JP4108393B2

JP4108393B2 - Method for producing cell proliferating agent

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Publication number: JP4108393B2
Application number: JP2002205955A
Authority: JP
Inventors: 裕今堀; 佳孝大村
Original assignee: TRUMO KABUSHIKI KAISHA
Current assignee: TRUMO KABUSHIKI KAISHA
Priority date: 2002-07-15
Filing date: 2002-07-15
Publication date: 2008-06-25
Anticipated expiration: 2022-07-15
Also published as: JP2004041141A

Description

【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、全血に代表される、血小板および白血球を含有する被処理液から血小板および白血球を分離し、血小板および白血球から分泌させた血小板由来増殖因子および血管内皮増殖因子を含有する細胞増殖剤を得る、細胞増殖剤の製造方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
血小板は、血小板由来増殖因子（ＰｌａｔｅｌｅｔＤｅｒｉｖｅｄＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ：ＰＤＧＦ）、トランスフォーミング増殖因子（ＴｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ−β：ＴＧＦ−β）、血管内皮増殖因子（ＶａｓｃｕｌａｒＥｎｄｏｔｈｅｌｉａｌＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ：ＶＥＧＦ）、インシュリン様増殖因子（ＩｎｓｕｌｉｎｌｉｋｅＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ：ＩＧＦ）等の有用な物質を含有していることが知られている。
また、白血球（主に、単球（マクロファージ）、好中球）は、ＶＥＧＦ、αインターフェロン（α−Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ：αＩＦＮ）、ＴＧＦ−β、塩基性繊維芽細胞増殖因子（ｂａｓｉｃＦｉｂｒｏｂｌａｓｔＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ：ｂＦＧＦ）等の有用な物質を分泌、または含有していることが知られている。
【０００３】
創傷治癒過程においては、まず、受傷直後に血管破壊による出血を止めるために、血小板の粘着・凝集および因子放出反応が起こり、それにより、血液凝固反応が進行する。血小板の因子放出反応により放出された各種増殖因子は、走化因子として繊維芽細胞、白血球（特に、マクロファージ、好中球）等を創傷部位に浸潤させる。これとともに、主に血小板から分泌される血小板由来増殖因子が繊維芽細胞の増殖および繊維芽細胞によるマトリックス産生を刺激し、肉芽の形成が促進される。また、主に浸潤した白血球から分泌される血管内皮増殖因子は、血管内皮細胞の増殖を刺激し、その結果、血管新生が促進される。そして、この肉芽の形成と血管新生が機転になり、創傷の治癒へと転じる。
【０００４】
しかしながら、難治性潰瘍においては、創部の血流が少ないため、血小板および白血球の集積が非常に少なく、その結果、肉芽の形成および血管新生が認められず、治癒が遅延すると考えられている。それゆえに、治癒過程で働く血小板および白血球由来の因子を同時に補うことにより、難治性潰瘍においても、創傷治癒が促進されると推測される。
【０００５】
血小板由来因子の調製に関しては、特表平７−５０７５５８号公報に、血小板浮遊液をフィルターに通して、フィルター上に保持した血小板をトロンビン等で活性化させることにより、血小板由来因子を回収する方法が記載されているが、この方法により白血球由来因子を効率よく回収することは難しく、創傷の治癒に十分効果的なものを得ることはできない。
【０００６】
【発明の解決する課題】
本発明の目的は、例えば、全血血液のような、血小板および白血球を含有する被処理液から白血球および血小板をろ材に捕捉させた後、血小板および白血球から分泌させた血小板由来増殖因子および血管内皮増殖因子を含有する創傷の治癒等に有効に働く細胞増殖剤を得る、細胞増殖剤の製造方法を提供することである。
【０００７】
【課題を解決するための手段】
上記目的は以下に示す本発明（１）〜（５）により達成される。
【０００８】
（１）血小板および白血球を含有する被処理液を、アルコキシアルキル（メタ）アクリレートおよび／またはヒドロキシアルキル（メタ）アクリレートと、アルキルアミノアルキル（メタ）アクリレートとを構成単位として含有する共重合体を被覆して、表面のゼータ電位が１５〜３０ｍＶに調整されたポリエステル不織布からなるろ材に通して、前記被処理液中の前記血小板および前記白血球を前記ろ材に捕捉させる捕捉工程と、
前記ろ材に捕捉された前記血小板の活性化処理を行い、血小板由来増殖因子を分泌させる血小板活性化処理工程と、
前記血小板活性化処理工程の後または前に行われる、前記ろ材に捕捉された前記白血球のインキュベートを行い、血管内皮増殖因子を分泌させる白血球インキュベート工程と、
前記血小板由来増殖因子および前記血管内皮増殖因子を回収して細胞増殖剤を得る回収工程とを具備する、細胞増殖剤の製造方法。
【００１０】
（２）前記活性化処理が、生理食塩水または緩衝液からなる液体を前記血小板と接触させることにより刺激を与えることにより行われる上記（１）に記載の細胞増殖剤の製造方法。
【００１１】
（３）前記捕捉工程後に、洗浄液を前記ろ材に通して、前記ろ材に捕捉された前記血小板および白血球を洗浄する洗浄工程を具備する上記（１）または（２）のいずれかに記載の細胞増殖剤の製造方法。
【００１３】
【発明の実施の形態】
以下、本発明について詳細に説明する。
＜捕捉工程＞
捕捉工程は、血小板および白血球を含有する被処理液を捕捉しうるろ材に通す工程である。これにより、被処理液中の血小板および白血球がろ材に捕捉される。
【００１４】
本発明に用いられる被処理液は、ヒトまたは動物由来の血小板および白血球を含有する液であれば特に限定されないが、本発明により得られる細胞増殖剤を使用する者の自己の血小板および白血球を含有する液であるのが好ましい。自己の血小板および白血球を含有する液である場合には、微生物等による新たな感染の危険を低減することができ、安全に治癒を促進させることができる。
血小板および白血球を含有する被処理液としては、例えば、ＡＣＤ溶液、ＣＰＤ溶液、ヘパリン等の抗凝固剤を加えた血液；遠心分離法で調製したバフィーコート等の血小板および白血球の懸濁液；培養された血小板および白血球の懸濁液が挙げられる。
【００１５】
血小板および白血球を捕捉しうるろ材は、赤血球等の血球が通過できる連続した孔を有している。ろ材としては、多孔質膜、中空糸等を使用したものや、ハウジング内にビーズ、粉体等を充填したものを用いることができる。
ここで、多孔質膜とは、内部および表面に、外部に通じる連続した多数の小さい孔を有する膜のことである。多孔質膜としては、例えば、ポリウレタン、ポリビニルアルコール、ポリプロピレン、ポリエーテルポリアミド、ポリエチレンテレフタレート、ポリブチレンテレフタレート等の合成樹脂からなる、不織布、発泡体（連通孔を有するスポンジ状多孔質体）、織布、メッシュ等が挙げられる。中でも、不織布および発泡体が好ましい。多孔質膜として、前記合成樹脂からなる不織布または発泡体は、孔径の調整が容易であり、生産性に優れているという利点を有する。
【００１６】
ろ材は、血小板を活性化させずに捕捉しうるのが好ましい。血小板を活性化させないためには、ろ材は、表面のゼータ電位が１５〜３０ｍＶ程度であるのがより好ましく、１８〜２８ｍＶ程度であるのが更に好ましい。ろ材の表面のゼータ電位が上記範囲にあると、捕捉工程および洗浄工程において、血小板の活性化によるα顆粒中因子の放出を誘導することなく、ろ材に捕捉することが可能となる。なお、ろ材の表面のゼータ電位が低すぎると、ろ材の平均孔径等によっては、血小板の捕捉率を十分高くすることができない場合がある。一方、ろ材の表面のゼータ電位が高すぎると、ろ材の平均孔径等によっては、捕捉された血小板が活性化してしまうことがある。
【００１７】
ろ材の表面のゼータ電位の調整方法としては、例えば、以下の（１）〜（３）の方法が挙げられる。
（１）ろ材を構成した後、その表面をゼータ電位を調整可能な物質（例えば、アミノ基等のカチオン性官能基を有する物質）で後処理（例えば、被覆）する方法。
（２）ろ材の構成材料として、それ自体が上記範囲内のゼータ電位を有するものを使用する方法。具体的には、例えば、ナイロン等の陽性電荷を有する繊維を基材として用いて不織布ろ材を作製する方法が挙げられる。
（３）ろ材の構成材料中に、あらかじめゼータ電位を調整可能な物質を含有させまたは結合させておき、かかる材料を用いてろ材を形成する方法。具体的には、例えば、ポリエチレンテレフタレートをアミノ基等のカチオン性官能基を有する物質により共有結合等を用いて修飾して得られる繊維を基材として用いて不織布ろ材を作製する方法が挙げられる。
【００１８】
