JP3057369B2 - Method for producing lightened natural blue pigment - Google Patents

Method for producing lightened natural blue pigment

Info

Publication number
JP3057369B2
JP3057369B2 JP62335289A JP33528987A JP3057369B2 JP 3057369 B2 JP3057369 B2 JP 3057369B2 JP 62335289 A JP62335289 A JP 62335289A JP 33528987 A JP33528987 A JP 33528987A JP 3057369 B2 JP3057369 B2 JP 3057369B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
blue
max
dye
reaction
gardenia
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
JP62335289A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPH01179690A (en
Inventor
裕介 箕笹
弘 田中
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Naris Cosmetics Co Ltd
Original Assignee
Naris Cosmetics Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Naris Cosmetics Co Ltd filed Critical Naris Cosmetics Co Ltd
Priority to JP62335289A priority Critical patent/JP3057369B2/en
Publication of JPH01179690A publication Critical patent/JPH01179690A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP3057369B2 publication Critical patent/JP3057369B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Description

【発明の詳細な説明】 <産業上の利用分野> この発明は、クチナシ由来の天然青色系色素の製造方
法に関するものであって、特に安全で飲食物類、嗜好品
類、保健医薬品類、香粧品類などに有用であり、その製
造工程中において従来のような繁雑な反応操作および反
応条件の厳密な管理を必要とせず、また特別で且つ繁雑
な精製工程をも要しないで、しかも従来の生成色素より
もさらに明色化された鮮明な色調を有する青色系色素
(最大吸収波長λmax=600nm〜625nm)が容易に量産で
きる天然青色系色素の製造方法に関する。 <従来の技術> 近年、合成色素の安全性が問われるようになる一方、
飲食物類、嗜好品類、保健医薬品類、香粧品類などの色
素として無害な天然色素の需要が高まっているが、天然
の青色系色素は少ない。代表的な天然の青色系色素とし
ては、クチナシ由来の色素およびスピルリナ由来の色素
の2種類の色素が実用化されている。クチナシの実のジ
ュースが皮膚を青色〜青紫色に染めることは古くから知
られている。そして、この皮膚を青色〜青紫色に染める
のに関与すると考えられるイリドイド配糖体を含むチブ
サノ木(Genipa americana L.)の熟した実からゲニピ
ンの結晶固体を分離し、当該ゲニピンの化学的性質およ
び物理的性質並びに化学構造について洞察し、さらに
は、当該ゲニピンが第1級アミノ基含有化合物(アミノ
酸たとえばグリシン、ロイシン、グルタミン酸等)と反
応して青色系色素が生成されることが報告されている。
(J.Org.Chem.,25,2175,1960) クチナシの果実がイリドイド配糖体を含むことはよく
知られており、また、ある種のイリドイド配糖体にβ−
グルコシダーゼを作用させると赤紫ないし青色にわたる
発色を生ずることも古くから知られている。(テトラヘ
ドロンレターズ2347〜2350,1969) さらにまた、クチナシ由来の青色系色素の発色メカニ
ズムは、クチナシの実などに含まれるイリドイド配糖体
であるゲニポサイド等がβ−グルコシダーゼ等の酵素作
用若しくはバチルス属やアスペルギルス属に属する菌等
のβ−グルコシダーゼ産生能力を有する微生物の作用、
または塩酸等の化学作用等々の作用によって加水分解さ
れてゲニピンを生成し、当該ゲニピンが第1級アミノ基
含有物質(アミノ酸たとえばグリシン、ロイシン、グル
タミン酸等)と反応して青色系色素が生成されることが
報告されている。この青色系色素の発色のメカニズムを
利用して、ゲニピンと各種第1級アミノ基含有物質とを
反応させて各種色素(青紫色〜紫〜赤紫〜緑〜黄〜黄橙
〜橙〜茶褐〜の各種色調を持つ色素)組成物の製造方法
が提唱されている。(特公昭54−13451号) さらにまた、クチナシ由来の青色系色素の製造に際し
て、前記β−グルコシダーゼを作用させることに代えて
バチルス属の微生物(特公昭52−13971号)やモナスカ
ス属の微生物(特公昭59−16751号)を利用して最大吸
収波長(λmax)が590nm程度の暗色の青色系色素を製造
するのに成功した例がある。 しかし、これらのクチナシ由来の青色系色素の発色メ
カニズムに基づく各種反応により得られる青色系色素
は、複雑な反応の結果、多数の化合物の混合物であり、
その結果暗い青紫色(最大吸収波長:λmax=593nm以
下、半値幅=100〜140 nm)を呈するものであり、従来
から明色化された鮮明な青色系色素の供給が要望されて
いる。 従来、この反応により得られる青色系色素の明色化の
改良が試みられた。((a)特公昭61−19234号、
(b)特開昭61−47167号) 前者「(a)特公昭61−19234号(特開昭56−92792
号)」の方法による場合は、クチナシのイリドイド配糖
体含有物質とβ−グルコシダーゼとを予め微好気的条件
下に十分作用させたのち、攪拌条件下でさらに作用させ
て重合分布の狭い青色系色素を得るというものであり、
複雑な反応操作過程と当該反応条件の特に厳密な管理を
経て青色系色素を生成させるものである。しかしなが
ら、この「(a)特公昭61−19234号」による方法は、
その反応系に利用されるβ−グルコシダーゼが高価で
あり再利用が出来ず、生成された青色系色素の最大吸
収波長(λmax)は、594〜601nmであって十分に明色化
されたとはいえない上に、複雑な反応操作過程および
その厳格な管理を必要とし、反応操作過程において微好
気的条件および攪拌条件等の諸条件のコントロールが困
難であり、これらの諸条件に変動があると生成される
青色系色素の最大吸収波長(λmax)にも影響があらわ
れ、当該最大吸収波長(λmax)が短波長側に移動し明
色化の効果を著しく減殺されるという種々の問題があ
る。 一方、後者「(b)特開昭61−47167号」の方法によ
る場合は、多くの色素の混合物を数種類のカラムクロマ
トグラフィにより精製して得るものであり、精製操作が
繁雑な上、青色系色素の収率が極めて低いという問題点
がある。 <発明が解決しようとする問題点> この発明にかかる明色化された青色系色素の製造方法
は、β−グルコシダーゼ若しくはβ−グルコシダーゼ産
生菌の存在下、クチナシ属植物のイリドイド配糖体若し
くは当該イリドイド配糖体含有物質(以下「イリドイド
配糖体若しくは当該イリドイド配糖体含有物質」を総称
して単に「イリドイド配糖体(含有物質)」という)と
第1級アミノ基含有化合物若しくは第1級アミノ基含有
物質(以下「第1級アミノ基含有化合物若しくは第1級
アミノ基含有物質」を総称して単に「第1級アミノ基含
有化合物(物質)」という)とを反応させて青色系色素
を製造する方法において、当該反応系に電解質を添加し
て、生成する青色系色素の水溶解性を減少させた条件の
下で反応させることにより、明色化された青色系色素が
生成されることを発見したことに基づき完成されたもの
である。 そして同様に、該関連技術としては、前記反応に関与
する第1級アミノ基含有化合物(物質)を水溶解性の低
いものまたは分子量の大きいものを用いることにより、
明色化された青色系色素が生成されることを発見したこ
とに基づき完成されたものである。 この発明は、クチナシ由来のイリドイド配糖体(含有
物質)と、第1級アミノ基含有化合物(物質)とを、β
−グルコシダーゼ又はβ−グルコシダーゼ産生菌の存在
下で反応させて青色系色素を生成させるに際して、従来
のような繁雑な反応操作および反応条件の厳格な管理を
必要とせず、また特別な精製工程も要しないで最大吸収
波長(λmax)が600〜625 nmで、エタノール水溶液中に
溶解された状態で長時間安定であり、また広いpH域でも
安定で、褪色試験にも耐える鮮やかな青色を呈する明色
化された青色系色素を大量に製造する方法を提供するこ
とを目的とするものである。 <問題点を解決するための手段> 上記目的を達成するために、 この発明にかかる明色化された天然青色系色素を製造
する方法は、 『β−グルコシダーゼまたはβ−グルコシダーゼ産生
菌の存在下、クチナシ属植物のイリドイド配糖体若しく
は当該含有物質と第1級アミノ基含有化合物若しくは第
1級アミノ基含有物質とを反応させて青色系色素を製造
する方法において、 当該反応系に当該濃度が10重量%以上30重量%以下の
範囲となるように電解質を添加して、生成する青色系色
素の水溶解性を減少させた条件の下で反応させることを
特徴とする明色化された天然青色色素の製造方法。』 により発明を構成させることとした。 発明者は、この発明にかかる明色化された青色系色素
の製造方法のメカニズムをつぎのように推測している。
つまり、その理由は明らかではないが、この発明にかか
る明色化された青色系色素の製造方法において、反応に
関与する第1級アミノ基含有化合物(物質)に水溶解性
の低い第1級アミノ基含有化合物(物質)を利用する
か、若しくは分子量の大きい第1級アミノ基含有化合物
(物質)を利用することにより、生成する青色系色素の
水溶解性が低いものとなるようにするか、または生成す
る青色系色素の水溶解性を減少させた反応系内で反応さ
せることにより、青色系色素は生成されると直ちに沈澱
として反応系外に取り出され、次の反応に移行すること
を極力押さえられ、それ以上重合反応が起こることな
く、重合度のそろった色素が生成され、その結果、明色
化された青色系色素が生成されるのでないかと推測して
いる。勿論、この発明は、このような推測原理に何等制
約されるものではない。 この発明にかかる方法で利用するクチナシのイリドイ
ド配糖体若しくは当該含有物質としては、ゲニポサイ
ド、メチルデアセチルアスペルロサイド、ゲニピンゲン
チオピサイド、ガーデノサイド、ゲニポシド酸などが例
示できる。そして、市販のクチナシの乾燥エキス(ゲニ
ポサイド含量=約9%:日本粉末株式会社製)をそのま
ま利用することができる。また、クチナシ果実等から抽
出物(つまりイリドイド配糖体または当該含有物質)を
得るには、たとえば、クチナシの果実破砕物を水若しく
はメタノール、エタノール、イソプロパノール、アセト
ン等を有機溶剤、または水と前記有機溶剤類との任意の
混合物により抽出し、さらに各種溶剤を蒸散または留去
して濃縮物または濃縮乾燥物若しくは蒸発乾固物を調製
することができる。 この発明にかかる青色系色素の製造方法の反応系にお
けるイリドイド配糖体(含有物質)の初発濃度は、適宜
選択できるが、通常ゲニポサイド含有量として、0.01〜
1wt%が利用でき、0.05〜0.6 wt%の濃度が好ましい。
(wt%は重量%を示す.以下同じ) つぎに、この発明にかかる方法で利用できる他の反応
物つまり第1級アミノ基含有化合物(物質)は、第1級
アミノ基を含有する化合物または物質であれば利用でき
る。たとえば、アミノ酸、ペプチド、蛋白質、蛋白質分
解物およびキトサン等のようなアミノ糖並びにこれらの
各種塩(たとえば、金属塩、無機酸塩等)、さらにはこ
れらと各種物質との複合物(complex)等々からなる化
合物群から選択された各種化合物(物質)の単一物また
は2以上の化合物(物質)の混合物が利用できる。 この発明にかかる方法に利用できる前記第1級アミノ
基含有化合物(物質)の具体例についてさらに詳しく説
明する。 まず、この発明で利用できるアミノ酸としては、水難
溶性のアミノ酸または分子量の大きいアミノ酸、たとえ
ば分子量が約120程度以上、であることが好ましい。ま
た、この発明で利用できるペプチドとしてはジペプチ
ド、トリペプチド、テトラペプチドはもとより、組成ア
ミノ酸が2〜10個のアミノ酸からなるオリゴペプチド、
10〜100個のアミノ酸からなるポリペプチドまたはそれ
以上のマクロペプチドも利用でき、そのペプチド鎖の状
態つまり直鎖状ペプチドまたは環状ペプチドを問わず利
用できるし、またホモ環状ペプチドまたはヘテロ環状ペ
プチドも利用できる。さらにまた、この発明で利用でき
る蛋白質および当該蛋白質の各種塩等としては、各種蛋
白質および当該蛋白質の金属塩(たとえば、ナトリウム
塩、カリウム塩等)のほか無機酸塩(たとえば、塩酸塩
等)が利用できるが、使用される微生物(乳酸菌)等の
資化性とも相埃って、脱脂乳、カゼイン乳製およびこれ
らの各種塩等が特に好ましい。また、この発明で利用で
きるものには、カゼイン乳製(ハマルスタイン氏法)
(和光純薬株式会社製)のようなプロテアーゼ力価測定
用の基質に用いられるカゼインなども利用できる。それ
に対して、カゼイン(酸分解物)(シグマ・ケミカル・
カンパニー社製)などは、この発明に利用する第1級ア
ミノ基含有化合物(物質)としてはあまり好ましくな
い。なぜなら、たとえば前記カゼイン(乳製)(酸分解
物)等は、その分解状態がすすんでいると考えられ、カ
ゼイン(酸分解物)中には水溶性のアミノ酸や低分子量
のアミノ酸(たとえばグリシン等)が多量に混在してい
ると考えられ、生成される青色系色素の明色化が劣り、
λmaxの値の低い暗青紫色の色素しか生産されない傾向
があるためである。 さらに、この発明にかかる明色化された青色系色素の
生産方法における特徴的な反応条件である「反応系に電
解質を添加して、生成する青色系色素の水溶解性を減少
させた条件の下で反応させること」という反応条件は、
反応系中にたとえば、無機塩等の各種電解質を添加する
ことにより達成することができる。この反応系に添加で
きる無機塩としては塩化ナトリウム、塩化カリウム、硫
酸ナトリウム等の中性の塩が最も好ましい。その他に添
加できる無機塩の例としては、原則的には反応系のpH
の調整に比較的支障が少ないこと、作用する酵素作用
の阻害が比較的少ないことまたは微生物作用の阻害が比
較的少ないこと等、の各条件を満たす限り添加する無機
塩には特に制限はなく、たとえば酢酸ナトリウムなどの
ような弱酸と強アルカリとの塩や、硫酸アンモニウムな
どのような弱アルカリと強酸との塩なども利用できる。
そして、この無機塩の反応系中に添加される量は、0.5
〜30wt%が使用でき、1〜20wt%が好ましい。そして、
この発明におけるこの特徴的な反応条件は、今回の実施
例で試験した限りにおいて、一方の反応物である第1級
アミノ基含有化合物(物質)の如何にかかわらず生成さ
れる青色系色素の該最大吸収波長(λmax)を長波長側
に移行させることがわかった。なお、第2表には、反応
系の食塩濃度を0%(無添加=対照)、10wt%、15wt
%、20wt%として生成される青色系色素の水溶解性を低
下させた反応系を形成し、この反応系中で各種アミノ酸
等とクチナシ果実のイリドイド配糖体とをβ−グルコシ
ダーゼ存在下において反応させたときに生成される青色
系色素の各最大吸収波長(λmax)および半値幅並びに
λmaxの変動例を示している。(第2表参照) 第2表の結果より、試験した17種類のすべてのアミノ
酸およびペプチド等は、反応系に食塩を添加することに
より生産される青色系色素が明色化する傾向〔つまり最
大吸収波長(λmax)が長波長側に移行する傾向〕を示
している。 つぎに、この発明にかかる方法と関連ある関連技術の
他の反応条件である「水溶解性の低い第1級アミノ基含
有化合物(物質)または分子量の大きい第1級アミノ基
含有化合物(物質)とクチナシのイリドイド配糖体若し
くは当該含有物質(化合物)とを反応させること」とい
う反応条件において、 A.第1級アミノ基含有化合物(物質)がアミノ酸の場
合、 (a)前記水溶解性の低いアミノ酸としては、たとえ
ば、ロイシン、イソロイシン、フェニルアラニン、ヒス
チジン、チロシン、トリプトファン、シスチンなどが明
色化された青色系色素(λmax=593〜600 nm)の生成に
特に有効に利用できるものとして例示できる。尚、前記
例示にかかるアミノ酸に限定されないのは勿論である。 (b)前記分子量の大きいアミノ酸としては、分子量が
約120以上のアミノ酸、たとえば、ロイシン、イソロイ
シン、メチオニン、ヒスチジン、チロシン、トリプトフ
ァン、システイン、シスチン等がある程度明色化された
青色系色素の生成に有効に利用できるものとして例示で
きる。(第2表参照)。 (c)その他。 この関連技術に利用できる他の好適なアミノ酸とし
て、バリン、トレオニン等が例示できる。(第2表参
照) B.水に難溶性の第1級アミノ基含有化合物(物質)、ま
たは分子量の大きい第1級アミノ基含有化合物(物質)
がアミノ酸以外の場合、 (a)ペプチド、蛋白質若しくは蛋白質分解物またはこ
れらの各種塩類(たとえば、金属塩、塩酸塩など)が利
用できる。 ペプチドとしては、たとえばグルタチオンなどその他
の各種ペプチド(ジペプチドからマクロペプチドまでの
各種ペプチド)が利用できる。また、前記蛋白質および
その金属塩としては、たとえば、カゼインNa(乳製カゼ
イン−Na)(商標名「サンラクトS」太陽化学株式会社
製)、カゼイン乳製(和光純薬株式会社製)、スキムミ
ルク(雪印乳業株式会社製)、キューライトNo.1〔カゼ
イン乳製(キューピータマゴ株式会社製)〕、ラクトカ
ゼイン(日本プロテイン株式会社輸入元、ニュジーラン
ド・デイリー・プロダクト社製)、カゼインNa(グンゼ
産業株式会社製)、カゼイン(ハマルスタイン氏法)
(和光純薬株式会社製)等々が利用できる。なお、前記
例示に限定されないのは勿論である。 蛋白質分解物としては、前記各種蛋白質の酵素分解
物、微生物分解物などが利用できる。 前記ペプチド、蛋白質または蛋白質分解物を利用した
とき、生成される青色系色素の最大吸収波長(λmax
は、600〜610 nmと明色化されたものである。(第2表
〜第4表参照) また、蛋白質分解物のうち、カゼイン(酸分解物)
(シグマ・ケミカル・カンパニー社製)のように、低分
子量のアミノ酸たとえばグリシン等を当該分解物中に含
むと考えられるものを第1級アミノ基含有化合物(物
質)として利用したときは、生産される青色系色素が十
分に明色化されないこともあり得るので、蛋白質分解物
を使用するときは、その分解度が比較的低いもの、たと
えばペプチド程度までの分解物を利用することが肝要で
ある。 また、前記ペプチド、蛋白質または当該蛋白質と他の
化合物との複合体も利用できる。さらにまた、キトサン
などのアミノ糖なども利用できる。なお、前記蛋白質等
の具体的例示では特に乳製カゼインが例示されたが、こ
れはこの関連技術に利用される微生物が乳酸菌であるか
らであって、β−グルコシダーゼを利用したり、または
乳酸菌以外の菌を利用する等の場合は、第1級アミノ基
含有化合物(物質)として乳製蛋白質以外の蛋白質、当
該分解物、当該各種塩または当該複合体などを利用でき
るのは勿論である。 そして、この発明の方法において利用される反応系に
おける第1級アミノ基含有化合物(物質)の利用濃度
は、適宜選択することができるけれども、アミノ酸また
はペプチドの場合には0.01〜10wt%、好ましくは0.1〜
2.0 wt%が利用でき、比較的高分子量のペプチド、蛋白
質若しくは蛋白質分解物またはこれらの各種塩類やこれ
らの各種複合体の場合には0.1〜30wt%好ましくは1〜2
5wt%が利用できる。 つぎに、この関連技術の方法で利用される微生物は、
乳酸菌に属するものであり、ストレプトコッカス(Stre
ptococcus)属、ラクトバチルス(Lactobacillus)属の
各種菌類が利用できる。 また、この関連技術にかかる方法の反応を微生物(乳
酸菌)の存在下でおこなう場合、当該反応条件として
は、温度22〜45℃(好ましくは35〜42℃)、pHは約4〜
8、静置または振盪条件下(回転数100〜150rpm)にお
いて青色系色素の生産が定常状態に入る頃まで(すなわ
ち、クチナシ果実のイリドイド配糖体(ゲニポサイド
等)の初発濃度が約0.2wt%のときで3〜4日間)培養
して青色系色素を生産する。(第1図、第2図参照)な
お、ここにいう静置培養とは、最小一日につき約0〜2
度ないし最大1時間につき約1〜2度程度反応中のフラ
スコを振盪・攪拌して反応内容物の振盪および反応促進
すること等を含む。そして、前記振盪培養と静置培養と
の相違点は、静置培養による方が振盪培養によるより
も、生成される青色系色素の最大吸収波長(λmax)に
おいて、10〜15nm程度長波長側に移行し明色化される傾
向を示すことが判明した。 さらにまた、この関連技術にかかる方法の反応をβ−
グルコシダーゼ存在下でおこなう場合、β−グルコシダ
ーゼの使用量は適宜選択できるが、たとえば、0.01〜1m
g/ml、好ましくは0.05〜0.5 mg/mlが利用されるそし
て、反応条件としては、20〜50℃で(好ましくは35〜43
℃で)、pHは約4〜9、静置または振盪条件下において
青色系色素の生成が定常状態に入る頃までつまり3〜4
日間培養して青色系色素を生成する。尚、ここにいう振
盪培養における振盪条件等は、前記微生物による反応の
場合と同様である。 ところで、生成された青色系色素は、反応液または培
養液をそのまま加熱(水浴中還流下約95℃以上、達温直
後〜約15分間)するか、または有機溶剤添加したものを
加熱(水浴中還流下、達温直後〜約15分間)して酵素失
活または微生物滅菌をした後、これらの反応液または培
養液を遠心分離等の公知の方法により固液分離して液相
に溶解した色素と固体等(菌体・沈澱色素等)を分離
し、その後、そのまま若しくは適宜希釈して液相の可視
部吸収スペクトルおよび最大吸収波長(λmax)におけ
る吸光度を測定して生成色素のλmaxおよび生成量を測
定することができる。そして、必要に応じて適当な有機
溶剤を用いて前記液相および固体相から色素を抽出し、
当該λmaxおよび生産量(吸光度)を測定することがで
きる。たとえば、液相からはn−ブタノールなどのよう
な水に完全には溶けない有機溶剤を用いて色素を抽出し
たのち、最大吸収波長(λmax)および吸光度をそれぞ
れ測定することもできる。一方、固体相からはエタノー
ル、メタノール、イソプロパノール、アセトン等々の有
機溶剤、当該混合液またはこれらの有機溶剤等と水との
任意の混合物(好ましくは100〜50 vol%水溶液等)等
を用いて青色系色素を抽出でき、当該抽出液の可視部吸
収スペクトルを測定し最大吸収波長(λmax)を測定す
るとともに、前記λmaxにおける吸光度を測定して色素
の生産量を測定することができる。(但し、vol%は容
量%を示す.以下同じ) なお、生成された色素の抽出方法によっても、最大吸
収波長(λmax)の値および吸光度が変化することが判
明した。すなわち、反応後における微生物の加熱滅菌
または酵素の加熱失活をして生成した青色系色素を水相
のみに移行抽出する方法(沈澱物にも青色系色素が残留
している)と、有機溶剤を添加したのち加熱して微生
物の滅菌、酵素の失活と生成色素の抽出とを同時に行う
方法〔たとえば同量のエタノール(100%)を加えて全
体を最終濃度50 vol%のエタノール液とした後還流下加
熱して微生物の滅菌または酵素の失活を行うとともに同
時に生成した青色系色素を当該有機溶剤(この場合50 v
ol%エタノール水溶液)により抽出する方法〕とを比較
する。その結果、前記の方が前記よりも、得られる
青色系色素の最大吸収波長(λmax)が長波長となり色
調が明色化されたうえ、色素生産性を示す吸光度も大き
くなった。これは、生成される青色系色素は、水溶性の
外に沈澱物として反応系外に存在しており、この沈澱物
として存在する青色系色素は、有機溶剤に溶解するもの
としてかなりの量が存在し、且つ有機溶剤に溶解するも
のの方に最大吸収波長(λmax)が長波長のものつまり
明色化された青色系色素が多いことを示唆していると考
えられる。 さらにまた、生産された青色系色素は、いずれの場合
にも光、熱およびpHに対しても安定であり、褪色試験に
十分耐えられるものである。 <実施例> つぎに、この発明について実施例に基づいて説明する
が、この発明がこれらの実施例に限定されないし、また
これらの実施例により何ら制限をうけないのは言うまで
もない。 i)クチナシの果実のイリドイド配糖体の調製 (a)クチナシ乾燥エキス: 市販のクチナシ乾燥エキス(日本粉末株式会社製)を
そのまま利用する。このクチナシ乾燥エキス2gをマッキ
ルベイン緩衝液(pH 6.8)98mlに溶かした反応液中のゲ
ニポサイド含量は0.18wt%であった。 (b)X%クチナシ煎液の調製: 「サンシシ末(クチナシの生薬名)」(日本粉末株式
会社製)Xgに水100mlの割合で水を加え、水浴中(約95
℃)で1時間還流加温抽出した後、濾過して固液分離し
た後、濾液の水分を蒸散させて蒸発乾固し、これにマッ
キルベイン緩衝液(pH 6.8)を加え全量を100mlとした
ものを用いる。尚、4%煎液のゲニポサイド含量は2.02
mg/mlすなわち約0.2 wt%であった。 (c)クチナシ果実の2%メタノール抽出液の調製: サンシシ末2gにメタノール50mlを加え、水浴中で1時
間還流加熱し冷却後濾過し、当該濾液を蒸発乾固する。
これをマッキルベイン緩衝液(pH 6.8)で溶解させて10
0mlとする。 ii)青色系色素の生成(製造・生産)方法。 (a)乳酸菌による青色系色素の生成(製造)方法。 脱脂粉乳20gと前記i(a)のクチナシ乾燥エキス
(ゲニポサイド含量約9%)2gにマッキルベイン緩衝液
