JP3700791B2 - Fas antigen fusion protein, DNA encoding the protein, vector containing the DNA, host cell transformed with the vector, therapeutic agent containing the vector as an active ingredient, and screening method using the host cell - Google Patents

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Description

【0001】
【産業上の利用分野】
本発明は、(i) Fas抗原の膜貫通領域と機能発現領域を含むアミノ酸配列のC端末に、細胞核内受容体のリガンド結合領域を含むアミノ配列を結合させた融合蛋白、(ii)該融合蛋白をコードするDNA、(iii) 該DNAを含む発現ベクター、(iv)該発現ベクターで形質転換された形質転換体、(v) 上記発現ベクターを有効成分として含有するガンまたは自己免疫疾患の治療剤、および(vi)上記形質転換体を用いる、細胞核内受容体のリガンドの検出方法に関する。
【0002】
【発明の背景】
最近、サイトカインやホルモンに代表される、重要な生理活性を有する液性因子の受容体が遺伝子操作によって解明されつつある。例えば、細胞核内受容体と総称される脂溶性ホルモンの受容体が挙げられる。種々の細胞核内受容体のアミノ酸配列を解析した結果、それらは共通の基本構造を有するリガンド依存性の転写因子であり、ひとつの遺伝子ファミリーを形成することが明らかとなった。すなわち、グルココルチコイド受容体、ブロジエステロン受容体、ミネラルコルチコイド受容体、アンドロジエン受容体、エストロジエン受容体などのステロイド受容体、レチノイドX受容体、レチノイン酸受容体等のレチノイド受容体、さらにビタミンD3 受容体や甲状腺ホルモン受容体からなるファミリーである。これらの受容体については、リガンド結合部位、標的DNAの配列を認識する部位などの機能領域が明確に分離していることがわかっている[Science, 240, 889 (1988)参照のこと。]が、リガンドが依然として不明である受容体も存在する。
【0003】
一般に、細胞核内受容体の機能発現はリガンド結合領域によって制御されている。例えば、リガンド(ステロイド)不存在下におけるステロイド受容体では、そのリガンド結合領域はHSP90というタンパク質と複合体を形成し不活性な状態にあるが、ステロイドがそのリガンド結合領域に結合すると、HSP90との複合体は解離し、受容体の機能発現領域(DNA認識部位)が標的DNAに結合し、標的遺伝子の発現を調節する。
【0004】
これに対して、レチノイド受容体、ビタミンD3 受容体および甲状腺ホルモン受容体における機能発現のメカニズムはまだ充分に解明されていないが、少なくともHSP90との複合体形成は起こらないと考えられている。この点、ステロイド受容体とは大きく異なる点である。そのほかにもレチノイド受容体、ビタミンD3 受容体および甲状腺ホルモン受容体はステロイド受容体とは異なった幾つかの性質を有しており(例えば、ステロイド受容体に比べてA/B領域が短く、従って全体の分子量も小さくなっている等)、このためこれらの受容体を大きなファミリー内におけるサブファミリーとして位置づけることが提唱されている。
【0005】
一方、Fas抗原は、プログラムされた細胞死(アポトーシス)に関与することが明確に示された膜蛋白である。ヨネハラ(Yonehara)等は、ヒト細胞表面抗原に対するモノクローナル抗体を作製し、種々のヒト細胞に対し致死活性を示す抗Fas抗体を得た[J. Exp. Med., 169, 1747 (1989)参照のこと]。抗Fas抗体の認識する細胞表面分子のcDNAが単離され、ヒトFas抗原の構造が決定された[Cell, 66, 233 (1991)参照のこと]。Fas抗原は335個のアミノ酸からなり、N末端側16個のアミノ酸はシグナルペプチドと推定されている。分子の中央には疎水性アミノ酸17個よりなる膜貫通領域が存在し、N末端側157個のアミノ酸が細胞外領域、C末端側145個のアミノ酸が細胞質領域と考えられる。
【0006】
Fas抗原の構造は、ガン壊死因子(TNF)の受容体と類似しているため、Fas抗体によるアポトーシスはTNFの作用と類似したメカニズムで起こるものと推定されている。Fas抗原の機能領域も次第に明らかにされ、アポトーシスのシグナル伝達に必須の領域(機能発現領域)は175番目から304番目までのアミノ酸配列部分であることがわかっている[J. Biol. Chem., 268, 10932 (1993) 参照のこと]。さらに、マウスのFas抗原についても、そのアミノ酸配列が明らかになっており[J. Immunology, 148, 1274 (1992) 参照のこと]、ヒトのFas抗原に対して全体として49.3%のホモロジーを有している。また機能発現領域は、ヒトFas抗原の該領域に相当する、166番目から291番目までのアミノ酸配列であると考えられている。
【0007】
【従来の技術】
受容体はリガンド結合領域とシグナル伝達領域を有している。リガンド結合領域にリガンドが結合すると、シグナル伝達領域の立体構造が変化し、シグナルが別の蛋白やDNAに伝達される。
最近、ある受容体のリガンド結合領域と、異種の蛋白質のシグナル伝達領域とを結合した融合蛋白におけるシグナル伝達に関する研究が盛んに行なわれている。
例えば、ステロイド受容体のひとつであるエストロジエン受容体のリガンド(すなわち、エストロジエン)結合領域とヒトガン遺伝子c−Mycのシグナル伝達領域との融合蛋白をコードする遺伝子で形質転換された細胞は、エストロジエンの刺激によって細胞がガン化し、異常増殖することが判明した[Nature, 340,
66 (1989)参照のこと]。
【0008】
同様の実験が、グルココルチコイド、ミネラルコルチコイド、エストロジエンの各受容体のリガンド結合領域とE1A(アデノウイルス)、c−Fos、v−Myb、C/EBP、v−Rel、GATA−1,2,3、GAL4−VP16、Rev(HIV)、c−Ab1、の各蛋白質の機能発現領域との融合蛋白において行なわれており[Cell, 54, 1073 (1988) 、Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88,5114 (1991)、EMBO J., 10, 3713 (1991)、Science, 251, 288 (1991)、EMBO J., 11, 4641 (1992)、Genes Dev. (in press) 、Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90, 1657 (1993) 、ibid., 87, 7787 (1990)、EMBO J., 12, 2809 (1993)参照のこと]、いずれも核内受容体に対応するリガンドが結合されることによってシグナルが伝達されることが確認されている。
【0009】
【発明の目的】
本発明者らは、前記した融合蛋白をガン治療に応用する目的で検討を重ねた結果、シグナル伝達蛋白としてFas抗原を用いることにした。実験では、まずマウスのFas抗原を用いてその可能性について検討した。
マウスFas抗原の機能発現領域は166番目から291番目までのアミノ酸配列部分であると考えられている。しかしながら、この部分を、リガンド結合蛋白としての種々のホルモン受容体のリガンド結合領域と結合させてもFas抗原のシグナルは伝達されなかった(実施例4参照のこと)。そこで、機能発現領域だけでなく膜貫通領域も含めた136番目から305番目までのアミノ酸配列部分を、ホルモン受容体のリガンド結合領域と融合させることによって、初めてシグナルを伝達させることに成功し、本発明を完成した。
【0010】
従来の技術で用いられた種々のシグナル伝達蛋白は、c−Ab1がキナーゼとして作用する以外はいずれも転写因子として作用し、目的とする蛋白質の機能の発現を制御するものばかりである。この点、本発明で用いられたFas抗原は細胞膜受容体であるため、膜に結合していないと、シグナルの伝達が行なわれないものと考えられる。このことは従来技術からはまったく予測されなかったことである。シグナル伝達蛋白としてFas抗原を用いた融合蛋白はこれまでまったく知られていない。従って本発明の融合蛋白および該蛋白をコードするDNAは新規な発明であると考えられる。また、本発明において、リガンド結合領域として用いる細胞核内受容体に、ステロイド受容体以外のサブファミリー受容体を用いてもシグナル伝達が行われることを初めて確認することができた。
【0011】
このサブファミリー受容体は、ステロイド受容体とは、その構成やシグナル伝達機構が異なっている点を考慮すれば、サブファミリー受容体のリガンド結合領域を結合した融合蛋白においてシグナル伝達が行なわれるかどうか不明であった。本発明はステロイド受容体だけでなく、細胞核内受容体であればいずれの受容体でもシグナル伝達のためのリガンド結合領域として用いることができることを証明したことであり、意義深いことである。
さらに、本発明者らは、該融合蛋白をコードするDNAを含むプラスミドによって形質転換された細胞を用いることにより、リガンドのアゴニスト/アンタゴニストのスクリーニングも行なえることを見い出した。
【0012】
【発明の開示】
本発明は、
(i) Fas抗原の膜貫通領域と機能発現領域を含むアミノ酸配列のC末端に、細胞核内受容体のリガンド結合領域を含むアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(ii) 該融合蛋白をコードするDNA、
(iii) 該DNAを含む複製または発現ベクター、
(iv) 該複製または発現ベクターで形質転換された宿主細胞、
(v) 該発現ベクターを有効成分として含有するガンまたは自己免疫疾患治療剤、または
(vi) 該宿主細胞を用いることを特徴とする細胞核内受容体に対するアゴニストまたはアンタゴニストのスクリーニング方法
に関する。
【0013】
本発明の融合蛋白を構成するFas抗原および細胞核内受容体は、哺乳動物由来のもの、例えば、ヒト、サル、イヌ、ネコ、マウス、ラット、モルモット由来のものが用いられる。Fas抗原および細胞核内受容体は、好ましくは互いに同じ種のものが用いられるが、異なった種のものを用いてもよい。本発明では互いに異なった種のものを用いてもシグナル伝達が行えることを確認している。例えばヒトのFas抗原とヒトの細胞核内受容体の組合せ、マウスのFas抗原とヒトの細胞核内受容体の組合せ、ヒトのFas抗原とラットの細胞核内受容体の組合せ、マウスのFas抗原とラットの細胞核内受容体の組合せ、ヒトのFas抗原とマウスの細胞核内受容体の組合せ、またはマウスのFas抗原とマウスの細胞核内受容体の組合せが好適に用いられる。
【0014】
本発明に用いられるFas抗原の膜貫通領域と機能発現領域を含むアミノ酸配列、および細胞核内受容体のリガンド結合領域を含むアミノ酸配列としては、各領域に相当する部分だけを用いてもよいが、それ以外に、各領域に相当する部分の両端(N末端および/またはC末端)に、フランキング領域(機能領域に関与しない領域、アミノ酸配列にして数10個、好ましくは60個以下)を含んだものを用いてもよい。さらに、所望の場合には、Fas抗原の膜貫通領域のN末端には、シグナルペプチド領域を含むアミノ酸配列を結合していてもよい。各領域に相当するアミノ酸配列としては、天然のアミノ酸配列だけでなく、本来のFas抗原が有するアポトーシス機能または細胞核内受容体が有するリガンド結合機能を損なわない程度に、アミノ酸が欠損、置換、付加および/または挿入されたものを用いることができる。
【0015】
本発明に用いられるFas抗原のうち、ヒトFas抗原の膜貫通領域と機能発現領域を含むアミノ酸配列としては、145番目のSerから319番目のValであり、マウスFas抗原では136番目のSerから305番目のLeuまでの配列が好適に用いられる。また、シグナルペプチド領域を含むアミノ酸配列としては、ヒトFas抗原では−16番目から23番目までの配列、そしてマウスFas抗原では−21番目から14番目までの配列が好適に用いられる。
【0016】
本発明に用いられる細胞核内受容体としては、グルココルチコイド受容体、ブロジエステロン受容体、ミネラルコルチコイド受容体、アンドロジエン受容体、エストロジエン受容体等のステロイド受容体、レチノイドX受容体、レチノイン酸受容体等のレチノイド受容体、ビタミンD3 受容体、または甲状腺ホルモン受容体が挙げられる。好適には、ヒトまたはラットのエストロジェン受容体、ヒトまたはマウスのレチノイドX受容体α、レチノイドX受容体βまたはレチノイドX受容体γあるいはヒトまたはマウスのレチノイン酸受容体α、レチノイン酸受容体βまたはレチノイン酸受容体γが用いられる。
【0017】
それぞれ受容体のリガンド結合領域は既に知られており[Science, 240, 889 (1988)参照のこと。]、例えば、ヒトグルココルチコイド受容体では528番目から777番目まで、ヒトブロジエステロン受容体では680番目から934番目まで、ヒトミネラルコルチコイド受容体では734番目から984番目まで、ヒトアンドロジエン受容体では676番目から919番目まで、ヒトエストロジエン受容体では311番目から551番目まで、ラットエストロジエン受容体では307番目から557番目まで、ヒトレチノイドX受容体αでは225番目から462番目まで、ヒトレチノイドX受容体βでは297番目から526番目まで、マウスレチノイドX受容体αでは230番目から467番目まで、マウスレチノイドX受容体βでは171番目から410番目まで、マウスレチノイドX受容体γでは229番目から463番目まで、ヒトレチノイン酸受容体αでは198番目から462番目まで、ヒトレチノイン酸受容体βでは191番目から448番目まで、ヒトレチノイン酸受容体γでは200番目から454番目まで、マウスレチノイン酸受容体αでは198番目から462番目まで、マウスレチノイン酸受容体βでは190番目から448番目まで、マウスレチノイン酸受容体γでは200番目から458番目まで、ヒトビタミンD3 受容体では192番目から427番目まで、ヒト甲状腺ホルモン受容体αでは183番目から410番目まで、ヒト甲状腺ホルモン受容体βでは232番目から456番目までのアミノ酸である。
【0018】