中でも、ろ材の表面のゼータ電位の調整方法としては、ろ材の表面を、ゼータ電位を調製可能な物質で被覆する方法が好ましい。この方法によれば、ろ材の構成材料の選択の幅を広げることができるとともに、ろ材の表面のゼータ電位を容易にかつ確実に調整することができる。
【００１９】
ゼータ電位を調整可能な物質としては、ろ材の表面のゼータ電位を上記範囲内に調整することができる物質であれば特に限定されず、例えば、アルコキシアルキル（メタ）アクリレートおよび／またはヒドロキシアルキル（メタ）アクリレートと、カチオン性官能基を有する物質であるアルキルアミノアルキル（メタ）アクリレートとを構成単位として含有する共重合体を用いるのが好ましい。この共重合体を用いると、付着量、モノマーの組成比等を適宜設定することにより、ろ材の表面のゼータ電位を容易に調整することができる。
【００２０】
アルコキシアルキル（メタ）アクリレートとしては、例えば、２−メトキシエチルアクリレート（ＭＥＡ）、２−メトキシエチルメタクリレート（ＭＥＭＡ）、が挙げられる。
ヒドロキシアルキル（メタ）アクリレートとしては、例えば、２−ヒドロキシエチルアクリレート（ＨＥＡ）、２−ヒドロキシエチルメタクリレート（ＨＥＭＡ）が挙げられる。
アルキルアミノアルキル（メタ）アクリレートとしては、例えば、２−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）エチルメタクリレート（ＤＭＡＥＭＡ）、２−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）エチルアクリレート（ＤＭＡＥＡ）、２−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）プロピルアクリレート（ＤＭＡＰＡ）、２−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）プロピルメタクリレート（ＤＭＡＰＭＡ）が挙げられる。
これらは単独で用いてもよく、２種以上を併用してもよい。
【００２１】
また、アルコキシアルキル（メタ）アクリレートおよび／またはヒドロキシアルキル（メタ）アクリレートとアルキルアミノアルキル（メタ）アクリレートとの組成比は、特に限定されないが、例えば、８５／１５〜５０／５０程度であるのが好ましく、８０／２０〜６０／４０程度であるのがより好ましい。各モノマーの組成比を上記範囲内とすると、血小板の捕捉率と、血小板の捕捉時における血小板の活性化の抑制効果とのいずれにも優れるろ材が得られる。
【００２２】
なお、アルキルアミノアルキル（メタ）アクリレートの含有割合が小さすぎると、ろ材の血小板の捕捉率を十分に高くすることができない場合がある。一方、アルキルアミノアルキル（メタ）アクリレートの含有割合が大きすぎると、ろ材の血小板の捕捉時における血小板の活性化の抑制効果を十分に高くすることができない場合がある。
【００２３】
ろ材の平均孔径は、特に限定されないが、例えば、３〜２０μｍ程度であるのが好ましい。ろ材の平均孔径が小さすぎる場合、目詰まりにより所定量の被処理液を処理できないことがある。一方、ろ材の平均孔径が大きすぎる場合、白血球および血小板の捕捉率が低下することがある。
【００２４】
ろ材は、流入側から流出側に向かって、孔径が小さくなるのが好ましい。即ち、ろ材の孔径に傾斜をつけるのが好ましい。特に、ろ材として、孔径が異なる２種以上のろ材を組み合わせて用い、流入側から流出側にいくに従って、孔径が小さくなるように配置するのが好ましい。例えば、孔径が大きいろ材を流入側に、孔径が小さいろ材を流出側に配置する。孔径が大きいろ材の平均孔径は、１０〜２０μｍ程度であるのが好ましく、１０〜１５μｍ程度であるのがより好ましい。孔径が小さいろ材の平均孔径は、３〜１５μｍ程度であるのが好ましく、３〜１０μｍ程度であるのがより好ましい。
【００２５】
ろ材の平均孔径を上記範囲内にするとともに、ろ材の孔径に傾斜を持たせることにより、白血球および血小板の流入口側での非特異的な捕捉による目詰まりを防ぎつつ、白血球および血小板の捕捉率を高くすることができる。
【００２６】
ろ材の平均厚さは、その構成材料、形態等により適宜設定され、特に限定されないが、多孔質膜の場合、例えば、０．０５〜５ｍｍ程度であるのが好ましく、０．１〜３ｍｍ程度であるのがより好ましい。ろ材の多孔質膜の設置数は、平均厚さにより適宜設定され、特に限定されないが、例えば、２〜１００枚程度であるのが好ましく、３〜８０枚程度であるのがより好ましい。
【００２７】
ろ材として孔径が大きいろ材と孔径が小さいろ材との２種を用いる場合においては、孔径が小さいろ材の見かけ体積がろ材全体の見かけ体積の５０％以下であるのが好ましく、３０％以下であるのがより好ましい。
【００２８】
捕捉工程においては、上述した被処理液を、上述したろ材に通す。これにより、被処理液中の血小板および白血球がろ材に捕捉される。また、ろ材に捕捉されない被処理液中の他の成分は、ろ材に捕捉されずに血小板および白血球と分離される。
【００２９】
具体的な実施形態の一例を図１を用いて説明する。
本発明に用いられるろ材を組み込んだ血小板・白血球捕捉フィルターの一例の構成を示す分解斜視図を図１に示す。図１においては、一部が断面で示されている。
図１に示されるように、血小板・白血球捕捉フィルター１０は、液体の流入口２１および流出口２２を有するハウジング２０と、それぞれハウジング２０内に設けられた、プレフィルター部材３１と、上述したろ材であるメインフィルター部材３２とを具備する。
【００３０】
プレフィルター部材３１は、本発明において、必須の構成要件ではないが、血球の流路となるメインフィルター部材３２の孔に、主に白血球による目詰まりが生じるのを防止（抑制）する機能を有するので、図１に示すように、ハウジング内で、メインフィルター部材３２よりも流入口２１側に配置されるのが好ましい。
プレフィルター部材３１は、赤血球等の血球が通過できる連続した孔を有しており、メインフィルター部材３２と同様に構成することができる。中でも、多孔質膜を用いるのが好ましく、複数の多孔質膜を積層したものを用いるのがより好ましい。
【００３１】
プレフィルター部材３１の表面ゼータ電位は、メインフィルター部材３２と同様に、１５〜３０ｍＶであるのがより好ましく、１８〜２８ｍＶであるのが更に好ましい。
【００３２】
プレフィルター部材３１の平均孔径は、メインフィルター部材３２の平均孔径より大きく設定されるのが好ましい。具体的には、３０〜１００μｍ程度であるのが好ましく、５０〜８０μｍ程度であるのがより好ましい。
プレフィルター部材３１の平均厚さは、その構成材料、形態等により適宜設定され、特に限定されないが、多孔質膜の場合、例えば、０．０５〜５ｍｍ程度であるのが好ましく、０．１〜３ｍｍ程度であるのがより好ましい。プレフィルター部材３１の多孔質膜の設置数としては、平均厚さにより適宜設定され、特に限定されないが、例えば、１〜３０枚程度であるのが好ましく、２〜１０枚程度であるのがより好ましい。
【００３３】
血小板・白血球捕捉フィルター１０においては、その全体に対するメインフィルター部材３２の占める体積率が、５０％以上程度であるのが好ましく、７０％以上程度であるのがより好ましい。メインフィルター部材３２の占める体積率が、上記範囲内であると、メインフィルター部材３２とプレフィルター部材３１とが、それぞれの機能を十分に発揮することができる。
【００３４】
ハウジング２０は、流入口２１および流出口２２を有し、内部にメインフィルター部材３２を儲けることができ、後述する被処理液を流入口２１から導入し、メインフィルター部材３２を通して、流出口２２から排出させることができるものであればよく、従来公知のハウジングを用いることができる。流入口２１および流出口２２の形状等も従来公知の構成とすることができる。
【００３５】
捕捉工程は、上述した被処理液を、血小板・白血球捕捉フィルター１０の流入口２１から導入してメインフィルター部材３２に通すことにより行われる。これにより、被処理液中の血小板および白血球がメインフィルター部材３２に捕捉される。また、メインフィルター部材３２に捕捉されない被処理液中の他の成分は、血小板および白血球と分離され、流出口２２から排出される。
【００３６】
＜洗浄工程＞
上記捕捉工程後には、洗浄液をろ材に通して、ろ材に捕捉された血小板および白血球を洗浄する洗浄工程を行うのが好ましい。この洗浄工程により、被処理液中の他の成分（例えば、血液の場合、赤血球および血漿）を洗い流すことができ、得られる細胞増殖剤の純度が高くなる。
洗浄工程に用いられる洗浄液は、血小板および白血球を活性化させないものであれば特に限定されない。例えば、生理食塩水、ＨＥＰＥＳ緩衝液、リン酸緩衝液、クエン酸緩衝液が挙げられる。
洗浄工程は、図１に示される血小板・白血球捕捉フィルター１０を用いる場合、例えば、流入口２１から洗浄液を導入し、メインフィルター部材３２に通して、流出口２２から排出させることにより行われる。
【００３７】
＜血小板活性化処理工程＞
上述したように、捕捉工程後、好ましくは更に洗浄工程を行った後、血小板活性化処理工程と、白血球インキュベート工程とを行う。血小板活性化処理工程と白血球インキュベート工程とは、いずれを先に行ってもよいが、通常、血小板活性化処理工程を先に行う。
【００３８】
血小板活性化処理工程は、ろ材に捕捉された血小板の活性化処理を行う工程である。これにより、血小板から血小板由来因子が分泌される。
活性化処理は、血小板由来因子を分泌させる処理であれば特に限定されず、例えば、物理的刺激を与える処理；刺激剤の添加、界面活性剤の添加等の化学的刺激を与える処理が挙げられる。
【００３９】
