JP3084030B2 - New hybridoma - Google Patents

New hybridoma

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JP3084030B2
JP3084030B2 JP01291077A JP29107789A JP3084030B2 JP 3084030 B2 JP3084030 B2 JP 3084030B2 JP 01291077 A JP01291077 A JP 01291077A JP 29107789 A JP29107789 A JP 29107789A JP 3084030 B2 JP3084030 B2 JP 3084030B2
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【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、新規なハイブリドーマに関する。The present invention relates to a novel hybridoma.

〔従来の技術および発明が解決しようとする課題〕[Problems to be solved by conventional technology and invention]

ケーラーとミルシュタインにより開発された細胞融合
法によるモノクローナル抗体(以下、「MoAb」という)
の製造法は、マウス骨髄腫細胞とマウスの抗体酸性リン
パ球とを融合させるものであり、両細胞の融合細胞のみ
を選択し、マウス型のMoAbを得る方法が汎用されてい
る。この融合細胞が産生する抗体は一種類の抗原決定基
に対して高い特異性を示し、必要に応じて再現性よく得
られることから、研究用、体外診断薬や生理活性物質の
精製等に広く用いられている。
Monoclonal antibody by the cell fusion method developed by Koehler and Milstein (hereinafter referred to as "MoAb")
Is a method of fusing mouse myeloma cells with mouse acidic lymphocytes, and a method for obtaining mouse MoAb by selecting only fused cells of both cells is widely used. Antibodies produced by these fused cells show high specificity for one type of antigenic determinant and can be obtained with good reproducibility as needed, so they are widely used for research, in vitro diagnostics, purification of bioactive substances, etc. Used.

しかし、この種のマウス型MoAbはマウスのグロブリン
で構成されているため、ヒトに対しては異種蛋白であ
り、ヒトに投与すると時には重篤なショック症状を起こ
す危険性がある。この問題を避け、MoAbを体内診断薬や
治療薬として開発する種々の試みがなされており、中で
も細胞融合をヒトリンパ球に応用したヒト型MoAbを製造
する方法が有望視されている。
However, since this type of mouse MoAb is composed of mouse globulin, it is a heterologous protein for humans, and when administered to humans, there is a risk that sometimes severe shock symptoms may occur. Various attempts have been made to avoid this problem and to develop MoAbs as in-vivo diagnostics and therapeutics. Among them, a method for producing human-type MoAbs by applying cell fusion to human lymphocytes is promising.

従来、ヒト型MoAbを製造するには、次のような方法が
行われている。すなわち、(1)ヒト−ヒトハイブリド
ーマを用いる方法、(2)エプスタイン バー ウイル
ス(Epstein Barr Virus)でトランスフォームさせた細
胞を用いる方法、(3)ヒト−マウス−ヘテロハイブリ
ドーマを用いる方法等が報告されている。しかしなが
ら、(1)の場合には融合効率が低い、(2)の場合に
はクローニングが困難である、(3)の場合にはヒト染
色体の脱落が起こり易く、安定なヒト型抗体の産生が得
にくいなどの欠点があった。また、(3)を改良する目
的で、例えばヒトリンパ球系細胞と異種動物のリンパ球
様細胞株からなるハイブリドーマ(特開昭61−128885
号)が報告されているが、ヒト−マウスヘテロハイブリ
ドーマ親株の増殖性、抗体産生細胞との融合効率が悪い
等の問題があり、実用化に至っていないのが実情であっ
た。
Conventionally, the following method has been used to produce human MoAb. That is, (1) a method using a human-human hybridoma, (2) a method using cells transformed with Epstein Barr Virus, (3) a method using a human-mouse-heterohybridoma, and the like have been reported. ing. However, in the case of (1), the fusion efficiency is low, in the case of (2), cloning is difficult, and in the case of (3), the human chromosome is liable to drop out, and stable human antibody production is not achieved. There were drawbacks such as difficulty in obtaining. For the purpose of improving (3), for example, a hybridoma consisting of human lymphoid cells and a lymphoid cell line of a heterologous animal (JP-A-61-128885)
No.) has been reported, but there have been problems such as the proliferation of the human-mouse heterohybridoma parent strain and the efficiency of fusion with the antibody-producing cells being poor, and the actual situation has not been achieved yet.

