JP3208570B2 - Galactosamine-substituted poly-ω-substituted-L-glutamic acid (or aspartic acid) - Google Patents

Galactosamine-substituted poly-ω-substituted-L-glutamic acid (or aspartic acid)

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Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】本発明は、医用高分子材料、殊にミサイル
医薬担体として有用なポリ−ω−メチル(又はベンジ
ル)−L−グルタミン酸(又はアスパラギン酸)のガラ
クトサミン置換体に関する。
The present invention relates to a galactosamine-substituted product of poly-ω-methyl (or benzyl) -L-glutamic acid (or aspartic acid), which is useful as a medical polymer material, particularly a missile pharmaceutical carrier.

【0002】[0002]

【従来の技術】血清中の糖タンパクは,その末端に普遍
的にシアル酸−ガラクトース−N−アセチルグルコサミ
ンという糖構造が存在している。1960年代後半に
G.AshwellとA.Morellは,この三糖構
造が血清タンパクが血液中に安定に存在できるために必
要な構造であることをつきとめた。末端に存在するシア
ル酸を取り除くと,ガラクトースが新しい糖末端とな
る。シアル酸が除かれてガラクトースが露出した糖タン
パクはアシアロ糖タンパクと呼ばれている。アシアロ糖
タンパクは,この状態では血流中に安定に存在できなく
なり,急速に血流中より消失する。消失したアシアロ糖
タンパクのおよそ80%以上は肝臓に取り込まれること
が判明している。
2. Description of the Related Art Glycoproteins in serum generally have a sugar structure of sialic acid-galactose-N-acetylglucosamine at the terminal. In the late 1960's G. Ashwell and A.M. Morell found that this trisaccharide structure was necessary for serum proteins to be stable in blood. When the terminal sialic acid is removed, galactose becomes the new sugar terminal. The glycoprotein from which sialic acid is removed to expose galactose is called asialoglycoprotein. In this condition, asialoglycoprotein cannot be stably present in the bloodstream and rapidly disappears from the bloodstream. It has been found that about 80% or more of the asialoglycoprotein lost is taken up by the liver.

【0003】ところで,肝細胞の膜表面上には特異的糖
認識レセプターが存在し,アシアロ糖タンパクはこのア
シアロ糖タンパクレセプターを介して細胞内に取り込ま
れたものである。本発明者等は,肝細胞膜上のアシアロ
糖タンパクレセプターに着目し,ミサイルドラッグ等に
用いるドラッグキャリアー用の高分子材料の開発を目標
として検討を重ねた結果,糖残基としてガラクトサミン
を導入したポリアミノ酸がすぐれた性質を有することを
見出し本発明を完成した。
By the way, a specific sugar recognition receptor exists on the membrane surface of hepatocytes, and asialoglycoprotein is taken into cells via this asialoglycoprotein receptor. The present inventors have focused on the asialoglycoprotein receptor on the liver cell membrane and studied repeatedly with the aim of developing a polymer material for a drug carrier used for a missile drug or the like. The present inventors have found that amino acids have excellent properties and completed the present invention.

【0004】[0004]

【問題点を解決するための手段】すなわち,本発明は,
一般式
[Means for Solving the Problems] That is, the present invention provides:
General formula

【0005】[0005]

【化6】 Embedded image

【0006】(式中,xは重合度60〜250であるこ
とを,nは1又は2を、Rはメチル基又はベンジル基を
夫々意味する。)で示されるポリペプチドにおいて、そ
の構成ペプチドの一部又は全部を一般式
Wherein x represents a degree of polymerization of 60 to 250, n represents 1 or 2, and R represents a methyl group or a benzyl group, respectively. Part or all of the general formula

【0007】[0007]

【化7】 Embedded image

【0008】(式中,nは前記の意味を表わす)で表わ
されるω−ガラクトサミル−L−グルタミン酸(又はア
スパラギン酸)残基および場合により式
## STR1 ## wherein n is as defined above, and a ω-galactosamil-L-glutamic acid (or aspartic acid) residue and optionally a compound of the formula

【0009】[0009]