具体的には、物理的刺激を与える処理としては、例えば、血小板を捕捉したろ材に液体、気体、ゲル等を通過させてシアストレスを与える処理；血小板を捕捉したろ材に接触させる水溶液の組成変化による浸透圧変化等による刺激を与える処理；血小板を捕捉したろ材を圧縮させ、または変形させる処理；ろ材の周囲（例えば、図１に示される血小板・白血球捕捉フィルター１０を用いる場合、ハウジング２０内部）を密閉下で陰圧または陽圧にすることによる圧力変化による刺激を与える処理；血小板を捕捉したろ材を摩擦し、せん断応力を与え、または穿孔する処理；血小板を捕捉したろ材にソニケーション等の振動による刺激を与える処理；血小板を捕捉したろ材に電磁波、衝撃波、電圧等を加える処理が挙げられる。
【００４０】
特に、液体を血小板と接触させることにより刺激を与える処理が、簡便であり、かつ、血小板活性化効率が高い点で、好ましい。
液体を血小板と接触させる方法としては、図１に示される血小板・白血球捕捉フィルター１０を用いる場合、例えば、流入口２１または流出口２２から一定量の生理食塩水等の液体を導入した後、流入口２１および流出口２２のそれぞれにシリンジを結合させ、シリンジにより液体をメインフィルター部材３２をはさんで往復させる方法が挙げられる。
【００４１】
化学的処理に用いられる刺激剤としては、例えば、トロンビン、コラーゲン、アデノシン二リン酸が挙げられる。
化学的処理に用いられる界面活性剤としては、例えば、ラウリル硫酸ナトリウム、ＴｒｉｔｏｎＸ−１００、Ｔｗｅｅｎ２０が挙げられる。
【００４２】
活性化処理は、生理食塩水；ＨＥＰＥＳ緩衝液、リン酸緩衝液、クエン酸緩衝液等の緩衝液等の液体中に、ろ材を存在させて行うのが好ましい。
【００４３】
このような活性化処理により、血小板から、血小板由来因子が分泌される。血小板由来因子としては、例えば、ＰＤＧＦ、ＴＧＦ−β、ＶＥＧＦ、ＩＧＦが挙げられるが、本発明においては、血小板由来因子として、少なくともＰＤＧＦおよびＶＥＧＦを含むのが好ましい。
【００４４】
＜白血球インキュベート工程＞
白血球インキュベート工程は、ろ材に捕捉された白血球のインキュベートを行う工程である。これにより、白血球から白血球由来因子が分泌される。
インキュベートを行う際に用いられる液としては、白血球の機能を生理的に保つものであれば特に限定されない。具体的には、等張液で極端なｐＨを持たず、白血球の機能が停止してサイトカインの分泌機構が損なわるようなことがない液を用いるのが好ましい。例えば、生理食塩水；ＨＥＰＥＳ緩衝液、リン酸緩衝液、クエン酸緩衝液等の緩衝液；白血球の培養を行うためのＲＰＭＩ１６４０等の培地が挙げられる。
また、インキュベートを行う際に、白血球の刺激を目的として、上記液中に、コンカナバリン、インゲンマメレクチン等のレクチン類；インターフェロンγ等のサイトカイン類；ＧＭ−ＣＳＦ等の増殖因子類；ロイコトリエンＢ４等のエイコサノイド類；リポポリサッカライド等を添加することもできる。
【００４５】
インキュベートを行う温度は、０〜４０℃程度であるのが好ましく、２０〜４０℃程度であるのがより好ましい。
インキュベートを行う時間は、１０ｍｉｎ〜２４ｈｒ程度であるのが好ましく、３０ｍｉｎ〜１２ｈｒ程度であるのがより好ましい。
【００４６】
このようなインキュベートにより、白血球から、白血球由来因子が分泌される。白血球由来因子としては、例えば、ＶＥＧＦ、αＩＦＮ、ＴＧＦ−β、ｂＦＧＦが挙げられるが、本発明においては、白血球由来因子として、少なくともＶＥＧＦを含むのが好ましい。
【００４７】
この白血球インキュベート工程の後には、必要に応じて、白血球由来の増殖因子をより多く回収する目的で、界面活性化処理を行うことができる。
界面活性化処理は、例えば、界面活性剤を含有する液体を、白血球を捕捉したろ材に接触させることにより行われる。界面活性剤は、白血球の細胞膜を溶解させることができるものであればよく、例えば、ラウリル硫酸ナトリウム、ＴｒｉｔｏｎＸ−１００、Ｔｗｅｅｎ２０が挙げられる。
【００４８】
＜回収工程＞
血小板活性化処理工程と白血球インキュベート工程とを行った後、血小板由来因子および白血球由来因子を回収する回収工程を行う。具体的には、血小板由来因子および白血球由来因子を含有する液体を回収する。
ここで、血小板由来因子および白血球由来因子を含有する液体としては、例えば、ろ材を通った被処理液、洗浄工程を行った場合における洗浄液、血小板活性化処理工程に液体を用いた場合における該液体、白血球インキュベート工程に液体を用いた場合における該液体が挙げられる。図１に示される血小板・白血球捕捉フィルター１０を用いる場合は、回収工程を行う直前において、ハウジング２０内部に存在する液体である。
このようにして回収された液体は、細胞増殖剤として用いることができる。
【００４９】
回収工程は、具体的には、図１に示される血小板・白血球捕捉フィルター１０を用いる場合、流入口２１または流出口２２から液体を排出させることにより行うことができる。
【００５０】
＜細胞増殖剤＞
上述したように、回収工程で回収された液体は、血小板由来因子および白血球由来因子を含有する細胞増殖剤として用いることができる。
本発明の細胞増殖剤は、回収された液体をそのまま用いてもよく、精製した後に用いてもよい。
【００５１】
本発明の細胞増殖剤は、虚血性創傷、褥創等の難治性の創傷、火傷等、種々の疾患の治療に用いることができるが、特に限定されず、通常の治癒の過程で、外科的または内科的に血小板および白血球の集積が観察される創部または組織の再形成部位に適用することができる。
また、細胞増殖剤が有する血管新生能を利用して、閉塞性動脈硬化症等の動脈不全による虚血部位の血流改善、心筋梗塞部位の血流改善等の種々の疾患の治療に用いることもできる。即ち、虚血に起因する疾患であれば適用することができる。
【００５２】
本発明の細胞増殖剤を創傷治癒剤として適用する際には、適用の形態は特に限定されず、例えば、本発明の細胞増殖剤を溶液、懸濁剤、乳剤、ペースト剤として、創部に塗布する方法が挙げられる。
本発明の細胞増殖剤を血管新生剤として適用する際には、適用の形態は特に限定されず、例えば、虚血部位および周辺組織中に注射用針等を用い注入する方法、コラーゲン、ポリ乳酸等の生分解性のマトリックスに含有させて虚血部位に埋め込む方法が挙げられる。
【００５３】
【実施例】
以下に実施例を示して本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されない。
【００５４】
まず、健常人ボランティアより血液バッグ（ＡＣＤ（クエン酸ナトリウム２．２ｗ／ｖ％、クエン酸０．８ｗ／ｖ％、ブドウ糖２．２ｗ／ｖ％）５６ｍＬ入り）に血液４００ｍＬを採取して抗凝固血液を調製し以下に示す実施例１〜３および比較例１〜５に用いた。
【００５５】
（実施例１）
まず、以下のようにして、ろ材の表面のゼータ電位を調整するための物質（ＭＥＡ／ＤＭＡＥＭＡ共重合体）を合成した。
２−メトキシエチルアクリレート（ＭＥＡ）４０ｇと、２−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）エチルメタクリレート（ＤＭＡＥＭＡ）１２ｇとを、ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）２４０ｇに溶解させた。この溶解液に、アゾイソブチロニトリル（ＡＩＢＮ）５２ｍｇを加え、窒素雰囲気下、７５℃で６時間反応させた。反応終了後、反応液を濃縮した。得られた濃縮物をアセトン約２００ｍＬに溶解させ、これを約３Ｌのヘキサン中に滴下し、精製した。この精製の操作を３回繰り返した。その後、析出物を約１５０ｍＬのメタノールに溶解させ、濃縮した後、真空乾燥を行い、ＭＥＡ／ＤＭＡＥＭＡ共重合体を得た。
得られたＭＥＡ／ＤＭＡＥＭＡ共重合体の組成比をＮＭＲで確認したところ、ＭＥＡ／ＤＭＡＥＭＡ＝７５／２５であった。
【００５６】
つぎに、以下の３種のポリエステル不織布を用意した。
（１）孔径大：目付３０ｇ／ｍ²、厚さ０．２５ｍｍ、平均孔径５７．４μｍ
（２）孔径中：目付２０ｇ／ｍ²、厚さ０．１５ｍｍ、平均孔径１０．７μｍ
（３）孔径小：目付２０ｇ／ｍ²、厚さ０．１５ｍｍ、平均孔径６．０μｍ
なお、ポリエステル不織布の平均孔径は、パームポロメータ（ＰＭＩ社製）により測定した。
【００５７】
これらのポリエステル不織布を、ＭＥＡ／ＤＭＡＥＭＡ共重合体濃度０．５％のメタノール溶液に浸せきさせ、７０℃で乾燥させた。
乾燥後、８０℃に保持した熱ＲＯ水（加熱した逆浸透水）中で洗浄を行い、７０℃で再度乾燥させ、ＭＥＡ／ＤＭＡＥＭＡ共重合体でコーティングしたポリエステル不織布（コーティング済みポリエステル不織布）を得た。
コーティング済みポリエステル不織布の表面ゼータ電位を、濃度０．００１ｍｏｌ／ＬのＫＣｌ水溶液を媒液とし、流動電位測定装置（ＺＰ２０Ｈ、島津製作所社製）により測定したところ、いずれも２５ｍＶであった。
【００５８】
これらのコーティング済みポリエステル不織布を直径１９ｍｍにカットした。図１に示される流入口２１および流出口２２を有するハウジング２０内に、３種のコーティング済みポリエステル不織布をプレフィルター部材３１およびメインフィルター部材３２として、流入口２１側から、孔径大４枚、孔径中３０枚、孔径小１０枚の順で配置し、血小板・白血球捕捉フィルターを得た（有効膜面積２．０ｃｍ²、体積１４．１ｃｍ³）。
【００５９】
初めに、被処理液として上記抗凝固血液５０ｍＬを流入口２１から導入し、ハウジング２０内に設置したコーティング済みポリエステル不織布に通して、流出口２２から排出させた。
【００６０】
つぎに、同様にして、ハウジング２０に洗浄液として１０ｍＬの生理食塩水を導入し、ハウジング２０内の赤血球および血漿成分の洗浄を行い、回収した。
