JP3631740B6 - Biosensor enzyme electrode and method for producing the same - Google Patents

Biosensor enzyme electrode and method for producing the same Download PDF

Info

Publication number
JP3631740B6
JP3631740B6 JP2003086116A JP2003086116A JP3631740B6 JP 3631740 B6 JP3631740 B6 JP 3631740B6 JP 2003086116 A JP2003086116 A JP 2003086116A JP 2003086116 A JP2003086116 A JP 2003086116A JP 3631740 B6 JP3631740 B6 JP 3631740B6
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
electrode
polymer
enzyme
biosensor
electron acceptor
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
JP2003086116A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP2004294231A (en
JP3631740B2 (en
Inventor
里見 新橋
まどか 高井
洋輝 小川
靖浩 堀池
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Japan Science and Technology Agency
National Institute of Japan Science and Technology Agency
Original Assignee
Japan Science and Technology Agency
National Institute of Japan Science and Technology Agency
Filing date
Publication date
Application filed by Japan Science and Technology Agency, National Institute of Japan Science and Technology Agency filed Critical Japan Science and Technology Agency
Priority to JP2003086116A priority Critical patent/JP3631740B6/en
Publication of JP2004294231A publication Critical patent/JP2004294231A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP3631740B2 publication Critical patent/JP3631740B2/en
Publication of JP3631740B6 publication Critical patent/JP3631740B6/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Images

Description

【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、バイオセンサの酵素電極、詳しくは、酸化還元酵素と電子受容体との酵素反応により試料液中の被検物質濃度を電気化学的に測定するバイオセンサの酵素電極に関する。またその製造方法に関するものである。
【0002】
【従来の技術】
近年、在宅で手軽に行える血液検査を目的とした安価で使い捨て可能な多項目・同時測定血液分析装置が必要とされている。
【0003】
従来の血液成分検査を目的とした簡易検査装置として、チップ状多項目測定用装置がある。これは単一流路付プラスチック基板に半導体電極としてイオン選択性電界効果トランジスタ(ISFET)などをセンサとして組み込み、電気化学的に目的物質のみを測定可能とするものである。しかし、このような多項目測定に用いられる血液分析装置は、測定に必要な血液量が多く、被験者に及ぼす採血時の負担が大きい。また、半導体電極が非常に高価であるため、デバイス価格も高くなる。さらに流路が単一であるため、相互干渉作用のある複数のセンサを同一装置内に搭載できない。このような背景から、従来の多項目測定用血液分析装置は病院等での検査に用いられるケースが多く、また、測定項目が限られてしまうのが現状である。
【0004】
在宅簡易血液分析装置の一例として、血糖(グルコース)値測定器が挙げられる。市販されている多くの血糖値測定器は、数μL以下の微量全血からの測定を可能としている。このような測定器のバイオセンサには、いわゆる電子メディエータ型のセンサが用いられている(例えば、特許文献1参照) 。
【0005】
【特許文献1】
特開平3−202764号公報
【0006】
このバイオセンサでは、基板上の電極系表面に酸化還元酵素と親水性高分子及び電子受容体からなる酵素反応層を設けている。血液などの試料液を酵素反応層に滴下すると、試料中の基質が酸化還元酵素と反応し、電子受容体が還元される。反応終了後、電極系に電圧を印加して電子受容体の還元体を酸化し、このとき得られる酸化電流値から試料液中の基質濃度を求める。
【0007】
グルコース測定用センサの場合には、酸化還元酵素としてFADとの複合タンパク質であるグルコースオキシダーゼを用い、電子受容体として例えばフェロセンを用いている。図3に示すように、電子受容体をメディエータとして用いる反応系により、血液中の酸素分圧に依存することなく微量血液によるグルコース濃度測定が可能である。また基板上の電極系を安価なカーボンを用いてスクリーン印刷により形成することができるので、非常に安価にバイオセンサを作製することができる。
【0008】
従来の電子メディエータ型酵素電極は、酵素反応を行うため親水性高分子媒体中に酸化還元酵素と電子受容体を含有させ酵素固定化膜としている。酵素自体は大分子量であるため、親水性高分子媒体中に保持させることが比較的容易である。しかし親水性高分子自体が水性試料により溶出しやすい材料である場合には、親水性高分子と共に、或いは親水性高分子の膨潤に伴い、保持されていた酵素や電子受容体が溶出することになる。このような酵素の溶出を防止するためにポリイオンコンプレックス法により酵素を固定化する技術も提案されている(例えば、特許文献2参照)。
【0009】
【特許文献2】
特開平8−178886号公報
【0010】
このポリイオンコンプレックス法は、基板電極上にポリカチオン水溶液、酵素溶液、ポリアニオン水溶液を滴下・混合し、乾燥することにより、ポリイオンコンプレックスのマトリックスを形成させ、このマトリックス構造内に酵素分子を強固に取込ませることができる。緻密なマトリックス構造となるため、酵素のような巨大分子の溶出はほぼ完璧に防止することができる。またポリイオンコンプレックス自体も溶解することがない。
【0011】
このように酸化還元酵素の溶出は防止できるが、低分子量の電子受容体は、たとえポリイオンコンプレックス膜内に保持させても、マトリックス構造から容易に流出してしまう。この酵素電極の測定電流値は、固定化された酵素量・酵素活性だけでなく、酵素固定化膜中の電子受容体量にも依存するので、電子受容体が酵素固定化膜から流出すると測定値は低くなる。すなわち、繰り返し使用により、測定値(出力電流値)が次第に下がるという問題があった。
【0012】
特に、酵素電極は常に同じ性能を有するとは限らないので、既知濃度の被検物質を含有する較正液を用いて、酵素電極の較正を行う必要がある。このときには、較正液によって酵素固定化膜中の電子受容体が溶出してしまうと、較正の意味がなくなることになる。また多項目の被検物質を分析するため、複数のバイオセンサを同一流路中に設ける場合、近接する各センサの酵素電極から電子受容体が溶出すると、同じように電子受容体を用いた電子メディエータ型の他のセンサの出力に影響を与えることになる。
【0013】
