JP5154416B2 - 組織治療のための移植片 - Google Patents
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Description
(実施例1)
軟骨治療骨格の製造
軟骨治療骨格は、PCL再強化されたPET織物から準備される。粉末状のPCL(CAPA686、Solway)が、6%w/v溶液を形成するためにクロロホルム(GPCグレード)に溶解される。PETフェルトのストリップ(0.5mm厚み、100mg/cc、2.5dTexフィラメント)が、PCL溶液内にそれらを浸漬し、且つリリースペーパ上でそれらを平らに乾燥することによって結合された。被覆重量は、0.88gPCL/gPET〜0.93gPCL/gPETの範囲であった。再強化されたPETフェルトは、次にダイカッターを有するダイスに切断された。骨格を形成するために、PCL再強化されたPETフェルトダイスは、リリースペーパ被覆されたホットプレート(〜110℃)で加熱され、金属フォーマ上で形状にプレスされた。サンプルは、正しい形状及び見える欠陥の存在しないことを検査された。不正確な形状付けられたサンプルは、再加工(最大2回)されるか又は廃棄された。最終検査で、バッチにおける全ての骨格は、正しく形成され且つ見える欠陥が無いことが評価された。
骨格固定の機械試験
羊の後ひざ関節の中間及び側方大腿部顆が、(a)8mmの全厚みの軟骨欠陥内に圧力ばめされた0.5mm×8mm直径のPETの織られていないディスク、「移植片A」、(b)フィブリン接着剤で8mmの全厚みの軟骨欠陥内に接着された0.5mm×8mm直径のPETの織られていないディスク、「移植片B」、(c)ガイドワイヤ及び平坦な底部のドリルで作られた8mm直径×5mm深さの骨軟骨欠陥内に圧力ばめされ、織られていないPET織物(5mm×8mm直径)に結合された、PET三次元の編まれた織物からなる円筒状骨軟骨移植片、「移植片C」、又は(d)Acufexパワードトレフィンを使用する下の骨に切り込まれた5mm深さ×0.5mm幅の周辺溝で、8mmの全厚みの軟骨欠陥内に圧力ばめされたPCL再強化されたPET(5mm深さの外皮壁×8mm直径)から形成された本開示に記載されたタイプの移植片、「移植片D」のいずれかで移植された。
細胞接種されたPET/PCL骨格内の軟骨組織形成
軟骨原種細胞(表面領域軟骨原種細胞、又は骨髄誘導間充織幹細胞)及び/又は成熟軟骨細胞の組合せは、PET/PCL骨格内に接種され、このタイプの骨格内の連続する軟骨の顕微鏡片を形成する細胞の能力を研究するために、ヌードマウス内に皮下移植された。
24個のウエルプレートのウエルは、牛原形質フィブロネクチン(pFN、1mMのMgCl2及び1mMのCaCl2を有するDulbeccoのPBS内に10μgml−1、Sigma、16時間で4℃)で被覆され、上澄みは廃棄され、プレートは、1%のBSAでブロックされた。
軟骨下トラベキュラ骨(〜1cm3)は、3,5mmのAcufexモザイク形成外科パンチを使用して、2〜3週間古い牛の中足指骨関節から取り入れられる。骨は、0.1%のコルゲナーゼ(DMEM/5%FCS内のWorthingtonタイプ2、20ml)内に分解され、90分間の間37℃でインキュベートされた。骨断片は、DMEM/10%FCS(20ml)を用いて2回洗浄され、さらに2回渦形成され、残る骨断片が廃棄された。消化と洗浄が組み合わされ、遠心分離され(1000rpm、5分間)、細胞ペレットは、DMEM/FSC内に再懸濁され、再遠心分離され、DMEM/FSC(30ml)内に再懸濁され、且つ2×T175フラスコ内で培養された。5〜7日後、培養物は、非付着細胞を取り除くためにPBSでリンスされ、トリプシン添加され、放出された細胞が遠心分離され(1000rpm、5分間)、細胞ペレットは、DMEM/FSC(35ml)内に再懸濁され、且つ2×新たなT175フラスコ内へ移された。培養は、5%CO2の加湿された雰囲気において37℃でインキュベートされた。