〔課題を解決するための手段〕[Means for solving the problem]

斯かる実情において、本発明者らは、ヒト−マウスヘ
テロハイブリドーマとヒト抗体産生細胞との融合によ
り、有用なモノクローナル抗体を提供することを目的と
して鋭意研究を行ったが、その過程において、親株とし
て用いるヒト−マウスヘテロハイブリドーマとして、ヒ
ト胎児脾臓細胞から得られ、かつ細胞当たりの染色体数
が66〜70のものが、極めて融合効率及びクローニング効
率が高く、かつ融合後は安定的にヒト型の免疫グロブリ
ン(以下、「Ig」という)を産生することができること
を見出し、本発明を完成した。
Under such circumstances, the present inventors have conducted intensive studies for the purpose of providing useful monoclonal antibodies by fusing human-mouse heterohybridomas with human antibody-producing cells. As the human-mouse heterohybridomas to be used, those obtained from human fetal spleen cells and having 66 to 70 chromosomes per cell, have extremely high fusion efficiency and cloning efficiency, and stably maintain human-type immunity after fusion. The present inventors have found that globulin (hereinafter, referred to as “Ig”) can be produced, and have completed the present invention.

すなわち、本発明は、ヒト胎児脾臓細胞とマウス骨髄
腫細胞NS−1との細胞融合によって得られるものであっ
て、かつ細胞当たりの染色体数が66〜70である、8−ア
ザグアニン耐性のヒト−マウスヘテロハイブリドーマを
提供するものである。
That is, the present invention relates to an 8-azaguanine-resistant human clone obtained by cell fusion between human fetal spleen cells and mouse myeloma cells NS-1 and having 66 to 70 chromosomes per cell. The present invention provides a mouse heterohybridoma.

本発明のヒト−マウスヘテロハイブリドーマは、例え
ばヒト胎児脾臓細胞とマウス骨髄腫細胞NS−1とを細胞
融合させ、得られた融合細胞を8−アザグアニンによる
耐性化をすることにより製造される。
The human-mouse heterohybridoma of the present invention is produced, for example, by fusing human fetal spleen cells with mouse myeloma cells NS-1 and making the resulting fused cells resistant to 8-azaguanine.

細胞融合は、通常MEM培地、RPMI1640培地、IMDM培地
などの培地中で、ヒト胎児脾臓細胞とマウス骨髄腫細胞
NS−1を混合(混合比は通常10:1〜5:1)することによ
り行われる。融合促進剤としては、平均分子量1,000〜
6,000のポリエチレングリコール(PEG)が使用できる。
PEGの使用濃度は通常30〜50%である。細胞融合を終え
た細胞は、選択培地(例えば、ヒポキサンチン−アミノ
プテリン−チミジン(HAT)培地)にて培養すればヘテ
ロハイブリドーマが得られる。
Cell fusion is usually performed using human fetal spleen cells and mouse myeloma cells in a medium such as MEM medium, RPMI1640 medium, or IMDM medium.
This is carried out by mixing NS-1 (mixing ratio is usually 10: 1 to 5: 1). As a fusion promoter, the average molecular weight is 1,000 ~
6,000 polyethylene glycols (PEG) can be used.
The working concentration of PEG is usually 30-50%. Heterohybridomas can be obtained by culturing the cells after cell fusion in a selection medium (for example, hypoxanthine-aminopterin-thymidine (HAT) medium).

8−アザグアニン(以下、「8AG」という)に対する
耐性化は上記の如くして得られたヘテロハイブリドーマ
を8AGを加えた10%FCS含有RPMI1640培地などで培養する
ことにより行われる。すなわち、8AGの最終濃度が100μ
M程度になるまで、8AGの濃度を順次増加させて培養す
ることにより行われる。
The resistance to 8-azaguanine (hereinafter referred to as "8AG") is obtained by culturing the heterohybridomas obtained as described above in an RPMI1640 medium containing 10% FCS containing 8AG. That is, the final concentration of 8AG is 100μ
Culture is performed by gradually increasing the concentration of 8AG until the concentration reaches about M.

