JP5089220B2 - プローブセット、プローブ固定担体及び検査方法 - Google Patents
プローブセット、プローブ固定担体及び検査方法Info
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本発明は、感染による疾患の原因菌の検出および同定に有用な感染症起炎菌であるAnaerococcus prevotiiのＤＮＡを検出するためのプローブセット、これらを担体に固定したプローブ固定担体及びこれらを用いたＤＮＡ検査方法、ならびにＤＮＡ検査のためのキットに関する。
検体中の、感染症の原因菌をより迅速かつ確実に検出するための試薬並びに方法が従来より提案されてきている。例えば特許文献１には、カンジダ症及びアスペルギルス症の起炎菌を検出するためのプローブ及びプライマーとして用い得る特定の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド及びそれを用いた対象菌の検出方法が開示されている。また、同特許文献には、複数の対象菌を共通にＰＣＲで増幅するためのプライマーセットが開示されている。これらのプライマーは検体中の複数の対象となる真菌由来の核酸断片をＰＣＲで増幅するために用いられるものである。これらのプライマーにより増幅された核酸断片中における各菌に特異的な配列部分の有無を、各菌に固有のプローブを用いるハイブリダイゼーションアッセイで検出することで、検体中の真菌の菌種を同定することができる。
一方、複数の異なる塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを同時的に検出可能な方法として、当該塩基配列の各々に相補的な配列を有するプローブを固相上に隔離して配置したプローブアレイを用いる方法が知られている（特許文献２）。
特開平８−８９２５４号公報
特開２００４−３１３１８１号公報
しかし、試料中に含まれる感染症起炎菌のＤＮＡを特異的に検出するプローブを設定することは決して容易なことではない。即ち、試料中には、検出対象たる感染症起炎菌のＤＮＡだけでなく、他の感染症起炎菌のＤＮＡも存在している可能性がある。検出対象外の感染症起炎菌ＤＮＡの存在による影響（クロスコンタミネーション）を極力抑えつつ検出対象たる感染症起炎菌ＤＮＡを特異的に検出可能なプローブを設定することは決して容易なことではないのである。このような状況の下、本願発明者らは、下記の感染症起炎菌について、複数の菌のＤＮＡが存在する試料からもクロスコンタミネーションをより低いレベルに抑えつつ当該感染症起炎菌ＤＮＡを精度良く検出することができるプローブを得ることを目的として検討を行なった。その結果として当該感染症起炎菌ＤＮＡを精度良く検出可能なプローブの複数を得るに至った。
[菌名]
Anaerococcus prevotii（アナエロコッカス・プレボッティ）
そこで、本発明の第１の目的は、対象菌のＤＮＡを正確に同定することのできるプローブセットを提供することを目的とする。
[菌名]
Anaerococcus prevotii（アナエロコッカス・プレボッティ）
そこで、本発明の第１の目的は、対象菌のＤＮＡを正確に同定することのできるプローブセットを提供することを目的とする。
また本発明の他の目的は、様々な菌が同時に存在しうる検体の中から、対象となる菌を正確に同定することのできるプローブ固定担体を提供することを目的とする。
更にまた本発明の他の目的は、検体中に様々な菌が含まれている場合に、それらをより迅速に、且つより正確に検出することのできる感染症起炎菌の遺伝子検査方法およびそのためのキットを提供することを目的とする。
本発明にかかる感染症起炎菌であるアナエロコッカス・プレボッティ（Anaerococcus prevotii）のＤＮＡを特異的に検出するためのプローブセットは、
下記の（１）から選択される少なくとも１つのプローブと、下記の（２）から選択される少なくとも１つのプローブと、下記の（３）から選択される少なくとも１つのプローブとを含み、該少なくとも３つのプローブのそれぞれとの反応を示すシグナルを検出するために用いられることを特徴とするプローブセットである。
（１）TCATCTTGAGGTATGGAAGGGAAAGTGG（配列番号３５）で表される塩基配列からなるプローブ及びその相補配列からなるプローブ、
（２）GTGTTAGGTGTCTGGAATAATCTGGGTG（配列番号３６）で表される塩基配列からなるプローブ及びその相補配列からなるプローブ、
（３）ACCAAGTCTTGACATATTACGGCGG（配列番号３７）で表される塩基配列からなるプローブ及びその相補配列からなるプローブ。
下記の（１）から選択される少なくとも１つのプローブと、下記の（２）から選択される少なくとも１つのプローブと、下記の（３）から選択される少なくとも１つのプローブとを含み、該少なくとも３つのプローブのそれぞれとの反応を示すシグナルを検出するために用いられることを特徴とするプローブセットである。
（１）TCATCTTGAGGTATGGAAGGGAAAGTGG（配列番号３５）で表される塩基配列からなるプローブ及びその相補配列からなるプローブ、
（２）GTGTTAGGTGTCTGGAATAATCTGGGTG（配列番号３６）で表される塩基配列からなるプローブ及びその相補配列からなるプローブ、
（３）ACCAAGTCTTGACATATTACGGCGG（配列番号３７）で表される塩基配列からなるプローブ及びその相補配列からなるプローブ。
本発明にかかるプローブ固定担体は、上記のプローブセットを構成する複数のプローブの各々が固相担体上に配置されていることを特徴とするプローブ固定担体である。
本発明にかかるアナエロコッカス・プレボッティＤＮＡ検出用のキットは、上記のプローブセットを構成する複数のプローブの各々と、標的核酸との反応を検出するための試薬と、を有することを特徴とするアナエロコッカス・プレボッティＤＮＡ検出用のキットである。
本発明にかかるアナエロコッカス・プレボッティのＤＮＡの検出方法は、プローブ固定担体を用いた検体中でのアナエロコッカス・プレボッティのＤＮＡの検出方法において、
（ｉ）上記構成のプローブ固定担体と検体とを反応させる工程と、
（ｉｉ）前記プローブ固定担体上のプローブと前記検体中の核酸との反応の有無、またはその反応強度を検出する工程と、
を有することを特徴とするアナエロコッカス・プレボッティのＤＮＡの検出方法である。
（ｉ）上記構成のプローブ固定担体と検体とを反応させる工程と、
（ｉｉ）前記プローブ固定担体上のプローブと前記検体中の核酸との反応の有無、またはその反応強度を検出する工程と、
を有することを特徴とするアナエロコッカス・プレボッティのＤＮＡの検出方法である。
本発明によれば、検体が、上記に示した原因菌に感染している場合に、上記に示した菌以外の菌と同時に複合的に感染している場合であっても、該検体から上記に示した菌をより迅速かつ正確に同定することができる。特に、クロスコンタミネーションの可能性の高いPeptoniphilus asaccharolyticus(ぺプトニフィラス・アサッカロリティカス)と精度良く区別してAnaerococcus prevotii(アナエロコッカス・プレボッティ)の検出を行うことが可能となる。更に、他の感染症起炎菌と精度良く区別してAnaerococcus prevotiiの検出を行うことが可能となる。
本発明者らは、現在までに敗血症の起炎菌として知られているほぼ全ての細菌（以下の（１）〜（６２）に示す。）を各寄託機関より入手し、全ての菌における１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子領域のＤＮＡの配列の同定を行った。
そして、同定されたそれら全ての配列を比較しながら、Anaerococcus prevotii菌におけるプローブ配列について詳細な分析を行い、本発明のAnaerococcus prevotii菌を同定することのできるプローブを見出した。
敗血症起炎菌
（1）Staphylococcus aureus (ATCC12600)
（2）Staphylococcus epidermidis (ATCC14990)
（3）Escherichia coli (ATCC11775)
（4）Klebsiella pneumoniae (ATCC13883)
（5）Pseudomonas aeruginosa (ATCC10145)
（6）Serratia marcescens (ATCC13380)
（7）Streptococcus pneumoniae (ATCC33400)
（8）Haemophilus influenzae (ATCC33391)
（9）Enterobacter cloacae (ATCC13047)
（10）Enterococcus faecalis (ATCC19433)
（11）Staphylococcus haemolyticus (ATCC29970)
（12）Staphylococcus hominis (ATCC27844)
（13）Staphylococcus saprophyticus (ATCC15305)
（14）Streptococcus agalactiae (ATCC13813)
（15）Streptococcus mutans (ATCC25175)
（16）Streptococcus pyogenes (ATCC12344)
（17）Streptococcus sanguinis (ATCC10556)
（18）Enterococcus avium (JCM 8722)
（19）Enterococcus faecium (ATCC19434)
（20）Pseudomonas fluorescens (ATCC13525)
（21）Pseudomonas putida (ATCC12633)
（22）Burkholderia cepacia (JCM5964)
（23）Stenotrophomonas maltophilia (ATCC13637)
（24）Acinetobacter baumannii (ATCC19606)
（25）Acinetobacter calcoaceticus (ATCC23055)
（26）Achromobacter xylosoxidans (ATCC27061)
（27）Vibrio vulnificus (ATCC27562)
（28）Salmonella choleraesuis (JCM 1651)
（29）Citrobacter freundii (ATCC8090)
（30）Klebsiella oxytoca (ATCC13182)
（31）Enterobacter aerogenes (ATCC13048)
（32）Hafnia alvei (ATCC13337)
（33）Serratia liquefaciens (ATCC27592)
（34）Proteus mirabilis (ATCC29906)
（35）Proteus vulgaris (ATCC33420)
（36）Morganella morganii (ATCC25830)
（37）Providencia rettgeri (JCM 1675)
（38）Aeromonas hydrophila (JCM1027)
（39）Aeromonas sobria (ATCC43979)
（40）Gardnerella vaginalis (ATCC14018)
（41）Corynebacterium diphtheriae (ATCC2701)
（42）Legionella pneumophila (ATCC33152)
（43）Bacillus cereus (ATCC14579)
（44）Bacillus Subtilis (ATCC6051)
（45）Mycobacterium kansasii (ATCC12478)
（46）Mycobacterium intracellulare (ATCC13950)
（47）Mycobacterium chelonae (ATCC35752)
（48）Nocardia asteroids (ATCC19247)
（49）Bacteroides fragilis (JCM11019)
（50）Bacteroides thetaiotaomicron (JCM5827)
（51）Clostridium difficile (ATCC51695)
（52）Clostridium perfrigens (JCM1290)
（53）Eggerthella lenta (JCM10763)
（54）Fusobacterium necrophorum (JCM3718)
（55）Fusobacterium nucleatum (ATCC25586)
（56）Lactobacillus acidophilus (ATCC4356)
（57）Anaerococcus prevotii (JCM6490)
（58）Peptoniphilus asaccharolyticus (JCM8143)
