JP5152821B2 - 放射線治療用化学毒性剤としての金属トリカルボニル錯体の使用 - Google Patents
放射線治療用化学毒性剤としての金属トリカルボニル錯体の使用 Download PDFInfo
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Description
図1は化合物および特許請求する化合物の反応経路の一般スキームを示す。
図2はグアニンの金属トリカルボニルとの結合の平衡反応を説明する図である。
図3は実施例3の化合物のHPLC-MSクロマトグラフを示す。
図4は[Re(9-MeG)2(H20)(CO)3](Cl04)および [99Tc(9-MeG)2(CH30H)(CO)3](Cl04)のX線結晶構造を示す。
図5Aは1とd(CpGpG)との反応終了時での芳香族領域(7.0-9.0ppm)を示す。
図5Bはbis[Re(CO)3d(CpGpG)(H20)]-がグアニン残基のN7原子に付加結合することを確認するpH依存性試験を示す。
図6AはΦX174プラスミドDNAに対するシスプラチンの作用を示す。レーン4-8はシスプラチンのシス-GG結合の結果としてスクランブル(scrambling)の量が増加することを示す。
図6Bは上述の条件下でのΦX174プラスミドDNAに対する錯体1の相互作用を示す。結果は図6Aでのシスプラチンで認められた結果と同様である。
図6Cはカチオン性錯体2とΦX174プラスミドDNAの相互作用を示す。DNAのスクランブルは認められない。
図7、レーン2-7は2つの不安定なシス-配位子を有する錯体がΦX174プラスミドDNAのスクランブルを誘導することを示し、一方、レーン8-14では構造変化が認められない。
図8AはΦX174プラスミドDNAと錯体1および6の相互作用を示す。明らかに、錯体6は、シスプラチンに比較して、GGクロスリンクの指標となるDNAスクランブルを引き起こす。
図8Bはプロドラッグ6および結果として生じる薬剤1の構造およびプロドラッグのX線構造を示す。
図8Cはプロドラッグ6の活性薬剤への図式化された変換を示す。
図9Bは金属錯体を放出するための、およびΦX174プラスミドDNAの原型を再構成するためのヒスチジンとのインキュベーションの後の同じサンプルを示す。
図10は実施例10-13で使用されているレニウム錯体の細胞毒性を決定するための典型的なXTT細胞増殖試験を示す。
図11は錯体1、3、4および5がMDA-MB-4355乳癌細胞(ATCC#TB129)に対して示した細胞毒性(細胞生存%)を表したグラフである。
図12は錯体1、3、4および5がOVMZ-6-WT卵巣癌細胞(Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellinie DSMZ GmbHから入手可能)に対して示した細胞毒性(細胞生存%)を表したグラフである。
図13は錯体1、3、4および5がHSC45-M2胃癌細胞(Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellinie DSMZ GmbH)に対して示した細胞毒性(細胞生存%)を表したグラフである。
図14Aは錯体1乃至13がB16F1マウスメラノーマ細胞(Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellinie DSMZ GmbH)に対して示した細胞毒性(細胞生存%)を表したグラフである。
図14Bは錯体1、2および14乃至21がB16F1マウスメラノーマ細胞(ATCC)に対して示した細胞毒性(細胞生存%)をシスプラチンに比較して表したグラフである。
図15は標的部分アクリジンのN-エチルアミノ−イミダゾールへの結合を示す。
図16は本発明の化合物のまとめである。
単座配位子を有する本発明の化合物の合成
1.一般的な方法
単座配位子を有する本発明の化合物は一般的に1の溶液に1当量の配位子を加えることにより合成できる。
2.特定例([Et4N][ReBr2(Im)(CO)3](16))
例として16の合成手順を以下に示す:(Et4N)2[ReBr3(CO)3](1、96mg、0.12mmol)をCH2Cl2(5ml)に溶解した。イミダゾール(Im、8mg、0.12mmol)を加え、混合物を室温で攪拌した。30分後白色固体が出現した。これを濾過し減圧下乾燥した。収率:45mg、60%。
