JP2782438B2 - Method for producing pantothenic acid or a salt thereof - Google Patents

Method for producing pantothenic acid or a salt thereof

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JP2782438B2
JP2782438B2 JP5357188A JP5357188A JP2782438B2 JP 2782438 B2 JP2782438 B2 JP 2782438B2 JP 5357188 A JP5357188 A JP 5357188A JP 5357188 A JP5357188 A JP 5357188A JP 2782438 B2 JP2782438 B2 JP 2782438B2
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pantothenic acid
pantothenate
ester
salt
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秀明 山田
昌 清水
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 [産業上の利用分野] 本発明は医薬として有用なパントテン酸またはその塩
の新規な製造法に関する。
Description: TECHNICAL FIELD The present invention relates to a novel method for producing pantothenic acid or a salt thereof useful as a medicine.

[従来技術] パントテン酸エステルを化学的に加水分解することに
よりパントテン酸に導く方法は、例えばWilliamsらによ
り報告されている(J.Am.Chem.Soc.,454(1939))。こ
の報告によれば、パントテン酸エステルの濃度について
は記載されていないが、0.05Nの炭酸ナトリウムを用
い、30℃/1〜2hで95〜99%の収率でパントテン酸が生成
すると延べられている。
[Prior Art] A method for deriving pantothenic acid by chemically hydrolyzing a pantothenate ester has been reported, for example, by Williams et al. (J. Am. Chem. Soc., 454 (1939)). According to this report, although the concentration of pantothenic acid ester is not described, it is estimated that pantothenic acid is produced in a yield of 95 to 99% at 30 ° C for 1 to 2 hours using 0.05N sodium carbonate. I have.

しかしながら、化学的方法によるパントテン酸エステ
ルの加水分解においては、アルカリを過剰に使用せざる
を得ないため、パントテン酸の化学構造中のアミド結合
の加水分解が起る恐れがあり、また、生成したパントテ
ン酸あるいはその塩を単離するにあたり、脱塩や塩交換
等の煩雑な精製工程を要するので、この方法は、実用的
な方法とはいえない。
However, in the hydrolysis of pantothenic acid ester by a chemical method, an alkali must be used in excess, so that the amide bond in the chemical structure of pantothenic acid may be hydrolyzed, and Since isolation of pantothenic acid or a salt thereof requires complicated purification steps such as desalting and salt exchange, this method cannot be said to be a practical method.

[発明の開示] 本発明者らは、パントテン酸エステルの加水分解につ
き鋭意研究を行なつた結果、微生物を利用し、パントテ
ン酸エステルを、その化学構造中のアミド結合を切断す
ることなく、エステル加水分解せしめることにより、定
量的にパントテン酸またはその塩に変換できることを見
い出した。本発明は、かかる知見に基づいてなされたも
のである。
DISCLOSURE OF THE INVENTION The present inventors have conducted intensive studies on the hydrolysis of pantothenate, and as a result, using a microorganism, the pantothenate was converted into an ester without cleaving an amide bond in its chemical structure. It has been found that hydrolysis allows quantitative conversion to pantothenic acid or a salt thereof. The present invention has been made based on such findings.

