JP3494686B2 - Method for producing isomaltosyl fructoside - Google Patents

Method for producing isomaltosyl fructoside

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JP3494686B2
JP3494686B2 JP31576093A JP31576093A JP3494686B2 JP 3494686 B2 JP3494686 B2 JP 3494686B2 JP 31576093 A JP31576093 A JP 31576093A JP 31576093 A JP31576093 A JP 31576093A JP 3494686 B2 JP3494686 B2 JP 3494686B2
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Description

【発明の詳細な説明】 【0001】 【産業上の利用分野】本発明は、齲蝕誘発性を抑制する
甘味料として知られるイソマルトシルフラクトシドの製
造法に関するものである。 【0002】 【従来の技術】シュクロースは味質の良い甘味を呈し、
また、極めて水に溶け易いことから、代表的な甘味料と
して広く使用されてきた。しかしながら、近年、シュク
ロースは齲蝕誘発性が高く、虫歯の原因となることが明
らかにされてきた。すなわち、シュクロースは口腔内の
微生物によって不溶性のグルカンに変換され、このグル
カンに覆われた歯の表面で嫌気発酵が行われて乳酸等の
有機酸が生成し、この有機酸が歯のエナメル質を溶解す
ることによって虫歯が発生するということが解明され
た。こうしたことから、シュクロースに代わり得る甘味
料やシュクロースの齲蝕性を抑制する甘味料が望まれて
いる。シュクロースの齲蝕誘発性を抑える甘味料の代表
として、イソマルトシルフラクトシドが知られている
が、このイソマルトシルフラクトシドは、不溶性グルカ
ンの生成を抑える作用を有することから、シュクロース
の代替としてだけではなく、シュクロースと併用できる
利点を有している。 【0003】現在までに、イソマルトシルフラクトシド
の製造方法としては、アスペルギルス・ニガー(Asp
ergillus niger)の糖転移酵素を用いる
方法〔J.Chem.Soc.,2064(195
7)〕と、バチルス(Bacillus)属のしょ糖転
移酵素を用いる方法(特開平4−30796号公報)、
およびムコール・ジャバニカス(Mucor java
nicus)の糖転移酵素を用いる方法〔澱粉科学,第
35巻,第2号,P93−102(1988)、特開平
2−128652号公報、特開平4−287692号公
報〕が知られている。 【0004】 【発明が解決しようとする課題】しかしながら、アスペ
ルギルス属に属する菌株の中では、アスペルギルス・ニ
ガー(Aspergillus niger)の糖転移
酵素を用いるイソマルトシルフラクトシドの製造法しか
これまでに知られていなかった。さらに、この方法で
は、安価なシュクロースに比べてはるかにコストが高
く、したがって、より生産性の高いイソマルトシルフラ
クトシドの製造法の開発が望まれていた。本発明は、こ
うした状況のもとになされたものであって、その目的
は、イソマルトシルフラクトシドの、効率のよい製造法
を提供することにある。 【0005】 【課題を解決するための手段】前記課題を解決するた
め、本発明者らは、アスペルギルス属に属する菌株のな
かで、アスペルギルス・ニガー(Aspergillu
s niger)より効率よくイソマルトシルフラクト
シドを生成するという観点から、アスペルギルス・ニガ
ー(Aspergillus niger)以外のアス
ペルギルス属菌株の探索を実施し、それらのイソマルト
シルフラクトシド生成能を調査した。その結果、アスペ
ルギルス・アワモリ(Aspergillus awa
mori)またはアスペルギルス・フォエニシス(As
pergillus phoenicis)の生産する
糖転移酵素活性物を、シュクロースとグルコシル基供与
体を含む基質溶液に作用させると、アスペルギルス・ニ
ガーよりも効率よくイソマルトシルフラクトシドを生成
することを見いだし、本発明を完成するに至った。 【0006】 すなわち、本発明は、シュクロースとグ
ルコシル基供与体を含む基質溶液にアスペルギルス・ア
ワモリ(Aspergillus awamori)ま
たはアスペルギルス・フォエニシス(Aspergil
lus phoenicis)の生産する糖転移酵素
性物を作用させることを特徴とするイソマルトシルフラ
クトシドの製造法に関する。本発明における基質溶液と
は、糖転移酵素活性物によるグルコシル基の転移反応に
おいて、グルコシル基の受容体となるシュクロースとグ
ルコシル基供与体とを含有する溶液である。グルコシル
基供与体とは、グルコシル基がグルコシド結合した二糖
以上のオリゴ糖および多糖類であり、例えば、可溶性澱
粉、澱粉部分加水分解物、アミロース、マルトース、マ
ルトトリオース、マルトテトラオース、マルトペンタオ