(pH 6.8)98mlを加えた反応液とを、水浴中で約95℃、
達温直後〜約30分間加熱滅菌し、冷却後乳酸菌を約1.0
×107〜2.0×107個/ml接種する。38℃で静置培養し(但
し、最小約0〜2回/日ないし最大約1〜2回/時間の
程度の割合で反応液を適宜振盪攪拌して培養.以下同
じ)する。72時間ないし96時間培養後乳酸菌を水浴中約
95℃で達温約10分間加熱滅菌して乳酸菌による青色色素
の製造工程を終わる。 以後はこの反応液(培養液)より青色色素を抽出する
工程に移される。そして、滅菌後は遠心分離して反応液
(培養液)の液相を色素液として可視部スペクトルを測
定し製造された青色色素の最大吸収波長(λmax)およ
び吸光度を測定することにより、色素の色調および生産
量を測定し、生産色素の明色化の程度を比較検討する。
(なお、第1表〜第4表の結果は、すべて反応液(培養
液)を固液分離したそのままの水溶液部(水相)の最大
吸収波長(λmax)を測定比較したものである。) なお、前記クチナシ乾燥エキスを使用しないでクチナ
シ煎液を使用する場合は、前記クチナシ乾燥エキス2gと
マッキルベイン緩衝液(pH 6.8)98mlに代えて前記クチ
ナシ煎液100mlを加えたものを反応液(培養液)として
用いることとなる。 (b)β−グルコシダーゼによる青色系色素の生成(製
造・生産)方法。 脱脂粉乳20g(蛋白質または蛋白質分解物の場合は5
g、アミノ酸の場合は0.05g〜0.2 g若しくは0.005 M〜0.
02 M(M=mol/)とクチナシ乾燥エキス2gとマッキル
ベイン緩衝液(pH 6.8)98mlを加え、水浴中で約95℃、
達温直後〜約30分間加熱滅菌したのち冷却後、β−グル
コシダーゼを0.1 mg/mlの割合で加え静置条件下(最小
約0〜2回/日ないし最大1〜2回/時間の割合で反応
液(培養液)を振盪攪拌する程度の攪拌培養を含む.以
下同じ)で48時間〜(72時間)〜96時間反応させる。反
応終了後、水浴中約95℃で達温約10分間加熱してβ−グ
ルコシダーゼを失活させてβ−グルコシダーゼによる青
色色素の製造工程を終わる。 以後はこの反応液(培養液)より青色色素を抽出する
工程に移される。そして、酵素失活後は遠心分離して反
応液(培養液)の液相(水相)を色素液として可視部吸
収スペクトルを測定し生成された青色色素の最大吸収波
長(λmax)および吸光度を測定することにより、色素
の色調および生産量を測定する。 なお、前記クチナシ乾燥エキスを使用しないでクチナ
シ煎液を使用する場合は、前記微生物存在下で青色系色
素を生産する場合と同様に、前記クチナシ乾燥エキス2g
とマッキルベイン緩衝液(pH 6.8)98mlに代えて前記ク
チナシ煎液100mlを加えたものを反応液(培養液)とし
て用いることとなる。 (c)生成された青色系色素の水溶解性の低下方法と、
生成された青色系色素の最大吸収波長(λmax)との関
係。 反応系を、生成した青色系色素の水溶解性を減少させ
る系とするために、前記ii)(a)およびii)(b)に
よる色素製造工程の各反応系において、電解質として食
塩(NaCl)を10wt%、15wt%、20wt%添加することによ
りそれぞれ生成される青色系色素の水溶解性の低下を図
り、一方、対照として食塩無添加(0%)のものを設定
し、前記4種類のそれぞれの反応系における生成青色系
色素の最大吸収波長(λmax)および半値幅を測定し、
比較検討する。 第1表は、各種乳酸菌およびβ−グルコシダーゼによ
り生成される青色系色素の可視部吸収スペクトルから読
み取った最大吸収波長(λmax)および当該生産量(吸
光度)の試験結果例を示したものである。なお、前記青
色系色素の生産量を示す当該色素原液の吸光度は、必要
に応じて当該原液を適当な倍率に希釈して当該λmax
おける吸光度を測定した後、当該希釈倍率を乗じて色素
原液の吸光度を算出して求めた値を示している。 第1表より、ストレプトコッカス(Strepto−coccu
s)属およびラクトバチルス(Lacto−bacillus)属の乳
酸菌およびβ−グルコシダーゼがこの関連技術の方法の
青色系色素生成に有効であることが判明する。 第1図は乳酸菌(Streptococcus faecalis IFO 1296
5)による青色系色素の経時的生成状態を示す図、第2
図はβ−グルコシダーゼによる青色系色素の経時的生成
状態を示す図である。前記第1図および第2図により、
この発明による青色系色素の生成は、72時間ないし96時
間(3〜4日間)でほぼ定常状態に入ることを示唆して
いる。 つぎに、第2表〜第4表は、反応系に電解質〔中性塩
である食塩(NaCl)〕を0%(無添加:対照)、10wt
%、15wt%、20wt%それぞれ添加した各条件を設定し、
反応系を、生成される青色系色素の水溶解性を減少させ
た系にして微生物またはβ−グルコシダーゼの存在下で
クチナシのイリドイド配糖体と前記第1級アミノ基含有
化合物(物質)とを反応させたときの青色系色素の生成
状態(λmax、半幅値等)を示す結果例である。 第2表〜第4表のうち、第1級アミノ基含有化合物
(物質)とクチナシのイリドイド配糖体(ゲニポサイド
等)とを反応するに際しては、前記第1級アミノ基含有
化合物(物質)が、アミノ酸またはペプチドである場
合(第2表)、または乳製以外の蛋白質または当該蛋
白質分解物またはアミノ糖等の場合(第3表)であっ
て、前記およびの場合においては、β−グルコシダ
ーゼ存在下において反応させた結果例を示している。一
方、第1級アミノ基含有化合物(物質)が脱脂乳など
の乳製由来の蛋白質若しくは当該蛋白質分解物またはこ
れらの金属塩等とクチナシのイリドイド配糖体(ゲニポ
サイド等)とを反応する場合(第4表)には、β−グル
コシダーゼまたは前記乳酸菌(ストレプトコッカス属ま
たはラクトバチルス属の菌)の存在下において反応させ
た結果例をそれぞれ示している。 前記第2表の結果より、β−グルコシダーゼ存在下に
おいて、クチナシのイリドイド配糖体(含有物質)と第
1級アミノ酸またはペプチドとの反応により生成される
青色系色素は、反応系に中性塩等の電解質を添加して生
成される青色系色素の溶解度を低下させることにより、
生成される青色系色素の最大吸収波長(λmax)が2〜1
5nm程度長波長側に移行し、明色化されるということを
示唆している。特に、反応に関与する第1級アミノ酸が
水に難溶性であればある程、または分子量が約120以上
になると明色化された青色系色素が生産されるという傾
向があり、たとえば、第1級アミノ酸としてロイシン、
イソロイシン、メチオニン、ヒスチジン、フェニルアラ
ニン、チロシン、トリプトファン、システイン等のほか
ペプチドとしてグルタチオン等を用いたとき、生成され
る青色系色素の最大吸収波長(λmax)が約598nm以上
(約598〜605 nm)のものが得られることを示唆してい
る。そして、第2表は、生成される青色系色素の最大吸
収波長(λmax)が約600nm以上の明色化された色素とな
るのは、前述のように反応系に電解質を添加して生成色
素の水溶解性を減少させるという方法によらなくとも、
第1級アミノ基含有化合物(物質)自体が水溶解性の低
いものを利用したり、分子量の比較的大きい(約120以
上)のものを利用することによっても達成できることを
も同時に示唆している。 反応系における生成色素の水溶解性を低下させること
により、当該生成される青色系色素が長波長側に移行し
て明色化されるというメカニズムは、未だ解明されてい
ないが、生産された青色系色素の水溶解性を低下させる
ことにより、生産された青色色素が生産されると同時に
沈澱として反応系外に取り出され、それ以上重合が起き
ないで重合度のそろった明色化された青色系色素が生成
されるものと推測できる。もとより、この発明はこのよ
うな推測によって何等制約されるものではない。 また、前記第3表の結果より、β−グルコシダーゼ存
在下において、クチナシのイリドイド配糖体(含有物
質)と第1級アミノ基含有化合物(物質)との反応によ
り生成される青色系色素は、前記第1級アミノ基含有化
合物(物質)が分子量の大きい乳製以外の第1級アミノ
基含有化合物(物質)、たとえば、ペプチド、蛋白質、
当該蛋白質分解物またはアミノ糖等であっても生産し得
ることを示唆している。ここで注意しなければならない
のは、蛋白質分解物を用いたとき、当該分解物に分子量
が比較的小さいアミノ酸、または溶解性の大きいアミノ
酸等が混在していると、生成される青色系色素の最大吸
収波長(λmax)が短波長側に移行し、つかり暗青紫色
側に移行し、目的とする明色化された青色系色素を得る
妨げとなる傾向を示すことである。 同様にして、第3表で使用された「酵母エキス」、
「ペプトン」、「プロモイスW−32〔(商標名)(商品
名=コラーゲン分解物)(成和化成株式会社製)〕」、
「プロモイスA(同前)」、「プロモイスE−118D〔同
前〕」等の各蛋白質もしくは当該分解物には分子量の小
さい第1級アミノ酸などが多量に含まれていたために、
λmaxの値の低いものつまり明色化されない青色系色素
が生成または混在されたものと推測できる。 つぎに、前記第4表の結果より、β−グルコシダーゼ
または乳酸菌の存在下において、クチナシのイリドイド
配糖体(含有物質)と第1級アミノ基含有化合物(物
質)との反応により生成される青色系色素は、前記第1
級アミノ基含有物質が水難溶性または分子量の大きい第
1級アミノ基含有化合物(物質)であるとき、より一層
明色化された青色系色素が簡単に生成されることを示唆
している。特に、たとえば、第1級アミノ基含有化合物
(物質)として水難溶性でありまた分子量の大きい脱脂
乳または当該乳製蛋白質分解物または当該各種塩(金属
塩等)が有効に利用でき、しかも生成される青色系色素
の最大吸収波長(λmax)が従来では得られなかった610
nmという著しく明色化された青色系色素を生産できるこ
とを示唆している。これは、乳酸菌の生育に関する脱脂
乳の資化性とも相埃って、特に青色系色素の大量生産お
よび経済的生産を可能とする。すなわち、β−グルコシ
ダーゼ等の酵素を用いる場合には、酵素自体が高価であ
るうえ、一度使用した酵素を回収して数回使用すること
は極めて繁雑でまた管理が困難となるが、乳酸菌による
と青色系色素を工業的に多量に生産でき、しかも乳酸菌
の管理は酵素よりもはるかに容易であるという利点があ
る。 ところで、同時に第4表はつぎのようなことをも併せ
て示唆している。つまり、分子量の大きい第1級アミノ
基含有化合物(物質)が乳製の蛋白質等、たとえば、ス
キムミルム、乳製カゼイン等を用いた場合ではλmax=6
00nm以上の明色化された青色系色素を生成していたにも
かかわらず、おなじミルク・カゼインでも「カゼイン
(酸分解物)」(生産青色色素のλmax=590nm)と「カ
ゼイン(ハマルステイン氏法)」(生成青色色素のλ
max=607nm)とではその生成される青色色素のλmax
おいて約17nmの差が生ずる等、生成青色系色素の鮮明度
(明色化)が劣る場合がある。 ちなみに、発明者は、スキムミルム又は乳製カゼイン
とイリドイド配糖体(含有物質)とを乳酸菌の存在下で
反応させて青色系色素を生成する場合、当該反応系中に
さらにグリシン、アラニンまたはロイシンなどの水溶性
で分子量が比較的小さいアミノ酸を添加したとき、生成
される青色系色素の最大吸収波長(λmax)が前記アミ
ノ酸を添加しないときと比較して2〜17nm程度短波長側
に移行する場合があることを知見として得ている。 そして、第2表および第4表の一部の結果は、第1級
アミノ基含有化合物(物質)としてアミノ酸、ペプチ
ド、蛋白質およびこれらの蛋白質分解物並びにこれらの
金属塩等を使用した場合において、反応系に食塩を添加
して生成される青色系色素の水溶解性を低下させた条件
下でこれらをクチナシのイリドイド配糖体(含有物質)
と反応させたとき、生成される青色系色素のλmaxはい
ずれの場合も長波長側に移行し明色化された青色系色素
を生産できる傾向があることをも併せて示唆している。 (d)反応生成物(反応液または培養液)からの青色系
色素の抽出方法が収穫青色系色素のλmaxおよび色素収
量に対して及ぼす影響試験例。 ア)反応液(培養液)からの青色系色素の抽出条件(抽
出用溶剤等)が、得られる青色系色素のλmaxおよび色
素収量に対して及ぼす影響試験例。 青色系色素を抽出するための供試料は、前記ii)
(a)またはii)(b)の方法により得た反応液(培養
液)を使用する。すなわち、脱脂粉乳20gとクチナシ乾
燥エキス2gにマッキルベイン緩衝液(pH 6.8)98mlを加
え、これを所定の条件(水浴中約95℃、達温直後〜約30
分間)加熱滅菌したものを冷却後乳酸菌を接種、または
β−グルコシダーゼを添加して72時間ないし96時間静置
培養した、反応後の当該反応液(培養液)を青色系色素
抽出用の供試料とする。 抽出条件: 前記供試料の反応液(培養液)そのままを水浴中加熱
(約95℃、達温約10分間)により前記酵素(β−グルコ
シダーゼ)の失活または前記乳酸菌を死滅させ、遠心分
離した後のそのままの液相(水相)部の青色系色素の最
大吸収波長(λmax)および色素生成量(λmaxにおける
吸光度)を測定する方式。 抽出条件: 前記供試料の反応液(培養液)に、適当量の有機溶剤
(単一種類の有機溶剤または複数種類の有機溶剤の混合
液)を添加して有機溶剤の最終含有量を約20〜90vol%
にしたのち、水浴中還流加熱(達温約10分間)して、前
記酵素の失活若しくは乳酸菌を滅菌すると同時に、生成
した青色系色素を前記各液相中に抽出した後、遠心分離
して均一液相の場合には液相全体の、また液相が二相に
分離する場合には有機溶剤相のそれぞれの最大吸収波長
(λmax)および色素生成量(λmaxにおける吸光度)を
測定する方式。(なお、液相が二相に分離する場合の他
の液相つまり水相はλmaxおよび吸光度ともに測定せ
ず。) の両者を比較検討する。 なお、この実施例では前記有機溶剤として、たとえ
ば、つぎの有機溶剤を前記反応液(培養液)に対して同
量だけ添加して試験した。 (a)100%エタノール(有機溶剤添加後の最終濃度は5
0 vol%エタノール水溶液)、 (b)100%イソプロパノール(有機溶剤添加後の最終
濃度は50 vol%イソプロパノール水溶液)、 (c)イソブタノール/エタノール(50/50 v/v)混合
液、 (d)イソブタノール/イソプロパノール(50/50 v/
v)混合液、 (e)100% n−ブタノール、 第5表は、この前記抽出条件および同による青色
系色素の最大吸収波長(λmax)と当該λmaxにおける吸
光度(色素生成量)の比較表であって、供試料の反応液
(培養液)に同量の前記有機溶剤を添加したときの結果
例を示したものである。 この両者を比較すると、抽出される青色系色素の前記
最大吸収波長(λmax)(603〜625nm)および前記(λ
maxにおける)吸光度において差が生ずることが判明し
た。すなわち、第5表から前記抽出条件の方が、抽出
色素のλmax、およびその生成量(λmaxにおける吸光
度)において抽出条件よりも優れていること、および
有機溶剤の種類により生成青色系色素の抽出率が異なる
ことをそれぞれ示唆している。さらにまた、第5表の結
果からは、前記抽出条件の残渣部に明色化された青色
系色素が相当量含まれていること、つまり明色化された
青色系色素は水難溶性であって、反応物の沈澱物側に多
量移行していることを示唆している。なお、別にエタノ
ール水溶液で抽出する場合、エタノール水溶液のエタノ
ール濃度が高い程長波長のλmaxを示すことが判明し
た。さらに、第3図は、この抽出実施例においてn−ブ
タノールにより抽出された青色系色素の可視部吸収スペ
クトルを示す。イ)色素抽出条件(抽出操作手順等)が得られる青色系
色素のλmaxに対して及ぼす影響比較例。 〔供試料(反応液)の調製〕 供試料(反応液・培養液)は、前記ii)(d)ア)に
記載した同じ方法で調製した反応液(培養液)を使用す
る。 〔第1抽出方法例〕(第4図参照) 反応液(培養液)は、水浴中加温滅菌(約95℃、達温
約10分間)加熱滅菌したものを用いる。加熱滅菌した反
応液を遠心分離により固液分離し、第1上澄液(水層)
(L−1)と第1残渣(R−1)とに分離する。前記第
1上澄液(L−1)のλmaxは603nmであった。前記第1
残渣(R−1)に50 vol%エタノール水溶液を加え色素
を抽出したのち、固液分離して第2上澄液(L−2)と
第2残渣(R−2)とに分離する。前記第2上澄液(L
−2)の50%エタノール抽出液のλmaxは610nmであっ
た。さらに、前記第2残渣(R−2)に2規定の苛性ア
ルカリ(苛性ソーダ)を加えて抽出し、その後固液分離
し第3上澄液(L−3)と第3残渣(R−3)とを得
る。第3上澄液(L−3)のλmaxは600nmであった。な
お、第3残渣には青色系色素の残留は認められなかっ
た。 反応液(培養液)からの青色系色素の抽出条件(抽出
操作手順等)によっても、抽出される当該色素のλmax
に影響があることが判明する。第4図は第1抽出方法
(実施例)の抽出操作手順等示している。図中のλmax
は、前記供試料(反応液・培養液)から色素を抽出した
ときの各抽出液のλmaxの比較例を示しており、抽出に
使用する有機溶剤の種類により抽出青色系色素のλmax
に差が生ずることを示唆している。 この第1抽出方法例の結果より、明色化された青色系
色素の順位は、第1位が第1残渣(R−1)中の50%エ
タノール水溶液抽出部、第2位が第1上澄液(L−
1)、第3位が第2残渣(R−2)中の2規定苛性ソー
ダ抽出液であって、いずれの抽出液もそのλmax値は600
nm以上であった。そして、抽出用の溶剤の極性が小さい
程、明色化された(つまりλmax値の大きい)青色系色
素が抽出されてくる傾向があることを示唆している。 iii)この発明により生成される明色化された天然青色
系色素の安定性試験結果。 (a)生成された青色系色素の光および熱に対する安定
性試験結果。 〔試験方法〕 この発明により生成された青色系色素を、カラムクロ
マトグラフィ(充填剤:シリカゲル、溶出液:エタノー
ルおよびエタノール水溶液)で分画し、まずエタノール
100%で夾雑色素(黄色色素)を溶出した後、70 vol%
エタノール溶出部と50 vol%エタノール溶出部とを得
る。この70 vol%エタノール溶出部(70%EtOH溶出部)
(λmax=602nm)および50 vol%エタノール溶出部(50
%EtOH溶出部)(λmax=601nm)をそれぞれの溶出部と
同じ濃度の各エタノール水溶液で希釈して吸光度値をそ
れぞれ0.2〜0.5なるように調整し、褪色試験機(三菱電
機株式会社製、モデムMH−1、キセノンランプ)により
最長4時間照射して褪色させる。このときの各測定設定
時間後(0時間、1時間、2時間、4時間)において、
各試料のλmaxにおける吸光度を測定したのち当該褪色
率を計算により求める。前記褪色率は、各設定された測
定時間における吸光度値を初発時(0時間)における当
該各吸光度値で除した値(%)として算出する。なお、
比較対照として青色1号(色素)(λmax=625nm)を使
用した。この褪色試験結果例を第6表に示す。 第6表の結果から、この発明により製造される青色系
色素は、飲食物類用、嗜好品類用、保健医薬品用および
香粧品類などの各種用途に広範囲に適用できる代表的で
安定な青色1号と比較してもその褪色試験においては何
等劣ることなく褪色性に優れていることを示唆してい
る。したがって、この発明にかかる明色化された青色系
色素は飲食物類用、嗜好品類用、保健医薬品用および香
粧品類などの各種用途に広範囲に適用できるものとして
極めて有用である。なお、この褪色試験中において、目
視観察による各試験試料の色調変化は認められなかっ
た。 (b)生成された青色系色素のpHに対する耐性試験結
果。 〔試料の調製方法〕 脱脂乳とクチナシの乾燥エキスとを乳酸菌(Streptoc
occus faecalis IFO 12965)存在下〔前記 ii)
(a)の方法〕で生成した青色系色素(λmax=603nm)
を供試料として使用する。 〔試験方法〕 マッキルベイン緩衝液、および40%エタノール含有マ
ッキルベイン緩衝液中での各pH(各設定pH=4.03、5.0
7、5.97、6.80(基準)、7.95、9.07)における最大吸
収波長(λmax)、および吸光度を測定し、この発明に
より生成された青色系色素のpHに対する耐性試験結果例
を第7表に示す。 第7表の結果より、この発明にかかる方法により生成
した青色系色素は、アルコール性の酸性域からアルカリ
性域まで広い範囲で安定であることを示唆しており、飲
食物類、嗜好品類、保健医薬品類および香粧品類等に広
く配合使用できることを示唆している。なお、この各設
定pHに対する耐性試験において、この供試料の目視観察
による色調変化は認められなかった。 <発明の効果> この発明は、クチナシ属植物のイリドイド配糖体(含
有物質)と第1級アミノ基含有化合物(物質)とをβ−
グルコシダーゼ若しくはβ−グルコシダーゼ産生菌の存
在下で反応させて青色系色素を製造する方法において、
例えば、反応系に食塩等の中性塩のような電解質を添加
することにより、反応系を、生成する青色系色素の水溶
解性を減少させた系とした条件の下で反応させて青色系
色素を生成するだけで、従来には得られなかった明色化
された青色系色素(λmax=600〜625 nm)が簡単に量産
できる。しかも、この発明の方法は、従来のような反応
温度、反応時間および反応液の攪拌条件等の反応条件の
厳格な管理や生成色素の繁雑な分離精製工程等の操作が
全く不要であり、明色化された青色系色素が安価で容易
且つ大量に生産できる等々、発明目的を達成する優れた
効果を奏する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION <Industrial applications>   The present invention relates to a method for producing a gardenia-derived natural blue pigment.
Law related, especially safe food and drinks, luxury goods
Products, health pharmaceuticals, cosmetics, etc.
During the manufacturing process, complicated reaction operations and
Does not require strict management of conditions and is special and complicated
Without the need for a simple purification step
Blue-based pigments with clearer color tones
(Maximum absorption wavelength λmax= 600nm ~ 625nm) for easy mass production
The present invention relates to a method for producing a natural blue dye. <Conventional technology>   In recent years, while the safety of synthetic dyes has been questioned,
Colors of foods and drinks, luxury goods, health pharmaceuticals, cosmetics, etc.
There is an increasing demand for harmless natural pigments,
Has little blue pigment. A typical natural blue pigment
Pigments from gardenia and spirulina
Are practically used. Gardenia fruit
It has been known for a long time that skin dyes the skin blue to violet.
Have been. And dye this skin blue to blue-purple
Containing iridoid glycosides thought to be involved in
Genipi from ripe fruits of Sano tree (Genipa americana L.)
The crystalline solids of the genipin are separated
Insight into physical and chemical properties and chemical structure,
Means that the genipin is a primary amino group-containing compound (amino
Acids such as glycine, leucine, glutamic acid)
It has been reported that a blue pigment is produced in response.
(J.Org.Chem., 25,2175,1960)   Gardenia fruits often contain iridoid glycosides
It is known, and certain iridoid glycosides have β-
When glucosidase is applied, it turns reddish purple or blue
It has long been known to produce color. (Tetrahe
Delon Letters 2347-2350,1969)   Furthermore, the coloring mechanism of the blue pigment derived from gardenia
Is an iridoid glycoside found in gardenia nuts
Geniposide and the like produce enzymes such as β-glucosidase
Or bacteria belonging to the genus Bacillus or Aspergillus