酵素固定化膜自体を疎水性高分子媒体で作製すれば、このような電子受容体の溶出を防止することはできるが、この場合には酵素反応自体が非水性環境下で行われることになり、極めて遅い反応となって検出感度自体が下がることになる。
【0014】
【発明の目的】
本発明は、このような事情に鑑みなされたものであり、電子受容体が水性試料中に溶出することがなく高感度な被検物質濃度測定を可能とするバイオセンサの酵素電極を提供することを第1の目的とする。また、このバイオセンサの酵素電極の製造方法を提供することを目的とする。
【0015】
本発明によれば、第1の目的は、試料液中の被検物質濃度を被検物質を基質とする酸化還元酵素と電子受容体との酵素反応により電気化学的に測定するバイオセンサの酵素電極において:
絶縁性基板と;
この基板上に設けられた電極と;
前記電極上に設けられ、疎水性高分子媒体中に分散した電子受容体を含有する多孔性電荷移動媒体層と;
前記電荷移動媒体層上に設けられ、親水性高分子媒体中に酸化還元酵素を固定化した酵素反応層とを備えることを特徴とするバイオセンサの酵素電極、
により達成される。
【0016】
すなわち、本発明の酵素電極は、酵素固定化膜を、酵素反応層と電解移動媒体層の2つに分け、酸化還元酵素を親水性高分子媒体層中に固定化・保持して酵素反応層とする一方、低分子量物質である電子受容体は疎水性高分子媒体内に保持して電荷移動媒体層としたものである。疎水性環境下にある電子受容体は水性試料中に容易に溶出することがない。一方この電荷移動媒体層は、多孔性層であるため、酵素反応層での酸化還元反応により生じた電子を容易に受け取ることができる。受け取った電子は電子受容体のRed−Ox変換により、最終的に電極に移行し電流を出力する(図3参照)。
【0017】
基板上に、酵素電極に加えてその対極を設ければ、酵素電極を作用極とする電極系のバイオセンサを構成することができる。また必要に応じ、基板上に参照電極を設けてもよい。
【0018】
電荷移動媒体層を構成する疎水性高分子としては、ポリビニルブチラール、ポリ塩化ビニル、ポリビニルホルマールやエポキシポリマーなどを用いることができ、下層の電極と強固に接着できるものが好ましい。
【0019】
酵素反応層を構成する親水性高分子としては、ポリカチオンポリマーとポリアニオンポリマーとからなるポリイオンコンプレックスを用いるのが好ましい態様である。酸化還元酵素はこのポリイオンコンプレックス中に包括・固定化されて水性試料中への溶出を防止することができる。
【0020】
また酵素反応層の上には、血液中のタンパク質の非特異的吸着や血球成分(特に血小板)の吸着を防止するため、生体適合性(血液適合性)を有する高分子材料で被覆することができる。このような高分子材料として、2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンポリマーを用いるのが好ましい。
【0021】
本発明の第2の目的は、絶縁性基板と、この基板上に設けられた電極と、前記電極上に設けられ疎水性高分子媒体中に分散した電子受容体を含有する多孔性電荷移動媒体層と、前記電荷移動媒体層上に設けられ親水性高分子媒体中に酸化還元酵素を固定化した酵素反応層とを備え、試料液中の被検物質濃度を被検物質を基質とする前記酸化還元酵素と前記電子受容体と酵素反応により電気化学的に測定するバイオセンサの酵素電極の製造方法において:
前記多孔性電荷移動媒体層を、前記疎水性高分子と前記電子受容体とを有機溶媒に溶解した疎水性高分子溶液を前記電極上に塗布、乾燥することにより設けることを特徴とするバイオセンサの電極の製造方法によって達成することができる。
【0022】
すなわち、本発明の製造方法では、有機溶媒の蒸散・除去という極めて簡単な工程により、電極上に疎水性高分子からなる多孔性電荷移動媒体層として形成させるものである。また酵素反応層は、ポリカチオンポリマーとポリアニオンポリマーとからなるポリイオンコンプレックス内に、静電的相互作用を用いて酸化還元酵素を包括して固定化することにより設けることができる。
【0023】
【実施態様】
図1は本発明の一実施態様によるバイオセンサの断面模式図である。符号10はポリエステルやPET(ポリエチレンテレフタレート)、ポリカーボネート(PC)等の樹脂で作られた絶縁性基板であり、この上に下地リード電極12が形成されている。リード電極12上には、導電性カーボンペーストなどで形成した電極14,16が設けられ、この一方の電極14は作用極として用いられ、他方の電極16は対極となる。作用極14上には電荷移動媒体層20、酵素反応層22が設けられている。18は、電極14,16間を絶縁する絶縁層である。
【0024】
電荷移動媒体層20は、多孔性の疎水性高分子媒体層であり、酸化還元酵素の酵素反応と共役して酸化還元反応する電子受容体を含有する。電子受容体としては、p−ベンゾキノンなどのキノン誘導体、フェロセン、ジメチルフェロセンなどのフェロセン誘導体、ビオロゲン類などが使用できる。
【0025】
疎水性高分子としては、ポリビニルブチラール、ポリ塩化ビニル、ポリビニルホルマールやエポキシポリマーなどを用いることができ、下層の電極14,16と強固に接着できるものが好ましい。この疎水性高分子を電子受容体と共に、有機溶媒(ジクロロメタン、テトラヒドロフラン、アセトン、イソプロピルアルコール、エタノール等)に溶解し、この混合液を電極(作用電極)14上に均一に滴下し、乾燥することにより、多孔質の電荷媒体移動層を形成することができる。形成された疎水性媒体層の中にフェロセンなどの電子受容体を均一にかつ高密度に含有させることができる。
【0026】
酵素反応層22は、親水性高分子媒体層であり被検物質に対応する酸化還元酵素を含有する。例えば、グルコース濃度を測定する場合には、グルコースオキシダーゼ(GOD)を用いる。被検物質がアルコール、コレステロール、乳酸などの場合には、アルコールオキシダーゼ、コレステロールオキシダーゼ、ラクトースオキシダーゼなどの酸化還元酵素を用いることができる。これらの酸化還元酵素はFADやNADなどの電子受容体を補酵素、補欠分子族として含んでいる。
【0027】
酵素反応層22を構成する親水性高分子としては、ポリカチオンポリマーとポリアニオンポリマーとからなるポリイオンコンプレックスを用いることができる。電荷移動媒体層20上に、ポリカチオン水溶液、酵素溶液、ポリアニオン水溶液を順次滴下・混合し、乾燥すると、ポリイオンコンプレックス形成時に周辺に存在する酵素分子を取込んだ酵素含有ポリイオンコンプレックス膜が形成される。酵素はポリカチオンとポリアニオンの静電的相互作用によりコンプレックスのマトリックス内に強固に固定される。ポリカチオンポリマーは、繰り返し単位中にカチオン基を有する親水性ポリマーであり、例えば、ポリLリジン、キトサン、キチン、セルロースなどが挙げられる。ポリアニオンポリマーは、繰り返し単位中にアニオン基を有する親水性ポリマーであり、ポリスチレンスルホネート、ポリグルタミン酸、ポリアクリル酸等が挙げられる。
【0028】
図2は、作製したバイオセンサ上に、流路構造を形成した上基板24でカバーした血液分析装置の断面図を示す。流路26に血液試料を導入することにより、血液中の被検物質の濃度を電気化学的に分析する。
【0029】
ここで、流路26内壁、酵素反応層22及び対極16の表面には、生体適合性(血液適合性)を有する高分子材料で被覆しておけば、血小板などの血球成分の吸着・凝集を防ぐと共に、血漿・血清タンパク質の非特異的吸着を防止することができる。このような高分子材料としては、リン脂質高分子があり、特に、2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンポリマー(MPCポリマー)が好ましい。
【0030】
【実施例1】
以下のようにしてバイオセンサーを作製した。ポリエステル樹脂基板10上にスクリーン印刷技術により下地リード電極12を印刷後、加熱乾燥した。リード電極12上には、導電性カーボンペーストをスクリーン印刷技術により印刷して作用極14、対極16の電極系を設けた。予め作用極14、対極16の位置に直径400μmの開口部をリソグラフィーにより設けておいた絶縁膜18を、基板10上に重ね、加熱圧着した。
【0031】