（59）Porphyromonas asaccharolytica (JCM6326)
（60）Porphyromonas gingivalis (JCM8525)
（61）Prevotella denticola (ATCC38184)
（62）Propionibacterium acnes (JCM6473)
（右の括弧内は、入手した菌種の寄託番号を示す。）
本発明により、感染症の起炎菌同定の為のオリゴヌクレオチドプローブ（以下単にプローブという）及びその３以上の組み合わせからなるプローブセットが提供される。このプローブまたはプローブセットを用いることで感染により炎症を引き起こす以下の菌の検出が可能である。
［菌名］
Anaerococcus prevotii
すなわち、上記の菌の遺伝子のうち１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子領域のＤＮＡ配列を検出し得るプローブには、以下の各塩基配列からなるものが含まれる。
（Ａ）TCATCTTGAGGTATGGAAGGGAAAGTGG（配列番号３５）で表される塩基配列からなるプローブ、
（Ｂ）GTGTTAGGTGTCTGGAATAATCTGGGTG（配列番号３６）で表される塩基配列からなるプローブ、
（Ｃ）ACCAAGTCTTGACATATTACGGCGG（配列番号３７）で表される塩基配列からなるプローブ、
（Ｄ）配列番号３５の塩基配列の相補配列からなるプローブ、
（Ｅ）配列番号３６の塩基配列の相補配列からなるプローブ、
（Ｆ）配列番号３７の塩基配列の相補配列からなるプローブ、
（Ｇ）配列番号３５の塩基配列に、前記プローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列からなるプローブ、
（Ｈ）配列番号３６の塩基配列に、前記プローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列からなるプローブ、
（Ｉ）配列番号３７の塩基配列に、前記プローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列からなるプローブ、
（Ｊ）配列番号３５の塩基配列の相補配列に、前記プローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列からなるプローブ、
（Ｋ）配列番号３６の塩基配列の相補配列に、前記プローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列からなるプローブ、及び
（Ｌ）配列番号３７の塩基配列の相補配列に、前記プローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列からなるプローブ。
そして、同定されたそれら全ての配列を比較しながら、Anaerococcus prevotii菌におけるプローブ配列について詳細な分析を行い、本発明のAnaerococcus prevotii菌を同定することのできるプローブを見出した。
敗血症起炎菌
（1）Staphylococcus aureus (ATCC12600)
（2）Staphylococcus epidermidis (ATCC14990)
（3）Escherichia coli (ATCC11775)
（4）Klebsiella pneumoniae (ATCC13883)
（5）Pseudomonas aeruginosa (ATCC10145)
（6）Serratia marcescens (ATCC13380)
（7）Streptococcus pneumoniae (ATCC33400)
（8）Haemophilus influenzae (ATCC33391)
（9）Enterobacter cloacae (ATCC13047)
（10）Enterococcus faecalis (ATCC19433)
（11）Staphylococcus haemolyticus (ATCC29970)
（12）Staphylococcus hominis (ATCC27844)
（13）Staphylococcus saprophyticus (ATCC15305)
（14）Streptococcus agalactiae (ATCC13813)
（15）Streptococcus mutans (ATCC25175)
（16）Streptococcus pyogenes (ATCC12344)
（17）Streptococcus sanguinis (ATCC10556)
（18）Enterococcus avium (JCM 8722)
（19）Enterococcus faecium (ATCC19434)
（20）Pseudomonas fluorescens (ATCC13525)
（21）Pseudomonas putida (ATCC12633)
（22）Burkholderia cepacia (JCM5964)
（23）Stenotrophomonas maltophilia (ATCC13637)
（24）Acinetobacter baumannii (ATCC19606)
（25）Acinetobacter calcoaceticus (ATCC23055)
（26）Achromobacter xylosoxidans (ATCC27061)
（27）Vibrio vulnificus (ATCC27562)
（28）Salmonella choleraesuis (JCM 1651)
（29）Citrobacter freundii (ATCC8090)
（30）Klebsiella oxytoca (ATCC13182)
（31）Enterobacter aerogenes (ATCC13048)
（32）Hafnia alvei (ATCC13337)
（33）Serratia liquefaciens (ATCC27592)
（34）Proteus mirabilis (ATCC29906)
（35）Proteus vulgaris (ATCC33420)
（36）Morganella morganii (ATCC25830)
（37）Providencia rettgeri (JCM 1675)
（38）Aeromonas hydrophila (JCM1027)
（39）Aeromonas sobria (ATCC43979)
（40）Gardnerella vaginalis (ATCC14018)
（41）Corynebacterium diphtheriae (ATCC2701)
（42）Legionella pneumophila (ATCC33152)
（43）Bacillus cereus (ATCC14579)
（44）Bacillus Subtilis (ATCC6051)
（45）Mycobacterium kansasii (ATCC12478)
（46）Mycobacterium intracellulare (ATCC13950)
（47）Mycobacterium chelonae (ATCC35752)
（48）Nocardia asteroids (ATCC19247)
（49）Bacteroides fragilis (JCM11019)
（50）Bacteroides thetaiotaomicron (JCM5827)
（51）Clostridium difficile (ATCC51695)
（52）Clostridium perfrigens (JCM1290)
（53）Eggerthella lenta (JCM10763)
（54）Fusobacterium necrophorum (JCM3718)
（55）Fusobacterium nucleatum (ATCC25586)
（56）Lactobacillus acidophilus (ATCC4356)
（57）Anaerococcus prevotii (JCM6490)
（58）Peptoniphilus asaccharolyticus (JCM8143)
（59）Porphyromonas asaccharolytica (JCM6326)
（60）Porphyromonas gingivalis (JCM8525)
（61）Prevotella denticola (ATCC38184)
（62）Propionibacterium acnes (JCM6473)
（右の括弧内は、入手した菌種の寄託番号を示す。）
本発明により、感染症の起炎菌同定の為のオリゴヌクレオチドプローブ（以下単にプローブという）及びその３以上の組み合わせからなるプローブセットが提供される。このプローブまたはプローブセットを用いることで感染により炎症を引き起こす以下の菌の検出が可能である。
［菌名］
Anaerococcus prevotii
すなわち、上記の菌の遺伝子のうち１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子領域のＤＮＡ配列を検出し得るプローブには、以下の各塩基配列からなるものが含まれる。
（Ａ）TCATCTTGAGGTATGGAAGGGAAAGTGG（配列番号３５）で表される塩基配列からなるプローブ、
（Ｂ）GTGTTAGGTGTCTGGAATAATCTGGGTG（配列番号３６）で表される塩基配列からなるプローブ、
（Ｃ）ACCAAGTCTTGACATATTACGGCGG（配列番号３７）で表される塩基配列からなるプローブ、
（Ｄ）配列番号３５の塩基配列の相補配列からなるプローブ、
（Ｅ）配列番号３６の塩基配列の相補配列からなるプローブ、
（Ｆ）配列番号３７の塩基配列の相補配列からなるプローブ、
（Ｇ）配列番号３５の塩基配列に、前記プローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列からなるプローブ、
（Ｈ）配列番号３６の塩基配列に、前記プローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列からなるプローブ、
（Ｉ）配列番号３７の塩基配列に、前記プローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列からなるプローブ、
（Ｊ）配列番号３５の塩基配列の相補配列に、前記プローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列からなるプローブ、
（Ｋ）配列番号３６の塩基配列の相補配列に、前記プローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列からなるプローブ、及び
（Ｌ）配列番号３７の塩基配列の相補配列に、前記プローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列からなるプローブ。
これらのプローブの２つ以上を用いてプローブセットを構成することができる。
上記の変異配列は、プローブとしての機能を損なわない範囲内、すなわち、検出対象としての標的核酸配列にハイブリダイズしてこれを検出可能な範囲内での変異を有するものである。なかでも、ストリンジェントな条件で検出対象としての標的核酸配列にハイブリダイズし得る範囲での変異を有することが好ましい。変異の範囲を既定するハイブリダイゼーションの好ましい条件としては、後述する実施例における条件を挙げることができる。なお、ここでいう検出対象は、ハイブリダイゼーションを行う試料中に含まれるもので、感染症起炎菌に特有な塩基配列そのものであってもよいし、この特有な塩基配列の相補配列であってもよい。更に、かかる変異としては、１から数個の塩基の欠失、置換または付加がプローブ機能を保持する範囲内で行われた変異配列を挙げることができる。
これらのプローブの機能は、検査対象としての標的核酸配列に対するプローブ配列の特異性に大きく依存している。プローブ配列の特異性は、標的核酸配列に対する塩基の一致度合と、標的核酸配列とプローブ配列との間の融解温度から、評価することが可能である。また、プローブがプローブセットを構成する場合は、他のプローブ配列の融解温度とのバラ付きも性能を左右する条件となる。
これらのプローブ配列の設計にあたっては、同一種であれば異なる株であってもバラ付きの無いような当該菌種に対する特異性の高い領域が選択されている。また、当該菌種以外の菌種の配列とは3塩基以上の塩基の不一致箇所がある領域が選択されている。また、プローブ配列と当該菌種の配列との融解温度と、プローブ配列と当該菌種以外の菌種の配列との融解温度の差が、10℃以上となるように設計されている。さらに、同一の担体に固定するプローブのそれぞれの融解温度が一定の範囲内に納まるように、特異性の高い領域に塩基の削除あるいは追加を行なって設計されている。
