JP3393855B2 - Monoclonal antibodies, hybridomas, immunoassays and diagnostic kits - Google Patents

Monoclonal antibodies, hybridomas, immunoassays and diagnostic kits

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JP3393855B2 JP2000328766A JP2000328766A JP3393855B2 JP 3393855 B2 JP3393855 B2 JP 3393855B2 JP 2000328766 A JP2000328766 A JP 2000328766A JP 2000328766 A JP2000328766 A JP 2000328766A JP 3393855 B2 JP3393855 B2 JP 3393855B2
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Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【発明の属する技術範囲】本発明は、ヘリコバクター・
ピロリのカタラーゼを抗原とするモノクローナル抗体、
そのモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ、免
疫学的測定法及び診断キットに関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a Helicobacter
A monoclonal antibody whose antigen is Helicobacter pylori catalase,
The present invention relates to a hybridoma producing the monoclonal antibody, an immunological assay method, and a diagnostic kit.

【0002】[0002]

【従来の技術】ヘリコバクター・ピロリ(Helico
bacter pylori)はヒトの胃粘膜に見られ
る細菌である。ヘリコバクター・ピロリへの感染率は、
社会経済状態と密接に関連しており、発展途上国ほど感
染率が高く、先進国ほど感染率が低くなる傾向がある。
しかしながら、日本人の感染率は先進国の中でも際立っ
て高く、40歳以上では80%の人が感染しているとも
言われている。近年、ヘリコバクター・ピロリが胃潰
瘍、十二指腸潰瘍、慢性胃炎、更には胃癌等のさまざま
な胃、十二指腸疾患の原因となりうることが明らかにさ
れてきた。
2. Description of the Related Art Helicobacter pylori
bacterium pylori) is a bacterium found in human gastric mucosa. The infection rate to Helicobacter pylori is
It is closely related to socio-economic conditions, and developing countries tend to have higher infection rates and developed countries tend to have lower infection rates.
However, the infection rate of Japanese people is outstandingly high in developed countries, and it is said that 80% of people over the age of 40 are infected. In recent years, it has been revealed that Helicobacter pylori can cause various gastric and duodenal diseases such as gastric ulcer, duodenal ulcer, chronic gastritis, and gastric cancer.

【0003】ヘリコバクター・ピロリを除菌することに
より、これらの疾患に罹患する可能性を低減できること
が明らかになったために、ヘリコバクター・ピロリの除
菌対象疾患について国際的な議論がなされ、現在では胃
潰瘍、十二指腸潰瘍、胃悪性リンパ腫、早期胃癌切除後
胃等が除菌の適応対象疾患として認知されている。
[0003] Since it was revealed that the susceptibility to these diseases can be reduced by eradicating Helicobacter pylori, the diseases to be eradicated by Helicobacter pylori have been internationally discussed, and now, gastric ulcer is present. , Duodenal ulcer, gastric malignant lymphoma, stomach after resection of early gastric cancer, etc. are recognized as diseases targeted for eradication.

【0004】ヘリコバクター・ピロリの除菌療法が胃、
十二指腸疾患の新しい治療法として認知されるのに伴
い、我が国でも日本消化器病学会により治験ガイドライ
ンが作成され、ヘリコバクター・ピロリ感染の存在診断
と除菌判定法が示された(日本消化器病学会雑誌、96
巻、199−207、1999年)。上記治験ガイドラ
インでは、存在診断は侵襲的検査法である胃部生検組織
の培養、鏡検、ウレアーゼ試験にて行い、除菌判定は胃
部生検組織の培養と鏡検及び非侵襲的検査法である尿素
呼気試験を必須とすることが示されている。また、被験
者が小児である等の特殊な場合、血中抗ヘリコバクター
・ピロリ抗体検査と存在診断とを併用して判定を行うこ
とが示されている。
Helicobacter pylori eradication therapy is for the stomach,
Following the recognition as a new treatment method for duodenal disease, the Japanese Society of Gastroenterology also prepared clinical trial guidelines in Japan, and the diagnosis of Helicobacter pylori infection and the eradication judgment method were presented (Japan Gastroenterological Society. Magazine, 96
Vol., 199-207, 1999). In the above guidelines for clinical trials, the presence diagnosis is performed by the invasive test method of culturing gastric biopsy tissue, microscopic examination, urease test, and the eradication judgment is performed by culturing the gastric biopsy tissue, microscopic examination and non-invasive test. It has been shown that the method urea breath test is mandatory. In addition, in a special case where the subject is a child, it is shown that the determination is performed by using the blood anti-Helicobacter pylori antibody test and the presence diagnosis in combination.

【0005】しかし、これらのヘリコバクター・ピロリ
感染の検査法には以下の問題点がある。侵襲的検査法
は、胃内視鏡の挿入及び生検等により被験者が多大な苦
痛を強いられることとなる。非侵襲的検査法では、被験
者の苦痛は大幅に改善されるが、尿素呼気試験では、検
査前の絶食が必要である。また、尿素呼気試験は、マス
スペクトルや赤外分光高度計等の装置が必要であり、特
定の施設でしか実施できず、コストも高くなるという欠
点がある。抗体検査は、除菌後も血中抗体価が長期にわ
たり高値であるので、除菌判定には適さない。従ってこ
れらの検査に代わる、非侵襲的で且つヘリコバクター・
ピロリ感染を直接、特異的に精度良く検出できる検査方
法が望まれている。
However, these inspection methods for Helicobacter pylori infection have the following problems. In the invasive examination method, a subject suffers great pain due to insertion of a gastroscope, biopsy, and the like. Non-invasive tests significantly reduce subject distress, while the urea breath test requires fasting prior to testing. Further, the urea breath test requires a device such as a mass spectrum or an infrared spectrophotometer, and can be carried out only in a specific facility, and there is a drawback that the cost becomes high. The antibody test is not suitable for eradication because the antibody value in the blood remains high for a long time even after eradication. Therefore, non-invasive and Helicobacter alternatives to these tests
A test method capable of directly and specifically detecting H. pylori infection with high accuracy is desired.

【0006】従来、消化管感染菌の直接検査法として消
化管排泄物、特に糞便からの感染菌の選択培地を用いた
分離培養が行われてきた。しかし、ヘリコバクター・ピ
ロリに関しては数多くの試みにも拘らず、糞便から分離
培養された報告はほとんどない。その理由として、ヘリ
コバクター・ピロリはin vitroで、低温、栄養
欠乏、酸素欠乏等のように環境条件が悪化すると、通常
のらせん状体から培養不能な球状体へ形態変化すること
から、下部消化管においても分離培養不能な球状体に変
化していることが考えられる。
[0006] Conventionally, as a direct test method for gastrointestinal infectious bacteria, separation culture using gastrointestinal excrement, in particular, a selective medium for infectious bacteria from feces has been carried out. However, in spite of many attempts on Helicobacter pylori, there have been few reports of separate culture from feces. The reason for this is that Helicobacter pylori transforms from normal helices into non-culturable spheroids in vitro when environmental conditions such as low temperature, nutrient deficiency, and oxygen deficiency deteriorate in vitro. It is conceivable that even in the case of the above, it has been changed to a spherical body that cannot be separated and cultured.

【0007】一方、抗原抗体反応に基づく免疫学的方法
による糞便からのヘリコバクター・ピロリの直接検出に
関して、ヘリコバクター・ピロリに対するポリクローナ
ル抗体を用いたイムノアッセイにより糞便等の排泄物検
体中のヘリコバクター・ピロリを検出する方法が報告さ
れている(J.Clin.Microbiol.、33
巻、2162−2165、1995年、特開平10−1
0128号公報(特許第3043999号))。
On the other hand, regarding the direct detection of Helicobacter pylori from feces by an immunological method based on the antigen-antibody reaction, the detection of Helicobacter pylori in excrement samples such as feces was detected by an immunoassay using a polyclonal antibody against Helicobacter pylori. Has been reported (J. Clin. Microbiol., 33.
Vol. 2162-2165, 1995, JP-A-10-1
No. 0128 (Patent No. 3043999)).

【0008】しかし、ポリクローナル抗体は、一般に交
差反応性があり、特異性が劣るうえ、抗血清のロット毎
に抗体価や特異性が変動する欠点があるので、ポリクロ
ーナル抗体を用いた診断薬の製造は、本質的に品質管理
が難しいという問題点がある。現実に、特許第3043
999号の特許権者であるメリディアン社により製造さ
れたポリクローナル抗体を用いた糞便中ヘリコバクター
・ピロリ抗原検出キット「HpSA」に関しては、偽陰
性の出現や特異性の低さが問題となっている(Medi
cal Tribune、4−5、1999年6月3日
号;Am.J.Gastroenterol.、94
巻、1830−1833、1999年)。
However, since polyclonal antibodies generally have cross-reactivity and are inferior in specificity, and the antibody titer and specificity vary from lot to lot of antiserum, the production of diagnostic agents using polyclonal antibodies Has a problem that quality control is essentially difficult. Actually, Patent No. 3043
With regard to the fecal Helicobacter pylori antigen detection kit "HpSA" using a polyclonal antibody manufactured by Meridian, which is the patentee of No. 999, the appearance of false negatives and low specificity pose problems ( Medi
cal Tribune, 4-5, June 3, 1999 issue; Am. J. Gastroenterol. , 94
Vol. 1830-1833, 1999).

【0009】これに対して、特開平10−10128号
公報には、ヘリコバクター・ピロリは菌株の変異を起こ
すので、単一の抗原のみとしか反応できないモノクロー
ナル抗体は、ヘリコバクター・ピロリの検出には不適で
あり、逆に、多様な抗原やエピトープに対応し得る点
で、ポリクローナル抗体の方がヘリコバクター・ピロリ
の検出には適していると記載されている。
On the other hand, in Japanese Patent Laid-Open No. 10-10128, Helicobacter pylori causes mutations in the strain. Therefore, a monoclonal antibody capable of reacting with only a single antigen is unsuitable for detecting Helicobacter pylori. On the contrary, it is described that the polyclonal antibody is more suitable for the detection of Helicobacter pylori because it can correspond to various antigens and epitopes.

【0010】[0010]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、上記現状に
鑑み、被験者に苦痛を与えず、特別の装置を必要とせず
に、安価にヘリコバクター・ピロリの感染が診断でき、
また、単一の抗体を用いることにより、交差反応性がな
く特異性に優れ、ロット毎の変動がなく品質管理が容易
であり、更に、単一のモノクローナル抗体を用いた場合
でも優れた感度を有する診断方法を提供することを目的
とするものである。
SUMMARY OF THE INVENTION In view of the above situation, the present invention is capable of diagnosing Helicobacter pylori infection at low cost without causing pain to the subject and requiring no special device.
In addition, by using a single antibody, there is no cross-reactivity and excellent specificity, there is no lot-to-lot variation, and quality control is easy. Furthermore, even when a single monoclonal antibody is used, excellent sensitivity is achieved. It is an object of the present invention to provide a diagnostic method having the above.

【0011】[0011]

【課題を解決するための手段】本発明は、ヘリコバクタ
ー・ピロリのカタラーゼを抗原とするモノクローナル抗
体である。本発明は、また、ヘリコバクター・ピロリの
カタラーゼを抗原とするモノクローナル抗体を産生する
ハイブリドーマである。本発明のモノクローナル抗体の
少なくとも1種を用いて行う免疫学的測定法もまた、本
発明の1つである。本発明のモノクローナル抗体の少な
くとも1種を含む診断キットもまた、本発明の1つであ
る。なお、本明細書において、カタラーゼとは、SDS
等の変性剤で変性・乖離され、立体構造がほどかれたサ
ブユニットに相当するタンパク質を含まないものであ
る。以下に本発明を詳述する。
The present invention is a monoclonal antibody which uses Helicobacter pylori catalase as an antigen. The present invention is also a hybridoma that produces a monoclonal antibody against Helicobacter pylori catalase as an antigen. An immunological assay method using at least one of the monoclonal antibodies of the present invention is also one of the present invention. A diagnostic kit containing at least one of the monoclonal antibodies of the present invention is also part of the present invention. In this specification, catalase means SDS.
It does not contain a protein corresponding to a subunit that has been denatured and dissociated by a denaturing agent such as, and whose three-dimensional structure has been unfolded. The present invention is described in detail below.

【0012】本発明のモノクローナル抗体は、ヘリコバ
クター・ピロリのカタラーゼを抗原とするものである。
本発明のモノクローナル抗体は、本発明のハイブリドー
マにより産生することができ、例えば、本発明のハイブ
リドーマを培養し、その培養液から得ることができる。
しかしながら、本発明のモノクローナル抗体の製造方法
としては特に限定されず、例えば、遺伝子工学的に得ら
れたものであっても、ヘリコバクター・ピロリのカタラ
ーゼと特異的に結合することができる限り本発明の範囲
に含まれるものである。
The monoclonal antibody of the present invention uses Helicobacter pylori catalase as an antigen.
The monoclonal antibody of the present invention can be produced by the hybridoma of the present invention. For example, the monoclonal antibody of the present invention can be obtained by culturing the hybridoma of the present invention.
However, the method for producing the monoclonal antibody of the present invention is not particularly limited, and even if it is obtained by genetic engineering, as long as it can specifically bind to the catalase of Helicobacter pylori, It is included in the range.

【0013】本発明のハイブリドーマは、ヘリコバクタ
ー・ピロリのカタラーゼを抗原とするモノクローナル抗
体を産生するものであって、ヘリコバクター・ピロリで
免疫した動物の脾細胞又はリンパ節細胞と、骨髄腫細胞
とを融合して得られるものである。
The hybridoma of the present invention produces a monoclonal antibody using Helicobacter pylori catalase as an antigen, and is a fusion of splenocytes or lymph node cells of an animal immunized with Helicobacter pylori and myeloma cells. It is obtained by doing.

【0014】本発明のハイブリドーマは、公知の細胞融
合法により作製することができる。即ち、ヘリコバクタ
ー・ピロリを免疫原としてヒト以外の動物を免疫し、そ
の脾細胞又はリンパ節細胞と骨髄腫細胞とを融合させて
ハイブリドーマを作製し、その中からヘリコバクター・
ピロリを認識するモノクローナル抗体を産生するハイブ
リドーマを選択することにより本発明のハイブリドーマ
を得ることができる。
The hybridoma of the present invention can be produced by a known cell fusion method. That is, a non-human animal is immunized with Helicobacter pylori as an immunogen, and its spleen cells or lymph node cells are fused with myeloma cells to prepare hybridomas, from which Helicobacter
The hybridoma of the present invention can be obtained by selecting a hybridoma that produces a monoclonal antibody that recognizes H. pylori.

【0015】上記免疫原としては、ヘリコバクター・ピ
ロリのカタラーゼを含有するものであれば特に限定され
ず、例えば、ヘリコバクター・ピロリの菌株を適当な培
地で培養して得られる培養物、らせん状体の菌体、球状
体の菌体、これらの菌体の破砕物、溶解物、抽出物、こ
れらを分画したもの等を挙げることができる。上記菌体
は、死菌体であっても、生菌体であってもよい。
The above-mentioned immunogen is not particularly limited as long as it contains Helicobacter pylori catalase. For example, a culture obtained by culturing a Helicobacter pylori strain in an appropriate medium, or a helical form. Examples thereof include bacterial cells, spherical bacterial cells, crushed products of these bacterial cells, lysates, extracts, and fractionated products thereof. The cells may be dead cells or live cells.

【0016】上記カタラーゼとしては特に限定されず、
例えば、失活したもの、一部の立体構造が壊れているも
の、一部が欠損したもの等であってもよいが、4個のサ
ブユニットを有するものが好ましく、Nativeなも
のがより好ましい。なお、本明細書において、Nati
veな酵素とは、ほぼ生理的な条件でとっている固有の
構造を保持しているものを指し、全てのサブユニットを
有し、かつ、活性を有しているものをいう。
The catalase is not particularly limited,
For example, it may be inactivated, partially broken in three-dimensional structure, partially deleted, etc., but preferably has 4 subunits, and more preferably is native. In addition, in this specification, Nati
The ve enzyme refers to an enzyme that retains a unique structure taken under almost physiological conditions, has all subunits, and is active.

【0017】上記免疫原のなかでも、球状体の菌体の破
砕物が好ましい。ヘリコバクター・ピロリはin vi
troでは低温、栄養欠乏、酸素欠乏等のように環境条
件が悪化すると、通常のらせん状体から培養不能な球状
体へ形態変化するので、消化管排泄物中においても分離
培養不能な球状体に変化していると考えられる。また、
ヘリコバクター・ピロリの菌体は下部消化管では破砕さ
れた状態であると考えられる。
Among the above immunogens, a crushed product of spherical bacterial cells is preferable. Helicobacter pylori is in vi
In tro, when environmental conditions such as low temperature, nutrient deficiency, and oxygen deficiency deteriorate, the morphology of normal helices changes to non-culturable spheroids. It is considered to be changing. Also,
The cells of Helicobacter pylori are considered to have been disrupted in the lower digestive tract.

