JP4806749B2 - Bordetella pertussis gene detection method using LAMP method and primer set used in this method - Google Patents

Bordetella pertussis gene detection method using LAMP method and primer set used in this method Download PDF

Info

Publication number
JP4806749B2
JP4806749B2 JP2005321768A JP2005321768A JP4806749B2 JP 4806749 B2 JP4806749 B2 JP 4806749B2 JP 2005321768 A JP2005321768 A JP 2005321768A JP 2005321768 A JP2005321768 A JP 2005321768A JP 4806749 B2 JP4806749 B2 JP 4806749B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
primer set
dna
lamp
bordetella pertussis
primer
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2005321768A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP2007124970A (en
Inventor
一成 蒲地
裕美 鯵坂
宜親 荒川
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Japan Health Sciences Foundation
Original Assignee
Japan Health Sciences Foundation
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Japan Health Sciences Foundation filed Critical Japan Health Sciences Foundation
Priority to JP2005321768A priority Critical patent/JP4806749B2/en
Publication of JP2007124970A publication Critical patent/JP2007124970A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP4806749B2 publication Critical patent/JP4806749B2/en
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Description

本発明は、LAMP法を用いた百日咳菌遺伝子検出方法およびこの方法に用いるプライマーセットに関する。   The present invention relates to a pertussis gene detection method using the LAMP method and a primer set used in this method.

百日咳は百日咳菌(Bordetella pertussis)の感染によって引き起こされる小児の急性呼吸器感染症である。世界の百日咳患者数は年間2,000〜4,000万人、死亡数は約20〜40万人と見積もられおり、罹患者は主にワクチン接種前と未接種の乳幼児である。報告患者数をもとにしたわが国の年間罹患数の推計値は、2000年が2.8万人、2001年が1.5万人とされている。百日咳の確定診断には細菌学的または血清学的診断を必要とするが、臨床現場では主に臨床症状による診断(臨床診断)が実施されている。その理由は、菌分離や抗体価測定による確定診断法はいずれも数日以上の検査日数を必要とするため、臨床現場では事後診断となるためである。臨床診断は長期の咳嗽といった典型的な百日咳症状を示す患者に対しては容易であるが、その一方、非典型的な症状を示す感染初期の患者に対しては診断できないという問題点がある。   Pertussis is an acute respiratory infection in children caused by infection with Bordetella pertussis. The number of whooping cough patients worldwide is estimated at 20-40 million per year, and the number of deaths is estimated at about 200-400,000. The affected individuals are mainly pre-vaccinated and unvaccinated infants. Based on the number of reported cases, the estimated annual number of cases in Japan is 28,000 in 2000 and 15,000 in 2001. Bacteriological or serological diagnosis is necessary for the definitive diagnosis of pertussis, but diagnosis (clinical diagnosis) is mainly performed in clinical practice based on clinical symptoms. The reason for this is that since the definitive diagnosis methods by bacterial isolation and antibody titer measurement require several days or more of examination days, post-diagnosis is performed at the clinical site. Clinical diagnosis is easy for patients with typical whooping cough symptoms such as long-term cough, but there is a problem that it cannot be diagnosed for patients with early symptoms of infection with atypical symptoms.

近年、感染症の検査法として遺伝子診断が広く導入されるようになり、百日咳でも菌の挿入配列(IS481)や百日咳毒素遺伝子(ptx)を標的としたPCRが実験室診断法として検討されている。(Houard et al., Res Microbiol, 140: 477-487, 1989(非特許文献1)、Dragsted et al., J Med Microbiol, 53: 749-754, 2004(非特許文献2))
Houard et al., Res Microbiol, 140: 477-487, 1989 Dragsted et al., J Med Microbiol, 53: 749-754, 2004
In recent years, genetic diagnosis has been widely introduced as a test method for infectious diseases, and PCR targeting the insertion sequence (IS481) of the pertussis and the pertussis toxin gene (ptx) has been studied as a laboratory diagnostic method even in pertussis. . (Houard et al., Res Microbiol, 140: 477-487, 1989 (Non-Patent Document 1), Dragsted et al., J Med Microbiol, 53: 749-754, 2004 (Non-Patent Document 2))
Houard et al., Res Microbiol, 140: 477-487, 1989 Dragsted et al., J Med Microbiol, 53: 749-754, 2004

しかし、PCRを用いた実験室診断法は菌培養検査に比較して、その陽性率は高いもののまだ十分とは言い難く、より高感度で簡便な診断技術の開発が望まれていた。近年、PCR法に代わる遺伝子診断法として、簡便かつ迅速な診断を可能とするLAMP法(Loop mediated isothermal Amplification)が開発され、多くの感染症でその応用研究が進められている。LAMP法はPCR反応に必須な遺伝子増幅装置を必要とせず、短時間に判定できる利点を有し、さらに反応系に蛍光色素を添加することで目視による判定を可能とする。そのため機器類が十分に整備されていない病院などの検査室にも導入可能な検査技術として注目されている。しかし、百日咳菌に対するLAMP法プライマーは開発されていないため、百日咳菌を特異的に検出するLAMP法プライマーの設計とその評価が必要であった。   However, although the laboratory diagnostic method using PCR has a high positive rate compared with the bacterial culture test, it is still not sufficient, and the development of a more sensitive and simple diagnostic technique has been desired. In recent years, the LAMP method (Loop mediated isothermal Amplification) that enables simple and rapid diagnosis has been developed as a genetic diagnosis method that replaces the PCR method, and its application research is being promoted in many infectious diseases. The LAMP method does not require a gene amplification device essential for PCR reaction, has an advantage that it can be determined in a short time, and further enables visual determination by adding a fluorescent dye to the reaction system. Therefore, it has been attracting attention as an inspection technology that can be introduced into laboratories such as hospitals where equipment is not sufficiently developed. However, since a LAMP primer for Bordetella pertussis has not been developed, it was necessary to design and evaluate a LAMP primer that specifically detects Bordetella pertussis.

