JP2726662B2 - Adsorbent and removal device using the same - Google Patents

Adsorbent and removal device using the same

Info

Publication number
JP2726662B2
JP2726662B2 JP62224473A JP22447387A JP2726662B2 JP 2726662 B2 JP2726662 B2 JP 2726662B2 JP 62224473 A JP62224473 A JP 62224473A JP 22447387 A JP22447387 A JP 22447387A JP 2726662 B2 JP2726662 B2 JP 2726662B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
rheumatoid factor
molecular weight
adsorbent
gel
sulfate
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
JP62224473A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPS6468273A (en
Inventor
龍一 横張
新一 青塚
牧子 木下
孝 舟橋
敍孝 谷
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Kanegafuchi Chemical Industry Co Ltd
Original Assignee
Kanegafuchi Chemical Industry Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kanegafuchi Chemical Industry Co Ltd filed Critical Kanegafuchi Chemical Industry Co Ltd
Priority to JP62224473A priority Critical patent/JP2726662B2/en
Priority to CA000566914A priority patent/CA1327963C/en
Priority to DE3889400T priority patent/DE3889400T2/en
Priority to EP88107853A priority patent/EP0306617B1/en
Publication of JPS6468273A publication Critical patent/JPS6468273A/en
Priority to US07/866,269 priority patent/US5258503A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP2726662B2 publication Critical patent/JP2726662B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Description