すなわち本発明は、シトロバクター属、アルカリジエ
ネス属、フラボバクテリウム属、バチルス属、アグロバ
クテリウム属、コリネバクテリウム属、スタフイロコツ
カス属、アルスロバクター属、ブレビバクテリウム属、
アシネトバクター属、シユードモナス属、クロモバクテ
リウム属、ミコバクテリウム属、ノカルデイア属、ロド
コツカス属、ストレプトマイセス属、シユードノカルデ
イア属、ムコール属、リゾープス属、アスペルギルス
属、ペニシリウム属、ノイロスポーラ属、プルラリア
属、フサリウム属、ジベレラ属、ハンセヌラ属、スポロ
ボロマイセス属、トルロプシス属、キヤンデイダ属、ロ
ドトルラ属に属する微生物よりなる群より選ばれた少な
くとも1種のエステル加水分解能を有する微生物を用い
てパントテン酸エステルのエステル加水分解を行なうこ
とを特徴とするパントテン酸および/またはその塩の製
造法を提供するものである。
That is, the present invention relates to the genus Citrobacter, Alkali Genes, Flavobacterium, Bacillus, Agrobacterium, Corynebacterium, Staphylococcus, Arthrobacter, Brevibacterium,
Acinetobacter, Pseudomonas, Chromobacterium, Mycobacterium, Nocardia, Rhodococcus, Streptomyces, Pseudonocardia, Mucor, Rhizopus, Aspergillus, Penicillium, Neurospora, Pullularia Pantothenic acid using a microorganism having at least one ester hydrolytic ability selected from the group consisting of microorganisms belonging to the genera, Fusarium, Gibberella, Hansenula, Sporoboromyces, Torulopsis, Cyandeida, Rhodotorula. An object of the present invention is to provide a method for producing pantothenic acid and / or a salt thereof, which comprises subjecting an ester to ester hydrolysis.

以下に、本発明を詳細に説明する。 Hereinafter, the present invention will be described in detail.

本発明者らは、各種液体培地5mlに斜面培地から種菌
を1白金耳量接種し、28℃で2〜6日間好気的に振盪培
養後、遠心分離あるいは過により菌体を得、この菌体
に15〜50mMパントテン酸のメチルエステルまたはエチル
エステル0.2〜0.5mlを加え、30℃で1晩振盪し、得られ
る反応液につき、TLCまたはHPLCにてパントテン酸エス
テルの減少量およびパントテン酸の生成量を測定した結
果、パントテン酸エステルをパントテン酸に変換する微
生物としてシトロバクター属、アルカリジエネス属、フ
ラボバクテリウム属、バチルス属、アグロバクテリウム
属、コリネバクテリウム属、スタフイロコツカス属、ア
ルスロバクター属、ブレビバクテリウム属、アシネトバ
クター属、シユードモナス属、クロモバクテリウム属、
ミコバクテリウム属、ノカルデイア属、ロドコツカス
属、ストレプトマイセス属、シユードノカルデイア属、
ムコール属、リゾープス属、アスペルギルス属、ペニシ
リウム属、ノイロスポーラ属、プルラリア属、フサリウ
ム属、ジベレラ属、ハンセヌラ属、スポロボロマイセス
属、トルロプシス属、キヤンデイダ属、ロドトルラ属に
属するエステル加水分解能を有するものが適当であるこ
とを見出した。
The present inventors inoculated one loopful of a seed bacterium from a slant medium into 5 ml of various liquid media, aerobically shake-cultured at 28 ° C. for 2 to 6 days, and then obtained cells by centrifugation or filtration. 0.2 to 0.5 ml of 15 to 50 mM of methyl or ethyl ester of pantothenic acid was added to the body, and the mixture was shaken at 30 ° C. overnight, and the resulting reaction mixture was subjected to TLC or HPLC to reduce the amount of pantothenate and to generate pantothenic acid. As a result of measuring the amount, as a microorganism that converts pantothenate to pantothenic acid, Citrobacter, Alkaligenes, Flavobacterium, Bacillus, Agrobacterium, Corynebacterium, Staphylococcus, Arthrobacter, Brevibacterium, Acinetobacter, Pseudomonas, Chromobacterium,
Mycobacterium, Nocardia, Rhodococcus, Streptomyces, Pseudonocardia,
Those having ester hydrolytic ability belonging to the genus Mucor, Rhizopus, Aspergillus, Penicillium, Neurospora, Pullularia, Fusarium, Gibberella, Hansenula, Sporoboromyces, Torulopsis, Cyandeida, Rhodotorula Found to be appropriate.

