JP2792091B2 - Method for producing 1-acyl-lysophosphatidylcholine - Google Patents

Method for producing 1-acyl-lysophosphatidylcholine

Info

Publication number
JP2792091B2
JP2792091B2 JP1090868A JP9086889A JP2792091B2 JP 2792091 B2 JP2792091 B2 JP 2792091B2 JP 1090868 A JP1090868 A JP 1090868A JP 9086889 A JP9086889 A JP 9086889A JP 2792091 B2 JP2792091 B2 JP 2792091B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
lysophosphatidylcholine
acyl
pancreatin
phosphatidylcholine
chloroform
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
JP1090868A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPH02270890A (en
Inventor
英彦 日比野
信雄 福田
理 仲地
敏夫 村松
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
NIPPON YUSHI KK
Original Assignee
NIPPON YUSHI KK
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by NIPPON YUSHI KK filed Critical NIPPON YUSHI KK
Priority to JP1090868A priority Critical patent/JP2792091B2/en
Publication of JPH02270890A publication Critical patent/JPH02270890A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP2792091B2 publication Critical patent/JP2792091B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Description

【発明の詳細な説明】 (産業上の利用分野) 本発明は、化学合成して得た単酸基ジアシルホスファ
チジルコリンを原料として、位置特異的脱アシル化によ
り1−アシル−リゾホスファチジルコリンを製造する方
法に関する。
The present invention relates to a method for producing 1-acyl-lysophosphatidylcholine by regiospecific deacylation using monoacid diacylphosphatidylcholine obtained by chemical synthesis as a raw material. About.

(従来の技術) 1−アシル−リゾホスファチジルコリンのSn−2位に
アラキドン酸やエイコサペンタエン酸が結合したホスフ
ァチジルコリンは、生体内のエイコサノイド前駆体の貯
蔵庫となる事から、この1−アシル−リゾホスファチジ
ルコリンは医薬品分野で重要な物質である。
(Prior Art) Phosphatidylcholine in which arachidonic acid or eicosapentaenoic acid is bonded to the Sn-2 position of 1-acyl-lysophosphatidylcholine serves as a storage of eicosanoid precursors in a living body. It is an important substance in the pharmaceutical field.

この1−アシル−リゾホスファチジルコリンは天然に
も少量存在するが、従来、次のような方法により調製さ
れている。
Although 1-acyl-lysophosphatidylcholine is present in a small amount in nature, it has been conventionally prepared by the following method.

エム・ケイツ:脂質研究法、生化学実験法5、255
頁、東京化学同人社、1975、東京 奥山治美、村瀬茂雄:蛋白質核酸酵素、32,267,1987 ジー・エイチ・デハスら:Biochim.Biophys.Acta,159,
105,1968 リン脂質の酵素分解方法(特開昭63−44893号) リゾレシチンの製造法(特開昭63−225388号) しかるに上記の従来の調整法のうち、の方法は、処
理量が5mgと少量であり、しかも非常に高価な蛇毒を用
いて加水分解している。さらに未反応のホスファチジル
コリンが認められている。この方法を改良し、卵黄ホス
ファチジルコリン数百mgを10mgのハブ毒で処理する方法
も提案されているが、反応生成物中の未反応のホスファ
チジルコリンを除去する問題は解決されていない。の
方法は、処理量が1mg以下と少量であり、しかもより高
価である蛇毒起源のホスホリパーゼA2を使用しても1−
アシル−リゾホスファチジルコリンの収集率は85%が限
界である。の方法は、卵黄を基質として1mg程度の少
量を処理し、前述と同様、高価な豚膵臓を起源とするホ
スホリパーゼA2を使用している。の方法は、リン脂質
又はリン脂質と油脂の混合物を基質として、高価な豚膵
臓を起源とするホスホリパーゼA2を使用してリゾリン脂
質へ80〜90%変換させているが、ホスファチジルコリン
自身の変換率や生成されるリゾホスファチジルコリンの
立体特異性は不明である。の方法は、リゾホスファチ
ジルコリンの化学合成による製造法であるが、反応生成
物中から除去し難い触媒や高沸点溶媒が併存する問題が
ある。
M. Kates: Lipid Research Methods, Biochemical Experimental Methods 5, 255
Page, Tokyo Chemical Dojinsha, 1975, Tokyo Harumi Okuyama, Shigeo Murase: Protein Nucleic Acid Enzyme, 32 , 267, 1987 G.H. Dehas et al .: Biochim. Biophys. Acta, 159 ,
105,1968 Enzymatic degradation method of phospholipids (JP-A-63-44893) Production method of lysolecithin (JP-A-63-225388) However, among the above-mentioned conventional preparation methods, the method of It is hydrolyzed using small and very expensive snake venom. In addition, unreacted phosphatidylcholine is observed. An improved method has been proposed in which several hundred mg of yolk phosphatidylcholine is treated with 10 mg of hub venom, but the problem of removing unreacted phosphatidylcholine in the reaction product has not been solved. The method, throughput is as small as less 1 mg, yet be used phospholipase A 2 snake venom origin are more expensive 1-
Acyl-lysophosphatidylcholine collection is limited to 85%. Method, the egg yolk was treated with a small amount of about 1mg as a substrate, similar to the above, using phospholipase A 2 originating expensive porcine pancreas. Method, a mixture of phospholipids or phospholipid and oil as a substrate, but is made to convert 80-90% into lysophospholipids using phospholipase A 2 originating expensive pig pancreas, phosphatidylcholine own conversion And the stereospecificity of the lysophosphatidylcholine produced are unknown. Is a method for producing lysophosphatidylcholine by chemical synthesis, but it has a problem that a catalyst and a high boiling point solvent which are difficult to remove from the reaction product coexist.

