JP3330365B2 - Culture fluid for Scutellaria plants - Google Patents

Culture fluid for Scutellaria plants

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JP3330365B2 JP2000070066A JP2000070066A JP3330365B2 JP 3330365 B2 JP3330365 B2 JP 3330365B2 JP 2000070066 A JP2000070066 A JP 2000070066A JP 2000070066 A JP2000070066 A JP 2000070066A JP 3330365 B2 JP3330365 B2 JP 3330365B2
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Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、ラン科のアツモリ
ソウ属植物を大量に増殖させ、生育させるためのアツモ
リソウ属植物用培養液に関する。
The present invention relates to the orchid family in large quantities grown Cypripedium plants, about the Cypripedium plant for the culture medium for growing.

【0002】[0002]

【従来の技術】一般に、アツモリソウ属植物とは、ラン
(蘭)科の一種で、シプリペジュウム属とも言われ、例
えば、その種類として、アツモリソウ,ホテイアツモリ
ソウ,レブンアツモリソウ,カラフトアツモリソウ等が
知られている。アツモリソウ属植物は幻の山野草と言わ
れ、特にアツモリソウは、乱獲のため、絶滅の危機に瀕
していて絶滅のおそれのある野生動植物の譲渡の規制等
に関する法律によって希少野生動植物に登録されている
植物である。また、アツモリソウ属植物は、増殖しにく
い植物であり、その理由のひとつに発芽率が低いという
ことが挙げられる。自然界での発芽率は、10万分の1
とも言われる。これは、普通の草花では、葉や根に成長
する部分や発芽に必要な栄養分が含まれる胚乳が存在し
ているが、アツモリソウの種子にはそれらがなく、胚が
あるのみで、この種子の構造から発芽率が低いと考えら
れている。そのため、近年、このアツモリソウ属植物の
種の保存を図るため、バイオテクノロジー技術を利用し
て発芽率を向上させて増殖させる研究が行なわれてい
る。尚、国の許可を受けアツモリソウの培養に取り組ん
でいる研究施設は、現在の所、国内で12カ所ある。
BACKGROUND OF THE INVENTION In general, a plant of the genus Atsushi is a member of the orchid family, and is also referred to as the genus Cypripedum. . Cypripedium is said to be a phantom wild grass, and in particular, Cypripedium is registered as a rare wildlife by the Act on Regulations on the Transfer of Endangered and Endangered Wildlife and Plants due to Overfishing. Plant. In addition, the plants of the genus Atsushi are difficult to proliferate, and one of the reasons is that the germination rate is low. The germination rate in nature is 1 / 100,000
Also called. This is because ordinary plants have parts that grow on leaves and roots, and endosperm that contains nutrients necessary for germination. The germination rate is thought to be low from the structure. Therefore, in recent years, in order to preserve the species of the plant belonging to the genus Hevea, research has been conducted to increase the germination rate and to proliferate using biotechnology. At present, there are twelve research facilities in Japan that are working on cultivation of Cypripedium with the permission of the government.

【0003】従来、アツモリソウ属植物の培養方法とし
ては、例えば、無菌播種により、寒天質の培地上に滅菌
水を流し込み種子を散らすという方法が知られている。
滅菌水としては、例えば、次亜塩素酸ナトリウムを添加
した水溶液等が知られている(例えば、特開平5−14
8115号公報掲載)。
Hitherto, as a method for cultivating a plant of the genus Hemlock, there has been known, for example, a method in which sterile water is poured on an agar medium by aseptic sowing to disperse seeds.
As the sterilized water, for example, an aqueous solution to which sodium hypochlorite is added is known (for example, see Japanese Patent Application Laid-Open No. 5-14 / 1993).
No. 8115).

【0004】[0004]

【発明が解決しようとする課題】ところで、このような
従来のアツモリソウ属植物の培養方法にあっては、必ず
しも満足できる発芽率を達成できていないという問題が
あった。本願発明者らは、平成7年から研究に取り組ん
でおり、その間、100数種類前後の培地を用い、これ
らの培地上に上記の次亜塩素酸ナトリウムを添加した滅
菌水を使用して種子を広げて試験を行なったが、発芽率
が延びないことが分かった。また、このアツモリソウ属
植物では発芽しても苗に育つ前に植物が褐変死する確率
が高いという問題もあった。褐変死は、植物体が黒色に
変化したフェノール物質を出して褐変して死んでしまう
現象である。従って、従来の培養方法,培地,培養液で
は発芽率の向上は難しく、また、発芽しても培養中に植
物が褐変死することが多く大きな問題となっている。
However, such a conventional method for cultivating a plant of the genus Hemlock has a problem that a satisfactory germination rate cannot always be achieved. The inventors of the present invention have been working on the research since 1995, and in the meantime, using about 100 or more kinds of mediums, spreading the seeds on these mediums using the above-mentioned sterilized water to which sodium hypochlorite was added. The test showed that the germination rate did not increase. In addition, there is also a problem that even if the plant of the genus Athleticum germinates, the plant is more likely to brown and die before it grows into a seedling. Browning death is a phenomenon in which a plant emits a phenolic substance that has turned black and browns and dies. Therefore, it is difficult to improve the germination rate by the conventional cultivation method, medium and culture solution, and even if germinated, the plants often brown and die during cultivation, which is a serious problem.

【0005】本発明は、このような問題点に鑑みてなさ
れたもので、発芽率を向上させ、また、発芽後の培養中
の褐変死の発生を抑えて生存率を高め一度に大量の苗を
生産することができるアツモリソウ属植物用培養液を
供することを目的とする。
The present invention has been made in view of such problems, and improves the germination rate, suppresses the occurrence of browning death during cultivation after germination, increases the survival rate, and increases the number of seedlings at once. It is an object of the present invention to provide a culture solution for a plant of the genus Apex genus, which can produce Escherichia coli.

【0006】[0006]

【課題を解決するための手段】このような課題を解決す
るため本願発明者らは、播種する際、培地上に種子を広
げるために使っていた滅菌水の代替用として栄養素を含
んだ培養液を用いることを研究し、その開発に取り組
み、褐変の発生を抑え、発芽率を向上させることのでき
る以下のアツモリソウ属植物用培養液,アツモリソウ属
植物用培地及びアツモリソウ属植物の培養方法を開発し
た。本発明のアツモリソウ属植物用培養液は、アツモリ
ソウ属植物を種子から培養する際に用いられ水に添加物
を添加してなるアツモリソウ属植物用培養液において、
当該培養液1000ml中に、添加物として、糖類0〜
10gと、木酢液0.1〜2.0mlと、ビタミン類8
〜45mgと、植物活性剤0.1〜1.0mlとを含有
した構成とした。ここで、植物活性剤は、粗タンパク質
0.05〜0.15重量%、粗脂肪0.3〜0.5重量
%、無機質として、Na35〜45mg/l、Ca30
〜35mg/l、Fe1.5〜2.0mg/l、Mg
3.0〜4.0mg/l、Si7.0〜8.0mg/
l、N90〜100mg/lを備えている。この培養液
を無菌播種に用いると、木酢液,ビタミン類及び植物活
性剤の相互作用によって、種子が栄養分を吸収し易くな
り、プロトコーム形成の促進が図られ、発芽率が大幅に
向上させられる。また、発芽後の継代培養中に添加する
ことにより植物体の褐変の発生が抑えられ、褐変死させ
ることが抑制され、更に植物体が栄養分を良く吸収して
順調に生育させられ、生存率が大幅に向上させられる。
また、植物活性剤の添加により、栄養バランスが良く、
発芽を促進させる効果を発揮させる。
Means for Solving the Problems In order to solve such problems, the present inventors have proposed a culture solution containing nutrients as a substitute for sterile water used for spreading seeds on a medium when sowing. We studied the use of cultivation and worked on its development, and developed the following culture fluids for Hempericum genus plants, culture media for genus Hemperial genus plants, and methods for cultivating Hempericum genus plants, which can suppress the occurrence of browning and improve the germination rate . The culture fluid for the Athens plant of the present invention is used for cultivating the Athens plant from seeds, and a culture solution for the Athens plant obtained by adding an additive to water,
In 1000 ml of the culture solution, saccharides 0 to 0 are added as additives.
10 g, wood vinegar 0.1-2.0 ml, and vitamins 8
4545 mg and 0.1 to 1.0 ml of the plant active agent. Here, the plant active agent is a crude protein
0.05-0.15% by weight, crude fat 0.3-0.5%
%, 35-45 mg / L of Na, Ca30
~ 35mg / l, Fe1.5 ~ 2.0mg / l, Mg
3.0-4.0 mg / l, Si 7.0-8.0 mg /
1, N 90 to 100 mg / l. When this culture solution is used for aseptic seeding, the seeds can easily absorb nutrients due to the interaction of the wood vinegar solution, vitamins, and plant activators, promoting the formation of protocorms and greatly improving the germination rate. Also, by adding during the subculture after germination, the occurrence of browning of the plant is suppressed, the browning of the plant is suppressed, and the plant is well absorbed by nutrients and is grown smoothly. Is greatly improved.
In addition, the addition of a plant active agent, good nutritional balance,
It has the effect of promoting germination.

