JP3126786B2 - Method for producing polysaccharide - Google Patents

Method for producing polysaccharide

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JP3126786B2 JP1495892A JP1495892A JP3126786B2 JP 3126786 B2 JP3126786 B2 JP 3126786B2 JP 1495892 A JP1495892 A JP 1495892A JP 1495892 A JP1495892 A JP 1495892A JP 3126786 B2 JP3126786 B2 JP 3126786B2
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Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は細胞を培養し多糖類を液
体培地中に分泌させて多糖類を製造する方法に関し、更
に詳細には多糖生産に伴う培養液の粘度上昇を抑制し、
低粘度状態とすることにより簡便な操作で、かつ効率よ
く多糖を製造する方法に関する。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a method for producing a polysaccharide by culturing cells and secreting the polysaccharide into a liquid medium. More specifically, the present invention relates to a method for suppressing an increase in viscosity of a culture solution accompanying the production of a polysaccharide.
The present invention relates to a method for efficiently producing a polysaccharide by a simple operation by setting a low viscosity state.

【0002】[0002]

【従来の技術】多糖類は、増粘剤、ゲル化剤、気泡安定
剤、懸濁・乳化安定剤、被膜形成剤、粘着剤及び生理活
性剤等として広く使用されている。斯かる多糖類は、各
種供給源(植物、動物、微生物等)からの抽出もしくは
タッピング、又は各種細胞および/又は組織の培養液か
らの分離・精製によって製造されている。
2. Description of the Related Art Polysaccharides are widely used as thickeners, gelling agents, foam stabilizers, suspension / emulsion stabilizers, film-forming agents, adhesives, bioactive agents and the like. Such polysaccharides have been produced by extraction or tapping from various sources (plants, animals, microorganisms, etc.), or separation and purification from various cell and / or tissue cultures.

【0003】[0003]

【発明が解決しようとする課題】このうち、培養により
多糖類を培地中に分泌させて製造する方法においては、
培養により分泌される多糖類及び副生物が高分子である
ため、培養が進行するに伴なって培養液粘度が上昇し、
以下のような問題が発生していた。 (1)培養時、粘度上昇により培養液の拡散・混合が不
充分となり、その結果多糖類の生産性が向上しない。 (2)培養液の粘度が高いため、細胞等と多糖類の分離
が困難であり、その結果、多糖類の純度が向上せず、か
つ生産性も向上しない。
Among them, a method for producing a polysaccharide by secreting it into a medium by culturing,
Because polysaccharides and by-products secreted by the culture are macromolecules, the viscosity of the culture solution increases as the culture proceeds,
The following problems occurred. (1) At the time of culture, diffusion and mixing of the culture solution become insufficient due to an increase in viscosity, and as a result, the productivity of polysaccharide is not improved. (2) Since the viscosity of the culture solution is high, it is difficult to separate the cells and the like from the polysaccharide. As a result, the purity of the polysaccharide is not improved and the productivity is not improved.

【0004】これらの問題を解決する方法として、微生
物を培養してヒアルロン酸を製造する場合において、培
地の添加(特開昭62−32893号)、滅菌水の添加
(特開昭63−94988号)等が開示されている。し
かしながら、かかる方法では、培養液が著しく増加する
ため、単位培養容積当りの生産性が低下し、また添加し
た培地等を除去しつつ培養を行なう方法では新たな設備
を必要とし、かつ操作が煩雑となるという問題があっ
た。従って、本発明の目的は培養による多糖類生産時の
培養液の粘度上昇を簡便な操作で抑制し、当該多糖類の
生産性を向上させる方法を提供することにある。
[0004] As a method for solving these problems, in the case of producing hyaluronic acid by culturing microorganisms, addition of a culture medium (Japanese Patent Application Laid-Open No. 62-32893) and addition of sterilized water (Japanese Patent Application Laid-Open No. 63-94988). ) Is disclosed. However, in such a method, since the amount of the culture solution is remarkably increased, productivity per unit culture volume is reduced. Further, the method of performing the culture while removing the added medium or the like requires new equipment and is complicated in operation. There was a problem that. Accordingly, an object of the present invention is to provide a method for suppressing an increase in the viscosity of a culture solution during production of a polysaccharide by culturing by a simple operation and improving the productivity of the polysaccharide.

