JP3478975B2 - 変異バルナーゼ遺伝子およびその形質転換植物 - Google Patents
変異バルナーゼ遺伝子およびその形質転換植物Info
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Description
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は、植物の特定部位、
特に葯に特異的に発現させることにより、効率よく雄性
不稔形質転換体が得られる変異バルナーゼ遺伝子に関す
る。本発明はまた、本発明の変異バルナーゼ遺伝子を、
宿主細胞中で発現することができる組換えベクター、該
ベクターにより形質転換された植物、および形質転換植
物の作出方法に関する。
特に葯に特異的に発現させることにより、効率よく雄性
不稔形質転換体が得られる変異バルナーゼ遺伝子に関す
る。本発明はまた、本発明の変異バルナーゼ遺伝子を、
宿主細胞中で発現することができる組換えベクター、該
ベクターにより形質転換された植物、および形質転換植
物の作出方法に関する。
【0002】
【従来の技術】バルナーゼ(barnase)はバチルス・ア
ミロリクイファシエンス(Bacillusamyloliquifacien
s)由来のRNA分解酵素(RNase)である(S. Nishimura
and M.Nomura, Biochem.Biophys.Acta 30, 430-431:195
8; R.W. Hartley, J.Mol.Biol., 202, 913-915:198
8)。本酵素はアミノ酸残基110個を有し、RNAを加水分
解する酵素である。本酵素が細胞内で発現すると、その
強力なRNA分解活性により細胞機能が阻害され、多くの
場合細胞は死滅する。しかしながら、バルナーゼの遺伝
子を植物の所定の部位に発現させることができれば、所
定の部位の機能を選択的に抑制することができる。
ミロリクイファシエンス(Bacillusamyloliquifacien
s)由来のRNA分解酵素(RNase)である(S. Nishimura
and M.Nomura, Biochem.Biophys.Acta 30, 430-431:195
8; R.W. Hartley, J.Mol.Biol., 202, 913-915:198
8)。本酵素はアミノ酸残基110個を有し、RNAを加水分
解する酵素である。本酵素が細胞内で発現すると、その
強力なRNA分解活性により細胞機能が阻害され、多くの
場合細胞は死滅する。しかしながら、バルナーゼの遺伝
子を植物の所定の部位に発現させることができれば、所
定の部位の機能を選択的に抑制することができる。
【0003】PCT出願国際公開第8910396号には、上記の
バルナーゼ遺伝子を葯組織のタペータム細胞に特異的な
発現プロモーターの下流に結合して作成した雄性不稔遺
伝子を植物に導入し、雄性不稔植物を得る技術が報告さ
れている。このような雄性不稔化技術は効率の良いF1ハ
イブリッド品種の開発において非常に有用である。
バルナーゼ遺伝子を葯組織のタペータム細胞に特異的な
発現プロモーターの下流に結合して作成した雄性不稔遺
伝子を植物に導入し、雄性不稔植物を得る技術が報告さ
れている。このような雄性不稔化技術は効率の良いF1ハ
イブリッド品種の開発において非常に有用である。
【0004】しかし、バルナーゼ遺伝子を雄性不稔遺伝
子として使用した場合には、雄性不稔形質転換体が、好
ましくない形質を示す場合がしばしば観察されている。
PCT出願国際公開第9626283号にはイネにおけるこのよう
な問題が述べられているが、イネだけでなくレタスにお
いても同様な現象が報告されている(Scientia Horticu
lturae 55, 125-139:1993; Arlette Reymaerts, Hilde
Van de Wiele, Greta De Sutter, Jan Janssens:Engine
ered genes for fertility control and their applica
tion in hybrid seed production)。その報告によると
タバコ由来の葯特異的プロモーター(TA29)とバルナー
ゼを用いた雄性不稔遺伝子をレタスに導入した場合、活
力の低下した植物体が現れる。
子として使用した場合には、雄性不稔形質転換体が、好
ましくない形質を示す場合がしばしば観察されている。
PCT出願国際公開第9626283号にはイネにおけるこのよう
な問題が述べられているが、イネだけでなくレタスにお
いても同様な現象が報告されている(Scientia Horticu
lturae 55, 125-139:1993; Arlette Reymaerts, Hilde
Van de Wiele, Greta De Sutter, Jan Janssens:Engine
ered genes for fertility control and their applica
tion in hybrid seed production)。その報告によると
タバコ由来の葯特異的プロモーター(TA29)とバルナー
ゼを用いた雄性不稔遺伝子をレタスに導入した場合、活
力の低下した植物体が現れる。
【0005】このような現象の正確な原因は解明されて
いないが、たとえば、いわゆる遺伝子導入部位の「位置
効果」の影響がそのメカニズムとして想定されている
(PCT出願国際公開第9626283号)。すなわち、より具体
的には、雄性不稔遺伝子が目的とする部位である葯での
み発現すれば希望する雄性不稔植物が作成できるが、当
該遺伝子の導入部位近傍に存在する内在性のエンハンサ
ー等の発現調節因子の影響で葯組織以外でもバルナーゼ
がごく微量発現する可能性がある。このような場合、酵
素活性が強力であるために、上述した好ましくない形質
が現れることが考えられる。
いないが、たとえば、いわゆる遺伝子導入部位の「位置
効果」の影響がそのメカニズムとして想定されている
(PCT出願国際公開第9626283号)。すなわち、より具体
的には、雄性不稔遺伝子が目的とする部位である葯での
み発現すれば希望する雄性不稔植物が作成できるが、当
該遺伝子の導入部位近傍に存在する内在性のエンハンサ
ー等の発現調節因子の影響で葯組織以外でもバルナーゼ
がごく微量発現する可能性がある。このような場合、酵
素活性が強力であるために、上述した好ましくない形質
が現れることが考えられる。
【0006】この問題を克服するために、PCT出願国際
公開第9626283号にはまた、カリフラワーモザイクウィ