そこで本発明は、LAMP法により百日咳菌遺伝子を高感度および特異的に検出できるプライマー配列を提供し、このプライマー配列を用いた百日咳菌遺伝子の検出方法を提供することを目的とする。   Therefore, an object of the present invention is to provide a primer sequence that can detect a Bordetella pertussis gene with high sensitivity and specificity by the LAMP method, and to provide a method for detecting a Bordetella pertussis gene using this primer sequence.

さらに、本発明は、上記プライマー配列を用いた百日咳菌遺伝子検出用キットを提供することを目的とする。   Furthermore, an object of the present invention is to provide a Bordetella pertussis gene detection kit using the above primer sequence.

上記課題を解決する本発明は以下の通りである。
[1]百日咳菌遺伝子の少なくとも一部をLAMP法により増幅し得るプライマーセットを用意し、検体からDNAを抽出し、抽出したDNAを、前記プライマーセットを用いるLAMP法による増幅操作に供し、増幅操作後に、産物中に、増幅されたDNAが含まれるか否かを確認する、ことを含む検体中に含まれる百日咳菌遺伝子を検出する方法であって、
前記プライマーセットとして、配列表に示された配列番号1〜4の塩基配列からなる4つのプライマーと配列表に示された配列番号5〜6の塩基配列からなる2つのループプライマーを用いる、前記方法
]増幅産物中に増幅されたDNAが含まれるか否かを、増幅産物の濁度を測定することで確認するか、または蛍光色素を用いて確認する[]記載の方法。
]検体中の菌体に含まれる百日咳菌遺伝子をLAMP法により検出するために用いられる、配列表に示された配列番号1〜4の塩基配列からなる4つのプライマー及び配列表に示された配列番号5〜6の塩基配列からなる2つのループプライマーを含むプライマーセット。
][]に記載のプライマーセットを含む、検体中に含まれる百日咳菌遺伝子をLAMP法により検出するためのキット。
The present invention for solving the above problems is as follows.
[1] A primer set capable of amplifying at least a part of the Bordetella pertussis gene by the LAMP method is prepared, DNA is extracted from the specimen, and the extracted DNA is subjected to an amplification operation by the LAMP method using the primer set. A method for detecting a Bordetella pertussis gene contained in a sample, comprising confirming whether the amplified DNA is contained in the product later ,
The method, wherein four primers comprising the base sequences of SEQ ID NOs: 1 to 4 shown in the sequence table and two loop primers comprising the base sequences of SEQ ID NOs: 5 to 6 shown in the sequence table are used as the primer set .
[ 2 ] The method according to [ 1 ], wherein whether the amplified product contains amplified DNA is confirmed by measuring the turbidity of the amplified product or using a fluorescent dye.
[ 3 ] Four primers consisting of the base sequences of SEQ ID NOs: 1 to 4 shown in the sequence table, which are used for detecting the Bordetella pertussis gene contained in the bacterial cells in the specimen by the LAMP method, are shown in the sequence table. A primer set comprising two loop primers consisting of the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 5-6.
[ 4 ] A kit for detecting a Bordetella pertussis gene contained in a sample by the LAMP method, comprising the primer set according to [ 3 ].

本発明によれば、百日咳菌遺伝子を高感度かつ特異的に検出することができる。LAMP法はPCR法のような煩雑な操作を必要しないため、病院などの検査室に導入可能な技術である。そのため、本発明により簡便かつ迅速な百日咳診断が臨床現場で可能となる。また、近年成人が百日咳菌を保菌することにより、乳幼児への感染源となっている可能性が指摘されている。成人が百日咳菌を保菌した場合、乳幼児のような症状を示さないため、臨床診断は極めて困難である。そのため、本発明は乳幼児のみならず成人に対する百日咳診断も可能とする。   According to the present invention, a Bordetella pertussis gene can be detected with high sensitivity and specificity. The LAMP method is a technique that can be introduced into a laboratory such as a hospital because it does not require complicated operations like the PCR method. Therefore, according to the present invention, simple and quick pertussis diagnosis is possible in the clinical field. In recent years, it has been pointed out that adults may be a source of infection for infants by carrying Bordetella pertussis. When an adult carries Bordetella pertussis, clinical diagnosis is extremely difficult because it does not show symptoms similar to infants. Therefore, the present invention enables pertussis diagnosis not only for infants but also for adults.

本発明は、検体中の菌体に含まれる百日咳菌遺伝子を検出する方法に関する。この方法は、以下の工程を含む。
(1)百日咳菌遺伝子の少なく一部をLAMP法により増幅し得るプライマーセットを用意する。
(2)検体からDNAを抽出する。
(3)抽出したDNAを、前記プライマーセットを用いるLAMP法による増幅操作に供する。
(4)増幅操作後に、産物中に、増幅されたDNAが含まれるか否かを確認する。
The present invention relates to a method for detecting a Bordetella pertussis gene contained in bacterial cells in a specimen. This method includes the following steps.
(1) Prepare a primer set that can amplify at least part of the Bordetella pertussis gene by the LAMP method.
(2) DNA is extracted from the specimen.
(3) The extracted DNA is subjected to an amplification operation by the LAMP method using the primer set.
(4) After the amplification operation, it is confirmed whether or not the amplified DNA is contained in the product.