(発明が解決しようとする課題) 前記のような方法では処理できる量が少なく、入手の
難しい高価な加水分解酵素を使用しなければならず、反
応生成物も純粋なものが得難く大量生産できないという
難点があった。
(Problems to be Solved by the Invention) In the above-mentioned method, the amount that can be treated is small, and it is necessary to use an expensive hydrolase that is difficult to obtain, and it is difficult to obtain a pure reaction product and mass production is not possible. There was a drawback.

従って現在、入手が容易で安価な天然起源の酵素を利
用し、工業的に大量生産が可能で、しかも反応生成物の
分取が容易な1−アシル−リゾホスファチジルコリンの
製造法が求められている。
Therefore, at present, there is a need for a method for producing 1-acyl-lysophosphatidylcholine that can be mass-produced industrially by using an easily available and inexpensive enzyme of natural origin and that allows easy separation of the reaction product. .

本発明は、位置特異性を有する天然起源の安価な酵素
を用いることにより、化学合成して得た単酸基ジアシル
ホスファチジルコリンを加水分解して、純粋な1−アシ
ル−リゾホスファチジルコリンを工業的に大量生産する
新規な方法を提供しようとするものである。
The present invention hydrolyzes a monoacid diacylphosphatidylcholine obtained by chemical synthesis by using an inexpensive enzyme of natural origin having regiospecificity to produce a large amount of pure 1-acyl-lysophosphatidylcholine industrially. It seeks to provide a new way of producing.

(課題を解決するための手段) 本発明は、エステル化触媒(ピリジン誘導体または第
三アミン)の存在下に化学合成して得た単酸基ジアシル
ホスファチジルコリンを中性アルミナカラム処理した
後、パンクレアチンを用いて加水分解することを特徴と
する1−アシル−リゾホスファチジルコリンの製造方法
である。
(Means for Solving the Problems) The present invention provides a method for producing a monoacid group diacylphosphatidylcholine obtained by chemically synthesizing in the presence of an esterification catalyst (pyridine derivative or tertiary amine), followed by treating with a neutral alumina column, followed by pancreatin A method for producing 1-acyl-lysophosphatidylcholine, characterized by hydrolyzing with use of

本発明に用いる酵素は、入手が容易で非常に安価なパ
ンクレアチンであり、この酵素を用いて加水分解反応す
ることにより、単酸基ジアシルホスファチジルコリンの
Sn−2位の脱アシル化を選択的に進行させると共に、高
い変換率で1−アシル−リゾホスファチジルコリンに変
換させることができる。
The enzyme used in the present invention is pancreatine, which is easily available and very inexpensive, and is subjected to a hydrolysis reaction using this enzyme to produce a monoacid group diacylphosphatidylcholine.
The deacylation at the Sn-2 position can be selectively advanced, and can be converted to 1-acyl-lysophosphatidylcholine at a high conversion rate.

以下、本発明の1−アシル−リゾホスファチジルコリ
ンの製造方法について、詳述する。
Hereinafter, the method for producing 1-acyl-lysophosphatidylcholine of the present invention will be described in detail.

本発明における加水分解方法は、化学合成した単酸基
ジアシルホスファチジルコリンにアルミナカラム処理を
施した後、その1部を50〜500部の有機溶媒に溶解し、
これに例えば塩化カルシウム溶液10〜30部とホウ酸ナト
リウム溶液10〜30部、及びパンクレアチン0.5〜2.0部を
添加して反応させる。このパンクレアチンとしては、リ
パーゼ含量の高い豚膵臓起源のものが望ましい。
In the hydrolysis method of the present invention, after subjecting a chemically synthesized monoacid group diacylphosphatidylcholine to an alumina column treatment, one part thereof is dissolved in 50 to 500 parts of an organic solvent,
For example, 10 to 30 parts of a calcium chloride solution, 10 to 30 parts of a sodium borate solution, and 0.5 to 2.0 parts of pancreatin are added and reacted. As this pancreatin, one derived from swine pancreas having a high lipase content is desirable.

また、反応時のpHは5〜9が好ましく、さらには、6
〜8が適しており、添加されるホウ酸ナトリウム溶液は
0.01〜1M、塩化カルシウム溶液は0.1Mトリス/塩酸緩衝
液に塩化カルシウムを2〜200mMの濃度の範囲になるよ
う調整したものを添加することが好ましい。反応は10〜
80℃、好ましくは20〜50℃で行うのが良く、反応中は高
速撹拌を行い、3〜24時間反応させるのがよい。
The pH during the reaction is preferably 5 to 9, and more preferably 6 to 9.
-8 are suitable, and the added sodium borate solution is
It is preferable to add 0.01 to 1 M calcium chloride solution prepared by adjusting calcium chloride to a concentration of 2 to 200 mM to 0.1 M Tris / HCl buffer. Reaction is 10 ~
The reaction is carried out at 80 ° C., preferably at 20 to 50 ° C., and it is preferable to carry out high-speed stirring during the reaction and to carry out the reaction for 3 to 24 hours.