【0005】[0005]

【課題を解決するための手段】かかる実状において本発
明者らは植物細胞培養時の粘度上昇を抑制する手段につ
いて種々検討した結果、培地に金属塩を通常の培養時よ
りも高濃度となるように添加し半連続培養すれば、多糖
生産時の粘度上昇が抑制され、かつ目的とする多糖類の
生産性が向上することを見出し、本発明を完成した。
Under such circumstances, the present inventors have conducted various studies on means for suppressing the increase in viscosity during culturing of plant cells, and as a result, it has been found that the concentration of the metal salt in the medium is higher than that in normal culturing. It has been found that the addition of glycerol to cultivation and the semi-continuous cultivation suppress the increase in viscosity during polysaccharide production and improve the productivity of the target polysaccharide, thereby completing the present invention.

【0006】すなわち、本発明は植物細胞を培養し多糖
類を液体培地中に分泌させて多糖類を製造する方法にお
いて、金属塩を10〜100mM含有する液体培地を使用
して半連続培養することを特徴とする多糖類の製造方法
を提供するものである。
That is, the present invention relates to a method for producing a polysaccharide by culturing plant cells and secreting the polysaccharide into a liquid medium, wherein semi-continuous cultivation is performed using a liquid medium containing 10 to 100 mM of a metal salt. And a method for producing a polysaccharide characterized by the following.

【0007】本発明において使用される金属塩は、目的
とする多糖類を含有する培養液の粘度を低下させ、かつ
細胞の多糖類生産能に悪影響を及ぼさなければその種類
は問わない。かかる金属塩としては、ナトリウム、カリ
ウム、カルシウム、マグネシウム、バリウム、鉄、亜
鉛、アルミニウム等の1〜3価の金属の塩化物、硫酸
塩、炭酸塩、リン酸塩、硝酸塩等が挙げられる。具体的
には、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウ
ム、塩化バリウム、塩化マグネシウム、塩化鉄、塩化亜
鉛、塩化アルミニウム、硫酸ナトリウム、硫酸カリウ
ム、硫酸カルシウム、硫酸マグネシウム、硫酸バリウ
ム、硫酸亜鉛、硫酸第1鉄、硫酸第2鉄、硫酸アルミニ
ウム、炭酸ナトリウム、炭酸カリウム、炭酸カルシウ
ム、炭酸バリウム、炭酸マグネシウム、リン酸ナトリウ
ム、リン酸カリウム、リン酸カルシウム、リン酸マグネ
シウム、リン酸バリウム、硝酸ナトリウム、硝酸カリウ
ム、硝酸カルシウム、硝酸マグネシウム、硝酸バリウム
等が挙げられる。
The type of the metal salt used in the present invention is not limited as long as the viscosity of the culture solution containing the desired polysaccharide is reduced and the cell salt does not adversely affect the polysaccharide-producing ability. Examples of such metal salts include chlorides, sulfates, carbonates, phosphates, and nitrates of monovalent metals such as sodium, potassium, calcium, magnesium, barium, iron, zinc, and aluminum. Specifically, sodium chloride, potassium chloride, calcium chloride, barium chloride, magnesium chloride, iron chloride, zinc chloride, aluminum chloride, sodium sulfate, potassium sulfate, calcium sulfate, magnesium sulfate, barium sulfate, zinc sulfate, sulfuric acid Iron, ferric sulfate, aluminum sulfate, sodium carbonate, potassium carbonate, calcium carbonate, barium carbonate, magnesium carbonate, sodium phosphate, potassium phosphate, calcium phosphate, magnesium phosphate, barium phosphate, sodium nitrate, potassium nitrate, calcium nitrate , Magnesium nitrate, barium nitrate and the like.

【0008】液体培地中の当該金属塩の濃度は10〜1
00mMであることが必要である。通常、液体培地には、
1〜3mMの金属塩が添加されている場合があるが、これ
らの濃度では培養液の粘度上昇抑制作用はほとんどな
く、10mM以上の濃度にしてはじめて充分な粘度抑制作
用が見られる。また、100mMを超えると、多糖生産性
の減少が認められるため好ましくない。
The concentration of the metal salt in the liquid medium is 10 to 1
It needs to be 00 mM. Usually, a liquid medium contains
In some cases, 1 to 3 mM of a metal salt is added, but at these concentrations, there is almost no effect of suppressing the increase in viscosity of the culture solution, and a sufficient effect of suppressing the viscosity can be seen only when the concentration is 10 mM or more. On the other hand, if it exceeds 100 mM, a decrease in polysaccharide productivity is observed, which is not preferable.

