JP3986726B2

JP3986726B2 - Pesticide application method

Info

Publication number: JP3986726B2
Application number: JP2000130818A
Authority: JP
Inventors: 義広田口; 秀樹渡辺; 太川根; 茂樹千田
Original assignee: Idemitsu Kosan Co Ltd; Gifu Prefecture
Current assignee: Idemitsu Kosan Co Ltd; Gifu Prefecture
Priority date: 2000-04-28
Filing date: 2000-04-28
Publication date: 2007-10-03
Anticipated expiration: 2020-04-28
Also published as: JP2001302407A

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、作物を栽培又は貯蔵する施設内に農薬、特に微生物製剤を散布する方法に関する。本発明は、農業、流通分野において有用である。
【０００２】
【従来の技術】
農作物の栽培過程において、当該作物に被害を与えてその生産性を著しく低下させる原因の一つとして、農作物を食害する害虫や、農作物に発生する病害などがある。これらを防除する手段としては、市販されている農薬や、これらを防除する能力を持った有用微生物を散布する手段がある。従来の農薬や有用微生物の散布方法は、これらを水などに溶解して薬液を調製し、専用の噴霧器等を用いて目的とする作物に直接散布する。
【０００３】
しかし、上記のような従来の方法では、薬液を調製するための大量の水と、作物に散布するために専用の散布器具が必要である。さらに、薬液の調製から散布までの工程が煩雑で手間がかかり、農業の省力化を大きく妨げる要因でもある。
【０００４】
また、通常の農薬散布では、防除対象物である植物にのみ薬剤を散布するため、温室など施設内全体の病原菌や害虫密度を低下させる効果が完全とは言えない。
さらに、化学農薬であれば施設内に放出されても分解されその効力を失うため、繰り返し上記作業を行う必要があり労力がかかる。その上、化学農薬を用いる場合には、作業者が農薬に暴露されることとなり安全性に問題がある。
【０００５】
上記方法に対し、化学農薬を粉状のままハウス内に、動力噴霧器を用いて散布する方法が提案されている（特公平７−３９３２３号）。しかし、この場合にも、例えば粉末を直接散布する場合には、環境中に高濃度の農薬が放出されるため、作業者の安全性はさらに改悪される。また、散布するという作業が必要であり、手間がかかる点においては何等の改善とはなっていない。
【０００６】
一方、微生物製剤を病害や害虫の防御に用いる場合であっても、温室など施設内においては、製剤を水に溶解して散布すれば、水分が施設内に放出されるため、施設内の湿度が上昇して病害の発生や助長を促すという問題が残る。
また、収穫後に保管中の収穫物も、水に懸濁した形で農薬を散布すると、保管室内の湿度が上昇して病害の発生を助長するおそれがある。さらに、化学農薬を散布することは作物の安全性の面から問題がある。
【０００７】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、効率よく、かつ、安全に、好ましくは施設内の湿度を高めることなく農薬、特に微生物製剤を散布する方法を提供することを課題とする。
【０００８】
【課題を解決するための手段】
本発明者は、上記課題を解決するために鋭意検討を行った結果、微生物製剤を、送風装置等を利用した風力によって拡散させることにより、効率よく、しかもまんべんなく微生物製剤を散布することに成功し、本発明を完成するに至った。
すなわち本発明は次のとおりである。
【０００９】
（１）作物を栽培又は貯蔵する施設内に、微生物を有効成分とする微生物製剤を散布する方法であって、前記微生物製剤は、前記施設内に送風する送風装置の送風口付近に設置される収容部に収容され、前記送風口から送出される空気とともに徐々に放出されることを特徴とする、微生物を有効成分とする微生物製剤の散布方法。
（２）前記送風装置が、前記施設内の冷暖房又は空気交換に用いられる装置である（１）記載の方法。
（３）前記送風装置には複数のダクトが設置され、かつ前記収容部は２又は３以上のダクト毎に設置される、（１）又は（２）記載の方法。
（４）前記微生物製剤は、網目状構造を有する素材から構成される袋状容器又は箱状容器に充填され、前記収容部に収容される、（１）〜（３）の何れか記載の方法。
（５）前記袋状容器の素材が、ゴース布、ガーゼ又はパンティストッキングである、（４）記載の方法。
（６）前記袋状容器の素材は、２重又はそれ以上に重ねて用いる、（４）又は（５）記載の方法。
（７）前記微生物製剤は、粉末状又は顆粒状である（１）〜（６）の何れか記載の方法。
（８）前記微生物製剤は、細菌または糸状菌を含む（１）〜（７）の何れか一項記載の方法。
（９）前記細菌がバチルス属細菌である（８）記載の方法。
（１０）前記糸状菌が、グリオクラディウム属、タラロマイセス属又はケトミウム属に属する糸状菌から選ばれる（８）記載の方法。
（１１）前記バチルス属細菌が、バチルスズブチリス又はバチルスチューリンゲンシスである（９）記載の方法。
（１２）前記グリオクラディウム属に属する糸状菌がグリオクラディウムヴィレンスである（１０）記載の方法。
（１３）前記タラロマイセス属に属する糸状菌がタラロマイセスフラバスである（１０）記載の方法。
（１４）前記ケトミウム属に属する糸状菌がケトミウムオーレウムである（１０）記載の方法。
（１５）収穫後又は出荷後の作物への病害の発生を防除するために、作物の収穫前に微生物製剤を散布する（１）〜（１４）の何れか記載の方法。
【００１０】
また、水を用いることなく、温室など施設全体に農薬を散布できるため、病害の発生を助長しない。
特に、微生物製剤を用いる場合は、人体や環境に安全な有用微生物を選択することができるため、作業者の安全性が完全に確保される。また環境中に生存、増殖可能な微生物を用いることにより、施設内を長期間、病原菌や害虫から保護する効果が期待できる。
【００１１】
さらに、本発明の方法を収穫直前の作物に実施することにより、収穫、出荷後にも収穫物を病害から保護することができる。また、本発明の方法は、収穫後の収穫物に対しても適用することができる。
【００１２】
【発明の実施の形態】
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明は、作物を栽培又は貯蔵する施設内に、作物を病害又は害虫から防除するための農薬を散布する方法に関する。本発明においては、農薬を風力によって施設内に拡散させる。
【００１３】
農薬を風力によって施設内に拡散させる具体的な方法としては、農薬が施設内に、好ましくは均一に、かつより好ましくは長期間にわたって拡散することができれば特に制限されないが、施設内に送風する送風装置の送風口付近に農薬を設置し、送風口から送出される空気とともに農薬を散布する方法が挙げられる。送風装置としては、農薬散布専用の送風装置を設置してもよいが、通常、施設内の冷暖房又は空気交換に用いられる冷暖房機や送風機等の装置を、農薬散布に兼用することが、経済的観点からは好ましい。
【００１４】
上記のような送風装置の送風口付近に、農薬を収容する収容部を設置し、同収容部に農薬を収容すると、農薬を徐々に放出させることができる。収容部は、送風装置の内部又は吸気口付近に設置することも可能であるが、送風装置への影響を考慮すると、送風口付近が好ましい。また、収容部は、農薬が送風口から送出される空気によって拡散させることが可能な限り、送風口から離れていても差し支えない。本発明において、送風口「付近」とは、このように送風口から送出される空気が農薬を拡散させる作用を及ぼすことができる位置をいう。
【００１５】
また、送風装置に複数のダクトが設置されている場合には、２又は３以上のダクト毎に収容部を設けることが好ましい。
収容部は、農薬、通常は粉末状又は顆粒状の農薬を収容し、風を受けたときに農薬を徐々に拡散させることができるものであれば、形状、素材等は特に制限されないが、具体的にはメッシュ状の容器が挙げられる。農薬は、収容部にそのまま収容してもよいが、有用微生物又は有用微生物含有組成物をそのまま上記場所に設置する。例えば、農薬を、網目状構造を有する素材から構成される袋状又は箱状容器内に充填し、同容器を送風口付近に設置する。この場合、前記袋状容器は、送風口付近に懸架させる等して直接設置してもよく、別途設けた収容部内に収容させてもよい。
前記袋状容器の表面に、任意の大きさで着脱可能であり、かつ、風を通さない素材、例えばシールを貼り付け、農薬をリリースする量に応じて任意の面積のシールをはがすことにより、拡散量を調整することができる。
【００１６】
袋状容器の素材は、拡散量を調整する目的で、その材質、網目の大きさを決定することが好ましい。具体的には、例えば、ゴース布、ガーゼやパンティストッキング等が挙げられる。これらの素材は、２重やそれ以上に重ねて用いると効果的な場合がある。
【００１７】
農薬の飛散量は、風速、収容部のメッシュの大きさ、袋状容器の網目の大きさ、農薬粉末の粒径等によって調整することができる。
収容部の具体例を、図１に示す。断面が長方形であり、両端に開口部（４）を有するトレーを収容部本体（１）とし、一方の開口部（４）をメッシュ（３）で覆う。トレー内部に農薬（３）を収容し、メッシュ（３）で覆った開口部（４）を送風機のダクトに連設する。
【００１８】
本発明を適用する施設としては、温室等の作物を栽培する施設が挙げられるが、ポストハーベスト農薬を用いる場合は、収穫後の作物を貯蔵する施設にも適用することができる。本発明の方法の好ましい態様によれば、農薬を長期間にわたって散布することができるので、特に作物の栽培施設が好ましい。
【００１９】
本発明を適用する作物は、温室や何らかの施設内で栽培される作物であれ特に制限されない。具体的には、キュウリ、トマト、イチゴ、スイカ等が挙げられる。
また、本発明において農薬散布の対象となる病害又は害虫も、特に制限されないが、植物の主に地上部に発生する病害や、地上部を食害する害虫に対して、好適に適用される。
【００２０】
本発明に用いる農薬は、粉末状又は顆粒状であることが好ましい。特に、実質的に液体を含まない農薬を用いると、農薬の散布に伴う湿度の上昇を回避することができる。