【0007】そして、必要に応じ、上記培養液をpH
5.5〜6.0とすることが有効である。pHをアツモ
リソウの自生地のpHに近い値にすることにより、発芽
及び培養の環境を最適にでき、発芽率の向上と生育良好
とすることができる。また、必要に応じ、上記添加物と
して糖類を併用した構成とした。この場合、上記培養液
1000ml中に糖類を1〜10g含有したことが有効
である。そして、必要に応じ、上記糖類をサッカロース
とした。そしてまた、必要に応じ、上記ビタミン類を塩
酸チアミンとした構成とした。また、上記ビタミン類
を、塩酸チアミンを1〜10mg含有して構成したこと
が有効である。また、必要に応じ、上記ビタミン類をニ
コチン酸とした構成とした。また、上記ビタミン類を、
ニコチン酸を1〜5mg含有して構成したことが有効で
ある。また、必要に応じ、上記ビタミン類を塩酸ピリド
キシンとした構成とした。また、上記ビタミン類を、塩
酸ピリドキシンを1〜10mg含有して構成したことが
有効である。更にまた、必要に応じ、上記ビタミン類を
ミオイノシトールとした構成とした。また、上記ビタミ
ン類を、ミオイノシトールを5〜20mg含有して構成
したことが有効である。ラン科植物の培養ではビタミン
類が培養を促進させる効果があることが多く、その選択
は重要であるが、上記のビタミンを添加することによ
り、発芽及び継代培養中、植物体にビタミンがバランス
良く有効に作用する。
[0007] If necessary, the culture solution is adjusted to pH
It is effective to set it to 5.5 to 6.0. By adjusting the pH to a value close to the pH of the self-made cloth of snapper, the environment for germination and culture can be optimized, and the germination rate can be improved and the growth can be improved. If necessary, a saccharide is used as the additive. In this case, it is effective to contain 1 to 10 g of saccharides in 1000 ml of the culture solution. Then, if necessary, the saccharide was used as saccharose. And, if necessary, the above vitamins were configured to be thiamine hydrochloride. In addition, the above vitamins
Is effective to contain 1 to 10 mg of thiamine hydrochloride . Further, if necessary, the above-mentioned vitamins were configured to be nicotinic acid. In addition, the above vitamins,
It is effective to include 1 to 5 mg of nicotinic acid . If necessary, the above-mentioned vitamins were constituted by pyridoxine hydrochloride. In addition, the above vitamins, salt
It is effective to comprise 1 to 10 mg of pyridoxine acid . Furthermore, if necessary, the above-mentioned vitamins are configured to be myo-inositol. In addition,
Containing 5-20 mg of myo-inositol
It was it is effective. In the cultivation of orchid plants, vitamins often have the effect of promoting cultivation, and the selection is important. However, the addition of the above-mentioned vitamins allows the plant to be balanced during germination and subculture. Works well and effectively.

【0008】[0008]

【0009】次に、本発明のアツモリソウ属植物用培養
液の研究の際に開発されたアツモリソウ属植物用培地に
ついて挙げる。 このアツモリソウ属植物用培地は、アツ
モリソウ属植物を種子から培養する際に用いられ、水に
添加物を添加した水溶液をゲル状にしたアツモリソウ属
植物用培地において、上記水溶液1000ml中に添加
物として、窒素,リン及びカリウムを含有する肥料1〜
3gと、ぺプトン1〜3gと、糖類10〜30gと、植
物活性剤0.2〜1.0mlと、ビタミン類16〜70
mgとを含有している。ここで、植物活性剤は、粗タン
パク質0.05〜0.15重量%、粗脂肪0.3〜0.
5重量%、無機質として、Na35〜45mg/l、C
a30〜35mg/l、Fe1.5〜2.0mg/l、
Mg3.0〜4.0mg/l、Si7.0〜8.0mg
/l、N90〜100mg/lを備えている。この培地
を無菌播種に用いることにより、プロトコーム形成の促
進を図るので発芽率を向上させることができる。また、
植物活性剤の添加により、栄養バランスが良く、発芽を
促進させる効果を発揮させる。また、必要に応じ、上記
植物活性剤の替わりにポテトキューブを培地50ml中
0.5〜1.5g添加する構成とした。そして、必要に
応じ、上記水溶液をpH5.5〜6.0とする構成とし
た。pHをアツモリソウの自生地のpHに近い値とする
ことにより、発芽及び培養の環境を最適にでき、発芽率
の向上と生育良好とすることができる。
[0009] Next, the culture for a plant of the genus Hemlock according to the present invention.
In the medium for the genus Athliana plants developed during the study of the liquid
I will mention it. The A Tsumorisou Genus medium is used in culturing Cypripedium plants from the seeds, an aqueous solution prepared by adding an additive to water at Cypripedium planting medium in gel form, as an additive in the aqueous solution 1000ml , Fertilizer containing nitrogen, phosphorus and potassium 1
3 g, peptone 1 to 3 g, sugar 10 to 30 g, plant active agent 0.2 to 1.0 ml, vitamins 16 to 70
mg. Here, the plant active agent is a crude tan.
Protein 0.05-0.15% by weight, crude fat 0.3-0.
5% by weight, 35-45 mg / L of Na as inorganic substance, C
a 30-35 mg / l, Fe 1.5-2.0 mg / l,
Mg 3.0-4.0 mg / l, Si 7.0-8.0 mg
/ L, N 90-100 mg / l. By using this medium for aseptic seeding, the formation of a protocomb is promoted, so that the germination rate can be improved. Also,
By adding a plant active agent, nutritional balance is good and germination
It has the effect of promoting. If necessary, potato cubes were added in an amount of 0.5 to 1.5 g in 50 ml of the medium instead of the plant active agent. And it was set as the structure which makes the said aqueous solution pH 5.5-6.0 as needed. By adjusting the pH to a value close to the pH of the self-made cloth of Hemlock, the environment for germination and culture can be optimized, and the germination rate can be improved and the growth can be improved.

【0010】また、必要に応じ、上記糖類をサッカロー
スとした構成とした。そして、必要に応じ、上記ビタミ
ン類を塩酸チアミンとした構成とした。また、上記ビタ
ミン類を、塩酸チアミンを5〜20mg含有して構成し
ことが有効である。そしてまた、必要に応じ、上記ビ
タミン類をニコチン酸とした構成とした。また、上記ビ
タミン類を、ニコチン酸を1〜10mg含有して構成し
ことが有効である。更にまた、必要に応じ、上記ビタ
ミン類を塩酸ピリドキシンとした構成とした。また、上
記ビタミン類を、塩酸ピリドキシンを5〜20mg含有
して構成したことが有効である。また、必要に応じ、上
記ビタミン類をミオイノシトールとした構成とした。
た、上記ビタミン類を、ミオイノシトールを5〜20m
g含有して構成したことが有効である。ラン科植物の培
養ではビタミン類が培養を促進させる効果があることが
多く、その選択は重要であるが、上記のビタミンを添加
することにより、発芽及び継代培養中、植物体にビタミ
ンがバランス良く有効に作用する。
[0010] If necessary, the above saccharides may be made into saccharose. And if necessary, the above vitamins were configured to be thiamine hydrochloride. In addition, the above Vita
Mins containing 5 to 20 mg of thiamine hydrochloride.
And it is effective. And if necessary, the above-mentioned vitamins are configured to be nicotinic acid. In addition,
Tamines containing 1 to 10 mg of nicotinic acid
And it is effective. Furthermore, if necessary, the above vitamins were constituted by pyridoxine hydrochloride. Also on
Contains the vitamins, pyridoxine hydrochloride 5-20 mg
It is effective to have the configuration . If necessary, the above-mentioned vitamins were configured to be myo-inositol. Ma
The above vitamins, myo-inositol 5-20m
It is effective that g is contained . In cultivation of orchid plants, vitamins often have the effect of promoting cultivation, and the selection is important. By adding the above-mentioned vitamins, vitamins are balanced in the plant during germination and subculture. Works well and effectively.

【0011】そして、必要に応じ、上記ゲル化剤として
ゲランガムを用いた構成とした。このことにより、発芽
及び発育に効果がある。
[0011] Then, if necessary, has a structure using gellan gum as the gelling agent. This has an effect on germination and growth.

【0012】また、必要に応じ、上記水溶液中に添加物
として活性炭を併用した構成とした。活性炭を添加する
ことにより、発芽後の継代培養中において植物体の褐変
の発生を抑えるので褐変死させることなく生育させて生
存率を高めることができる。この場合、上記活性炭を
0.5〜3g含有したことが有効である。
[0012] If necessary, the above aqueous solution may be used in combination with activated carbon as an additive. By adding activated charcoal, the occurrence of browning of the plant body during subculture after germination is suppressed, so that the plant can be grown without browning death and the survival rate can be increased. In this case, it is effective to contain 0.5 to 3 g of the activated carbon.

