JP4701352B2 - 生物種の検出方法、それに用いるマイクロアレイ及び生物種検出用キット - Google Patents
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Description
Nucleic Acids Research, Vol. 30, No. 15 3481−3489)等が挙げられる。プローブ設計における一般的な好ましい要件としては、例えば、GC含量(例えば、50%)、長さ(例えば、40〜80nt)、ヘアピン構造をとらないこと、同じ塩基、A+T、又はG+Cが連続して5つ以上並ばないこと、NCBI−BLAST等の相同性検索で、同一又は90%、92.5%若しくは95%以上の相同性を示すヒットがないこと、ミスマッチがプローブ中心部に近いこと、センス鎖の配列であること、遺伝子の末端部分であること、同時に検出する生物種が複数種類ある場合には、少なくともそれらの生物種間でクロスハイブリダイゼーションしないこと等が挙げられる。検出対象生物種がバクテリアである場合には、前記検出用プローブは、例えば、16SrDNAやITS領域に由来する配列を利用することができる。ここで記述するITS領域とは、バクテリアゲノムの16SリボゾーマルDNAと23SリボゾーマルDNAとの間の転写を受ける領域(Internal Trancscribed Spacer)のことである。バクテリアのリボゾーマルRNA(rRNA)である16SrRNA、23SrRNA及び5SrRNAは、通常、1つの転写単位(オペロン)として転写されるため、16SrRNA遺伝子と23SrRNA遺伝子は隣り合ってゲノム上に配置されている。この16SrRNA遺伝子と23SrRNA遺伝子との間の領域が、16S−23S Internal Transcribed Spacer(ITS)と呼ばれる領域である。
まず、マイクロアレイ準備工程において、1種類又は複数種類の検出対象生物種に対する検出用プローブ、及び、必要に応じて前記内部標準プローブが基板上に配置されたマイクロアレイを準備する。前記検出用プローブ及び内部標準プローブの調製方法、種類、スポット数は、前述のとおりである。前記マイクロアレイは、本発明の生物種の検出方法を行う前に製造してもよく、又は、本発明のマイクロアレイ若しくは本発明の生物種検出用キットに含まれるマイクロアレイを使用してもよい。
つぎに、ターゲット準備工程において、被検試料中の核酸から、第1の標識化合物で標識された検出用ターゲットを準備する。また、必要に応じて、第1の標識化合物で標識された内部標準ターゲットを準備する。これらのターゲットの調製方法は、前述のとおりである。前記被検試料中に検出対象以外の生物種であって、検出対象生物種の検出用プローブと同一又は相同性が高い配列を有する生物種が存在し、この配列が検出用ターゲットとして調製されると、クロスハイブリダイゼーションによる偽陽性のシグナルの原因となる。本発明の生物種の検出方法では、前記クロスハイブリダイゼーション及び偽陽性は、後述する競合ハイブリダイゼーション工程及び判定工程により、抑制し除外することができる。
前記ターゲット準備工程と同時又は別個に、検出対象生物種の標準試料から、第2の標識化合物で標識された検出用リファレンスを準備する。また、必要に応じて、第2の標識化合物で標識された内部標準リファレンスを準備する。これらリファレンスの調製方法は、ターゲットの調製方法と同様であることが好ましい。前記標準試料は、前述のとおり、既知数の検出対象生物種の細胞、又は、それから得られる核酸であることが好ましい。
つぎに、前記3つの準備工程で準備した前記検出用ターゲット及びリファレンス、並びに、必要に応じて前記内部標準ターゲット及びリファレンスを混合し、この混合物を前記マイクロアレイにハイブリダイズし、各スポットについて第1及び第2の標識シグナルをそれぞれ測定する。前記混合物に含まれるターゲット及びリファレンスは、それらの濃度に比例して各スポットにハイブリダイズし、各スポットにおけるターゲットとリファレンスの標識シグナルの分布は、正の相関関係を示し、また、その標識シグナルのターゲット/リファレンス比は、一定値を示すこととなる。この関係を利用して、後述するとおり、相関分析等により、偽陽性の排除及び検出対象生物種の定量が可能となる。なお、前述の内部標準を利用する場合には、内部標準ターゲット及びリファレンスは、等量使用することが好ましい。等量であれば、標識シグナルの補正値を算出しやすいからである。
最後に、判定工程により、検出対象生物種の検出を行う。すなわち、前記検出用ターゲット及び前記検出用リファレンスの標識シグナルの分布について相関関係を評価するために、相関係数rの算出及び検定を行い、所定の有意水準で相関が肯定され、かつ、前記相関係数rの値が所定の値を超える場合に陽性と判定し、それ以外の場合に偽陽性と判定し、陽性であれば、前記検出対象生物種が検出されたとする。前記判定工程は、具体的には、以下のとおりに行うことができる。
