JP3155961B2 - Anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier and method for producing the same - Google Patents

Anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier and method for producing the same

Info

Publication number
JP3155961B2
JP3155961B2 JP33539987A JP33539987A JP3155961B2 JP 3155961 B2 JP3155961 B2 JP 3155961B2 JP 33539987 A JP33539987 A JP 33539987A JP 33539987 A JP33539987 A JP 33539987A JP 3155961 B2 JP3155961 B2 JP 3155961B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
bilirubin
monoclonal antibody
carrier
immobilized
antibody
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
JP33539987A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPH01175945A (en
Inventor
煕 中島
Original Assignee
煕 中島
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 煕 中島 filed Critical 煕 中島
Priority to JP33539987A priority Critical patent/JP3155961B2/en
Publication of JPH01175945A publication Critical patent/JPH01175945A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP3155961B2 publication Critical patent/JP3155961B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Description

【発明の詳細な説明】 この発明は、抗ビリルビンモノクローナル抗体固定担
体およびその製造方法に関するものであり、更に詳細に
は、ビリルビンに対する抗体が固定された抗ビリルビン
モノクローナル抗体固定抗体およびその製造方法に関す
るものである。 健常人は、体内の老廃物質を静脈流により循環させ、
その循環経路にある腎臓により吸収して、腎臓から体外
に排他されるシステムが有効に作用している。しかし、
何らかの障害によりこの排泄システムが正常に作用しな
い患者は、かかる体内の老廃物を人為的に除去してやる
必要がある。かかるシステムとして腎臓透析が行われて
いる。しかし、このような腎臓透析システムによっても
容易には除去できない有害物質があり、かかる有害物質
を簡便にかつ有効に除去できるシステムが未だに開発さ
れていないのが現状である。また、肝臓切除や肝臓移植
後、肝臓の解毒、排泄機能が回復するまで使用される人
工肝臓においても、ビリルビンを始めとする有害物質を
血液または血清から除去することは非常に困難でまた厄
介な問題である。 かかる現状に鑑みて、本発明者は、血液またはその血
清中のビリルビンなどの有害物質に対して特異性を有す
る抗体、特にモノクローナル抗体を使用すればかかる有
害物質を有効にかつ簡便に除去できるシステムが開発で
きるのではないかと鋭意努力した結果、抗ビリルビンモ
ノクローナル抗体を抗ビリルビンモノクローナル抗体固
定用担体に固定化し、得られた抗ビリルビンモノクロー
ナル抗体固定担体を利用すれば、かかる有害物中のビリ
ルビンを特異的に、有効にかつ簡便に除去することがで
き、患者からその除去のための苦痛を除去もしくは著し
く軽減することができる有効でかつ簡便な排泄システム
が開発できることが見出して、この発明を完成した。 以下、この発明を詳細に説明する。なお、本明細書に
おいて単に「ビリルビン」という用語を使用した場合、
特記なき限り、遊離のビリルビンを始め、その各種異性
体、グルクロン酸等とのモノ、ジ抱合体、分解代謝物等
をも包含するものと理解すべきである。 この発明に使用できる抗ビリルビンモノクローナル抗
体は、血液または血清中の有害物質であるビリルビンを
選択特異的に認識でき、かつ、体内固定用担体に固定化
させて血流循環経路に配設することができ、かつ、かか
る経路に配置した場合に、血液または血清に対して、つ
まり、患者に対しては一切悪影響を及ぼすことなく、そ
の有害物質を除去することができるものである。 この発明に係る抗ビリルビンモノクローナル抗体固定
担体は、抗ビリルビンモノクローナル抗体を抗ビリルビ
ンモノクローナル抗体固定用担体に固定化させて得るこ
とができる。つまり、抗ビリルビンモノクローナル抗体
は、例えば、ビリルビンと牛血清アルブミンとを酸無水
物法により共有結合させてアルブミン結合ビリルビンを
得、これを抗原として、マウスを免疫し、そのマウスの
脾臓細胞とマウス骨髄細胞とをポリエチレングリコール
法にて細胞融合した後、HAT選択培地で培養して作製す
ることができる。 このようにして作製されたモノクローナル抗体は、遊
離ビリルビン、ビリルビンの各種異性体、縫合体、分解
代謝物等に共通の部位の認識することができる。このよ
うなモノクローナル抗体を用いると、その1種だけで各
種ビリルビンを同時に認識することができ、かかる各種
ビリルビンを同時に除去することができることになり、
極めて効率よく、有効にかつ簡便にビリルビン除去シス
テムを構築することができる。 同様にして、遊離ビリルビン、ビリルビンの各種異性
体、縫合体、分解代謝物等のそれぞれの特定部位を選択
特異的に認識することができるモノクローナル抗体も作
製することができるのは当然である。この場合には、そ
れぞれのビリルビンを個別的に認識して除去することが
できる。 更に、このようにして得られたモノクローナル抗体
は、人体に必要な血清成分であるヘムタンパク、特にビ
リルビンのヘムタンパクの代謝産物に対しては反応しな
い特性を有している。 この発明に使用される抗体固定用担体としては、抗ビ
リルビンモノクローナル抗体を固定化することができ、
そのモノクローナル抗体に対して何等有害な作用を及ぼ
さず、かつ、血液循環経路に配置した場合に、血液や血
清に対して、特に血液中の血球等の有用成分に対して何
等悪影響を及ぼさないものであればいずれであってもよ
く、この発明の目的に適したものである。かかる担体と
しては、マトリックス構造を有するものが好ましく、例
えば、セルロース、デキストラン、アガロース、ポリア
クリルアミドなど、特にアフィニテイークロマトグラフ
ィー用の担体として使用されるものが好ましい。また、
高速液体クロマトグラフィー用樹脂等も使用することが
できる。 かかる担体に対してリガンドとしてのモノクローナル
抗体を固定化するには、常法に従つて行うことができ
る。このリガンドと固定用抗体とは、例えば、アミド
基、硫黄結合、トレシル結合などを介してカップリング
していることが好ましい。 その固定化法の概略をアガロースを例にして説明す
る。つまり、アガロースをこの発明において抗体固定用
担体として使用するには、まずアガロースを活性化しな
ければならない。この活性化は従来の方法に従つて行う
ことができる。アガロースの活性化剤としては、例え
ば、縮合剤、ハロゲン化シアン、過ヨウ素酸、架橋試
薬、エポキシド等が挙げられる。例えば、AH型アガロー
ス、CH型アガロース等のようなアミノ基、カルボキシル
基を有するマトリックス構造のアガロースを使用する場
合には、カルボジイミド等の縮合剤等を使用してリガン
ドとしてのモノクローナル抗体をアミド基を介して固定
化することができる。またエポキシ活性化アガロース等
のようなエポキシ基を有するマトリックス構造のアガロ
ースを使用する場合には、S結合を介してリガンドとし
てのモノクローナル抗体をカップリングすることができ
る。更に、スクシンイミド基等を有する活性化CHアガロ
ース等のようなマトリックス構造のアガロースを使用す
る場合には、アミド基を介して固定化することができ
る。更にまた、トレシル活性化型マトリックス構造のア
ガロースを使用する場合には、例えば、そのトリフルオ
ロメチル基と、リガンドとしてのモノクローナル抗体の
アミノ基とがマップリングさせて固定化することができ
る。 (効果) 上記のようにして得られたこの発明の抗ビリルビンモ
ノクローナル抗体固定抗体は、例えば、既存の腎臓透析
システムの1部としてそのシステム内に組み込んで配置
することもできる。 また肝臓切除や肝臓移植などによって肝臓の機能が弱
つている患者に対しては、肝臓の機能が回復するまで取
り付けられる人工肝臓などにも組み込んで使用すること
ができ、治療上からも極めて有用である。 以上説明したように、この発明に係る抗ビリルビンモ
ノクローナル抗体固定抗体は、血液または血清中からビ
リルビン等の有害物質だけを選択特異的に除去でき、患
者の苦痛を簡便にかつ効率的に除去または緩和すること
ができる極めて有用なものである。 (実施例) 以下、実施例によってこの説明を更に説明する。 実施例1 (抗原の調製) ウシ血清アルブミン10mgをジオキサン2.0mlに溶解し