エステル加水分解能の特に優れた微生物は、アルカリ
ジエネス属、バチルス属、アグロバクテリウム属、コリ
ネバクテリウム属、アルスロバクター属、ブレビバクテ
リウム属、アシネトバクター属、シユードモナス属、ク
ロモバクテリウム属などに見られる。
Microorganisms with particularly good ester hydrolysis ability include Alkali Genes, Bacillus, Agrobacterium, Corynebacterium, Arthrobacter, Brevibacterium, Acinetobacter, Pseudomonas and Chromobacterium. Can be seen.

菌の培養に関する条件は、使用する菌株により異なる
が、培地に関しては、炭素源として、グルコース、フラ
クトース、シユクロースなどの糖質やグリセロールなど
のアルコール類、窒素源として、硫酸アンモニウム、塩
化アンモニウム、ペプトン、カザミノ酸、コーンステイ
ープリカー、ふすま、酵母エキスなど、無機塩類とし
て、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、炭酸カルシウ
ム、リン酸一水素カリウム、リン酸二水素カリウムな
ど、他の栄養源として麦芽エキス、肉エキスなどを含む
培地を用いる。培養は、好気的に行ない、通常、0.5〜
7日程度、培地pHは3〜10、培養温度は15〜60℃、更に
好ましくは20〜40℃で行なう。
Conditions for cultivation of the bacterium vary depending on the strain used.However, as for the culture medium, sugars such as glucose, fructose and sucrose and alcohols such as glycerol, and alcohols such as glycerol as a carbon source, and ammonium sulfate, ammonium chloride, peptone and casamino as a nitrogen source are used. Acids, corn stay liquor, bran, yeast extract, etc., inorganic salts such as magnesium sulfate, sodium chloride, calcium carbonate, potassium monohydrogen phosphate, potassium dihydrogen phosphate, etc. Malt extract, meat extract etc. as other nutritional sources Use a medium containing Culture is performed aerobically, usually from 0.5 to
The culture is carried out for about 7 days at a medium pH of 3 to 10 and a culture temperature of 15 to 60 ° C, more preferably 20 to 40 ° C.

本発明方法においては、使用する微生物は、液体培地
に菌株を培養した培養物、培養液から分離した菌体、あ
るいは菌体または培養物を処理して得られる乾燥菌体、
もしくは固定化菌体などのいずれの形態でも用いること
ができる。
In the method of the present invention, the microorganism used is a culture obtained by culturing the strain in a liquid medium, cells isolated from the culture solution, or dried cells obtained by treating the cells or the culture,
Alternatively, any form such as immobilized cells can be used.

パントテン酸エステルとしては、アルキルエステル、
アラルキルエステルなどのいずれのエステルも使用する
ことができる。好ましい例としては、メチルエステル、
エチルエステル、プロピルエステルなど低級アルキルエ
ステルがあげられる。
As pantothenic acid esters, alkyl esters,
Any ester such as an aralkyl ester can be used. Preferred examples include methyl esters,
Lower alkyl esters such as ethyl ester and propyl ester are exemplified.

操作は回分式、半回分式、または連続式のいずれでも
行なうことができる。使用するパントテン酸エステルの
濃度は、通常、10〜250g/lである。系の温度は、通常、
10〜50℃であり、操作時間は、回分式の場合、通常、数
時間から3日間である。反応系のpHは、通常、3〜11程
度である。
The operation can be performed in any of a batch system, a semi-batch system, and a continuous system. The concentration of the pantothenate used is usually between 10 and 250 g / l. The temperature of the system is usually
The operation time is usually several hours to 3 days in the case of a batch system. The pH of the reaction system is usually about 3 to 11.