Action of a microorganism having the ability to produce β-glucosidase,
Or hydrolyzed by chemical action such as hydrochloric acid
To generate genipin, and the genipin is converted to a primary amino group.
Contained substances (amino acids such as glycine, leucine, glue
Tannic acid) to form a blue pigment
It has been reported. The mechanism of color development of this blue pigment
Utilizing genipin and various primary amino group-containing substances
After reacting, various dyes (blue-purple-purple-red-purple-green-yellow-yellow-orange
-Colors having various color tones ranging from orange to brown to brown)
Has been advocated. (Japanese Patent Publication No. 54-13451)   Furthermore, in the production of blue pigments from gardenia,
Thus, instead of allowing the β-glucosidase to act,
Microorganisms of the genus Bacillus (JP-B No. 52-13971) and Monasca
Maximum absorption using microorganisms of the genus Azot (Special Publication No. 59-16751)
Collection wavelength (λmax) Produces a dark blue dye of about 590nm
There are examples that have been successful.   However, the color development of these blue pigments from gardenia
Blue dyes obtained by various reactions based on canism
Is a mixture of many compounds as a result of a complex reaction,
As a result, a dark blue-violet color (maximum absorption wavelength: λmax= 593nm or less
Lower, half width = 100-140 nm)
Supply of bright blue pigments
I have.   Conventionally, the lightening of the blue dye obtained by this reaction
Improvements were attempted. ((A) Japanese Patent Publication No. 61-19234,
(B) JP-A-61-47167)   The former “(a) JP-B-61-19234 (JP-A-56-92792)
No.) ”, the gardenia iridoid glycoside
Body-containing substance and β-glucosidase are preliminarily subjected to microaerobic conditions.
After sufficient action under the
To obtain a blue dye with a narrow polymerization distribution.
Complex reaction procedures and particularly strict control of the reaction conditions
A blue pigment is produced through the process. But
Et al., The method of “(a) Japanese Patent Publication No. 61-19234”
Β-glucosidase used in the reaction system is expensive
Not reusable, maximum absorption of generated blue dye
Collection wavelength (λmax) Is 594-601nm and is fully lightened
Not only that, but also complicated reaction operation process and
It requires strict control and is very
It is difficult to control various conditions such as air conditions and stirring conditions.
Difficult and generated when these conditions fluctuate
The maximum absorption wavelength (λmaxIs also affected
And the maximum absorption wavelength (λmax) Moves to shorter wavelength side
There are various problems that the effect of coloring is significantly reduced.
You.   On the other hand, the method of the latter "(b) JP-A-61-47167"
If a mixture of many dyes is
It is obtained by purification by chromatography.
It is complicated and the yield of blue dye is extremely low.
There is. <Problems to be solved by the invention>   Method for producing lightened blue pigment according to the present invention
Is β-glucosidase or β-glucosidase
In the presence of viable bacteria, iridoid glycosides of Gardenia plants
Or the iridoid glycoside-containing substance (hereinafter referred to as “iridoid
Glycoside or iridoid glycoside-containing substance ''
And simply referred to as “iridoid glycosides (containing substances)”
Primary amino group-containing compound or primary amino group-containing
Substances (hereinafter referred to as “primary amino group-containing compounds or primary
The term “amino group-containing substance” is collectively referred to simply as “primary amino group-containing substance”.
Compound (substance) ")
In the method for producing, an electrolyte is added to the reaction system.
Under conditions that reduce the water solubility of the resulting blue dye
By reacting under the below, the light blue color pigment
Completed based on the discovery that it was created
It is.   And, similarly, the related art involves the reaction
Of primary amino group-containing compounds (substances)
By using a material with a high molecular weight
It was discovered that a lighter blue pigment was produced.
It was completed based on the above.   The present invention relates to a gardenia-derived iridoid glycoside (containing
Substance) and a primary amino group-containing compound (substance) by β
The presence of glucosidase or β-glucosidase producing bacteria
When producing a blue dye by reacting under
Strict control of reaction conditions and reaction conditions
Maximum absorption without the need for special purification steps
Wavelength (λmax) At 600-625 nm in ethanol aqueous solution
It is stable for a long time when dissolved, and even in a wide pH range
Stable, bright blue color that withstands fading tests
To provide a method for producing a large amount of
And for the purpose. <Means to solve the problem>   To achieve the above objectives,   Manufactures a lightened natural blue pigment according to the present invention
The way to do   [Β-glucosidase or β-glucosidase production
In the presence of fungi, the iridoid glycosides of Gardenia plants
Is a compound containing a primary amino group or a compound containing a primary amino group.
Reacts with primary amino group-containing substances to produce blue dye
In the method   The concentration of the reaction system is 10% by weight or more and 30% by weight or less.
Blue color produced by adding electrolyte to the range
Reaction under conditions that reduce the aqueous solubility of
A method for producing a lightened natural blue pigment. 』 According to the present invention.   The inventor has proposed a light-colored blue pigment according to the present invention.
The mechanism of the manufacturing method is estimated as follows.
In other words, although the reason is not clear,
In the process for producing a bright blue dye,
Water-soluble in involved primary amino group-containing compounds (substances)
Use primary amino group-containing compounds (substances) with low
Or a primary amino group-containing compound having a large molecular weight
(Substance) to generate blue-based pigments
Reduce water solubility or produce
Reaction in a reaction system with reduced aqueous solubility of
As a result, the blue dye precipitates as soon as it is formed.
Is taken out of the reaction system and moves to the next reaction
Is suppressed as much as possible, and no further polymerization reaction will occur.
And a pigment with a uniform degree of polymerization is produced.
Guessed that a blue dye
I have. Of course, the present invention has no restrictions on such inference principles.
Not promised.   Gardenia iridoi used in the method according to the present invention
Glycosylate or its containing substance
De, methyl deacetylasperloside, genipingen
Examples include thiopicide, gardenoside, and geniposidic acid
Can be shown. Then, a commercially available gardenia dried extract (geni
Poside content = about 9%: manufactured by Nippon Powder Co., Ltd.
You can use it. Extracted from gardenia fruits, etc.
The product (ie, iridoid glycoside or the substance concerned)
To obtain, for example, crush the gardenia fruit crush
Are methanol, ethanol, isopropanol, aceto
Organic solvent, or any combination of water and the organic solvents
Extract with the mixture and evaporate or distill off various solvents
To prepare a concentrate or a concentrated dry product or an evaporated dry product
can do.   In the reaction system of the method for producing a blue dye according to the present invention,
Initial concentration of iridoid glycosides (contained substances) in
Can be selected, usually as geniposide content, 0.01 ~
1 wt% is available, with concentrations of 0.05 to 0.6 wt% being preferred.
(Wt% indicates weight%; the same applies hereinafter)   Next, other reactions that can be used in the method according to the present invention
Substances, ie, primary amino group-containing compounds (substances)
Any compound or substance containing an amino group can be used.
You. For example, amino acids, peptides, proteins, protein components
Amino sugars such as digests and chitosan and the like;
Various salts (for example, metal salts, inorganic acid salts, etc.)
Combination of these with various substances
Single or various compounds (substances) selected from the compound group
Can use a mixture of two or more compounds (substances).   The primary amino which can be used in the method according to the present invention.
Detailed explanation of specific examples of group-containing compounds (substances)
I will tell.   First, the amino acids that can be used in the present invention include
Soluble or high molecular weight amino acids, such as
For example, the molecular weight is preferably about 120 or more. Ma
In addition, the peptides that can be used in the present invention include dipepti
Compounds, tripeptides, tetrapeptides,
Oligopeptide in which the amino acid consists of 2 to 10 amino acids,
A polypeptide consisting of 10 to 100 amino acids or it
The above macropeptides can also be used,
Whether they are linear or cyclic peptides
And can be used in homocyclic peptides or heterocyclic peptides.
Peptides are also available. Furthermore, it can be used in this invention
Protein and various salts of the protein include various proteins
White matter and metal salts of the protein (eg, sodium
Salt, potassium salt, etc.) and inorganic acid salts (for example, hydrochloride
) Can be used, but the microorganisms (lactic acid bacteria)
Assimilable and dusty, skim milk, casein milk and
These various salts are particularly preferred. Also, in this invention
What can be made is casein milk (Hamarstein method)
Protease titration such as (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.)
Casein and the like used as a substrate for use can also be used. It
Against casein (acid hydrolyzate) (Sigma Chemical
Company) is the first class A used in the present invention.
Less preferred as a mino group-containing compound (substance)
No. Because, for example, the casein (milk) (acid degradation
It is considered that the decomposition state is advanced.
Zein (acid hydrolyzate) contains water-soluble amino acids and low molecular weight
Amino acids (such as glycine)
It is considered that the lightening of the generated blue pigment is inferior,
λmaxTend to produce only dark blue-violet pigments with low
Because there is.   Further, the light-colored blue pigment according to the present invention
The characteristic reaction conditions in the production
Adds denaturation to reduce the water solubility of the resulting blue pigment
Reaction under the same conditions "
Add various electrolytes such as inorganic salts into the reaction system
This can be achieved by: By adding to this reaction system
Sodium chloride, potassium chloride, sulfuric acid
Neutral salts such as sodium acid are most preferred. Other
Examples of inorganic salts that can be added include, in principle, the pH of the reaction system.
Relatively little hindrance to enzyme regulation
Relatively low inhibition or microbial action
Inorganic added as long as each condition such as relatively small is satisfied
There is no particular limitation on the salt, for example, sodium acetate
Such as salts of weak acids and strong alkalis, and ammonium sulfate.
Any salt of a weak alkali and a strong acid can be used.
The amount of the inorganic salt added to the reaction system is 0.5
-30 wt% can be used, and 1-20 wt% is preferred. And
This characteristic reaction condition in the present invention
As tested in the examples, one reactant, primary