その後、流出口２２側に空のシリンジを装着し、流入口２１側に生理食塩水４ｍＬが入ったシリンジを装着した。流入口２１側のシリンジ内の溶液を１ｍＬ／秒の流速でハウジング２０内を通過させ、流出口２２側のシリンジ内に溶液を回収し、ついで、流出口２２側のシリンジ内の溶液を同様にハウジング２０内を通過させ流入口２１のシリンジに回収した。この操作を交互に計１０回（１０往復）行った。
【００６１】
ついで、３７℃のインキュベータ中で、インキュベートを１．５ｈｒ行った。その後、内容液を流出口２２側のシリンジよりすべて回収し、回収液とした。
【００６２】
（実施例２）
流入口２１側のシリンジとして、４ｍＬの生理食塩水の代わりに４ｍＬの細胞培養用培地ＲＰＭＩ１６４０が入ったものを用いた以外は、実施例１と同様の操作を行った。
【００６３】
（実施例３）
ハウジング２０内に、２種のコーティング済みポリエステル不織布を、流入口２１側から、孔径大４枚、孔径中４０枚の順で配置したプレフィルター部材およびメインフィルター部材（有効膜面積２．０ｃｍ²、体積１４．１ｃｍ³）を用いた以外は、実施例１と同様の操作を行った。
【００６４】
（比較例１）
インキュベートを行わなかった以外は、実施例１と同様の操作を行った。
【００６５】
（比較例２）
以下のプレフィルター部材およびメインフィルター部材を用いた以外は、実施例１と同様の操作を行った。
市販の赤血球製剤用白血球除去フィルター（旭メディカル社製「セパセルＲＺ」）に用いられている以下の１種のプレフィルターおよび２種のメインフィルターを用意した。
【００６６】
（４）プレフィルター：目付３００ｇ／ｍ²、厚さ１．１２ｍｍ、平均孔径４１．５μｍ
（５）メインフィルター孔径大：目付３０ｇ／ｍ²、厚さ０．１７ｍｍ、平均孔径２７．７μｍ
（６）メインフィルター孔径小：目付４１ｇ／ｍ²、厚さ０．２０ｍｍ、平均孔径３．０μｍ
各フィルターの表面のゼータ電位を、実施例１と同様にして測定したところ、いずれも４５ｍＶであった。
【００６７】
これらをそれぞれ直径１９ｍｍにカットして、ハウジング２０内に、プレフィルター部材およびメインフィルター部材として、流入口側からプレフィルター１０枚、メインフィルター孔径大６枚、メインフィルター孔径小２４枚の順で配置した（有効膜面積：２．０ｃｍ²、体積１３．８ｃｍ³）。
【００６８】
（比較例３）
市販の血小板製剤用白血球除去フィルター（テルモ株式会社製「イムガードＩＩＩＰＬ」）に用いられている以下の１種のプレフィルターおよび１種のメインフィルターを用意した。
【００６９】
（７）プレフィルター：目付１３０ｇ／ｍ²、厚さ０．６０ｍｍ、平均孔径８．０μｍ、ポリウレタン発泡体製
（８）メインフィルター：目付１３０ｇ／ｍ²、厚さ０．６０ｍｍ、平均孔径４．０μｍ、ポリウレタン発泡体製
各フィルターの表面のゼータ電位を、実施例１と同様にして測定したところ、いずれも５ｍＶであった。
【００７０】
これらをそれぞれ直径３０ｍｍにカットして、ハウジング２０内に、プレフィルター部材およびメインフィルター部材として、流入口側からプレフィルター１枚、メインフィルター孔１４枚の順で配置した（有効膜面積：７．１ｃｍ²、体積１３．８ｃｍ³）。
【００７１】
初めに、上記抗凝固血液５０ｍＬを流入口２１から導入し、ハウジング２０内に設置したプレフィルター部材およびメインフィルター部材に通して、流出口２２から排出させて回収した。なお、このろ液は、後述する比較例４に用いた。
つぎに、同様にして、ハウジング２０に１０ｍＬの生理食塩水を導入し、ハウジング２０内の赤血球および血漿成分の洗浄を行い、回収した。
ついで、３７℃のインキュベータ中で、インキュベートを１．５ｈｒ行った。その後、内容液を流出口２２側のシリンジよりすべて回収した。
【００７２】
（比較例４）
被処理液として抗凝固血液５０ｍＬの代わりに比較例３で回収したろ液約５０ｍＬを用い、かつ、インキュベートを行わなかった以外は、実施例１と同様の操作を行った。
【００７３】
（比較例５）
上記抗凝固血液５０ｍＬを遠沈管に取り２２℃、４５００×ｇの条件で遠心分離を１０分間行い、血漿画分、バフィーコート画分および赤血球画分に分離させて、中間層であるバフィーコート画分を得た。このバフィーコート画分をシリンジに取り、更にこのシリンジに別のシリンジを直接装着して、これらのシリンジ間でバフィーコート画分を１０往復させた後、３７℃のインキュベータ中で、インキュベートを１．５ｈｒ行った。インキュベート後、遠心分離を行い、上清をすべて回収した。
【００７４】
実施例１〜３および比較例１〜５における血小板捕捉率および白血球捕捉率を算出した。また、血小板由来因子の指標として、被処理液、洗浄液および回収液のＰＤＧＦ−ＡＢ濃度、および、白血球由来因子の指標としてＶＥＧＦ濃度を測定した。
結果を第１表に示す。また、回収液については、液量ならびにＰＤＧＦ−ＡＢおよびＶＥＧＦの絶対量も併せて第１表に示す。第１表中、「比較例３＋４」は、比較例３と比較例４との合計を示す。
なお、血小板捕捉率および白血球捕捉率は、それぞれ被処理液およびろ液をサンプリングし、サンプル中の血小板数および白血球数を、多項目自動血球分析装置（Ｓｙｓｍｅｘ社製「ＳｙｓｍｅｘＳＥ−９０００」）により測定し、その測定結果に基づいて算出した。
また、ＰＤＧＦ−ＡＢおよびＶＥＧＦの濃度は、それぞれＥＬＩＳＡ法（Ｒ＆ＤＳｙｓｔｅｍｓ社製「ＱｕａｎｔｉｋｉｎｅｈｕｍａｎＰＤＧＦ−ＡＢｋｉｔ」および「ＱｕａｎｔｉｋｉｎｅｈｕｍａｎＶＥＧＦｋｉｔ」）により測定した。
【００７５】
【表１】

【００７６】
第１表から明らかなように、本発明の細胞増殖剤の製造方法（実施例１〜３）によれば、血小板由来因子の指標である繊維芽細胞増殖能を有する血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）を、被処理液（抗凝固血液）の約１０倍と極めて濃い濃度で回収することができた。また、本発明の細胞増殖剤の製造方法（実施例１〜３）によれば、白血球由来因子の指標である血管新生能を有する血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）を被処理液（抗凝固血液）の約１３，０００〜２０，０００倍と、極めて濃い濃度で回収することができた。
特に、ろ材の孔径に傾斜を持たせた場合（実施例１および２）は、血小板および白血球の回収率が極めて高く、その結果として、回収液のＰＤＧＦ濃度およびＶＥＧＦ濃度が極めて高かった。即ち、ろ材の孔径に傾斜を持たせることの有用性が確認された。
【００７７】
これに対して、白血球インキュベート工程を行わない場合（比較例１）は、ＶＥＧＦ濃度が実施例に比べて極めて低く、白血球を捕捉した後にインキュベートすることの有用性が確認された。
【００７８】
また、既存の白血球除去フィルター（血小板捕捉タイプ）を用いた場合（比較例２）は、実施例と同程度のＶＥＧＦ濃度が得られるが、ＰＤＧＦ濃度が実施例に比べて極めて低かった。即ち、既存の白血球除去フィルター（血小板捕捉タイプ）では、血小板捕捉率は高いが、血小板由来因子を効率よく回収することができないことが確認された。これは、捕捉された血小板が、被処理液および洗浄液を流した段階で既に活性化されており、血小板由来因子が被処理液および洗浄液とともに排出されているためであると考えられる。洗浄液中のＰＤＧＦ濃度が実施例に比較して高いことが、これを裏付けている。
【００７９】
更に、白血球の捕捉と血小板の捕捉を異なるろ材で実施した場合（比較例３および４）は、回収されたＰＤＧＦおよびＶＥＧＦの絶対量としては実施例と同等レベルにあるものの、濃度が低かった。したがって、同一のろ材で血小板および白血球を捕捉し、捕捉された血小板および白血球から因子を回収することができる本発明の細胞増殖剤の製造方法は、その性能および操作性の観点から有用であることが分かる。
【００８０】
更に、全血から調製した白血球血小板懸濁液を実施例１と同様な処理を行った場合（比較例５）は、実施例と比べてＰＤＧＦ濃度およびＶＥＧＦ濃度が低かった。
【００８１】
以上の結果より、実施例１〜３では、比較例１〜５に比較して血小板由来因子および白血球由来因子を同時に高濃度で回収することができたことが分かる。
【００８２】
【発明の効果】
以上に詳述したように、本発明の細胞増殖剤の製造方法によれば、血小板および白血球を含有する液を血小板および白血球を捕捉しうるろ材に通した後、ろ材に捕捉された血小板の活性化処理と白血球のインキュベートとを行うことにより、血小板および白血球由来の主に血小板由来因子および血管内皮増殖因子からなる創傷治癒能を有する細胞増殖剤をクローズドの系（閉鎖系）で簡便に得ることができる。
また、本発明の細胞増殖剤は、上記因子を高濃度で含有するため、治療に好適に用いられる。
【図面の簡単な説明】
【図１】本発明に用いられるろ材を組み込んだ血小板・白血球捕捉フィルターの一例の構成を示す分解斜視図である。
【符号の説明】
１０血小板・白血球捕捉フィルター
２０ハウジング
２１流入口
２２流出口
３１プレフィルター部材
３２メインフィルター部材[0001]
[Industrial application fields]
The present invention relates to a cell growth agent containing platelet-derived growth factor and vascular endothelial growth factor secreted from platelets and leukocytes by separating platelets and leukocytes from a treatment liquid containing platelets and leukocytes, represented by whole blood To a method for producing a cell proliferating agent.