【００２１】
農薬散布の目的は、作物の病害又は害虫からの防除が挙げられる。具体的には、栽培施設内における栽培中の作物、又は収穫後もしくは出荷後の貯蔵施設内における作物への病害の発生の防除が挙げられる。また、作物の育成促進等を目的として本発明を適用することもできる。
【００２２】
本発明の方法に用いる農薬としては、微生物を有効成分とする微生物製剤が特に好適である。
微生物製剤の有効成分としての微生物は、特に制限されず、細菌、又は、糸状菌、酵母などの真菌が、単独又は複数組み合わせて用いられる。
【００２３】
細菌としては、アルカリゲネス属（Alcaligenes）、アゾトバクター属（Azotobacter）、バチルス属（Bacillus）、エルヴィニア属（Erwinia）、バークホルデリア属（Burkholderia）、シュードモナス属（Pseudomonas）、セラチア属（Serratia）、ロドコッカス属（Rhodococcus）、ラクトバチルス属（Lactobacillus）、クロストリディウム属（Clostridium）、マイクロコッカス属（Microchoccus）、マイコバクテリウム属（Mycobacterium）、ザントモナス属（Xanthomonas）、リゾビウム属（Rhizobium）、パエニバチルス属（Paenibacillus）、チオバチルス属（Tiobacillus）等に属する細菌、及び、ストレプトマイセス属（Streptomyces）等に属する放線菌等が挙げられる。
【００２４】
より具体的には、アルカリゲネスオドランス（Alcaligenes odorans）、バチルスズブチリス（Bacillus subtilis）、バチルスメガテリウム（Bacillus megaterium）、バチルスセレウス（Bacillus cereus）、バチルスチューリンゲンシス（Bacillus thuringiensis）、バチルスポリミキサ（Bacillus polymyxa）、バチルスサーキュランス（Bacillus circulans）、バチルスコーギュランス（Bacillus coagulans）、バチルスラルバー（Bacillus larvae）、バチルスレンタス（Bacillus lemtus）、バチルスリケニフォルミス（Bacillus licheniformis）、バチルスプミルス（Bacillus pumils）、エルヴィニアカロトボーラ（Erwinia carotovora）、シュードモナスフルオレッセンス（Pseudomonas fluorecsens）、ザントモナスキャンペストリス（Xanthomonas campestris）、パエニバチルスマセランス（Paenibacillus macerans）、ストレプトマイセスグリセウス（Streptomyces griseus）等が挙げられる。
【００２５】
また、糸状菌及び酵母としては、グリオクラディウム属（Gliocladium）、トリコデルマ属（Trichoderma）、アスペルギルス属（Aspergillus）、ペニシリウム属（Penicillium）、アルタナリア属（Alternaria）、ヘルミンソスポリウム属（Herminthosporium）、タラロマイセス（Talaromyces）、ケトミウム属（Chaetomium）、リゾクトニア属（Rhizoctonia）、ボーベリア属（Bauverria）、メタリジウム属（Metarhizium）、バーティシリウム属（Verticillium）等に属する糸状菌、及び、サッカロマイセス属（Saccharomyces）等に属する酵母が挙げられる。
【００２６】
より具体的には、グリオクラディウムヴィレンス（Gliocladium virens）、トリコデルマハルジアナム（Trichoderma harzianum）、タラロマイセスフラバス（Talaromyces flavus）、ケトミウムオーレウム（Chaetomium aureum）、ボーベリアバシアナ（Bauverria bassiana）、メタリジウムアニソプリー（Metarhizium anisopliae）、バーティシリウムレカニー（Verticillium lecanii）等が挙げられる。
【００２７】
本発明に用いる微生物製剤の剤型は、風力によって散布できるものであれば特に制限されず、通常の微生物製剤の製造方法によって製造したものを用いることができる。また、微生物の形態は、用いる微生物によって適宜設定すればよく、目的とする効果が最大限に得られる形態であれば、菌糸、胞子、芽胞等何でもよい（微生物製剤については、特開平８−４０８１５号、特開平８−１０９１０９号、特開平８−１７５９１９号、特開平８−１７５９２０号、特開平８−１７５９２１号等参照）。
【００２８】
本発明においては、微生物製剤は、実質的に液体を含まない粉末状又は顆粒状であることが好ましい。具体的には、微生物を乾燥した粉末（水分含量は概ね２０重量％以下、粒径は概ね５００μｍ以下）をそのまま用いてもよく、微生物の効果を高めるために、適当な物質を添加した組成物として用いてもよい。そのような物質としては、カオリンクレー、パイロフェライトクレー、ベントナイト、モンモリトナイト、珪藻土、合成含水酸化ケイ素、酸性白土、タルク類、粘土、セラミック、石英、セリサイト、バーミキュライト、パーライト、大谷石、アンスラ石、石灰岩、石炭灰、ゼオライトなどの鉱物質微粉末や、籾殻、フスマ、カニ殻、エビ殻、オキアミ微粉末、米糠、小麦粉、トウモロコシ穂軸、落花生殻、骨粉、魚粉、粕粉、鋸屑、木粉、炭、くん炭、バーク炭、籾殻くん炭、草木灰、ピートモス、アタパルジャイト、草炭、乾燥畜糞、活性炭、油粕、脱脂大豆粉などの有機物微粉末等の、増量材又は微生物の栄養源、
農薬用各種界面活性剤、でんぷん、アラビアゴム、デキストリン、ポリビニルピロリドン、ポリアクリル酸、ポリビニルアルコール、メチルセルロースなどのセルロース誘導体等の、植物への付着性向上材、等が挙げられる。
【００２９】
本発明により散布する微生物製剤の施用量は、施用形態によって適宜設定する。例えば、製剤の散布量としては、概ね１０〜１，０００ｇ／１０ａ（アール）程度が挙げられる。また、製剤中の有効微生物の濃度は、微生物によっても異なるが、概ね１×１０⁴〜１×１０¹⁷有効微生物／ｇ程度、好ましくは１×１０⁵〜１×１０¹⁶有効微生物／ｇ、より好ましくは１×１０⁶〜１×１０¹⁵有効微生物／ｇ程度が挙げられる。
【００３０】
散布は、作物の栽培前、栽培開始後〜栽培終了時の適当な時期に行う。作物の収穫時又は出荷後の作物への病害の発生を防除するためには、作物の収穫前に散布を行う。
【００３１】
【実施例】
以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明する。
【００３２】
【製剤例１】バチルスズブチリス菌を用いた製剤の製造
ＹＰＳ（Yeast Peptone Sucrose）培地１０ｍｌが入った試験管に、凍結保存されたバチルスズブチルスＮＣＩＢ１２３７６株を植菌し、３０℃で１日間振とう培養した。培養物を０．１重量％になるよう、同じくＹＰＳ培地が１５Ｌ入った３０Ｌ容ジャーファメンターに植菌した。３０℃で２日間培養後、遠心分離機を用いて菌体を回収し、これを噴霧乾燥機を用いて乾燥した。
【００３３】
上記のようにして得たバチルスズブチリスＮＣＩＢ１２３７６株の乾燥粉末１０重量部に、タルク６０重量部、栄養源として脱脂大豆粉を１５重量部、付着剤として界面活性剤を１５重量部を加え、ジェット粉砕機を用いて微粉砕した後に、リボンブレンダーにてよく攪拌混合し、製剤（１）を得た。
【００３４】
【製剤例２】グリオクラディウムヴィレンスを用いた製剤の製造
ポテトデキストロース培地中に、凍結乾燥保存されたグリオクラディウムヴィレンスＡＴＣＣ４２９５５株の種菌を植菌し、２８℃で２４時間、振とう培養した。培養担体である押麦５００ｇに、培養液と滅菌水を合わせたものを３５０ｍｌ添加し、縦３６ｃｍ、横２２ｃｍ、深さ６ｃｍのトレー中に、厚さ５ｃｍ程度になるように入れた。トレーの上から通気孔がある蓋をして、２８℃で１０日間静置培養した。培養期間中は光が当るような条件で培養し、培養３日目に担体全体がよく混ざるように攪拌した。培養終了後、培養物を乾燥トレーに全て移して、厚さ１ｃｍ程度に薄く広げ、表面をろ紙で覆って３０〜３５℃の乾燥機で２４時間乾燥した。この時の水分は５重量％であった。この乾燥物を粉砕してグリオクラディウムヴィレンスＡＴＣＣ４２９５５株の乾燥胞子粉末を得た。これを製剤（２）とした。
【００３５】
【製造例３】タラロマイセスフラバスを用いた製剤の製造
ポテトデキストロース寒天培地上に、斜面培養物として保存されたタラロマイセスフラバス菌（土壌から分離した）から菌糸を取得し、静置した。２５℃で５日間培養した後、菌が生育した寒天培地に滅菌水を添加した後に、コンラージ棒を用いて胞子を回収し、室温にて風乾し、タラロマイセスフラバス菌の乾燥粉末を得た。タラロマイセスフラバス菌の乾燥粉末５０重量部に、栄養源としてふすま微粉砕物を４０重量部、付着剤として農薬用界面活性剤を１０重量部加えてよく攪拌混合し、製剤（３）を得た。
【００３６】
【製造例４】ケトミウムオーレウムを用いた製剤の製造
抗生物質ストレプトマイシンを最終濃度で１００ｐｐｍ含有するポテトデキストロース培地上に、斜面培養物として保存されたケトミウムオーレウムＩＦＯ３０９１６株の斜面培養物から取得した菌叢を静置した。２８℃で７日間培養した後、菌が生育した寒天培地に０．５重量％のＴｗｅｅｎ２０を加えた滅菌水を添加し、ガラス棒を用いて菌叢表面を掻き取るようにして、胞子及び菌糸類の含有物を得た。これを３７℃の恒温槽内にて１２時間乾燥し、ケトミウムオーレウムＩＦＯ３０９１６株の乾燥粉末を得た。ケトミウムオーレウムＩＦＯ３０９１６の菌乾燥粉末７０重量部に、栄養源としてもみがら微粉砕物を３０重量部加えてよく攪拌混合し、製剤（４）を得た。
【００３７】
【製造例５】バチルスチューリンゲンシスを用いた製剤の製造
ＹＰＳ培地に、凍結保存されたバチルスチューリンゲンシスＡＴＣＣ３３６７９株を植菌し、３５℃で５日間振とう培養した。培養後、培養物全てを凍結乾燥器を用いて乾燥した。乾燥物を粉砕し、バチルスチューリンゲンシスの乾燥粉末を得た。バチルスチューリンゲンシスＡＴＣＣ３３６７９株の乾燥粉末１０重量部に、タルク５０重量部、付着剤として農薬用界面活性剤を４０重量部加えてよく攪拌混合し、製剤（５）を得た。
以上の製造例で得た製剤の組成を、表１に示す。
【００３８】
【表１】

