JP3277523B2 - Factor Xa linker DNA - Google Patents

Factor Xa linker DNA

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JP3277523B2
JP3277523B2 JP23443091A JP23443091A JP3277523B2 JP 3277523 B2 JP3277523 B2 JP 3277523B2 JP 23443091 A JP23443091 A JP 23443091A JP 23443091 A JP23443091 A JP 23443091A JP 3277523 B2 JP3277523 B2 JP 3277523B2
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Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、制限プロテアーゼ活性
を有する血液凝固因子Xaの認識アミノ酸配列に対応する
遺伝子、及び、それを含む融合遺伝子、発現ベクター、
該発現ベクターを保持する大腸菌とそれらの作製方法に
関する。
The present invention relates to a gene corresponding to a recognition amino acid sequence of blood coagulation factor Xa having a restriction protease activity, a fusion gene containing the same, an expression vector,
The present invention relates to Escherichia coli carrying the expression vector and methods for producing them .

【0002】[0002]

【従来の技術】大腸菌等の宿主細胞に外来の遺伝子を導
入して蛋白質を発現させる遺伝子工学の手法において、
既存の高効率発現ベクター中の構造遺伝子の途中に目的
とする遺伝子を挿入し、大量に融合蛋白質を得る手法が
有効である(例えば、マニアティス(Maniatis)等、モ
レキュラークローニング(Molecular Cloning): アラ
ボラトリ マニュアル(A Laboratory Manual)、第2
版、pp.17.3-17.9、コールド スプリング ハーバー
ラボラトリ プレス(Cold Spring HarborLaboratory P
ress)、1989)。その際、目的とする成熟型蛋白質を単
離するため、融合蛋白質の融合部位のみを特異的に切断
する、化学的あるいは酵素的なさまざまな手法が開発さ
れている(例えば、ディー ブイ ジョーデル(D.V. G
oeddel)編、メソッド イン エンザイモロジ(Method
s in Enzymology), 185,129-143 (1990))。その中で、
アミノ酸配列Ile-Glu-Gly-Argを特異的に認識し、Argの
C末端側を切断するプロテアーゼ活性を有する血液凝固
因子Xaを利用する手法が注目されている。その代表例
は、既存の発現ベクターの構造遺伝子中の制限酵素Bam
HI開裂部位に、因子Xa認識アミノ酸配列に対応する塩基
配列を含むDNAリンカー(以後XaリンカーDNAと略記)を挿
入し、リンカー内部の制限酵素Stu I開裂部位に、5'末
端を平滑化した目的とする遺伝子を挿入し、発現した融
合蛋白質を因子Xaで処理することにより、目的とする成
熟型蛋白質を得るというものである(キヨシ ナガイ
他、特開昭61-135591)。その他、ヒトB細胞分化因子遺
伝子の上流にXaリンカーDNAを融合した例(浅越義弘他、
特開平2-2353)、ヒト生長ホルモン遺伝子の上流にXaリ
ンカーDNAを融合した例(ギート・グランディ他、特開平2
-2386)、XaリンカーDNAの前後にグリシン数残基分をコ
ードする遺伝子を連結した例(アンドレアス・ブリュッ
クトウーン、特開平2-5881)が開示されている。
2. Description of the Related Art In a genetic engineering technique for introducing a foreign gene into a host cell such as Escherichia coli to express a protein,
It is effective to insert a target gene into the middle of a structural gene in an existing high-efficiency expression vector to obtain a large amount of a fusion protein (for example, Molecular Cloning such as Maniatis). Laboratory Manual (A Laboratory Manual), 2nd
Edition, pp. 17.3-17.9, Cold Spring Harbor
Laboratory Press (Cold Spring Harbor Laboratory P)
ress), 1989). At that time, various chemical or enzymatic techniques have been developed to specifically cleave only the fusion site of the fusion protein in order to isolate the target mature protein (for example, D.V.Jodel (DV) G
oeddel), Method in Enzymology (Method
s in Enzymology), 185 , 129-143 (1990)). inside that,
Specific recognition of the amino acid sequence Ile-Glu-Gly-Arg
Attention has been paid to a technique using a blood coagulation factor Xa having a protease activity for cleaving the C-terminal side. A typical example is the restriction enzyme Bam in the structural gene of an existing expression vector.
The purpose of inserting a DNA linker containing a nucleotide sequence corresponding to the factor Xa recognition amino acid sequence (hereinafter abbreviated as Xa linker DNA) into the HI cleavage site and blunting the 5 'end to the restriction enzyme Stu I cleavage site inside the linker And treating the expressed fusion protein with factor Xa to obtain the desired mature protein (Koshinagai et al., JP-A-61-135591). In addition, examples of fusion of Xa linker DNA upstream of the human B cell differentiation factor gene (Yoshihiro Asakoshi et al.,
JP-A 2-2353), an example in which Xa linker DNA is fused upstream of the human growth hormone gene (Geat Grandy et al., JP
-2386), and an example in which a gene encoding several residues of glycine is linked before and after Xa linker DNA (Andreas Brucktown, JP-A-2-5881).

【0003】[0003]

【発明が解決しようとする課題】XaリンカーDNAと目的
とする外来遺伝子とを融合させる際、2つの課題が存在
する。一つは、コドンの読み枠が揃うように融合するこ
と、もう一つは、融合蛋白質を因子Xaで切断する際成熟
型の外来蛋白質を生成することである。上で挙げた開示
例の中で外来遺伝子との一般的な融合法を扱っているの
は特開昭61-135591である。この場合融合部位はXaリン
カーDNAの内部にある制限酵素Stu Iの認識配列AGGCCTで
あり、Stu Iによる開裂でArgコドンAGGが融合上流部分
の3'平滑末端を形成する。従って、この方法で上記2課
題を達成するためには、5'末端塩基が平滑化されてコド
ンの一文字目になるように外来遺伝子を調製する必要が
ある。
There are two problems in fusing Xa linker DNA with a foreign gene of interest. One is to fuse the codons so that the reading frames are aligned, and the other is to generate a mature foreign protein when the fusion protein is cleaved with factor Xa. Japanese Patent Application Laid-Open No. 61-135591 deals with a general method of fusion with a foreign gene in the above disclosed examples. In this case, the fusion site is the recognition sequence AGGCCT of the restriction enzyme Stu I inside the Xa linker DNA, and the Arg codon AGG forms the 3 ′ blunt end of the fusion upstream portion by cleavage with Stu I. Therefore, in order to achieve the above two tasks by this method, it is necessary to prepare a foreign gene so that the 5 ′ terminal base is blunted to become the first letter of the codon.

