JP3202029B2 - Microdetermination of interleukin 5 - Google Patents

Microdetermination of interleukin 5

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JP3202029B2
JP3202029B2 JP03282991A JP3282991A JP3202029B2 JP 3202029 B2 JP3202029 B2 JP 3202029B2 JP 03282991 A JP03282991 A JP 03282991A JP 3282991 A JP3282991 A JP 3282991A JP 3202029 B2 JP3202029 B2 JP 3202029B2
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antibody
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Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、ヒトインターロイキン
5(ヒトIL−5と称する)に対するモノクローナル抗
体、このモノクローナル抗体を用いるサンドイッチ法に
よるヒトIL−5の測定方法、及びこの測定方法のために
使用する測定キットに関する。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a monoclonal antibody against human interleukin 5 (referred to as human IL-5), a method for measuring human IL-5 by a sandwich method using the monoclonal antibody, and a method for measuring the same. It relates to the measurement kit to be used.

【0002】[0002]

【従来の技術】IL−5はT細胞代替因子(T cell-repla
cing factor)とも称され、最初、活性化されたB細胞が
免疫グロブリン分泌細胞に分化するための最終段階のた
めに必要な因子として記載された(J.Immunol. 125 , 26
46, 1980, Kiyoshi Takatsu ら)。最近、マウス及びヒ
トについてIL−5をコードするcDNAが単離され(Nature
324 , 70, 1986, Tatsuo Kinashiら;Cell 14, 9148, 1
986, Chihiro Azuma ら)、精製されたIL−5が入手可
能になったことから、広範な研究が可能となり、この結
果IL−5が種々の生物学的活性、例えば好中球の分化の
誘導(J.Exp.Med. 167 , 43, 1988, Yuji Yamaguchi
ら)、B細胞の増殖の刺激(Proc.Natl.Acad.Sci.USA 8
3, 437, 1986, Colin J.Sandersonら)、細胞傷害(cyto
toxic) T細胞形成の増強(Proc.Natl.Acad.Sci.USA 84,
4234, 1987, Kiyoshi Takatsu ら)等、を有すること
が明らかになった。しかしながら、正常状態及び疾患状
態におけるIL−5の正確な役割は解明されていない。
2. Description of the Related Art IL-5 is a T cell-replacing factor (T cell-repla
cing factor), first activated B cells
The final step to differentiate into immunoglobulin-secreting cells
(J. Immunol.125, 26
46, 1980, Kiyoshi Takatsu et al.). Recently, mice and chicks
CDNA encoding IL-5 was isolated (Nature
324, 70, 1986, Tatsuo Kinashi et al .; Cell14, 9148, 1
986, Chihiro Azuma et al.) Purified IL-5 is available
Has enabled extensive research, and this
IL-5 has various biological activities, such as differentiation of neutrophils.
Induction (J.Exp.Med.167, 43, 1988, Yuji Yamaguchi
Sci. USA), stimulation of B cell proliferation (Proc. Natl. Acad. Sci. USA8
Three, 437, 1986, Colin J. Sanderson et al.), Cytotoxicity (cyto
Toxic) Enhancement of T cell formation (Proc. Natl. Acad. Sci. USA84,
 4234, 1987, Kiyoshi Takatsu et al.)
Was revealed. However, normal conditions and disease states
The exact role of IL-5 in the disease state has not been elucidated.

【0003】IL−5の測定のため、ネズミB細胞リンパ
腫 BCL1細胞の IgM分泌を誘導するその能力に基くバイ
オアッセイが用いられているが、この方法は感度が低
く、そして日常的測定法としてはふさわしくない。しか
も、 BCL1細胞はIL−4、GM−CSF 等の他のサイトカイ
ン類にも応答する。従って、IL−5の生物学的研究及び
実用のためには、前記の方法に代る、特異性が高く、高
感度でありそして信頼性の高いIL−5の測定方法が必要
である。
For the measurement of IL-5, a bioassay based on its ability to induce IgM secretion in murine B-cell lymphoma BCL1 cells has been used, but this method has low sensitivity and is a routine assay. not appropriate. Moreover, BCL1 cells also respond to other cytokines such as IL-4 and GM-CSF. Therefore, for the biological research and practical use of IL-5, a method for measuring IL-5 with high specificity, high sensitivity and reliability, which is an alternative to the above method, is required.

【0004】[0004]

【発明が解決しようとする課題】従って本発明は、日常
的に使用することができ、IL−5に対して特異性が高
く、しかも高感度の、IL−5の測定方法及び該方法の実
施のためのキットを提供するものであり、さらにこの技
術の前提となるIL−5に対するモノクローナル抗体を提
供するものである。
Accordingly, the present invention provides a method for measuring IL-5 which can be used on a daily basis, has high specificity for IL-5, and has high sensitivity, and implementation of the method. And a monoclonal antibody against IL-5, which is the premise of this technology.