前記判定工程で陽性であると判定され検出された生物種については、以下のようにして定量することができる。まず、縦軸に検出用ターゲット標識シグナルをとり横軸に検出用リファレンス標識シグナルをとったスキャタープロットの回帰直線の傾きである回帰係数bを算出する。次に、前記回帰係数bに検出用リファレンスの濃度を乗じて検出用ターゲットの濃度を得て、最後に、被検試料における検出対象生物の存在量を算出する。従来、マイクロアレイとPCR法とを用いる方法は、PCR法におけるプラトー効果等の理由により、定量性に欠けるという問題点があった。しかし、本発明者らは、LATE−PCR法であれば、最終増幅産物を用いて競合ハイブリダイゼーションしても、濃度の比率が保たれることを見出した。その一例を図1に示す。図1は、横軸に示す様々な細胞数に相当する標準試料DNAから調製したターゲットと、一定量の標準試料DNAから調製したリファレンスとを用いて競合ハイブリダイゼーションを行った場合の標識シグナル比(ターゲット/リファレンス比)を縦軸にとった対数グラフである。同図に示すとおり、LATE−PCR法を用いれば、ターゲット調製に用いた試料中の細胞数と、ターゲット/リファレンス比が比例関係となる。したがって、前記回帰係数bとリファレンスの標準試料の濃度から、ターゲットの試料濃度、すなわち、被検試料中の検出対象生物の存在量が定量できる。例えば、回帰係数bが2の場合、検出用ターゲットに用いた被検試料中には、検出用リファレンスに用いた標準試料の2倍に相当する検出生物種が存在することがわかる。この定量工程を行う場合には、前述したように、内部標準プローブを用いて、第1及び第2標識シグナルの補正を行うことが好ましい。
A:デハロスピリルム マルチヴォボランス(Dehalospirillum multivorans)
B:デスルフィトバクテリウム フラピエリ(Desulfitobacterium frappieri)
C:アクチノマイセタレス Sm−1(ロドコッカス sp. Sm−1)(Actinomycetales Sm−1 (Rhodococcus sp. Sm−1))
D:ロドコッカス ロドコッカス(Rhodococcus rhodococcus)
E:キサントバクター フラバス(Xanthobacter flavus)
F:マイコバクテリウム L1(Mycobacterium L1)
G:デスルフォミクロビウム ノルベギカム(デスルフォヴィブリオ バキュラタス)(Desulfomicrobium norvegicum(Desulfovibrio baculatus))
H:デスルフィトバクテリウム デハロゲナンス(Desulfitobacterium dehalogenans)
I:デスルフィトバクテリウム ハフニエンス(Desulfitobacterium hafniense)
J:クロストリジウム フォルミコアセチカム(Clostridium formicoaceticum)
K:デスルフロノナス クロロエテニカ(Desulfuromonas chloroethenica)
L:アセトバクテリウム ウッディ DSM 1030(Acetobacterium woodii DSM 1030)
M:デハロバクター レストリクタス(Dehalobacter restrictus)
N:デスルフィトバクテリウム sp. PCE1(Desulfitobacterium sp. strain PCE1)
O:デスルフィトバクテリウム フラピエリ TCE1(Desulfitobacterium frappieri TCE1)
P:アセトバクテリウム ウッディ DSM 2396(Acetobacterium woodii DSM 2396)
Q:デスルフォモニル タイドジェイ DCB−1(Desulfomonile tiedjei DCB−1)
R:クロストリジウム バイファメンタンス DPH−1(Clostridium bifermentans DPH−1)
S:クロストリジウム sp. KYT−1(Clostridium sp. KYT−1)
T:クロストリジウム sp. DC−1(Clostridium sp. DC−1)
前記AからQのバクテリアは、以下に示す生物資源保存機関であるATCC又はDSMZの寄託番号が付されており、該当機関から入手することができる。
A: DSM12446 B: DSM13498 C:ATCC51239
D:ATCC21197 E: DSM10330 F: DSM 6695
G: DSM 1741 H: DSM 9161 I: DSM10644