【化8】 Embedded image

【0010】(式中,nは前記の意味を表わす)で表わ
されるL−グルタミン酸(又はアスパラギン酸)残基で
置換したポリ−ω−アルキル(又はベンジル)−L−グ
ルタミン酸(アスパラギン酸)のガラクトサミン置換体
に関する。本発明のポリペプチドを更に説明すると以下
の通りである。 構成単位:ω−アルキル(又はベンジル)−L−グルタ
ミン酸(アスパラギン酸)残基
In the formula, galactosamine of poly-ω-alkyl (or benzyl) -L-glutamic acid (aspartic acid) substituted with an L-glutamic acid (or aspartic acid) residue represented by the following formula: Pertaining to substitutions. The polypeptide of the present invention is further described as follows. Structural unit: ω-alkyl (or benzyl) -L-glutamic acid (aspartic acid) residue

【0011】[0011]

【化9】 Embedded image

【0012】(式中,nおよびRは前記と同じであ
る。)L−グルタミン酸(アスパラギン酸)残基
(Wherein n and R are the same as above) L-glutamic acid (aspartic acid) residue

【0013】[0013]

【化10】 Embedded image

【0014】(式中,nは前記と同じである。)ω−ガ
ラクトサミル−L−グルタミン酸(又はアスパラギン
酸)残基
(Wherein, n is the same as above.) Ω-galactosamil-L-glutamic acid (or aspartic acid) residue

【0015】[0015]

【化11】 Embedded image

【0016】(式中、nは前記の意味を表わす)を構成
単位とするガラクトサミル化 ω−メチル(又はベンジ
ル)−L−グルタミン酸(又はアスパラギン酸)線状重
合体であって、下記A〜Cを満足する重合体 A:重合度 60〜250 B:分子量 8,000〜71,000 C:各構成単位の比率 ω−メチル(又はベンジル)−L−グルタミン酸(又はアスパラギン酸)残 基 0〜 97モル% L−グルタミン酸(又はアスパラギン酸)残基 0〜 87モル% ω−ガラクトサミル−L−グルタミン酸(又はアスパラギン酸) 残基 3〜100モル%
A galactosamilylated ω- methyl (or benzyl) -L-glutamic acid (or aspartic acid) linear polymer having a structural unit represented by the following formula (A) to (C): A: degree of polymerization 60 to 250 B: molecular weight 8,000 to 71,000 C: ratio of each structural unit ω- methyl (or benzyl) -L-glutamic acid (or aspartic acid) residue 0 to 97 Mol% L-glutamic acid (or aspartic acid) residue 0 to 87 mol% ω-galactosamil-L-glutamic acid (or aspartic acid) residue 3 to 100 mol%

【0017】[0017]

【化12】 Embedded image

【0018】(式中、nおよびRは前記と同じ。またY
およびZは、1より小さい数で、Y≧Zを満たすものを
意味する。)この方法は、ポリ−ω−置換−L−グルタ
ミン酸(又はアスパラギン酸)(II)の側鎖メチル
ステル(又はベンジルエステル)を加水分解して側鎖カ
ルボキシル基が遊離した重合体(III)を得(第1工
程)、次いでこの重合体(III)の側鎖カルボキシル
基にガラクトサミンを導入して本発明の目的化合物
(I)を得る(第2工程)ことにより行う。
(Wherein n and R are the same as above.
And Z are numbers smaller than 1 and satisfy Y ≧ Z. ) Heavy This method comprises poly -ω- side chain carboxyl group by hydrolyzing the side-chain methyl Et <br/> ester (or benzyl ester) substituent -L- glutamic acid (or aspartic acid) (II) is liberated The compound (III) is obtained (first step), and then galactosamine is introduced into the side chain carboxyl group of the polymer (III) to obtain the target compound (I) of the present invention (second step).

【0019】第1工程の加水分解は、ポリ−γ−メチル
(又はベンジル)−L−グルタミン酸又はポリ−β−
チル(又はベンジル)−L−アスパラギン酸を適当な有
機溶媒中、塩基で処理することにより容易に行うことが
できる。有機溶媒としては、たとえばクロロホルム、ジ
クロルメタン等のハロゲン化炭化水素(ヘリックス溶
媒)が好適であるが、ジクロル酢酸、トリフルオロ酢酸
などのランダムコイル溶媒を用いることができる。
In the hydrolysis in the first step, poly-γ- methyl (or benzyl) -L-glutamic acid or poly-β- meth
It can be easily carried out by treating tyl (or benzyl) -L-aspartic acid with a base in a suitable organic solvent. As the organic solvent, for example, halogenated hydrocarbons (helical solvents) such as chloroform and dichloromethane are suitable, but random coil solvents such as dichloroacetic acid and trifluoroacetic acid can be used.