てウシ血清アルブミン(BSA)溶液を得た。 これとは別に、ビリルビン10mgをジメチルスルホキシ
ド1.0mlに溶解し、トリ−n−ブチルアミン3.0μlとイ
ソブチルクロロホルメート2.0μlとによって活性化し
た。これに0.1N水酸化ナトリウム50μlを添加した後、
この溶液を、上記で得られたウシ血清アルブミン溶液に
滴加した。この溶液のpHを1N塩酸または水酸化ナトリウ
ムで約pH9.5に調整した後、この混合液を4℃で12時間
撹拌してカップリングを終了した。この反応液からセフ
ァデックスG−25を使用したゲルろ過により結合ビリル
ビン−BSA(ビリルビン8モル/タンパク1モル)が得
られた。 (モノクローナル抗体の調製) 上記で得られた結合ビリルビン−BSAを同量のフロイ
ンド・アジュバントで乳化して得られた乳化液100μl
(60μg)をBALB/cマウスに腹腔内注射をして免疫し
た。細胞融合する4日前から、マスに1日当たり200μ
l、400μl、400μl、400μlをそれぞれ腹腔内注射
をして追加免疫した。このように免疫したマウスの脾臓
細胞とマウス骨髄細胞(P3−X63Ag−U1)とをポリエチ
レングリコール法により細胞融合した。 このように細胞融合して得られた細胞をHAT培地で培
養して選択した後、ビリルビンに特異的なモノクローナ
ル抗体を産生したハイブリドーマを常法により処理して
所望のモノクローナル抗体を得た。 (固定化処理) 前述のようにして得られたモノクローナル抗体のうち
ビリルビンと高い結合特性(KD=1.33x10-7M)を示した
クローンを用いてイムノグロブリン(IgG)を大量に精
製し活性化したCNBr−セファロースに固定化した(な
お、固定化量は、乾燥セファロース1g当たり20mgであっ
た)。 なお、固定化は次のようにして行つた。乾燥重量1gの
CNBr−セファロースをガラスフィルター上で洗浄と膨潤
とを繰り返し行つた。このようにして得られた膨潤ゲル
を、カップリングする抗体3mgを溶解したカップリング
バッファー(0.5M NaClを含む0.1M NaHCO3(pH8.3)溶
液)で洗浄した。この溶液をゲル懸濁液と混合し、4℃
で1夜撹拌した。このようにして得たゲルを1Mエタノー
ルアミン(pH8.0)に移し、残りの活性基をブロックし
た。次いで、カップリングバッファー、NaCl(0.5M)を
含む0.1M酢酸バッファー(pH4.0)で洗浄し、更にカッ
プリングバッファーで洗浄して、過剰の吸着抗体を洗い
流した。その後、このカップリングバッファーを洗い流
して固定化処理を完了した。 なお、対照として、ヒト血清アルブミン(HSA)とマ
ウスγ−グロブリン(MGG)をそれぞれ同量づつ固定化
したセファロースを準備した。 この3種のタンパク固定化セファロースと、未処理の
セファロースをそれぞれ2mlづつカラムに充填し、これ
にビリルビン値5mg/dlに調整したヒト血清(トレーサー
として約5x104dpmの3H−ビリルビンを添加)を各1ml添
加しリン酸バッファーで流出した。その結果、IgG−セ
ファロースのカラムには添加量の61.3%に相当する17.5
μg(セファロース1g当たり)のビリルビンが吸着され
ていることが判明した。この量は、HSA−セファロース
のカラムの3.5倍、その他のカラムの数十倍に相当して
いる。更に、モニターした中で、総タンパク量、GOT
値、GFT値、フィブリノーゲン値は総てのカラムにおい
てその通過前後での変化は認められなかった。 実施例2 (ビリルビン抗原の調製) 未抱合ビリルビン(UCB)IX α10mgをジメチルスルホ
キシド1.0mlに溶解し、この溶液に、結晶が生じないこ
とが確実になった後に、トリ−n−ブチルアミン3.0μ
lおよびイソブチルクロロホルメート2.0μlを添加し
た。 別に、ウシ血清アルブミン10mgを0.024M NaOHに溶解
し、この溶液にジオキサン2.0mlを添加し、この混合液
を10,000Gで5分間遠心分離して、不溶物質を除去し
た。 次いで、上記したビリルビン溶液にNaOH50μlを添加
した後、別個に作製したアルブミン溶液に直ちに滴加し
た。この混合液をNaOHまたはHCIでpH9.5に調製した後、
この溶液を4℃で1夜撹拌した。 このようにして得られた結合物を、セファデックスG
−25でゲルろ過によって精製した。 未結合ビリルビンを450nmによる吸収、アルブミンを
プロテインアッセイで調べた結果、アルブミン1モルに
対して、ビリルビン8モルが結合していることが確認さ
れた。 (モノクローナル抗体の製造) 上記のようにして得られたビリルビン抗原を同量のフ
ロインド完全アジュバントで乳化した乳化液100μl(6
0μg)をBALB/cマウスに腹腔内注射をして免疫した。
細胞融合する4日前から、マウスにそれぞれ1日当たり
200μl、400μl、400μl、400μlを注射して追加免
疫した。 この免疫したマウスの脾臓細胞とマウス骨髄細胞(P3
−X63−Ag8−U1)とを10対1(脾臓細胞対骨髄細胞)の
割合で混合して、45%ポリエチレングリコール6000を用
いて37℃で8分間処理して細胞融合をした。このように
して細胞融合させて得られた細胞をヒポキサンテン−チ
ミジン(HT)培地中に懸濁し、組織培養プレートウエル
に注入した後、5%CO2、インキュベーター中において3
7℃で培養した。24時間後、ハイブリドーマを選択する
ために、この培地をHAT培地に変えると、2一3週間後
にコロニーの発生が目視された。このコロニーの上澄液
を除去してELISA法によって所望のモノクローナル抗体
が産生していることを調べた。 次に、上記の方法でモノクローナル抗体産生が陽性で
あると確認されたコロニーをマウス脾臓細胞と共に更に
培養した。 (スクリーニング) UCB−HSA(リン酸バッファー生理食塩水(PBS)100μ
l中1μl)の抗原溶液をポリスチレンプレートウエル
に入れて、4℃で1夜放置した後、そのウエルをPBSで
3回洗浄して吸着していない抗原を除去した。次いで、
1%ゼラチン(PBS)溶液を注入して室温で1時間放置
した。続いて、0.05%ツイーン20を含有するPBSで3回
洗浄して未結合タンパクを除去した。次ぎに、抗体を含
む上澄液を10倍量の1%HSA−PBSで希釈し、その後アリ
コート10μlをウエルに添加した。このウエルを37℃で
30分間培養して、0.05%ツイーン20を含むPBSで3回洗
浄した後、ウサギ抗マウスIgG(Fab′)2−ウレアーゼ
・コンジュゲート(予め0.25%BSA−PBSで100倍に希釈
している)を添加した。このウエルを37℃で30分間培養
して、0.05%ツイーン20含有PBSで3回洗浄した後、基
質溶液100μlを各ウエルに添加して、室温で30分間放
置した。その後、ELISAリーダー(東洋測器製)を使用
して590nmの吸収を測定した。この測定の結果、64個の
クローンが、キャリヤータンパクには結合してなく、UC
Bに結合した特異的な抗体を産生していうことが判明し
た。 このようにして得られたクローンをCompetitive Satu
ration Analyslsによって分析して、UCB抗原に対して最
も高い反応性を持つクローンを16個選択した。これらの
クローンのサブクラスを常法により調べた結果、IgG1が
7個、IgG2aが3個、IgG2bが4個、IgG3が1個、IgGMが
1個であることが確認された。 (固定化処理) 上記で得られたモノクローナル抗体を、実施例1と実
質的に同様にして処理して、アガロースマトリックスに
カップリングさせた。 このようにして得られたマトリックスを用いて、実施
例1と同様に処理したところ、実施例1のマトリックス
と同様にビリルビン類を同様に除去すると共に、その他
の値には何等悪影響を及ぼさないことが確認された。 実施例3 (抗原の製造) ビリルビンを5%p−ヒドロキシベンズアルデヒドを
含むクロロホルム(1mg/ml)に溶解し、この溶液にp−
トルエンスルホン酸の結晶数個を添加した。この混合液
を暗所で約8時間放置したところ、ビリルビンのエキソ
ービニル基にホルミルフェノキシ基が結合したビリルビ
ン誘導体が得られた。 得られたビリルビン誘導体を、次いで子ウシ血清アル
ブミンと、水酸化カリウムでpH9に調製した0.33Mリン酸
水素二カリウムの存在下で反応させて、ビリルビン誘導
体とアルブミンとが結合したシッフ塩基を生成した。 次いで、このシッフ塩基を水素化ほう素ナトリウムを
用いて室温で撹拌した後、還元して対応したシッフ塩基
が還元された化合物が得られた。 この還元化合物を抗原として使用して、実施例1と同
様にしてモノクローナル抗体を得た。 このようにして得られたモノクローナル抗体を下記の
ように処理してアガロースマトリックスにカップリング
させた。つまり、この抗体を水に溶解してpH4.5に調製
して、リガンド溶液を調製した。他方、乾燥重量1gのω
−カルボキシルヘキシルアミノーアガロースゲルを0.5M
NaCl200mlで洗浄して、アガロースマトリックスを調製
した。更に、1−エチル−3−(3−ジチルアミノプロ
ピル)カルボジイミド塩酸塩10gを水に溶解してpH4.5に
調整し、この溶液を上記のリガンド溶液と混合した後、
室温で1夜撹拌した。反応終了後、過剰のリガンド、未
反応カルボジイミドならびに副生成物を水で洗い流し
た。 上記のようにしてカップリングさせたモノクローナル
抗体を使用して血清中のビリルビン類の除去効果を調べ
た結果、上記の実施例と同様に良好な結果が得られた。