元素分析が16に対してC14H24N3O3Br2Re (628,38):C, 26.75; H, 3.82 ; N, 6.68、と算出され、C, 26.83 ; H, 3.71 ; N, 6.62と見出された。
二座配位子を有する本化合物の合成
1.一般的な方法
二座配位子を有する本発明の化合物は一般的に1の溶液に1またはそれ以上の当量の配位子を加えることにより合成できる。
2.特定例([Re(L-Ser)2(CO)3](10))
例として10の合成手順を以下に示す:(Et4N)2[ReBr3(CO)3](100mg、0.13mmol)をメタノール/水混合物(9:1、5ml)に溶解した。L-セリン(48mg、0.46mmol)を添加し、混合物を僅かなN2圧力下、3時間、50℃で攪拌した。反応をHPLCでモニターし、更なる変化が観察されなければ(3h)停止した。溶液を室温に平衡化し、HPLCで精製した。白色固体を得る。収率:23mg、37%。X線解析に適した結晶はH2Oをゆっくりと蒸発させることにより得られる。
元素分析が10に対してC9H13N2O9Re (479,41):C, 22.55; H, 2.73 ; N, 5.84と算出され、 C, 23.17 ; H, 3.20 ; N, 5.47と見出された。
グアニンへの[M(CO) 3 ] + の結合
金属トリカルボニルがプリン塩基に結合できるか否かを試験するために、以下の試験を実施した。37℃、3日間、6倍過剰量のグアニンとインキュベーションした一般式Iの化合物1mMの水溶液(またはH2O/CH3OH混合物)は、50%以上の金属中心に対する1または2つのグアニンの結合を示す(図2)。
[M(CO) 3 ] + (M= 99 Tc(I),Re(I))ビスグアニン付加物[Re(9-MeG) 2 (H 2 O)(CO) 3 ](ClO 4 )(3)の生成
(Et4N)2[ReBr3(CO)3](30mg, 0.04mmol)を高温(〜40℃)水(3ml)に溶解した。AgClO4(28mg、 0.14mmol)を添加し、混合物をAgBrを濾過し取り除いた後、3時間攪拌した。9-メチルグアニン(16.5mg, 0.1mmol)を添加し、混合物を僅かなN2圧力下で50℃に加熱した。無色溶液が数分以内に明るい黄色に変化した。反応をHPLCでモニターし、3.5時間後、更なる変化が観察できない時に停止した。混合溶液を室温に平衡化し、濃縮し、その後短いC18カラムで精製した。
収率:定量的
元素分析が3に対してC15H16ClN10O10Re(718.01): C, 25.09 ; H, 2.25 ; N, 19.51、と算出され、C, 25.34 ; H, 2.70 ; N, 19.45と見出された。
X線結晶構造を図4に示す。
[M(CO) 3 ] + とオリゴヌクレオチドの相互作用
図5Aは[Re(H20)3(CO)3]+(1)と1当量のd(CpGpG)の反応のD2O中での1H NMRスペクトルを示す。d(CpGpG)溶液に1を37℃で添加することにより、遊離のd(CpGpG)のH8シグナルによる共鳴スペクトルが消失し、H8プロトンと非等価である新しい一連のシャープな良く分離されたピークが出現する。
2つのグアニン塩基はN7を介してRe(I)に結合し、この事実はpH2近傍でH8共鳴がpH非依存的であることにより裏付けられている(図5B)。実際、遊離のグアニンN7に対して予想されるのと反対に、H8の全ての化学シフトは4以下のpHの低下によって影響を受けない。
ΦX174プラスミドDNAと錯体1および2の相互作用
ΦX174プラスミドはPromegaから購入し、更なる精製をせずに用いた。ΦX174RFプラスミドDNA(0.1mg)をH2O中、[錯体]/[bp]0.018-1.8/1で対応するレニウム錯体と混合した。混合物をゲル電気泳動による解析の前に、暗所で22時間、37℃、水中でインキュベートした。全ての場合で、混合物のpHは約7で一定に保たれた。1mMまたは10mM NaClO4で実施された実験は1とΦX174RFプラスミドDNAの結合に有意な差異を示さなかった。
図6Bは上述の条件下でのΦX174プラスミドDNAに対する錯体1の相互作用を示す。結果は図6Aでのシスプラチンで認められた結果と同様である。