本発明において用いる化学合成した単酸基ジアルホス
ファチジルコリンは、例えばグリセロホスホコリン1モ
ルに対して、特定脂肪酸の無水物またはハロゲン化物3.
5〜6モルを、ピリジン誘導体または第三アミン、例え
ばジメシルアミノピリジンやトリイソプロピルアミン等
から選ばれるエステル化触媒の存在下に、非プロトン性
高極性溶媒、例えばジメチルスルホキシド、ヘキサメト
キシホスホロアミド等の中で反応させることによって得
られる。これらのホスファチジルコリンから得られる1
−アシル−リゾホスファチジルコリンの脂肪酸種は、こ
の反応時に使用する脂肪酸の無水物やハロゲン化物の分
子種の選択により任意に選択出来る。脂肪酸としては炭
素数12〜24の脂肪酸が好ましく、飽和のものでも不飽和
のものでもよい。
The chemically synthesized monoacid group dialphosphatidylcholine used in the present invention is, for example, an anhydride or a halide of a specific fatty acid with respect to 1 mol of glycerophosphocholine.
5 to 6 mol of an aprotic highly polar solvent such as dimethyl sulfoxide, hexamethoxyphosphoramide in the presence of a pyridine derivative or an esterification catalyst selected from tertiary amines such as dimesylaminopyridine and triisopropylamine And the like. 1 obtained from these phosphatidylcholines
The fatty acid species of the acyl-lysophosphatidylcholine can be arbitrarily selected by selecting the molecular species of the anhydride or halide of the fatty acid used in this reaction. The fatty acid is preferably a fatty acid having 12 to 24 carbon atoms, and may be a saturated or unsaturated fatty acid.

本発明においては、原料である化学合成した単酸基ジ
アシルホスファチジルコリンのパンクレアチンによる分
解率を向上するために、アルミナカラム処理を行うもの
である。市販のアルミナには、乾燥用、薄層クロマトグ
ラフィー用、カラムクロマトグラフィー用、酵母細胞や
微生物の分解用及び高い吸着容量を持つ特別活性化ゲル
等があるが、本発明にはカラムクロマトグラフィー用の
ものが好ましい。カラムクロマトグラフィー用のアルミ
ナには酸性、塩基性及び中性のタイプの活性ゲルがある
が、リン脂質が一般に塩基に弱い結合を示す点と酸性処
理したものは溶質の化学変化を起こす点から中性アルミ
ナが好ましい。アルミナの活性度は水の含有量によって
変化し、その保持容量が低下するので、使用前には充分
乾燥し、アルミナの水の含量を3%未満にまで減少さ
せ、ブロックマン活性度Iに調整してから使用するのが
より好ましい。
In the present invention, an alumina column treatment is performed in order to improve the decomposition rate of chemically synthesized monoacid group diacylphosphatidylcholine as a raw material by pancreatin. Commercially available alumina includes drying, thin-layer chromatography, column chromatography, decomposition of yeast cells and microorganisms, and a special activated gel having a high adsorption capacity. Are preferred. Alumina for column chromatography includes acidic, basic, and neutral types of active gels.However, phospholipids generally show weak bonds to bases, and those subjected to acidic treatment are considered to cause chemical changes in solutes. Alumina is preferred. Since the activity of alumina changes depending on the water content and its retention capacity decreases, it is sufficiently dried before use to reduce the water content of alumina to less than 3% and adjusted to Brockmann activity I. It is more preferable to use after that.

カラムクロマトグラフィー用のアルミナとして使用出
来る市販品は、シグマ・ケミカル社製のアルミナ、活性
度I(pfs)WN−3型、中性;ICNバイオメディカルス社
製の酸化アルミニウム90、活性型、中性、活性度I;イー
・メルク・エイ・ジー製の酸化アルミニウム90、活性
型、中性、活性度I;アルドリッヒ・ケミカル・カンパニ
ー製の酸化アルミニウム、活性型、中性、活性度I;ジャ
ンセン・シミカ製の酸化アルミニウム、活性型、中性;
等が挙げられる。
Commercial products that can be used as alumina for column chromatography include alumina manufactured by Sigma Chemical Co., activity I (pfs) WN-3 type, neutral; aluminum oxide 90 manufactured by ICN Biomedicals, active type, and Properties, activity I; aluminum oxide 90 manufactured by E. Merck AG, active type, neutral, activity I; aluminum oxide manufactured by Aldrich Chemical Company, active type, neutral, activity I; Jansen・ Simika aluminum oxide, activated, neutral;
And the like.