【0005】[0005]

【課題を解決するための手段】本発明者は、IL−5の測
定のために有用な抗IL−5モノクローナル抗体を生産す
るハイブリドーマを得ることに成功し、IL−5の高感度
で且つ特異的なサンドイッチ測定法及びそのためのキッ
トを開発することに成功した。従って、本発明は、IL−
5に対するモノクローナル抗体、該モノクローナル抗体
を生産するハイブリドーマ、該モノクローナル抗体及び
IL−5に対するポリクローナル抗体を使いるサンドイッ
チ法によるIL−5の測定方法、並びに該測定方法に使用
するための測定キットを提供する。
Means for Solving the Problems The present inventor has succeeded in obtaining a hybridoma producing an anti-IL-5 monoclonal antibody useful for measuring IL-5, and has a high sensitivity and specificity for IL-5. We succeeded in developing a sandwich measurement method and a kit therefor. Therefore, the present invention relates to IL-
5, a monoclonal antibody producing said monoclonal antibody, said monoclonal antibody,
Provided are a method for measuring IL-5 by a sandwich method using a polyclonal antibody against IL-5, and a measurement kit for use in the method.

【0006】[0006]

【具体的な説明】本発明のモノクローナル抗体を生産す
るハイブリドーマを作製するための免疫系としては任意
のIL−5含有標品を用いることができるが、組換えイン
ターロイキン5を用いるのが好ましく、その製造方法は
例えば特開昭63−185387に詳細に記載されており、IL−
5をコードする遺伝子を含有する発現ベクターが導入さ
れた大腸菌は微工研条寄第1477号(FERM BP-1477)として
寄託されている。
DETAILED DESCRIPTION As an immune system for producing a hybridoma that produces the monoclonal antibody of the present invention, any IL-5-containing preparation can be used. Preferably, recombinant interleukin 5 is used. The production method is described in detail in, for example, JP-A-63-185387.
The Escherichia coli into which the expression vector containing the gene encoding 5 has been introduced has been deposited as Microengineering Research Co., Ltd. No. 1477 (FERM BP-1477).

【0007】ハイブリドーマの作製は、Milsteinら、 N
ature, 256, 495, 1975 により最初に記載された常法に
従って行うことができる。具体的な方法は実施例1に記
載する。
The production of hybridomas is described in Milstein et al., N.
, 256 , 495, 1975. A specific method is described in Example 1.

【0008】モノクローナル抗体の調製は、ハイブリド
ーマを常用の培地中で培養するか、又は動物の腹腔に感
染させ、腹水を回収することにより行うことができ、後
者の方法がより好ましい。この方法においては、ハイブ
リドーマをまずBALB/c マウス等の動物の腹腔に接種
し、該動物から腹水を回収する。次に、この腹水を遠心
分離等の常法に従って清澄にした後、免疫グロブリンを
特異的に吸着するプロテインAを固定化した担体、例え
ばプロテインA−セファロースCL4Bに適用し、吸着した
抗体を常法に従って溶出することにより精製されたモノ
クローナル抗体が得られる。
Preparation of the monoclonal antibody can be carried out by culturing the hybridoma in a conventional medium or by infecting the peritoneal cavity of an animal and collecting ascites, the latter method being more preferred. In this method, a hybridoma is first inoculated into the abdominal cavity of an animal such as a BALB / c mouse, and ascites is collected from the animal. Next, the ascites is clarified according to a conventional method such as centrifugation, and then applied to a carrier on which protein A that specifically adsorbs immunoglobulin is immobilized, for example, protein A-Sepharose CL4B, and the adsorbed antibody is subjected to a conventional method. The purified monoclonal antibody is obtained by elution according to

【0009】ポリクローナル抗体の調製も常法に従って
行うことができる。例えば精製された組換えヒトIL−5
をフロインドの完全アジュバント中に懸濁し、これを動
物、例えばウサギに注射して免疫及び追加免疫を行う。
最終追加免疫の1〜2週間後に採血し、常法に従って血
清を得、硫酸アンモニウム塩析により、例えば硫酸アン
モニウム0〜50%飽和画分として目的のポリクローナル
抗体を含有する蛋白質画分を得る。次にこれを、担体結
合プロテインA、例えばプロテインA−セファロースCL
−4Bに適用することにより免疫グロブリンを吸着せしめ
る。次に、この結合した免疫グロブリンを常法に従って
溶出した後、IL−5を固定した担体、例えばIL−5を固
定したセファロース4Bに適用し、IL−5に対するポリ
クローナル抗体のみを吸着せしめ、次にそれを常法に従
って溶出し、精製ポリクローナル抗体を得る。
Preparation of a polyclonal antibody can also be performed according to a conventional method. For example, purified recombinant human IL-5
Is suspended in Freund's complete adjuvant, which is injected into animals, for example rabbits, for immunization and boosting.
Blood is collected 1 to 2 weeks after the final booster, serum is obtained according to a conventional method, and a protein fraction containing the target polyclonal antibody is obtained, for example, as ammonium sulfate 0 to 50% saturated fraction by ammonium sulfate salting out. This is then combined with a carrier-bound Protein A, such as Protein A-Sepharose CL
Adsorb immunoglobulin by applying to -4B. Next, the bound immunoglobulin is eluted according to a conventional method, and then applied to a carrier on which IL-5 is immobilized, for example, Sepharose 4B on which IL-5 is immobilized, and only a polyclonal antibody against IL-5 is adsorbed. It is eluted according to a conventional method to obtain a purified polyclonal antibody.