ース、マルトヘキサオース、またはそれらの混合物等が
挙げられる。基質溶液中におけるシュクロースとグルコ
シル基供与体の比率は、10:1から1:10程度が望
ましい。また、基質濃度は5から70重量%程度が可能
で、20から60重量%程度が望ましい。なお、基質溶
液のpHは、2から8の範囲が可能で、3から7が望ま
しい。基質溶液の温度は、5から70℃が可能で、15
から55℃が望ましい。 【0007】 また、本発明において、上記基質溶液に
作用させる糖転移酵素活性物とは、グルコシル基供与体
のグルコシド結合が切断されて生じるグルコース残基
を、シュクロースのグルコース残基の6位の炭素に転移
させ、α−グルコシド結合で結合した三糖類、すなわ
ち、イソマルトシルフラクトシドを生成する作用を有す
る菌体または菌体抽出物を意味し、菌体とは、微生物を
培養した培地中に存在する菌体、および培地から常法に
従って一旦分離された菌体の両方を意味する。また、菌
体抽出物とは、菌体破砕物、常法に従って部分精製され
た上述のグルコシル基転移活性を有する酵素含有物を意
味する。さらに、必要に応じて公知の方法で精製された
上述のグルコシル基転移活性を有する酵素をも意味する
ものである。 【0008】 本製造法に用いる糖転移酵素活性物は、
アスペルギルス・アワモリ(Aspergillus
awamori)またはアスペルギルス・フォエニシス
(Aspergillus phoenicis)を培
養することにより得ることができる。この代表例として
は、例えば、アスペルギルス・アワモリ(Asperg
illus awamori)IFO433,アスペル
ギルス・フォエニシス(Aspergillus ph
oenicis)IFO6649、IFO6650,I
FO8873またはATCC1555を挙げることがで
きる。これらの菌株は、財団法人発酵研究所(Inst
ituteof Fermentation,Osak
a)および米国アメリカンタイプカルチャーコレクショ
ン(American Type Culture C
ollection)から誰でも自由に入手することが
できる。 【0009】本発明において、使用することのできる培
地としては、前述した微生物が培養により増殖できるも
のであれば、任意の天然培地または合成培地でよい。例
えば、炭素源としては、グルコース、糖蜜、シュクロー
ス、澱粉、澱粉糖化液、セルロース分解物などが用いら
れる。窒素源としては、アンモニア、硫安、硝安、燐安
等のアンモニウム塩や尿素、硝酸塩類等が適宜用いられ
る。無機塩としては、燐酸、カリウム、マグネシウム等
の塩類、例えば、燐酸アンモニウム、燐酸カリウム、燐
酸ソーダ、燐酸マグネシウム等の通常の工業用薬品でよ
く、他に微量元素を加えてもよい。また、微量有機栄養
素として、ビタミン類、アミノ酸、核酸関連物質等は、
菌の生育上は特別に必要なものではないが、これらを添
加したり、コーンスチープリカー、肉エキス、酵母エキ
ス、ペプトン等の有機物を加えてもよい。これらの培地
は、液体培地、固体培地のいずれの形でも使用すること
ができる。代表的な培地組成としては、例えば、可溶性
澱粉40g、コーンスチープリカー30g、硝酸ナトリ
ウム0.5g、燐酸二水素カリウム0.1g、硫酸マグ
ネシウム7水和物0.05g、塩化カリウム0.05g
からなる天然培地(各成分を蒸留水に溶解して1Lとす
る)が挙げられる。 【0010】 培養は、振盪、通気攪拌等による好気条
件で行うのが好ましいが、静置状態で行うこともでき
る。培養温度は、15℃から35℃の範囲が可能で、2
5℃から30℃付近が望ましい。培養液中のpHは、3
から8とすることが可能で、pH4から6付近が望まし
い。本発明によれば、アスペルギルス・アワモリ(As
pergillus awamori)またはアスペル
ギルス・フォエニシス(Aspergilluspho
enicis)の生産する糖転移酵素活性物を、シュク
ロースとグルコシル基供与体を含む基質溶液に作用させ
ることにより、イソマルトシルフラクトシドを効率よく
製造することができる。 【0011】 【実施例】以下、本発明を具体的に説明するために実施
例を挙げて説明するが、本発明は、これらの実施例によ
り限定されるものではない。 (実施例1)財団法人発酵研究所より分譲を受けたアス
ペルギルス・アワモリ(Aspergillus aw
amori)IFO433を、100mlの天然培地
(可溶性澱粉40g、コーンスチープリカー30g、硝
酸ナトリウム0.5g、燐酸二水素カリウム0.1g、
硫酸マグネシウム7水和物0.05g、塩化カリウム
0.05gを蒸留水に溶解して1Lとする)を含む50
0mlフラスコの中で、25℃で2日間振盪培養した。
同培養液100mlを、2Lの前記天然培地を入れた5
Lフラスコに移植して、25℃で2日間培養した。培養
終了後、ろ過により集菌し、脱イオン水で洗浄後再び集
菌し、湿菌体重量および乾燥菌体重量を測定した。 【0012】シュクロース20%、テトラップ−Hシロ
ップ(林原商事株式会社より購入)6.7%(固形分5
%)を含む0.05M燐酸緩衝液(pH7)50mlに
乾燥菌体重量1g分の湿菌体を加えて、20℃で5時間