ルス35Sプロモーター(以下、CaMV35Sプロモーターとい
う)の、葯以外の組織で強力に発現するという性質を利
用した次のような方法が記載されている。すなわち、バ
ルナーゼに対する阻害タンパク質であるバースター(ba
rstar)を使用する方法であり、CaMV35Sプロモーターに
結合したバースター遺伝子を植物体に同時に導入して葯
以外の組織でバースター遺伝子を構成的に発現させるこ
とにより、葯以外におけるバルナーゼの影響を排除する
というものである。しかしながら、この方法ではバルナ
ーゼ遺伝子のみならず、バースター遺伝子を導入しなけ
ればならず、植物体に複数の外来遺伝子を導入すること
になる。植物では複数コピーの外来遺伝子を導入するこ
とにより、その遺伝子の発現が抑制されるというジーン
サイレンシング(gene silencing)の問題が知られてお
り、現在のところそのメカニズムは明確でないものの、
特に外来遺伝子を35Sプロモーターにより発現させた場
合にこの問題が起こりやすいとされている(R.B. Flave
l, Proc.Natl.Acad.Sci.USA 91, 3490-3496:1994; J. F
innegan, Bio.Technology 12, 883-888:1994; M.A. Mat
zke and A.J.M. Matzke, Plant Physiol., 107, 679-68
5:1995)。一方、バルナーゼを利用した雄性不稔遺伝子
を、イネやトウモロコシなどの種子を利用する作物のF1
品種育成に用いる場合には、花粉親(父親)に「雄性回
復遺伝子」としてバースター遺伝子を保持させることに
より、F1世代で花粉の稔性を回復させるという方法が採
られている(C. Mariani, et al., Nature 357, 384-38
7:1992)。そのため、前述のWO96/26283のような方法で
MS植物(母親)を作成した場合には、F1植物において複
数コピーのバースター遺伝子が存在することになり、ジ
ーンサイレンシングの影響で、その発現が抑制されてし
まうおそれが生じる。
公開第9626283号にはまた、カリフラワーモザイクウィ
ルス35Sプロモーター(以下、CaMV35Sプロモーターとい
う)の、葯以外の組織で強力に発現するという性質を利
用した次のような方法が記載されている。すなわち、バ
ルナーゼに対する阻害タンパク質であるバースター(ba
rstar)を使用する方法であり、CaMV35Sプロモーターに
結合したバースター遺伝子を植物体に同時に導入して葯
以外の組織でバースター遺伝子を構成的に発現させるこ
とにより、葯以外におけるバルナーゼの影響を排除する
というものである。しかしながら、この方法ではバルナ
ーゼ遺伝子のみならず、バースター遺伝子を導入しなけ
ればならず、植物体に複数の外来遺伝子を導入すること
になる。植物では複数コピーの外来遺伝子を導入するこ
とにより、その遺伝子の発現が抑制されるというジーン
サイレンシング(gene silencing)の問題が知られてお
り、現在のところそのメカニズムは明確でないものの、
特に外来遺伝子を35Sプロモーターにより発現させた場
合にこの問題が起こりやすいとされている(R.B. Flave
l, Proc.Natl.Acad.Sci.USA 91, 3490-3496:1994; J. F
innegan, Bio.Technology 12, 883-888:1994; M.A. Mat
zke and A.J.M. Matzke, Plant Physiol., 107, 679-68
5:1995)。一方、バルナーゼを利用した雄性不稔遺伝子
を、イネやトウモロコシなどの種子を利用する作物のF1
品種育成に用いる場合には、花粉親(父親)に「雄性回
復遺伝子」としてバースター遺伝子を保持させることに
より、F1世代で花粉の稔性を回復させるという方法が採
られている(C. Mariani, et al., Nature 357, 384-38
7:1992)。そのため、前述のWO96/26283のような方法で
MS植物(母親)を作成した場合には、F1植物において複
数コピーのバースター遺伝子が存在することになり、ジ
ーンサイレンシングの影響で、その発現が抑制されてし
まうおそれが生じる。
【0007】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、バースター
遺伝子を用いることなくバルナーゼ遺伝子により雄性不
稔植物を作出する方法を提供する。
遺伝子を用いることなくバルナーゼ遺伝子により雄性不
稔植物を作出する方法を提供する。
【0008】本発明は、上記方法に使用する変異バルナ
ーゼ遺伝子およびその製造方法も提供する。
ーゼ遺伝子およびその製造方法も提供する。
【0009】
【課題を解決するための手段】本発明においては、バル
ナーゼ遺伝子のDNA配列(R.W. Hartley, J.Mol.Biol. 2
02, 913-915:1988)の少なくとも一部を変異させ、この
変異遺伝子を植物の葯で特異的に発現させたとき、葯以
外の組織に対して実質的に不利な影響を及ぼすことな
く、当該植物を実質的に雄性不稔化することができるよ
うにする。
ナーゼ遺伝子のDNA配列(R.W. Hartley, J.Mol.Biol. 2
02, 913-915:1988)の少なくとも一部を変異させ、この
変異遺伝子を植物の葯で特異的に発現させたとき、葯以
外の組織に対して実質的に不利な影響を及ぼすことな
く、当該植物を実質的に雄性不稔化することができるよ
うにする。
【0010】変異の方法は、部位特異的変異形成法、制
限酵素による一部断片の削除、Low Fidelity PCR法など
の公知の方法で行うことができる。好ましい変異方法
は、Low Fidelity PCR法である(D. Leung, E. Chen an
d D.Goedda, Technique 1, 11-15:1989; Y.Z. Xiaoping
and R.H. Ebright, Nucleic Acid Res. 19, 6052:199
1; G.C. Rice et al., Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89, 54
67-5471:1992)。この技法を用い、増幅時の反応を複数
エラーの起きやすい条件下で行うことで、目的のDNA断
片に効率よくランダム変異を導入することが可能であ
る。
限酵素による一部断片の削除、Low Fidelity PCR法など
の公知の方法で行うことができる。好ましい変異方法
