JP5108946B2 - 単一の読み出しを用いる汎用的なキナーゼ/ホスファターゼアッセイ法 - Google Patents
単一の読み出しを用いる汎用的なキナーゼ/ホスファターゼアッセイ法 Download PDFInfo
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Description
(a)キナーゼまたはホスファターゼ活性試料を、検出可能な読み出しを有する蛍光体を含むキナーゼまたはホスファターゼ基質分子と共にインキュベートする工程、
(b)工程(a)の混合物を、芳香族基を含む検出物質および結合パートナーと共にインキュベートする工程であって、リン酸化基質分子および検出物質は結合パートナーと結合可能であり、基質分子および検出物質の結合パートナーへの結合は、蛍光体の読み出しを変化させる、工程、ならびに、
(c)工程(b)の混合物中の蛍光体の読み出しを測定する工程であって、ブランクと比較して変化した蛍光体の読み出しは試料中のキナーゼまたはホスファターゼ活性の存在を示す、工程。
(a)キナーゼまたはホスファターゼ活性試料を、芳香族基を含む基質分子と共にインキュベートする工程、
(b) 工程(a)の混合物を、検出可能な読み出しを有する蛍光体を含む検出物質および結合パートナーと共にインキュベートする工程であって、リン酸化基質分子および検出物質は結合パートナーと結合可能であり、基質分子および検出物質の結合パートナーへの結合は、蛍光体の読み出しを変化させる、工程、ならびに、
(c)工程(b)の混合物中の蛍光体の読み出しを測定する工程であって、ブランクと比較して変化した蛍光体の読み出しは試料中のキナーゼまたはホスファターゼ活性の存在を示す、工程。
[本発明101]
(a)キナーゼまたはホスファターゼ活性試料を、検出可能な読み出しを有する蛍光体を含むキナーゼまたはホスファターゼ基質分子と共にインキュベートする工程、
(b)工程(a)の混合物を、芳香族基を含む検出物質および結合パートナーと共にインキュベートする工程であって、リン酸化基質分子および検出物質は結合パートナーと結合可能であり、かつ基質分子および検出物質の結合パートナーへの結合は、蛍光体の読み出しを変化させる、工程、ならびに、
(c)工程(b)の混合物中の蛍光体の読み出しを測定する工程であって、ブランクと比較して変化した蛍光体の読み出しは、試料中のキナーゼまたはホスファターゼ活性の存在を示す、工程
を含むキナーゼ活性またはホスファターゼ活性を検出するための方法。
[本発明102]
(a)キナーゼまたはホスファターゼ活性試料を、芳香族基を含む基質分子と共にインキュベートする工程、
(b) 工程(a)の混合物を、検出可能な読み出しを有する蛍光体を含む検出物質および結合パートナーと共にインキュベートする工程であって、リン酸化基質分子および検出物質は結合パートナーと結合可能であり、かつ基質分子および検出物質の結合パートナーへの結合は、蛍光体の読み出しを変化させる、工程、ならびに、
(c)工程(b)の混合物中の蛍光体の読み出しを測定する工程であって、ブランクと比較して変化した蛍光体の読み出しは、試料中のキナーゼまたはホスファターゼ活性の存在を示す、工程
を含むキナーゼ活性またはホスファターゼ活性を検出するための方法。
[本発明103]
蛍光体が、フルオレセイン、ローダミンB、TMR、ATTO 590、ATTO 655、ATTO 680、Atto 700、MR 121、Bodipy 630/650、およびBodipy FLからなる群、より好ましくはATTO 590、ATTO 655、ATTO 680、Atto 700およびMR 121からなる群より選択される、本発明101または102の方法。
[本発明104]
蛍光体が、MR 121またはAtto 700である、本発明103の方法。
[本発明105]
芳香族基が、トリプトファン、チロシン、およびフェニルアラニンであるアミノ酸からなる群、好ましくはトリプトファンより選択される、本発明101〜104のいずれかの方法。
[本発明106]