Description: TECHNICAL FIELD The present invention relates to an anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier and a method for producing the same, and more particularly, to an anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized antibody having an antibody against bilirubin immobilized thereon and a method for producing the same. It is. Healthy people circulate waste substances in the body by venous flow,
A system that is absorbed by the kidneys in the circulation pathway and excluded from the body outside the kidneys is working effectively. But,
Patients whose elimination system does not work properly due to some obstacles need to artificially remove such waste in the body. Renal dialysis is performed as such a system. However, there are harmful substances that cannot be easily removed even by such a kidney dialysis system, and at present, a system capable of easily and effectively removing such harmful substances has not yet been developed. In addition, it is very difficult and troublesome to remove bilirubin and other harmful substances from blood or serum even in artificial livers that are used after liver resection or liver transplantation until liver detoxification and excretion function is restored. It is a problem. In view of this situation, the present inventor has proposed a system capable of effectively and easily removing such harmful substances by using an antibody having specificity for harmful substances such as bilirubin in blood or its serum, particularly using a monoclonal antibody. As a result of our utmost efforts, we can immobilize an anti-bilirubin monoclonal antibody on a carrier for immobilizing an anti-bilirubin monoclonal antibody and use the resulting anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier to identify bilirubin in such harmful substances. It has been found that an effective and simple excretion system can be developed which can be effectively and simply removed, and which can remove or significantly reduce the pain for the removal from the patient, and completed the present invention. . Hereinafter, the present invention will be described in detail. In the present specification, when the term "bilirubin" is simply used,
Unless otherwise specified, it is to be understood that the term includes free bilirubin, various isomers thereof, mono-, di-conjugates with glucuronic acid, decomposed metabolites, and the like. The anti-bilirubin monoclonal antibody that can be used in the present invention can selectively and specifically recognize bilirubin, which is a harmful substance in blood or serum, and can be immobilized on a carrier for in vivo fixation and disposed in a blood circulation path. And when placed in such a route, it can remove the harmful substances without any adverse effect on blood or serum, that is, on the patient. The carrier for immobilizing an anti-bilirubin monoclonal antibody according to the present invention can be obtained by immobilizing an anti-bilirubin monoclonal antibody on a carrier for immobilizing an anti-bilirubin monoclonal antibody. That is, an anti-bilirubin monoclonal antibody is obtained, for example, by covalently linking bilirubin and bovine serum albumin by an acid anhydride method to obtain albumin-conjugated bilirubin, immunizing a mouse with this as an antigen, spleen cells of the mouse and mouse bone marrow. The cells can be produced by fusing cells with the polyethylene glycol method and then culturing in a HAT selection medium. The monoclonal antibody thus prepared can recognize sites common to free bilirubin, various isomers of bilirubin, sutures, degraded metabolites, and the like. When such a monoclonal antibody is used, various types of bilirubin can be simultaneously recognized by only one type, and such various types of bilirubin can be simultaneously removed,
An extremely efficient, effective and simple bilirubin removal system can be constructed. Similarly, a monoclonal antibody capable of selectively specifically recognizing each specific site such as free bilirubin, various isomers of bilirubin, sutures, degradation metabolites and the like can be naturally produced. In this case, each bilirubin can be individually recognized and removed. Furthermore, the monoclonal antibody thus obtained has a property that it does not react with heme protein, a serum component required for the human body, in particular, a metabolite of bilirubin heme protein. As the antibody-immobilizing carrier used in the present invention, an anti-bilirubin monoclonal antibody can be immobilized,