【0010】本発明のサンドイッチ測定法は常法に従っ
て行うことができる。すなわち、まず、適当な固体担体
の表面にIL−5に対するモノクローナル抗体を吸着固定
し、次にこの抗体をヒトIL−5を含有すると予想される
サンプルと接触せしめる。これによりサンプル中のヒト
IL−5が、固体担体に固定されているモノクローナル抗
体と特異的に結合し、この結果、サンプル中のヒトIL−
5があらかじめ固定されているモノクローナル抗体を介
して固体担体に固定される。
[0010] The sandwich measurement method of the present invention can be performed according to a conventional method. That is, first, a monoclonal antibody against IL-5 is adsorbed and fixed on the surface of a suitable solid support, and then this antibody is brought into contact with a sample expected to contain human IL-5. This allows humans in the sample
IL-5 specifically binds to the monoclonal antibody immobilized on the solid support, resulting in human IL-
5 is immobilized on a solid support via a pre-immobilized monoclonal antibody.

【0011】次に、前記担体を、二次担体としてIL−5
に対するポリクローナル抗体を含有する溶液と接触せし
める。これにより該ポリクローナル抗体はIL−5の、モ
ノクローナル抗体との結合に利用されなかった第二のエ
ピトープと結合し、該ポリクローナル抗体はあらかじめ
固定されているモノクローナル抗体及びIL−5を介して
固体担体に結合し、この場合ポリクローナル抗体の固定
量がサンプル中のIL−5の量、すなわち固定されている
IL−5の量を反映する。
Next, the above carrier is used as a secondary carrier by IL-5.
In contact with a solution containing a polyclonal antibody against As a result, the polyclonal antibody binds to a second epitope of IL-5 that has not been used for binding to the monoclonal antibody, and the polyclonal antibody binds to the solid support via the previously immobilized monoclonal antibody and IL-5. Bind, in which case the immobilized amount of polyclonal antibody is the amount of IL-5 in the sample, ie, immobilized
Reflects the amount of IL-5.

【0012】従って、固定されたポリクローナル抗体の
量を測定することによりサンプル中のIL−5の量を決定
することができる。固定されたポリクローナル抗体の量
の測定法は後で詳細に記載する。
Thus, the amount of IL-5 in a sample can be determined by measuring the amount of immobilized polyclonal antibody. The method for measuring the amount of the immobilized polyclonal antibody will be described later in detail.

【0013】上記の方法において、固体担体としては、
例えば、マイクロタイタープレート、例えばポリ塩化ビ
ニル製マイクロタイタープレート、又はポリスチレン製
マイクロタイタープレート等を用いることができる。モ
ノクローナル抗体の固定は、例えば、モノクローナル抗
体を適当な緩衝液、例えば炭酸緩衝液、リン酸緩衝液等
に希釈した後、これを固体担体の表面に適用し、そして
4℃〜37℃にて30分間以上インキュベートすることによ
り行うことができる。
In the above method, the solid carrier includes:
For example, a microtiter plate such as a polyvinyl chloride microtiter plate or a polystyrene microtiter plate can be used. Immobilization of the monoclonal antibody can be performed, for example, by diluting the monoclonal antibody into an appropriate buffer such as a carbonate buffer or a phosphate buffer, applying the diluted solution to the surface of the solid support, and then heating the solution at 4 ° C. to 37 ° C. for 30 minutes. This can be done by incubating for at least a minute.

【0014】次に、固体担体を、洗浄液、例えばTween
20のごとき界面活性剤を含有する緩衝液、例えばリン酸
緩衝液、トリス緩衝液、ホウ酸緩衝液等により数回洗浄
して、未吸着のモノクローナル抗体を除去する。
Next, the solid carrier is washed with a washing solution such as Tween.
Washing is performed several times with a buffer containing a surfactant such as 20 such as a phosphate buffer, a Tris buffer, a borate buffer or the like to remove unadsorbed monoclonal antibodies.

【0015】次に、固体担体表面上の遊離結合基をブロ
ックするため、ブロッキング緩衝液により固体担体を処
理する。ブロッキング緩衝液として、例えば、1〜数%
のウシ血清アルブミン(BSA) 、卵白アルブミン、スキム
ミルク等を含有する緩衝液、例えばトリス緩衝液、リン
酸緩衝液、ホウ酸緩衝液等を用いることができ、処理は
4℃〜37℃にて30分間以上のインキュベーションにより
行うことができる。
Next, the solid support is treated with a blocking buffer to block free binding groups on the surface of the solid support. As a blocking buffer, for example, 1 to several%
Buffers containing bovine serum albumin (BSA), ovalbumin, skim milk, etc., for example, Tris buffer, phosphate buffer, borate buffer, etc. can be used. This can be done by incubation for more than one minute.

【0016】次に、固体担体を洗浄することよりブロッ
キング緩衝液を除去する。この洗浄は、前記モノクロー
ナル抗体の固定後の洗浄と同様に行うことができる。こ
うして、固体担体が調製される。
Next, the blocking buffer is removed by washing the solid carrier. This washing can be performed in the same manner as the washing after fixing the monoclonal antibody. Thus, a solid carrier is prepared.

