JP4831898B2 - Method for producing a preparation containing filamentous fungi as active ingredients - Google Patents

Method for producing a preparation containing filamentous fungi as active ingredients Download PDF

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Description

【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、固体培養した糸状菌培養物の胞子を有効成分とする製剤の製造方法に関し、さらに詳細には微生物農薬又は土壌改質剤である製剤の製造方法に関する。
【0002】
【従来の技術】
農業分野における有害生物の防除には、即効性、効果の安定性、コスト対効果の優位性、使用時の簡便性等の理由により化学合成農薬が主に使用されている。
【0003】
しかしその一方で、薬剤耐性菌の出現による効力の低下、有用生物に対する悪影響、薬剤の環境あるいは作物への残留等の問題も顕在化してきた。
【0004】
近年、これらの問題点を補う方法として総合防除(化学合成農薬依存型農業を改め様々な防除システムを駆使する方法)の考え方が取り入れられてきているが、その中でも特に生物農薬が注目されている。
【0005】
この第一の理由は、生物農薬に使用される生物あるいはその原体は、本来自然界に存在するものを使用していることと対象となる有害生物が限定されることから、化学合成農薬の持つ欠点を補うものとして期待できるからである。
【0006】
特に、植物の土壌病害(土壌中で生育する病害糸状菌によって引き起こされる病害)分野は、化学農薬でも安定した効果が期待できない病害が多いため微生物農薬に注目が集まっている。
【0007】
土壌病害糸状菌防除のためには通常、病害菌に拮抗能を有する糸状菌(カビ)が使われ、トリコデルマ属のトリコデルマ ハルジアナム、トリコデルマ ハマタム、トリコデルマ ビリデ、トリコデルマ リグノラムやグリオクラディウム属のグリオクラディウム ビレンス、グリオクラディウム カテヌラタムやペニシリウム属のペニシリウム ニグリカンス、ペニシリウム クリソジーナム、ペニシリウム オキザリカム等が知られている。これらの糸状菌は、宿主細胞膜の破壊、グルカナーゼ、キチナーゼ等の溶菌酵素による宿主細胞壁の分解、抗生物質生産等によって病害菌の生育を阻害する。
【0008】
通常糸状菌の能力を利用した生物農薬は、その取扱い易さと環境変化に対する耐久性の点から、菌糸よりも胞子の形態が好ましいため、分生胞子の状態で製品化される。
【0009】
したがって、分生胞子の生産量を増やすことを目的に、液状物質あるいは固体培地を水に溶解あるいは分散させた培地を使用する液体培養や、固体培地を用いる固体培養の様々な研究がなされている。
【0010】
液体培養では菌糸は容易に増殖し、さらに培養条件を調整することで厚膜胞子、出芽胞子を生成させることができるが、一般に、培地と気相の界面で形成される分生胞子は液体培養ではほとんど生成しない。
【0011】
液体培養で生成される厚膜胞子、あるいは出芽胞子は、固体培養法で容易に生産される分生胞子と比較して、その胞子濃度は、およそ1/100以下であるため、糸状菌の胞子を目的とする場合は、固体培養法による分生胞子の生産が採用されるのが一般的である。
【0012】
この固体培養とは、天然物由来の固形成分に加水し微生物の生育環境を整えた後、一定の含水率を維持しつつ微生物の成育適温で培養する方法であり、代表的な例としては、酒、味噌、醤油等の製造に使われる種麹生産を挙げることができる。
【0013】
糸状菌を培養する固体培地としては、ふすま、籾、米糠、木材粉、腐葉土、ピートモス、堆肥、きのこ廃材、及びこれらの粉砕物等の有機物を含むものを単独あるいはその他の栄養分を添加して使われる。
【0014】
培養は、調湿した上記培地を発酵槽あるいは金属トレー等に一定の層厚になるように仕込み種菌を接種して行われる。培養が始まると固体培地内は、菌糸体の増殖に伴い発熱し、さらに培地菌糸によって培地が固化してくるため培養温度の均一化及び培地利用率向上のため培地をほぐす操作を必要に応じて行う。
【0015】
菌糸体増殖終了後、胞子着生が進み一般的には約1週間〜1ヶ月で培養が終了する。このときの培養終了物の含水率は、培地組成によっても異なるがおよそ20〜80%(w/w)の範囲にあり、培養が終了した固体培養物では、雑菌汚染防止及び保存安定性向上を目的に凍結乾燥、送風乾燥等の方法によって含水率を40%(w/w)以下に調整される。