本願の発明者らの実験によれば、プローブ配列のうち、連続した80%以上の配列が保存されている場合は、ハイブリダイゼーションの強度の減衰が少ないことが分かっている。このことから、本願により開示しているプローブ配列のうち連続して80%以上の塩基配列が保存されている変異配列であれば、プローブの機能は損なわないといえる。
これらのプローブ配列は、当該菌の16S rRNA遺伝子をコーディングしているDNA配列に対してのみ特異的であるため、ストリンジェントな条件に設定しても当該配列に対して十分なハイブリダイゼーション感度が期待される。また、これらのプローブ配列は、担体上に固定した状態であっても、対象となる検体とのハイブリダイゼーション反応において安定なハイブリッド体を形成し、良好な結果が得られるように設計されている。
さらに本発明にかかる感染症起炎菌検出用プローブが固定されたプローブ固定担体（例えばＤＮＡチップ）は、担体の所定位置にプローブを供給し、固定することにより得ることができる。担体へのプローブの供給には、種々の方法が利用できる。例えば、プローブを化学結合（共有結合など）により担体に固定可能な状態としておき、これを含む液体をインクジェット法により担体の所定位置に付与する方法が好適に利用できる。これにより、プローブが担体から剥がれにくくなるうえ、感度が向上するという付帯的な効果も得られる。つまり、従来から一般的に用いられるスタンフォード法と呼ばれるスタンピング法によりＤＮＡチップを作成した場合、塗布したＤＮＡが剥がれやすい場合があるという欠点があった。また、ＤＮＡチップの作成方法としては、担体表面上でのＤＮＡ合成によりプローブを配置する方法がある（例えばＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製のＤＮＡチップ等）。この担体上でのプローブを合成する方法においては、各プローブ配列ごとの合成量を均一に制御することが難しい為に、各プローブの固定領域（スポット）ごとにプローブの固定量が大幅に異なる場合が生じ易い。そのような各プローブの固定量にばらつきがあると、それを用いた検出結果に対する正確な評価ができない場合が生じる。このような観点から、本発明にかかるプローブ担体は、上述したインクジェット法を利用して作成されることが好ましい。上述したインクジェット法によれば、プローブが担体に安定に固定され剥がれにくく、高感度と高精度の検出ができるプローブ担体を効率良く提供できるという利点がある。
また、前記配列番号３５乃至３７及びそれらの相補配列、更にこれらの塩基配列に、当該菌の遺伝子を検出するプローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列、からなる群から選ばれる少なくとも２つのプローブを用いてプローブセットを構成してもよい。この場合、Anaerococcus prevotii遺伝子の検出精度のより一層の向上を図ることができる。
以下、本発明の好適な実施形態について詳細に説明する。
本発明のプローブを担体に固定したプローブ担体（例えば、ＤＮＡチップ）を用いた検査対象としての試料には、ヒト、家畜等の動物由来のものがある。例えば、血液、髄液、喀痰、胃液、膣分泌物、口腔内粘液等の体液、尿及び糞便のような排出物等細菌が存在すると思われるあらゆるものが検査対象となる。また、食中毒、汚染の対象となる食品、飲料水及び温泉水のような環境中の水等、または空気清浄機等のフィルタなど、細菌による汚染が引き起こされる可能性のある媒体全てが検査対象として挙げられる。さらに、輸出入時における検疫等の動植物も検体の対象となる。
上記のような試料がＤＮＡチップとの反応にそのまま利用できる場合には、それを検体としてＤＮＡチップと反応させて、その結果を分析する。また、試料をそのままＤＮＡチップと反応させることができない場合には、標的物質の抽出、精製などの必要に応じた処理を試料に行なって得たサンプルを検体としてＤＮＡチップと反応させる。例えば、標的核酸が含まれている場合にこれを含むと想定される抽出物を試料から調整し、更に必要に応じて洗浄や希釈などの処理を行なって検体溶液とし、これをＤＮＡチップと反応させてもよい。更に、ＰＣＲ増幅処理などを含む各種の増幅処理を行って標的核酸が検体に含まれている場合にこれを増幅してＤＮＡチップと反応させる検体としてもよい。このような増幅核酸検体には、以下のものがある。
（ａ）１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子検出用に設計されたＰＣＲ反応用プライマーを用いて調整された増幅検体。
（ｂ）ＰＣＲ増幅物を元にさらにＰＣＲ反応等を行なって調整された検体。
（ｃ）ＰＣＲ以外の増幅方法により調整された検体。
（ｄ）可視化のために各種標識方法により標識された検体。
（ａ）１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子検出用に設計されたＰＣＲ反応用プライマーを用いて調整された増幅検体。
（ｂ）ＰＣＲ増幅物を元にさらにＰＣＲ反応等を行なって調整された検体。
（ｃ）ＰＣＲ以外の増幅方法により調整された検体。
（ｄ）可視化のために各種標識方法により標識された検体。
また、ＤＮＡチップなどのプローブ固定担体の調製に用いられる担体としては、目的とする固相−液相反応を行うことができる特性を満たすものであればよい。例えば、ガラス基板、プラスチック基板、シリコンウェハー等の平面基板、凹凸のある三次元構造体、ビーズのような球状のもの、棒状、紐状、糸状のもの等を担体として用いることができる。さらに、その担体の表面はプローブの固定化が可能なように処理されたものであってもよい。特に、表面に化学反応が可能となるように官能基を導入したものは、ハイブリダイゼーション反応の過程でプローブが安定に結合している為に、再現性の点で好ましい形態である。
プローブの固定化には種々の方法が利用できる。一例として、マレイミド基とチオール（−ＳＨ）基との組合せを用いる方法が挙げられる。この方法では、プローブの末端にチオール（−ＳＨ）基を結合させておき、担体（固相）表面がマレイミド基を有するように処理しておく。これにより、担体表面に供給されたプローブのチオール基と担体表面のマレイミド基とが反応して共有結合が形成されプローブが固定化される。
マレイミド基の導入には、まず、ガラス基板にアミノシランカップリング剤を反応させ、次にそのアミノ基とＥＭＣＳ試薬（N-(6-Maleimidocaproyloxy)succinimide:Ｄｏｊｉｎ社製）との反応によりマレイミド基を導入する方法が利用できる。ＤＮＡへのチオール基の導入は、ＤＮＡ自動合成機上5'-Thiol-Modifier C6（Glen Research社製）を用いることにより行なうことができる。
固定化に利用する官能基の組合わせとしては、上記したチオール基とマレイミド基の組合わせ以外にも、例えばエポキシ基（固相上）とアミノ基（核酸プローブ末端）の組合わせ等が挙げられる。また、各種シランカップリング剤による表面処理も有効であり、シランカップリング剤により導入された官能基と反応可能な官能基を導入したプローブが用いられる。さらに、官能基を有する樹脂をコーティングする方法も利用可能である。
本発明にかかるプローブ固定担体を用いた感染症起炎菌ＤＮＡの検出は、少なくとも以下の工程（ｉ）及び（ii）を有するＤＮＡ検出方法により行うことができる。
（ｉ）本発明にかかるプローブを固定したプローブ固定担体と検体とを反応させる工程。
（ｉｉ）前記プローブ固定担体上のプローブと前記検体中の核酸との反応の有無、またはその反応強度を検出する工程。
（ｉ）本発明にかかるプローブを固定したプローブ固定担体と検体とを反応させる工程。
（ｉｉ）前記プローブ固定担体上のプローブと前記検体中の核酸との反応の有無、またはその反応強度を検出する工程。
更に、少なくとも以下の工程（Ａ）〜（Ｃ）の工程を有する検出方法とすることもできる。
（Ａ）本発明にかかるプローブを固定したプローブ固定担体と検体とを反応させる工程。
（Ｂ）プローブ固定担体上のプローブと検体中の核酸との反応の有無を検出する工程。
（Ｃ）プローブと検体中の核酸の反応が検出される場合に、検体中の核酸と反応したプローブを特定し、プローブの塩基配列に基づいて検体中に含まれる感染症起炎菌ＤＮＡを特定する工程。
（Ａ）本発明にかかるプローブを固定したプローブ固定担体と検体とを反応させる工程。
（Ｂ）プローブ固定担体上のプローブと検体中の核酸との反応の有無を検出する工程。
（Ｃ）プローブと検体中の核酸の反応が検出される場合に、検体中の核酸と反応したプローブを特定し、プローブの塩基配列に基づいて検体中に含まれる感染症起炎菌ＤＮＡを特定する工程。
プローブ固定担体に固定するプローブは、先に挙げた（Ａ）乃至（Ｌ）の少なくとも１種であり、担体には検査目的に応じてその他のプローブ（Anaerococcus prevotii 以外の菌種を検出するためのプローブ）が固定されていてもよい。この場合、その他のプローブとして、Anaerococcus prevotii以外の菌種をクロスコンタミネーションを起こすことなく検出す可能なプローブを用いることで複数菌種の精度良い同時検出が可能となる。その他のプローブとして、表８に記載の配列番号３８乃至６７の塩基配列、並びにそれらの相補配列、更にこれらの塩基配列に各プローブにおける検出対象菌のＤＮＡを検出するプローブとしての機能を保持できる範囲内で、塩基の欠失、置換もしくは付加がなされた変異配列、からなる群から選ばれるいずれかの塩基配列からなるプローブの少なくとも１つを好適に用いることができる。当該プローブは、固相担体のAnaerococcus prevotii菌ＤＮＡ検出用プローブと離間した位置に固定して用いればよい。
更に、先に述べたとおり、検体中に含まれる感染症起炎菌の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子領域のＤＮＡ配列をＰＣＲで増幅させてこれをプローブ担体と反応させるサンプルとする場合には、感染症起炎菌の検出用プライマーセットを用いることができる。このプライマーセットとしては、以下の（１）乃至（２１）に挙げるオリゴヌクレオチドから選択される１種以上及び（２２）乃至（２８）に挙げるオリゴヌクレオチドから選択される１種以上を含むものが好適であり、更に好ましくは（１）乃至（２８）に挙げる全種のオリゴヌクレオチドを含むものが好適である。
（１）5' gcggcgtgcctaatacatgcaag 3'（配列番号１）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２）5' gcggcaggcctaacacatgcaag 3'（配列番号２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（３）5' gcggcaggcttaacacatgcaag 3'（配列番号３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（４）5' gcggtaggcctaacacatgcaag 3'（配列番号４）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（５）5' gcggcgtgcttaacacatgcaag 3'（配列番号５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（６）5' gcgggatgccttacacatgcaag 3'（配列番号６）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（７）5' gcggcatgccttacacatgcaag 3'（配列番号７）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（８）5' gcggcatgcttaacacatgcaag 3'（配列番号８）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（９）5' gcggcgtgcttaatacatgcaag 3'（配列番号９）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１０）5' gcggcaggcctaatacatgcaag 3'（配列番号１０）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１１）5' gcgggatgctttacacatgcaag 3'（配列番号１１）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１２）5' gcggcgtgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１３）5' gcggcgtgcataacacatgcaag 