチオニン（Ｍｅｔ）、オフタルミン酸、ウリジン５−一リン酸（ＵＭＰ）、ＮＡＤＰ＋、トリメチルアミンＮ−オキシド等を含む少なくとも１つの物質が非照射の同じ植物に対して２倍以上増加している。またＴｙｒやＴｒｐと同じ芳香族アミノ酸であるフェニルアラニンも１．９倍となっていた。もっとも、このような相違は遺伝子そのものに違いが生じたことに由来するわけではなく、γ線によって関連遺伝子の発現が影響を受けたためと考えられる。
従って、本発明は、その一の実施の形態において、上記で詳述した方法で栽培された従来にない形質のマメ科植物、並びにこのようなマメ科植物から得られる種子をも対象とする。このようなマメ科植物、及び種子は、遺伝子変換植物による、生物の多様性の保全及び持続可能な利用に対する悪影響を懸念することなしに、効率的に食料若しくはエネルギー資源を提供する新たな手段となり得る。また、本発明の方法で得られるマメ科植物の種子は、上述した物質、特に、ＮＡＤＨ、アスコルビン酸、シスチン、ピルビン酸、システイン、ニコチン酸、乳酸、グルタミン酸及び芳香族アミノ酸（トリプトファン、チロシン、フェニルアラニン等）からなる群から選択される少なくとも１種の物質が豊富に含まれているため、得られた種子、又はその破砕物若しくは抽出物を、これら豊富化された物質の少なくとも１種の供給源として、食品、動物用飼料、医薬品、化粧品又はこれら製品のための原料などの各種組成物を製造するために利用することができる。
より具体的には、線量率０．１〜０．３Ｇｙ／日（総線量、照射時期は既に述べた通り）でγ線を照射する工程を含む他の実施の形態による方法で得られたマメ科植物の種子、又はその破砕物若しくは抽出物を、例えばピルビン酸、グルタミン酸、及びシステイン等の物質の供給源として、食品、動物用飼料、医薬品、化粧品等の各種工業製品又はこれら製品のための原料を製造するために利用することができる。
また、線量率０．０５〜０．０８Ｇｙ／日（総線量、照射時期は既に述べた通り）でγ線を照射する工程を含む更に他の実施の形態による方法で得られたマメ科植物の種子、又はその破砕物若しくは抽出物を、ＮＡＤＨ、アスコルビン酸、乳酸、ニコチン酸、システイン、シスチン、及び芳香族アミノ酸（トリプトファン、チロシン、フェニルアラニン）等の物質の供給源として、食品、動物用飼料、医薬品、化粧品等の各種工業製品又はこれら製品のための原料を製造するために利用することができる。
従って、本発明は、各実施の形態による方法で得られたマメ科植物の種子、又はその破砕物若しくは抽出物を含む、食品、動物用飼料、医薬品、化粧品又はその他の工業製品、或いはこれら製品のための原料をも提供する。各製品及び原料の製造方法については特に制限は無く、得られた種子を、必要に応じて、慣用若しくは既知の方法で破砕若しくは抽出し、他の成分へ添加若しくは混合すればよい。
また、線量率０．０５〜０．０８Ｇｙ／日（総線量、照射時期は既に述べた通り）でγ線を照射する工程を含む更に他の実施の形態による方法で得られたマメ科植物の種子、又はその破砕物若しくは抽出物を、ＮＡＤＨ、アスコルビン酸、乳酸、ニコチン酸、システイン、シスチン、及び芳香族アミノ酸（トリプトファン、チロシン、フェニルアラニン）等の物質の供給源として、食品、動物用飼料、医薬品、化粧品等の各種工業製品又はこれら製品のための原料を製造するために利用することができる。
従って、本発明は、各実施の形態による方法で得られたマメ科植物の種子、又はその破砕物若しくは抽出物を含む、食品、動物用飼料、医薬品、化粧品又はその他の工業製品、或いはこれら製品のための原料をも提供する。各製品及び原料の製造方法については特に制限は無く、得られた種子を、必要に応じて、慣用若しくは既知の方法で破砕若しくは抽出し、他の成分へ添加若しくは混合すればよい。
以下、実施例により本発明をより詳細に説明する。但し、本発明は、実施例により限定されるべきものではない。
１．２００８年度の試験
エダマメ用ダイズの早生種である奥原早生（サカタ種苗）を試験に使用した。一晩水中に浸したエダマメ種子を、２００８年５月１４日（１日目）に、６号ポット（鉢）中の有機培養土（Ｐｌａｎｔａｔｉｏｎ Ｉｗａｍｏｔｏ社製）内に播き、鳥害を避けるために８日間屋内で栽培した。種子は、５日目頃に発芽し、９日目には地上部から４〜１０ｃｍの大きさとなった。９日目に屋外（５階建て建物屋上）に出し栽培を続け、４２日目（２００８年６月２４日）に幾つかの苗で蕾が数個形成されていることを確認した。この時点で、ポット（鉢）当たり１〜３本の苗がある複数のポット（鉢）を、コントロールと３つの照射群に、それぞれ１０本程度の苗が割り当てられ、丈の分布が各群でおおよそ揃うようにして振り分けた。３つの照射群をポットのままで、４２日目から、約８２ＴＢｑの６０Ｃｏを線源とするγ線をそれぞれ０．０２Ｇｙ／ｄａｙ、０．０６Ｇｙ／ｄａｙ及び０．２Ｇｙ／ｄａｙの線量率で照射するガンマ線フィールド（茨城県常陸大宮市に所在）に設置した。線量率はγフィールド内で線源（６０Ｃｏ）から１０ｍ間隔毎、地上１ｍで熱ルミネセンス線量計（ＴＬＤ）で測ったのち、それをもとに回帰式（ｌｏｇ１０Ｙ（Ｇｙ／ｈ）＝Ａ＋Ｂ×ｌｏｇ１０Ｘ（ｍ））を描きＡ、Ｂを算出し、距離に応じた線量率（Ｇｙ／ｈ）を出し、１日の線量率（この実施例ではＧｙ／８ｈを１日の線量率（Ｇｙ／ｄａｙ）として表記した）とした。測定日からの減衰は（Ｙ）×（１／２）ｔ／Ｔにより補正し距離を決定した。（Ｙは検査日の線量率であり、Ｘは線源からの距離であり、Ｔは線源の半減期であり、ｔは検査日からの経過時間である）。