アルミナカラム処理は次のように行うのが好ましい。
まず、合成ホスファチジルコリン1重量当り20〜50重量
部の中性アルミナをクロロホルムに懸濁してカラムに充
填し、クロロホルムで充分にコンディショニングを行っ
て、微細なアルミナ断片を除去してアルミナカラムを調
製する。次いで合成ホスファチジルコリンをクロロホル
ム溶液としてカラムに対し、クロロホルム、次いでクロ
ロホルム/メタノール混液で流出させる。この方式によ
り、非常に短時間に収率80〜95%でホスファチジルコリ
ンを回収することができる。この様にして得られたアル
ミナカラム処理した合成ホスファチジルコリンと、アル
ミナ未処理の合成ホスファチジルコリンを、一定量のパ
ンクレアチンで加水分解すると、未処理品に比べて処理
品の1−アシル−リゾホスファチジルコリンの収率は約
2割向上した。
The alumina column treatment is preferably performed as follows.
First, 20 to 50 parts by weight of neutral alumina per 1 weight of synthetic phosphatidylcholine is suspended in chloroform, filled in a column, and sufficiently conditioned with chloroform to remove fine alumina fragments to prepare an alumina column. Next, the synthetic phosphatidylcholine is eluted with chloroform as a chloroform solution and then with chloroform and then with a mixed solution of chloroform / methanol. By this method, phosphatidylcholine can be recovered in a very short time with a yield of 80 to 95%. When the thus obtained synthetic phosphatidylcholine treated with an alumina column and synthetic phosphatidylcholine not treated with alumina are hydrolyzed with a fixed amount of pancreatin, the yield of 1-acyl-lysophosphatidylcholine of the treated product is higher than that of the untreated product. The rate improved by about 20%.

本発明に使用されるパンクレアチンは、例えば豚膵臓
起源のものを用いることができ、アミラーゼ、トリプシ
ン、リパーゼ、リボヌクレアーゼ及びプロテアーゼ等の
多くの酵素を含んでいる。市販のパンクレアチンは、そ
の構成酵素のアミラーゼ、プロテアーゼ及びリパーゼの
活性をアメリカ薬剤処方一覧やアメリカ薬局方に従って
測定しクラス別されている。本発明に使われるパンクレ
アチンは、特にアミラーゼの活性をアメリカ薬局方で測
定した結果により、力価等量×1、力価等量×3、力価
等量×4、力価等量×8とクラス別されているものが好
ましい。尚、医薬用の消化酵素剤のパンクレアチンは希
釈剤にデキストリン、ラクトース及び砂糖等が添加され
て力価が低下しているため不適である。
Pancreatin used in the present invention can be, for example, of pancreatic origin and contains many enzymes such as amylase, trypsin, lipase, ribonuclease and protease. Commercially available pancreatin is classified according to its constituent enzymes, amylase, protease and lipase activities, measured according to the American Pharmaceutical Prescription List and the United States Pharmacopeia. The pancreatin used in the present invention is, in particular, a titer equivalent × 1, a titer equivalent × 3, a titer equivalent × 4, and a titer equivalent × 8 according to the results of measuring the activity of amylase in the United States Pharmacopeia. And those classified by class are preferred. In addition, pancreatin, which is a digestive enzyme preparation for pharmaceutical use, is not suitable because dextrin, lactose, sugar and the like are added to a diluent and the titer is lowered.

パンクレアチンとして使用出来る市販品は、シグマ・
ケミカル・カンパニー製の豚膵臓由来パンクレアチン
(Activity 1×U.S.P.specification,Activity 3×U.S.
P.specification,Activity 4×U.S.P.specification,Ac
tivity 8×U.S.P.specification)、東京化成製の豚膵
臓由来パンクレアチン(Activity 4×JP)、関東化学製
のパンクレアチン、石津製薬製の化学用パンクレアチ
ン、純正化学製のパンクレアチン等が挙げられる。
Commercial products that can be used as pancreatin include Sigma
Pancreatin derived from pig pancreas manufactured by Chemical Company (Activity 1 × USPspecification, Activity 3 × US
P.specification, Activity 4 × USPspecification, Ac
tivity 8 × USPspecification), pancreatin derived from pig pancreas (Activity 4 × JP) manufactured by Tokyo Kasei, pancreatin manufactured by Kanto Chemical, pancreatin for chemicals manufactured by Ishizu Pharmaceutical, pancreatin manufactured by Junsei Chemical, and the like.

本発明により、合成単酸基ジアシルホスファチジルシ
ルコリンをパンクレアッチンで加水分解して得られる反
応生成物は、デカンテーションやアセトン分別などの操
作によって容易に1−アシル−リゾホスファチジルコリ
ンと脂肪酸とに分離することが出来る。
According to the present invention, a reaction product obtained by hydrolyzing synthetic monoacid group diacylphosphatidylsylcholine with pancreatin can be easily separated into 1-acyl-lysophosphatidylcholine and fatty acids by operations such as decantation and acetone fractionation. I can do it.