【0020】塩基としては,水酸化ナトリウム,水酸化
カリウム等が適当である。これらの塩基は通常メタノー
ル,イソプロピルアルコール等のアルコール水溶液とし
て反応液中に添加される。反応は,室温附近で,10〜
200分間行う。これらの反応条件,殊に反応時間を適
宜選ぶことにより,加水分解の割合を任意に調節するこ
とができる。なお,本工程の原料化合物として使用する
ポリ−ω−置換−L−グルタミン酸(又はアスパラギン
酸)(II)は,重合度がおよそ60〜250のものが用
いられるが,これに限定されるものではない。後記実施
例においては,たとえばポリ−γ−メチル−L−グルタ
メート(PMLGと略記する)は,重合度およそ100
〜200(分子量約14,000〜29,000)のも
のを用いた。
As the base, sodium hydroxide, potassium hydroxide and the like are suitable. These bases are usually added to the reaction solution as an aqueous alcohol solution such as methanol or isopropyl alcohol. The reaction is carried out at around room temperature,
Perform for 200 minutes. The hydrolysis rate can be arbitrarily adjusted by appropriately selecting these reaction conditions, particularly the reaction time. The poly-ω-substituted-L-glutamic acid (or aspartic acid) (II) used as the starting compound in this step has a degree of polymerization of about 60 to 250, but is not limited thereto. Absent. In the examples described below, for example, poly-γ-methyl-L-glutamate (abbreviated as PMLG) has a degree of polymerization of about 100.
~ 200 (molecular weight of about 14,000-29,000) was used.

【0021】第2工程は,ポリグルタミン酸(又はポリ
アスパラギン酸)(III) の側鎖カルボキシル基とガラク
トサミンの一級アミノ基との間のペプチデーションであ
る。このペプチデーションには,カルボキシル基又はア
ミノ基を活性化する方法および縮合剤の存在下に行う方
法等が採用できる。この中,カルボキシル基を活性化す
るペプチデーションとしては,第1工程で得られた加水
分解物(III) のカルボキシル基を,たとえばp−ニトロ
フェニルエステルの形態で活性化し,活性化化合物を分
離した後,これにガラクトサミンを反応させる。この反
応は,ジメチルホルムアミド(DMF),テトラヒドロ
フラン(THF),ジメチルスルホキサイド(DMS
O)等の溶媒中,室温乃至冷却下で行われる。反応時間
は数時間乃至数日間である。ペプチデーションの進行率
は,反応に伴って遊離するp−ニトロフェノールを定量
することにより知ることができる。
The second step is the peptidation between the side chain carboxyl group of polyglutamic acid (or polyaspartic acid) (III) and the primary amino group of galactosamine. For this peptidation, a method of activating a carboxyl group or an amino group, a method of conducting in the presence of a condensing agent, and the like can be employed. Among these, as the peptide for activating the carboxyl group, the carboxyl group of the hydrolyzate (III) obtained in the first step was activated in the form of, for example, p-nitrophenyl ester, and the activated compound was separated. Later, this is reacted with galactosamine. This reaction is carried out using dimethylformamide (DMF), tetrahydrofuran (THF), dimethylsulfoxide (DMS).
The reaction is carried out in a solvent such as O) at room temperature or under cooling. The reaction time is several hours to several days. The progress of peptidation can be determined by quantifying p-nitrophenol released with the reaction.

【0022】つぎに,縮合剤を用いる方法としては,た
とえばN,N′−ジシクロヘキシルカルボジイミド(D
CC),1−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピ
ル)カルボジイミドハイドロクロライド(EDC)等の
存在下,部分加水分解物(III) とガラクトサミンとをカ
ップリングさせる。この反応条件は,上述のカルボキシ
ル基の活性化によるペプチデーションと同様である。生
成した目的化合物(I)は,たとえばセルロース透析膜
を用いる透析により精製することができる。
Next, as a method using a condensing agent, for example, N, N'-dicyclohexylcarbodiimide (D
CC), the partial hydrolyzate (III) and galactosamine are coupled in the presence of 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (EDC) or the like. The reaction conditions are the same as the above-mentioned peptidation due to activation of the carboxyl group. The target compound (I) thus produced can be purified, for example, by dialysis using a cellulose dialysis membrane.