エダマメ用ダイズの早生種である奥原早生（サカタ種苗）を試験に使用した。一晩水中に浸したエダマメ種子を、２００８年５月１４日（１日目）に、６号ポット（鉢）中の有機培養土（Ｐｌａｎｔａｔｉｏｎ Ｉｗａｍｏｔｏ社製）内に播き、鳥害を避けるために８日間屋内で栽培した。種子は、５日目頃に発芽し、９日目には地上部から４〜１０ｃｍの大きさとなった。９日目に屋外（５階建て建物屋上）に出し栽培を続け、４２日目（２００８年６月２４日）に幾つかの苗で蕾が数個形成されていることを確認した。この時点で、ポット（鉢）当たり１〜３本の苗がある複数のポット（鉢）を、コントロールと３つの照射群に、それぞれ１０本程度の苗が割り当てられ、丈の分布が各群でおおよそ揃うようにして振り分けた。３つの照射群をポットのままで、４２日目から、約８２ＴＢｑの６０Ｃｏを線源とするγ線をそれぞれ０．０２Ｇｙ／ｄａｙ、０．０６Ｇｙ／ｄａｙ及び０．２Ｇｙ／ｄａｙの線量率で照射するガンマ線フィールド（茨城県常陸大宮市に所在）に設置した。線量率はγフィールド内で線源（６０Ｃｏ）から１０ｍ間隔毎、地上１ｍで熱ルミネセンス線量計（ＴＬＤ）で測ったのち、それをもとに回帰式（ｌｏｇ１０Ｙ（Ｇｙ／ｈ）＝Ａ＋Ｂ×ｌｏｇ１０Ｘ（ｍ））を描きＡ、Ｂを算出し、距離に応じた線量率（Ｇｙ／ｈ）を出し、１日の線量率（この実施例ではＧｙ／８ｈを１日の線量率（Ｇｙ／ｄａｙ）として表記した）とした。測定日からの減衰は（Ｙ）×（１／２）ｔ／Ｔにより補正し距離を決定した。（Ｙは検査日の線量率であり、Ｘは線源からの距離であり、Ｔは線源の半減期であり、ｔは検査日からの経過時間である）。
設置後、２００８年６月２８日、６月２９日、７月５日、７月６日、７月１２日、７月１３日、７月１６日、７月１９日、７月２０日、７月２１日、７月２６日、７月２７日を除き、１日８時間γ線を照射した。各群の植物体は、５０日目頃（照射期日合計７日目頃）には殆どの植物体で幾つかの開花が認められ、６０日目頃（照射期日合計１４日目頃）には殆どの植物体で莢が形成され、照射期日合計２５日目（２００８年７月３０日）で殆どの莢が充実した。この時点で照射を中止した。総線量は各照射線群でそれぞれ０．５、１．５及び５Ｇｙであった。対照群は４２日目から、ガンマ線フィールドの外にポットのまま設置し、そこで２００８年７月３１日まで栽培した。またもう一つの対照群を、ガンマ線フィールドから離れた千葉でポットのまま設置し、そこで２００８年７月３１日まで栽培した。
栽培期間を通じて各群の灌水は２〜３回／週で行なった。
照射期間終了した日の翌日（２００８年７月３１日、種子を播いてから７９日目）に、植物体から莢を収穫した。なお、虫害などにより著しく枯れた個体又は枯死した個体は除いた。
栽培期間を通じて各群の灌水は２〜３回／週で行なった。
照射期間終了した日の翌日（２００８年７月３１日、種子を播いてから７９日目）に、植物体から莢を収穫した。なお、虫害などにより著しく枯れた個体又は枯死した個体は除いた。
２．２００９年度の試験
同様の試験を翌年の２００９年にも行った。種蒔を、２００９年５月１４日（１日目）に行い、４３日目（２００９年６月２５日）でγ線照射を開始し、その後、２００９年６月２７日、６月２８日、７月４日、７月５日、７月１１日、７月１２日、７月１５日、７月１８日、７月１９日、７月２０日、７月２５日、７月２６日を除き、１日８時間γ線を照射した。各群の植物体は、２００８年度と同様の経過で生育し照射期日合計２５日目（２００９年７月３１日）で殆どの莢が充実した。この時点で照射を中止した。その後３日目（２００９年８月３日、種子を播いて８２日目）に莢を収穫した。なお、対照群はフィールド外にポットを設置した群のみとした。
同様の試験を翌年の２００９年にも行った。種蒔を、２００９年５月１４日（１日目）に行い、４３日目（２００９年６月２５日）でγ線照射を開始し、その後、２００９年６月２７日、６月２８日、７月４日、７月５日、７月１１日、７月１２日、７月１５日、７月１８日、７月１９日、７月２０日、７月２５日、７月２６日を除き、１日８時間γ線を照射した。各群の植物体は、２００８年度と同様の経過で生育し照射期日合計２５日目（２００９年７月３１日）で殆どの莢が充実した。この時点で照射を中止した。その後３日目（２００９年８月３日、種子を播いて８２日目）に莢を収穫した。なお、対照群はフィールド外にポットを設置した群のみとした。
３．試験結果
３−１．莢の数、莢当たりの平均重量、総莢重量及び種子の平均重量
得られた莢の数、莢当たりの平均重量、総莢重量及び種子の平均重量を各群について計測した。莢の数、莢当たりの平均重量及び総莢重量の試験結果並びにマメの大きさは図１〜８にも示した。
３−１．莢の数、莢当たりの平均重量、総莢重量及び種子の平均重量
得られた莢の数、莢当たりの平均重量、総莢重量及び種子の平均重量を各群について計測した。莢の数、莢当たりの平均重量及び総莢重量の試験結果並びにマメの大きさは図１〜８にも示した。
図１は、２００８年に行なった試験の各群の莢当たりの平均重量を示し、図２は、２００８年に行なった試験の各群の個体当たりの莢数を示し、図３は、個体当たりの総莢重量を示す。また、図４は、２００９年に行なった試験の各群の莢当たりの平均重量を示し、図５は、２００９年に行なった試験の各群の個体当たりの莢数を示す（なお、２００９年は天候不順等により個体損傷が多かった（Ｎ＝４−９））。また、図６は、両年に行なった試験の各群の莢当たりの平均重量を示し、図７は、両年に行なった試験の各群の個体当たりの莢数を示す。また、図８は、２００８年に行なった試験の各群から収穫されたマメを示す写真である。