好適には、ヒトエストロジエン受容体の311番目から551番目まで、ラットエストロジエン受容体の307番目から557番目まで、ヒトレチノイドX受容体αの225番目から462番目まで、ヒトレチノイドX受容体βの297番目から526番目まで、マウスレチノイドX受容体αの230番目から467番目まで、マウスレチノイドX受容体βの171番目から410番目まで、マウスレチノイドX受容体γの229番目から463番目まで、ヒトレチノイン酸受容体αの198番目から462番目まで、ヒトレチノイン酸受容体βの191番目から448番目まで、ヒトレチノイン酸受容体γの200番目から454番目まで、マウスレチノイン酸受容体αの198番目から462番目まで、マウスレチノイン酸受容体βの190番目から448番目まで、マウスレチノイン酸受容体γの200番目から458番目までの配列が用いられる。より好適には、ヒトエストロジェン受容体の281番目から595番目まで、ラットエストロジエン受容体の286番目から600番目まで、ヒトレチノイン酸受容体αの176番目から462番目まで、またはマウスレチノイン酸受容体αの177番目から458番目までの配列が用いられる。
【0019】
本発明の融合蛋白中、好ましいものとしては、
(i) ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトエストロジエン受容体の311番目から551番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(ii)ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、ラットエストロジエン受容体の307番目から557番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(iii) ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトレチノイドX受容体αの225番目から462番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(iv)ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトレチノイドX受容体βの297番目から526番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(v) ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイドX受容体αの230番目から467番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
【0020】
(vi)ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイドX受容体βの171番目から410番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(vii) ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイドX受容体γの229番目から463番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(viii)ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトレチノイン酸受容体αの198番目から462番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(ix)ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトレチノイン酸受容体βの191番目から448番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(x) ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトレチノイン酸受容体γの200番目から454番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
【0021】
(xi)ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイン酸受容体αの198番目から462番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(xii) ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイン酸受容体βの190番目から448番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、または
(xiii)ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイン酸受容体γの200番目から458番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白が挙げられる。
【0022】
また、他の好ましいものとしては、
(i) マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトエストロジエン受容体の311番目から551番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(ii)マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、ラットエストロジエン受容体の307番目から557番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(iii) マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトレチノイドX受容体αの225番目から462番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(iv)マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトレチノイドX受容体βの297番目から526番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
【0023】
(v) マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイドX受容体αの230番目から467番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(vi)マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイドX受容体βの171番目から410番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(vii) マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイドX受容体γの229番目から463番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(viii)マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトレチノイン酸受容体αの198番目から462番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(ix)マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトレチノイン酸受容体βの191番目から448番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
【0024】
(x) マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトレチノイン酸受容体γの200番目から454番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(xi)マウストFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイン酸受容体αの198番目から462番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(xii) マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイン酸受容体βの190番目から448番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、または
(xiii)マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイン酸受容体γの200番目から458番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白が挙げられる。
【0025】
本発明の融合蛋白中、より好ましいものとしては、
(i) ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトエストロジエン受容体の281番目から595番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(ii)ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、ラットエストロジエン受容体の286番目から600番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(iii) ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトレチノイン酸受容体αの176番目から462番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(iv)ヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイン酸受容体αの177番目から458番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
【0026】
(v) マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトエストロジエン受容体の281番目から595番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(vi)マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、ラットエストロジエン受容体の286番目から600番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(vii) マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトレチノイン酸受容体αの176番目から462番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白、
(viii)マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、マウスレチノイン酸受容体αの177番目から458番目までのアミノ酸配列を結合させた融合蛋白が挙げられる。
【0027】
本発明には、本発明の融合蛋白をコードするDNAも含まれる。
よく知られているように、ひとつのアミノ酸をコードするコドンは1〜6種類(例えば、メチオニン(Met)は1種類、ロイシン(Leu)は6種類)知られている。従って、アミノ酸配列を変えることなくDNAの塩基配列を変えることができる。
【0028】
本発明には、本発明の融合蛋白コードする全ての塩基配列群が含まれる。塩基配列を変えることによって、融合蛋白の生産性が向上することがある。
本発明の融合蛋白をコードするDNAは、以下の方法に従って作製することができる。
すなわち、
(i) Fas抗原と細胞核内受容体のアミノ酸配列のうち、必要とする領域を含むアミノ酸配列をコードするDNAをポリメラーゼチェインリアクション(PCR)法により増幅し、
(ii)適当なベクターに、Fas抗原より得られたPCR生成物を組み込み、続いて、細胞核内受容体より得られたPCR生成物を組み込むことにより行なわれる。
【0029】
より詳細に説明すると、
工程(i) は融合に必要な部品をPCR法により増幅する工程である。Fas抗原の場合は、膜貫通領域と機能発現領域を含むアミノ酸配列をコードする塩基配列を化学合成し、プライマーとして用いる。また、細胞核内受容体の場合は、リガンド結合領域を含むアミノ酸配列をコードする塩基配列を化学合成し、プライマーとして用いる。
得られたプライマーの5′ 末端には特定の制限酵素サイトを設けておく。またPCR法のテンプレートとしては、相当する哺乳動物、例えば、ヒト、マウス等の細胞または細胞株より単離、精製したmRNAを使用することができる。PCR法は、公知の方法により行われる。最近ではPCR自動化装置も普及しているので、該装置が好適に用いられる。
【0030】
工程(ii)は、ベクター中で両部品を融合する工程である。本工程に用いられるプラスミドベクターとしては大腸菌内で機能するもの(例えば、pBR322)や枯草菌内で機能するもの(例えば、pUB110)が多数知られているが、いずれであっても好適に用いられる。
また、直接発現ベクターに組み込むことも可能である。例えば、大腸菌で発現させる場合には、適当なプロモーター(例えば、trpプロモーター、lacプロモーター、λPLプロモーター、T7プロモーター等)の下流に、Fas抗原の当該PCR産物を接続し、次いでその下流に細胞核内受容体の当該PCR産物を接続して、大腸菌内で機能するベクター(例えば、pUC18、pUC19等)に挿入して発現ベクターを作成する。また、哺乳動物細胞で発現させる場合には、適当なベクター(例えば、レトロウイルスベクター、パピローマウイルスベクター、ワクシニアウイルスベクター、SV40系ベクター等)中の適当なプロモーター(例えば、SV40プロモーター、LTRプロモーター、メタロチオネインプロモーター等)の下流に、Fas抗原の当該PCR産物、次いで細胞核内受容体の当該PCR産物を挿入して発現ベクターを作製する。好適には、pCMX(Cell, 66, 663 (1991)に記載されている。)が用いられる。
【0031】
哺乳動物細胞で発現させる場合には、所望によりFas抗原のシグナルペプチド領域をコードする塩基配列のPCR産物をプロモーターのすぐ下流に挿入することができる。
