JP5286515B2 - Sensor chip and sensor chip manufacturing method - Google Patents

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Description

本発明は、センサチップ及びセンサチップ製造方法に関するものである。   The present invention relates to a sensor chip and a sensor chip manufacturing method.

金属微粒子と光との共鳴現象の一つであるプラズモン共鳴を利用して金属微粒子周囲の屈折率変化を測定するセンサーが開発されている(例えば、特許文献1参照)。   A sensor that measures a refractive index change around a metal fine particle using plasmon resonance, which is one of resonance phenomena between metal fine particles and light, has been developed (for example, see Patent Document 1).

ここで、特許文献1のように、プラズモン共鳴を利用して金属微粒子周囲の屈折率変化を検出可能な原理について説明する。金ナノ粒子や銀ナノ粒子等の金属微粒子に光を照射すると、所定の共鳴波長において共鳴現象の一つであるプラズモン共鳴が生じる。その結果、光が照射された金属微粒子による散乱や吸収が増大するため、金属微粒子と相互作用した光を検出した際に、そのスペクトルに共鳴ピークが現出する。この共鳴ピークを生じせしめる共鳴波長は、金属微粒子周囲の屈折率に依存しているため、共鳴ピークのシフトを検出することで、金属微粒子周囲の屈折率変化を検出できることになる。   Here, as in Japanese Patent Application Laid-Open No. H10-228707, the principle of detecting the refractive index change around the metal fine particles using plasmon resonance will be described. When metal fine particles such as gold nanoparticles and silver nanoparticles are irradiated with light, plasmon resonance, which is one of resonance phenomena, occurs at a predetermined resonance wavelength. As a result, since scattering and absorption by the metal fine particles irradiated with light increase, a resonance peak appears in the spectrum when light interacting with the metal fine particles is detected. Since the resonance wavelength causing the resonance peak depends on the refractive index around the metal fine particle, the change in the refractive index around the metal fine particle can be detected by detecting the shift of the resonance peak.

上記特許文献1に記載の局在プラズモン共鳴センサー(センサチップ)では、ガラス基板の表面上に金属微粒子としての金ナノ粒子が複数固定されて構成されており、ガラス基板の裏面側から光を照射し、その透過光を検出することによって共鳴ピークを取得する。そして、共鳴ピークの変化から金属微粒子周囲の屈折率変化を検出している。   In the localized plasmon resonance sensor (sensor chip) described in Patent Document 1, a plurality of gold nanoparticles as metal fine particles are fixed on the surface of a glass substrate, and light is irradiated from the back side of the glass substrate. The resonance peak is acquired by detecting the transmitted light. Then, the refractive index change around the metal fine particles is detected from the change in the resonance peak.

このようなセンサチップは、例えば、次のようにしてDNAやタンパク質等の被検体を検出するセンサチップとして利用される。すなわち、金属微粒子に被検体と特異的に結合するプローブ分子を固定しておき、試料液を送液すると、試料液に被検体が含まれていれば、プローブ分子に結合した被検体の影響で金属微粒子近傍の屈折率が変化して共鳴波長がシフトする。そのため、試料液の送液前後での共鳴ピークの変化を検出すれば、被検体を検出できることになり、DNAやタンパク質等の被検体を検出するセンサチップとして利用できることになる。
特開2000―356587号公報
Such a sensor chip is used as a sensor chip for detecting an analyte such as DNA or protein as follows. That is, when probe molecules that specifically bind to the analyte are immobilized on the metal microparticles and the sample solution is fed, if the analyte is contained in the sample solution, it is affected by the analyte bound to the probe molecule. The refractive index in the vicinity of the metal fine particles changes and the resonance wavelength shifts. Therefore, if a change in the resonance peak before and after the sample solution is sent is detected, the analyte can be detected, and can be used as a sensor chip for detecting an analyte such as DNA or protein.
Japanese Patent Application Laid-Open No. 2000-356587

しかしながら、このような金属微粒子と光との共鳴現象を利用する方法では、ガラス基板上に固定する複数の金属微粒子のうち隣接する金属微粒子同士が会合すると、金属微粒子と光との共鳴現象を検出するために検出する金属微粒子と相互作用した光のスペクトルが歪み、結果として、検出感度が低下する恐れがある。   However, in the method using the resonance phenomenon between the metal fine particles and the light, the resonance phenomenon between the metal fine particles and the light is detected when adjacent metal fine particles meet among the plurality of metal fine particles fixed on the glass substrate. Therefore, the spectrum of light interacting with the metal fine particles to be detected is distorted, and as a result, the detection sensitivity may be lowered.

そこで、本発明は、金属微粒子周囲の屈折率変化を高感度で検出可能なセンサチップ及びセンサチップの製造方法を提供することを目的とする。   Therefore, an object of the present invention is to provide a sensor chip capable of detecting a change in refractive index around a metal fine particle with high sensitivity and a method for manufacturing the sensor chip.

本発明に係るセンサチップは、金属微粒子と光との共鳴現象を利用して金属微粒子周囲の屈折率変化を検出するためのセンサチップであって、基板と、基板上に形成されると共に、金属微粒子を固定するための第1の膜と、第1の膜のセンサ領域上に固定される複数の金属微粒子と、第1の膜上に固定されると共に、複数の金属微粒子のうち隣接する金属微粒子間に配置されるブロック剤と、を備えることを特徴とする。   A sensor chip according to the present invention is a sensor chip for detecting a refractive index change around a metal fine particle by utilizing a resonance phenomenon between the metal fine particle and light, and is formed on the substrate, the substrate, and the metal chip. A first film for fixing fine particles, a plurality of metal fine particles fixed on the sensor region of the first film, and an adjacent metal among the plurality of metal fine particles fixed on the first film And a blocking agent disposed between the fine particles.

上記構成のセンサチップでは、センサ領域上において隣接する金属微粒子間にブロック剤が固定されているため、隣接する金属微粒子間の会合が抑制される。その結果、金属微粒子に光を照射して上記共鳴現象を利用して金属微粒子周囲の屈折率変化を検出する際、金属微粒子と相互作用した光のスペクトルの歪みが抑制され、金属微粒子周囲の屈折率変化を高い感度で検出することができることになる。そのため、金属微粒子に例えば被検体と特異に結合するプローブ分子を固定させておくことによって特定の被検体を高感度で検出可能である。   In the sensor chip having the above configuration, since the blocking agent is fixed between adjacent metal fine particles on the sensor region, association between adjacent metal fine particles is suppressed. As a result, when the refractive index change around the metal fine particle is detected by irradiating the metal fine particle with light and using the above resonance phenomenon, the distortion of the spectrum of the light interacting with the metal fine particle is suppressed, and the refraction around the metal fine particle is suppressed. The rate change can be detected with high sensitivity. For this reason, a specific analyte can be detected with high sensitivity by fixing, for example, probe molecules that specifically bind to the analyte to the metal fine particles.

なお、上記基板としては、金属微粒子に共鳴現象を生じせしめる波長を含む波長帯域の光に対して透明であるものが考えられ、ガラス基板が例示される。   In addition, as said board | substrate, what is transparent with respect to the light of the wavelength band containing the wavelength which produces the resonance phenomenon in a metal microparticle can be considered, and a glass substrate is illustrated.

また、本発明に係るセンサチップでは、第1の膜はシラン化合物から形成されており、ブロック剤はカルボキシル基を有する化合物であることが好ましい。   In the sensor chip according to the present invention, the first film is preferably made of a silane compound, and the blocking agent is preferably a compound having a carboxyl group.

シラン化合物はアミノ基を有しており、カルボキシル基とアミド結合を形成する。そのため、カルボキシル基を有するブロック剤を確実に第1の膜に固定することができることから、金属微粒子間の会合が抑制される。その結果、前述したように、金属微粒子周囲の屈折率変化を感度よく検出できる。   A silane compound has an amino group and forms an amide bond with a carboxyl group. Therefore, since the blocking agent having a carboxyl group can be reliably fixed to the first film, association between the metal fine particles is suppressed. As a result, as described above, the refractive index change around the metal fine particles can be detected with high sensitivity.

この場合、上記ブロック剤は、グリコール酸、酢酸ナトリウム、16−ヒドロキシヘキサデカン酸及びポリエチレングリコールの何れか一つから形成されていることが好適である。これらは、末端にカルボキシル基を有するため、確実に第1の膜にブロック剤が固定される。   In this case, the blocking agent is preferably formed from any one of glycolic acid, sodium acetate, 16-hydroxyhexadecanoic acid and polyethylene glycol. Since these have a carboxyl group at the terminal, the blocking agent is reliably fixed to the first film.

更にまた、本発明に係るセンサチップでは、金属微粒子の表面上に形成されると共に、被検体を固定するための第2の膜を更に備えることが好ましい。これにより、第2の膜を利用して金属微粒子近傍に被検体を固定できる。そのため、被検体の固定による金属微粒子周囲の屈折率変化を高感度で検出でき、結果として、被検体を高感度で検出可能である。   Furthermore, in the sensor chip according to the present invention, it is preferable that the sensor chip further includes a second film that is formed on the surface of the metal fine particles and fixes the subject. Thus, the subject can be fixed in the vicinity of the metal fine particles using the second film. Therefore, the refractive index change around the metal fine particles due to fixation of the subject can be detected with high sensitivity, and as a result, the subject can be detected with high sensitivity.

上記第2の膜は、メルカプトウンデカン酸から形成されている、とすることが可能である。   The second film may be formed of mercaptoundecanoic acid.

更に、本発明に係るセンサチップでは、第1の膜上にセンサ領域を複数有し、各センサ領域上に上記金属微粒子及びブロック剤が固定されていることが好ましい。この場合、センサチップが、金属微粒子及びブロック剤が固定されるセンサ領域を複数有している。そのため、各センサ領域上の金属微粒子に例えば種々の被検体に対してそれぞれ特異に結合するプローブ分子を固定させておくことによって各センサ領域で異なる被検体を検出可能であり、結果として、センサチップで一度に複数の被検体を検出可能である。   Furthermore, the sensor chip according to the present invention preferably has a plurality of sensor regions on the first film, and the metal fine particles and the blocking agent are fixed on each sensor region. In this case, the sensor chip has a plurality of sensor regions to which the metal fine particles and the blocking agent are fixed. Therefore, different analytes can be detected in each sensor region by fixing, for example, probe molecules that specifically bind to various analytes to the metal fine particles on each sensor region, and as a result, sensor chips A plurality of objects can be detected at one time.

更にまた、本発明に係るセンサチップでは、金属微粒子の粒径は50nm〜100nmであることが好適である。   Furthermore, in the sensor chip according to the present invention, it is preferable that the metal fine particles have a particle size of 50 nm to 100 nm.

また、本発明に係るセンサチップ製造方法では、金属微粒子と光との共鳴現象を利用して金属微粒子周囲の屈折率変化を検出するためのセンサチップを製造する方法であって、(1)基板上に形成されており金属微粒子を固定するための第1の膜のセンサ領域と、金属微粒子を含む金属微粒子溶液とを接触させることによってセンサ領域に金属微粒子を所定の粒子密度で固定する粒子固定工程と、(2)金属微粒子が固定されたセンサ領域とブロック剤導入溶液とを接触させることで、センサ領域にブロック剤を固定するブロック剤固定工程と、を備えることを特徴とする。   The sensor chip manufacturing method according to the present invention is a method for manufacturing a sensor chip for detecting a refractive index change around a metal fine particle by utilizing a resonance phenomenon between the metal fine particle and light, and (1) a substrate. Particle fixing for fixing metal fine particles to a sensor region at a predetermined particle density by bringing a sensor region of a first film for fixing metal fine particles formed thereon into contact with a metal fine particle solution containing metal fine particles. And (2) a blocking agent fixing step of fixing the blocking agent to the sensor region by bringing the sensor region in which the metal fine particles are fixed into contact with the blocking agent introduction solution.