【発明の詳細な説明】 [産業上の利用分野] 本発明は体液中からリウマチ因子を吸着除去あるいは
吸着回収するためのリウマチ因子の吸着体およびそれを
用いるリウマチ因子の除去装置に関する。 [従来の技術および発明が解決しようとする問題点] 自己免疫疾患はその名称のごとく自己の組織の構成成
分に対する抗体(以下、自己抗体という)が出現する疾
患であるが、代表的な自己免疫疾患である慢性関節リウ
マチ(以下、RAという)などでは血液成分の一つである
免疫グロブリンG(以下、IgGという)に対する抗体
(以下、リウマチ因子という)が体液中に出現し、その
病態と密接な関連があることが知られている。産生され
た自己抗体が病気の発症に関わる機序は必ずしも明確で
はないが、自己抗体自身が細胞を障害する機構、あるい
は自己抗体が抗原と結合して免疫複合体を形成し組織に
沈着することにより組織障害をおこす機構などが提唱さ
れている。リウマチ因子のばあいは発生したリウマチ因
子が血中のIgGと免疫複合体を形成し、血管壁、滑膜な
どに沈着することによりそれぞれ血管炎、関節炎を発症
することが知られている。 このように産生したリウマチ因子またはリウマチ因子
と血中のIgGとの免疫複合体によりさまざまな症状がひ
きおこされるわけであるから、治療にはリウマチ因子の
コントロールが非常に重要である。 従来よりリウマチ因子の産生を抑制する目的でステロ
イド剤、免疫抑制剤、免疫調節剤、抗炎症剤などが治療
に広く用いられている。なかでもステロイド剤はもっと
も一般的に用いられ、パルス治療と呼ばれるステロイド
の短期超大量投与療法もしばしば行なわれてる。しかし
ながら、ステロイドは少量の投与によっても副作用を生
じやすいのでステロイドの短期超大量投与療法によれ
ば、さらに大きな副作用を生じさせやすくなるのは自明
である。また、これらの薬剤は長期にわたって用いられ
ることが多く、そのようなばあいには副作用がさらに出
やすく、また薬剤耐性によりしだいに増量しなければな
らないことも多いため、症例によってはこれらの薬剤の
使用が不可能であったり、充分な効果を発揮しないばあ
いも多い。 一方、これらの薬剤療法とは別のアプローチとして、
体液中のリウマチ因子を体外循環により直接除去しよう
とする試みがなされている。もっとも簡便な方法は、リ
ウチマ因子を含む患者の血漿を健常人の血漿と交換す
る、いわゆる血漿交換療法である。この方法によって血
中のリウマチ因子は大幅に低下し、症状の改善が見られ
ている。しかしながらこの方法では大量の健常血漿が必
要となり高価であるばかりでなく、該療法処置中に血清
肝炎などの感染の危険性を伴うため広く普及するには至
っていない。 血漿交換療法では血漿中のすべての成分が除去され、
健常血漿と交換されるわけであるが、これに対して病因
物質であるリウマチ因子を選択的に除去する目的で、分
子サイズにより病因物質を分離する血漿分離膜法が開発
された。この方法では膜により血漿を高分子量画分と低
分子量画分に分離し、病因物質が含まれている高分子量
画分を廃棄し、主要蛋白であるアルブミンが含まれてい
る低分子量画分を患者に戻すが、リウマチ因子とアルブ
ミンとの分離は必ずしも充分でなく、リウマチ因子を除
去する際にアルブミンも大量に除去され、さらに病因物
質と同等以上の分子量の蛋白はすべて除去されるなどの
欠点がある。 したがって病因物質であるリウマチ因子をより選択的
に除去し、体液中の他の有用成分がほとんど失われるこ
とのない除去手段の出現が望まれていた。 そこで本発明者らは、かかる実情に鑑み鋭意研究を重
ねた結果、体液中の有効成分をほとんど失うことなくリ
ウマチ因子のみを選択的に中着しうる吸着体を見出し、
本発明を完成するに至った。 [問題点を解決するための手段] すなわち本発明は、球状蛋白質の排除限界分子量が10
0万以上6000万以下である多孔質セルロース体に硫酸エ
ステル基を有する分子量1000以上のポリアニオン化合物
が固定されてなるリウマチ因子の吸着体ならびに流体の
流入口および流出口を有する容器、流体および該流体に
含まれる成分は通過できるが、球状蛋白質の排除限界分
子量が100万以上6000万以下である多孔質セルロース体
に硫酸エステル基を有する分子量1000以上のポリアニオ
ン化合物が固定されてなるリウマチ因子の吸着体は通過
できないフィルター、および前記容器内に充填された前
記リウマチ因子の吸着体からなるリウマチ因子の除去装
置に関する。 [実施例] 本明細書において体液とは血液、血漿、血清、腹水、
リンパ液、関節内液およびこれらからえられた分画成
分、ならびにその他の生体由来の液性成分をいう。 本発明に用いる多孔質セルロース体は、大きな径の連
続した細孔を有するものが好ましい。すなわちリウマチ
因子はIgG、IgM(免疫ブロブリンM)などの免疫グロブ
リンからなり、分子量が16〜90万の巨大分子であるた
め、これを効率よく吸着するためにはリウマチ因子が容
易に多孔質体内に侵入しうることが必要である。 細孔径の測定方法には種々あり、水銀圧入法がもっと
もよく用いられているが、親水性多孔質体のばあいには
適用がむずかしい。これにかわる細孔径の目安として排
除限界分子量がよく用いられ、親水性多孔質体、疎水性
多孔質体いずれにも適用することができる。排除限界量
とは成書(たとえば波多野博行、花井俊彦著、実験高速
液体クロマトグラフィ、化学同人)などに述べられてい
るごとく、ゲル浸透グロマトグラフィにおいて細孔内に
侵入することができない(排除される)分子のうちもっ
とも小さい分子量をもつ物の分子量をいう。 排除限界分子量は対象とする化合物により異なること
が知られており、一般に球状蛋白質、デキストラン、ポ
リエチレングリコールなどについてよく調べられてお
り、リウマチ因子にもっとも類似していると思われる球
状蛋白質(ビールスを含む)を用いてえられた値を用い
るのが適当である。 排除限界の異なる種々の水不溶性多孔質体を用いて検
討した結果、予想に反し排除限界分子量がリウマチ因子
の分子量より小さい10万程度のものでもある程度の吸着
能を示し、また細孔径の大きいもの程能力が大きいわけ
でなく、むしろ能力が低下したりリウマチ因子以外の蛋
白が吸着されること、すなわち最適な細孔径の範囲が存
在することが明らかになった。すなわち10万未満の排除
限界分子量をもつ水不溶性多孔質体を用いたばあいはリ
ウマチ因子の吸着量は小さく実用に耐えないが、排除限
界分子量が10万ないし15万とリウマチ因子の分子量に近
い水不溶性多孔質体を用いてもある程度実用に供しうる
吸着体がえられた。一方排除限界分子量が大きくなるに
つれ、リウマチ因子の吸着量は増加するがやがて頭打ち
となり、排除限界分子量が6000万以上になると表面積が
少なすぎ吸着量は目立って低下するばかりでなく、目的
とするリウマチ因子以外の成分の吸着、すなわち非特異
吸着が増加し選択性がいちじるしく低下する。 したがって水不溶性多孔質体の好ましい排除限界分子
量は10万以上6000万以下であり、さらに好ましくはより
吸着容量が大きい点から100万以上6000万以下であり、
さらには10万以上2000万以下であるが、本発明において
は100万以上6000万以下のものを使用する。 つぎに水不溶性多孔質体の多孔構造については表面多
孔性よりも全多孔性が好ましく、空孔容積が吸着容量が
大きいという点から20%以上であることが好ましい。水
不溶性多孔質体の形状は、粒状、球状、繊維状、膜状、
ホローファイバー状など任意の形状を選ぶことができ
る。粒子状の水不溶性多孔質体を用いるばあい、その粒
子径は1μm未満のばあい圧力損失が大きく、5000μm
をこえるばあい吸着容量が小さいという点から1μm以
上5000μm以下であるのが好ましい。 水不溶性多孔質体は有機性、無機性いずれであっても
よいが、目的とするリウマチ因子以外の体液成分の吸着
(いわゆる非特異吸着)の少ないものが好ましい。親水
性である方が非特異吸着が少ないので水不溶性多孔質体
は疎水性であるよりも、親水性であるほうが好ましく、
分子中に水酸基を有する化合物よりなる水不溶性多孔質
体がより好ましい。 水不溶性多孔質体の代表例としては、アガロース、デ
キストラン、ポリアクリルアミドなどの軟質多孔質体、
多孔質ガラス、多孔質シリカゲルなどの無機多孔質体、
ポリメチルメタクリレート、ポリビニルアルコール、ス
チレン−ジビニルベンゼン共重合体などの合成高分子お
よび/またはセルロースなどの天然高分子を原料とする
多孔質ポリマーハードゲルなどがあげられるがこれらに
限定されるわけではない。本発明においては、セルロー
スを原料とする多孔質ポリマーハードゲル(多孔質セル
ロース体)を使用する。 本発明の吸着体を体外循環治療に用いる際には、血
液、血漿のごとき高粘性流体を高速で流す必要があるた
め、圧密化を引起こさない充分な機械的強度を有する硬
質水不溶性多孔質体を用いるのが好ましい。すなわち硬
質多孔質体とは後記参考例に示すごとく、水不溶性多孔
質体を円筒状カラムに均一に充填し、水性流体を流通し
たばあいの圧力損失と流量との関係が少なくとも0.3kg/
cm2まで直線関係にあるものをいう。 本発明に用いる硫酸エステル基は、pHが中性付近で負
に帯電する官能基であり、リウマチ因子に対する親和性
が強く好ましい。 硫酸エステル基を有する分子量1000以上のポリアニオ
ン化合物(以下、硫酸エステル基を有する化合物とい
う)とは、複数の硫酸エステル基を有するポリアニオン
化合物であって分子量が1000以上のものをいう。硫酸エ
ステル基を有する分子量1000以上のポリアニオン化合物
はリウマチ因子に対する親和性が大きく、また単位量の
多孔質体に多くの硫酸エステル基を導入しやすいので好
ましい。 本発明に用いるポリアニオン化合物の代表例として
は、ポリビニル硫酸などの合成ポリアニオン化合物およ
びヘパリン、デキストラン硫酸、コンドロイチン、コン
ドロイチン硫酸などの硫酸エステル基含有多糖類があげ
られるがこれらに限定されるわけではない。 本発明の吸着体に固定されている硫酸エステル基を有
する化合物は1種であってもよいし、2種以上であって
もよい。 本発明の吸着体は、球状蛋白質の排除限界分子量が10
0万以上6000万以下である多孔質セルロース体に硫酸エ
ステル基を有する化合物が固定された状態のものをい
う。そのような硫酸エステル基を有する化合物の固定さ
れた状態をうるための硫酸エステル基の吸着体への導入
方法は種々あり、いかなる方法で導入してもよいが、代
表的な導入方法としては (1)硫酸エステル基を含有する化合物を多孔質セルロ
ース体に固定させる方法、 (2)硫酸エステル基を形成する化合物と多孔質セルロ
ース体を直接反応させることによって、多孔質セルロー
ス体に硫酸エステル基を有する化合物を固定させる方法 などがあげられる。 (1)の方法、すなわち硫酸エステル基を含有する化
合物を多孔質セルロース体に固定させる方法としては、
物理的吸着による方法、イオン結合による方法、共有結
合により固定する方法などがあり、いかなる方法を用い
てもよいが、治療目的に吸着体を用いるには、滅菌時あ
るいは治療中に硫酸エステル基含有化合物が脱離しない
ことが重要であるので、強固な固定が可能な共有結合法
が好ましい。 共有結合により硫酸エステル基含有化合物を固定させ
るばあい、硫酸エステル基含有化合物が硫酸エステル基
以外に固定に利用できる官能基を有するのが好ましい。 固定に利用できる官能基の代表例としては、アミノ
基、アミド基、カルボキシル基、酸無水物基、スクシニ
ルイミド基、水酸基、チオール基、アルデヒド基、ハロ
ゲン基、エポキシ基、シラノール基などがあげられるが
これらに限定されるわけではない。 また、硫酸エステル基を含有する化合物の代表例とし
てはアルコール、糖類、グリコールなどの水酸基含有化
合物の硫酸エステルがあげられるが、これらのなかでも
多価アルコールの部分硫酸エステル化物、とりわけ糖類
の硫酸エステル化物が硫酸エステル基、固定に必要な官
能基の双方を含んでいるうえに、生体適合性および活性
ともに高く、さらに硫酸化多糖類は容易に多孔質セルロ
ース体に固定できることからとくに好ましい。 つぎに、(2)の方法では硫酸エステル基を形成する
化合物と多孔質セルロース体とを直接反応させることに
よって多孔質セルロース体に硫酸エステル基を有する化
合物を固定させる。このばあい、水酸基を含有する多孔
質セルロース体とクロルスルホン酸、濃硫酸などの試薬
を反応させることによって直接硫酸エステル基を導入す
ることができる。 導入される硫酸エステル基の量は、吸着体1m1あたり
0.01μmol以上10mmol以下が好ましい。001μmol未満の
ばあい吸着能力が充分でなく、10mmolをこえるばあい非
特異吸着が多すぎ、実用に供することが困難になる。よ
り好ましい硫酸エステル基導入量は1μmol以上100μmo
l以下である。 本発明の吸着体を用いて体液からリウマチ因子を除去
する方法には種々あり、いかなる方法を用いてもよい
が、流体の流入口および流出口を有する容器、流体およ
び該流体に含まれる成分は通過できるが、球状蛋白質の
排除限界分子量が100万以上6000万以下である多孔質セ
ルロース体に硫酸エステル基を有する化合物が固定され
てなるリウマチ因子の吸着体は通過できないフィルタ
ー、および前記容器内に充填された前記リウマチ因子の
吸着体からなるリウマチ因子の除去装置に体液を通液す
る方法が簡便で好ましい。 第2図に本発明のリウマチ因子の除去装置の一実施例
の概略断面図を示す。第2図中、(1)および(2)は
それぞれの流体の流入口と流出口、(3)は本発明の吸
着体、(4)および(5)は流体および流体に含まれる
成分は通過できるが本発明の吸着体は通過できないフィ
ルターまたはメッシュ、(6)はカラム、(7)は容器
である。ここで流体の流入口側のフィルター(4)は存
在しなくてもよい。 以下、実施例により本発明をさらに詳しく説明する
が、本発明はかかる実施例のみに限定されるものではな
い。 参考例 両端に孔径15μmのフィルターを装着したガラス製カ
ラム(内径9mm、カラム長150mm)にアガロースゲル(Bi
ogel A5m、商品名、バイオラド社製、粒径50〜100メッ
シュ)、合成ポリマーよりなるゲル、トヨパールHW65
(商品名、東洋曹達工業(株)製、粒径50〜100μ
m)、および多孔質セルロースゲル、セルロファインGC
−700(商品名、チッソ(株)製、粒径45〜100μm)を
それぞれ均一に充填し、ペリスタティックポンプにより
カラム内に水を流通し、流量と圧力損失ΔPとの関係を
求めた。その結果を第1図に示す。同図より明らかなよ
うに軟質ゲルであるアガロースゲルは一定の流量以上で
は圧密化を起こし、圧力を増加させても流量が増加しな
いのに対し、トヨパール、セルロファインなどの硬質ゲ
ルは圧力の増加にほぼ比例して流量が増加する。 製造例1 多孔質セルロースゲルであるCKゲルA3(商品名、チッ
ソ(株)製、球状蛋白質の排除限界分子量5000万、粒径
45〜105μm)100m1に20%NaOH40g、ヘプタン120gおよ
びノニオン系界面活性剤トゥイーン20(商品名、花王ア
トラス(株)製)を10滴加えた。40℃で2時間攪拌後、
エピクロルヒドリン50gを加えて2時間攪拌し、ゲルを
水洗濾過してエポキシ化セルロースゲル(以下、エポキ
シ化ゲルという)をえた。 比較例1 製造例1でえたエポキシ化ゲル5m1にスルファニル酸
0.17gを10m1の水に溶解してpH9.9に調整した溶液を加
え、常温で24時間振盪し、0.5%モノエタノールアミン
水溶液を加えて振盪し未反応のエポキシ基を封止してス
ルファニル酸が固定されたセルロースゲルをえた。固定
されたスルファニル酸により導入されたアニオン性官能
基量は吸着体1m1あたり6.5μmolであった。 比較例2 製造例1でえたエポキシ化ゲル5m1にホスホリルエタ
ノールアミン0.1gを10m1の水に溶解してpH9.6に調整し
た溶液を加え、40℃で4時間振盪し、0.5%モノエタノ
ールアミン水溶液を加えて振盪し未反応のエポキシ基を
封止してホスホリルエタノールアミンが固定されたセル
ロースゲルをえた。固定されたホスホリルエタノールア
ミンにより導入されたアニオン性官能基量は吸着体1m1
あたり4μmolであった。 実施例1 製造例1でえたエポキシ化ゲル5m1に分子量約5000、
イオウ含量15%のデキストラン硫酸ナトリウム4gおよび
水5m1を加えpH9に調整して45℃で16時間振盪した。その
のち、ゲルを濾別して、2M食塩水溶液、0.5M食塩水溶液
および水を用いてこの順に洗浄し、0.5%モノエタノー
ルアミン水溶液を加えて振盪し未反応のエポキシ基を封
止してデキストラン硫酸ナトリウムが固定されたセルロ
ースゲルをえた。固定されたデキストラン硫酸により導
入されたアニオン性官能基は吸着体1m1あたり10μmolで
あった。 比較例3 製造例1でえたエポキシ化ゲル5m1にグリシン0.22gを
10m1の水に溶解してpH9.8に調整した溶液を加え、常温
で24時間振盪し、0.5%モノエタノールアミン水溶液を
加えて振盪し未反応のエポキシ基を封止してグリシンが
固定されたセルロースゲルをえた。固定されたグリシン
により導入されたアニオン性官能基量は吸着体1m1あた
り9μmolであった。 比較例4 製造例1でえたエポキシ化ゲル5m1にタウリン0.37gを
