JP2721975B2 - Method for producing L-lysine - Google Patents

Method for producing L-lysine

Info

Publication number
JP2721975B2
JP2721975B2 JP19060588A JP19060588A JP2721975B2 JP 2721975 B2 JP2721975 B2 JP 2721975B2 JP 19060588 A JP19060588 A JP 19060588A JP 19060588 A JP19060588 A JP 19060588A JP 2721975 B2 JP2721975 B2 JP 2721975B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
lysine
present
biotin
glucose
aqueous solution
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
JP19060588A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPH0242995A (en
Inventor
幸江 佐藤
真美 貝沼
昭一 奈良
真人 寺沢
英明 湯川
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Mitsubishi Chemical Corp
Original Assignee
Mitsubishi Chemical Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Mitsubishi Chemical Corp filed Critical Mitsubishi Chemical Corp
Priority to JP19060588A priority Critical patent/JP2721975B2/en
Publication of JPH0242995A publication Critical patent/JPH0242995A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP2721975B2 publication Critical patent/JP2721975B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 (産業上の利用分野) 本発明は、酵素反応による新規なL−リジンの製造法
に関するものである。
The present invention relates to a novel method for producing L-lysine by an enzymatic reaction.

本発明によれば、高収量で効率よくL−リジンを製造
することができる。
According to the present invention, L-lysine can be efficiently produced with high yield.

L−リジンは、必須アミノ酸の一つとして人間及び動
物の栄養上重要な役割をするもので、医薬、食品、飼料
添加剤等の需要が近年急激に増加している。
L-lysine plays an important role in human and animal nutrition as one of the essential amino acids, and the demand for pharmaceuticals, foods, feed additives and the like has been rapidly increasing in recent years.

(従来の技術と課題) L−リジンの工業的製法としては、他のアミノ酸の場
合と同様に立体異性体が存在するので、化学合成法では
L−体のみの製造は困難となり、主として醗酵法によっ
ている。
(Conventional technology and problems) As an industrial method for producing L-lysine, stereoisomers exist as in the case of other amino acids, and it is difficult to produce only the L-isomer by a chemical synthesis method. Depending on.

しかしながら、公知の醗酵法によるL−リジンの製法
では、対糖収率が低いことや、L−リジンの蓄積に限界
があり、新たな観点でL−リジンをより効果的に生成さ
せる方法の提供が強く求められている。
However, in the production method of L-lysine by a known fermentation method, the yield to sugar is low and the accumulation of L-lysine is limited, and a method for producing L-lysine more effectively from a new viewpoint is provided. Is strongly required.

(発明の構成及び効果) 本発明は、ビオチン要求性かつS−(2−アミノエチ
ル)−L−(−)システイン〔以下AECと記す〕耐性を
有し、コリネ型細菌に属する微生物菌体をグルコースを
含有する水溶液にて酵素反応させて該溶液中にL−リジ
ンを生成せしめ、これからL−リジンを採取することを
特徴とするL−リジンの製造法を提供するものである。
(Structure and Effect of the Invention) The present invention relates to a microbial cell belonging to a coryneform bacterium, which is biotin-requiring and resistant to S- (2-aminoethyl) -L-(-) cysteine (hereinafter referred to as AEC). An object of the present invention is to provide a method for producing L-lysine, wherein an enzymatic reaction is carried out in an aqueous solution containing glucose to produce L-lysine in the solution, and L-lysine is collected therefrom.

本発明によれば、グルコースを含有する水溶液中で、
ビオチン要求性かつAEC耐性を有し、コリネ型細菌に属
する微生物菌体を酵素源として用いて酵素反応をさせる
と、該水溶液中にL−リジンが生成し、高収量で得られ
る。
According to the present invention, in an aqueous solution containing glucose,
When an enzymatic reaction is performed using microbial cells belonging to coryneform bacterium which have biotin requirement and AEC resistance as an enzyme source, L-lysine is produced in the aqueous solution and a high yield can be obtained.

本発明の方法は酵素法であり、従来の醗酵法に比較
し、グルコースを含有する水溶液として、グルコースを
含有する完全合成培地を使用した場合でも、醗酵法で必
要とされる培地の滅菌等の煩雑な操作が必要でないので
生産管理が大幅に容易になるなど、工業的に効率よくL
−リジンが製造できる。
The method of the present invention is an enzymatic method. Compared to the conventional fermentation method, even when a completely synthetic medium containing glucose is used as an aqueous solution containing glucose, sterilization of the medium required in the fermentation method can be performed. Since complicated operations are not required, production management is greatly facilitated.
-Lysine can be produced.