本発明には、本発明のDNAからなる複製または発現ベクターが含まれる。ベクターとしては、例えば、ori領域と、必要により上記DNAの発現のためのプロモーター、プロモーターの制御因子などからなるプラスミド、ウイルスまたはファージベクターが挙げられる。ベクターはひとつまたはそれ以上の選択的マーカー遺伝子(例えば、ネオマイシン耐性遺伝子、ブラスチサイジンS耐性遺伝子)を含んでいてもよい。
【0032】
本発明の融合蛋白を生産するための発現系(宿主−ベクター系)としては、例えば、細菌、酵母、昆虫細胞および哺乳動物細胞の発現系が挙げられる。
例えば、大腸菌で発現させる場合には、前記の大腸菌内で機能する発現ベクターで形質転換した大腸菌(例えば、E. coli DH1、E. coli JM109、E. coli HB101株等)を適当な培地で培養して、その菌体より目的とするポリペプチドを得ることができる。また、バクテリアのシグナルペプチド(例えば、pelBのシグナルペプチド)を利用すれば、ペリプラズム中に目的とする融合蛋白を分泌することもできる。
【0033】
また、哺乳動物細胞で発現させる場合には、前記の哺乳動物細胞内で機能する発現ベクターで適当な哺乳動物細胞(例えば、サルCOS−7細胞、チャイニーズハムスターCHO細胞、マウスL細胞、マウス繊維芽細胞、ヒトガン細胞等)を形質転換し、形質転換体を適当な培地で培養することによって、目的とする融合蛋白を生産することができる。以上のようにして得られたポリペプチドは、一般的な生化学的方法によって単離精製することができる。
本発明には、本発明のDNAからなる複製または発現ベクターで形質転換された宿主細胞が含まれる。
【0034】
【発明の効果】
このようにして得られた本発明の融合蛋白は、ガンまたは自己免疫疾患治療剤として用いることができる。すなわち、本発明の融合蛋白をコードするDNAを含む発現ベクターをガン病巣部または自己免疫疾患病巣部にターゲティング法(例えば、リポソーム内に封じ込めて)により局所的に投与する。該ベクターは病巣部のガン細胞内に侵入し、遺伝子に入り込んで該融合蛋白を継続的に発現するようになる。しかる後に、本発明の融合蛋白の一部を構成する細胞核内受容体に対応するリガンド(例えば、該受容体としてレチノイドX受容体を用いた場合には9-cis-レチノイン酸、レチノイン酸受容体を用いた場合にはビタミンA)を投与する。ガン細胞内で生産された本発明の融合蛋白にリガンドが結合し、アポトーシスのシグナルが伝達される。かくしてガン細胞は死滅する。
【0035】
さらに、本発明の融合蛋白は、細胞核内受容体に対するアゴニストまたはアンタゴニストのスクリーニング法として広範に利用することができる。すなわち、本発明の融合蛋白を常時発現している細胞に、検体を添加する。もし細胞が死ねば、検体はアゴニスト活性を有していることを示し、またアゴニスト存在下に細胞が生存すれば、検体はアンタゴニスト活性を有していることが判明する。
本発明のスクリーニング法は、大量のサンプルを短時間で処理することができるだけでなく、効果(結果)が細胞死となって表われるので、その判定が容易であるなどの点で、優れたスクリーニング法であると言える。
【0036】
【実施例】
以下に、本発明を実施例によって、より詳細に、かつより具体的に説明するが、もちろんこれによって本発明が制限されるものではない。
【0037】
実施例1 PCR生成物の調製
図1にPCRプライマーの調製方法の概念図を示す。図中、領域AはマウスFas抗原のシグナルペプチド領域を示し、領域BはマウスFas抗原の細胞外領域を示し、領域CはマウスFas抗原の膜貫通領域を示し、領域DはマウスFas抗原の細胞質領域を示し、領域Eはヒトレチノイン酸受容体αのリガンド結合領域を示し、そして領域Fはラットエストロジェン受容体のリガンド結合領域を示す。
【0038】
(1) マウスFas抗原のPCR生成物の調製
フクナガ(Fukunaga)らの報告(J. Immunology, 148, 1274 (1992) )に記載されたマウスFas抗原の構造により以下のプライマーを調製した。
F1:131番目から143番目までのアミノ酸配列:Pro Cys Thr Ala Thr Ser Asn Thr Asn Cys Arg Lys Gln の構造に相当し、5′側の一部に制限酵素NcoI及びKpnIのサイトを導入したプライマー(配列番号1)、
【0039】
5′-CACCATGGGTACCAGCAATACAAACTGCAGGAAAC-3′
を合成した。
F2:209番目から221番目までのアミノ酸配列:Glu Asp Met Thr Ile Gln Glu Ala Lys Lys Phe Ala Arg の構造に相当し、5′側の一部に制限酵素NcoI及びKpnIのサイトを導入したプライマー(配列番号2)、
【0040】
5′-GAAGCCATGGGTACCCAGGAAGCTAAAAAATTTGCTCGA-3′
を合成した。
F3:298番目から306番目(C末端)までのアミノ酸配列:Asn Glu Asn Glu Gly Gln Cys Leu Glu および3′非翻訳領域の一部に相当し、さらに3′- 側の一部にBamHI サイトを導入した3′−プライマー(配列番号3)、
【0041】
5′-TCAGGATCCAGACATTGTCCTTCATTTTCATT-3′
を合成した。
S1:Fas抗原cDNAの5′非翻訳領域の一部を含み−21番目から−14番目までのアミノ酸配列:Met Leu Trp Ile Trp Ala Val Leu の構造に相当し、5′側に制限酵素HindIII およびNotIのサイトを導入したプライマー(配列番号4)、
【0042】
5′-CTGAAGCTTCGCGGCCGCACCATGCTGTGGATCTGGGCTGTCCTG-3′
を合成した。
S2:Fas抗原のcDNAの一部、5番目から14番目までのアミノ酸配列:Ser Ile Ser Glu Ser Leu Lys Leu Arg Arg に相当し、3′側の一部にHindIII サイトを導入した3′−プライマー(配列番号5)、
【0043】
5′-CCTCCTAAGCTTTAAACTCTCGGAGATGCT-3′
を合成した。
マウスTセルライン、RLM−11(Cell, 68, 1109 (1992) に記載)より得られたmRNAを鋳型として用い、F1とF3のPCR産物をプライマーとして用いて、サーマルシークエンサー(モデルTSR−300、イワキガラス社製)を使用して、95℃で180秒×1→(95℃で60秒、55℃で60秒、72℃で60秒)×15→72℃で180秒の条件でRT−PCRを行った結果、約520bpの断片(以下Fas−TMと記す。)を得た。次に、前記と同じmRNAを鋳型をして用い、F2とF3のPCR産物をプライマーとして用いて、上記と同様の条件でPCRを行った結果、約280bpの断片(以下、Fas−△TMと記す。)を得た。さらに、前記と同じmRNAを鋳型として用い、S1とS2のPCR産物をプライマーとして用いて、上記と同様の条件でPCRを行った結果、約120bpの断片(以下、Fas−sigと記す。)を得た。
【0044】
(2) ヒトレチノイン酸α受容体のPCR生成物の調製
ギグレ (Giguere) ら(Nature, 330, 624 (1987)) に記載されたヒトレチノイン酸αの受容体の構造より以下のプライマーを調製した。
R1:173番目から182番目までのアミノ酸配列:Glu Cys Ser Glu Ser Tyr Thr Leu Thr Pro の構造に相当し、5′側の一部に制限酵素Bgl II のサイトを導入したプライマー(配列番号6)、
【0045】
5′-GGCAGATCTCTCTGAGAGCTACACGCTGACGCCG-3′
を合成した。
R2:456番目から462番目(C末端)までのアミノ酸配列:Ser Pro Ala Thr His Ser Pro および3′非翻訳領域の一部に相当し、3′側の一部にBamHI サイトを導入した3′−プライマー(配列番号7)、
【0046】
5′-CGTGGATCCTCACGGGGAGTGGGTGGCCGGGCT-3′
を合成した。
ヒト前骨骨髄性白血病細胞のHL−60より得られたmRNAを鋳型として用い、R1とR2をプライマーとして用いて、サーマルシークエンサー(モデルTSR−300)を使用して、実施例1−(1)と同様の条件でRT−PCRを行った結果、約870bpの断片(以下、RARαと記す。)を得た。
【0047】
(3) ラットエストロジェン受容体のPCR生成物の調製
コイケ(Koike )ら(Nucleic Acid Research, 15, 2499 (1987))に記載されたラットエストロジェン受容体の構造より以下のプライマーを調製した。
R3:282番目から292番目までのアミノ酸配列:Arg Asn Glu Met Gly Thr Ser Gly Asp Met Arg の構造に相当し、5′側の一部に制限酵素BamHIのサイトを導入したプライマー(配列番号8)、
【0048】
5′-CGAAAGGATCCGGGCACTTCAGGAGACATGAGA-3′
を合成した。R4:598番目から600番目(C末端)までのアミノ酸配列:Asn Thr Ile および3′非翻訳領域の一部に相当し、3′側の一部にBamHIサイトを導入した3′プライマー(配列番号9)、
【0049】
5′-TGGGGTACCTGGGAGTTCTCAGATGGTGTT-3′
を合成した。
PUCER6(埼玉医科大学、村松正實教授より供与された。Nucleic Acid Research, 15, 2499 (1987)に記載)より得られたmRNAを鋳型として用い、R3とR4をプライマーとして用いて、サーマルシークエンサー(モデルTSR−300)を使用して、実施例1−(1)と同様の条件でPCRを行った結果、約970bpの断片(以下、ERと記す。)を得た。
【0050】
実施例2 融合蛋白をコードするcDNAの構築
融合蛋白質の検出用シーケンスとしてインフルエンザ・ヘマグルチニンの構造の一部(Epi)を含む発現ベクターpCMXEPIを作製した。融合蛋白をコードするcDNAの構築図を図2に示す(図中、*は融合配列5のDNAを作製するときの(NheI)を示す。)。
まず、pCMXベクター(Cell, 66, 663 (1991)に記載)をHindIII-KpnIで開き、次の配列を有する合成ヌクレオチド(配列番号10)、
【0051】
5′-AGCTTGGCGCCACCATGGTGTACCCCTACGACGTGCCCGACTATGCCAGCCTGGGTAC-3′
を挿入したのち(pCMXEPI)、ベクターをKpnI−BamHIで開き、Fas抗原の膜貫通領域と機能発現領域を含むPCR生成物(Fas−TM)および機能発現領域のみを含むPCR生成物(Fas−△TM)(いずれも実施例1(1)で調製した。)のそれぞれのKpnI−BamHI断片を組み込んだ。これによって、Epiが直接、Fas抗原の膜貫通領域および機能発現領域、または機能発現領域と融合した配列が得られた。次にベクターをBamHI で開き、レチノイン酸受容体のリガンド結合領域(RARα、実施例1(2)で調製した。)のBgl II −BamHI断片を組み込んだ。必要な方向に組み込まれたプラスミドから、Epi−Fas−RARαの融合配列が得られた(以後、Epi−Fas−TM−RARαを融合配列1、またEpi−Fas−△TM−RARαを融合配列2と表わす)。一方、融合配列1、2それぞれの上流域のHind IIIサイトに、同末端を持つFas抗原のシグナル配列(Fas−sig)を導入した。方向を確認し、それぞれ融合配列1および2に相当するFas抗原のシグナル配列を持つ融合配列3および4を得た。
同様にして、Epi−Fas−TM−ERの融合配列を得た(以後、融合配列5と表わす)。
【0052】
実施例3 融合蛋白発現系の構築
融合蛋白発現系の概念を図3に示す(図中、*は融合配列5のDNAを作製するときの(NheI)を示す)。
イズミ(Izumi )らによって報告されているベクターpSV2bsr(Exp. Cell. Res.,197, 229, (1991)に記載)よりブラスチサイジンS耐性部分(EcoRI-PvuII 断片)を切り出した。発現ベクターpEFBOS(Nuc. Acid Res., 18, 5322 (1990)に記載)の2箇所のEcoRIサイトのうち、EF−1αプロモーターの3′側にあるもののみ欠失させ、残りのサイトに上記の断片(ブラスチサイジンS耐性部分)を平滑末端化した後に導入した。融合配列1、2をHindIII−BamHIで、融合配列3、4をNotI−BamHIで、さらに融合配列5をHindIII−NheIで切り出し、それぞれ平滑化した。ベクターpEFBOSbsrのマルチクローニングサイトにおけるBstXIサイトを平滑化し、上記の融合配列を導入した。
【0053】
得られた発現ベクターはEcoRIで線形化し、通常のカルシウムホスフェート法にてマウス繊維芽細胞、L929及びヒト癌細胞、HeLaに導入した。Exp. Cell. Res., 197, 229, (1991) に記載されている方法(プラスチサイジンS選択)にて、融合蛋白を常時発現している細胞を選択した。
【0054】
実施例4 ビタミンAによる殺細胞アッセイ
それぞれの融合蛋白を常時発現している細胞、例えばL929を2.5 ×104 個/100μlの割合で10%のFCS(牛胎児血清)を含むDMEM(ダルベッコ変法イーグル培地)に浮遊させ、96穴のマイクロタイタープレートに分配した。5%炭酸ガス中に、37℃にて24時間培養した。ビタミンAの最終濃度の2倍の濃度の試料を同培養液中に調整し、100μl を加えた。そのまま更に15時間培養し、上清を捨てた後にクリスタル・バイオレット(0.75%クリスタルバイオレットの50%エタノール溶液、0.25%のNaCl、1.75%のホルムアルデヒド、室温、20分)で生細胞を染色した(Cell, 66, 233 (1991)に記載の方法)Itohらの文献記載の方法)。PBS(フォスフェートバッファーセーライン)で2回洗浄した後、直接マイクロELISAリーダーで540nmの吸光度を測定した。
【0055】
図4にビタミンA処理時の生細胞数の経時変化を示す。また、図5にビタミンAの濃度変化を示す(図中、黒丸は融合蛋白発現系を導入した細胞であり、白丸は融合蛋白発現系を導入していない細胞である)。これらの結果は融合配列1を導入した細胞を用いた実験から得られたものである。1μMのビタミンAで誘発させた細胞死は、8時間後に90%以上完結する。また、15時間後検定におけるビタミンAの作用は濃度依存性であり、その50%作用濃度(IC50)は約0.1 μMであった。
【0056】
なお、融合配列2または4を導入した細胞では、上記の「リガンド特異的細胞死の誘導」現象は全く観測されなかった。Fas抗原のシグナル配列(Sig)を付加した融合配列3に於ける結果は、上記の融合配列1による結果と同様であり両者の効果は、ビタミンAの濃度依存性、反応の経時変化において区別出来ないものであった。
【0057】