【0016】
得られた培養物は、製剤としての各種特性を付与するための物質である賦形剤、例えば、有機栄養分、微量栄養素、結合剤、硬度調整剤等と均一に混合され、更に製剤化のための水分が添加されて製剤化される。
【0017】
有機栄養分としては、ふすま、籾、米糠、木材粉、腐葉土、ピートモス、堆肥、きのこ廃材、あるいはこれらの粉砕物等で、目的とする菌の栄養分となるものである。
【0018】
微量栄養素としては鉄、マグネシウム、カリウム等を含む無機物、あるいは、カニガラ、油粕、血粉、肉粉、木酢液等有機物の菌の生育を活性化する物質である。
【0019】
結合剤とはいわゆる製剤のバインダーであり、カルボキシルメチルセルロース、メチルセルロース、ポリビニルアルコール、クレー、有機ポリマーラテックス、澱粉等が使われる。
【0020】
硬度調整剤とは製剤自体の強度、硬度、あるいは水中での崩壊度等を調整する助剤であり前述の結合剤等が同様に使用される。
【0021】
もちろん、これらの賦形剤は、使用する菌種、目的とする製剤の使用方法等によって適宜選択されるものである。
【0022】
これらの賦形剤と培養物の混合は、培養終了物の含水率が通常40%以上であるため均一混合が困難となる。
【0023】
また、均一混合を行うために機械的に高い剪断力をかけて混合分散すると、胞子が熱、機械的剪断に弱いため、胞子が死滅することになる。
【0024】
そこで一旦培養物を乾燥して混合攪拌することも考えられるが、この場合も乾燥物は乾燥の過程でブロック化してしまい、それを解砕する必要があり、上述した場合と同様に機械的剪断力により胞子の死滅を招いてしまうことになる。
【0025】
胞子の死滅を防止するには、機械的剪断及びそれに伴う温度上昇を招く粉砕処理工程を省略すれば良いが、例えば培地として用いるフスマの粒子径は100μmから5mm程度と幅が広く、200μm程度の平均粒子径を持つ栄養成分としての機能と賦形剤としての機能を有する増量剤(例えば小麦粉)と均一に混合して製剤化するためには粉砕処理は必須であった。
【0026】
また、培地を事前に200μm程度にまで粉砕して固体培養する方式も考えられるが、培地の通気性が著しく低下するため、糸状菌の固体培養に問題が発生してしまう。
【0027】
【発明が解決しようとする課題】
本発明が解決しようとする課題は、固体培養によって得られた糸状菌の分生胞子の生存率(または回収率)を低下させることなく製剤化できる製剤の製造方法を提供することにある。
【0028】
【課題を解決するための手段】
上記課題を解決するには、固体培養後の培養物が水分に馴染みやすい性質を持つこと、胞子が水分や油脂分中で分散しやすいこと、さらに培養物と胞子の大きさに対して培養物の大きさが格段に大きいことから容易に分離できることに着目して本発明を完成するに至った。
【0029】
すなわち本発明は、(1)固体培地を用いる糸状菌の固体培養終了後の培養物に該糸状菌の胞子を分散させることができる媒体として、水、水に無機若しくは有機塩を含有させた溶液、又は天然油脂を加えて混合する工程と、(2)混合する工程で得られた懸濁液から培養物の残渣と胞子分散液を分離する工程と、(3)分離する工程で分離した胞子分散液と賦形剤を混合する工程と、(4)混合する工程で得られた混合物を造粒する工程と、からなることを特徴とする製剤の製造方法を提供するものである。
【0030】
固体培養終了後の培養物に対して加える媒体としては、蒸留水、イオン交換水、水道水等の水分や、これらにさらに緩衝液や生理食塩水等の無機あるいは有機塩を含有した溶液であってもよく、または、胞子の死滅がなければ大豆油、オリーブ油等の天然油脂であってもよい。
【0031】
この加える媒体の量としては、固体培地の種類と上記媒体の種類にもよるが、懸濁液中の培養物の分散状態と胞子の分散状態との点から、乾燥培養物1部に対して5〜5000倍(重量換算)とすることが好適である。
【0032】
また、上記媒体にさらに胞子に対して栄養成分となる溶液を混合した混合液としても構わない。
【0033】
固体培地としては上述したような種々の培地が挙げられるが、菌糸を培養しやすく多数の胞子が得られること、品質の均一性に優れること、および上記(2)の懸濁液から培養物の残渣と胞子分散液を分離する工程において分離がしやすいこと等の点から、ふすま培地が好適である。
【0034】
ふすま培地であれば、トリコデルマ属のトリコデルマ ハルジアナム、トリコデルマ ハマタム、トリコデルマ ビリデ、トリコデルマ リグノラムやグリオクラディウム属のグリオクラディウム ビレンス、グリオクラディウム カテヌラタムやペニシリウム属のペニシリウム ニグリカンス、ペニシリウム クリソジーナム、ペニシリウム オキザリカム等の種々の糸状菌に対して好適に使用することができるのである。