完全な厚みの軟骨ストリップ(〜5×35mm)の対が、2〜3週間古い牛の中足指骨関節から得られ、細かくスライスされ、且つコルゲナーゼ内で消化された(Worthingtonタイプ2、DMEM/5%FCS内0.1%、16時間、37℃)。組織消化物は、フィルタリングされ(70μm、Falcon)、遠心分離され(1000rpm、10分間、Megafuge)、上澄みは廃棄され、且つ細胞ペレットは、DMEM/FSCで2回洗浄された。
PET/PCT骨格は、70%エタノール/H2O内に浸漬され、且つ全ての気泡が取り除かれるまで穏やかに撹拌された。骨格は、次に10分間の間70%エタノール/アセトンに移され、FCSに浸漬することによって(16時間、4℃)胎児の子牛漿液で事前処理された。
FCS事前処理されたPET/PCT骨格は、DMEM/FSC/ASCP(30ml)内で(第3頁、セクションii参照)5×106個の表面領域軟骨原種細胞を含む50mlのFalconチューブ内に置かれ、チューブは、通気されたキャップ(Sartorius0.2μm)で封止された。培養物は、5日の間修正されたSpiramixer上でインキュベートされ、次に、5%CO2の加湿された雰囲気において37℃で2週間の期間の残りの間静的にインキュベートされた。
FCS事前処理されたPET/PCT骨格は、DMEM/FSC/ASCP(30ml)内で(第3頁、セクションii参照)5×106個の骨髄基質細胞を含む50mlのFalconチューブ内に置かれ、チューブは、通気されたキャップ(Sartorius0.2μm)で封止された。培養物は、修正されたSpiramixer上でインキュベートされ、次に、5%CO2の加湿された雰囲気において37℃で2週間の間静的にインキュベートされた。
FCS事前処理されたPET/PCT骨格は、DMEM/FSC/ASCP(30ml)内で(セクションiii参照)5×106個の新たに分離された軟骨組織を含む50mlのFalconチューブ内に置かれ、チューブは、通気されたキャップ(Sartorius0.2μm)で封止された。培養物は、修正されたSpiramixer上でインキュベートされ、次に、5%CO2の加湿された雰囲気において37℃で2週間の間静的にインキュベートされた。
表面領域軟骨原種細胞(7×106個の細胞、第2頁セクションi参照)は、通気されたキャップ(0.2μm、Sartorius)が取り付けられた60mlのサンプルポット(Sterilin)に添加された。細胞は、16時間の間静定され且つ集められことが可能であり、次に細胞層を凝集塊に分解する試みにおいて穏やかに撹拌された。培養物は、次に5%CO2の加湿された雰囲気において37℃で2週間の間インキュベートされた。
新たに分離された軟骨細胞(7×106個の細胞、セクションiii参照)は、通気されたキャップ(0.2μm、Sartorius)が取り付けられた60mlのサンプルポット(Sterilin)に添加された。細胞が、16時間の間静定され且つ集められことが可能であり、次に細胞層を凝集塊に分解する試みにおいて穏やかに撹拌された。培養物は、次に5%CO2の加湿された雰囲気において37℃で2週間の間インキュベートされた。
アガロース(2%、PromegaV3125、DMEM内1リットル、SigmaD6429)は、オートクレーブ(121℃、15分間)によって滅菌され、且つ沸騰に近い水浴内でのインキュベーションによって溶解された。溶融された滅菌アガロース(2%、5ml)が、60mlのサンプルポット(Sterilin)の基部に添加され、且つ培養下層は4℃で設定された。通気されたキャップは、1%Virkon、水、70%エタノール/H20、及び70%エタノール/アセトンに順次浸漬することによって滅菌され、空気乾燥を可能にされた。滅菌通気されたキャップが、アガロース下層で各60mlポットに取り付けられ、且つ0.2μmフィルタ(Sartorius)を用いて閉鎖された。
アガロース(4%、SigmaA−9045、DMEM内80ml、SigmaD6429)は、オートクレーブ(121℃、15分間)によって滅菌され、且つ沸騰に近い水浴内でのインキュベーションによって溶解された。溶融された滅菌アガロース(4%、0.4ml)が、遠心分離チューブ(Sterilin、144AS)の基部に添加され、且つ培養下層は4℃で設定された。