[プライマーセット]
本発明の方法では、百日咳菌遺伝子の少なく一部をLAMP法により増幅し得るプライマーセットを用意する。百日咳菌は、Bordetella属に属する細菌であり、Bordetella属に属する類似の細菌としてパラ百日咳菌および気管支敗血症菌などがある。そこで、本発明者らは、これらの細菌との間で、百日咳菌遺伝子に特異的な配列を探索した。その結果、図1に示すように、百日咳菌の百日咳毒素プロモーター配列に、他のBordetella属細菌(パラ百日咳菌、気管支敗血症菌)と異なる配列が存在することを見いだし、この点に着目して、同配列に対しLAMP法プライマーの設計を行なった。設計にはLAMP法プライマー設計支援ソフト(PrimerExplorer Ver.3、栄研化学)を使用し、設計されたプライマーセット(162種類)の中から本発明者らが、候補となり得ると考えた7種類のプライマーセットを選択した。そして、選択されたプライマーセットを合成し、各プライマーセットについて、その検出感度と特異性を各種Bordetella属細菌から精製したDNAを用いて検討した。その結果、本発明のプライマーセット(実施例ではID2)が最も高い感度を示し、さらに百日咳菌以外のBordetella属細菌(5菌種、8株)を検出しない(特異性が極めて高い)ことが判明した。
[Primer set]
In the method of the present invention, a primer set capable of amplifying at least a part of the Bordetella pertussis gene by the LAMP method is prepared. Bordetella pertussis is a bacterium belonging to the genus Bordetella. Similar bacteria belonging to the genus Bordetella include parapertussis and bronchial septic bacteria. Therefore, the present inventors searched for a specific sequence for the Bordetella pertussis gene with these bacteria. As a result, as shown in FIG. 1, the pertussis toxin promoter sequence of Bordetella pertussis found that there was a different sequence from other Bordetella genus bacteria (parapertussis, bronchial septic bacteria). A LAMP primer was designed for the same sequence. The LAMP primer design support software (PrimerExplorer Ver.3, Eiken Chemical Co., Ltd.) was used for the design, and the present inventors considered seven possible candidates from the designed primer set (162 types). A primer set was selected. Then, the selected primer sets were synthesized, and the detection sensitivity and specificity of each primer set were examined using DNA purified from various Bordetella bacteria. As a result, it was found that the primer set of the present invention (ID2 in the examples) showed the highest sensitivity, and did not detect Bordetella bacteria (5 strains, 8 strains) other than Bordetella pertussis (very high specificity). did.

本発明は、百日咳菌と類似する多種類のBordetella属細菌が存在するにも関わらず、百日咳菌遺伝子のみを確実に検出することを目的とする。このような目的を達成するという観点からは、百日咳菌遺伝子の少なく一部をLAMP法により増幅し得るプライマーセットとしては、以下の配列番号1〜4の4種類のDNAからなるプライマーセットを用いることが好ましい。   An object of the present invention is to reliably detect only the Bordetella pertussis gene despite the presence of many types of Bordetella bacteria similar to Bordetella pertussis. From the viewpoint of achieving such an object, as a primer set capable of amplifying at least part of the Bordetella pertussis gene by the LAMP method, a primer set consisting of the following four types of DNAs of SEQ ID NOs: 1 to 4 should be used. Is preferred.

百日咳菌遺伝子の塩基配列(部分)を図2に示す。図2に示す塩基配列を配列番号7に示す。図2には、百日咳菌遺伝子の塩基配列と本発明のプライマーセットの各DNAとの関係を示す。配列番号1〜4の4種類のDNAからなるプライマーセットを用いることで、百日咳菌遺伝子の一部のDNAをLAMP法により増幅することができる。増幅されるDNAの最小単位は156 bpと計算されるが、LAMP法ではDNAがカリフラワー様に増幅するので、実際には156 bp以外の様々なサイズの遺伝子が増幅される。   The base sequence (part) of the Bordetella pertussis gene is shown in FIG. The base sequence shown in FIG. FIG. 2 shows the relationship between the base sequence of the Bordetella pertussis gene and each DNA of the primer set of the present invention. By using a primer set consisting of four types of DNAs of SEQ ID NOs: 1 to 4, a partial DNA of the Bordetella pertussis gene can be amplified by the LAMP method. Although the minimum unit of DNA to be amplified is calculated to be 156 bp, in the LAMP method, DNA is amplified like a cauliflower, so that genes of various sizes other than 156 bp are actually amplified.

BP-F3 (F3): 5'-CCGCATACGTGTTGGCA-3'(配列番号1)
BP-B3 (B3c): 5'-TGCGTTTTGATGGTGCCT-3' (配列番号2)
BP-FIP (F2-F1c):
5'-TTGGATTGCAGTAGCGGGATGTGCATGCGTGCAGATTCGTC-3' (配列番号3)
BP-BIP (B1-B2c):
5'-CGCAAAGTCGCGCGATGGTAACGGATCACACCATGGCA-3' (配列番号4)
BP-F3 (F3): 5'-CCGCATACGTGTTGGCA-3 '(SEQ ID NO: 1)
BP-B3 (B3c): 5'-TGCGTTTTGATGGTGCCT-3 '(SEQ ID NO: 2)
BP-FIP (F2-F1c):
5'-TTGGATTGCAGTAGCGGGATGTGCATGCGTGCAGATTCGTC-3 '(SEQ ID NO: 3)
BP-BIP (B1-B2c):
5'-CGCAAAGTCGCGCGATGGTAACGGATCACACCATGGCA-3 '(SEQ ID NO: 4)

本発明の方法では、上記4種類のプライマーは、それぞれ上記で示した全配列を有することが、検体中に百日咳菌遺伝子が存在する場合、百日咳菌遺伝子を菌株の種類によらず確実に増幅するという観点から好ましい。但し、各プライマーともその一部の塩基を欠失または置換したもの、あるいは、他の塩基が付加されたものでも、同様のプライマーとしての機能を発揮するものはあり得る。即ち、配列番号1〜4のいずれかの塩基配列において1から数個の塩基の欠失、置換及び/又は付加を有する塩基配列を有し、かつ百日咳菌遺伝子の少なく一部をLAMP法によって増幅することができるプライマー機能を有するDNAを、プライマーセットの一部または全部のDNAとして含むプライマーセットも、本発明の方法で使用できる。   In the method of the present invention, each of the four types of primers has the entire sequence shown above, and when the pertussis gene is present in the sample, the pertussis gene is reliably amplified regardless of the strain type. It is preferable from the viewpoint. However, even if each primer has a part of its bases deleted or substituted, or has other bases added, there may be those that function as a similar primer. That is, it has a base sequence having a deletion, substitution and / or addition of 1 to several bases in any one of SEQ ID NOs: 1 to 4, and a part of the Bordetella pertussis gene is amplified by the LAMP method. A primer set containing a DNA having a primer function that can be used as part or all of the DNA of the primer set can also be used in the method of the present invention.