[0002]
[Prior art]
Platelets are derived from platelet derived growth factor (PDGF), transforming growth factor (Transforming Growth Factor-β: TGF-β), vascular endothelial growth factor (Vascular Endothelial Growth Factor, VGF). It is known to contain useful substances such as Insulin like Growth Factor (IGF).
In addition, leukocytes (mainly monocytes (macrophages) and neutrophils) are VEGF, α-interferon (α-Interferon: αIFN), TGF-β, basic fibroblast growth factor (bFGF). It is known to secrete or contain useful substances such as
[0003]
In the wound healing process, first, in order to stop bleeding due to blood vessel destruction immediately after injury, platelet adhesion / aggregation and factor release reaction occur, whereby blood coagulation reaction proceeds. Various growth factors released by the factor release reaction of platelets infiltrate the wound site with fibroblasts, leukocytes (particularly macrophages, neutrophils) and the like as chemotactic factors. At the same time, platelet-derived growth factor secreted mainly from platelets stimulates fibroblast proliferation and matrix production by fibroblasts, thereby promoting granulation formation. In addition, vascular endothelial growth factor secreted mainly from infiltrated leukocytes stimulates the proliferation of vascular endothelial cells, and as a result, angiogenesis is promoted. And this granulation formation and angiogenesis become a turning point, and it turns to wound healing.
[0004]
However, in refractory ulcers, since blood flow at the wound is low, platelet and leukocyte accumulation is very small. As a result, granulation and angiogenesis are not observed, and healing is considered to be delayed. Therefore, it is presumed that wound healing is promoted even in intractable ulcers by simultaneously supplementing platelet and leukocyte-derived factors that work in the healing process.
[0005]
Regarding preparation of platelet-derived factor, JP-A-7-507558 discloses a method for recovering platelet-derived factor by passing platelet suspension through a filter and activating platelets retained on the filter with thrombin or the like. However, it is difficult to efficiently collect leukocyte-derived factors by this method, and it is not possible to obtain a sufficiently effective wound healing.
[0006]
[Problem to be Solved by the Invention]
The object of the present invention is, for example, platelet-derived growth factor and vascular endothelium secreted from platelets and leukocytes after the leukocytes and platelets are trapped in a filter medium from a treatment liquid containing platelets and leukocytes, such as whole blood It is an object of the present invention to provide a method for producing a cell proliferating agent that obtains a cell proliferating agent that effectively works for healing of a wound containing a growth factor.
[0007]
[Means for Solving the Problems]
The object is achieved by the present inventions (1) to (5) described below.
[0008]
(1) A liquid to be treated containing platelets and white blood cells, Coating a copolymer containing alkoxyalkyl (meth) acrylate and / or hydroxyalkyl (meth) acrylate and alkylaminoalkyl (meth) acrylate as constituent units; The zeta potential on the surface is 15-30 mV Polyester nonwoven fabric adjusted to Passing through a filter medium comprising: a capture step for capturing the platelets and white blood cells in the liquid to be treated by the filter medium;
A platelet activation treatment step of activating the platelets trapped in the filter medium and secreting platelet-derived growth factor;
A leukocyte incubation step for incubating the leukocytes captured by the filter medium and secreting vascular endothelial growth factor after or before the platelet activation treatment step;
And a recovery step of recovering the platelet-derived growth factor and the vascular endothelial growth factor to obtain a cell growth agent.
[0010]
( 2 ) The activation process Consists of saline or buffer The above (1) performed by applying a stimulus by bringing a liquid into contact with the platelets. ) The manufacturing method of the cell proliferation agent of description.
[0011]
( 3 And (1) including a washing step of washing the platelets and white blood cells trapped in the filter medium by passing a washing liquid through the filter medium after the trapping step. Or (2 ) A method for producing a cell proliferating agent according to any one of the above.
[0013]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Hereinafter, the present invention will be described in detail.
<Capture process>
The capturing step is a step of passing the liquid to be processed containing platelets and white blood cells through a filter medium that can capture the liquid. Thereby, platelets and white blood cells in the liquid to be treated are captured by the filter medium.
[0014]
The liquid to be treated used in the present invention is not particularly limited as long as it contains human or animal-derived platelets and leukocytes, but contains the own platelets and leukocytes of the person using the cell proliferating agent obtained by the present invention. It is preferable that it is a liquid to be used. In the case of a solution containing self platelets and leukocytes, the risk of new infection by microorganisms or the like can be reduced, and healing can be promoted safely.
Examples of the liquid to be treated containing platelets and leukocytes include blood to which an anticoagulant such as ACD solution, CPD solution, and heparin is added; suspension of platelets and leukocytes such as buffy coat prepared by centrifugation; culture Platelet and leukocyte suspensions.
[0015]
A filter medium capable of capturing platelets and white blood cells has continuous pores through which blood cells such as red blood cells can pass. As the filter medium, a material using a porous membrane, a hollow fiber, or the like, or a material in which a housing is filled with beads, powder, or the like can be used.
Here, the porous membrane is a membrane having a large number of continuous small pores that communicate with the outside, both inside and on the surface. Examples of the porous membrane include nonwoven fabrics, foams (sponge-like porous bodies having communication holes), woven fabrics made of a synthetic resin such as polyurethane, polyvinyl alcohol, polypropylene, polyether polyamide, polyethylene terephthalate, and polybutylene terephthalate. , Mesh and the like. Among these, a nonwoven fabric and a foam are preferable. As the porous membrane, the nonwoven fabric or foam made of the synthetic resin has the advantage that the pore diameter can be easily adjusted and the productivity is excellent.
[0016]
The filter medium is preferably capable of capturing platelets without activating them. In order not to activate platelets, the filter medium preferably has a surface zeta potential of about 15 to 30 mV, and more preferably about 18 to 28 mV. When the zeta potential on the surface of the filter medium is in the above range, it is possible to capture the filter medium without inducing the release of the α-granule factor due to platelet activation in the capture process and the washing process. If the zeta potential on the surface of the filter medium is too low, the platelet capture rate may not be sufficiently increased depending on the average pore diameter of the filter medium. On the other hand, if the zeta potential on the surface of the filter medium is too high, the trapped platelets may be activated depending on the average pore diameter of the filter medium.
[0017]
Examples of the method for adjusting the zeta potential on the surface of the filter medium include the following methods (1) to (3).
(1) A method of forming a filter medium and then post-treating (for example, coating) the surface thereof with a substance capable of adjusting the zeta potential (for example, a substance having a cationic functional group such as an amino group).
(2) A method of using a material having a zeta potential within the above range as a constituent material of the filter medium. Specifically, for example, a method of producing a non-woven filter medium using a fiber having a positive charge such as nylon as a base material can be mentioned.
(3) A method in which a constituent material of the filter medium contains a substance capable of adjusting the zeta potential in advance or is bonded thereto, and the filter medium is formed using such a material. Specifically, for example, a method of producing a non-woven filter medium using as a substrate a fiber obtained by modifying polyethylene terephthalate with a substance having a cationic functional group such as an amino group using a covalent bond or the like can be mentioned.
[0018]
Among these, as a method for adjusting the zeta potential on the surface of the filter medium, a method of coating the surface of the filter medium with a substance capable of adjusting the zeta potential is preferable. According to this method, the range of selection of the constituent material of the filter medium can be expanded, and the zeta potential on the surface of the filter medium can be easily and reliably adjusted.