【0004】しかし、一般的には融合すべき外来遺伝子
の5'末端をコドンの一文字目に対応させるように平滑化
することは難しく、確率的には3分の1である。それ以
外の場合上記代表例のベクターをそのまま用いることは
不可能である。
[0004] However, it is generally difficult to smooth the 5 'end of the foreign gene to be fused so as to correspond to the first letter of the codon, and the probability is one-third. In other cases, it is impossible to use the vector of the above-mentioned typical example as it is.

【0005】本発明の1つの目的は、平滑化を行ってコ
ドンの読み枠に1ヌクレオチド付加された5'末端を生じ
た挿入遺伝子に対して、その上流に因子Xa認識配列をコ
ードするDNAをコドンの読み枠を揃えて連結可能とする
リンカーDNAを提供することである。
[0005] One object of the present invention is to insert a DNA encoding a factor Xa recognition sequence upstream of an inserted gene which has been subjected to blunting to generate a 5 'end with one nucleotide added to the codon reading frame. An object of the present invention is to provide a linker DNA in which codon reading frames are aligned and ligated.

【0006】本発明の他の目的は、特異的な制限酵素部
位を有する任意の構造遺伝子に対し、XaリンカーDNAを
介して目的とする外来遺伝子を連結した融合遺伝子とそ
の作製方法を提供することである。
Another object of the present invention, for any structural gene having specific restriction enzyme sites, the production of the fusion gene and its <br/> linked a foreign gene of interest via the Xa linker DNA Is to provide a way.

【0007】[0007]

【課題を解決するための手段】本発明によれば、当該因
子XaリンカーDNAは制限酵素Nru Iの認識配列TCGCGAを含
んでおり、Nru Iによる切断によって因子Xaの認識アミ
ノ酸配列の4番目に当るArgのコドンを2文字目(CG)ま
で含む、平滑化された融合上流部分が得られる。従っ
て、融合すべき外来遺伝子の5'末端コドンの読み枠よ
りもさらに1ヌクレオチド余分に5'側に付加した状態で
上流部分と連結することにより、読み枠の揃った融合遺
伝子が提供される。この場合のArgコドンの1、2文字目
はCGであるため、このコドンがArgをコードするための3
文字目のヌクレオチドはA,C,G,Tのいずれでもよく、融
合される外来遺伝子の5'末端に付加されているヌクレオ
チドも任意でよいことになる。
According to the present invention, the Factor Xa linker DNA contains the recognition sequence TCGCGA of the restriction enzyme Nru I, and corresponds to the fourth amino acid sequence recognized by Factor Xa by cleavage with Nru I. A blunted fusion upstream containing up to the second character (CG) of the Arg codon is obtained. Therefore, a fusion gene with a uniform reading frame is provided by ligating the 5 'end of the foreign gene to be fused to the upstream portion with an additional nucleotide 5' more than the reading frame of the codon added thereto. . Since the first and second characters of the Arg codon in this case are CG, this codon encodes 3
The nucleotide in the letter may be any of A, C, G, and T, and the nucleotide added to the 5 'end of the foreign gene to be fused may be arbitrary.

【0008】一般的には、外来遺伝子の5'末端がコドン
の読み枠よりもさらに1ヌクレオチド余分に付加した状
態に平滑化される確率は3分の1である。しかし、最近
の遺伝子工学の進歩により、目的とする遺伝子の全体あ
るいは部分を化学合成する例が増えており、その場合遺
伝子の5'末端には制限酵素の認識部位を設けることが多
い。そこで、5'末端に制限酵素認識部位を持つ外来遺伝
子を、本発明が利用できる形状に修飾する方法について
例をあげて説明する。まず、外来遺伝子の最初のコドン
の直前に、Bam HI, Eco RI, Hind III, Pst I, Sac I等
に代表される6塩基を認識して開裂後4ヌクレオチド突出
末端を形成する制限酵素が存在する場合(図3a)、その制
限酵素で切断後、突出末端をMung Beanヌクレアーゼま
たはS1ヌクレアーゼで除去することにより、外来遺伝子
の最初のコドンの直前に1ヌクレオチドが付加された状
態で残り、これがArgの3文字目を構成することができ
る。
In general, the probability that the 5 'end of a foreign gene is blunted to a state in which one extra nucleotide is added to the codon reading frame by one nucleotide is one-third. However, due to recent advances in genetic engineering, the number of cases where the whole or part of a target gene is chemically synthesized has increased, and in that case, a recognition site for a restriction enzyme is often provided at the 5 'end of the gene. Therefore, a method for modifying a foreign gene having a restriction enzyme recognition site at the 5 ′ end to a form that can be used in the present invention will be described with reference to examples. First, immediately before the first codon of a foreign gene, there is a restriction enzyme that recognizes 6 bases represented by BamHI, EcoRI, HindIII, PstI, SacI, etc. and forms a 4 nucleotide protruding end after cleavage. (Fig. 3a), after cleavage with the restriction enzyme, the protruding ends are removed with Mung Bean nuclease or S1 nuclease, so that one nucleotide is added immediately before the first codon of the foreign gene, and this remains Arg. The third character can be composed.

【0009】次に、開始コドンATGを含んでいる制限酵
素Nde I認識配列CATATGあるいはNcoI認識配列CCATGGを
外来遺伝子の5'末端に有している場合(図3b)、その制限
酵素で切断後、突出末端をT4DNAポリメラーゼでフィル・
アップすることにより、開始コドンMetの直前に1ヌクレ
オチドが付加され5'末端が平滑な遺伝子を作製すること
ができる。この場合、融合蛋白質発現後の因子Xa切断に
より、N末端に開始コドンMetの付加された外来蛋白質が
得られることになる。本発明の適用範囲はここに挙げた
例に留まらず、多くの制限酵素を5'末端に持つ遺伝子に
応用可能である。
Next, when the restriction enzyme Nde I recognition sequence CATATG or NcoI recognition sequence CCATGG containing the initiation codon ATG is present at the 5 'end of the foreign gene (FIG. 3b), after digestion with the restriction enzyme, Fill the protruding ends with T4 DNA polymerase.
By increasing the number, one nucleotide is added immediately before the start codon Met , and a gene having a blunt 5 ′ end can be prepared. In this case, exogenous protein having an initiation codon Met added to the N-terminus can be obtained by factor Xa cleavage after expression of the fusion protein. The scope of the present invention is not limited to the examples given here, but can be applied to genes having many restriction enzymes at the 5 'end.