【0017】次に、この固体担体を、適当な緩衝液、例
えばリン酸緩衝液、トリス緩衝液、ホウ酸緩衝液等の中
に希釈されたサンプルと接触せしめる。この接触は、4
℃〜37℃にて30分間以上のインキュベーションにより行
うことができる。次に前記のようにして固体担体を洗浄
する。
Next, the solid carrier is brought into contact with a sample diluted in a suitable buffer, for example, a phosphate buffer, a Tris buffer, a borate buffer or the like. This contact is 4
It can be carried out by incubation at 30 ° C. to 37 ° C. for 30 minutes or more. Next, the solid carrier is washed as described above.

【0018】次に、二次抗体、すなわちIL−5に対する
ポリクローナル抗体を含有する緩衝液に前記固体担体を
接触せしめる。この場合の緩衝液としては、例えばリン
酸緩衝液、トリス緩衝液、ホウ酸緩衝液等を用いること
ができる。この接触は4℃〜37℃にて30分間以上のイン
キュベーションにより行う。次に、前記のようにして固
体担体を洗浄する。
Next, the solid carrier is contacted with a buffer containing a secondary antibody, that is, a polyclonal antibody against IL-5. As the buffer in this case, for example, a phosphate buffer, a Tris buffer, a borate buffer, or the like can be used. This contact is performed by incubation at 4 ° C. to 37 ° C. for 30 minutes or more. Next, the solid carrier is washed as described above.

【0019】次に、上記のようにして結合固定された二
次抗体の検出・測定は任意の常法に従って行うことがで
きる。二次抗体自体を例えば放射性核種、蛍光物質、酵
素等により標識しておき、直接検出・測定することも可
能である。しかしながら、本発明の好ましい方法におい
ては、二次抗体に対して特異的な三次抗体を用い、この
三次抗体を種々の方法により標識しておく。
Next, the detection and measurement of the secondary antibody bound and immobilized as described above can be performed according to any conventional method. The secondary antibody itself can be labeled with, for example, a radionuclide, a fluorescent substance, an enzyme, or the like, and directly detected and measured. However, in a preferred method of the present invention, a tertiary antibody specific for the secondary antibody is used, and this tertiary antibody is labeled by various methods.

【0020】三次抗体としては、二次抗体の調製に用い
た動物の種と異る種の動物の抗体であって、二次抗体の
調製に用いた動物種の免疫グロブリンに対するもの又は
その断片が用いられる。例えば、二次抗体がウサギを用
いて調製された場合、三次抗体としてウサギ免疫グロブ
リンに対するヤギの抗体を用いることができる。
The tertiary antibody is an antibody of an animal of a species different from the species of the animal used for preparing the secondary antibody, wherein the antibody against the immunoglobulin of the animal species used for preparing the secondary antibody or a fragment thereof is used. Used. For example, when the secondary antibody is prepared using rabbits, a goat antibody against rabbit immunoglobulin can be used as the tertiary antibody.

【0021】三次抗体を標識するため、常用の標識物
質、例えば放射性核種、例えば 125I, 3H,14C;蛍
光物質、例えばフルオレッセインイソチオシアネート(F
ITC)、ローダミン、テキサスレッド;酵素、例えば西洋
ワサビパーオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、ウ
レアーゼ等を用いることができる。本発明の好ましい態
様においては三次抗体の標識として酵素が用いられ、本
発明のサンドイッチ法は酵素免疫測定法(ELISA)として
行われる。酵素の検出には、その酵素に対応する基質、
好ましくは発色性の酵素基質が用いられ、例えば酵素と
してパーオキシダーゼが用いられる場合、その基質とし
て過酸化水素、発色試薬として、例えばオルソフェニレ
ンジアミン、3,3′,5,5′−テトラメチルベンジ
ジン等が用いられる。
For labeling the tertiary antibody, a conventional labeling substance such as a radionuclide such as 125 I, 3 H, 14 C; a fluorescent substance such as fluorescein isothiocyanate (F
ITC), rhodamine, Texas Red; enzymes such as horseradish peroxidase, alkaline phosphatase, urease and the like can be used. In a preferred embodiment of the present invention, an enzyme is used as a label for the tertiary antibody, and the sandwich method of the present invention is performed as an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). For detection of an enzyme, a substrate corresponding to the enzyme,
Preferably, a chromogenic enzyme substrate is used. For example, when peroxidase is used as an enzyme, hydrogen peroxide is used as the substrate, and as a chromogenic reagent, for example, orthophenylenediamine, 3,3 ', 5,5'-tetramethylbenzidine is used. Are used.

【0022】本発明はIL−5の測定用キットをも提供
し、このキットは少なくともIL−5に対するモノクロー
ナル抗体、及びIL−5に対するポリクローナル抗体を含
んで成る。モノクローナル抗体は溶液状又は凍結乾燥品
でもよく、あるいは固体担体に固定されたものでもよ
い。キットが固体担体に固定されたモノクローナル抗体
を含む場合、この固体担体は好ましくはブロッキング剤
により処理された後のものである。
The present invention also provides a kit for measuring IL-5, which kit comprises at least a monoclonal antibody against IL-5 and a polyclonal antibody against IL-5. The monoclonal antibody may be in solution or lyophilized form, or may be immobilized on a solid carrier. Where the kit comprises a monoclonal antibody immobilized on a solid support, the solid support is preferably after being treated with a blocking agent.