【0023】[0023]

【発明の効果】本発明の目的化合物は,前述のように標
的生体細胞に対する認識作用が期待されるから,生体認
識高分子として医療分野に応用することができる。ま
た,本発明の目的化合物は,天然類似高分子であるポリ
アミノ酸誘導体であるから,生体分解性であり,また,
水溶性である。したがってこの化合物は,ミサイルドラ
ッグ等に用いるドラッグキャリアー用高分子材料として
好適である。つぎに,ラットを用いた動物実験により本
発明の化合物の肝細胞親和性を示す。
As described above, the target compound of the present invention is expected to have a recognition effect on target living cells, and can be applied to the medical field as a biorecognition polymer. In addition, since the target compound of the present invention is a polyamino acid derivative that is a naturally similar polymer, it is biodegradable.
It is water soluble. Therefore, this compound is suitable as a polymer material for a drug carrier used for a missile drug or the like. Next, hepatocyte affinity of the compound of the present invention is shown by animal experiments using rats.

【0024】実験例 SD系雌ラット(4〜5週令)を用い,細胞間接着タン
パク質を酵素を用いて消化する所謂Seglenの灌流
法に準じてラットの肝実質細胞を分離した。調製した肝
細胞を氷冷したWE培地中に40万cells/mlと
なるように懸濁させた。その後ディスポピペットを用い
て,あらかじめ調製した各ポリマーコートシャーレ(注
1)に肝細胞懸濁液を1.5ml播種し,炭酸ガス培養
装置にて37℃,炭酸ガス濃度5%で所定時間培養し
た。その後,非接着細胞数をカウントすることにより,
接着率を算出した。
Experimental Example Using SD female rats (4-5 weeks old), rat hepatocytes were separated according to the so-called Seglen perfusion method in which the intercellular adhesion protein was digested with an enzyme. The prepared hepatocytes were suspended in ice-cooled WE medium at a concentration of 400,000 cells / ml. Thereafter, using a disposable pipette, 1.5 ml of the hepatocyte suspension was inoculated on each polymer-coated petri dish (Note 1) prepared in advance, and cultured at 37 ° C. in a carbon dioxide gas culturing apparatus at a carbon dioxide gas concentration of 5% for a predetermined time. . Then, by counting the number of non-adherent cells,
The adhesion rate was calculated.

【0025】本実験に用いたポリマーは,本願の目的化
合物,製造原料として用いたポリ−−γ−メチル−L−
グルタメート(PGAと略記する)および対照として従
来肝細胞親和性が知られているポリビニル系ポリマー
(ポリベンジルラクトンアミド,PVLAと略記する)
である。各シャーレに対する肝細胞の初期接着の様子を
図1に示す。グラフを見ると主鎖ポリマーに対して肝細
胞は余り接着せず主鎖自体の生理活性はない。これに対
し,ガラクトサミンを側鎖に有する本発明のポリマー
は,PVLA同様高い接着率を示した。
The polymer used in this experiment was the target compound of the present application and the poly-γ-methyl-L-
Glutamate (abbreviated as PGA) and a polyvinyl-based polymer (polybenzyllactone amide, abbreviated as PVLA) for which the affinity for hepatocytes is conventionally known as a control
It is. FIG. 1 shows the state of initial adhesion of hepatocytes to each petri dish. Looking at the graph, hepatocytes do not adhere much to the main chain polymer, and there is no physiological activity of the main chain itself. On the other hand, the polymer of the present invention having galactosamine in the side chain showed a high adhesiveness like PVLA.

【0026】(注1)ポリマーコートシャーレの調製法 各試料をミリQ水中に0.05%(W/V)の濃度で溶
解させた。そのポリマー溶液をシャーレ中に,2ml注
入し凍結乾燥させ,その後3回ミリQ水中でリンスし自
然乾燥させることによってポリマーコートシャーレを調
製した。
(Note 1) Preparation of polymer-coated petri dish Each sample was dissolved in Milli-Q water at a concentration of 0.05% (W / V). A polymer-coated petri dish was prepared by injecting 2 ml of the polymer solution into a petri dish, freeze-drying, rinsing three times in Milli-Q water, and air-drying.

【0027】つぎに,ガラクトサミンの置換割合を異に
する本発明の化合物について,各ポリマーコートシャー
レに対する接着率を図2に示す。グラフを見ると,主鎖
ポリマー及び糖含有量25%のポリマーに対しては肝細
胞はあまり接着しておらず,25%程度の含有量では糖
側鎖の影響はないものと考えられる。また糖含有量を4
0%,60%,70%,85%と増加したポリマーに対
しては肝細胞の接着率の上昇がみられ,60%以上糖残
基を有する試料に対しては,ほとんど同様の接着挙動を
示した。
Next, FIG. 2 shows the adhesion rates of the compounds of the present invention having different galactosamine substitution ratios to each polymer-coated petri dish. The graph shows that hepatocytes do not adhere well to the main chain polymer and the polymer having a sugar content of 25%, and it is considered that the sugar side chain has no effect at a content of about 25%. In addition, the sugar content is 4
The increase in the hepatocyte adhesion rate was observed for the polymers increased to 0%, 60%, 70%, and 85%, and almost the same adhesion behavior was observed for the samples having sugar residues of 60% or more. Indicated.