図6Cはカチオン性錯体2とΦX174プラスミドDNAの相互作用を示す。DNAのスクランブルは認められない。
[M(CO)3]+がΦXプラスミドDNAとシスプラチンと同様の様式で相互作用することが理解された。また、相互作用が静電効果に因らないことが示された。
2つの不安定なシス配位子がΦX174プラスミドDNAの構造変化の惹起に必要である。
この実施例で、ΦX174プラスミドDNAを単座または二座の配位子を含む異なる錯体とインキュベートする。錯体1および3は不安定なシス-配位子を含み、一方錯体4および5は2つのGとの置換に対し安定である。
図7、レーン2-7は2つの不安定なシス-配位子を有する錯体がΦX174プラスミドDNAのスクランブルを誘導することを示し、一方、レーン8-14では構造変化が認められない。2つの不安定なシス配位子がゆっくりと放出されるだけである場合、前駆体の錯体はプロドラッグと考えられる。この様式を実施例8に記載する。
プロドラッグの調製
有効な薬剤として錯体1を含むプロドラッグはシス配列中にRe(I)中心からゆっくりと放出される2つの不安定な配位子を含有する。不安定な配位子を切り離した後、活性な薬剤に相当する組成[M(X1)(OH2)2(CO)3]の錯体が形成される。我々は本明細書で、N,N-ジメチル-グリシンを不安定なシス-配位子として含むかかるプロドラッグの合成を記載する。
6に対するFT-IR(KBr,v/cm-l):(C=O)2022(s), (C=O)1911(b), (C=O)1890(s), (C=O)1866(s)。6に対するESI-MS(ESI+,40V,m/z):1117.0([M]+)。6に対する室温HPLC(HPLC,グラジエント1分):15.7。
図8Bはプロドラッグ6および結果として生じる薬剤1の構造およびプロドラッグのX線構造を示す。
錯体6とグアニンの相互作用を実施例4に概説された試験によって検討した。NMRとHPLC実験は、ΦXプラスミドDNAで起きていることと同じように、二座配位子N,N-ジメチル−グリシンが切り離され、2つのグアニンに置き換えられることを明確に示す。図8Cはプロドラッグ6の活性薬剤への図式化された変換を示す。
[M(CO 3 )] + ΦX174プラスミドDNA付加物の安定性
実施例6に概説されているように、不安定なシス-配位子を有する錯体はおそらくGG鎖間または鎖内クロスリンクを介してΦX174プラスミドDNAに結合できる。シスプラチンがDNAに結合する場合、この相互作用は不可逆的である。本出願で請求している2例の化合物の安定性を調べるために、錯体1および7のインビトロ研究を実施した。
図9Aは実施例6に記載された方法によるΦX174プラスミドDNAと錯体1および7のインキュベーションを示す。図9Bは金属錯体を放出するための、およびΦX174プラスミドDNAの原型を再構成するためのヒスチジンとのインキュベーションの後の同じサンプルを示す。
細胞毒性手順
典型的な実験では(図10参照)、平均2000個の細胞を最終ウェル当たり100μlの培養液の量で、マイクロタイタープレート(組織培養グレード、96穴、平底)で、湿気のある環境(37℃、>6.5%CO2)において培養した。24時間後、レニウム錯体をウェルに添加し(Reを基準として最終濃度200μM)、細胞をさらに24時間湿気のある環境下において培養した。インキュベーション期間経過後、XTTラベリング混合物50μlをそれぞれのウェルに添加した。プレートをさらに4時間インキュベーションした。この最終インキュベーションの後、それぞれのウェルの分光学的吸収(吸光度OD)を450nmで測定した。
細胞生存%をサンプルの相対ODに基づいて算出した。最大のコントロールODを細胞生存100%とした。
MDA-MB-4355乳癌細胞株に対する[Re(I)(Co) 3 ] + 錯体(200μM)の細胞毒性
図11は錯体1、3、4および5がMDA-MB-4355乳癌細胞に対して示した細胞毒性(細胞生存%)を表したグラフである。結果は明らかに化合物1、3および4が細胞増殖を阻害することを示す。錯体5は実施例3に示された条件下で安定であり、この乳癌細胞株に対して細胞毒性を示さない。
OVMZ-6-WT卵巣癌細胞株に対する[Re(I)(Co) 3 ] + 錯体(200μM)の細胞毒性
手順は実施例10および図10に記載した通りである。癌細胞株のみ相違する。