図１、図４、図６及び図８に示す通り、莢当たりの平均重量は０．０６Ｇｙ／ｄａｙ線量率（総線量１．５Ｇｙ）の群、及び０．２Ｇｙ／ｄａｙの線量率（総線量５Ｇｙ）の群で増加が認められた。種子の乾燥重量の平均は、対照群（ｎ＝１０５）、０．０２Ｇｙ／ｄａｙ線量率（総線量１．５Ｇｙ）の群（ｎ＝６４）、０．０６Ｇｙ／ｄａｙ線量率（総線量１．５Ｇｙ）の群（ｎ＝１３２）、０．２Ｇｙ／ｄａｙの線量率（総線量５Ｇｙ）の群（ｎ＝１１７）で、それぞれ種子１個当たり０．１１ｇ、０．１０８ｇ、０．１４６ｇ、０．１５５ｇであり（２００８年度に収穫した種子による）、対照群の種子の乾燥重量の平均に対する、０．０６Ｇｙ／ｄａｙ線量率（総線量１．５Ｇｙ）の群の種子の乾燥重量、及び０．２Ｇｙ／ｄａｙの線量率（総線量５Ｇｙ）の群の種子の乾燥重量はそれぞれ１．３及び１．４４倍であった。
また、図２、図５及び図７に示す通り、個体当たりの莢の数は、０．０６Ｇｙ／ｄａｙ線量率（総線量１．５Ｇｙ）の群で、対照群に対して有意に増加したが、０．０２Ｇｙ／ｄａｙ線量率（総線量０．５Ｇｙ）の群及び０．２Ｇｙ／ｄａｙの線量率（総線量５Ｇｙ）の群は、対照群に対する有意差が認められなかった。また、図３に示す通り、０．０６Ｇｙ／ｄａｙ線量率（総線量１．５Ｇｙ）の群で、個体あたりの莢総重量が、対照群に対して顕著に増加した。
３−２．２次元電気泳動法によるタンパク質の発現パターンの解析
（Ａ）抽出
２００８年に収穫された対照群、０．２Ｇｙ／ｄａｙの線量率（総線量５Ｇｙ）の群から得られた種子を、緩衝液（０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ ７．５ １ｍＭ ＥＤＴＡ，１ｍＭ ＰＭＳＦ，１ｍＭ ＤＴＴ）に３％（ｗ／ｖ）ＰＶＰ（ポリビニルピロリドン）を加えた溶液に入れ、液体窒素中で破砕し、１ｇのサンプルに対して１０ｍｌの緩衝液（０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ ７．５ １ｍＭ ＥＤＴＡ、１ｍＭ ＰＭＳＦ、１ｍＭ ＤＴＴ）を加えて遠心した（１８８００ｇ、３０ｍｉｎ、４℃）。
得られたペレットを顆粒性画分のタンパク質採取のため緩衝液（１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ８．５、４％ＳＤＳ，２％メルカプトエタノール、２０％グリセロール、２ｍＭ ＰＭＳＦ）に入れ、沸騰水中に３分入れた。冷却後、遠心（１８８００ｇ、１０ｍｉｎ、室温）し、上清をとり０．２２μｍＰＶＤＦメンブレンフィルターをとおし、アセトン抽出にかけた（８倍体積量のアセトン中、−２０℃、一晩）。
アセトン抽出にかけたサンプルを遠心（１８８００ｇ、１０ｍｉｎ、４℃）し、得られたペレットを８０％アセトンで再攪拌し、溶解液を−２０℃に９０ｍｉｎ置き、さらに遠心（１８８００ｇ，１０ｍｉｎ，４℃）して、得られたペレットを溶解バッファー（５Ｍ Ｕｒｅａ，２Ｍチオ尿素，２％ＣＨＡＰＳ，２％ＳＢ３−１０，１％ＤＴＴ）に溶解した。最後に溶解液を超遠心（１００，０００ｇ，＋２０℃、１ｈ）にかけ、得られた上清を顆粒性画分サンプルとして電気泳動に使用した。
（Ａ）抽出
２００８年に収穫された対照群、０．２Ｇｙ／ｄａｙの線量率（総線量５Ｇｙ）の群から得られた種子を、緩衝液（０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ ７．５ １ｍＭ ＥＤＴＡ，１ｍＭ ＰＭＳＦ，１ｍＭ ＤＴＴ）に３％（ｗ／ｖ）ＰＶＰ（ポリビニルピロリドン）を加えた溶液に入れ、液体窒素中で破砕し、１ｇのサンプルに対して１０ｍｌの緩衝液（０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ ７．５ １ｍＭ ＥＤＴＡ、１ｍＭ ＰＭＳＦ、１ｍＭ ＤＴＴ）を加えて遠心した（１８８００ｇ、３０ｍｉｎ、４℃）。
得られたペレットを顆粒性画分のタンパク質採取のため緩衝液（１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ８．５、４％ＳＤＳ，２％メルカプトエタノール、２０％グリセロール、２ｍＭ ＰＭＳＦ）に入れ、沸騰水中に３分入れた。冷却後、遠心（１８８００ｇ、１０ｍｉｎ、室温）し、上清をとり０．２２μｍＰＶＤＦメンブレンフィルターをとおし、アセトン抽出にかけた（８倍体積量のアセトン中、−２０℃、一晩）。
アセトン抽出にかけたサンプルを遠心（１８８００ｇ、１０ｍｉｎ、４℃）し、得られたペレットを８０％アセトンで再攪拌し、溶解液を−２０℃に９０ｍｉｎ置き、さらに遠心（１８８００ｇ，１０ｍｉｎ，４℃）して、得られたペレットを溶解バッファー（５Ｍ Ｕｒｅａ，２Ｍチオ尿素，２％ＣＨＡＰＳ，２％ＳＢ３−１０，１％ＤＴＴ）に溶解した。最後に溶解液を超遠心（１００，０００ｇ，＋２０℃、１ｈ）にかけ、得られた上清を顆粒性画分サンプルとして電気泳動に使用した。
（Ｂ）２次元電気泳動
７０μｇのタンパク質を１次元目はｐＨ４−７（１３ｃｍ）のＩｍｍｏｂｉｌｉｎｅ ＤｒｙＳｔｒｉｐ（ＧＥヘルスケア社）で電気泳動を行い、その後１２％ＳＤＳ−ＰＡＧＥで２次元目の電気泳動を行った。泳動終了後、ＳＹＰＲＯ Ｒｕｂｙ染色（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）し、ＦＬＡ−５１００イメージングアナライザー（富士フィルム）で画像化した。
７０μｇのタンパク質を１次元目はｐＨ４−７（１３ｃｍ）のＩｍｍｏｂｉｌｉｎｅ ＤｒｙＳｔｒｉｐ（ＧＥヘルスケア社）で電気泳動を行い、その後１２％ＳＤＳ−ＰＡＧＥで２次元目の電気泳動を行った。泳動終了後、ＳＹＰＲＯ Ｒｕｂｙ染色（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）し、ＦＬＡ−５１００イメージングアナライザー（富士フィルム）で画像化した。
（Ｃ）結果
図９に示す通り、主要なタンパク質の発現パターンは対照群と照射群で類似しているが幾つかのタンパク質（図中にマークした）で顕著な増減が認められた。このことは照射され栽培されたマメは対照群と同じ時期に収穫したものであるが質的に変化していることを示している。