得られた8AG耐性ハイブリドーマは、例えば限界希釈
法によりクローニングすれば目的とするヒト−マウスヘ
テロハイブリドーマをクローンとして得ることができ
る。
If the obtained 8AG-resistant hybridoma is cloned, for example, by a limiting dilution method, a desired human-mouse heterohybridoma can be obtained as a clone.

以上の操作によってヒトリンパ球との融合効率が高い
マウスとヒトのヘテロハイブリドーマ2A−5、4D−5、
11E−5を得た。これらのハイブリドーマはそれぞれ新
規な細胞であり、これらのうち、11E−5について、工
業技術院微生物工業技術研究所に寄託した(微工研菌寄
第11094号(FERM P−11094))。
Mouse and human heterohybridomas 2A-5, 4D-5, which have a high fusion efficiency with human lymphocytes
11E-5 was obtained. Each of these hybridomas is a novel cell, and among them, 11E-5 was deposited with the Institute of Microbial Industry and Technology of the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (Microorganisms No. 11094 (FERM P-11094)).

得られたヘテロハイブリドーマは、更にヒト抗体産生
細胞との融合効率、ハイブリドーマの増殖性、クローニ
ングの容易性および抗体産生能力を基準とし、親株とし
て有用なヘテロハイブリドーマを選択し、株化しておく
のが好ましい。
Based on the fusion efficiency with human antibody-producing cells, the growth potential of the hybridoma, the ease of cloning, and the ability to produce antibodies, the obtained heterohybridoma should be selected and established as a heterobryoma useful as a parent strain. preferable.

このヘテロハイブリドーマはヒト−マウス−ヒトのト
リプルハイブリドーマを製造する際に親株として用いる
と、融合効率およびクローニング効率が高い。更に親株
自身はIgを産生せず、融合した後は安定的にIgを産生す
るという特徴がある。
When this heterohybridoma is used as a parent strain when producing a human-mouse-human triple hybridoma, the fusion efficiency and the cloning efficiency are high. Further, the parent strain itself does not produce Ig, and is characterized by stably producing Ig after fusion.

〔実施例〕〔Example〕

次に、実施例を挙げ、本発明を更に説明する。 Next, the present invention will be further described with reference to examples.

実施例1 (1) 8−アザグアニン耐性ヒト−マウスヘテロハイ
ブリドーマ親株の製造: ヒト胎児脾臓よりフィコールバック(ファルマシア社
製)比重遠心法にてリンパ球層を分別し、RPMI1640培地
(ギブコ社製)で3回洗浄して脾臓細胞を得た。
Example 1 (1) Production of 8-azaguanine resistant human-mouse heterohybridoma parent strain: Lymphocyte layer was separated from human fetal spleen by Ficoll-back (Pharmacia) specific gravity centrifugation, and RPMI1640 medium (Gibco). After washing three times, spleen cells were obtained.

この分離脾臓細胞と、予め10%牛胎児血清(以下、
「FCS」という)含有RPMI1640培地で培養し対数増殖期
にあるマウス骨髄腫細胞NS−1を10:1又は5:1の細胞比
で混合し、予め37℃に保温したPEG4000(シグマ社製)
を1.0ml加えて1分間静置した。この細胞混合液に30ml
のRPMI1640培地を少量ずつ10分間かけて加え、PEGを希
釈した。希釈後、400×g、3分間遠心して細胞を沈澱
させ、10%FCS含有RPMI1640培地で1×106個/mlに調整
した。この細胞浮遊液を96ウエルマイクロプレートに10
0μずつ分注して培養した。翌日、10%FCS含有RPMI16
40培地にHATを加えたHAT培地をウエル当たり100μ加
えた。
The separated spleen cells and 10% fetal bovine serum (hereinafter, referred to as
PEG4000 (manufactured by Sigma), which was cultured in an RPMI1640 medium containing “FCS” and mixed in a logarithmic growth phase with mouse myeloma cells NS-1 at a cell ratio of 10: 1 or 5: 1, and previously kept at 37 ° C.
Was added and the mixture was allowed to stand for 1 minute. 30 ml of this cell mixture
RPMI1640 medium was added in small portions over 10 minutes to dilute the PEG. After dilution, the cells were precipitated by centrifugation at 400 × g for 3 minutes, and adjusted to 1 × 10 6 cells / ml with RPMI1640 medium containing 10% FCS. Transfer the cell suspension to a 96-well microplate for 10 minutes.
The cells were dispensed by 0 μl and cultured. The next day, RPMI16 containing 10% FCS
HAT medium, which was obtained by adding HAT to 40 medium, was added at 100 μl per well.