この方法で製造されたセンサチップでは、金属微粒子溶液を利用して所定の粒子密度で金属微粒子が固定されているセンサ領域上にブロック剤を固定するため、センサ領域上において金属微粒子が固定されていない部分にブロック剤が固定される。これによって、隣接する金属微粒子間にブロック剤が配置されることになる。その結果、金属微粒子に光を照射して上記共鳴現象を利用して金属微粒子周囲の屈折率変化を検出する際、金属微粒子と相互作用した光のスペクトルの歪みが抑制され、金属微粒子周囲の屈折率変化を高い感度で検出することができることになる。そのため、金属微粒子に例えば被検体と特異に結合するプローブ分子を固定させておくことによって特定の被検体を高感度で検出可能である。   In the sensor chip manufactured by this method, the metal fine particles are fixed on the sensor region in order to fix the blocking agent on the sensor region where the metal fine particles are fixed at a predetermined particle density using the metal fine particle solution. The blocking agent is fixed to the non-existing part. Thereby, a blocking agent is arrange | positioned between adjacent metal microparticles. As a result, when the refractive index change around the metal fine particle is detected by irradiating the metal fine particle with light and using the above resonance phenomenon, the distortion of the spectrum of the light interacting with the metal fine particle is suppressed, and the refraction around the metal fine particle The rate change can be detected with high sensitivity. For this reason, a specific analyte can be detected with high sensitivity by fixing, for example, probe molecules that specifically bind to the analyte to the metal fine particles.

更に、本発明に係るセンサチップ製造方法では、第1の膜はシラン化合物から形成されており、ブロック剤はカルボキシル基を有する化合物であることが好ましい。   Furthermore, in the sensor chip manufacturing method according to the present invention, the first film is preferably formed of a silane compound, and the blocking agent is preferably a compound having a carboxyl group.

シラン化合物はアミノ基を有しており、カルボキシル基とアミド結合を形成する。そのため、カルボキシル基を有するブロック剤を確実に第1の膜に固定することができ、金属微粒子間の会合が抑制される。その結果、前述したように、金属微粒子周囲の屈折率変化を感度よく検出できる。   A silane compound has an amino group and forms an amide bond with a carboxyl group. Therefore, the blocking agent having a carboxyl group can be reliably fixed to the first film, and the association between the metal fine particles is suppressed. As a result, as described above, the refractive index change around the metal fine particles can be detected with high sensitivity.

この場合、上記ブロック剤は、グリコール酸、酢酸ナトリウム、16−ヒドロキシヘキサデカン酸及びポリエチレングリコールの何れか一つからなることが好適である。これらは、末端にカルボキシル基を有するため、確実に第1の膜にブロック剤が固定される。   In this case, the blocking agent is preferably composed of any one of glycolic acid, sodium acetate, 16-hydroxyhexadecanoic acid and polyethylene glycol. Since these have a carboxyl group at the terminal, the blocking agent is reliably fixed to the first film.

また、本発明に係るセンサチップ製造方法では、被検体を固定するための第2の膜を、金属微粒子が固定されたセンサ領域と第2の膜形成溶液とを接触させることによって、金属微粒子の表面上に形成する膜形成工程を更に備えることが好適である。これにより、第2の膜を利用して金属微粒子近傍に被検体を固定することが可能である。そのため、被検体の固定による金属微粒子周囲の屈折率変化を高感度で検出でき、結果として、被検体を高感度で検出可能である。   In the sensor chip manufacturing method according to the present invention, the second film for immobilizing the subject is brought into contact with the sensor region to which the metal fine particles are fixed and the second film forming solution, thereby It is preferable to further include a film forming step for forming on the surface. As a result, the subject can be fixed in the vicinity of the metal microparticles using the second film. Therefore, the refractive index change around the metal fine particles due to fixation of the subject can be detected with high sensitivity, and as a result, the subject can be detected with high sensitivity.

上記第2の膜は、メルカプトウンデカン酸から形成されている、とすることができる。   The second film may be made of mercaptoundecanoic acid.

更に、本発明に係るセンサチップ製造方法では、基板に固定された金属微粒子の粒径が50nm未満の場合、基板に固定された金属微粒子を粒子成長溶液と接触させることによって金属微粒子の粒径を50nm〜100nmに増大させる粒径増大工程を更に備えることが好ましい。   Furthermore, in the sensor chip manufacturing method according to the present invention, when the particle size of the metal fine particles fixed to the substrate is less than 50 nm, the metal fine particles fixed to the substrate are brought into contact with the particle growth solution to reduce the particle size of the metal fine particles. It is preferable to further include a particle size increasing step for increasing to 50 nm to 100 nm.

粒径増大工程により50nm未満の粒径を上記範囲に増大させることで、金属微粒子と光との共鳴現象をより効率的に生じさせるため、金属微粒子周囲の屈折率変化をより高感度で検出できる。なお、この粒径増大工程は、金属微粒子の粒径を確実に増大させる観点から、ブロック剤導入工程の前に実施されることが好ましい。   By increasing the particle size of less than 50 nm to the above range by the particle size increasing step, the resonance phenomenon between the metal fine particles and light is more efficiently generated, so that the refractive index change around the metal fine particles can be detected with higher sensitivity. . In addition, it is preferable to implement this particle size increase process before a blocking agent introduction | transduction process from a viewpoint of increasing the particle size of a metal microparticle reliably.

更にまた、本発明に係るセンサチップ製造方法では、第1の膜はセンサ領域を複数有しており、粒子固定工程では、各センサ領域上に前記金属微粒子を所定の粒子密度で固定し、ブロック剤固定工程では、各センサ領域上にブロック剤を固定することとが好適である。   Furthermore, in the sensor chip manufacturing method according to the present invention, the first film has a plurality of sensor regions, and in the particle fixing step, the metal fine particles are fixed at a predetermined particle density on each sensor region, In the agent fixing step, it is preferable to fix the blocking agent on each sensor region.

この場合、各センサ領域上に、金属微粒子及びブロック剤が固定されることになる。そして、センサチップがセンサ領域を複数有することで、各センサ領域で異なる被検体を検出可能であるため、センサチップで一度に複数の被検体を検出可能である。各センサ領域上の金属微粒子に例えば種々の被検体に対してそれぞれ特異に結合するプローブ分子を固定させておくことによって各センサ領域で異なる被検体を検出可能であり、結果として、センサチップで一度に複数の被検体を検出可能である。   In this case, the metal fine particles and the blocking agent are fixed on each sensor region. Since the sensor chip has a plurality of sensor areas, different objects can be detected in each sensor area, so that a plurality of objects can be detected at a time by the sensor chip. For example, different analytes can be detected in each sensor region by immobilizing probe molecules that specifically bind to various analytes, for example, on metal fine particles on each sensor region. In addition, a plurality of subjects can be detected.

上記所定の粒子密度としては、30〜60個/μmとすることが好適である。 The predetermined particle density is preferably 30 to 60 particles / μm 2 .

本発明によるセンサチップ及びセンサチップ製造方法によれば、金属微粒子周囲の屈折率変化を高感度で検出可能である。   According to the sensor chip and the sensor chip manufacturing method of the present invention, it is possible to detect the refractive index change around the metal fine particles with high sensitivity.

以下、図面を参照して本発明に係るセンサチップ及びセンサチップ製造方法の実施形態について説明する。以下の説明において、同一の要素には同一の符号を付すものとし、重複する説明は省略する。また、図面の寸法比率は説明のものと必ずしも一致していない。   Hereinafter, embodiments of a sensor chip and a sensor chip manufacturing method according to the present invention will be described with reference to the drawings. In the following description, the same elements are denoted by the same reference numerals, and redundant description is omitted. Further, the dimensional ratios in the drawings do not necessarily match those described.

図1は、本発明に係るセンサチップの一実施形態の断面構成を示す模式図である。センサチップ10Aは、金属微粒子としての金ナノ粒子14と光との共鳴現象の一つであるプラズモン共鳴による共鳴散乱を利用して後述する被検体20(図5参照)を検出するためのセンサ素子である。なお、被検体20としてはDNAやタンパク質が例示される。   FIG. 1 is a schematic diagram showing a cross-sectional configuration of an embodiment of a sensor chip according to the present invention. The sensor chip 10A is a sensor element for detecting an object 20 (see FIG. 5) described later by using resonance scattering by plasmon resonance, which is one of the resonance phenomena between gold nanoparticles 14 as metal fine particles and light. It is. The subject 20 is exemplified by DNA and protein.

センサチップ10Aは、シラン処理されてアミノプロピルシラン(シラン化合物)からなるアミノシラン膜(第1の膜)12が表面11aに形成されたガラス基板11を有する。ガラス基板11の大きさは、表面11a側からみたときに18mm×18mm程度が例示される。アミノシラン膜12のセンサ領域13上には、金ナノ粒子14が例えば30〜60個/μmの粒子密度で固定されている。ここで、センサ領域13とは、アミノシラン膜12において複数の金ナノ粒子14からなる金ナノ粒子群が固定され、被検体20を検出するために利用される領域である。言い換えれば、金ナノ粒子群が固定された領域がセンサ領域13となる。図1に示したセンサチップ10Aでは、アミノシラン膜12の表面12a全面がセンサ領域13として機能している。金ナノ粒子14の粒径(直径)d1は、金ナノ粒子14に光が照射された際の散乱光の強度を高くする観点から50nm〜100nmが好ましい。この金ナノ粒子14の表面上には、11−メルカプトウンデカン酸(MUA:11-mercaptoundecanoic acid)からなる自己組織化膜(第2の膜)15が形成されている。以下では、自己組織化膜15をMUA膜15とも称す。 The sensor chip 10A includes a glass substrate 11 on which an aminosilane film (first film) 12 made of silane treatment and made of aminopropylsilane (silane compound) is formed on a surface 11a. As for the magnitude | size of the glass substrate 11, when it sees from the surface 11a side, about 18 mm x 18 mm is illustrated. On the sensor region 13 of the aminosilane film 12, gold nanoparticles 14 are fixed at a particle density of, for example, 30 to 60 particles / μm 2 . Here, the sensor region 13 is a region that is used for detecting the analyte 20 by fixing a group of gold nanoparticles composed of a plurality of gold nanoparticles 14 in the aminosilane film 12. In other words, the region where the gold nanoparticle group is fixed becomes the sensor region 13. In the sensor chip 10 </ b> A shown in FIG. 1, the entire surface 12 a of the aminosilane film 12 functions as the sensor region 13. The particle diameter (diameter) d1 of the gold nanoparticles 14 is preferably 50 nm to 100 nm from the viewpoint of increasing the intensity of scattered light when the gold nanoparticles 14 are irradiated with light. On the surface of the gold nanoparticle 14, a self-assembled film (second film) 15 made of 11-mercaptoundecanoic acid (MUA) is formed. Hereinafter, the self-assembled film 15 is also referred to as a MUA film 15.