【0010】さらに本発明では、2本鎖DNAの双方に因子
Xa認識配列の情報を与えるため、図1に示すような、Nr
u I認識部位を中心にした22塩基対の逆反復配列を内部
に含むXaリンカーDNAを提供している。さらに本発明に
よれば、因子XaリンカーDNAの両側に適当な制限酵素認
識配列あるいは制限酵素開裂配列を設けることにより、
特異的な制限酵素認識部位を有する任意の構造遺伝子の
内部に当該因子XaリンカーDNAを挿入することができ
る。例えば、図1に示したXaリンカーDNAでは、Xa認識
配列の外側にEco RIとBam HIの認識配列を付加してお
り、Eco RIとBam HIの認識部位を含む任意の構造遺伝子
中に当該リンカーを挿入することができる。この場合、
当該リンカーの逆反復性により、構造遺伝子中のEco RI
とBam HI認識部位の順序は問われないことになる。ま
た、Xa認識配列の外側両側にEco RIの認識配列を持つ構
造のXaリンカー AACGAATTCA TCGAGGGTCG CGACCCTCGA TGAATTCGTTでは 、Eco RIの認識部位は含むがBam HI の認識配列は
含まない任意の構造遺伝子中に当該リンカーを挿入する
ことができる。
[0010] Further, in the present invention, the factor is added to both of the double-stranded DNA.
To provide information on the Xa recognition sequence, as shown in FIG.
Xa linker DNA containing a 22-base pair inverted repeat sequence centered on the uI recognition site is provided. Further according to the present invention, by providing an appropriate restriction enzyme recognition sequence or restriction enzyme cleavage sequence on both sides of the Factor Xa linker DNA,
The factor Xa linker DNA can be inserted into any structural gene having a specific restriction enzyme recognition site. For example, in the Xa linker DNA shown in FIG. 1, a recognition sequence of Eco RI and Bam HI is added to the outside of the Xa recognition sequence , and the linker is inserted into an arbitrary structural gene containing a recognition site of Eco RI and Bam HI. Can be inserted. in this case,
Due to the inverted repeatability of the linker, Eco RI in the structural gene
And the order of the Bam HI recognition sites does not matter. Further, in the Xa linker AACGAATTCA TCGAGGGTCG CGACCCTCGA TGAATTCGTT structure having a recognition sequence of Eco RI outside both sides of Xa recognition sequence, the linker optional structural gene but recognition site comprises does not include the recognition sequence of Bam HI of Eco RI Can be inserted.

【0011】[0011]

【作用】本発明によれば、発現ベクター内の構造遺伝子
内に制限酵素等を用いてコドンの読み枠が揃うように該
因子XaリンカーDNAを連結し、続いてXaリンカーDNA内の
制限酵素Nru I認識部位に目的とする外来遺伝子をコド
ンの読み枠が揃うように連結することにより、Xaリンカ
ーDNAを介して目的とする外来遺伝子を連結した融合遺
伝子を含むベクターが得られる。さらに該発現ベクター
で形質転換した大腸菌を培養することにより該融合遺伝
子に対応する融合蛋白質が生産される。さらに、該融合
蛋白質を回収し、制限プロテアーゼ活性を有する因子Xa
で処理することにより、成熟型の外来遺伝子発現蛋白質
を得ることができる。
According to the present invention, the factor Xa linker DNA is ligated into the structural gene in the expression vector using a restriction enzyme or the like so that the codon reading frames are aligned, and then the restriction enzyme Nru in the Xa linker DNA is used. By ligating the foreign gene of interest to the I recognition site so that the reading frames of codons are aligned, a vector containing a fusion gene ligated with the foreign gene of interest via Xa linker DNA can be obtained. Further, by culturing Escherichia coli transformed with the expression vector, a fusion protein corresponding to the fusion gene is produced. Further, the fusion protein is recovered, and factor Xa having a restricted protease activity is obtained.
, A mature form of the foreign gene expression protein can be obtained.

【0012】[0012]

【実施例】以下、本発明の実施例を具体的に説明する
が、本発明はこれによりなんら限定されるものではな
い。なお、本実施例で用いた制限酵素は宝酒造(株)製の
ものであり、培地、緩衝液等の調製は前述したManiatis
等のマニュアル(MolecularCloning: A Laboratory Man
ual、第2版、Cold Spring Harbor Laboratory Press、1
989)に従った。
EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples, but it should not be construed that the present invention is limited thereto. The restriction enzymes used in this example were manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.
Manuals (MolecularCloning: A Laboratory Man)
ual, 2nd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1
989).

【0013】実施例1 血液凝固因子XaリンカーDNAの
合成とクローニング 図1に示す2本の40塩基長のオリゴヌクレオチドを、DN
Aシンセサイザー(アプライド バイオシステムズ社製、
モデル380B)を用いて、フォスフォアミダイト法で合成
した。アンモニア水を加えて55℃で12時間放置して保護
基の脱離を行なった後、OPC(oligonucleotide purifica
tion cartridge)カラムを用いて精製した。さらに、溶
媒を遠心減圧留去した後、固化した上記オリゴヌクレオ
チド2本をそれぞれTE緩衝液100μlに溶解し、260nmでの
吸光度を測定し濃度検定を行った。ついで、このように
精製、定量したオリゴヌクレオチドをそれぞれ0.1ナノ
モルずつ分取し、50mMトリス塩酸(pH8.0)、10mM MgC
l2、10mM2-メルカプトエタノール、1mM ATP、及びT4ポ
リヌクレオチドキナーゼ(東洋紡績(株)製)20U中で5'末
端のリン酸化反応を37℃で1時間行った。その後両者を
混合してフェノール処理、エタノール沈殿を行い、回収
したDNAをライゲーション緩衝液(100mMトリス塩酸(pH7.
6)、6.5mM MgCl2)10μlに溶解し、70℃で15分おいた
後、ゆっくり室温までアニールした。以上の操作によ
り、10ng/μl程度の因子XaリンカーDNAを得た。
Example 1 Coagulation Factor Xa Linker DNA
Synthesis and Cloning The two 40-base oligonucleotides shown in FIG.
A synthesizer (Applied Biosystems,
It was synthesized by the phosphoramidite method using Model 380B). After adding ammonia water and leaving at 55 ° C. for 12 hours to remove the protecting group, OPC (oligonucleotide purifica
Purification was carried out using a column with a cartridge. Further, after the solvent was distilled off under reduced pressure under a centrifugal pressure, the two solidified oligonucleotides were respectively dissolved in 100 μl of TE buffer, and the absorbance at 260 nm was measured to carry out a concentration test. Subsequently, the thus purified and quantified oligonucleotide was fractionated by 0.1 nmol each, and 50 mM Tris-HCl (pH 8.0), 10 mM MgC
The phosphorylation reaction of the 5 'end was performed at 37 ° C for 1 hour in l2, 10 mM 2- mercaptoethanol, 1 mM ATP, and 20 U of T4 polynucleotide kinase (manufactured by Toyobo Co., Ltd.). Thereafter, the two were mixed and subjected to phenol treatment and ethanol precipitation, and the collected DNA was subjected to ligation buffer (100 mM Tris-HCl (pH 7.
6), dissolved in 10 μl of 6.5 mM MgCl 2 ), left at 70 ° C. for 15 minutes, and then slowly annealed to room temperature. By the above operation, about 10 ng / μl of factor Xa linker DNA was obtained.