図12は錯体1、3、4および5がOVMZ-6-WT卵巣癌細胞に対して示した細胞毒性(細胞生存%)を表したグラフである。結果は明らかに、化合物1がこの癌細胞株において細胞増殖を阻害することを示す。
HSC45-M2胃癌細胞株に対する[Re(I)(Co) 3 ] + 錯体(200μM)の細胞毒性
手順は実施例10および図10に記載した通りである。癌細胞株のみ相違する。
図13は錯体1、3、4および5がHSC45-M2胃癌細胞に対して示した細胞毒性(細胞生存%)を表したグラフである。結果は明らかに化合物5がこの癌細胞株において細胞増殖を阻害することを示す。
B16F1マウスメラノーマ細胞に対する異なるレニウム錯体の細胞毒性
手順は実施例10および図10に記載した通りである。癌細胞株のみ相違する。
図14Aは錯体1乃至13がB16F1マウスメラノーマ細胞に対して示した細胞毒性(細胞生存%)を表したグラフである。結果は明らかに化合物1および2が細胞増殖を強力に阻害することを示す。水溶性が悪いため、化合物4、5、6および11乃至13の濃度は200μM以下である。それ故に、上記の化合物は200μMでより強い細胞毒性を示すであろう。
本発明の化合物の標的部分への結合
本実施例では、標的部分は、受容体に結合せず核を標的とする有機分子である、アクリジン(A)を意味する。アクリジンを[M(CO)3]+部分へ結合する目的で、イソシアニドおよびイミダゾールで誘導体化する。基本の活性構造は錯体16および18の構造であり、両方ともΦX174プラスミドDNAにクロスリンクすることが示されている。核標的薬剤の製造のための一般的な反応スキームは図15で与えられる。
1当量の化合物Dを1と反応させ、式Iの組成物である化合物[Re(D)Br2(CO)3]-を得る。
本発明の化合物の生体分布のモニターリング
一般式Iの錯体を、99mTc(I)を用いてレニウムについて概説したのと同様の手順に従って合成する。出発錯体1(99mTc(I))をIsolinkキットから、または刊行された手順(Alberto et al. J. Am. Chem. Soc. 1999,121 (25), 6076-6077)に従って調製する。「コールド」の細胞毒性レニウム錯体を「ホット」の放射能毒性99mTc(I)または188/186Re(I)錯体と混合する。Tc(I)またはRe(I)のどちらかの同位体を有するこれらの錯体は互いに類似体であるので、標準的な技術であるSPECTカメラによってイメージングすることで、化合物がどこに蓄積するのかを追跡することができる。
Claims (15)
- 該薬剤が、DNA内の鎖内結合を生じさせることにより化学毒性である、請求項1〜4のいずれか1項に記載の使用。
- 該化合物が標的部分に結合されており、ここで、該標的部分が、ボンベシン、ニューロテンシン、ソマトスタチン、グルコサミン、ヌクレオシド、核内局在配列ペプチド(NLS-ペプチド)、オリゴヌクレオチド、ならびにアントラサイクリンおよびアクリジンからなる群より選択される核標的分子からなる群から選択される、請求項1〜5のいずれか1項に記載の使用。
- 前記化合物は錯体18である、請求項7に記載の金属トリカルボニル化合物。
- 標的部分に結合されている、請求項7または8のいずれかに記載の金属トリカルボニル化合物であって、ここで、該標的部分が、ボンベシン、ニューロテンシン、ソマトスタチン、グルコサミン、ヌクレオシド、核内局在配列ペプチド(NLS-ペプチド)、オリゴヌクレオチド、ならびにアントラサイクリンおよびアクリジンからなる群より選択される核標的分子からなる群から選択される、金属トリカルボニル化合物。
- 該組成物が、DNA内の鎖内結合を生じさせることにより化学毒性である、請求項10〜13のいずれか1項に記載の、化学毒性、または化学毒性かつ放射線治療性の組成物。
- 該化合物が標的部分に結合されており、ここで、該標的部分が、ボンベシン、ニューロテンシン、ソマトスタチン、グルコサミン、ヌクレオシド、核内局在配列ペプチド(NLS-ペプチド)、オリゴヌクレオチド、ならびにアントラサイクリンおよびアクリジンからなる群より選択される核標的分子からなる群から選択される、請求項10〜14のいずれか1項に記載の、化学毒性、または化学毒性かつ放射線治療性の組成物。
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