(発明の効果) 本発明により、非常に高価なホスホリパーゼA2を使わ
ず、工業的に入手可能で非常に安価なパンクレアチンを
用いて、合成ホスファチジルコリンから純粋な1−アシ
ル−リゾホスファチジルコリンを大量に製造することが
出来る。従って、生体内で様々な生物活性を示す1−ア
シル−リゾホスファチジルコリンを容易に入手すること
が出来る。本発明により得られる1−アシル−リゾホス
ファチジルコリンは、そのSn−2位に多価不飽和脂肪酸
を組み込んだ混酸基ジアシルホスファチジルコリンの原
料などとして医薬品や化粧分野などにおいて広く利用さ
れうるものである。
The present invention (Effect of the Invention), without using very expensive phospholipase A 2, using a very inexpensive pancreatin industrially available, pure 1-acyl synthetic phosphatidylcholine - lysophosphatidylcholine a large amount Can be manufactured. Therefore, 1-acyl-lysophosphatidylcholine having various biological activities in vivo can be easily obtained. The 1-acyl-lysophosphatidylcholine obtained according to the present invention can be widely used in the field of pharmaceuticals and cosmetics as a raw material of mixed acid diacylphosphatidylcholine having a polyunsaturated fatty acid incorporated at the Sn-2 position.

(実施例) 以下、実施例に基づき本発明を具体的に説明する。
尚、各例中、%は重量基準である。
(Examples) Hereinafter, the present invention will be specifically described based on examples.
In each case,% is based on weight.

参考例1 アルミナカラム処理 ICNバイオメディカルス社製のカラムクロマトグラフ
ィー用中性活性型酸化アルミニウム(活性度I、70〜29
0メッシュASTM、粒径0.05〜0.02mm、pH7.5、流動密度0.
9g/ml、密度3.97、ポアー径58Å、表面積155m2/g)20g
を2φ×7cmのガラスカラムにクロロホルムに懸濁して
充填し(充填容積22cm3、充填高さ7cm)クロロホルム10
0mlとクロロホルム/メタノール(3/1)混液300mlを通
した合成ホスファチジルコリン1gを3mlのクロロホルム
溶液として、アルミナカラムに付し、クロロホルム50m
l、次いでクロロホルム/メタノール(3/1〜5/1、v/v)
混液200mlを通液してホスファチジルコリンを溶出し、
溶出液を留去してアルミナカラム処理ホスファチジルコ
リンを得た。
Reference Example 1 Alumina column treatment Neutral activated aluminum oxide for column chromatography (activity I, 70 to 29) manufactured by ICN Biomedicals
0 mesh ASTM, particle size 0.05-0.02mm, pH 7.5, flow density 0.
9 g / ml, the density 3.97, pore diameter 58 Å, surface area 155m 2 / g) 20g
Was suspended in chloroform in a 2φ × 7 cm glass column and filled (filling volume: 22 cm 3 , filling height: 7 cm).
1 g of synthetic phosphatidylcholine passed through 300 ml of a mixed solution of 0 ml and chloroform / methanol (3/1) was applied to an alumina column as a 3 ml chloroform solution.
l, then chloroform / methanol (3 / 1-5 / 1, v / v)
Elute phosphatidylcholine by passing 200 ml of the mixture,
The eluate was distilled off to obtain phosphatidylcholine treated with an alumina column.

参考例2 パンクレアチンの位置特異性の確認 アルミナカラム処理した化学合成品のSn−1−オレオ
イル−2−ドコサヘキサエノイルホスファチジルコリン
1.2gを150mlのエーテル/エタノール(95/5)混液に溶
解し、これに豚膵臓起源のパンクレアチン(アメリカ薬
局方、力価等量×1、シグマ社製)1gを懸濁させた0.1
モルトリス/塩酸・ミリモル塩化カルシウム溶液(pH7.
4)15mlと0.1モルホウ酸ナトリウム溶液浮15mlを加え、
混合物を高速撹拌しながら、室温に数時間おいた。経時
後、反応液の一部を連結乾燥し、このもののクロロホル
ム/メタノール(2/1、v/v)抽出液を薄層クロマトグラ
フィー(TLC)上にスポットして、クロロホルム/メタ
ノール/水(65/25/4、v/v/v)混液を展開溶媒として展
開させた。展開後、遊離脂肪酸区分およびリゾホスファ
チジルコリン区分をそれぞれ掻き取り、硫酸メタノール
法で脂肪酸メチルを調製してガスクロマトグラフィー分
析を行った。その結果、遊離脂肪酸区分からは、ドコサ
ヘキサエン酸が85%検出され、リゾホスファチジルコリ
ン区分からはオレイン酸が80%検出された。
Reference Example 2 Confirmation of Regiospecificity of Pancreatin Sn-1-oleoyl-2-docosahexaenoylphosphatidylcholine of chemically synthesized product treated with alumina column
1.2 g was dissolved in 150 ml of a mixed solution of ether / ethanol (95/5), and 1 g of pancreatin derived from swine pancreas (Pharmacopoeia of the United States, titer equivalent × 1, Sigma) was suspended.
Mortris / hydrochloric acid / mmol calcium chloride solution (pH 7.
4) Add 15ml and 15ml of 0.1M sodium borate solution float,
The mixture was left at room temperature for several hours with rapid stirring. After the elapse of time, a part of the reaction solution was ligated and dried, and a chloroform / methanol (2/1, v / v) extract was spotted on thin layer chromatography (TLC) to give chloroform / methanol / water (65%). / 25/4, v / v / v) The mixture was developed as a developing solvent. After the development, the free fatty acid section and the lysophosphatidylcholine section were scraped off, respectively, and fatty acid methyl was prepared by a methanol sulfate method, followed by gas chromatography analysis. As a result, 85% of docosahexaenoic acid was detected from the free fatty acid section, and 80% of oleic acid was detected from the lysophosphatidylcholine section.