ポリビニルブチラールとフェロセンを、それぞれ1%(W/W)、2%(W/W)となるようにイソプロピルアルコールに溶解し、この混合液0.05μLを作用極14上の開口部内に均一に滴下、乾燥して電荷移動媒体層20を設けた。次に、25mMポリスチレンスルホネイト水溶液、グルコースオキシダーゼ(GOD:1500unit/mL in PBS)溶液、20mMポリLリジン水溶液を、電荷移動媒体層20上に順次滴下し、これを乾燥させて、酵素反応層22を設け、グルコース分析用バイオセンサを作製した。
【0032】
比較例として、電荷移動媒体層作製時に、ポリビニルブチラールを用いずに、フェロセンのみをイソプロピルアルコールに溶解し、この溶液0.05μLを作用極14上の開口部内に均一に滴下、乾燥してフェロセン層を設けた。この上に、実施例と同様にして酵素反応層22を設けた。なお、フェロセンのみを溶解した溶液でフェロセン層を作製した比較例では、フェロセンはカーボン電極14上に均一に堆積せず、部分的な剥離が見られた。テトロヒドロフランやジクロロメタンなどの他の有機溶媒にフェロセンを溶解した場合も同様であった。これに対して、接着性が高く多孔質な疎水性高分子によってフェロセンを包括した実施例の電荷移動媒体層20では、高密度で均一なフェロセン含有高分子層となっていた。
【0033】
図1に示す構成のグルコースセンサに、試料液としてD−グルコース標準液を酵素反応層22および対極16の両電極を覆うように3〜5μL滴下し、対極16を基準にして作用極14にフェロセンの酸化還元電位である+350mVの定電圧を印加し、30秒後の酸化電流を測定した。酵素反応層22によりグルコースの酸化反応が行われる際、フェロセンは還元される。この還元されたフェロセンの酸化電流はグルコース濃度に対応することから、試料液中のグルコースは極微量であっても測定が可能になる。測定は、最初に0mMグルコース溶液での酸化電流を測定後、酵素反応層22と対極16の表面を純水で洗浄し、次に10mMグルコース溶液を用いて酸化電流を測定した。以降、酵素反応層22と対極16の表面洗浄を繰り返しながら、順次、20mMから50mMの各グルコース溶液による酸化電流の測定を行った。結果を図4に示す。
【0034】
図4に示すように、実施例のグルコースセンサでは、グルコース濃度に対し高濃度まで直線性の高い出力特性を示した。健康人の血中グルコース濃度が3〜6mM、糖尿病患者で30〜50mMと言われており、本実施例のバイオセンサは広範囲の濃度領域で高感度測定が可能であることが示された。これに対し、フェロセンを固定化していない比較例では、グルコース濃度20mM以降では、出力値が増加しなかった。これは繰り返し測定により、フェロセンが洗浄液や水性試料中に溶出したためと考えられる。このように、従来の非固定化フェロセンを用いたグルコースセンサと比較すると、フェロセンを疎水性媒体層中に固定した実施例では、数回の繰り返し測定が可能であり、較正液による較正後の血液測定に用いることができることが示された。
【0035】
【実施例2】
実施例1と全く同様のグルコースセンサを4つ作製し、そのうち2つのグルコースセンサの絶縁膜18上を酵素反応層22、対極16の表面も含めて、0.3 wt%のMPC(2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン)ポリマー溶液で塗布し、乾燥してMPCポリマー被覆層を設け、センサ1,2を作製した。一方、比較例として、MPCポリマーを被覆していないセンサをセンサ3,4とした。
【0036】
最初の測定として、各センサに10mMグルコース溶液(PBS)10μLを滴下、作用極14に+350mVの定電圧を印加し、30秒後の酸化電流を測定した。2回目の測定では、ヒト血清(5.6mMグルコース含有)で酸化電流出力を測定した。再度電極を洗浄して、グルコース非含有PBSを滴下して、30秒後の酸化電流を測定した。結果を図5に示す。
【0037】
図5に示すように、MPCポリマー処理なしのセンサ3,4では、タンパク質を含有するヒト血清において十分な出力感度が得られなかった。これに対し、MPCポリマー処理を行ったセンサ1,2では、タンパク質の共存しないグルコース標準液での測定値と同等の出力特性が得られた。また、MPCポリマー処理なしのセンサ3,4では、これ洗浄しても吸着したタンパク質を完全に除去できないため、0mMグルコース溶液(PBS)での出力値は、MPCポリマー処理したセンサ1,2よりも低くなった。微量サンプルから多項目について分析を行うチップ状血液分析装置では、チップ内の電極の高密度化をはかる場合、電極面積のサイズを微細化することが必要となる。このような場合においては、血漿中タンパク質の吸着を抑制するMPCポリマー被覆が効果的であることがわかった。
【0038】
【発明の効果】
以上のように、本発明のバイオセンサの酵素電極は、酵素固定化膜を酵素反応層と電解移動媒体層の2つに分け、酸化還元酵素を親水性高分子媒体層中に固定化・保持して酵素反応層とする一方、電子受容体は疎水性高分子媒体内に保持して電荷移動媒体層としたので、疎水性環境下にある電子受容体は水性試料中に容易に溶出することがない。このため、高感度かつ高精度な被検物質の濃度測定が可能となる。繰り返し使用を行っても、測定感度が減少することがない。また、較正液により較正を行っても、電子受容体の溶出がないので、より正確な較正を行うことができる。また、複数のバイオセンサを同一流路中に設けても、近接する各センサの酵素電極から電子受容体が溶出することがないので、他のセンサの出力に影響を与えることになくなる。
【0039】
酵素反応層をポリカチオンポリマーとポリアニオンポリマーとからなるポリイオンコンプレックスで形成し、酸化還元酵素をこのポリイオンコンプレックス中に包括して固定化すれば、酸化還元酵素の溶出も殆ど完璧に防止することができ、高感度な測定が可能となる。
【0040】
酵素反応層の上を、MPCポリマーなどの生体適合性(血液適合性)を有する高分子材料で被覆すれば、血液中のタンパク質の非特異的吸着や血球成分(特に血小板)の吸着を防止して、より高感度な分析を行うことができる。
【図面の簡単な説明】
【図1】本発明の一実施態様によるバイオセンサの断面模式図である。
【図2】図1のバイオセンサ上に、流路構造を形成した上基板でカバーした血液分析装置の断面図を示す。
【図3】電子受容体をメディエータとして用いる反応系の説明図である。
【図4】実施例1の測定結果を示す図である。
【図5】MPCポリマー被覆を行った実施例2の測定結果を示す図である。
【符号の説明】
10 基板
12 下地リード電極
14 作用極
16 対極
18 絶縁膜
20 電荷移動媒体層
22 酵素反応層
24 上基板
26 流路
[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to an enzyme electrode of a biosensor, and more particularly to an enzyme electrode of a biosensor that electrochemically measures a test substance concentration in a sample solution by an enzyme reaction between an oxidoreductase and an electron acceptor. The present invention also relates to a manufacturing method thereof.
[0002]
[Prior art]
In recent years, there is a need for an inexpensive and disposable multi-item / simultaneous measurement blood analyzer for blood tests that can be easily performed at home.
[0003]