【0018】上記免疫原として用いるヘリコバクター・
ピロリの菌株種としては特に限定されず、例えば、標準
菌株であるATCC43504株、NCTC11638
等を挙げることができ、更に感染者から採取した他の株
であってもよい。上記免疫原として用いるヘリコバクタ
ー・ピロリの遺伝子型も特に限定されず、例えば、va
cAやcagAを有していても有していなくてもよく、
更に、vacAがS1a、S1b、S2のいずれの配列
を有していてもよく、m1、m2のどちらの配列を有し
ていてもよい。
Helicobacter used as the immunogen
The strain species of Helicobacter pylori is not particularly limited, and examples thereof include standard strains ATCC43504 strain and NCTC11638.
Etc., and other strains collected from infected persons may be used. The genotype of Helicobacter pylori used as the immunogen is not particularly limited, and examples thereof include va
may or may not have cA and cagA,
Further, vacA may have any sequence of S1a, S1b and S2, and may have any sequence of m1 and m2.

【0019】本発明のハイブリドーマを作製するために
用いる被免疫動物としては特に限定されず、例えば、ヤ
ギ、ヒツジ、モルモット、マウス、ラット、ウサギ等を
挙げることができるが、なかでもマウスが好ましい。
The immunized animal used for producing the hybridoma of the present invention is not particularly limited, and examples thereof include goat, sheep, guinea pig, mouse, rat, rabbit, etc., among which mouse is preferable.

【0020】上記被免疫動物を免疫する方法としては、
公知の方法を用いることができ、例えば、マウスを免疫
する場合、1回に1〜100μg、好ましくは50〜1
00μgの免疫用抗原を等容量(0.1mL)の生理食
塩水及びフロイントの完全アジュバント又はRIBIア
ジュバントシステムで乳化して、上記被免疫動物の背
部、腹部の皮下又は腹腔内に2〜3週毎に3〜6回接種
する方法等を挙げることができる。
As a method for immunizing the immunized animal,
Known methods can be used, for example, when immunizing a mouse, 1 to 100 μg, preferably 50 to 1 at a time.
Emulsify 00 μg of the immunizing antigen with an equal volume (0.1 mL) of physiological saline and Freund's complete adjuvant or RIBI adjuvant system, and subcutaneously or intraperitoneally in the back or abdomen of the immunized animal every 2-3 weeks. And a method of inoculating 3 to 6 times.

【0021】本発明においては、上記被免疫動物を免疫
後、抗体価の高い個体を選び、最終免疫3〜5日後に脾
臓又はリンパ節を摘出し、公知の細胞融合法に従って、
融合促進剤の存在下で、これらの組織に含まれる抗体産
生細胞を骨髄腫細胞と融合させることができる。
In the present invention, after immunizing the above-mentioned immunized animal, an individual with a high antibody titer is selected, and 3 to 5 days after the final immunization, the spleen or lymph node is removed, and a known cell fusion method is used.
The antibody-producing cells contained in these tissues can be fused with myeloma cells in the presence of the fusion promoter.

【0022】上記融合促進剤としては特に限定されず、
例えば、ポリエチレングリコール(以下、PEGとい
う)や、センダイウイルス等を挙げることができるが、
好ましくはPEGが用いられる。
The fusion promoter is not particularly limited,
For example, polyethylene glycol (hereinafter referred to as PEG), Sendai virus and the like can be mentioned.
Preferably PEG is used.

【0023】上記骨髄腫細胞としては特に限定されず、
例えば、P3U1、NS−1、P3x63.Ag8.6
53等のマウス由来の細胞;AG1、AG2等のラット
由来の細胞等を挙げることができる。
The myeloma cells are not particularly limited,
For example, P3U1, NS-1, P3x63. Ag 8.6
Examples thereof include mouse-derived cells such as 53; and rat-derived cells such as AG1 and AG2.

【0024】上記細胞融合法としては特に限定されず、
例えば、脾細胞と骨髄腫細胞とを1:1〜10:1の比
率で混合し、これに分子量1,000〜6,000のP
EGを10〜80%の濃度で添加し、20〜37℃、好
ましくは30〜37℃で3〜10分間インキュベートす
る方法等を挙げることができる。
The above cell fusion method is not particularly limited,
For example, spleen cells and myeloma cells are mixed at a ratio of 1: 1 to 10: 1, and P having a molecular weight of 1,000 to 6,000 is added to the mixture.
Examples include a method of adding EG at a concentration of 10 to 80%, and incubating at 20 to 37 ° C, preferably 30 to 37 ° C for 3 to 10 minutes.

【0025】本発明において、ヘリコバクター・ピロリ
を認識するモノクローナル抗体を産生するハイブリドー
マの選択は、例えば、ハイブリドーマのみが生育できる
HAT培地等の選択培地で培養し、ハイブリドーマ培養
上清中の抗体活性を固相酵素免疫測定法(ELISA)
等の方法を用いて測定することにより行うことができ
る。更に、本発明において、ヘリコバクター・ピロリを
認識するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ
の樹立は、例えば、ヘリコバクター・ピロリを認識する
モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマに対し、
限界希釈等の方法によりクローニングを繰り返すことに
より行うことができる。
In the present invention, selection of hybridomas producing a monoclonal antibody that recognizes Helicobacter pylori is carried out by culturing in a selective medium such as HAT medium in which only the hybridoma can grow, and fixing the antibody activity in the hybridoma culture supernatant. -Phase enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA)
It can be performed by measuring using a method such as. Furthermore, in the present invention, the establishment of a hybridoma that produces a monoclonal antibody that recognizes Helicobacter pylori, for example, for a hybridoma that produces a monoclonal antibody that recognizes Helicobacter pylori,
It can be performed by repeating cloning by a method such as limiting dilution.

【0026】本発明のハイブリドーマとしては、例え
ば、21G2(受託番号FERM BP−7336)、
41A5(受託番号FERM BP−7337)、及
び、82B9(受託番号FERM BP−7338)を
挙げることができる。これらのハイブリドーマは、平成
11年10月14日に通商産業省工業技術院生命工学工
業技術研究所(日本国茨城県つくば市東1丁目1番3
号)に寄託(原寄託)されたものであり、平成12年1
0月23日に原寄託である微工研菌寄第P−17604
(21G2)、P−17605(41A5)、及び、P
−17606(82B9)より、それぞれ移管されたも
のである。
The hybridoma of the present invention includes, for example, 21G2 (accession number FERM BP-7336),
41A5 (accession number FERM BP-7337) and 82B9 (accession number FERM BP-7338) can be mentioned. These hybridomas were found on October 14, 1999 by the Institute of Biotechnology, Ministry of International Trade and Industry, Institute of Biotechnology (1-3, Higashi, Tsukuba, Ibaraki, Japan).
No.) deposited (original deposit)
Microdevelopment microorganism contribution No. P-17604 deposited on October 23
(21G2), P-17605 (41A5), and P
-17606 (82B9), respectively.

【0027】本発明のモノクローナル抗体を大量に調製
する方法としては特に限定されず、例えば、あらかじめ
プリスタンを投与したマウスの腹腔にハイブリドーマを
移植して、回収した腹水から得る方法等を挙げることが
できる。腹水中の本発明のモノクローナル抗体は、プロ
テインAやプロテインGカラム等を使用する公知の方法
等により精製することができる。
The method for preparing a large amount of the monoclonal antibody of the present invention is not particularly limited, and examples thereof include a method in which a hybridoma is transplanted into the abdominal cavity of a mouse to which pristane has been administered in advance, and which is obtained from the collected ascites fluid. . The monoclonal antibody of the present invention in ascites can be purified by a known method using a protein A or protein G column or the like.

【0028】本発明のモノクローナル抗体は、カタラー
ゼを抗原とするものである。上記カタラーゼとしてはエ
ピトープが保持されているものであれば特に限定され
ず、例えば、失活したもの、一部の立体構造が壊れてい
るもの、一部が欠損したもの等であってもよいが、4個
のサブユニットを有するものが好ましく、Native
なものがより好ましい。なお、上記カタラーゼは、変異
等を有するものも含むものである。
The monoclonal antibody of the present invention uses catalase as an antigen. The catalase is not particularly limited as long as it retains an epitope, and may be, for example, inactivated, partially sterically damaged, partially deficient, or the like. Those having 4 subunits are preferred, Native
More preferred. The catalase includes those having mutations and the like.

【0029】上記カタラーゼを産生するヘリコバクター
・ピロリの菌株種としては特に限定されない。また、上
記カタラーゼを産生するヘリコバクター・ピロリの遺伝
子型としても特に限定されず、例えば、vacAやca
gAを有していても有していなくてもよく、更に、va
cAがS1a、S1b、S2のいずれの配列を有してい
てもよく、m1、m2のどちらの配列を有していてもよ
い。
The strain species of Helicobacter pylori producing the above catalase is not particularly limited. The genotype of Helicobacter pylori that produces the above catalase is not particularly limited, and examples thereof include vacA and ca.
It may or may not have gA.
cA may have any sequence of S1a, S1b and S2, and may have any sequence of m1 and m2.

【0030】上記カタラーゼを産生するヘリコバクター
・ピロリの形態としては特に限定されず、例えば、らせ
ん状体のヘリコバクター・ピロリ、球状体のヘリコバク
ター・ピロリを挙げることができる。
The form of Helicobacter pylori which produces the above-mentioned catalase is not particularly limited, and examples thereof include a helical Helicobacter pylori and a spherical Helicobacter pylori.

【0031】本発明のモノクローナル抗体のクラス・サ
ブクラスとしては特に限定されず、IgG、Ig
、IgG、IgG、IgM、IgE、Ig
、IgA、IgDのいずれであってもよく、ま
た、L鎖も特に限定されず、λ鎖であっても、κ鎖であ
ってもよい。
The class / subclass of the monoclonal antibody of the present invention is not particularly limited, and IgG 1 , Ig
G 2 , IgG 3 , IgG 4 , IgM, IgE, Ig
It may be any of A 1 , IgA 2 , and IgD, and the L chain is not particularly limited, and may be a λ chain or a κ chain.

【0032】また、本発明のモノクローナル抗体として
はヘリコバクター・ピロリのカタラーゼと特異的に結合
することができるものであれば特に限定されず、例え
ば、本発明のモノクローナル抗体の分解物であるF(a
b′)、Fab′、Fabや、キメラ抗体であっても
よい。
Further, the monoclonal antibody of the present invention is not particularly limited as long as it can specifically bind to Helicobacter pylori catalase, and for example, F (a) which is a degradation product of the monoclonal antibody of the present invention.
b ′) 2 , Fab ′, Fab, or a chimeric antibody.

【0033】上述の、21G2(受託番号FERM B
P−7336)、41A5(受託番号FERM BP−
7337)、及び、82B9(受託番号FERM BP
−7338)のハイブリドーマが産生するモノクローナ
ル抗体(以下、それぞれモノクローナル抗体21G2、
モノクローナル抗体41A5、モノクローナル抗体82
B9ともいう)は、ヘリコバクター・ピロリのNati
veなカタラーゼを認識するものである。
The above-mentioned 21G2 (accession number FERM B
P-7336), 41A5 (accession number FERM BP-
7337) and 82B9 (accession number FERM BP
-7338) produced by the hybridoma (hereinafter, referred to as monoclonal antibody 21G2,
Monoclonal antibody 41A5, monoclonal antibody 82
(Also called B9) is the Helicobacter pylori Nati
It recognizes ve catalase.

【0034】本発明者らが、モノクローナル抗体21G
2、モノクローナル抗体41A5、及び、モノクローナ
ル抗体82B9をそれぞれ用いてヘリコバクター・ピロ
リの菌体破砕物に対して抗体固定アフィニティークロマ
トグラフィーを行ったところ、ヘリコバクター・ピロリ
の菌体破砕物に含まれていた270kDaの分子量を有
するタンパク質が検出された。このタンパク質に対して
SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動を行ったとこ
ろ59kDaの分子量を有する単一のバンドが検出され
た。また、このタンパク質のN末端のアミノ酸配列を調
べたところヘリコバクター・ピロリのカタラーゼのアミ
ノ酸配列と一致した。ヘリコバクター・ピロリのカタラ
ーゼは200kDaの分子量を有し、50kDaの分子
量を有するサブユニットが4個集合した4量体の構造を
有することが知られている(J.Gen.Microb
iol.(1991),137,57−61)。
The present inventors have confirmed that the monoclonal antibody 21G
2, the monoclonal antibody 41A5 and the monoclonal antibody 82B9 were used to carry out antibody-immobilized affinity chromatography on the lysate of Helicobacter pylori, which revealed that the 270 kDa contained in the lysate of Helicobacter pylori. A protein having a molecular weight of was detected. When this protein was subjected to SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, a single band having a molecular weight of 59 kDa was detected. In addition, when the N-terminal amino acid sequence of this protein was examined, it coincided with the amino acid sequence of Helicobacter pylori catalase. Helicobacter pylori catalase has a molecular weight of 200 kDa and is known to have a tetrameric structure in which four subunits having a molecular weight of 50 kDa are assembled (J. Gen. Microb.
iol. (1991), 137, 57-61).

【0035】従って、以上の結果より、モノクローナル
抗体21G2、モノクローナル抗体41A5、及び、モ
ノクローナル抗体82B9が検出したタンパク質は4個
のサブユニットを有するヘリコバクター・ピロリのカタ
ラーゼであると同定され、上記の各モノクローナル抗体
は、4個のサブユニットを有するカタラーゼを認識する
ものであることが明らかとなった。
Therefore, from the above results, the proteins detected by the monoclonal antibody 21G2, the monoclonal antibody 41A5, and the monoclonal antibody 82B9 were identified as Helicobacter pylori catalase having four subunits, and each of the above monoclonals was identified. It was revealed that the antibody recognizes a catalase having four subunits.

【0036】上記抗体固定アフィニティークロマトグラ
フィーで検出されたカタラーゼの活性を測定したとこ
ろ、活性を有しており、このカタラーゼがいわゆるNa
tiveな酵素であったことも判明した。なお、モノク
ローナル抗体21G2、モノクローナル抗体41A5、
及び、モノクローナル抗体82B9はいずれも、解離し
たカタラーゼのサブユニットとは反応しなかった。
The activity of catalase detected by the above-mentioned antibody-immobilized affinity chromatography was measured and found to be active.
It was also found to be a live enzyme. In addition, the monoclonal antibody 21G2, the monoclonal antibody 41A5,
Neither of the monoclonal antibodies 82B9 reacted with the dissociated subunit of catalase.

【0037】ヘリコバクター・ピロリの菌体中の総タン
パク質のうちカタラーゼの占める割合は、J.Gen.
Microbiol.(1991),137,57−6
1に記載されたカタラーゼの精製過程における比活性の
上昇度から概算して、重量換算でたかだか0.5%であ
る。この点に鑑みると、モノクローナル抗体21G2、
モノクローナル抗体41A5、及び、モノクローナル抗
体82B9が、4個のサブユニットを有するカタラーゼ
を認識するものであったということは驚くべきことであ
り、到底予見しえない事項であった。
The proportion of catalase in the total protein in the cells of Helicobacter pylori is as described in J. Gen.
Microbiol. (1991), 137, 57-6.
Estimated from the degree of increase in specific activity in the purification process of catalase described in 1 above, it is at most 0.5% in terms of weight. In view of this point, the monoclonal antibody 21G2,
It was surprising that the monoclonal antibody 41A5 and the monoclonal antibody 82B9 recognized catalase having four subunits, which was an unexpected matter.

【0038】カタラーゼは異なる種の間でも極めてよく
保存されており、ヘリコバクター・ピロリのカタラーゼ
も他の細菌のカタラーゼと相同性が高いことが知られて
いる(J.Bacteriol.(1996),178
(23),6960−6967)。しかしながら、モノ
クローナル抗体21G2、モノクローナル抗体41A
5、及び、モノクローナル抗体82B9は、実施例3に
示したとおり、ヘリコバクター・ピロリ以外の細菌のカ
タラーゼとは全く反応しなかった。
Catalase is extremely well conserved among different species, and Helicobacter pylori catalase is known to have high homology with other bacterial catalase (J. Bacteriol. (1996), 178).
(23), 6960-6967). However, monoclonal antibody 21G2, monoclonal antibody 41A
As shown in Example 3, 5 and the monoclonal antibody 82B9 did not react with catalase of bacteria other than Helicobacter pylori at all.