以後、3〜4日毎にウエル当たり100μの培地を除
き、新たに新鮮なHAT培地100μを加えた。3週間後、
およそ3.4%のウエルで細胞の増殖が認められた。その
中でIgを産生していた株を選択し、II株と命名した。
Thereafter, every 100% of the medium was removed from the wells every 3 to 4 days, and a fresh 100 μM HAT medium was added. Three weeks later,
Cell proliferation was observed in approximately 3.4% of the wells. Among them, the strain that produced Ig was selected and named II strain.

その後、II株をHAT培地に2週間継代培養し、次いで1
0%FCS含有RPMI1640培地で2週間継代培養したのち、ク
ローニングを行い8週間後に各クローンを得た。このよ
うにしてクローン化したII株を終濃度2μMの8−アザ
グアニン(8AG)を加えた10%FCS含有RPMI1640培地で培
養を始め、以後、4、8、16、32、50、100μMの8AGを
加えた10%FCS含有RPMI1640培地で培養し、順次8AGに対
する耐性化を計った。約2ケ月後、最終濃度100μMの8
AG含有培地中で増殖する細胞が認められるようになっ
た。BALB/cマウスの腹腔細胞をフィーダ細胞に用いた限
界希釈法によりこの増殖細胞をクローニングし、8AGに
耐性の、ヒト−マウスヘテロハイブリドーマを樹立し
た。
Then, the II strain was subcultured in HAT medium for 2 weeks, and then
After subculture for 2 weeks in RPMI1640 medium containing 0% FCS, cloning was performed, and after 8 weeks, each clone was obtained. The II strain cloned in this manner was cultured in an RPMI1640 medium containing 10% FCS to which 8-azaguanine (8AG) having a final concentration of 2 μM was added, and thereafter, 4, 8, 16, 32, 50, and 100 μM of 8AG were added. The cells were cultured in an RPMI1640 medium containing 10% FCS, and resistance to 8AG was measured sequentially. After about two months, a final concentration of 100 μM 8
Cells growing in AG-containing medium became evident. The proliferating cells were cloned by limiting dilution using peritoneal cells of BALB / c mice as feeder cells, and 8AG-resistant human-mouse heterohybridomas were established.

この樹立細胞は、8AG含有培地で増殖可能であるが、H
AT培地では培養4日で全て死滅したことにより、HATに
感受性の細胞であることが確認された。第1図にII株の
8AG含有培地およびHAT培地中における増殖を示した。
The established cells can be grown in a medium containing 8AG,
In the AT medium, all cells were killed after 4 days of culture, confirming that the cells were sensitive to HAT. Fig. 1 shows the
It showed growth in the medium containing 8AG and the HAT medium.

さらに、酵素免疫測定法による測定から、ヒト免疫グ
ロブリンおよびマウス免疫グロブリン非分泌型であるこ
とも明らかとなった。また、染色体分析の結果(C.R.Ac
ad.Sc.(paris)276,3179(1973))、これらの細胞
は、ヒト染色体およびマウス染色体の両者を保有するヘ
テロハイブリドーマであることが認められた。
Furthermore, measurement by enzyme immunoassay revealed that it was a non-secretory form of human immunoglobulin and mouse immunoglobulin. In addition, the result of chromosome analysis (CRAc
ad. Sc. (paris) 276, 3179 (1973)), and these cells were found to be heterohybridomas harboring both human and mouse chromosomes.

(2) 融合効率の検討: (i)マウスのリンパ球との融合 マウスの脾臓から分離したリンパ球(2×107/ml,0.4
ml)と、II株をクローニングして得た33クローン(2×
107/ml,0.4ml)を電気パルス融合法により細胞融合を行
い、96ウエルに播き、HAT培地で増殖したウエルの数よ
り、各クローンの融合効率を比較した。結果を第1表に
示す。
(2) Examination of fusion efficiency: (i) Fusion with mouse lymphocytes Lymphocytes (2 × 10 7 / ml, 0.4
ml) and 33 clones (2 ×
(10 7 / ml, 0.4 ml) was subjected to cell fusion by the electric pulse fusion method, and the fusion efficiency of each clone was compared based on the number of wells that were seeded in 96 wells and grown in HAT medium. The results are shown in Table 1.