(発明の具体的説明) 本発明の方法は、微生物菌体の増殖を全く伴わない条
件下にL−リジンを製造する、酵素反応系を利用したL
−リジンの製造法を提供するものであり、この様な方法
は従来全く知られていない新規な方法である。
(Detailed Description of the Invention) The method of the present invention uses an enzyme reaction system to produce L-lysine under conditions without any growth of microbial cells.
The present invention provides a method for producing lysine, and such a method is a novel method which has never been known before.

本発明に使用される微生物は、ビオチン要求性かつAE
C耐性を有し、コリネ型細菌に属するものである。本発
明に使用される微生物としては例えば、ブレビバクテリ
ウム・フラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233−
L−11(微工研菌寄 第10094号、以下MJ−233−L−11
と記す)、ブレビバクテリウム・フラバム(Brevibacte
rium flavum)MJ−233−L−12(微工研菌寄 第10095
号、以下MJ−233−L−12と記す)であり、これらの菌
が本発明に好適に用いられる。
The microorganism used in the present invention is biotin-requiring and AE
It has C resistance and belongs to coryneform bacteria. Examples of the microorganism used in the present invention include Brevibacterium flavum MJ-233-
L-11 (Microbial Research Laboratories No. 10094; hereinafter, MJ-233-L-11)
), Brevibacte flavum
rium flavum) MJ-233-L-12
No. MJ-233-L-12), and these bacteria are suitably used in the present invention.

なお、上記のMJ−233−L−11及びMJ−233−L−12
は、ブレビバクテリウム・フラバム(Brevibacterium
flavum)MJ−(微工研条寄第1497号:微工研菌寄 第30
68号)〔以下MJ−233と記す〕を親株として、AEC耐性を
積極的に付与された微生物である。
The above MJ-233-L-11 and MJ-233-L-12
Is Brevibacterium flavum
flavum) MJ- (Microtechnical Lab. No. 1497: Microtechnical Lab. No. 30)
No. 68) [hereinafter referred to as MJ-233] as a parent strain, and a microorganism positively imparted with AEC resistance.

本発明にみられるビオチン要求性かつAEC耐性を有
し、コリネ型細菌に属する微生物は、微生物菌体そのま
まで用いることも出来るし、又これらを公知の手法で固
定化された固定化物を使用することも出来る。この固定
化手法としては、菌体をアクリルアミド等の重合性モノ
マーを用いたり、アルギン酸塩あるいはカラギーナン等
の適当な担体に不溶化させる等がある。
The microorganism belonging to the coryneform bacterium which has biotin requirement and AEC resistance seen in the present invention can be used as it is, or an immobilized product obtained by immobilizing them by a known method can be used. You can do it. Examples of the immobilization method include using a polymerizable monomer such as acrylamide or insolubilizing cells in a suitable carrier such as alginate or carrageenan.

本発明において使用する耐性変異株は、次の操作によ
って得られる。
The resistant mutant used in the present invention is obtained by the following operation.

紫外線照射、あるいは化学的薬剤(例えばN−メチル
−N′−ニトロ−N−ニトロソグアニジン等)処理によ
り該L−イソロイシン生産菌株に変異を誘起せしめた
後、この菌懸濁液をAEC及びL−スレオニンを含有する
平板培地(尿素0.2%、硫安0.7%、KH2PO40.05%、K2HP
O40.05%、MgSO4・7H2O0.05%、FeSO4・7H2O6mg/、Mn
SO4・4〜6H2O6mg/、ZnSO4・7H2O6mg/、ビオチン20
0μg/、チアミン塩酸塩100μg/、AEC2g/、L−ス
レオニン1.2g/、寒天2.0%、グルコース2%)に滅菌
後添加し、30℃にて数日間培養し生じた大コロニーを分
離することにより、耐性変異株を得る。代表的な耐性変
異株としてはブレビバクテリウム・フラバム(Brevibac
terium flavum)MJ−233−L−11があり、この菌株
は、工業技術院微生物工業研究所に微工研菌寄第10094
号として寄託されている。この耐性菌株はブレビバクテ
リウム・フラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233
(微工研条寄 第1497号)より、AEC耐性株として誘導
されたものである。
Mutagenesis was induced in the L-isoleucine-producing strain by ultraviolet irradiation or treatment with a chemical agent (for example, N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine or the like). Plate medium containing threonine (urea 0.2%, ammonium sulfate 0.7%, KH 2 PO 4 0.05%, K 2 HP
O 4 0.05%, MgSO 4 · 7H 2 O0.05%, FeSO 4 · 7H 2 O6mg /, Mn
SO 4 · 4~6H 2 O6mg /, ZnSO 4 · 7H 2 O6mg /, biotin 20
0 μg /, thiamine hydrochloride 100 μg /, AEC2 g /, L-threonine 1.2 g /, agar 2.0%, glucose 2%), sterilized, cultured at 30 ° C. for several days, and separated into large colonies. , To obtain a resistant mutant. Typical resistant mutants include Brevibacterium flavum
terium flavum) MJ-233-L-11, and this strain is supplied to the Institute of Microbial Industry, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology
No. has been deposited. This resistant strain is Brevibacterium flavum MJ-233.
(Microtechnological Research Institute No. 1497) derived as an AEC resistant strain.