10m1の水に溶解してpH9.0に調整した溶液を加え、常温
で24時間振盪し、0.5%モノエタノールアミン水溶液を
加えて振盪し未反応のエポキシ基を封止してタウリンが
固定されたセルロースゲルをえた。固定されたタウリン
により導入されたアニオン性官能基量は吸着体1m1あた
り5μmolであった。 比較例5 CKゲルA3、10m1を水洗後吸引濾過しこれにジメチルス
ルホキシド6m1、2N−NaOH2.6m1、エピクロルヒドリン1.
5m1を加え40℃、2時間攪拌した。反応後ゲルを濾別、
水洗してエポキシ基の導入されたセルロースゲルをえ
た。 これに濃アンモニア水6m1を加え40℃で2時間反応さ
せてアミノ化セルロースゲルをえた。 このゲル5m1に分子量19〜50万のポリアクリル酸ナト
リウム0.2gを10m1の水を溶解してpH4.5に調整した溶液
を加え、さらに1−エチル−3−(ジメチルアミノプロ
ピル)カルボジミド200mgをpH4.5に保ちながら添加し、
4℃で24時間振盪した。反応後ゲルを濾別、水洗してポ
リアクリル酸の導入されたセルロースゲルをえた。固定
されたポリアクリル酸により導入されたアニオン性官能
基量は吸着体1m1あたり14μmolであった。 実施例2、3および比較例6〜8 多孔質セルロースゲルをCK−A22(商品名、チッソ
(株)製、球状蛋白質の排除限界分子量2000万、粒径45
〜105μm、架橋ゲル)、セルロファインGCL−2000(商
品名、チッソ(株)製、球状蛋白質の排除限界分子量30
0万、粒径45〜105μm、架橋ゲル)、セルロファインGC
−700(商品名、チッソ(株)製、球状蛋白質の排除限
界分子量40万、粒径45〜105μm、)、セルロファインG
C−200m(商品名、チッソ(株)製、球状蛋白質の排除
限界分子量12万、粒径45〜105μm)、セルロファインG
CL−90(商品名、チッソ(株)製、球状蛋白質の排除限
界分子量3.5万、粒径45〜105μm)にかえたほかは製造
例1および実施例1と同様にしてデキストラン硫酸ナト
リウムの固定されたセルロースゲルをえた。固定された
デキストラン硫酸により導入されたアニオン性官能基量
は吸着体1m1あたりそれぞれ16.18,24、30、37μmolであ
った。 比較例9 エポキシ化架橋アガロースゲルであるエポキシアクテ
ィベイティッドセファロースCL−6B(商品名、ファルマ
シアファインケミカルズ社製、球状蛋白質の排除限界分
子量400万、粒径45〜165μm)ゲルを用いたほかは実施
例1と同様の方法でデキストラン硫酸ナトリウムを固定
した。固定されたデキストラン硫酸により導入されたア
ニオン性官能基量は吸着体1m1あたり20μmolであった。 比較例10 ポリメタクリル酸メチルを主成分とする親水性多孔性
硬質ヒドロゲルであるFP−HG(商品名、三菱化成(株)
製、球状蛋白質の排除限界分子量400万、粒径120μm)
を用いたほかは製造例1および実施例1と同様にしてデ
キストラン硫酸が固定されたゲルをえた。固定されたデ
キストラン硫酸により導入されたアニオン性官能基量は
吸着体1m1あたり9μmolであった。 実施例4 比較例5と同様にしてえたアミノ化セルロースゲル2g
に、分子量5000、イオウ含量15%のデキストラン硫酸ナ
トリウム4gを0.1Mリン酸バッファー(pH8.0)8m1に溶解
した液を加え室温で16時間振盪した。反応後NaCNBH320m
gを加え室温で30分攪拌後、40℃で4時間加熱したのち
ゲルを濾別水洗してデキストラン硫酸の固定されたセル
ロースゲルをえた。固定されたデキストラン硫酸により
導入されたアニオン性官能基量は吸着体1m1あたり18μm
olであった。 実施例5 実施例1、4および比較例1〜5でえられた吸着体1m
1ずつをポリプロピレン製ミニカラム(内径:7mm)に充
填し、生理的食塩水で洗浄したのち、生理的食塩水で10
倍希釈したIgM型リウマチ因子を含む血清0.1m1を通液
し、さらに5m1の0.15Mトリス‐HCl緩衝液、pH7.6で洗
い、そのすりぬけ分画のリウマチ因子力価を固相酵素抗
体法(ELISA法)により測定した。IgM型リウマチ因子力
価は、IgGを付着したプレートに希釈した検体を滴下
し、抗原‐抗体反応を行ない、ペルオキシダーゼ標識抗
ヒト免疫グロブリン抗体を滴下し、酵素発色反応をSLT-
210(商品名、ラボサイエンス(株)製)にて測定し
た。第1表に各吸着体に固定されたアニオン性官能基を
有する化合物名および各吸着体の原血清のリウマチ因子
力価に対するすり抜け分画中のリウマチ因子力価を百分
率で相対リウマチ因子力価として示す。 第1表から、分子量が大きい硫酸エステル基を有する
化合物であるデキストラン硫酸ナトリウムが固定された
吸着体のIgM型リウマチ因子結合能はとくにすぐれてい
ることがわかる。 実施例6 実施例1〜3および比較例6〜10でえられた吸着体を
用いたほかは、実施例5と同様の方法で、相対リウマチ
因子力価を求めた。結果を用いた種々の水不溶性多孔質
体名とともに第2表に示す。 第2表から、排除限界分子量が小さい多孔質セルロー
ス体(セルロースGC-700、セルロースGC-200mおよびセ
ルロースGCL-90)のリウマチ因子結合能がおとることが
わかる。また、排除限界分子量が大きくても多孔質セル
ロース体でないばあい(セファロースCL-6Bおよびヒド
ロゲンFP-HGのばあい)にも、リウマチ因子結合能がお
とることがわかる。 実施例7 リウマチ因子陽性の患者血清をセファデックスG-200
カラムに通液してIgM成分をIgG、アルブミン成分より分
離した。この分離されたIgM分画成分2mlを実施例5と同
様の方法で通液し、さらに1mlの0.15Mトリス‐HCl緩衝
液、pH7.6で洗い、そのすりぬけ分画の相対リウマチ因
子力価を測定した。その結果、すり抜け分画中にIgM型
リウマチ因子は、検出されなかった。 このことから、リウマチ因子はIgG分子を介して吸着
されるのではなく、吸着体に直接吸着されるものと推定
する。 [発明の効果] 本発明の吸着体およびそれを用いるリウマチ因子の除
去装置は体液中のリウマチ因子を選択的に除去する効果
を奏する。
Description: TECHNICAL FIELD The present invention relates to a rheumatoid factor adsorbent for adsorbing or removing rheumatoid factor from body fluids and an apparatus for removing rheumatoid factor using the same. [Problems to be Solved by the Prior Art and the Invention] Autoimmune disease is a disease in which an antibody against a component of its own tissue (hereinafter, referred to as autoantibody) appears as its name indicates. In diseases such as rheumatoid arthritis (hereinafter referred to as RA), antibodies (hereinafter referred to as rheumatoid factors) against immunoglobulin G (hereinafter referred to as IgG), which is one of the blood components, appear in body fluids and are closely related to the disease state. It is known that there is a great relationship. The mechanism by which the produced autoantibodies are involved in the pathogenesis of the disease is not always clear, but the mechanism by which the autoantibodies themselves damage cells or the autoantibodies bind to antigens to form immune complexes and deposit on tissues Has proposed a mechanism to cause organizational failure. In the case of rheumatoid factor, it is known that the generated rheumatoid factor forms an immune complex with IgG in blood and deposits on blood vessel walls, synovium, etc., thereby causing vasculitis and arthritis, respectively. Since various symptoms are caused by the rheumatoid factor thus produced or the immune complex of the rheumatoid factor and IgG in the blood, the control of the rheumatoid factor is very important for the treatment. Conventionally, steroids, immunosuppressants, immunomodulators, anti-inflammatory agents and the like have been widely used for the purpose of suppressing the production of rheumatoid factor. Of these, steroids are the most commonly used, and a short-term ultra-high dose therapy of steroids called pulse therapy is often performed. However, since steroids are liable to cause side effects even in small doses, it is obvious that short-term ultra-high dose steroid therapy tends to cause even greater side effects. In addition, these drugs are often used for a long period of time, and in such cases, side effects are more likely to occur, and in many cases, the dose must be increased due to drug resistance. In many cases, it cannot be used or does not exert sufficient effects. On the other hand, as an alternative approach to these drug therapies,
Attempts have been made to directly remove rheumatoid factor from body fluids by extracorporeal circulation. The simplest method is the so-called plasma exchange therapy in which the plasma of a patient containing a rheumatoid factor is exchanged for the plasma of a healthy person. The rheumatoid factor in the blood is significantly reduced by this method, and symptoms have been improved. However, this method requires a large amount of healthy plasma and is not only expensive, but also has not been widely used due to the risk of infection such as serum hepatitis during the treatment. Plasmapheresis removes all components of the plasma,
In order to selectively remove the rheumatoid factor, which is a pathogen, which is exchanged with healthy plasma, a plasma separation membrane method for separating the pathogenic substance according to the molecular size has been developed. In this method, plasma is separated by a membrane into a high molecular weight fraction and a low molecular weight fraction, the high molecular weight fraction containing the pathogenic substance is discarded, and the low molecular weight fraction containing albumin, the main protein, is separated. Despite returning to the patient, the separation of rheumatoid factor and albumin is not always sufficient, and the removal of rheumatoid factor removes a large amount of albumin, and further removes all proteins with a molecular weight equal to or higher than the pathogen. There is. Therefore, there has been a demand for a means for removing rheumatoid factor, which is a pathogenic substance, more selectively so that other useful components in the body fluid are hardly lost. Thus, the present inventors have conducted intensive studies in view of such circumstances, and as a result, have found an adsorbent capable of selectively intercalating only rheumatoid factors without almost losing an active ingredient in a body fluid,
The present invention has been completed. [Means for Solving the Problems] That is, according to the present invention, the globular protein has an exclusion limit molecular weight of 10