【0014】続いて、図1に従って、上記リンカーDNA
を含むプラスミドの作製方法について述べる。まず、特
願平1-260261で開示されているプラスミドベクターpTRL
ORF1(微工研菌寄第11043号(FERM P-11043)として寄託
済)を、図1に示すように、trp P/O内と遺伝子ORF1内に
認識部位を持つ制限酵素HpaIで開裂させた。次いで、ベ
クターの自己連結を防ぐために、大腸菌のアルカリフォ
スファターゼ(東洋紡績(株)製)を用いて4.58キロ塩基対
(kb)のHpa I断片の5'末端脱リン酸化を行った後100ng相
当を分取し、ライゲーションキット(宝酒造(株)製)を用
いて上記因子XaリンカーDNA30ngとのライゲーション反
応を16℃で8時間行った。この反応液10μlを用いて、大
腸菌コンピテントセルDH5(東洋紡績(株)製)を形質転換
して組換え大腸菌DH5[pTRXa-1]及びDH5[pTRXa-2]を得
た。ここで、pTRXa-2とは、図1に示されているpTRXa-1
の[Hpa I-Hpa I]挿入断片の向きが逆転しているプラス
ミドである。なお、この大腸菌 E.coli DH5[pTRXa-1]は
工業技術院微生物工業技術研究所(以下、微工研と略
記)に微工研菌寄第 12501 号(FERM P-12501)として寄
託している。
Subsequently, according to FIG.
The method for preparing a plasmid containing First, the plasmid vector pTRL disclosed in Japanese Patent Application No. 1-260261.
ORF1 (deposited as No. 11043 (FERM P-11043)) was cleaved with the restriction enzyme HpaI having a recognition site in trp P / O and the gene ORF1, as shown in FIG. . Then, in order to prevent self-ligation of the vector, 4.58 kilobase pairs using alkaline phosphatase of E. coli (manufactured by Toyobo Co., Ltd.)
After performing 5'-terminal dephosphorylation of the Hpa I fragment of (kb), 100 ng equivalents were collected, and a ligation reaction with the above factor Xa linker DNA (30 ng) was performed at 16 ° C. using a ligation kit (manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.). We went for 8 hours. Escherichia coli competent cell DH5 (manufactured by Toyobo Co., Ltd.) was transformed with 10 μl of the reaction solution to obtain recombinant Escherichia coli DH5 [pTRXa-1] and DH5 [pTRXa-2]. Here, pTRXa-2 refers to pTRXa-1 shown in FIG.
Is a plasmid in which the orientation of the [Hpa I-Hpa I] insert is reversed. This Escherichia coli E. coli DH5 [pTRXa-1] was deposited at the Institute of Microbial Industry and Technology (hereinafter, abbreviated as “Microtechnical Laboratories”) under the name of Microorganism Bacteria No. 12501 (FERM P-12501). I have.

【0015】図1に示したリンカーDNAは、両末端がHpa
Iの開裂末端となるように設計してあるので、ここで作
製された組換え体ベクターpTRXa-1及びpTRXa-2は、Hpa
Iで再切断が可能であり、平滑末端を形成し得る他の任
意のベクターに該XaリンカーDNAを再クローニングでき
るという特徴を有している。
The linker DNA shown in FIG.
The recombinant vectors pTRXa-1 and pTRXa-2 produced here were designed to be the cleavage ends of
It has the characteristic that the Xa linker DNA can be recloned into any other vector that can be recut with I and can form blunt ends.

【0016】続いて、図1に従って、上記XaリンカーDN
Aを既存の発現ベクターpGEMEX-1(プロメガ社)中に挿入
する方法について述べる。pGEMEX-1は、T7ファージ由来
のプロモータとT7の主要頭部蛋白質をコードしている第
10遺伝子を含み、遺伝子中に制限酵素のマルチクローニ
ングサイト(MCS)を持つ。このベクターをMCS内のEco RI
とBam HIで開裂させ、アルカリフォスファターゼを用い
て末端の脱リン酸化を行った。一方ベクターpTRXa-1をE
co RIとBam HIで開裂させてXaリンカーDNA断片を回収
し、上記ベクターとライゲーションキットを用いて連結
させた。そして、この反応液を用いて、大腸菌コンピテ
ントセルDH5を形質転換して組換え大腸菌DH5[pT7Xa]を
得た。
Subsequently, according to FIG. 1, the Xa linker DN
A method for inserting A into an existing expression vector pGEMEX-1 (Promega) will be described. pGEMEX-1 encodes a T7 phage-derived promoter and T7 major head protein.
It contains 10 genes and has a multiple cloning site (MCS) for restriction enzymes in the gene. This vector is used for Eco RI in MCS.
And Bam HI, and the ends were dephosphorylated using alkaline phosphatase. On the other hand, the vector pTRXa-1
The Xa linker DNA fragment was recovered by cleavage with coRI and BamHI, and ligated with the above vector using a ligation kit. Then, using this reaction solution, E. coli competent cell DH5 was transformed to obtain recombinant E. coli DH5 [pT7Xa].

【0017】実施例2 因子XaリンカーDNAを介したT7
ファージ第10遺伝子とタコロドプシン断片遺伝子との融
合遺伝子の構築 実施例1で作製された発現ベクターpT7Xa内のXaリンカ
ー部分のNru I認識部位に目的とする外来遺伝子を挿入
することにより、因子XaリンカーDNAを介したT7第10遺
伝子と外来遺伝子との融合遺伝子を構築することができ
る。ここではその一例として、図2に従って特願平1-26
0261に開示されているタコロドプシン遺伝子の部分遺伝
子である第4断片遺伝子を該発現ベクターに融合する方
法について述べる。
Example 2 T7 via Factor Xa Linker DNA
Fusion of phage 10 gene and octopus rhodopsin fragment gene
Construction of a Syngene A target foreign gene was inserted into the NruI recognition site of the Xa linker in the expression vector pT7Xa prepared in Example 1 to allow the T7 tenth gene and the foreign gene to be mediated via the factor Xa linker DNA. And a fusion gene can be constructed. Here, as an example, Japanese Patent Application No. 1-26 according to FIG.
[0261] A method of fusing a fourth fragment gene, which is a partial gene of the octopus rhodopsin gene disclosed in the above, to the expression vector will be described.