【００３９】
【実施例１】
植物病虫害防除試験（１）
バチルスズブチリスを用いた製剤（１）のキュウリ灰色かび病防除試験を行った。
【００４０】
（１）試験設計
試験設計を以下に示す。対照として、製剤を散布したハウスに隣接するハウスを無処理区とした。
作物：キュウリ（品種：台木ニュースーパー雲竜、穂木シャープ１）
面積：３ａ
期間：１１〜１２月
暖房機：竹沢温風暖房機ＦＯＨ４０３型
設定温度：最低１１月１２℃、１２月１３℃
【００４１】
（２）微生物製剤の散布
キュウリを栽培しているハウスに設けられた暖房機の主ダクト、導風ダクトである子ダクトの出口、計６ヶ所のすぐ上流に、ガーゼで２重にくるんだ製剤（１）を充填した。充填量は、計６ヶ所の充填量の合計が３００ｇ／１０ａの散布量になるように設定した。
【００４２】
（３）微生物拡散の評価
製剤（１）の処理区の任意の４点に、バチルスズブチリスＮＣＩＢ１２３７６株を捕捉するための寒天培地をおき、１６時間暴露した後に、２５℃で４日間インキュベートし、形成されたコロニー数を計測した。捕捉用寒天培地は地上部から２ｍの位置になるよう設置した区（上部）と、地上に直接置いた区（下部）を設けた。結果を表２に示す。
【００４３】
【表２】

【００４４】
表２に示すように、ハウス内の上部、下部ともに十分な量のバチルス属菌が捕捉され、また上部と下部との差もほとんどなかった。このことから、施設内の水平位置、垂直位置に関わらず、まんべんなくバチルス属菌が拡散されていた。
【００４５】
（４）防除効果の評価
処理区及び無処理区（対照区）の果実をそれぞれ調査して、その中での発病果実率を算出し、下の式に従って防除価を求めて病害防除効果を確認した。全果実の防除価を表３に示した。
【００４６】
【数１】