A rheumatoid factor adsorbent in which a polyanionic compound having a molecular weight of 1,000 or more having a sulfate group is fixed to a porous cellulose body having a molecular weight of not less than 100,000 or less and a container having a fluid inlet and a fluid outlet, a fluid and the fluid Adsorbent of rheumatoid factor comprising a polyanion compound having a molecular weight of 1000 or more having a sulfate ester group immobilized on a porous cellulose body having an exclusion limit molecular weight of a spherical protein of 1,000,000 to 60,000,000 or less. The present invention relates to a filter that cannot pass through, and an apparatus for removing a rheumatoid factor comprising an adsorbent of the rheumatoid factor filled in the container. [Example] In the present specification, the body fluid is blood, plasma, serum, ascites,
Lymph fluid, intra-articular fluid and fraction components obtained therefrom, as well as other biologically derived humoral components. The porous cellulose body used in the present invention preferably has a large diameter continuous pores. That is, the rheumatoid factor is composed of immunoglobulins such as IgG and IgM (immunoblobulin M), and is a macromolecule having a molecular weight of 160,000 to 900,000. It needs to be able to penetrate. There are various methods for measuring the pore diameter, and the mercury intrusion method is most often used, but it is difficult to apply in the case of a hydrophilic porous body. An exclusion limit molecular weight is often used as a standard of the pore diameter instead, and can be applied to both a hydrophilic porous body and a hydrophobic porous body. As described in a compendium (for example, written by Hiroyuki Hatano and Toshihiko Hanai, Experimental High Performance Liquid Chromatography, Chemical Doujinshi), the exclusion limit cannot be entered into pores by gel permeation chromatography (excluding exclusion). ) Refers to the molecular weight of the one with the smallest molecular weight among the molecules. It is known that the exclusion limit molecular weight varies depending on the target compound. Generally, globular proteins, dextran, polyethylene glycol, and the like have been well studied, and globular proteins (including viruses) which are considered to be most similar to rheumatoid factors It is appropriate to use the values obtained using As a result of investigation using various water-insoluble porous materials having different exclusion limits, unexpectedly, even if the exclusion limit molecular weight is about 100,000 smaller than the molecular weight of rheumatoid factor, it shows a certain level of adsorption capacity, and those with a large pore size It was revealed that the capacity was not so large, but rather that the capacity was reduced or that proteins other than rheumatoid factor were adsorbed, that is, there was an optimum range of pore diameter. That is, when a water-insoluble porous material having an exclusion limit molecular weight of less than 100,000 is used, the amount of rheumatoid factor adsorbed is small and is not practical, but the exclusion limit molecular weight is 100,000 to 150,000, which is close to the molecular weight of rheumatoid factor Even if a water-insoluble porous body was used, an adsorbent which could be practically used was obtained. On the other hand, as the exclusion limit molecular weight increases, the amount of rheumatoid factor adsorbed increases, but eventually plateaus.When the exclusion limit molecular weight exceeds 60 million, the surface area is too small and the adsorbed amount not only decreases remarkably, but also the target rheumatism. Adsorption of components other than factors, ie, non-specific adsorption, increases and the selectivity drops significantly. Therefore, the preferred exclusion limit molecular weight of the water-insoluble porous material is 100,000 or more and 60,000,000 or less, more preferably 1,000,000 or more and 60,000,000 or less from the viewpoint of a larger adsorption capacity,
Further, it is not less than 100,000 and not more than 20,000,000, but in the present invention, one having not less than 1,000,000 and not more than 60,000,000 is used. Next, the porous structure of the water-insoluble porous body is preferably total porosity rather than surface porosity, and the pore volume is preferably 20% or more from the viewpoint of a large adsorption capacity. The shape of the water-insoluble porous body is granular, spherical, fibrous, membrane-like,
Any shape such as hollow fiber shape can be selected. When a particulate water-insoluble porous material is used, if the particle size is less than 1 μm, the pressure loss is large, and 5000 μm
If it is more than 1, the adsorption capacity is preferably 1 μm or more and 5000 μm or less from the viewpoint that the adsorption capacity is small. The water-insoluble porous material may be either organic or inorganic, but is preferably a material having little adsorption of so-called non-specific adsorption of body fluid components other than the intended rheumatoid factor. The water-insoluble porous body is preferably more hydrophilic than hydrophobic because hydrophilic non-specific adsorption is less.
A water-insoluble porous body composed of a compound having a hydroxyl group in the molecule is more preferable. Representative examples of the water-insoluble porous material include soft porous materials such as agarose, dextran, and polyacrylamide.
Inorganic porous materials such as porous glass and porous silica gel,
Examples include, but are not limited to, porous polymer hardgels made from synthetic polymers such as polymethyl methacrylate, polyvinyl alcohol, styrene-divinylbenzene copolymer and / or natural polymers such as cellulose. . In the present invention, a porous polymer hard gel (porous cellulose body) using cellulose as a raw material is used. When the adsorbent of the present invention is used for extracorporeal circulation treatment, it is necessary to flow a high-viscosity fluid such as blood or plasma at a high speed, so that a hard water-insoluble porous material having sufficient mechanical strength so as not to cause consolidation It is preferred to use a body. That is, as shown in Reference Examples below, the hard porous body is uniformly filled with the water-insoluble porous body in a cylindrical column, and the relationship between the pressure loss and the flow rate when the aqueous fluid flows is at least 0.3 kg /.
A linear relationship up to cm 2 . The sulfate group used in the present invention is a functional group that is negatively charged when the pH is around neutral, and has a strong affinity for rheumatoid factor and is preferable. The polyanion compound having a sulfate group and a molecular weight of 1000 or more (hereinafter, referred to as a compound having a sulfate group) is a polyanion compound having a plurality of sulfate groups and having a molecular weight of 1000 or more. A polyanion compound having a molecular weight of 1000 or more having a sulfate group is preferable because it has a high affinity for rheumatoid factor and easily introduces a large number of sulfate groups into a porous material having a unit amount. Representative examples of the polyanion compound used in the present invention include, but are not limited to, synthetic polyanion compounds such as polyvinyl sulfate and sulfate ester group-containing polysaccharides such as heparin, dextran sulfate, chondroitin, and chondroitin sulfate. The compound having a sulfate ester group fixed to the adsorbent of the present invention may be one kind or two or more kinds. The adsorbent of the present invention has an exclusion limit molecular weight of globular protein of 10