As a conventional simple test apparatus for the purpose of blood component test, there is a chip-shaped multi-item measurement apparatus. In this method, an ion-selective field effect transistor (ISFET) or the like is incorporated as a sensor on a plastic substrate with a single flow path as a semiconductor electrode so that only a target substance can be measured electrochemically. However, the blood analyzer used for such multi-item measurement requires a large amount of blood necessary for measurement, and the burden on blood collection on the subject is large. Moreover, since the semiconductor electrode is very expensive, the device price is also increased. Furthermore, since the flow path is single, a plurality of sensors having mutual interference effects cannot be mounted in the same device. Against this background, the conventional multi-measurement blood analyzers are often used for examinations in hospitals and the like, and the number of measurement items is limited at present.
[0004]
As an example of a home simple blood analyzer, a blood glucose (glucose) value measuring device can be mentioned. Many commercially available blood glucose level measuring devices enable measurement from a very small amount of whole blood of several μL or less. A so-called electronic mediator type sensor is used as a biosensor of such a measuring instrument (see, for example, Patent Document 1).
[0005]
[Patent Document 1]
Japanese Laid-Open Patent Publication No. 3-202864
In this biosensor, an enzyme reaction layer comprising an oxidoreductase, a hydrophilic polymer and an electron acceptor is provided on the surface of an electrode system on a substrate. When a sample solution such as blood is dropped on the enzyme reaction layer, the substrate in the sample reacts with the oxidoreductase, and the electron acceptor is reduced. After completion of the reaction, a voltage is applied to the electrode system to oxidize the reduced form of the electron acceptor, and the substrate concentration in the sample solution is determined from the oxidation current value obtained at this time.
[0007]
In the case of a glucose measuring sensor, glucose oxidase, which is a complex protein with FAD, is used as an oxidoreductase, and ferrocene, for example, is used as an electron acceptor. As shown in FIG. 3, a reaction system using an electron acceptor as a mediator enables measurement of glucose concentration using a trace amount of blood without depending on the oxygen partial pressure in blood. Further, since the electrode system on the substrate can be formed by screen printing using inexpensive carbon, a biosensor can be manufactured at a very low cost.
[0008]
A conventional electron mediator-type enzyme electrode contains an oxidoreductase and an electron acceptor in a hydrophilic polymer medium to perform an enzyme reaction, thereby forming an enzyme-immobilized film. Since the enzyme itself has a large molecular weight, it is relatively easy to hold it in a hydrophilic polymer medium. However, when the hydrophilic polymer itself is a material that is easily eluted by an aqueous sample, the retained enzyme and electron acceptor are eluted together with the hydrophilic polymer or with the swelling of the hydrophilic polymer. Become. In order to prevent such elution of the enzyme, a technique for immobilizing the enzyme by a polyion complex method has also been proposed (see, for example, Patent Document 2).
[0009]
[Patent Document 2]
Japanese Patent Laid-Open No. 8-178886
In this polyion complex method, a polycation aqueous solution, an enzyme solution, and a polyanion aqueous solution are dropped onto a substrate electrode, mixed, and dried to form a polyion complex matrix. Enzyme molecules are firmly incorporated into this matrix structure. I can do it. Due to the dense matrix structure, elution of macromolecules such as enzymes can be prevented almost completely. Further, the polyion complex itself does not dissolve.