【0009】本発明方法における他の条件は、用いる細
胞によって異なり、その細胞が分化・増殖し、多糖類を
生産する条件であれば特に制限されない。なお、本発明
において植物細胞は植物組織片、カルス、植物細胞自体
のいずれをもが含まれる。
The other conditions in the method of the present invention differ depending on the cells used, and are not particularly limited as long as the cells differentiate and proliferate and produce polysaccharides. In the present invention, the plant cells include any of plant tissue fragments, calli, and plant cells themselves.

【0010】かかる植物細胞の特に好ましい例として
は、ポリアンテス属(Polianthes L.)に
属するチューベロース(Polianthes tub
erosa L.)の植物体より誘導されたカルス(特
開昭64−10997号)が挙げられる。そして、目的
とする多糖類としては、当該カルスを培養することによ
り得られる、アラビノース、マンノース、ガラクトー
ス、キシロースおよびグルクロン酸を構成成分とする酸
性ヘテロ多糖が挙げられる。以下、このカルスを培養す
る場合を例にとって説明する。
A particularly preferred example of such a plant cell is tuberose belonging to the genus Polyanthes L.
erosa L .; ) Callus (JP-A-64-10997). Examples of the target polysaccharide include an acidic heteropolysaccharide containing arabinose, mannose, galactose, xylose, and glucuronic acid, which are obtained by culturing the callus. Hereinafter, a case where this callus is cultured will be described as an example.

【0011】本発明において上記カルスの培養に用いら
れる液体培地としては、植物細胞培養に通常用いられる
培地であれば特に制限はなく、基本培地として例えばM
urasige−Skoogの培地、Linsmaie
r−Skoogの培地、Gamborgの培地、Whi
teの培地、Tuleckeの培地、Nitach&N
itachの培地などが用いられうるが、就中Mura
sige−Skoogの培地、Linsmaier−S
koogの培地が好ましい。
In the present invention, the liquid medium used for culturing the callus is not particularly limited as long as it is a medium usually used for culturing plant cells.
urashige-Skoog's medium, Linsmaie
r-Skoog's medium, Gamborg's medium, Whi
te medium, Tulecke medium, Nitach & N
Itach's medium and the like can be used.
medium of size-Skoog, Linsmeier-S
Koog's medium is preferred.

【0012】これらの液体培地には、更に植物ホルモ
ン、炭素源等が添加されてもよい。植物ホルモンの種類
及び濃度は多糖類の生産性に関係があり、例えば2,4
−ジクロロフェノキシ酢酸(2,4−D)、α−ナフタ
レン酢酸(NAA)、インドール酢酸(IAA)、イン
ドール酪酸(IBA)等のオーキシン類;カイネチン、
ベンジルアデニン(BA)、ジメチルアミノプリン(2
ip)等のサイトカイニン類;ジベレリンA3(GA3
等のジベレリン類等が使用される。この中で、2,4−
D、NAAを単独で、又はNAAとBAもしくはカイネ
チンを組合わせて用いるのが好ましい。その濃度は、
2,4−D又はNAAを単独で用いる場合は5×10-4
Mから1×10-7M、特に5×10-5Mから5×10-6
Mが;NAAとBA又はNAAとカイネチンを組合わせ
て用いる場合には、NAAの濃度は1×10-4Mから1
×10-7M、特に1×10-4Mから5×10-6M、BA
又はカイネチンの濃度は5×10-5Mから1×10
-9M、特に1×10-5Mから1×10-7Mが好ましい。
[0012] These liquid media may further contain a plant hormone, a carbon source and the like. The type and concentration of plant hormones are related to polysaccharide productivity, such as 2,4.
Auxins such as dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), α-naphthaleneacetic acid (NAA), indoleacetic acid (IAA), indolebutyric acid (IBA); kinetin;
Benzyladenine (BA), dimethylaminopurine (2
cytokinins such as ip); gibberellin A 3 (GA 3 )
Gibberellins and the like are used. Among them, 2,4-
It is preferable to use D and NAA alone or in combination with NAA and BA or kinetin. Its concentration is
5 × 10 −4 when 2,4-D or NAA is used alone
M to 1 × 10 -7 M, especially 5 × 10 -5 M to 5 × 10 -6
When M is used in combination with NAA and BA or NAA and kinetin, the concentration of NAA is 1 × 10 −4 M to 1
× 10 -7 M, especially 1 × 10 -4 M to 5 × 10 -6 M, BA
Alternatively, the concentration of kinetin is 5 × 10 −5 M to 1 × 10 5
-9 M, especially 1 × 10 −5 M to 1 × 10 −7 M is preferred.