DMEM/FSC/ASCP(5ml)は、セクション(xi)で準備されたアガロース基部を有する遠心分離チューブに添加され、(a)表面領域軟骨原種が接種されたPET/PCL骨格(セクションv参照)、又は(b)骨髄基質細胞が接種されたPET/PCL骨格(セクションvi参照)、又は(c)軟骨組織が接種されたPET/PCL骨格(セクションvii参照)のいずれかが、各チューブ内に配置された。各細胞が接種されたPET/PCL骨格への軟骨細胞の「凝集塊」を100μl添加するために、軟骨細胞の凝集塊の60mlポットの内容物(セクションix)が、遠心分離され(2000rpm、10分間)、ペレットは、漿液の無いDMEMの単一の10mlのアリコートに組み合わせされ、再遠心分離され(1500rpm、5分間)、且つ上澄みは廃棄される。組み合わされた「凝集塊」ペレットの容積は、第2の遠心分離チューブに液体の知られている容積を添加することによって推定される。軟骨細胞の「凝集塊」ペレットは、次に、5mlの媒体内に100μlの軟骨細胞の「凝集塊」の最終濃度を与えるために、十分なDMEM/FSC/ASCPに再懸濁される。この軟骨細胞の「凝集塊」懸濁のアリコート(5ml)は、次に、PET/PCL骨格を含む各遠心分離チューブに添加され、チューブは、ラック内に垂直に配置され、48時間の間37℃でインキュベートされた。このインキュベーション期間の終了時に、細胞接種された骨格は、遠心分離チューブから回収され、30mlのDMEM/FSC/ASCPを含むアガロース下層を有する通気された60mlポット内に配置され(セクションx)、且つ5%CO2の加湿された雰囲気において37℃でインキュベートされた。
100μlの軟骨細胞凝集塊を有するグループA、B、D及びEを接種するために、7×106個の軟骨細胞の生成物(セクションix参照)が、8.6mlに希釈され、その5mlの懸濁液が、各骨格に添加された。したがって各骨格は、0.58に等価の「ポット」、すなわち4×106個の細胞の生成物を受ける。
骨基質抽出/フィブリンペーストが、以下のように準備された。新生児の牛の指骨は、接着性柔軟組織及び骨膜が無いように切り裂かれ、ハクソーを用いてそれらの脊髄を横切って切断され、骨幹が長手方向に切断され、脊髄は、温水内で洗浄することによって取り除かれる。結果として清浄された皮質骨(59g)が、液体窒素で冷却されたミルで粉末にされ(3×2分間、10Hz、Spex Mill)、且つ70%エタノールで洗浄される(全容量150ml、全16時間にわたって4℃での2×100ml変化)。上澄み(100ml)が、取り除かれ、骨粉末は、70%エタノール/30%アセトン(1時間、室温)で脱脂される。上澄みは、完全に取り除かれ、骨は、室温の無菌状態で乾燥された。結果の骨断片は、ふるいにかけられ(710μm、Endecotts、8.3g廃棄される)、4℃で、全部で16時間にわたって70%エタノール/30%アセトン(200ml)で2回抽出された。脱脂された骨粉末は、PBS(150ml)でリンスされ、上澄みが廃棄され、HCl(0.6M、400ml、随時の混合で5時間)で脱塩された。材料は、遠心分離され(1000rpm、5分間、Megafuge1.0)、150mlPBSで再懸濁され、且つNaOH添加される(1N、20ml)。材料は、4℃で16時間の間に平衡にすることが可能にされ、その後、追加の10mlの1NのNaOHを用いて再中和された。脱塩された骨粉末は、次に遠心分離され(1000rpm、5分間、Megafuge)、PBS(200ml)で再懸濁され、4℃で貯蔵された。結果の材料は、BMX懸濁液として記載された。BMX懸濁液(10ml)が、遠心分離され(1000rpm、5分間、Megafuge)、上澄みが廃棄され、ペレットは、滅菌フィブリノーゲン溶液(1ml、PBS内5mg/ml、SigmaF8630)で再懸濁された。フィブリノーゲン/BMX混合物は、24個のウエルプレートのウエルにアリコートされ(150μl)、フィブリノーゲン(400μl、5mg/ml)及びトロンビン(60μl、1000U/ml、SigmaT4648)が、各ウエルに添加された。