【0013】次にまた、本発明のアツモリソウ属植物用
培養液の研究の際に開発されたアツモリソウ属植物の培
養方法について挙げる。 このアツモリソウ属植物の培養
方法は、アツモリソウ属植物を種子から培養するアツモ
リソウ属植物の培養方法において、選別して使用する種
子を得る種子選別工程と、得られた種子を培養液を用い
て無菌的に固形培地に播種する無菌播種工程と、播種
後、発芽するまで培養する発芽培養工程と、発芽し器官
分化したものを培地を替えて継代培養する継代培養工程
と、培養苗がある一定の大きさに生育したら低温の環境
下にさらす低温処理工程と、低温処理終了後、用土に植
え替える鉢上げ工程とを備えた構成とした。これによ
り、培地に種子を播種した後、プロトコームが形成され
発芽率が驚異的に向上する。培地に種子を播種して無菌
播種から栄養、温度、湿度等の条件を理想的な状態で生
育して苗まで成長させたアツモリソウ属植物を自然の栽
培環境に移す鉢上げ前に低温処理が行なわれ、苗が環境
の変化に対して丈夫になり順化が順調に行なわれる。
Next, the present invention relates to the
Cultivation of the plant of the genus Hemlock developed during the study of the culture solution
Nourishment methods are listed. The method of culturing the A Tsumorisou genus plant is used in the culture method of Cypripedium plant culturing Cypripedium plants from seeds, and seed selection steps to obtain the seeds to select and use the resulting seeds culture sterile Aseptic seeding step of seeding solid medium, germination culturing step of seeding and culturing until germination, subculture step of subculturing germinated and organ differentiated by changing medium, and cultured seedling The plant was configured to include a low-temperature treatment step of exposing it to a low-temperature environment after growing to a certain size, and a pot-raising step of replanting the soil after the low-temperature treatment. Thereby, after sowing the seeds in the medium, a protocomb is formed, and the germination rate is remarkably improved. The seeds are sown in a medium, and aseptic sowing is performed under the conditions of nutrition, temperature, humidity, etc. under ideal conditions. The seedlings are resilient to environmental changes and acclimatization proceeds smoothly.

【0014】そして、必要に応じ、上記培養液を培地と
は異なる組成の培養液とする構成とした。このことによ
り、培地の成分による要素だけでなく、培養液の成分の
要素も加わるので栄養が豊富となり、発芽を促進させる
ことができる。また、必要に応じ、上記発芽培養工程に
おいて、播種した培地を暗黒下において培養する構成と
した。アツモリソウ属植物は光に敏感で、光に当てると
褐変が発生して褐変死してしまう。また、必要に応じ、
上記発芽培養工程において、播種した培地を10〜25
℃の環境において培養する構成とした。アツモリソウ属
植物の培養において最適な温度であり、25℃より高い
と褐変が発生して褐変死してしまう。また、10℃に満
たない温度では、生育が遅く、褐変も発生して褐変死し
てしまう。
[0014] If necessary, the above-mentioned culture solution may be a culture solution having a composition different from that of the medium. With this, not only elements due to the components of the medium but also components of the culture solution are added, so that nutrients are abundant and germination can be promoted. If necessary, in the germination culture step, the seeded medium was cultured in the dark. Cypripedium plants are sensitive to light, and when exposed to light, browning occurs and browns to death. Also, if necessary,
In the germination culture step, the inoculated medium was
It was configured to culture in an environment of ° C. It is the optimal temperature for cultivation of a plant of the genus Athliana. If the temperature is higher than 25 ° C., browning occurs and browning ends. If the temperature is lower than 10 ° C., the growth is slow, browning occurs, and browning occurs.

【0015】そして、必要に応じ、上記継代培養工程に
おいて、培地に培養液を添加する構成とした。種子や発
芽直後の植物体及び幼い苗において乾燥に耐えることが
できず死んでしまう危険性が高いが、培養液を添加する
ことにより乾燥することなく、また、液体のため栄養素
を吸収し易く、更には発芽後の培養中の褐変死の発生を
抑えて生存率を高めることができる。また、必要に応
じ、上記継代培養工程において、培地を10〜25℃の
環境において培養する構成とした。アツモリソウ属植物
の培養において最適な温度であり、25℃より高いと褐
変が発生して褐変死してしまう。また、10℃に満たな
い温度では、生育が遅く、褐変も発生して褐変死してし
まう。
[0015] If necessary, a culture solution is added to the medium in the subculturing step. There is a high risk of dying in the seeds and plants immediately after germination and young seedlings that cannot withstand drying, but do not dry by adding a culture solution, and easily absorb nutrients for the liquid, Furthermore, the occurrence of browning death during cultivation after germination can be suppressed, and the survival rate can be increased. Further, if necessary, in the above subculture step, the medium was cultured in an environment of 10 to 25 ° C. It is the optimal temperature for cultivation of a plant of the genus Athliana. If the temperature is higher than 25 ° C., browning occurs and browning ends. If the temperature is lower than 10 ° C., the growth is slow, browning occurs, and browning occurs.

【0016】そして、必要に応じ、上記低温処理工程に
おいて、低温処理期間を30〜90日とした構成とし
た。この場合、望ましくは、上記低温処理工程におい
て、低温処理期間を60日±5日としたことが有効であ
る。アツモリソウ属植物において、培養によって順調に
生育した苗を自然環境においても生育させるために低温
下に置く春化処理が90日以上必要とされている。しか
し、本培養方法では、60日±5日程度の低温処理工程
において春化処理と同様の効果が得られる。
[0016] If necessary, the low-temperature treatment step may have a low-temperature treatment period of 30 to 90 days. In this case, desirably, in the low-temperature treatment step, the low-temperature treatment period is set to 60 days ± 5 days. Vernalization treatment in which the seedlings grown by cultivation have been successfully grown by cultivation in a natural environment is required to be kept at a low temperature for 90 days or more in order to grow them in the natural environment. However, in the present culture method , the same effect as the vernalization treatment can be obtained in the low-temperature treatment step of about 60 days ± 5 days.

【0017】更にまた、必要に応じ、上記低温処理工程
において、低温処理温度を0〜10℃とした構成とし
た。0℃より低温であると、幼苗が凍り、壊死してしま
う。また、10℃より温度が高くなると、低温処理の効
果が見られず順調に成長しない。この場合、望ましく
は、上記低温処理工程において、低温処理温度を3〜5
℃としたことが有効である。
Further, if necessary, the low-temperature processing step is configured so that the low-temperature processing temperature is 0 to 10 ° C. When the temperature is lower than 0 ° C., the seedling freezes and necroses. On the other hand, when the temperature is higher than 10 ° C., the effect of the low-temperature treatment is not seen and the growth does not proceed smoothly. In this case, desirably, in the low-temperature processing step, the low-temperature processing temperature is 3 to 5
C is effective.

【0018】また、この培養方法において用いる培養液
及び培地としては、上述の培養液及 び培地を用いること
が望ましい。この場合、発芽率が80%以上になり、発
芽後の生存率も70%以上となり、アツモリソウ属植物
の大量増殖が可能となり、鉢上げ後の苗を供給できる。
Further, a culture solution used in this culture method
And The medium, it is preferable to use a culture solution及 beauty culture medium described above. In this case, the germination rate becomes 80% or more, the survival rate after germination becomes 70% or more, the mass growth of genus Plants becomes possible, and seedlings after potting can be supplied.

【0019】[0019]

【発明の実施の形態】以下、添付図面に基づいて本発明
の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培養液につい
説明する。アツモリソウ属植物用培養液は、アツモリ
ソウ属植物の培養方法において用いられるので、この培
養方法の説明において説明する。
BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS FIG. 1 is a perspective view of a culture solution for a snapper plant according to an embodiment of the present invention.
Will be explained. Cypripedium plant for culture, because used in the process of culture A Tsumori <br/> Saw genus plants are described in the description of the culture methods.

【0020】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属
植物用培養液が用いられるアツモリソウ属植物の培養方
法は、図1乃至3に示すように、選別して使用する種子
を得る種子選別工程(1)と、得られた種子を無菌的に
固形培地に播種する無菌播種工程(2)と、播種後、発
芽するまで培養する発芽培養工程(3)と、発芽し器官
分化したものを培地を替えて継代培養する継代培養工程
(4)と、培養苗がある一定の大きさに生育したら低温
の環境下にさらす低温処理工程(5)と、低温処理終了
後、用土に植え替える鉢上げ工程(6)からなる。以下
に各工程を詳しく説明する。
[0020] Scutellaria genus according to an embodiment of the present invention
As shown in FIGS. 1 to 3, a method for cultivating a snapper plant using a plant culture solution is a seed selection step (1) of obtaining seeds to be used by sorting, and aseptically collecting the obtained seeds in a solid medium. Aseptic sowing step (2), germination culture step (3) of culturing after seeding until germination, and subculture step (4) of subculture of germinated and differentiated organs by changing the medium. A low-temperature treatment step (5) of exposing the cultured seedlings to a certain size when exposed to a low-temperature environment; and a potting step (6) of replanting the medium after the low-temperature treatment. Hereinafter, each step will be described in detail.