【0035】
こうして得られる懸濁液中の残渣の大きさは、例えばふすま培地の場合には通常乾燥状態では500〜1000μmであるが、膨潤していることにより2000〜5000μmとなっている。
【0036】
一方、懸濁液中の胞子の大きさは10μm以下であることから、両者の大きさは2オーダー以上の違いがあることになる。
【0037】
したがって、懸濁液から胞子分散液を分離する際には、上記それぞれの粒径の大きさに対して分離できるものであれば濾紙、濾布、篩、中空紙等の種々の分離手段を適用することができるが、分離速度や目詰まり等の分離効率を考慮すると口径50〜1000μmの篩を用いることが好適である。
【0038】
この口径は、作製する製剤の種類によって変えることが好ましい。すなわち顆粒水和剤を作製する場合は50〜200μm、粒剤を作製する場合は200〜1000μmが好ましく、特に300〜500μmが好ましい。
【0039】
この分離手段は複数段の構成としてもよい。例えば顆粒水和剤製造に当たり2段の分離工程とする際には、第1段として口径の大きな篩(例えば200〜1000μmの篩)を使用して粗濾過を行い、第2段として口径の小さな篩(例えば50〜200μm)を使用して密濾過する構成としてもよい。
【0040】
同じように粒剤製造に当たり2段の分離工程とする際には、第1段として口径の大きな篩(例えば500〜1000μmの篩)を使用して粗濾過を行い、第2段として口径の小さな篩(例えば200〜500μm)を使用して密濾過する構成としてもよい。
【0041】
これらは懸濁液の総量に対して適宜選択すればよく、また、混合槽でバッチ処理するような製造ラインにおいては循環ライン中に上記篩を複数段配置した構成としてもよく、混合槽からの連続製造ラインを構成する場合には、配管に上記篩を複数段配置して濾液回収槽に濾液のみを回収する構成としてもよい。
【0042】
培養物中の胞子は、例えば水を加え攪拌することで容易に水中に分散するが、濾過残渣の保水能は通常、非常に大きいので、胞子回収効率は、専ら濾過残渣中の濾液の回収率に依存することになる。
【0043】
したがって、胞子の回収率を上げるためには、分離工程として減圧濾過、加圧濾過、あるいは濾過残渣を絞る等の方法を使用してもよく、またこれらの方法を複数併用することも効果的である。
また、さらに胞子を死滅させることのないような界面活性剤等を併用して濾過効率を高めることも有効である。
【0044】
こうして得られた胞子分散液は、製剤化するための造粒工程にそのまま使用することができるのである。
【0045】
上述した各種賦形剤を均一に混合した原料に、上記胞子分散液を噴霧等の方法により加液し、これを混練したものを押出し造粒により造粒して製剤とする。
【0046】
もちろん、原料の混練と胞子分散液の噴霧とを同時に行い、さらに造粒する工程とを同時に行うことにより、製剤工程の効率化を図ることも好ましく、その際には転動造粒機や混合造粒機を使用することが好適である。
【0047】
転動造粒機には、例えば回転容器型、振動型、パン型、ドラム型、混合機械型などがあり、また混合造粒機には、ブレード式造粒機やピン造粒機など種々の造粒機があるが、いずれの方式を採用しても構わない。
【0048】
【実施例】
以下、実施例と比較例を用い本発明を更に具体的に説明する。
(実施例1)
ポテトデキストロース寒天培地(ディフコ社製)で培養温度28℃、1週間培養したトリコデルマ ハルジアナムATCC74058の分生胞子を121℃、60分殺菌済みのふすま培地(千葉製粉(株)社製)に接種し、含水率68%、培養温度28℃で1週間培養した。
【0049】
次に、図1に示す工程に従い、この固体培養終了後の培養物1に対し重量比で9倍量の水道水2を加えて撹拌混合し、懸濁液を作製した。次にこの懸濁液を目開き1000μmの篩3と、続いて300μmの篩4に通し、培地として使用したフスマのみを取り除いた。
【0050】
胞子を含む濾液1kgに対し2kg(重量換算2倍量)の小麦粉(日清製粉(株)社製)を予め混合造粒装置5レーディゲミキサーM−20型(総発売元(株)マツボー)に仕込んでおき、主軸回転数毎分230回転で撹拌しながら濾液を毎分1Lで噴霧し、20分間造粒処理を行い、その後50℃で4時間乾燥して造粒品6とした。
【0051】
以上の製造方法で得られた造粒品7は、分生胞子生存率が固体培養後の培養物に比し、80%という極めて高い数値を示した。
【0052】
(実施例2)
ポテトデキストロース寒天培地(ディフコ社製)上で培養温度25℃、1週間培養したグリオクラディウム ビレンスIFO6355の分生胞子を121℃、60分殺菌済みのふすま培地(千葉製粉(株)社製)に接種し、含水率68%、培養温度25℃で1週間培養した。