J:ATCC27076 K: DSM12431 L: DSM 1030
M: DSM 9455 N: DSM10344 O: DSM12704
P: DSM 2396 Q:ATCC49306
PCEは、脱塩素化され、TCE、ジクロロエチレン(DCE)、ビニルクロライド(VC)となり、最終的に、エテン又は二酸化炭素に分解される。図2に、一般的なPCEの分解経路と、前記A〜TのバクテリアのPCE及び脱塩素化物に対する分解活性を示す。被検試料中の前記バクテリアを検出できれば、例えば、前記試料環境の汚染物質分解能力を知ることができ、効率的なバイオレメディエーションが可能となる。
(1)配列番号nの塩基配列からなるポリヌクレオチド。
(2)配列番号nの塩基配列の1個から数個の塩基が、欠失、置換もしくは付加された塩基配列からなるポリヌクレオチドであって、配列番号nの塩基配列からなるポリヌクレオチドと相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチド。
(3)配列番号nの塩基配列の1個から数個の塩基が、欠失、置換もしくは付加された塩基配列からなるポリヌクレオチドであって、前記(1)のポリヌクレオチドとの相同性が90%以上であるポリヌクレオチド。
(4)前記(1)から(3)のポリヌクレオチドの塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチド。
1.検出用プローブの作製
前記A〜Tのバクテリアを検出対象生物種として、それらのITS領域から、40塩基からなる複数の検出用プローブをデザインした。前記検出用プローブのデザインは、40塩基、GC含有量48−50%の一本鎖であり、相同性が無いか又はほとんどなく、国際データベースGenBankでヒットがない(あっても2以上のミスペア)ことを基準として行った。以下に、作製した生物種検出用DNAプローブ(各バクテリアにつきそれぞれ3〜10種類)の塩基配列の配列番号(配列番号1〜87)を示す。なお、各プローブのC末端には、C6アミノ化を施した。
次に、前記102種類の検出用プローブを、Affymetrix 417 Arrayer(Affymetrix社製)により、Takara Hubble Slide(Takara社製)に、それぞれ、3個づつカスタムプリントしてマイクロアレイを作製した。また、各バクテリアの標準試料ごとに検出用ターゲットを調製するとともに、全バクテリアを含む標準試料から検出用ターゲットを調製した。
次に、バクテリアA及びEの標準試料から調製した検出用ターゲットと、バクテリアA〜Pの16種類の標準試料から調製した検出用リファレンスとを混合し、競合ハイブリダイゼーションを行った。ターゲットやリファレンスの調製方法及びハイブリダイゼーションの条件は、上述と同様とした。その結果得られたターゲットのCy5シグナル強度及びリファレンスのCy3シグナル強度を、それぞれ、縦軸及び横軸にとったスキャタープロットを図4Aに示す。なお、同図における直線は、回帰直線である。同図に示すとおり、バクテリアA及びEについて強いターゲットシグナルが観察された。バクテリアA及びEについて、相関分析及び回帰分析を行った結果を下記表1に示す。下記表1に示すとおり、バクテリアA及びEともに、有意水準1%でターゲットとリファレンスとの相関が認められ、かつ、相関係数rが0.90を超える強い相関を示した。また、図4B及び下記表1に示すとおり、ターゲット/リファレンス比を表す回帰係数b(回帰直線の傾き)は、バクテリアAでは14.9であり、バクテリアEでは4.4であったことから、前記ターゲットの調製に用いたバクテリアA及びEの量は、それぞれ、前記リファレンスの14.9倍及び4.4倍であったことが分かった。
配列番号104 PCR用アンチセンスプライマー
Claims (10)
- 被検試料中の1又は複数の生物種を検出する方法であって、
検出対象生物種1種類につき特異的検出用プローブが3種類以上、かつ、前記各特異的検出用プローブにつき3個以上のスポットが配置されたマイクロアレイを準備するマイクロアレイ準備工程と、
前記被検試料中の核酸から、第1の標識化合物で標識された検出用ターゲットを準備するターゲット準備工程と、
1又は複数の前記検出対象生物種の標準試料から、第2の標識化合物で標識された検出用リファレンスを準備するリファレンス準備工程と、
前記ターゲットと前記リファレンスとを混合して前記マイクロアレイにハイブリダイズし、前記スポットにおける第1及び第2の標識化合物の標識シグナルをそれぞれ測定する競合ハイブリダイゼーション工程と、
1つの検出対象生物種に対する特異的検出用プローブが配置された9個以上のスポットにおける前記2つの標識シグナルの相関関係について、相関係数rの算出及び検定を行い、所定の有意水準で相関が肯定され、かつ、前記相関係数rの値が所定の値を超える場合に前記検出対象生物種の検出を陽性と判定し、それ以外の場合を偽陽性と判定する判定工程とを含み、