経時後、反応液の大部分である残部のエーテルをデカ
ンテーションで除去し、新しいエーテル150mlを加えて
撹拌し、デカンテーションでエーテルを除去した後アセ
トン100mlを加えて撹拌し、新しいアセトン100mlをさら
に加えてデカンテーションした後、粗生成物を乾燥濃縮
した。このの濃縮物をクロロホルム/メタノール(1/
1、v/v)混液100mlに溶解し、この溶液中に濾過助剤
(ダイカライト・パーライト、ダイカライト・オリエン
ト社製)1gを添加し撹拌後、濾過して、その母液を蒸発
乾燥して840mgの黄色油状物を得た。
After the lapse of time, most of the remaining ether in the reaction solution was removed by decantation, 150 ml of fresh ether was added and stirred.After removing ether by decantation, 100 ml of acetone was added and stirred, and 100 ml of new acetone was further added. After additional decantation, the crude product was dried and concentrated. This concentrate was added to chloroform / methanol (1/1 /
1, v / v) dissolved in 100 ml of a mixed solution, 1 g of a filter aid (Dikalite / Perlite, manufactured by Dikalite Orient) was added to the solution, and the mixture was stirred, filtered, and the mother liquor was evaporated to dryness. 840 mg of a yellow oil were obtained.

黄色油状物の分析値は下記の通りであった。 The analysis values of the yellow oil were as follows.

TLC 展開液 クロロホルム/メタノール/ 水 65/25/4(v/v/v) Rf値:0.12 発色剤 2′,7′−ジクロロフルオレッセン 試薬:橙色 ジットマー・レスター試薬:青色 TLC−FID(イヤトロスキャン法) 展開液 TLCと同じ リゾホスファチジルコリン 97%、 不明 3% FAB−MS (Pos.)TEA〔M+H〕+:522 〔オレオイルリゾホスファチジルコリン+H〕+522 (Neg.)TEA〔M−H〕:281 〔C17H33COO-〕、即ちオレイン酸-281。TLC developing solution Chloroform / Methanol / Water 65/25/4 (v / v / v) Rf value: 0.12 Color former 2 ', 7'-dichlorofluorescein Reagent: orange Jittmer-Lester reagent: blue TLC-FID (Eiyatro Scanning method) Developing solution Same as TLC Lysophosphatidylcholine 97%, Unknown 3% FAB-MS (Pos.) TEA [M + H] + : 522 [Oleoyl lysophosphatidylcholine + H] + 522 (Neg.) TEA [MH]: 281 [C 17 H 33 COO ], ie oleic acid - 281.

以上の結果より、豚膵臓起源のパンクレアチンは効率
よく合成ホスファチジルコリンのSn−2位の脂肪酸を加
水分解し、1−アシル−リゾホスファチジルコリンを生
成することが判明した。
From the above results, it was found that pancreatin derived from swine pancreas efficiently hydrolyzes the fatty acid at the Sn-2 position of synthetic phosphatidylcholine to produce 1-acyl-lysophosphatidylcholine.

実施例1 化学合成したジパルミトイルホスファチジルコリンの
アルミナカラム処理品1.0gを用意した。次いで参考例2
と同様の条件で加水分解反応を行った。経時反応液をク
ロロホルム/メタノール/水(1/2/0.8、v/v/v)混液10
0mlで抽出し、この抽出液にクロロホルム100mlと蒸留水
100mlを加え、分離してくるクロロホルム層を分取し
た。クロロホルム層を乾固した後、冷アセトン50mlで4
回沈澱を洗浄し、アセトン洗浄液に遊離脂肪酸のないこ
とを確認した。収量は0.62gで性状は白色粉末であっ
た。
Example 1 1.0 g of chemically synthesized dipalmitoyl phosphatidylcholine treated with an alumina column was prepared. Next, Reference Example 2
The hydrolysis reaction was carried out under the same conditions as described above. The reaction solution over time was mixed with chloroform / methanol / water (1/2 / 0.8, v / v / v) 10
Extract with 0 ml, add 100 ml of chloroform and distilled water
100 ml was added, and the separated chloroform layer was separated. After evaporating the chloroform layer to dryness, add 4 ml of 50 ml of cold acetone.
The precipitate was washed, and it was confirmed that there was no free fatty acid in the acetone washing solution. The yield was 0.62 g and the properties were white powder.

白色粉末の分析値は下記の通りであった。 The analysis values of the white powder were as follows.

TLC 参考例2と同じ条件 Rf値:0.12と0.52にスポットを認め、発色剤に対
する呈色も同じである。
TLC Same conditions as in Reference Example 2. Spots were observed at Rf values: 0.12 and 0.52, and the color development for the color former was the same.