【0023】測定キットはさらに、第三の要素として前
記ポリクローナル抗体(二次抗体)に特異的に結合する
標識された三次抗体を含むことができる。この場合の三
次抗体の標識が酵素である場合はさらに、該酵素の基質
を含む発色試薬をキットに含めることもできる。しかし
ながら、酵素標識された三次抗体及び対応する発色試薬
は市販品を使用することができ、本発明のキットの必須
要素ではない。
[0023] The measurement kit can further include, as a third element, a labeled tertiary antibody that specifically binds to the polyclonal antibody (secondary antibody). In this case, when the label of the tertiary antibody is an enzyme, a coloring reagent containing a substrate of the enzyme can be further included in the kit. However, a commercially available product can be used as the enzyme-labeled tertiary antibody and the corresponding coloring reagent, and they are not essential elements of the kit of the present invention.

【0024】本発明の測定キットはまた、任意的要素と
して、サンプル希釈用緩衝液、各種の試薬希釈用緩衝
液、洗浄液等を含むことができる。
The assay kit of the present invention can also contain, as optional components, a buffer for diluting a sample, a buffer for diluting various reagents, a washing solution, and the like.

【実施例】次に、実施例により本発明をさらに具体的に
説明する。
Next, the present invention will be described more specifically with reference to examples.

【0025】実施例1 ハイブリドーマの作製 ハイブリドーマの作製は、Milsteinら、Nature, 256 ,
495, 1975 により最初に記載された常法に従って行うこ
とができる。すなわち、例えば精製された組換えヒトIL
−5をフロインドの完全アジュバント中に懸濁し、マウ
ス(BALB/c)の腹腔内に7〜10日毎に3回注射しマウス
を免疫する。最終免疫の3日後該マウスの脾臓の細胞
(脾細胞)とマウスミエローマ細胞とポリエチレングリ
コールを用いて融合させ、常法に従いHAT培地(RPMI
1640+10%血清にヒポキサンチン、アミノプテリン、チ
ミジンを含む培地)による融合細胞(ハイブリドーマ)
の選択的培養後、その培養上清について ELISA法を用い
ヒトIL−5に対する反応により第一次スクリーニングを
行った。
Example 1 Preparation of hybridoma Hybridoma was prepared according to Milstein et al., Nature, 256 ,
495, 1975. That is, for example, purified recombinant human IL
-5 is suspended in Freund's complete adjuvant, and the mice (BALB / c) are intraperitoneally injected three times every 7 to 10 days to immunize the mice. Three days after the final immunization, spleen cells (splenocytes) of the mouse and mouse myeloma cells were fused using polyethylene glycol, and HAT medium (RPMI
Fusion cells (hybridomas) with 1640 + 10% serum in medium containing hypoxanthine, aminopterin and thymidine)
After selective culturing, primary screening was performed on the culture supernatant by reaction with human IL-5 using ELISA.

【0026】上記のスクリーニングで陽性(positive)と
判定されたハイブリドーマは、さらに限界希釈法による
サブクローニングによって単クローン(モノクローン)
とした。単一クローン化されたハイブリドーマの産生す
る抗体(即ちMoAb)のサブクラスは市販のマウスグロブ
リン同定キットを用いて同定した。
Hybridomas that were determined to be positive in the above screening were further subjected to subcloning by the limiting dilution method to obtain a single clone (monoclone).
And The subclass of the antibody (ie, MoAb) produced by the single cloned hybridoma was identified using a commercially available mouse globulin identification kit.

【0027】上記のようにして4個のハイブリドーマク
ローンD138,C213,D171、及びE060を得た。なお、この
明細書においては、便宜上、ハイブリドーマの標示及び
そのハイブリドーマにより生産されたモノクローナル抗
体の標示を同じ記号により行う。なお、上記ハイブリド
ーマD138は工業技術院微生物工業技術研究所に微工研条
第3289号(FERM BP-3289)として寄託されている。
As described above, four hybridoma clones D138, C213, D171 and E060 were obtained. In this specification, for the sake of convenience, the labeling of the hybridoma and the labeling of the monoclonal antibody produced by the hybridoma are performed using the same symbols. The hybridoma D138 has been deposited with the Institute of Microbial Industry and Technology of the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology as Micromachining Article No. 3289 (FERM BP-3289).

【0028】実施例2 モノクローナル抗体の調製 得られたハイブリドーマをBALB/c マウスの腹腔に接種
し、腹水を回収した。上記のようにして得た腹水20mlを
遠心分離して清澄化した後、35mlのプロテインA−セフ
ァロースCL−4Bカラム(Pharmacia LKB Biotechnology,
Uppsala,スェーデン)に適用し、カラムを3M NaCl を
含有する1.5Mグリシン緩衝液(pH8.9)で洗浄した
後、カラムに吸着したモノクローナル抗体を0.1Mクエ
ン酸緩衝液(pH4.0)により溶出した。他のハイブリド
ーマについても同様の操作を行い、それぞれ対応するモ
ノクローナル抗体を得た。
Example 2 Preparation of Monoclonal Antibody The obtained hybridoma was inoculated into the abdominal cavity of a BALB / c mouse, and ascites was collected. 20 ml of the ascites fluid obtained as described above was clarified by centrifugation, and then a 35 ml protein A-Sepharose CL-4B column (Pharmacia LKB Biotechnology,
After the column was washed with 1.5 M glycine buffer (pH 8.9) containing 3 M NaCl, the monoclonal antibody adsorbed on the column was washed with 0.1 M citrate buffer (pH 4.0). Eluted. The same operation was performed for other hybridomas to obtain corresponding monoclonal antibodies.