本発明のプライマーセットは、前記4種類のDNAに加えて、以下のDNA(loopプライマー)をさらに含むことができる。
BP-LF (LFc): 5'-ACGGAAGAATCGAGGGTTTTGTAC-3' (配列番号5)
BP-LB (LB): 5'-GTCACCGTCCGGACCGTG-3' (配列番号6)
The primer set of the present invention may further contain the following DNA (loop primer) in addition to the four types of DNA.
BP-LF (LFc): 5'-ACGGAAGAATCGAGGGTTTTGTAC-3 '(SEQ ID NO: 5)
BP-LB (LB): 5'-GTCACCGTCCGGACCGTG-3 '(SEQ ID NO: 6)

本発明の方法において、プライマーセットは、上記loopプライマーを含まなくても、百日咳菌遺伝子の少なく一部をLAMP法によって増幅することはできる。しかし、上記loopプライマーを含む場合の方が、増幅時間を大幅に短縮でき、好ましい。   In the method of the present invention, even if the primer set does not include the loop primer, at least a part of the Bordetella pertussis gene can be amplified by the LAMP method. However, it is preferable to include the loop primer because the amplification time can be greatly shortened.

上記loopプライマーにおいても、各プライマーの一部の塩基を欠失または置換したもの、あるいは、他の塩基が付加されたものでも、loopプライマーとしての機能を発揮するものはあり得る。即ち、配列番号5または6の塩基配列において1から数個の塩基の欠失、置換及び/又は付加を有する塩基配列を有し、かつ百日咳菌遺伝子の少なく一部をLAMP法によって増幅する際のloopプライマー機能を有するDNAを、プライマーセットの一部のDNAとして含むプライマーセットも、本発明の方法で使用できる。   Even in the above-mentioned loop primer, there may be one that exhibits a function as a loop primer, even if one of the bases of each primer is deleted or substituted, or another base is added. That is, when the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 5 or 6 has a nucleotide sequence having a deletion, substitution and / or addition of 1 to several nucleotides, and at least a part of the Bordetella pertussis gene is amplified by the LAMP method A primer set including a DNA having a loop primer function as a part of the primer set can also be used in the method of the present invention.

尚、本明細書で言う「1から数個の塩基の欠失、置換及び/又は付加を有する塩基配列」における「1から数個」の範囲は特には限定されないが、例えば、1から10個、好ましくは1から5個、より好ましくは1から4個、より好ましくは1から3個、さらに好ましくは1から2個、特に好ましくは1個を意味する。   The range of “1 to several” in the “base sequence having deletion, substitution and / or addition of 1 to several bases” as used herein is not particularly limited. , Preferably 1 to 5, more preferably 1 to 4, more preferably 1 to 3, even more preferably 1 to 2, particularly preferably 1.

本発明の上記プライマーセットを構成する各DNAは、前記塩基配列に基づいて、既知のDNA調製方法により適宜入手することができる。   Each DNA constituting the primer set of the present invention can be appropriately obtained by a known DNA preparation method based on the base sequence.

本発明は、上記プライマーセットを用いる、百日咳菌遺伝子の検出方法に関するが、本発明は、上記プライマーセット自体を発明として包含する。さらに本発明は、上記本発明のプライマーセットを含む、検体中の菌体に含まれる百日咳菌遺伝子をLAMP法により検出するためのキットも包含する。   Although the present invention relates to a method for detecting a Bordetella pertussis gene using the above primer set, the present invention includes the above primer set itself as an invention. Furthermore, the present invention also includes a kit for detecting the Bordetella pertussis gene contained in the bacterial cells in the specimen, which contains the above-described primer set of the present invention, by the LAMP method.

本発明のプライマーセットは、例えば、1回のLAMP法による遺伝子の増幅に必要な量の前記4種類または6種類のプライマー(DNA)を含む形態であることができる。1回のLAMP法による遺伝子の増幅に必要な量のプライマー(DNA)量は、例えば、5 〜 40 pmol / 反応チューブの範囲である。   The primer set of the present invention can be, for example, in a form containing the four or six types of primers (DNA) in an amount necessary for a single amplification of a gene by the LAMP method. The amount of primer (DNA) necessary for the gene amplification by one LAMP method is, for example, in the range of 5 to 40 pmol / reaction tube.

[DNA抽出]
本発明の方法では、検体からDNAを抽出する。具体的には、検体中の菌株から市販のDNA抽出キットを用いて直接DNAを抽出する。DNA抽出キットとしては例えば、QIAamp DNA Micro Kit (Cat. No. 56301、Qiagen社)を挙げることができる。
[DNA extraction]
In the method of the present invention, DNA is extracted from a specimen. Specifically, DNA is directly extracted from a strain in a specimen using a commercially available DNA extraction kit. Examples of the DNA extraction kit include QIAamp DNA Micro Kit (Cat. No. 56301, Qiagen).

[LAMP法による増幅]
本発明の方法では、抽出したDNA(DNAテンプレイト)を、前記プライマーセットを用いるLAMP法による増幅操作に供する。LAMP法による増幅操作は、例えば、以下のように行うことができる。試薬(例えば、Bst DNAポリメラーゼ、反応バッファー、dNTPs、プライマーセット、蒸留水)を混合し、反応チューブに分注した後にDNAテンプレイト(抽出したDNA)を加える。次いで、例えば、65℃にてインキュベートする。インキュベート時間は、例えば、30分〜90分の範囲である。
[Amplification by LAMP method]
In the method of the present invention, the extracted DNA (DNA template) is subjected to an amplification operation by the LAMP method using the primer set. The amplification operation by the LAMP method can be performed as follows, for example. A reagent (for example, Bst DNA polymerase, reaction buffer, dNTPs, primer set, distilled water) is mixed, dispensed into a reaction tube, and then a DNA template (extracted DNA) is added. Next, for example, incubation is performed at 65 ° C. The incubation time is, for example, in the range of 30 minutes to 90 minutes.