[0019]
The substance capable of adjusting the zeta potential is not particularly limited as long as the substance can adjust the zeta potential of the surface of the filter medium within the above range. For example, alkoxyalkyl (meth) acrylate and / or hydroxyalkyl (meta It is preferable to use a copolymer containing acrylate and alkylaminoalkyl (meth) acrylate, which is a substance having a cationic functional group, as constituent units. When this copolymer is used, the zeta potential on the surface of the filter medium can be easily adjusted by appropriately setting the adhesion amount, the composition ratio of the monomers, and the like.
[0020]
Examples of the alkoxyalkyl (meth) acrylate include 2-methoxyethyl acrylate (MEA) and 2-methoxyethyl methacrylate (MEMA).
Examples of the hydroxyalkyl (meth) acrylate include 2-hydroxyethyl acrylate (HEA) and 2-hydroxyethyl methacrylate (HEMA).
Examples of the alkylaminoalkyl (meth) acrylate include 2- (N, N-dimethylamino) ethyl methacrylate (DMAEMA), 2- (N, N-dimethylamino) ethyl acrylate (DMAEA), and 2- (N, N -Dimethylamino) propyl acrylate (DMAPA), 2- (N, N-dimethylamino) propyl methacrylate (DMAPMA).
These may be used alone or in combination of two or more.
[0021]
Further, the composition ratio of alkoxyalkyl (meth) acrylate and / or hydroxyalkyl (meth) acrylate and alkylaminoalkyl (meth) acrylate is not particularly limited, but is, for example, about 85/15 to 50/50. Preferably, it is about 80 / 20-60 / 40. When the composition ratio of each monomer is within the above range, a filter medium excellent in both the platelet capture rate and the platelet activation suppression effect during platelet capture can be obtained.
[0022]
In addition, when the content rate of alkylaminoalkyl (meth) acrylate is too small, the capture rate of platelets in the filter medium may not be sufficiently increased. On the other hand, if the content ratio of the alkylaminoalkyl (meth) acrylate is too large, the inhibitory effect on platelet activation at the time of capturing platelets in the filter medium may not be sufficiently increased.
[0023]
The average pore diameter of the filter medium is not particularly limited, but is preferably about 3 to 20 μm, for example. When the average pore diameter of the filter medium is too small, a predetermined amount of liquid to be treated may not be processed due to clogging. On the other hand, when the average pore size of the filter medium is too large, the capture rate of leukocytes and platelets may be reduced.
[0024]
The filter medium preferably has a pore diameter that decreases from the inflow side to the outflow side. That is, it is preferable to incline the pore diameter of the filter medium. In particular, it is preferable to use a combination of two or more kinds of filter media having different pore diameters as the filter media, and arrange them so that the pore diameter decreases from the inflow side to the outflow side. For example, a filter medium having a large pore diameter is arranged on the inflow side, and a filter medium having a small pore diameter is arranged on the outflow side. The average pore diameter of the filter medium having a large pore diameter is preferably about 10 to 20 μm, and more preferably about 10 to 15 μm. The average pore diameter of the filter medium having a small pore diameter is preferably about 3 to 15 μm, and more preferably about 3 to 10 μm.
[0025]
The average pore diameter of the filter medium is within the above range, and the pore diameter of the filter medium is inclined to prevent clogging due to non-specific capture on the inflow side of leukocytes and platelets, and the capture rate of leukocytes and platelets Can be high.
[0026]
The average thickness of the filter medium is appropriately set depending on the constituent material, form, etc., and is not particularly limited. However, in the case of a porous membrane, for example, it is preferably about 0.05 to 5 mm, and about 0.1 to 3 mm. More preferably. The number of the porous membranes installed in the filter medium is appropriately set depending on the average thickness and is not particularly limited. For example, the number is preferably about 2 to 100, and more preferably about 3 to 80.
[0027]
In the case of using two kinds of filter media having a large pore diameter and a filter medium having a small pore diameter as the filter medium, the apparent volume of the filter medium having a small pore diameter is preferably 50% or less of the apparent volume of the entire filter medium, and is 30% or less. Is more preferable.
[0028]
In the capturing step, the liquid to be processed described above is passed through the filter medium described above. Thereby, platelets and white blood cells in the liquid to be treated are captured by the filter medium. In addition, other components in the liquid to be treated that are not captured by the filter medium are separated from platelets and white blood cells without being captured by the filter medium.
[0029]
An example of a specific embodiment will be described with reference to FIG.
FIG. 1 is an exploded perspective view showing the configuration of an example of a platelet / leukocyte trapping filter incorporating the filter medium used in the present invention. In FIG. 1, a part is shown in section.
As shown in FIG. 1, the platelet / leukocyte trapping filter 10 includes a housing 20 having a liquid inlet 21 and an outlet 22, a prefilter member 31 provided in the housing 20, and the filter medium described above. A main filter member 32.
[0030]
The pre-filter member 31 is not an essential component in the present invention, but has a function of preventing (suppressing) clogging mainly due to white blood cells in the hole of the main filter member 32 serving as a blood cell flow path. Therefore, as shown in FIG. 1, it is preferable to arrange | position at the inflow port 21 side rather than the main filter member 32 within a housing.
The prefilter member 31 has a continuous hole through which blood cells such as red blood cells can pass, and can be configured in the same manner as the main filter member 32. Among these, it is preferable to use a porous membrane, and it is more preferable to use a laminate of a plurality of porous membranes.
[0031]
As with the main filter member 32, the surface zeta potential of the pre-filter member 31 is more preferably 15 to 30 mV, and still more preferably 18 to 28 mV.
[0032]
The average pore diameter of the prefilter member 31 is preferably set larger than the average pore diameter of the main filter member 32. Specifically, the thickness is preferably about 30 to 100 μm, and more preferably about 50 to 80 μm.
The average thickness of the prefilter member 31 is appropriately set depending on the constituent material, form, and the like, and is not particularly limited. However, in the case of a porous film, for example, it is preferably about 0.05 to 5 mm, More preferably, it is about 3 mm. The number of porous membranes installed in the pre-filter member 31 is appropriately set depending on the average thickness and is not particularly limited. For example, it is preferably about 1 to 30 sheets, more preferably about 2 to 10 sheets. preferable.
[0033]
In the platelet / leukocyte capturing filter 10, the volume ratio of the main filter member 32 to the whole is preferably about 50% or more, and more preferably about 70% or more. When the volume ratio occupied by the main filter member 32 is within the above range, the main filter member 32 and the prefilter member 31 can sufficiently exhibit their respective functions.
[0034]
The housing 20 has an inflow port 21 and an outflow port 22, in which a main filter member 32 can be disposed, and a liquid to be treated, which will be described later, is introduced from the inflow port 21, and passes through the main filter member 32 from the outflow port 22. Any known housing can be used as long as it can be discharged. The shape of the inflow port 21 and the outflow port 22 can also be a conventionally known configuration.
[0035]
The capturing step is performed by introducing the liquid to be processed described above from the inlet 21 of the platelet / leukocyte capturing filter 10 and passing it through the main filter member 32. Thereby, platelets and white blood cells in the liquid to be treated are captured by the main filter member 32. Further, other components in the liquid to be treated that are not captured by the main filter member 32 are separated from platelets and white blood cells and discharged from the outlet 22.
[0036]
<Washing process>
After the capturing step, it is preferable to perform a cleaning step of washing the platelets and white blood cells trapped on the filter medium by passing the cleaning liquid through the filter medium. By this washing step, other components in the liquid to be treated (for example, in the case of blood, red blood cells and plasma) can be washed away, and the purity of the resulting cell proliferating agent is increased.
The washing liquid used in the washing step is not particularly limited as long as it does not activate platelets and leukocytes. Examples thereof include physiological saline, HEPES buffer, phosphate buffer, and citrate buffer.
When the platelet / leukocyte capturing filter 10 shown in FIG. 1 is used, the washing step is performed, for example, by introducing a washing solution from the inlet 21, passing through the main filter member 32, and discharging it from the outlet 22.
[0037]
<Platelet activation treatment process>
As described above, after the capturing step, preferably after further washing step, the platelet activation treatment step and leukocyte incubation step are performed. Either the platelet activation treatment step or the leukocyte incubation step may be performed first, but usually the platelet activation treatment step is performed first.
[0038]
The platelet activation treatment step is a step of performing activation treatment of platelets captured by the filter medium. Thereby, platelet-derived factor is secreted from platelets.
The activation treatment is not particularly limited as long as it is a treatment that secretes platelet-derived factor, and examples thereof include a treatment that gives physical stimulation; a treatment that gives chemical stimulation such as addition of a stimulant or addition of a surfactant. .
[0039]
Specifically, as a process for giving a physical stimulus, for example, a process for applying a shear stress by passing a liquid, gas, gel or the like through a filter medium that has captured platelets; a composition change of an aqueous solution in contact with the filter medium that has captured platelets A process of applying stimulation by osmotic pressure change due to, a process of compressing or deforming a filter medium that has captured platelets, and the surroundings of the filter medium (for example, inside the housing 20 when the platelet / leukocyte capture filter 10 shown in FIG. 1 is used) Treatment to give a stimulus by pressure change by making negative pressure or positive pressure under sealing; Treatment to rub the filter medium that has captured platelets, give shear stress, or perforate; To sonicate the filter medium that has captured platelets The process which gives the irritation | stimulation by vibration; The process which adds electromagnetic waves, a shock wave, a voltage, etc. to the filter medium which caught platelets is mentioned.