微生物によるパントテン酸エステルのエステル加水分
解より、遊離のパントテン酸が生成するが生成したパン
トテン酸のため、反応液のpHは低下し、同時に反応速度
も低下する。反応速度を大きくするため、各微生物のエ
ステル加水分解酵素の至適pHに反応液のpHを保持するこ
とが好ましい。その際、pHを保持するための無機塩基と
して、アルカリ金属、アルカリ土類金属の水酸化物、ま
たは炭酸塩を用いることができ、これらを適当に選択す
ることにより、パントテン酸のアルカリ金属塩またはア
ルカリ土類金属塩を直接、生成させることができる。即
ち、例えば、反応液のpHの保持に水酸化カルシウムや炭
酸カルシウムを用いた場合、パントテン酸カルシウムを
得ることができ、水酸化ナトリウムや炭酸ナトリウムを
用いた場合はパントテン酸ナトリウムを得ることができ
る。
Free pantothenic acid is produced by ester hydrolysis of the pantothenic acid ester by the microorganism, but due to the produced pantothenic acid, the pH of the reaction solution is lowered, and at the same time, the reaction rate is also reduced. In order to increase the reaction rate, it is preferable to maintain the pH of the reaction solution at the optimum pH of the ester hydrolase of each microorganism. At that time, as the inorganic base for maintaining the pH, hydroxides or carbonates of alkali metals, alkaline earth metals can be used, and by appropriately selecting these, the alkali metal salts of pantothenic acid or Alkaline earth metal salts can be produced directly. That is, for example, when calcium hydroxide or calcium carbonate is used to maintain the pH of the reaction solution, calcium pantothenate can be obtained, and when sodium hydroxide or sodium carbonate is used, sodium pantothenate can be obtained. .

パントテン酸エステルのエステル加水分解能を有する
微生物のうち、アルスロバクター属、ブレビバクテリウ
ム属、シユードモナス属のものは特にパントテン酸エス
テルのD体に選択性が高いので、D,L−パントテン酸エ
ステルの速度論的分割が可能である。即ち、D,L−パン
トテン酸エステルに上記微生物を作用させると、D−パ
ントテン酸エステルが優先的にエステル加水分解をうけ
D−パントテン酸となり、L−パントテン酸エステルは
そのまま残存する。このL−パントテン酸エステルは分
離回収した後、ナトリウムメチラートなどにより、容易
にラセミ化することができ、D,L−パントテン酸エステ
ルとすることができる。このDL体は、再び原料として使
用することができる。
Among microorganisms having the ability to hydrolyze pantothenate esters, those belonging to the genera Arthrobacter, Brevibacterium, and Pseudomonas are particularly highly selective for the D-form of pantothenate, so that the D, L-pantothenate can be used. Kinetic partitioning is possible. That is, when the above microorganisms are allowed to act on D, L-pantothenate, the D-pantothenate is preferentially subjected to ester hydrolysis to become D-pantothenate, and the L-pantothenate remains as it is. This L-pantothenate can be easily racemized with sodium methylate or the like after separation and recovery, and D, L-pantothenate can be obtained. This DL body can be used again as a raw material.

以下に、実施例を掲げ、本発明を更に具体的に説明す
るが、本発明はこれら実施例に限定されるものではな
い。
Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples.

実施例1〜12 グルコース1%、ペプトン1.5%、リン酸水素二カリ
ウム0.3%、塩化ナトリウム0.2%、硫酸マグネシウム0.
02%、酵母エキス0.1%からなる液体培地(pH7.0)を試
験管(φ1.4cm×16cm)に5mlづつ分注し、オートクレ
ーブ中で121℃で15分間、加熱滅菌した。斜面培地から
第1表に示す各種の種菌を用い、それぞれ、1白金耳量
接種し、28℃で3日間、往復振盪機上で好気的に培養し
た。培養液を遠心分離するかあるいは、過することに
より各菌体を得た。この菌体に50mMパントテン酸エチル
溶液(250mMリン酸バツフアーpH7.0)0.5mlを加え、30
℃で一晩振盪した。反応後、HPLC(Cosmosil 5C18φ4.6
×100mm、溶離液20%メタノール(pH2.5)、流速1ml/
min、検出波長210nm)にてパントテン酸エチルの残存
量、およびパントテン酸の生成量を測定した。その結果
は第1表に示す通りである。
Examples 1 to 12 1% glucose, 1.5% peptone, 0.3% dipotassium hydrogen phosphate, 0.2% sodium chloride, 0.2% magnesium sulfate.
A liquid medium (pH 7.0) consisting of 02% and yeast extract 0.1% was dispensed into test tubes (φ1.4 cm × 16 cm) in 5 ml portions and sterilized by heating at 121 ° C. for 15 minutes in an autoclave. One loopful of each of the various inoculum shown in Table 1 was inoculated from the slant medium and cultured aerobically on a reciprocating shaker at 28 ° C. for 3 days. Each cell was obtained by centrifuging or passing the culture. To the cells, add 0.5 ml of a 50 mM ethyl pantothenate solution (250 mM phosphate buffer, pH 7.0), and add 30 ml.
Shake at ℃ overnight. After the reaction, HPLC (Cosmosil 5C 18 φ4.6
× 100mm, eluent 20% methanol (pH2.5), flow rate 1ml /
min, detection wavelength 210 nm), the remaining amount of ethyl pantothenate and the amount of generated pantothenic acid were measured. The results are as shown in Table 1.