[増幅されたDNAの確認]
本発明の方法では、増幅操作後に、産物中に、増幅されたDNAが含まれるか否かを確認する。検体中に含まれる菌体中に百日咳菌遺伝子が含まれている場合、増幅操作により百日咳菌遺伝子が増幅される。逆に、検体中に含まれる菌体中に百日咳菌遺伝子が含まれていなければ、増幅操作によっても増幅されるDNAはない。
[Confirmation of amplified DNA]
In the method of the present invention, it is confirmed whether the amplified DNA is contained in the product after the amplification operation. When the pertussis gene is contained in the bacterial cells contained in the specimen, the pertussis gene is amplified by the amplification operation. On the contrary, if the pertussis gene is not contained in the microbial cells contained in the specimen, there is no DNA amplified by the amplification operation.

増幅産物中に増幅されたDNAが含まれるか否かは、例えば、増幅産物の濁度を測定すること、または蛍光目視検出で確認することができる。増幅産物の濁度の測定は、具体的には、以下のように行うことができる。リアルタイム濁度測定装置により経時的に、あるいは濁度測定装置により最終増幅産物の濁度を測定する。蛍光目視検出は、蛍光目視試薬を添加して反応させ、UVランプを当てることにより目視で反応液の蛍光発色を観察することで行うことができる。   Whether or not the amplified product contains amplified DNA can be confirmed, for example, by measuring the turbidity of the amplified product or by visual fluorescence detection. Specifically, the turbidity of the amplification product can be measured as follows. The turbidity of the final amplification product is measured over time with a real-time turbidity measuring device or with a turbidity measuring device. The fluorescent visual detection can be carried out by adding a fluorescent visual reagent for reaction, and visually observing the fluorescent color of the reaction solution by applying a UV lamp.

本発明のプライマーセットを用いたLAMP検出系は反応温度65℃で最大感度を示し、その検出限界は百日咳菌DNAにして10 fg/tubeであった。なお、このDNA量は百日咳菌ゲノムDNAにして 2.3 copyに相当する。既存のPCR法(PTp1/p2-PCR, IS481-PCR)と検出感度を比較したところ、最も感度が高いとされるIS481-PCRの検出限界は1,000 fg/tubeであり、本発明のプライマーセットID2(配列番号1〜6)を用いたLAMP検出系はIS481-PCRよりも約100倍感度が高いことが判明した。なお、IS481-PCRは他のBordetella属細菌も検出するという欠点があり、一方、PTp1/p2-PCRは特異性に優れるものの感度が悪い(>100 pg/tube)という欠点がある。   The LAMP detection system using the primer set of the present invention showed the maximum sensitivity at a reaction temperature of 65 ° C., and its detection limit was 10 fg / tube for Bordetella pertussis DNA. This amount of DNA corresponds to 2.3 copies of Bordetella pertussis genomic DNA. When comparing the detection sensitivity with the existing PCR method (PTp1 / p2-PCR, IS481-PCR), the detection limit of IS481-PCR, which is considered to be the highest sensitivity, is 1,000 fg / tube, and the primer set ID2 of the present invention The LAMP detection system using (SEQ ID NOs: 1 to 6) was found to be about 100 times more sensitive than IS481-PCR. IS481-PCR has the disadvantage of detecting other Bordetella bacteria, while PTp1 / p2-PCR has the disadvantage of poor specificity (> 100 pg / tube) although it has excellent specificity.

本発明は、前記方法で説明したプライマーセットを包含する。さらに、本発明は、本発明のプライマーセットを含むキットも包含する。キットに含まれるものは、例えば、以下の物であることができる。
1.Bst DNAポリメラーゼ
2.反応バッファー
3.dNTPs
4.プライマーセット(本発明のプライマー)
5.コントロールDNA(陽性コントロール)
6.反応チューブ
7.説明書
The present invention includes the primer set described in the above method. Furthermore, the present invention also includes a kit including the primer set of the present invention. What is contained in a kit can be the following things, for example.
1.Bst DNA polymerase
2. Reaction buffer
3.dNTPs
4.Primer set (primer of the present invention)
5. Control DNA (positive control)
6. Reaction tube
7. Manual

前述のように、本発明の方法では、DNAの増副産物の有無を濁度測定または蛍光目視検出により行うことができる。蛍光目視で検出する場合は、上記キットに蛍光目視試薬を含めることができる。濁度測定装置を使用する場合には、キットには蛍光目視検出試薬は含めない。   As described above, in the method of the present invention, the presence or absence of DNA by-products can be determined by turbidity measurement or visual fluorescence detection. In the case of detecting with fluorescent visual observation, a fluorescent visual inspection reagent can be included in the kit. When using a turbidity measuring device, the fluorescent visual detection reagent is not included in the kit.

以下本発明を実施例によりさらに詳細に説明する。   Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to examples.

菌株
LAMPプライマーの特異性確認のため、百日咳菌(Bordetella pertussis)、パラ百日咳菌(B. parapertussis)、気管支敗血症菌(B. bronchiseptica R05)、B. hinzii ATCC51730、B. holmesii ATCC51541、B. avium ATCC35086の6菌種(計17株)を供試した。百日咳菌はB. pertussis 東浜株、山口株および国立感染症研究所保存菌株(BP256〜260、BP289〜290)の9株、パラ百日咳菌はB. parapertussis ATCC15237, ATCC15311, BAA-587および保存菌株(BPP01)の4株を使用した。
Strain
For confirmation of LAMP primer specificity, Bordetella pertussis, B. parapertussis, B. bronchiseptica R05, B. hinzii ATCC51730, B. holmesii ATCC51541, B. avium ATCC35086 Six bacterial species (a total of 17 strains) were tested. Bordetella pertussis has 9 strains of B. pertussis Higashihama strain, Yamaguchi strain and National Institute of Infectious Diseases (BP256-260, BP289-290). 4 strains of BPP01) were used.