【0039】また、ヘリコバクター・ピロリには多様な
変異株が存在することが知られているが(Molecu
lar Microbiology(1996),2
0,833−842)、驚くべきことに、モノクローナ
ル抗体21G2、モノクローナル抗体41A5、及び、
モノクローナル抗体82B9は、実施例3に示したとお
り、いずれのヘリコバクター・ピロリに対しても良好に
反応した。
It is known that there are various mutant strains of Helicobacter pylori (Molecu.
lar Microbiology (1996), 2
0,833-842), surprisingly, monoclonal antibody 21G2, monoclonal antibody 41A5, and
As shown in Example 3, the monoclonal antibody 82B9 reacted well with any Helicobacter pylori.

【0040】本発明のモノクローナル抗体がヘリコバク
ター・ピロリの多様な変異株に対して良好に反応するこ
とに鑑みると、本発明のモノクローナル抗体が認識する
エピトープは変異株同士のカタラーゼの間で極めてよく
保存されている部位であると思われる。
Considering that the monoclonal antibody of the present invention reacts well with various mutant strains of Helicobacter pylori, the epitope recognized by the monoclonal antibody of the present invention is extremely well conserved among the catalase mutants. It seems to be a part that is being done.

【0041】以下に詳述するように、本発明のモノクロ
ーナル抗体は、糞便を検体として、極めて高い精度でヘ
リコバクター・ピロリへの感染の有無を判定することが
できるものである。
As described in detail below, the monoclonal antibody of the present invention can determine the presence or absence of infection with Helicobacter pylori with extremely high accuracy using feces as a sample.

【0042】モノクローナル抗体21G2、モノクロー
ナル抗体41A5、及び、モノクローナル抗体82B9
を用いて、糞便を検体として免疫学的測定を行ったとこ
ろ、上記の各モノクローナル抗体はヘリコバクター・ピ
ロリに感染している被験者の糞便のみと反応した。これ
により、ヘリコバクター・ピロリに感染している被験者
の糞便中には、4個のサブユニットを有するヘリコバク
ター・ピロリのカタラーゼが存在していることが明らか
になった。糞便中に存在するヘリコバクター・ピロリの
カタラーゼがサブユニットごとに解離したものではな
く、4個のサブユニットを保有するものであるというこ
とは今まで全く知られておらず、このことは、通常タン
パク質は消化管中でタンパク質分解酵素により分解され
てしまうことに鑑みても全く驚くべきことである。
Monoclonal antibody 21G2, monoclonal antibody 41A5, and monoclonal antibody 82B9
When the immunological measurement was carried out using stool as a sample, each of the above monoclonal antibodies reacted only with the stool of a subject infected with Helicobacter pylori. This revealed that the feces of a subject infected with Helicobacter pylori contained a Helicobacter pylori catalase having four subunits. It has not been known at all until now that Helicobacter pylori catalase present in feces does not have dissociated subunits, but possesses four subunits. Is surprising in view of the fact that it is degraded by proteolytic enzymes in the digestive tract.

【0043】また、ヘリコバクター・ピロリの感染者の
糞便を試料として、モノクローナル抗体21G2を固定
したカラムを作製し、アフィニティークロマトグラフィ
ーを行い、その溶出画分について、ELISAとカタラ
ーゼ活性測定を行ったところ、カタラーゼ活性と抗原性
とは一致した。
Further, using the feces of a Helicobacter pylori-infected person as a sample, a column on which the monoclonal antibody 21G2 was immobilized was prepared, affinity chromatography was carried out, and ELISA and catalase activity measurement were carried out on the eluate fraction. Catalase activity and antigenicity were in agreement.

【0044】以上のことから、ヘリコバクター・ピロリ
の感染者の糞便中には4個のサブユニットを有し、カタ
ラーゼ活性も有するNativeなカタラーゼが含まれ
ることがわかった。ヘリコバクター・ピロリのカタラー
ゼが消化管内で消化されずに、活性を有するNativ
eな酵素として排出され、糞便中に存在していたという
ことは全く予想できないことであった。
From the above, it was found that the faeces of Helicobacter pylori-infected persons contained native catalase having four subunits and also having catalase activity. Catalase of Helicobacter pylori is active without being digested in the digestive tract
It was completely unpredictable that it was excreted as an e-enzyme and was present in the feces.

【0045】特開平9−322772号公報及びInf
ect.Immun.(1997),65,4668−
4674にはヘリコバクター・ピロリのカタラーゼをS
DS−PAGEにより変性・乖離させて得られた、ほど
けたサブユニットに相当するタンパク質と反応するモノ
クローナル抗体が開示されている。しかしながら、これ
らのモノクローナル抗体が、Nativeな、立体構造
を保持し活性を有するカタラーゼと反応するか否か、ま
た、糞便等の排泄物検体中のヘリコバクター・ピロリを
検出することができるか否かは不明である。
Japanese Unexamined Patent Publication No. 9-322772 and Inf
ect. Immun. (1997), 65, 4668-
4674 is Helicobacter pylori catalase S
There is disclosed a monoclonal antibody that reacts with a protein corresponding to the unfolded subunit obtained by denaturation / dissociation by DS-PAGE. However, whether or not these monoclonal antibodies react with native, three-dimensionally-retaining and active catalase, and whether or not Helicobacter pylori can be detected in excrement samples such as feces. Unknown.

【0046】これに対して、本発明のモノクローナル抗
体は、採取が容易である糞便等の消化管排泄物中を検体
として用いてヘリコバクター・ピロリへの感染の有無を
認識することができるものである。
On the other hand, the monoclonal antibody of the present invention is capable of recognizing the presence or absence of infection with Helicobacter pylori by using the digestive tract excrement such as feces, which is easy to collect, as a sample. .

【0047】本発明のモノクローナル抗体の用途として
は特に限定されるものではないが、免疫学的測定法にお
いて、ヘリコバクター・ピロリへの感染の判定に用いる
ことができる。
The use of the monoclonal antibody of the present invention is not particularly limited, but it can be used for the determination of infection with Helicobacter pylori in the immunoassay.

【0048】本発明の免疫学的測定法は、本発明のモノ
クローナル抗体のうちの少なくとも1種を用いて行うも
のであり、1種のみを用いても実施することができるも
のである。
The immunoassay method of the present invention is carried out using at least one of the monoclonal antibodies of the present invention, and can be carried out using only one kind.

【0049】一般的に、免疫測定法に用いる抗体として
は、特異性が低く、バックグラウンドが高いポリクロー
ナル抗体よりも、特異性が高く、バックグラウンドが低
いことから、感度に優れるモノクローナル抗体の方が好
ましいとされている。
In general, as an antibody used in an immunoassay, a monoclonal antibody having a high specificity and a low background is superior to a polyclonal antibody having a low specificity and a high background. It is said to be preferable.

【0050】しかしながら、ヘリコバクター・ピロリに
は多様な変異株が存在することが知られており、このた
め、単一のモノクローナル抗体を用いては感染や存在を
検出することが極めて困難であると考えられていた。特
開平10−10128号公報に記載のように、多様な抗
原を有する細菌への感染や、その細菌の存在を検出する
ためには、多様な抗原に対応しうるポリクローナル抗体
の方が適しているという見解もあり、また、複数のモノ
クローナル抗体を併用してヘリコバクター・ピロリを検
出する方法は開示されている(WO00/26671)
が、単一のモノクローナル抗体を用いてヘリコバクター
・ピロリを検出する方法は今まで開発されてはいなかっ
た。
However, it is known that there are various mutant strains of Helicobacter pylori, and therefore it is considered that it is extremely difficult to detect the infection and the presence thereof using a single monoclonal antibody. It was being done. As described in JP-A-10-10128, a polyclonal antibody capable of responding to various antigens is more suitable for detecting infection of bacteria having various antigens and the presence of the bacteria. In addition, a method for detecting Helicobacter pylori using a plurality of monoclonal antibodies in combination has been disclosed (WO00 / 26671).
However, a method for detecting Helicobacter pylori using a single monoclonal antibody has not been developed so far.

【0051】これに対して、驚くべきことに、本発明の
モノクローナル抗体は、1種の抗体のみを用いることに
より極めて優れた精度でヘリコバクター・ピロリを検出
することができるものであった。
On the other hand, surprisingly, the monoclonal antibody of the present invention was able to detect Helicobacter pylori with extremely excellent accuracy by using only one kind of antibody.

【0052】なお、WO00/26671に記載されて
いるモノクローナル抗体は、ウレアーゼ、熱ショックタ
ンパク質、アルカリヒドロペルオキシダーゼ−レダクタ
ーゼ、20kDaのタンパク質(3−デヒドロキナーゼ
2型)、16.9kDaタンパク質(好中球活性化タン
パク質)、及び、33.8kDaタンパク質(フルクト
ース−ビスホスファターゼ−アルドラーゼ)を抗原とす
るものであり、カタラーゼに関しては全く触れられてい
ない。また、WO00/26671に記載されている測
定方法の検出感度は充分なものではなかった。
The monoclonal antibodies described in WO00 / 26671 include urease, heat shock protein, alkaline hydroperoxidase-reductase, 20 kDa protein (3-dehydrokinase type 2), 16.9 kDa protein (neutrophil activity. Protein) and 33.8 kDa protein (fructose-bisphosphatase-aldolase) as antigens, and catalase is not mentioned at all. Further, the detection sensitivity of the measuring method described in WO00 / 26671 was not sufficient.

【0053】本発明の免疫学的測定法としては、例え
ば、酵素免疫測定法(EIA)、固相酵素免疫測定法
(ELISA)、放射線免疫測定法(RIA)、蛍光免
疫測定法(FIA)、ウエスタンブロット法、イムノク
ロマトグラフィー法等を挙げることができる。上記の各
種免疫学的測定法は、競合法やサンドイッチ法等によ
り、標識剤で標識された抗原又は抗体を用い、目的とす
る抗原又は抗体を測定することができるものである。上
記の各種免疫学的測定法のなかでも、ELISA法及び
イムノクロマトグラフィー法が好ましい。
Examples of the immunological assay of the present invention include enzyme immunoassay (EIA), solid-phase enzyme immunoassay (ELISA), radioimmunoassay (RIA), fluorescent immunoassay (FIA), Western blotting, immunochromatography and the like can be mentioned. The various immunological measurement methods described above can measure the target antigen or antibody using an antigen or antibody labeled with a labeling agent by a competitive method or a sandwich method. Among the above various immunological assay methods, the ELISA method and the immunochromatographic method are preferable.

【0054】上記競合法は、例えば、検体中のヘリコバ
クター・ピロリのカタラーゼと、既知の量の標識された
ヘリコバクター・ピロリのカタラーゼとの、本発明のモ
ノクローナル抗体に対する結合の量的な競合反応による
ものである。上記で例示した競合法においては、ヘリコ
バクター・ピロリのカタラーゼを含む検体液に、担体上
に保持された一定量の抗体を加え、更に標識剤で標識し
た一定量のヘリコバクター・ピロリのカタラーゼを加え
る。その後、担体上に保持された標識剤又は担体上に保
持されなかった標識剤の活性を測定する。この際、抗体
と標識された抗原の添加はほぼ同時に行うことが好まし
い。
The above-mentioned competitive method is based on, for example, a quantitative competitive reaction of binding of Helicobacter pylori catalase in a sample with a known amount of labeled Helicobacter pylori catalase to the monoclonal antibody of the present invention. Is. In the competitive method exemplified above, a certain amount of antibody retained on a carrier is added to a sample solution containing Helicobacter pylori catalase, and further a certain amount of Helicobacter pylori catalase labeled with a labeling agent is added. Then, the activity of the labeling agent retained on the carrier or the labeling agent not retained on the carrier is measured. At this time, it is preferable that the antibody and the labeled antigen are added almost simultaneously.

【0055】上記サンドイッチ法は、例えば、固相化さ
れた本発明のモノクローナル抗体と、標識剤で標識され
た本発明のモノクローナル抗体とで、検体中のヘリコバ
クター・ピロリのカタラーゼをサンドイッチするもので
あり、酵素等の標識剤に対する基質等を加え発色等させ
ることにより、検体中のヘリコバクター・ピロリのカタ
ラーゼを検出するものである。
The above sandwich method is, for example, to sandwich Helicobacter pylori catalase in a sample with the immobilized monoclonal antibody of the present invention and the monoclonal antibody of the present invention labeled with a labeling agent. , A substrate for a labeling agent such as an enzyme is added, and color is developed to detect catalase of Helicobacter pylori in a sample.

【0056】上記標識剤としては、125I等の放射性
同位元素(以下、RIと記す)、酵素、酵素基質、発光
物質、蛍光物質、ビオチン、着色物質等を挙げることが
できる。これら標識剤と抗原又は抗体との結合には、マ
レイミド法[J.Biochem.(1976),7
9,233]、活性化ビオチン法[J.Am.Che
m.Soc.(1978),100,3585]、疎水
結合法等が用いられる。
Examples of the labeling agent include radioisotopes such as 125 I (hereinafter referred to as RI), enzymes, enzyme substrates, luminescent substances, fluorescent substances, biotin, coloring substances and the like. The maleimide method [J. Biochem. (1976), 7
9, 233], activated biotin method [J. Am. Che
m. Soc. (1978), 100, 3585], the hydrophobic binding method and the like are used.

【0057】上記酵素としては、例えば、ペルオキシダ
ーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダー
ゼ、グルコースオキシダーゼ等を挙げることができる。
この際用いる基質としては、選択した酵素に適したもの
を選べばよく、例えば、ABTS、ルミノール−H
、o−フェニレンジアミン−H(ペルオキシダ
ーゼ用)、p−ニトロフェニルホスフェート、メチルウ
ンベリフェリルホスフェート、3−(2'−スピロアダ
マンタン)−4−メトキシ−4−(3"−ホスホリルオ
キシ)フェニル−1,2−ジオキセタン(アルカリホス
ファターゼ用)、p−ニトロフェニル−β−D−ガラク
トース、メチルウンベリフェリル−β−D−ガラクトー
ス(β−ガラクトシダーゼ用)等を挙げることができ
る。
Examples of the enzyme include peroxidase, alkaline phosphatase, β-galactosidase, glucose oxidase and the like.
As the substrate used at this time, one suitable for the selected enzyme may be selected, and examples thereof include ABTS and luminol-H 2 O.
2, o-phenylenediamine -H 2 O 2 (for peroxidase), p-nitrophenyl phosphate, methylumbelliferyl phosphate, 3- (2'-spiroadamantane) -4-methoxy-4- (3 "- phosphoryloxy ) Phenyl-1,2-dioxetane (for alkaline phosphatase), p-nitrophenyl-β-D-galactose, methylumbelliferyl-β-D-galactose (for β-galactosidase) and the like can be mentioned.

【0058】上記測定は、4〜40℃で1分〜18時間
反応させ、生じた発色、蛍光量、発光量又は着色量を測
定することにより行うことができ、他にも、4〜40℃
の範囲で加温しながら行ういわゆるレート法を採用して
もよい。
The above-mentioned measurement can be carried out by reacting at 4 to 40 ° C. for 1 minute to 18 hours, and measuring the produced coloration, fluorescence amount, luminescence amount or coloring amount. In addition, 4 to 40 ° C.
A so-called rate method may be employed in which heating is performed within the range.

【0059】上記抗原又は抗体への放射標識は、市販さ
れているボルトンハンター試薬により容易に行うことが
できる。例えば、0.1M炭酸水素ナトリウム水溶液に
溶かした抗原又は抗体溶液にボルトンハンター試薬を加
え1〜2時間後に、G−25の脱塩カラム等を用いて未
反応のボルトンハンター試薬を除去することにより実施
することができる。この他、クロラミンT法やヨードジ
ン法等を採用することにより容易に125Iによる放射
標識を行うことができる。
Radiolabeling to the above-mentioned antigen or antibody can be easily carried out by using a commercially available Bolton Hunter reagent. For example, by adding a Bolton-Hunter reagent to an antigen or antibody solution dissolved in a 0.1 M sodium hydrogencarbonate aqueous solution and after 1 to 2 hours, the unreacted Bolton-Hunter reagent is removed using a G-25 desalting column or the like. It can be carried out. In addition, radiolabeling with 125 I can be easily performed by employing the chloramine T method, the iodozine method, or the like.

【0060】上記発光物質としては、例えば、イソルミ
ノールやアクリジンエステル等を挙げることができ、上
記蛍光物質としては、例えば、フルオレセインやローダ
ミン等を挙げることができる。この際、標識の方法は活
性化エステル法やイソシアネート法を採用することによ
り容易に行うことができる(「酵素免疫測定法」医学書
院、1987年)。上記着色物質としては、例えば、着
色ラテックス粒子、金コロイド等を挙げることができ
る。
Examples of the light emitting substance include isoluminol and acridine ester, and examples of the fluorescent substance include fluorescein and rhodamine. At this time, the labeling method can be easily performed by employing the activated ester method or the isocyanate method (“Enzyme-linked immunosorbent assay”, Medical Shoin, 1987). Examples of the coloring substance include colored latex particles and gold colloid.