【0053】
この固体培養終了後の培養物に対し重量比で9倍量の水道水を加えて撹拌混合し、懸濁液を作製した。次にこの懸濁液を目開き1000μm、続いて300μmの篩に通し、培地として使用したフスマのみを取り除いた。
【0054】
胞子を含む濾液100gに対し200g(重量換算2倍量)の小麦粉(日清製粉(株)社製)を予め転動造粒装置ラボラトリーマトリックス(LMA5)(奈良機械(株)社製)に仕込んでおき、主軸回転数毎分600回転で撹拌しながら濾液を毎分10gの速度で滴下し小麦粉と濾液を良くなじませた後、主軸回転数を毎分100回転に変え10分間造粒処理を行った。造粒終了物は、30℃で24時間送風乾燥し造粒品とした。
【0055】
以上の製造方法で得られた造粒品は、分生胞子生存率が固体培養後の培養物に比し、72%という極めて高い数値を示した。
【0056】
(比較例1)
ポテトデキストロース寒天培地(ディフコ社製)で培養温度28℃、1週間培養したトリコデルマ ハルジアナムATCC74058の分生胞子を121℃、60分殺菌済みのふすま培地(千葉製粉(株)社製)に接種し、含水率68%、培養温度28℃で1週間培養した。
【0057】
次に、図2に示す工程に従い、この固体培養終了後の培養物を除湿乾燥機7T−5F型((株)田中化学機械製造所社製)を使用し30℃、24時間乾燥した。
【0058】
次にこの乾燥物をエックサンプルミル8KII−1型(不二パウダル社製:現(株)ダルトン)にて平均粒子径300μmまで粉砕し粒剤の原料とした。
【0059】
この乾燥培養物粉砕品1kgと2kg(重量換算2倍量)の小麦粉(日清製粉(株)社製)を予め混合造粒装置5レーディゲミキサーM−20型(総発売元(株)マツボー)に仕込んでおき、主軸回転数毎分230回転で撹拌しながら水道水1.5Lを毎分1Lで噴霧し、20分間造粒処理を行い、その後50℃で4時間乾燥し造粒品9とした。
【0060】
以上の製造方法で得られた造粒品9は、分生胞子生存率が固体培養後の培養物に比し、12%であり大幅に低下していた。
【0061】
(比較例2)
ポテトデキストロース寒天培地(ディフコ社製)上で培養温度28℃、1週間培養したグリオクラディウム ビレンスIFO6355の分生胞子を121℃、60分殺菌済みのふすま培地(千葉製粉(株)社製)に接種し、含水率68%、培養温度25℃で1週間培養した。
【0062】
この固体培養終了後の培養物を除湿乾燥機T−5F型((株)田中化学機械製造所社製)を使用し30℃、24時間乾燥した。
【0063】
次にこの乾燥物をエックサンプルミルKII−1型(不二パウダル社製:現(株)ダルトン)にて平均粒子径300μmまで粉砕し粒剤の原料とした。
【0064】
この乾燥培養物粉砕品100gに対し200g(重量換算2倍量)の小麦粉(日清製粉(株)社製)を予め転動造粒装置ラボラトリーマトリックス(LMA5)(奈良機械(株)社製)に仕込んでおき、主軸回転数毎分600回転で撹拌しながら水道水150gを毎分10gの速度で滴下し小麦粉と濾液を良くなじませた後、主軸回転数を毎分100回転に変え10分間造粒処理を行った。造粒終了物は、30℃で24時間送風乾燥し造粒品とした。
【0065】
以上の製造方法で得られた造粒品は、分生胞子生存率が固体培養後の培養物に比し、8%であり大幅に低下していた。
【0066】
【発明の効果】
以上、詳細に説明したように、固体培養終了後の培養物に糸状菌の胞子を分散させることができる媒体を加えて混合した懸濁液から、培養物の残渣と胞子分散液を分離し、この分離した胞子分散液と賦形剤を混合・造粒することにより、糸状菌の分生胞子の生存率を低下させることなく製剤化することができる。
【図面の簡単な説明】
【図1】本発明による製剤の製造方法の一例を示す工程図。
【図2】従来方法による製剤の製造方法の一例を示す工程図。
【符号の説明】
1 培養物
2 水道水
3 篩
4 篩
5 混合・造粒・乾燥機
6 造粒品
7 乾燥機
8 粉砕機
9 造粒品
[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for producing a preparation containing as active ingredients spores of a solid-cultured filamentous fungus culture, and more particularly to a method for producing a preparation which is a microbial pesticide or a soil modifier.