ウエルの内容物は、それらの内容物が、小さなスパチュラで穏やかに混合され且つ撹拌される前に、5分間超にわたって凝固することが許容された。ウエル内で不溶な材料は、フィブリン及びBMXの「プラグ」を形成するために液体から分離され、BMXは、残留液体を取り除くためにウエルから持ち上げられ且つ空のウエルの側方に押された。結果のBMX/フィブリンペーストは、2mlのシリンジのプランジャ及びスパチュラを用いて平坦な円筒内に圧縮され、実験グループA(SZC及び軟骨組織を用いて接種された)から接種されたPET/PCL骨格の下側に注意深く配置された。結果としての構造は、30mlのDMEM/10%FCS/燐酸アスコルビンを含む「アガロース下層」を有する通気された60mlポットへ移され、5%CO2の加湿された雰囲気において37℃でインキュベートされた。
完全な厚みの軟骨病変又は人体における早期の段階OAの治療
デバイスは、軟骨原種細胞の表面層、「成熟軟骨細胞凝集塊」の中間層(生体内で事前区別された軟骨原種細胞から得られた)、及び脱塩された骨基質/フィブリン/ビスフォスフォネートペーストからなる「グラウト」の骨に面する層で接種される。
120、220、450、520 外皮壁
210、440、510、540 細長い要素
230、240 空隙空間
300 軟骨層
310 骨層
320、330、340 従来技術のデバイス
350、750 デバイス
400、700 軟骨
410、530 骨軟骨界面領域
420 骨
550 角度
710 周囲溝
720 軟骨下の骨
740 軟骨表面
800 層
820 軟骨組織
Claims (54)
- 軟骨欠陥を治療するためのデバイスであって、可撓性材料と、前記可撓性材料にほぼ垂直に取り付けられた複数の細長い要素と、前記複数の細長い要素を囲む外皮壁と、を含んでなり、前記細長い要素が、圧縮抵抗を形成し、
前記外皮壁が、前記軟骨の下の骨内に切り込まれた周囲溝の中に挿入されると共に、前記細長い要素が、前記軟骨と該軟骨の下の前記骨との境界面上に載せられるように、前記細長い要素が前記外皮壁より短いことを特徴とするデバイス。 - 前記デバイスのうちの少なくとも一部分が生体吸収性材料から作られていることを特徴とする請求項1に記載のデバイス。
- 前記生体吸収性材料は、以下のモノマー、すなわち、乳酸、グリコール酸、カプロラクトン、ハイドロキシブチレート、ジオキサノン、オルソエステル、オルソカーボネート、アミノカーボネートを含むポリマー又はコポリマー、あるいはそれによって形成されるポリマー及び/又はコポリマーの混合物を含んでなることを特徴とする請求項2に記載のデバイス。
- 前記生体吸収性材料は、コラーゲン、セルロース、フィブリン、ヒアルロン酸、フィブロネクチン、チトサン、又はこれら材料の2つ以上の混合物を含んでなることを特徴とする請求項2に記載のデバイス。
- 前記デバイスのうちの少なくとも一部分が多孔性材料から作られていることを特徴とする請求項1〜4のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記多孔性材料が、30%〜99%の多孔率であることを特徴とする請求項5に記載のデバイス。
- 前記多孔性材料が、65%〜90%の多孔率であることを特徴とする請求項6に記載のデバイス。
- 前記多孔性材料が、少なくとも70%の多孔率であることを特徴とする請求項6又は7に記載のデバイス。
- 生体適合性繊維とは異なる材料である結合剤で架橋された生体適合性繊維を含んでなることを特徴とする請求項1〜8のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記生体適合性繊維は、PET、PGA、PLA、PHB、PLGA、ポリエステル、ポリアミドのグループから選択されることを特徴とする請求項9に記載のデバイス。
- 前記結合剤は、PCL、PLA、PLGA、ポリエステル、ポリアミドのグループから選択されることを特徴とする請求項9に記載のデバイス。