It refers to a state in which a compound having a sulfate group is fixed to a porous cellulose material having a molecular weight of not less than 100,000 and not more than 60,000,000. There are various methods for introducing a sulfate ester group into an adsorbent to obtain a fixed state of such a compound having a sulfate ester group, and any method may be used. 1) a method of immobilizing a compound containing a sulfate group on a porous cellulose body, (2) a method of directly reacting a compound forming a sulfate group with the porous cellulose body to form a sulfate group on the porous cellulose body. And a method of immobilizing the compound. The method of (1), that is, the method of immobilizing a compound containing a sulfate ester group on a porous cellulose body includes:
There are methods such as physical adsorption method, ionic bond method, and covalent bond immobilization method, and any method may be used. Since it is important that the compound is not eliminated, a covalent bonding method capable of firmly fixing is preferred. When a sulfate group-containing compound is fixed by a covalent bond, the sulfate group-containing compound preferably has a functional group other than the sulfate group that can be used for fixation. Representative examples of functional groups that can be used for immobilization include an amino group, an amide group, a carboxyl group, an acid anhydride group, a succinylimide group, a hydroxyl group, a thiol group, an aldehyde group, a halogen group, an epoxy group, and a silanol group. Are not limited to these. Typical examples of the compound containing a sulfate group include sulfates of hydroxyl group-containing compounds such as alcohols, saccharides and glycols. Among these, partial sulfates of polyhydric alcohols, especially sulfates of saccharides The compound contains both a sulfate ester group and a functional group required for fixation, has high biocompatibility and activity, and furthermore, a sulfated polysaccharide is particularly preferable because it can be easily fixed to a porous cellulose body. Next, in the method (2), the compound having a sulfate group is fixed to the porous cellulose body by directly reacting the compound forming the sulfate group with the porous cellulose body. In this case, a sulfate group can be directly introduced by reacting a porous cellulose body containing a hydroxyl group with a reagent such as chlorosulfonic acid or concentrated sulfuric acid. The amount of sulfate groups introduced is per 1m1 of adsorbent
It is preferably 0.01 μmol or more and 10 mmol or less. If it is less than 001 μmol, the adsorption capacity is not sufficient, and if it exceeds 10 mmol, non-specific adsorption is too much and it becomes difficult to put it to practical use. A more preferred amount of the sulfate ester group is 1 μmol or more and 100 μmo
l or less. There are various methods for removing rheumatoid factors from body fluids using the adsorbent of the present invention, and any method may be used.A container having an inlet and an outlet for a fluid, a fluid and components contained in the fluid are: A filter that can pass, but cannot pass through a rheumatoid factor adsorbent in which a compound having a sulfate group is immobilized on a porous cellulose body having an exclusion limit molecular weight of globular protein of 1,000,000 or more and 60,000,000 or less, and A simple and preferable method is to pass a bodily fluid through a rheumatoid factor removing device comprising the filled rheumatoid factor adsorbent. FIG. 2 is a schematic sectional view of one embodiment of the apparatus for removing rheumatoid factor of the present invention. In FIG. 2, (1) and (2) are the inlets and outlets of the respective fluids, (3) is the adsorbent of the present invention, (4) and (5) are the fluids and the components contained in the fluids. A filter or mesh that can be passed but cannot pass through the adsorbent of the present invention, (6) is a column, and (7) is a container. Here, the filter (4) on the fluid inlet side may not be present. Hereinafter, the present invention will be described in more detail by way of examples, but the present invention is not limited to only these examples. Reference Example Agarose gel (Bi
ogel A5m, trade name, manufactured by Bio-Rad, particle size 50-100 mesh), gel made of synthetic polymer, Toyopearl HW65
(Product name, manufactured by Toyo Soda Kogyo Co., Ltd., particle size 50-100μ
m), and porous cellulose gel, Cellulofine GC
−700 (trade name, manufactured by Chisso Corporation, particle size: 45 to 100 μm) was uniformly filled, water was circulated through the column by a peristatic pump, and the relationship between the flow rate and the pressure loss ΔP was determined. The result is shown in FIG. As is clear from the figure, the agarose gel, which is a soft gel, consolidates above a certain flow rate, and the flow rate does not increase even if the pressure is increased, whereas the hard gels such as Toyopearl and Cellulofine increase the pressure. The flow rate increases almost in proportion to. Production Example 1 CK Gel A3, a porous cellulose gel (trade name, manufactured by Chisso Corp., exclusion limit molecular weight of spherical protein of 50,000,000, particle size)
(45-105 μm) To 100 ml, 40 g of 20% NaOH, 120 g of heptane and 10 drops of nonionic surfactant Tween 20 (trade name, manufactured by Kao Atlas Co., Ltd.) were added. After stirring at 40 ° C for 2 hours,
After adding 50 g of epichlorohydrin and stirring for 2 hours, the gel was washed with water and filtered to obtain an epoxidized cellulose gel (hereinafter, referred to as epoxidized gel). Comparative Example 1 Sulfanilic acid was added to 5 ml of the epoxidized gel obtained in Production Example 1.
A solution adjusted to pH 9.9 by dissolving 0.17 g in 10 ml of water is added, shaken at room temperature for 24 hours, 0.5% aqueous monoethanolamine solution is added and shaken to seal unreacted epoxy groups, and sulfanilic acid is added. Yielded a cellulose gel with immobilization. The amount of anionic functional group introduced by the immobilized sulfanilic acid was 6.5 μmol / m1 of the adsorbent. Comparative Example 2 A solution adjusted to pH 9.6 by dissolving 0.1 g of phosphorylethanolamine in 10 ml of water was added to 5 ml of the epoxidized gel obtained in Production Example 1, and the mixture was shaken at 40 ° C. for 4 hours. Was added and shaken to seal unreacted epoxy groups to obtain a cellulose gel on which phosphorylethanolamine was fixed. The amount of anionic functional groups introduced by the immobilized phosphorylethanolamine was 1 m1 of adsorbent
4 μmol / mol. Example 1 5 ml of the epoxidized gel obtained in Production Example 1 had a molecular weight of about 5,000,
4 g of sodium dextran sulfate having a sulfur content of 15% and 5 ml of water were added to adjust the pH to 9, followed by shaking at 45 ° C for 16 hours. Thereafter, the gel was separated by filtration, washed with a 2M aqueous solution of sodium chloride, a 0.5M aqueous solution of sodium chloride and water in this order, added with a 0.5% aqueous solution of monoethanolamine and shaken to seal unreacted epoxy groups, and sodium dextran sulfate was added. Yielded a cellulose gel with immobilization. The anionic functional group introduced by the immobilized dextran sulfate was 10 μmol / m1 of the adsorbent. Comparative Example 3 0.22 g of glycine was added to 5 ml of the epoxidized gel obtained in Production Example 1.
A solution dissolved in 10 ml of water and adjusted to pH 9.8 was added, and the mixture was shaken at room temperature for 24 hours. A 0.5% monoethanolamine aqueous solution was added and shaken to seal unreacted epoxy groups to fix glycine. A cellulose gel was obtained. The amount of anionic functional groups introduced by the immobilized glycine was 9 μmol / m1 of the adsorbent. Comparative Example 4 0.37 g of taurine was added to 5 ml of the epoxidized gel obtained in Production Example 1.