前記のMJ−233−L−11(AEC耐性株)、MJ−233−L
−12(AEC耐性株)とその親株であるMJ−233のAECに対
する相対生育度は次の表−1の如くである。
MJ-233-L-11 (AEC resistant strain), MJ-233-L
Table 1 shows the relative growth of -12 (AEC-resistant strain) and its parent strain, MJ-233, with respect to AEC.

使用培地組成: 尿素 0.2%、硫安 0.7%、KH2PO4 0.05%、K2HPO4
0.05%、MgSO4・7H2O 0.05%、FeSO4・7H2O 6mg/、
MnSO4・4〜6H2O 6mg/、ZnSO4・7H2O 6mg/、ビオ
チン 200μg/、チアミン塩酸塩 100μg/(AECは
表−1に示す量を加える) 培養方法: 上記培地10mlを24φ大型試験管に分注、120℃10分間
滅菌後、MJ−233−L−11株を各々接種し、グルコース
を無菌条件下にて、2%添加し、30℃、20時間振盪培養
を行った。
Media composition: urea 0.2%, ammonium sulfate 0.7%, KH 2 PO 4 0.05%, K 2 HPO 4
0.05%, MgSO 4 · 7H 2 O 0.05%, FeSO 4 · 7H 2 O 6mg /,
MnSO 4 · 4~6H 2 O 6mg / , ZnSO 4 · 7H 2 O 6mg /, biotin 200 [mu] g /, (the AEC added in an amount shown in Table 1) Thiamine hydrochloride 100 [mu] g / culture method: 24Fai large the medium 10ml After dispensing into test tubes and sterilizing at 120 ° C for 10 minutes, MJ-233-L-11 strain was inoculated, glucose was added under aseptic conditions at 2%, and shaking culture was performed at 30 ° C for 20 hours.

なお、本願発明においてAEC耐性株又は、AECに耐性を
有する微生物とは、AEC 0.2%を、上記(注−2)の培
地に加え、30℃20時間振盪培養した時の相対生育度が80
以上のものと定義する。但し、 とする。
In the present invention, the term “AEC-resistant strain” or “microorganism having resistance to AEC” means that AEC 0.2% is added to the above-mentioned (Note-2) medium, and the relative growth rate when cultured with shaking at 30 ° C. for 20 hours is 80%.
Defined above. However, And

本発明の方法に使用される上記のビオチン要求性かつ
AEC耐性を有し、コリネ型細菌に属する微生物菌体の調
製に使用する培地は、特に限定されるものではなく一般
の微生物に使用されるものでよい。
The above biotin requirement used in the method of the present invention and
The medium used for preparing microbial cells having AEC resistance and belonging to the coryneform bacterium is not particularly limited, and may be one used for general microorganisms.

本発明に使用する微生物菌体の調製に使用する培地の
窒素源としてはアンモニア、硫酸アンモニウム、塩化ア
ンモニウム、硝酸アンモニウム、尿素等を単独若しくは
混合して用いることが出来る。
Ammonia, ammonium sulfate, ammonium chloride, ammonium nitrate, urea and the like can be used alone or in combination as a nitrogen source of a medium used for preparing the microbial cells used in the present invention.