図９に示す通り、主要なタンパク質の発現パターンは対照群と照射群で類似しているが幾つかのタンパク質（図中にマークした）で顕著な増減が認められた。このことは照射され栽培されたマメは対照群と同じ時期に収穫したものであるが質的に変化していることを示している。
３−３．キャピラリー電気泳動−飛行時間型質量分析計（ＣＥ−ＴＯＦＭＳ）によるメタボローム解析
（Ａ）前処理
２００９年に収穫された対照群、０．０６Ｇｙ／ｄａｙ線量率（総線量１．５Ｇｙ）の群、及び０．２Ｇｙ／ｄａｙの線量率（総線量５Ｇｙ）の群から得られた種子１００ｍｇあたり、内部標準物質の終濃度を５０μＭとしたメタノール溶液を５００μＬ加え、破砕用チューブに入れ液体窒素により凍結し、ビーズ式細胞破砕装置（トミー精工社製、ＭＳ−１００Ｒ）を用いて破砕（４，０００ｒｐｍ，６０秒×５回）し代謝物質の抽出をした。これを５００μＬ遠沈管に移し取り、５００μＬのクロロホルム及び２００μＬのＭｉｌｌｉ−Ｑ水を加え撹拌し、遠心分離（２，３００×ｇ，４°Ｃ，５分）を行った。遠心分離後、水相を限外ろ過チューブ（ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ，ウルトラフリーＭＣ ＵＦＣ３ ＬＣＣ遠心式フィルターユニット ５ ＫＤａ）に２００μＬ×２本移し取った。これを遠心（９，１００×ｇ，４°Ｃ，１２０分）し、限外ろ過処理を行った。ろ液を乾固させ、再び５０μＬのＭｉｌｌｉ−Ｑ水に溶解して測定に供した。得られたピーク強度、形状から判断して、カチオンモードでの測定には１０倍、アニオンモードでの測定には２倍に希釈した試料を用いた。
（Ａ）前処理
２００９年に収穫された対照群、０．０６Ｇｙ／ｄａｙ線量率（総線量１．５Ｇｙ）の群、及び０．２Ｇｙ／ｄａｙの線量率（総線量５Ｇｙ）の群から得られた種子１００ｍｇあたり、内部標準物質の終濃度を５０μＭとしたメタノール溶液を５００μＬ加え、破砕用チューブに入れ液体窒素により凍結し、ビーズ式細胞破砕装置（トミー精工社製、ＭＳ−１００Ｒ）を用いて破砕（４，０００ｒｐｍ，６０秒×５回）し代謝物質の抽出をした。これを５００μＬ遠沈管に移し取り、５００μＬのクロロホルム及び２００μＬのＭｉｌｌｉ−Ｑ水を加え撹拌し、遠心分離（２，３００×ｇ，４°Ｃ，５分）を行った。遠心分離後、水相を限外ろ過チューブ（ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ，ウルトラフリーＭＣ ＵＦＣ３ ＬＣＣ遠心式フィルターユニット ５ ＫＤａ）に２００μＬ×２本移し取った。これを遠心（９，１００×ｇ，４°Ｃ，１２０分）し、限外ろ過処理を行った。ろ液を乾固させ、再び５０μＬのＭｉｌｌｉ−Ｑ水に溶解して測定に供した。得られたピーク強度、形状から判断して、カチオンモードでの測定には１０倍、アニオンモードでの測定には２倍に希釈した試料を用いた。
（Ｂ）測定
カチオンモード及びアニオンモードの測定を以下に示す条件で行った。なお、以下の文献を参照した。
１） T.Soga,D.N.Heiger: Amino acid analysis by capillary electrophoresis electrospray ionization mass spectrometry.Anal.Chem.72: 1236-1241,2000.
２） T.Soga,Y.Ueno,H.Naraoka,Y.Ohashi,M.Tomita et al.: Simultaneous determination of anionic intermediates for Bacillus subtilis metabolic pathways by capillary electrophoresis electrospray ionization mass spectrometry.Anal.Chem.74: 2233-2239,2002.
３） T.Soga,Y.Ohashi,Y.Ueno,H.Naraoka,M.Tomita et al.: Quantitative metabolome analysis using capillary electrophoresis mass spectrometry.J.Proteome Res. 2: 488-494,2003.
カチオンモード及びアニオンモードの測定を以下に示す条件で行った。なお、以下の文献を参照した。
１） T.Soga,D.N.Heiger: Amino acid analysis by capillary electrophoresis electrospray ionization mass spectrometry.Anal.Chem.72: 1236-1241,2000.
２） T.Soga,Y.Ueno,H.Naraoka,Y.Ohashi,M.Tomita et al.: Simultaneous determination of anionic intermediates for Bacillus subtilis metabolic pathways by capillary electrophoresis electrospray ionization mass spectrometry.Anal.Chem.74: 2233-2239,2002.
３） T.Soga,Y.Ohashi,Y.Ueno,H.Naraoka,M.Tomita et al.: Quantitative metabolome analysis using capillary electrophoresis mass spectrometry.J.Proteome Res. 2: 488-494,2003.