以上の結果は、従来報告されていた転写因子等を用いた融合蛋白と異なり、Fas抗原の場合は、機能発現領域だけを融合させてもシグナル伝達は行われず、膜貫通領域が必須であることを示している。また、細胞核内受容体のサブファミリーのリガンド結合領域を結合された融合蛋白でもシグナルが伝達されることを示している。さらに、Fas抗原と細胞核内受容体が互いに異種動物のものであってもシグナルが伝達されること、および異種動物の細胞にアポトーシスを起こすことも確認された。
【0058】
実施例5 エストロジェンによる殺細胞アッセイ
実施例4と同様にして、それぞれの融合蛋白を常時発現している細胞を培養し、エストロジェンの添加後、培養、染色して吸光度を測定した。
図6にエストロジェンの濃度変化を示す(図中、黒四角は融合蛋白発現系を導入した細胞であり、白四角は融合蛋白発現系を導入していない細胞である)。15時間後検定におけるエストロジェンの作用は濃度依存性であり、その50%作用濃度(IC50)は約0.1 nMであった。この結果は、Fas抗原のアポトーシス機能は、ステロイド受容体のリガンド結合領域を結合した融合蛋白でも発現することを示している。
【0059】
【配列表】
配列番号:1
配列の長さ:35
配列の型:核酸
鎖の数:1本鎖
トポロジー:直鎖状
配列
CACCATGGGT ACCAGCAATA CAAACTGCAG GAAAC
【0060】
配列番号:2
配列の長さ:39
配列の型:核酸
鎖の数:1本鎖
トポロジー:直鎖状
配列
GAAGCCATGG GTACCCAGGA AGCTAAAAAA TTTGCTCGA
【0061】
配列番号:3
配列の長さ:32
配列の型:核酸
鎖の数:1本鎖
トポロジー:直鎖状
配列
TCAGGATCCA GACATTGTCC TTCATTTTCA TT
【0062】
配列番号:4
配列の長さ:45
配列の型:核酸
鎖の数:1本鎖
トポロジー:直鎖状
配列
CTGAAGCTTC GCGGCCGCAC CATGCTGTGG ATCTGGGCTG TCCTG
【0063】
配列番号:5
配列の長さ:30
配列の型:核酸
鎖の数:1本鎖
トポロジー:直鎖状
配列
CCTCCTAAGC TTTAAACTCT CGGAGATGCT
【0064】
配列番号:6
配列の長さ:34
配列の型:核酸
鎖の数:1本鎖
トポロジー:直鎖状
配列
GGCAGATCTC TCTGAGAGCT ACACGCTGAC GCCG
【0065】
配列番号:7
配列の長さ:33
配列の型:核酸
鎖の数:1本鎖
トポロジー:直鎖状
配列
CGTGGATCCT CACGGGGAGT GGGTGGCCGG GCT
【0066】
配列番号:8
配列の長さ:33
配列の型:核酸
鎖の数:1本鎖
トポロジー:直鎖状
配列
CGAAAGGATC CGGGCACTTC AGGAGACATG AGA
【0067】
配列番号:9
配列の長さ:30
配列の型:核酸
鎖の数:1本鎖
トポロジー:直鎖状
配列
TGGGGTACCT GGGAGTTCTC AGATGGTGTT
【0068】
配列番号:10
配列の長さ:58
配列の型:核酸
鎖の数:1本鎖
トポロジー:直鎖状
配列
AGCTTGGCGC CACCATGGTG TACCCCTACG ACGTGCCCGA CTATGCCAGC CTGGGTAC
【図面の簡単な説明】
【図1】 PCRプライマーの調製方法の概念図である。
【図2】 融合蛋白をコードするcDNAの構築図である。
【図3】 融合蛋白発現系の概念図である
【図4】 ビタミンAによるアポトーシスアッセイにおける投与時間と生細胞数の関係を示すグラフである。
【図5】 ビタミンAによるアポトーシスアッセイにおけるビタミンAの濃度と生細胞数の関係を示すグラフである。
【図6】 エストロジェンによるアポトーシスアッセイにおけるエストロジェンの濃度と生細胞数の関係を示すグラフである。
[0001]
[Industrial application fields]
The present invention includes (i) a fusion protein in which an amino sequence containing a ligand binding region of a nuclear receptor is bound to a C terminal of an amino acid sequence containing a transmembrane region and a functional expression region of Fas antigen, (ii) the fusion DNA encoding a protein, (iii) an expression vector containing the DNA, (iv) a transformant transformed with the expression vector, (v) treatment of cancer or autoimmune disease containing the expression vector as an active ingredient And (vi) a method for detecting a ligand of a nuclear receptor using the transformant.
[0002]
BACKGROUND OF THE INVENTION
Recently, receptors for humoral factors such as cytokines and hormones having important physiological activities are being elucidated by genetic manipulation. For example, receptors for fat-soluble hormones collectively called intracellular receptors. Analysis of the amino acid sequences of various nuclear receptors revealed that they are ligand-dependent transcription factors having a common basic structure and form one gene family. That is, a steroid receptor such as a glucocorticoid receptor, a brodiesterone receptor, a mineralcorticoid receptor, an androgenic receptor, an estrogen receptor, a retinoid receptor such as a retinoid X receptor, a retinoic acid receptor, and vitamin DThreeA family consisting of receptors and thyroid hormone receptors. For these receptors, it is known that functional regions such as a ligand binding site and a site recognizing a target DNA sequence are clearly separated [see Science, 240, 889 (1988). However, there are also receptors whose ligands are still unknown.
[0003]
In general, the functional expression of a nuclear receptor is controlled by a ligand binding region. For example, in a steroid receptor in the absence of a ligand (steroid), the ligand binding region forms an inactive state in a complex with a protein called HSP90, but when steroid binds to the ligand binding region, The complex dissociates, and the functional expression region (DNA recognition site) of the receptor binds to the target DNA to regulate the expression of the target gene.
[0004]
On the other hand, although the mechanism of function expression in the retinoid receptor, vitamin D3 receptor and thyroid hormone receptor has not been sufficiently elucidated, it is considered that at least complex formation with HSP90 does not occur. This is a very different point from steroid receptors. Other retinoid receptors, vitamin DThreeReceptors and thyroid hormone receptors have several properties that are different from steroid receptors (for example, the A / B region is shorter than steroid receptors, and the overall molecular weight is therefore reduced, etc.) Therefore, it has been proposed to position these receptors as subfamilies within a large family.
[0005]
On the other hand, Fas antigen is a membrane protein clearly shown to be involved in programmed cell death (apoptosis). Yonehara et al. Produced monoclonal antibodies against human cell surface antigens and obtained anti-Fas antibodies showing lethal activity against various human cells [J. Exp. Med.,169, 1747 (1989)]. The cDNA of the cell surface molecule recognized by the anti-Fas antibody was isolated and the structure of the human Fas antigen was determined [Cell,66, 233 (1991)]. The Fas antigen consists of 335 amino acids, and the 16 amino acids on the N-terminal side are presumed to be signal peptides. A transmembrane region consisting of 17 hydrophobic amino acids is present at the center of the molecule, and 157 amino acids on the N-terminal side are considered to be extracellular regions and 145 amino acids on the C-terminal side are considered to be cytoplasmic regions.
[0006]
Since the structure of Fas antigen is similar to the receptor for cancer necrosis factor (TNF), it is presumed that apoptosis by Fas antibody occurs by a mechanism similar to the action of TNF. The functional region of the Fas antigen has also been gradually clarified, and it is known that the region essential for apoptosis signal transduction (functional expression region) is the amino acid sequence portion from the 175th to the 304th [J. Biol. Chem.,268, 10932 (1993)]. Furthermore, the amino acid sequence of mouse Fas antigen has also been clarified [J. Immunology,148, 1274 (1992)], and has a total of 49.3% homology to the human Fas antigen. The functional expression region is considered to be the amino acid sequence from the 166th to the 291st corresponding to the region of the human Fas antigen.
[0007]
[Prior art]
The receptor has a ligand binding region and a signal transduction region. When a ligand binds to the ligand binding region, the three-dimensional structure of the signal transmission region changes, and the signal is transmitted to another protein or DNA.