[0011]
Thus, elution of the oxidoreductase can be prevented, but the low molecular weight electron acceptor easily flows out of the matrix structure even if it is held in the polyion complex membrane. The measurement current value of this enzyme electrode depends not only on the amount of immobilized enzyme and enzyme activity, but also on the amount of electron acceptor in the enzyme-immobilized membrane, so it is measured when the electron acceptor flows out of the enzyme-immobilized membrane. The value is low. That is, there is a problem that the measured value (output current value) gradually decreases due to repeated use.
[0012]
In particular, since the enzyme electrode does not always have the same performance, it is necessary to calibrate the enzyme electrode using a calibration solution containing a test substance having a known concentration. At this time, if the electron acceptor in the enzyme-immobilized membrane is eluted by the calibration solution, the meaning of calibration is lost. In addition, when multiple biosensors are installed in the same channel to analyze multiple items of test substances, if the electron acceptor elutes from the enzyme electrode of each adjacent sensor, an electron using the same electron acceptor is used. The output of other sensors of the mediator type will be affected.
[0013]
If the enzyme-immobilized membrane itself is made of a hydrophobic polymer medium, such elution of the electron acceptor can be prevented, but in this case, the enzyme reaction itself is performed in a non-aqueous environment. As a result, the detection sensitivity itself is lowered due to an extremely slow reaction.
[0014]
OBJECT OF THE INVENTION
The present invention has been made in view of such circumstances, and provides an enzyme electrode of a biosensor that enables highly sensitive measurement of a test substance concentration without eluting an electron acceptor into an aqueous sample. Is the first purpose. Moreover, it aims at providing the manufacturing method of the enzyme electrode of this biosensor.
[0015]
According to the present invention, a first object is to provide an enzyme of a biosensor that electrochemically measures the concentration of a test substance in a sample solution by an enzyme reaction between an oxidoreductase using the test substance as a substrate and an electron acceptor. In the electrode:
An insulating substrate;
Electrodes provided on the substrate;
A porous charge transfer medium layer provided on the electrode and containing an electron acceptor dispersed in a hydrophobic polymer medium;
An enzyme electrode of a biosensor comprising an enzyme reaction layer provided on the charge transfer medium layer and having an oxidoreductase immobilized in a hydrophilic polymer medium;
Is achieved.
[0016]
That is, in the enzyme electrode of the present invention, the enzyme-immobilized membrane is divided into an enzyme reaction layer and an electrolysis transfer medium layer, and the oxidoreductase is immobilized and held in the hydrophilic polymer medium layer. On the other hand, the electron acceptor which is a low molecular weight substance is held in a hydrophobic polymer medium to form a charge transfer medium layer. Electron acceptors in a hydrophobic environment do not easily elute into aqueous samples. On the other hand, since the charge transfer medium layer is a porous layer, it can easily receive electrons generated by the oxidation-reduction reaction in the enzyme reaction layer. The received electrons are finally transferred to the electrodes by the Red-Ox conversion of the electron acceptor and output current (see FIG. 3).
[0017]
If a counter electrode is provided on the substrate in addition to the enzyme electrode, an electrode-type biosensor using the enzyme electrode as a working electrode can be configured. Moreover, you may provide a reference electrode on a board | substrate as needed.
[0018]
As the hydrophobic polymer constituting the charge transfer medium layer, polyvinyl butyral, polyvinyl chloride, polyvinyl formal, epoxy polymer, and the like can be used, and those that can be firmly bonded to the lower electrode are preferable.
[0019]
As a hydrophilic polymer constituting the enzyme reaction layer, it is preferable to use a polyion complex composed of a polycation polymer and a polyanion polymer. The oxidoreductase can be included and immobilized in this polyion complex to prevent elution into the aqueous sample.
[0020]
The enzyme reaction layer may be coated with a biocompatible (blood compatible) polymer material to prevent nonspecific adsorption of blood proteins and blood cell components (particularly platelets). it can. As such a polymer material, 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine polymer is preferably used.
[0021]
A second object of the present invention is a porous charge transfer medium comprising an insulating substrate, an electrode provided on the substrate, and an electron acceptor provided on the electrode and dispersed in a hydrophobic polymer medium. And an enzyme reaction layer in which a oxidoreductase is immobilized in a hydrophilic polymer medium provided on the charge transfer medium layer, and the test substance concentration in the sample solution is determined using the test substance as a substrate. In a method for producing an enzyme electrode of a biosensor that electrochemically measures an oxidoreductase, the electron acceptor and an enzyme reaction:
A biosensor characterized in that the porous charge transfer medium layer is provided by applying and drying a hydrophobic polymer solution in which the hydrophobic polymer and the electron acceptor are dissolved in an organic solvent on the electrode. This can be achieved by the electrode manufacturing method.
[0022]
That is, in the production method of the present invention, a porous charge transfer medium layer made of a hydrophobic polymer is formed on an electrode by a very simple process of evaporating and removing an organic solvent. The enzyme reaction layer can be provided by comprehensively immobilizing oxidoreductases using electrostatic interaction in a polyion complex comprising a polycation polymer and a polyanion polymer.
[0023]
Embodiment
FIG. 1 is a schematic cross-sectional view of a biosensor according to an embodiment of the present invention. Reference numeral 10 denotes an insulating substrate made of a resin such as polyester, PET (polyethylene terephthalate), or polycarbonate (PC), and a base lead electrode 12 is formed thereon. On the lead electrode 12, electrodes 14 and 16 formed of a conductive carbon paste or the like are provided. One electrode 14 is used as a working electrode, and the other electrode 16 is a counter electrode. A charge transfer medium layer 20 and an enzyme reaction layer 22 are provided on the working electrode 14. Reference numeral 18 denotes an insulating layer that insulates between the electrodes 14 and 16.
[0024]
The charge transfer medium layer 20 is a porous hydrophobic polymer medium layer and contains an electron acceptor that undergoes an oxidation-reduction reaction coupled with an enzyme reaction of an oxidation-reduction enzyme. As the electron acceptor, quinone derivatives such as p-benzoquinone, ferrocene derivatives such as ferrocene and dimethylferrocene, and viologens can be used.