基質分子および検出物質の結合パートナーへの結合がイオン性相互作用を含む、本発明101〜105のいずれかの方法。
[本発明107]
結合パートナーが硬いルイス酸金属イオンまたはその表面上にイオンを有するビーズなどの固体から選択される、本発明101〜106のいずれかの方法。
[本発明108]
検出物質がホスホチロシンおよび/またはホスホセリンおよび/またはホスホトレオニンを含むペプチドである、本発明101〜107のいずれかの方法。
[本発明109]
基質分子が少なくともチロシンおよび/またはセリンおよび/またはトレオニンを含むペプチドである、本発明101〜108のいずれかの方法。
[本発明110]
チロシンキナーゼ活性を検出するための方法であって、基質ペプチドが少なくともチロシンを含む、本発明109の方法。
[本発明111]
セリンキナーゼ活性を検出するための方法であって、基質ペプチドが少なくともセリンを含む、本発明109の方法。
[本発明112]
トレオニンキナーゼ活性を検出するための方法であって、基質ペプチドが少なくともトレオニンを含む、本発明109の方法。
[本発明113]
ホスファターゼ活性を検出するための方法であって、基質分子がリン酸基、好ましくはホスホチロシンまたはホスホセリンまたはホスホトレオニンを含むペプチドである、本発明101〜109のいずれかの方法。
[本発明114]
蛍光体読み出しが蛍光強度である、本発明101〜113のいずれかの方法。
[本発明115]
検出可能な読み出しを有する蛍光体を含むキナーゼおよび/またはホスファターゼ活性基質と、検出物質と、結合パートナーとを含む、キナーゼまたはホスファターゼ活性を検出するためのキット。
[本発明116]
芳香族基を含むキナーゼおよび/またはホスファターゼ活性基質と、検出可能な読み出しを有する蛍光体を含む検出物質と、結合パートナーとを含む、キナーゼまたはホスファターゼ活性を検出するためのキット。
[本発明117]
特に前述の実施例に関して実質的に本明細書に記載した、方法およびキット。
本明細書で用いる「キナーゼ活性」という用語は、キナーゼによる基質のリン酸化を意味する。
すべてのペプチド基質は、Biosyntan GmbH, Berlinから95%の純度で合成した。蛍光体MR121の反応形態は、Roche Diagnostics, Penzbergにより提供され、Atto 700の反応形態は、Atto-Tec GmbH, Siegen, Germanyより提供された。MR121-マレイミドおよびAtto 700-マレイミドの基質ペプチドのシステイン残基のスルフヒドリル基への共有結合は、マレイミド基質を用いる標識用の標準的なプロトコルにしたがって室内で行い、C18カラム(Marchery-Nagel, cc125/4, Nucleosil 100-5, protect 1)を用いて、分析用HPLC(Merck Hitachi D-6000)上で精製した。
A.結合パートナーとしてのInCl 3
PO3 2-は、硬いルイス塩基であり、硬いルイス酸金属イオンと複合体を形成する。リン酸基の酸素は、単一の金属イオンに配位結合するかまたはいくつかの金属イオンに架橋して、ポリマータイプの複合体を形成することができる。それゆえ、硬いルイス酸金属イオンを結合パートナーとして用いて、蛍光体物質およびトリプトファン物質を極めて接近させ、非蛍光性基底状態複合体を形成することができる。原理の証明のため、短いペプチドを、蛍光体物質として、ならびに、ホスホチロシン、チロシンおよび/またはトリプトファンを含むトリプトファン物質としてそれぞれ用いた。Cys残基にてMR121およびAtto 700で標識された配列Cys-Gly-Tyrのリン酸化および非リン酸化ペプチド(以下、MR121-CGY、MR121-CGpY、Atto 700-CGYおよびAtto 700-CGpY)を蛍光体物質として用い、検出物質はpTyrがリン酸化チロシンである配列Trp-Gly-pTyr(以下、WGpY)のペプチドであった。図2は、固定されたMR121-CGpYまたはAtto 700-CGpYおよびWGpY濃度(最終濃度:MR121- CGpY 20 nM、Atto 700-CGpY 20 nM、WGpY 1μM)での結合パートナーとしてのInCl3の滴定を示す。