【0061】本発明の免疫学的測定法として、上記競合
法を実施するには、例えば、未知量のヘリコバクター・
ピロリのカタラーゼを含有する検体を、公知の手段で物
理的又は化学的に本発明のモノクローナル抗体を結合さ
せた固相に加えて反応させる。また、同時に標識剤で標
識したヘリコバクター・ピロリのカタラーゼの一定量を
加えて反応させる。
To carry out the above-mentioned competitive method as the immunological assay method of the present invention, for example, an unknown amount of Helicobacter
A sample containing Helicobacter pylori catalase is added to the solid phase to which the monoclonal antibody of the present invention is bound by a known means physically or chemically and reacted. At the same time, a certain amount of Helicobacter pylori catalase labeled with a labeling agent is added and reacted.

【0062】本発明の免疫学的測定法として、上記サン
ドイッチ法を実施するには、例えば、未知量のヘリコバ
クター・ピロリのカタラーゼを含有する検体を、公知の
手段で物理的又は化学的に本発明のモノクローナル抗体
を結合させた固相に加えて反応させる。その後標識剤で
標識した本発明のモノクローナル抗体を加えて反応させ
る。
In order to carry out the above-mentioned sandwich method as the immunological assay method of the present invention, for example, a sample containing an unknown amount of Helicobacter pylori catalase is physically or chemically tested by a known method. The reaction is performed by adding to the solid phase bound with the monoclonal antibody of. Then, the monoclonal antibody of the present invention labeled with a labeling agent is added and reacted.

【0063】次いで、いずれの方法においても、必要な
場合には固相をよく洗浄した後で、固相上に結合してい
る標識剤の活性を測定する。上記標識剤がRIである場
合、ウェル・カウンター又は液体シンチレーション・カ
ウンターを用いて測定する。標識剤が酵素である場合、
基質を加えて放置し、比色法又は蛍光法により酵素活性
を測定する。標識剤が蛍光物質、発光物質、着色物質で
あっても、それぞれ公知の方法に従って測定する。
Then, in any method, the solid phase is thoroughly washed, if necessary, and the activity of the labeling agent bound to the solid phase is measured. When the labeling agent is RI, it is measured using a well counter or a liquid scintillation counter. If the labeling agent is an enzyme,
The substrate is added and left to stand, and the enzyme activity is measured by a colorimetric method or a fluorescence method. Even if the labeling agent is a fluorescent substance, a luminescent substance, or a coloring substance, measurement is performed according to known methods.

【0064】本発明の免疫学的測定法は、本発明のモノ
クローナル抗体を用いるものであるので、ヘリコバクタ
ー・ピロリのカタラーゼに特異的に存在するエピトープ
を認識することができ、他の物質を、交差反応を原因と
して誤って検出してしまうことがなく、特異性が極めて
高い測定を行うことができるという極めて優れた特色を
有する。
Since the immunological assay method of the present invention uses the monoclonal antibody of the present invention, it can recognize an epitope specifically present in Helicobacter pylori catalase, and crosses other substances. It has an extremely excellent feature that it is possible to carry out a measurement with extremely high specificity without being erroneously detected due to a reaction.

【0065】本発明の免疫学的測定法を実施するために
本発明の診断キットを用いることができる。本発明の診
断キットは、本発明のモノクローナル抗体の少なくとも
1種を含むものであり、1種のみのモノクローナル抗体
を含むものであってもよい。本発明の診断キットにおい
て用いられる本発明のモノクローナル抗体としては、ヘ
リコバクター・ピロリのカタラーゼを認識するものであ
れば特に限定されず、本発明のモノクローナル抗体の分
解物であるF(ab′)、Fab′、Fab等であっ
てもよい。
The diagnostic kit of the present invention can be used to carry out the immunological assay method of the present invention. The diagnostic kit of the present invention contains at least one kind of the monoclonal antibody of the present invention, and may contain only one kind of monoclonal antibody. The monoclonal antibody of the present invention used in the diagnostic kit of the present invention is not particularly limited as long as it recognizes Helicobacter pylori catalase, and F (ab ′) 2 , which is a degradation product of the monoclonal antibody of the present invention, It may be Fab ′, Fab or the like.

【0066】本発明の診断キットは、ヘリコバクター・
ピロリの菌体又はヘリコバクター・ピロリのカタラーゼ
の存在を免疫学的に検出することができ、ヘリコバクタ
ー・ピロリへの感染を判定するものである。本発明の診
断キットでは、本発明のモノクローナル抗体はあらかじ
め固相化されていてもよく、また、本発明のモノクロー
ナル抗体はあらかじめ上記標識剤で標識されていてもよ
い。
The diagnostic kit of the present invention comprises a Helicobacter
The presence of Helicobacter pylori or Helicobacter pylori catalase can be detected immunologically, and the infection to Helicobacter pylori is determined. In the diagnostic kit of the present invention, the monoclonal antibody of the present invention may be immobilized in advance, or the monoclonal antibody of the present invention may be labeled with the above labeling agent in advance.

【0067】本発明の診断キットにおいて用いる固相と
しては特に限定されず、例えば、ポリスチレン等のポリ
マー、ガラスビーズ、磁性粒子、マイクロプレート、イ
ムノクロマトグラフィー用濾紙、グラスフィルター等の
不溶性担体を挙げることができる。
The solid phase used in the diagnostic kit of the present invention is not particularly limited, and examples thereof include polymers such as polystyrene, glass beads, magnetic particles, microplates, filter paper for immunochromatography, and insoluble carriers such as glass filters. it can.

【0068】本発明の診断キットは、更に他の成分を含
んでいてもよい。上記他の成分としては特に限定され
ず、例えば、標識に用いる酵素、その基質、放射性同位
元素、発光物質、蛍光物質、着色物質、緩衝液、プレー
ト等を挙げることができ、これらとしては上記に掲げた
ものを用いることができる。
The diagnostic kit of the present invention may further contain other components. The above-mentioned other components are not particularly limited, and examples thereof include an enzyme used for labeling, a substrate thereof, a radioisotope, a luminescent substance, a fluorescent substance, a coloring substance, a buffer solution, a plate, and the like. The ones listed can be used.

【0069】本発明の診断キットの形態としては特に限
定されないが、迅速かつ簡便に診断を行うためには本発
明の診断キットの構成成分が一体となった一体型の診断
キットであることが好ましい。上記一体型の診断キット
としては特に限定されず、例えば、カセット型、カート
リッジ型等を挙げることができる。
The form of the diagnostic kit of the present invention is not particularly limited, but for quick and simple diagnosis, it is preferable that the diagnostic kit of the present invention is an integrated diagnostic kit in which the constituent components are integrated. . The integrated diagnostic kit is not particularly limited, and examples thereof include a cassette type and a cartridge type.

【0070】上記カセット型の態様としては、例えば、
イムノクロマトグラフィー法を用い、反応カセット内に
メンブレンが収納されており、そのメンブレン上の一端
(下流側)には本発明のモノクローナル抗体が固相化さ
れており、メンブレン上の逆の一端(上流側)には、展
開液が装着されており、その近傍の下流側には、上記標
識剤の基質が添加されたパッドが配置されており、メン
ブレンの中間部には上記標識剤で標識された本発明のモ
ノクローナル抗体が添加されたパッドが配置されている
態様等を挙げることができる。
Examples of the above cassette type embodiment include:
Using the immunochromatography method, the membrane is housed in the reaction cassette, the monoclonal antibody of the present invention is immobilized on one end (downstream side) of the membrane, and the other end (upstream side) of the membrane is immobilized. ) Is loaded with a developing solution, a pad to which the substrate of the labeling agent is added is arranged on the downstream side in the vicinity thereof, and a book labeled with the labeling agent is provided in the middle part of the membrane. Examples include a mode in which a pad to which the monoclonal antibody of the invention is added is arranged.

【0071】上記に例示したカセット型の態様を有する
診断キットを使用する場合、上記標識剤で標識された本
発明のモノクローナル抗体が添加されたパッド上に検体
を添加し、検体に含まれるヘリコバクター・ピロリのカ
タラーゼと上記標識剤で標識された本発明のモノクロー
ナル抗体との結合体を形成させた後、上記展開液を展開
させると、形成された結合体は本発明のモノクローナル
抗体が固相化されている箇所まで移送され、そこでヘリ
コバクター・ピロリのカタラーゼと上記標識剤で標識さ
れた本発明のモノクローナル抗体と固相化された本発明
のモノクローナル抗体との複合体が形成される。次い
で、上記標識剤と上記基質が反応し、発色等する。この
発色等を感知することによって、ヘリコバクター・ピロ
リへの感染を判定することができる。
When the diagnostic kit having the cassette type embodiment exemplified above is used, the sample is added onto the pad to which the monoclonal antibody of the present invention labeled with the above-mentioned labeling agent is added, and the Helicobacter After forming a conjugate of Helicobacter pylori catalase and the monoclonal antibody of the present invention labeled with the labeling agent, when the developing solution is developed, the formed conjugate is immobilized with the monoclonal antibody of the present invention. A complex of Helicobacter pylori catalase, the monoclonal antibody of the present invention labeled with the above-mentioned labeling agent, and the immobilized monoclonal antibody of the present invention is formed therein. Next, the labeling agent reacts with the substrate to develop color. By detecting this color development or the like, it is possible to determine the infection with Helicobacter pylori.

【0072】検体を充分な量の展開液で希釈してからメ
ンブレン上に滴下する態様を採用する場合は、あらかじ
めメンブレン上に展開液を装着しておかなくともよい。
また、上記標識剤として着色ラテックス粒子等の着色物
質を用いる場合は、基質は不要であり、本発明のモノク
ローナル抗体が固相化されている箇所で上記複合体が形
成されたか否かは、着色物質による着色により判断され
る。
In the case of adopting a mode in which the sample is diluted with a sufficient amount of developing solution and then dropped on the membrane, the developing solution need not be mounted on the membrane in advance.
Further, when using a colored substance such as colored latex particles as the labeling agent, no substrate is required, and whether or not the complex is formed at the position where the monoclonal antibody of the present invention is immobilized is colored. It is judged by the coloring of the substance.

【0073】上記カートリッジ型の態様としては、例え
ば、反応が上記競合法である場合には、複数のウェルを
有するカートリッジであり、(a)本発明のモノクロー
ナル抗体が収納されたウェル、(b)上記標識剤で標識
されたヘリコバクター・ピロリ等を含む液状試薬(例:
バッファー溶液)が収納されたウェル、(c)上記標識
剤の基質を含む液状試薬(例:バッファー溶液)が収納
されたウェル、が一体的に形成されてなるカートリッジ
等を挙げることができ、反応がサンドイッチ法である場
合には、複数のウェルを有するカートリッジであり、
(a)本発明のモノクローナル抗体が固相化された不溶
性担体が収納されたウェル、(b)上記標識剤で標識さ
れた本発明のモノクローナル抗体を含む液状試薬(例:
バッファー溶液)が収納されたウェル、(c)上記標識
剤の基質を含む液状試薬(例:バッファー溶液)が収納
されたウェル、が一体的に形成されてなるカートリッジ
等を挙げることができる。
As the above-mentioned cartridge type embodiment, for example, when the reaction is the above-mentioned competitive method, it is a cartridge having a plurality of wells, (a) a well containing the monoclonal antibody of the present invention, (b) Liquid reagent containing Helicobacter pylori etc. labeled with the above labeling agent (eg:
Examples include a cartridge in which a well containing a buffer solution) and (c) a well containing a liquid reagent (eg, a buffer solution) containing a substrate of the above labeling agent are integrally formed. Is a cartridge having a plurality of wells in the case of sandwich method,
(A) a well containing an insoluble carrier in which the monoclonal antibody of the present invention is immobilized, (b) a liquid reagent containing the monoclonal antibody of the present invention labeled with the above labeling agent (eg:
Examples thereof include a cartridge in which a well containing a buffer solution) and (c) a well containing a liquid reagent (eg, a buffer solution) containing a substrate for the labeling agent are integrally formed.

【0074】上記に例示したカートリッジ型の本発明の
診断キットを使用する場合は、通常、競合法やサンドイ
ッチ法を実施する際と同様に、反応及び測定を行うこと
ができる。本発明の診断キットは、上記競合法と上記サ
ンドイッチ法のいずれの方法を実施するものであっても
よいが、上記サンドイッチ法を実施するものであること
が好ましい。上記サンドイッチ法は、感度が高く、反応
時間が短くてすみ、精度に優れるという利点を有する。
上記サンドイッチ法としてイムノクロマトグラフィー法
を用いると、試験操作が簡便で、結果の判定も目視で容
易に行うことのできるキットを作製することができる。
また、ELISAとして上記サンドイッチ法を用いる
と、測定対象物質の量に依存して酵素反応生成物が生じ
るので、ヘリコバクター・ピロリへの感染が陽性である
場合の発色等を目視で確認できるような系の設定が容易
である。
When the cartridge-type diagnostic kit of the present invention exemplified above is used, the reaction and the measurement can be carried out in the same manner as when carrying out the competitive method or the sandwich method. The diagnostic kit of the present invention may carry out any of the above-mentioned competitive method and the above-mentioned sandwich method, but preferably carries out the above-mentioned sandwich method. The sandwich method has the advantages of high sensitivity, short reaction time, and excellent accuracy.
When the immunochromatography method is used as the sandwich method, it is possible to prepare a kit in which the test operation is simple and the determination of the result can be easily performed visually.
In addition, when the above sandwich method is used as an ELISA, an enzyme reaction product is produced depending on the amount of the substance to be measured, so that a system that allows visual confirmation of color development etc. when Helicobacter pylori infection is positive Is easy to set.

【0075】本発明の診断キットに用いる検体としては
特に限定されず、例えば、胃内容物、胃洗浄液、消化管
排泄物等を挙げることができるが、採取が容易で被験者
への負担が少ない点で糞便等の消化管排泄物が好まし
い。本発明の診断キットは、除菌治療前に感染の有無を
調べるために用いてもよく、除菌治療後にその成否の判
定を行うために用いてもよい。
The sample used in the diagnostic kit of the present invention is not particularly limited, and examples thereof include gastric contents, gastric lavage fluid, gastrointestinal excretion, etc., but it is easy to collect and the burden on the subject is small. Therefore, gastrointestinal excrement such as feces is preferable. The diagnostic kit of the present invention may be used for examining the presence or absence of infection before eradication treatment, and may be used for determining the success or failure of eradication treatment.

【0076】本発明の診断キットは、モノクローナル抗
体を用いるためロット毎の差がなく、検出感度が高く、
偽陰性や偽陽性の問題を生じない。本発明によれば、ヘ
リコバクター・ピロリのカタラーゼを抗原とするモノク
ローナル抗体を用いることによって、検体中の他の物質
による影響を排除できるので、極めて高感度かつ特異的
に、ヘリコバクター・ピロリの存在を検出することがで
きる。また、ヘリコバクター・ピロリのカタラーゼに対
するモノクローナル抗体産生ハイブリドーマが樹立され
たことにより、同一のモノクローナル抗体を半永久的に
製造することが可能となる。本発明のモノクローナル抗
体を用いた診断キットは、消化管排泄物を検体とするこ
とができるので、被験者に苦痛を与えることなく、簡便
かつ効率よくヘリコバクター・ピロリ感染を検出するこ
とができる。また、本発明のモノクローナル抗体を用い
た診断キットは、1種のみのモノクローナル抗体を用い
る場合であっても、極めて優れた精度を呈し、ロット毎
の差がなく、安定しているので、常に特異的かつ精度良
くヘリコバクター・ピロリ感染を検出することができ
る。また、上記診断キットは、測定が簡便であり、医療
現場で非常に有用である。
Since the diagnostic kit of the present invention uses a monoclonal antibody, there is no difference between lots and the detection sensitivity is high,
No false negative or false positive problems occur. According to the present invention, by using a monoclonal antibody whose antigen is Helicobacter pylori catalase, it is possible to eliminate the influence of other substances in the sample, so that the presence of Helicobacter pylori can be detected with extremely high sensitivity and specificity. can do. In addition, the establishment of a monoclonal antibody-producing hybridoma against Helicobacter pylori catalase makes it possible to semi-permanently produce the same monoclonal antibody. Since the diagnostic kit using the monoclonal antibody of the present invention can use gastrointestinal excretion as a sample, Helicobacter pylori infection can be detected easily and efficiently without causing pain to the subject. In addition, the diagnostic kit using the monoclonal antibody of the present invention exhibits extremely excellent accuracy even when only one type of monoclonal antibody is used, is stable because there is no difference between lots, and is therefore unique. The Helicobacter pylori infection can be detected accurately and accurately. In addition, the above-mentioned diagnostic kit is easy to measure and is very useful in the medical field.

【0077】[0077]

【実施例】以下に実施例、試験例を挙げ、本発明を更に
詳細に説明するが、本発明はこれらのみに限定されるも
のではない。
EXAMPLES The present invention will be described in more detail below with reference to Examples and Test Examples, but the present invention is not limited to these.