[0025]
As the hydrophobic polymer, polyvinyl butyral, polyvinyl chloride, polyvinyl formal, epoxy polymer, and the like can be used, and those capable of firmly bonding to the lower electrodes 14 and 16 are preferable. This hydrophobic polymer is dissolved in an organic solvent (dichloromethane, tetrahydrofuran, acetone, isopropyl alcohol, ethanol, etc.) together with an electron acceptor, and this mixed solution is uniformly dropped on the electrode (working electrode) 14 and dried. Thus, a porous charge medium moving layer can be formed. An electron acceptor such as ferrocene can be uniformly and densely contained in the formed hydrophobic medium layer.
[0026]
The enzyme reaction layer 22 is a hydrophilic polymer medium layer and contains an oxidoreductase enzyme corresponding to the test substance. For example, glucose oxidase (GOD) is used when measuring the glucose concentration. When the test substance is alcohol, cholesterol, lactic acid or the like, an oxidoreductase such as alcohol oxidase, cholesterol oxidase, or lactose oxidase can be used. These oxidoreductases contain electron acceptors such as FAD and NAD as coenzymes and prosthetic groups.
[0027]
As the hydrophilic polymer constituting the enzyme reaction layer 22, a polyion complex composed of a polycation polymer and a polyanion polymer can be used. When a polycation aqueous solution, an enzyme solution, and a polyanion aqueous solution are successively dropped and mixed on the charge transfer medium layer 20 and dried, an enzyme-containing polyion complex film that takes in enzyme molecules present in the vicinity at the time of forming the polyion complex is formed. . The enzyme is firmly immobilized in the matrix of the complex by the electrostatic interaction of the polycation and polyanion. The polycation polymer is a hydrophilic polymer having a cationic group in a repeating unit, and examples thereof include poly L lysine, chitosan, chitin, and cellulose. The polyanion polymer is a hydrophilic polymer having an anion group in the repeating unit, and examples thereof include polystyrene sulfonate, polyglutamic acid, and polyacrylic acid.
[0028]
FIG. 2 shows a cross-sectional view of a blood analyzer covered with an upper substrate 24 in which a channel structure is formed on the produced biosensor. By introducing a blood sample into the channel 26, the concentration of the test substance in the blood is electrochemically analyzed.
[0029]
Here, if the inner wall of the flow path 26, the surface of the enzyme reaction layer 22 and the counter electrode 16 are coated with a polymer material having biocompatibility (blood compatibility), blood cell components such as platelets are adsorbed and aggregated. In addition to preventing, nonspecific adsorption of plasma / serum proteins can be prevented. As such a polymer material, there is a phospholipid polymer, and 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine polymer (MPC polymer) is particularly preferable.
[0030]
[Example 1]
A biosensor was produced as follows. The base lead electrode 12 was printed on the polyester resin substrate 10 by a screen printing technique and then dried by heating. On the lead electrode 12, a conductive carbon paste was printed by a screen printing technique to provide an electrode system of a working electrode 14 and a counter electrode 16. An insulating film 18 in which an opening having a diameter of 400 μm was provided in advance at the position of the working electrode 14 and the counter electrode 16 by lithography was superimposed on the substrate 10 and thermocompression bonded.
[0031]
Polyvinyl butyral and ferrocene are dissolved in isopropyl alcohol so as to be 1% (W / W) and 2% (W / W), respectively, and 0.05 μL of this mixed solution is uniformly dropped into the opening on the working electrode 14. The charge transfer medium layer 20 was provided by drying. Next, a 25 mM polystyrene sulfonate aqueous solution, a glucose oxidase (GOD: 1500 unit / mL in PBS) solution, and a 20 mM poly-L lysine aqueous solution are sequentially dropped onto the charge transfer medium layer 20 and dried, and then the enzyme reaction layer 22 is dried. A biosensor for glucose analysis was prepared.
[0032]
As a comparative example, when preparing the charge transfer medium layer, only ferrocene was dissolved in isopropyl alcohol without using polyvinyl butyral, and 0.05 μL of this solution was uniformly dropped into the opening on the working electrode 14 and dried to obtain a ferrocene layer. Was established. On top of this, an enzyme reaction layer 22 was provided in the same manner as in the example. In the comparative example in which the ferrocene layer was produced with a solution in which only ferrocene was dissolved, ferrocene was not uniformly deposited on the carbon electrode 14, and partial peeling was observed. The same was true when ferrocene was dissolved in another organic solvent such as tetrohydrofuran or dichloromethane. On the other hand, in the charge transfer medium layer 20 of the example in which ferrocene is included by a porous polymer having high adhesion and porous properties, a high-density and uniform ferrocene-containing polymer layer was obtained.
[0033]
1 to 3 μL of a D-glucose standard solution is dropped as a sample solution so as to cover both the enzyme reaction layer 22 and the counter electrode 16, and the ferrocene is applied to the working electrode 14 with reference to the counter electrode 16. A constant voltage of +350 mV, which is the oxidation-reduction potential, was applied, and the oxidation current after 30 seconds was measured. When glucose is oxidized by the enzyme reaction layer 22, ferrocene is reduced. Since the oxidation current of the reduced ferrocene corresponds to the glucose concentration, measurement is possible even if the amount of glucose in the sample solution is extremely small. The measurement was performed by first measuring the oxidation current in a 0 mM glucose solution, washing the surfaces of the enzyme reaction layer 22 and the counter electrode 16 with pure water, and then measuring the oxidation current using a 10 mM glucose solution. Thereafter, the oxidation current was measured with each glucose solution of 20 mM to 50 mM while repeating the surface cleaning of the enzyme reaction layer 22 and the counter electrode 16. The results are shown in FIG.
[0034]
As shown in FIG. 4, the glucose sensor of the example showed high linearity output characteristics up to a high concentration with respect to the glucose concentration. It is said that the blood glucose concentration of healthy people is 3 to 6 mM and that of diabetic patients is 30 to 50 mM, and the biosensor of this example has been shown to be capable of highly sensitive measurement in a wide concentration range. On the other hand, in the comparative example in which ferrocene was not immobilized, the output value did not increase after the glucose concentration of 20 mM. This is considered to be because ferrocene was eluted in the washing solution or the aqueous sample by repeated measurement. Thus, in comparison with the conventional glucose sensor using non-immobilized ferrocene, in the example in which ferrocene was fixed in the hydrophobic medium layer, repeated measurement was possible several times, and blood after calibration with a calibration solution was possible. It was shown that it can be used for measurement.