実施例13〜17 実施例1〜12において使用した液体培地に代えてペプ
トン1.0%、肉エキス0.5%、酵母エキス0.1%、塩化ナ
トリウム0.5%からなる液体培地(pH7.0)を使用し、他
は実施例1〜12と同様の条件において操作を行ない、第
2表に示す各種の菌体を得た。この各菌体を用い、これ
に、15mMパントテン酸メチル溶液(100mMリン酸バツフ
アーpH7.0)0.2mlを加え、30℃で一晩振盪した。次い
で、実施例1〜12と同様の方法でパントテン酸メチルの
残存量およびパントテン酸の生成量を分析した。第2表
に示す結果を得た。
Examples 13 to 17 In place of the liquid medium used in Examples 1 to 12, a liquid medium (pH 7.0) composed of 1.0% peptone, 0.5% meat extract, 0.1% yeast extract, and 0.5% sodium chloride was used. Was operated under the same conditions as in Examples 1 to 12 to obtain various cells shown in Table 2. Using each of the cells, 0.2 ml of a 15 mM methyl pantothenate solution (100 mM buffer phosphate, pH 7.0) was added, and the mixture was shaken at 30 ° C. overnight. Next, the remaining amount of methyl pantothenate and the amount of generated pantothenic acid were analyzed in the same manner as in Examples 1 to 12. The results shown in Table 2 were obtained.

実施例18〜30 実施例1〜12において使用した液体培地に代えて麦芽
エキス5.0%、酵母エキス0.3%からなる液体培地(pH5
〜6)を使用し、他は実施例1〜12と同様の条件におい
て操作を行ない、第3表に示す各種の菌体を得た。この
各菌体に、それぞれ、50mMパントテン酸エチル溶液(25
0nMリン酸バツフアーpH7.0)0.5mlを加え、30℃で一晩
振盪した。次いで、実施例1〜12と同様の方法でパント
テン酸エチルの残存量およびパントテン酸の生成量を分
析した。結果は第3表に示されている。
Examples 18 to 30 Instead of the liquid medium used in Examples 1 to 12, a liquid medium consisting of 5.0% malt extract and 0.3% yeast extract (pH 5
Using the same procedures as in Examples 1 to 12, operations were performed under the same conditions as in Examples 1 to 12, and various bacterial cells shown in Table 3 were obtained. To each of these cells, a 50 mM ethyl pantothenate solution (25
0.5 ml of 0 nM phosphate buffer (pH 7.0) was added, and the mixture was shaken at 30 ° C. overnight. Next, the remaining amount of ethyl pantothenate and the amount of generated pantothenic acid were analyzed in the same manner as in Examples 1 to 12. The results are shown in Table 3.