3'（配列番号１３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１４）5' gcggcatgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１４）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１５）5' gcggcgcgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１６）5' gcggcgcgcttaacacatgcaag 3'（配列番号１６）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１７）5' gcgtcatgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１７）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１８）5' gcgataggcttaacacatgcaag 3'（配列番号１８）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１９）5' gcgacaggcttaacacatgcaag 3'（配列番号１９）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２０）5' gctacaggcttaacacatgcaag 3'（配列番号２０）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２１）5' acagaatgcttaacacatgcaag 3'（配列番号２１）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２２）5' atccagccgcaccttccgatac 3'（配列番号２２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２３）5' atccaaccgcaggttcccctac 3'（配列番号２３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２４）5' atccagccgcaggttcccctac 3'（配列番号２４）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２５）5' atccagccgcaccttccggtac 3'（配列番号２５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２６）5' atccagcgccaggttcccctag 3'（配列番号２６）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２７）5' atccagccgcaggttctcctac 3'（配列番号２７）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２８）5' atccagccgcacgttcccgtac 3'（配列番号２８）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
この中で、Anaerococcus prevotii菌を増幅可能に構成されているプライマーは、以下のプライマーセットである。
（１３）5' gcggcgtgcataacacatgcaag 3'（配列番号１３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２２）5' atccagccgcaccttccgatac 3'（配列番号２２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２５）5' atccagccgcaccttccggtac 3'（配列番号２５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１）5' gcggcgtgcctaatacatgcaag 3'（配列番号１）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２）5' gcggcaggcctaacacatgcaag 3'（配列番号２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（３）5' gcggcaggcttaacacatgcaag 3'（配列番号３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（４）5' gcggtaggcctaacacatgcaag 3'（配列番号４）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（５）5' gcggcgtgcttaacacatgcaag 3'（配列番号５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（６）5' gcgggatgccttacacatgcaag 3'（配列番号６）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（７）5' gcggcatgccttacacatgcaag 3'（配列番号７）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（８）5' gcggcatgcttaacacatgcaag 3'（配列番号８）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（９）5' gcggcgtgcttaatacatgcaag 3'（配列番号９）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１０）5' gcggcaggcctaatacatgcaag 3'（配列番号１０）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１１）5' gcgggatgctttacacatgcaag 3'（配列番号１１）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１２）5' gcggcgtgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１３）5' gcggcgtgcataacacatgcaag 3'（配列番号１３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１４）5' gcggcatgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１４）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１５）5' gcggcgcgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１６）5' gcggcgcgcttaacacatgcaag 3'（配列番号１６）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１７）5' gcgtcatgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１７）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１８）5' gcgataggcttaacacatgcaag 3'（配列番号１８）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１９）5' gcgacaggcttaacacatgcaag 3'（配列番号１９）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２０）5' gctacaggcttaacacatgcaag 3'（配列番号２０）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２１）5' acagaatgcttaacacatgcaag 3'（配列番号２１）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２２）5' atccagccgcaccttccgatac 3'（配列番号２２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２３）5' atccaaccgcaggttcccctac 3'（配列番号２３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２４）5' atccagccgcaggttcccctac 3'（配列番号２４）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２５）5' atccagccgcaccttccggtac 3'（配列番号２５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２６）5' atccagcgccaggttcccctag 3'（配列番号２６）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２７）5' atccagccgcaggttctcctac 3'（配列番号２７）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２８）5' atccagccgcacgttcccgtac 3'（配列番号２８）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
この中で、Anaerococcus prevotii菌を増幅可能に構成されているプライマーは、以下のプライマーセットである。
（１３）5' gcggcgtgcataacacatgcaag 3'（配列番号１３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２２）5' atccagccgcaccttccgatac 3'（配列番号２２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２５）5' atccagccgcaccttccggtac 3'（配列番号２５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
この中で、Bacteroides thetaiotaomicron菌の１６Ｓ ｒＲＮＡ領域のＤＮＡを増幅可能に構成されるプライマーセットとしては、以下の（２２）及び（２５）に挙げるオリゴヌクレオチドの少なくとも一方のオリゴヌクレオチドと、（１３）に挙げるオリゴヌクレオチドと、からなるものが好適である。
具体的には、配列番号６８に示すAnaerococcus prevotii (JCM6490)の１６Ｓ ｒＲＮＡ領域のＤＮＡ配列などと、上述の配列番号（１）乃至（２８）との比較を行なうことで、上記のプライマー配列が好適であることを確認することができる。
（１３）5' gcggcgtgcataacacatgcaag 3'（配列番号１３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２２）5' atccagccgcaccttccgatac 3'（配列番号２２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２５）5' atccagccgcaccttccggtac 3'（配列番号２５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
配列番号68
CTCAGGATAAACGCTGGCGGCGTGCATAACACATGCAAGTCGAACGATGAAGCTTAAATG
ATCTCTTCGGAGTGATTTTAAGTGGATTAGTGGCGGACGGGTGAGTAACGCGTGAGTAAC
CTGCCTTACACAAGGGGATAGCCGTTGGAAACGACGAATAATACCCTATGATATAAACTC
TTCACATGAGGAGCTTATCAAAGATTTATCGGTGTAAGATGGACTCGCGTCTGATTAGCT
AGTTGGTGGGGTAAAAGCCTACCAAGGCAACGATCAGTAGCCGGCTTGAGAGAGTGTACG
GCCACATTGGGACTAAGACACGGCCCAGACTCCTACGGGAGGCAGCAGTGGGGAATTTTG
CACAATGGGGGCAACCCTGATGCAGCGACGCCGCGTGATTTAGAAGGCCTTCGGGTTGTA
AAAATCTTTTGTATGGGAAGAAAATGACAGTACCATACGAATAAGGACCGGCTAATTACG