【0021】(1)種子選別工程 先ず、無菌播種に使用する培養に適した優良なアツモリ
ソウの種子を以下のようにして得る。 人工交配 開花から30日以内、望ましくは開花から1週間以内ま
での花を選び花粉を採取して交配先となる株の受精先に
花粉を受粉させ交配を完了させる。 さやの保護 人工交配終了後、交配が確認できたら直ちに病害虫によ
る被害から防ぐためさや全体を袋で覆う。また、袋で覆
わない場合には、定期的に殺菌剤をさやにかける。 さやの採取時期 人工交配終了後、40〜120日までのさや、望ましく
は、60〜80日のさやを採取し無菌播種の材料として
使用する。ここで、アツモリソウでは胚の形成が始まる
交配後60日前後の種子が最も発芽率が高く、望まし
い。交配後40日に満たないと胚が充分に形成されてお
らず、交配後80日を過ぎると発芽率が低下する。 種子選別 採取したさやを殺菌処理した後、さやから種子を取出
し、顕微鏡にて種子内部にある胚を観察し選別する。種
子は、発芽能力が高いものの特徴である胚の形状が丸み
を帯びていて、かつ、胚の色が白又は黄色のものを選
ぶ。胚の色が白又は黄色のものは、発芽抑制物質の影響
を受けていないため、発芽し易い。逆に胚の形状が細
く、米状のものは発芽能力が低い。また、胚の色が茶色
又は黒っぽいものは発芽能力が極めて低い。
(1) Seed Sorting Step First, excellent seeds of snapdragons suitable for culture used for aseptic sowing are obtained as follows. Artificial Crossing Within 30 days after flowering, preferably within one week after flowering, pollen is collected, pollen is pollinated at the fertilization destination of the strain to be mated, and mating is completed. Protection of pods After the end of artificial mating, if mating is confirmed, cover the entire pod with a bag to prevent damage from pests and insects. If not covered with a bag, germicide is regularly applied to the sheath. Pod collection time Pods of up to 40 to 120 days, preferably 60 to 80 days after completion of artificial mating are collected and used as aseptic seeding material. Here, in Hemlock, seeds around 60 days after mating, at which embryo formation begins, have the highest germination rate and are desirable. Embryos are not sufficiently formed until less than 40 days after mating, and the germination rate decreases after 80 days after mating. Seed sorting After the collected pods are sterilized, the seeds are removed from the pods, and the embryos inside the seeds are observed and selected using a microscope. The seeds are selected from those having high germination ability, having a rounded embryo shape, which is characteristic, and having a white or yellow embryo color. Embryos that are white or yellow in color are not susceptible to germination inhibitors and therefore are easy to germinate. Conversely, the shape of the embryo is thin, and the rice-like one has low germination ability. Embryos with brown or black color have extremely low germination ability.

【0022】(2)無菌播種工程 選別した種子を培養液に入れて、無菌的に発芽の際に用
いる発芽用培地に播種する。培養液中の種子を培地に流
し入れて種子が培地全体に広がるように拡散する。この
ときフラスコ内の種子は約300〜1000個である。
(2) Aseptic Seeding Step The selected seeds are put into a culture solution and aseptically seeded on a germination medium used for germination. The seeds in the culture solution are poured into the medium and spread so that the seeds spread throughout the medium. At this time, there are about 300 to 1000 seeds in the flask.

【0023】ここで用いる培養液は、本発明の実施の形
態に係る培養液であり、サッカロース0〜10gと、木
酢液0.1〜2.0mlと、ビタミン類として塩酸チア
ミン1〜10mg,ニコチン酸1〜5mg,塩酸ピリド
キシン1〜10mg及びミオイノシトール5〜20mg
と、植物活性剤0.1〜1.0mlとを用い、これらの
添加物に蒸留水を加え、0.1Nの塩酸や0.1Nの水
酸化ナトリウムを用いてpH5.5〜6.0に調整した
培養液1000mlを得た。その後、オートクレーブで
高圧殺菌し、無菌室内で放冷する。 ここで、植物活性剤
は、粗タンパク質0.05〜0.15重量%、粗脂肪
0.3〜0.5重量%、無機質として、Na35〜45
mg/l、Ca30〜35mg/l、Fe1.5〜2.
0mg/l、Mg3.0〜4.0mg/l、Si7.0
〜8.0mg/l、N90〜100mg/lを備えてい
る。例えば、植物活性剤としては、市販されている商品
であるHB101(株式会社フローラ社製)やメネデー
ル(株式会社メネデール化学研究所社製)が用いられ
る。
The culture solution used here is the culture solution according to the embodiment of the present invention, and contains 0-10 g of saccharose, 0.1-2.0 ml of wood vinegar, 1-10 mg of thiamine hydrochloride as a vitamin, nicotine. 1-5 mg of acid, 1-10 mg of pyridoxine hydrochloride and 5-20 mg of myo-inositol
And 0.1 to 1.0 ml of a plant active agent, distilled water is added to these additives, and the pH is adjusted to 5.5 to 6.0 using 0.1 N hydrochloric acid or 0.1 N sodium hydroxide. 1000 ml of the adjusted culture solution was obtained. Then, high pressure sterilization by autoclaving, cool sterile room. Here, the plant active agent is composed of 0.05 to 0.15% by weight of crude protein, 0.3 to 0.5% by weight of crude fat, and 35 to 45% Na as an inorganic substance.
mg / l, Ca 30-35 mg / l, Fe 1.5-2.
0 mg / l, Mg 3.0-4.0 mg / l, Si 7.0
-8.0 mg / l, N90-100 mg / l. For example, HB101 (manufactured by Flora Co., Ltd.) or Menedale (manufactured by Menedale Chemical Laboratory Co., Ltd.), which are commercially available, are used as the plant activator.

【0024】また、ここで用いるアツモリソウ属植物用
培地は、窒素が6.5,リン酸が6及びカリウムが19
の比率(重量%)で含有されている肥料(市販されてい
る商品名「ハイポネックス」(株式会社ハイポネックス
社製))1〜3gと、ペプトン1〜3gと、サッカロー
ス10〜30gと、ビタミン類として塩酸チアミン5〜
20mg,ニコチン酸1〜10mg,塩酸ピリドキシン
5〜20mg及びミオイノシトール5〜20mgと、植
物活性剤0.1〜1.0mlとを用い、これらの添加物
に蒸留水を加え、0.1Nの塩酸や0.1Nの水酸化ナ
トリウムを用いてpH5.5〜6.0に調整して100
0mlの水溶液を得る。そして、この水溶液に、ゲル化
剤としてゲランガム3〜4gを加え、その後、攪拌しな
がら加熱してゲランガムを溶かし、フラスコに約50m
lずつ分注し、オートクレーブで高圧殺菌して、無菌室
内で放冷して、凝固させる。植物活性剤としては、上述
したと同様の成分を有し、例えば、市販されている商品
であるHB101(株式会社フローラ社製)やメネデー
ル(株式会社メネデール化学研究所社製)が用いられ
る。尚、培地に含まれるビタミン類は上述した培養液の
2倍の重量となる。
[0024] In addition, Cypripedium for plants Ru used here
The medium contains 6.5 nitrogen, 6 phosphate and 19 potassium.
As fertilizers (commercially available under the trade name "Hyponex" (manufactured by Hyponex Co., Ltd.)) 1-3 g, peptone 1-3 g, saccharose 10-30 g, and vitamins Thiamine hydrochloride 5
Using 20 mg, 1 to 10 mg of nicotinic acid, 5 to 20 mg of pyridoxine hydrochloride and 5 to 20 mg of myo-inositol and 0.1 to 1.0 ml of a plant active agent, distilled water was added to these additives, and 0.1N hydrochloric acid was added. Or adjusted to pH 5.5 to 6.0 using 0.1N sodium hydroxide and
0 ml of an aqueous solution is obtained. Then, 3 to 4 g of gellan gum is added to this aqueous solution as a gelling agent, and then heated with stirring to dissolve gellan gum, and the flask is heated to about 50 m.
The mixture is dispensed in 1-liter increments, sterilized by autoclaving under high pressure, allowed to cool in a sterile room, and solidified. As the plant active agent, the same components as described above are used. For example, commercially available products such as HB101 (manufactured by Flora Co., Ltd.) and Menedale (manufactured by Menedale Chemical Laboratory Co., Ltd.) are used. The weight of the vitamins contained in the medium is twice that of the above-mentioned culture solution.