【0078】実施例1 [モノクローナル抗体の作製] (1)ヘリコバクター・ピロリ球状菌体懸濁液(免疫
原)の調製 5%馬脱繊血を添加したブレインハートインヒュージョ
ン寒天培地(ディフコ社製)上にヘリコバクター・ピロ
リ(ATCC43504)を筋状に画線した。このプレ
ートを37℃微好気性環境下にて3〜4日培養後、更に
37℃嫌気性環境下にて7日間インキュベートし、球状
化させた。得られたコロニーを白金耳等でかきとり、リ
ン酸緩衝生理食塩液(PBS)に懸濁した。4℃にて、
10000×gで10分間遠心分離したヘリコバクター
・ピロリの菌体を0.5%ホルマリンに懸濁し、4℃に
て4日間放置して不活化した。その後、PBSに懸濁
し、4℃にて、10000×gで10分間遠心分離する
操作を3回繰り返し、上記菌体を洗浄した後、PBSに
懸濁した。
Example 1 [Preparation of Monoclonal Antibody] (1) Preparation of Helicobacter pylori Spherical Cell Suspension (Immunogen) Brain Heart Infusion Agar Medium (manufactured by Difco) supplemented with 5% horse defibrinated blood Helicobacter pylori (ATCC 43504) was streaked on the top. After culturing this plate in a microaerobic environment at 37 ° C for 3 to 4 days, the plate was further incubated in an anaerobic environment at 37 ° C for 7 days to be spherical. The obtained colonies were scraped off with a platinum loop or the like, and suspended in phosphate buffered saline (PBS). At 4 ° C
The Helicobacter pylori cells, which had been centrifuged at 10,000 × g for 10 minutes, were suspended in 0.5% formalin and left at 4 ° C. for 4 days to be inactivated. Then, the operation of suspending in PBS and centrifuging at 10,000 × g for 10 minutes at 4 ° C. was repeated 3 times to wash the above-mentioned bacterial cells and then suspend in PBS.

【0079】(2)ヘリコバクター・ピロリ球状菌体破
砕物(免疫原)の調製 (1)で得られた菌体懸濁液を、超音波破砕機(セイコ
ー電子工業社製、Model 7250)を用いて、o
utput 3、50% duty cycleの条件
にて10分間超音波処理して菌体を破砕した。
(2) Preparation of Helicobacter pylori globular microbial cell lysate (immunogen) The microbial cell suspension obtained in (1) was sonicated (Seiko Denshi Kogyo, Model 7250). O
The cells were disrupted by ultrasonication for 10 minutes under the conditions of output 3 and 50% duty cycle.

【0080】(3)免疫及び細胞融合 (1)、(2)にて調製した免疫原(ヘリコバクター・
ピロリ球状菌体懸濁液又はヘリコバクター・ピロリ球状
菌体破砕物)とFreundのコンプリートアジュバン
ト(カルビオケム社製)を当量混合し、オイルエマルジ
ョンとした。これをBALB/cAマウス(日本クレア
社製、6週齢、雌)の背部皮下に0.2mLずつ投与し
た。初回免疫後7日目と14日目に追加免疫を行い、更
に細胞融合3日前に上記免疫原を0.2mLずつ腹腔内
に投与した。最終免疫から3日目のマウス脾細胞を摘出
し、骨髄腫細胞(P3x63.Ag8.653株、RC
B0146、理研ジーンバンク)と10:1の割合で混
合し、50%ポリエチレングリコール4000を用いて
融合した後、HAT培地(ギブコ社製)によりハイブリ
ドーマを選択培養した。
(3) Immunity and cell fusion (1), immunogen prepared in (2) (Helicobacter.
A suspension of Helicobacter pylori or a disrupted product of Helicobacter pylori) and Freund's complete adjuvant (manufactured by Calbiochem) were mixed in an equivalent amount to obtain an oil emulsion. 0.2 mL of this was subcutaneously administered to the back of BALB / cA mice (CLEA Japan, 6 weeks old, female). Booster immunization was performed on the 7th and 14th days after the first immunization, and 0.2 mL of the above immunogen was intraperitoneally administered 3 days before cell fusion. Mouse spleen cells on the third day after the final immunization were extracted, and myeloma cells (P3x63.Ag8.653 strain, RC
B0146, RIKEN GENE BANK) was mixed at a ratio of 10: 1 and fused with 50% polyethylene glycol 4000, and then hybridomas were selectively cultured in HAT medium (manufactured by Gibco).

【0081】(4)ハイブリドーマの選択 細胞融合後12日目に培養上清中の抗体活性をELIS
Aにより測定した。免疫原10μg/mLを固相化した
96穴ELISAプレート(コースター社製)の各穴に
融合細胞の培養上清液200μLを添加し、37℃で1
時間反応後、0.05%Tween20入りPBS(洗
浄液)で洗浄し、ぺルオキシダーゼ標識抗マウスIgG
(Cappel社製、1:20000)200μLを添
加した。37℃で1時間反応後、上記洗浄液で洗浄し
た。洗浄後、基質液(0.1M o−フェニレンジアミ
ンと0.012%過酸化水素水)を各穴に200μLず
つ添加し、室温で15分反応させた。反応後、各穴に
3.5N硫酸を50μLずつ添加し酵素反応を停止し、
492nmにおける吸光値を測定した。吸光値が0.1
5以上を示した、上記免疫原に反応する抗体を産生する
ハイブリドーマクローンを選択した。各クローンを限界
希釈法により2回クローニングを行った。クローニング
後のハイブリドーマをBALB/cAマウスに移植した
結果、腹水として回収できるモノクローナル抗体を産生
したハイブリドーマは32クローンであった。
(4) Selection of hybridoma 12 days after cell fusion, the antibody activity in the culture supernatant was determined by ELIS.
Measured by A. 200 μL of the culture supernatant of fused cells was added to each well of a 96-well ELISA plate (manufactured by Coaster) on which 10 μg / mL of immunogen was immobilized, and the mixture was incubated at 37 ° C.
After reacting for a period of time, it was washed with PBS containing 0.05% Tween 20 (washing solution) and labeled with peroxidase-anti-mouse IgG.
200 μL (manufactured by Cappel, 1: 20,000) was added. After reacting at 37 ° C. for 1 hour, it was washed with the above washing solution. After washing, a substrate solution (0.1 M o-phenylenediamine and 0.012% hydrogen peroxide solution) was added to each well in an amount of 200 μL and reacted at room temperature for 15 minutes. After the reaction, 50 μL of 3.5 N sulfuric acid was added to each well to stop the enzyme reaction,
The absorbance value at 492 nm was measured. Absorbance value is 0.1
Hybridoma clones producing antibodies reactive with the above immunogens, which showed 5 or more, were selected. Each clone was cloned twice by the limiting dilution method. As a result of transplanting the hybridoma after cloning into BALB / cA mice, 32 clones of hybridoma produced a monoclonal antibody that could be collected as ascites fluid.

【0082】実施例2 [サンドイッチELISAによる消化管排泄物中のヘリ
コバクター・ピロリを特異的に認識するモノクローナル
抗体の選択] (1)モノクローナル抗体固相化プレートの作製 32クローンの腹水各1mLをPBSで2倍に希釈し、
飽和硫酸アンモニウム2mLを滴下して4℃で4時間放
置した。その後、3000rpm、20分間遠心分離
し、沈査をPBS2mLに浮遊し透析を行った。これら
のモノクローナル抗体を以下の方法により96穴ELI
SAプレートに固相化した。即ち、各モノクローナル抗
体を5μg/mLに希釈した後、96穴ELISAプレ
ートの各穴に0.2mL加え、4℃で一夜放置した後、
PBSで洗浄した。洗浄後、1%スキムミルク−PBS
を各穴に0.25mL加え、4℃で1時間放置してマス
キングを行った。マスキング後、上記洗浄液で洗浄し
た。
Example 2 [Selection of monoclonal antibody specifically recognizing Helicobacter pylori in digestive tract excretion by sandwich ELISA] (1) Preparation of monoclonal antibody-immobilized plate 1 mL of ascitic fluid of 32 clones each with PBS Dilute 2 times,
2 mL of saturated ammonium sulfate was added dropwise and the mixture was left at 4 ° C. for 4 hours. After that, centrifugation was performed at 3000 rpm for 20 minutes, and the precipitate was suspended in 2 mL of PBS and dialyzed. These monoclonal antibodies were subjected to 96-well ELI by the following method.
It was immobilized on an SA plate. That is, after diluting each monoclonal antibody to 5 μg / mL, 0.2 mL was added to each well of a 96-well ELISA plate and left overnight at 4 ° C.
It was washed with PBS. After washing, 1% skim milk-PBS
0.25 mL was added to each hole, and masking was performed by leaving at 4 ° C. for 1 hour. After masking, it was washed with the above washing solution.

【0083】(2)ビオチン標識モノクローナル抗体の
作製 (1)にて調製した32クローンのモノクローナル抗体
3mgとビオチニル−N−ヒドロキシサクシニミドエス
テル(ザイメッド社製)10mgを混合し、0.1M炭
酸水素ナトリウム(pH8)中、室温で、3時間攪拌し
ながら反応させた。反応液をPBS 5Lに対して4℃
で一夜透析し、ビオチン標識モノクローナル抗体を得
た。
(2) Preparation of Biotin-Labeled Monoclonal Antibody 3 mg of the monoclonal antibody of 32 clones prepared in (1) was mixed with 10 mg of biotinyl-N-hydroxysuccinimide ester (Zymed) and 0.1 M hydrogen carbonate was added. The reaction was carried out in sodium (pH 8) at room temperature with stirring for 3 hours. Reaction solution at 4 ° C against 5 L of PBS
It was dialyzed overnight with to obtain a biotin-labeled monoclonal antibody.

【0084】(3)消化管排泄物中のヘリコバクター・
ピロリを特異的に認識するモノクローナル抗体の選択 尿素呼気試験によりヘリコバクター・ピロリ陽性者及び
陰性者と判定された各1名の糞便検体250mgを0.
1%スキムミルク−PBS 0.5mLに懸濁後、30
00rpmで10分間遠心分離した上清を集め、糞便抽
出液とした。糞便抽出液0.2mLを(1)にて調製し
た各モノクローナル抗体固相化プレートの各穴に添加し
た。37℃で1時間放置後、上記洗浄液にて5回洗浄
し、(2)にて調製した各ビオチン標識モノクローナル
抗体0.2mLを添加した。37℃で1時間放置後、上
記洗浄液にて洗浄し、ぺルオキシダーゼ標識アビジン
0.2mL(ザイメッド社製)を添加した。37℃で1
時間放置後、上記洗浄液にて洗浄後、基質液(0.1M
o−フェニレンジアミンと0.012%過酸化水素
水)を各穴に0.2mLずつ添加し、室温で10分反応
させた。反応後、各穴に3.5N硫酸を50μLずつ添
加し酵素反応を停止し、492nmにおける吸光値を測
定した。結果を表1に示した。
(3) Helicobacter in digestive tract excrement
Selection of Monoclonal Antibody that Recognizes Helicobacter Pylori 250 mg of fecal sample of 1 person each of which was determined to be Helicobacter pylori positive and negative by urea breath test
After suspending in 0.5 mL of 1% skim milk-PBS, 30
The supernatant obtained by centrifugation at 00 rpm for 10 minutes was collected and used as a fecal extract. 0.2 mL of the fecal extract was added to each well of each monoclonal antibody-immobilized plate prepared in (1). After standing at 37 ° C. for 1 hour, the plate was washed 5 times with the above washing solution, and 0.2 mL of each biotin-labeled monoclonal antibody prepared in (2) was added. After standing at 37 ° C. for 1 hour, the plate was washed with the above washing solution, and 0.2 mL of peroxidase-labeled avidin (manufactured by Zymed) was added. 1 at 37 ° C
After leaving for a while, the substrate solution (0.1M
0.2 mL each of o-phenylenediamine and 0.012% hydrogen peroxide solution) was added to each hole, and the mixture was reacted at room temperature for 10 minutes. After the reaction, 50 μL of 3.5 N sulfuric acid was added to each well to stop the enzyme reaction, and the absorbance value at 492 nm was measured. The results are shown in Table 1.

【0085】[0085]

【表1】 [Table 1]

【0086】表1に示した通り、3種のモノクローナル
抗体21G2、41A5、82B9を単独又は組合わせ
たサンドイッチELISAは、ヘリコバクター・ピロリ
感染者の糞便検体に対して高い反応性を示すことがわか
った。各モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ
はそれぞれハイブリドーマ21G2(FERM BP−
7336)、ハイブリドーマ41A5(FERM BP
−7337)、及び、ハイブリドーマ82B9(FER
M BP−7338)として工業技術院生命工学工業技
術研究所に寄託されている。なお、各モノクローナル抗
体のイムノグロブリンサブクラスをイムノグロブリンタ
イピングキットマウス(和光純薬工業社製)により調べ
た結果、3クローン共IgGで、L鎖はκ型であっ
た。
As shown in Table 1, the sandwich ELISA in which three monoclonal antibodies 21G2, 41A5 and 82B9 were used alone or in combination was found to show high reactivity to fecal samples of Helicobacter pylori infected persons. . The hybridoma producing each monoclonal antibody was hybridoma 21G2 (FERM BP-
7336), hybridoma 41A5 (FERM BP
-7337) and hybridoma 82B9 (FER
MBP-7338) has been deposited with the Institute of Biotechnology, Industrial Technology Institute of Industrial Technology. The immunoglobulin subclass of each monoclonal antibody was examined using an immunoglobulin typing kit mouse (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.). As a result, 3 clones were IgG 1 and the L chain was κ type.

【0087】実施例3 [菌株による反応性の比較及び他菌種との反応性] (1)ヘリコバクター・ピロリ菌体懸濁液の調製 5%馬脱繊血を添加したブレインハートインヒュージョ
ン寒天培地上にヘリコバクター・ピロリ(ATCC43
504;東海大学病院臨床分離株No.130、及び、
No.112;兵庫医科大学臨床分離株No.526、
No.4484、No.5017、No.5025、N
o.5049、No.5142、No.5287、N
o.5308、No.5314、及び、No.533
0)を筋状に画線した。このプレートを37℃で3〜4
日間微好気性培養して得られたらせん状菌のコロニー、
又は、更に37℃で嫌気性環境下にて7日間放置して得
られた球状菌のコロニーを白金耳等でかきとり、PBS
に懸濁した。4℃にて、10000×gで10分間遠心
分離した菌体を0.5%ホルマリンに懸濁し、4℃にて
4日間放置して不活化した。その後、PBSに懸濁し、
4℃にて、10000×gで10分間遠心分離する操作
を3回繰り返し、菌体を洗浄した後、再度、PBSに懸
濁し、ヘリコバクター・ピロリらせん状菌体懸濁液及び
球状菌体懸濁液を得た。
Example 3 [Comparison of Reactivity with Strains and Reactivity with Other Bacteria] (1) Preparation of Helicobacter pylori Cell Suspension Brain Heart Infusion Agar Medium supplemented with 5% horse defibrinated blood Helicobacter pylori (ATCC43
504; Tokai University Hospital Clinical Isolate No. 504; 130 and
No. 112; Hyogo College of Medicine clinical isolate No. 526,
No. 4484, No. 5017, No. 5025, N
o. 5049, No. 5142, No. 5287, N
o. 5308, No. 5314, and No. 533
0) was streaked. This plate at 37 ° C for 3-4
Helical fungus colony obtained by microaerobic culture for a day,
Alternatively, a spherical fungus colony obtained by leaving it at 37 ° C in an anaerobic environment for 7 days is scraped off with a platinum loop or the like,
Suspended in. The cells that had been centrifuged at 10,000 × g for 10 minutes at 4 ° C. were suspended in 0.5% formalin and left at 4 ° C. for 4 days to be inactivated. Then, suspend in PBS,
The operation of centrifuging at 10,000 xg for 10 minutes at 4 ° C is repeated 3 times, and after washing the cells, the cells are suspended again in PBS to suspend Helicobacter pylori spiral cell suspension and spherical cell suspension. A liquid was obtained.