A solution dissolved in 10 ml of water and adjusted to pH 9.0 was added, and the mixture was shaken at room temperature for 24 hours. A 0.5% monoethanolamine aqueous solution was added and shaken to seal unreacted epoxy groups, thereby fixing taurine. A cellulose gel was obtained. The amount of anionic functional group introduced by the immobilized taurine was 5 μmol / m1 of the adsorbent. Comparative Example 5 CK gel A3, 10 ml was washed with water, suction filtered, and dimethyl sulfoxide 6 ml, 2N-NaOH 2.6 ml, epichlorohydrin 1.
5 ml was added and the mixture was stirred at 40 ° C. for 2 hours. After the reaction, the gel is filtered off,
After washing with water, a cellulose gel into which an epoxy group was introduced was obtained. 6 ml of concentrated aqueous ammonia was added thereto and reacted at 40 ° C. for 2 hours to obtain an aminated cellulose gel. A solution prepared by dissolving 0.2 g of sodium polyacrylate having a molecular weight of 190,000 to 500,000 in 10 ml of water and adjusting the pH to 4.5 was added to 5 ml of the gel, and 200 mg of 1-ethyl-3- (dimethylaminopropyl) carbodiimide was further added to 200 ml of a pH 4 solution. Add while keeping at .5
Shake at 4 ° C. for 24 hours. After the reaction, the gel was separated by filtration and washed with water to obtain a cellulose gel into which polyacrylic acid had been introduced. The amount of anionic functional groups introduced by the immobilized polyacrylic acid was 14 μmol / m1 of the adsorbent. Examples 2 and 3 and Comparative Examples 6 to 8 Porous cellulose gel was prepared using CK-A22 (trade name, manufactured by Chisso Corporation, exclusion limit molecular weight of globular protein of 20,000,000, particle size of 45).
105105 μm, cross-linked gel), Cellulofine GCL-2000 (trade name, manufactured by Chisso Corp., exclusion limit molecular weight of globular protein 30)
100,000, particle size 45-105μm, crosslinked gel), Cellulofine GC
-700 (trade name, manufactured by Chisso Corporation, molecular weight cut-off of globular protein 400,000, particle size 45-105 μm), Cellulofine G
C-200m (trade name, manufactured by Chisso Corporation, exclusion limit molecular weight of globular protein of 120,000, particle size of 45 to 105 µm), Cellulofine G
Dextran sodium sulfate was immobilized in the same manner as in Production Example 1 and Example 1 except that CL-90 (trade name, manufactured by Chisso Corp., molecular weight of exclusion limit of globular protein: 35,000, particle size: 45 to 105 μm) was changed. A cellulose gel was obtained. The amounts of anionic functional groups introduced by the immobilized dextran sulfate were 16.18, 24, 30, and 37 μmol, respectively, per ml of the adsorbent. Comparative Example 9 Epoxy Activated Sepharose CL-6B (trade name, manufactured by Pharmacia Fine Chemicals Co., Ltd., manufactured by Pharmacia Fine Chemicals Co., Ltd., molecular weight exclusion limit of globular protein of 4,000,000, particle size of 45 to 165 μm), which is an epoxidized crosslinked agarose gel, was used. Dextran sodium sulfate was fixed in the same manner as in Example 1. The amount of anionic functional groups introduced by the immobilized dextran sulfate was 20 μmol / m1 of the adsorbent. Comparative Example 10 FP-HG which is a hydrophilic porous hard hydrogel containing polymethyl methacrylate as a main component (trade name, Mitsubishi Kasei Co., Ltd.)
Made, globular protein exclusion limit molecular weight 4,000,000, particle size 120μm)
A gel having dextran sulfate fixed thereon was obtained in the same manner as in Production Example 1 and Example 1 except for using. The amount of anionic functional group introduced by the immobilized dextran sulfate was 9 μmol / m1 of the adsorbent. Example 4 2 g of aminated cellulose gel obtained in the same manner as in Comparative Example 5
A solution prepared by dissolving 4 g of dextran sodium sulfate having a molecular weight of 5,000 and a sulfur content of 15% in 8 ml of 0.1 M phosphate buffer (pH 8.0) was added thereto, and the mixture was shaken at room temperature for 16 hours. After reaction NaCNBH 3 20m
After stirring at room temperature for 30 minutes and heating at 40 ° C. for 4 hours, the gel was separated by filtration and washed with water to obtain a dextran sulfate-fixed cellulose gel. The amount of anionic functional groups introduced by immobilized dextran sulfate is 18 μm / m1 of adsorbent
ol. Example 5 1 m of the adsorbent obtained in Examples 1 and 4 and Comparative Examples 1 to 5
Each was packed in a polypropylene mini column (inner diameter: 7 mm), washed with physiological saline, and then washed with physiological saline for 10 minutes.
0.1 ml of serum containing IgM-type rheumatoid factor that had been diluted twice was passed through, and further washed with 5 ml of 0.15 M Tris-HCl buffer, pH 7.6, and the rheumatoid factor titer of the surviving fraction was measured by the enzyme-linked immunosorbent assay ( ELISA method). The IgM-type rheumatoid factor titer was determined by dropping a diluted specimen onto an IgG-attached plate, performing an antigen-antibody reaction, dropping a peroxidase-labeled anti-human immunoglobulin antibody, and measuring the enzyme color reaction by SLT-
It was measured by 210 (trade name, manufactured by Labo Science Co., Ltd.). Table 1 shows the names of the compounds having an anionic functional group immobilized on each adsorbent, and the rheumatoid factor titer in the fraction passed through relative to the rheumatoid factor titer of the original serum of each adsorbent as a relative rheumatoid factor titer in percentage. Show. Table 1 shows that the adsorbent on which sodium dextran sulfate, which is a compound having a sulfate group having a large molecular weight, is immobilized has particularly excellent ability to bind to the rheumatoid factor of IgM type. Example 6 Relative rheumatoid factor titers were determined in the same manner as in Example 5, except that the adsorbents obtained in Examples 1 to 3 and Comparative Examples 6 to 10 were used. The results are shown in Table 2 together with various water-insoluble porous body names. Table 2 shows that the porous cellulose bodies (cellulose GC-700, cellulose GC-200m and cellulose GCL-90) having a small exclusion limit molecular weight have low rheumatoid factor binding ability. Further, it can be seen that even when the exclusion limit molecular weight is large, the binding ability to rheumatoid factor is low even when the porous cellulose body is not used (in the case of Sepharose CL-6B and hydrogen FP-HG). Example 7 Rheumatoid factor-positive patient serum was separated by Sephadex G-200
The liquid was passed through the column to separate the IgM component from the IgG and albumin components. 2 ml of the separated IgM fraction was passed in the same manner as in Example 5 and further washed with 1 ml of 0.15 M Tris-HCl buffer, pH 7.6. The relative rheumatoid factor titer of the survived fraction was determined. It was measured. As a result, no IgM rheumatoid factor was detected in the slip-through fraction. From this, it is presumed that the rheumatoid factor is not adsorbed via IgG molecules, but is adsorbed directly to the adsorbent. [Advantage of the Invention] The adsorbent of the present invention and the apparatus for removing rheumatoid factor using the same have an effect of selectively removing rheumatoid factor from body fluids.