図1に示すように、センサチップ10Aでは、アミノシラン膜12のセンサ領域13内において金ナノ粒子14が吸着していない部分の少なくとも一部に、ブロック剤16としてのポリエチレングリコール(PEG:polyethyleneglycohol)が固定されている。これにより、隣接する金ナノ粒子14間にブロック剤16が配置されることになる。ブロック剤16は、カルボキシル基(COOH基)を末端に有する化合物であればよく、PEGの他、グリコール酸、酢酸ナトリウム、16−ヒドロキシヘキサデカン酸等が例示される。以下の説明では、特に断らない限りブロック剤16はPEGとする。   As shown in FIG. 1, in the sensor chip 10 </ b> A, polyethylene glycol (PEG: polyethyleneglycohol) as a blocking agent 16 is formed on at least a part of the portion of the aminosilane film 12 where the gold nanoparticles 14 are not adsorbed. It is fixed. As a result, the blocking agent 16 is disposed between the adjacent gold nanoparticles 14. The blocking agent 16 may be a compound having a carboxyl group (COOH group) at its terminal, and examples thereof include glycolic acid, sodium acetate, 16-hydroxyhexadecanoic acid, etc. in addition to PEG. In the following description, the blocking agent 16 is PEG unless otherwise specified.

次に、図2〜図4を利用して、センサチップ10Aを製造する方法について説明する。図2に示すように、センサチップ10Aの製造工程は、シラン処理工程S1と、粒子固定工程S2と、ブロック剤導入工程S3、粒径増大工程S4と、MUA膜形成工程(膜形成工程)S5とを有する。なお、図2では、次に説明する各工程の主要な処理を具体例を挙げて示している。   Next, a method for manufacturing the sensor chip 10A will be described with reference to FIGS. As shown in FIG. 2, the manufacturing process of the sensor chip 10A includes the silane treatment process S1, the particle fixing process S2, the blocking agent introduction process S3, the particle size increasing process S4, and the MUA film forming process (film forming process) S5. And have. In FIG. 2, the main processing of each process described below is illustrated with a specific example.

各工程について、具体的な濃度等の数値、溶液名及び各処理時間等を一例として挙げながら説明する。図3及び図4は、センサチップの製造方法の各工程を示す概略図である。なお、図4(c)は、後述するMUAの化学式を示している。また、センサ領域13は、前述したようにアミノシラン膜12の表面全面としている。   Each step will be described with specific numerical values such as concentrations, solution names, and treatment times as examples. 3 and 4 are schematic views showing each step of the sensor chip manufacturing method. FIG. 4C shows a chemical formula of MUA described later. The sensor region 13 is the entire surface of the aminosilane film 12 as described above.

シラン処理工程S1では、洗浄したガラス基板11を5%の3−アミノプロピルトリメキシシラン(APTMS:3-aminopropyltrimethoxysilane)トルエン溶液に5分間浸漬する。これにより、図3(a)に示すように、ガラス基板11の表面上にアミノシラン膜12が形成されることになる。次いで、アミノシラン膜12が形成されたガラス基板11をエタノールで6回、純水で3回超音波洗浄する。   In the silane treatment step S1, the cleaned glass substrate 11 is immersed in a 5% 3-aminopropyltrimethoxysilane (APTMS) toluene solution for 5 minutes. Thereby, the aminosilane film 12 is formed on the surface of the glass substrate 11 as shown in FIG. Next, the glass substrate 11 on which the aminosilane film 12 is formed is ultrasonically cleaned 6 times with ethanol and 3 times with pure water.

粒子固定工程S2では、アミノシラン膜12上に所定の粒子密度で金ナノ粒子14を固定する。アミノシラン膜12が形成されたガラス基板11を、濃度10nMの金ナノ粒子溶液に約2時間浸漬する。金ナノ粒子溶液中の金ナノ粒子14の粒径d2は約50nm未満である。これにより、図3(b)に示すように、アミノシラン膜12の吸着サイトの一部に粒径d2が約50nm未満の金ナノ粒子14が固定されることになる。   In the particle fixing step S2, the gold nanoparticles 14 are fixed on the aminosilane film 12 at a predetermined particle density. The glass substrate 11 on which the aminosilane film 12 is formed is immersed in a gold nanoparticle solution having a concentration of 10 nM for about 2 hours. The particle size d2 of the gold nanoparticles 14 in the gold nanoparticle solution is less than about 50 nm. As a result, as shown in FIG. 3B, gold nanoparticles 14 having a particle size d2 of less than about 50 nm are fixed to a part of the adsorption sites of the aminosilane film 12.

上記金ナノ粒子溶液は、例えばクエン酸還元法により合成したものを利用すればよく、具体的には次のようにして準備する。すなわち、約1mMテトラクロロ金(III)酸四水和物水溶液を、ホットプレート等で加熱しながら攪拌を行う。十分に沸騰してから約10mMクエン酸三ナトリウム水溶液を加えてから十分加熱攪拌し、常温まで冷却した後、0.20μmの細孔を持つメンブレンフィルターでろ過している金ナノ粒子溶液とする。   What is necessary is just to utilize what was synthesize | combined by the citric acid reduction method, for example, and the said gold nanoparticle solution is specifically prepared as follows. That is, an aqueous solution of about 1 mM tetrachloroauric (III) acid tetrahydrate is stirred while being heated on a hot plate or the like. After sufficiently boiling, about 10 mM trisodium citrate aqueous solution is added, and the mixture is sufficiently heated and stirred, cooled to room temperature, and then filtered to a gold nanoparticle solution filtered through a membrane filter having 0.20 μm pores.

また、金ナノ粒子14の粒子密度は、金ナノ粒子溶液の濃度と浸漬時間の少なくとも一方を調整することで制御でき、上記条件で粒子密度30〜60個/μmとなる。なお、ここでは、所定の粒子密度を粒子密度30〜60個/μmとしているが、所定の粒子密度は、アミノシラン膜12が有する全吸着サイトに金ナノ粒子14が固定されない粒子密度であればよい。 The particle density of the gold nanoparticles 14 can be controlled by adjusting at least one of the concentration of the gold nanoparticle solution and the immersion time, and the particle density is 30 to 60 particles / μm 2 under the above conditions. Here, the predetermined particle density is set to a particle density of 30 to 60 particles / μm 2 , but the predetermined particle density is a particle density in which the gold nanoparticles 14 are not fixed to all adsorption sites of the aminosilane film 12. Good.

粒径増大工程S4では、金ナノ粒子14及びブロック剤16が固定されたガラス基板11を、0.4mM塩酸ヒドロキシルアミン溶液と0.24mMテトラクロロ金(III)酸四水和物溶液との混合液である粒子成長溶液に5回浸漬する。これにより、図3(c)に示すように、金ナノ粒子14の粒径が増大し、60nm〜70nmの粒径d1に調整できる。図3(c)においては、説明のために、粒径が増大する前の金ナノ粒子を破線で示している。なお、浸漬毎に粒子成長溶液は新しくする。また、浸漬回数を多くすることで粒径を大きくできる。そのため、ここでは浸漬回数は5回としたが、浸漬回数は所望の粒径に応じて決定すればよく、予め粒径と浸漬回数との関係を求めておけばよい。粒径は50nm〜100nmとすることが好ましい。   In the particle size increasing step S4, the glass substrate 11 on which the gold nanoparticles 14 and the blocking agent 16 are fixed is mixed with a 0.4 mM hydroxylamine hydrochloride solution and a 0.24 mM tetrachloroauric (III) acid tetrahydrate solution. Immerse 5 times in the particle growth solution. Thereby, as shown in FIG.3 (c), the particle size of the gold nanoparticle 14 increases and it can adjust to the particle size d1 of 60 nm-70 nm. In FIG.3 (c), the gold nanoparticle before a particle size increases is shown with the broken line for description. In addition, the particle growth solution is renewed for each immersion. Further, the particle size can be increased by increasing the number of immersions. Therefore, although the number of immersions is 5 here, the number of immersions may be determined according to the desired particle size, and the relationship between the particle size and the number of immersions may be obtained in advance. The particle size is preferably 50 nm to 100 nm.

ブロック剤導入工程S4では、20mg/mlのEDAC、20mg/mlのCOOH基を持つPEG(分子量2000)16を0.1MのMES buffered Salineに溶解して得られる溶液(以下、「ブロック剤導入溶液」と称す)に金ナノ粒子14を固定したガラス基板11を約30分浸漬する。これにより、図4(a)に示すように、アミノシラン膜12上において金ナノ粒子14の固定されていない吸着サイトの少なくとも一部にPEG16が吸着する。なお、上記EDACとは、1-エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩(1−ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide,hydrochloride)であり、MESとは、2−モルホリノエタンスルホン酸一水和物(2-morpholinoethanesulfonic acid,monohydrate)である。また、0.1MのMES buffered Salineは、0.1MのMESと0.9%(w/v)の塩化ナトリウムを溶解させてpHを4.5〜5とした溶液である。   In the blocking agent introduction step S4, a solution obtained by dissolving PEG (molecular weight 2000) 16 having 20 mg / ml EDAC and 20 mg / ml COOH group in 0.1 M MES buffered Saline (hereinafter referred to as “blocking agent introduction solution”). The glass substrate 11 on which the gold nanoparticles 14 are fixed is dipped in about 30 minutes. As a result, as shown in FIG. 4A, PEG 16 is adsorbed on at least a part of the adsorption sites where the gold nanoparticles 14 are not fixed on the aminosilane film 12. The EDAC is 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride, and MES is 2-morpholinoethane. It is a sulfonic acid monohydrate (2-morpholinoethanesulfonic acid, monohydrate). Moreover, 0.1 M MES buffered Saline is a solution in which 0.1 M MES and 0.9% (w / v) sodium chloride are dissolved to adjust the pH to 4.5-5.

MUA膜形成工程S5では、ブロック剤16及び金ナノ粒子14が固定されたガラス基板11をエタノールに1,2分間程度浸漬した後に取り出して、MUAをエタノールに溶解することによって作製される10mMのMUAエタノール溶液(第2の膜形成溶液)に約10分間浸漬する。次に、余剰のMUAを除去するために再度エタノールに20分浸漬した後に取り出して、ガラス基板11を純水へ1分間程度浸漬してから取り出して更に純水で洗浄する。これにより、図4(b)に示すように、金ナノ粒子14の表面にMUA膜15が形成され、センサチップ10Aが得られることになる。なお、図4(b)では、図4(c)に示すようにMUAをその末端のカルボキシル基で簡略的に示している。なお、図10及び図11でも同様としている。   In the MUA film forming step S5, the glass substrate 11 on which the blocking agent 16 and the gold nanoparticles 14 are fixed is taken out after being immersed in ethanol for about 1 to 2 minutes, and is taken out, and 10 mM MUA produced by dissolving MUA in ethanol. Immerse in an ethanol solution (second film forming solution) for about 10 minutes. Next, in order to remove excess MUA, it is again immersed in ethanol for 20 minutes and then taken out. The glass substrate 11 is immersed in pure water for about 1 minute and then taken out and further washed with pure water. Thereby, as shown in FIG. 4B, the MUA film 15 is formed on the surface of the gold nanoparticle 14, and the sensor chip 10A is obtained. In FIG. 4 (b), as shown in FIG. 4 (c), MUA is simply indicated by a carboxyl group at the end. The same applies to FIGS. 10 and 11.

なお、上記製造方法では、ブロック剤導入工程S4の前に粒径増大工程S3を実施しているため、確実に金ナノ粒子14の粒径を増大させることができる。ただし、粒径増大工程S3は、ブロック剤導入工程S4の後に実施してもよい。   In addition, in the said manufacturing method, since the particle size increase process S3 is implemented before block agent introduction | transduction process S4, the particle size of the gold nanoparticle 14 can be increased reliably. However, the particle size increasing step S3 may be performed after the blocking agent introducing step S4.