TGCCAGCAGCCGCGGTAATACGTAAGGTCCGAGCGTTGTCCGGAATCATTGGGCGTAAAG
GGTACGTAGGCGGATAAGCAAGTTAGAAGTGAAATCCTATAGCTCAACTATAGTAAGCTT
TTAAAACTGCTCATCTTGAGGTATGGAAGGGAAAGTGGAATTCCTAGTGTAGCGGTGAAA
TGCGCAGATATTAGGAGGAATACCGGTGGCGAAGGCGACTTTCTGGCCATAAACTGACGC
TGAGGTACGAAAGCGTGGGTAGCAAACAGGATTAGATACCCTGGTAGTCCACGCCGTAAA
CGATGAGTGTTAGGTGTCTGGAATAATCTGGGTGCCGCAGCTAACGCAATAAACACTCCG
CCTGGGGAGTACGCACGCAAGTGTGAAACTCAAAGGAATTGACGGGGACCCGCACAGGCA
GCGGAGCATGTGGTTTAATTCGACGCAACGCGAAGAACCTTACCAAGTCTTGACATATTA
CGGCGGGGTCTAGAGATAGACTCTTATCGCTTCGGCGAACTGTAATACAGGTGGTGCATG
GTTGTCGTCAGCTCGTGTCGTGAGATGTTGGGTTAAGTCCCATAACGAGCGCAACCCCTA
TTGTTAGTTACCATCATTAAGTTGGGGACTCTAGCAATACTGCCGGTGACAAACCGGAGG
AAGGTGGGGATGACGTCAAATCATCATGCCCTTTATGACTTGGGCTACACACGTGCTACA
ATGGCAGGTACAGAGGGAAGCAAGACTGCGAAGTTAAGCAAAACTCAAAAAGCCTGTCTC
AGTTCGGATTGCACTCTGCAACTCGAGTGCATGAAGTTGGAGTTGCTAGTAATCGCAGAT
CAGAATGCTGCGGTGAATGCGTTCCCGGGTCTTGTACACACCGCCCGTCACACCATGGAA
GTTGGCAATACCCGAAGCCTGTGAGCGAACCTTAGGGACGCAGCAGTCGAAGGTAGGGTC
AGTAACTGGGGTGAAGTCGTAACAAGGTAGCCGTATCGGAAGGTGCGG
Bacteroides thetaiotaomicron菌ＤＮＡを検出する目的においては、少なくとも上記（２２）及び（２５）に挙げるオリゴヌクレオチドの少なくとも一方のオリゴヌクレオチド、並びに、上記（２０）に挙げるオリゴヌクレオチドのみを有していれば良い。
（１３）5' gcggcgtgcataacacatgcaag 3'（配列番号１３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２２）5' atccagccgcaccttccgatac 3'（配列番号２２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２５）5' atccagccgcaccttccggtac 3'（配列番号２５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
配列番号68
CTCAGGATAAACGCTGGCGGCGTGCATAACACATGCAAGTCGAACGATGAAGCTTAAATG
ATCTCTTCGGAGTGATTTTAAGTGGATTAGTGGCGGACGGGTGAGTAACGCGTGAGTAAC
CTGCCTTACACAAGGGGATAGCCGTTGGAAACGACGAATAATACCCTATGATATAAACTC
TTCACATGAGGAGCTTATCAAAGATTTATCGGTGTAAGATGGACTCGCGTCTGATTAGCT
AGTTGGTGGGGTAAAAGCCTACCAAGGCAACGATCAGTAGCCGGCTTGAGAGAGTGTACG
GCCACATTGGGACTAAGACACGGCCCAGACTCCTACGGGAGGCAGCAGTGGGGAATTTTG
CACAATGGGGGCAACCCTGATGCAGCGACGCCGCGTGATTTAGAAGGCCTTCGGGTTGTA
AAAATCTTTTGTATGGGAAGAAAATGACAGTACCATACGAATAAGGACCGGCTAATTACG
TGCCAGCAGCCGCGGTAATACGTAAGGTCCGAGCGTTGTCCGGAATCATTGGGCGTAAAG
GGTACGTAGGCGGATAAGCAAGTTAGAAGTGAAATCCTATAGCTCAACTATAGTAAGCTT
TTAAAACTGCTCATCTTGAGGTATGGAAGGGAAAGTGGAATTCCTAGTGTAGCGGTGAAA
TGCGCAGATATTAGGAGGAATACCGGTGGCGAAGGCGACTTTCTGGCCATAAACTGACGC
TGAGGTACGAAAGCGTGGGTAGCAAACAGGATTAGATACCCTGGTAGTCCACGCCGTAAA
CGATGAGTGTTAGGTGTCTGGAATAATCTGGGTGCCGCAGCTAACGCAATAAACACTCCG
CCTGGGGAGTACGCACGCAAGTGTGAAACTCAAAGGAATTGACGGGGACCCGCACAGGCA
GCGGAGCATGTGGTTTAATTCGACGCAACGCGAAGAACCTTACCAAGTCTTGACATATTA
CGGCGGGGTCTAGAGATAGACTCTTATCGCTTCGGCGAACTGTAATACAGGTGGTGCATG
GTTGTCGTCAGCTCGTGTCGTGAGATGTTGGGTTAAGTCCCATAACGAGCGCAACCCCTA
TTGTTAGTTACCATCATTAAGTTGGGGACTCTAGCAATACTGCCGGTGACAAACCGGAGG
AAGGTGGGGATGACGTCAAATCATCATGCCCTTTATGACTTGGGCTACACACGTGCTACA
ATGGCAGGTACAGAGGGAAGCAAGACTGCGAAGTTAAGCAAAACTCAAAAAGCCTGTCTC
AGTTCGGATTGCACTCTGCAACTCGAGTGCATGAAGTTGGAGTTGCTAGTAATCGCAGAT
CAGAATGCTGCGGTGAATGCGTTCCCGGGTCTTGTACACACCGCCCGTCACACCATGGAA
GTTGGCAATACCCGAAGCCTGTGAGCGAACCTTAGGGACGCAGCAGTCGAAGGTAGGGTC
AGTAACTGGGGTGAAGTCGTAACAAGGTAGCCGTATCGGAAGGTGCGG
Bacteroides thetaiotaomicron菌ＤＮＡを検出する目的においては、少なくとも上記（２２）及び（２５）に挙げるオリゴヌクレオチドの少なくとも一方のオリゴヌクレオチド、並びに、上記（２０）に挙げるオリゴヌクレオチドのみを有していれば良い。
以上説明したプローブと、検体中の核酸とプローブとの反応を検出するための試薬とを少なくとも用いて感染症起炎菌検出用のキットを構成することができる。このキットにおけるプローブは上述したプローブ固体担体として提供されていることが好ましい。また、検出用試薬には、反応を検出するための標識や、前処理としての増幅を行う場合のプライマーが含まれる。検出用試薬にプライマーを含む場合は、プライマーはAnaerococcus prevotiiの１６Ｓ ｒＲＮＡ領域のＤＮＡを増幅するためのプライマーで構成されるものが好適である。更に、検出用試薬としてAnaerococcus prevotii以外の感染症起炎菌の当該領域ＤＮＡを増幅するためのプライマーを、Anaerococcus prevotiiの当該領域ＤＮＡを増幅するためのプライマーとともに含む構成とすることができる。Anaerococcus prevotiiのＤＮＡを検出するキットとしては、本発明にかかるAnaerococcus prevotiiのＤＮＡ検出用プローブと、検出用試薬としてAnaerococcus prevotiiの１６Ｓ ｒＲＮＡ領域のＤＮＡを増幅するプライマーと、を有する構成が好適である。キットが、Anaerococcus prevotiiのＤＮＡ検出用プローブとともにAnaerococcus prevotii以外の感染症起炎菌ＤＮＡを検出するためのプローブが固定されたプローブ固定担体を有する場合は、検出用試薬として、Anaerococcus prevotii菌以外の感染症起炎菌の当該領域のＤＮＡを増幅するプライマーも含むことが好ましい。
以下、Anaerococcus prevotii菌を検出するための感染症起炎菌検出用プローブを用いた実施例により、本発明を更に詳細に説明する。
（実施例１）
以下の実施例では、２ Ｓｔｅｐ ＰＣＲ法を用いた微生物の検出について説明する。
以下の実施例では、２ Ｓｔｅｐ ＰＣＲ法を用いた微生物の検出について説明する。
［１．プローブＤＮＡの準備］
Anaerococcus prevotii菌検出用プローブとして、表１に示す核酸配列を設計した。具体的には、Anaerococcus prevotii菌の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子をコーディングしているゲノム部分より、以下に示したプローブ塩基配列を選択した。これらのプローブ塩基配列群は、当該菌に対して非常に特異性が高く、十分かつそれぞれのプローブ塩基配列でばらつきのないハイブリダイゼーション感度が期待できるように設計されている。なお、表１に示す各プローブ塩基配列はこれに完全に一致したものに限定される必要はなく、該各プローブ塩基配列を含む２０から３０程度の塩基長を有するプローブ塩基配列も表１に示す各プローブ塩基配列も表１に示す各プローブ塩基配列に含まれるものとする。
Anaerococcus prevotii菌検出用プローブとして、表１に示す核酸配列を設計した。具体的には、Anaerococcus prevotii菌の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子をコーディングしているゲノム部分より、以下に示したプローブ塩基配列を選択した。これらのプローブ塩基配列群は、当該菌に対して非常に特異性が高く、十分かつそれぞれのプローブ塩基配列でばらつきのないハイブリダイゼーション感度が期待できるように設計されている。なお、表１に示す各プローブ塩基配列はこれに完全に一致したものに限定される必要はなく、該各プローブ塩基配列を含む２０から３０程度の塩基長を有するプローブ塩基配列も表１に示す各プローブ塩基配列も表１に示す各プローブ塩基配列に含まれるものとする。
表１中に示した塩基配列を有するプローブには、ＤＮＡチップに固定するための官能基として、合成後、定法に従って核酸の5'末端にチオール基を導入した。官能基の導入後、精製し、凍結乾燥した。凍結乾燥した内部標準用プローブは、−３０℃の冷蔵庫に保存した。
［２．ＰＣＲプライマーの準備］
［２−１．検体増幅用ＰＣＲプライマーの準備］
起炎菌検出用の為の１６ｓ ｒＲＮＡ遺伝子（標的遺伝子）増幅用ＰＣＲプライマーとして以下の表２に示す核酸配列を設計した。具体的には、１６ｓ ｒＲＮＡをコーディングしているゲノム部分を特異的に増幅するプライマーセット、つまり約１５００塩基長の１６ｓ ｒＲＮＡコーディング領域の両端部分で、特異的な融解温度をできるだけ揃えるよう設計されたプライマーを使用した。なお、先に(1)〜(62)にあげた複数の異なる菌種や、変異株や、ゲノム上に複数存在する１６ｓ ｒＲＮＡ遺伝子も同時に増幅できるように複数種類のプライマーが設計されている。なお、起炎菌の１６ｓ ｒＲＮＡ遺伝子に対して共通にほぼ全長を増幅できるプライマーセットであれば、下記の表２に挙げたプライマーセットに限定する必要はないのは言うまでもない。
［２−１．検体増幅用ＰＣＲプライマーの準備］
起炎菌検出用の為の１６ｓ ｒＲＮＡ遺伝子（標的遺伝子）増幅用ＰＣＲプライマーとして以下の表２に示す核酸配列を設計した。具体的には、１６ｓ ｒＲＮＡをコーディングしているゲノム部分を特異的に増幅するプライマーセット、つまり約１５００塩基長の１６ｓ ｒＲＮＡコーディング領域の両端部分で、特異的な融解温度をできるだけ揃えるよう設計されたプライマーを使用した。なお、先に(1)〜(62)にあげた複数の異なる菌種や、変異株や、ゲノム上に複数存在する１６ｓ ｒＲＮＡ遺伝子も同時に増幅できるように複数種類のプライマーが設計されている。なお、起炎菌の１６ｓ ｒＲＮＡ遺伝子に対して共通にほぼ全長を増幅できるプライマーセットであれば、下記の表２に挙げたプライマーセットに限定する必要はないのは言うまでもない。
上記表２中に示したプライマーは、合成後、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により精製し、Ｆｏｒｗａｒｄプライマーを２１種、Ｒｅｖｅｒｓｅプライマーを７種それぞれ混合し、それぞれのプライマー濃度が、最終濃度10pmol/μlとなるようにＴＥ緩衝液に溶解した。