【図面の簡単な説明】 第1図は3種のゲルを用いて流速と圧力損失との関係を
調べた結果を示すグラフである。 第2図は本発明のリウマチ因子の除去装置の一実施例の
概略断面図である。 (図面の主要符号) (1):流入口 (2):流出口 (3):吸着体 (4)、(5):フィルター (7):容器
BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS FIG. 1 is a graph showing the results of examining the relationship between flow rate and pressure loss using three types of gels. FIG. 2 is a schematic sectional view of one embodiment of the apparatus for removing rheumatoid factor of the present invention. (Main symbols in the drawings) (1): Inlet (2): Outlet (3): Adsorbent (4), (5): Filter (7): Container

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献 特開 昭60−90039(JP,A) 特開 昭59−186558(JP,A) 特開 昭59−186559(JP,A) 特開 昭59−186560(JP,A)   ────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page                   (56) References JP-A-60-90039 (JP, A)                 JP-A-59-186558 (JP, A)                 JP-A-59-186559 (JP, A)                 JP-A-59-186560 (JP, A)

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】 1.球状蛋白質の排除限界分子量が100万以上6000万以
下である多孔質セルロース体に硫酸エステル基を有する
分子量1000以上のポリアニオン化合物が固定されてなる
リウマチ因子の吸着体。 2.流体の流入口および流出口を有する容器、流体およ
び該流体に含まれる成分は通過できるが、球状蛋白質の
排除限界分子量が100万以上6000万以下である多孔質セ
ルロース体に硫酸エステル基を有する分子量1000以上の
ポリアニオン化合物が固定されてなるリウマチ因子の吸
着体は通過できないフィルター、および前記容器内に充
填された前記リウマチ因子の吸着体からなるリウマチ因
子の除去装置。
(57) [Claims] An adsorbent for rheumatoid factor, in which a polyanion compound having a sulfate group and a molecular weight of 1,000 or more is immobilized on a porous cellulose body having an exclusion limit molecular weight of a spherical protein of 1,000,000 to 60,000,000. 2. A container having an inlet and an outlet for a fluid, the fluid and components contained in the fluid can pass through, but the exclusion limit molecular weight of the globular protein is 1,000,000 or more and 60,000,000 or less. A filter through which an adsorbent of rheumatoid factor having 1000 or more polyanion compounds immobilized cannot pass, and a device for removing a rheumatoid factor comprising an adsorbent of rheumatoid factor filled in the container.
JP62224473A 1987-09-08 1987-09-08 Adsorbent and removal device using the same Expired - Fee Related JP2726662B2 (en)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP62224473A JP2726662B2 (en) 1987-09-08 1987-09-08 Adsorbent and removal device using the same
CA000566914A CA1327963C (en) 1987-09-08 1988-05-16 Autoantibody adsorbent and apparatus for removing autoantibodies using the same
DE3889400T DE3889400T2 (en) 1987-09-08 1988-05-17 Use of adsorbent and device for the separation of autoantibodies.
EP88107853A EP0306617B1 (en) 1987-09-08 1988-05-17 Use of Adsorbent and of apparatus for removing autoantibodies
US07/866,269 US5258503A (en) 1987-09-08 1992-04-13 Autoantibody adsorbent and apparatus for removing autoantibodies using the same