【００４７】
【表３】

【００４８】
また、処理区のキュウリの花弁を採取し、定着したバチルス菌の菌数を測定した結果を表４に示した。
【００４９】
【表４】

【００５０】
その結果、処理区のキュウリの花弁には、バチルス菌が良好に定着しており、病害防除効果が発揮されていた。
【００５１】
【実施例２】
植物病虫害防除試験（２）
グリオクラディウムヴィレンスを用いた製剤（２）のトマト灰色かび病防除試験を行った。
【００５２】
（１）試験設計
試験設計を以下に示す。対照として、同じ型のハウスを無処理区とした。
作物：トマト（品種：ハウス桃太郎）
暖房機：ネポンハウス加温機ＨＫ−４０２０
【００５３】
（２）微生物製剤の散布
製剤（２）を、図１で例示するような設置器具に設置し、設置器具をトマトを栽培している２棟のハウス（Ａ施設及びＢ施設）の暖房機の送風ダクトの左右の親ダクト計２個所に設置した。親ダクトからはＡ施設では左側で３本、右側で４本、左右計７本の子ダクトである導風ダクトに分かれている。また、Ｂ施設では左右各２本の子ダクトである導風ダクトに分かれている。各送風ダクトには任意の計５ヶ所、上部に穴（７．５ｃｍ×７．５ｃｍ）をあけ、またダクト先端の下部は半分程度閉じた。処理量は、５０ｇ／１０ａになるよう処理した。
【００５４】
（３）微生物拡散の評価
図２に示すような位置の地上部分に、グリオクラディウム属菌捕捉用寒天培地を設置し、グリオクラディウム属菌が確実に拡散されていることを確認した。これは無処理区でも同様に設置した。暖房機運転開始１日後、菌捕捉用シャーレを８時間ハウス内に静置したときの捕捉菌数を表５に示す。
【００５５】
【表５】

【００５６】
捕捉地点に関わらず、効果を発揮するのに十分な量の有用微生物が拡散していた。
【００５７】
（４）防除効果の評価
処理区及び無処理区（対照区）のトマト果実をそれぞれ調査して、その中での発病果実率を算出し、前記式に従って防除価を算出して病害防除効果を確認した。全果実の防除価を表６に示した。
【００５８】
【表６】

【００５９】
処理区では、対照区である無処理区と比較して高い病害防除効果が得られた。
【００６０】
【実施例３】
植物病虫害防除試験（３）
タラロマイセスフラバスを用いた製剤（３）のイチゴうどんこ病防除試験を行った。
【００６１】
（１）試験設計
試験設計を以下に示す。対照として、処理区と同面積の区画を無処理区とした。
作物：イチゴ（品種：女峰）
栽培方法：１ａ当り８７０株になるよう栽植した。
【００６２】
面積：３．５ｍ²の面積を１試験区とし、それぞれ処理区と無処理区をそれぞれ２反復実施した。
【００６３】
（２）微生物製剤の散布
図１に示すような器具を、２ヶ所ある送風機の親ダクトの出口に１個ずつ設置した。風入り口には１５０メッシュのメッシュを設置した。処理量は、５００ｇ／１０ａとなるよう製剤（３）を設置した。
【００６４】
（３）防除効果の評価
各区中央１５株の上位３複葉（９小葉）について、発病状況を下のように程度別に調査し、発病小葉率及び発病度を各区の平均として算出した。
【００６５】
【数２】
発病度＝Σ（程度別発病小葉数×指数）×１００÷（調査小葉数×４）
（但し、指数は、以下に示すとおりである。）
【００６６】
０：発病を認めない
１：病斑面積が２５％未満
２：病斑面積が２５％以上５０%未満
３：病斑面積が５０％以上７５％未満
４：病斑面積が７５％以上
発病度より、処理区の防除価を下記式に従って算出した。結果を表７に示す。
【００６７】
【数３】

【００６８】
【表７】

【００６９】
表７に示すように、処理区では、無処理区と比較して著しく発病度が低く、高い病害防除効果が得られた。
【００７０】
【実施例４】
植物病虫害防除試験（４）
ケトミウムオーレウムを用いた製剤（４）のイチゴ灰色かび病の防除試験を行った。
【００７１】
（１）試験設計
試験設計を以下に示す。対照として、処理区と隣接するハウス内に上記と同様の条件で栽培したものを無処理区とした。
作物：イチゴ（品種「とちおとめ」）
定植：９月９日
面積：１区２．７５ｍ²、２０株／区、３区制
（２）微生物製剤の散布
図１に示すような器具内に製剤（４）を充填し、暖房機の親ダクトから伸びる計８本の各導風ダクトの分岐部分に配置した。処理量は計８ヶ所の設置で９００ｇ／１０ａの割合になるよう設置した。
【００７２】
（３）防除効果の評価
４月１２日、４月１９日、４月２６日に各区の熟果について発病の有無を調査し、発病果実率を算出した。発病果実率の割合を基に前記化１式にて防除価を算出した。結果を表８に示す。
【００７３】
【表８】

【００７４】
表８に示すように、試験区では、無処理区と比較して高い病害防除効果が得られた。
【実施例５】
植物病虫害防除試験（５）
バチルスチューリンゲンシスを用いた製剤（５）のメロンに発生したウリノメイガの防除試験を行った。
【００７５】
（１）試験設計
試験設計を以下に示す。対照として、製剤を散布したハウスに隣接するハウスを無処理区とした。
作物：メロン（品種「アールス」）
面積：２３０ｍ²／区
定植：３月２５日
【００７６】
（２）微生物製剤の散布
図１に例示されるような器具内に製剤（５）を充填し、暖房機を利用して送風した。親ダクトから各導風ダクトに分岐される１ヶ所に設置した。定植後１０日と２０日後に処理した。処理量は３００ｇ／１０ａとなるよう設置した。処理は夕方行い、ハウスは朝まで閉じた。
【００７７】
（３）防除効果の評価
２回目処理日、及び１０日後ウリノメイガの被害葉、食害痕を調査した。結果を表９に示す。
【表９】

【００７８】
表９に示すように、処理区では、無処理区と比較して高い害虫防除効果が示された。
【実施例６】
植物病虫害防除試験（６）
製剤（１）を用いて、収穫後の果実の灰色かび病防除効果を調べた。
（１）試験設計
試験設計を以下に示す。対照として、隣接するハウスを無処理区とした。
作物：イチゴ（品種「濃姫」）
面積：５５０ｍ²／区
【００７９】
（２）微生物製剤の散布
製剤（１）の組成物を、図１に例示されるような器具内に、３００ｇ／１０ａとなるよう充填し、暖房機の親ダクトから計６本に分岐される各導風ダクトの入り口部分にそれぞれ設置し、栽培期間中２週間に１回の割合で充填された製剤（１）を交換又は再充填した。
【００８０】
（３）防除効果の評価
試験開始１ヶ月後に、各区から果実を収穫し、発病果実率を算出した。結果を表１０に示す。また、別に収穫した果実を通常出荷する方法に従って梱包し、７〜２３℃程度の温度条件下にて５日間保管した後に、任意に選抜された果実計３００個について灰色かび病の発病の有無を判定して発病果実率を算出し、防除価を算出した。結果を表１１に示す。
【００８１】
【表１０】