【0025】(3)発芽培養工程 無菌播種終了後、室温を15〜20℃に設定し暗黒下に
置き培養を開始する。尚、培養を暗黒下で行なうのは、
光に当たると種子が褐変して死滅してしまうためであ
る。播種後、約2〜3カ月で、PLB(プロトコーム)
が見られ発芽する。その後、器官分化が見られるまで、
培養する。 (4)継代培養工程 発芽し器官分化したものを培地を替えて継代培養する。
ここで用いる培地は、発芽用培地に活性炭を0.5〜
3.0g加えた組成の継代培養用培地である。活性炭を
加えた継代培養用培地にピンセットを使い移して、培地
上に培養液を培地50ml中に約0.5〜1.0ml添
加した後、暗黒下に置き、室温を10〜25℃に設定し
て培養を開始する。継代培養は1〜6カ月行なう。この
間、培地の植え替えを上記と同様に1〜5回行ない、そ
の際に培養液も添加する。ここで、培養苗の生育を進め
たいとき、茎葉部の発生が見られたらごくわずかな光
(光量は、0〜2000lux(ルクス))を照射して
も差支えない。
(3) Germination culture step After aseptic seeding, the room temperature is set to 15 to 20 ° C. and the culture is started in the dark. The culture is performed in the dark because:
This is because the seeds brown and die when exposed to light. About 2 to 3 months after sowing, PLB (protocomb)
Seeds and germinates. Then, until organ differentiation is seen,
Incubate. (4) Subculture Step The germinated and organ differentiated cells are subcultured by changing the medium.
The culture medium used here is a germination medium containing 0.5 to
This is a subculture medium having a composition to which 3.0 g is added. Transfer the tweezers to the subculture medium to which activated carbon has been added, add about 0.5 to 1.0 ml of the culture solution in 50 ml of the medium onto the medium, and place the medium in the dark, and bring the room temperature to 10 to 25 ° C. Set and start culture. Subculture is performed for 1 to 6 months. During this time, the medium is replaced one to five times in the same manner as described above, and at that time, a culture solution is also added. Here, when it is desired to promote the growth of the cultured seedlings, if generation of the foliage is observed, a very small amount of light (the light amount is 0 to 2000 lux (lux)) may be irradiated.

【0026】(5)低温処理工程 培養苗が約10mm以上に成長したら、温度を3〜5℃
に設定して60日以上、低温の環境に置く。アツモリソ
ウ属植物において、培養によって順調に生育した苗を自
然環境においても生育させるために低温下に置く春化処
理が90日以上必要とされている。しかし、本培養方法
では、60日以上の低温処理工程において90日以上の
春化処理と同様の効果が得られる。 (6)鉢上げ工程 低温処理終了後、用土に植え替えて鉢上げする。鉢上げ
は、培地上で生育した培養苗をピンセットを使い取り出
し、水又は殺菌剤を加えた水に浸けて苗を充分に湿らせ
る。次に、予め準備した鉢に用土を加え、その土中に深
さ約1cm程度の穴をつくり苗全体が埋没するように
(植物体を外に出さないようにする)植えつけて鉢上げ
する。栽培開始後、土から植物体が伸長し、生育を開始
する。
(5) Low temperature treatment step When the cultured seedlings have grown to about 10 mm or more, the temperature is raised to 3 to 5 ° C.
And place in a low temperature environment for 60 days or more. Vernalization treatment in which the seedlings grown by cultivation have been successfully grown by cultivation in a natural environment is required to be kept at a low temperature for 90 days or more in order to grow them in the natural environment. However, in the main culture method , the same effect as the vernalization treatment for 90 days or more can be obtained in the low-temperature treatment step for 60 days or more. (6) Pot-raising process After the low-temperature treatment is completed, the plants are replanted into a medium and then potted. To raise the pots, the cultured seedlings grown on the medium are taken out using tweezers, and immersed in water or water containing a bactericide to wet the seedlings sufficiently. Next, soil is added to the pot prepared in advance, and a hole having a depth of about 1 cm is made in the soil, planted so that the whole seedling is buried (so that the plant body is not taken out), and potted. . After the start of cultivation, the plant elongates from the soil and starts growing.

【0027】従って、本培養方法によれば、発芽率が著
しく高く、また、培養中に褐変の発生を抑えて生育させ
ることができるので生存率も高くアツモリソウ属植物の
大量増殖を図ることができる。また、鉢上げ工程を春に
行なうように培養を行なうと、アツモリソウの生育サイ
クルと季節が一致して鉢上げ後もアツモリソウを順調に
成長させることができる。
Therefore, according to the present culturing method , the germination rate is extremely high, and the cultivation can be carried out while suppressing the occurrence of browning during the cultivation. . In addition, when the cultivation is performed such that the potting step is performed in the spring, the growth cycle of the snapper and the season coincide with each other, so that the snapper can be smoothly grown even after the potting.

【0028】[0028]

【実施例】(A)培養液(「遠野培養液」と命名) 本発明の実施例に係る培養液は、図4に示すように、サ
ッカロース10gと、木酢液1.0〜2.0mlと、ビ
タミン類として塩酸チアミン5mg,ニコチン酸2.5
mg,塩酸ピリドキシン5mg及びミオイノシトール1
0mgとを用い、これらの添加物に蒸留水を加えるとと
もに、植物活性剤としてのHB101(株式会社フロー
ラ社製)を0.1〜1.0ml適宜に滴下し、更に、
0.1Nの塩酸や0.1Nの水酸化ナトリウムを用いて
pH5.65に調整して、1000mlの培養液を得
た。この植物活性剤としてのHB101は、粗タンパク
質0.1%、粗脂肪0.4%、無機質として、Na41
mg/l、Ca33mg/l、Fe1.8mg/l、M
g3.3mg/l、Si7.4mg/l、N97mg/
lを備えている。水素イオン濃度(原液)は、pH4.
0である。その後、オートクレーブで高圧殺菌し、無菌
室内で放冷した。
Example (A) Culture solution (named "Tono culture solution") As shown in FIG. 4, a culture solution according to an example of the present invention comprises 10 g of saccharose, 1.0 to 2.0 ml of wood vinegar solution. Thiamine hydrochloride 5mg as vitamins, nicotinic acid 2.5
mg, pyridoxine hydrochloride 5 mg and myo-inositol 1
0 mg, distilled water was added to these additives, and 0.1 to 1.0 ml of HB101 (produced by Flora Co., Ltd.) as a plant activator was appropriately added dropwise.
The pH was adjusted to 5.65 using 0.1N hydrochloric acid or 0.1N sodium hydroxide to obtain 1000 ml of a culture solution. HB101 as a plant activator is composed of 0.1% crude protein, 0.4% crude fat, and Na41 as mineral.
mg / l, Ca 33 mg / l, Fe 1.8 mg / l, M
g 3.3 mg / l, Si 7.4 mg / l, N97 mg / l
1 is provided. The hydrogen ion concentration (stock solution) was pH 4.
0. Thereafter, the mixture was sterilized by high pressure in an autoclave and allowed to cool in a sterile room.

【0029】(B)発芽用培地(「遠野培地」と命名)本培養方法に係る培地 は、図5に示すように、肥料とし
て「ハイポネックス」(株式会社ハイポネックス社製)
を用いた。ここで、「ハイポネックス」は、窒素が6.
5,リン酸が6及びカリウムが19の比率(重量%)で
含有されている肥料である。そして、「ハイポネック
ス」2gと、ペプトン2gと、サッカロース20gと、
ビタミン類として塩酸チアミン10mg,ニコチン酸5
mg,塩酸ピリドキシン10mg及びミオイノシトール
20mgとを用い、これらの添加物に蒸留水を加えると
ともに、植物活性剤としてのHB101(株式会社フロ
ーラ社製)0.1〜1.0mlを適宜に滴下し、更に、
0.1Nの塩酸及び0.1Nの水酸化ナトリウムを用い
てpH5.65に調整して、1000mlの水溶液を得
た。この状態の水溶液に、ゲル化剤としてゲランガム3
〜4gを、攪拌しながら加熱して溶かし、フラスコに約
50mlずつ分注し、オートクレーブで高圧殺菌して、
無菌室内で放冷して、凝固させる。(C)継代培養用培
地(「遠野培地」と命名)本培養方法に係る継代培養用培地 は、上記水溶液中に添
加物として活性炭を0.5〜3.0g含有させた組成の
ものを用いた。
(B) Germination medium (named "Tono medium") The medium according to the main culture method is, as shown in FIG. 5, "Hyponex" (manufactured by Hyponex Co., Ltd.) as a fertilizer.
Was used. Here, "Hyponex" means that nitrogen is 6.
5, a fertilizer containing 6 phosphoric acid and 19 potassium (weight%). And 2 g of "Hyponex", 2 g of peptone, 20 g of saccharose,
Thiamine hydrochloride 10mg, nicotinic acid 5 as vitamins
mg, pyridoxine hydrochloride 10 mg and myo-inositol 20 mg, distilled water was added to these additives, and 0.1 to 1.0 ml of HB101 (produced by Flora Co., Ltd.) as a plant activator was appropriately added dropwise. Furthermore,
The pH was adjusted to 5.65 using 0.1 N hydrochloric acid and 0.1 N sodium hydroxide to obtain 1000 ml of an aqueous solution. Gellan gum 3 is added to the aqueous solution in this state as a gelling agent.
44 g was dissolved by heating with stirring, dispensed into flasks by about 50 ml each, and sterilized by autoclaving under high pressure.
Allow to cool in a sterile room to solidify. (C) Subculture medium (named "Tono medium") The subculture medium according to the main culture method has a composition containing 0.5 to 3.0 g of activated carbon as an additive in the aqueous solution. Was used.