It has no detrimental effect on the monoclonal antibody and, when placed in the blood circulation, has no adverse effect on blood or serum, especially on useful components such as blood cells in blood. Any one may be used as long as it is suitable for the purpose of the present invention. As such a carrier, those having a matrix structure are preferable. For example, cellulose, dextran, agarose, polyacrylamide and the like, particularly those used as a carrier for affinity chromatography are preferable. Also,
High-performance liquid chromatography resins and the like can also be used. Immobilization of a monoclonal antibody as a ligand on such a carrier can be performed according to a conventional method. The ligand and the immobilizing antibody are preferably coupled via, for example, an amide group, a sulfur bond, a tresyl bond, or the like. The outline of the immobilization method will be described using agarose as an example. That is, in order to use agarose as a carrier for immobilizing antibodies in the present invention, first, agarose must be activated. This activation can be performed according to conventional methods. Examples of the agarose activator include a condensing agent, a halogenated cyanide, a periodic acid, a crosslinking reagent, and an epoxide. For example, when using agarose having a matrix structure having an amino group or a carboxyl group such as AH-type agarose and CH-type agarose, a monoclonal antibody as a ligand is converted to an amide group using a condensing agent such as carbodiimide. Can be immobilized via. When agarose having a matrix structure having an epoxy group such as epoxy-activated agarose is used, a monoclonal antibody as a ligand can be coupled via an S bond. Furthermore, when using agarose having a matrix structure such as activated CH agarose having a succinimide group or the like, it can be immobilized via an amide group. Furthermore, when agarose having a tresyl-activated matrix structure is used, for example, the trifluoromethyl group and the amino group of a monoclonal antibody as a ligand can be mapped and immobilized. (Effect) The anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized antibody of the present invention obtained as described above can also be incorporated into an existing renal dialysis system as part of an existing renal dialysis system, for example. For patients whose liver function is weak due to liver resection or liver transplantation, it can also be used by incorporating it into an artificial liver that can be installed until the liver function is restored, which is extremely useful from a therapeutic perspective. is there. As described above, the anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized antibody according to the present invention can selectively and specifically remove only harmful substances such as bilirubin from blood or serum, and can easily and efficiently remove or alleviate patient pain. It is a very useful thing that can be done. (Example) Hereinafter, this description will be further described with reference to an example. Example 1 (Preparation of antigen) Bovine serum albumin (BSA) solution was obtained by dissolving 10 mg of bovine serum albumin in 2.0 ml of dioxane. Separately, 10 mg of bilirubin was dissolved in 1.0 ml of dimethyl sulfoxide and activated with 3.0 μl of tri-n-butylamine and 2.0 μl of isobutyl chloroformate. After adding 50 μl of 0.1N sodium hydroxide to this,
This solution was added dropwise to the bovine serum albumin solution obtained above. After adjusting the pH of this solution to about pH 9.5 with 1N hydrochloric acid or sodium hydroxide, the mixture was stirred at 4 ° C. for 12 hours to complete the coupling. From this reaction solution, bound bilirubin-BSA (8 mol of bilirubin / 1 mol of protein) was obtained by gel filtration using Sephadex G-25. (Preparation of Monoclonal Antibody) 100 μl of an emulsified liquid obtained by emulsifying the bound bilirubin-BSA obtained above with the same amount of Freund's adjuvant.