Recently, research on signal transduction in a fusion protein in which a ligand binding region of a receptor and a signal transduction region of a heterologous protein are combined has been actively conducted.
For example, a cell transformed with a gene encoding a fusion protein of a ligand (ie, estrogen) binding region of an estrogen receptor, which is one of steroid receptors, and a signal transduction region of human cancer gene c-Myc, Diene stimulation revealed that the cells became cancerous and proliferated [Nature,340,
66 (1989)].
[0008]
Similar experiments have been performed for the ligand-binding regions of the receptors for glucocorticoid, mineralcorticoid, and estrogen and E1A (adenovirus), c-Fos, v-Myb, C / EBP, v-Rel, GATA-1, 3, GAL4-VP16, Rev (HIV), c-Ab1, in the fusion protein with the functional expression region of each protein [Cell,54, 1073 (1988), Proc. Natl. Acad. Sci. USA,88, 5114 (1991), EMBO J.,Ten, 3713 (1991), Science,251, 288 (1991), EMBO J.,11, 4641 (1992), Genes Dev. (In press), Proc. Natl. Acad. Sci. USA,90, 1657 (1993), ibid.,87, 7787 (1990), EMBO J.,12, 2809 (1993)], it has been confirmed that signals are transmitted by binding of ligands corresponding to nuclear receptors.
[0009]
OBJECT OF THE INVENTION
As a result of repeated studies for the purpose of applying the above-described fusion protein to cancer therapy, the present inventors have decided to use Fas antigen as a signal transduction protein. In the experiment, first, the possibility was examined using mouse Fas antigen.
The functional expression region of the mouse Fas antigen is considered to be the amino acid sequence portion from the 166th to 291st positions. However, even when this portion was bound to ligand binding regions of various hormone receptors as ligand binding proteins, the Fas antigen signal was not transmitted (see Example 4). Therefore, we succeeded in transmitting a signal for the first time by fusing the 136th to 305th amino acid sequence including not only the function expression region but also the transmembrane region with the ligand binding region of the hormone receptor. Completed the invention.
[0010]
Various signal transduction proteins used in the prior art are all those that act as transcription factors except that c-Ab1 acts as a kinase, and control the expression of the function of the target protein. In this respect, since the Fas antigen used in the present invention is a cell membrane receptor, it is considered that signal transmission is not performed unless it is bound to the membrane. This was completely unexpected from the prior art. Until now, no fusion protein using Fas antigen as a signal transduction protein has been known. Therefore, the fusion protein of the present invention and the DNA encoding the protein are considered to be a novel invention. In the present invention, it was also confirmed for the first time that signal transduction can be performed even if a subfamily receptor other than a steroid receptor is used as a nuclear receptor used as a ligand binding region.
[0011]
Whether or not this subfamily receptor is signaled in a fusion protein that binds the ligand binding region of the subfamily receptor, considering the difference in structure and signal transduction mechanism from the steroid receptor. It was unknown. The present invention proves that not only steroid receptors but also any nuclear receptors can be used as a ligand-binding region for signal transduction, which is significant.
Furthermore, the present inventors have found that screening for ligand agonist / antagonist can be performed by using cells transformed with a plasmid containing DNA encoding the fusion protein.
[0012]
DISCLOSURE OF THE INVENTION
The present invention
(i) a fusion protein in which an amino acid sequence containing a ligand binding region of a nuclear receptor is bound to the C-terminus of an amino acid sequence containing a transmembrane region and a functional expression region of Fas antigen,
(ii) DNA encoding the fusion protein,
(iii) a replication or expression vector containing the DNA,
(iv) a host cell transformed with the replication or expression vector,
(v) a cancer or autoimmune disease therapeutic agent containing the expression vector as an active ingredient, or
(vi) a method for screening an agonist or antagonist for a nuclear receptor, characterized by using the host cell
About.
[0013]
As the Fas antigen and the nuclear receptor constituting the fusion protein of the present invention, those derived from mammals such as those derived from humans, monkeys, dogs, cats, mice, rats, and guinea pigs are used. The Fas antigen and the nuclear receptor are preferably the same species as each other, but different species may be used. In the present invention, it has been confirmed that signal transmission can be performed even if different species are used. For example, combination of human Fas antigen and human nuclear receptor, combination of mouse Fas antigen and human nuclear receptor, combination of human Fas antigen and rat nuclear receptor, mouse Fas antigen and rat nuclear receptor A combination of a nuclear receptor, a human Fas antigen and a mouse nuclear receptor, or a mouse Fas antigen and a mouse nuclear receptor is preferably used.
[0014]
As the amino acid sequence containing the transmembrane region and functional expression region of Fas antigen used in the present invention and the amino acid sequence containing the ligand binding region of the nuclear receptor, only the portion corresponding to each region may be used. In addition, flanking regions (regions not involved in functional regions, several tens of amino acid sequences, preferably 60 or less) are included at both ends (N-terminal and / or C-terminal) of the portion corresponding to each region. You may use the thing. Furthermore, if desired, an amino acid sequence including a signal peptide region may be bound to the N-terminus of the transmembrane region of the Fas antigen. The amino acid sequence corresponding to each region includes not only the natural amino acid sequence, but also amino acid deletions, substitutions, additions and additions to such an extent that the apoptotic function of the original Fas antigen or the ligand binding function of the nuclear receptor is not impaired. Inserted ones can be used.
[0015]
Among the Fas antigens used in the present invention, the amino acid sequence including the transmembrane region and functional expression region of human Fas antigen is the 319th to 319th Val, and the mouse Fas antigen has a 305th to 305th from the 136th Ser. Sequences up to the second Leu are preferably used. As the amino acid sequence including the signal peptide region, the -16th to 23rd sequences are preferably used for human Fas antigen, and the -21st to 14th sequences are used for mouse Fas antigen.
[0016]
Examples of nuclear receptors used in the present invention include glucocorticoid receptors, brodiesterone receptors, mineralocorticoid receptors, androgenene receptors, estrogen receptors, steroid receptors such as retinoid X receptors, and retinoic acid receptors. And the like, retinoid receptors, vitamin D3 receptors, or thyroid hormone receptors. Preferably, human or rat estrogen receptor, human or mouse retinoid X receptor α, retinoid X receptor β or retinoid X receptor γ or human or mouse retinoic acid receptor α, retinoic acid receptor β or Retinoic acid receptor γ is used.
[0017]
The ligand binding region of each receptor is already known [Science,240, 889 (1988). ] For example, human glucocorticoid receptor from 528 to 777, human brodiesterone receptor from 680 to 934, human mineralocorticoid receptor from 734 to 984, human androgen receptor From 676 to 919, from 311 to 551 for human estrogen receptor, from 307 to 557 for rat estrogen receptor, from 225 to 462 for human retinoid X receptor α, human retinoid X receptor β from 297 to 526, mouse retinoid X receptor α from 230 to 467, mouse retinoid X receptor β from 171 to 410, mouse retinoid X receptor γ from 229th Up to 463rd, 198 to 462 for human retinoic acid receptor α, 191 to 448 for human retinoic acid receptor β, 200 to 454 for human retinoic acid receptor γ, and 198 for mouse retinoic acid receptor α. No. 462 to No. 462, mouse retinoic acid receptor β from 190 to 448, mouse retinoic acid receptor γ from 200 to 458, human vitamin DThreeIt is the amino acid from the 192nd to the 427th amino acid in the receptor, from the 183rd to the 410th amino acid in the human thyroid hormone receptor α, and from the 232nd to the 456th amino acid in the human thyroid hormone receptor β.
[0018]
Preferably, human estrogen receptor 311 to 551, rat estrogen receptor 307 to 557, human retinoid X receptor α 225 to 462, human retinoid X receptor β From 297 to 526, mouse retinoid X receptor α from 230 to 467, mouse retinoid X receptor β from 171 to 410, mouse retinoid X receptor γ from 229 to 463, From 198th to 462th of human retinoic acid receptor α, from 191st to 448th of human retinoic acid receptor β, from 200th to 454th of human retinoic acid receptor γ, from 198 of mouse retinoic acid receptor α. No. 190 to No. 462 of mouse retinoic acid receptor β From to 448 th, sequence from 200 th mouse retinoic acid receptor γ to 458 th is used. More preferably, human estrogen receptor 281 to 595, rat estrogen receptor 286 to 600, human retinoic acid receptor α 176 to 462, or mouse retinoic acid receptor The sequence from α 177 to 458 is used.
[0019]
Among the fusion proteins of the present invention, preferred are:
(i) a fusion protein in which the amino acid sequence from 311 to 551 of the human estrodiene receptor is linked to the C-terminus of the amino acid sequence from 145 to 319 of human Fas antigen;
(ii) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 307th to 557th of the rat estrogen receptor is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 145th to 319th of the human Fas antigen;
(iii) a fusion protein in which the amino acid sequence of human retinoid X receptor α is bound to the amino acid sequence of positions 225 to 462 to the C-terminal of the amino acid sequence of positions 145 to 319 of human Fas antigen;
(iv) a fusion protein in which the amino acid sequence from 297th to 526th of human retinoid X receptor β is linked to the C-terminal of the amino acid sequence from 145th to 319th of human Fas antigen;
(v) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 230th to 467th positions of the mouse retinoid X receptor α is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 145th to 319th positions of the human Fas antigen;
[0020]
(vi) a fusion protein in which the amino acid sequence from 171st to 410th of mouse retinoid X receptor β is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from 145th to 319th of human Fas antigen;
(vii) a fusion protein in which the amino acid sequence from 229th to 463rd of mouse retinoid X receptor γ is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from 145th to 319th of human Fas antigen;
(viii) a fusion protein in which the amino acid sequence from 198th to 462th of human retinoic acid receptor α is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from 145th to 319th of human Fas antigen;
(ix) a fusion protein in which the amino acid sequence from 191st to 448th of human retinoic acid receptor β is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from 145th to 319th of human Fas antigen;
(x) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 200th to the 454th positions of the human retinoic acid receptor γ is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 145th to 319th positions of the human Fas antigen;
[0021]
(xi) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 198th to the 462nd of the mouse retinoic acid receptor α is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 145th to 319th of the human Fas antigen;
(xii) a fusion protein in which the amino acid sequence from 190th to 448th of mouse retinoic acid receptor β is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from 145th to 319th of human Fas antigen, or
(xiii) A fusion protein in which the amino acid sequence from the 200th to the 458th positions of the mouse retinoic acid receptor γ is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 145th to 319th positions of the human Fas antigen.