Formed regardless of the amino group-containing compound (substance)
The maximum absorption wavelength (λmax) On the long wavelength side
It turned out to be moved to. Table 2 shows the reaction
The salt concentration of the system was 0% (no addition = control), 10wt%, 15wt
%, Water solubility of blue dyes produced as 20 wt% is low
To form a reaction system that contains various amino acids.
And the iridoid glycoside of the gardenia fruit
Blue color produced when reacting in the presence of dase
Maximum absorption wavelength (λmax) And half width and
λmax5 shows an example of the variation of the above. (See Table 2)   Table 2 shows that all 17 amino acids tested
Acids and peptides can be added to the reaction system by adding salt.
The blue dye produced tends to lighten (i.e.
Large absorption wavelength (λmax) Tends to shift to the longer wavelength side]
are doing.   Next, the related art related to the method according to the present invention will be described.
Another reaction condition, “containing primary amino group with low water solubility”
Organic compound (substance) or primary amino group with high molecular weight
Containing compounds (substances) and gardenia iridoid glycosides
Or reacting with the contained substance (compound). "
Under the reaction conditions A. When the primary amino group-containing compound (substance) is an amino acid
If (A) The amino acids having low water solubility include, for example,
For example, leucine, isoleucine, phenylalanine, hiss
Tidine, tyrosine, tryptophan, cystine, etc.
Colored blue pigment (λmax= 593-600 nm)
It can be exemplified as one that can be particularly effectively used. In addition,
It is a matter of course that the amino acids are not limited to those exemplified. (B) The amino acid having a large molecular weight has a molecular weight of
About 120 or more amino acids such as leucine, isoleuc
Syn, methionine, histidine, tyrosine, tryptophan
Cyan, cysteine, cystine, etc. were lightened to some extent
As an example that can be used effectively for the production of blue dyes
Wear. (See Table 2). (C) Other.   Other suitable amino acids available for this related technology
Thus, valine, threonine and the like can be exemplified. (See Table 2
See) B. A compound (substance) containing a primary amino group that is hardly soluble in water,
Or primary amino group-containing compound (substance) having a high molecular weight
Is other than an amino acid, (A) Peptide, protein or protein degradation product or
These various salts (eg, metal salts, hydrochlorides, etc.)
Can be used.   Examples of peptides include glutathione and others.
Various peptides (from dipeptide to macropeptide)
Various peptides) can be used. The protein and
Examples of the metal salt include casein Na (dairy case).
In-Na) (trade name “Sanlacto S” Taiyo Chemical Co., Ltd.)
Made), casein milk (made by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.), skimmy
Luc (Snow Brand Milk Products Co., Ltd.), Qurite No.1 [Kaze
In milk (made by Kewpie Tamago Co., Ltd.)
Zane (importer of Nippon Protein Co., Ltd.
Do Daily Product), Casein Na (Gunze)
Sangyo Co., Ltd.), Casein (Hamarstein method)
(Manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) can be used. The above
Of course, it is not limited to the example.   As the proteolysates, enzymatic decomposition of the above various proteins
Products, microbial degradation products, etc. can be used.   Utilizing the peptide, protein or protein degradation product
Sometimes, the maximum absorption wavelength (λmax)
Is lightened to 600 to 610 nm. (Table 2
To Table 4)   In addition, of the protein degradation products, casein (acid degradation product)
(Made by Sigma Chemical Company)
Amino acids such as glycine in the degradation product.
Is considered to be a compound containing a primary amino group (compound)
Quality), the blue pigment produced is sufficient.
Because it may not be lightened in minutes,
When using, the degree of decomposition is relatively low,
For example, it is important to use degradation products up to the peptide level.
is there.   In addition, said peptide, protein or said protein and other
Complexes with compounds can also be used. Furthermore, chitosan
Amino sugars and the like can also be used. In addition, the said protein etc.
In particular, dairy casein was exemplified, but
Is the lactic acid bacterium used in this related technology a lactic acid bacterium?
Using β-glucosidase, or
When using bacteria other than lactic acid bacteria, primary amino groups
Proteins other than dairy proteins as contained compounds (substances)
The decomposed product, the various salts or the complex can be used.
Of course.   And, in the reaction system used in the method of the present invention,
Concentration of primary amino group-containing compounds (substances)
Can be appropriately selected, but amino acids or
Is 0.01 to 10% by weight in the case of a peptide, preferably 0.1 to 10% by weight.
2.0 wt% available, relatively high molecular weight peptides and proteins
Or protein degradation products or various salts thereof
In the case of these various composites, 0.1 to 30% by weight, preferably 1 to 2%
5wt% is available.   Next, the microorganism used in the method of this related art is:
It belongs to lactic acid bacteria and is Streptococcus (Stre
ptococcus), Lactobacillus
Various fungi can be used.   In addition, the reaction of the method according to this related technique
Acid bacteria) in the presence of
Has a temperature of 22-45 ° C (preferably 35-42 ° C) and a pH of about 4-
8. Under standing or shaking conditions (100-150 rpm)
Until the production of blue dyes reaches a steady state.
And gardenia fruit iridoid glycosides (geniposide)
3-4 days at the initial concentration of about 0.2wt%)
To produce a blue pigment. (See FIGS. 1 and 2)
In addition, the stationary culture referred to herein means a minimum of about 0 to 2 per day.
Degree or about 1 to 2 times per hour
Shake and agitate the bottle to shake the reaction contents and promote the reaction.
And so on. And, the shaking culture and the stationary culture
The difference between the two is that static culture is better than shaking culture.
Is also the maximum absorption wavelength (λmax)
In this case, the color shifts to the longer wavelength side of
Direction.   Furthermore, the reaction of the method according to the related art
When performed in the presence of glucosidase, β-glucosidase
The amount of the enzyme used can be appropriately selected, for example, 0.01 to 1 m
g / ml, preferably 0.05-0.5 mg / ml
The reaction conditions are 20 to 50 ° C. (preferably 35 to 43
C) at a pH of about 4-9, under standing or shaking conditions.
Until the formation of a blue pigment enters a steady state, that is, 3 to 4
Incubate for days to produce a blue pigment. In addition,
The shaking conditions and the like in the shaking culture depend on the reaction by the microorganism.
Same as in the case.   By the way, the generated blue-based dye is
Heat the nutrient solution as it is (about 95 ° C or more under reflux in a water bath,
After about 15 minutes) or with organic solvent added
Heat (under reflux in a water bath, immediately after warming up to about 15 minutes) and lose enzyme
After performing live or microbial sterilization,
The nutrient solution is separated into solid and liquid by a known method such as centrifugation to obtain a liquid phase.
Separates pigments and solids (cells, precipitated pigments, etc.) dissolved in
And then dilute it as is or dilute as appropriate
Partial absorption spectrum and maximum absorption wavelength (λmax)
Λ of the resulting dyemaxAnd production
Can be specified. And if necessary, a suitable organic
Extracting the dye from the liquid phase and the solid phase using a solvent,
The λmaxAnd the amount of production (absorbance) can be measured
Wear. For example, from the liquid phase, such as n-butanol
Extract the pigment using an organic solvent that is not completely soluble in
After that, the maximum absorption wavelength (λmax) And absorbance
It can also be measured. On the other hand, from the solid phase, ethanol
Water, methanol, isopropanol, acetone, etc.
Solvent, the mixed solution or the organic solvent and the like and water
Arbitrary mixture (preferably 100 to 50 vol% aqueous solution)
The blue dye can be extracted using
Measure the absorption spectrum and determine the maximum absorption wavelength (λmaxMeasure)
And the λmaxMeasure the absorbance at the dye
Can be measured. (However, vol% is volume
Indicates the amount%. same as below)   The maximum absorption depends on the method of extracting the generated dye.
Collection wavelength (λmax) Value and absorbance change.
Revealed. That is, heat sterilization of microorganisms after the reaction
Alternatively, the blue dye produced by heat inactivation of the enzyme
Extraction method only (blue pigment remains in the precipitate
), And after adding an organic solvent, heat
Simultaneous sterilization of substances, inactivation of enzyme and extraction of produced pigment
Method [For example, add the same amount of ethanol (100%)
The solution was made into ethanol solution with a final concentration of 50 vol% and then added under reflux.
Heat to sterilize microorganisms or deactivate enzymes.
The blue dye generated at that time is replaced with the organic solvent (in this case, 50 v
ol% ethanol aqueous solution).
I do. As a result, the above is obtained more than the above
The maximum absorption wavelength (λmax) Is long wavelength and color
The color tone is lighter and the absorbance, which indicates pigment productivity, is higher.
It's gone. This is because the blue pigment produced is water-soluble
Exists as a precipitate outside the reaction system, and this precipitate
Is a blue dye that dissolves in organic solvents
As a considerable amount and dissolved in organic solvents
Toward the maximum absorption wavelength (λmax) Is a long wavelength
This suggests that there are many bright blue pigments.
available.   Furthermore, the blue pigment produced is in any case
Light, heat and pH, and is suitable for fading tests
It can withstand enough. <Example>   Next, the present invention will be described based on embodiments.
However, the present invention is not limited to these examples, and
Needless to say, there is no restriction by these examples
Nor. i) Preparation of Gardenia Fruit Iridoid Glycoside (A) Gardenia dried extract:   Commercial gardenia dried extract (Nippon Powder Co., Ltd.)
Use as it is. 2 g of this gardenia dried extract
The gel in the reaction solution dissolved in 98 ml of Lubein buffer (pH 6.8)
Niposide content was 0.18 wt%. (B) Preparation of X% Gardenia Decoction:   "Sanshishi powder (Gardenia crude drug name)" (Nippon Powder Co., Ltd.
Water is added to Xg at a ratio of 100 ml of water, and the water bath (about 95
℃) for 1 hour under reflux, followed by filtration and solid-liquid separation.
After that, the water in the filtrate is evaporated and evaporated to dryness.
Kilbane buffer (pH 6.8) was added to bring the total volume to 100 ml
Use something. The geniposide content of the 4% decoction is 2.02
mg / ml or about 0.2 wt%. (C) Preparation of 2% methanol extract of gardenia fruit:   Add 50 ml of methanol to 2 g of Sanshishi powder and leave in a water bath for 1 hour.
The mixture is heated under reflux, cooled and filtered, and the filtrate is evaporated to dryness.
This was dissolved in McIlvaine buffer (pH 6.8) and 10
0 ml. ii) A method for producing (manufacturing / producing) a blue pigment. (A) A method for producing (manufacturing) a blue pigment by lactic acid bacteria.   20 g of skim milk powder and the dried gardenia extract of i (a) above