(60 μg) was immunized by intraperitoneal injection into BALB / c mice. 4 days before cell fusion, 200μ / day
, 400 μl, 400 μl, and 400 μl were each injected intraperitoneally for booster immunization. The spleen cells of the mice thus immunized and the mouse bone marrow cells (P3-X63Ag-U1) were fused by the polyethylene glycol method. After the cells obtained by the cell fusion were cultured in a HAT medium and selected, the hybridoma producing a bilirubin-specific monoclonal antibody was treated by a conventional method to obtain a desired monoclonal antibody. (Immobilization treatment) Among the monoclonal antibodies obtained as described above, a large amount of immunoglobulin (IgG) was purified from a clone exhibiting a high binding characteristic to bilirubin (K D = 1.33 × 10 −7 M), and the activity was purified. Immobilized on immobilized CNBr-Sepharose (the amount of immobilization was 20 mg / g of dry Sepharose). The immobilization was performed as follows. 1g dry weight
The CNBr-Sepharose was repeatedly washed and swelled on a glass filter. The swollen gel thus obtained was washed with a coupling buffer (0.1 M NaHCO 3 (pH 8.3) solution containing 0.5 M NaCl) in which 3 mg of the antibody to be coupled was dissolved. This solution is mixed with the gel suspension and
And stirred overnight. The gel thus obtained was transferred to 1 M ethanolamine (pH 8.0) to block the remaining active groups. Next, it was washed with a coupling buffer, 0.1 M acetate buffer (pH 4.0) containing NaCl (0.5 M), and further washed with a coupling buffer to wash away excess adsorbed antibody. Thereafter, the coupling buffer was washed away to complete the immobilization treatment. As a control, Sepharose was prepared by immobilizing human serum albumin (HSA) and mouse γ-globulin (MGG) in the same amounts. Each of the three types of protein-immobilized sepharose and untreated sepharose was packed in a column of 2 ml each, and human serum adjusted to a bilirubin value of 5 mg / dl was added thereto (about 5 × 10 4 dpm of 3H-bilirubin was added as a tracer). Each 1 ml was added and the mixture was eluted with a phosphate buffer. As a result, 17.5 corresponding to 61.3% of the added amount was applied to the column of IgG-Sepharose.
It was found that μg (per 1 g of Sepharose) had been adsorbed. This amount corresponds to 3.5 times of the HSA-Sepharose column and several tens of times of the other columns. In addition, the total amount of protein, GOT
The values, GFT values and fibrinogen values did not change before and after the passage in all columns. Example 2 (Preparation of bilirubin antigen) 10 mg of unconjugated bilirubin (UCB) IX α was dissolved in 1.0 ml of dimethyl sulfoxide, and after ensuring that no crystal was formed in this solution, 3.0 μl of tri-n-butylamine was added.
1 and 2.0 μl of isobutyl chloroformate were added. Separately, 10 mg of bovine serum albumin was dissolved in 0.024 M NaOH, 2.0 ml of dioxane was added to the solution, and the mixture was centrifuged at 10,000 G for 5 minutes to remove insoluble substances. Next, 50 μl of NaOH was added to the bilirubin solution described above, and immediately added dropwise to the separately prepared albumin solution. After adjusting this mixture to pH 9.5 with NaOH or HCI,
The solution was stirred overnight at 4 ° C. The conjugate obtained in this manner was separated into Sephadex G
Purified by gel filtration at -25. The unbound bilirubin was examined by absorption at 450 nm, and albumin was examined by protein assay. As a result, it was confirmed that 8 mol of bilirubin was bound to 1 mol of albumin. (Production of Monoclonal Antibody) 100 μl of an emulsified liquid obtained by emulsifying the bilirubin antigen obtained as described above with the same amount of Freund's complete adjuvant (6
(0 μg) was immunized by intraperitoneal injection into BALB / c mice.
4 days before cell fusion
Booster immunization was performed by injection of 200 μl, 400 μl, 400 μl, and 400 μl. Spleen cells and mouse bone marrow cells (P3
-X63-Ag8-U1) was mixed at a ratio of 10: 1 (spleen cells to bone marrow cells) and treated with 45% polyethylene glycol 6000 at 37 ° C. for 8 minutes to perform cell fusion. The cells thus obtained by cell fusion are suspended in hypoxanthene-thymidine (HT) medium, injected into a tissue culture plate well, and then placed in a 5% CO 2 incubator in an incubator.