【0028】本発明の化合物を用いた製剤用投与形態と
しては,たとえばナノスフェアー化が挙げられる。ナノ
スフェアーの調製法の一例を示すとつぎの通りである。
リピオドール,イソブチルシアノアクリレートおよび薬
物をエタノールに溶解する。一方,非イオン性界面活性
剤と本発明の化合物を水に溶かし,はげしく撹拌しなが
ら,この水溶液中に上記エタノール溶液を徐々に注入す
る。反応液を濃縮したのち,凍結乾燥することにより,
本発明の化合物と薬物とを含有又は付着するナノスフェ
アーを得る。
The dosage form for the pharmaceutical preparation using the compound of the present invention includes, for example, nanosphere formation. An example of a method for preparing nanospheres is as follows.
Dissolve lipiodol, isobutyl cyanoacrylate and drug in ethanol. On the other hand, the nonionic surfactant and the compound of the present invention are dissolved in water, and the above ethanol solution is gradually poured into this aqueous solution with vigorous stirring. After concentrating the reaction solution and freeze-drying,
A nanosphere containing or adhering the compound of the present invention and a drug is obtained.

【0029】[0029]

【実施例】つぎに,実施例を挙げて本発明の目的化合物
およびその製造方法を更に説明する。 実施例 1 (1) PMLGの側鎖メチルエステルの加水分解 PMLG11.57gをクロロホルム100mlに溶解
させ,8%溶液として調製し,その溶液中に撹拌しなが
ら,2N−水酸化ナトリウム35.8ml,メタノール
71.5ml,イソプロピルアルコール71.5mlの
混合溶液(体積比1:2:2)を15分かけ滴下し,そ
の後室温で撹拌を続けることにより側鎖メチルエステル
の加水分解反応を行った。その際撹拌時間を変えた反応
を行った。その後,氷酢酸で中和することにより,反応
を終了させ,この反応溶液を撹拌しながらジエチルエー
テル500ml中に加え,生成物を沈殿させた。その
後,沈殿を濾過しジエチルエーテルで数回洗浄後,少量
の蒸留水を加えゲル状にしたものを透析チューブ中につ
め,室温で2日間透析を行い,その後凍結乾燥によって
側鎖加水分解ポリマーを調製した。透析液は,適宜交換
した。
EXAMPLES Next, the target compound of the present invention and the method for producing the same will be further described with reference to examples. Example 1 (1) Hydrolysis of side chain methyl ester of PMLG 11.57 g of PMLG was dissolved in 100 ml of chloroform to prepare an 8% solution, and 35.8 ml of 2N-sodium hydroxide and methanol were added to the solution while stirring. A mixed solution of 71.5 ml and 71.5 ml of isopropyl alcohol (volume ratio 1: 2: 2) was added dropwise over 15 minutes, and then stirring was continued at room temperature to carry out a hydrolysis reaction of the side chain methyl ester. At that time, the reaction was carried out while changing the stirring time. Thereafter, the reaction was terminated by neutralization with glacial acetic acid, and the reaction solution was added to 500 ml of diethyl ether with stirring to precipitate the product. Then, the precipitate was filtered and washed several times with diethyl ether. A small amount of distilled water was added to the gel to form a gel. The gel was placed in a dialysis tube, dialyzed at room temperature for 2 days, and then the side-chain hydrolyzed polymer was freeze-dried. Prepared. The dialysate was replaced as appropriate.

【0030】得られた側鎖加水分解ポリマーの 1H−N
MRスペクトルを図3に示す。図中(a),(b)およ
び(c)のスペクトルは上から順に反応時間を長くした
もので一番下のスペクトル(c)は,室温で3日間反応
させたものである。結果を見ると,上から順に側鎖メチ
ルエステルのピークが減少しており,側鎖加水分解反応
がその反応時間に応じて進行していることが示されてい
る。
1 H—N of the obtained side chain hydrolyzed polymer
FIG. 3 shows the MR spectrum. In the figures, the spectra (a), (b) and (c) are obtained by increasing the reaction time in order from the top, and the lower spectrum (c) is obtained by reacting at room temperature for 3 days. Looking at the results, the peak of the side chain methyl ester decreases in order from the top, indicating that the side chain hydrolysis reaction proceeds according to the reaction time.