は、Low Fidelity PCR法である(D. Leung, E. Chen an
d D.Goedda, Technique 1, 11-15:1989; Y.Z. Xiaoping
and R.H. Ebright, Nucleic Acid Res. 19, 6052:199
1; G.C. Rice et al., Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89, 54
67-5471:1992)。この技法を用い、増幅時の反応を複数
エラーの起きやすい条件下で行うことで、目的のDNA断
片に効率よくランダム変異を導入することが可能であ
る。
【0011】本発明においてLow Fidelity PCR法に用い
るプライマーは、通常のPCR法と同様にして選択する。
プライマーの長さは通常のPCR法と同様の塩基数である
ことが好ましい。
るプライマーは、通常のPCR法と同様にして選択する。
プライマーの長さは通常のPCR法と同様の塩基数である
ことが好ましい。
【0012】本発明者らは、配列番号1の配列を含むDN
Aを鋳型に用いプライマー1(5’-CGTTCGGCTC GATGGTAC
CG GTTATCAACA CGTTTGA-3’、配列番号6)、プライマ
ー2(5’-CCTCTAGATT ATCTGATTTT TGTAAAGGTC TGATAAT
G-3’、配列番号7)の組合せでPCRを行ない、配列番号
3に示されるDNA配列を有する変異バルナーゼ遺伝子を
単離することができた。
Aを鋳型に用いプライマー1(5’-CGTTCGGCTC GATGGTAC
CG GTTATCAACA CGTTTGA-3’、配列番号6)、プライマ
ー2(5’-CCTCTAGATT ATCTGATTTT TGTAAAGGTC TGATAAT
G-3’、配列番号7)の組合せでPCRを行ない、配列番号
3に示されるDNA配列を有する変異バルナーゼ遺伝子を
単離することができた。
【0013】配列番号1の配列は、公知のプラスミドpV
E108(WO92/13956)上に存在するバルナーゼ遺伝子のコ
ーディング領域の配列であり、本来のバルナーゼ遺伝子
の配列からN末端側の菌体外への分泌シグナルに当たる
不要な部分を取り除いたものである。
E108(WO92/13956)上に存在するバルナーゼ遺伝子のコ
ーディング領域の配列であり、本来のバルナーゼ遺伝子
の配列からN末端側の菌体外への分泌シグナルに当たる
不要な部分を取り除いたものである。
【0014】
【0015】PCR増幅産物は、慣用の技術によって、大
腸菌等の宿主中でクローニングし、変異バルナーゼ遺伝
子を含む大腸菌クローンを単離する。このクローニング
において、バルナーゼ遺伝子を有するクローンは、該遺
伝子の発現により生じるRNase活性の測定によりスクリ
ーニングしてもよいが、バルナーゼの有するRNase活性
により、大腸菌の成長が影響を受けることを利用して、
以下に述べる2工程からなる方法によりスクリーニング
するのが都合がよい。
腸菌等の宿主中でクローニングし、変異バルナーゼ遺伝
子を含む大腸菌クローンを単離する。このクローニング
において、バルナーゼ遺伝子を有するクローンは、該遺
伝子の発現により生じるRNase活性の測定によりスクリ
ーニングしてもよいが、バルナーゼの有するRNase活性
により、大腸菌の成長が影響を受けることを利用して、
以下に述べる2工程からなる方法によりスクリーニング
するのが都合がよい。
【0016】第一の工程では、まず、上述のようにして
得た変異バルナーゼ遺伝子を用いてプラスミドを調製
し、これにより大腸菌を形質転換する。このようにして
得られた大腸菌形質転換株は、導入された変異バルナー
ゼの活性により成長が抑制される。この事実に基づき、
変異バルナーゼを導入していない対照ベクターを導入し
た大腸菌株と比較して、成長の遅い、すなわちコロニー
の大きさが小さいコロニーを選抜する。このようにして
選抜された大腸菌株は、変異バルナーゼ遺伝子を含むこ
とが予想されるが、確実に変異バルナーゼ遺伝子が発現
することにより成長抑制が起こっていることを確認する
ために、次いで第二の工程を行う。
得た変異バルナーゼ遺伝子を用いてプラスミドを調製
し、これにより大腸菌を形質転換する。このようにして
得られた大腸菌形質転換株は、導入された変異バルナー
ゼの活性により成長が抑制される。この事実に基づき、
変異バルナーゼを導入していない対照ベクターを導入し
た大腸菌株と比較して、成長の遅い、すなわちコロニー
の大きさが小さいコロニーを選抜する。このようにして
選抜された大腸菌株は、変異バルナーゼ遺伝子を含むこ
とが予想されるが、確実に変異バルナーゼ遺伝子が発現
することにより成長抑制が起こっていることを確認する
ために、次いで第二の工程を行う。
【0017】第二の工程においては、バースター遺伝子
を用いる。バースターは、前述したようにバルナーゼに
対して拮抗作用を有する酵素である。バースターを発現
させた大腸菌中では、バルナーゼの酵素活性が阻害さ
れ、バルナーゼ存在下ではその活性により分解されるは
ずのmRNAの分解を阻害することができる。その結果、バ
ースター遺伝子を発現させた大腸菌をバルナーゼ遺伝子
により形質転換した場合には、その生育が抑制されない
ことになるので、バースター遺伝子を発現させた大腸菌
をバルナーゼ遺伝子を含まない対照プラスミドにより形
質転換した場合と成長速度を比較すると、両者の成長速
度に大きな差はなく、したがってコロニーのサイズは大
きく変化しないと期待される。これに基づき、第一の工
程で選抜した大腸菌からプラスミドを調製し、これを用
いてバースター遺伝子を構成的に発現させた大腸菌を形
質転換し、対照プラスミドにより形質転換した大腸菌と
同程度のサイズのコロニーを、変異バルナーゼ遺伝子を
含むコロニーとして選択する。
を用いる。バースターは、前述したようにバルナーゼに
対して拮抗作用を有する酵素である。バースターを発現
させた大腸菌中では、バルナーゼの酵素活性が阻害さ
れ、バルナーゼ存在下ではその活性により分解されるは
ずのmRNAの分解を阻害することができる。その結果、バ
ースター遺伝子を発現させた大腸菌をバルナーゼ遺伝子
により形質転換した場合には、その生育が抑制されない
ことになるので、バースター遺伝子を発現させた大腸菌
をバルナーゼ遺伝子を含まない対照プラスミドにより形
質転換した場合と成長速度を比較すると、両者の成長速
度に大きな差はなく、したがってコロニーのサイズは大
きく変化しないと期待される。これに基づき、第一の工
程で選抜した大腸菌からプラスミドを調製し、これを用
いてバースター遺伝子を構成的に発現させた大腸菌を形