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP62224473A JP2726662B2 (en) 1987-09-08 1987-09-08 Adsorbent and removal device using the same

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPS6468273A JPS6468273A (en) 1989-03-14
JP2726662B2 true JP2726662B2 (en) 1998-03-11

Family

ID=16814345

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP62224473A Expired - Fee Related JP2726662B2 (en) 1987-09-08 1987-09-08 Adsorbent and removal device using the same

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP2726662B2 (en)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8088833B2 (en) * 2006-04-25 2012-01-03 Tosoh Corporation Method for purifying an IgG monomer

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS59186559A (en) * 1983-04-06 1984-10-23 旭化成株式会社 Self-antibody and/or immunological composite adsorbing material
JPS59186558A (en) * 1983-04-06 1984-10-23 旭化成株式会社 Adsorbing material of self-antibody and/or immunological composite
JPS59186560A (en) * 1983-04-06 1984-10-23 旭化成株式会社 Adsorbing material of self-antibody immnological composite
JPS6090039A (en) * 1983-10-21 1985-05-21 Asahi Chem Ind Co Ltd Blood purifying adsorbing body

Also Published As

Publication number Publication date
JPS6468273A (en) 1989-03-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0110409B1 (en) Adsorbent and process for preparing the same
US5258503A (en) Autoantibody adsorbent and apparatus for removing autoantibodies using the same
EP0306617A2 (en) Use of Adsorbent and of apparatus for removing autoantibodies
JPH0256104B2 (en)
JPH01119264A (en) Adsorbent and removing device therewith
JPH0518625B2 (en)
JPS59193135A (en) Adsorbing body
JPH01181875A (en) Adsorptive body of immune complex and removing device for immune complex with it
JP2726662B2 (en) Adsorbent and removal device using the same
JPS62192172A (en) Adsorbing body
JPH0622632B2 (en) Adsorbent and removal device
JP3084436B2 (en) Anti-DNA antibody removal device
JPS59169532A (en) Adsorbing material of c-reactive protein
JP3251547B2 (en) Immune complex removal device
JPS6226073A (en) Method and apparatus for direct infusion and adsorption of blood
JPS59186559A (en) Self-antibody and/or immunological composite adsorbing material
JPH01265972A (en) Removing method of harmful component in humors
JPH025096B2 (en)
JPH0771632B2 (en) Adsorbent and removal device using the same
JP3084437B2 (en) Anti-lipid antibody removal device
JP2983955B2 (en) Device for removing glomerular basement membrane adhering protein
JPH0523395A (en) Blood purifying adsorbent
JPS6361024B2 (en)
JPH0611335B2 (en) Adsorbent and removal device
JPH05285381A (en) Low-specific gravity lipoprotein adsorptive material

Legal Events

Date Code Title Description
S533 Written request for registration of change of name

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313533

R350 Written notification of registration of transfer

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350

LAPS Cancellation because of no payment of annual fees