【0031】(2) 側鎖カルボキシル基の活性化 側鎖部分加水分解ポリマー0.8g(5.9×10-3
ol,モノマー単位で1ユニット当りの見かけ上の分子
量から計算した値)およびp−ニトロフェノール0.5
5g(4.0×10-3mol)をDMF20ml中に加
え,その溶液にDCC0.82g(4.0×10-3mo
l)を加えて,0℃で30分間ついで室温で2日間撹拌
することによって反応を行った。その後,冷蔵庫に2時
間放置し,沈殿物をDMF,水,熱エタノールで順次よ
く洗浄した後,真空乾燥によって,試料を調製した。
(この方法は,側鎖エステルの加水分解率28.6%の
ポリマーを修飾したときのものであり,その他の反応で
もp−ニトロフェノールおよびDCCの仕込量は,ポリ
マー側鎖のカルボキシル基のmol数の1.5倍〜2倍
量とした。)
(2) Activation of Side Chain Carboxyl Group 0.8 g (5.9 × 10 −3 m) of side chain partially hydrolyzed polymer
ol, a value calculated from an apparent molecular weight per unit in monomer units) and p-nitrophenol 0.5
5 g (4.0 × 10 −3 mol) was added to 20 ml of DMF, and 0.82 g (4.0 × 10 −3 mo) of DCC was added to the solution.
1) was added and the reaction was carried out by stirring at 0 ° C. for 30 minutes and then at room temperature for 2 days. Thereafter, the sample was left in a refrigerator for 2 hours, and the precipitate was thoroughly washed with DMF, water and hot ethanol in that order, and then dried to prepare a sample.
(This method is based on the modification of a polymer having a side chain ester hydrolysis rate of 28.6%. In other reactions, the charged amounts of p-nitrophenol and DCC are also determined by the molar amount of carboxyl groups in the polymer side chain. The amount was 1.5 to 2 times the number.)

【0032】得られた化合物のUVスペクトルを図4に
示す。図中310nmにp−ニトロフェノールのピーク
が観察され,ポリマー側鎖に対して,p−ニトロフェノ
ールが導入されていることが確認された。本反応におけ
る側鎖活性化率(p−ニトロフェノール導入率)をUV
スペクトルの測定により同定した。手法としては,0.
2g/lの濃度で反応生成物をメタノール中に溶解さ
せ,その溶液中に0.1Nの水酸化カリウムを加え10
分間激しく撹拌し,その溶液の390nmに現れるp−
ニトロフェノールの吸収を測定する方法を用いた。
FIG. 4 shows the UV spectrum of the compound obtained. In the figure, a peak of p-nitrophenol was observed at 310 nm, and it was confirmed that p-nitrophenol was introduced into the polymer side chain. The side chain activation rate (p-nitrophenol introduction rate) in this reaction was determined by UV
It was identified by measuring the spectrum. As a method, 0.
The reaction product was dissolved in methanol at a concentration of 2 g / l, and 0.1 N potassium hydroxide was added to the solution to add 10 g.
After stirring vigorously for a minute, the p-
A method for measuring the absorption of nitrophenol was used.

【0033】(3) ガラクトサミンとのカップリング (活性エステル法)ガラクトサミンハイドロクロライド
0.22g(1.04×10-3mol)をDMF10m
l中に溶かし,トリエチルアミン0.15ml(1.0
4×10-3mol)を加えた後,PGA−ONp0.3
0g(1.84×10-3mol,1ユニット当りの見か
けの分子量から求めた計算値)を加え,室温で2日間反
応を行った。その後沈殿物を含めて溶液を透析し(2日
間),凍結乾燥によって,試料を調製した。(ここに挙
げた仕込量は,前述した側鎖加水分解率28.6%のポ
リマーを用いて側鎖活性化を施し調製した試料のもので
ある。他の試料に対しても側鎖活性化率に応じて2倍程
度の糖及びトリエチルアミンを用いた。)
(3) Coupling with galactosamine (Active ester method) 0.22 g (1.04 × 10 −3 mol) of galactosamine hydrochloride was added to 10 m of DMF.
dissolved in 0.15 ml of triethylamine (1.05 ml).
After adding 4 × 10 −3 mol), PGA-ONp0.3 was added.
0 g (1.84 × 10 −3 mol, calculated from the apparent molecular weight per unit) was added, and the mixture was reacted at room temperature for 2 days. Thereafter, the solution including the precipitate was dialyzed (for 2 days), and a sample was prepared by freeze-drying. (The amount of charge given here is that of a sample prepared by performing side chain activation using a polymer having a side chain hydrolysis rate of 28.6% as described above. About twice as much sugar and triethylamine were used depending on the rate.)