（Ｂ−１）陽イオン性代謝物質（カチオンモード）
装置：Ａｇｉｌｅｎｔ ＣＥ−ＴＯＦＭＳ ｓｙｓｔｅｍ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）３号機
キャピラリー：石英ガラスキャピラリー ｉ．ｄ．５０μｍ×８０ｃｍ
測定条件：
泳動バッファー：カチオンバッファー溶液（ｐ／ｎ：Ｈ３３０１−１００１）
リンスバッファー：カチオンバッファー溶液（ｐ／ｎ：Ｈ３３０１−１００１）
サンプルインジェクション：加圧インジェクション ５０ｍｂａｒ，１０ｓｅｃ
ＣＥ 電圧：Ｐｏｓｉｔｉｖｅ，２７ｋＶ
ＭＳイオン化：ＥＳＩ Ｐｏｓｉｔｉｖｅ
ＭＳ キャピラリー電圧：４，０００Ｖ
ＭＳ スキャンレンジ：ｍ／ｚ ５０−１，０００
シース液：ＨＭＴ Ｓｈｅａｔｈ Ｌｉｑｕｉｄ（ｐ／ｎ：Ｈ３３０１−１０２０）
装置：Ａｇｉｌｅｎｔ ＣＥ−ＴＯＦＭＳ ｓｙｓｔｅｍ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）３号機
キャピラリー：石英ガラスキャピラリー ｉ．ｄ．５０μｍ×８０ｃｍ
測定条件：
泳動バッファー：カチオンバッファー溶液（ｐ／ｎ：Ｈ３３０１−１００１）
リンスバッファー：カチオンバッファー溶液（ｐ／ｎ：Ｈ３３０１−１００１）
サンプルインジェクション：加圧インジェクション ５０ｍｂａｒ，１０ｓｅｃ
ＣＥ 電圧：Ｐｏｓｉｔｉｖｅ，２７ｋＶ
ＭＳイオン化：ＥＳＩ Ｐｏｓｉｔｉｖｅ
ＭＳ キャピラリー電圧：４，０００Ｖ
ＭＳ スキャンレンジ：ｍ／ｚ ５０−１，０００
シース液：ＨＭＴ Ｓｈｅａｔｈ Ｌｉｑｕｉｄ（ｐ／ｎ：Ｈ３３０１−１０２０）
（Ｂ−２）陰イオン性代謝物質（アニオンモード）
装置：Ａｇｉｌｅｎｔ ＣＥ−ＴＯＦＭＳ ｓｙｓｔｅｍ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）５号機
キャピラリー：石英ガラスキャピラリー ｉ．ｄ．５０μｍ×８０ｃｍ
測定条件：
泳動バッファー：アニオンバッファー溶液（ｐ／ｎ：Ｈ３３０２−１０２１）
リンスバッファー：アニオンバッファー溶液（ｐ／ｎ：Ｈ３３０２−１０２２）
サンプルインジェクション：加圧インジェクション ５０ｍｂａｒ，２５ｓｅｃ
ＣＥ電圧：Ｐｏｓｉｔｉｖｅ，３０ｋＶ
ＭＳイオン化：ＥＳＩ Ｎｅｇａｔｉｖｅ
ＭＳ キャピラリー電圧：３，５００Ｖ
ＭＳスキャンレンジ：ｍ／ｚ ５０−１，０００
シース液：ＨＭＴ Ｓｈｅａｔｈ Ｌｉｑｕｉｄ（ｐ／ｎ：Ｈ３３０１−１０２０）
装置：Ａｇｉｌｅｎｔ ＣＥ−ＴＯＦＭＳ ｓｙｓｔｅｍ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）５号機
キャピラリー：石英ガラスキャピラリー ｉ．ｄ．５０μｍ×８０ｃｍ
測定条件：
泳動バッファー：アニオンバッファー溶液（ｐ／ｎ：Ｈ３３０２−１０２１）
リンスバッファー：アニオンバッファー溶液（ｐ／ｎ：Ｈ３３０２−１０２２）
サンプルインジェクション：加圧インジェクション ５０ｍｂａｒ，２５ｓｅｃ
ＣＥ電圧：Ｐｏｓｉｔｉｖｅ，３０ｋＶ
ＭＳイオン化：ＥＳＩ Ｎｅｇａｔｉｖｅ
ＭＳ キャピラリー電圧：３，５００Ｖ
ＭＳスキャンレンジ：ｍ／ｚ ５０−１，０００
シース液：ＨＭＴ Ｓｈｅａｔｈ Ｌｉｑｕｉｄ（ｐ／ｎ：Ｈ３３０１−１０２０）
（Ｃ）データ処理及び解析
（Ｃ−１）データ処理
ＣＥ−ＴＯＦＭＳで検出されたピークは、自動積分ソフトウェアのＭａｓｔｅｒＨａｎｄｓ ｖｅｒ．１．０．６．１２（慶應義塾大学開発）を用いて自動抽出し、ピーク情報として質量電荷比（ｍ／ｚ）、泳動時間（Ｍｉｇｒａｔｉｏｎ ｔｉｍｅ：ＭＴ）とピーク面積値を得た。得られたピーク面積値は下記の式を用いて相対面積値に変換した。
次に、ｍ／ｚとＭＴの値をもとに、各試料間のピークの照合・整列化を行った。このとき、ピーク以外のノイズは削除した。また、これらのデータにはＮａ＋やＫ＋などのアダクトイオン及び、脱水、脱アンモニウムなどのフラグメントイオンが含まれているので、これらの分子量関連イオンを削除した。しかし、物質特異的なアダクトやフラグメントも存在するため、すべてを精査することはできなかった。
検出ピークの相対面積値の閾値はカチオンモードでは1.2E-01であり、アニオンモードではおよそ1.8E-02である。ピーク強度が飽和したAla, Asn,g-Aminobutyric acidについては13Cのデータをもとに12Cに換算した相対面積値を示した。
（Ｃ−１）データ処理
ＣＥ−ＴＯＦＭＳで検出されたピークは、自動積分ソフトウェアのＭａｓｔｅｒＨａｎｄｓ ｖｅｒ．１．０．６．１２（慶應義塾大学開発）を用いて自動抽出し、ピーク情報として質量電荷比（ｍ／ｚ）、泳動時間（Ｍｉｇｒａｔｉｏｎ ｔｉｍｅ：ＭＴ）とピーク面積値を得た。得られたピーク面積値は下記の式を用いて相対面積値に変換した。
次に、ｍ／ｚとＭＴの値をもとに、各試料間のピークの照合・整列化を行った。このとき、ピーク以外のノイズは削除した。また、これらのデータにはＮａ＋やＫ＋などのアダクトイオン及び、脱水、脱アンモニウムなどのフラグメントイオンが含まれているので、これらの分子量関連イオンを削除した。しかし、物質特異的なアダクトやフラグメントも存在するため、すべてを精査することはできなかった。