無機塩としては、リン酸一水素カリウム、リン酸二水
素カリウム、硫酸マグネシウム等が用いられる。この他
に菌の生育及びL−リジン生成に必要であれば、ペプト
ン、肉エキス、酵母エキス、コーンスティープリカー、
カザミノ酸、各種ビタミン等の栄養素を培地に添加し用
いる。
As the inorganic salt, potassium monohydrogen phosphate, potassium dihydrogen phosphate, magnesium sulfate and the like are used. In addition, if necessary for the growth of bacteria and L-lysine production, peptone, meat extract, yeast extract, corn steep liquor,
Nutrients such as casamino acids and various vitamins are added to the medium and used.

培養は通気撹拌、振盪等の好気的条件下で行い、培養
温度は20〜40℃、好ましくは25〜35℃で行う。培養途中
のpHは5〜10、好ましくは7〜8付近にて行い、培養中
のpHの調節には酸、アルカリを添加して行う。
The cultivation is performed under aerobic conditions such as aeration stirring and shaking, and the culturing temperature is 20 to 40 ° C, preferably 25 to 35 ° C. The pH during the culturing is adjusted to 5 to 10, preferably around 7 to 8. The pH during the culturing is adjusted by adding an acid or an alkali.

培養開始時のグルコース濃度は、好ましくは1〜5重
量%、更に好ましくは2〜3重量%が適する。培養期間
は0.5〜3日間、最適期間は1〜2日間である。
The glucose concentration at the start of the culture is preferably 1 to 5% by weight, more preferably 2 to 3% by weight. The culture period is 0.5 to 3 days, and the optimal period is 1 to 2 days.

このようにして得られた培養物から菌体を集めて、水
又は適当な緩衝液で洗浄し、本発明の方法の酵素反応に
使用する。
The cells are collected from the culture thus obtained, washed with water or a suitable buffer, and used for the enzymatic reaction of the method of the present invention.

本発明の方法においては、上記で調製された微生物菌
体(ここには、その固定化物も含まれる)の存在下、少
なくともグルコースを含有する水溶液にて酵素反応させ
る。ここで該水溶液に添加されるグルコースの濃度は0.
5〜20重量%、好ましくは1〜10重量%である。
In the method of the present invention, an enzymatic reaction is performed in an aqueous solution containing at least glucose in the presence of the microbial cells prepared above (including the immobilized product thereof). Here, the concentration of glucose added to the aqueous solution is 0.
It is 5 to 20% by weight, preferably 1 to 10% by weight.

該水溶液は、上記の様にグルコースを含有する水ある
いはリン酸又はトリス塩酸塩等の緩衝液を用いることも
できるが、好ましくはグルコースを含有する完全合成培
地が用いられる。ここで完全合成培地とは、化学構造が
公知の無機窒素源及び/又は無機塩を含有する水溶液で
ある。本発明に用いられる完全合成培地の無機窒素源と
しては、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニ
ウム、硫酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等が例示
でき、また無機塩としては、リン酸一水素カリウム、リ
ン酸二水素カリウム、硫酸マグネシウム、硫酸マンガ
ン、硫酸鉄等が例示される。これらの無機窒素源、無機
塩は、単独でも2種以上混合して用いることもできる。
As the aqueous solution, glucose-containing water or a buffer such as phosphoric acid or tris hydrochloride can be used as described above, but preferably, a complete synthetic medium containing glucose is used. Here, the complete synthetic medium is an aqueous solution containing an inorganic nitrogen source and / or an inorganic salt whose chemical structure is known. Examples of the inorganic nitrogen source of the complete synthetic medium used in the present invention include ammonia, ammonium chloride, ammonium sulfate, ammonium sulfate, and ammonium phosphate.Examples of the inorganic salts include potassium monohydrogen phosphate, potassium dihydrogen phosphate, Examples thereof include magnesium sulfate, manganese sulfate, and iron sulfate. These inorganic nitrogen sources and inorganic salts can be used alone or in combination of two or more.

これら無機窒素源及び/又は無機塩の水溶液としての
濃度は、通常の微生物菌体の培養に使用される培地と同
程度の範囲でよく、特に限定されない。
The concentration of the inorganic nitrogen source and / or the inorganic salt as an aqueous solution may be in the same range as a medium used for culturing ordinary microbial cells, and is not particularly limited.