質転換し、対照プラスミドにより形質転換した大腸菌と
同程度のサイズのコロニーを、変異バルナーゼ遺伝子を
含むコロニーとして選択する。
【0018】こうして得られた変異バルナーゼ遺伝子
は、必要であれば、慣用の方法によってDNA配列を解析
することで、その変異の詳細を調べることができる。
は、必要であれば、慣用の方法によってDNA配列を解析
することで、その変異の詳細を調べることができる。
【0019】 本発明の変異バルナーゼ遺伝子は、配
列番号3のDNA配列を有する。この遺伝子がコードす
る塩基配列は、野生型活性を示す配列番号1の塩基配列
と比較すると、開始コドンであるATGのAから数えて
15番目にTの挿入があり、また333番目のAが欠失
している。この配列番号3のDNA配列に基づいてタン
パク質の翻訳が行われた場合、9番目コドンに終止コド
ンがあらわれるため理論的には8アミノ酸からなるポリ
ペプチドしか生成されず、そのため生成される変異バル
ナーゼタンパク質はRNA分解酵素活性を有さない可能
性が考えられる。しかしながら、配列番号3に基づくタ
ンパク質を発現させたとき、バルナーゼ活性を有するタ
ンパク質が生成されている。本発明においては、タンパ
ク質への翻訳過程でリボゾームが自動的に読み枠をずら
して翻訳する、フレームシフトリコーディング(Fra
meShiftRe―coding)と呼ばれる現象が
起こっている可能性がある。この現象はウィルス、大腸
菌、動物のいくつかの遺伝子において見つかっている。
この現象が起こる結果、読み枠のずれに伴う翻訳効率の
低下が生じ、そのために低活性になっていることが考え
られる。
列番号3のDNA配列を有する。この遺伝子がコードす
る塩基配列は、野生型活性を示す配列番号1の塩基配列
と比較すると、開始コドンであるATGのAから数えて
15番目にTの挿入があり、また333番目のAが欠失
している。この配列番号3のDNA配列に基づいてタン
パク質の翻訳が行われた場合、9番目コドンに終止コド
ンがあらわれるため理論的には8アミノ酸からなるポリ
ペプチドしか生成されず、そのため生成される変異バル
ナーゼタンパク質はRNA分解酵素活性を有さない可能
性が考えられる。しかしながら、配列番号3に基づくタ
ンパク質を発現させたとき、バルナーゼ活性を有するタ
ンパク質が生成されている。本発明においては、タンパ
ク質への翻訳過程でリボゾームが自動的に読み枠をずら
して翻訳する、フレームシフトリコーディング(Fra
meShiftRe―coding)と呼ばれる現象が
起こっている可能性がある。この現象はウィルス、大腸
菌、動物のいくつかの遺伝子において見つかっている。
この現象が起こる結果、読み枠のずれに伴う翻訳効率の
低下が生じ、そのために低活性になっていることが考え
られる。
【0020】
【0021】変異バルナーゼ遺伝子により、雄性不稔化
することができる植物としては、本遺伝子が導入され、
実質的に雄性不稔化できる植物であれば、特に限定され
ないが、具体例を挙げると例えばイネ、トウモロコシ、
タバコ、レタス、ナタネなどを挙げることができる。こ
の中で特に、イネおよびトウモロコシが好ましい。
することができる植物としては、本遺伝子が導入され、
実質的に雄性不稔化できる植物であれば、特に限定され
ないが、具体例を挙げると例えばイネ、トウモロコシ、
タバコ、レタス、ナタネなどを挙げることができる。こ
の中で特に、イネおよびトウモロコシが好ましい。
【0022】植物を雄性不稔化するためには、変異バル
ナーゼ遺伝子を当該植物の葯で特異的に発現させ、その
RNase活性によって葯の機能を阻害する。葯で特異的に
発現させるためには、WO92/13957に記載されている方法
を用いることができる。簡単に述べると、変異バルナー
ゼ遺伝子を、約特異性のプロモーターの下流に連結し
て、発現ベクターを用いて植物細胞に組み込む。
ナーゼ遺伝子を当該植物の葯で特異的に発現させ、その
RNase活性によって葯の機能を阻害する。葯で特異的に
発現させるためには、WO92/13957に記載されている方法
を用いることができる。簡単に述べると、変異バルナー
ゼ遺伝子を、約特異性のプロモーターの下流に連結し
て、発現ベクターを用いて植物細胞に組み込む。
【0023】組み込みのためには、アグロバクテリウム
法、エレクトロポレーション法、パーティクルガン法な
どがある。
法、エレクトロポレーション法、パーティクルガン法な
どがある。
【0024】形質転換した植物細胞から植物体を形成す
るためには、形質転換した植物細胞カルスから再生す
る。その方法は、Y. Hiei et al., Plant J. 6, 271-28
2:1994の様にして行えばよい。
るためには、形質転換した植物細胞カルスから再生す
る。その方法は、Y. Hiei et al., Plant J. 6, 271-28
2:1994の様にして行えばよい。
【0025】このようにして作出した植物体が、雄性不
稔化されていることは、これらの植物体を栽培しても、
稔性のある花粉を他の植物体から受粉しない限り稔実し
ないことから確認することができる。
稔化されていることは、これらの植物体を栽培しても、
稔性のある花粉を他の植物体から受粉しない限り稔実し
ないことから確認することができる。
【0026】
【実施例】実施例1. 変異バルナーゼ遺伝子の調製 Low fidelity PCR
プライマー1(CGTTCGGCTC GATGGTACCG GTTATCAACA CGT
TTGA、配列番号6)およびプライマー2(CCTCTAGATT A
TCTGATTTT TGTAAAGGTC TGATAATG、配列番号7)を、S.
L. Beaucage et al., Tetrahedron Lett., 22, 1859-18
62:1982に記載の方法でDNA合成装置(アプライドバイオ
システムズ社製)を用いて合成した。公知のプラスミド
pVE108(WO92/13956)を鋳型に用い、プライマー1およ
びプライマー2の組み合わせでPCRを行った。pVE108の
バルナーゼ遺伝子のコーディング領域に対応する部分の
配列を配列番号1に示す。また、反応条件は次の通りで
ある。すなわち、10mM Tris-HCl(pH9.5)、50mM KCl、
2mM MgCl2、それぞれ1mMのdNTP、10ngの鋳型DNA、0.5un
itsのTaq DNAポリメラーゼ中で、 94℃1分、57℃1
分、72℃1分を、50サイクル行った。
TTGA、配列番号6)およびプライマー2(CCTCTAGATT A
TCTGATTTT TGTAAAGGTC TGATAATG、配列番号7)を、S.