前記ターゲット準備工程及び前記リファレンス準備工程におけるターゲット及びリファレンスの調製が、アシンメトリックPCR法又はLATE−PCR法により行われる、生物種の検出方法。 - さらに、前記被検試料における検出対象生物種の存在量を算出する定量工程を含み、
前記定量工程が、前記スポットにおける前記2つの標識シグナルの回帰直線の傾き(回帰係数)bを算出することを含む請求項1に記載の生物種の検出方法。 - 前記マイクロアレイ準備工程、ターゲット準備工程及びリファレンス準備工程が、それぞれ、内部標準プローブのスポットを配置すること、第1の標識化合物で標識された内部標準ターゲットを調製すること、及び第2の標識化合物で標識された内部標準リファレンスを調製することを含み、前記判定工程が、検出用ターゲット標識シグナル及び検出用リファレンス標識シグナルを、前記内部標準のシグナルに基づいて修正することを含む請求項1又は2に記載の生物種の検出方法。
- 前記判定工程における所定の有意水準が、20%〜0.1%の範囲であり、前記相関係数の所定の値が、0.80〜0.99の範囲である請求項1から3のいずれか1項に記載の生物種の検出方法。
- 検出対象生物種が、バクテリアであって、前記検出用プローブが、前記バクテリアのITS領域に由来する請求項1から4のいずれか1項に記載の生物種の検出方法。
- 被検試料が、テトラクロロエチレン(PCE)、トリクロロエチレン(TCE)及びこれらの脱ハロゲン化物からなる群から選択される有機塩素化合物で汚染された環境から採取された試料である請求項1から5のいずれか1項に記載の生物種の検出方法。
- 検出対象生物種が、下記AからTからなる群から選択される少なくとも1種を含むバクテリアである請求項1から6のいずれか1項に記載の生物種の検出方法。
A:デハロスピリルム マルチヴォボランス(Dehalospirillum multivorans)
B:デスルフィトバクテリウム フラピエリ(Desulfitobacterium frappieri)
C:アクチノマイセタレス Sm−1(ロドコッカス sp. Sm−1)(Actinomycetales Sm−1 (Rhodococcus sp. Sm−1))
D:ロドコッカス ロドコッカス(Rhodococcus rhodococcus)
E:キサントバクター フラバス(Xanthobacter flavus)
F:マイコバクテリウム L1(Mycobacterium L1)
G:デスルフォミクロビウム ノルベギカム(デスルフォヴィブリオ バキュラタス)(Desulfomicrobium norvegicum(Desulfovibrio baculatus))
H:デスルフィトバクテリウム デハロゲナンス(Desulfitobacterium dehalogenans)
I:デスルフィトバクテリウム ハフニエンス(Desulfitobacterium hafniense)
J:クロストリジウム フォルミコアセチカム(Clostridium formicoaceticum)
K:デスルフロノナス クロロエテニカ(Desulfuromonas chloroethenica)
L:アセトバクテリウム ウッディ DSM 1030(Acetobacterium woodii DSM 1030)
M:デハロバクター レストリクタス(Dehalobacter restrictus)
N:デスルフィトバクテリウム sp. PCE1(Desulfitobacterium sp. strain PCE1)
O:デスルフィトバクテリウム フラピエリ TCE1(Desulfitobacterium frappieri TCE1)
P:アセトバクテリウム ウッディ DSM 2396(Acetobacterium woodii DSM 2396)
Q:デスルフォモニル タイドジェイ DCB−1(Desulfomonile tiedjei DCB−1)
R:クロストリジウム バイファメンタンス DPH−1(Clostridium bifermentans DPH−1)
S:クロストリジウム sp. KYT−1(Clostridium sp. KYT−1)
T:クロストリジウム sp. DC−1(Clostridium sp. DC−1) - 請求項7に記載の生物種の検出方法であって、