[0022]
Moreover, as another preferable thing,
(i) a fusion protein in which the amino acid sequence from 311 to 551 of the human estrodiene receptor is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from 136 to 305 of mouse Fas antigen;
(ii) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 307th to 557th of the rat estrogen receptor is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 136th to 305th of the mouse Fas antigen;
(iii) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 225th to 462th positions of the human retinoid X receptor α is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 136th to 305th positions of the mouse Fas antigen;
(iv) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 297th to 526th positions of the human retinoid X receptor β is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 136th to 305th positions of the mouse Fas antigen;
[0023]
(v) a fusion protein in which the amino acid sequence from mouse positions 230 to 467 of mouse retinoid X receptor α is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from positions 136 to 305 of mouse Fas antigen;
(vi) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 171st to 410th positions of the mouse retinoid X receptor β is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 136th to 305th positions of the mouse Fas antigen;
(vii) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 229th to 463rd positions of the mouse retinoid X receptor γ is bound to the C-terminal of the 136th to 305th amino acid sequences of the mouse Fas antigen;
(viii) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 198th to the 462nd amino acid sequence of the human retinoic acid receptor α is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 136th to the 305th amino acid sequence of the mouse Fas antigen;
(ix) a fusion protein in which the amino acid sequence from 191st to 448th of human retinoic acid receptor β is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from 136th to 305th of mouse Fas antigen;
[0024]
(x) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 200th position to the 454th position of the human retinoic acid receptor γ is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 136th position to the 305th position of the mouse Fas antigen;
(xi) a fusion protein in which the amino acid sequence from mouse positions 198 to 462 of mouse retinoic acid receptor α is linked to the C-terminal of the amino acid sequence from position 136 to position 305 of mouse Fas antigen;
(xii) a fusion protein in which the amino acid sequence from mouse positions 190 to 448 of mouse retinoic acid receptor β is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from mouse positions 136 to 305 of mouse Fas antigen, or
(xiii) A fusion protein in which the amino acid sequence from the 200th position to the 458th position of the mouse retinoic acid receptor γ is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 136th position to the 305th position of the mouse Fas antigen.
[0025]
Among the fusion proteins of the present invention, more preferred are:
(i) a fusion protein in which the amino acid sequence of 281 to 595 of the human estrodiene receptor is linked to the C terminus of the amino acid sequence of 145 to 319 of human Fas antigen;
(ii) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 286th to the 600th amino acid sequence of the rat estrogen receptor is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 145th to 319th amino acid of the human Fas antigen;
(iii) a fusion protein in which the amino acid sequence from 176th to 462th of human retinoic acid receptor α is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from 145th to 319th of human Fas antigen;
(iv) a fusion protein in which the amino acid sequence from 177th to 458th of mouse retinoic acid receptor α is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from 145th to 319th of human Fas antigen;
[0026]
(v) a fusion protein in which the amino acid sequence of 281 to 595 of the human estrogen receptor is bound to the C-terminal of the amino acid sequence of 136 to 305 of mouse Fas antigen;
(vi) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 286th to the 600th amino acid sequence of the rat estrogen receptor is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 136th to the 305th amino acid of the mouse Fas antigen;
(vii) a fusion protein in which the amino acid sequence from the 176th to 462th positions of the human retinoic acid receptor α is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 136th to 305th positions of the mouse Fas antigen;
(viii) A fusion protein in which the amino acid sequence from the 177th to the 458th of the mouse retinoic acid receptor α is bound to the C-terminal of the amino acid sequence from the 136th to the 305th of the mouse Fas antigen.
[0027]
The present invention also includes DNA encoding the fusion protein of the present invention.
As is well known, 1 to 6 types of codons encoding one amino acid (for example, one type of methionine (Met) and six types of leucine (Leu)) are known. Therefore, the base sequence of DNA can be changed without changing the amino acid sequence.
[0028]
The present invention includes all base sequence groups encoding the fusion protein of the present invention. The productivity of the fusion protein may be improved by changing the base sequence.
The DNA encoding the fusion protein of the present invention can be prepared according to the following method.
That is,
(i) Amplifying a DNA encoding an amino acid sequence including a necessary region out of the amino acid sequences of Fas antigen and nuclear receptor by a polymerase chain reaction (PCR) method,
(ii) It is carried out by incorporating a PCR product obtained from the Fas antigen into an appropriate vector, and subsequently incorporating a PCR product obtained from the intracellular receptor.
[0029]
In more detail,
Step (i) is a step of amplifying the components necessary for fusion by the PCR method. In the case of Fas antigen, a base sequence encoding an amino acid sequence including a transmembrane region and a functional expression region is chemically synthesized and used as a primer. In the case of an intracellular receptor, a base sequence encoding an amino acid sequence including a ligand binding region is chemically synthesized and used as a primer.
A specific restriction enzyme site is provided at the 5 'end of the obtained primer. As a template for the PCR method, mRNA isolated and purified from cells or cell lines of corresponding mammals such as humans and mice can be used. The PCR method is performed by a known method. Recently, since a PCR automation apparatus is also widespread, this apparatus is preferably used.
[0030]
Step (ii) is a step of fusing both parts in a vector. As a plasmid vector used in this step, there are many known plasmid vectors that function in E. coli (for example, pBR322) and those that function in Bacillus subtilis (for example, pUB110). .
It can also be directly incorporated into an expression vector. For example, in the case of expressing in E. coli, the PCR product of Fas antigen is connected downstream of an appropriate promoter (eg, trp promoter, lac promoter, λPL promoter, T7 promoter, etc.), and then received downstream in the cell. The PCR product of the body is connected and inserted into a vector that functions in E. coli (for example, pUC18, pUC19, etc.) to create an expression vector. For expression in mammalian cells, an appropriate promoter (eg, SV40 promoter, LTR promoter, metallothionein) in an appropriate vector (eg, retrovirus vector, papilloma virus vector, vaccinia virus vector, SV40 vector, etc.). An expression vector is prepared by inserting the PCR product of the Fas antigen and then the PCR product of the intracellular receptor downstream of the promoter or the like. Preferably, pCMX (Cell,66663 (1991). ) Is used.
[0031]
When expressed in mammalian cells, a PCR product having a base sequence encoding the signal peptide region of Fas antigen can be inserted immediately downstream of the promoter, if desired.
The present invention includes a replication or expression vector comprising the DNA of the present invention. Examples of the vector include a plasmid, virus, or phage vector comprising an ori region and, if necessary, a promoter for expression of the DNA, a promoter control factor, and the like. The vector may contain one or more selective marker genes (eg, neomycin resistance gene, blasticidin S resistance gene).
[0032]
Examples of the expression system (host-vector system) for producing the fusion protein of the present invention include bacterial, yeast, insect cell and mammalian cell expression systems.
For example, when expressing in E. coli, E. coli transformed with an expression vector that functions in E. coli (for example, E. coli DH1, E. coli JM109, E. coli HB101 strain, etc.) is cultured in an appropriate medium. Thus, the desired polypeptide can be obtained from the cells. In addition, if a bacterial signal peptide (for example, a pelB signal peptide) is used, the target fusion protein can be secreted into the periplasm.
[0033]
In addition, when expressed in mammalian cells, suitable mammalian cells (for example, monkey COS-7 cells, Chinese hamster CHO cells, mouse L cells, mouse fibroblasts) using the above-described expression vector that functions in mammalian cells. Cells, human cancer cells, etc.) are transformed, and the transformant is cultured in an appropriate medium to produce the target fusion protein. The polypeptide obtained as described above can be isolated and purified by a general biochemical method.
The present invention includes host cells transformed with a replication or expression vector comprising the DNA of the present invention.
[0034]
【The invention's effect】
The fusion protein of the present invention thus obtained can be used as a therapeutic agent for cancer or autoimmune diseases. That is, an expression vector containing DNA encoding the fusion protein of the present invention is locally administered to a cancer lesion or autoimmune disease lesion by a targeting method (for example, encapsulated in liposomes). The vector enters the cancer cell at the lesion site, enters the gene, and continuously expresses the fusion protein. Thereafter, a ligand corresponding to a nuclear receptor constituting a part of the fusion protein of the present invention (for example, 9-cis-retinoic acid or retinoic acid receptor when a retinoid X receptor is used as the receptor) Vitamin A) is administered if A ligand binds to the fusion protein of the present invention produced in cancer cells, and an apoptosis signal is transmitted. Thus, cancer cells die.
[0035]
Furthermore, the fusion protein of the present invention can be widely used as a screening method for agonists or antagonists for intracellular nuclear receptors. That is, a specimen is added to cells that always express the fusion protein of the present invention. If the cell dies, the specimen indicates that it has agonist activity, and if the cell survives in the presence of the agonist, the specimen is found to have antagonist activity.
The screening method of the present invention not only can process a large amount of samples in a short time, but also exhibits an effect (result) as cell death. It can be said that it is a law.
[0036]
【Example】
Hereinafter, the present invention will be described in more detail and more specifically by way of examples, but of course the present invention is not limited thereto.
[0037]
Example 1 Preparation of PCR products
FIG. 1 shows a conceptual diagram of a PCR primer preparation method. In the figure, region A shows the signal peptide region of mouse Fas antigen, region B shows the extracellular region of mouse Fas antigen, region C shows the transmembrane region of mouse Fas antigen, and region D shows the cytoplasm of mouse Fas antigen. Region E represents the ligand binding region of human retinoic acid receptor α, and region F represents the ligand binding region of rat estrogen receptor.
[0038]
(1) Preparation of PCR product of mouse Fas antigen
A report by Fukunaga et al. (J. Immunology,1481274 (1992)), the following primers were prepared according to the structure of the mouse Fas antigen.
F1: Amino acid sequence from the 131st position to the 143rd position: a primer that corresponds to the structure of Pro Cys Thr Ala Thr Ser Asn Thr Asn Cys Arg Lys Gln and in which restriction enzyme NcoI and KpnI sites are introduced into a part of 5 ′ SEQ ID NO: 1),
[0039]
5'-CACCATGGGTACCAGCAATACAAACTGCAGGAAAC-3 '
Was synthesized.
F2: Amino acid sequence from position 209 to position 221: primer corresponding to the structure of Glu Asp Met Thr Ile Gln Glu Ala Lys Lys Phe Ala Arg with restriction enzyme NcoI and KpnI sites introduced into a part of 5 ′ side ( SEQ ID NO: 2),
[0040]
5'-GAAGCCATGGGTACCCAGGAAGCTAAAAAATTTGCTCGA-3 '
Was synthesized.
F3: Amino acid sequence from 298th to 306th (C-terminal): Asn Glu Asn Glu Gly Gln Cys Leu Glu and corresponding to a part of 3 'untranslated region, and further BamHI site in part of 3'- side Introduced 3′-primer (SEQ ID NO: 3),
[0041]
5'-TCAGGATCCAGACATTGTCCTTCATTTTCATT-3 '
Was synthesized.