【0018】まず、タコロドプシン第4断片遺伝子を含
むベクターpTRLORF4をEco RIで切断し、続いてMung Bea
nヌクレアーゼ(宝酒造(株)製)を用いて5'突出部分(AAT
T)を除去して5'末端の平滑化を行った。フェノール処理
によってMung Beanヌクレアーゼを除去した後、Bam HI
によって切断し、第4断片遺伝子ORF4部分を回収した。
一方、発現ベクターpT7XaをNru IとBam HIで切断し、ア
ルカリフォスファターゼを用いて5'末端の脱リン酸化を
行った。両者をライゲーションキットを用いて連結さ
せ、その反応液で大腸菌DH5を形質転換して、組換え大
腸菌DH5[pT7XaoRh4]を得た。なお、この大腸菌 E.coliD
H5[pT7XaoRh4]は微工研に微工研菌寄第 12500 号(FERM
P-12500)として寄託している。
First, the vector pTRLORF4 containing the octopus rhodopsin fourth fragment gene was digested with EcoRI, followed by Mung Bea
n Using a nuclease (Takara Shuzo Co., Ltd.)
T) was removed to blunt the 5 'end. After removing Mung Bean nuclease by phenol treatment, Bam HI
And the ORF4 portion of the fourth fragment gene was recovered.
On the other hand, the expression vector pT7Xa was cut with Nru I and Bam HI, and the 5 ′ end was dephosphorylated using alkaline phosphatase. Both were ligated using a ligation kit, and Escherichia coli DH5 was transformed with the reaction solution to obtain recombinant Escherichia coli DH5 [pT7XaoRh4]. This E. coli E.coliD
H5 [pT7XaoRh4] was sent to NIKEN by NIKEN Bacteria No. 12500 (FERM
P-12500).

【0019】図2に示す通り、Nru Iで切断されたベク
ターpT7Xa中のXaリンカーの3'末端はArgコドンの2文字
目にあたり、一方融合されるORF4の5'末端はコドンの読
み枠に1ヌクレオチド付加された形で平滑化を行ったの
で、これらを連結することにより読み枠の揃った融合遺
伝子が構築された。
As shown in FIG. 2, the 3 'end of the Xa linker in the vector pT7Xa cut with Nru I corresponds to the second letter of the Arg codon, while the 5' end of the ORF4 to be fused is in the codon reading frame. Since the blunting was performed in a form in which nucleotides were added, a fusion gene having a uniform reading frame was constructed by ligating these.

【0020】実施例3 融合遺伝子の発現と因子Xaによ
る成熟型蛋白質の製造 まず、実施例2で作製した発現ベクターpT7XaoRh4で発
現用の宿主大腸菌JM109(DE3)を形質転換した。単一コロ
ニー化した組換え大腸菌JM109(DE3)[pT7XaoRh4]をアン
ピシリンを50μg/ml含むNZCYM培地10mlで37℃一晩培養
し、得られた培養液0.5mlをアンピシリン50μg/mlのNZC
YM培地100mlに加えて37℃で培養し、600nmの吸光度が0.
9になった時点でイソプロピルーベーターディーテイオ
ーガラクトピラノシド(Isopropyl-β-D-thio-Galactopy
ranoside(IPTG、和光純薬工業(株)製))を終濃度1mMにな
るように添加して、一晩培養した。培養終了後培養液を
遠心して集菌し、150mM塩化ナトリウムと0.02%(W/V)ア
ジ化ナトリウムを含む10mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH
7.0)10mlに再懸濁してフレンチプレスを用いて細胞を破
砕した。破砕液を3,000Gで15分遠心して上清と沈殿(画
分1)に分け、上清をさらに180,000Gで1時間遠心し、上
清(画分2)と沈殿(画分3)に分けた。画分1、2、3は、そ
れぞれ不溶性顆粒蛋白質、細胞質蛋白質、膜蛋白質に対
応している。これらの画分をそれぞれサンプリングし、
ゲル濃度16.5%のエスディエス-ポリアクリルアミドゲル
電気泳動(SDS-PAGE)にかけたところ、画分1に分子量約4
万のバンドを検出した。従って、Xa認識配列を介した、
T7主要頭部蛋白質とタコロドプシン第4断片蛋白質との
融合蛋白質は、大腸菌内では不溶性顆粒として蓄積され
ていることが分かった。
Example 3 Expression of Fusion Gene and Factor Xa
First production of mature protein that was the host E. coli JM109 (DE3) for expression in an expression vector pT7XaoRh4 prepared in Example 2 was transformed. A single colonized recombinant Escherichia coli JM109 (DE3) [pT7XaoRh4] was cultured overnight at 37 ° C. in 10 ml of NZCYM medium containing 50 μg / ml of ampicillin, and 0.5 ml of the resulting culture solution was treated with 50 μg of ampicillin NZC / ml NZC.
Cultured at 37 ° C in 100 ml of YM medium, absorbance at 600 nm is 0.
When it reaches 9, Isopropyl-β-D-thio-Galactopy
ranoside (IPTG, manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.)) was added to a final concentration of 1 mM, and the cells were cultured overnight. After completion of the culture, the culture solution is centrifuged to collect the cells, and a 10 mM sodium phosphate buffer solution (pH: 150 mM, containing sodium chloride and 0.02% (W / V)
7.0) The cells were resuspended in 10 ml and the cells were disrupted using a French press. The crushed liquid is centrifuged at 3,000 G for 15 minutes to separate the supernatant and precipitate (Fraction 1) .The supernatant is further centrifuged at 180,000 G for 1 hour to separate the supernatant (Fraction 2) and precipitate (Fraction 3). Was. Fractions 1, 2, and 3 correspond to insoluble granule proteins, cytoplasmic proteins, and membrane proteins, respectively. Sample each of these fractions,
When subjected to SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) at a gel concentration of 16.5%, fraction 1 had a molecular weight of about 4
Ten thousand bands were detected. Therefore, via the Xa recognition sequence,
It was found that the fusion protein of the T7 major head protein and the octopus rhodopsin fourth fragment protein was accumulated as insoluble granules in Escherichia coli.

【0021】画分1を0.5% Triton X-100、1mM EDTA溶液
で5回リンスした後、8M尿素、1mM EDTA、1mMジチオスレ
イトールを含む50mMトリス塩酸緩衝液(pH8.0)5mlに溶解
させ、続いて100mM塩化ナトリウム、50mMトリス塩酸緩
衝液(pH8.0)で18時間透析した。透析内液を遠心したと
ころ沈殿は見出されなかった。この融合蛋白質の粗精製
溶液の濃度は、ブラッドフォード定量法(アナリティカ
ル バイオケミストリー(Anal. Biochem.) 72, 248(197
6))によって約10mg/mlと評価した。
Fraction 1 was rinsed five times with 0.5% Triton X-100 and 1 mM EDTA solution, and dissolved in 5 ml of 50 mM Tris-HCl buffer (pH 8.0) containing 8 M urea, 1 mM EDTA, and 1 mM dithiothreitol. Subsequently, the resultant was dialyzed against 100 mM sodium chloride and 50 mM Tris-HCl buffer (pH 8.0) for 18 hours. When the inner solution of the dialysis was centrifuged, no precipitate was found. The concentration of the crude solution of the fusion protein was determined by the Bradford assay (Analytical Biochem. 72 , 248 (197
It was estimated to be about 10 mg / ml according to 6)).