【0030】培養方法は、上述した方法に従って行なっ
た。尚、継代培養工程(4)において、継代培養は1〜
6カ月で、培地の植え替えを1〜5回行ない、培養苗
約10mm以上に成長させた。そして茎葉部が発生して
も光を照射することなく培養した。また、低温処理工程
(5)においては、苗を温度を3〜5℃に設定して暗所
に60日間、低温の環境に置いた。
The culture method, and therefore were carried out to the above-described method. In the subculturing step (4), the subculturing is 1 to
At 6 months, the medium was replanted 1 to 5 times, and the cultured seedlings were grown to about 10 mm or more. The cells were cultured without irradiating light even if stems and leaves were generated. In the low-temperature treatment step (5), the temperature of the seedling was set at 3 to 5 ° C., and the seedling was placed in a low-temperature environment for 60 days in a dark place.

【0031】[0031]

【実験例】(I−I)発芽用培地の実験 先ず、本培養方法に係る培地(B)について比較例とと
もに以下の実験をした。発芽用培地の比較例として、M
S培地,ハイポネックス培地,MT培地,ナドソンB培
地,ナドソンC培地,リングマイヤー・スクーグ培地,
ホワイト培地,ベーシン・ベント培地,ウインバー培
地,Burgeft.H.Eg−1培地,カーチス.J
培地,山田培地,バナナ蜂蜜(唐澤)培地,フイツシュ
・ソリュブル培地,洋ラン用タマネギ培地,GS培地,
京都ソリューション培地,Burgeft N3 F培
地,ガンボーグB5培地,ハーバース培地の計20種類
の培地を用いた。これらの培地に、アツモリソウの種子
を無菌播種した。尚、播種の際に種子の拡散のために用
いたのは滅菌水のみであり、他の工程は、上述した培養
方法と同様である。結果を図6に示す。この結果、本培
養方法に係る培地は調整が比較的簡易に行なうことがで
き、発芽,生育ともに良好であった。
[Experimental Examples] (II) Experiments on germination medium First, the following experiment was conducted on the medium (B) according to the main culture method together with Comparative Examples. As a comparative example of a germination medium, M
S medium, Hyponex medium, MT medium, Nadson B medium, Nadson C medium, Ringmeyer-Skoog medium,
White medium, Basin bent medium, Winver medium, Burgeft. H. Eg-1 medium, Curtis. J
Medium, Yamada medium, banana honey (Karazawa) medium, fish soluble cultivation medium, western orchid onion medium, GS medium,
A total of 20 kinds of culture mediums, a Kyoto solution medium, a Burgeft N 3 F medium, a Gamborg B5 medium, and a Harvars medium, were used. Aspergillus seeds were aseptically seeded on these media. It is to be noted that only sterilized water was used for spreading the seeds at the time of sowing, and the other steps were the same as those in the culture method described above. FIG. 6 shows the results. As a result, the present culture
The medium according to the feeding method could be adjusted relatively easily, and both germination and growth were good.

【0032】 (I−II)発芽用培地及び継代培養用培地の実験 各培地による発芽と生育の違いを調べるため、本培養方
法に係る培地(B)及び(C)について比較例とともに
以下の実験をした。発芽用培地及び継代培養用培地の比
較例として、本培養方法に係る培地の成分を1/2にし
て作成した培地(本培養方法に係る培地の濃度の1/2
の培地),ハーバース培地,MT培地,MS培地の計4
種類の培地にアツモリソウの種子を無菌播種した。尚、
播種用培地、継代培養用培地以外は、上述した培養方法
と同様に行なった。そして、播種から2カ月後,4カ月
後,6カ月後の生育した苗の高さを測定した。結果を図
7及び8に示す。本培養方法に係る培地(B)及び
(C)を順に使用した最終の発芽率は82.6%と最も
高く、本培養方法に係る培地の成分を1/2にして作成
した培地の発芽率は71.0%,ハーバース培地の発芽
率は70.5%,MT培地の発芽率は1.4%,MS培
地の発芽率は0.6%であった。また、図8において、
播種から2カ月後,4カ月後,6カ月後の生育した苗の
高さは、苗20〜30個の平均の値である。この結果、
本培養方法に係る培地で培養したアツモリソウの苗は播
種から6カ月後に平均値で50mmとなり、他の培地で
培養した苗の平均値より生育したことが分かる。
(I-II) Experiment on germination medium and subculture medium In order to examine the difference between germination and growth in each medium ,
The following experiment was conducted with the comparative examples for the culture media (B) and (C) according to the method. As a comparative example of the germination medium and the subculture medium, a medium prepared by halving the components of the medium according to the main culture method (1/2 of the concentration of the medium according to the main culture method)
Medium), Havers medium, MT medium, MS medium
Aspergillus seeds were aseptically seeded on various media. still,
The culture was performed in the same manner as the above-described culture method, except for the seeding medium and the subculture medium. The height of the grown seedlings was measured two months, four months, and six months after sowing. The results are shown in FIGS. The final germination rate using the mediums (B) and (C) according to the main culture method was the highest at 82.6%, and the germination rate of a medium prepared by halving the components of the medium according to the main culture method. Was 71.0%, the germination rate of the Havers medium was 70.5%, the germination rate of the MT medium was 1.4%, and the germination rate of the MS medium was 0.6%. In FIG. 8,
The height of the grown seedlings two months, four months and six months after sowing is the average value of 20 to 30 seedlings. As a result,
Six months after seeding, the seedlings of snapdragon cultivated in the medium according to the main culture method became 50 mm on average, indicating that the seedlings cultured in other mediums grew.

【0033】(II)培養液の実験 各培養液による発芽と生育の違いを調べるため、本発明
の実施例に係る培養液について比較例とともに以下の実
験をした。滅菌水とサッカロースにHB101を添加
した液,滅菌水とサッカロースに木酢液を添加した
液,滅菌水とサッカロースにHB101と木酢液を添
加した液,滅菌水とサッカロースに木酢液とビタミン
を添加した液の培養液を用いて、培養を行なった。ま
た、の液においてHB101の添加濃度を変えた液で
も調べてみた。尚、培養液以外は、上述した培養方法と
同様に行なった。結果を図9に示す。この結果から、滅
菌水とサッカロースにHB101と木酢液とビタミンを
添加した本発明の培養液が最も褐変の発生を抑え、生育
が良好であった。
(II) Experiments on Culture Solution In order to examine the difference between germination and growth of each culture solution, the following experiment was conducted on the culture solution according to the example of the present invention together with a comparative example. A solution obtained by adding HB101 to sterilized water and saccharose, a solution obtained by adding wood vinegar to sterilized water and saccharose, a solution obtained by adding HB101 and wood vinegar to sterilized water and saccharose, and a solution obtained by adding wood vinegar and vitamin to sterilized water and saccharose The culture was performed using the culture solution of (1). Further, a liquid obtained by changing the addition concentration of HB101 in the above liquid was also examined. In addition, it carried out similarly to the above-mentioned culture method except a culture solution. FIG. 9 shows the results. From these results, it was found that the culture solution of the present invention in which HB101, wood vinegar solution, and vitamins were added to sterilized water and saccharose suppressed the generation of browning most and showed good growth.

【0034】(III)培養温度の実験 各培養温度による影響を調べるため、本培養方法の発芽
培養工程(3)において、培養温度を変えた比較例とし
て以下の実験をした。培養は、10℃,15℃,20
℃,25℃,30℃の各温度で行ない、各温度の試験数
は50個として、培養中に褐変が発生して発芽しない割
合(褐変死率)を調べた。尚、培養温度以外は、上述し
た培養方法と同様に行なった。結果は図10に示すよう
に、25℃の培養では約70%、30℃の培養では約9
5%が褐変して死んでしまい、播種後の培養温度は10
〜20℃で行なうことが最適であることが分かった。
(III) Experiment of Culture Temperature In order to examine the influence of each culture temperature, the following experiment was performed as a comparative example in which the culture temperature was changed in the germination culture step (3) of the main culture method . Culture is performed at 10 ° C, 15 ° C, 20
C., 25.degree. C., and 30.degree. C., and the number of tests at each temperature was 50, and the rate at which browning occurred during culturing and did not germinate (browning death rate) was examined. In addition, it carried out similarly to the above-mentioned culture method except culture temperature. As shown in FIG. 10, the result was about 70% in the culture at 25 ° C. and about 9% in the culture at 30 ° C.
5% browned and died, and the culture temperature after seeding was 10
It has been found that performing at ~ 20 ° C is optimal.