【0088】(2)ヒト腸内菌及びキャンピロバクター
・ジェジュニの菌体懸濁液の調製 ヒト糞便から分離される代表的な腸内菌バクテロイデス
・ブルガタス、エシェリヒア・コリの2菌種及びらせん
状菌であるキャンピロバクター・ジェジュニを以下の方
法で培養し、得られたコロニーから(1)と同様の方法
により各菌の菌体懸濁液を調製した。即ち、バクテロイ
デス・ブルガタス(IFO14291)は5%馬脱繊血
を添加したBL寒天培地(日水製薬社製)上で37℃で
2日間、嫌気培養した。エシェリヒア・コリ(ATCC
25922)はブレインハートインヒュージョン寒天培
地上で、37℃で1日間、好気培養した。キャンピロバ
クター・ジェジュニ(80068 東海大学病院臨床分
離株)は5%馬脱繊血を添加したブレインハートインヒ
ュージョン寒天培地上で37℃で2日間微好気培養し
た。
(2) Preparation of bacterial suspension of human intestinal bacterium and Campylobacter jejuni Two typical bacterial species of intestinal bacterium Bacteroides vulgatus and Escherichia coli separated from human feces and spiral form Campylobacter jejuni, which is a bacterium, was cultured by the following method, and a microbial cell suspension of each bacterium was prepared from the obtained colonies by the same method as (1). That is, Bacteroides vulgartus (IFO 14291) was anaerobically cultured at 37 ° C. for 2 days on a BL agar medium (manufactured by Nissui Pharmaceutical Co., Ltd.) supplemented with 5% horse defibrinated blood. Escherichia coli (ATCC
25922) was aerobically cultured on a brain heart infusion agar medium at 37 ° C. for 1 day. Campylobacter jejuni (80068 Tokai University Hospital Clinical Isolate) was microaerobically cultured on Brain Heart Infusion agar medium supplemented with 5% horse defibrinated blood at 37 ° C. for 2 days.

【0089】(3)他のヘリコバクター属の菌体懸濁液
調製 ヘリコバクター・フェリス(ATCC49179)とヘ
リコバクター・ヘパティカス(ATCC51448)と
を5%馬脱繊血を添加したブレインハートインヒュージ
ョン寒天培地上で(1)と同様に培養して、得られたら
せん状菌のコロニーから(1)と同様にしてらせん状菌
体懸濁液を得た。
(3) Preparation of cell suspension of other Helicobacter genus Helicobacter felis (ATCC49179) and Helicobacter hepaticas (ATCC51448) on a Brain Heart Infusion agar medium supplemented with 5% horse defibrinated blood ( Culturing was carried out in the same manner as in 1), and a spiral bacterial cell suspension was obtained in the same manner as in (1) from the obtained colony of spiral fungi.

【0090】(4)菌体破砕物の調製 (1)、(2)及び(3)で得られた各菌体懸濁液を、
超音波破砕機(セイコー電子工業社製、Model 7
250)を用いて、output 3、50%duty
cycleの条件にて10分間超音波処理して菌体を
破砕した。
(4) Preparation of disrupted cell bodies Each cell suspension obtained in (1), (2) and (3) was
Ultrasonic crusher (Seiko Denshi Kogyo, Model 7
250), output 3, 50% duty
The cells were sonicated under cycle conditions for 10 minutes to disrupt the cells.

【0091】(5)サンドイッチELISA (4)で得られた各菌体破砕物(タンパク質濃度10μ
g/mL)0.2mLをそれぞれ、実施例2(3)の方
法によりサンドイッチELISA(モノクローナル抗体
41A5固相化プレート:ビオチン標識モノクローナル
抗体82B9、モノクローナル抗体21G2固相化プレ
ート:ビオチン標識モノクローナル抗体41A5、モノ
クローナル抗体21G2固相化プレート:ビオチン標識
モノクローナル抗体82B9、モノクローナル抗体21
G2固相化プレート:ビオチン標識モノクローナル抗体
21G2、及び、メリディアン社製HpSA)を行っ
た。結果を表2に示した。
(5) Sandwich ELISA Each cell crushed product obtained in (4) (protein concentration 10 μm
g / mL) 0.2 mL of sandwich ELISA (monoclonal antibody 41A5 immobilized plate: biotin-labeled monoclonal antibody 82B9, monoclonal antibody 21G2 immobilized plate: biotin-labeled monoclonal antibody 41A5, respectively) by the method of Example 2 (3). Monoclonal antibody 21 G2 immobilized plate: biotin-labeled monoclonal antibody 82B9, monoclonal antibody 21
G2 immobilized plate: biotin-labeled monoclonal antibody 21G2 and HpSA manufactured by Meridian) were used. The results are shown in Table 2.

【0092】[0092]

【表2】 [Table 2]

【0093】表2に示した通り、モノクローナル抗体2
1G2、41A5、82B9は、ヘリコバクター・ピロ
リの各菌株のらせん状菌体、球状菌体に対して高い反応
性を示すことがわかった。一方、バクテロイデス・ブル
ガタス、エシェリヒア・コリ、キャンピロバクター・ジ
ェジュニ、ヘリコバクター・フェリス、及び、ヘリコバ
クター・ヘパティカスに対しては全く反応しなかった。
これに対して、メリディアン社製HpSAは、ヘリコバ
クター・フェリス、及び、ヘリコバクター・ヘパティカ
スに対して反応性を示した。
As shown in Table 2, monoclonal antibody 2
It was found that 1G2, 41A5, and 82B9 show high reactivity with respect to the helicoidal cells and the spherical cells of each strain of Helicobacter pylori. On the other hand, it did not react at all against Bacteroides burgatas, Escherichia coli, Campylobacter jejuni, Helicobacter felis, and Helicobacter hepaticas.
On the other hand, Meridian HpSA showed reactivity with Helicobacter felis and Helicobacter hepaticas.

【0094】実施例4 [サンドイッチELISAによる糞便検体中ヘリコバク
ター・ピロリの検出(1)]尿素呼気試験の結果、ヘリ
コバクター・ピロリ陽性、陰性であったそれぞれ3名よ
り提供された糞便検体250mgを0.1%スキムミル
ク−PBS 0.5mLに懸濁し、実施例2(3)と同
様の操作にて試験した。また、同じ糞便検体をメリディ
アン社製のHpSA ELISAを用いて操作方法に従
って試験し、450nmの吸光値を測定した。それぞれ
の吸光値及び尿素呼気試験結果を表3に示した。
Example 4 [Detection of Helicobacter pylori in Fecal Samples by Sandwich ELISA (1)] As a result of the urea breath test, 250 mg of fecal samples provided by each of three positive and negative Helicobacter pylori samples were analyzed. The suspension was suspended in 0.5 mL of 1% skim milk-PBS and tested in the same manner as in Example 2 (3). Further, the same stool sample was tested according to the operating method using Meridian HpSA ELISA, and the absorbance value at 450 nm was measured. Table 3 shows the respective absorbance values and the urea breath test results.

【0095】[0095]

【表3】 [Table 3]

【0096】尿素呼気試験結果が陽性であった被験者
(No.4、5、6)より提供された糞便検体は、陰性
検体(No.1、2、3)に比べて著しく高い吸光値を
示すことがわかった。
The fecal specimens provided by the subjects (No. 4, 5, 6) having a positive result of the urea breath test show remarkably high absorbance values as compared with the negative specimens (No. 1, 2, 3). I understood it.

【0097】実施例5 [サンドイッチELISAによる糞便検体中ヘリコバク
ター・ピロリの検出(2)] (1)モノクローナル抗体の調製 ハイブリドーマ21G2をBALB/cAマウスに移植
して回収した腹水5mlをPBSで2倍に希釈し、飽和
硫酸アンモニウム10mLを滴下して4℃、4時間放置
した。その後、3000rpm、20分間遠心分離し、
沈渣をPBS10mLに溶解した後、PBSに対して透
析を行った。
Example 5 [Detection of Helicobacter pylori in fecal sample by sandwich ELISA (2)] (1) Preparation of monoclonal antibody Hybridoma 21G2 was transplanted to BALB / cA mice and 5 ml of ascites collected was doubled with PBS. The mixture was diluted, 10 mL of saturated ammonium sulfate was added dropwise, and the mixture was left at 4 ° C. for 4 hours. Then, centrifuge at 3000 rpm for 20 minutes,
The precipitate was dissolved in 10 mL of PBS and then dialyzed against PBS.

【0098】(2)モノクローナル抗体固相化プレート
の作製 (1)で調製したモノクローナル抗体21G2溶液を以
下の方法により96穴ELISAプレートに固相化し
た。PBSにて抗体濃度5μg/mLに希釈した後、9
6穴ELISAプレートの各穴に0.2mL加え、4
℃、一夜放置した後、PBSで洗浄した。
(2) Preparation of monoclonal antibody-immobilized plate The monoclonal antibody 21G2 solution prepared in (1) was immobilized on a 96-well ELISA plate by the following method. After diluting with PBS to an antibody concentration of 5 μg / mL,
Add 0.2 mL to each well of a 6-well ELISA plate, 4
After being left overnight at ℃, washed with PBS.

【0099】(3)ペルオキシダーゼ標識モノクローナ
ル抗体作製 マレイミド法(石川栄治著、生物化学実験法27、酵素
標識法、p.51、1991年、学会出版センター)を
用いてペルオキシダーゼ標識モノクローナル抗体を作製
した。(1)で調製したモノクローナル抗体5mgとS
−acetylmercaptosuccinic a
nhydride(アルドリッチ社製)0.6mgを混
合し、0.1Mリン酸緩衝液(pH6.5)0.5mL
中、30℃で、30分間反応させた。反応液に0.1M
EDTA20μL、0.1Mトリス塩酸緩衝液(pH
7.0)0.1mL、1Mヒドロキシルアミン(pH
7.0)0.1mLを加えて、30℃、5分間放置後、
10000rpm、5分間遠心分離して上清を得た。上
清をセントリコン30(amicon社製)で限外ろ過
して、試薬を除去した後、5mM EDTA−0.1M
リン酸緩衝液(pH6.5)1mLに置換し、チオール
基導入モノクローナル抗体を得た。
(3) Preparation of Peroxidase-Labeled Monoclonal Antibody A peroxidase-labeled monoclonal antibody was prepared using the maleimide method (Eiji Ishikawa, Biochemistry Experimental Method 27, Enzyme Labeling Method, p. 51, 1991, Academic Publishing Center). 5 mg of the monoclonal antibody prepared in (1) and S
-Acetylmercaptosuccinica
nhydride (manufactured by Aldrich Co.) 0.6 mg is mixed, and 0.1 M phosphate buffer (pH 6.5) 0.5 mL
The reaction was carried out at 30 ° C. for 30 minutes. 0.1M in the reaction solution
EDTA 20 μL, 0.1 M Tris-HCl buffer (pH
7.0) 0.1 mL, 1M hydroxylamine (pH
7.0) Add 0.1 mL, leave at 30 ° C. for 5 minutes,
The supernatant was obtained by centrifugation at 10,000 rpm for 5 minutes. The supernatant was subjected to ultrafiltration with Centricon 30 (manufactured by amicon) to remove the reagent, and then 5 mM EDTA-0.1M
It was replaced with 1 mL of a phosphate buffer (pH 6.5) to obtain a thiol group-introduced monoclonal antibody.

【0100】ペルオキシダーゼ(西洋ワサビ、東洋紡社
製)5mgとN−succinimidyl−4−(N
−maleimidomethyl)−cyclohe
xane−1−carboxylate−(ICN B
iomedicals社製)1mgを混合し、0.1M
リン酸緩衝液(pH7.0)0.5mL中、30℃で、
1時間反応させた。反応液を10000rpm、5分間
遠心分離して上清を得た。上清をセントリコン30で限
外ろ過して、試薬を除去した後、0.1Mリン酸緩衝液
(pH7.0)1mLに置換し、マレイミド基導入ペル
オキシダーゼを得た。
5 mg of peroxidase (horseradish, Toyobo Co.) and N-succinimidyl-4- (N
-Maleimidomethyl) -cycle
xane-1-carboxylate- (ICN B
1 mg (manufactured by iomedicals) is mixed, and 0.1M
In 0.5 mL of phosphate buffer (pH 7.0) at 30 ° C.,
The reaction was carried out for 1 hour. The reaction solution was centrifuged at 10,000 rpm for 5 minutes to obtain a supernatant. The supernatant was subjected to ultrafiltration with Centricon 30 to remove the reagent, and then replaced with 1 mL of 0.1 M phosphate buffer (pH 7.0) to obtain a maleimide group-introduced peroxidase.

【0101】上記のチオール基導入モノクローナル抗体
とマレイミド基導入ペルオキシダーゼをモル比1:5で
混合し、室温で30分間反応させた。反応液をSeph
acryl−S300HRカラムのゲル濾過カラム(直
径26×長さ870mm、0.1Mリン酸緩衝液(pH
6.5))に負荷し、ペルオキシダーゼ標識モノクロー
ナル抗体を含む画分を集めた。
The thiol group-introduced monoclonal antibody and the maleimide group-introduced peroxidase were mixed at a molar ratio of 1: 5 and reacted at room temperature for 30 minutes. The reaction solution is Seph
gel filtration column of acryl-S300HR column (diameter 26 x length 870 mm, 0.1 M phosphate buffer (pH
6.5)), and the fractions containing the peroxidase-labeled monoclonal antibody were collected.

【0102】(4)サンドイッチELISAによる糞便
検体中ヘリコバクター・ピロリの検出 尿素呼気試験によりヘリコバクター・ピロリ陽性者及び
陰性者と判定された各10名の糞便検体250mgを
0.1%スキムミルク−PBS 0.5mLに懸濁後、
3000rpm、10分間遠心分離した上清を集め、糞
便抽出液とした。糞便抽出液50μL及び(3)で作製
したペルオキシダーゼ標識モノクローナル抗体50μL
を上記モノクローナル抗体固相化プレートの各穴に添加
した。25℃、1時間放置後、洗浄液(0.05%ツィ
ーン20−PBS)にて5回洗浄後、基質液(テトラメ
チルベンチジン+過酸化水素、BioFX社製)0.1
mLを各穴に添加し、室温で10分反応させた。反応
後、各穴に1N硫酸を50μLずつ添加し酵素反応を停
止し、吸光値(450nm−630nm)を測定した。
また、同じ糞便検体を、HpSAを用いて試験し、吸光
値(450nm−630nm)を測定した。結果を表4
に示した。
(4) Detection of Helicobacter pylori in Fecal Samples by Sandwich ELISA 250 mg of fecal samples from each of 10 persons who were determined to be Helicobacter pylori-positive and negative Helicobacter pylori in the urea breath test were treated with 0.1% skim milk-PBS. After suspending in 5 mL,
The supernatant obtained by centrifugation at 3000 rpm for 10 minutes was collected and used as a fecal extract. 50 μL of fecal extract and 50 μL of peroxidase-labeled monoclonal antibody prepared in (3)
Was added to each well of the monoclonal antibody-immobilized plate. After leaving it at 25 ° C. for 1 hour, it was washed 5 times with a washing solution (0.05% Tween 20-PBS), and then a substrate solution (tetramethylbenzidine + hydrogen peroxide, manufactured by BioFX) 0.1.
mL was added to each well and reacted at room temperature for 10 minutes. After the reaction, 50 μL of 1N sulfuric acid was added to each well to stop the enzyme reaction, and the absorbance value (450 nm-630 nm) was measured.
Further, the same fecal sample was tested using HpSA, and the absorbance value (450 nm-630 nm) was measured. The results are shown in Table 4.
It was shown to.

【0103】[0103]

【表4】 [Table 4]

【0104】表4に示した通り、モノクローナル抗体2
1G2を単独で用いたサンドイッチELISAは、ヘリ
コバクター・ピロリ感染者の糞便検体に対して高い反応
性を示し、尿素呼気試験による判定結果と完全に一致し
た。一方、HpSAでは2検体(検体番号16、19)
が不一致(偽陽性)であった。
As shown in Table 4, monoclonal antibody 2
The sandwich ELISA using 1G2 alone showed high reactivity to fecal samples of Helicobacter pylori-infected persons, and was completely in agreement with the determination result by the urea breath test. On the other hand, with HpSA, 2 samples (sample numbers 16 and 19)
Was a mismatch (false positive).

【0105】実施例6 [イムノクロマトグラフィー法による糞便中ヘリコバク
ター・ピロリの検出] (1)抗体固相化支持体の作製 抗ヘリコバクター・ピロリモノクローナル抗体及び抗ウ
サギIgG抗体を線状に固相化した抗体固相化支持体を
作製するために、ニトロセルロースシート(ワットマン
社製)を5mm×20mmに裁断し、その下端より10
mmの位置にモノクローナル抗体21G2の溶液、15
mmの位置に抗ウサギIgGヤギポリクローナル抗体
(Cappel社製)の溶液をバイオジェットQ300
0(Biodot社製)を用いて塗布した。室温で2時
間乾燥後、1%スキムミルク(Difco社製)−0.
1%ツィーン20−PBSに10分浸漬しマスキングを
行った。その後、充分に乾燥した。
Example 6 [Detection of Helicobacter pylori in feces by immunochromatography method] (1) Preparation of antibody-immobilized support Linearly immobilized antibody of anti-Helicobacter pylori monoclonal antibody and anti-rabbit IgG antibody To prepare a solid-phased support, a nitrocellulose sheet (manufactured by Whatman) was cut into 5 mm × 20 mm, and 10 was cut from the lower end thereof.
solution of monoclonal antibody 21G2 at 15 mm position, 15
A solution of an anti-rabbit IgG goat polyclonal antibody (manufactured by Cappel) is placed at the position of mm in Biojet Q300.
0 (manufactured by Biodot) was used for coating. After drying at room temperature for 2 hours, 1% skim milk (manufactured by Difco) -0.
Masking was carried out by immersing in 1% Tween 20-PBS for 10 minutes. Then, it was sufficiently dried.