【0022】該融合蛋白質粗精製液1μlに反応緩衝液(1
00mMNaCl、50mMトリス塩酸(pH8.0)、1mM CaCl2)8.5μl
を加え、制限プロテアーゼ因子Xa(1μg/μl、宝酒造
(株)製)を0.5μl添加して25℃で24時間反応させた。反
応液を前述のゲル濃度16.5%のSDS-PAGEにかけたとこ
ろ、大部分の切断反応は進行しており、7キロダルトン
付近に成熟型タコロドプシン第4断片とに対応するバン
ドを検出した。このバンドをクリアブロット-P膜(アト
ー(株)製)にブロッティングして、プロティンシーケ
ンサー(アプライド バイオシステムズ社、モデル477A)
を用いてN末端10残基のアミノ酸配列が成熟型タコロド
プシン第4断片蛋白質と一致することを確認した。
1 μl of the crude purified protein was added to a reaction buffer (1
00 mM NaCl, 50 mM Tris-HCl (pH 8.0), 1 mM CaCl 2 ) 8.5 μl
And restriction protease factor Xa (1 μg / μl, Takara Shuzo
(Manufactured by Co., Ltd.) was added thereto and reacted at 25 ° C. for 24 hours. When the reaction solution was subjected to the above-mentioned SDS-PAGE at a gel concentration of 16.5%, most of the cleavage reaction had progressed, and a band corresponding to the mature thacorhodopsin fourth fragment was detected near 7 kDa. This band is blotted on a clear blot-P membrane (manufactured by ATTO Co., Ltd.), and a protein sequencer (Applied Biosystems, Model 477A) is used.
Was used to confirm that the amino acid sequence of the N-terminal 10 residues matches the mature octopus rhodopsin fourth fragment protein.

【0023】[0023]

【発明の効果】本発明により、高発現効率を有するプロ
モータ/構造遺伝子を含む発現ベクター中の構造遺伝子
内に当該XaリンカーDNAを介して外来の遺伝子を融合さ
せることが可能になった。外来遺伝子、特に高等動植物
の遺伝子はプロモータ/シャイン・ダルガルノ(SD)配
列の下流に直接連結したベクターでは高い発現効率を望
めない場合が多いため、本発明に従って融合遺伝子を作
製し、大腸菌内で大量に融合蛋白質として発現させ、因
子Xaで切断して成熟型蛋白質を得る本手法は、遺伝子工
学の対象拡大に大きな寄与をもたらす有効な手段とな
る。
According to the present invention, it has become possible to fuse a foreign gene into a structural gene in an expression vector containing a promoter / structural gene having high expression efficiency via the Xa linker DNA. Since a foreign gene, particularly a gene of a higher animal or plant, cannot often be expected to have high expression efficiency with a vector directly ligated downstream of the promoter / Shine-Dalgarno (SD) sequence, a fusion gene is prepared according to the present invention, and a large amount of the gene is produced in E. coli. This method, which is expressed as a fusion protein and is cleaved with factor Xa to obtain a mature protein, is an effective means that greatly contributes to expanding the scope of genetic engineering.

【0024】[0024]

【配列表】[Sequence list]

配列番号:1 配列の長さ:40 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジ−:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA 配列の特徴 特徴を表す記号:cleavage-site 存在位置:4..9 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:cleavage-site 存在位置:18..23 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:cleavage-site 存在位置:32..37 特徴を決定した方法:S 配列 AACGAATTCA TCGAGGGTCG CGACCCTCGA TGGATCCGTT 40 配列番号:2 配列の長さ:40 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジ−:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA 配列の特徴 特徴を表す記号:cleavage-site 存在位置:4..9 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:cleavage-site 存在位置:18..23 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:cleavage-site 存在位置:32..37 特徴を決定した方法:S 配列 AACGAATTCA TCGAGGGTCG CGACCCTCGA TGAATTCGTT 40 配列番号:3 配列の長さ:4 配列の型:アミノ酸 トポロジ−:直鎖状 配列の種類:ペプチド SEQ ID NO: 1 Sequence length: 40 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Double strand Topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Synthetic DNA Sequence characteristics Characteristic symbol: cleavage-site Location : 4..9 Method to determine the feature: S Symbol representing the feature: cleavage-site Location: 18..23 Method to determine the feature: S Symbol to represent the feature: cleavage-site Location: 32..37 Feature Determination method: S sequence AACGAATTCA TCGAGGGTCG CGACCCTCGA TGGATCCGTT 40 SEQ ID NO: 2 Sequence length: 40 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Double strand Topology-: Linear Sequence type: Other nucleic acid Synthetic DNA sequence Characteristic of the symbol: Character-site location: 4..9 Method that determined the feature: S Symbol that represents the characteristic: cleavage-site Location: 18..23 Method that determined the characteristic: Symbol that represents the S feature : Cleavage-site Location: 32.37 Characteristic method: S sequence AACGAATTCA TCGAGGGTCG CGACCCTCG A TGAATTCGTT 40 SEQ ID NO: 3 Sequence length: 4 Sequence type: Amino acid Topology: Linear Sequence type: Peptide

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】本発明の一実施例を表す、XaリンカーDNAの塩
基配列と該リンカーを融合した発現ベクターの作製手順
を示す図である。
BRIEF DESCRIPTION OF DRAWINGS FIG. 1 is a view showing a procedure for preparing an expression vector in which the base sequence of Xa linker DNA is fused with the linker, which represents one example of the present invention.

【図2】本発明の一実施例を表す、XaリンカーDNAを含
む発現ベクターに外来遺伝子としてタコロドプシン第4
断片遺伝子を融合した発現ベクターの作製手順を示す図
である。
FIG. 2 shows an example of the present invention, in which an expression vector containing Xa linker DNA is used as an exogenous gene for octopus rhodopsin 4
FIG. 2 is a view showing a procedure for preparing an expression vector in which a fragment gene is fused.