【0013】炭素源としては、グルコース、フラクトー
ス、マンノース、キシロース、サッカロース、ラムノー
ス、フコース、デンプンなどが用いられる。多糖類の生
産は添加する炭素源の種類にはあまり強く影響されるも
のではなく、通常サッカロースが用いられる。炭素源の
濃度と多糖類の生産量との間にもあまり深い関係はない
が、一般には1〜6%が好ましい。
As a carbon source, glucose, fructose, mannose, xylose, saccharose, rhamnose, fucose, starch and the like are used. Polysaccharide production is not so strongly affected by the type of carbon source added, and saccharose is usually used. Although there is not a deep relationship between the concentration of the carbon source and the production amount of the polysaccharide, generally, 1 to 6% is preferable.

【0014】培養法は特に制限されないが、通常、20
〜30℃の温度で15〜30日間行うのが好ましく、ま
た振とう培養が好ましい。
[0014] The culture method is not particularly limited.
It is preferably performed at a temperature of 3030 ° C. for 15 to 30 days, and shaking culture is preferred.

【0015】[0015]

【0016】本発明においては、培養液の粘度上昇が抑
制される結果、培養終了後多糖類とカルス(細胞)との
分離が極めて容易である。すなわち、培養終了後、培養
液を放置するのみでカルスが速やかに沈降するので、多
糖類を含む上澄液を抜き出すことにより、容易に目的多
糖類が分離できる。なお、かかる分離をより速やかにす
るため遠心分離を利用することもできる。このように、
容易にカルス(細胞)と多糖類が分離できるので、図1
で示すような、工業的に有利な半連続培養とする。
In the present invention, as a result of suppressing the increase in the viscosity of the culture solution, it is extremely easy to separate the polysaccharide from the callus (cells) after completion of the culture. That is, after completion of the culture, the callus sediments quickly only by leaving the culture solution alone, so that the target polysaccharide can be easily separated by extracting the supernatant containing the polysaccharide. In addition, centrifugation can also be used to make such separation faster. in this way,
Because calli (cells) and polysaccharides can be easily separated,
The semi-continuous cultivation is industrially advantageous as shown by.

【0017】[0017]

【発明の効果】本発明によれば従来、多糖類の生産に伴
ない培養液の粘度が上昇するために発生する諸問題が解
決できた。すなわち、培養液の粘度上昇が抑制された結
果、(1)培養液の拡散・混合が良好となり多糖類の生
産性が向上する、(2)カルスや細胞と目的物を含有す
る上澄液との分離が容易となり、生産性が向上する、
(3)培地を継ぎ足した2回目の培地変換後はラグタイ
ムがなく、半連続培養が効率よくできる。
According to the present invention, it has been possible to solve various problems which occur conventionally because the viscosity of a culture solution increases with the production of polysaccharides. That is, as a result of suppressing the increase in the viscosity of the culture solution, (1) the diffusion and mixing of the culture solution are improved, and the productivity of polysaccharide is improved. (2) The supernatant containing the callus and cells and the target substance is used. Separation becomes easier and productivity improves.
(3) There is no lag time after the second medium change after adding the medium, and semi-continuous culture can be performed efficiently.