[0002]
[Prior art]
For the control of pests in the agricultural field, chemically synthesized pesticides are mainly used for reasons such as immediate effect, stability of effects, superiority in cost effectiveness, and ease of use.
[0003]
On the other hand, however, problems such as a decrease in efficacy due to the emergence of drug-resistant bacteria, adverse effects on useful organisms, and the environment of drugs or residues in crops have become apparent.
[0004]
In recent years, the idea of comprehensive control (a method that uses a variety of control systems by refining chemo-synthetic pesticide-dependent agriculture) has been adopted as a method to compensate for these problems. .
[0005]
The first reason for this is that the organisms used in biological pesticides or their active ingredients are inherently in nature, and the target pests are limited. This is because it can be expected to compensate for the drawbacks.
[0006]
In particular, in the field of plant soil diseases (diseases caused by diseased filamentous fungi growing in soil), there are many diseases that cannot be expected to have a stable effect even with chemical pesticides.
[0007]
For controlling soil fungi, filamentous fungi (fungi) that have an antagonistic ability to the fungus are usually used. Known are Dilium berens, Gliocladium catenuratam, Penicillium niglycans, Penicillium chrysosynum, Penicillium oxalicum. These filamentous fungi inhibit the growth of diseased bacteria by disrupting the host cell membrane, degrading the host cell wall by lytic enzymes such as glucanase and chitinase, and producing antibiotics.
[0008]
Usually, biopesticides utilizing the ability of filamentous fungi are commercialized in the state of conidia because spores are preferred over mycelia from the viewpoint of easy handling and durability against environmental changes.
[0009]
Therefore, for the purpose of increasing the production of conidia, various studies have been conducted on liquid culture using a liquid substance or solid medium dissolved or dispersed in water and solid culture using a solid medium. .
[0010]
In liquid culture, mycelium easily grows, and thick film spores and sprouting spores can be generated by adjusting the culture conditions. Generally, conidia spores formed at the interface between the medium and the gas phase are liquid cultures. Will hardly generate.
[0011]
Thick film spores or budding spores produced in liquid culture have a spore concentration of about 1/100 or less compared to conidial spores that are easily produced by solid culture methods. In general, production of conidia by a solid culture method is employed.
[0012]
This solid culture is a method of culturing at a suitable temperature for growth of microorganisms while maintaining a certain moisture content after adjusting the growth environment of microorganisms by adding water to solid components derived from natural products, and representative examples include: Mention of soy sauce used in the production of sake, miso and soy sauce.
[0013]
As solid media for cultivating filamentous fungi, those containing organic matter such as bran, rice bran, rice bran, wood flour, humus, peat moss, compost, mushroom waste, and pulverized products thereof alone or with other nutrients added may be used. Is called.
[0014]
Incubation is performed by inoculating the above-conditioned medium into a fermentor or a metal tray so that the layer thickness is constant and inoculating the inoculum. When the culture starts, the solid medium generates heat as the mycelium grows, and the medium is solidified by the medium mycelia, so the operation of loosening the medium to make the culture temperature uniform and improve the medium utilization rate is necessary. Do.
[0015]
After completion of mycelium growth, spore growth proceeds and the culture is generally completed in about 1 week to 1 month. Although the moisture content of the cultured product at this time varies depending on the medium composition, it is in the range of about 20 to 80% (w / w). In the solid culture after culturing, it is possible to prevent contamination with bacteria and improve storage stability. For the purpose, the water content is adjusted to 40% (w / w) or less by a method such as freeze drying or blow drying.
[0016]
The obtained culture is uniformly mixed with excipients that are substances for imparting various properties as a formulation, such as organic nutrients, micronutrients, binders, hardness modifiers, etc., and for further formulation Of water is added to form a formulation.
[0017]
Organic nutrients include bran, rice bran, rice bran, wood flour, humus, peat moss, compost, mushroom waste, or pulverized products thereof, which serve as nutrients for the desired fungus.
[0018]
Micronutrients are substances that activate the growth of microorganisms such as inorganic substances including iron, magnesium, potassium, etc., or organic substances such as crab, oil cake, blood meal, meat meal, and wood vinegar.
[0019]
The binder is a so-called formulation binder, and carboxymethyl cellulose, methyl cellulose, polyvinyl alcohol, clay, organic polymer latex, starch and the like are used.
[0020]
The hardness adjusting agent is an auxiliary agent that adjusts the strength, hardness, disintegration degree in water, etc. of the preparation itself, and the above-mentioned binders are used in the same manner.
[0021]
Of course, these excipients are appropriately selected according to the bacterial species to be used, the method of using the intended preparation, and the like.
[0022]
Mixing of these excipients and the culture becomes difficult because the water content of the culture end product is usually 40% or more.