【0034】(縮合剤法)水溶液中にPGA0.45g
を溶かし,側鎖カルボキシル基の1.5倍,1倍,0.
75倍,0.5倍,0.25倍molのガラクトサミン
(Gal−NH2)を続けて溶かし,0.1N塩酸によ
ってpHを4.7に調整した溶液を準備した。この溶液
中に用いたガラクトサミンの1.5倍molのEDCを
溶解させたpH4.7の水溶液を,0℃において8時間
かけ滴下した。引き続いて,室温で24時間反応させた
後,2日間透析し,凍結乾燥によって試料を調製した。
これらの反応で得られた化合物(PGA−Gal)の 1
H−NMRスペクトルの測定結果を図5に示す。図から
明らかな様に各試料ともに4ppm付近に糖のピークが
観察され,糖がポリマー側鎖中に導入されたことが確認
された。
(Condensing agent method) 0.45 g of PGA in an aqueous solution
And 1.5 times, 1 time, 0.
Galactosamine (Gal-NH 2 ) of 75 times, 0.5 times, and 0.25 times mol was continuously dissolved, and a solution was prepared with 0.1N hydrochloric acid to adjust the pH to 4.7. An aqueous solution of pH 4.7 in which 1.5 times mol of EDC of galactosamine used in this solution was dissolved was added dropwise at 0 ° C. over 8 hours. Subsequently, after reacting at room temperature for 24 hours, the sample was dialyzed for 2 days, and lyophilized to prepare a sample.
Compounds obtained by these reactions (PGA-Gal) 1
FIG. 5 shows the measurement results of the H-NMR spectrum. As is clear from the figure, a saccharide peak was observed at around 4 ppm in each sample, confirming that the saccharide was introduced into the polymer side chain.

【0035】また,上記縮合剤法により,側鎖カルポキ
シル基の1.5倍,1倍,0.75倍およぴ0.5倍の
ガラクトサミンを加えてカップリングさせて得られたガ
ラクトサミン置換体(PGA−Gal)の1H−NMR
スペクトルを図6,図7,図8および図9に示す。図か
ら明らかなように,ガラクトサミンの使用量に対応し
て,各々ガラクトサミンの置換割合85モル%[PGA
−Gal(85)],70モル%[PGA−Gal(7
0)],60モル%[PGA−Gal(60)]および
40モル%[PGA−Gal(40)]の化合物が得ら
れた。
A galactosamine-substituted product obtained by adding 1.5-fold, 1-fold, 0.75-fold and 0.5-fold galactosamine to the side chain carboxyl group and coupling the same by the above condensing agent method. 1 H-NMR of (PGA-Gal)
The spectra are shown in FIGS. 6, 7, 8 and 9. As is clear from the figure, the substitution ratio of galactosamine was 85 mol % [PGA, corresponding to the amount of galactosamine used.
-Gal (85)], 70 mol % [PGA-Gal (7
0)], 60 mol % [PGA-Gal (60)] and 40 mol % [PGA-Gal (40)].

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】本発明の化合物(PGA−Gal:置換割合7
5),原料化合物(PGA)および対照(PVLA)の
ラット肝細胞に対する親和性を示す図である。
FIG. 1 shows a compound of the present invention (PGA-Gal: substitution ratio 7)
5) is a diagram showing the affinity of a starting compound (PGA) and a control (PVLA) for rat hepatocytes.

【図2】糖含有量を異にする本発明の化合物について,
肝細胞の接着率の相違を各培養時間について調べた図で
ある。
FIG. 2 shows the compounds of the present invention having different sugar contents.
FIG. 4 is a diagram showing the difference in hepatocyte adhesion rate for each culture time.

【図3】PMLGの側鎖メチルエステルの加水分解の進
行を示す 1H−NMRスペクトルである。図中(c)
は,室温で3日間反応させた後の生成物について測定し
たものである。
FIG. 3 is a 1 H-NMR spectrum showing the progress of hydrolysis of a side chain methyl ester of PMLG. (C) in the figure
Was measured for the product after reacting at room temperature for 3 days.