次に、センサチップ10Aを利用して被検体20を検出する方法について図5を利用して説明する。図5は被検体を検出する工程の概念図である。   Next, a method for detecting the subject 20 using the sensor chip 10A will be described with reference to FIG. FIG. 5 is a conceptual diagram of a process for detecting a subject.

先ず、センサチップ10A上に被検体20と特異的に結合するプローブ分子(結合体)21を含むプローブ分子導入溶液をセンサチップ10A上に流すことによって、図5に示すように、プローブ分子21をMUA膜15上に固定する。この際、ガラス基板11の裏面11b側から所定の波長帯域の光を金ナノ粒子14に対して照射しておき、金ナノ粒子14の散乱光を検出する。   First, a probe molecule introduction solution containing a probe molecule (conjugate) 21 that specifically binds to the analyte 20 on the sensor chip 10A is flowed on the sensor chip 10A. Fix on the MUA membrane 15. At this time, the gold nanoparticle 14 is irradiated with light of a predetermined wavelength band from the back surface 11 b side of the glass substrate 11, and the scattered light of the gold nanoparticle 14 is detected.

金ナノ粒子14に光を照射すると、所定の共鳴波長において共鳴現象の一つであるプラズモン共鳴が生じる。その結果、光が照射された金ナノ粒子14による散乱光の強度が増大する。従って、散乱光のスペクトル(以下、「散乱スペクトル」と称す)は共鳴ピークを有することになる。この共鳴ピークを生じせしめる波長である共鳴散乱波長は、金ナノ粒子14近傍の屈折率に依存している。   When the gold nanoparticles 14 are irradiated with light, plasmon resonance, which is one of resonance phenomena, occurs at a predetermined resonance wavelength. As a result, the intensity of scattered light by the gold nanoparticles 14 irradiated with light increases. Therefore, the spectrum of scattered light (hereinafter referred to as “scattering spectrum”) has a resonance peak. The resonance scattering wavelength, which is the wavelength that causes this resonance peak, depends on the refractive index in the vicinity of the gold nanoparticle 14.

次に、検査すべき試料液をセンサチップ10A上に流す。試料液に被検体20が含まれていると、図5に示すように、その被検体20がプローブ分子21に特異的に結合する。被検体20の結合により金ナノ粒子14近傍の屈折率が変化するため、共鳴散乱波長がシフトし、共鳴ピークの位置が変化する。従って、共鳴散乱波長の変化により試料溶液に被検体20が含まれているか否かを検出することができる。共鳴ピークの変化の有無は、プローブ分子21を固定した段階での共鳴散乱波長の散乱光強度の変化によって検出してもよいし、散乱光の散乱スペクトルを取得することによって、共鳴ピークのシフトを検出してもよい。   Next, the sample liquid to be inspected is made to flow on the sensor chip 10A. When the sample 20 is contained in the sample solution, the sample 20 specifically binds to the probe molecule 21 as shown in FIG. Since the refractive index in the vicinity of the gold nanoparticle 14 changes due to the binding of the subject 20, the resonance scattering wavelength shifts and the position of the resonance peak changes. Therefore, it is possible to detect whether or not the sample 20 is contained in the sample solution based on a change in the resonance scattering wavelength. The presence or absence of a change in the resonance peak may be detected by a change in the scattered light intensity of the resonance scattering wavelength at the stage where the probe molecule 21 is fixed, or the resonance peak shift may be obtained by acquiring a scattered spectrum of the scattered light. It may be detected.

上述したプローブ剤導入溶液及び試料液のセンサチップ10A上への送液は、図6及び図7に示すフローセル30を利用して実施することが可能である。図6は、フローセルの構成を概略的に示す構成図であり、センサチップ10Aをセットした状態の図を示している。図7は、図6のVII―VII線に沿った断面図である。   The above-described feeding of the probe agent introduction solution and the sample solution onto the sensor chip 10A can be performed using the flow cell 30 shown in FIGS. FIG. 6 is a configuration diagram schematically showing the configuration of the flow cell, and shows a state in which the sensor chip 10A is set. FIG. 7 is a cross-sectional view taken along line VII-VII in FIG.

フローセル30は、図6及び図7に示すように、カバー部31がセル本体部33にネジ等により固定されて構成されている。カバー部31の中央部には、センサチップ10Aに光を照射するための開口部32が形成されており、開口部32のうちセル本体部33側の縁部は、センサチップ10Aをセット可能に構成されている。また、セル本体部33のうち開口部32と対向する領域には凹部34が形成されている。凹部34の底面には、試料液をフローセル30内部に導入するための送液口35と、試料液をフローセル30外部に排出するための排出口36とが形成されており、送液口35と排出口36には、図6に示すような送液管41と排出管42とが接続されるようになっている。   As shown in FIGS. 6 and 7, the flow cell 30 is configured by fixing a cover portion 31 to a cell main body portion 33 with screws or the like. An opening 32 for irradiating the sensor chip 10A with light is formed at the center of the cover portion 31, and the sensor chip 10A can be set at the edge of the opening 32 on the cell body 33 side. It is configured. Further, a recess 34 is formed in a region of the cell main body 33 that faces the opening 32. A liquid feed port 35 for introducing the sample liquid into the flow cell 30 and a discharge port 36 for discharging the sample liquid to the outside of the flow cell 30 are formed on the bottom surface of the recess 34. A liquid supply pipe 41 and a discharge pipe 42 as shown in FIG. 6 are connected to the discharge port 36.

フローセル30内にセンサチップ10Aをセットする際には、ガラス基板11の裏面11bがカバー部31側になるように開口部32にセットし、センサチップ10A上にOリング37を配置した後に、カバー部31とセル本体部33とをネジ止めする。これにより、センサチップ10AとOリング37と凹部34の底面とで囲まれた領域内に試料液を送液するための送液空間38が形成されることになる。この送液空間38の容量としては、約180μlが例示される。   When the sensor chip 10A is set in the flow cell 30, it is set in the opening 32 so that the back surface 11b of the glass substrate 11 is on the cover part 31 side, the O-ring 37 is disposed on the sensor chip 10A, and then the cover is placed. The part 31 and the cell main body part 33 are screwed. Thereby, a liquid feeding space 38 for feeding the sample liquid is formed in a region surrounded by the sensor chip 10A, the O-ring 37 and the bottom surface of the recess 34. The volume of the liquid feeding space 38 is exemplified by about 180 μl.

ここで、このフローセル30を利用して被検体を検出するためのイメージング装置50について図8を利用して説明する。図8では、送液管41と排出管42の表示は省略し、また、フローセル30の表示も簡略化している。   Here, an imaging apparatus 50 for detecting a subject using the flow cell 30 will be described with reference to FIG. In FIG. 8, the display of the liquid feeding pipe 41 and the discharge pipe 42 is omitted, and the display of the flow cell 30 is also simplified.

イメージング装置50では、白色光源51から出力された白色光をコリメータ光学系52で平行光にした後、干渉フィルタ53を通して所定の波長帯域の光とする。干渉フィルタ53としては、金ナノ粒子14の共鳴散乱を生じせしめる共鳴散乱波長を含む500〜800nm範囲のうちの50nm以内の狭帯域の光を通すものが例示される。干渉フィルタ53を通過した平行光は、開口部32を通ってセンサチップ10Aに対して斜めからセンサチップ10Aに照射される。光が照射されたガラス基板11上の金ナノ粒子14で散乱された散乱光は、ビデオカメラレンズ54を通してCCDカメラ55で検出され、その検出データが解析装置としてのパーソナルコンピュータ(PC)56に入力される。なお、図8中のハッチング部は、散乱光を示すためのものである。   In the imaging apparatus 50, the white light output from the white light source 51 is converted into parallel light by the collimator optical system 52, and then converted into light having a predetermined wavelength band through the interference filter 53. An example of the interference filter 53 is one that passes light in a narrow band within 50 nm within a range of 500 to 800 nm including a resonance scattering wavelength that causes resonance scattering of the gold nanoparticles 14. The parallel light that has passed through the interference filter 53 is irradiated to the sensor chip 10A obliquely with respect to the sensor chip 10A through the opening 32. The scattered light scattered by the gold nanoparticles 14 on the glass substrate 11 irradiated with the light is detected by the CCD camera 55 through the video camera lens 54, and the detected data is input to a personal computer (PC) 56 as an analysis device. Is done. In addition, the hatching part in FIG. 8 is for showing scattered light.

このイメージング装置50では、いわゆる撮像装置としてのCCDカメラ55を利用しているため、センサチップ10Aの画像を取得できることになる。また、イメージング装置50では、干渉フィルタ53を通して金ナノ粒子14の共鳴散乱波長を含む50nm程度の狭帯域な波長幅を有する光が照射されているので、CCDカメラ55の受光セルで検出される散乱光強度の変化によって、金ナノ粒子14近傍の屈折率変化を検出できることになる。   Since this imaging device 50 uses a CCD camera 55 as a so-called imaging device, an image of the sensor chip 10A can be acquired. In the imaging apparatus 50, light having a narrow wavelength range of about 50 nm including the resonant scattering wavelength of the gold nanoparticle 14 is irradiated through the interference filter 53, so that the scattering detected by the light receiving cell of the CCD camera 55. A change in refractive index in the vicinity of the gold nanoparticle 14 can be detected by a change in light intensity.

上記イメージング装置50において、散乱光強度の変化によって金ナノ粒子14近傍の屈折率変化を測定できることを図9を利用して説明する。図9は、イメージング装置における散乱光強度の測定結果の一例を示す図である。この測定では、図2を利用して具体的な濃度や溶液名等を挙げて説明したセンサチップ製造方法によって製造されたセンサチップ10Aを利用している。そして、そのセンサチップ10Aをフローセル30にセットし、屈折率1.33の水と屈折率1.36のエタノールを交互にフローセル30内に流しながら散乱光の強度を測定している。センサチップ10Aに照射する光の波長帯域は、600〜650nmとしている。図9において横軸は時間(秒)を示し縦軸は散乱光強度(a.u.)を示している。また、図中の領域I,III,Vは、水を送液している時の散乱光の強度を示しており、領域II,IVは、エタノールを送液しているときの散乱光の強度を示している。図9から理解されるように、金ナノ粒子14周囲の媒質が水とエタノールとでは散乱光強度が明らかに相違しており、上記イメージング装置50で確実に金ナノ粒子14近傍の屈折率変化を検出できることがわかる。   It will be described with reference to FIG. 9 that the imaging apparatus 50 can measure the refractive index change in the vicinity of the gold nanoparticle 14 by changing the scattered light intensity. FIG. 9 is a diagram illustrating an example of the measurement result of the scattered light intensity in the imaging apparatus. In this measurement, the sensor chip 10A manufactured by the sensor chip manufacturing method described with reference to FIG. 2 with specific concentrations and solution names is used. Then, the sensor chip 10A is set in the flow cell 30, and the intensity of the scattered light is measured while flowing water having a refractive index of 1.33 and ethanol having a refractive index of 1.36 alternately into the flow cell 30. The wavelength band of light irradiated to the sensor chip 10A is set to 600 to 650 nm. In FIG. 9, the horizontal axis represents time (seconds) and the vertical axis represents scattered light intensity (au). Regions I, III, and V in the figure show the intensity of scattered light when water is being sent, and regions II and IV are the intensity of scattered light when ethanol is sent. Is shown. As understood from FIG. 9, the scattered light intensity is clearly different between the medium around the gold nanoparticles 14 and water and ethanol, and the refractive index change in the vicinity of the gold nanoparticles 14 is surely detected by the imaging device 50. It can be detected.