【0029】上記のようにして得られた4種類のモノク
ローナル抗体D138, C213, D171、及びE060はそれぞれ I
gG2a, IgG1, IgG2a 、及びIgG1のイムノグロブリンサブ
クラスに属する。これらの抗体の結合性はヒトIL−5に
特異的であり、他のサイトカイン、例えばインターフェ
ロンγ、IL−4、TNF−α及びGM−CSF 、並びにマウス
の組換IL−5には交差反応を示さない。さらに、これら
の抗体が認識するエピトープ(抗原決定基)はすべての
ペプチド部位である。
The four types of monoclonal antibodies D138, C213, D171, and E060 obtained as described above were
gG 2a, IgG 1, IgG 2a , and belongs to the immunoglobulin subclass IgG 1. The binding of these antibodies is specific for human IL-5 and cross-reacts with other cytokines, such as interferon gamma, IL-4, TNF-α and GM-CSF, and mouse recombinant IL-5. Not shown. Furthermore, the epitopes (antigenic determinants) recognized by these antibodies are all peptide sites.

【0030】実施例3 ポリクローナル抗体の調製 50μgの組換えIL−5をフロインドの完全アジュバント
中に懸濁し、これをウサギに3〜5週間毎に3回免疫
し、最終免疫の7日後に採血し、そして常法に従って血
清を得た。こうして得られた血清20mlに硫酸アンモニウ
ムを加えて50%飽和とした後、遠心分離により蛋白質画
分の沈澱を回収し、そしてPBSに対して透析すること
により硫酸アンモニウムを除去した。次に、この蛋白質
画分をプロテインA−セファロースCL−4Bカラムに適用
することにより免疫グロブリンを吸着せしめ、モノクロ
ーナル抗体の精製の場合と同様にして免疫グロブリン画
分を溶出した。
Example 3 Preparation of polyclonal antibody 50 μg of recombinant IL-5 was suspended in Freund's complete adjuvant, and the rabbit was immunized three times every 3 to 5 weeks, and blood was collected 7 days after the final immunization. , And serum was obtained according to a conventional method. After ammonium sulfate was added to 20 ml of the serum thus obtained to make it 50% saturated, the precipitate of the protein fraction was recovered by centrifugation, and ammonium sulfate was removed by dialyzing against PBS. Next, the protein fraction was applied to a protein A-Sepharose CL-4B column to adsorb immunoglobulin, and the immunoglobulin fraction was eluted in the same manner as in the purification of the monoclonal antibody.

【0031】次に、この免疫グロブリン画分をIL−5を
固定したセファロース4B(IL−5セファロース4B;
ファルマシア製のCNBr−活性化セファロース4Bを用
い、常法に従ってIL−5を結合させたもの;200μg hI
L−5/0.3gセファロース)に適用してIL−5に対
する抗体を特異的に吸着させ、次にこれを0.1Mグリシ
ン緩衝液(pH2.5)により溶出した。こうして、IL−5
に対する精製されたポリクローナル抗体を得た。
Next, this immunoglobulin fraction was treated with IL-5-fixed Sepharose 4B (IL-5 Sepharose 4B;
200 μg hI using CNBr-activated Sepharose 4B manufactured by Pharmacia and bound to IL-5 according to a conventional method;
(L-5 / 0.3 g Sepharose) to specifically adsorb the antibody against IL-5, which was then eluted with 0.1 M glycine buffer (pH 2.5). Thus, IL-5
A purified polyclonal antibody against was obtained.

【0032】実施例4 ELISA法によるIL−5の測定 96−ウエルのポリ塩化ビニルマイクロプレート(Falcon
3912)の中央部の60個のウエルに、緩衝液A(0.1M炭
酸緩衝液、pH9.5)に溶解したモノクローナル抗体(10
μg/ml)の溶液 100μlを入れ、プラスチック製カバ
ー(Falcon 3913)でマイクロプレートを覆った後4℃に
て一夜インキュベートした。
Example 4 Measurement of IL-5 by ELISA Method 96-well polyvinyl chloride microplate (Falcon
In the central 60 wells of 3912), monoclonal antibody (10) dissolved in buffer A (0.1 M carbonate buffer, pH 9.5) was added.
(μg / ml) solution, cover the microplate with a plastic cover (Falcon 3913), and incubate at 4 ° C. overnight.

【0033】前記マイクロプレートのウエルから液を注
ぎ出した後、ウエルに200μlの緩衝液B(0.1%のTwe
en 20を含有するリン酸緩衝液)を加え、3分間の後、
前記のようにして液を除去した。これをさらに3回繰返
すことによりウエルの洗浄を行った。
After the solution was poured from the wells of the microplate, 200 μl of buffer B (0.1% Tween) was added to the wells.
phosphate buffer containing en 20) and after 3 minutes,
The liquid was removed as described above. This was repeated three more times to wash the wells.