The cells were cultured at 7 ° C. After 24 hours, the medium was changed to HAT medium for selection of hybridomas, and colonies were visually observed after a few weeks. The supernatant of this colony was removed, and the production of the desired monoclonal antibody was examined by ELISA. Next, the colonies confirmed to be positive for monoclonal antibody production by the above method were further cultured together with mouse spleen cells. (Screening) UCB-HSA (phosphate buffered saline (PBS) 100μ)
(1 μl / l) of the antigen solution was placed in a polystyrene plate well, left at 4 ° C. overnight, and the well was washed three times with PBS to remove unadsorbed antigen. Then
A 1% gelatin (PBS) solution was injected and left at room temperature for 1 hour. Subsequently, it was washed three times with PBS containing 0.05% Tween 20 to remove unbound protein. Next, the supernatant containing the antibody was diluted with 10 volumes of 1% HSA-PBS, and then 10 μl aliquots were added to the wells. At 37 ° C
After culturing for 30 minutes and washing three times with PBS containing 0.05% Tween 20, a rabbit anti-mouse IgG (Fab ') 2-urease conjugate (diluted 100-fold with 0.25% BSA-PBS in advance) Was added. The wells were cultured at 37 ° C. for 30 minutes, washed three times with PBS containing 0.05% Tween 20, then 100 μl of the substrate solution was added to each well, and left at room temperature for 30 minutes. Thereafter, the absorbance at 590 nm was measured using an ELISA reader (manufactured by Toyo Sokki). As a result of this measurement, 64 clones did not bind to the carrier protein,
It turned out that it produced a specific antibody bound to B. Competitive Satu
Analyzed by ration Analysls, 16 clones with highest reactivity to UCB antigen were selected. As a result of examining the subclasses of these clones by a conventional method, it was confirmed that there were 7 IgG1, 3 IgG2a, 4 IgG2b, 1 IgG3, and 1 IgGM. (Immobilization treatment) The monoclonal antibody obtained above was treated in substantially the same manner as in Example 1, and coupled to an agarose matrix. Using the matrix thus obtained, the same treatment as in Example 1 was carried out, and the bilirubins were removed in the same manner as in the matrix of Example 1, and other values were not adversely affected at all. Was confirmed. Example 3 (Production of antigen) Bilirubin was dissolved in chloroform (1 mg / ml) containing 5% p-hydroxybenzaldehyde, and p-
Several crystals of toluenesulfonic acid were added. When this mixture was allowed to stand in a dark place for about 8 hours, a bilirubin derivative in which a formylphenoxy group was bonded to an exovinyl group of bilirubin was obtained. The resulting bilirubin derivative was then reacted with calf serum albumin in the presence of 0.33 M dipotassium hydrogen phosphate adjusted to pH 9 with potassium hydroxide to form a Schiff base in which the bilirubin derivative and albumin were bound. . Next, this Schiff base was stirred at room temperature using sodium borohydride, and then reduced to obtain a compound in which the corresponding Schiff base was reduced. Using this reducing compound as an antigen, a monoclonal antibody was obtained in the same manner as in Example 1. The monoclonal antibody thus obtained was treated as described below and coupled to an agarose matrix. That is, this antibody was dissolved in water and adjusted to pH 4.5 to prepare a ligand solution. On the other hand, ω of 1g dry weight
-0.5 M carboxyhexylamino-agarose gel
After washing with 200 ml of NaCl, an agarose matrix was prepared. Further, 10 g of 1-ethyl-3- (3-ditylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride was dissolved in water to adjust the pH to 4.5, and this solution was mixed with the above-mentioned ligand solution.
Stirred overnight at room temperature. After completion of the reaction, excess ligand, unreacted carbodiimide and by-products were washed away with water. As a result of examining the effect of removing bilirubins from serum using the monoclonal antibody coupled as described above, good results were obtained in the same manner as in the above Examples.