(Geniposide content about 9%) 2 g of McKilbain buffer
(PH 6.8) The reaction solution to which 98 ml was added was mixed at about 95 ° C. in a water bath.
Immediately after reaching the warming temperature, sterilize by heating for about 30 minutes.
× 107~ 2.0 × 107Inoculate pcs / ml. Incubate still at 38 ° C (however,
And a minimum of about 0 to 2 times / day to a maximum of about 1 to 2 times / hour
The reaction solution was shaken and agitated at an appropriate ratio to culture. Hereinafter the same
Ji). After culturing for 72 to 96 hours, lactic acid bacteria are
Sterilized by heating at 95 ℃ for about 10 minutes, blue pigment by lactic acid bacteria
Ends the manufacturing process.   Thereafter, blue pigment is extracted from this reaction solution (culture solution).
Moved to the process. After sterilization, centrifuge the reaction solution.
Measure the visible spectrum using the liquid phase of (culture solution) as the dye solution.
The maximum absorption wavelength (λmax) And
The color tone and production of the dye
The amount is measured and the degree of lightening of the produced dye is compared and examined.
(Note that the results in Tables 1 to 4 are all
Of the aqueous solution (aqueous phase) as it is after solid-liquid separation of
Absorption wavelength (λmax) Are measured and compared. )   In addition, without using the gardenia dried extract
When using shi decoction, add 2 g of the gardenia dry extract
The cuticle was replaced with 98 ml of McKilbain buffer (pH 6.8).
Add 100ml of pear decoction as a reaction solution (culture solution)
Will be used. (B) Production of a blue pigment by β-glucosidase (manufactured by
Manufacturing and production) methods.   20 g of skim milk powder (5 for protein or protein degradation products)
g, 0.05 g to 0.2 g or 0.005 M to 0 for amino acids.
02 M (M = mol /), Gardenia Dried Extract 2g and Mackill
98 ml of Bain buffer (pH 6.8) was added, and the mixture was heated to about 95 ° C in a water bath.
Immediately after reaching the temperature, heat sterilize for about 30 minutes, then cool,
Add cosidase at a rate of 0.1 mg / ml and allow to stand
Approximately 0 to 2 times / day to a maximum of 1 to 2 times / hour
Includes agitation culture in which the solution (culture solution) is shaken and agitated. Less than
The reaction is performed for 48 hours to (72 hours) to 96 hours. Anti
After completion of the reaction, heat the mixture to about 95 ° C in a water bath for about 10 minutes to
Inactivate lucosidase and add blue to β-glucosidase
The color pigment production process is completed.   Thereafter, blue pigment is extracted from this reaction solution (culture solution).
Moved to the process. After inactivation of the enzyme,
The liquid phase (aqueous phase) of the reaction solution (culture solution) is
Maximum absorption wave of blue dye generated by measuring yield spectrum
Length (λmax) And by measuring the absorbance, the dye
The color tone and the production of are measured.   In addition, without using the gardenia dried extract
When using the decoction, the bluish color in the presence of the microorganism
2 g of gardenia dried extract
And 98 ml of McKilbain buffer (pH 6.8)
The reaction solution (culture solution) was prepared by adding 100 ml of the cinnamon decoction.
Will be used. (C) a method for reducing the water solubility of the produced blue dye,
The maximum absorption wavelength (λmaxRelationship with
Person in charge.   Reduce the water solubility of the blue dye produced
Ii) (a) and ii) (b)
In each reaction system of the pigment production process, food
By adding 10 wt%, 15 wt% and 20 wt% of salt (NaCl)
Decrease the water solubility of the blue dyes produced
On the other hand, a control without salt (0%) was set as a control.
And the blue color produced in each of the four reaction systems
Maximum absorption wavelength of dye (λmax) And half width,
Compare and study.   Table 1 shows various lactic acid bacteria and β-glucosidase.
From the visible absorption spectrum of the blue dye
The maximum absorption wavelength (λmax) And the production volume (absorption)
3 shows an example of a test result of (luminous intensity). The blue
The absorbance of the dye stock solution, which indicates the production amount of the color dye, is necessary.
The stock solution is diluted to an appropriate magnification according tomaxTo
After measuring the absorbance of the dye,
The figure shows the value obtained by calculating the absorbance of the stock solution.  From Table 1, it can be seen that Streptococcus (Strepto-coccu
s) Milk of the genus and Lacto-bacillus
Mycobacteria and β-glucosidase are the methods of this related art.
It turns out that it is effective for blue pigmentation.   FIG. 1 shows lactic acid bacteria (Streptococcus faecalis IFO 1296).
FIG. 5 is a diagram showing the state of the formation of a blue pigment over time according to 5).
The figure shows the generation of blue pigments over time by β-glucosidase
It is a figure showing a state. According to FIGS. 1 and 2,
The production of a blue pigment according to the present invention is carried out for 72 hours to 96 hours.
In between (3-4 days)
I have.   Next, Tables 2 to 4 show that an electrolyte [neutral salt
0% (no addition: control), 10 wt.
%, 15wt%, and 20wt%, respectively.
Reduce the water solubility of the blue dye produced
In the presence of microorganisms or β-glucosidase
Gardenia iridoid glycoside and containing the primary amino group
Formation of blue dye when reacted with compound (substance)
State (λmax, Half-width value, etc.).   Primary amino group-containing compounds in Tables 2 to 4
(Substance) and gardenia iridoid glycoside (geniposide)
The primary amino group-containing
When the compound (substance) is an amino acid or peptide
(Table 2) or non-dairy proteins or
In the case of white matter decomposition products or amino sugars (Table 3)
In the above and cases, β-glucosida
2 shows an example of the result of a reaction in the presence of sucrose. one
On the other hand, the primary amino group-containing compound (substance) is made of skim milk, etc.
Dairy-derived protein or its degradation products or
These metal salts and gardenia iridoid glycosides (genipo
(Table 4), the β-glu
Cosidase or the lactic acid bacterium (Streptococcus sp.
Or Lactobacillus sp.)
Examples of the results are shown.   From the results in Table 2 above, in the presence of β-glucosidase
In addition, the gardenia iridoid glycoside (containing substance) and
Produced by reaction with primary amino acids or peptides
The blue dye is produced by adding an electrolyte such as a neutral salt to the reaction system.
By lowering the solubility of the formed blue pigment,
The maximum absorption wavelength (λmax) Is 2 to 1
It shifts to the long wavelength side of about 5 nm,
Suggests. In particular, the primary amino acids involved in the reaction are
The less water-soluble, or the molecular weight is about 120 or more
Tends to produce brighter blue pigments
For example, leucine as a primary amino acid,
Isoleucine, methionine, histidine, phenylala
Nin, tyrosine, tryptophan, cysteine, etc.
When glutathione or the like is used as a peptide,
Maximum absorption wavelength (λmax) Is about 598nm or more
(About 598-605 nm)
You. Table 2 shows the maximum absorption of the blue dye produced.
Collection wavelength (λmax) Is a lightened dye of about 600nm or more.
The reason for this is that, as described above, the color
Even without the method of reducing the water solubility of the element,
The primary amino group-containing compound (substance) itself has low water solubility.
Use a material with a relatively high molecular weight (about 120 or less).
What can be achieved by using
Suggests at the same time.   Reducing the water solubility of the formed dye in the reaction system
As a result, the generated blue dye shifts to the longer wavelength side.
The mechanism of lightening is still unclear.
No, but reduces the water solubility of the blue dye produced
As a result, the produced blue pigment is
It is taken out of the reaction system as a precipitate, and further polymerization occurs.
A light-colored blue pigment with a uniform degree of polymerization is produced
Can be guessed. Of course, this invention
Nothing is constrained by such assumptions.   Also, from the results in Table 3 above, it can be seen that β-glucosidase is present.
In the presence, gardenia iridoid glycosides (contents
) And the primary amino group-containing compound (substance)
The blue dye produced is the primary amino group-containing
The compound (substance) is a non-dairy primary amino acid with a high molecular weight
Group-containing compounds (substances) such as peptides, proteins,
The protein degradation product or amino sugar can be produced.
Suggests that You have to be careful here
This means that when a protein digest is used, the
Amino acids with relatively small or highly soluble amino acids
If acids are mixed, the maximum absorption of the blue dye
Collection wavelength (λmax) Shifts to the short wavelength side, dark blue purple
Side to obtain the desired lightened blue pigment
It is a tendency to hinder.   Similarly, "yeast extract" used in Table 3,
“Peptone”, “Promois W-32 [(trade name) (product)
Name = collagen degradation product) (manufactured by Seiwa Chemical Co., Ltd.)]]
"Promois A (same as above)", "Promois E-118D [same as above]
Previous) ”, etc.
Because it contained a large amount of primary amino acids,
λmaxWith a low value, that is, a blue pigment that is not lightened
Can be assumed to have been generated or mixed.   Next, from the results in Table 4 above, β-glucosidase
Or gardenia iridoid in the presence of lactic acid bacteria
Glycosides (substances) and primary amino group-containing compounds (substances)
Blue) dye produced by the reaction with
Secondary amino group-containing substance is poorly soluble in water or high in molecular weight
When it is a primary amino group-containing compound (substance), even more
Suggests easy formation of lighter blue dyes
are doing. In particular, for example, primary amino group-containing compounds
Degreasing with low water solubility and high molecular weight as (substance)
Milk or the dairy protein degradation product or the various salts (metal
Salt) can be used effectively, and the blue dye produced
Absorption wavelength (λmax) Could not be obtained in the past 610
nm that can produce a very bright blue dye.
And suggests. This is defatting for the growth of lactic acid bacteria
It is also dusty with the assimilation of milk, especially for mass production of blue pigments.
And economical production. That is, β-glucosi
When using an enzyme such as dase, the enzyme itself is expensive.
In addition, collect the used enzyme once and use it several times.
Is extremely complicated and difficult to manage,
And blue dyes can be industrially produced in large quantities, and lactic acid bacteria
Has the advantage that it is much easier to manage
You.   By the way, Table 4 also includes the following:
Suggests. That is, a primary amino acid having a large molecular weight
When the group-containing compound (substance) is a dairy protein, for example,
In the case of using Kimmirum, dairy casein, etc., λmax= 6
Even when a bright blue color pigment with a wavelength of 00 nm or more was produced
Regardless, the same milk and casein
(Acid decomposition product) ”(λmax= 590 nm) and
Zein (Hamarstein method) ”(λ
max= 607nm) means λ of the blue pigmentmaxTo
Of the blue dye produced, such as a difference of about 17 nm
(Lightening) may be inferior.   By the way, the inventor used skim milk or dairy casein.