クローニング前のII株は96ウエル中37ウエルに細胞の
増殖が見られた。一方、33クローンは各々12〜96ウエル
のハイブリドーマが形成された。このうち、ハイブリド
ーマ形成率が高く、細胞当たりの染色体数が66〜70であ
る2A−5、2H−5、4D−5、6D−5、11E−5の5クロ
ーンを選択した。
Before the cloning, the II strain showed cell growth in 37 of 96 wells. On the other hand, each of the 33 clones formed a hybridoma of 12 to 96 wells. Among them, 5 clones of 2A-5, 2H-5, 4D-5, 6D-5, and 11E-5 having a high hybridoma formation rate and having 66 to 70 chromosomes per cell were selected.

(ii)ヒトのリンパ球との融合 正常ヒト末梢血よりフィコール法で分離したリンパ球
(2×107/ml,0.4ml)と、マウスのリンパ球で高い融合
効率を示した5クローンを電気パルス融合した。各クロ
ーンのヒトリンパ球との融合効率を第2表に示した。
(Ii) Fusion with human lymphocytes Lymphocytes (2 × 10 7 / ml, 0.4 ml) isolated from normal human peripheral blood by the Ficoll method and 5 clones which showed high fusion efficiency with mouse lymphocytes were used for electrophoresis. Pulse fusion. The fusion efficiency of each clone with human lymphocytes is shown in Table 2.

4D−5、11E−5、11A−6の3クローンはいずれも96
ウエル中90ウエル以上にハイブリドーマが形成された。
All 3 clones of 4D-5, 11E-5 and 11A-6 were 96
Hybridomas were formed in more than 90 wells.

参考例1 トリプルハイブリドーマによるヒト型Igの産生: 正常ヒト末梢血よりフィコール法で分離したリンパ球
とマウス−ヒトのヘテロハイブリドーマ(II株)を、常
法に従いPEGおよび電気パルスによる細胞融合を行っ
た。融合効率およびIg産生細胞の出現率を第3表に示し
た。
Reference Example 1 Production of human Ig by triple hybridoma: Lymphocytes separated from normal human peripheral blood by Ficoll method and mouse-human heterohybridoma (II strain) were subjected to cell fusion by PEG and electric pulse according to a conventional method. . Table 3 shows the fusion efficiency and the appearance rate of Ig-producing cells.

いずれの融合法においても、トリプルハイブリドーマ
はリンパ球106個当たり3個以上、Ig産生細胞の出現は
0.3個以上と高値であった。
In either fusion method, triple hybridomas lymphocytes 10 6 per three or more, occurrences of Ig producing cells
The value was as high as 0.3 or more.

参考例2 トリプルハイブリドーマの性状: 参考例1で得られたMoAbを産生するトリプルハイブリ
ドーマの倍加時間とMoAbの産生状態を調べた。結果を第
4表に示す。
Reference Example 2 Properties of Triple Hybridoma: The doubling time and MoAb production state of the triple hybridoma producing MoAb obtained in Reference Example 1 were examined. The results are shown in Table 4.

ヒポキサンチン−チミジン(HT)添加培地および無血
清培地中における倍加時間はトリプルハイブリドーマに
より22〜36時間と幅広かった。MoAb産生量は細胞106
が1日当たり2μg以上で8ケ月以上の長期にわたり産
生、分泌した。
The doubling time in the hypoxanthine-thymidine (HT) -supplemented medium and the serum-free medium was as wide as 22 to 36 hours by the triple hybridoma. MoAb production amount of production 10 6 cells over a period of 8 months or more of long-term per day 2μg or more, and secretion.