【0034】次にリン酸緩衝液中の1%ウシ血清アルブ
ミンの溶液 200μlを各ウエルに加え、室温にて30分間
インキュベートすることによりウエルの非特異的結合部
位のブロッキングを行った。次に前記の様にして3回洗
浄した。緩衝液C(10%ウシ胎児血清を含有する緩衝液
B)中に希釈されたIL−5の溶液(濃度 500〜7.8pg/
ml)(標準溶液)又は緩衝液B中に希釈された被験サンプ
ル 100μlをウエルに加え、カバーを付した後室温にて
一夜インキュベートし、そして前記の方法により5回洗
浄した。
Next, 200 μl of a solution of 1% bovine serum albumin in phosphate buffer was added to each well, and the wells were incubated at room temperature for 30 minutes to block non-specific binding sites in the wells. Next, it was washed three times as described above. A solution of IL-5 diluted in buffer C (buffer B containing 10% fetal bovine serum) (concentration 500-7.8 pg /
ml) (standard solution) or 100 μl of test sample diluted in buffer B was added to the wells, covered, incubated overnight at room temperature, and washed 5 times as described above.

【0035】次に、緩衝液D(3%のポリエチレングリ
コール6000を含有する緩衝液B)中に希釈したIL−5に
対するポリクローナル抗体(二次抗体)(濃度40ng/ml)1
00μlを各ウエルに加え、カバーを付した後、室温にて
4時間インキュベートした。次に、前記の方法により2
回洗浄した。次に、ヤギの抗−ウサギ免疫グロブリン抗
体にパーオキシダーゼを結合している標識された三次抗
体の緩衝液D中の溶液 100μlに入れ、そしてカバーを
付した後室温にて4時間インキュベートした。次に前記
の方法により5回洗浄した。
Next, a polyclonal antibody (secondary antibody) against IL-5 (concentration 40 ng / ml) diluted in buffer D (buffer B containing 3% polyethylene glycol 6000) was added.
00 μl was added to each well, covered, and incubated at room temperature for 4 hours. Next, 2
Washed twice. Next, 100 μl of a solution of a labeled tertiary antibody conjugated with a peroxidase to a goat anti-rabbit immunoglobulin antibody in buffer D was added and covered and incubated for 4 hours at room temperature. Next, it was washed five times by the above method.

【0036】0.1M酢酸緩衝液(pH5.5)中に0.0027%
の過酸化水素及び0.55nMの3,3′,5,5′−テトラ
メチルベンジジンを含有する、新しく調製した基質溶液
100μlを各ウエルに加え、室温にて10分間インキュベ
ートして酵素反応させた後、100μlの1N HCl を加え
て反応を停止させた。次に、 ELISAプレートリーダーに
より 450nmでの吸収を読み取った。
0.0027% in 0.1 M acetate buffer (pH 5.5)
Freshly prepared substrate solution containing hydrogen peroxide and 0.55 nM 3,3 ', 5,5'-tetramethylbenzidine
After adding 100 μl to each well and incubating at room temperature for 10 minutes to carry out the enzyme reaction, the reaction was stopped by adding 100 μl of 1N HCl. Next, the absorbance at 450 nm was read by an ELISA plate reader.

【0037】上記の方法により、モノクローナル抗体と
して、D138,C213,D171、及びE060を用いて種々の濃度
のIL−5標準サンプルを測定した場合、測定感度は次の
表1に示す通りであった。
When D138, C213, D171, and E060 were used as monoclonal antibodies to measure IL-5 standard samples at various concentrations according to the above method, the measurement sensitivity was as shown in Table 1 below. .

【0038】[0038]

【表1】 [Table 1]

【0039】モノクローナル抗体D138又はD171を一次抗
体(捕捉抗体)として使用することにより検出限界7.8
pg/mlという、従来法では得られない高い感度の測定を
行うことができる。一例として図1にモノクローナル抗
体D138を使用した場合の、IL−5濃度(pg/ml)と 450
nmにおける吸光度との間の検量線を示す。
By using the monoclonal antibody D138 or D171 as the primary antibody (capture antibody), the detection limit is 7.8.
High sensitivity measurement of pg / ml, which cannot be obtained by the conventional method, can be performed. As an example, when the monoclonal antibody D138 is used in FIG.
The calibration curve between the absorbance in nm is shown.

【0040】次に、本発明のサンドイッチ法の特異性を
調べるため、捕捉抗体としてD138を用い、種々のサイト
カイン類、細胞培養上清、及びヒト血清を測定し、これ
らが本発明の方法により検知されるか否かを調べた。そ
の結果を表2に示す。
Next, in order to examine the specificity of the sandwich method of the present invention, various cytokines, cell culture supernatant, and human serum were measured using D138 as a capture antibody, and these were detected by the method of the present invention. I checked whether it would be done. Table 2 shows the results.

【0041】[0041]

【表2】 [Table 2]

【0042】この表から明らかな通り、本発明の測定法
は、IL−5以外のヒトのサイトカインを検知せず、また
マウスのIL−5を検知しなかった。また、健常人の血清
中の成分も検知しなかった。従って、本発明のサンドイ
ッチ測定法はヒトIL−5に対して極めて特異性が高い。
As is clear from the table, the assay of the present invention did not detect human cytokines other than IL-5, and did not detect mouse IL-5. In addition, no component in the serum of a healthy person was detected. Therefore, the sandwich assay of the present invention has extremely high specificity for human IL-5.