And iridoid glycosides (substances) in the presence of lactic acid bacteria
When a blue pigment is produced by the reaction,
More water-soluble, such as glycine, alanine or leucine
Is formed when an amino acid with a relatively small molecular weight is added
Maximum absorption wavelength (λmax)
2 to 17 nm shorter wavelength side than when no acid is added
We have gained the knowledge that there is a case where it may shift to.   And some of the results in Tables 2 and 4 are grade 1
Amino acids and pepti as amino group-containing compounds (substances)
And proteins, their degradation products and their
When using metal salts, etc., add salt to the reaction system
Of reduced water solubility of blue dyes
Below these are gardenia iridoid glycosides (containing substances)
Λ of the blue dye produced whenmaxYes
Even in the case of misalignment, the blue dye that has shifted to the longer wavelength side and has become brighter
It also suggests that there is a tendency to produce. (D) Blue color from reaction product (reaction solution or culture solution)
The extraction method of the pigment is λmaxAnd dye collection
Test example of effect on amount. A) Extraction conditions for blue dyes from the reaction solution (culture solution)
Solvent) is λ of the resulting blue dye.maxAnd color
Test example of effects on elementary yield.   The sample for extracting the blue pigment is described in ii) above.
Reaction solution (culture) obtained by the method (a) or ii) (b)
Liquid). That is, 20 g of skim milk powder and gardenia dry
Add 98 ml of McIlvaine buffer (pH 6.8) to 2 g of the dried extract.
Then, apply this to the specified conditions (about 95 ° C in a water bath,
Min) heat-sterilized and cooled, then inoculated with lactic acid bacteria, or
Add β-glucosidase and let stand for 72 to 96 hours
The reaction solution (culture solution) that has been cultured and reacted is used as a blue dye.
Use as a sample for extraction. Extraction condition:   Heat the reaction solution (culture solution) of the sample as it is in a water bath
(About 95 ° C, temperature about 10 minutes) by the enzyme (β-glucose)
Inactivate Sidase or kill the lactic acid bacteria and centrifuge
Of the blue dye in the liquid phase (aqueous phase)
Large absorption wavelength (λmax) And the amount of dye formation (λmaxIn
Absorbance). Extraction condition:   An appropriate amount of an organic solvent is added to the reaction solution (culture solution) of the sample.
(Single type of organic solvent or mixture of multiple types of organic solvent
Liquid) to a final organic solvent content of about 20-90 vol%
After heating to reflux in a water bath (delivered temperature about 10 minutes),
Inactivation of the enzyme or sterilization of lactic acid bacteria
The extracted blue dye was extracted into each of the above liquid phases, and then centrifuged.
In the case of a homogeneous liquid phase, the entire liquid phase and the liquid phase become two phases
When separating, maximum absorption wavelength of each organic solvent phase
max) And the amount of dye formation (λmaxAbsorbance at
Method to measure. (Note that when the liquid phase separates into two phases,
Liquid phase, or aqueous phase, is λmaxAnd absorbance
Not. ) The two are compared and examined.   In this example, as the organic solvent, for example,
If the following organic solvent is added to the reaction solution (culture solution),
The test was performed by adding only the amount. (A) 100% ethanol (final concentration after adding organic solvent is 5
0 vol% ethanol aqueous solution), (B) 100% isopropanol (final after addition of organic solvent)
The concentration is 50 vol% isopropanol aqueous solution), (C) Isobutanol / ethanol (50/50 v / v) mixture
liquid, (D) isobutanol / isopropanol (50/50 v /
v) mixture, (E) 100% n-butanol,   Table 5 shows the extraction conditions and the blue color according to the extraction conditions.
Maximum absorption wavelength (λmax) And the corresponding λmaxSucking in
This is a comparison table of luminous intensity (dye production amount), and shows the reaction solution of the sample.
Results when the same amount of the organic solvent was added to (culture solution)
This is an example.   Comparing the two, the extracted blue pigment
Maximum absorption wavelength (λmax) (603-625 nm) and (λ
maxDifferences in absorbance)
Was. That is, from Table 5, the above extraction conditions
Dye λmax, And its production (λmaxAbsorbance at
Degree) better than the extraction conditions, and
The extraction rate of the blue dye varies depending on the type of organic solvent
Respectively. Furthermore, the conclusion of Table 5
From the result, the light blue color was added to the residue of the extraction conditions.
Contains a considerable amount of base pigments, that is,
The blue dye is poorly soluble in water and often appears on the precipitate side of the reaction product.
This suggests that the amount has shifted. In addition, separately
When extracting with an aqueous ethanol solution, use ethanol
The longer the tool concentration, the longer the wavelength λmaxTurned out to show
Was. Further, FIG. 3 shows that n-
Visible absorption spectrum of blue dye
Indicate the coutle.B) Blue color that can obtain the pigment extraction conditions (extraction operation procedure, etc.)
Dye λmaxComparative example of the effect on air. [Preparation of sample (reaction solution)]   The test sample (reaction solution / culture solution) is as described in ii) (d) a) above.
Use the reaction solution (culture solution) prepared by the same method as described.
You. [Example of first extraction method] (See FIG. 4)   The reaction solution (culture solution) is sterilized by heating in a water bath (approx.
Use for about 10 minutes. Heat sterilized anti
The reaction solution is separated into solid and liquid by centrifugation, and the first supernatant (aqueous layer)
(L-1) and the first residue (R-1). The said
1 λ of supernatant (L-1)maxWas 603 nm. The first
Add 50 vol% ethanol aqueous solution to the residue (R-1) and dye
, And then separated into a solid and a liquid to obtain a second supernatant (L-2).
It is separated from the second residue (R-2). The second supernatant (L
-2) λ of 50% ethanol extractmaxIs 610nm
Was. Further, 2N caustic acid was added to the second residue (R-2).
Extract by adding Lucari (caustic soda), then solid-liquid separation
To obtain a third supernatant (L-3) and a third residue (R-3).
You. Λ of the third supernatant (L-3)maxWas 600 nm. What
No blue pigment was observed in the third residue.
Was.   Extraction conditions for blue dye from reaction solution (culture solution) (extraction
) Of the dye to be extractedmax
Is found to be affected. Fig. 4 shows the first extraction method
(Example) shows the extraction operation procedure and the like. Λ in the figuremax
Extracted the dye from the sample (reaction solution / culture solution)
Λ of each extractmaxIt shows a comparative example of
Depending on the type of organic solvent used,max
This suggests that a difference occurs.   From the result of the first example of the extraction method, the light blue
Regarding the order of the dyes, the first place was 50% of the first residue (R-1).
The extraction part of the aqueous solution of tanol, the second place is the first supernatant (L-
1) The third place is 2N caustic saw in the second residue (R-2).
Extract, and each extract has its λmaxValue is 600
nm or more. And the polarity of the solvent for extraction is small
The lighter (ie, λmaxBlue color with large value)
This suggests that elements tend to be extracted. iii) the lightened natural blue color produced by this invention
Stability test results of dyes. (A) Light and heat stability of the generated blue dye
Sex test results. 〔Test method〕   The blue dye produced according to the present invention is
Matography (filler: silica gel, eluent: ethanol)
And ethanol aqueous solution).
After eluting the contaminant dye (yellow dye) with 100%, 70 vol%
Eluted ethanol and 50 vol% ethanol
You. 70 vol% ethanol elution part (70% EtOH elution part)
max= 602 nm) and 50 vol% ethanol elution part (50
% EtOH elution part) (λmax= 601 nm)
Dilute with each aqueous ethanol solution of the same concentration and adjust the absorbance value.
Adjust to 0.2-0.5 each, and use the fading tester (Mitsubishi
(Modem MH-1, Xenon lamp, manufactured by Kiki Co., Ltd.)
Irradiate for up to 4 hours to fade. Each measurement setting at this time
After hours (0 hours, 1 hour, 2 hours, 4 hours)
Λ of each samplemaxAfter measuring the absorbance at
The rate is determined by calculation. The fading rate is determined based on each set measurement.
The absorbance value at the fixed time
It is calculated as a value (%) divided by each absorbance value. In addition,
As a comparative control, Blue No. 1 (dye) (λmax= 625 nm)
Used. Table 6 shows examples of the results of this fading test.   From the results in Table 6, it can be seen that the blue color produced by the present invention
Pigments are used for foods and drinks, luxury goods, health pharmaceuticals and
Representative of a wide range of applications such as cosmetics
What does the fading test compare to the stable Blue No. 1?
It indicates that it is excellent in fading without being inferior
You. Therefore, the light blue color system according to the present invention
Dyes are used for foods and drinks, luxury goods, health pharmaceuticals and fragrances.
Widely applicable to various uses such as cosmetics
Extremely useful. During the fading test,
No color change of each test sample was observed by visual observation
Was. (B) Test results of resistance of the produced blue dye to pH
Fruit. (Sample preparation method)   Skim milk and dried gardenia extract are combined with lactic acid bacteria (Streptoc
occus faecalis IFO 12965) in the presence of [ii)
(A) The blue dye (λmax= 603nm)
Is used as a sample. 〔Test method〕   McKilbain buffer and 40% ethanol
Each pH in Kilbane buffer (each set pH = 4.03, 5.0
7, 5.97, 6.80 (standard), 7.95, 9.07)
Collection wavelength (λmax) And absorbance are measured,
Of resistance test result of pH of blue dyes produced
Are shown in Table 7.   From the results in Table 7, generated by the method according to the present invention
Blue dyes are converted from alcoholic acidic to alkaline
Suggests that it is stable over a wide range of
Widely used in foods, luxury goods, health pharmaceuticals, cosmetics, etc.
It suggests that the compound can be used. Each of these settings
Visual observation of this sample in the resistance test to constant pH
No color change was observed. <Effect of the Invention>   The present invention relates to iridoid glycosides of Gardenia plants (including
Β) and a primary amino group-containing compound (substance)
Presence of glucosidase or β-glucosidase producing bacteria
In the method of producing a blue dye by reacting in the presence,
For example, adding an electrolyte such as neutral salt such as salt to the reaction system
By reacting, the reaction system is
Reaction under the conditions of reduced system
Bright coloration that was previously not available just by producing pigments
Blue dye (λmax= 600-625 nm) for easy mass production
it can. In addition, the method of the present invention can
Reaction conditions such as temperature, reaction time and stirring conditions of the reaction solution
Strict control and complicated separation and purification steps of the produced dye
Not required at all, lighter blue dyes are cheaper and easier
Excellent to achieve the object of invention, such as mass production
It works.