反応させた。得られた反応液を95℃以上で10分間加
熱処理した後、遠心分離によって反応液上清を得た。得
られた反応液上清を、下記の分析条件で高速液体クロマ
トグラフィー装置を使って分析した結果、0.61gイ
ソマルトシルフラクトシドの生成が認められた。 (分析条件) カラム:東ソー株式会社製 アミド80(4.6×25
0mm) 溶離液:アセトニトリル:水=75:25 流速 :1.0ml/min 温度 :70℃ 検出器:示差屈折計 【0013】(実施例2)財団法人発酵研究所より分譲
を受けたアスペルギルス・フォエニシス(Asperg
illus phoenicis)IFO6649を、
前記実施例1と同様の方法で菌体培養を実施して、湿菌
体重量および乾燥菌体重量を測定した。シュクロース2
0%、テトラップ−Hシロップ(林原商事株式会社より
購入)6.7%(固形分5%)を含む0.05M燐酸緩
衝液(pH7)50mlに乾燥菌体重量1g分の湿菌体
を加えて、20℃で5時間反応させた。得られた反応液
を95℃以上で10分間加熱処理した後、遠心分離によ
って反応液上清を得た。得られた反応液上清を、実施例
1と同様の方法で分析した結果、0.81gイソマルト
シルフラクトシドの生成が認められた。 【0014】(実施例3)財団法人発酵研究所より分譲
を受けたアスペルギルス・フォエニシス(Asperg
illus phoenicis)IFO6650を、
前記実施例1と同様の方法で菌体培養を実施して、湿菌
体重量および乾燥菌体重量を測定した。シュクロース2
0%、テトラップ−Hシロップ(林原商事株式会社より
購入)6.7%(固形分5%)を含む0.05M燐酸緩
衝液(pH7)50mlに乾燥菌体重量1g分の湿菌体
を加えて、20℃で5時間反応させた。得られた反応液
を95℃以上で10分間加熱処理した後、遠心分離によ
って反応液上清を得た。得られた反応液上清を、実施例
1と同様の方法で分析した結果、0.90gイソマルト
シルフラクトシドの生成が認められた。 【0015】(実施例4)財団法人発酵研究所より分譲
を受けたアスペルギルス・フォエニシス(Asperg
illus phoenicis)IFO8873を、
前記実施例1と同様の方法で菌体培養を実施して、湿菌
体重量および乾燥菌体重量を測定した。シュクロース2
0%、テトラップ−Hシロップ(林原商事株式会社より
購入)6.7%(固形分5%)を含む0.05M燐酸緩
衝液(pH7)50mlに乾燥菌体重量1g分の湿菌体
を加えて、20℃で5時間反応させた。得られた反応液
を95℃以上で10分間加熱処理した後、遠心分離によ
って反応液上清を得た。得られた反応液上清を、実施例
1と同様の方法で分析した結果、0.45gイソマルト
シルフラクトシドの生成が認められた。 【0016】(実施例5)米国アメリカンタイプカルチ
ャーコレクション(American TypeCul
ture Collection)より分譲を受けたア
スペルギルス・フォエニシス(Aspergillus
phoenicis)ATCC1555を、前記実施
例1と同様の方法で菌体培養を実施して、湿菌体重量お
よび乾燥菌体重量を測定した。シュクロース20%、テ
トラップ−Hシロップ(林原商事株式会社より購入)
6.7%(固形分5%)を含む0.05M燐酸緩衝液
(pH7)50mlに乾燥菌体重量1g分の湿菌体を加
えて、20℃で5時間反応させた。得られた反応液を9
5℃以上で10分間加熱処理した後、遠心分離によって
反応液上清を得た。得られた反応液上清を、実施例1と
同様の方法で分析した結果、0.72gイソマルトシル
フラクトシドの生成が認められた。 【0017】(比較例)米国アメリカンタイプカルチャ
ーコレクション(American TypeCult
ure Collection)より分譲を受けたアス
ペルギルス・ニガー(Aspergillus nig
er)ATCC9642を、前記実施例1と同様の方法
で菌体培養を実施して、湿菌体重量および乾燥菌体重量
を測定した。シュクロース20%、テトラップ−Hシロ
ップ(林原商事株式会社より購入)6.7%(固形分5
%)を含む0.05M燐酸緩衝液(pH7)50mlに
乾燥菌体重量1g分の湿菌体を加えて、20℃で5時間
反応させた。得られた反応液を95℃以上で10分間加
熱処理した後、遠心分離によって反応液上清を得た。得
られた反応液上清を、実施例1と同様の方法で分析した
結果、生成したイソマルトシルフラクトシドの重量は
0.11gであった。この結果から明らかなように、ア
スペルギルス・ニガー(Aspergillus ni
ger)の糖転移酵素を用いるイソマルトシルフラクト
シドの製造法に対し、本発明の製造法は、非常に優れた
生産性を示す。 【0018】 【発明の効果】本発明によれば、アスペルギルス・アワ
モリ(Aspergillus awamori)また
はアスペルギルス・フォエニシス(Aspergill
us phoenicis)の生産する糖転移酵素活性
を、シュクロースとグルコシル基供与体を含む基質溶
液に作用させることにより、シュクロースの齲蝕誘発性
を抑制する代表的甘味料イソマルトシルフラクトシドを