【0018】[0018]

【実施例】以下、実施例により本発明を詳細に説明する
が本発明はこれらに限定されない。 参考例 (a)カルスの誘導:開花2〜7日前のチューベロース
の蕾を切り取り、70%エタノール溶液で1分間滅菌
し、更に1%次亜塩素酸ナトリウム溶液で10分間滅菌
した後、滅菌水で洗浄した。滅菌処理された外植片を適
当な大きさにきり、カルス誘導用培養に接種した。カル
ス誘導用培地には、基本培地として0.8%の寒天を含
むLinsmaier−Skoogの培地(L−S培
地)を用いた。植物ホルモンとしてはオーキシンとして
10-5M NAAとサイトカイニンとして10-6M B
Aを添加した。炭素源としては3%サッカロースを添加
した。この培地を0.1NKOHでpH5.7に調整した
のち、オートクレーブにより120℃、1.2気圧で1
5分間滅菌した。培養は電照下25±1℃で行われた。
30〜60日間の培養の後それぞれの外植片からはカル
スが誘導された。 (b)カルスの継代:(a)において誘導されたそれぞ
れのカルスは、誘導培地と同一の培地を用いて同一条件
下で培養され、30日おきに新しい培地に移植された。
The present invention will be described below in detail with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples. Reference example (a) Induction of callus: Tuberose buds 2 to 7 days before flowering were cut off, sterilized with a 70% ethanol solution for 1 minute, further sterilized with a 1% sodium hypochlorite solution for 10 minutes, and then sterilized with water. Washed. The sterilized explants were cut to an appropriate size and inoculated into a callus-inducing culture. As the callus induction medium, a Linsmeier-Skoog medium (LS medium) containing 0.8% agar was used as a base medium. As plant hormones, 10 -5 M NAA as auxin and 10 -6 MB as cytokinin
A was added. 3% saccharose was added as a carbon source. The medium was adjusted to pH 5.7 with 0.1 NKOH and then autoclaved at 120 ° C. and 1.2 atm.
Sterilized for 5 minutes. The culture was performed at 25 ± 1 ° C. under light.
After 30 to 60 days of culture, calli were induced from each explant. (B) Passage of callus: Each callus induced in (a) was cultured under the same conditions using the same medium as the induction medium, and transplanted to a new medium every 30 days.

【0019】実施例1 参考例(b)において10代以上継代培養されたカルス
を用いて;次の条件で培養を行い、30日培養後の生成
多糖類濃度と培養液粘度を測定した。すなわち、500
ml容三角フラスコに、カルス接種量20w/v %とし、2
00ml仕込み、26℃、90rpm で振とう培養した。培
地としてはL−S培地に5w/v %スクロース、2,4−
D 10-5M及び10〜50mM金属塩を添加したものを
用いた。なお、通常のL−S培地には、塩化カルシウム
3mM及び硫酸マグネシウム1.5mMを含んでいる。結果
を図2に示す。図2より、カルシウム塩又はマグネシウ
ム塩(CaCl2・2H2O 又はMgSO4・7H2O として添加)を1
0mM以上添加することにより、培養液粘度が大きく低下
し、かつ多糖類生産量も増加することがわかる。
Example 1 Using the callus subcultured for 10 or more passages in Reference Example (b); culturing was carried out under the following conditions, and the concentration of the produced polysaccharide and the viscosity of the culture solution after culturing for 30 days were measured. That is, 500
In a conical flask with a volume of 20 ml, the callus inoculum was set to 20 w / v%,
The mixture was charged with 00 ml and cultured with shaking at 26 ° C. and 90 rpm. As a medium, 5% w / v sucrose, 2,4-
It was used as the addition of D 10 -5 M and 10~50mM metal salts. The normal LS medium contains 3 mM of calcium chloride and 1.5 mM of magnesium sulfate. The results are shown in FIG. From FIG. 2, calcium salt or magnesium salt (added as CaCl 2 .2H 2 O or MgSO 4 .7H 2 O)
It can be seen that the addition of 0 mM or more greatly reduces the viscosity of the culture solution and increases the polysaccharide production.