また、イメージング装置50では、フローセル30を利用しているので、試料液等を送液しながら測定できるため、種々の試料液を連続的に検査することが可能である。また、フローセル30の送液空間38の容量が例えば180μlとすることが可能であるため、微量な試料液を検査することも可能である。   In addition, since the imaging apparatus 50 uses the flow cell 30, measurement can be performed while feeding a sample solution or the like, so that various sample solutions can be inspected continuously. Moreover, since the volume of the liquid feeding space 38 of the flow cell 30 can be set to 180 μl, for example, it is possible to inspect a very small amount of sample liquid.

次に、イメージング装置50を利用して被検体を検出する方法について、プローブ分子、被検体及び溶液濃度等を例示しながら具体的に説明する。   Next, a method for detecting a subject using the imaging apparatus 50 will be specifically described with reference to probe molecules, a subject, a solution concentration, and the like.

先ず、イメージング装置50において、フローセル30内にガラス基板11をセットした後、白色光源51から白色光を出力させて、ガラス基板11上の金ナノ粒子14からの散乱光をCCDカメラ55で検出するようにしておく。次に、1mMの(+)-Biotinyl-3,6-dioxaoctanediamine(以下、単に「ビオチン」と称す)と0.1MのWSCを含むプローブ分子導入溶液を送液管41を通してフローセル30内に送液する。これにより、図10に示すように、MUA膜15上に、プローブ分子21としてのビオチンが固定される。そのため、金ナノ粒子14近傍の屈折率が変化し、共鳴散乱波長がシフトする。このように、共鳴散乱波長がシフトすることで、CCDカメラ55で検出される散乱光の強度が変化することになる。   First, in the imaging apparatus 50, after setting the glass substrate 11 in the flow cell 30, white light is output from the white light source 51, and scattered light from the gold nanoparticles 14 on the glass substrate 11 is detected by the CCD camera 55. Keep it like that. Next, a probe molecule introduction solution containing 1 mM (+)-Biotinyl-3,6-dioxaoctanediamine (hereinafter simply referred to as “biotin”) and 0.1 M WSC is fed into the flow cell 30 through the feeding tube 41. To do. Thereby, as shown in FIG. 10, biotin as the probe molecule 21 is fixed on the MUA film 15. Therefore, the refractive index in the vicinity of the gold nanoparticles 14 changes, and the resonant scattering wavelength shifts. As described above, the intensity of the scattered light detected by the CCD camera 55 changes due to the shift of the resonant scattering wavelength.

次に、被検体20としての1.6nMのStreptavidin(以下、単に「ストレプトアビジン」と称す)を含むPhosphate Buffered Saline(PBS)溶液を試料液として送液管41を通してフローセル30内に送液する。ストレプトアビジンは、ビオチンと強い相互作用を有するため、ビオチンに特異的に結合される。その結果、金ナノ粒子14近傍の屈折率が変化し、プローブ分子21が固定された場合と同様の理由により、散乱光の強度が更に変化することになる。従って、イメージング装置50では、CCDカメラ55で検出される散乱光の強度の変化によって、金ナノ粒子14周囲の屈折率変化を検出することで、被検体20を検出できることになる。   Next, a Phosphate Buffered Saline (PBS) solution containing 1.6 nM Streptavidin (hereinafter simply referred to as “streptavidin”) as the subject 20 is fed into the flow cell 30 through the liquid feed tube 41 as a sample solution. Since streptavidin has a strong interaction with biotin, it is specifically bound to biotin. As a result, the refractive index in the vicinity of the gold nanoparticle 14 changes, and the intensity of the scattered light further changes for the same reason as when the probe molecule 21 is fixed. Therefore, in the imaging apparatus 50, the subject 20 can be detected by detecting the change in the refractive index around the gold nanoparticle 14 by the change in the intensity of the scattered light detected by the CCD camera 55.

次に、センサチップ10A及びセンサチップ10Aの製造方法の効果について説明する。   Next, effects of the sensor chip 10A and the manufacturing method of the sensor chip 10A will be described.

センサチップ10Aでは、アミノシラン膜12上に金ナノ粒子14を固定した後に、金ナノ粒子14が吸着していない空の吸着サイトをブロック剤16としてのPEGを吸着させることでブロックしているため、試料液をセンサチップ10A上に送液した際、被検体20がアミノシラン膜12上に固定されることが抑制されている。その結果、MUA膜15及びプローブ分子によって金ナノ粒子14近傍に配置される被検体20を効率良く検出することが可能である。   In the sensor chip 10A, after fixing the gold nanoparticles 14 on the aminosilane film 12, the empty adsorption sites to which the gold nanoparticles 14 are not adsorbed are blocked by adsorbing PEG as the blocking agent 16, When the sample liquid is fed onto the sensor chip 10A, the subject 20 is prevented from being fixed on the aminosilane film 12. As a result, the analyte 20 arranged in the vicinity of the gold nanoparticle 14 can be efficiently detected by the MUA film 15 and the probe molecule.

また、金ナノ粒子14を固定した後、MUA膜15を形成する前に、ブロック剤導入溶液にガラス基板11を浸漬させているため、センサ領域13上の吸着サイトにおいて、金ナノ粒子14が吸着していない部分にブロック剤16が固定される。そのため、隣接する金ナノ粒子14間にブロック剤16が配置されることになる。これによって、MUA膜15を形成するために、MUA膜15を形成するための所定の溶液とガラス基板11とを接触させても隣接する金ナノ粒子14同士が会合することが抑制されている。   Since the glass substrate 11 is immersed in the blocking agent introduction solution after the gold nanoparticles 14 are fixed and before the MUA film 15 is formed, the gold nanoparticles 14 are adsorbed at the adsorption sites on the sensor region 13. The blocking agent 16 is fixed to the part that is not. Therefore, the blocking agent 16 is disposed between the adjacent gold nanoparticles 14. Thereby, even if the predetermined solution for forming the MUA film 15 and the glass substrate 11 are brought into contact with each other in order to form the MUA film 15, the adjacent gold nanoparticles 14 are suppressed from being associated with each other.

ブロック剤16を設けることによって金ナノ粒子14同士の会合が抑制される効果について、ブロック剤16を設けないのセンサチップの場合と対比して具体的に説明する。   The effect of suppressing the association between the gold nanoparticles 14 by providing the blocking agent 16 will be specifically described in comparison with the case of the sensor chip without the blocking agent 16.

ブロック剤16を設けていない場合には、MUA膜15を形成する際等に、溶液の流れ等により金ナノ粒子14同士が会合するため、散乱光の散乱スペクトルに歪が生じる。このように歪が生じると、共鳴ピーク近傍での散乱光強度の変化又は散乱スペクトルを正確に取得できないため、結果として、被検体20を検出するときの検出感度が低下することになる。   When the blocking agent 16 is not provided, when the MUA film 15 is formed, the gold nanoparticles 14 are associated with each other due to the flow of the solution and the like, so that the scattering spectrum of the scattered light is distorted. When distortion occurs in this way, the change in scattered light intensity or the scattered spectrum in the vicinity of the resonance peak cannot be obtained accurately, and as a result, the detection sensitivity when detecting the subject 20 is lowered.

これに対して、ブロック剤16を設けている本実施形態のセンサチップ10Aでは、ブロック剤16によって金ナノ粒子14同士の会合が抑制されているため、散乱光のスペクトルに歪は生じていない。そのため、共鳴ピーク近傍での散乱光強度の変化又は散乱スペクトルをより正確に取得することができるため、被検体20を高感度で検出可能である。   On the other hand, in the sensor chip 10 </ b> A of the present embodiment in which the blocking agent 16 is provided, since the association between the gold nanoparticles 14 is suppressed by the blocking agent 16, no distortion occurs in the spectrum of the scattered light. Therefore, since the change in the scattered light intensity or the scattered spectrum in the vicinity of the resonance peak can be acquired more accurately, the subject 20 can be detected with high sensitivity.

隣接する金ナノ粒子14間に確実にブロック剤16を配置する観点から、センサ領域13における金ナノ粒子14の粒子密度は、前述したように、30〜60個/μmとすることが好適である。粒子密度が30個より少ないと被検体20を検出するために必要な散乱光を十分得られない一方、粒子密度が60個より多いと金ナノ粒子14を固定した段階で、金ナノ粒子14同士の会合が生じやすくなるからである。そして、上記範囲の粒子密度によって被検体20を検出するために十分な散乱光を生じせしめながら、金ナノ粒子14の会合を抑制できる。その結果、被検体20をより一層高感度で検出することが可能である。 From the viewpoint of surely disposing the blocking agent 16 between the adjacent gold nanoparticles 14, the particle density of the gold nanoparticles 14 in the sensor region 13 is preferably 30 to 60 / μm 2 as described above. is there. If the particle density is less than 30, sufficient scattered light necessary for detecting the analyte 20 cannot be obtained. On the other hand, if the particle density is more than 60, the gold nanoparticles 14 are fixed together. This is because this meeting is likely to occur. The association of the gold nanoparticles 14 can be suppressed while generating sufficient scattered light to detect the analyte 20 with the particle density in the above range. As a result, the subject 20 can be detected with higher sensitivity.

ここで、ブロック剤16として、PEG、グリコール酸、酢酸ナトリウム、16−ヒドロキシヘキサデカン酸のように、カルボキシル基を有するものであることが好ましいことについて図12〜図15を利用して説明する。   Here, it will be described with reference to FIGS. 12 to 15 that the blocking agent 16 preferably has a carboxyl group, such as PEG, glycolic acid, sodium acetate, and 16-hydroxyhexadecanoic acid.

図12は、ブロック剤16としてPEGを利用する場合のガラス基板11の吸収スペクトルを示す図である。図13は、ブロック剤16としてグリコール酸を利用する場合のガラス基板11の吸収スペクトルを示す図である。図14は、ブロック剤16として酢酸ナトリウムを利用する場合のガラス基板11の吸収スペクトルを示す図である。図15は、ブロック剤16として16―ヒドロキシヘキサンデカン酸を利用する場合のガラス基板11の吸収スペクトルを示す図である。図12〜図15では、金ナノ粒子14を固定化した後の吸収スペクトル、ブロック剤16導入後の吸収スペクトル、MUA膜15形成後の吸収スペクトルをそれぞれ示している。各吸収スペクトルは、図2に示すフローチャートにおいて、粒径増大工程S3、ブロック剤導入工程S4、MUA膜形成工程S5後に吸光度計を利用して測定している。   FIG. 12 is a diagram showing an absorption spectrum of the glass substrate 11 when PEG is used as the blocking agent 16. FIG. 13 is a diagram showing an absorption spectrum of the glass substrate 11 when glycolic acid is used as the blocking agent 16. FIG. 14 is a diagram showing an absorption spectrum of the glass substrate 11 when sodium acetate is used as the blocking agent 16. FIG. 15 is a diagram showing an absorption spectrum of the glass substrate 11 when 16-hydroxyhexanedecanoic acid is used as the blocking agent 16. 12 to 15 show an absorption spectrum after immobilizing the gold nanoparticles 14, an absorption spectrum after introducing the blocking agent 16, and an absorption spectrum after forming the MUA film 15, respectively. Each absorption spectrum is measured using an absorptiometer after the particle size increasing step S3, the blocking agent introducing step S4, and the MUA film forming step S5 in the flowchart shown in FIG.