MR121の蛍光発光は、50μMから100μMのInCl3の存在下で、初期MR121蛍光(InCl3の非存在下での蛍光)の20%にまで消光される。InCl3のより高い濃度では、MR121蛍光は初期MR121蛍光の70%にまで増加し(図2a)、MR121物質およびトリプトファン物質が、もはや同じ複合体内に結合していないことを示す。図2bは、最適InCl3濃度を見つけるために、10μMから140μMのInCl3を拡大して示す。Atto 700蛍光は、10μMのInCl3にてすでに初期蛍光の15%にまで消光される。MR121物質と同様に、Atto 700蛍光はより高いInCl3濃度で再度増加する。すべての引き続く実験を50μMのInCl3およびMR121物質で行った。次の工程で、WGpY濃度を最適化した。図3は、20 nMのMR121-CGpY(最終濃度)および50μMのInCl3(最終濃度)でのWGpYの滴定を示す。700 nMのWGpYで蛍光強度はその最小値に達する(図3b)。MR121-CGpYのより高い濃度では、蛍光強度はわずかに増加する(20 nMでの初期強度の30%から100 nMでの45%へ)(図4)。最後の実験では、0%から100%の基質リン酸化の蛍光強度が測定された(図5)。MR121-CGpYおよびMR121-CGYを、リン酸化ペプチドの増加とともに20 nMのMR121-CG(p)Y最終濃度となるように混合した。800 nMのWGpYを検出物質として、および50μMのInCl3を結合パートナーとして使用した。蛍光強度は、リン酸化の増加とともに初期濃度の100%から20%に直線的に減少する。アッセイの質の測定として、z'ファクターを算出した。20%のリン酸化からz'ファクターは0.5を上回り(理論的最大値は1)、40%から0.7を上回る。
結合パートナーとしてIMAPビーズを用いる実験のため、結合パートナーとしてInCl3を用いた場合のように、同じ短いモデルペプチド、MR121およびトリプトファン物質を用いた。約100 nMの径を有するIMAPビーズは、In3+イオンよりも有意に大きく、それゆえ、WGpYの4倍高い濃度がMR121物質の十分な消光を達成するために必要である。IMAPビーズは、より高い試薬濃度が必要であるという点でInCl3と同様には作用しないが、新規で感受性の高いアッセイにより、結合パートナーとしてこの系が用いられることが可能となる。図6aは、1:1000に希釈されたIMAPビーズを用いて、WGpY濃度の増加とともに20 nMのMR121-CGpYの強度が減少することを示す。80μMのWGpYで、MR121蛍光は初期強度の20%に消光する。80μMのWGpYの一定濃度において、IMAPビーズのより高い希釈はより優れた消光を導かず(図6b)、最適希釈は1:500および1:1000の間にある。
本明細書に記載した実施例により、本発明者らは、キナーゼまたはホスファターゼ活性は、適当な蛍光体(例えば、MR121、Atto 700)の蛍光強度の減少(キナーゼ)または増加(ホスファターゼ)を測定することにより検出できることを示す。非蛍光性基底状態複合体の形成による静的消光または衝突消光のいずれかである、トリプトファンによる蛍光体の消光は、短い範囲の相互作用であり、このことは、蛍光体物質およびトリプトファン物質が結合パートナーに結合した場合にのみ起こることを保証する。このことは、アクセプターによるドナー発光の吸収がある通常のFRET測定と対照的に、高濃度の蛍光体での結合パートナーとの結合を伴わない。FP測定と同様に、本明細書に記載した消光アッセイには一つの標識のみが必要であるが、FPでは2つの読み出しが必要である一方、蛍光の消光の測定は単一の読み出しのみを必要とする。確固とした高感度な蛍光読み出しと、用いるのに単純で簡単なプロトコルにより、アッセイはまた、例えば高密度マイクロタイタープレートに、またはマイクロフルイディクスシステムにおける処理および読み出しに適用可能である。例えば、MR121およびAtto 700などを使用する蛍光体は、近赤外線の蛍光発光で赤に励起するので、非常に感受性が高いことが証明され、例えば、化合物、生物学的材料およびプラスチックの自己蛍光との最小の干渉を示す。蛍光体物質、トリプトファン物質および結合パートナーの3つの成分は、互いに滴定でき、特有の柔軟性を提供する各アッセイに最適な条件を見出すことができる。