実施例31 実施例1〜12で使用した培地と同じ組成の液体培地15
0mlの入つた500ml振盪フラスコを用いてブレビバクテリ
ウム・リンネンス(IFO12141)を28℃5日間振盪培養し
た。培養後、遠心分離により集菌し、蒸留水で洗浄す
る。得られた菌体に20mM D−パントテン酸エチル水溶液
15mlを加え、30℃で24時間、反応を行なつた。反応液か
ら遠心分離によつて菌体を除去後、反応液を逆相クロマ
トグラフイーで精製し、凍結乾燥するとD−パントテン
酸56mg(Y=85%、[α]D+37゜)を得た。
Example 31 Liquid medium 15 having the same composition as the medium used in Examples 1 to 12
Brevibacterium linens (IFO12141) was shake-cultured at 28 ° C. for 5 days using a 500 ml shake flask containing 0 ml. After the culture, the cells are collected by centrifugation, and washed with distilled water. 20 mM D-ethyl pantothenate aqueous solution was added to the obtained cells.
15 ml was added, and the reaction was carried out at 30 ° C. for 24 hours. After the cells were removed from the reaction solution by centrifugation, the reaction solution was purified by reverse phase chromatography and freeze-dried to obtain 56 mg of D-pantothenic acid (Y = 85%, [α] D + 37 °). .

実施例32 実施例31と同様の操作で得られたブレビバクテリウム
・リンネンス(IFO12141)の菌体に0.2M D−パントテン
酸エチル水溶液20mlを加える。反応液に水酸化カルシウ
ムを少量づつ添加することにより、pHを6.5〜9.0に保持
しながら、35℃で12時間反応を行なつた。実施例31と同
様の後処理を行ない、D−パントテン酸カルシウム890m
g(Y=93%、[α]D+28.0°)を得た。
Example 32 To a cell of Brevibacterium linens (IFO12141) obtained by the same operation as in Example 31, 20 ml of a 0.2 MD-ethyl pantothenate aqueous solution is added. By adding calcium hydroxide little by little to the reaction solution, the reaction was carried out at 35 ° C. for 12 hours while maintaining the pH at 6.5 to 9.0. The same post-treatment as in Example 31 was performed, and 890 m of D-calcium pantothenate was used.
g (Y = 93%, [α] D + 28.0 °).

実施例33 実施例31と同様の操作で得られたブレビバクテリウム
・リンネンス(IFO12141)の菌体に100mM D−パントテ
ン酸エチル水溶液10mlを加える。更に炭酸カルシウム15
0mgを添加し、30℃で36時間、反応を行なつた。実施例3
1と同様の後処理を行ない、逆相クロマトグラフイー溶
出液を水酸化カルシウム水溶液にてpHを8.0に調整した
後凍結乾燥し、D−パントテン酸カルシウム219mg(Y
=92%、[α]D+28.0゜)を得た。
Example 33 10 ml of a 100 mM aqueous solution of D-ethyl pantothenate is added to the cells of Brevibacterium linens (IFO12141) obtained in the same manner as in Example 31. Further calcium carbonate 15
0 mg was added, and the reaction was carried out at 30 ° C. for 36 hours. Example 3
After the same post-treatment as in 1, the reverse phase chromatographic eluate was adjusted to pH 8.0 with an aqueous solution of calcium hydroxide, lyophilized, and dried with 219 mg of calcium D-pantothenate (Y
= 92%, [α] D + 28.0 °).

実施例34 実施例32と同様に行なつたが、反応pH(6.5〜9.0)の
保持を水酸化カルシウムにかえ0.01N NaOHを用いて行な
つた。D−パントテン酸ナトリウム907mg(Y=95%、
[α]D+27.1゜)を得た。
Example 34 The same procedure was performed as in Example 32, except that the reaction pH (6.5 to 9.0) was maintained using 0.01 N NaOH instead of calcium hydroxide. 907 mg of sodium D-pantothenate (Y = 95%,
[Α] D + 27.1 °).