DNA調製
Bordetella属細菌はBordet-Gengou寒天培地で36℃、1〜2日間培養した後、菌体からDNAを抽出・精製した。精製には市販のQiagen genomic tip 20/G(Qiagen社)を使用し、得られたDNAの濃度は波長260 nmの吸光度から求めた。
尚、本実施例では、LAMPプライマーの特異性と感度を評価するためには精製DNAを必要とするため、上記は、その評価に用いるDNAの調製法を示す。しかし、実際の検査(例えば、臨床検体)では、菌培養はせず、直接検体からDNAを抽出することができる。
DNA preparation
Bordetella bacteria were cultured on Bordet-Gengou agar medium at 36 ° C. for 1-2 days, and then DNA was extracted and purified from the cells. Commercially available Qiagen genomic tip 20 / G (Qiagen) was used for purification, and the concentration of the obtained DNA was determined from the absorbance at a wavelength of 260 nm.
In this example, purified DNA is required to evaluate the specificity and sensitivity of the LAMP primer, so the above shows the method for preparing the DNA used for the evaluation. However, in actual tests (for example, clinical specimens), DNA can be extracted directly from the specimen without culturing the bacteria.

PCR
LAMPプライマーセットの感度と特異性は、既存のPCR法(PTp1/p2-PCR, IS481-PCR)と比較することにより実施した。PTp1/p2-PCRはHouardら(Houard et al., Res Microbiol, 140: 477-487, 1989)の方法に従い、IS481-PCRはDragstedら(Dragsted et al., J Med Microbiol, 53: 749-754, 2004)の方法に従った。遺伝子増幅の有無は、PCR産物を3%アガロースゲル電気泳動で分離後、エチジウムブロマイド染色により確認した。
PCR
The sensitivity and specificity of the LAMP primer set was carried out by comparing with existing PCR methods (PTp1 / p2-PCR, IS481-PCR). PTp1 / p2-PCR follows the method of Houard et al (Houard et al., Res Microbiol, 140: 477-487, 1989), and IS481-PCR is Dragsted et al (Dragsted et al., J Med Microbiol, 53: 749-754). , 2004). The presence or absence of gene amplification was confirmed by ethidium bromide staining after separating PCR products by 3% agarose gel electrophoresis.

LAMPプライマーの設計
百日咳菌の百日咳毒素プロモーター配列には他のBordetella属細菌と異なる配列が存在することから、同配列に対しLAMPプライマーの設計を行なった(図1)。設計にはLAMP法プライマー設計支援ソフト(Primer Explorer Ver.3、栄研化学)を使用し、設計されたプライマーセットの中から候補となる7種のプライマーセット(ID1〜7)を選択した。予備実験においてプライマーセットID2が最も高い感度を示したことから、特異性評価はプライマーセットID2についてのみ実施した。なお、プライマー合成は北海道システム・サイエンス社に依頼し、HPLC精製グレードのプライマーを使用した。
Design of LAMP primer Since a pertussis toxin promoter sequence of Bordetella pertussis has a sequence different from other Bordetella bacteria, a LAMP primer was designed for the same sequence (FIG. 1). For design, LAMP primer design support software (Primer Explorer Ver.3, Eiken Chemical) was used, and 7 candidate primer sets (ID1 to 7) were selected from the designed primer sets. Since primer set ID2 showed the highest sensitivity in preliminary experiments, specificity evaluation was performed only for primer set ID2. Primer synthesis was requested from Hokkaido System Science Co., Ltd., and HPLC purification grade primers were used.

図1にBordetella属細菌の百日咳毒素プロモーター配列の比較を示す。百日咳菌(B. pertussis)(配列番号7)、気管支敗血症菌(B. bronchiseptica)(配列番号8)、パラ百日咳菌(B. parapertussis)(配列番号9)の百日咳毒素プロモーター配列を比較した。図1に示す配列中の塩基番号-186〜-177において、百日咳菌と気管支敗血症菌には遺伝子の欠損が認められる。さらに、その配列周辺には百日咳菌と気管支敗血症菌との間に異なる塩基の存在が確認される。この配列比較から、同領域に対しLAMP法プライマーの設計を行なった。なお、coding regionは百日咳毒素S1サブユニットの翻訳領域を示す。   FIG. 1 shows a comparison of Bordetella bacteria pertussis toxin promoter sequences. The pertussis toxin promoter sequences of B. pertussis (SEQ ID NO: 7), B. bronchiseptica (SEQ ID NO: 8), and B. parapertussis (SEQ ID NO: 9) were compared. At base numbers -186 to -177 in the sequence shown in FIG. 1, deletion of the gene is observed in Bordetella pertussis and Bacterial sepsis. Furthermore, the presence of different bases is confirmed between the pertussis and bronchial septic bacteria around the sequence. From this sequence comparison, a LAMP primer was designed for the same region. The coding region indicates the translation region of pertussis toxin S1 subunit.

LAMP検出系
Loopamp DNA増幅試薬キット(栄研化学)を用いて、LAMPプライマーセットの検出感度と特異性を評価した。LAMP検出系は反応液25 μl中に、0.2 μM の各outer primer (BP-F3, BP-B3)、1.6 μMの各inner primer (BP-FIP, BP-BIP)、0.8 μMの各loop primer (BP-LF, BP-LB)、1 μlのBst-DNA polymerase、12.5 μlの2×反応液、1 μlのDNA溶液を含み、65℃で1時間反応させた。その後、80℃で2分間の反応停止処理を行なった。反応チューブにはLoopamp反応チューブ(栄研化学)を使用し、遺伝子増幅に伴う濁度の増加はリアルタイム測定装置(Loomamp LA-320C、栄研化学)を用いて測定した。また、遺伝子の増幅は2%アガロースゲル電気泳動によっても確認を行なった。表1にLAMP検出系の反応組成を示す。
LAMP detection system
The detection sensitivity and specificity of the LAMP primer set were evaluated using Loopamp DNA amplification reagent kit (Eiken Chemical). The LAMP detection system was prepared in 25 μl of reaction solution with 0.2 μM of each outer primer (BP-F3, BP-B3), 1.6 μM of each inner primer (BP-FIP, BP-BIP), 0.8 μM of each loop primer ( BP-LF, BP-LB), 1 μl of Bst-DNA polymerase, 12.5 μl of 2 × reaction solution, and 1 μl of DNA solution were reacted at 65 ° C. for 1 hour. Then, the reaction stop process for 2 minutes was performed at 80 degreeC. A Loopamp reaction tube (Eiken Chemical) was used as the reaction tube, and the increase in turbidity associated with gene amplification was measured using a real-time measurement device (Loomamp LA-320C, Eiken Chemical). The amplification of the gene was also confirmed by 2% agarose gel electrophoresis. Table 1 shows the reaction composition of the LAMP detection system.