【図3】XaリンカーDNAを含む発現ベクターに融合する
外来遺伝子の5'末端調製手順を示す図である。
FIG. 3 is a diagram showing a procedure for preparing a 5 ′ end of a foreign gene fused to an expression vector containing Xa linker DNA.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 原田 義則 埼玉県比企郡鳩山町赤沼2520番地 株式 会社日立製作所基礎研究所内 (56)参考文献 特開 昭61−135591(JP,A) 特開 平2−2386(JP,A) 特開 平2−5881(JP,A) 「TaKaRa Reagents For Genetic Engine ering Research,日本, 1990年,28頁 (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C12N 15/00 - 15/90 BIOSIS(DIALOG) WPI(DIALOG)────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (72) Inventor Yoshinori Harada 2520 Akanuma-cho, Hatoyama-cho, Hiki-gun, Saitama Prefecture Inside the Hitachi, Ltd. Basic Research Laboratory Co., Ltd. (56) References JP-A-61-135591 (JP, A) JP-A-2 -2386 (JP, A) JP-A-2-5881 (JP, A) "TaKaRa Reagents For Genetic Engineering Engineering Research, Japan, 1990, p. 28 (58) Fields investigated (Int. Cl. 7 , DB name) C12N 15/00-15/90 BIOSIS (DIALOG) WPI (DIALOG)