前記バクテリアAの検出用プローブが、配列番号1〜7の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアBの検出用プローブが、配列番号8〜12の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアCの検出用プローブが、配列番号13〜17の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアDの検出用プローブが、配列番号18〜22の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアEの検出用プローブが、配列番号23〜27の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアFの検出用プローブが、配列番号28〜30の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアGの検出用プローブが、配列番号31〜35の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアHの検出用プローブが、配列番号36〜39の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアIの検出用プローブが、配列番号40〜44の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアJの検出用プローブが、配列番号45〜50の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアKの検出用プローブが、配列番号51〜56の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアLの検出用プローブが、配列番号57〜61の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアMの検出用プローブが、配列番号62〜68の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアNの検出用プローブが、配列番号69〜73の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアOの検出用プローブが、配列番号74〜78の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアPの検出用プローブが、配列番号79〜81の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアQの検出用プローブが、配列番号82〜87の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアRの検出用プローブが、配列番号88〜92の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアSの検出用プローブが、配列番号93〜97の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、前記バクテリアTの検出用プローブが、配列番号98〜102の塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチドからなる群から選択されるポリヌクレオチドを含むプローブであり、
ここで、「配列番号nの塩基配列からなるポリヌクレオチド、その相同ポリヌクレオチド及びそれらの相補ポリヌクレオチド」が、下記(1)〜(4)のポリヌクレオチドからなる、生物種の検出方法。
(1)配列番号nの塩基配列からなるポリヌクレオチド。
(2)配列番号nの塩基配列の1個から数個の塩基が、欠失、置換若しくは付加された塩基配列からなるポリヌクレオチドであって、配列番号nの塩基配列からなるポリヌクレオチドと相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチド。
(3)配列番号nの塩基配列の1個から数個の塩基が、欠失、置換若しくは付加された塩基配列からなるポリヌクレオチドであって、前記(1)のポリヌクレオチドとの相同性が90%以上であるポリヌクレオチド。
(4)前記(1)から(3)のポリヌクレオチドの塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチド。 - 請求項8記載の生物種の検出方法に用いるマイクロアレイであって、検出対象バクテリアが前記AからTからなる群から選択される少なくとも1種であり、検出対象バクテリア1種類につき前記検出用プローブが3種類以上、かつ、前記各検出用プローブにつき3個以上のスポットが配置されたマイクロアレイ。
- 請求項9に記載のマイクロアレイを含む請求項8記載の生物種の検出方法のための生物種検出用キット。
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