S1: A part of the 5 'untranslated region of Fas antigen cDNA, including amino acid sequence from -21st to -14th: Corresponds to the structure of Met Leu Trp Ile Trp Ala Val Leu 5'-side restriction enzyme HindIII and A primer (SEQ ID NO: 4) introduced with a NotI site;
[0042]
5'-CTGAAGCTTCGCGGCCGCACCATGCTGTGGATCTGGGCTGTCCTG-3 '
Was synthesized.
S2: part of cDNA of Fas antigen, amino acid sequence from 5th to 14th: 3′-primer corresponding to Ser Ile Ser Glu Ser Leu Lys Leu Arg Arg and having a HindIII site introduced in part of 3 ′ side (SEQ ID NO: 5),
[0043]
5'-CCTCCTAAGCTTTAAACTCTCGGAGATGCT-3 '
Was synthesized.
Mouse T cell line, RLM-11 (Cell,68, 1109 (1992)) as a template, using F1 and F3 PCR products as primers, and using a thermal sequencer (model TSR-300, manufactured by Iwaki Glass Co., Ltd.) at 95 ° C. As a result of RT-PCR under conditions of 180 seconds × 1 → (95 ° C. for 60 seconds, 55 ° C. for 60 seconds, 72 ° C. for 60 seconds) × 15 → 72 ° C. for 180 seconds, a fragment of about 520 bp (Referred to as Fas-TM). Next, PCR was performed under the same conditions as described above using the same mRNA as above as a template and PCR products of F2 and F3 as primers. As a result, a fragment of about 280 bp (hereinafter referred to as Fas-ΔTM) I wrote.) Furthermore, as a result of PCR under the same conditions as described above using the same mRNA as the template and the PCR products of S1 and S2 as primers, a fragment of about 120 bp (hereinafter referred to as Fas-sig) is obtained. Obtained.
[0044]
(2) Preparation of PCR product of human retinoic acid α receptor
Giguere et al. (Nature,330, 624 (1987)), the following primers were prepared from the structure of the receptor for human retinoic acid α.
R1: Amino acid sequence from 173rd to 182nd: Primer corresponding to the structure of Glu Cys Ser Glu Ser Tyr Thr Leu Thr Pro, and a restriction enzyme Bgl II site introduced into a part of 5 ′ side (SEQ ID NO: 6) ,
[0045]
5'-GGCAGATCTCTCTGAGAGCTACACGCTGACGCCG-3 '
Was synthesized.
R2: Amino acid sequence from the 456th position to the 462nd position (C terminus): Ser Pro Ala Thr His Ser Pro and corresponding to a part of the 3 ′ untranslated region 3 ′ with a BamHI site introduced into a part of the 3 ′ side A primer (SEQ ID NO: 7),
[0046]
5'-CGTGGATCCTCACGGGGAGTGGGTGGCCGGGCT-3 '
Was synthesized.
Example 1- (1) Using a thermal sequencer (model TSR-300) using mRNA obtained from HL-60 of human prebone myeloid leukemia cells as a template and using R1 and R2 as primers. As a result of RT-PCR under the same conditions as above, a fragment of about 870 bp (hereinafter referred to as RARα) was obtained.
[0047]
(3) Preparation of rat estrogen receptor PCR product
Koike et al. (Nucleic Acid Research,15, 2499 (1987)), the following primers were prepared from the structure of the rat estrogen receptor.
R3: Amino acid sequence from the 282nd to the 292nd: Primer corresponding to the structure of Arg Asn Glu Met Gly Thr Ser Gly Asp Met Arg, in which a restriction enzyme BamHI site was introduced in part of the 5 ′ side (SEQ ID NO: 8) ,
[0048]
5'-CGAAAGGATCCGGGCACTTCAGGAGACATGAGA-3 '
Was synthesized. R4: amino acid sequence from the 598th to the 600th (C-terminal): Asn Thr Ile and 3 ′ primer corresponding to a part of the 3 ′ untranslated region and a BamHI site introduced into a part on the 3 ′ side (SEQ ID NO: 9),
[0049]
5'-TGGGGTACCTGGGAGTTCTCAGATGGTGTT-3 '
Was synthesized.
PUCER6 (Granted by Professor Masami Muramatsu, Saitama Medical University, Nucleic Acid Research,15, 2499 (described in 1987) using the mRNA obtained as a template, R3 and R4 as primers, and using a thermal sequencer (model TSR-300), the same conditions as in Example 1- (1) As a result of PCR, a fragment of about 970 bp (hereinafter referred to as ER) was obtained.
[0050]
Example 2 Construction of cDNA encoding fusion protein
An expression vector pCMXEPI containing a part of the structure of influenza hemagglutinin (Epi) was prepared as a sequence for detecting the fusion protein. A construction diagram of cDNA encoding the fusion protein is shown in FIG. 2 (in the figure, * indicates (NheI) when the DNA of the fusion sequence 5 is prepared).
First, pCMX vector (Cell,66, 663 (1991)) with HindIII-KpnI and a synthetic nucleotide (SEQ ID NO: 10) having the following sequence:
[0051]
5'-AGCTTGGCGCCACCATGGTGTACCCCTACGACGTGCCCGACTATGCCAGCCTGGGTAC-3 '
(PCMXEPI), the vector is opened with KpnI-BamHI, and a PCR product (Fas-TM) containing the transmembrane region and functional expression region of Fas antigen and a PCR product (Fas-Δ) containing only the functional expression region TM) (both prepared in Example 1 (1)) each KpnI-BamHI fragment was incorporated. As a result, a sequence in which Epi was directly fused with the transmembrane region and functional expression region of Fas antigen or the functional expression region was obtained. The vector was then opened with BamHI to incorporate the Bgl II-BamHI fragment of the ligand binding region of the retinoic acid receptor (RARα, prepared in Example 1 (2)). Epi-Fas-RARα fusion sequence was obtained from the plasmid integrated in the required direction (hereinafter Epi-Fas-TM-RARα was fused sequence 1, and Epi-Fas-ΔTM-RARα was fused sequence 2). ). On the other hand, a Fas antigen signal sequence (Fas-sig) having the same end was introduced into the Hind III site in the upstream region of each of the fusion sequences 1 and 2. The directions were confirmed, and fusion sequences 3 and 4 having a Fas antigen signal sequence corresponding to fusion sequences 1 and 2, respectively, were obtained.
Similarly, a fusion sequence of Epi-Fas-TM-ER was obtained (hereinafter referred to as fusion sequence 5).
[0052]
Example 3 Construction of a fusion protein expression system
The concept of the fusion protein expression system is shown in FIG. 3 (in the figure, * indicates (NheI) when producing DNA of the fusion sequence 5).
Vector pSV2bsr (Exp. Cell. Res., Reported by Izumi et al.,197, 229, (1991)), a blasticidin S resistant portion (EcoRI-PvuII fragment) was excised. Expression vector pEFBOS (Nuc. Acid Res.,18, 5322 (1990)), only the one located on the 3 ′ side of the EF-1α promoter is deleted, and the above-mentioned fragment (the blasticidin S resistant portion) is blunt-ended at the remaining site. It was introduced after becoming. Fusion sequences 1 and 2 were cut with HindIII-BamHI, fusion sequences 3 and 4 with NotI-BamHI, and further fusion sequence 5 with HindIII-NheI and smoothed. The BstXI site in the multi-cloning site of the vector pEFBOSbsr was blunted and the above fusion sequence was introduced.
[0053]
The obtained expression vector was linearized with EcoRI and introduced into mouse fibroblasts, L929, human cancer cells, and HeLa by the usual calcium phosphate method. Exp. Cell. Res.,197, 229, (1991) (plastisidine S selection) were used to select cells that always express the fusion protein.
[0054]
Example 4 Cell killing assay with vitamin A
Cells constantly expressing each fusion protein, eg L929, 2.5 × 10FourThe cells were suspended in DMEM (Dulbecco's modified Eagle's medium) containing 10% FCS (fetal calf serum) at a ratio of 1/100 μl and distributed to a 96-well microtiter plate. The cells were cultured in 5% carbon dioxide gas at 37 ° C. for 24 hours. A sample with a concentration twice the final concentration of vitamin A was prepared in the same culture and 100 μl was added. After further incubation for 15 hours and discarding the supernatant, the living cells were stained with crystal violet (0.75% crystal violet in 50% ethanol, 0.25% NaCl, 1.75% formaldehyde, room temperature, 20 minutes) (Cell ,66, 233 (1991)) and Itoh et al. After washing twice with PBS (phosphate buffer saline), the absorbance at 540 nm was directly measured with a micro ELISA reader.
[0055]
FIG. 4 shows changes with time in the number of viable cells during vitamin A treatment. FIG. 5 shows changes in vitamin A concentration (in the figure, black circles are cells into which the fusion protein expression system has been introduced, and white circles are cells into which the fusion protein expression system has not been introduced). These results were obtained from experiments using cells into which the fusion sequence 1 was introduced. Cell death induced by 1 μM vitamin A is more than 90% complete after 8 hours. In addition, the action of vitamin A in the assay after 15 hours was concentration-dependent, and the 50% action concentration (IC50) was about 0.1 μM.
[0056]
In the cells into which the fusion sequence 2 or 4 was introduced, the above “induction of ligand-specific cell death” phenomenon was not observed at all. The result of the fusion sequence 3 to which the Fas antigen signal sequence (Sig) was added is the same as the result of the fusion sequence 1 described above, and the effects of both can be distinguished in the concentration dependency of vitamin A and the change in the reaction over time. It was not.
[0057]
The above results are different from previously reported fusion proteins using transcription factors, etc. In the case of Fas antigen, signal transduction is not performed even if only the functional expression region is fused, and the transmembrane region is essential. Is shown. Moreover, it is shown that a signal is also transmitted by a fusion protein bound with a ligand binding region of a subfamily of intracellular receptors. Furthermore, it was confirmed that a signal is transmitted even if the Fas antigen and the nuclear receptor are from different animals, and that apoptosis occurs in the cells of the different animals.
[0058]
Example 5 Cell killing assay with estrogen
In the same manner as in Example 4, cells constantly expressing each fusion protein were cultured, and after adding estrogen, the cells were cultured and stained, and the absorbance was measured.
FIG. 6 shows changes in estrogen concentration (in the figure, black squares are cells into which the fusion protein expression system has been introduced, and white squares are cells into which the fusion protein expression system has not been introduced). The effect of estrogen in the assay after 15 hours was concentration dependent and its 50% working concentration (IC50) was about 0.1 nM. This result indicates that the apoptotic function of Fas antigen is also expressed in a fusion protein bound with a ligand binding region of a steroid receptor.