［２−２．標識用ＰＣＲプライマーの準備］
上述の検体増幅用のプライマーと同様に、以下の表３に示す配列を持つオリゴヌクレオチドを標識用のプライマーとして使用した。
［２−２．標識用ＰＣＲプライマーの準備］
上述の検体増幅用のプライマーと同様に、以下の表３に示す配列を持つオリゴヌクレオチドを標識用のプライマーとして使用した。
表３中に示したプライマーには、蛍光色素としてCy3を用いて標識を行なった。
合成後、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により精製し、６種類の標識プライマーを混合し、それぞれの標識プライマー濃度が、最終濃度10pmol/μlとなるようにＴＥ緩衝液に溶解した。
［３．Anaerococcus prevotii菌 Ｇｅｎｏｍｅ ＤＮＡ（モデル検体）の抽出］
［３−１．微生物の培養 ＆ Ｇｅｎｏｍｅ ＤＮＡの抽出］
まず、Anaerococcus prevotii菌（JCM 6490）を、定法に従って培養した。この微生物培養液から、核酸精製キット(FastPrep FP100A・FastDNA Kit:フナコシ株式会社製)を用いて、Ｇｅｎｏｍｅ ＤＮＡの抽出と精製を行なった。
［３−２．回収したＧｅｎｏｍｅ ＤＮＡの検査］
回収された微生物（Anaerococcus prevotii菌）のＧｅｎｏｍｅ ＤＮＡは、定法に従って、アガロース電気泳動と260/280nmの吸光度測定を行い、その品質（低分子核酸の混入量、分解の程度）と回収量を検定した。本実施例では、約10μgのＧｅｎｏｍｅ ＤＮＡ が回収され、Ｇｅｎｏｍｅ ＤＮＡのデグラデーションやｒＲＮＡの混入は認められなかった。回収したＧｅｎｏｍｅ ＤＮＡは、最終濃度50ng/μlとなるようにＴＥ緩衝液に溶解し、以下の実施例に使用した。
［３−１．微生物の培養 ＆ Ｇｅｎｏｍｅ ＤＮＡの抽出］
まず、Anaerococcus prevotii菌（JCM 6490）を、定法に従って培養した。この微生物培養液から、核酸精製キット(FastPrep FP100A・FastDNA Kit:フナコシ株式会社製)を用いて、Ｇｅｎｏｍｅ ＤＮＡの抽出と精製を行なった。
［３−２．回収したＧｅｎｏｍｅ ＤＮＡの検査］
回収された微生物（Anaerococcus prevotii菌）のＧｅｎｏｍｅ ＤＮＡは、定法に従って、アガロース電気泳動と260/280nmの吸光度測定を行い、その品質（低分子核酸の混入量、分解の程度）と回収量を検定した。本実施例では、約10μgのＧｅｎｏｍｅ ＤＮＡ が回収され、Ｇｅｎｏｍｅ ＤＮＡのデグラデーションやｒＲＮＡの混入は認められなかった。回収したＧｅｎｏｍｅ ＤＮＡは、最終濃度50ng/μlとなるようにＴＥ緩衝液に溶解し、以下の実施例に使用した。
［４．ＤＮＡチップの作成］
［４−１．ガラス基板の洗浄］
合成石英のガラス基板（サイズ：25mm×75mm×1mm、飯山特殊ガラス社製）を耐熱、耐アルカリ のラックに入れ、所定の濃度に調製した超音波洗浄用の洗浄液に浸した。一晩洗浄液中で浸した後、20分間超音波洗浄を行った。続いて基板を取り出し、軽く純水ですすいだ後、超純水中で20分超音波洗浄をおこなった。次に８０℃に加熱した１Ｎ水酸化ナトリウム水溶液中に10分間基板を浸した。再び純水洗浄と超純水洗浄を行い、ＤＮＡチップ用の石英ガラス基板を用意した。
［４−２．表面処理］
シランカップリング剤KBM-603（信越シリコーン社製）を、１重量(wt)％の濃度となるように純水中に溶解させ、２時間室温で攪拌した。続いて、先に洗浄したガラス基板をシランカップリング剤水溶液に浸し、２０分間室温で放置した。ガラス基板を引き上げ、軽く純水で表面を洗浄した後、窒素ガスを基板の両面に吹き付けて乾燥させた。次に乾燥した基板を１２０℃に加熱したオーブン中で１時間ベークし、カップリング剤処理を完結させ、基板表面にアミノ基を導入した。次いで、Ｎ−マレイミドカプロイロキシスクシイミド（以下ＥＭＣＳと略す）を、ジメチルスルホキシドとエタノールの１：１混合（容量比）溶媒中に最終濃度が0.3mg/mlとなるように溶解したＥＭＣＳ溶液を用意した。ＥＭＣＳは、同仁化学研究所社製のＮ−マレイミドカプロイロキシスクシイミド（N-(6-Maleimidocaproyloxy)succinimido）である。
［４−１．ガラス基板の洗浄］
合成石英のガラス基板（サイズ：25mm×75mm×1mm、飯山特殊ガラス社製）を耐熱、耐アルカリ のラックに入れ、所定の濃度に調製した超音波洗浄用の洗浄液に浸した。一晩洗浄液中で浸した後、20分間超音波洗浄を行った。続いて基板を取り出し、軽く純水ですすいだ後、超純水中で20分超音波洗浄をおこなった。次に８０℃に加熱した１Ｎ水酸化ナトリウム水溶液中に10分間基板を浸した。再び純水洗浄と超純水洗浄を行い、ＤＮＡチップ用の石英ガラス基板を用意した。
［４−２．表面処理］
シランカップリング剤KBM-603（信越シリコーン社製）を、１重量(wt)％の濃度となるように純水中に溶解させ、２時間室温で攪拌した。続いて、先に洗浄したガラス基板をシランカップリング剤水溶液に浸し、２０分間室温で放置した。ガラス基板を引き上げ、軽く純水で表面を洗浄した後、窒素ガスを基板の両面に吹き付けて乾燥させた。次に乾燥した基板を１２０℃に加熱したオーブン中で１時間ベークし、カップリング剤処理を完結させ、基板表面にアミノ基を導入した。次いで、Ｎ−マレイミドカプロイロキシスクシイミド（以下ＥＭＣＳと略す）を、ジメチルスルホキシドとエタノールの１：１混合（容量比）溶媒中に最終濃度が0.3mg/mlとなるように溶解したＥＭＣＳ溶液を用意した。ＥＭＣＳは、同仁化学研究所社製のＮ−マレイミドカプロイロキシスクシイミド（N-(6-Maleimidocaproyloxy)succinimido）である。
ベークの終了したガラス基板を放冷し、調製したＥＭＣＳ溶液中に室温で２時間浸した。この処理により、シランカップリング剤によって表面に導入されたアミノ基とＥＭＣＳのスクシイミド基が反応し、ガラス基板表面にマレイミド基が導入された。ＥＭＣＳ溶液から引き上げたガラス基板を、先述のＥＭＣＳを溶解した混合溶媒を用いて洗浄し、さらにエタノールにより洗浄した後、窒素ガス雰囲気下で乾燥させた。
［４−３．プローブＤＮＡ］
実施例１の［１．プローブＤＮＡの準備］で作製した微生物検出用プローブを純水に溶解し、それぞれ、最終濃度（インク溶解時）10μMとなるように分注した後、凍結乾燥を行い、水分を除いた。
［４−４．ＢＪプリンタによるＤＮＡ吐出、および基板への結合］
グリセリン7.5wt%、チオジグリコール7.5wt%、尿素7.5wt%、アセチレノールEH（川研ファインケミカル社製）1.0wt%を含む水溶液を用意した。続いて、先に用意した２種類のプローブ（表１）の夫々を上記の混合溶媒に規定濃度なるように溶解した。得られたＤＮＡ溶液をインクジェットプリンタ（商品名：BJF-850 キヤノン社製）用インクタンクに充填し、印字ヘッドに装着した。
［４−３．プローブＤＮＡ］
実施例１の［１．プローブＤＮＡの準備］で作製した微生物検出用プローブを純水に溶解し、それぞれ、最終濃度（インク溶解時）10μMとなるように分注した後、凍結乾燥を行い、水分を除いた。
［４−４．ＢＪプリンタによるＤＮＡ吐出、および基板への結合］
グリセリン7.5wt%、チオジグリコール7.5wt%、尿素7.5wt%、アセチレノールEH（川研ファインケミカル社製）1.0wt%を含む水溶液を用意した。続いて、先に用意した２種類のプローブ（表１）の夫々を上記の混合溶媒に規定濃度なるように溶解した。得られたＤＮＡ溶液をインクジェットプリンタ（商品名：BJF-850 キヤノン社製）用インクタンクに充填し、印字ヘッドに装着した。
なお、ここで用いたインクジェットプリンタは平板への印刷が可能なように改造を施したものである。またこのインクジェットプリンタは、所定のファイル作成方法に従って印字パターンを入力することにより、約5ピコリットルのＤＮＡ溶液を約120μmピッチでスポッティングすることが可能となっている。
続いて、この改造インクジェットプリンタを用いて、１枚のガラス基板に対して、印字操作を行い、アレイを作製した。印字が確実に行われていることを確認した後、３０分間加湿チャンバー内に静置し、ガラス基板表面のマレイミド基と核酸プローブ末端のチオール基とを反応させた。
［４−５．洗浄］
３０分間の反応後、100mMのNaClを含む10mMのリン酸緩衝液(pH7.0)により表面に残ったＤＮＡ溶液を洗い流し、ガラス基板表面に一本鎖ＤＮＡが固定したＤＮＡチップを得た。
［４−５．洗浄］
３０分間の反応後、100mMのNaClを含む10mMのリン酸緩衝液(pH7.0)により表面に残ったＤＮＡ溶液を洗い流し、ガラス基板表面に一本鎖ＤＮＡが固定したＤＮＡチップを得た。
［５．検体の増幅と標識化］
［５−１．検体の増幅：１ｓｔ ＰＣＲ］
検体となる微生物遺伝子の増幅（１ｓｔ ＰＣＲ）、および、標識化（２ｎｄ ＰＣＲ）反応を以下の表４に示す。
［５−１．検体の増幅：１ｓｔ ＰＣＲ］
検体となる微生物遺伝子の増幅（１ｓｔ ＰＣＲ）、および、標識化（２ｎｄ ＰＣＲ）反応を以下の表４に示す。
上記組成の反応液を図１に示すプロトコールに従って、市販のサーマルサイクラーで増幅反応を行なった。反応終了後、精製用カラム（QIAGEN QIAquick PCR Purification Kit）を用いて精製した後、増幅産物の定量を行なった。
［５−２．標識化反応：２ｎｄ ＰＣＲ］
表５の組成の反応液を図２に示すプロトコールに従って、市販のサーマルサイクラーで増幅反応を行なった。
［５−２．標識化反応：２ｎｄ ＰＣＲ］
表５の組成の反応液を図２に示すプロトコールに従って、市販のサーマルサイクラーで増幅反応を行なった。
反応終了後、精製用カラム（QIAGEN QIAquick PCR Purification Kit）を用いて精製し、標識化検体とした。
［６．ハイブリダイゼーション］
上述の［４．ＤＮＡチップの作成］で作成したＤＮＡチップと［５．検体の増幅と標識化］で作成した標識化検体を用いて、検出反応を行なった。
［６−１．ＤＮＡチップのブロッキング］
BSA（牛血清アルブミンFraction V：Sigma社製）を１wt％となるように100mM NaCl/10mM Phosphate Bufferに溶解した。次に、この溶液に［４．ＤＮＡチップの作製］で作製したＤＮＡチップを室温で2時間浸し、ブロッキングを行った。ブロッキング終了後、以下の洗浄液で洗浄を行った後、純水でリンスしてからスピンドライ装置で水切りを行った。
洗浄液：
0.1wt％SDS（ドデシル硫酸ナトリウム）を含む2×SSC溶液(NaCl 300mM 、Sodium Citrate(trisodium citrate dihydrate, C6H5Na3・2H2O) 30mM、p.H.7.0)
［６−２．ハイブリダイゼーション］
水切りしたＤＮＡチップをハイブリダイゼーション装置（Genomic Solutions Inc. Hybridization Station）にセットし、以下に示すハイブリダイゼーション溶液、条件でハイブリダイゼーション反応を行った。
［６−３．ハイブリダイゼーション溶液］
6xSSPE / 10% Formamide / Target(2nd PCR Products 全量)/ 0.05wt% SDS
(6xSSPE: NaCl 900mM、NaH2PO4・H2O 50mM、EDTA 6mM、p.H. 7.4)
［６−４．ハイブリダイゼーション条件］
65℃ 3min → 55℃ 4hr → Wash 2ｘSSC / 0.1% SDS at 50℃ → Wash 2xSSC at 20℃ → (Rinse with H2O : Manual) → Spin dry
［７．微生物Ｇｅｎｏｍｅの検出（蛍光測定）］
上記ハイブリダイゼーション反応終了後のＤＮＡチップをＤＮＡチップ用蛍光検出装置（Axon社製、GenePix 4000B）を用いで蛍光測定を行った。その結果、再現性良く、十分なシグナルでAnaerococcus prevotii菌を検出することができた。以下の表６に、Anaerococcus prevotii菌の蛍光測定結果を示す。
上述の［４．ＤＮＡチップの作成］で作成したＤＮＡチップと［５．検体の増幅と標識化］で作成した標識化検体を用いて、検出反応を行なった。
［６−１．ＤＮＡチップのブロッキング］
BSA（牛血清アルブミンFraction V：Sigma社製）を１wt％となるように100mM NaCl/10mM Phosphate Bufferに溶解した。次に、この溶液に［４．ＤＮＡチップの作製］で作製したＤＮＡチップを室温で2時間浸し、ブロッキングを行った。ブロッキング終了後、以下の洗浄液で洗浄を行った後、純水でリンスしてからスピンドライ装置で水切りを行った。