図12におけるブロック剤16の固定化方法は前述した通りである。図13〜図15におけるブロック剤16の固定化方法は、ブロック剤導入工程S4において、20mg/mlのPEGの代わりに、それぞれ3.8mg/mlのグリコール酸、4.1mg/mlの酢酸ナトリウム、2.7mg/mlの16−ヒドロキシヘキサデカン酸を溶解している点で相違する以外は、PEGの場合と同様である。   The method for immobilizing the blocking agent 16 in FIG. 12 is as described above. The immobilization method of the blocking agent 16 in FIG. 13 to FIG. 15 is 3.8 mg / ml glycolic acid, 4.1 mg / ml sodium acetate, respectively, instead of 20 mg / ml PEG in the blocking agent introduction step S4. PEG is the same as PEG except that 2.7 mg / ml 16-hydroxyhexadecanoic acid is dissolved.

図12〜図15に示すように、上記ブロック剤16を使用することによって、各吸収スペクトルに歪みがみえず、金ナノ粒子14の会合が抑制されていることがわかる。PEG、グリコール酸、酢酸ナトリウム、16−ヒドロキシヘキサデカン酸等がカルボキシル基を有することによる。すなわち、アミノシラン膜12は、金ナノ粒子14の吸着サイトとしてアミノ基を有しているが、上記のようにカルボキシル基を有する化合物をブロック剤16とすることによって、金ナノ粒子14を固定化した後の空の吸着サイトを、アミド結合を形成させて塞ぐことができる。その結果、例えば、MUA膜15を形成する際などにおいても、隣接する金ナノ粒子14の会合を確実に抑制することができる。よって、ブロック剤16としては、カルボキシル基を有する化合物であればよく、PEGの他、例えば、上記のように、グリコール酸、酢酸ナトリウム、16−ヒドロキシヘキサデカン酸を利用することが可能である。なお、センサチップ10Aを利用してタンパク質を検出する場合には、ブロック剤16へのタンパク質の非特異吸着を抑制するPEG誘導体を利用することが好ましい。   As shown in FIGS. 12 to 15, it can be seen that by using the blocking agent 16, no distortion is seen in each absorption spectrum, and the association of the gold nanoparticles 14 is suppressed. This is because PEG, glycolic acid, sodium acetate, 16-hydroxyhexadecanoic acid and the like have a carboxyl group. That is, the aminosilane film 12 has an amino group as an adsorption site for the gold nanoparticle 14, but the gold nanoparticle 14 is immobilized by using the compound having a carboxyl group as the blocking agent 16 as described above. Later empty adsorption sites can be blocked by forming amide bonds. As a result, for example, even when the MUA film 15 is formed, association of adjacent gold nanoparticles 14 can be reliably suppressed. Therefore, the blocking agent 16 may be any compound having a carboxyl group, and in addition to PEG, for example, glycolic acid, sodium acetate, and 16-hydroxyhexadecanoic acid can be used as described above. In addition, when detecting protein using the sensor chip 10A, it is preferable to use a PEG derivative that suppresses nonspecific adsorption of the protein to the blocking agent 16.

また、金ナノ粒子14の粒径は50nm〜100nmであることが好ましい。図16は、金ナノ粒子14周囲の媒質の屈折率を1.35としてMie散乱理論を利用して計算された金ナノ粒子14の散乱スペクトルを示す図である。図16において横軸は波長(nm)を示し、縦軸は散乱断面積を示している。金ナノ粒子14の粒径は、30nm、50nm、80nm、100nm、120nm、150nm、180nm、200nmとして計算を行っている。図16に示すように、金ナノ粒子14の粒径が50nm以上で共鳴ピークが生じていることが分かる。また、粒径が150nmを超えると散乱スペクトルが歪だすことが分かる。   Moreover, it is preferable that the particle size of the gold nanoparticle 14 is 50 nm-100 nm. FIG. 16 is a diagram showing a scattering spectrum of the gold nanoparticle 14 calculated using the Mie scattering theory with the refractive index of the medium around the gold nanoparticle 14 being 1.35. In FIG. 16, the horizontal axis indicates the wavelength (nm), and the vertical axis indicates the scattering cross section. The gold nanoparticles 14 are calculated with the particle diameters of 30 nm, 50 nm, 80 nm, 100 nm, 120 nm, 150 nm, 180 nm, and 200 nm. As shown in FIG. 16, it can be seen that a resonance peak occurs when the particle size of the gold nanoparticle 14 is 50 nm or more. It can also be seen that the scattering spectrum is distorted when the particle size exceeds 150 nm.

また、図17は、散乱光強度の屈折率依存性を示す図である。図17において横軸は屈折率を示し、縦軸は散乱断面積を示している。屈折率依存性は、図16に示した散乱スペクトルを微分した際の長波長側のピーク位置を基準、より具体的には、散乱スペクトルの共鳴ピークに対して長波長側における散乱スペクトルの勾配の最大値を持つ波長位置を基準にして取得している。各粒径において、散乱断面積(散乱光強度)は屈折率に対してほぼ直線状になっており、この直線の傾きがセンサチップ10Aのセンサとしての感度に対応する。センサチップ10Aの感度は、金ナノ粒子14の粒径が80nm程度からほぼ一定となり、100nmより大きいものに対してはほとんど変化していない。   FIG. 17 is a diagram showing the refractive index dependence of the scattered light intensity. In FIG. 17, the horizontal axis represents the refractive index, and the vertical axis represents the scattering cross section. The refractive index dependency is based on the peak position on the long wavelength side when the scattering spectrum shown in FIG. 16 is differentiated, more specifically, the gradient of the scattering spectrum on the long wavelength side with respect to the resonance peak of the scattering spectrum. Acquired based on the wavelength position having the maximum value. At each particle size, the scattering cross section (scattered light intensity) is substantially linear with respect to the refractive index, and the slope of this straight line corresponds to the sensitivity of the sensor chip 10A as a sensor. The sensitivity of the sensor chip 10A is almost constant from about 80 nm in the particle size of the gold nanoparticles 14 and hardly changes for those having a size larger than 100 nm.

図16及び図17より、粒径が大きい方がより大きな散乱断面積が得られることになるが、粒径が100nmより大きくしてもセンサの感度の向上はあまり望めないことがわかる。よって、共鳴散乱現象を利用して被検体20を検出する際には、金ナノ粒子14の粒径は50nm〜100nmが好ましい。金ナノ粒子14を、例えば、前述したようにクエン酸還元法等を利用して合成する場合には、一度の合成プロセスで30nm程度の粒径が得られる一方、50nm以上の粒径を得ることは困難である。そのため、図2を利用して説明したように、例えば、50nm以上の粒径の金ナノ粒子14を得るためには、金ナノ粒子14をガラス基板11に固定した後に粒径を増大させる必要がある。そして、粒径の増大は、粒子成長溶液に複数回浸漬させて実施することになる。上記粒径の範囲で示したように、センサ感度を考慮して、粒径を100nm以下とすることで、ガラス基板11を粒子成長溶液への浸漬回数を低減できるため、被検体20の検出感度の高感度化を図りながら、効率的にセンサチップ10Aを製造可能である。   16 and 17, it can be seen that a larger scattering cross section can be obtained when the particle size is larger, but even if the particle size is larger than 100 nm, improvement in the sensitivity of the sensor cannot be expected much. Therefore, when the analyte 20 is detected using the resonance scattering phenomenon, the gold nanoparticles 14 preferably have a particle size of 50 nm to 100 nm. When the gold nanoparticles 14 are synthesized using, for example, the citric acid reduction method as described above, a particle size of about 30 nm is obtained by a single synthesis process, while a particle size of 50 nm or more is obtained. It is difficult. Therefore, as described with reference to FIG. 2, for example, in order to obtain gold nanoparticles 14 having a particle diameter of 50 nm or more, it is necessary to increase the particle diameter after fixing the gold nanoparticles 14 to the glass substrate 11. is there. The increase in particle size is carried out by immersing the particle growth solution a plurality of times. As shown in the range of the particle diameter, considering the sensor sensitivity, the number of immersions of the glass substrate 11 in the particle growth solution can be reduced by setting the particle diameter to 100 nm or less. The sensor chip 10A can be efficiently manufactured while increasing the sensitivity.

また、センサチップ10Aを利用した被検体20の検出では、プラズモン共鳴による散乱光の強度変化(又は散乱スペクトルの共鳴ピーク位置の変化)を利用しているため、例えば、表面プラズモン共鳴を利用する場合に比べて高感度に被検体20を検出可能である。更に、いわゆる蛍光法のように、被検体20に蛍光プローブをラベル化しなくてもよいことから、試料液中の被検体20の有無の検査を実施するための検査コストを低減することができる。また、蛍光法のように、被検体20の検出するための前段階の準備工程として、蛍光プローブをラベル化する工程を有しないため、より簡易な準備で被検体20を検出可能である。   In addition, since the detection of the subject 20 using the sensor chip 10A uses a change in the intensity of scattered light due to plasmon resonance (or a change in the resonance peak position of the scattering spectrum), for example, when using surface plasmon resonance It is possible to detect the subject 20 with higher sensitivity than the above. Furthermore, unlike the so-called fluorescence method, it is not necessary to label the subject 20 with the fluorescent probe, so that the inspection cost for performing the inspection for the presence or absence of the subject 20 in the sample liquid can be reduced. In addition, unlike the fluorescence method, the preparation step in the previous stage for detecting the subject 20 does not include a step of labeling the fluorescent probe, and thus the subject 20 can be detected with simpler preparation.

図18は、本発明に係るセンサチップの他の実施形態の平面図である。図19は、図18のXIX−XIX線に沿った断面構成を示す模式図である。   FIG. 18 is a plan view of another embodiment of a sensor chip according to the present invention. FIG. 19 is a schematic diagram showing a cross-sectional configuration along the line XIX-XIX in FIG.

図18及び図19に示すセンサチップ10Bは、いわゆるマイクロアレイである。センサチップ10Bの構成は、ガラス基板11の表面に形成されたアミノシラン膜12上にセンサ領域13を複数(図19では、6個)有する点で、図1に示したセンサチップ10Aの構成と主に相違する。なお、図19では、各センサ領域13上の構成を簡略化して記載しているが、各センサ領域13上の構成は、図1に示したセンサチップ10Aのセンサ領域13上の構成と同様である。すなわち、金ナノ粒子14が所定の粒子密度で固定されており、金ナノ粒子14が吸着していない吸着サイトは、ブロック剤16でふさがれている。そして、金ナノ粒子14の表面には、MUA膜15(図19では不図示)が形成されている。なお、ガラス基板11の表面11a側からみた場合のガラス基板11の大きさが例えば18mm×18mmである場合であって、図18に示すように、センサ領域13が円形の場合には、センサ領域13の直径d3としては約500μmが例示される。   The sensor chip 10B shown in FIGS. 18 and 19 is a so-called microarray. The configuration of the sensor chip 10B is the same as the configuration of the sensor chip 10A shown in FIG. 1 in that it has a plurality of sensor regions 13 (six in FIG. 19) on the aminosilane film 12 formed on the surface of the glass substrate 11. Is different. In FIG. 19, the configuration on each sensor region 13 is described in a simplified manner. However, the configuration on each sensor region 13 is the same as the configuration on the sensor region 13 of the sensor chip 10A shown in FIG. is there. That is, the gold nanoparticle 14 is fixed at a predetermined particle density, and the adsorption site where the gold nanoparticle 14 is not adsorbed is blocked with the blocking agent 16. A MUA film 15 (not shown in FIG. 19) is formed on the surface of the gold nanoparticle 14. In addition, when the size of the glass substrate 11 when viewed from the surface 11a side of the glass substrate 11 is, for example, 18 mm × 18 mm and the sensor region 13 is circular as shown in FIG. 18, the sensor region As the diameter d3 of 13, about 500 μm is exemplified.