[0035]
[Example 2]
Four glucose sensors exactly the same as in Example 1 were prepared, and 0.3 wt% of MPC (2-methacryloyl) was formed on the insulating film 18 of the two glucose sensors including the surface of the enzyme reaction layer 22 and the counter electrode 16. Sensor 1 and 2 were prepared by coating with an oxyethyl phosphorylcholine) polymer solution and drying to provide an MPC polymer coating layer. On the other hand, as a comparative example, sensors 3 and 4 were not covered with the MPC polymer.
[0036]
As an initial measurement, 10 μL of 10 mM glucose solution (PBS) was dropped onto each sensor, a constant voltage of +350 mV was applied to the working electrode 14, and the oxidation current after 30 seconds was measured. In the second measurement, the oxidation current output was measured with human serum (containing 5.6 mM glucose). The electrode was washed again, glucose-free PBS was dropped, and the oxidation current after 30 seconds was measured. The results are shown in FIG.
[0037]
As shown in FIG. 5, sensors 3 and 4 without MPC polymer treatment did not provide sufficient output sensitivity in human serum containing protein. On the other hand, in the sensors 1 and 2 subjected to the MPC polymer treatment, output characteristics equivalent to the measured values in the glucose standard solution in which no protein coexists were obtained. In addition, in the sensors 3 and 4 without MPC polymer treatment, the adsorbed protein cannot be completely removed by washing, so the output value in the 0 mM glucose solution (PBS) is higher than that of the sensors 1 and 2 treated with MPC polymer. It became low. In a chip blood analyzer that analyzes multiple items from a small amount of sample, it is necessary to reduce the size of the electrode area in order to increase the density of the electrodes in the chip. In such a case, it was found that an MPC polymer coating that suppresses the adsorption of plasma proteins is effective.
[0038]
【The invention's effect】
As described above, in the enzyme electrode of the biosensor of the present invention, the enzyme-immobilized membrane is divided into the enzyme reaction layer and the electrolytic transfer medium layer, and the oxidoreductase is immobilized and retained in the hydrophilic polymer medium layer. Since the electron acceptor is held in a hydrophobic polymer medium and used as a charge transfer medium layer, the electron acceptor in a hydrophobic environment can be easily eluted in an aqueous sample. There is no. This makes it possible to measure the concentration of the test substance with high sensitivity and high accuracy. Even when used repeatedly, the measurement sensitivity does not decrease. Further, even if calibration is performed using a calibration solution, since the electron acceptor is not eluted, more accurate calibration can be performed. Even if a plurality of biosensors are provided in the same flow path, the electron acceptor does not elute from the enzyme electrode of each adjacent sensor, so that the output of other sensors is not affected.
[0039]
If the enzyme reaction layer is formed of a polyion complex consisting of a polycation polymer and a polyanion polymer, and the oxidoreductase is comprehensively immobilized in this polyion complex, elution of the oxidoreductase can be almost completely prevented. Highly sensitive measurement is possible.
[0040]
If the enzyme reaction layer is coated with a polymer material that has biocompatibility (blood compatibility) such as MPC polymer, it prevents nonspecific adsorption of proteins in blood and adsorption of blood cell components (particularly platelets). Thus, a more sensitive analysis can be performed.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a schematic cross-sectional view of a biosensor according to an embodiment of the present invention.
FIG. 2 is a cross-sectional view of a blood analyzer covered with an upper substrate on which a flow channel structure is formed on the biosensor of FIG.
FIG. 3 is an explanatory diagram of a reaction system using an electron acceptor as a mediator.
4 is a diagram showing measurement results of Example 1. FIG.
FIG. 5 is a diagram showing the measurement results of Example 2 in which MPC polymer coating was performed.
[Explanation of symbols]
10 substrate 12 ground lead electrode 14 working electrode 16 counter electrode 18 insulating film 20 charge transfer medium layer 22 enzyme reaction layer 24 upper substrate 26 channel

Claims (11)

試料液中の被検物質濃度を、被検物質を基質とする酸化還元酵素と電子受容体との酵素反応により電気化学的に測定するバイオセンサの酵素電極において:
絶縁性基板と;
この基板上に設けられた電極と;
前記電極上に設けられ、疎水性高分子媒体中に分散した電子受容体を含有する多孔性電荷移動媒体層と;
前記電荷移動媒体層上に設けられ、親水性高分子媒体中に酸化還元酵素を固定化した酵素反応層とを備えることを特徴とするバイオセンサの酵素電極。
At the biosensor enzyme electrode, where the analyte concentration in the sample solution is measured electrochemically by the enzymatic reaction between an oxidoreductase with the analyte as a substrate and an electron acceptor:
An insulating substrate;
Electrodes provided on the substrate;
A porous charge transfer medium layer provided on the electrode and containing an electron acceptor dispersed in a hydrophobic polymer medium;
An enzyme electrode for a biosensor, comprising: an enzyme reaction layer provided on the charge transfer medium layer and having an oxidoreductase immobilized in a hydrophilic polymer medium.