【図面の簡単な説明】 第1図は乳酸菌による青色系色素の経時的生成状態を示
す図、第2図はβ−グルコシダーゼによる青色系色素の
経時的生成状態を示す図である。 第3図は反応液(培養液)からn−ブタノールにより抽
出された青色系色素の可視部吸収スペクトルを示す図で
ある。 第4図は反応液(培養液)からの青色系色素の抽出方法
に関する一実施例(第1抽出方法)の抽出操作手順を示
す図である。
BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS FIG. 1 is a diagram showing the state of the generation of a blue pigment by lactic acid bacteria over time, and FIG. 2 is a diagram showing the state of the generation of a blue pigment by β-glucosidase over time. FIG. 3 is a diagram showing a visible absorption spectrum of a blue pigment extracted from a reaction solution (culture solution) with n-butanol. FIG. 4 is a diagram showing an extraction operation procedure of an embodiment (first extraction method) relating to a method of extracting a blue pigment from a reaction solution (culture solution).

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C12P 1/00 A23L 1/275 C09B 61/00 ──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (58) Field surveyed (Int. Cl. 7 , DB name) C12P 1/00 A23L 1/275 C09B 61/00

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】 1.β−グルコシダーゼ若しくはβ−グルコシダーゼ産
生菌の存在下、クチナシ属植物のイリドイド配糖体若し
くは当該含有物質と第1級アミノ基含有化合物若しくは
第1級アミノ基含有物質とを反応させて青色系色素を製
造する方法において、 当該反応系に当該濃度が10重量%以上30重量%以下の範
囲となるように電解質を添加して、生成する青色系色素
の水溶解性を減少させた条件の下で反応させることを特
徴とする明色化された天然青色系色素の製造方法。 2.前記電解質が無機塩である特許請求の範囲第1記載
の明色化された天然青色系色素の製造方法。 3.明色化された天然青色系色素の可視部最大吸収波長
が600〜625nmである特許請求の範囲第1記載の明色化さ
れた天然青色系色素の製造方法。
(57) [Claims] In the presence of β-glucosidase or a β-glucosidase-producing bacterium, an iridoid glycoside of a Gardenia plant or a substance containing the same is reacted with a primary amino group-containing compound or a primary amino group-containing substance to form a blue dye. In the production method, an electrolyte is added to the reaction system so that the concentration is in the range of 10% by weight or more and 30% by weight or less, and the reaction is carried out under conditions in which the water solubility of the resulting blue dye is reduced. A method for producing a lightened natural blue-based pigment, characterized in that: 2. The method according to claim 1, wherein the electrolyte is an inorganic salt. 3. 2. The method for producing a lightened natural blue dye according to claim 1, wherein the light-emitting natural blue dye has a visible maximum absorption wavelength of 600 to 625 nm.
JP62335289A 1987-12-30 1987-12-30 Method for producing lightened natural blue pigment Expired - Lifetime JP3057369B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP62335289A JP3057369B2 (en) 1987-12-30 1987-12-30 Method for producing lightened natural blue pigment