【表１１】

【００８２】
表１０、１１に示すように、作物の栽培期間中はもちろん、さらに収穫後の作物についても病害防除効果が発揮されていた。
【００８３】
【発明の効果】
本発明により、温室などの栽培施設内の作物に、効率よく、かつ、安全に微生物製剤等の農薬を散布することができる。また、粉末又は顆粒状の農薬を用いることにより、施設内の湿度を高めることなく、農薬を散布することができる。さらに、好適な実施態様においては、農薬を長期間にわたって散布することができうる。
【図面の簡単な説明】
【図１】本発明において農薬を収容するのに用いる収容部の一例を示す図。
【図２】実施例２において、グリオクラディウム属菌の飛散の評価を行った施設内の部位を示す図。
【符号の説明】
１．収容部本体
２．農薬
３．メッシュ
４．開口部[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to a method for spraying agricultural chemicals, particularly microbial preparations, in a facility for growing or storing crops. The present invention is useful in the agriculture and distribution fields.
[0002]
[Prior art]
In the cultivation process of agricultural crops, one of the causes of causing damage to the crops and significantly reducing their productivity is pests that feed on the crops and diseases that occur in the crops. As means for controlling these, there are commercially available agricultural chemicals and means for spraying useful microorganisms having the ability to control them. In the conventional spraying method of agricultural chemicals and useful microorganisms, these are dissolved in water or the like to prepare a chemical solution and sprayed directly onto the target crop using a special sprayer or the like.
[0003]
However, the conventional method as described above requires a large amount of water for preparing a chemical solution and a dedicated spraying device for spraying on a crop. Furthermore, the process from preparation of chemicals to spraying is complicated and time-consuming, which is a factor that greatly hinders labor saving in agriculture.
[0004]
In addition, since the spraying of chemicals only to plants that are the target of control in normal pesticide spraying, it cannot be said that the effect of reducing the density of pathogens and pests throughout the facility such as a greenhouse is complete.
Furthermore, if it is a chemical pesticide, it will be decomposed and lose its effectiveness even if it is released into the facility. In addition, when chemical agrochemicals are used, workers are exposed to the agrochemicals, which causes safety problems.
[0005]
In contrast to the above method, there has been proposed a method of spraying chemical pesticides in a house in a powder form using a power sprayer (Japanese Patent Publication No. 7-39323). However, also in this case, for example, when powder is directly sprayed, a high concentration of agricultural chemicals is released into the environment, so that worker safety is further deteriorated. Moreover, the operation | work of spraying is required and it does not improve at all in the point which takes time.
[0006]
On the other hand, even in the case where microbial preparations are used to protect against diseases and pests, if the preparations are dissolved in water and sprayed in facilities such as greenhouses, moisture is released into the facilities, so the humidity in the facilities The problem remains that the rise of the disease promotes the occurrence and promotion of diseases.
In addition, if the crops that are being stored after harvesting are sprayed with agricultural chemicals in a suspended form in water, the humidity in the storage chamber may increase and promote the occurrence of disease. Furthermore, spraying chemical pesticides is problematic in terms of crop safety.
[0007]
[Problems to be solved by the invention]
An object of the present invention is to provide a method for spraying agricultural chemicals, particularly microbial preparations, efficiently and safely, preferably without increasing the humidity in the facility.
[0008]
[Means for Solving the Problems]
As a result of intensive studies to solve the above problems, the present inventor succeeded in spreading the microbial preparation efficiently and evenly by diffusing the microbial preparation by wind power using a blower or the like. The present invention has been completed.
That is, the present invention is as follows.
[0009]
(1) In a facility that cultivates or stores crops,Microbial preparations containing microorganisms as active ingredientsA method of spraying saidThe microorganism preparation is housed in a housing portion installed in the vicinity of the air outlet of a blower that blows air into the facility, and is gradually released together with the air sent from the air outlet. Microbial preparationSpraying method.
(2)The method according to (1), wherein the blower is an apparatus used for air conditioning or air exchange in the facility.
(3) The method according to (1) or (2), wherein the air blower is provided with a plurality of ducts, and the accommodating portion is installed for every two or three or more ducts.
(4) The microbial preparation comprisesA bag shape made of a material with a mesh structurecontainerOr filling a box-shaped containerAny one of (1) to (3) accommodated in the accommodating portionThe method described.
(5) The method according to (4), wherein the material of the bag-like container is a goose cloth, gauze, or pantyhose.
(6) The method according to (4) or (5), wherein the material of the bag-like container is used in a double or more layer.
(7) The microbial preparation comprisesPowder or granuleAny of (1) to (6)The method described.
(8) The microbial preparation contains bacteria or filamentous fungiAny one of (1) to (7)The method described.
(9) The bacterium is a bacterium belonging to the genus Bacillus(8)The method described.
(10) The method according to (8), wherein the filamentous fungus is selected from filamentous fungi belonging to the genus Gliocladium, Talaromyces or Ketomium.
(11) The method according to (9), wherein the Bacillus bacterium is Bacillus subtilis or Bacillus thuringiensis.
(12) The method according to (10), wherein the filamentous fungus belonging to the genus Gliocladium is Gliocladium virens.
(13) The method according to (10), wherein the filamentous fungus belonging to the genus Talalomyces is a Tallalomyces flavus.
(14) The method according to (10), wherein the filamentous fungus belonging to the genus Ketomium is ketium aureium.
(15) Before harvesting crops in order to control the occurrence of diseases on crops after harvesting or shippingMicrobial preparationSprayAny of (1) to (14)The method described.
[0010]
Moreover, pesticides can be sprayed throughout the greenhouse and other facilities without using water.
In particular, when a microorganism preparation is used, useful microorganisms that are safe for the human body and the environment can be selected, so that the safety of workers is completely ensured. In addition, the use of microorganisms that can survive and proliferate in the environment can be expected to protect the facility from pathogens and pests for a long period of time.
[0011]
Furthermore, by applying the method of the present invention to a crop immediately before harvesting, the harvested product can be protected from diseases even after harvesting and shipping. The method of the present invention can also be applied to harvested products after harvesting.
[0012]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Hereinafter, the present invention will be described in detail.
The present invention relates to a method for spraying agricultural chemicals for controlling crops from diseases or pests in facilities for cultivating or storing crops. In the present invention, the agricultural chemical is diffused in the facility by wind power.
[0013]
As a specific method of diffusing agricultural chemicals in the facility by wind power, there is no particular limitation as long as the agricultural chemical can diffuse in the facility, preferably uniformly and more preferably over a long period of time. There is a method in which agricultural chemicals are installed in the vicinity of the air blowing port of the apparatus, and the agricultural chemicals are sprayed together with air sent from the air blowing port. As an air blower, an air blower dedicated to pesticide spraying may be installed, but it is usually economical to use an air conditioner or an air blower or the like used for air conditioning or air exchange in a facility for spraying agricultural chemicals. It is preferable from the viewpoint.
[0014]
When a storage unit for storing agrochemicals is installed near the air outlet of the blower as described above and the pesticides are stored in the storage unit, the pesticides can be gradually released. The housing portion can be installed inside the blower or in the vicinity of the air intake. However, considering the influence on the blower, the vicinity of the blower is preferable. Moreover, as long as an agrochemical can be diffused with the air sent out from a ventilation port, the accommodating part may leave | separate from a ventilation port. In the present invention, the “near” the air outlet means a position where the air sent from the air outlet can act to diffuse the agricultural chemical.
[0015]
Moreover, when the several duct is installed in the air blower, it is preferable to provide an accommodating part for every 2 or 3 or more ducts.
The container is not particularly limited in shape, material, etc., as long as it accommodates pesticides, usually powdered or granular pesticides, and can gradually diffuse the pesticides when subjected to wind. Specifically, a mesh container can be mentioned. The pesticide may be stored as it is in the storage unit, but the useful microorganism or the useful microorganism-containing composition is installed as it is in the above place. For example, the pesticide is filled in a bag-like or box-like container made of a material having a network structure, and the container is installed in the vicinity of the air outlet. In this case, the bag-like container may be directly installed by being suspended in the vicinity of the air blowing port, or may be accommodated in a separately provided accommodating portion.
On the surface of the bag-like container, it is detachable in an arbitrary size, and a material that does not allow air to pass therethrough, such as a sticker, is peeled off the seal of an arbitrary area according to the amount of agrochemical release, The amount of diffusion can be adjusted.
[0016]
The material of the bag-like container is preferably determined for the purpose of adjusting the diffusion amount, the material and the size of the mesh. Specific examples include goose cloth, gauze, pantyhose, and the like. These materials may be effective when used in double or more layers.
[0017]
The amount of scattered agricultural chemicals can be adjusted by the wind speed, the mesh size of the container, the mesh size of the bag-like container, the particle size of the agricultural chemical powder, and the like.