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】 1.抗ビリルビンモノクローナル抗体が抗体固定用担体
に固定されていることを特徴とする抗ビリルビンモノク
ローナル抗体固定担体。 2.抗体固定用担体を活性化し、前記抗体固定用担体に
抗ビリルビンモノクローナル抗体をカップリング化剤を
用いてカップリングして抗ビリルビンモノクローナル抗
体固定担体を得ることを特徴とする抗ビリルビンモノク
ローナル抗体固定担体の製造方法。 3.請求項2項に記載された抗ビリルビンモノクローナ
ル抗体固定担体の製造方法において、前記抗ビリルビン
モノクローナル抗体固定担体がマトリックス構造を有す
る担体であること。 4.請求項2項に記載された抗ビリルビンモノクローナ
ル抗体固定担体の製造方法において、前記カップリング
化剤が縮合剤、ハロゲン化シアン、過ヨウ素酸、架橋試
薬またはエポキシドであること。
(57) [Claims] An anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier, wherein the anti-bilirubin monoclonal antibody is immobilized on an antibody-immobilizing carrier. 2. Activating the antibody-immobilizing carrier, the anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier characterized in that the antibody-immobilizing carrier is coupled with an anti-bilirubin monoclonal antibody using a coupling agent to obtain an anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier. Production method. 3. 3. The method for producing an anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier according to claim 2, wherein the anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier is a carrier having a matrix structure. 4. 3. The method for producing an anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier according to claim 2, wherein the coupling agent is a condensing agent, a cyanogen halide, a periodic acid, a crosslinking reagent, or an epoxide.
JP33539987A 1987-12-30 1987-12-30 Anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier and method for producing the same Expired - Fee Related JP3155961B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP33539987A JP3155961B2 (en) 1987-12-30 1987-12-30 Anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier and method for producing the same