TLC−FID(イヤトロスキャン法) 展開液 TLCと同じ リゾホスファチジルコリン 92%、 ホスファチジルコリン 8% 以上の結果より、豚膵臓起源のパンクレアチンによる
合成ホスファチジルコリンの加水分解に関し、アルミナ
カラム処理品は90%以上分解されることがわかった。
TLC-FID (Eatroscan method) Developing solution Same as TLC Lysophosphatidylcholine 92%, Phosphatidylcholine 8% Based on the results above, the hydrolysis of synthetic phosphatidylcholine by pancreatin of pig pancreas origin is 90% or more for alumina column-treated products. It turned out to be.

上記組成物をクロロホルム3mlに溶解し、この溶液を
ケイ酸カラムクロマトグラフィー(2φ×7cm)に付
し、クロロホルム単独系からメタノール含量を高めなが
ら通液し、クロロホルム/メタノール(4/1〜1/1、v/
v)混液で溶出してくるリゾホスファチジルコリンを分
画した。収量は520mgであった。
The above composition was dissolved in chloroform (3 ml), and the solution was subjected to silica column chromatography (2φ × 7 cm). The solution was passed from a chloroform alone system while increasing the methanol content, and chloroform / methanol (4/1 to 1/1) was passed. 1, v /
v) Lysophosphatidylcholine eluted with the mixture was fractionated. The yield was 520 mg.

このリゾホスファチジルコリンのFAB−MS分析値は次
の通りであった。
The FAB-MS analysis values of this lysophosphatidylcholine were as follows.

(Pos.)TEA〔M+H〕+:496 〔パルミトイルリゾホスファチジルコリン+H〕+196 (Neg.)TEA〔M−H〕:255 〔C15H31COO-〕、即ちパルミチン酸-255 実施例2 アルミナカラム処理した化学合成品のジリノレイルホ
スファチジルコリン1.0gを用意した。次いで参考例2と
同様の条件で加水分解反応を行った。経時反応液を参考
例2に従って、エーテルとアセトンによる溶剤分別と濾
過助剤処理により黄色油状物を801mgを得た。
(Pos.) TEA [M + H] + : 496 [palmitoyl lysophosphatidylcholine + H] + 196 (Neg.) TEA [MH]: 255 [C 15 H 31 COO ], that is, palmitic acid - 255 Example 2 Alumina column 1.0 g of the treated synthetic synthetic product dilinoleyl phosphatidylcholine was prepared. Next, a hydrolysis reaction was performed under the same conditions as in Reference Example 2. According to Reference Example 2, the aged reaction solution was subjected to solvent separation with ether and acetone and treated with a filter aid to obtain 801 mg of a yellow oil.

黄色油状物の分析値は下記の通りであった。 The analysis values of the yellow oil were as follows.

TLC 実施例と同じ条件 Rf値:0.13と0.54のスポットに発色が認められ、
0.85のスポットは発色が著しく弱かった。
The same conditions as in the TLC Example Rf values: Color development was observed in spots of 0.13 and 0.54,
The spot at 0.85 was significantly weaker in color.

TLC−FID(イヤトロスキャン法) 展開液 TLCと同じ リゾホスファチジルコリン 74%、 ホスファチジルコリン 3% 脂肪酸 24% 反応組成物を実施例2と同様のケイ酸カラムクロマト
グラフィー処理によりリゾホスファチジルコリンを分画
し、収量は576mgであった。
TLC-FID (yatroscan method) Developing solution Same as TLC 74% lysophosphatidylcholine, 3% phosphatidylcholine 3% fatty acid 24% Lysophosphatidylcholine was fractionated from the reaction composition by silica gel column chromatography as in Example 2, yield Was 576 mg.

このリゾホスファチジルコリンのFAB−MS分析値は次
の通りであった。
The FAB-MS analysis values of this lysophosphatidylcholine were as follows.

(Pos.)TEA〔M+H〕+:520 〔リノレイルリゾホスファチジルコリン+H〕+520 (Neg.)TEA〔M−H〕:279 〔C17H31COO-〕、即ちリノール酸-279 比較例 化学合成したジパルミトイルホスファチジルコリンの
アルミナ未処理品1.0gを用意した。次いで実施例1に従
って同一の操作を行った。収量は、0.75gで性状は白色
粉末であった。
(Pos.) TEA [M + H] + : 520 [Linoleyl lysophosphatidylcholine + H] + 520 (Neg.) TEA [MH]: 279 [C 17 H 31 COO ], ie linoleic acid - 279 Comparative example Chemical synthesis 1.0 g of the thus-treated dipalmitoyl phosphatidylcholine untreated with alumina was prepared. Next, the same operation was performed according to Example 1. The yield was 0.75 g and the properties were white powder.

白色粉末の分析値は下記の通りであった。 The analysis values of the white powder were as follows.

TLC 参考例2と同じ条件 Rf値:0.10と0.48にスポットを認め、発色剤に対
する呈色も同じである。
TLC Same conditions as in Reference Example 2. Spots were observed at Rf values: 0.10 and 0.48, and the color development for the color former was the same.