L. Beaucage et al., Tetrahedron Lett., 22, 1859-18
62:1982に記載の方法でDNA合成装置(アプライドバイオ
システムズ社製)を用いて合成した。公知のプラスミド
pVE108(WO92/13956)を鋳型に用い、プライマー1およ
びプライマー2の組み合わせでPCRを行った。pVE108の
バルナーゼ遺伝子のコーディング領域に対応する部分の
配列を配列番号1に示す。また、反応条件は次の通りで
ある。すなわち、10mM Tris-HCl(pH9.5)、50mM KCl、
2mM MgCl2、それぞれ1mMのdNTP、10ngの鋳型DNA、0.5un
itsのTaq DNAポリメラーゼ中で、 94℃1分、57℃1
分、72℃1分を、50サイクル行った。
【0027】反応後、増幅産物をアガロースゲル電気泳
動(2% SeaKem GTG agarose, 1xTAE)で分離、DEAE-セ
ルロース法(村松正実編「ラボマニュアル遺伝子工学」
丸善、1988 pp111)により精製したものを鋳型に、上記
の条件で再びPCR反応をおこなった。
動(2% SeaKem GTG agarose, 1xTAE)で分離、DEAE-セ
ルロース法(村松正実編「ラボマニュアル遺伝子工学」
丸善、1988 pp111)により精製したものを鋳型に、上記
の条件で再びPCR反応をおこなった。
【0028】変異導入バルナーゼ遺伝子断片のプラスミ
ドベクターへのライゲーション 反応産物を常法によりSacI、XbaIで消化後、アガロース
ゲル電気泳動で精製し、挿入断片を調製した。この挿入
断片を大腸菌へ導入するためのプラスミドは適宜選択で
きるか、たとえばプラスミドpHM1を用いることができ
る。プラスミドpHM1は、プラスミドpBR322のEcoRI部位
を切断した後T4 DNAポリメラーゼ(宝酒造)を用いて平
滑化後、その制限酵素部位にpUC18からPvuIIで切り出し
たlacZの発現カセット(322bp)を同様に平滑化した後
組み込むことによって作製されたプラスミドである。
ドベクターへのライゲーション 反応産物を常法によりSacI、XbaIで消化後、アガロース
ゲル電気泳動で精製し、挿入断片を調製した。この挿入
断片を大腸菌へ導入するためのプラスミドは適宜選択で
きるか、たとえばプラスミドpHM1を用いることができ
る。プラスミドpHM1は、プラスミドpBR322のEcoRI部位
を切断した後T4 DNAポリメラーゼ(宝酒造)を用いて平
滑化後、その制限酵素部位にpUC18からPvuIIで切り出し
たlacZの発現カセット(322bp)を同様に平滑化した後
組み込むことによって作製されたプラスミドである。
【0029】プラスミドpHM1をSacI、XbaIで消化した後
さらに仔ウシ小腸アルカリフォスファターゼ(Calf int
estine alkaline phosphstase、宝酒造)により脱リン
酸化して、制限酵素処理プラスミド断片を調製した。変
異バルナーゼ遺伝子を含む上記挿入断片は、Takara Lig
ation Kit ver.1(宝酒造)を用いて制限酵素処理され
たpHM1中にライゲーションした。
さらに仔ウシ小腸アルカリフォスファターゼ(Calf int
estine alkaline phosphstase、宝酒造)により脱リン
酸化して、制限酵素処理プラスミド断片を調製した。変
異バルナーゼ遺伝子を含む上記挿入断片は、Takara Lig
ation Kit ver.1(宝酒造)を用いて制限酵素処理され
たpHM1中にライゲーションした。
【0030】大腸菌への導入とバルナーゼ活性クローン
の選抜 バルナーゼ遺伝子が導入された大腸菌は、たとえば次の
ようにして選抜する。すなわち、バルナーゼの活性によ
り細胞内でmRNAが分解されるため、タンパク質の合成が
低下して、結果として大腸菌の成長が抑制される。した
がって、変異バルナーゼ遺伝子を含まない対照プラスミ
ドで形質転換した大腸菌コロニーと比較してコロニーサ
イズが小さくなることを利用して、バルナーゼ遺伝子に
より形質転換された大腸菌を選択することができる。な
お、野生型バルナーゼ若しくは同等の活性を保持した変
異バルナーゼをpHMに組み込んだ場合には、大腸菌はコ
ロニーを形成できないため、十分に活性の弱まったクロ
ーンのみを選択することが可能である。
の選抜 バルナーゼ遺伝子が導入された大腸菌は、たとえば次の
ようにして選抜する。すなわち、バルナーゼの活性によ
り細胞内でmRNAが分解されるため、タンパク質の合成が
低下して、結果として大腸菌の成長が抑制される。した
がって、変異バルナーゼ遺伝子を含まない対照プラスミ
ドで形質転換した大腸菌コロニーと比較してコロニーサ
イズが小さくなることを利用して、バルナーゼ遺伝子に
より形質転換された大腸菌を選択することができる。な
お、野生型バルナーゼ若しくは同等の活性を保持した変
異バルナーゼをpHMに組み込んだ場合には、大腸菌はコ
ロニーを形成できないため、十分に活性の弱まったクロ
ーンのみを選択することが可能である。
【0031】そこで、変異バルナーゼ遺伝子をライゲー
ションしたプラスミドをエタノール沈殿した後、このプ
ラスミドをGenePulser(BioRad)を用いたエレクトロポ
ーレーション法により、大腸菌LE392株に導入した。導
入手順はBioRad社のマニュアルに従っておこなった。同
様の手順にしたがって、変異バルナーゼを含まない対照
プラスミドも大腸菌LE392株に導入した。
ションしたプラスミドをエタノール沈殿した後、このプ
ラスミドをGenePulser(BioRad)を用いたエレクトロポ
ーレーション法により、大腸菌LE392株に導入した。導
入手順はBioRad社のマニュアルに従っておこなった。同
様の手順にしたがって、変異バルナーゼを含まない対照
プラスミドも大腸菌LE392株に導入した。
【0032】その後、これらの形質転換された大腸菌を
テトラサイクリン(25μg/ml)を含むLB寒天培地にプレ
ーティングし、室温(25℃)で72時間培養後、対照とな
るプラスミドpHM1を導入した大腸菌のコロニーと比較し
てコロニーサイズの小さいコロニーを、変異バルナーゼ
が導入されたプラスミドを含む大腸菌のコロニーとして
選抜した(表1のA)。
テトラサイクリン(25μg/ml)を含むLB寒天培地にプレ
ーティングし、室温(25℃)で72時間培養後、対照とな
るプラスミドpHM1を導入した大腸菌のコロニーと比較し
てコロニーサイズの小さいコロニーを、変異バルナーゼ
が導入されたプラスミドを含む大腸菌のコロニーとして
選抜した(表1のA)。
【0033】バースター遺伝子による変異バルナーゼク
ローンの選抜 バースターは、前述したようにバルナーゼに対して拮抗
作用を有する酵素である。バースターを発現させた大腸
菌中では、バルナーゼの酵素活性が阻害され、バルナー
ゼ存在下ではその活性により分解されるはずのmRNAの分
解を阻害することができる。その結果、バースターを発
現させた大腸菌をバルナーゼ遺伝子を挿入したプラスミ
ドにより形質転換した場合には、その生育が抑制されな
いので、バースターを発現させた大腸菌をバルナーゼ遺
伝子含まない対照プラスミドにより形質転換した場合と
成長速度を比較した場合、その成長速度は両者で大きな
差はなく、したがってコロニーのサイズは大きく変化し
ないと期待される。
ローンの選抜 バースターは、前述したようにバルナーゼに対して拮抗
作用を有する酵素である。バースターを発現させた大腸
菌中では、バルナーゼの酵素活性が阻害され、バルナー
ゼ存在下ではその活性により分解されるはずのmRNAの分
解を阻害することができる。その結果、バースターを発
現させた大腸菌をバルナーゼ遺伝子を挿入したプラスミ
ドにより形質転換した場合には、その生育が抑制されな
いので、バースターを発現させた大腸菌をバルナーゼ遺
伝子含まない対照プラスミドにより形質転換した場合と
成長速度を比較した場合、その成長速度は両者で大きな
差はなく、したがってコロニーのサイズは大きく変化し
ないと期待される。
【0034】この大腸菌は以下のように作成した。R.W.