【図4】実施例1(2)で得られた化合物のUVスペク
トルを示す。
FIG. 4 shows a UV spectrum of the compound obtained in Example 1 (2).

【図5】実施例1(3)の活性エステル法で得られた化
合物の 1H−NMRスペクトルを示す。
FIG. 5 shows a 1 H-NMR spectrum of a compound obtained by an active ester method of Example 1 (3).

【図6】PGA−Gal(85)の 1H−NMRスペク
トルを示す。
FIG. 6 shows a 1 H-NMR spectrum of PGA-Gal (85).

【図7】PGA−Gal(70)の 1H−NMRスペク
トルを示す。
FIG. 7 shows a 1 H-NMR spectrum of PGA-Gal (70).

【図8】PGA−Gal(60)の 1H−NMRスペク
トルを示す。
FIG. 8 shows a 1 H-NMR spectrum of PGA-Gal (60).

【図9】PGA−Gal(40)の 1H−NMRスペク
トルを示す。
FIG. 9 shows a 1 H-NMR spectrum of PGA-Gal (40).

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C08G 69/00 - 69/50 A61K 47/48 C07K 9/00 CA(STN) REGISTRY(STN)────────────────────────────────────────────────── ─── Continued on the front page (58) Fields surveyed (Int. Cl. 7 , DB name) C08G 69/00-69/50 A61K 47/48 C07K 9/00 CA (STN) REGISTRY (STN)

Claims (2)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 一般式 【化1】 (式中,xは重合度60〜250であることを,nは1
又は2を、Rはメチル基又はベンジル基を夫々意味す
る。)で示されるポリペプチドにおいて、その構成ペプ
チドの一部又は全部を一般式 【化2】 (式中、nは前記の意味を表わす)で表わされる ω−
ガラクトサミル−L−グルタミン酸(又はアスパラギン
酸)残基で置換したポリ−ω−メチル(又はベンジル)
−L−グルタミン酸(又はアスパラギン酸)のガラクト
サミン置換体。
1. A compound of the general formula (Where x is a degree of polymerization of 60 to 250, and n is 1
R represents a methyl group or a benzyl group, respectively. ), A part or all of the constituent peptides are represented by the general formula: (Wherein, n represents the above-mentioned meaning)
Poly-ω- methyl (or benzyl) substituted with a galactosamil-L-glutamic acid (or aspartic acid) residue
-A galactosamine-substituted product of L-glutamic acid (or aspartic acid).
【請求項2】ω−メチル(又はベンジル)−L−グルタ
ミン酸(又はアスパラギン酸)残基 【化3】 (式中、nは1又は2を,Rはメチル基又はベンジル基
を夫々意味する。)、L−グルタミン酸(又はアスパラ
ギン酸)残基 【化4】 (式中、nは前記の意味を表わす)および ω−ガラク
トサミル−L−グルタミン酸(又はアスパラギン酸)残
基 【化5】 (式中、nは前記の意味を表わす)を構成単位とするガ
ラクトサミル化 ω−メチル(又はベンジル)−L−グ
ルタミン酸(又はアスパラギン酸)線状重合体であっ
て、下記A〜Cを満足する重合体 A:重合度 60〜250 B:分子量 8,000〜71,000 C:各構成単位の比率 ω−メチル(又はベンジル)−L−グルタミン酸(又はアスパラギン酸)残 基 0〜 97モル% L−グルタミン酸(又はアスパラギン酸)残基 0〜 87モル% ω−ガラクトサミル−L−グルタミン酸(又はアスパラギン酸)残基 3〜100モル%
2. An ω- methyl (or benzyl) -L-glutamic acid (or aspartic acid) residue. (Wherein, n represents 1 or 2, R represents a methyl group or a benzyl group, respectively), an L-glutamic acid (or aspartic acid) residue (Wherein n represents the same meaning as above) and a residue of ω-galactosamil-L-glutamic acid (or aspartic acid) (Wherein, n represents the above-mentioned meaning) is a galactosamilated ω- methyl (or benzyl) -L-glutamic acid (or aspartic acid) linear polymer having a constitutional unit, and satisfies the following AC: Polymer A: degree of polymerization 60 to 250 B: molecular weight 8,000 to 71,000 C: ratio of each structural unit ω- methyl (or benzyl) -L-glutamic acid (or aspartic acid) residue 0 to 97 mol% L -Glutamic acid (or aspartic acid) residue 0 to 87 mol% ω-galactosamil-L-glutamic acid (or aspartic acid) residue 3 to 100 mol%
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