効率よく、製造することができる。
Description: BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a method for producing isomaltosyl fructoside, which is known as a sweetener that suppresses cariogenicity. [0002] Sucrose has a good sweet taste,
Further, since it is extremely soluble in water, it has been widely used as a representative sweetener. However, in recent years, it has been revealed that sucrose is highly cariogenic and causes caries. In other words, sucrose is converted into insoluble glucan by microorganisms in the oral cavity, anaerobic fermentation is performed on the surface of the teeth covered with the glucan, and organic acids such as lactic acid are generated, and this organic acid is converted into tooth enamel. It was clarified that the decay caused caries. For these reasons, a sweetener that can replace sucrose and a sweetener that suppresses the cariogenicity of sucrose are desired. Isomaltosyl fructoside is known as a typical sweetener that suppresses the cariogenicity of sucrose.Since this isomaltosyl fructoside has the effect of suppressing the production of insoluble glucan, it is an alternative to sucrose. As well as having the advantage that it can be used in combination with sucrose. [0003] To date, methods for producing isomaltosyl fructoside include Aspergillus niger (Asp.
ergillus niger) [J. Chem. Soc. , 2064 (195)
7)] and a method using a sucrose transferase of the genus Bacillus (JP-A-4-30796);
And Mucor Javanese
(Patent Science, Vol. 35, No. 2, P93-102 (1988), JP-A-2-128652, JP-A-4-287692). [0004] However, among strains belonging to the genus Aspergillus, only a method for producing isomaltosyl fructoside using a glycosyltransferase of Aspergillus niger has been known so far. I didn't. Furthermore, this method is much more expensive than inexpensive sucrose, and therefore, it has been desired to develop a more productive method for producing isomaltosyl fructoside. The present invention has been made under such circumstances, and an object of the present invention is to provide an efficient method for producing isomaltosyl fructoside. [0005] In order to solve the above-mentioned problems, the present inventors have developed Aspergillus niger (Aspergillus niger) among strains belonging to the genus Aspergillus.