Hartley, J.Mol.Biol. 202, 913-915:1988に記載のバ
ースター遺伝子をHindIIIとXbaIできりだし、tacプロモ
ーター(de Boer et al., Proc.Natl.Acad.Sci.USA 80,
21-25:1983)とインフレームで結合し、さらにクロラ
ムフェニコール耐性遺伝子(N.K. Alton, and D. Vapne
k, Nature 282, 864-869:1979)とともに(Herrero et
al., J.Bacteriol.172, 6557-6567:1990)に記載のベク
ター上の、転移酵素を欠損したトランスポゾン(defect
ive transposon)の内部に結合し、その後、得られたプ
ラスミドを大腸菌MC1061株へ導入し、このトランスポゾ
ン(バースター遺伝子カセットを含む。)を当該大腸菌
染色体に転移させた。この大腸菌が安定してバースター
遺伝子カセットを維持していることはクロラムフェニコ
ール耐性により確認することが可能である。また大腸菌
MC1061株ではlacI遺伝子が欠損しているため、tacプロ
モーターは常に誘導されており、バースター遺伝子は構
成的(constitutive)に発現することとなる。
Hartley, J.Mol.Biol. 202, 913-915:1988に記載のバ
ースター遺伝子をHindIIIとXbaIできりだし、tacプロモ
ーター(de Boer et al., Proc.Natl.Acad.Sci.USA 80,
21-25:1983)とインフレームで結合し、さらにクロラ
ムフェニコール耐性遺伝子(N.K. Alton, and D. Vapne
k, Nature 282, 864-869:1979)とともに(Herrero et
al., J.Bacteriol.172, 6557-6567:1990)に記載のベク
ター上の、転移酵素を欠損したトランスポゾン(defect
ive transposon)の内部に結合し、その後、得られたプ
ラスミドを大腸菌MC1061株へ導入し、このトランスポゾ
ン(バースター遺伝子カセットを含む。)を当該大腸菌
染色体に転移させた。この大腸菌が安定してバースター
遺伝子カセットを維持していることはクロラムフェニコ
ール耐性により確認することが可能である。また大腸菌
MC1061株ではlacI遺伝子が欠損しているため、tacプロ
モーターは常に誘導されており、バースター遺伝子は構
成的(constitutive)に発現することとなる。
【0035】エレクトロポレーション法により変異バル
ナーゼ遺伝子を挿入断片として含むプラスミド、または
それを含まない対照のプラスミドを大腸菌に導入した
後、これらの大腸菌をIPTG(1mM)、テトラサイクリン
(25μg/mL)を含むLB寒天培地にプレーティングし、25
℃で72時間培養した。その後、変異バルナーゼ遺伝子で
形質転換した大腸菌のコロニーの中から、同時に平板培
養を開始した対照プラスミドpHM1導入大腸菌コロニーと
比較して、コロニーの大きさが変わらないクローン
(“#4-31”と命名)を選抜した(表1のB)。
ナーゼ遺伝子を挿入断片として含むプラスミド、または
それを含まない対照のプラスミドを大腸菌に導入した
後、これらの大腸菌をIPTG(1mM)、テトラサイクリン
(25μg/mL)を含むLB寒天培地にプレーティングし、25
℃で72時間培養した。その後、変異バルナーゼ遺伝子で
形質転換した大腸菌のコロニーの中から、同時に平板培
養を開始した対照プラスミドpHM1導入大腸菌コロニーと
比較して、コロニーの大きさが変わらないクローン
(“#4-31”と命名)を選抜した(表1のB)。
【0036】
【表1】
選抜クローンとコロニーの大きさ (mm)
--------------------------------------------------------------------
選抜クローン pHM1(対照)
--------------------------------------------------------------------
A:E.coli LE392*1 1.77±0.33 2.65±0.47
--------------------------------------------------------------------
B:バースター遺伝子を
発現させたE.coli*2 1.39±0.10 1.55±0.08
--------------------------------------------------------------------
*1:LB寒天プレート(25ug/mL テトラサイクリン)上で28℃、48時間培養後のコ
ロニーの大きさ
*2:LB寒天プレート(25ug/mL テトラサイクリン)上で28℃、24時間培養後のコ
ロニーの大きさ実施例2. 変異バルナーゼ遺伝子の塩基配列の決定
実施例1で選抜した大腸菌から、本発明の目的に適した
クローン化された変異バルナーゼ遺伝子を調製した。ま
ず、実施例1で選抜したクローン#4-31を調製した。次
いでクローン#4-31に組み込まれた変異バルナーゼ遺伝
子断片をKpnI、XbaIで切り出し、同様にKpnI、XbaIで切
断したpUC119のKpnI、XbaIサイトにライゲーションし
た。このプラスミドを大腸菌を用いて増幅させた後、Ta
qポリメラーゼを用いたサイクルシークエンス法を用い
て(Taq Dye Terminator Cycle Sequencing Kit, Appli
ed Biosystems Inc.)、メーカーのプロトコルに従って
反応を行い、次いでApplied Biosystems社製のDNAシー
ケンサー(Model 373A)で配列を解析した。その結果、
配列番号3に示す配列を得た。この配列は、本来のバル
ナーゼ遺伝子のDNA配列と比較して、開始コドンであるA
TGのAから数えて15番目にTの挿入があり、また333番目
のAが欠失している。
クローン化された変異バルナーゼ遺伝子を調製した。ま
ず、実施例1で選抜したクローン#4-31を調製した。次
いでクローン#4-31に組み込まれた変異バルナーゼ遺伝
子断片をKpnI、XbaIで切り出し、同様にKpnI、XbaIで切
断したpUC119のKpnI、XbaIサイトにライゲーションし
た。このプラスミドを大腸菌を用いて増幅させた後、Ta
qポリメラーゼを用いたサイクルシークエンス法を用い
て(Taq Dye Terminator Cycle Sequencing Kit, Appli