[0040]
In particular, a treatment for giving a stimulus by bringing a liquid into contact with platelets is preferable in terms of simplicity and high platelet activation efficiency.
As a method of bringing liquid into contact with platelets, when using the platelet / leukocyte capture filter 10 shown in FIG. 1, for example, after introducing a certain amount of liquid such as physiological saline from the inlet 21 or outlet 22, There is a method in which a syringe is coupled to each of the inlet 21 and the outlet 22 and the liquid is reciprocated between the main filter members 32 by the syringe.
[0041]
Examples of the stimulant used for the chemical treatment include thrombin, collagen, and adenosine diphosphate.
Examples of the surfactant used for the chemical treatment include sodium lauryl sulfate, Triton X-100, and Tween 20.
[0042]
The activation treatment is preferably performed in the presence of a filter medium in a liquid such as physiological saline; a buffer such as a HEPES buffer, a phosphate buffer, or a citrate buffer.
[0043]
By such activation treatment, platelet-derived factor is secreted from platelets. Examples of the platelet-derived factor include PDGF, TGF-β, VEGF, and IGF. In the present invention, it is preferable that at least PDGF and VEGF are included as the platelet-derived factor.
[0044]
<Leukocyte incubation step>
The leukocyte incubation step is a step of incubating leukocytes captured by the filter medium. Thereby, leukocyte-derived factor is secreted from leukocytes.
The liquid used for the incubation is not particularly limited as long as it keeps the function of leukocytes physiologically. Specifically, it is preferable to use an isotonic solution that does not have an extreme pH and does not impair the function of leukocytes and impair the cytokine secretion mechanism. For example, physiological saline; buffers such as HEPES buffer, phosphate buffer, citrate buffer; and media such as RPMI 1640 for culturing leukocytes.
In addition, for the purpose of stimulating leukocytes during the incubation, lectins such as concanavalin and kidney bean lectin; cytokines such as interferon γ; growth factors such as GM-CSF; Lipopolysaccharide etc. can also be added.
[0045]
The incubation temperature is preferably about 0 to 40 ° C, more preferably about 20 to 40 ° C.
The incubation time is preferably about 10 min to 24 hr, and more preferably about 30 min to 12 hr.
[0046]
By such incubation, leukocyte-derived factor is secreted from leukocytes. Examples of the leukocyte-derived factor include VEGF, αIFN, TGF-β, and bFGF. In the present invention, it is preferable that at least VEGF is included as the leukocyte-derived factor.
[0047]
After this leukocyte incubation step, a surface activation treatment can be performed for the purpose of recovering more leukocyte-derived growth factors as necessary.
The surface activation treatment is performed, for example, by bringing a liquid containing a surfactant into contact with a filter medium that has captured leukocytes. The surfactant is not particularly limited as long as it can dissolve the leukocyte cell membrane, and examples thereof include sodium lauryl sulfate, Triton X-100, and Tween 20.
[0048]
<Recovery process>
After performing the platelet activation treatment step and the leukocyte incubation step, a recovery step for recovering platelet-derived factor and leukocyte-derived factor is performed. Specifically, a liquid containing platelet-derived factor and leukocyte-derived factor is collected.
Here, as the liquid containing the platelet-derived factor and the leukocyte-derived factor, for example, the liquid to be treated that has passed through the filter medium, the cleaning liquid in the case of performing the cleaning process, and the liquid in the case of using the liquid in the platelet activation processing process The liquid in the case where a liquid is used in the leukocyte incubation step can be mentioned. When the platelet / leukocyte capture filter 10 shown in FIG. 1 is used, the liquid is present in the housing 20 immediately before the collection step is performed.
The liquid recovered in this way can be used as a cell growth agent.
[0049]
Specifically, when the platelet / leukocyte capture filter 10 shown in FIG. 1 is used, the recovery step can be performed by discharging the liquid from the inflow port 21 or the outflow port 22.
[0050]
<Cell proliferation agent>
As described above, the liquid collected in the collecting step can be used as a cell proliferating agent containing platelet-derived factor and leukocyte-derived factor.
The cell growth agent of the present invention may be used as it is, or may be used after purification.
[0051]
The cell proliferating agent of the present invention can be used for the treatment of various diseases such as ischemic wounds, refractory wounds such as bruises, burns, etc., but is not particularly limited. Alternatively, it can be applied to a wound or tissue remodeling site where platelet and leukocyte accumulation is observed medically.
In addition, using the angiogenic ability of cell proliferating agents, it can be used for the treatment of various diseases such as improvement of blood flow in ischemic sites due to arterial failure such as obstructive arteriosclerosis, and improvement of blood flow in myocardial infarction sites. You can also. In other words, any disease caused by ischemia can be applied.
[0052]
When the cell proliferation agent of the present invention is applied as a wound healing agent, the form of application is not particularly limited. For example, the cell proliferation agent of the present invention is applied to a wound as a solution, suspension, emulsion, or paste. The method of doing is mentioned.
When the cell proliferating agent of the present invention is applied as an angiogenic agent, the mode of application is not particularly limited. For example, a method of injecting an ischemic site and surrounding tissues using an injection needle, collagen, polylactic acid And a method of embedding it in an ischemic site by incorporating it in a biodegradable matrix such as the above.
[0053]
【Example】
EXAMPLES The present invention will be specifically described below with reference to examples, but the present invention is not limited to these.
[0054]
First, 400 ml of blood was collected from a healthy volunteer into a blood bag (56 ml of ACD (sodium citrate 2.2 w / v%, citric acid 0.8 w / v%, glucose 2.2 w / v%)) and anticoagulated. Blood was prepared and used in Examples 1 to 3 and Comparative Examples 1 to 5 shown below.
[0055]
(Example 1)
First, a substance (MEA / DMAEMA copolymer) for adjusting the zeta potential on the surface of the filter medium was synthesized as follows.
40 g of 2-methoxyethyl acrylate (MEA) and 12 g of 2- (N, N-dimethylamino) ethyl methacrylate (DMAEMA) were dissolved in 240 g of dimethylformamide (DMF). To this solution, 52 mg of azoisobutyronitrile (AIBN) was added and reacted at 75 ° C. for 6 hours under a nitrogen atmosphere. After completion of the reaction, the reaction solution was concentrated. The obtained concentrate was dissolved in about 200 mL of acetone, and this was dropped into about 3 L of hexane and purified. This purification operation was repeated three times. Thereafter, the precipitate was dissolved in about 150 mL of methanol and concentrated, followed by vacuum drying to obtain a MEA / DMAEMA copolymer.
When the composition ratio of the obtained MEA / DMAEMA copolymer was confirmed by NMR, it was MEA / DMAEMA = 75/25.
[0056]
Next, the following three types of polyester nonwoven fabrics were prepared.
(1) Large pore diameter: 30 g / m ² , Thickness 0.25mm, average pore diameter 57.4μm
(2) Medium hole diameter: 20 g / m ² , Thickness 0.15mm, average pore diameter 10.7μm
(3) Small hole diameter: 20 g / m ² , Thickness 0.15mm, average pore diameter 6.0μm
In addition, the average hole diameter of the polyester nonwoven fabric was measured with the palm porometer (made by PMI).
[0057]
These polyester nonwoven fabrics were immersed in a methanol solution having a MEA / DMAEMA copolymer concentration of 0.5% and dried at 70 ° C.
After drying, washing in hot RO water (heated reverse osmosis water) maintained at 80 ° C. and drying again at 70 ° C. to obtain a polyester nonwoven fabric (coated polyester nonwoven fabric) coated with MEA / DMAEMA copolymer It was.
The surface zeta potential of the coated polyester nonwoven fabric was measured with a flow potential measuring device (ZP20H, manufactured by Shimadzu Corporation) using a KCl aqueous solution having a concentration of 0.001 mol / L as a medium, and both were 25 mV.
[0058]
These coated polyester nonwoven fabrics were cut to a diameter of 19 mm. In the housing 20 having the inflow port 21 and the outflow port 22 shown in FIG. 1, three kinds of coated polyester nonwoven fabrics are used as a prefilter member 31 and a main filter member 32 from the inflow port 21 side. Plates were arranged in the order of 30 medium plates and 10 small pore diameters to obtain a platelet / leukocyte trapping filter (effective membrane area 2.0 cm) ² , Volume 14.1cm ^Three ).
[0059]
First, 50 mL of the above-mentioned anticoagulated blood was introduced from the inlet 21 as a liquid to be treated, passed through a coated polyester nonwoven fabric installed in the housing 20, and discharged from the outlet 22.
[0060]
Next, 10 mL of physiological saline was introduced into the housing 20 as a washing solution in the same manner, and the red blood cells and plasma components in the housing 20 were washed and collected.
Thereafter, an empty syringe was attached to the outlet 22 side, and a syringe containing 4 mL of physiological saline was attached to the inlet 21 side. The solution in the syringe on the inlet 21 side is allowed to pass through the housing 20 at a flow rate of 1 mL / second, and the solution is collected in the syringe on the outlet 22 side. It was passed through the housing 20 and collected in a syringe at the inlet 21. This operation was performed 10 times (10 reciprocations) alternately.
[0061]
Subsequently, incubation was performed for 1.5 hr in a 37 ° C. incubator. Thereafter, all of the content liquid was recovered from the syringe on the outlet 22 side to obtain a recovered liquid.
[0062]
(Example 2)
The same operation as in Example 1 was performed except that a syringe containing 4 mL of cell culture medium RPMI 1640 instead of 4 mL of physiological saline was used as the syringe on the inlet 21 side.