From the viewpoint of producing isomaltosyl fructoside more efficiently than S. niger, strains of the genus Aspergillus other than Aspergillus niger were searched, and their ability to produce isomaltosyl fructoside was investigated. As a result, Aspergillus awamori (Aspergillus awamori)
mori) or Aspergillus phoensis (As
production to glycosyltransferase activity of pergillus phoenicis), when allowed to act on a substrate solution containing sucrose and glucosyl group donor, found that efficiently generated isomalto Sylph lactoside than Aspergillus niger, the present invention Was completed. [0006] That is, the present invention relates to a method for preparing Aspergillus awamori or Aspergillus phoenesis in a substrate solution containing sucrose and a glucosyl group donor.
glucosyltransferase activity produced by L. phoenicis)
The present invention relates to a method for producing isomaltosyl fructoside, which is characterized by allowing an active substance to act. The substrate solution in the present invention is a solution containing sucrose, which becomes a glucosyl group acceptor, and a glucosyl group donor in a glucosyl group transfer reaction by a glycosyltransferase active substance . Glucosyl group donors are oligosaccharides and polysaccharides having a glucosyl group bonded to a disaccharide or higher, such as soluble starch, partially hydrolyzed starch, amylose, maltose, maltotriose, maltotetraose, and maltopentaose. Oose, maltohexaose, and mixtures thereof, and the like. The ratio of sucrose to glucosyl group donor in the substrate solution is desirably about 10: 1 to 1:10. The substrate concentration can be about 5 to 70% by weight, and preferably about 20 to 60% by weight. The pH of the substrate solution can be in the range of 2 to 8, and preferably 3 to 7. The temperature of the substrate solution can be between 5 and 70 ° C.
To 55 ° C. [0007] In the present invention, the glycosyltransferase active substance acting on the substrate solution refers to a glucose residue generated by cleavage of a glucosidic bond of a glucosyl group donor at the 6-position of a sucrose glucose residue. Trisaccharides transferred to carbon and linked by α-glucoside bonds, that is, cells or cell extracts having an action of producing isomaltosyl fructoside, which means cells in a medium in which microorganisms are cultured. And the cells once isolated from the medium according to a conventional method. The term "cell extract" refers to a crushed cell, or a partially purified enzyme-containing substance having the above-mentioned glucosyl transfer activity according to a conventional method. Furthermore, it also means an enzyme having the above-mentioned glucosyltransferase activity, which is purified by a known method, if necessary. [0008] The glycosyltransferase active substance used in the production method is
Aspergillus awamori (Aspergillus)
awamori) or Aspergillus phoenicis. Typical examples thereof include Aspergillus awamori (Asperg)
illus awamori IFO433, Aspergillus phoensis (Aspergillus ph)
oenicis) IFO 6649, IFO 6650, I
FO8833 or ATCC1555. These strains were obtained from the Fermentation Research Institute (Inst
ituteof Fermentation, Osak
a) and the American Type Culture Collection (American Type Culture C)
collections can be freely obtained by anyone. In the present invention, as a medium that can be used, any natural medium or synthetic medium may be used as long as the above-mentioned microorganism can be proliferated by culture. For example, as a carbon source, glucose, molasses, sucrose, starch, starch saccharified solution, cellulose decomposition product, and the like are used. As a nitrogen source, ammonium salts such as ammonia, ammonium sulfate, ammonium nitrate, and phosphorus phosphorus, urea, nitrates and the like are appropriately used. As the inorganic salt, salts such as phosphoric acid, potassium and magnesium, for example, common industrial chemicals such as ammonium phosphate, potassium phosphate, sodium phosphate and magnesium phosphate may be used, and trace elements may be added in addition. In addition, as trace organic nutrients, vitamins, amino acids, nucleic acid related substances, etc.
Although it is not particularly necessary for the growth of the fungus, these may be added, or organic substances such as corn steep liquor, meat extract, yeast extract, peptone, etc. may be added. These media can be used in any form of a liquid medium or a solid medium. Representative medium compositions include, for example, soluble starch 40 g, corn steep liquor 30 g, sodium nitrate 0.5 g, potassium dihydrogen phosphate 0.1 g, magnesium sulfate heptahydrate 0.05 g, potassium chloride 0.05 g.