Claims (13)
- (a)キナーゼまたはホスファターゼ活性試料を、検出可能な読み出しを有する蛍光体を含むキナーゼまたはホスファターゼ基質分子と共にインキュベートする工程であって、該蛍光体がMR 121またはAtto 700である、工程、
(b)工程(a)の混合物を、アミノ酸であるトリプトファン、チロシン、およびフェニルアラニンからなる群より選択される芳香族基を含む検出物質ならびに結合パートナーと共にインキュベートする工程であって、リン酸化基質分子および検出物質の両方は結合パートナーと結合可能であり、かつ基質分子および検出物質の結合パートナーへの結合は、蛍光体の読み出しを変化させ、変化した蛍光体の読み出しは、基質分子の蛍光体および検出物質の芳香族基の分子軌道における直接的相互作用による、工程、ならびに、
(c)工程(b)の混合物中の蛍光体の読み出しを測定する工程であって、ブランクと比較して変化した蛍光体の読み出しは、試料中のキナーゼまたはホスファターゼ活性の存在を示す、工程
を含むキナーゼ活性またはホスファターゼ活性を検出するための方法。 - (a)キナーゼまたはホスファターゼ活性試料を、アミノ酸であるトリプトファン、チロシン、およびフェニルアラニンからなる群より選択される芳香族基を含む基質分子と共にインキュベートする工程であって、該蛍光体がMR 121またはAtto 700である、工程、
(b)工程(a)の混合物を、検出可能な読み出しを有する蛍光体を含む検出物質および結合パートナーと共にインキュベートする工程であって、リン酸化基質分子および検出物質の両方は結合パートナーと結合可能であり、かつ基質分子および検出物質の結合パートナーへの結合は、蛍光体の読み出しを変化させ、変化した蛍光体の読み出しは、検出物質の蛍光体および基質分子の芳香族基の分子軌道における直接的相互作用による、工程、ならびに、
(c)工程(b)の混合物中の蛍光体の読み出しを測定する工程であって、ブランクと比較して変化した蛍光体の読み出しは、試料中のキナーゼまたはホスファターゼ活性の存在を示す、工程
を含むキナーゼ活性またはホスファターゼ活性を検出するための方法。 - 芳香族基がトリプトファンである、請求項1または2記載の方法。
- 基質分子および検出物質の結合パートナーへの結合がイオン性相互作用を含む、請求項1〜3のいずれか一項記載の方法。
- 結合パートナーが硬いルイス酸金属イオンまたはその表面上にイオンを有するビーズなどの固体から選択される、請求項1〜4のいずれか一項記載の方法。
- 検出物質がホスホチロシンおよび/またはホスホセリンおよび/またはホスホトレオニンを含むペプチドである、請求項1〜5のいずれか一項記載の方法。
- 基質分子が少なくともチロシンおよび/またはセリンおよび/またはトレオニンを含むペプチドである、請求項1〜6のいずれか一項記載の方法。
- チロシンキナーゼ活性を検出するための方法であって、基質ペプチドが少なくともチロシンを含む、請求項7記載の方法。
- セリンキナーゼ活性を検出するための方法であって、基質ペプチドが少なくともセリンを含む、請求項7記載の方法。
- トレオニンキナーゼ活性を検出するための方法であって、基質ペプチドが少なくともトレオニンを含む、請求項7記載の方法。
- ホスファターゼ活性を検出するための方法であって、基質分子がリン酸基を含むペプチドである、請求項1〜7のいずれか一項記載の方法。
- 基質分子がホスホチロシンまたはホスホセリンまたはホスホトレオニンを含むペプチドである、請求項11記載の方法。
- 蛍光体読み出しが蛍光強度である、請求項1〜12のいずれか一項記載の方法。
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