TLC−FID(イヤトロスキャン法) 展開液 TLCと同じ リゾホスファチジルコリン 45%、 ホスファチジルコリン 55% 以上の結果より、豚膵臓起源のパンクレアチンによる
合成ホスファチジルコリンの加水分解に関し、アルミナ
カラム処理を施さない条件では分解率が低下することが
判明した。
TLC-FID (Eatroscan method) Developing solution Same as TLC Lysophosphatidylcholine 45%, Phosphatidylcholine 55% Based on the above results, hydrolysis of synthetic phosphatidylcholine by pancreatin derived from swine pancreas was degraded without alumina column treatment. The rate was found to decrease.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) C07F 9/10 CA(STN)──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (58) Field surveyed (Int.Cl. 6 , DB name) C07F 9/10 CA (STN)

Claims (2)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】エステル化触媒(ピリジン誘導体または第
三アミン)の存在下に化学合成して得た単酸基ジアシル
ホスファチジルコリンを中性アルミナカラム処理した
後、パンクレアチンを用いて加水分解することを特徴と
する1−アシル−リゾホスファチジルコリンの製造方
法。
1. A method comprising subjecting a monoacid group diacylphosphatidylcholine obtained by chemical synthesis in the presence of an esterification catalyst (pyridine derivative or tertiary amine) to a neutral alumina column treatment, followed by hydrolysis using pancreatine. A method for producing 1-acyl-lysophosphatidylcholine, which is a feature.
【請求項2】中性アルミナカラムの中性アルミナがブロ
ックマン活性度Iに調整された請求項1記載の製造方
法。
2. The method according to claim 1, wherein the neutral alumina is adjusted to Brockmann activity I.
JP1090868A 1989-04-12 1989-04-12 Method for producing 1-acyl-lysophosphatidylcholine Expired - Fee Related JP2792091B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP1090868A JP2792091B2 (en) 1989-04-12 1989-04-12 Method for producing 1-acyl-lysophosphatidylcholine

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP1090868A JP2792091B2 (en) 1989-04-12 1989-04-12 Method for producing 1-acyl-lysophosphatidylcholine

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPH02270890A JPH02270890A (en) 1990-11-05
JP2792091B2 true JP2792091B2 (en) 1998-08-27

Family

ID=14010506

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP1090868A Expired - Fee Related JP2792091B2 (en) 1989-04-12 1989-04-12 Method for producing 1-acyl-lysophosphatidylcholine

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP2792091B2 (en)

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS55315A (en) * 1978-06-15 1980-01-05 Toyama Chem Co Ltd Novel preparation of natural lysolecithin
JPS6333387A (en) * 1986-07-28 1988-02-13 Q P Corp Production of phospholipid containing lysophospholipid having reduced neutral lipid content

Also Published As

Publication number Publication date
JPH02270890A (en) 1990-11-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5538874A (en) Phospholipase A1, process for its preparation and the use thereof
Villeneuve et al. Customizing lipases for biocatalysis: a survey of chemical, physical and molecular biological approaches
EP0140542B1 (en) An immoblized lipase preparation and use thereof
Atherton et al. The Phosphoinositide Inositolphosphohydrolase of Guinea‐Pig Intestinal Mucosa
US5183750A (en) Processes for the production of phosphatidic acid
JP2002539782A (en) Surfactant-lipase complex immobilized on an insoluble matrix
Juneja et al. Increasing productivity by removing choline in conversion of phosphatidylcholine to phosphatidylserine by phospholipase D
US5508182A (en) Esterification of hydrophilic polyols by adsorption onto a solid support and employing a substrate-immiscible solvent
JP2749587B2 (en) Method for producing immobilized enzyme
Nakajima et al. A facile transphosphatidylation reaction using a culture supernatant of actinomycetes directly as a phospholipase D catalyst with a chelating agent
Kondo et al. Analysis of host-originated lipids associating with “in vivo grown tubercle bacilli”
US5100787A (en) Method for preparing highly purified phosphatidylinositol
JP2792091B2 (en) Method for producing 1-acyl-lysophosphatidylcholine
JPH0367676B2 (en)
Chang et al. The effects of temperature and fatty acid structure on lipid metabolism in bacillus licheniformis 9259
JP3929890B2 (en) Method for producing diglyceride
EP0571421A1 (en) Enzymatic reverse hydrolysis of hydrophilic substrates - preparation of amphiphilic compounds.
Chen et al. The use of crude lipase in deprotection of C-terminal protecting groups
JP2657887B2 (en) Preparation method of immobilized enzyme
JPH0710231B2 (en) Immobilized enzyme and ester synthesis method using immobilized enzyme
JP3037349B2 (en) Enzyme-immobilizing carrier and method for producing immobilized enzyme
JPH0367675B2 (en)
JP2008125365A (en) Method for preparing high-purity plasmologen
JP4976863B2 (en) Immobilized phospholipid metabolizing enzyme treated with surfactant and method for producing functional phospholipid using the same
JPS6248390A (en) Method of purifying phospholipid

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Cancellation because of no payment of annual fees