【0035】(IV−I)低温処理の効果を調べる実験 低温処理の効果を調べるため、本培養方法と低温処理を
行なわない比較例として以下の実験をした。低温処理を
行なわないで20℃の暗所で60日間置いて鉢上げした
苗と20℃の明所で60日間置いて鉢上げした苗の生存
率を調べた。実施例において低温処理は、苗を3〜5℃
の暗所で60日間であるが、この低温処理工程において
明所においた場合の苗の鉢上げした後の生存率及びその
後の生育も調べた。尚、低温処理以外の条件は上述した
培養方法と同様に行なった。低温処理を行なわないで鉢
上げしたときの苗の生存率の結果は、図11に示すよう
に、暗所での生存率が7%でかなり低く、明所でも13
%で生存率が低い。これに対し、低温処理したものは、
暗所、明所ともに80%以上の高い生存率であり、わず
かに明所での生存率が高かった。また、低温処理の暗所
と明所のその後の生育の結果は、図12に示すように、
暗所は明所と比較して生育は劣るが褐変は発生せず、明
所では、茎葉部の色が薄くなったが生育は進んだ。しか
し明所ではわずかに褐変が発生した。
(IV-I) Experiment for Examining the Effect of Low-Temperature Treatment In order to examine the effect of low-temperature treatment, the following experiment was performed as a comparative example in which the main culture method and the low-temperature treatment were not performed. The survival rates of the seedlings that had been potted for 60 days in a dark place at 20 ° C. without a low-temperature treatment and the seedlings that had been potted for 60 days in a light place at 20 ° C. were examined. In the examples, the low-temperature treatment is performed by heating the seedlings at 3 to 5 ° C.
Of the seedlings in the dark place for 60 days, but also in the low-temperature treatment step, the survival rate of the seedlings after being potted and the subsequent growth were examined. The conditions other than the low-temperature treatment were the same as in the culture method described above. As shown in FIG. 11, the survival rate of the seedling when the pot was raised without performing the low-temperature treatment was as follows.
% Low survival rate. In contrast, low-temperature treated
Both the dark place and the light place had a high survival rate of 80% or more, and the survival rate in the light place was slightly higher. Further, as shown in FIG. 12, the results of the subsequent growth of the dark place and the light place of the low-temperature treatment were as follows:
In the dark place, the growth was inferior to the light place but no browning occurred. In the light place, the color of the foliage became light but the growth proceeded. However, light browning occurred slightly in the light.

【0036】 (IV−II)低温処理を行なうアツモリソウの成長状
態の実験 次に、低温処理を行なうアツモリソウの成長状態を調べ
るために、本培養方法と低温処理を行なわない比較例と
して以下の実験をした。実施例では、苗が10mm以上
に成長した状態で低温処理を行なった。比較例では、発
芽直後のプロトコーム,苗が5mm程度に成長した状態
で低温処理を行なった後の状態及びその後の生育を調べ
た。低温処理以外の条件は上述した培養方法と同様に行
なった。結果は図12に示すように、プロトコームでは
生育が止まり褐変死したものが見られ、5mm程度の植
物体では生育に変化が見られず、10mm以上の植物体
(苗)では生育が順調に進んだ。
(IV-II) Experiment on Growth State of Hemlock Performing Low-Temperature Treatment Next, the following experiment was performed as a comparative example in which the main culture method and the low-temperature treatment were not carried out in order to examine the growth state of snapper. did. In Examples, the low-temperature treatment was performed in a state where the seedlings had grown to 10 mm or more. In the comparative example, the state after low-temperature treatment and the subsequent growth were examined with the protocomb and the seedling immediately after germination grown to about 5 mm. The conditions other than the low-temperature treatment were performed in the same manner as in the culture method described above. As shown in FIG. 12, as shown in FIG. 12, in the protocomb, growth stopped and browning died. In plants of about 5 mm, no change was observed in growth, and in plants of 10 mm or more (seedling), growth proceeded smoothly. It is.

【0037】 (IV−III)低温処理を行なう期間の実験 次に、低温処理を行なう期間を調べるために、本培養方
と低温処理を行なわない比較例として以下の実験をし
た。本発明の実施例では60日間低温処理を行なった
が、比較例として、15日,30日,60日,90日の
各期間、約10mmの植物体(苗)を暗所で3〜5℃で
低温処理を行なった。結果は図13に示すように、60
日間,90日間の低温処理を行なった苗の生育が良好で
あったことから、60日以上行なうと低温処理の効果が
見られる。
[0037] (IV-III) of the period in which the low-temperature treatment experiment Next, in order to examine the period in which the low-temperature treatment, the culture lateral
The following experiment was performed as a comparative example in which the method and the low-temperature treatment were not performed. In the examples of the present invention, the low-temperature treatment was performed for 60 days. As a comparative example, plants (seedlings) of about 10 mm in each of 15 days, 30 days, 60 days, and 90 days were stored at 3 to 5 ° C. At low temperature. As shown in FIG.
Since the growth of the seedlings subjected to the low-temperature treatment for 90 days and 90 days was good, the effect of the low-temperature treatment is seen when the seedlings are treated for 60 days or more.

【0038】上記低温処理に関する各実験から、低温処
理は10mm以上に生育した苗を3〜5℃で60日以上
行なうことが最適であり、明るさは、暗所、明所どちら
でも構わないということが分かった。
According to the experiments on the low-temperature treatment, it is optimal that the low-temperature treatment is carried out at a temperature of 3 to 5 ° C. for 60 days or more at a low temperature treatment, and the brightness may be either dark or light. I understood that.

【0039】尚、上記実施の形態において、培地に植物
活性剤を添加したが、植物活性剤を添加することなく、
ポテトキューブを用いても良い。
In the above embodiment, a plant activator was added to the medium, but without adding the plant activator,
Potato cubes may be used.

【0040】[0040]

【発明の効果】以上説明したように、本発明のアツモリ
ソウ属植物用培養液によれば、アツモリソウ属植物を種
子から培養する際に用いられ水に添加物を添加してなる
アツモリソウ属植物用培養液において、培養液1000
ml中に、添加物として、木酢液0.1〜2.0ml
と、ビタミン類8〜45mgと、植物活性剤0.1〜
1.0mlとを含有した構成としたことから、液体のた
め種子が栄養分を吸収し易くプロトコームを形成させて
発芽率を向上させることができ、また、発芽後の継代培
養中に添加することにより植物体の褐変の発生を抑える
ので褐変死させることなく、更に植物体が栄養分を吸収
し易いため有効に作用し、順調に生育させて生存率を高
めることができる。
Industrial Applicability As described above, according to the culture solution for a snapper plant of the present invention, a culture solution for a snapper plant obtained by adding an additive to water, which is used when cultivating a snapper plant from a seed, is used. In the solution, the culture solution 1000
In ml, as an additive, wood vinegar liquid 0.1-2.0 ml
And vitamins 8 to 45 mg and plant active agent 0.1 to
Since the liquid contains 1.0 ml of liquid, the liquid easily absorbs nutrients to form a protocorm, thereby improving the germination rate, and is added during the subculture after germination. Thus, the occurrence of browning of the plant body is suppressed, so that the plant body can easily absorb nutrients without causing browning and death, so that the plant works effectively and grows smoothly, thereby increasing the survival rate.

【0041】そして、培養液をpH5.5〜6.0とし
た場合には、発芽及び培養の環境を最適にでき、発芽率
を向上させ生育を良好にすることができる。また、添加
物として糖類を併用した場合には、種子に栄養分を与え
ることができ発芽率が向上する。この場合、培養液10
00ml中に糖類を1〜10g含有したことが有効であ
る。そしてまた、糖類をサッカロースとし、ビタミン類
において、塩酸チアミンを1〜10mg、ニコチン酸を
1〜5mg、塩酸ピリドキシンを1〜10mg、ミオイ
ノシトールを5〜20mg含有した場合には、アツモリ
ソウ属植物の発芽率を向上させ、生育を促進させること
ができる。
When the pH of the culture solution is adjusted to 5.5 to 6.0, the environment for germination and culture can be optimized, the germination rate can be improved, and the growth can be improved. When saccharides are used in combination as additives, nutrients can be given to the seeds and the germination rate is improved. In this case, the culture solution 10
It is effective to contain 1 to 10 g of saccharide in 00 ml. In addition, when sugar is saccharose and vitamins contain 1 to 10 mg of thiamine hydrochloride, 1 to 5 mg of nicotinic acid, 1 to 10 mg of pyridoxine hydrochloride, and 5 to 20 mg of myo-inositol, germination of a snapper plant rate to improve, Ru can be made to promote growth.

【0042】[0042]

【0043】[0043]

【0044】[0044]

【0045】[0045]

【0046】[0046]

【0047】[0047]

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物
用培養液を用いた培養方法を示す工程図である。
FIG. 1 shows a plant of the genus Athliana according to an embodiment of the present invention.
FIG. 4 is a process chart showing a culture method using a culture solution for use .

【図2】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物
用培養液を用いた培養方法を示す工程図である。
FIG. 2 shows a plant of the genus Attachium according to the embodiment of the present invention.
FIG. 4 is a process chart showing a culture method using a culture solution for use .