【0020】実施例2 実施例1と同様の条件で、カルシウム塩の濃度を変化さ
せて培養して得られた培養液を26℃にて静置し、カル
スの沈降速度を測定した。その結果、図3に示す如く、
カルシウム塩(CaCl2・2H2O として添加)を10mM以上
添加して培養することにより得られた培養液は、カルス
の沈降速度が大きく、上澄液の分離が容易、かつ速やか
になることがわかる。
Example 2 A culture solution obtained by culturing under the same conditions as in Example 1 while changing the calcium salt concentration was allowed to stand at 26 ° C., and the callus sedimentation rate was measured. As a result, as shown in FIG.
The culture solution obtained by adding 10 mM or more of calcium salt (added as CaCl 2 · 2H 2 O) has a high callus sedimentation rate, and the supernatant can be easily and quickly separated. Understand.

【0021】実施例3 通常のL−S培地にスクロース3w/v %、NA10-5
及びBA10-6Mを添加した培地(塩化カルシウム3mM
及び硫酸マグネシウム1.5mMを含む)で、参考例に準
じて増殖されたカルスをL−S培地を基礎培地とした下
記培養条件で4週間培養し、多糖類を分離した後更にも
う一度同条件で培養した。この培養の間、培養液中の多
糖類濃度を経時的に測定した結果を図4に示す。培養条件 カルス接種量 :20w/v % 培地仕込量 :500ml/2l スクロース濃度 :5w/v % 植物ホルモン :2,4−D 10-5M 添加塩化カルシウム:33mM 回転数 :80rpm その結果、増殖培地(カルシウム塩の添加なし)から生
産培地への変換後の最初の3〜4日は多糖類が生産され
ず、ラグタイムがあるのに対し、2回目の培地変換後は
ラグタイムがなく、半連続培養が効率よくできることが
わかる。
Example 3 Sucrose 3 w / v%, NA 10 -5 M in normal LS medium
And BA10 -6 M added medium (calcium chloride 3 mM)
And 1.5 mM of magnesium sulfate), and cultured for 4 weeks under the following culture conditions using an LS medium as a basal medium, and the polysaccharides were separated again under the same conditions. Cultured. FIG. 4 shows the results of measuring the polysaccharide concentration in the culture solution over time during this culture. Culture conditions Callus inoculation amount: 20 w / v% Medium preparation amount: 500 ml / 2 l Sucrose concentration: 5 w / v% Plant hormone: 2,4-D 10 -5 M Calcium chloride added: 33 mM Revolution: 80 rpm As a result, the growth medium In the first 3-4 days after conversion from (without addition of calcium salt) to the production medium, polysaccharides are not produced and there is a lag time, whereas after the second medium conversion there is no lag time and half It can be seen that continuous culture can be performed efficiently.

【0022】実施例4 実施例1と同様にして得られた培養液を3,500×
g、2分間の条件で遠心分離を行った場合の遠心上清の
透過度を測定した。透過度が高いほど、上清が透明であ
り、上清中のカルスの含量が少なくなる。その結果、図
4の如く、カルシウム塩の添加量が多いほど、透過度が
高く、カルスの分離効率がよいことがわかる。
Example 4 A culture solution obtained in the same manner as in Example 1 was used at 3,500 ×
g, the centrifugation was performed under the conditions of 2 minutes, and the transmittance of the centrifuged supernatant was measured. The higher the permeability, the clearer the supernatant and the lower the content of callus in the supernatant. As a result, as shown in FIG. 4, it can be seen that the greater the amount of calcium salt added, the higher the permeability and the better the callus separation efficiency.

【0023】実施例5 1.6g/lの多糖類を含有する実施例4で得られた遠
心上清を、東洋濾紙製カートリッジフィルター(TCP
D−03A)を使用して濾過することによりカルス断片
除去を行った。その場合の透過流束を図5に示す。その
結果、カルシウム塩を33mM添加した培養上清の濾過
は、より短時間で終了することがわかる。
Example 5 A centrifugal supernatant obtained in Example 4 containing 1.6 g / l of a polysaccharide was applied to a cartridge filter (TCP
Callus fragments were removed by filtration using D-03A). FIG. 5 shows the permeation flux in that case. As a result, it was found that the filtration of the culture supernatant to which 33 mM of the calcium salt was added was completed in a shorter time.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】半連続培養の概略説明図を示す図面である。FIG. 1 is a diagram showing a schematic explanatory diagram of semi-continuous culture.