試験例1 ヘテロハイブリドーマのDNA分析: ヘテロハイブリドーマII株とマウス骨髄腫細胞からマ
ニアティスらの方法(Molecular Cloning,Cold spring
Harbor laboratory N.Y.,1982,p280)に従いDNAを抽出
し、これにアラカワらの方法(Chemother.,33,63(198
9))によりサザンブロット ハイブリダイゼーション
を行った。DNAをEco R1,Hind III、Bam H Iの制限酵素
で切り、0.9%のアガロースゲルにより電気泳動を行
い、サザンの方法(J.Mol.Biol.,98,503(1975))によ
りニトロセルロース膜に転写した。続いて、転写した膜
はヒトに特異的なAlu DNAを含む32PをラベルしたBlur8
のDNA片を反応させ、ヒトDNAと相補的に結合するDNAを
検出した。その結果、第2図に示すごとくヘテロハイブ
リドーマII株にはヒトのDNAが含まれていることが証明
された。またヘテロハイブリドーマII株とヒトリンパ球
を融合して得たトリプルハイブリドーマ(C8)11B−F
6株についてもヒト由来のDNAが含まれていることが認め
られた。
Test Example 1 DNA analysis of heterohybridoma: Method of Maniatis et al. (Molecular Cloning, Cold spring) from heterohybridoma II strain and mouse myeloma cells
DNA was extracted according to Harbor laboratory NY, 1982, p280, and this was extracted using the method of Arakawa et al. (Chemother., 33 , 63 (198
9)) and Southern blot hybridization was performed. The DNA was cut with Eco R1, Hind III and Bam HI restriction enzymes, electrophoresed on a 0.9% agarose gel, and transferred to a nitrocellulose membrane by the Southern method (J. Mol. Biol., 98 , 503 (1975)). Transcribed. Subsequently, the transferred membrane was labeled with 32 P-labeled Blu8 containing human specific Alu DNA.
Were reacted with each other to detect DNA complementary to human DNA. As a result, it was proved that the heterohybridoma II strain contained human DNA as shown in FIG. Also, a triple hybridoma (C8) 11B-F obtained by fusing a heterohybridoma II strain with human lymphocytes
It was confirmed that the six strains also contained human-derived DNA.

試験例2 染色体分析: 融合細胞の染色体の分析をBrdU−AO法(C.R.Acad.Sc.
(paris)276,3179(1973))に準じて行った。すなわ
ち、5−ブロモデオキシウリジン(BrdU)100μg/mlを
添加した培地で細胞を9時間培養し、続いてコルセミド
0.05μg/mlを添加して20分間培養した細胞を取り出し、
メタノールと酢酸を3:1に混和した液で固定した。固定
した細胞をスライドグラス上に固着させ、アクリジンオ
レンジ(AO)液(pH7.0)0.13mg/mlで15分間染色したの
ち、蛍光顕微鏡で染色体を観察した。
Test Example 2 Chromosome analysis: The chromosome analysis of the fused cells was performed by the BrdU-AO method (CRAcad.Sc.
(Paris) 276, 3179 (1973)). That is, cells were cultured for 9 hours in a medium supplemented with 100 μg / ml of 5-bromodeoxyuridine (BrdU), followed by colcemide.
Take out the cells cultured for 20 minutes after adding 0.05 μg / ml,
The mixture was fixed with a 3: 1 mixture of methanol and acetic acid. The fixed cells were fixed on a slide glass, stained with 0.13 mg / ml of acridine orange (AO) solution (pH 7.0) for 15 minutes, and then chromosomes were observed with a fluorescence microscope.

その結果、ヘテロハイブリドーマII株は染色体数が54
〜75本に分布し、平均67本であった。これらのうち、21
個の細胞について染色体の分析を行ったことろ、ヒト由
来の染色体は2〜7本含まれていた。また、半数以上の
細胞にヒト染色体の3、12、16、17、19番の存在が認め
られた。
As a result, the heterohybridoma II strain had 54 chromosomes.
It was distributed in 本 75 and averaged 67. Of these, 21
When chromosome analysis was performed on individual cells, 2 to 7 human-derived chromosomes were included. In addition, the presence of human chromosomes Nos. 3, 12, 16, 17, and 19 was observed in more than half of the cells.

一方、トリプルハイブリドーマ(C8)11B−F6株の
染色体数は58〜84本に分布し、平均76本存在した。
On the other hand, the number of chromosomes of the triple hybridoma (C8) 11B-F6 strain was distributed from 58 to 84, with an average of 76.

20個の細胞の染色体分析を行ったところヒト由来の染
色体は3〜16本、平均7本含まれていた。調べた細胞の
半数以上にヒト染色体の14番が含まれていた。
Chromosome analysis of 20 cells revealed that 3 to 16 human-derived chromosomes were contained, with an average of 7 chromosomes. More than half of the cells examined contained human chromosome 14.