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP62335289A JP3057369B2 (en) 1987-12-30 1987-12-30 Method for producing lightened natural blue pigment

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPH01179690A JPH01179690A (en) 1989-07-17
JP3057369B2 true JP3057369B2 (en) 2000-06-26

Family

ID=18286855

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP62335289A Expired - Lifetime JP3057369B2 (en) 1987-12-30 1987-12-30 Method for producing lightened natural blue pigment

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP3057369B2 (en)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2000053544A (en) * 1998-08-06 2000-02-22 Kimi Kasei Kk Hair dye composition
WO2003029358A1 (en) * 2001-09-28 2003-04-10 San-Ei Gen F.F.I., Inc. Colorant preparation of blue cape jasmine colorant with improved color tone
JP2007173089A (en) * 2005-12-22 2007-07-05 Sdk Kk Parallel cord and portable audio equipment using it
US8557319B2 (en) * 2008-03-28 2013-10-15 Wild Flavors, Inc. Stable natural color process, products and use thereof
FR2943247B1 (en) * 2009-03-20 2012-11-30 Natura Cosmeticos Sa PROCESS FOR OBTAINING INSOLUBLE SUBSTANCES FROM PRECIPITATES OF GENIPAP EXTRACT, SUBSTANCES THUS OBTAINED AND USES THEREOF
JP2011217728A (en) * 2010-03-25 2011-11-04 Riken Vitamin Co Ltd Gardenia red coloring matter and method for producing the same
KR101054624B1 (en) * 2010-04-20 2011-08-04 미츠이 세이토 가부시키가이샤 Manufacturing method of red pigment and food and drink containing this red pigment
IN2014CN04069A (en) 2011-11-07 2015-10-23 Wild Flavors Inc
US20220232864A1 (en) * 2019-04-16 2022-07-28 Glico Nutrition Co., Ltd. Gardenia blue pigment and method for producing the same
EP4206288A1 (en) * 2020-08-28 2023-07-05 Glico Nutrition Co., Ltd. Blue pigment and method for producing same

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5253934A (en) * 1975-10-29 1977-04-30 Taito Kk Preparation of pigment composition
JPS5253932A (en) * 1975-12-29 1977-04-30 Taito Kk Preparation of colored product
JPS5692792A (en) * 1979-07-24 1981-07-27 T Hasegawa Co Ltd Preparation of natural blue pigment in brightened color

Also Published As

Publication number Publication date
JPH01179690A (en) 1989-07-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ito et al. Products of “low-iron fermentation” with Bacillus subilis: isolation, characterization and synthesis of 2, 3-dihydroxybenzoylglycine1, 2
Esquivel Betalains
JP3057369B2 (en) Method for producing lightened natural blue pigment
Carvalho et al. Production of Monascus biopigments: an overview
Broder et al. Pigments produced by Monascus purpureus with regard to quality and quantity
WO2006082922A1 (en) Gardenia blue colorant with improved color tone and method of producing the same
CN116063863A (en) Natural coloring agent and method for producing same
Sailer et al. Nitrogen-15-and carbon-13-labeled media from Anabaena sp. for universal isotopic labeling of bacteriocins: NMR resonance assignments of leucocin A from Leuconostoc gelidum and nisin A from Lactococcus lactis
EP2481798B1 (en) Aspergillus non-inherited genetic variant having enhanced protease activity, and a production method for a natural flavour enhancer employing the same
KR20010096213A (en) Process for Preparing Blue Pigment from Gardenia jasminoides
US6132791A (en) Natural red sunflower anthocyanin colorant with naturally stabilized color qualities, and the process of making
WO2003029358A1 (en) Colorant preparation of blue cape jasmine colorant with improved color tone
DK143906B (en) PROCEDURE FOR THE PREPARATION OF AMYLASE BY CULTIVATION OF A STREPTOMYCY STOCK IN A NUTRITIONAL SUBSTANCE CONTAINING CARBON AND NITROGEN SOURCES
JP2003268254A (en) Method for producing monascus pigment by fermentation method
CN1318568C (en) Protein peptone and production thereof
US4870172A (en) Bisucaberin
WO2017217527A1 (en) Red dye composition derived from iridoid compound, and method for producing same
JP6969940B2 (en) Iridoid compound-derived red pigment composition and its production method
WO2011016634A2 (en) Method for producing rice wine improved by the use of paprika, and rice wine produced thereby
US4014860A (en) Plasminostreptin (enzyme inhibitor) and method for producing it from streptomyces
JPS6147514B2 (en)
KR920001203B1 (en) Method of fermentation of soy sauce
KR20160047117A (en) Process for preparing functional vinegar using soybean mejoo
GB1594803A (en) Antimicrobial substance c-3603 and process for preparing the same by cultivating a microorganism of the genus streptococcus
WO2014054292A1 (en) Red colorant and process for producing same

Legal Events

Date Code Title Description
R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

EXPY Cancellation because of completion of term
FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20080421

Year of fee payment: 8