【図2】L−S培地に添加した金属塩濃度と生成多糖類
濃度及び培養液粘度との関係を示す図面である。
FIG. 2 is a drawing showing the relationship between the concentration of a metal salt added to an LS medium, the concentration of a produced polysaccharide, and the viscosity of a culture solution.

【図3】L−S培地に添加したカルシウム塩濃度とカル
ス沈降速度及び、相対多糖類生産量(カルシウム塩を添
加しない場合を1とした相対値)との関係を示す図面で
ある。
FIG. 3 is a graph showing the relationship between the calcium salt concentration added to the LS medium, the callus sedimentation rate, and the relative polysaccharide production (relative value assuming that the case where no calcium salt is added is 1).

【図4】実施例3における培養時間と生産多糖類濃度と
の関係を示す図面である。棒グラフは1週間あたりの多
糖類の生産量を示す。
FIG. 4 is a drawing showing the relationship between the culturing time and the produced polysaccharide concentration in Example 3. The bar graph shows the amount of polysaccharide production per week.

【図5】カルシウム塩添加が遠心分離上清の透過度に及
ぼす影響を示す図面である。
FIG. 5 is a graph showing the effect of adding a calcium salt on the permeability of a centrifuged supernatant.

【図6】カルシウム塩添加が遠心分離上清の濾過におけ
る透過流束に及ぼす影響を示す図面である。
FIG. 6 is a graph showing the effect of the addition of a calcium salt on the permeation flux in the filtration of the centrifuged supernatant.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献 特開 昭49−75792(JP,A) 特開 昭63−94988(JP,A) 特開 平1−10997(JP,A) Journal of Textur e Studies 7(1976),341 −351 (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C12P 19/00 - 19/64 ──────────────────────────────────────────────────続 き Continuation of the front page (56) References JP-A-49-75792 (JP, A) JP-A-63-94988 (JP, A) JP-A-1-10997 (JP, A) Journal of Textile Studies 7 (1976), 341-351 (58) Fields investigated (Int. Cl. 7 , DB name) C12P 19/00-19/64

Claims (5)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 植物細胞を培養し多糖類を液体培地中に
分泌させて多糖類を製造する方法において、金属塩を1
0〜100mM含有する液体培地を使用して半連続培養す
ることを特徴とする多糖類の製造方法。
1. A method for producing a polysaccharide by culturing a plant cell and secreting the polysaccharide into a liquid medium, wherein the metal salt comprises
A method for producing a polysaccharide, comprising semi-continuous culturing using a liquid medium containing 0 to 100 mM.
【請求項2】 金属塩が、1価〜3価の金属の塩である
請求項1記載の多糖類の製造方法。
2. The method for producing a polysaccharide according to claim 1, wherein the metal salt is a salt of a monovalent to trivalent metal.
【請求項3】 金属塩が、ナトリウム、カリウム、カル
シウム、マグネシウム、バリウム、鉄及びアルミニウム
より選ばれる1種又は2種以上の金属の塩である請求項
1記載の多糖類の製造方法。
3. The method for producing a polysaccharide according to claim 1, wherein the metal salt is a salt of one or more metals selected from sodium, potassium, calcium, magnesium, barium, iron and aluminum.
【請求項4】 細胞がポリアンテス族(Poliant
hes L.)に属するチューベロース(Polian
thes tuberosa L.)の植物体より誘導
されたカルスである請求項1記載の多糖類の製造方法。
4. The method according to claim 1, wherein the cell is a Polyantes family.
hes L. Tuberose belonging to (Polian)
the tuberosa L. 2. The method for producing a polysaccharide according to claim 1, wherein the callus is derived from the plant of (1).
【請求項5】 多糖類が、チューベロース(Polia
nthes tuberosa L.)より誘導された
カルスを培養することにより得られる、アラビノース、
マンノース、ガラクトース、キシロースおよびグルクロ
ン酸を構成成分とする酸性ヘテロ多糖である請求項1記
載の多糖類の製造方法。
5. The method according to claim 5, wherein the polysaccharide is tuberose (Polia).
nthes tuberosa L. Arabinose, obtained by culturing callus derived from
The method for producing a polysaccharide according to claim 1, which is an acidic heteropolysaccharide containing mannose, galactose, xylose and glucuronic acid as constituents.
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