A specific example of the accommodating portion is shown in FIG. A tray having a rectangular cross section and having openings (4) at both ends is used as a housing main body (1), and one opening (4) is covered with a mesh (3). The pesticide (3) is accommodated inside the tray, and the opening (4) covered with the mesh (3) is connected to the duct of the blower.
[0018]
The facility to which the present invention is applied includes a facility for cultivating crops such as a greenhouse. However, when a post-harvest agricultural chemical is used, it can also be applied to a facility for storing crops after harvesting. According to a preferred embodiment of the method of the present invention, since agricultural chemicals can be sprayed over a long period of time, a crop cultivation facility is particularly preferred.
[0019]
The crop to which the present invention is applied is not particularly limited as long as it is cultivated in a greenhouse or some facility. Specifically, cucumber, tomato, strawberry, watermelon and the like can be mentioned.
In addition, the diseases or pests to which the agricultural chemicals are applied in the present invention are not particularly limited, but are suitably applied to diseases that occur mainly in the above-ground parts of plants and pests that damage the above-ground parts.
[0020]
The agrochemical used in the present invention is preferably in the form of powder or granules. In particular, when an agrochemical that does not substantially contain a liquid is used, an increase in humidity associated with application of the agrochemical can be avoided.
[0021]
The purpose of spraying agricultural chemicals is to control crop diseases or pests. Specifically, it is possible to control the occurrence of diseases on the crops being cultivated in the cultivation facility or the crops in the storage facility after harvesting or shipping. The present invention can also be applied for the purpose of promoting the cultivation of crops.
[0022]
As the agrochemical used in the method of the present invention, a microbial preparation containing a microorganism as an active ingredient is particularly suitable.
The microorganism as an active ingredient of the microorganism preparation is not particularly limited, and bacteria, fungi such as filamentous fungi, yeast and the like are used alone or in combination.
[0023]
Bacteria include Alcaligenes, Azotobacter, Bacillus, Erwinia, Burkholderia, Pseudomonas, Serratia, Rhodococcus (Rhodococcus), Lactobacillus, Clostridium, Microchoccus, Mycobacterium, Xanthomonas, Rhizobium, Paenibacillus ( Paenibacillus), bacteria belonging to the genus Tiobacillus and the like, and actinomycetes belonging to the genus Streptomyces and the like.
[0024]
More specifically, Alcaligenes odorans, Bacillus subtilis, Bacillus megaterium, Bacillus cereus, Bacillus thuringiensis, Bacillus polymyxa, Bacillus polymyxa, Bacillus circulans, Bacillus coagulans, Bacillus larvae, Bacillus lemtus, Bacillus licheniformis, bacillus pumils, bacillus pumils, Pseudomonas fluorecsens, Xanthomonas campestris, Paenibacillus macerans Streptomyces griseus (Streptomyces griseus), and the like.
[0025]
In addition, as filamentous fungi and yeast, the genus Gliocladium, Trichoderma, Aspergillus, Penicillium, Alternaria, Herminthosporum (Herminthosporium) , Talaromyces, Chaetomium, Rhizoctonia, Bauverria, Metarhizium, Verticillium, etc., and Saccharomyces Yeast belonging to the above.
[0026]
More specifically, Gliocladium virens, Trichoderma harzianum, Talaromyces flavus, Chaetomium aureum, Bauverria bassiana, Metallicium Anisopley (Metarhizium anisopliae), Verticillium lecanii (Verticillium lecanii), etc. are mentioned.
[0027]
The dosage form of the microbial preparation used in the present invention is not particularly limited as long as it can be dispersed by wind power, and those prepared by a normal method for producing a microbial preparation can be used. The form of the microorganism may be appropriately set depending on the microorganism to be used, and may be any hyphae, spore, spore or the like as long as the desired effect can be obtained (for microbial preparations, see JP-A-8-40815). No. 8, JP-A-8-109109, JP-A-8-175919, JP-A-8-175920, JP-A-8-175721, etc.).
[0028]
In the present invention, the microbial preparation is preferably in the form of a powder or granules substantially free of liquid. Specifically, a powder obtained by drying microorganisms (water content is approximately 20% by weight or less, particle size is approximately 500 μm or less) may be used as it is, and a composition to which an appropriate substance is added in order to enhance the effect of microorganisms. It may be used as Such materials include kaolin clay, pyroferrite clay, bentonite, montmorillonite, diatomaceous earth, synthetic hydrous silicon oxide, acid clay, talc, clay, ceramic, quartz, sericite, vermiculite, perlite, Oya stone, anthra Mineral fine powder such as stone, limestone, coal ash, zeolite, rice husk, bran, crab shell, shrimp shell, krill fine powder, rice bran, wheat flour, corn cobs, peanut shell, bone meal, fish meal, rice flour, sawdust, Wood powder, charcoal, charcoal, bark charcoal, rice husk charcoal, grass ash, peat moss, attapulgite, grass charcoal, dry animal dung, activated carbon, oil gruel, organic fine powder such as defatted soybean powder, etc.
Examples include various surfactants for agricultural chemicals, starch, gum arabic, dextrin, polyvinyl pyrrolidone, polyacrylic acid, polyvinyl alcohol, and cellulose derivatives such as methyl cellulose, and the like.
[0029]
The application amount of the microbial preparation to be sprayed according to the present invention is appropriately set depending on the application form. For example, the application amount of the preparation includes about 10 to 1,000 g / 10a (R). The concentration of effective microorganisms in the preparation varies depending on the microorganisms, but is generally 1 × 10.^Four~ 1x10¹⁷About effective microorganisms / g, preferably 1 × 10^Five~ 1x10¹⁶Effective microorganism / g, more preferably 1 × 10⁶~ 1x10¹⁵About effective microorganisms / g.
[0030]
Scattering is performed before cultivation of the crop, at an appropriate time from the start of cultivation to the end of cultivation. In order to prevent the occurrence of disease on the crop at the time of harvesting of the crop or after the shipment, spraying is performed before the crop is harvested.
[0031]
【Example】
Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples.
[0032]
[Formulation example 1] Preparation of preparation using Bacillus subtilis
A cryopreserved Bacillus butyls NCIB 12376 strain was inoculated into a test tube containing 10 ml of a YPS (Yeast Peptone Sucrose) medium, and cultured with shaking at 30 ° C. for 1 day. A 30 L jar fermenter containing 15 L of YPS medium was also inoculated so that the culture became 0.1% by weight. After culturing at 30 ° C. for 2 days, the cells were collected using a centrifuge and dried using a spray dryer.
[0033]
Jet pulverization is carried out by adding 60 parts by weight of talc, 15 parts by weight of defatted soybean powder as a nutrient source, and 15 parts by weight of a surfactant as an adhesive to 10 parts by weight of the dry powder of Bacillus subtilis NCIB 12376 obtained as described above. After finely pulverizing using a machine, the mixture was thoroughly mixed with a ribbon blender to obtain a preparation (1).
[0034]
[Formulation Example 2] Production of a preparation using Glyocladium vilence
The inoculum of Glyocladium vilens ATCC 42955 strain that had been freeze-dried was inoculated into a potato dextrose medium, and cultured with shaking at 28 ° C. for 24 hours. 350 ml of a combination of the culture solution and sterilized water was added to 500 g of oats as a culture carrier, and placed in a tray having a length of 36 cm, a width of 22 cm, and a depth of 6 cm so as to have a thickness of about 5 cm. The top of the tray was covered with a vent and incubated at 28 ° C. for 10 days. During the culturing period, the cells were cultured under conditions where they were exposed to light, and stirred on the third day of culturing so that the entire carrier was well mixed. After completion of the culture, the whole culture was transferred to a drying tray, spread thinly to a thickness of about 1 cm, covered with filter paper, and dried for 24 hours with a dryer at 30 to 35 ° C. The moisture at this time was 5% by weight. This dried product was pulverized to obtain a dried spore powder of Glyocladium vilence ATCC 42955 strain. This was designated as formulation (2).
[0035]
[Production Example 3] Manufacture of drug product using Talalomyces flavus
On a potato dextrose agar medium, mycelia were obtained from Talaromyces flavus bacteria (isolated from soil) stored as a slant culture, and allowed to stand. After culturing at 25 ° C for 5 days, sterilized water is added to the agar medium on which the bacteria have grown, and then the spores are collected using a conage rod and air-dried at room temperature to obtain a dry powder of Talaromyces flavus It was. Add 50 parts by weight of dry powder of Talalomyces flavus, 40 parts by weight of finely pulverized bran as a nutrient source, and 10 parts by weight of an agrochemical surfactant as an adhesive, and mix well. Obtained.
[0036]
[Production Example 4] Manufacture of drug product using ketium aureium
On a potato dextrose medium containing the antibiotic streptomycin at a final concentration of 100 ppm, the bacterial flora obtained from the slope culture of the ketium aureum IFO30916 strain was stored as a slope culture. After culturing at 28 ° C. for 7 days, sterilized water containing 0.5% by weight of Tween 20 is added to the agar medium on which the bacteria have grown, and the surface of the flora is scraped with a glass rod so that spores and hyphae The contents of the kind were obtained. This was dried in a 37 ° C. constant temperature bath for 12 hours to obtain a dry powder of Ketmium Aureum IFO30916 strain. 30 parts by weight of ground pulverized powder as a nutrient source was added to 70 parts by weight of the dry powder of ketium aureum IFO 30916, and the mixture was well mixed by stirring to obtain a preparation (4).
[0037]
[Production Example 5] Production of preparation using Bacillus thuringiensis
The YPS medium was inoculated with the cryopreserved Bacillus thuringiensis ATCC 33679 strain, and cultured with shaking at 35 ° C. for 5 days. After culturing, all the cultures were dried using a freeze dryer. The dried product was pulverized to obtain a dry powder of Bacillus thuringiensis. To 10 parts by weight of a dry powder of Bacillus thuringiensis ATCC 33679, 50 parts by weight of talc and 40 parts by weight of an agrochemical surfactant as an adhering agent were added and stirred well to obtain a preparation (5).
Table 1 shows the compositions of the preparations obtained in the above production examples.
[0038]
[Table 1]