[0023]
In addition, if a mechanically high shearing force is applied to mix and disperse in order to achieve uniform mixing, the spores will be killed because the spores are vulnerable to heat and mechanical shearing.
[0024]
Therefore, it is conceivable to dry the culture once and mix and agitate, but in this case as well, the dried product becomes blocked during the drying process and must be crushed. The force will cause the spores to die.
[0025]
In order to prevent the death of spores, it is only necessary to omit the mechanical shearing and the pulverization process that causes the temperature increase. For example, the particle diameter of the bran used as a medium is as wide as about 100 μm to 5 mm, about 200 μm. In order to prepare a mixture by uniformly mixing with a bulking agent (for example, wheat flour) having a function as a nutrient component having an average particle size and a function as an excipient, a pulverization treatment was essential.
[0026]
In addition, a culture method in which the culture medium is pulverized to about 200 μm in advance to perform solid culture is conceivable. However, since the air permeability of the culture medium is remarkably lowered, a problem occurs in solid culture of filamentous fungi.
[0027]
[Problems to be solved by the invention]
The problem to be solved by the present invention is to provide a method for producing a preparation that can be formulated without reducing the survival rate (or recovery rate) of conidia of filamentous fungi obtained by solid culture.
[0028]
[Means for Solving the Problems]
In order to solve the above problems, the culture after solid culture has the property of being easily adapted to moisture, the spores are easily dispersed in moisture and oil, and the culture and the size of the spore. The present invention has been completed by paying attention to the fact that it can be easily separated because of its remarkably large size.
[0029]
That is, the present invention provides (1) the culture after completion solid culture of filamentous fungi using a solid medium, a medium which can disperse the spores of filamentous fungi, water, and inorganic or organic salts in water Separated by adding a solution or natural fats and oils , (2) separating the culture residue and spore dispersion from the suspension obtained in the mixing step, and (3) separating. The present invention provides a method for producing a preparation comprising the steps of mixing a spore dispersion and an excipient, and (4) granulating the mixture obtained in the mixing step.
[0030]
The medium added to the culture after completion of the solid culture is a solution containing water such as distilled water, ion-exchanged water, tap water, or a solution containing an inorganic or organic salt such as a buffer solution or physiological saline. Alternatively, natural fats and oils such as soybean oil and olive oil may be used as long as spores are not killed.
[0031]
The amount of medium added depends on the type of solid medium and the type of medium, but from the viewpoint of the state of dispersion of the culture in suspension and the state of dispersion of the spores, It is preferable to make it 5 to 5000 times (in terms of weight).
[0032]
Further, a mixed solution in which the above medium is further mixed with a solution that is a nutrient component for spores may be used.
[0033]
As the solid medium, various media as described above can be mentioned. It is easy to cultivate mycelium, a large number of spores can be obtained, the uniformity of quality is excellent, and the suspension of (2) From the viewpoint of easy separation in the step of separating the residue and the spore dispersion, a bran medium is preferable.
[0034]
For bran medium, Trichoderma harzinam, Trichoderma hamatum, Trichoderma bilide, Trichoderma lignoram, Gliocladium viloclamens, Gliocladium catenuratam, Penicillium penicillium niglycans, Penicillium penicillium It can use suitably with respect to various filamentous fungi.
[0035]
For example, in the case of a bran medium, the size of the residue in the suspension thus obtained is usually 500 to 1000 μm in a dry state, but is 2000 to 5000 μm due to swelling.
[0036]
On the other hand, since the size of the spore in the suspension is 10 μm or less, there is a difference of 2 orders or more in the size between the two.
[0037]
Therefore, when separating the spore dispersion from the suspension, various separation means such as filter paper, filter cloth, sieve, and hollow paper can be applied as long as they can be separated with respect to the respective particle sizes. However, in view of separation efficiency such as separation speed and clogging, it is preferable to use a sieve having a diameter of 50 to 1000 μm.
[0038]
This diameter is preferably changed depending on the type of preparation to be produced. That is, when preparing a granule wettable powder, 50-200 micrometers is preferable, and when preparing a granule, 200-1000 micrometers is preferable, and 300-500 micrometers is especially preferable.
[0039]
This separation means may have a plurality of stages. For example, when producing a granulated wettable powder, when a two-stage separation process is used, coarse filtration is performed using a large-diameter sieve (for example, a 200-1000 μm sieve) as the first stage, and a small-diameter is used as the second stage. It is good also as a structure which carries out dense filtration using a sieve (for example, 50-200 micrometers).
[0040]
Similarly, when a two-stage separation process is used for granule production, coarse filtration is performed using a large-diameter sieve (for example, a 500-1000 μm sieve) as the first stage, and a small-diameter is used as the second stage. It is good also as a structure which carries out dense filtration using a sieve (for example, 200-500 micrometers).