[0063]
(Example 3)
A pre-filter member and a main filter member (effective membrane area 2.0 cm) in which two types of coated polyester nonwoven fabric are arranged in order from the inlet 21 side in the housing 20 in the order of four large holes and 40 medium holes. ² , Volume 14.1cm ^Three ) The same operation as in Example 1 was performed except that.
[0064]
(Comparative Example 1)
The same operation as in Example 1 was performed except that incubation was not performed.
[0065]
(Comparative Example 2)
The same operation as in Example 1 was performed except that the following prefilter member and main filter member were used.
The following 1 type of prefilter and 2 types of main filters used for a commercially available leukocyte removal filter for erythrocyte preparation ("Sepacel RZ" manufactured by Asahi Medical Co., Ltd.) were prepared.
[0066]
(4) Prefilter: basis weight 300g / m ² , Thickness 1.12mm, average pore diameter 41.5μm
(5) Main filter pore size: 30g / m ² , Thickness 0.17mm, average pore diameter 27.7μm
(6) Main filter pore size: 41g / m ² , Thickness 0.20mm, average pore diameter 3.0μm
When the zeta potential on the surface of each filter was measured in the same manner as in Example 1, all were 45 mV.
[0067]
Each of these is cut to a diameter of 19 mm, and arranged in the housing 20 as a prefilter member and a main filter member in the order of 10 prefilters, 6 main filter hole diameters, and 24 main filter hole diameters from the inlet side. (Effective membrane area: 2.0 cm ² , Volume 13.8cm ^Three ).
[0068]
(Comparative Example 3)
The following 1 type of prefilter and 1 type of main filter used for the commercially available leukocyte removal filter for platelet preparations ("Imguard III PL" manufactured by Terumo Corporation) were prepared.
[0069]
(7) Pre-filter: 130g / m ² , Thickness 0.60mm, average pore diameter 8.0μm, made of polyurethane foam
(8) Main filter: 130g / m ² , Thickness 0.60mm, average pore diameter 4.0μm, made of polyurethane foam
When the zeta potential on the surface of each filter was measured in the same manner as in Example 1, all were 5 mV.
[0070]
These were each cut to a diameter of 30 mm, and arranged in the housing 20 as a prefilter member and a main filter member in the order of one prefilter and 14 main filter holes from the inlet side (effective membrane area: 7. 1cm ² , Volume 13.8cm ^Three ).
[0071]
First, 50 mL of the anticoagulated blood was introduced from the inlet 21, passed through the prefilter member and the main filter member installed in the housing 20, discharged from the outlet 22, and collected. In addition, this filtrate was used for the comparative example 4 mentioned later.
Next, 10 mL of physiological saline was introduced into the housing 20 in the same manner, and red blood cells and plasma components in the housing 20 were washed and collected.
Subsequently, incubation was performed for 1.5 hr in a 37 ° C. incubator. Thereafter, the entire content liquid was collected from the syringe on the outlet 22 side.
[0072]
(Comparative Example 4)
The same operation as in Example 1 was performed except that about 50 mL of the filtrate collected in Comparative Example 3 was used instead of 50 mL of anticoagulated blood as the liquid to be treated, and no incubation was performed.
[0073]
(Comparative Example 5)
Take 50 mL of the above-mentioned anticoagulated blood in a centrifuge tube and centrifuge at 22 ° C. and 4500 × g for 10 minutes to separate into a plasma fraction, a buffy coat fraction and a red blood cell fraction. Got the minute. The buffy coat fraction is taken in a syringe, and another syringe is directly attached to the syringe, and the buffy coat fraction is reciprocated 10 times between these syringes. It went for 5 hours. After incubation, centrifugation was performed and all the supernatant was collected.
[0074]
The platelet capture rate and leukocyte capture rate in Examples 1 to 3 and Comparative Examples 1 to 5 were calculated. In addition, the PDGF-AB concentration of the liquid to be treated, the washing solution and the recovered solution was measured as an indicator of platelet-derived factor, and the VEGF concentration was measured as an indicator of leukocyte-derived factor.
The results are shown in Table 1. Further, for the collected liquid, the liquid volume and the absolute amounts of PDGF-AB and VEGF are also shown in Table 1. In Table 1, “Comparative Example 3 + 4” indicates the total of Comparative Example 3 and Comparative Example 4.
The platelet capture rate and leukocyte capture rate were obtained by sampling the liquid to be treated and the filtrate, respectively, and determining the platelet count and white blood cell count in the sample with a multi-item automatic blood cell analyzer (“Sysmex SE-9000” manufactured by Sysmex). It measured and computed based on the measurement result.
In addition, the concentrations of PDGF-AB and VEGF were measured by ELISA methods (“Quantikine human PDGF-ABkit” and “Quantikine human VEGF kit” manufactured by R & D Systems), respectively.
[0075]
[Table 1]

[0076]
As is apparent from Table 1, according to the method for producing a cell proliferating agent of the present invention (Examples 1 to 3), platelet-derived growth factor (PDGF) having fibroblast proliferation ability, which is an indicator of platelet-derived factor. Was recovered at a concentration as high as about 10 times that of the liquid to be treated (anticoagulated blood). In addition, according to the method for producing a cell proliferating agent of the present invention (Examples 1 to 3), a vascular endothelial growth factor (VEGF) having angiogenic ability, which is an index of a leukocyte-derived factor, is treated with liquid (anticoagulated blood). About 13,000 to 20,000 times greater than that of the sample, and was recovered at a very high concentration.
In particular, when the pore diameter of the filter medium was inclined (Examples 1 and 2), the recovery rate of platelets and leukocytes was extremely high, and as a result, the PDGF concentration and VEGF concentration of the recovery solution were extremely high. That is, it was confirmed that the pore diameter of the filter medium is useful.
[0077]
On the other hand, when the leukocyte incubation step was not performed (Comparative Example 1), the VEGF concentration was extremely lower than that of the Example, and the usefulness of incubation after capturing leukocytes was confirmed.
[0078]
In addition, when an existing leukocyte removal filter (platelet trapping type) was used (Comparative Example 2), a VEGF concentration comparable to that of the Example was obtained, but the PDGF concentration was extremely lower than that of the Example. That is, it was confirmed that the existing leukocyte removal filter (platelet capture type) has a high platelet capture rate but cannot efficiently collect platelet-derived factors. This is considered to be because the captured platelets are already activated at the stage of flowing the liquid to be treated and the washing liquid, and the platelet-derived factor is discharged together with the liquid to be treated and the washing liquid. This is supported by the fact that the concentration of PDGF in the cleaning solution is higher than that in Examples.
[0079]
Furthermore, when leukocyte capture and platelet capture were performed with different filter media (Comparative Examples 3 and 4), the absolute amounts of recovered PDGF and VEGF were at the same level as in the Example, but the concentration was low. Therefore, the method for producing a cell proliferating agent of the present invention capable of capturing platelets and leukocytes with the same filter medium and recovering factors from the captured platelets and leukocytes is useful from the viewpoint of performance and operability. I understand.
[0080]
Further, when the leukocyte platelet suspension prepared from whole blood was treated in the same manner as in Example 1 (Comparative Example 5), the PDGF concentration and the VEGF concentration were lower than in the Example.
[0081]
From the above results, it can be seen that in Examples 1 to 3, platelet-derived factor and leukocyte-derived factor could be recovered at a high concentration at the same time as in Comparative Examples 1 to 5.
[0082]
【The invention's effect】
As described above in detail, according to the method for producing a cell proliferating agent of the present invention, after passing a solution containing platelets and leukocytes through a filter medium capable of capturing platelets and leukocytes, the activity of the platelets captured by the filter medium A cell growth agent with wound healing ability consisting mainly of platelet-derived and leukocyte-derived factors and vascular endothelial growth factor can be easily obtained in a closed system (closed system). Can do.
Moreover, since the cell proliferating agent of the present invention contains the above factor at a high concentration, it is suitably used for treatment.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is an exploded perspective view showing a configuration of an example of a platelet / leukocyte trapping filter incorporating a filter medium used in the present invention.
[Explanation of symbols]
10 Platelet / Leukocyte Capture Filter
20 Housing
21 Inlet
22 Outlet
31 Pre-filter material
32 Main filter material

Claims

A treatment liquid containing platelets and leukocytes is coated with a copolymer containing alkoxyalkyl (meth) acrylate and / or hydroxyalkyl (meth) acrylate and alkylaminoalkyl (meth) acrylate as constituent units, Passing through a filter medium made of a polyester nonwoven fabric whose surface zeta potential is adjusted to 15 to 30 mV , and capturing the platelets and the white blood cells in the liquid to be treated by the filter medium;
A platelet activation treatment step of activating the platelets trapped in the filter medium and secreting platelet-derived growth factor;
A leukocyte incubation step for incubating the leukocytes captured by the filter medium and secreting vascular endothelial growth factor after or before the platelet activation treatment step;
And a recovery step of recovering the platelet-derived growth factor and the vascular endothelial growth factor to obtain a cell growth agent.

The method for producing a cell proliferating agent according to claim 1, wherein the activation treatment is performed by applying a stimulus by bringing a liquid comprising physiological saline or a buffer solution into contact with the platelets.

3. The method for producing a cell proliferating agent according to claim 1, further comprising a washing step of washing the platelets and white blood cells captured by the filter medium by passing a washing solution through the filter medium after the capturing step.