[0039]
[Example 1]
Plant pest control (1)
The cucumber gray mold control test of the preparation (1) using Bacillus butyris was performed.
[0040]
(1) Test design
The test design is shown below. As a control, the house adjacent to the house sprayed with the preparation was defined as an untreated section.
Crop: Cucumber (Cultivar: Rootstock New Super Unryu, Hogi Sharp 1)
Area: 3a
Period: 11-12 December
Heater: Takezawa warm air heater F OH403
Set temperature: Minimum 12 ° C in November, 13 ° C in December
[0041]
(2) Application of microbial preparation
The preparation (1) double-wrapped with gauze was filled just upstream of the main duct of the heater provided in the house where the cucumber is grown, the outlet of the child duct as the air duct, and a total of six places. The filling amount was set so that the total of the filling amounts at six locations would be a spraying amount of 300 g / 10a.
[0042]
(3) Evaluation of microbial diffusion
An agar medium for capturing Bacillus subtilis NCIB 12376 was placed at any 4 points in the treatment area of the preparation (1), exposed for 16 hours, then incubated at 25 ° C. for 4 days, and the number of colonies formed was counted. . The agar medium for capture was provided with a section (upper part) installed at a position 2 m from the ground part and a section (lower part) placed directly on the ground part. The results are shown in Table 2.
[0043]
[Table 2]

[0044]
As shown in Table 2, a sufficient amount of Bacillus was captured at both the upper and lower parts of the house, and there was little difference between the upper and lower parts. For this reason, Bacillus spp. Were spread evenly regardless of the horizontal and vertical positions in the facility.
[0045]
(4) Evaluation of control effect
The fruits of the treated group and the untreated group (control group) were investigated, the diseased fruit rate in them was calculated, the control value was determined according to the following formula, and the disease control effect was confirmed. The control values of all the fruits are shown in Table 3.
[0046]
[Expression 1]

[0047]
[Table 3]

[0048]
In addition, Table 4 shows the results of collecting cucumber petals in the treated area and measuring the number of established Bacillus bacteria.
[0049]
[Table 4]

[0050]
As a result, Bacillus bacteria were well established in the cucumber petals in the treated area, and the disease control effect was exhibited.
[0051]
[Example 2]
Plant pest control (2)
The tomato gray mold control test of the preparation (2) using Gliocladium villen was performed.
[0052]
(1) Test design
The test design is shown below. As a control, the same type of house was used as an untreated section.
Crop: Tomato (Variety: House Momotaro)
Heating machine: Nepon House heating machine HK-4020
[0053]
(2) Application of microbial preparation
The preparation (2) is installed on an installation tool as illustrated in FIG. 1, and the left and right parent ducts of the air ducts of the heaters in the two houses (A facility and B facility) where the tomato is grown. Installed in 2 places in total. In the A facility, the parent duct is divided into three ducts on the left side, four on the right side, and a total of seven right and left child ducts. The facility B is divided into two air ducts, which are two child ducts on the left and right. Each of the air ducts was arbitrarily drilled at a total of 5 holes (7.5 cm × 7.5 cm) in the upper part, and the lower part of the duct tip was closed about half. The processing amount was 50 g / 10a.
[0054]
(3) Evaluation of microbial diffusion
An agar medium for capturing the genus Glyocladium was installed on the ground portion at the position as shown in FIG. 2, and it was confirmed that the genus Gliocladium was reliably diffused. This was also installed in the untreated area. Table 5 shows the number of captured bacteria when the fungus-trapping petri dish was left in the house for 8 hours one day after the start of the heater operation.
[0055]
[Table 5]

[0056]
Regardless of the capture point, a sufficient amount of useful microorganisms were diffused to exert an effect.
[0057]
(4) Evaluation of control effect
The tomato fruits in the treated group and the untreated group (control group) were investigated, the diseased fruit rate in them was calculated, the control value was calculated according to the above formula, and the disease control effect was confirmed. Table 6 shows the control values of all the fruits.
[0058]
[Table 6]