前記疎水性高分子がポリビニルブチラール、ポリ塩化ビニル、ポリビニルホルマール及びエポキシポリマーのいずれかであることを特徴とする請求項1のバイオセンサの酵素電極。2. The enzyme electrode for a biosensor according to claim 1, wherein the hydrophobic polymer is any one of polyvinyl butyral, polyvinyl chloride, polyvinyl formal and epoxy polymer. 前記電子受容体がフェロセン又はジメチルフェロセンであることを特徴とする請求項1のバイオセンサの酵素電極。2. The enzyme electrode for a biosensor according to claim 1, wherein the electron acceptor is ferrocene or dimethylferrocene. 前記親水性高分子が、ポリカチオンポリマーとポリアニオンポリマーとからなるポリイオンコンプレックスであり、前記酸化還元酵素はこのポリイオンコンプレックス中に包括されて固定化されて前記酵素反応層を構成していることを特徴とする請求項1のバイオセンサの酵素電極。The hydrophilic polymer is a polyion complex comprising a polycation polymer and a polyanion polymer, and the oxidoreductase is included and immobilized in the polyion complex to constitute the enzyme reaction layer. The enzyme electrode of the biosensor according to claim 1. 前記ポリカチオンポリマーが、ポリリジン、キトサン、キチン、セルロースのいずれかであることを特徴とする請求項4のバイオセンサの酵素電極。5. The enzyme electrode for a biosensor according to claim 4, wherein the polycation polymer is any one of polylysine, chitosan, chitin, and cellulose. 前記ポリアニオンポリマーが、ポリスチレンスルホネート又はポリアクリル酸であることを特徴とする請求項4のバイオセンサの酵素電極。5. The enzyme electrode for a biosensor according to claim 4, wherein the polyanion polymer is polystyrene sulfonate or polyacrylic acid. 前記酵素反応層の上には、生体適合性を有する高分子が被覆されていることを特徴とする請求項1のバイオセンサの酵素電極。2. The enzyme electrode for a biosensor according to claim 1, wherein a biocompatible polymer is coated on the enzyme reaction layer. 前記生体適合性を有する高分子は、2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンポリマーであることを特徴とする請求項7のバイオセンサの酵素電極。The biosensor enzyme electrode according to claim 7, wherein the biocompatible polymer is 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine polymer. 試料液中の被検物質濃度を、被検物質を基質とする酸化還元酵素と電子受容体との酵素反応により電気化学的に測定するバイオセンサにおいて:
絶縁性基板と;
この基板上に設けられた作用極と対極とを含む電極系と;
前記作用極上に設けられ、疎水性高分子媒体中に分散した電子受容体を含有する多孔性電荷移動媒体層と;
前記電荷移動媒体層上に設けられ、親水性高分子媒体中に酸化還元酵素を固定化した酵素反応層とを備えることを特徴とするバイオセンサ。
In a biosensor that electrochemically measures the concentration of a test substance in a sample solution by an enzyme reaction between an oxidoreductase and an electron acceptor using the test substance as a substrate:
An insulating substrate;
An electrode system including a working electrode and a counter electrode provided on the substrate;
A porous charge transfer medium layer provided on the working electrode and containing an electron acceptor dispersed in a hydrophobic polymer medium;
A biosensor comprising an enzyme reaction layer provided on the charge transfer medium layer and having an oxidoreductase immobilized in a hydrophilic polymer medium.
絶縁性基板と、この基板上に設けられた電極と、前記電極上に設けられ疎水性高分子媒体中に分散した電子受容体を含有する多孔性電荷移動媒体層と、前記電荷移動媒体層上に設けられ親水性高分子媒体中に酸化還元酵素を固定化した酵素反応層とを備え、試料液中の被検物質濃度を被検物質を基質とする前記酸化還元酵素と前記電子受容体との酵素反応により電気化学的に測定するバイオセンサの酵素電極の製造方法において:
前記多孔性電荷移動媒体層を、前記疎水性高分子と前記電子受容体とを有機溶媒に溶解した疎水性高分子溶液を前記電極上に塗布、乾燥することにより設けることを特徴とするバイオセンサの酵素電極の製造方法。
An insulating substrate, an electrode provided on the substrate, a porous charge transfer medium layer containing an electron acceptor provided on the electrode and dispersed in a hydrophobic polymer medium, and the charge transfer medium layer And an enzyme reaction layer in which an oxidoreductase is immobilized in a hydrophilic polymer medium, and the concentration of the test substance in the sample solution is determined using the test substance as a substrate, the oxidoreductase and the electron acceptor In a method for producing an enzyme electrode of a biosensor for electrochemical measurement by enzymatic reaction of:
A biosensor characterized in that the porous charge transfer medium layer is provided by applying and drying a hydrophobic polymer solution in which the hydrophobic polymer and the electron acceptor are dissolved in an organic solvent on the electrode. A method for producing an enzyme electrode.
前記酵素反応層を、ポリカチオンポリマーとポリアニオンポリマーとからなるポリイオンコンプレックスで前記酸化還元酵素をこのポリイオンコンプレックス中に包括して固定化することにより設けることを特徴とする請求項10のバイオセンサの電極の製造方法。11. The biosensor electrode according to claim 10, wherein the enzyme reaction layer is provided by comprehensively immobilizing the redox enzyme in a polyion complex comprising a polycation polymer and a polyanion polymer. Manufacturing method.
JP2003086116A 2003-03-26 Biosensor enzyme electrode and method for producing the same Expired - Fee Related JP3631740B6 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2003086116A JP3631740B6 (en) 2003-03-26 Biosensor enzyme electrode and method for producing the same

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2003086116A JP3631740B6 (en) 2003-03-26 Biosensor enzyme electrode and method for producing the same

Publications (3)

Publication Number Publication Date
JP2004294231A JP2004294231A (en) 2004-10-21
JP3631740B2 JP3631740B2 (en) 2005-03-23
JP3631740B6 true JP3631740B6 (en) 2005-06-29

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN107576707B (en) Analyte test sensor, system thereof and method for measuring at least one analyte
JP6571247B2 (en) Gated voltammetry
US9803228B2 (en) Electrochemical sensor strip
CN2372689Y (en) Current biological sensor
AU2006272909B2 (en) Gated amperometry
JP6817111B2 (en) Material measurement method and measuring device using electrochemical biosensor
Liu et al. Enzyme biosensors for point-of-care testing
US8951404B2 (en) Electrochemical system for measuring a biological compound by an enzyme
JP3631740B6 (en) Biosensor enzyme electrode and method for producing the same
JP3631740B2 (en) Biosensor enzyme electrode and method for producing the same
JP2000131264A (en) Enzyme sensor
Ensafi et al. Electrochemical Transducers for Biosensors
Seluska Detection of lactate from sweat with screen-printed carbon electrodes
JPS63317095A (en) Biosensor
AU2014218413A1 (en) Gated amperometry
AU2013200069B2 (en) Gated amperometry
WO2015178912A1 (en) Analyte sensors and methods of using same