- 前記細長い要素の圧縮係数が、0.1MPa〜2MPaの間であることを特徴とする請求項1〜11のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記細長い要素の前記圧縮係数が、1MPaであることを特徴とする請求項12に記載のデバイス。
- 前記細長い要素は、1mm〜5mmの間の長さであることを特徴とする請求項1〜13のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記細長い要素は、2mmの長さであることを特徴とする請求項14に記載のデバイス。
- 前記細長い要素は、0.1mm〜1mmの間の厚みであることを特徴とする請求項1〜15のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記細長い要素は、0.5mmの厚みであることを特徴とする請求項16に記載のデバイス。
- 前記細長い要素が、円筒状であることを特徴とする請求項1〜17のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記細長い要素は、直径が2mm〜5mmであることを特徴とする請求項18に記載のデバイス。
- 前記細長い要素は、直径が3mmであることを特徴とする請求項19に記載のデバイス。
- 前記細長い要素が、中空であることを特徴とする請求項1〜20のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記細長い要素は、0.25mm〜1mmの間の壁厚みを有することを特徴とする請求項21に記載のデバイス。
- 前記細長い要素は、0.5mmの壁厚みを有することを特徴とする請求項22に記載のデバイス。
- 前記細長い要素は、開放端部であることを特徴とする請求項21〜23のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記細長い要素は、閉鎖端部であることを特徴とする請求項21〜23のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記細長い要素間の間隔が、0.5mm〜6mmの間であることを特徴とする請求項1〜25のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記細長い要素間の間隔が、2.5mmであることを特徴とする請求項26に記載のデバイス。
- 前記可撓性材料及び外皮壁が、一体的に形成されていることを特徴とする請求項1〜13のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記可撓性材料及び外皮壁が、ともに接着されることを特徴とする請求項1〜13のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記可撓性材料及び細長い要素が、一体的に形成されていることを特徴とする請求項1〜13のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記可撓性材料及び細長い要素が、ともに接着されることを特徴とする請求項1〜13のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記可撓性材料、細長い要素、及び外皮壁が、一体的に形成されていることを特徴とする請求項1〜13のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記可撓性材料、細長い要素、及び外皮壁が、ともに接着されることを特徴とする請求項1〜13のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記外皮壁が、0.25mm〜1mmの厚みであることを特徴とする請求項1に記載のデバイス。
- 前記外皮壁が、0.5mmの厚みであることを特徴とする請求項34に記載のデバイス。
- 前記外皮壁が、4mm〜20mmの間の長さであることを特徴とする請求項1に記載のデバイス。
- 前記外皮壁が、8mmの間の長さであることを特徴とする請求項36に記載のデバイス。