[0059]
In the treated area, a higher disease control effect was obtained compared to the untreated area as the control area.
[0060]
[Example 3]
Plant pest control (3)
The strawberry powdery mildew control test of the preparation (3) using Talaromyces flavus was conducted.
[0061]
(1) Test design
The test design is shown below. As a control, a section having the same area as the treated section was defined as an untreated section.
Crop: Strawberry (Cultivar: Nyoho)
Cultivation method: Planted to be 870 strains per 1a.
[0062]
Area: 3.5m²The test area was set as one test group, and the treatment group and the non-treatment group were each repeated twice.
[0063]
(2) Application of microbial preparation
One appliance as shown in FIG. 1 was installed one by one at the outlet of the parent duct of two blowers. A 150 mesh mesh was installed at the wind entrance. The preparation (3) was placed so that the treatment amount was 500 g / 10a.
[0064]
(3) Evaluation of control effect
About the top 3 compound leaves (9 leaflets) of the central 15 strains in each ward, the disease state was investigated according to the degree as follows, and the disease leaflet rate and the disease severity were calculated as the average of each ward.
[0065]
[Expression 2]
Disease severity = Σ (number of diseased leaflets by index × index) × 100 ÷ (number of leaflets surveyed × 4)
(However, the indices are as shown below.)
[0066]
0: No disease
1: Less than 25% lesion area
2: The lesion area is 25% or more and less than 50%
3: The lesion area is 50% or more and less than 75%
4: The lesion area is 75% or more
From the disease severity, the control value of the treatment area was calculated according to the following formula. The results are shown in Table 7.
[0067]
[Equation 3]

[0068]
[Table 7]

[0069]
As shown in Table 7, in the treated group, the disease severity was remarkably lower than that in the untreated group, and a high disease control effect was obtained.
[0070]
[Example 4]
Plant pest control (4)
A control test for strawberry gray mold of the preparation (4) using ketmium aureum was conducted.
[0071]
(1) Test design
The test design is shown below. As a control, what was cultivated in the house adjacent to the treated area under the same conditions as above was defined as an untreated area.
Crop: Strawberry (Cultivar “Tochiotome”)
Planting: September 9
Area: 1 ward 2.75m²20 shares / ward, 3 ward system
(2) Application of microbial preparation
The preparation (4) was filled in the appliance as shown in FIG. 1 and arranged at a branch portion of each of the eight air ducts extending from the parent duct of the heater. The processing amount was set to a ratio of 900 g / 10a by installing a total of 8 places.
[0072]
(3) Evaluation of control effect
On April 12, April 19 and April 26, the presence or absence of disease was investigated for the ripe fruits of each ward, and the diseased fruit rate was calculated. Based on the ratio of the diseased fruit rate, the control value was calculated by the above formula 1. The results are shown in Table 8.
[0073]
[Table 8]

[0074]
As shown in Table 8, a higher disease control effect was obtained in the test group than in the untreated group.
[Example 5]
Plant pest control (5)
A control test was carried out on the urinary rice moth that was generated in the melon of the preparation (5) using Bacillus thuringiensis.
[0075]
(1) Test design
The test design is shown below. As a control, the house adjacent to the house sprayed with the preparation was defined as an untreated section.
Crop: Melon (variety “Aals”)
Area: 230m²/ Ward
Planting: March 25
[0076]
(2) Application of microbial preparation
The preparation (5) was filled in an appliance as illustrated in FIG. 1 and blown using a heater. It was installed in one place where it branched from the parent duct to each air duct. Treated 10 and 20 days after planting. The processing amount was set to be 300 g / 10a. Processing took place in the evening and the house closed until morning.
[0077]
(3) Evaluation of control effect
On the second treatment day and 10 days later, the damaged leaves and eating damage traces of Urinomaiga were examined. The results are shown in Table 9.
[Table 9]

[0078]
As shown in Table 9, the treated area showed a higher pest control effect than the untreated area.
[Example 6]
Plant pest control (6)
Using the preparation (1), the gray mold control effect of the harvested fruit was examined.
(1) Test design
The test design is shown below. As a control, the adjacent house was untreated.
Crop: Strawberry (Cultivar “Nokihime”)
Area: 550m²/ Ward
[0079]
(2) Application of microbial preparation
The composition of formulation (1) is filled in an appliance as illustrated in FIG. 1 to 300 g / 10a, and the entrance portion of each air duct is branched into a total of six from the parent duct of the heater. The preparation (1) filled at a rate of once every two weeks during the cultivation period was replaced or refilled.
[0080]
(3) Evaluation of control effect
One month after the start of the test, fruits were harvested from each section, and the diseased fruit rate was calculated. The results are shown in Table 10. Separately harvested fruits are packed according to the normal shipping method, stored for 5 days under a temperature condition of about 7-23 ° C., and then whether or not gray mold disease has occurred on a total of 300 randomly selected fruits. Determination was made to calculate the diseased fruit rate, and the control value was calculated. The results are shown in Table 11.
[0081]
[Table 10]

[Table 11]

[0082]
As shown in Tables 10 and 11, the disease control effect was exhibited not only during the cultivation period of crops but also after harvested crops.
[0083]
【The invention's effect】
According to the present invention, it is possible to efficiently and safely spray agricultural chemicals such as microbial preparations on crops in a cultivation facility such as a greenhouse. Moreover, by using a powdery or granular agricultural chemical, the agricultural chemical can be sprayed without increasing the humidity in the facility. Furthermore, in a preferred embodiment, the pesticide can be applied over a long period of time.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a diagram showing an example of a storage unit used for storing agricultural chemicals in the present invention.
FIG. 2 is a diagram showing a site in a facility where the scattering of Gliocladium spp. Was evaluated in Example 2.
[Explanation of symbols]
1. Housing body
2. Pesticide
3. mesh
4). Aperture

Claims

A method of spraying a microbial preparation containing microorganisms as an active ingredient in a facility for cultivating or storing crops,
The microorganism preparation is housed in a housing portion that is installed in the vicinity of a blowing port of a blower that blows air into the facility, and is gradually released together with the air sent from the blowing port. A method for spraying a microbial preparation as a component .

The method according to claim 1, wherein the blower is a device used for air conditioning or air exchange in the facility.

The method according to claim 1, wherein a plurality of ducts are installed in the blower, and the housing portion is installed every two or more ducts.

The method according to any one of claims 1 to 3, wherein the microbial preparation is filled into a bag-like container or a box-like container made of a material having a network structure and is accommodated in the accommodating portion .

The method of Claim 4 that the raw material of the said bag-shaped container is a goose cloth, gauze, or pantyhose.

The method according to claim 4 or 5, wherein the material of the bag-like container is used in a double or more layer.

The method according to any one of claims 1 to 6 , wherein the microorganism preparation is in the form of powder or granules.

The method according to any one of claims 1 to 7 , wherein the microbial preparation contains bacteria or filamentous fungi.

The method according to claim 8 , wherein the bacterium is a bacterium belonging to the genus Bacillus.

The method according to claim 8, wherein the filamentous fungus is selected from filamentous fungi belonging to the genus Gliocladium, Talaromyces or Ketomium.

The method according to claim 9, wherein the Bacillus bacterium is Bacillus subtilis or Bacillus thuringiensis.

The method according to claim 10, wherein the filamentous fungus belonging to the genus Gliocladium is Gliocladium virens.

The method according to claim 10, wherein the filamentous fungus belonging to the genus Talalomyces is a Talalomyces flavus.

The method according to claim 10, wherein the filamentous fungus belonging to the genus Ketomium is ketium aureium.

15. The method according to any one of claims 1 to 14 , wherein the microbial preparation is sprayed before the crop is harvested in order to prevent the occurrence of diseases on the crop after harvest or shipment.