(Each component is dissolved in distilled water to make 1 L). The cultivation is preferably performed under aerobic conditions such as shaking and aeration and stirring, but can also be performed in a static state. The cultivation temperature can range from 15 ° C. to 35 ° C.
It is desirable to be around 5 ° C to 30 ° C. PH in the culture solution is 3
To 8, and preferably around pH 4 to 6. According to the present invention, Aspergillus awamori (As
pergillus awamori or Aspergillus phoensis (Aspergilluspho)
By reacting the glycosyltransferase activity produced by E. enicis) with a substrate solution containing sucrose and a glucosyl group donor, isomaltosyl fructoside can be efficiently produced. EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described specifically with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples. (Example 1) Aspergillus awamori (Aspergillus aw) obtained from the Fermentation Research Institute
amori) IFO433 in 100 ml of natural medium (40 g of soluble starch, 30 g of corn steep liquor, 0.5 g of sodium nitrate, 0.1 g of potassium dihydrogen phosphate,
0.05 g of magnesium sulfate heptahydrate and 0.05 g of potassium chloride dissolved in distilled water to make 1 L).
Shaking culture was performed at 25 ° C. for 2 days in a 0 ml flask.
100 ml of the same culture solution was added with 2 L of the above-mentioned natural medium.
The cells were transferred to an L flask and cultured at 25 ° C. for 2 days. After completion of the culture, the cells were collected by filtration, washed with deionized water, collected again, and the wet cell weight and the dry cell weight were measured. Sucrose 20%, Tetrap-H syrup (purchased from Hayashibara Shoji Co., Ltd.) 6.7% (solid content 5
%) Of 50 M of 0.05 M phosphate buffer (pH 7) was added with 1 g of the dry cells, and reacted at 20 ° C. for 5 hours. After heating the obtained reaction solution at 95 ° C. or higher for 10 minutes, a reaction solution supernatant was obtained by centrifugation. The obtained reaction solution supernatant was analyzed using a high performance liquid chromatography apparatus under the following analysis conditions, and as a result, formation of 0.61 g of isomaltosyl fructoside was confirmed. (Analysis conditions) Column: Amide 80 (4.6 × 25, manufactured by Tosoh Corporation)
0 mm) Eluent: acetonitrile: water = 75: 25 Flow rate: 1.0 ml / min Temperature: 70 ° C. Detector: differential refractometer (Example 2) Aspergillus phoenesis obtained from Fermentation Research Institute (Asperg
(illus phoenicis) IFO6649,
Cell culture was carried out in the same manner as in Example 1, and the wet cell weight and the dry cell weight were measured. Sucrose 2
To 50 ml of 0.05 M phosphate buffer (pH 7) containing 6.7% (solid content: 5%) of 0%, Tetrap-H syrup (purchased from Hayashibara Shoji Co., Ltd.) was added wet cells of 1 g of dry cell weight. And reacted at 20 ° C. for 5 hours. After heating the obtained reaction solution at 95 ° C. or higher for 10 minutes, a reaction solution supernatant was obtained by centrifugation. As a result of analyzing the obtained reaction solution supernatant in the same manner as in Example 1, production of 0.81 g of isomaltosyl fructoside was confirmed. Example 3 Aspergillus phoeniisis (Asperg) obtained from the Fermentation Research Institute, Japan
(illus phoenicis) IFO6650,
Cell culture was carried out in the same manner as in Example 1, and the wet cell weight and the dry cell weight were measured. Sucrose 2
To 50 ml of 0.05 M phosphate buffer (pH 7) containing 6.7% (solid content: 5%) of 0%, Tetrap-H syrup (purchased from Hayashibara Shoji Co., Ltd.) was added wet cells of 1 g of dry cell weight. And reacted at 20 ° C. for 5 hours. After heating the obtained reaction solution at 95 ° C. or higher for 10 minutes, a reaction solution supernatant was obtained by centrifugation. As a result of analyzing the obtained reaction solution supernatant in the same manner as in Example 1, production of 0.90 g of isomaltosyl fructoside was confirmed. Example 4 Aspergillus phoeniisis (Asperg) obtained from the Fermentation Research Institute
(illus phoenicis) IFO 8873,
Cell culture was carried out in the same manner as in Example 1, and the wet cell weight and the dry cell weight were measured. Sucrose 2
To 50 ml of 0.05 M phosphate buffer (pH 7) containing 6.7% (solid content: 5%) of 0%, Tetrap-H syrup (purchased from Hayashibara Shoji Co., Ltd.) was added wet cells of 1 g of dry cell weight. And reacted at 20 ° C. for 5 hours. After heating the obtained reaction solution at 95 ° C. or higher for 10 minutes, a reaction solution supernatant was obtained by centrifugation. The obtained reaction solution supernatant was analyzed in the same manner as in Example 1, and as a result, generation of 0.45 g of isomaltosyl fructoside was observed. Example 5 American Type Culture Collection (American TypeCul)
Aspergillus phoensis (Aspergillus)
(Phenicis) ATCC1555 was cultured in the same manner as in Example 1, and the wet cell weight and the dry cell weight were measured. Sucrose 20%, Tetrap-H syrup (purchased from Hayashibara Shoji Co., Ltd.)