[0041]
These may be appropriately selected with respect to the total amount of suspension, and in a production line where batch processing is performed in a mixing tank, a plurality of stages of the above sieves may be arranged in the circulation line. When configuring a continuous production line, it is good also as a structure which arrange | positions the said sieve in multiple steps to piping, and collect | recovers only filtrates in a filtrate collection tank.
[0042]
Spores in the culture easily disperse in water, for example, by adding water and stirring, but the retention capacity of the filtration residue is usually very large, so the spore recovery efficiency is solely the recovery rate of the filtrate in the filtration residue. Will depend on.
[0043]
Therefore, in order to increase the spore recovery rate, a method such as vacuum filtration, pressure filtration, or squeezing filtration residue may be used as a separation step, and it is also effective to use a combination of these methods. is there.
It is also effective to increase the filtration efficiency by using a surfactant or the like that does not kill spores.
[0044]
The spore dispersion thus obtained can be used as it is in the granulation step for preparation.
[0045]
The above spore dispersion is added to the raw material in which the above-mentioned various excipients are uniformly mixed by a method such as spraying, and the mixture is kneaded and granulated by extrusion granulation to obtain a preparation.
[0046]
Of course, it is also preferable to improve the efficiency of the preparation process by simultaneously kneading the raw material and spraying the spore dispersion and further granulating the material at the same time. It is preferred to use a granulator.
[0047]
The rolling granulator includes, for example, a rotating container type, a vibration type, a pan type, a drum type, a mixing machine type and the like, and the mixing granulator includes various types such as a blade type granulator and a pin granulator. Although there is a granulator, any method may be adopted.
[0048]
【Example】
Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to Examples and Comparative Examples.
Example 1
Inoculated Trichoderma harzianum ATCC 74058 conidia cultivated in potato dextrose agar medium (Difco) at a culture temperature of 28 ° C. for 1 week into a sterilized bran medium (manufactured by Chiba Flour Milling Co., Ltd.) for 60 minutes. The cells were cultured at a moisture content of 68% and a culture temperature of 28 ° C. for 1 week.
[0049]
Next, according to the process shown in FIG. 1, 9 times by volume of tap water 2 was added to the culture 1 after the completion of the solid culture and stirred to prepare a suspension. Next, this suspension was passed through a sieve 3 having an opening of 1000 μm and subsequently a sieve 4 of 300 μm, and only the bran used as a medium was removed.
[0050]
2 kg (double weight equivalent) of wheat flour (Nisshin Flour Milling Co., Ltd.) is mixed in advance with 1 kg of the spore-containing filtrate. ), The filtrate was sprayed at 1 L / min while stirring at a spindle rotation speed of 230 rpm, granulated for 20 minutes, and then dried at 50 ° C. for 4 hours to obtain a granulated product 6.
[0051]
The granulated product 7 obtained by the above production method showed an extremely high numerical value of 80% in terms of the conidia survival rate compared to the culture after solid culture.
[0052]
(Example 2)
Blastoma medium (produced by Chiba Flour Milling Co., Ltd.) sterilized for 60 minutes at 121 ° C. with conidia of Gliocladium bilens IFO6355 cultured on potato dextrose agar medium (Difco) at a culture temperature of 25 ° C. for 1 week. And inoculated for 1 week at a water content of 68% and a culture temperature of 25 ° C.
[0053]
A 9-fold amount of tap water in a weight ratio was added to the culture after the completion of the solid culture and mixed by stirring to prepare a suspension. Next, this suspension was passed through a sieve having an opening of 1000 μm and then 300 μm, and only the bran used as a medium was removed.
[0054]
200 g (double weight equivalent amount) of wheat flour (Nisshin Flour Milling Co., Ltd.) is charged in a rolling granulator laboratory matrix (LMA5) (Nara Machinery Co., Ltd.) with respect to 100 g of the spore-containing filtrate. Then, while stirring at 600 rpm, the filtrate was dripped at a rate of 10 g / min to thoroughly blend the flour and filtrate, and then the spindle rotation speed was changed to 100 rpm for 10 minutes of granulation. went. The granulated product was blown and dried at 30 ° C. for 24 hours to obtain a granulated product.
[0055]
The granulated product obtained by the above production method showed an extremely high numerical value of 72% in terms of the conidial spore survival rate compared to the culture after solid culture.
[0056]
(Comparative Example 1)
Inoculated Trichoderma harzianum ATCC 74058 conidia cultivated in potato dextrose agar medium (Difco) at a culture temperature of 28 ° C. for 1 week into a sterilized bran medium (manufactured by Chiba Flour Milling Co., Ltd.) for 60 minutes. The cells were cultured at a moisture content of 68% and a culture temperature of 28 ° C. for 1 week.