洗浄液：
0.1wt％SDS（ドデシル硫酸ナトリウム）を含む2×SSC溶液(NaCl 300mM 、Sodium Citrate(trisodium citrate dihydrate, C6H5Na3・2H2O) 30mM、p.H.7.0)
［６−２．ハイブリダイゼーション］
水切りしたＤＮＡチップをハイブリダイゼーション装置（Genomic Solutions Inc. Hybridization Station）にセットし、以下に示すハイブリダイゼーション溶液、条件でハイブリダイゼーション反応を行った。
［６−３．ハイブリダイゼーション溶液］
6xSSPE / 10% Formamide / Target(2nd PCR Products 全量)/ 0.05wt% SDS
(6xSSPE: NaCl 900mM、NaH2PO4・H2O 50mM、EDTA 6mM、p.H. 7.4)
［６−４．ハイブリダイゼーション条件］
65℃ 3min → 55℃ 4hr → Wash 2ｘSSC / 0.1% SDS at 50℃ → Wash 2xSSC at 20℃ → (Rinse with H2O : Manual) → Spin dry
［７．微生物Ｇｅｎｏｍｅの検出（蛍光測定）］
上記ハイブリダイゼーション反応終了後のＤＮＡチップをＤＮＡチップ用蛍光検出装置（Axon社製、GenePix 4000B）を用いで蛍光測定を行った。その結果、再現性良く、十分なシグナルでAnaerococcus prevotii菌を検出することができた。以下の表６に、Anaerococcus prevotii菌の蛍光測定結果を示す。
［８．他の菌種とのハイブリダイゼーション］
表１に示すプローブセットが、Anaerococcus prevotii菌のみに特異的にハイブリッド体を形成することを証明するため、Peptoniphilus asaccharolyticus（JCM 8143）とのハイブリダイゼーション反応を行なった結果を、次の表７に示す。
表１に示すプローブセットが、Anaerococcus prevotii菌のみに特異的にハイブリッド体を形成することを証明するため、Peptoniphilus asaccharolyticus（JCM 8143）とのハイブリダイゼーション反応を行なった結果を、次の表７に示す。
［９．結果］
以上に説明したように、上記実施例によれば、Anaerococcus prevotii菌のみを特異的に検出可能なプローブセットを固定したＤＮＡチップを作成することができた。更に、このＤＮＡチップを用いて、感染症起炎菌を同定することが可能になり、微生物由来のＤＮＡプローブの問題を解決した。すなわち、オリゴヌクレオチドプローブは化学的に大量合成が可能であり、精製や濃度のコントロールが可能である。また、微生物の種による分類を目的に、同じ種の菌種は一括検出が可能で、しかも、他の種の菌は区別して検出できるようなプローブセットが提供できた。
以上に説明したように、上記実施例によれば、Anaerococcus prevotii菌のみを特異的に検出可能なプローブセットを固定したＤＮＡチップを作成することができた。更に、このＤＮＡチップを用いて、感染症起炎菌を同定することが可能になり、微生物由来のＤＮＡプローブの問題を解決した。すなわち、オリゴヌクレオチドプローブは化学的に大量合成が可能であり、精製や濃度のコントロールが可能である。また、微生物の種による分類を目的に、同じ種の菌種は一括検出が可能で、しかも、他の種の菌は区別して検出できるようなプローブセットが提供できた。
また、上記と同様にPeptoniphilus asaccharolyticus菌のほかにも、前述の（１）〜（６２）に示される菌から抽出した核酸においてもそれぞれハイブリダイゼーション反応を行った。これらの結果も、Anaerococcus prevotii菌を除き、Peptoniphilus asaccharolyticusと同様に実質的に反応しないことが確かめられた。
前述の（１）〜（６２）に示す菌は、敗血症の起炎菌とされるものであり、過去にヒトの血中で検出された起炎菌のほぼ全てを満足している。よって、本実施形態のプライマーを用いて、血液中の感染症起炎菌の核酸を抽出し、これと本発明のプローブとを反応させることで、ほぼ確実にAnaerococcus prevotii菌の同定が可能となる。
また、上記実施例によれば、感染症起炎菌遺伝子の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子配列を過不足なく検出することにより、該感染症起炎菌の存在を効率良く、また高い精度で判定することができる。
（実施例２）多種の菌種を同時に判定可能なＤＮＡチップの作成
実施例１の［１．プローブＤＮＡの準備］と同様に、以下の表８に示す塩基配列のプローブを準備した。
実施例１の［１．プローブＤＮＡの準備］と同様に、以下の表８に示す塩基配列のプローブを準備した。
これらのプローブは、実施例１のAnaerococcus prevotii菌に特異的なプローブと同様に、表中の左欄に示されている特定の菌種のみを特異的に検出可能なプローブである。
そして、それらのプローブ同士は、同じ反応条件でそれぞれの対象菌種の核酸を特異的に検出できるように、ターゲットとのＴｍ値、非対象配列との反応性等を揃えて設計されている。
そして、それらのプローブ同士は、同じ反応条件でそれぞれの対象菌種の核酸を特異的に検出できるように、ターゲットとのＴｍ値、非対象配列との反応性等を揃えて設計されている。
それぞれのプローブに対して、実施例１の［４−３］と同様にプローブ溶液を作成した。その後、［４−４］で使用したインクジェットプリンターを用いて、同一基板上に、それぞれのプローブ溶液を吐出し、各プローブのスポットが120μmのピッチ間隔で離間して配置されたＤＮＡチップを複数枚作成した。
このＤＮＡチップの１枚を用いて、実施例１の［６］と同様に、Anaerococcus prevotii菌から抽出した核酸とハイブリダイゼーション反応させた。この結果、Anaerococcus prevotii菌を特異的に検出するプローブのスポットにおいては、実施例１とほぼ同じ蛍光輝度を示した。また、残りの他のプローブのスポットにおいては非常に低い蛍光輝度を示した。
さらに、用意した他のＤＮＡチップを用いて、表８に記載されているAnaerococcus prevotii菌以外の菌を対象として、同様にハイブリダイゼーション反応させた。この結果Anaerococcus prevotii菌のスポットは非常に低い蛍光輝度を示し、且つ対象菌種のプローブのスポットにおいては非常に高い輝度を示した。従って、本実施例で作成されたＤＮＡチップは、Anaerococcus prevotii菌に加えて、表８中に記載の１１種の菌を同時に判定できることが確認できた。
（実施例３）
実施例２で作成したＤＮＡチップを用いて、検体中に複数の菌種が存在する場合の検出を試みた。Anaerococcus prevotiiおよびClostridium difficileがともに培養されている培養液を用意し、これを実施例１と同様に処理し、ＤＮＡチップと反応させた。この結果、配列番号３５、３６、３７、４３、４４、４５のみのプローブのスポットが高い蛍光輝度を示し、これらの菌が共に存在していることが同時に確認できた。
実施例２で作成したＤＮＡチップを用いて、検体中に複数の菌種が存在する場合の検出を試みた。Anaerococcus prevotiiおよびClostridium difficileがともに培養されている培養液を用意し、これを実施例１と同様に処理し、ＤＮＡチップと反応させた。この結果、配列番号３５、３６、３７、４３、４４、４５のみのプローブのスポットが高い蛍光輝度を示し、これらの菌が共に存在していることが同時に確認できた。
Claims (13)
- 感染症起炎菌であるアナエロコッカス・プレボッティ（Anaerococcus prevotii）のＤＮＡを特異的に検出するためのプローブセットであって、
下記の（１）から選択される少なくとも１つのプローブと、下記の（２）から選択される少なくとも１つのプローブと、下記の（３）から選択される少なくとも１つのプローブとを含み、該少なくとも３つのプローブのそれぞれとの反応を示すシグナルを検出するために用いられることを特徴とするプローブセット。
（１）TCATCTTGAGGTATGGAAGGGAAAGTGG（配列番号３５）で表される塩基配列からなるプローブ及びその相補配列からなるプローブ、
（２）GTGTTAGGTGTCTGGAATAATCTGGGTG（配列番号３６）で表される塩基配列からなるプローブ及びその相補配列からなるプローブ、
（３）ACCAAGTCTTGACATATTACGGCGG（配列番号３７）で表される塩基配列からなるプローブ及びその相補配列からなるプローブ。 - 請求項１に記載のプローブセットを構成する複数のプローブの各々が固相担体上に配置されていることを特徴とするプローブ固定担体。
- 前記プローブと離間した位置に、配列番号３８から配列番号６７の塩基配列、並びにそれらの相補配列のいずれかの塩基配列からなるプローブからなる群から選択された少なくとも１種が固定されている請求項２に記載のプローブ固定担体。
- 請求項１に記載のプローブセットを構成する複数のプローブの各々と、標的核酸との反応を検出するための試薬と、を有することを特徴とするアナエロコッカス・プレボッティＤＮＡ検出用のキット。
- 前記試薬は、アナエロコッカス・プレボッティのＤＮＡを増幅するプライマーを含み、
該プライマーは、以下の（１３）の塩基配列のオリゴヌクレオチドと、以下の（２２）及び（２５）の少なくとも一方のオリゴヌクレオチドからなる請求項４に記載のキット。
（１３）5' gcggcgtgcataacacatgcaag 3'（配列番号１３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２２）5' atccagccgcaccttccgatac 3'（配列番号２２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２５）5' atccagccgcaccttccggtac 3'（配列番号２５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。 - 前記プローブが固相担体に固定された状態で提供される請求項４または５に記載のキット。
- 請求項２または３に記載のプローブ固定担体と、プローブと標的核酸との反応を検出するための試薬と、を有するＤＮＡ検出用のキットであって、
前記試薬は、感染症起炎菌ＤＮＡを増幅するプライマーを含み、
該プライマーとして、以下の（１）乃至（２１）から選ばれる少なくとも１つのオリゴヌクレオチドと、以下の（２２）乃至（２８）から選ばれる少なくとも１つのオリゴヌクレオチドと、を含むことを特徴とするＤＮＡ検出用キット。
（１）5' gcggcgtgcctaatacatgcaag 3'（配列番号１）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２）5' gcggcaggcctaacacatgcaag 3'（配列番号２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（３）5' gcggcaggcttaacacatgcaag 3'（配列番号３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（４）5' gcggtaggcctaacacatgcaag 3'（配列番号４）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（５）5' gcggcgtgcttaacacatgcaag 3'（配列番号５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（６）5' gcgggatgccttacacatgcaag 3'（配列番号６）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（７）5' gcggcatgccttacacatgcaag 3'（配列番号７）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（８）5' gcggcatgcttaacacatgcaag 3'（配列番号８）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（９）5' gcggcgtgcttaatacatgcaag 3'（配列番号９）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１０）5' gcggcaggcctaatacatgcaag 3'（配列番号１０）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１１）5' gcgggatgctttacacatgcaag 