Claims (12)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】血液凝固因子Xaが認識するアミノ酸配列
Ile−Glu−Gly−Argをコードし、前記アミ
ノ酸配列のGly−Arg部分のコドンが配列GGTC
GCであり、前記配列GGTCGCの3’末端の直後に
付加された配列GAを有し、制限酵素Nru Iの認識
部位TCGCGAが形成された14塩基対を有し、前記
制限酵素Nru Iによる開裂により3’末端に配列C
Gを有する平滑端が形成されることを特徴とするXaリ
ンカーDNA。
1. An amino acid sequence recognized by blood coagulation factor Xa
Encoding Ile-Glu-Gly-Arg,
The codon in the Gly-Arg portion of the acid sequence is the sequence GGTC
GC, immediately after the 3 'end of the sequence GGTCGC.
Recognition of restriction enzyme Nru I with added sequence GA
The site TCGCGA has 14 base pairs formed,
Sequence C at the 3 'end by cleavage with the restriction enzyme Nru I
A smooth end having a G is formed.
Anchor DNA.
【請求項2】請求項1に記載の因子XaリンカーDNA
の前記アミノ酸配列のArg部分のコドンの2文字目ま
での前記配列CGを有する前記平滑端に、外来遺伝子の
5’末端の平滑端がAとTの塩基対又はGとCの塩基対
を介して連結されることを特徴とするXaリンカーDN
A。
2. The factor Xa linker DNA according to claim 1,
The second character of the codon in the Arg portion of the amino acid sequence
At the blunt end having the sequence CG at
The blunt end at the 5 'end is A and T base pairs or G and C base pairs.
Xa linker DN characterized by being linked via
A.
【請求項3】請求項1に記載の因子XaリンカーDNA
を含み、前記因子XaリンカーDNAの両側に制限酵素
の認識配列又は制限酵素による開裂末端を有することを
特徴とする因子XaリンカーDNA。
3. The factor Xa linker DNA according to claim 1,
And restriction enzymes on both sides of the factor Xa linker DNA
Must have a recognition sequence or an end cleaved by a restriction enzyme.
Characteristic factor Xa linker DNA.
【請求項4】請求項1に記載の因子XaリンカーDNA
を含み、前記因子XaリンカーDNAの両側に制限酵素
の認識配列又は制限酵素による開裂末端を有する因子X
aリンカーDNAが発現ベクターの構造遺伝子内に挿入
され、AとTの塩基対又はGとCの塩基対が外来遺伝子
の最初のコドンの直前に付加されて形成された前記外来
遺伝子の5’末端の平滑端が、あるいは、AとTの塩基
対又はGとCの塩基対が前記外来遺伝子の5’末端の平
滑端に付加された開始コドンMetの直前に付加されて
形成された5’末端の平滑端が、前記因子Xaリンカー
DNAの前記制限酵素Nru Iによる開裂末端に連結
された融合遺伝子を有することを特徴とする発現ベクタ
ー。
4. The factor Xa linker DNA according to claim 1,
And restriction enzymes on both sides of the factor Xa linker DNA
X having a recognition sequence or a cleavage end by a restriction enzyme
a Insert the linker DNA into the structural gene of the expression vector
And A and T base pairs or G and C base pairs are foreign genes.
The exogenous form formed just before the first codon of
The blunt end of the 5 'end of the gene or the base of A and T
The base or the base pair of G and C is the 5'-end of the foreign gene.
Added immediately before the start codon Met added to the smooth end
The blunt end of the formed 5 'end is the factor Xa linker
Ligation of DNA to the end cleaved by restriction enzyme Nru I
Expression vector characterized by having a fused gene
-
【請求項5】請求項1に記載の因子XaリンカーDNA
を含み、前記因子XaリンカーDN Aの両側に制限酵素
の認識配列又は制限酵素による開裂末端を有する因子X
aリンカーDNAを発現ベクターの構造遺伝子内に挿入
し、前記因子XaリンカーDNAを前記制限酵素Nru
Iにより開裂し、AとTの塩基対又はGとCの塩基対
が外来遺伝子の最初のコドンの直前に付加されて形成さ
れた前記外来遺伝子の5’末端の平滑端を、あるいは、
AとTの塩基対又はGとCの塩基対が前記外来遺伝子の
5’末端の平滑端に付加された開始コドンMetの直前
に付加されて形成された5’末端の平滑端を、前記制限
酵素Nru Iによる開裂末端に連結することを特徴と
する融合遺伝子の作製方法。
5. The factor Xa linker DNA according to claim 1,
And a restriction enzyme on both sides of the factor Xa linker DNA.
X having a recognition sequence or a cleavage end by a restriction enzyme
a Insert the linker DNA into the structural gene of the expression vector
And converting the factor Xa linker DNA into the restriction enzyme Nru.
Cleavage by I, A and T base pairs or G and C base pairs
Is added immediately before the first codon of the foreign gene.
The blunt end at the 5 'end of the foreign gene, or
A and T base pairs or G and C base pairs correspond to the foreign gene.
Immediately before the start codon Met added to the blunt end at the 5 'end
The blunt end at the 5 ′ end formed by adding
Characterized in that it is ligated to the end cleaved by the enzyme Nru I.
Method for producing a fusion gene.
【請求項6】請求項4に記載の発現ベクターにより形質
転換されたことを特徴とする宿主生細胞。
[6] A trait obtained by using the expression vector according to [ 4 ].
A live host cell characterized by being transformed.
【請求項7】請求項4に記載の発現ベクターにより形質
転換されたことを特徴とする大腸菌。
(7) A trait obtained by using the expression vector according to (4).
An Escherichia coli characterized by being transformed.
【請求項8】血液凝固因子Xaが認識するアミノ酸配列
Ile−Glu−Gly−Argをコードし、前記アミ
ノ酸配列のGly−Arg部分のコドンが配列GGTC
GCであり、前記配列GGTCGCの3’末端の直後に
付加された配列GAを有し、制限酵素Nru Iの認識
部位TCGCGAが形成された14塩基対を有し、前記
制限酵素Nru Iによる開裂により前記アミノ酸配列
のArg部分のコドンの2文字目までの配列CGを有す
る3’末端の平滑端に、AとTの塩基対又はGとCの塩
基対が外来遺伝子の最初のコドンの直前に付加されて形
成された前記外来遺伝子の5’末端の平滑端が、あるい
は、AとTの塩基対又はGとCの塩基対が前記外来遺伝
子の5’末端の平滑端に付加された開始コドンMetの
直前に付加されて形成された5’末端の平滑端が連結さ
れることを特徴とするXaリンカーDNA。
8. An amino acid sequence recognized by blood coagulation factor Xa
Encoding Ile-Glu-Gly-Arg,
The codon in the Gly-Arg portion of the acid sequence is the sequence GGTC
GC, immediately after the 3 'end of the sequence GGTCGC.
Recognition of restriction enzyme Nru I with added sequence GA
The site TCGCGA has 14 base pairs formed,
Amino acid sequence by cleavage with restriction enzyme Nru I
Has a sequence CG up to the second character of the codon of the Arg portion of
A base pair of A and T or a salt of G and C
A base pair is added immediately before the first codon of the foreign gene.
The blunt end at the 5 'end of the foreign gene
Means that the base pair of A and T or the base pair of G and C
Of the start codon Met added to the blunt end of the 5 'end of the offspring
The blunt end of the 5 'end formed by adding just before is connected.
Xa linker DNA characterized in that:
【請求項9】血液凝固因子Xaが認識するアミノ酸配列
Ile−Glu−Gly−Argをコードし、前記アミ
ノ酸配列のGly−Arg部分のコドンが配列GGTC
GC であり、前記配列GGTCGCの3’末端の直後に
付加された配列GAを有し、制限酵素Nru Iの認識
部位TCGCGAが形成された14塩基対を有するXa
リンカーDNAが、発現ベクターの構造遺伝子内に挿入
され、前記因子XaリンカーDNAの前記制限酵素Nr
u Iによる開裂により形成され、前記アミノ酸配列の
Arg部分のコドンの2文字目までの配列CGを有する
3’末端の平滑端に、AとTの塩基対又はGとCの塩基
対が外来遺伝子の最初のコドンの直前に付加されて形成
された前記外来遺伝子の5’末端の平滑端、あるいは、
AとTの塩基対又はGとCの塩基対が前記外来遺伝子の
5’末端の平滑端に付加された開始コドンMetの直前
に付加されて形成された5’末端の平滑端が連結された
融合遺伝子を有し、前記アミノ酸配列のArg部分のコ
ドンの3文字目の塩基が、A、T、G、Cの何れかであ
ることを特徴とする発現ベクター。
9. An amino acid sequence recognized by blood coagulation factor Xa
Encoding Ile-Glu-Gly-Arg,
The codon in the Gly-Arg portion of the acid sequence is the sequence GGTC
GC , immediately after the 3 'end of the sequence GGTCGC.
Recognition of restriction enzyme Nru I with added sequence GA
Xa with 14 base pairs where the site TCGCGA was formed
Linker DNA is inserted into the structural gene of the expression vector
And the restriction enzyme Nr of the factor Xa linker DNA
formed by cleavage with uI,
Has the sequence CG up to the second letter of the codon of the Arg portion
A and T base pairs or G and C base pairs at the 3′-end blunt end
Pair formed by adding just before the first codon of the foreign gene
A blunt end at the 5 'end of the foreign gene, or
A and T base pairs or G and C base pairs correspond to the foreign gene.
Immediately before the start codon Met added to the blunt end at the 5 'end
The blunt end of the 5 'end formed by adding to
It has a fusion gene and has a copy of the Arg portion of the amino acid sequence.
The base of the third character of don is any of A, T, G, and C
An expression vector, characterized in that:
【請求項10】請求項9に記載の発現ベクターにより形
質転換されたことを特徴とする宿主生細胞。
10. An expression vector according to claim 9.
A living host cell characterized by being transformed.
【請求項11】請求項9に記載の発現ベクターにより形
質転換されたことを特徴とする大腸菌。
11. An expression vector according to claim 9.
An Escherichia coli characterized by being transformed.
【請求項12】血液凝固因子Xaが認識するアミノ酸配
列Ile−Glu−Gly−Argをコードし、前記ア
ミノ酸配列のGly−Arg部分のコドンが配列GGT
CGCであり、前記GGTCGCの3’末端の直後に付
加された配列GAを有し、制限酵素Nru Iの認識部
位TCGCGAが形成された14塩基対を有する前記X
aリンカーDNAを、発現ベクターの構造遺伝子内に挿
入し、前記因子XaリンカーDNAを前記制限酵素Nr
u Iにより開裂して、前記アミノ酸配列のArg部分
のコドンの2文字目までの配列CGを有する平滑端を
3’末端に形成し、AとTの塩基対又はGとCの塩基対
が外来遺伝子の最初のコドンの直前に付加されて形成さ
れた前記外来遺伝子の5’末端の平滑端を、あるいは、
AとTの塩基対又はGとCの塩基対が前記外来遺伝子の
5’末端の平滑端に付加された開始コドンMetの直前
に付加されて形成された5’末端の平滑端を、前記配列
CGを 有する前記平滑端に連結して融合遺伝子を作製
し、前記アミノ酸配列のArg部分のコドンの3文字目
の塩基が、A、T、G、Cの何れかであることを特徴と
する融合遺伝子の作製方法。
12. An amino acid sequence recognized by blood coagulation factor Xa.
Encoding the sequence Ile-Glu-Gly-Arg,
The codon in the Gly-Arg portion of the amino acid sequence is the sequence GGT
CGC, which is added immediately after the 3 ′ end of the GGTCGC.
Having the added sequence GA, and a recognition site for the restriction enzyme Nru I.
X having 14 base pairs where TCCGGA is formed
a Insert the linker DNA into the structural gene of the expression vector.
And insert the factor Xa linker DNA into the restriction enzyme Nr.
cleaved by uI to form the Arg portion of the amino acid sequence
Blunt ends with the sequence CG up to the second character of the codon
Formed at the 3 'end, A and T base pairs or G and C base pairs
Is added immediately before the first codon of the foreign gene.
The blunt end at the 5 'end of the foreign gene, or
A and T base pairs or G and C base pairs correspond to the foreign gene.
Immediately before the start codon Met added to the blunt end at the 5 'end
The blunt end at the 5 'end formed by adding
Ligating to the blunt end with CG to create a fusion gene
And the third letter of the codon in the Arg portion of the amino acid sequence
Is a base selected from the group consisting of A, T, G, and C.
Method for producing a fusion gene.
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