【図3】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物
用培養液を用いた培養方法を示す工程図である。
FIG. 3 shows a plant of the genus Attachium according to the embodiment of the present invention.
FIG. 4 is a process chart showing a culture method using a culture solution for use .

【図4】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物
用培養液の組成を示す表図である。
FIG. 4 is a table showing the composition of a culture solution for a Scutellaria plant according to the embodiment of the present invention.

【図5】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物
用培養液を用いた培養方法におけるアツモリソウ属植物
用培地の組成を示す表図である。
FIG. 5: Species of the genus Athliana according to an embodiment of the present invention
FIG. 2 is a table showing the composition of a culture medium for a plant of the genus Hevea in a culture method using a culture solution for culture .

【図6】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物
用培養液を用いた培養方法におけるアツモリソウ属植物
用培地に係り他の培地での発芽を比較した結果を示す表
図である。
FIG. 6 shows a plant of the genus Hemlock according to the embodiment of the present invention.
FIG. 4 is a table showing the results of comparison of germination in other culture media with respect to a culture media for the Athens plant in a culture method using a culture solution for culture .

【図7】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物
用培養液を用いた培養方法におけるアツモリソウ属植物
用培地に係り他の培地での発芽率を示す図である。
FIG. 7 shows a plant of the genus Attachium according to the embodiment of the present invention.
FIG. 3 is a diagram showing the germination rate in a medium for a snapper plant in another culture medium in a culture method using a culture solution for culture .

【図8】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物
用培養液を用いた培養方法におけるアツモリソウ属植物
用培地に係り他の培地で培養した苗の生育状況を示す図
である。
FIG. 8 shows a plant of the genus Athliana according to an embodiment of the present invention.
It is a figure which shows the growth condition of the seedling cultured by the other culture medium concerning the culture medium for the genus Epimedium in the culture method using the culture solution for culture .

【図9】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物
の培養液に係り他の培養液による生育状況を示す図であ
る。
FIG. 9 is a diagram showing a growth state of a culture solution of a plant of the genus Hemperium according to the embodiment of the present invention, using another culture solution.

【図10】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植
物用培養液を用いた培養方法に係り培養温度による褐変
の発生状況を示す図である。
FIG. 10 shows a plant belonging to the genus Hemlock according to an embodiment of the present invention.
It is a figure which shows the generation | occurrence | production situation of browning by the culture temperature regarding the culture method using the culture liquid for products .

【図11】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植
物用培養液を用いた培養方法に係り、低温処理の効果を
示す図である。
FIG. 11 is a plant of the genus Attachium according to the embodiment of the present invention.
It is a figure which shows the effect of low-temperature processing regarding the culture method using the culture solution for articles .

【図12】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植
物用培養液を用いた培養方法に係り、低温処理を行なう
時期を変えた場合の生育状況を示す図である。
FIG. 12 shows a plant belonging to the genus Hemlock according to the embodiment of the present invention.
It is a figure which shows the growth situation at the time of changing the time which performs low-temperature processing regarding the culture method using the culture liquid for articles .

【図13】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植
物用培養液を用いた培養方法に係り、低温処理を行なう
期間を変えた場合の生育状況を示す図である。
FIG. 13 shows a plant belonging to the genus Hemlock according to the embodiment of the present invention.
It is a figure which shows the growth situation at the time of changing the period which performs low-temperature processing regarding the cultivation method using the culture liquid for articles .

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) A01G 7/00 A01G 1/00 A01H 4/00 ──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (58) Field surveyed (Int. Cl. 7 , DB name) A01G 7/00 A01G 1/00 A01H 4/00

Claims (13)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 アツモリソウ属植物を種子から培養する
際に用いられ水に添加物を添加してなるアツモリソウ属
植物用培養液において、 当該培養液1000ml中に添加物として、 木酢液0.1〜2.0mlと、 ビタミン類8〜45mgと、植物活性剤であって、粗タンパク質0.05〜0.15
重量%、粗脂肪0.3〜0.5重量%、無機質として、
Na35〜45mg/l、Ca30〜35mg/l、F
e1.5〜2.0mg/l、Mg3.0〜4.0mg/
l、Si7.0〜8.0mg/l、N90〜100mg
/lを備えている 植物活性剤0.1〜1.0mlとを含
有したことを特徴とするアツモリソウ属植物用培養液。
The present invention relates to a culture solution for a snapdragon plant which is used when cultivating a snapdragon plant from a seed and which is obtained by adding an additive to water. 2.0 ml, 8 to 45 mg of vitamins, and a plant active agent, crude protein 0.05 to 0.15
Weight%, crude fat 0.3-0.5 weight%, as minerals,
Na 35-45 mg / l, Ca 30-35 mg / l, F
e 1.5-2.0 mg / l, Mg 3.0-4.0 mg /
1, Si 7.0 to 8.0 mg / l, N 90 to 100 mg
/0.1 ml of a plant activator having 1 / l .
【請求項2】 上記培養液をpH5.5〜6.0とする
ことを特徴とする請求項1記載のアツモリソウ属植物用
培養液。
2. The culture solution for a plant of the genus Athleticum according to claim 1, wherein the culture solution has a pH of 5.5 to 6.0.
【請求項3】 上記添加物として糖類を併用したことを
特徴とする請求項1または2記載のアツモリソウ属植物
用培養液。
3. The culture solution for a plant of the genus Athliana according to claim 1, wherein a saccharide is used as the additive.
【請求項4】 上記培養液1000ml中に糖類を1〜
10g含有したことを特徴とする請求項3記載のアツモ
リソウ属植物用培養液。
4. The method according to claim 1, wherein the saccharide is added in an amount of 1 to 1000 ml of the culture solution.
The culture solution for a plant of the genus Athliana according to claim 3, comprising 10 g.
【請求項5】 上記糖類をサッカロースとしたことを特
徴とする請求項3または4記載のアツモリソウ属植物用
培養液。
5. The culture solution for a plant of the genus Athliana according to claim 3, wherein the saccharide is saccharose.
【請求項6】 上記ビタミン類を塩酸チアミンとしたこ
とを特徴とする請求項1,2,3,4または5記載のア
ツモリソウ属植物用培養液。
6. The culture solution for a plant of the genus Athletic plant according to claim 1, wherein the vitamins are thiamine hydrochloride.
【請求項7】 上記ビタミン類を、塩酸チアミンを1〜
10mg含有して構成したことを特徴とする請求項1,
2,3,4または5記載のアツモリソウ属植物用培養
液。
7. The method according to claim 1, wherein the vitamins are thiamine hydrochloride in an amount of 1 to 3.
The composition according to claim 1, characterized in that the composition comprises 10 mg.
The culture solution for a plant of the genus Apex genus according to 2, 3, 4 or 5 .
【請求項8】 上記ビタミン類をニコチン酸としたこと
を特徴とする請求項1,2,3,4または5記載のアツ
モリソウ属植物用培養液。
8. The culture solution for a plant of the genus Athletic plant according to claim 1, wherein the vitamins are nicotinic acid.
【請求項9】 上記ビタミン類を、ニコチン酸を1〜5
mg含有して構成し たことを特徴とする請求項1,2,
3,4,5または7記載のアツモリソウ属植物用培養
液。
9. The method according to claim 9, wherein the vitamins are nicotinic acid in an amount of from 1 to 5.
3. The composition according to claim 1, wherein
8. The culture solution for a plant of the genus Apex genus according to 3, 4, 5, or 7 .
【請求項10】 上記ビタミン類を塩酸ピリドキシンと
したことを特徴とする請求項1,2,3,4または5記
のアツモリソウ属植物用培養液。
10. The method of claim 1, 2, 3, 4 or 5 SL, characterized in that the vitamins and pyridoxine hydrochloride
The culture solution for the plants of the genus Atsuma.
【請求項11】 上記ビタミン類を、塩酸ピリドキシン
を1〜10mg含有して構成したことを特徴とする請求
項1,2,3,4,5,7または9記載のアツモリソウ
属植物用培養液。
11. The method according to claim 11, wherein the vitamins are pyridoxine hydrochloride.
Characterized by comprising 1 to 10 mg of
Item 1. A culture solution for a plant of the genus Athliana according to Item 1, 2, 3, 4, 5, 7, or 9 .
【請求項12】 上記ビタミン類をミオイノシトールと
したことを特徴とする請求項1,2,3,4または5記
のアツモリソウ属植物用培養液。
12. The method of claim 1, 2, 3, 4 or 5 SL, characterized in that the vitamins and myo-inositol
The culture solution for the plants of the genus Atsuma.
【請求項13】 上記ビタミン類を、ミオイノシトール
を5〜20mg含有して構成したことを特徴とする請求
項1,2,3,4,5,7,9または11記載のアツモ
リソウ属植物用培養液。
13. The method according to claim 12, wherein the vitamins are myo-inositol.
Characterized by comprising 5 to 20 mg of
Item 1. A culture solution for a plant of the genus Apex genus according to item 1, 2, 3, 4, 5, 7, 9, or 11 .
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