- 前記外皮壁が、連続する周囲境界を形成することを特徴とする請求項1に記載のデバイス。
- 前記外皮壁が、スリット又は開口を有することを特徴とする請求項1に記載のデバイス。
- 前記可撓性材料内、前記外皮壁内、前記細長い要素内、前記可撓性材料と前記外皮壁と前記細長い要素とのうちの少なくとも1つによって規定される空隙空間内、又は上記1つ以上の組合せ内に細胞が組み込まれていることを特徴とする請求項1〜39のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記細胞は、幹細胞、軟骨前駆体細胞、軟骨形成細胞、軟骨細胞、軟骨形成細胞とは区別できる細胞、又は軟骨形成細胞あるいはその混合物とは区別するように他の細胞を生じることができる細胞からなる列挙から選択されることを特徴とする請求項40に記載のデバイス。
- 前記幹細胞、軟骨前駆体細胞、軟骨形成細胞とは区別できる細胞、又は軟骨形成細胞とは区別するように他の細胞を生じることができる細胞は、前記可撓性材料及び/又は細長い要素に集中されることを特徴とする請求項41に記載のデバイス。
- 前記細胞は、前記可撓性材料及び細長い要素によって規定される間隙空間内に存在することを特徴とする請求項41に記載のデバイス。
- 前記細胞は、集合体として存在することを特徴とする請求項43に記載のデバイス。
- 前記幹細胞、軟骨前駆体細胞、軟骨形成細胞とは区別できる細胞、又は軟骨形成細胞とは区別するように他の細胞を生じることができる細胞は、前記可撓性材料及び細長い要素に集中され、生体細胞は、前記可撓性材料及び細長い要素によって規定される間隙空間内に存在することを特徴とする請求項41に記載のデバイス。
- 前記デバイスを軟骨下の骨に埋め込むためのグラウトを備え、該グラウトが、前記デバイス内の細胞の軟骨遺伝子活性を促進する生体活性剤を含んでなることを特徴とする請求項40〜45のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記可撓性材料内、前記外皮壁内、前記細長い要素内、前記可撓性材料と前記外皮壁と前記細長い要素とのうちの少なくとも1つによって規定される空隙空間内、又は上記1つ以上の組合せ内に生体細胞が組み込まれていることを特徴とする請求項1〜39のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記生体細胞は、幹細胞、軟骨前駆体細胞、軟骨形成細胞、軟骨細胞、軟骨形成細胞とは区別できる細胞、又は軟骨形成細胞あるいはその混合物とは区別するように他の細胞を生じることができる細胞からなる列挙から選択される細胞であることを特徴とする請求項47に記載のデバイス。
- 前記幹細胞、軟骨前駆体細胞、軟骨形成細胞とは区別できる細胞、又は軟骨形成細胞とは区別するように他の細胞を生じることができる細胞は、前記可撓性材料、細長い要素、及び外皮壁に集中されることを特徴とする請求項48に記載のデバイス。
- 前記生体細胞は、前記可撓性材料及び外皮壁によって規定される間隙空間内に存在することを特徴とする請求項47に記載のデバイス。
- 前記生体細胞は、集合体として存在することを特徴とする請求項50に記載のデバイス。
- 前記幹細胞、軟骨前駆体細胞、軟骨形成細胞とは区別できる細胞、又は軟骨形成細胞とは区別するように他の細胞を生じることができる細胞は、前記可撓性材料、細長い要素、及び外皮壁に集中され、生体細胞は、前記可撓性材料及び外皮壁によって規定される間隙空間内に存在することを特徴とする請求項48に記載のデバイス。
- 前記デバイスを前記軟骨の下の骨に埋め込むためのグラウトを備え、該グラウトが、前記デバイス内の細胞の軟骨遺伝子活性を促進する生体活性剤を含んでなることを特徴とする請求項47〜52のいずれか一項に記載のデバイス。
- 前記デバイスを前記軟骨の下の骨に埋め込むためのグラウトを備え、該グラウトが、前記デバイスの周囲の組織との一体化を促進する生体活性剤を含んでなることを特徴とする請求項1〜53のいずれか一項に記載のデバイス。
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