センサチップ10Aの製造方法は、図2に示した粒子固定工程S2において、ガラス基板11を濃度10nMの金ナノ粒子溶液に浸漬させる代わりに、各センサ領域13に上記金ナノ粒子溶液を、例えばピペットを使用して滴下することによって、各センサ領域13に金ナノ粒子14を固定する。また、粒径増大工程S3においても同様に、ブロック剤16が固定された各センサ領域13上に粒子成長溶液を、例えばピペットを使用して滴下することによって、各センサ領域13上の金ナノ粒子14の粒径を増大させる。更に、ブロック剤導入工程S4においても同様に、各センサ領域13に上記ブロック剤導入溶液を、例えばピペットを使用して滴下することによって、各センサ領域13内において金ナノ粒子14が固定されていない部分にブロック剤16を固定する。更に、MUA膜形成工程S5においても同様に、各センサ領域13上にMUAエタノール溶液を滴下することで、各センサ領域13における金ナノ粒子14表面にMUA膜15を形成する。なお、粒子固定工程S2、粒径増大工程S3、ブロック剤導入工程S4、MUA膜形成工程S5におけるガラス基板11の洗浄方法等は、図2に示したセンサチップ10Aの製造方法の場合と同様であるため説明を省略している。   In the particle fixing step S2 shown in FIG. 2, instead of immersing the glass substrate 11 in a gold nanoparticle solution having a concentration of 10 nM, the sensor chip 10A is manufactured by, for example, pipetting the gold nanoparticle solution into each sensor region 13. The gold nanoparticles 14 are fixed to each sensor region 13 by dripping using. Similarly, in the particle size increasing step S3, the gold nanoparticle on each sensor region 13 is dropped by dropping the particle growth solution onto each sensor region 13 to which the blocking agent 16 is fixed using, for example, a pipette. Increase particle size of 14. Further, similarly in the blocking agent introduction step S4, the gold nanoparticles 14 are not fixed in each sensor region 13 by dropping the blocking agent introduction solution into each sensor region 13 using, for example, a pipette. The blocking agent 16 is fixed to the part. Further, similarly in the MUA film forming step S5, the MUA film 15 is formed on the surface of the gold nanoparticle 14 in each sensor region 13 by dropping the MUA ethanol solution on each sensor region 13. The glass substrate 11 cleaning method and the like in the particle fixing step S2, the particle size increasing step S3, the blocking agent introducing step S4, and the MUA film forming step S5 are the same as in the method of manufacturing the sensor chip 10A shown in FIG. The explanation is omitted because there are.

センサチップ10Aを利用して被検体20を検出する場合には、先ず、複数のセンサ領域13上に、プローブ分子導入溶液をピペット等を利用して滴下させて各センサ領域13のMUA膜15上にプローブ分子21を固定させる。この際、センサ領域13毎に異なるプローブ分子導入溶液を滴下することによって、センサ領域13毎に異なるプローブ分子21を固定する。   When the subject 20 is detected using the sensor chip 10A, first, a probe molecule introduction solution is dropped onto the plurality of sensor regions 13 using a pipette or the like, and the MUA film 15 in each sensor region 13 is then dropped. The probe molecule 21 is fixed to the substrate. At this time, a different probe molecule introduction solution is dropped for each sensor region 13 to fix different probe molecules 21 for each sensor region 13.

次いで、プローブ分子21が固定されたセンサチップ10Bをフローセル30にセットし、図8に示したイメージング装置50で、センサチップ10Aの場合と同様にして、散乱光を検出すると共に、センサチップ10Bの画像を取得する。そして、送液管41及び排出管42を利用してフローセル30内に検査するべき試料液を送液する。試料液内に、各センサ領域13に固定されたプローブ分子と特異的に結合する被検体20がそれぞれ含有されていれば、被検体20が対応するプローブ分子21に結合する。その結果、被検体20がプローブ分子21に結合したセンサ領域13での散乱強度が変化することになる。各センサ領域13に固定されたプローブ分子21及びそれに対応する被検体20は既知であるため、試料液中に含まれている被検体20が確実に検出される。この場合、センサチップ10B上に複数のセンサ領域13が設けられていることから、一度の測定で、複数の被検体20を検出できることになる。その結果、効率的に試料液の検査を実施できる。   Next, the sensor chip 10B to which the probe molecules 21 are fixed is set in the flow cell 30, and the imaging device 50 shown in FIG. 8 detects the scattered light in the same manner as the sensor chip 10A and Get an image. Then, the sample liquid to be inspected is fed into the flow cell 30 using the liquid feeding pipe 41 and the discharge pipe 42. If the sample solution contains the analyte 20 that specifically binds to the probe molecule immobilized on each sensor region 13, the analyte 20 binds to the corresponding probe molecule 21. As a result, the scattering intensity at the sensor region 13 where the subject 20 is bonded to the probe molecule 21 changes. Since the probe molecules 21 fixed to each sensor region 13 and the corresponding analyte 20 are known, the analyte 20 contained in the sample liquid is reliably detected. In this case, since the plurality of sensor regions 13 are provided on the sensor chip 10B, the plurality of subjects 20 can be detected by one measurement. As a result, the sample liquid can be inspected efficiently.

以上、本発明に係るセンサチップ及びセンサチップ製造方法の好適な実施形態について説明したが、本発明に係るセンサチップ及びセンサチップ製造方法は上記実施形態に限定されない。例えば、センサチップ10AはMUA膜を有するとしたが、図20に示すようにMUA膜を有しないセンサチップ10Cとすることも可能である。なお、図20では、センサ領域13が1つの場合のみ示しているが、センサ領域13を複数有する場合も同様である。図20に示したセンサチップ10Aを利用して被検体20を検出する場合には、センサチップ10Cをフローセル30にセットした後、プローブ分子導入溶液を送液する前に、MUAエタノール溶液をフローセル30に送液して金ナノ粒子14の表面上にMUA膜15を形成した後、前述したように、センサチップ10Aの場合と同様にして、プローブ分子導入溶液及び試料液を順に送液すればよい。ただし、センサチップ10Cが、センサ領域13を複数有しており、センサ領域13毎に異なる被検体20を検出する場合には、フローセル30を利用して各センサ領域13にMUA膜15を形成した後、一度フローセル30からセンサチップ10Cを取り出して各センサ領域13に異なるプローブ分子導入溶液を滴下した後、再度フローセル30にセットして試料液を送液して、被検体20を検出すればよい。   The preferred embodiments of the sensor chip and the sensor chip manufacturing method according to the present invention have been described above. However, the sensor chip and the sensor chip manufacturing method according to the present invention are not limited to the above embodiment. For example, although the sensor chip 10A has a MUA film, it may be a sensor chip 10C that does not have a MUA film as shown in FIG. In FIG. 20, only one sensor region 13 is shown, but the same applies to the case where a plurality of sensor regions 13 are provided. When the subject 20 is detected using the sensor chip 10A shown in FIG. 20, the MUA ethanol solution is added to the flow cell 30 after the sensor chip 10C is set in the flow cell 30 and before the probe molecule introduction solution is sent. After forming the MUA film 15 on the surface of the gold nanoparticle 14 as described above, the probe molecule introduction solution and the sample solution may be sequentially fed as in the case of the sensor chip 10A as described above. . However, when the sensor chip 10 </ b> C has a plurality of sensor regions 13 and detects different subjects 20 for each sensor region 13, the MUA film 15 is formed in each sensor region 13 using the flow cell 30. Thereafter, the sensor chip 10C is once taken out from the flow cell 30 and a different probe molecule introduction solution is dropped on each sensor region 13, and then set in the flow cell 30 again to send the sample liquid and detect the subject 20. .

更に、金属微粒子14は金ナノ粒子14としたが、光と共鳴現象を生じせしめるものであれば特に限定されず、例えば、銀からなる微粒子を利用することも可能である。また、第1の膜12は、シラン化合物からなるアミノシラン膜12としたが金属微粒子を吸着させることが可能であればよく、ブロック剤16も、カルボキシル基を有する化合物としたが、隣接する金属微粒子14同士の会合を抑制可能であって第1の膜12に固定できるものであれば特に限定されない。例えば、第1の膜が末端にチオール基を有する化合物から形成されている場合には、ブロック剤16として、チオール基を有する化合物、又はマレイミド基を有する化合物を利用することも可能である。更に、第2の膜15はMUA膜15としたが、金属微粒子14表面に形成可能であり被検体20をプローブ分子21等を介して固定可能なものであれば、特に限定されず、例えば、メルカプトプロピオン酸を利用することも可能である。更にまた、基板11はガラス基板11としたが、金属微粒子の共鳴波長を含む波長帯域の光を透過できるものであれば特に限定されない。   Furthermore, although the metal fine particles 14 are the gold nanoparticles 14, the metal fine particles 14 are not particularly limited as long as they cause a resonance phenomenon with light, and for example, fine particles made of silver can be used. The first film 12 is an aminosilane film 12 made of a silane compound, as long as it is capable of adsorbing metal fine particles, and the blocking agent 16 is also a compound having a carboxyl group. There is no particular limitation as long as it can suppress the association between 14 and can be fixed to the first film 12. For example, when the first film is formed from a compound having a thiol group at the terminal, a compound having a thiol group or a compound having a maleimide group can be used as the blocking agent 16. Further, the second film 15 is the MUA film 15, but is not particularly limited as long as it can be formed on the surface of the metal fine particle 14 and the subject 20 can be fixed via the probe molecule 21 or the like. Mercaptopropionic acid can also be used. Furthermore, although the substrate 11 is the glass substrate 11, it is not particularly limited as long as it can transmit light in a wavelength band including the resonance wavelength of the metal fine particles.

また、センサチップ10A〜10Cを利用した被検体20の検出方法の説明では、散乱光を検出するようにしているが、例えば、センサチップ10A〜10Cが有するガラス基板11に光を入射させて透過光を検出することで被検体20を検出することも可能である。また、センサチップ10A〜10Cを利用して被検体20を検出する場合には、例えば、散乱スペクトル測定装置によって散乱光の散乱スペクトルを取得することで共鳴散乱波長のシフトを実際に検出して、被検体20を検出するようにしてもよい。   In the description of the detection method of the subject 20 using the sensor chips 10A to 10C, scattered light is detected. For example, light is incident on the glass substrate 11 of the sensor chips 10A to 10C and transmitted. It is also possible to detect the subject 20 by detecting light. In addition, when detecting the subject 20 using the sensor chips 10A to 10C, for example, the shift of the resonance scattering wavelength is actually detected by acquiring the scattering spectrum of the scattered light by the scattering spectrum measuring device, The subject 20 may be detected.

更に、センサチップ10A〜10Cでは、金属微粒子14の粒径は、50nm〜100nmが好適であるとしたが、金属微粒子の粒径は、50nm未満であっても良い。ただし、共鳴散乱を利用する場合には、より効率的に散乱光を生じせしめる観点から、上記粒径の範囲が好ましいことは、前述の通りである。   Furthermore, in the sensor chips 10A to 10C, the metal particle 14 is preferably 50 nm to 100 nm in particle diameter, but the metal particle diameter may be less than 50 nm. However, as described above, when using resonance scattering, the range of the particle diameter is preferable from the viewpoint of more efficiently generating scattered light.