検出ピークの相対面積値の閾値はカチオンモードでは1.2E-01であり、アニオンモードではおよそ1.8E-02である。ピーク強度が飽和したAla, Asn,g-Aminobutyric acidについては13Cのデータをもとに12Cに換算した相対面積値を示した。
（Ｃ−２）候補代謝物質検索
検出されたピークに対してｍ／ｚとＭＴの値をもとにヒューマン・メタボローム・テクノロジーズ株式会社（ＨＭＴ）代謝物質データベースと照合し、検索を行った。検索のための許容誤差はＭＴで±０．５ｍｉｎ、ｍ／ｚでは±１０ｐｐｍとした（質量誤差は以下の式により求めた）。
質量誤差（ｐｐｍ）＝（実測値−理論値）／実測値×１０６
検出されたピークに対してｍ／ｚとＭＴの値をもとにヒューマン・メタボローム・テクノロジーズ株式会社（ＨＭＴ）代謝物質データベースと照合し、検索を行った。検索のための許容誤差はＭＴで±０．５ｍｉｎ、ｍ／ｚでは±１０ｐｐｍとした（質量誤差は以下の式により求めた）。
質量誤差（ｐｐｍ）＝（実測値−理論値）／実測値×１０６
（Ｃ−３）代謝経路の描画
検索された候補代謝物質のデータを、代謝経路マップへ描画した。代謝経路の描画には、ＶＡＮＴＥＤ（Visualization and Analysis of Networks containing Experimental Data、http://vanted.ipk-gatersleben.de/でアクセス可能である）を用いた。尚、代謝経路はヒトで確認された酵素を基に作成している。
検索された候補代謝物質のデータを、代謝経路マップへ描画した。代謝経路の描画には、ＶＡＮＴＥＤ（Visualization and Analysis of Networks containing Experimental Data、http://vanted.ipk-gatersleben.de/でアクセス可能である）を用いた。尚、代謝経路はヒトで確認された酵素を基に作成している。
（Ｄ）結果
（Ｄ−１）候補代謝物質検索
エダマメ３検体についてＣＥ−ＴＯＦＭＳによるメタボローム解析を行った。ＨＭＴ代謝物質データベースに登録された物質のｍ／ｚ及びＭＴの値から１４２（カチオン７４，アニオン６８）ピークに候補化合物が割り当てられた。この候補化合物１４２のピークについて、それぞれ各群間の相対面積値比を算出した。結果はグラフにして図１０に示した。また、図１１の代謝経路図に載っている２５９の代謝物質を以下の表１−１〜１−６に列挙し、データベースでその中に割り当てられた９８の候補化合物については相対面積値を示した。図１１の代謝経路図に載らない残りの４４の候補化合物については表２に相対面積値と共に列挙し、図２０に相対面積値比のグラフを示した。なお、表１及び２中、N.D.はnot detectedを意味する。
（Ｄ−１）候補代謝物質検索
エダマメ３検体についてＣＥ−ＴＯＦＭＳによるメタボローム解析を行った。ＨＭＴ代謝物質データベースに登録された物質のｍ／ｚ及びＭＴの値から１４２（カチオン７４，アニオン６８）ピークに候補化合物が割り当てられた。この候補化合物１４２のピークについて、それぞれ各群間の相対面積値比を算出した。結果はグラフにして図１０に示した。また、図１１の代謝経路図に載っている２５９の代謝物質を以下の表１−１〜１−６に列挙し、データベースでその中に割り当てられた９８の候補化合物については相対面積値を示した。図１１の代謝経路図に載らない残りの４４の候補化合物については表２に相対面積値と共に列挙し、図２０に相対面積値比のグラフを示した。なお、表１及び２中、N.D.はnot detectedを意味する。
なお、本測定中、いずれの試料についてもクエン酸のピーク強度が高く、これと近傍のＭＴで検出されるフマル酸、ｃｉｓ−アコニット酸及びイソクエン酸のピーク形状にゆがみが生じた。またリンゴ酸のピーク強度も高く、これと近傍のＭＴで検出されるコハク酸及びホスホエノールピルビン酸のピーク形状にゆがみが生じた。このためフマル酸、ｃｉｓ−アコニット酸、イソクエン酸、コハク酸及びホスホエノールピルビン酸について表２では参考値として示した。
（Ｄ−２）候補物質の代謝経路への描画
候補物質を解糖系／糖新生、ペントースリン酸経路、クエン酸回路、尿素回路、プリン代謝経路、ピリミジン代謝経路及び各種アミノ酸代謝経路に描画した（図１１〜１９）。図中で略称により示された物質の名称との対応表を以下に示す。
候補物質を解糖系／糖新生、ペントースリン酸経路、クエン酸回路、尿素回路、プリン代謝経路、ピリミジン代謝経路及び各種アミノ酸代謝経路に描画した（図１１〜１９）。図中で略称により示された物質の名称との対応表を以下に示す。
（Ｄ−３）考察
何れかの照射群で２倍以上増加する代謝物は、デオキシチミジン５−一リン酸（ｄＴＭＰ，チミジル酸）、２−アミノアジピン酸、ＮＡＤＨ、４−メチル−２−オキソペンタン酸、チアプロリン、システイン（Ｃｙｓ）、ピペコリン酸、乳酸、アスコルビン酸、シスチン、Ｎ−アセチルメチオニン、トリプトファン（Ｔｒｐ）、Ｎ−アセチル−b−アラニン、ニコチン酸、フルクトース１，６−二リン酸、２−オキソイソ吉草酸、グリセロホスホコリン、チロシン（Ｔｙｒ）、５−オキソプロリン、ピルビン酸、Ｓ−アデノシルホモシステイン、セリン（Ｓｅｒ）−グルタミン酸（Ｇｌｕ）、ホスホエノールピルビン酸（ＰＥＰ）、グルタミン酸（Ｇｌｕ）、トレハロース−６−リン酸、メチオニン（Ｍｅｔ）、オフタルミン酸、ウリジン５−一リン酸（ＵＭＰ）、ＮＡＤＰ＋、トリメチルアミン−Ｎ−オキシドであった。