ed Biosystems Inc.)、メーカーのプロトコルに従って
反応を行い、次いでApplied Biosystems社製のDNAシー
ケンサー(Model 373A)で配列を解析した。その結果、
配列番号3に示す配列を得た。この配列は、本来のバル
ナーゼ遺伝子のDNA配列と比較して、開始コドンであるA
TGのAから数えて15番目にTの挿入があり、また333番目
のAが欠失している。
【0037】実施例3. 弱毒性変異バルナーゼ遺伝子
を用いた雄性不稔イネの作成 上述したようにpUC119に組み込んだ弱毒性変異バルナー
ゼ遺伝子を、プラスミドを制限酵素XbaI、KpnIで切断し
て利用し、配列番号5に示すプラスミドベクターpTS431
を構築した。pTS431は既知のプラスミドであるpVE108プ
ラスミド(PCT出願国際公開第9213956号)とは以下の点
に相違があるが、葯特異的プロモーターと変異バルナー
ゼ部分を除き、実質的に等価であると考えられる。
を用いた雄性不稔イネの作成 上述したようにpUC119に組み込んだ弱毒性変異バルナー
ゼ遺伝子を、プラスミドを制限酵素XbaI、KpnIで切断し
て利用し、配列番号5に示すプラスミドベクターpTS431
を構築した。pTS431は既知のプラスミドであるpVE108プ
ラスミド(PCT出願国際公開第9213956号)とは以下の点
に相違があるが、葯特異的プロモーターと変異バルナー
ゼ部分を除き、実質的に等価であると考えられる。
【0038】(1) pVE108プラスミドではバルナーゼ
遺伝子(配列番号1)を導入していた部分が、本発明の
pTS431では変異バルナーゼ遺伝子(配列番号3)に変更
されている。
遺伝子(配列番号1)を導入していた部分が、本発明の
pTS431では変異バルナーゼ遺伝子(配列番号3)に変更
されている。
【0039】(2) pVE108プラスミドではタバコ由来
の葯特異的プロモーターを使用していたが、本発明のpT
S431ではイネE1遺伝子(PCT出願国際公開第9213956号)
由来の葯特異的プロモーターに変更している。
の葯特異的プロモーターを使用していたが、本発明のpT
S431ではイネE1遺伝子(PCT出願国際公開第9213956号)
由来の葯特異的プロモーターに変更している。
【0040】(3) 本発明では、バルナーゼ遺伝子の
上流にpVE108プラスミドでは使用されていなかった1376
bpの35S3プロモーター(EP 0344029)を用いている。
上流にpVE108プラスミドでは使用されていなかった1376
bpの35S3プロモーター(EP 0344029)を用いている。
【0041】(4) 本発明では、バルナーゼ遺伝子の
下流部にpVE108プラスミドでは使用されていなかったpJ
D884(PCT出願国際公開第9309218号)から切り出したAg
robacterium T-DNA gene7の下流部由来の配列を用いて
いる。
下流部にpVE108プラスミドでは使用されていなかったpJ
D884(PCT出願国際公開第9309218号)から切り出したAg
robacterium T-DNA gene7の下流部由来の配列を用いて
いる。
【0042】(5) 本発明では、pUC19に由来する部
分からlacZに相当する領域を取り除いている。なお、変
異型ではなく、従来型のバルナーゼ遺伝子を組み込んだ
プラスミド(pTS172)を配列番号4に示す。
分からlacZに相当する領域を取り除いている。なお、変
異型ではなく、従来型のバルナーゼ遺伝子を組み込んだ
プラスミド(pTS172)を配列番号4に示す。
【0043】pTS431(変異バルナーゼ遺伝子導入プラス
ミド、配列番号5)、pTS172(バルナーゼ遺伝子導入プ
ラスミド、配列番号4)から制限酵素EcoRIによりそれ
ぞれ約4.5kbpの断片を切り出し、中間ベクター pSB11
(T. Komari et al., PlantJ. 10(1), 165-174:1996)
の EcoRI 部位に挿入し、さらに相同組換えによりそのT
-DNA 領域をacceptor vector pSB1(T. Komari et al.,
Plant J. 10(1), 165-174:1996)に組み込んだ。この
組換型プラスミド(それぞれpSB1431、pSB1172)をもつ
Agrobacterium tumefaciens LBA4404をイネ(品種アサ
ノヒカリ)の形質転換に用いた。形質転換の方法は、基
本的に樋江井らの方法(Plant J. 6(2),271-282:1994)
に従ったが、構築した雄性不稔遺伝子が選抜マーカーと
してbar遺伝子(phosphinithricine acetyl transferas
eをコードする)を含んでいるので、形質転換の際の選
抜には、形質転換は選抜にphosphinothricine(濃度10m
g/L)を用いた。phosphinothricineは、遺伝子が導入さ
れたカルスを選抜するために用いる。
ミド、配列番号5)、pTS172(バルナーゼ遺伝子導入プ
ラスミド、配列番号4)から制限酵素EcoRIによりそれ
ぞれ約4.5kbpの断片を切り出し、中間ベクター pSB11
(T. Komari et al., PlantJ. 10(1), 165-174:1996)
の EcoRI 部位に挿入し、さらに相同組換えによりそのT
-DNA 領域をacceptor vector pSB1(T. Komari et al.,
Plant J. 10(1), 165-174:1996)に組み込んだ。この
組換型プラスミド(それぞれpSB1431、pSB1172)をもつ
Agrobacterium tumefaciens LBA4404をイネ(品種アサ
ノヒカリ)の形質転換に用いた。形質転換の方法は、基
本的に樋江井らの方法(Plant J. 6(2),271-282:1994)
に従ったが、構築した雄性不稔遺伝子が選抜マーカーと
してbar遺伝子(phosphinithricine acetyl transferas
eをコードする)を含んでいるので、形質転換の際の選
抜には、形質転換は選抜にphosphinothricine(濃度10m
g/L)を用いた。phosphinothricineは、遺伝子が導入さ
れたカルスを選抜するために用いる。
【0044】イネにおいて、野生型バルナーゼ遺伝子を
利用した場合と変異バルナーゼ遺伝子を利用した場合と
を比較すると、形質転換の効率、形態の正常な雄性不稔
形質転換の割合は表2のように変異バルナーゼの導入に
より顕著に改善された。
利用した場合と変異バルナーゼ遺伝子を利用した場合と