【0106】(2)着色ラテックス粒子標識物の調製 a.赤色ラテックス粒子標識抗ヘリコバクター・ピロリ
抗体 赤色ラテックス粒子分散液(PL−Latex、10
%、450nm、Polymer Laborator
ies社製)300μLにPBS1.2mLを加え、1
3000rpm、5分間遠心分離を行った。沈渣にモノ
クローナル抗体21G2溶液(5mg/mL)1mLを
加え、充分混和して、室温、1時間反応を行った。未反
応のモノクローナル抗体を除去するため、13000r
pm、5分間遠心分離を行い、沈渣をPBS1.5mL
に懸濁し、再度遠心分離を行った。1%スキムミルク1
mLを加え、室温、1時間反応させてマスキングを行っ
た。その後、13000rpm、5分間遠心分離を行
い、沈渣を1%スキムミルク−0.01%アジ化ナトリ
ウムを含むPBS1.5mLに懸濁した。
(2) Preparation of colored latex particle label a. Anti-Helicobacter pylori antibody labeled with red latex particles Red latex particle dispersion (PL-Latex, 10
%, 450 nm, Polymer Laborator
1.2 mL of PBS was added to 300 μL of 1)
Centrifugation was performed at 3000 rpm for 5 minutes. To the precipitate, 1 mL of the monoclonal antibody 21G2 solution (5 mg / mL) was added, mixed well, and reacted at room temperature for 1 hour. 13,000r to remove unreacted monoclonal antibody
pm, centrifuge for 5 minutes, and deposit with 1.5 mL of PBS.
The cells were suspended in and centrifuged again. 1% skim milk 1
mL was added, and masking was performed by reacting at room temperature for 1 hour. Then, centrifugation was performed at 13000 rpm for 5 minutes, and the precipitate was suspended in 1.5 mL of PBS containing 1% skim milk-0.01% sodium azide.

【0107】b.青色ラテックス粒子標識ウサギIgG 青色ラテックス粒子分散液(PL−Latex、10
%、450nm、Polymer Laborator
ies社製)及びウサギIgG(0.5mg/mL、C
appel社製)を用いて上記と同様な操作で青色ラテ
ックス粒子標識ウサギIgGを調製した。
B. Rabbit IgG labeled with blue latex particles Blue latex particle dispersion (PL-Latex, 10
%, 450 nm, Polymer Laborator
ies) and rabbit IgG (0.5 mg / mL, C
A blue latex particle-labeled rabbit IgG was prepared by the same procedure as above using an Appel company).

【0108】c.着色ラテックス粒子標識物 上記2種類の着色ラテックス粒子標識抗体を等量混和
し、ベンリーゼ(商標登録)不織布(旭化成社製)5m
m×5mmに10μL含浸させ、通風乾燥した。
C. Colored Latex Particle Labeled Product An equal amount of the above-mentioned two types of colored latex particle labeled antibodies is mixed, and Benmize (registered trademark) non-woven fabric (manufactured by Asahi Kasei Corporation) 5 m
10 μL was impregnated into m × 5 mm and dried by ventilation.

【0109】(3)イムノクロマトグラフィー試験片の
作製 抗体固相化支持体の下端から2.5mmの位置まで着色
ラテックス標識物を重ねた。更に、着色ラテックス標識
物上に被検液浸漬用担体(3MM Chr、ワットマン
社製)を下端から2.5mmの位置まで重ねた。また、
抗体固相化支持体の上端から2mmの位置まで吸水性担
体(3MM Chr、ワットマン社製)を重ね、最後に
透明なテープを上部に貼り固定してイムノクロマトグラ
フィー試験片とした。
(3) Preparation of immunochromatographic test strip A colored latex label was placed up to 2.5 mm from the lower end of the antibody-immobilized support. Further, a carrier for dipping a test liquid (3MM Chr, manufactured by Whatman) was placed on the colored latex labeled material up to a position 2.5 mm from the lower end. Also,
A water-absorbent carrier (3MM Chr, manufactured by Whatman) was stacked up to a position 2 mm from the upper end of the antibody-immobilized support, and finally, a transparent tape was attached and fixed on the top to give an immunochromatographic test piece.

【0110】(4)糞便検体中ヘリコバクター・ピロリ
の検出 実施例4に記載した6名(陽性、陰性各3名)の糞便を
用いて試験した。各糞便0.1gを採取し、0.1%B
SA−0.05%ツィーン20−PBS1mLに懸濁し
た。3000rpm、1分間遠心分離して夾雑物を除去
し、上清50μLを(3)で作製したイムノクロマトグ
ラフィー試験片の被検液浸漬用担体部に滴下した。10
分後に抗ヘリコバクター・ピロリモノクローナル抗体固
相化部位に現れる赤いラインの有無を判定した。その結
果、陰性検体では全例赤いラインは確認できず、陽性検
体では全例赤いラインが確認できた。なお、青ラインは
全検体で確認されたので、試験は成功であった。
(4) Detection of Helicobacter pylori in Fecal Samples Feces of 6 persons (3 persons each for positive and negative) described in Example 4 were used for the test. Collect 0.1g of each stool, 0.1% B
Suspended in 1 mL of SA-0.05% Tween 20-PBS. Impurities were removed by centrifugation at 3000 rpm for 1 minute, and 50 μL of the supernatant was added dropwise to the carrier for immersing the test solution in the immunochromatographic test piece prepared in (3). 10
After a minute, the presence or absence of a red line appearing at the immobilized site of the anti-Helicobacter pylori monoclonal antibody was determined. As a result, the red line could not be confirmed in all the negative samples, and the red line could be confirmed in all the positive samples. The test was successful because the blue line was confirmed in all the samples.

【0111】実施例7 [ラテックス凝集法による糞便中ヘリコバクター・ピロ
リの検出] (1)ラテックス粒子標識抗ヘリコバクター・ピロリ抗
体の調製 白色ラテックス粒子分散液(PL−Latex、10
%、440nm、Polymer Laborator
ies社製)0.1mLにPBS0.4mLを加え、1
3000rpm、5分間遠心分離を行った。沈渣にPB
S0.5mL及びモノクローナル抗体21G2溶液(1
mg/mL)0.5mLを加え、充分混和して、室温、
一晩反応を行った。未反応のモノクローナル抗体を除去
するため、13000rpm、10分間遠心分離を行
い、沈渣をPBS1mLに懸濁し、再度遠心分離を行っ
た。1%スキムミルク1mLを加え、室温、1時間反応
させてマスキングを行った。その後、13000rp
m、5分間遠心分離を行い、沈渣を1%スキムミルク−
0.01%アジ化ナトリウム含有PBS1mLに懸濁し
た。
Example 7 [Detection of Helicobacter pylori in Feces by Latex Aggregation Method] (1) Preparation of Latex Particle-Labeled Anti-Helicobacter pylori Antibody White latex particle dispersion (PL-Latex, 10
%, 440 nm, Polymer Laborator
0.4 ml of PBS was added to 0.1 ml of ies), and 1
Centrifugation was performed at 3000 rpm for 5 minutes. PB in the sediment
S0.5mL and monoclonal antibody 21G2 solution (1
(mg / mL) 0.5 mL, mixed well, at room temperature,
The reaction was carried out overnight. In order to remove unreacted monoclonal antibody, centrifugation was performed at 13000 rpm for 10 minutes, the precipitate was suspended in 1 mL of PBS, and centrifugation was performed again. Masking was performed by adding 1 mL of 1% skim milk and reacting at room temperature for 1 hour. After that, 13000 rp
Centrifuge for 5 minutes and remove the sediment with 1% skim milk-
It was suspended in 1 mL of PBS containing 0.01% sodium azide.

【0112】(2)糞便検体中ヘリコバクター・ピロリ
の検出 実施例4に記載した6名(陽性、陰性各3名)の糞便を
用いて試験した。各糞便0.1gを採取し、0.1%B
SA−0.05%ツィーン20含有PBS1mLに懸濁
した。3000rpm、1分間遠心分離して夾雑物を除
去し、上清を得た。この糞便懸濁液上清50μL及び
(1)で調製したラテックス粒子標識抗ヘリコバクター
・ピロリ抗体50μLをラテックス凝集盤上に滴下し、
スライドローター(栄研化学社製)を用いて混和した。
5分後に凝集の有無を目視判定した。その結果、陰性検
体では全例凝集は確認できず、陽性検体では全例凝集が
確認できた。
(2) Detection of Helicobacter pylori in Fecal Samples The feces of 6 persons (3 persons each for positive and negative) described in Example 4 were used for the test. Collect 0.1g of each stool, 0.1% B
Suspended in 1 mL of PBS containing SA-0.05% Tween 20. The mixture was centrifuged at 3000 rpm for 1 minute to remove impurities and obtain a supernatant. 50 μL of this stool suspension supernatant and 50 μL of latex particle-labeled anti-Helicobacter pylori antibody prepared in (1) were dropped on a latex agglutinator,
It mixed using the slide rotor (Eiken Chemical Co., Ltd.).
After 5 minutes, the presence or absence of aggregation was visually determined. As a result, it was not possible to confirm aggregation in all cases in the negative sample, and it was possible to confirm aggregation in all cases in the positive sample.

【0113】実施例8 [ゲル濾過法による糞便中抗原の分子量測定]ヘリコバ
クター・ピロリ陽性者(表3のNo.4及びNo.5)
より提供された糞便検体20gを氷冷したPBS100
mLに懸濁した。10000×gで10分間遠心分離
し、残渣を取り除き、更に90000×gで30分間遠
心分離を行い、上清を得た。この上清1.5mLをSe
phacryl−S300HR(ファルマシア社製)を
充填したゲル濾過カラム(1.5×140cm、0.1
Mリン酸緩衝液、pH6.5)に適用し、1.5mLご
とに分画した。分子量マーカーには、チログロブリン、
フェリチン、カタラーゼ、牛血清アルブミン及びチトク
ロームcを使用した。実施例2(3)に記載したサンド
イッチELISA(モノクローナル抗体41A5固相化
プレート、ビオチン標識モノクローナル抗体82B9、
及び、モノクローナル抗体21G2固相化プレート、ビ
オチン標識モノクローナル抗体41A5)により各画分
の抗原を検出した。その結果、糞便中のヘリコバクター
・ピロリ特異的抗原の分子量は、270kDaであるこ
とがわかった。
Example 8 [Molecular Weight Measurement of Fecal Antigen by Gel Filtration Method] Helicobacter pylori positive (No. 4 and No. 5 in Table 3)
PBS100 ice-cooled 20g of stool sample provided by
Suspended in mL. The residue was removed by centrifugation at 10,000 xg for 10 minutes, and further centrifuged at 90,000 xg for 30 minutes to obtain a supernatant. 1.5 mL of this supernatant is added to Se
gel filtration column (1.5 × 140 cm, 0.1) packed with phacryl-S300HR (manufactured by Pharmacia).
M phosphate buffer, pH 6.5) and fractionated every 1.5 mL. Molecular weight markers include thyroglobulin,
Ferritin, catalase, bovine serum albumin and cytochrome c were used. Sandwich ELISA described in Example 2 (3) (monoclonal antibody 41A5 immobilized plate, biotin-labeled monoclonal antibody 82B9,
Also, the antigen of each fraction was detected with a monoclonal antibody 21G2 immobilized plate and a biotin-labeled monoclonal antibody 41A5). As a result, the molecular weight of the Helicobacter pylori-specific antigen in the feces was found to be 270 kDa.

【0114】実施例9 [抗原の同定] (1)抗原の精製 アマシャムファルマシアバイオテク社アフィニティーク
ロマトグラフィーハンドブックに記載の方法により、モ
ノクローナル抗体82B9を、CNBr−活性化Sep
harose4B(アマシャムファルマシアバイオテク
社製)に固定化したカラムを作製した(10mL)。ヘ
リコバクター・ピロリ(ATCC43504)菌体を超
音波破砕後、超遠心分離により得た上清(タンパク質濃
度4mg/mL)5mLをこのカラムに負荷した。室温
にて2時間静置後、PBS 120mL(流速約2mL
/分)にてカラムを洗浄し、0.2M グリシンHCl
緩衝液(pH3.0)130mLにて溶出した。洗浄、
溶出とも10mLずつ分画し、280nmの吸光度及び
抗原性を測定した。抗原性の測定は、実施例2に記載の
サンドイッチELISA(固相化21G2、標識82B
9)により行った。その結果、図1に示した通り、溶出
画分(画分No.14〜17)のみに抗原性が確認され
た。
Example 9 [Identification of antigen] (1) Purification of antigen Monoclonal antibody 82B9 was treated with CNBr-activated Sep by the method described in Amersham Pharmacia Biotech Affinity Chromatography Handbook.
A column immobilized on harose 4B (manufactured by Amersham Pharmacia Biotech) was prepared (10 mL). After sonicating the Helicobacter pylori (ATCC 43504) cells, 5 mL of the supernatant (protein concentration 4 mg / mL) obtained by ultracentrifugation was loaded on this column. After standing at room temperature for 2 hours, PBS 120 mL (flow rate about 2 mL
/ Min) to wash the column with 0.2 M glycine HCl
Elution was performed with 130 mL of buffer solution (pH 3.0). Washing,
The elution was fractionated by 10 mL, and the absorbance at 280 nm and the antigenicity were measured. The antigenicity was measured by sandwich ELISA (immobilized 21G2, labeled 82B) described in Example 2.
9). As a result, as shown in Fig. 1, the antigenicity was confirmed only in the eluted fractions (fraction Nos. 14 to 17).

【0115】(2)精製抗原の純度及び分子量 溶出画分(No.14)50μLを、等量のサンプル緩
衝液(2%SDS−5%メルカプトエタノール)と混合
し、100℃、5分間煮沸した。この溶液20μLを用
いてSDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動(4−2
0%アクリルアミドゲル)を行った。分子量マーカー
は、ホスホリラーゼb、牛血清アルブミン、卵白アルブ
ミン、炭酸脱水酵素、大豆トリプシンインヒビター、及
び、α−ラクトアルブミンを用いた。泳動後、シルバー
ステインKANTO III(関東化学社製)を用い
て、ゲルを染色した。その結果、精製抗原は単一バンド
を示し、その分子量は59kDaであった。また、溶出
画分(No.14)1mLを実施例6に記載したのと同
様の方法でSephacryl−S300HRのゲル濾
過を行った。得られた画分について、サンドイッチEL
ISAにより抗原性を調べた結果、本精製抗原の分子量
は、270kDaであり、糞便中抗原と同じであること
がわかった。
(2) Purity of purified antigen and 50 μL of molecular weight elution fraction (No. 14) were mixed with an equal volume of sample buffer (2% SDS-5% mercaptoethanol) and boiled at 100 ° C. for 5 minutes. . Using 20 μL of this solution, SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (4-2
0% acrylamide gel). The molecular weight markers used were phosphorylase b, bovine serum albumin, ovalbumin, carbonic anhydrase, soybean trypsin inhibitor, and α-lactalbumin. After the electrophoresis, the gel was stained with Silver Stain KANTO III (manufactured by Kanto Chemical Co., Inc.). As a result, the purified antigen showed a single band and its molecular weight was 59 kDa. Further, 1 mL of the elution fraction (No. 14) was subjected to gel filtration of Sephacryl-S300HR by the same method as described in Example 6. About the obtained fractions, sandwich EL
As a result of examining the antigenicity by ISA, it was found that the molecular weight of this purified antigen was 270 kDa, which was the same as the fecal antigen.

【0116】(3)精製抗原のアミノ末端側アミノ酸配
列の決定 溶出画分(No.14)300μLを用いてHP G1
005A Protein Sequencing S
ystem(日本ヒューレット・パッカード社製)によ
り精製抗原のアミノ末端側アミノ酸配列を決定した。ア
ミノ末端から8残基の配列は、Met−Val−Asn
−Lys−Asp−Val−Lys−Glnであった。
この配列は、ヘリコバクター・ピロリのカタラーゼのア
ミノ末端からの配列(J.Bacteriol.(19
96),178,6960−6967)と完全に一致し
た。
(3) Determination of the amino-terminal amino acid sequence of the purified antigen Using 300 μL of the elution fraction (No. 14), HP G1
005A Protein Sequencing S
The amino acid sequence on the amino-terminal side of the purified antigen was determined by a system (manufactured by Hewlett-Packard Japan). The sequence of 8 residues from the amino terminus is Met-Val-Asn.
It was -Lys-Asp-Val-Lys-Gln.
This sequence is from the amino terminus of Helicobacter pylori catalase (J. Bacteriol.
96), 178, 6960-6967).