〔発明の効果〕〔The invention's effect〕

本発明のヘテロハイブリドーマは、8AGに耐性であ
り、これを親株としてヒトのリンパ球と融合すると、高
い融合効率およびクローニング効率でトリプルハイブリ
ドーマを得ることができ、さらに融合後は安定的にIgを
産生することができる極めて有用なものである。
The heterohybridoma of the present invention is resistant to 8AG, and when it is fused with human lymphocytes as a parent strain, a triple hybridoma can be obtained with high fusion efficiency and cloning efficiency, and Ig is stably produced after fusion. It is a very useful thing that can be done.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

第1図は、実施例1における、ヘテロハイブリドーマII
株の8AG含有培地およびHAT培地中での細胞数の変化を示
す図面である。 第2図は、試験例1におけるヘテロハイブリドーマII株
のサザンブロッティングの結果を示す図面である。な
お、第2図中、各レーンは次の通りである。 レーン1:マウス骨髄腫細胞NS−1についてのEcoR I処理 レーン2:ヘテロハイブリドーマII株についてのEcoR I処
理 レーン3:トリプルハイブリドーマ(C8)11B−F6につ
いてのEcoR I処理 レーン4:マウス骨髄腫細胞NS−1についてのHind III処
理 レーン5:ヘテロハイブリドーマII株についてのHind III
処理 レーン6:トリプルハイブリドーマ(C8)11B−F6につ
いてのHind III処理 レーン7:マウス骨髄腫細胞NS−1についてのBamH I処理 レーン8:ヘテロハイブリドーマII株についてのBamH I処
理 レーン9:トリプルハイブリドーマ(C8)11B−F6につ
いてのBamH I処理
FIG. 1 shows the heterohybridoma II in Example 1.
FIG. 3 is a drawing showing changes in the number of cells of a strain in an 8AG-containing medium and a HAT medium. FIG. 2 shows the results of Southern blotting of the heterohybridoma II strain in Test Example 1. In FIG. 2, each lane is as follows. Lane 1: EcoR I treatment for mouse myeloma cells NS-1 Lane 2: EcoR I treatment for heterohybridoma II strain Lane 3: EcoR I treatment for triple hybridoma (C8) 11B-F6 Lane 4: Mouse myeloma cells Hind III treatment for NS-1 Lane 5: Hind III for heterohybridoma II strain
Treatment Lane 6: Hind III treatment for triple hybridoma (C8) 11B-F6 Lane 7: BamHI treatment for mouse myeloma cells NS-1 Lane 8: BamHI treatment for heterohybridoma II strain Lane 9: Triple hybridoma ( C8) BamHI treatment for 11B-F6

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献 特開 昭63−17688(JP,A) 発酵と工業,44[6](1986)p. 602−614 (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C12N 5/10 C12N 15/02 C12P 21/08 BIOSIS(DIALOG) WPI(DIALOG)──────────────────────────────────────────────────続 き Continuation of the front page (56) References JP-A-63-17688 (JP, A) Fermentation and Industry, 44 [6] (1986) pp. 602-614 (58) Fields investigated (Int. Cl. 7 , DB name) C12N 5/10 C12N 15/02 C12P 21/08 BIOSIS (DIALOG) WPI (DIALOG)

Claims (2)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】ヒト胎児脾臓細胞とマウス骨髄腫細胞NS−
1との細胞融合によって得られるものであって、かつ細
胞当たりの染色体数が66〜70である、8−アザグアニン
耐性のヒト−マウスヘテロハイブリドーマ。
(1) Human fetal spleen cells and mouse myeloma cells NS-
An 8-azaguanine-resistant human-mouse heterohybridoma obtained by cell fusion with No.1 and having 66 to 70 chromosomes per cell.
【請求項2】ヒト−マウスヘテロハイブリドーマが、11
E−5(FERM P−11094)である請求項1記載のヒト−
マウスヘテロハイブリドーマ。
2. The method of claim 1, wherein the human-mouse heterohybridoma comprises 11
The human of claim 1, which is E-5 (FERM P-11094).
Mouse heterohybridomas.
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