実施例35 実施例31と同様に培養して得たブレビバクテリウム・
リンネンス(IFO12141)の菌体に0.2M D,L−パントテン
酸エチル10ml、炭酸カルシウム100mgを加え、35℃で30
時間反応を行なつた。反応液から遠心分離によって菌体
を除去した後、反応液を逆相クロマトグラフイーで分離
精製し、凍結乾燥し、D−パントテン酸カルシウム145m
g([α]D+26.5゜)を得た。また、未反応のパントテ
ン酸エチルは、331mg回収された。
Example 35 Brevibacterium obtained by culturing in the same manner as in Example 31
0.2 MD, 10 ml of ethyl L-pantothenate and 100 mg of calcium carbonate were added to the cells of Linnens (IFO12141), and the mixture was added at 35 ° C for 30 minutes.
A time response was performed. After the cells were removed from the reaction solution by centrifugation, the reaction solution was separated and purified by reversed-phase chromatography, freeze-dried, and dried with 145 m of calcium D-pantothenate.
g ([α] D + 26.5 °). In addition, 331 mg of unreacted ethyl pantothenate was recovered.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI (C12P 13/02 C12R 1:07) (C12P 13/02 C12R 1:20) (C12P 13/02 C12R 1:15) (C12P 13/02 C12R 1:32) (C12P 13/02 C12R 1:38) (C12P 13/02 C12R 1:44) (C12P 13/02 C12R 1:365) (C12P 13/02 C12R 1:465) (C12P 13/02 C12R 1:645) (C12P 13/02 C12R 1:66) (C12P 13/02 C12R 1:72) (C12P 13/02 C12R 1:78) (C12P 13/02 C12R 1:80) (C12P 13/02 C12R 1:845) ──────────────────────────────────────────────────の Continued on the front page (51) Int.Cl. 6 Identification symbol FI (C12P 13/02 C12R 1:20) (C12P 13/02 C12R 1:20) (C12P 13/02 C12R 1:15) (C12P 13/02 C12R 1:32) (C12P 13/02 C12R 1:38) (C12P 13/02 C12R 1:44) (C12P 13/02 C12R 1: 365) (C12P 13/02 C12R 1: 465) (C12P (13/02 C12R 1: 645) (C12P 13/02 C12R 1:66) (C12P 13/02 C12R 1:72) (C12P 13/02 C12R 1:78) (C12P 13/02 C12R 1:80) (C12P 13/02 C12R 1: 845)

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】シトロバクター属、アルカリジエネス属、
フラボバクテリウム属、バチルス属、アグロバクテリウ
ム属、コリネバクテリウム属、スタフイロコツカス属、
アルスロバクター属、ブレビバクテリウム属、アシネト
バクター属、シユードモナス属、クロモバクテリウム
属、ミコバクテリウム属、ノカルデイア属、ロドコツカ
ス属、ストレプトマイセス属、シユードノカルデイア
属、ムコール属、リゾープス属、アスペルギルス属、ペ
ニシリウム属、ノイロスポーラ属、プルラリア属、フサ
リウム属、ジベレラ属、ハンセヌラ属、スポロボロマイ
セス属、トルロプシス属、キヤンデイダ属、ロドトルラ
属に属する微生物よりなる群より選ばれた少なくとも1
種のエステル加水分解能を有する微生物を用いてパント
テン酸エステルのエステル加水分解を行なうことを特徴
とするパントテン酸および/またはその塩の製造法。
(1) a genus of Citrobacter, a genus of Alcaligenes,
Flavobacterium, Bacillus, Agrobacterium, Corynebacterium, Staphylococcus,
Arthrobacter, Brevibacterium, Acinetobacter, Pseudomonas, Chromobacterium, Mycobacterium, Nocardia, Rhodococcus, Streptomyces, Pseudonocardia, Mucor, Rhizopus, At least one selected from the group consisting of microorganisms belonging to the genera Aspergillus, Penicillium, Neurospora, Pullularia, Fusarium, Gibberella, Hansenula, Sporoboromyces, Torulopsis, Cyandeida, Rhodotorula.
A method for producing pantothenic acid and / or a salt thereof, wherein the pantothenic acid ester is subjected to ester hydrolysis using a microorganism having a kind of ester hydrolytic ability.
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