また、代謝経路レベルで見ると、まず解糖系の代謝経路に関わる物質の増加が顕著であった。解糖系の重要な代謝中間物質としてピルビン酸があるが、０．２Ｇｙ／日の照射で顕著に増加（３．２倍）し、代謝経路でつながっているＰＥＰ（２倍）やアセチルＣｏＡ（１．６倍）も上昇が認められた。ピルビン酸がアラニンから生成される際にＧｌｕを生成するが、Ｇｌｕ、Ｓｅｒ−Ｇｌｕ及びＧｌｕ−Ｇｌｕもそれぞれ０．２Ｇｙ／日の照射で５．７倍、２．３倍、及び１．８倍となった。また５−オキソプロリンはＧｌｕからの生成物であり、０．０６Ｇｙ／日照射、０．２Ｇｙ／日の照射でそれぞれ１．６，２．４倍となった。これらから、Ｇｌｕの関与する物質の増加は相互に密接に関連していると推定される。
０．０６Ｇｙ／日照射の場合には、乳酸は３倍、ＮＡＤＨが４．４倍、アスコルビン酸が２．６倍増加した。アスコルビン酸はＣｙｓと同様、抗酸化物質であり、一種の酸化ストレスである放射線に対する防御反応として増加している可能性がある。Ｃｙｓは酸化してシスチンになるがシスチンが０．０６Ｇｙ／日だけで増加し（２．５倍）、アスコルビン酸も０．０６Ｇｙ／日で顕著に増加していることから０．２Ｇｙ／日よりも０．０６Ｇｙ／日の場合において生体内酸化ストレスが増加している可能性はある。例えばミトコンドリアはＮＡＤＨを消費するところであるが、この過程で活性酸素を生成する。ＮＡＤＨが増加したことによるミトコンドリアの活性化が酸化ストレスをもたらしている可能性はある。乳酸の増加が０．０６Ｇｙ／日で大きいのは、ピルビン酸が乳酸デヒドロゲナーゼにより触媒されるＮＡＤＨによる還元反応で乳酸になるため、ＮＡＤＨの増加による影響を受けたためとも考えられる。解糖系では平衡はこの方向に傾いている。ニコチン酸（ナイアシン）は、ＮＡＤの成分でありＮＡＤＨの増加に関連すると思われる。０．０６Ｇｙ／日照射でのＮＡＤＨの顕著な上昇（４．４倍）がどのような仕組みで生じているのかは不明だが解糖系やＴＣＡ回路での代謝が促進されていることによる可能性はある。
Ｔｒｐ、Ｔｙｒ、Ｍｅｔ、Ｇｌｕのようなアミノ酸、Ｓｅｒ−Ｇｌｕ、Ｇｌｕ−Ｇｌｕのようなペプチド、ＵＭＰやｄＴＭＰのようなリボヌクレオチド、デオキシリボヌクレオチドが増加していることは生合成が活発になっていることを示す。ＭｅｔはＣｙｓやシスチンの前駆体でもあり、Ｓ−アデノシルホモシステインはＭｅｔの代謝に関わるため関連して増加している可能性がある。Ｃｙｓはグルタチオンの前駆体でもある。グルタチオンは生体内での豊富なＳＨ化合物であり、抗酸化物質である。グルタチオンはＣｙｓ、Ｇｌｕ、Ｇｌｙからg−グルタミル経路で生成される。ＧｌｕやＧｌｙは特に０．２Ｇｙ／日での照射の場合に増加し（それぞれ５．７倍、１．６倍）、さらに酸化されたグルタチオンを還元型に戻す際の反応に関連するＮＡＤＰ＋も２倍になっていることからグルタチオンの生成、代謝経路が活発化していることが推察される。また植物においてはＰＥＰからシキミ酸経路を介して芳香族アミノ酸であるＴｒｐ、Ｔｙｒ、フェニルアラニンのようなアミノ酸の生合成を行うが、この経路の活発化が示唆される。芳香族アミノ酸をつくる能力は動物にはなく（チロシンはフェニルアラニンから合成できるが）基本的には食事からの摂取が不可欠であるが、Ｔｒｐ、Ｔｙｒは２倍以上、フェニルアラニンも０．０６Ｇｙ／日で１．９倍になっていることは芳香族アミノ酸生産のために本方法は有用な方法であることを示す。
何れかの照射群で２倍以上増加する代謝物は、デオキシチミジン５−一リン酸（ｄＴＭＰ，チミジル酸）、２−アミノアジピン酸、ＮＡＤＨ、４−メチル−２−オキソペンタン酸、チアプロリン、システイン（Ｃｙｓ）、ピペコリン酸、乳酸、アスコルビン酸、シスチン、Ｎ−アセチルメチオニン、トリプトファン（Ｔｒｐ）、Ｎ−アセチル−b−アラニン、ニコチン酸、フルクトース１，６−二リン酸、２−オキソイソ吉草酸、グリセロホスホコリン、チロシン（Ｔｙｒ）、５−オキソプロリン、ピルビン酸、Ｓ−アデノシルホモシステイン、セリン（Ｓｅｒ）−グルタミン酸（Ｇｌｕ）、ホスホエノールピルビン酸（ＰＥＰ）、グルタミン酸（Ｇｌｕ）、トレハロース−６−リン酸、メチオニン（Ｍｅｔ）、オフタルミン酸、ウリジン５−一リン酸（ＵＭＰ）、ＮＡＤＰ＋、トリメチルアミン−Ｎ−オキシドであった。
また、代謝経路レベルで見ると、まず解糖系の代謝経路に関わる物質の増加が顕著であった。解糖系の重要な代謝中間物質としてピルビン酸があるが、０．２Ｇｙ／日の照射で顕著に増加（３．２倍）し、代謝経路でつながっているＰＥＰ（２倍）やアセチルＣｏＡ（１．６倍）も上昇が認められた。ピルビン酸がアラニンから生成される際にＧｌｕを生成するが、Ｇｌｕ、Ｓｅｒ−Ｇｌｕ及びＧｌｕ−Ｇｌｕもそれぞれ０．２Ｇｙ／日の照射で５．７倍、２．３倍、及び１．８倍となった。また５−オキソプロリンはＧｌｕからの生成物であり、０．０６Ｇｙ／日照射、０．２Ｇｙ／日の照射でそれぞれ１．６，２．４倍となった。これらから、Ｇｌｕの関与する物質の増加は相互に密接に関連していると推定される。