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP33539987A JP3155961B2 (en) 1987-12-30 1987-12-30 Anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier and method for producing the same

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPH01175945A JPH01175945A (en) 1989-07-12
JP3155961B2 true JP3155961B2 (en) 2001-04-16

Family

ID=18288107

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP33539987A Expired - Fee Related JP3155961B2 (en) 1987-12-30 1987-12-30 Anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier and method for producing the same

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP3155961B2 (en)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE69129365T2 (en) * 1990-08-22 1998-10-08 Seikagaku Kogyo K K Seikagaku TEST DAYS FOR ENDOTOXIN
JPH0737982B2 (en) * 1992-12-14 1995-04-26 元成 狩野 Anti-bile acid antibody and method for examining bile acid in feces using the same
AU2002951240A0 (en) * 2002-08-23 2002-09-19 Royal Women's Hospital Depletion of plasma proteins
JP4778804B2 (en) * 2006-02-14 2011-09-21 登喜夫 山口 Immunochromatographic measurement method and apparatus for biopyrine detection

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS61191620A (en) * 1984-12-20 1986-08-26 イエダ リサ−チ アンド デベロツプメント コンパニ− リミテツド Cellular toxin and application thereof

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS61191620A (en) * 1984-12-20 1986-08-26 イエダ リサ−チ アンド デベロツプメント コンパニ− リミテツド Cellular toxin and application thereof

Also Published As

Publication number Publication date
JPH01175945A (en) 1989-07-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4400376A (en) Immunological preparations
Lamoyi et al. Preparation of F (ab′) 2 fragments from mouse IgG of various subclasses
RU2139092C1 (en) Use of antibody fragment in therapy
Nilsson et al. Immunization of mice and rabbits by intrasplenic deposition of nanogram quantities of protein attached to Sepharose beads or nitrocellulose paper strips
EP0323805B1 (en) Novel antibodies
US5872222A (en) Conjugates of polymers and antibodies specific for T lymphocytes, and their use as adjuvants
EP0567514B1 (en) A system for enhanced in-vivo clearance of diagnostic and/or therapeutic agents by extracorporeal depletion of agents
JPH0136839B2 (en)
US4865841A (en) Methods and compositions for transient elimination of humoral immune antibodies
Muronetz et al. Isolation of antigens and antibodies by affinity chromatography
JP2761881B2 (en) An antibody-immobilized carrier for affinity chromatography
JP2975676B2 (en) Crosslinked antibodies and their preparation
JPS5853757A (en) Adsorbent for immuno-affinity chromatography and manufacture of same
JP3155961B2 (en) Anti-bilirubin monoclonal antibody-immobilized carrier and method for producing the same
JPH0649720B2 (en) FV III / vWF complex for treating type A hemophilia and von Willebrand disease and method for producing the same
EP0525570A2 (en) Anti-idiotypic antibodies that mimic TNF
CA2017528A1 (en) Monoclonal antibody reactive to a unique antigen widely present on various human leukemia and lymphoma cells and methods of using same for diagnosis and treatment
WO1990006133A1 (en) Heterobifunctional antibodies having specificity for platelets and thrombolytic agents
JPH0337075A (en) Antibody fixing carrier, its manufacture and usage
US8124743B2 (en) Purification of a bivalently active antibody using a non-chromatographic method
GB2200358A (en) Material for in vivo detection of cardiac damage
WO1991000109A1 (en) Carrier having antibody immobilized thereto, process for its production and its use
HAISMA et al. A monoclonal antibody against human β-glucuronidase for application in antibody-directed enzyme prodrug therapy
US4798719A (en) Method for selection of antigens suitable as in vivo targets for antibodies
JPH03505287A (en) Biocompatible, substance-specific reagents for processing physiological fluids

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Cancellation because of no payment of annual fees