To 50 ml of a 0.05 M phosphate buffer (pH 7) containing 6.7% (solid content: 5%) was added wet cells of 1 g in weight of dry cells, and reacted at 20 ° C. for 5 hours. The obtained reaction solution was 9
After heat treatment at 5 ° C. or more for 10 minutes, a reaction solution supernatant was obtained by centrifugation. The obtained reaction solution supernatant was analyzed in the same manner as in Example 1, and as a result, formation of 0.72 g of isomaltosyl fructoside was observed. (Comparative Example) American Type Culture Collection (American TypeCult)
Aspergillus niger (Aspergillus nig)
er) Cell culture was performed on ATCC9642 in the same manner as in Example 1 to determine the wet cell weight and the dry cell weight. Sucrose 20%, Tetrap-H syrup (purchased from Hayashibara Corporation) 6.7% (solid content 5
%) Of 50 M of 0.05 M phosphate buffer (pH 7) was added with 1 g of the dry cells, and reacted at 20 ° C. for 5 hours. After heating the obtained reaction solution at 95 ° C. or higher for 10 minutes, a reaction solution supernatant was obtained by centrifugation. The obtained reaction solution supernatant was analyzed in the same manner as in Example 1, and as a result, the weight of the produced isomaltsyl fructoside was 0.11 g. As is evident from the results, Aspergillus niger (Aspergillus niger)
In contrast to the method for producing isomaltosyl fructoside using the glycosyltransferase of ger), the production method of the present invention shows extremely excellent productivity. According to the present invention, Aspergillus awamori or Aspergillus phoensis (Aspergill)
us phoenicis) producing glycosyltransferase activity
Things to, by acting on a substrate solution containing sucrose and glucosyl group donor, inhibits representative sweeteners caries induced sucrose isomalto Sylph lactoside efficiently, can be produced.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献 特開 平3−262494(JP,A) 特開 昭56−51982(JP,A) 特開 平3−27285(JP,A) 特開 昭64−80283(JP,A) Biochem.Mol.Biol. Int.,1993年,Vol.30, N o.1 ,p.107−113 (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C12P 19/00 - 19/64 JICSTファイル(JOIS) PubMed BIOSIS/WPI(DIALOG)────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (56) References JP-A-3-262494 (JP, A) JP-A-56-51982 (JP, A) JP-A-3-27285 (JP, A) JP-A 64-64 80283 (JP, A) Biochem. Mol. Biol. Int. 1993, Vol. 30, No. 1, p. 107-113 (58) Field surveyed (Int. Cl. 7 , DB name) C12P 19/00-19/64 JICST file (JOIS) PubMed BIOSIS / WPI (DIALOG)

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】 【請求項1】 シュクロースとグルコシル基供与体を含
む基質溶液に、アスペルギルス・アワモリ(Asper
gillus awamori)またはアスペルギルス
・フォエニシス(Aspergillus phoen
icis)の生産する糖転移酵素活性物を作用させるこ
とを特徴とするイソマルトシルフラクトシドの製造法。
(57) [Claims 1] Aspergillus awamori (Aspergillus awamori) is added to a substrate solution containing sucrose and a glucosyl group donor.
gillus awamori or Aspergillus phoensis
A method for producing isomaltosyl fructoside, comprising reacting a glycosyltransferase activity produced by icis).
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