０．０６Ｇｙ／日照射の場合には、乳酸は３倍、ＮＡＤＨが４．４倍、アスコルビン酸が２．６倍増加した。アスコルビン酸はＣｙｓと同様、抗酸化物質であり、一種の酸化ストレスである放射線に対する防御反応として増加している可能性がある。Ｃｙｓは酸化してシスチンになるがシスチンが０．０６Ｇｙ／日だけで増加し（２．５倍）、アスコルビン酸も０．０６Ｇｙ／日で顕著に増加していることから０．２Ｇｙ／日よりも０．０６Ｇｙ／日の場合において生体内酸化ストレスが増加している可能性はある。例えばミトコンドリアはＮＡＤＨを消費するところであるが、この過程で活性酸素を生成する。ＮＡＤＨが増加したことによるミトコンドリアの活性化が酸化ストレスをもたらしている可能性はある。乳酸の増加が０．０６Ｇｙ／日で大きいのは、ピルビン酸が乳酸デヒドロゲナーゼにより触媒されるＮＡＤＨによる還元反応で乳酸になるため、ＮＡＤＨの増加による影響を受けたためとも考えられる。解糖系では平衡はこの方向に傾いている。ニコチン酸（ナイアシン）は、ＮＡＤの成分でありＮＡＤＨの増加に関連すると思われる。０．０６Ｇｙ／日照射でのＮＡＤＨの顕著な上昇（４．４倍）がどのような仕組みで生じているのかは不明だが解糖系やＴＣＡ回路での代謝が促進されていることによる可能性はある。
Ｔｒｐ、Ｔｙｒ、Ｍｅｔ、Ｇｌｕのようなアミノ酸、Ｓｅｒ−Ｇｌｕ、Ｇｌｕ−Ｇｌｕのようなペプチド、ＵＭＰやｄＴＭＰのようなリボヌクレオチド、デオキシリボヌクレオチドが増加していることは生合成が活発になっていることを示す。ＭｅｔはＣｙｓやシスチンの前駆体でもあり、Ｓ−アデノシルホモシステインはＭｅｔの代謝に関わるため関連して増加している可能性がある。Ｃｙｓはグルタチオンの前駆体でもある。グルタチオンは生体内での豊富なＳＨ化合物であり、抗酸化物質である。グルタチオンはＣｙｓ、Ｇｌｕ、Ｇｌｙからg−グルタミル経路で生成される。ＧｌｕやＧｌｙは特に０．２Ｇｙ／日での照射の場合に増加し（それぞれ５．７倍、１．６倍）、さらに酸化されたグルタチオンを還元型に戻す際の反応に関連するＮＡＤＰ＋も２倍になっていることからグルタチオンの生成、代謝経路が活発化していることが推察される。また植物においてはＰＥＰからシキミ酸経路を介して芳香族アミノ酸であるＴｒｐ、Ｔｙｒ、フェニルアラニンのようなアミノ酸の生合成を行うが、この経路の活発化が示唆される。芳香族アミノ酸をつくる能力は動物にはなく（チロシンはフェニルアラニンから合成できるが）基本的には食事からの摂取が不可欠であるが、Ｔｒｐ、Ｔｙｒは２倍以上、フェニルアラニンも０．０６Ｇｙ／日で１．９倍になっていることは芳香族アミノ酸生産のために本方法は有用な方法であることを示す。
以上のように、本発明によれば、現存するマメ科植物から、遺伝子工学的手法によることなく、大粒のマメを収穫できたり、個体あたりの種子の収穫量を大幅に増加することができる。また、本発明の方法で収穫される種子は、アスコルビン酸、システイン、シスチン、ピルビン酸、ニコチン酸、ＮＡＤＨ、乳酸、グルタミン酸、芳香族アミノ酸（トリプトファン、チロシン、フェニルアラニン）等の代謝物質が通常の栽培による種子より豊富に含まれている。従って、健康食品としての利用の他、エネルギー資源としての利用、化粧品、医薬などの各種工業製品の原料としての利用が期待できる。また、宇宙空間では、放射線が常に存在しており、これをうまく制御することで、本発明へ応用することも可能と思われる。
Claims (16)
- 実生時期を経過後に、植物体に、線量率０．０４〜０．４Ｇｙ／日、総線量０．５〜１０．０Ｇｙでγ線を照射する工程を含む、マメ科植物の栽培方法。
- 前記γ線を、線量率０．０４〜０．３Ｇｙ／日で照射する、請求項１に記載の方法。
- 前記γ線を、線量率０．１〜０．３Ｇｙ／日で照射する、請求項１に記載の方法。
- 前記γ線を、線量率０．０５〜０．０８Ｇｙ／日で照射する、請求項１に記載の方法。
- 前記γ線の総線量を、０．８〜６．０Ｇｙ程度とする、請求項１から４の何れか１項に記載の方法。
- 前記γ線の総線量を、１．０〜２．０Ｇｙ程度とする、請求項１から４の何れか１項に記載の方法。
- 前記マメ科植物がダイズ属の植物である、請求項１から６の何れか１項に記載の方法。
- 前記γ線の照射を、開花前に開始する、請求項１から７の何れか１項に記載の方法。
- 前記γ線の照射を、蕾が形成される前に開始する、請求項１から７の何れか１項に記載の方法。
- 前記γ線の照射を、花芽形成の数日前後以内に開始する、請求項１から７の何れか１項に記載の方法。
- 前記γ線の照射を、少なくとも、莢が形成されるまで行う、請求項１から１０の何れか１項に記載の方法。
- 前記γ線の照射を、少なくとも、莢が充実するまで行う、請求項１から１０の何れか１項に記載の方法。
- 請求項１から１２に記載の方法で栽培されたマメ科植物。
- 請求項１３に記載のマメ科植物から得られる種子。
- 請求項１４に記載の種子、又はその破砕物若しくは抽出物を含む、食品、動物用飼料、医薬品、化粧品、又はこれら製品のための原料、或いはバイオマスエネルギー資源。
- 請求項１４に記載の種子、又はその破砕物若しくは抽出物の、食品、動物用飼料、医薬、化粧品又はこれら製品のための原料を製造するための、アスコルビン酸、シスチン、ピルビン酸、システイン、ニコチン酸、ＮＡＤＨ、乳酸、グルタミン酸及び芳香族アミノ酸からなる群から選択される少なくとも１種の物質の供給源としての使用。
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