[0057]
Next, according to the process shown in FIG. 2, the culture after completion of the solid culture was dried at 30 ° C. for 24 hours using a dehumidifying dryer 7T-5F type (manufactured by Tanaka Chemical Machinery Co., Ltd.).
[0058]
Next, this dried product was pulverized to an average particle size of 300 μm with an EK sample mill 8KII-1 type (produced by Fuji Paudal Co., Ltd .: currently Dalton Co., Ltd.), and used as a raw material for granules.
[0059]
1 kg and 2 kg (double weight equivalent) of wheat flour (Nisshin Flour Milling Co., Ltd.) are mixed in advance with this granulated granulator 5 Ladige Mixer M-20 type (total selling company) Pinewood), 1.5L of tap water is sprayed at 1L / min while stirring at 230 rpm for the spindle rotation speed, granulated for 20 minutes, and then dried at 50 ° C for 4 hours. It was set to 9.
[0060]
The granulated product 9 obtained by the above production method had a conidia spore survival rate of 12% compared to the culture after solid culture, which was greatly reduced.
[0061]
(Comparative Example 2)
Blastoma medium sterilized for 60 minutes at 121 ° C. after cultivating conidia of Glyocladium bilens IFO 6355 on a potato dextrose agar medium (manufactured by Difco) at a culture temperature of 28 ° C. for 1 week (manufactured by Chiba Flour Milling Co., Ltd.) And inoculated for 1 week at a water content of 68% and a culture temperature of 25 ° C.
[0062]
The culture after the completion of the solid culture was dried at 30 ° C. for 24 hours using a dehumidifying dryer T-5F type (manufactured by Tanaka Chemical Machinery Co., Ltd.).
[0063]
Next, this dried product was pulverized to an average particle size of 300 μm using EK sample mill KII-1 type (Fuji Paudal Co., Ltd .: present Dalton Co., Ltd.), and used as a raw material for granules.
[0064]
200 g (twice weight equivalent) of wheat flour (Nisshin Flour Milling Co., Ltd.) is pre-rolled with a rolling granulator laboratory matrix (LMA5) (manufactured by Nara Machinery Co., Ltd.). After adding 150 g of tap water at a rate of 10 g / min with stirring at 600 rpm, the spindle and the filtrate were mixed well, and then the spindle speed was changed to 100 rpm for 10 minutes. A granulation process was performed. The granulated product was blown and dried at 30 ° C. for 24 hours to obtain a granulated product.
[0065]
The granulated product obtained by the above production method had a conidial spore survival rate of 8% compared to the culture after solid culture, which was greatly reduced.
[0066]
【The invention's effect】
As described above in detail, the residue of the culture and the spore dispersion are separated from the suspension obtained by adding a medium that can disperse the filamentous fungus spores to the culture after the completion of the solid culture, By mixing and granulating the separated spore dispersion and the excipient, it can be formulated without reducing the survival rate of filamentous fungal conidia.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a process diagram showing an example of a method for producing a preparation according to the present invention.
FIG. 2 is a process chart showing an example of a method for producing a preparation by a conventional method.
[Explanation of symbols]
1 Culture 2 Tap Water 3 Sieve 4 Sieve 5 Mixing / Granulating / Drying Machine 6 Granulated Product 7 Dryer 8 Crusher 9 Granulated Product

Claims (3)

(1)固体培地を用いる糸状菌の固体培養終了後の培養物に該糸状菌の胞子を分散させることができる媒体として、水、水に無機若しくは有機塩を含有させた溶液、又は天然油脂を加えて混合する工程と、(2)該混合する工程で得られた懸濁液から該培養物の残渣と胞子分散液を分離する工程と、(3)該分離する工程で分離した該胞子分散液と賦形剤を混合する工程と、(4)該混合する工程で得られた混合物を造粒する工程と、からなることを特徴とする製剤の製造方法。(1) to the culture after completion solid culture of filamentous fungi using a solid medium, a medium which can disperse the spores of filamentous fungi, water and the solution was allowed to contain an inorganic or organic salt in water, or natural fat And (2) separating the culture residue and spore dispersion from the suspension obtained in the mixing step, and (3) the spores separated in the separating step. A method for producing a preparation, comprising: a step of mixing a dispersion and an excipient; and (4) a step of granulating the mixture obtained in the step of mixing. 該固体培地がふすま培地である請求項1に記載の製剤の製造方法。The method for producing a preparation according to claim 1, wherein the solid medium is a bran medium. (3)該分離する工程が、口径50〜1000μmの篩を用いて分離する工程である請求項1又は2に記載の製剤の製造方法。(3) The method for producing a preparation according to claim 1 or 2, wherein the separating step is a step of separating using a sieve having a diameter of 50 to 1000 µm.
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