【0117】(4)精製抗原のカタラーゼ活性及び紫外
可視吸収スペクトルの測定 精製抗原のアミノ末端側アミノ酸配列がカタラーゼと一
致したので、各画分のカタラーゼ活性を測定した。反応
液には、11mM過酸化水素を含むPBSを用いた。各
画分をPBSにて100倍希釈した後、その50μLを
反応液2mLに添加して反応を開始した。反応は室温に
て行った。経時的に240nmの吸光度を測定し、1分
間あたりの吸光度の減少を求めた。ブランクにはPBS
を用いた。その結果、図1に示した通り、抗原画分には
カタラーゼ活性が検出された。
(4) Measurement of Catalase Activity and UV-Visible Absorption Spectrum of Purified Antigen Since the amino terminal amino acid sequence of the purified antigen coincided with that of catalase, the catalase activity of each fraction was measured. PBS containing 11 mM hydrogen peroxide was used as the reaction solution. After diluting each fraction 100-fold with PBS, 50 μL thereof was added to 2 mL of the reaction solution to start the reaction. The reaction was performed at room temperature. The absorbance at 240 nm was measured over time, and the decrease in absorbance per minute was determined. PBS for blank
Was used. As a result, as shown in FIG. 1, catalase activity was detected in the antigen fraction.

【0118】カタラーゼに含まれるヘムを確認するた
め、溶出画分No.14の紫外可視吸収スペクトルを測
定した。その結果、407及び277nmに吸収極大を
認めた。この値はヘリコバクター・ピロリのカタラーゼ
の文献値(405及び280nm、J.Gen.Mic
robiol.(1991),137,57−61)と
ほぼ一致した。
To confirm the heme contained in catalase, the elution fraction No. The UV-visible absorption spectrum of 14 was measured. As a result, absorption maxima were observed at 407 and 277 nm. This value is the literature value of Helicobacter pylori catalase (405 and 280 nm, J. Gen. Mic.
robiol. (1991), 137, 57-61).

【0119】(5)精製抗原の保存安定性 溶出画分(No.14)を1.4μg/mLとなるよう
に0.1%BSA含有PBSにて希釈した溶液を、25
℃で1週間保存した。保存後の精製抗原の抗原性を実施
例5に記載したサンドイッチELISA法により、ま
た、カタラーゼ活性を(4)に記載した方法によりそれ
ぞれ測定した。−80℃で凍結保存した精製抗原と比較
した結果、抗原性は25℃保存でほとんど変化しなかっ
た。しかし、カタラーゼ活性は著しく失活し、活性残存
率5%以下となった。
(5) Storage stability of purified antigen A solution obtained by diluting the eluted fraction (No. 14) with PBS containing 0.1% BSA at a concentration of 1.4 μg / mL was added to 25
It was stored at ℃ for 1 week. The antigenicity of the purified antigen after storage was measured by the sandwich ELISA method described in Example 5, and the catalase activity was measured by the method described in (4). As a result of comparison with the purified antigen cryopreserved at −80 ° C., the antigenicity hardly changed upon storage at 25 ° C. However, the catalase activity was significantly inactivated, and the residual activity rate was 5% or less.

【0120】実施例10 [抗ヘリコバクター・ピロリモノクローナル抗体と糞便
中抗原のサブユニットとの反応性]抗ヘリコバクター・
ピロリモノクローナル抗体と糞便中抗原のサブユニット
との反応性を測定するため、実施例8に記載のヘリコバ
クター・ピロリ陽性者の糞便懸濁液上清50μLを用い
て、実施例9(2)に記載したSDS−ポリアクリルア
ミドゲル電気泳動を行った。対照として実施例9の精製
抗原(溶出画分No.14)50μLも同様に電気泳動
した。泳動後、ウェスタンブロッティング法によりニト
ロセルロース膜にタンパク質を転写した。ニトロセルロ
ース膜を1%スキムミルク液に1時間浸してマスキング
した後、モノクローナル抗体21G2又は82B9と1
時間反応させた。ニトロセルロース膜を0.05%ツィ
ーン20−PBSで5回洗浄後、ペルオキシダーゼ標識
抗マウスIgG抗体と反応させた。ニトロセルロース膜
を0.05%ツィーン20−PBSで5回洗浄後、基質
液(過酸化水素+3,3'−ジアミノベンチジン)を加
えて10分間インキュベートしたが、糞便抗原、精製抗
原を泳動したレーンともに、いずれのモノクローナル抗
体を用いても抗原性に由来する発色は認められなかっ
た。サブユニット分子に抗原性が認められなかった原因
を明らかにするため、サブユニットへの解離処理で抗原
性が変わるかどうかドットブロッティング法により調べ
た。1%SDSによる解離処理前後の検体をそれぞれニ
トロセルロース膜に5μL滴下し、風乾した。ニトロセ
ルロース膜に吸着したタンパク質の抗原性を上記と同様
の方法で調べた結果、糞便抗原、精製抗原ともに1%S
DSによる解離処理後は、抗原性が著しく低下すること
がわかった。従って、本発明のモノクローナル抗体はカ
タラーゼのサブユニット即ち一次構造上のエピトープを
認識するのではなく、よりNativeな高次構造をエ
ピトープとして認識していることが示唆された。
Example 10 [Reactivity between Anti-Helicobacter pylori Monoclonal Antibody and Fecal Antigen Subunit] Anti-Helicobacter
In order to measure the reactivity between the Helicobacter pylori monoclonal antibody and the subunit of the fecal antigen, 50 μL of the Helicobacter pylori-positive fecal suspension supernatant described in Example 8 was used to describe in Example 9 (2). SDS-polyacrylamide gel electrophoresis was performed. As a control, 50 μL of the purified antigen of Example 9 (eluted fraction No. 14) was also electrophoresed in the same manner. After the electrophoresis, the protein was transferred to a nitrocellulose membrane by Western blotting. After immersing the nitrocellulose membrane in 1% skim milk for 1 hour to mask it, the monoclonal antibody 21G2 or 82B9 and 1 were used.
Reacted for hours. The nitrocellulose membrane was washed 5 times with 0.05% Tween 20-PBS and then reacted with a peroxidase-labeled anti-mouse IgG antibody. The nitrocellulose membrane was washed 5 times with 0.05% Tween 20-PBS, and a substrate solution (hydrogen peroxide + 3,3′-diaminobenzidine) was added and incubated for 10 minutes, but fecal antigen and purified antigen were electrophoresed. No color development due to antigenicity was observed in any of the lanes using any of the monoclonal antibodies. In order to clarify the reason why the subunit molecule was not found to be antigenic, it was examined by dot blotting whether the antigenicity was changed by dissociation into subunits. 5 μL of each of the specimens before and after the dissociation treatment with 1% SDS was dropped on a nitrocellulose membrane and air-dried. As a result of investigating the antigenicity of the protein adsorbed on the nitrocellulose membrane by the same method as above, it was found that both fecal antigen and purified antigen had 1% S
It was found that the antigenicity was significantly reduced after the dissociation treatment with DS. Therefore, it was suggested that the monoclonal antibody of the present invention does not recognize the subunit of catalase, that is, the epitope on the primary structure, but recognizes a more native higher-order structure as the epitope.

【0121】実施例11 [糞便中抗原の精製] (1)糞便中抗原の分子量 糞便中ヘリコバクター・ピロリ抗原が最高値を示した陽
性者(表4の検体番号8)から提供された糞便165g
を4倍量のPBSに懸濁し、遠心分離(7000rp
m、30分)して得られた上清を更に超遠心分離(30
000rpm、30分)して上清を得た。上清680m
Lに40%飽和となるように硫安165gを加えて撹拌
後、生じた沈殿を遠心分離(7000rpm、30分)
により除去した。上清750mLに80%飽和となるよ
うに硫安214gを加えて撹拌し、生じた沈殿を遠心分
離(7000rpm、30分)により回収した。沈殿を
PBSに懸濁し、10Lの蒸留水に対して透析した。透
析内液82mLの内、2mLを用いて実施例6と同様の
方法でSephacryl−S300HRカラムによる
ゲル濾過を行った。得られた画分について、実施例5と
同様の方法でサンドイッチELISAにより抗原性を調
べた結果、本糞便中抗原の分子量は、270kDaであ
り、実施例8に記載した陽性者2名の糞便中抗原及び実
施例9に記載した精製抗原の分子量と同じであった。
Example 11 [Purification of Fecal Antigen] (1) Molecular Weight of Fecal Antigen Fecal Helicobacter pylori antigen showed the highest value. Positive feces (Sample No. 8 in Table 4) provided 165 g of feces.
Suspended in 4 volumes of PBS and centrifuged (7000 rp
Ultracentrifugation (30 minutes)
(000 rpm, 30 minutes) to obtain a supernatant. 680m of supernatant
Ammonium sulfate (165 g) was added to L so as to be 40% saturated, and the mixture was stirred and the resulting precipitate was centrifuged (7,000 rpm, 30 minutes).
Removed by. Ammonium sulfate (214 g) was added to 750 mL of the supernatant so as to be 80% saturated, and the mixture was stirred, and the generated precipitate was collected by centrifugation (7,000 rpm, 30 minutes). The precipitate was suspended in PBS and dialyzed against 10 L of distilled water. Gel filtration using a Sephacryl-S300HR column was performed in the same manner as in Example 6 by using 2 mL of the dialyzed inner solution (82 mL). The obtained fraction was examined for antigenicity by a sandwich ELISA in the same manner as in Example 5. As a result, the molecular weight of the antigen in the present feces was 270 kDa, and the feces of the two positives described in Example 8 were confirmed. It was the same as the molecular weight of the antigen and the purified antigen described in Example 9.

【0122】(2)糞便中抗原の精製 (1)の透析内液40mLを10mMリン酸緩衝液(p
H7.0)で100mLに希釈した後、同緩衝液で平衡
化した陽イオン交換樹脂CM−SephadexC−5
0(アマシャムファルマシアバイオテク社製)のカラム
(1×2.5cm)に負荷した。同緩衝液10mLで洗
浄後、PBS10mLで溶出した。通塔、洗浄、溶出の
各画分を0.1%スキムミルクを含むPBSにて320
倍希釈した後、実施例5に記載のサンドイッチELIS
Aにより抗原性を測定した。抗原性は溶出画分に認めら
れた。
(2) Purification of Fecal Antigen 40 mL of the dialysis inner solution of (1) was added with 10 mM phosphate buffer (p
C-Sephadex C-5 cation exchange resin equilibrated with the same buffer after diluting to 100 mL with H7.0).
0 (Amersham Pharmacia Biotech) column (1 × 2.5 cm) was loaded. After washing with 10 mL of the same buffer, it was eluted with 10 mL of PBS. 320% of the fractions of the tower, the wash, and the elution with PBS containing 0.1% skim milk.
Sandwich ELIS as described in Example 5 after doubling dilution
Antigenicity was measured by A. Antigenicity was found in the eluted fraction.

【0123】アマシャムファルマシアバイオテク社アフ
ィニティークロマトグラフィーハンドブックに記載の方
法により、モノクローナル抗体21G2を、CNBr−
活性化Sepharose4B(アマシャムファルマシ
アバイオテク社製)に固定化したカラムを作成した(2
×3cm)。上記溶出画分6mLをモノクローナル抗体
固定化カラムに負荷し、室温にて2時間静置した。PB
S50mLで洗浄した後、0.2MグリシンHCl緩衝
液(pH3.0)で溶出し、10mLづつ分画した。各
画分を0.1%スキムミルクを含むPBSにて10倍希
釈した後、実施例5に記載のサンドイッチELISAに
より抗原性を測定した。また、実施例9に記載した方法
によりカタラーゼ活性を測定した。その結果、図2に示
した通り、矢印で示した溶出開始直後の溶出画分(画分
No.7〜8)に抗原性が認められ、カタラーゼ活性
も、抗原性と一致した。以上のことから本糞便中には4
個のサブユニットを有し、カタラーゼ活性も有するNa
tiveな抗原が含まれることがわかった。
Monoclonal antibody 21G2 was treated with CNBr- by the method described in Amersham Pharmacia Biotech Affinity Chromatography Handbook.
A column immobilized on activated Sepharose 4B (manufactured by Amersham Pharmacia Biotech) was prepared (2
× 3 cm). 6 mL of the above-mentioned elution fraction was loaded onto a monoclonal antibody-immobilized column and left standing at room temperature for 2 hours. PB
After washing with S50 mL, it was eluted with 0.2 M glycine HCl buffer (pH 3.0) and fractionated into 10 mL each. After diluting each fraction 10-fold with PBS containing 0.1% skim milk, the antigenicity was measured by the sandwich ELISA described in Example 5. Further, the catalase activity was measured by the method described in Example 9. As a result, as shown in Fig. 2, the antigenicity was observed in the elution fractions (fraction Nos. 7 to 8) immediately after the start of elution indicated by the arrow, and the catalase activity was also in agreement with the antigenicity. From the above, 4 in the feces
Which has 3 subunits and also has catalase activity
It was found that a live antigen was included.

【0124】[0124]

【発明の効果】本発明は、上述の構成よりなるので、ヘ
リコバクター・ピロリのカタラーゼに特異的に存在する
エピトープを認識することができるモノクローナル抗体
を提供することができ、更に、本発明のモノクローナル
抗体を用いれば、ヘリコバクター・ピロリを極めて特異
的に認識することができる。また、ヘリコバクター・ピ
ロリのカタラーゼを認識するモノクローナル抗体産生ハ
イブリドーマの樹立に成功したので、同一のモノクロー
ナル抗体を半永久的に製造することができる。本発明の
モノクローナル抗体を用いた診断キットは、消化管排泄
物を検体とすることができ、被験者に苦痛を与えること
なく、簡便かつ効率よくヘリコバクター・ピロリ感染を
検出することができる。また、本発明のモノクローナル
抗体を用いた診断キットは、1種のみのモノクローナル
抗体を用いる場合であっても、極めて優れた精度を呈
し、ロット毎の差がなく、安定しており、常に特異的か
つ精度良くヘリコバクター・ピロリ感染を検出すること
ができる。
INDUSTRIAL APPLICABILITY Since the present invention has the above-mentioned constitution, it can provide a monoclonal antibody capable of recognizing an epitope specifically present in Helicobacter pylori catalase, and further, the monoclonal antibody of the present invention. Can be used to recognize Helicobacter pylori very specifically. In addition, since a monoclonal antibody-producing hybridoma that recognizes Helicobacter pylori catalase was successfully established, the same monoclonal antibody can be semipermanently produced. The diagnostic kit using the monoclonal antibody of the present invention can use gastrointestinal excretion as a sample, and can detect Helicobacter pylori infection simply and efficiently without causing pain to the subject. Moreover, the diagnostic kit using the monoclonal antibody of the present invention exhibits extremely excellent accuracy even when only one type of monoclonal antibody is used, is stable with no difference between lots, and is always specific. In addition, Helicobacter pylori infection can be detected accurately.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】実施例9におけるアフィニティークロマトグラ
フィーの溶出パターンを示した図である。
FIG. 1 is a diagram showing an elution pattern of affinity chromatography in Example 9.

【図2】実施例11におけるアフィニティークロマトグ
ラフィーの溶出パターンを示した図である。
FIG. 2 is a diagram showing an elution pattern of affinity chromatography in Example 11.

フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI C12R 1:91) 微生物の受託番号 FERM BP−7337 微生物の受託番号 FERM BP−7338 早期審査対象出願 前置審査 (56)参考文献 特開 平10−10128(JP,A) Infection and Imm unity,65(11),p.4668− 4674,1997 (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C12N 15/00 - 15/90 C07K 16/00 - 16/46 BIOSIS/MEDLINE/WPID S(STN)Continuation of front page (51) Int.Cl. 7 identification code FI C12R 1:91) Microbial accession number FERM BP-7337 Microbial accession number FERM BP-7338 Preliminary examination subject application (56) References Flat 10-10128 (JP, A) Infection and Immunity, 65 (11), p. 4668-4674, 1997 (58) Fields surveyed (Int.Cl. 7 , DB name) C12N 15/00-15/90 C07K 16/00-16/46 BIOSIS / MEDLINE / WPID S (STN)

Claims (2)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 21G2(FERM BP−733
6)、41A5(FERMBP−7337)、又は、8
2B9(FERM BP−7338)であることを特徴
とするハイブリドーマ。
1. 21G2 (FERM BP-733
6), 41A5 (FERMBP-7337), or 8
A hybridoma characterized in that it is 2B9 (FERM BP-7338).
【請求項2】 請求項記載のハイブリドーマにより産
生されることを特徴とするモノクローナル抗体。
2. A monoclonal antibody produced by the hybridoma according to claim 1 .
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