【0043】次に、本発明の測定方法の同時再現性(同
時に同一のサンプルについて複数個の測定を行った場合
のバラツキの程度)、及び日差再現性(同一サンプルを
日を替えて測定した場合の測定結果の差)を調べた。
Next, the simultaneous reproducibility of the measurement method of the present invention (the degree of variation when a plurality of measurements are made on the same sample at the same time) and the daily reproducibility (the same sample was measured on different days) The difference in the measurement results in each case) was examined.

【0044】IL−5の濃度を異にする3種類のサンプル
A,B及びCを5連で測定し、他方、同じサンプルを1
日1回ずつ別々の日に5回測定した。各サンプルにつ
き、平均値及び標準偏差、並びに平均値に対する標準偏
差の割合(CV%)を表3に示す。
Three kinds of samples A, B and C having different concentrations of IL-5 were measured in quintuple, while the same sample was
Measurements were taken five times on separate days, once a day. Table 3 shows the average value and the standard deviation and the ratio of the standard deviation to the average value (CV%) for each sample.

【0045】[0045]

【表3】 [Table 3]

【0046】上記の通り、同時再現性及び日差再現性共
に良好であった。
As described above, both the simultaneous reproducibility and the daily reproducibility were good.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】図1は、捕捉抗体としてヒトIL−5に対するモ
ノクローナル抗体D138を用いてサンドイッチ ELISA法に
よりヒトIL−5を測定した場合のヒトIL−5濃度と吸光
度との関係の一例を示す。
FIG. 1 shows an example of the relationship between human IL-5 concentration and absorbance when human IL-5 is measured by sandwich ELISA using monoclonal antibody D138 against human IL-5 as a capture antibody.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI (C12P 21/08 C12R 1:91) (72)発明者 中西 俊博 大阪府三島郡島本町若山台1丁目1番1 号 サントリー株式会社 生物医学研究 所内 (56)参考文献 特開 昭59−39832(JP,A) 特開 平1−307666(JP,A) 特開 平1−59068(JP,A) 欧州特許出願公開367596(EP,A 1) J.Biochem.,Vol.106, (1989),p.23−28 (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C12P 21/08 C12N 5/12 - 5/28 G01N 33/53 G01N 33/577 C12N 15/06 - 15/08 BIOSIS(DIALOG) MEDLINE(STN) WPI(DIALOG)────────────────────────────────────────────────── ─── Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification symbol FI (C12P 21/08 C12R 1:91) (72) Inventor Toshihiro Nakanishi 1-1-1 Wakayamadai, Shimamotocho, Mishima-gun, Osaka Suntory (56) References JP-A-59-39832 (JP, A) JP-A-1-307666 (JP, A) JP-A-1-59068 (JP, A) European Patent Application Publication 367596 ( EP, A 1) Biochem. , Vol. 106, (1989), p. 23-28 (58) Field surveyed (Int. Cl. 7 , DB name) C12P 21/08 C12N 5/12-5/28 G01N 33/53 G01N 33/577 C12N 15/06-15/08 BIOSIS (DIALOG) ) MEDLINE (STN) WPI (DIALOG)

Claims (6)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 マウスインターロイキン5と実質的に反
せず、ヒトインターロイキン5を測定する方法におい
て検出限界値が 500pg/mL以下であるヒトインターロイ
キン5に対するモノクローナル抗体。
1. A method for measuring human interleukin 5 without substantially reacting with mouse interleukin 5.
A monoclonal antibody against human interleukin 5 having a detection limit of 500 pg / mL or less .
【請求項2】 前記検出限界値が31pg/mL以下である請2. The method according to claim 1, wherein said detection limit value is 31 pg / mL or less.
求項1に記載のモノクローナル抗体。The monoclonal antibody according to claim 1.
【請求項3】 ハイブリドーマ(微工研条寄第3289号)
により生産される請求項1又は2に記載のモノクローナ
ル抗体。
[Claim 3] Hybridoma (Jikoro No. 3289)
The monoclonal antibody according to claim 1 or 2 , which is produced by:
【請求項4】 請求項1〜3のいずれか1項に記載のヒ
トインターロイキン5に対するモノクローナル抗体、及
びヒトインターロイキン5に対するポリクローナル抗体
を用いるサンドイッチアッセイ法であることを特徴とす
るヒトインターロイキン5の測定方法。
4. A sandwich assay using the monoclonal antibody against human interleukin 5 and the polyclonal antibody against human interleukin 5 according to any one of claims 1 to 3. Measurement method.
【請求項5】 固体担体に固定されていてもよい、請求
1〜3のいずれか1項に記載のヒトインターロイキン
5に対するモノクローナル抗体、及びヒトインターロイ
キン5に対するポリクローナル抗体を含んで成る、ヒト
インターロイキン5測定用キット。
5. A human comprising the monoclonal antibody against human interleukin 5 and the polyclonal antibody against human interleukin 5 according to any one of claims 1 to 3, which may be immobilized on a solid carrier. Kit for measuring interleukin 5.
【請求項6】 請求項1〜3のいずれか1項に記載のモ
ノクローナル抗体を生産するハイブリドーマ。
6. A hybridoma that produces the monoclonal antibody according to any one of claims 1 to 3 .
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