図3にプライマーセットID2を用いたLAMP検出系の感度の結果を示す。精製百日咳菌DNAを連続希釈し、LAMP検出系の検出限界を測定した。A)は遺伝子の増幅反応によって生じる濁度の増加曲線である。リアルタイム測定装置(Loopamp LA-320C、栄研化学)を用いて濁度の増加を測定した。B)は反応60分後の増幅産物をアガロースゲル電気泳動で解析した結果である。   FIG. 3 shows the results of the sensitivity of the LAMP detection system using primer set ID2. Purified Bordetella pertussis DNA was serially diluted and the detection limit of the LAMP detection system was measured. A) is an increase curve of turbidity caused by gene amplification reaction. The increase in turbidity was measured using a real-time measuring device (Loopamp LA-320C, Eiken Chemical). B) shows the result of analyzing the amplification product after 60 minutes of reaction by agarose gel electrophoresis.

表2に、プライマーセットID2を用いたLAMP法とPCR法との感度の比較を示す。精製百日咳菌DNAを用いて、既存のPCR法(PTp1/p2-PCR、IS481-PCR)との感度比較を行なった。LAMP法、PTp1/p2-PCR、IS481-PCRの検出限界はそれぞれ10、1×105、1,000 fg/tubeを示した。 Table 2 shows a comparison of sensitivity between the LAMP method using the primer set ID2 and the PCR method. Sensitivity comparison with the existing PCR method (PTp1 / p2-PCR, IS481-PCR) was performed using purified Bordetella pertussis DNA. The detection limits of LAMP method, PTp1 / p2-PCR, and IS481-PCR were 10, 1 × 10 5 , and 1,000 fg / tube, respectively.

表3にBordetella属細菌に対するLAMP検出系の特異性試験結果を示す。百日咳菌と他のBordetella属細菌(5菌種、8株)に対する特異性を検討した。LAMP法とPTp1/p2-PCRはすべての百日咳菌を検出し、他のBordetella属細菌を検出しないことが示された。一方、IS481-PCRは一部のパラ百日咳菌とB. holmesiiを検出することが示された。なお、B. holmesiiがIS481遺伝子を持つことはすでに報告されているが、IS481を持つパラ百日咳菌の存在が確認されたのは本臨床株が初めてである。
Table 3 shows the results of the specificity test of the LAMP detection system for Bordetella bacteria. Specificity against Bordetella pertussis and other Bordetella bacteria (5 species, 8 strains) was examined. LAMP and PTp1 / p2-PCR were shown to detect all Bordetella pertussis and not other Bordetella bacteria. On the other hand, IS481-PCR was shown to detect some parapertussis and B. holmesii. Although it has already been reported that B. holmesii has the IS481 gene, this clinical strain is the first to confirm the presence of Parapertussis with IS481.

本発明によるプライマーセットを用いたLAMP検出系は、百日咳感染症の体外診断薬としての実用化が期待できる。   The LAMP detection system using the primer set according to the present invention can be expected to be put into practical use as an in vitro diagnostic agent for pertussis infection.

Bordetella属細菌の百日咳毒素プロモーター配列の比較。Comparison of pertussis toxin promoter sequences of Bordetella bacteria. 百日咳菌の百日咳毒素プロモーター配列に対する本発明のプライマーセットID2の設計位置を示す。LFcとLBはloop プライマーを示し、LAMP法による増幅領域はF2からB2cである。The design position of primer set ID2 of the present invention relative to the pertussis toxin promoter sequence of Bordetella pertussis is shown. LFc and LB indicate loop primers, and the amplification region by LAMP method is from F2 to B2c. プライマーセットID2を用いたLAMP検出系の感度試験結果。Sensitivity test result of LAMP detection system using primer set ID2.

Claims (4)

百日咳菌遺伝子の少なくとも一部をLAMP法により増幅し得るプライマーセットを用意し、検体からDNAを抽出し、抽出したDNAを、前記プライマーセットを用いるLAMP法による増幅操作に供し、増幅操作後に、産物中に、増幅されたDNAが含まれるか否かを確認する、ことを含む検体中に含まれる百日咳菌遺伝子を検出する方法であって、
前記プライマーセットとして、配列表に示された配列番号1〜4の塩基配列からなる4つのプライマーと配列表に示された配列番号5〜6の塩基配列からなる2つのループプライマーを用いる、前記方法
Prepare a primer set that can amplify at least part of the Bordetella pertussis gene by LAMP method, extract DNA from the sample, use the extracted DNA for amplification operation by LAMP method using the primer set, A method for detecting a Bordetella pertussis gene contained in a specimen comprising: confirming whether or not the amplified DNA is contained therein ,
The method, wherein four primers comprising the base sequences of SEQ ID NOs: 1 to 4 shown in the sequence table and two loop primers comprising the base sequences of SEQ ID NOs: 5 to 6 shown in the sequence table are used as the primer set .
増幅産物中に増幅されたDNAが含まれるか否かを、増幅産物の濁度を測定することで確認するか、または蛍光色素を用いて確認する請求項1に記載の方法。 2. The method according to claim 1, wherein whether or not the amplified product contains amplified DNA is confirmed by measuring the turbidity of the amplified product or using a fluorescent dye. 検体中の菌体に含まれる百日咳菌遺伝子をLAMP法により検出するために用いられる、配列表に示された配列番号1〜4の塩基配列からなる4つのプライマー及び配列表に示された配列番号5〜6の塩基配列からなる2つのループプライマーを含むプライマーセット。 Four primers consisting of the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 1 to 4 shown in the sequence table and SEQ ID NOs: shown in the sequence table, which are used for detecting the Bordetella pertussis gene contained in the bacterial cells in the specimen by the LAMP method A primer set comprising two loop primers consisting of 5 to 6 nucleotide sequences. 請求項に記載のプライマーセットを含む、検体中に含まれる百日咳菌遺伝子をLAMP法により検出するためのキット。 A kit for detecting a Bordetella pertussis gene contained in a specimen by the LAMP method, comprising the primer set according to claim 3 .
JP2005321768A 2005-11-07 2005-11-07 Bordetella pertussis gene detection method using LAMP method and primer set used in this method Active JP4806749B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2005321768A JP4806749B2 (en) 2005-11-07 2005-11-07 Bordetella pertussis gene detection method using LAMP method and primer set used in this method