3'（配列番号１１）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１２）5' gcggcgtgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１３）5' gcggcgtgcataacacatgcaag 3'（配列番号１３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１４）5' gcggcatgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１４）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１５）5' gcggcgcgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１６）5' gcggcgcgcttaacacatgcaag 3'（配列番号１６）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１７）5' gcgtcatgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１７）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１８）5' gcgataggcttaacacatgcaag 3'（配列番号１８）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１９）5' gcgacaggcttaacacatgcaag 3'（配列番号１９）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２０）5' gctacaggcttaacacatgcaag 3'（配列番号２０）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２１）5' acagaatgcttaacacatgcaag 3'（配列番号２１）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２２）5' atccagccgcaccttccgatac 3'（配列番号２２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２３）5' atccaaccgcaggttcccctac 3'（配列番号２３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２４）5' atccagccgcaggttcccctac 3'（配列番号２４）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２５）5' atccagccgcaccttccggtac 3'（配列番号２５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２６）5' atccagcgccaggttcccctag 3'（配列番号２６）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２７）5' atccagccgcaggttctcctac 3'（配列番号２７）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２８）5' atccagccgcacgttcccgtac 3'（配列番号２８）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。 - 前記感染症起炎菌ＤＮＡを増幅するプライマーが、前記（１）乃至（２８）の全てのオリゴヌクレオチドの混合物である請求項７に記載のキット。
- 該試薬として、増幅された感染症起炎菌ＤＮＡの標識化のためのプライマーである以下の（２９）〜（３４）の標識化されたオリゴヌクレオチドを更に含む請求項４乃至８のいずれか１項に記載のキット。
（２９）5’ TACCTTGTTACGACTTCACCCCA 3’（配列番号２９）
（３０）5’ TACCTTGTTACGACTTCGTCCCA 3’（配列番号３０）
（３１）5’ TACCTTGTTACGACTTAGTCCCA 3’（配列番号３１）
（３２）5’ TACCTTGTTACGACTTAGCCCCA 3’（配列番号３２）
（３３）5’ TACCTTGTTACGACTTAGTCCTA 3’（配列番号３３）
（３４）5’ TACCTTGTTACGACTTAGCCCTA 3’（配列番号３４） - プローブ固定担体を用いた検体中でのアナエロコッカス・プレボッティのＤＮＡの検出方法において、
（ｉ）請求項２に記載のプローブ固定担体と検体とを反応させる工程と、
（ｉｉ）前記プローブ固定担体上のプローブと前記検体中の核酸との反応の有無、またはその反応強度を検出する工程と、
を有することを特徴とするアナエロコッカス・プレボッティのＤＮＡの検出方法。 - 前記検体中の標的核酸を、以下の（１３）の塩基配列のオリゴヌクレオチドと、以下の（２２）及び（２５）の少なくとも一方とをプライマーとして用いて、ＰＣＲ増幅する工程を更に有する請求項１０に記載の検出方法。
（１３）5' gcggcgtgcataacacatgcaag 3'（配列番号１３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２２）5' atccagccgcaccttccgatac 3'（配列番号２２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２５）5' atccagccgcaccttccggtac 3'（配列番号２５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。 - 前記検体中の標的核酸を、以下の（１）乃至（２８）の全てのオリゴヌクレオチドの混合物プライマーとして用いて、ＰＣＲ増幅する工程を更に有する請求項１０に記載の検出方法。
（１）5’ gcggcgtgcctaatacatgcaag 3’（配列番号１）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２）5’ gcggcaggcctaacacatgcaag 3’（配列番号２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（３）5’ gcggcaggcttaacacatgcaag 3’（配列番号３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（４）5’ gcggtaggcctaacacatgcaag 3’（配列番号４）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（５）5' gcggcgtgcttaacacatgcaag 3'（配列番号５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（６）5' gcgggatgccttacacatgcaag 3'（配列番号６）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（７）5’ gcggcatgccttacacatgcaag 3’（配列番号７）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（８）5’ gcggcatgcttaacacatgcaag 3’（配列番号８）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（９）5’ gcggcgtgcttaatacatgcaag 3’（配列番号９）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１０）5’ gcggcaggcctaatacatgcaag 3’（配列番号１０）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１１）5’ gcgggatgctttacacatgcaag 3’（配列番号１１）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１２）5' gcggcgtgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１３）5' gcggcgtgcataacacatgcaag 3'（配列番号１３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１４）5' gcggcatgcctaacacatgcaag 3'（配列番号１４）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１５）5’ gcggcgcgcctaacacatgcaag 3’（配列番号１５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１６）5’ gcggcgcgcttaacacatgcaag 3’（配列番号１６）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１７）5’ gcgtcatgcctaacacatgcaag 3’（配列番号１７）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１８）5’ gcgataggcttaacacatgcaag 3’（配列番号１８）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（１９）5’ gcgacaggcttaacacatgcaag 3’（配列番号１９）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２０）5’ gctacaggcttaacacatgcaag 3’（配列番号２０）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２１）5’ acagaatgcttaacacatgcaag 3’（配列番号２１）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２２）5’ atccagccgcaccttccgatac 3’（配列番号２２）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２３）5’ atccaaccgcaggttcccctac 3’（配列番号２３）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２４）5’ atccagccgcaggttcccctac 3’（配列番号２４）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２５）5’ atccagccgcaccttccggtac 3’（配列番号２５）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２６）5’ atccagcgccaggttcccctag 3’（配列番号２６）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２７）5’ atccagccgcaggttctcctac 3’（配列番号２７）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。
（２８）5’ atccagccgcacgttcccgtac 3’（配列番号２８）の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。 - 増幅された標的核酸を、標識化のためのプライマーである以下の（２９）〜（３４）を用いるＰＣＲ増幅により標識化する工程を更に含む請求項１１または１２に記載の検出方法。
（２９）5’ TACCTTGTTACGACTTCACCCCA 3’（配列番号２９）
（３０）5’ TACCTTGTTACGACTTCGTCCCA 3’（配列番号３０）
（３１）5’ TACCTTGTTACGACTTAGTCCCA 3’（配列番号３１）
（３２）5’ TACCTTGTTACGACTTAGCCCCA 3’（配列番号３２）
（３３）5’ TACCTTGTTACGACTTAGTCCTA 3’（配列番号３３）
（３４）5’ TACCTTGTTACGACTTAGCCCTA 3’（配列番号３４）
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