[0059]
[Sequence Listing]
SEQ ID NO: 1
Sequence length: 35
Sequence type: Nucleic acid
Number of chains: 1 strand
Topology: Linear
Array
CACCATGGGT ACCAGCAATA CAAACTGCAG GAAAC
[0060]
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Sequence length: 39
Sequence type: Nucleic acid
Number of chains: 1 strand
Topology: Linear
Array
GAAGCCATGG GTACCCAGGA AGCTAAAAAA TTTGCTCGA
[0061]
SEQ ID NO: 3
Sequence length: 32
Sequence type: Nucleic acid
Number of chains: 1 strand
Topology: Linear
Array
TCAGGATCCA GACATTGTCC TTCATTTTCA TT
[0062]
SEQ ID NO: 4
Sequence length: 45
Sequence type: Nucleic acid
Number of chains: 1 strand
Topology: Linear
Array
CTGAAGCTTC GCGGCCGCAC CATGCTGTGG ATCTGGGCTG TCCTG
[0063]
SEQ ID NO: 5
Sequence length: 30
Sequence type: Nucleic acid
Number of chains: 1 strand
Topology: Linear
Array
CCTCCTAAGC TTTAAACTCT CGGAGATGCT
[0064]
SEQ ID NO: 6
Sequence length: 34
Sequence type: Nucleic acid
Number of chains: 1 strand
Topology: Linear
Array
GGCAGATCTC TCTGAGAGCT ACACGCTGAC GCCG
[0065]
SEQ ID NO: 7
Sequence length: 33
Sequence type: Nucleic acid
Number of chains: 1 strand
Topology: Linear
Array
CGTGGATCCT CACGGGGAGT GGGTGGCCGG GCT
[0066]
SEQ ID NO: 8
Sequence length: 33
Sequence type: Nucleic acid
Number of chains: 1 strand
Topology: Linear
Array
CGAAAGGATC CGGGCACTTC AGGAGACATG AGA
[0067]
SEQ ID NO: 9
Sequence length: 30
Sequence type: Nucleic acid
Number of chains: 1 strand
Topology: Linear
Array
TGGGGTACCT GGGAGTTCTC AGATGGTGTT
[0068]
SEQ ID NO: 10
Sequence length: 58
Sequence type: Nucleic acid
Number of chains: 1 strand
Topology: Linear
Array
AGCTTGGCGC CACCATGGTG TACCCCTACG ACGTGCCCGA CTATGCCAGC CTGGGTAC
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a conceptual diagram of a PCR primer preparation method.
FIG. 2 is a construction diagram of cDNA encoding a fusion protein.
FIG. 3 is a conceptual diagram of a fusion protein expression system.
FIG. 4 is a graph showing the relationship between the administration time and the number of living cells in an apoptosis assay using vitamin A.
FIG. 5 is a graph showing the relationship between the concentration of vitamin A and the number of living cells in an apoptosis assay using vitamin A.
FIG. 6 is a graph showing the relationship between the concentration of estrogen and the number of living cells in an apoptosis assay using estrogen.

Claims (22)

マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列またはヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列を含むアミノ酸配列(ただし、Fas抗原の細胞外領域を含まない。)のC末端に、細胞核内受容体のリガンド結合領域を含むアミノ酸配列を結合させた融合蛋白。  At the C-terminus of the amino acid sequence of the mouse Fas antigen from the 136th to the 305th amino acid sequence or the amino acid sequence of the human Fas antigen from the 145th to 319th amino acid sequence (but not including the extracellular region of the Fas antigen), A fusion protein in which an amino acid sequence containing a ligand binding region of a nuclear receptor is bound. マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列またはヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列を含むアミノ酸配列(ただし、Fas抗原の細胞外領域を含まない。)のN末端に、マウスFas抗原の−21番目から14番目までのアミノ酸配列またはヒトFas抗原の−16番目から23番目までのアミノ酸配列を結合させた請求項1記載の融合蛋白。  At the N-terminal of the amino acid sequence from the 136th to the 305th amino acid sequence of the mouse Fas antigen or the amino acid sequence from the 145th to 319th amino acid sequence of the human Fas antigen (excluding the extracellular region of the Fas antigen), The fusion protein according to claim 1, wherein the amino acid sequence from -21st to 14th of mouse Fas antigen or the amino acid sequence from -16th to 23rd of human Fas antigen is bound. 細胞核内受容体がステロイド受容体である請求項1または2項に記載の融合蛋白。  The fusion protein according to claim 1 or 2, wherein the nuclear receptor is a steroid receptor. 細胞核内受容体がエストロジェン受容体である請求項3記載の融合蛋白。  The fusion protein according to claim 3, wherein the nuclear receptor is an estrogen receptor. 細胞核内受容体のリガンド結合領域を含むアミノ酸配列がヒトエストロジエン受容体の311番目から551番目までのアミノ酸配列、またはラットエストロジエン受容体の307番目から557番目までのアミノ酸配列である請求項4記載の融合蛋白。  5. The amino acid sequence containing the ligand binding region of the nuclear receptor is the amino acid sequence from 311 to 551 of the human estrogen receptor, or the amino acid sequence from 307 to 557 of the rat estrogen receptor. The fusion protein described. 細胞核内受容体がレチノイド受容体である請求項1または2項に記載の融合蛋白。  The fusion protein according to claim 1 or 2, wherein the nuclear receptor is a retinoid receptor. 細胞核内受容体がレチノイドX受容体である請求項6記載の融合蛋白。  The fusion protein according to claim 6, wherein the nuclear receptor is a retinoid X receptor. 細胞核内受容体のリガンド結合領域を含むアミノ酸配列が、ヒトレチノイドX受容体αの225番目から462番目までのアミノ酸配列、ヒトレチノイドX受容体βの297番目から526番目までのアミノ酸配列、マウスレチノイドX受容体αの230番目から467番目までのアミノ酸配列、マウスレチノイドX受容体βの171番目から410番目までのアミノ酸配列、またはマウスレチノイドX受容体γの229番目から463番目までのアミノ酸配列である請求項7記載の融合蛋白。  The amino acid sequence including the ligand binding region of the nuclear receptor is the amino acid sequence from the 225th to the 462th position of the human retinoid X receptor α, the amino acid sequence from the 297th to the 526th position of the human retinoid X receptor β, the mouse retinoid The amino acid sequence from the 230th to the 467th position of the X receptor α, the amino acid sequence from the 171st to the 410th position of the mouse retinoid X receptor β, or the amino acid sequence from the 229th to the 463rd position of the mouse retinoid X receptor γ The fusion protein according to claim 7. 細胞核内受容体がレチノイン酸受容体である請求項6記載の融合蛋白。  The fusion protein according to claim 6, wherein the nuclear receptor is a retinoic acid receptor. 細胞核内受容体のリガンド結合領域を含むアミノ酸配列が、ヒトレチノイン酸受容体αの198番目から462番目までのアミノ酸配列、ヒトレチノイン酸受容体βの191番目から448番目までのアミノ酸配列、ヒトレチノイン酸受容体γの200番目から454番目までのアミノ酸配列、マウスレチノイン酸受容体αの198番目から462番目までのアミノ酸配列、マウスレチノイン酸受容体βの190番目から448番目までのアミノ酸配列、またはマウスレチノイン酸受容体γの200番目から458番目までのアミノ酸配列である請求項9記載の融合蛋白。  The amino acid sequence including the ligand binding region of the nuclear receptor is the amino acid sequence from the 198th to the 462nd human retinoic acid receptor α, the amino acid sequence from the 191st to 448th human retinoic acid receptor β, human retinoin 200 to 454 amino acid sequence of acid receptor γ, 198 to 462 amino acid sequence of mouse retinoic acid receptor α, 190 to 448 amino acid sequence of mouse retinoic acid receptor β, or The fusion protein according to claim 9, which has an amino acid sequence from the 200th position to the 458th position of mouse retinoic acid receptor γ. 細胞核内受容体がビタミンD3受容体である請求項1または2項に記載の融合蛋白。Fusion protein according to claim 1 or 2 wherein the cell nuclear receptor is a vitamin D 3 receptor. 細胞核内受容体が甲状腺ホルモン受容体である請求項1または2項に記載の融合蛋白。  The fusion protein according to claim 1 or 2, wherein the nuclear receptor is a thyroid hormone receptor. マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、またはヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトエストロジエン受容体の281番目から595番目までのアミノ酸配列、またはラットエストロジエン受容体の286番目から600番目までのアミノ酸配列を結合させた請求項1記載の融合蛋白。  From the C-terminal of the amino acid sequence 136 to 305 of the mouse Fas antigen, or the C-terminal of the amino acid sequence 145 to 319 of the human Fas antigen, the 281st to 595th of the human estrogen receptor The fusion protein according to claim 1, wherein the amino acid sequence or the amino acid sequence from the 286th to the 600th amino acid sequence of the rat estrogen receptor is bound. マウスFas抗原の136番目から305番目までのアミノ酸配列のC末端に、またはヒトFas抗原の145番目から319番目までのアミノ酸配列のC末端に、ヒトレチノイン酸受容体αの176番目から462番目までのアミノ酸配列、またはマウスレチノイン酸受容体αの177番目から458番目までのアミノ酸配列を結合させた請求項1記載の融合蛋白。  From the 176th to 462th positions of the human retinoic acid receptor α at the C-terminal of the amino acid sequence from the 136th to 305th positions of the mouse Fas antigen or the C-terminal of the amino acid sequence from the 145th to 319th positions of the human Fas antigen The fusion protein according to claim 1, wherein the amino acid sequence of 177 or 458 of mouse retinoic acid receptor α is bound. 請求項1に記載された融合蛋白をコードするDNA。  A DNA encoding the fusion protein according to claim 1. 請求項1乃至12のいずれかの項に記載された融合蛋白をコードするDNA。  A DNA encoding the fusion protein according to any one of claims 1 to 12. 請求項13または14に記載された融合蛋白をコードするDNA。  A DNA encoding the fusion protein according to claim 13 or 14. 請求項15に記載されたDNAを含む複製または発現ベクター。  A replication or expression vector comprising the DNA of claim 15. 請求項18に記載された複製または発現ベクターで形質転換された宿主細胞。  A host cell transformed with a replication or expression vector according to claim 18. 請求項18に記載された発現ベクターを有効成分として含有するガンまたは自己免疫疾患の治療剤。  A therapeutic agent for cancer or autoimmune disease comprising the expression vector according to claim 18 as an active ingredient. 請求項19に記載された宿主細胞を用いることを特徴とする細胞核内受容体に対するアゴニストまたはアンタゴニストのスクリーニング方法。  A method for screening an agonist or antagonist for a nuclear receptor, comprising using the host cell according to claim 19. 請求項19に記載された宿主細胞が、マウス繊維芽細胞L929またはヒトガン細胞HeLaであることを特徴とする、エストロジェン受容体、レチノイドX受容体またはレチノイン酸受容体に対するアゴニストまたはアンタゴニストのスクリーニング方法。  A method for screening an agonist or antagonist for an estrogen receptor, a retinoid X receptor or a retinoic acid receptor, wherein the host cell according to claim 19 is mouse fibroblast L929 or human cancer cell HeLa.
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