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2005321768A JP4806749B2 (en) 2005-11-07 2005-11-07 Bordetella pertussis gene detection method using LAMP method and primer set used in this method

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2007124970A JP2007124970A (en) 2007-05-24
JP4806749B2 true JP4806749B2 (en) 2011-11-02

Family

ID=38148174

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2005321768A Active JP4806749B2 (en) 2005-11-07 2005-11-07 Bordetella pertussis gene detection method using LAMP method and primer set used in this method

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP4806749B2 (en)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP6277603B2 (en) * 2013-05-29 2018-02-14 東洋紡株式会社 Detection method of Bordetella pertussis
CN107828910A (en) * 2017-11-21 2018-03-23 弗罗朗(江苏)生物科技有限公司 A kind of kit and its application method of quick single-minded detection Bordetella pertussis
JP7176682B2 (en) 2018-02-22 2022-11-22 佐藤製薬株式会社 A primer set for detecting a trichophyton gene by the LAMP method, a kit containing the same, and a method for detecting trichophyton using them
CN111088392B (en) * 2020-03-05 2022-11-22 福建省农业科学院植物保护研究所 LAMP (loop-mediated isothermal amplification) detection primer for detecting peanut black rot and detection method thereof

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6261785B1 (en) * 2000-07-27 2001-07-17 Becton, Dickinson And Company Amplification and detection of Bordetella pertussis
JP2003199572A (en) * 2001-12-28 2003-07-15 Eiken Chem Co Ltd Primer for detection of salmonella and detection method using the same
JP2003219878A (en) * 2002-01-25 2003-08-05 Eiken Chem Co Ltd Primer for detection of legionella and detection method using the same
JP4359699B2 (en) * 2003-06-25 2009-11-04 学校法人日本大学 Method for detecting carious bacteria and primer set used in the method

Also Published As

Publication number Publication date
JP2007124970A (en) 2007-05-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Dubosson et al. Development of two real-time PCR assays for the detection of Mycoplasma hyopneumoniae in clinical samples
Schluger et al. Clinical utility of the polymerase chain reaction in the diagnosis of infections due to Mycobacterium tuberculosis
JP2013520186A (en) Assays and kits for serotyping of Pseudomonas aeruginosa and oligonucleotide sequences useful in such methods and kits
JP5076894B2 (en) Primer and probe for detecting mycobacterium kansasi, and method for detecting mycobacterium kansasi using the same
JPWO2007129628A1 (en) Primer and probe for detecting Mycobacterium intracellulare, and method for detecting Mycobacterium intracellulare using the same
WO2014157176A1 (en) Genotype classification method for bacterium of genus acinetobacter and primer set to be used therein
JP4806749B2 (en) Bordetella pertussis gene detection method using LAMP method and primer set used in this method
CN109337995B (en) PCR detection method and kit for eubacterium terrae and subspecies thereof
JP5961171B2 (en) Method for detecting toxin-producing Clostridium difficile
RU2715333C1 (en) Kit of reagents for detection and identification of dna of brucellosis agents by real-time polymerase chain reaction om-screen-brucellosis-rv
KR101765677B1 (en) Primer set for detection of mycobacterium tuberculosis and non-Tuberculosis mycobacteria and use thereof
Sedaghat et al. Status of pertussis in iran
JP6387500B2 (en) E. coli genotyping method and primer set used therefor
KR102274011B1 (en) Primer set for high sensitive multiplex loop-mediated isothermal amplification reaction for detection and identification of Mycobacterium tuberculosis and Nontuberculous mycobacteria
NL2024510B1 (en) Multiplex real-time fluorescence pcr detection primer composition and detection method for identifying streptococcus suis and swine pasteurella multocida
WO2020170823A1 (en) Broad-spectrum method for determining shigella o-serogroup using pcr method
Otsuka et al. Simple and specific detection of Bordetella holmesii by using a loop‐mediated isothermal amplification assay
JP4876223B2 (en) Diphtheria toxin gene detection method using LAMP method and primer set used in this method
CN111778343A (en) Primer pair and kit for detecting Brucella S2 vaccine strain and application of primer pair and kit
CN113512598A (en) Real-time fluorescent nucleic acid isothermal amplification detection kit for bordetella pertussis, and special primer and probe thereof
KR102557450B1 (en) Composition for detecting Salmonella spp. based on CRISPR-Cas, and Salmonella spp. detection method using the same
WO2008140832A2 (en) Method for rapid detection of clostridium botulinum
Ji et al. A real-time PCR assay based on a specific mutation of PstS1 gene for detection of M. bovis strains
JP2016000013A (en) Methods for detecting escherichia coli and carriers for detecting e. coli
EP3382040A2 (en) Genetic markers for diagnosis of tuberculosis caused by mycobacterium tuberculosis

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20080929

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20110426

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20110606

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20110628

A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20110630

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 4806749

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

S533 Written request for registration of change of name

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313533

S111 Request for change of ownership or part of ownership

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313113

R370 Written measure of declining of transfer procedure

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R370

R371 Transfer withdrawn

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R371

S531 Written request for registration of change of domicile

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313531

S533 Written request for registration of change of name

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313533

R350 Written notification of registration of transfer

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350

S111 Request for change of ownership or part of ownership

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313113

R350 Written notification of registration of transfer

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350