また、センサ領域13上の金属微粒子14の粒子密度(所定の粒子密度)は、30〜60個/μmであることが、前述した理由から好適であるがこれに限定されない。所定の粒子密度としては、第1の膜12のセンサ領域13内の吸着サイトを全て金属微粒子14によってふさがれないような粒子密度であればよい。 Further, the particle density (predetermined particle density) of the metal fine particles 14 on the sensor region 13 is preferably 30 to 60 particles / μm 2 for the reason described above, but is not limited thereto. The predetermined particle density may be a particle density that does not block all the adsorption sites in the sensor region 13 of the first film 12 with the metal fine particles 14.

更に、図2〜図4を利用して説明したセンサチップ10Aの製造方法において具体的に例示した溶液の組成及び処理時間等の数値は一例であり、それに本発明のセンサチップの製造方法が限定されるものではない。   Furthermore, the numerical values such as the composition of the solution and the processing time specifically exemplified in the method for manufacturing the sensor chip 10A described with reference to FIGS. 2 to 4 are examples, and the method for manufacturing the sensor chip of the present invention is limited thereto. Is not to be done.

以上の説明では、センサチップ10A〜10Cでは、DNAやタンパク質等の被検体20を検出するものとしたが、例えば、所定の溶媒を溶解した溶液の屈折率の測定などにも利用することが可能である。この場合には、第2の膜15を備えなくてもよい。   In the above description, the sensor chips 10A to 10C detect the analyte 20 such as DNA or protein. However, the sensor chips 10A to 10C can be used for measuring the refractive index of a solution in which a predetermined solvent is dissolved. It is. In this case, the second film 15 may not be provided.

本発明に係るセンサチップの一実施形態の構成を示す概略図である。It is the schematic which shows the structure of one Embodiment of the sensor chip based on this invention. センサチップの製造方法のフローチャートである。It is a flowchart of the manufacturing method of a sensor chip. センサチップの製造方法の工程を示す概略図である。It is the schematic which shows the process of the manufacturing method of a sensor chip. センサチップの製造方法の工程を示す概略図である。It is the schematic which shows the process of the manufacturing method of a sensor chip. センサチップを利用した被検体を検出する方法の概念図である。It is a conceptual diagram of the method of detecting the test object using a sensor chip. フローセルの構成を示す構成図である。It is a block diagram which shows the structure of a flow cell. 図6のVII―VII線に沿った断面図である。It is sectional drawing along the VII-VII line of FIG. イメージング装置の構成を概略的に示す構成図である。It is a block diagram which shows the structure of an imaging device schematically. イメージング装置を利用した金属微粒子近傍の屈折率変化の測定の一例を示す図である。It is a figure which shows an example of the measurement of the refractive index change of the metal microparticle vicinity using an imaging device. センサチップにプローブ分子が固定した状態を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the state by which the probe molecule was fixed to the sensor chip. 図10のプローブ分子に被検体が吸着した状態を示す模式図である。FIG. 11 is a schematic diagram showing a state in which an analyte is adsorbed on the probe molecule of FIG. ブロック剤としてPEGを利用する場合の吸光度変化を示す図である。It is a figure which shows the light absorbency change when using PEG as a blocking agent. ブロック剤としてグリコール酸を利用する場合の吸光度変化を示す図である。It is a figure which shows the light-absorbency change at the time of utilizing glycolic acid as a blocking agent. ブロック剤として酢酸ナトリウムを利用する場合のの吸光度変化を示す図である。It is a figure which shows the light absorbency change when using sodium acetate as a blocking agent. ブロック剤として16−ヒドロキシヘキサデカン酸を利用する場合の吸光度変化を示す図である。It is a figure which shows the light absorbency change when utilizing 16-hydroxyhexadecanoic acid as a blocking agent. 金属微粒子の散乱スペクトルの粒径依存性を示す図である。It is a figure which shows the particle size dependence of the scattering spectrum of a metal microparticle. 散乱光強度の屈折率依存性を示す図である。It is a figure which shows the refractive index dependence of scattered light intensity | strength. 本発明に係るセンサチップの他の実施形態の平面図である。It is a top view of other embodiments of a sensor chip concerning the present invention. 図18のXIX−XIX線に沿った構成を示す概略図である。It is the schematic which shows the structure along the XIX-XIX line | wire of FIG. 本発明に係るセンサチップの更に他の実施形態の構成を示す概略図である。It is the schematic which shows the structure of other embodiment of the sensor chip based on this invention.

符号の説明Explanation of symbols

10A,10B、10C…センサチップ、11…ガラス基板、11a…ガラス基板の表面、12…アミノシラン膜(第1の膜)、13…センサ領域、14…金ナノ粒子(金属微粒子)、15…MUA膜(第2の膜)、16…ブロック剤、20…被検体、d1…粒径(金属微粒子の粒径)。   10A, 10B, 10C ... sensor chip, 11 ... glass substrate, 11a ... surface of glass substrate, 12 ... aminosilane film (first film), 13 ... sensor region, 14 ... gold nanoparticles (metal fine particles), 15 ... MUA Film (second film), 16 ... blocking agent, 20 ... analyte, d1 ... particle diameter (particle diameter of metal fine particles).

Claims (12)

金属微粒子と光との共鳴現象を利用して前記金属微粒子周囲の屈折率変化を検出するためのセンサチップであって、
基板と、
前記基板上に、前記基板に接するように形成されると共に、前記金属微粒子を固定するための第1の膜と、
前記第1の膜のセンサ領域上に固定される複数の前記金属微粒子と、
前記第1の膜上に固定されると共に、複数の前記金属微粒子のうち隣接する前記金属微粒子間に配置されるブロック剤と、
を備え、
前記ブロック剤は、前記第1の膜の前記センサ領域において、前記金属微粒子が吸着していない部分の少なくとも一部の前記第1の膜に固定されている、
ことを特徴とするセンサチップ。
A sensor chip for detecting a refractive index change around the metal fine particles by utilizing a resonance phenomenon between the metal fine particles and light,
A substrate,
A first film formed on and in contact with the substrate, and for fixing the metal fine particles;
A plurality of the fine metal particles fixed on the sensor region of the first film;
A blocking agent fixed on the first film and disposed between adjacent metal fine particles among the plurality of metal fine particles;
With
The blocking agent is fixed to at least a part of the first film in a portion where the metal fine particles are not adsorbed in the sensor region of the first film.
A sensor chip characterized by that.
前記第1の膜はシラン化合物から形成されており、
前記ブロック剤はカルボキシル基を有する化合物であることを特徴とする請求項1記載のセンサチップ。
The first film is formed of a silane compound;
The sensor chip according to claim 1, wherein the blocking agent is a compound having a carboxyl group.
前記ブロック剤は、グリコール酸、酢酸ナトリウム、16−ヒドロキシヘキサデカン酸及びポリエチレングリコールの何れか一つからなることを特徴とする請求項2に記載のセンサチップ。   3. The sensor chip according to claim 2, wherein the blocking agent comprises any one of glycolic acid, sodium acetate, 16-hydroxyhexadecanoic acid, and polyethylene glycol. 前記金属微粒子の表面上に形成されると共に、被検体を固定するための第2の膜を更に備えることを特徴とする請求項1〜3の何れか一項に記載のセンサチップ。   The sensor chip according to claim 1, further comprising a second film that is formed on a surface of the metal fine particle and fixes the subject. 前記第2の膜は、メルカプトウンデカン酸からなることを特徴とする請求項4に記載のセンサチップ。   The sensor chip according to claim 4, wherein the second film is made of mercaptoundecanoic acid. 前記第1の膜上に前記センサ領域を複数有し、
前記各センサ領域上に前記金属微粒子及び前記ブロック剤が固定されていることを特徴とする請求項1〜5の何れか一項に記載のセンサチップ。
A plurality of sensor regions on the first film;
The sensor chip according to claim 1, wherein the metal fine particles and the blocking agent are fixed on each sensor region.
前記金属微粒子の粒径は50nm〜100nmであることを特徴とする請求項1〜6の何れか一項に記載のセンサチップ。   The sensor chip according to claim 1, wherein a particle diameter of the metal fine particles is 50 nm to 100 nm. 金属微粒子と光との共鳴現象を利用して前記金属微粒子周囲の屈折率変化を検出するためのセンサチップを製造する方法であって、
基板上に、前記基板に接するように形成されており前記金属微粒子を固定するための第1の膜のセンサ領域と、前記金属微粒子を含む金属微粒子溶液とを接触させることによって前記センサ領域に前記金属微粒子を所定の粒子密度で固定する粒子固定工程と、
前記金属微粒子が固定された前記センサ領域とブロック剤導入溶液とを接触させることで、前記センサ領域において、前記金属微粒子が吸着していない部分の少なくとも一部の前記第1の膜にブロック剤を固定するブロック剤固定工程と、
を備えることを特徴とするセンサチップ製造方法。
A method of manufacturing a sensor chip for detecting a change in refractive index around the metal fine particles by utilizing a resonance phenomenon between the metal fine particles and light,
A sensor region of a first film, which is formed on the substrate so as to be in contact with the substrate and fixes the metal fine particles, and a metal fine particle solution containing the metal fine particles are brought into contact with the sensor region. A particle fixing step of fixing metal fine particles at a predetermined particle density;
By bringing the sensor region in which the metal fine particles are fixed into contact with the blocking agent introduction solution, a blocking agent is applied to at least a part of the first film where the metal fine particles are not adsorbed in the sensor region. A blocking agent fixing step for fixing;
A sensor chip manufacturing method comprising:
被検体を固定するための第2の膜を、前記金属微粒子が固定された前記センサ領域と第2の膜形成溶液とを接触させることによって、前記金属微粒子の表面上に形成する膜形成工程を更に備えることを特徴とする請求項8に記載のセンサチップ製造方法。   Forming a second film for immobilizing an object on the surface of the metal fine particles by bringing the sensor region in which the metal fine particles are immobilized into contact with the second film forming solution; The sensor chip manufacturing method according to claim 8, further comprising: 前記基板に固定された前記金属微粒子の粒径が50nm未満の場合、前記基板に固定された前記金属微粒子を粒子成長溶液と接触させることによって前記金属微粒子の粒径を、50nm〜100nmに増大させる粒径増大工程を更に備えることを特徴とする請求項8又は9に記載のセンサチップ製造方法。   When the particle size of the metal fine particles fixed to the substrate is less than 50 nm, the particle size of the metal fine particles is increased to 50 nm to 100 nm by bringing the metal fine particles fixed to the substrate into contact with a particle growth solution. The sensor chip manufacturing method according to claim 8, further comprising a particle size increasing step. 前記第1の膜は前記センサ領域を複数有しており、
前記粒子固定工程では、前記各センサ領域上に前記金属微粒子を前記所定の粒子密度で固定し、
前記ブロック剤固定工程では、前記各センサ領域上に前記ブロック剤を固定することを特徴とする請求項8〜10の何れか一項に記載のセンサチップ製造方法。
The first film has a plurality of the sensor regions,
In the particle fixing step, the metal fine particles are fixed at the predetermined particle density on each sensor region,
11. The sensor chip manufacturing method according to claim 8, wherein, in the blocking agent fixing step, the blocking agent is fixed on each sensor region.
前記所定の粒子密度は、30〜60個/μmであることを特徴とする請求項8〜11の何れか一項に記載のセンサチップ製造方法。 12. The sensor chip manufacturing method according to claim 8, wherein the predetermined particle density is 30 to 60 particles / μm 2 .
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