を比較すると、形質転換の効率、形態の正常な雄性不稔
形質転換の割合は表2のように変異バルナーゼの導入に
より顕著に改善された。
【0045】
【表2】
形質転換効率
----------------------------------------------------------------------
感染 再分化 PCR陽性 形態の正常な
カルス数 カルス数 系統数*1 雄性不稔系統数
----------------------------------------------------------------------
pSB1172(対照) 2838 83 52/83 9/52 (17.3%)
pSB1431(対照) 787 69 43/45*2 27/28*3 (96.4%)
----------------------------------------------------------------------
*1:PCRによりバルナーゼの断片遺伝子を検出
*2:69系統のうち45系統のみ調査
*3:43系統のうち28系統のみ調査
【0046】
【発明の効果】本発明において、変異により効果を弱め
たバルナーゼ遺伝子を作出し、これを用いた雄性不稔遺
伝子を植物に導入することにより、バースター遺伝子を
用いずに、単一の遺伝子により、好ましくない形質を持
たない雄性不稔植物を効率よく得ることに成功した。
たバルナーゼ遺伝子を作出し、これを用いた雄性不稔遺
伝子を植物に導入することにより、バースター遺伝子を
用いずに、単一の遺伝子により、好ましくない形質を持
たない雄性不稔植物を効率よく得ることに成功した。
【0047】
【配列表】
SEQUENCE LISTING
<110> Japan Tobacco Inc.
<120> 変異バルナーゼ遺伝子およびその形質転換植物
<130> 980687
<160> 7
<210> 1
<211> 343
<212> DNA
<213> Bacillus amyloliquifaciens
<220>
<221> NAME/KEY: CDS
<222> 1..336
<400> 1
atg gta ccg gtt atc aac acg ttt gac ggg gtt gcg gat tat ctt cag 48
Met Val Pro Val Ile Asn Thr Phe Asp Gly Val Ala Asp Tyr Leu Gln
1 5 10 15
aca tat cat aag cta cct gat aat tac att aca aaa tca gaa gca caa 96
Thr Tyr His Lys Leu Pro Asp Asn Tyr Ile Thr Lys Ser Glu Ala Gln
20 25 30
gcc ctc ggc tgg gtg gca tca aaa ggg aac ctt gca gac gtc gct ccg 144
Ala Leu Gly Trp Val Ala Ser Lys Gly Asn Leu Ala Asp Val Ala Pro
35 40 45
ggg aaa agc atc ggc gga gac atc ttc tca aac agg gaa ggc aaa ctc 192
Gly Lys Ser Ile Gly Gly Asp Ile Phe Ser Asn Arg Glu Gly Lys Leu
50 55 60
ccg ggc aaa agc gga cga aca tgg cgt gaa gcg gat att aac tat aca 240
Pro Gly Lys Ser Gly Arg Thr Trp Arg Glu Ala Asp Ile Asn Tyr Thr
65 70 75 80
tca ggc ttc aga aat tca gac cgg att ctt tac tca agc gac tgg ctg 288
Ser Gly Phe Arg Asn Ser Asp Arg Ile Leu Tyr Ser Ser Asp Trp Leu
85 90 95
att tac aaa aca acg gac cat tat cag acc ttt aca aaa atc aga taa 336
Ile Tyr Lys Thr Thr Asp His Tyr Gln Thr Phe Thr Lys Ile Arg
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<210> 6
<211> 37
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer 1
<400> 6
cgttcggctc gatggtaccg gttatcaaca cgtttga 37
<210> 7
<211> 38
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer 2
<400> 7
cctctagatt atctgatttt tgtaaaggtc tgataatg 38
フロントページの続き
(58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名)
C12N 15/09 ZNA
A01H 5/00
BIOSIS/MEDLINE/WPID
S(STN)
SwissProt/PIR/GeneS
eq
GenBank/EMBL/DDBJ/G
eneSeq
Claims (6)
- 【請求項1】 配列番号3で示され、かつ植物中で葯特
異的に発現させたとき当該植物を実質的に雄性不稔化す
ることを特徴とするタンパク質をコードする遺伝子。 - 【請求項2】 配列番号3で示される配列、およびその
上流に存在して葯特異的な発現をもたらすプロモーター
配列を有し、植物ゲノム中に導入されたとき、当該植物
を実質的に雄性不稔化することを特徴とする遺伝子。 - 【請求項3】 請求項1または2に記載の遺伝子を含
み、宿主植物中で該遺伝子を発現することができる組換
えベクター。 - 【請求項4】 請求項1または2に記載の変異バルナー
ゼ遺伝子または請求項3に記載の組換えベクターを用い
て植物を形質転換し、該変異バルナーゼ遺伝子を葯特異
的に発現させることにより当該植物を雄性不稔化する方
法。 - 【請求項5】 変異バルナーゼ遺伝子による植物の形質
転換が、該遺伝子を植物のゲノムへ組み込むことにより
行われる、請求項4の方法。 - 【請求項6】 請求項1または2に記載の遺伝子を導入
した形質転換植物。
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