完全合成培地の一例を示すと、(NH42SO42g/;KH2
PO40.5g/;K2HPO40.5g/;MgSO4・7H2O0.5g/;FeSO4
・7H2O 20ppm;MnSO4・4〜6H2O 20ppm含有するpH 7.
6の水溶液がある。
An example of a complete synthetic medium is (NH 4 ) 2 SO 4 2 g /; KH 2
PO 4 0.5 g /; K 2 HPO 4 0.5 g /; MgSO 4・ 7H 2 O 0.5 g /; FeSO 4
· 7H 2 O 20ppm; MnSO 4 · 4~6H 2 O 20ppm pH 7 containing.
There are 6 aqueous solutions.

上記の様に、本発明に使用される完全合成培地には、
ビオチン又はビオチンを含む天然物は含有されない。ビ
オチンの含有されないことの明らかな化学構造公知のア
ミノ酸、ビタミン、糖類等は添加することはできる。
As described above, the complete synthetic medium used in the present invention includes:
It does not contain biotin or natural products containing biotin. Amino acids, vitamins, saccharides, and the like having a known chemical structure that does not contain biotin can be added.

本発明の方法において使用される、上記の様に調製さ
れた微生物菌体の使用量は、特に制限されるものではな
いが、一般に1〜50%(wt/vol)の濃度で使用すること
ができる。
The amount of the microbial cells prepared as described above used in the method of the present invention is not particularly limited, but is generally used at a concentration of 1 to 50% (wt / vol). it can.

本発明において、酵素反応は、約20〜約50℃、好まし
くは約30〜約40℃の温度で、通常約10〜約72時間行われ
る。
In the present invention, the enzymatic reaction is carried out at a temperature of about 20 to about 50C, preferably about 30 to about 40C, usually for about 10 to about 72 hours.

上記酵素反応は、反応に用いられるグルコースを含有
する水溶液、好ましくは上述のグルコースを含有する完
全合成培地中の溶存酸素濃度が0.05ppm以上、8ppm以下
となる様に、反応系中に空気若しくは酸素を、連続又は
間歇的に供給して行うのが好ましい。
The enzymatic reaction is carried out in an air or oxygen atmosphere in the reaction system so that the concentration of dissolved oxygen in an aqueous solution containing glucose used for the reaction, preferably a complete synthetic medium containing glucose becomes 0.05 ppm or more and 8 ppm or less. Is preferably supplied continuously or intermittently.

上記のような反応方法によつて得られる反応液注に生
成したL−リジンの分離・精製は、醗酵法による場合の
アミノ酸の分離・精製と同様に行え、例えば公知のイオ
ン交換処理法あるいは、沈澱法等により行うことができ
る。
Separation and purification of L-lysine produced in the reaction solution injection obtained by the above reaction method can be performed in the same manner as separation and purification of amino acids in the case of fermentation. For example, a known ion exchange method or It can be performed by a precipitation method or the like.

実験例 以下の実験例において、L−リジンの定性は、ペーパ
ークロマトグラフのRf値、電気泳動法の移動度、微生物
定量法による生物活性値により確認した。定量はマイク
ロバイオアッセイ法と高速度液体クロマトグラフィー
(島津LC−5A)とを併用して行った。また、下記の実施
例において%と表したのは重量%を意味する。
EXPERIMENTAL EXAMPLES In the following experimental examples, the qualitative properties of L-lysine were confirmed by the Rf value of paper chromatography, the mobility of electrophoresis, and the biological activity value by microbial quantification. The quantification was performed using a microbioassay and high-speed liquid chromatography (Shimadzu LC-5A) in combination. In the following examples, “%” means “% by weight”.

実施例−1 培地(尿素 0.4%、硫酸アンモニウム 1.4%、KH2P
O40.05%、K2HPO40.05%、MgSO4・7H2O 0.05%、CaCl2
・2H2O 2ppm、FeSO4・7H2O 2ppm、MnSO4・4〜6H2O
2ppm、ZnSO4・7H2O 2ppm、NaCl 2ppm、ビオチン 200
μg/、チアミン・HCl 100μg/、カザミノ酸 0.1
%、酵母エキス 0.1%)100mlを500ml容三角フラスコ
に分注、滅菌(滅菌後pH 7.0)した後ブレビバクテリ
ウム・フラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233−
L−11(微工研菌寄 第10094号)を植菌し、無菌的に
グルコースを5g/の濃度になるように加え、30℃にて
2日間振盪培養を行った。
Example-1 Medium (0.4% urea, 1.4% ammonium sulfate, KH 2 P
O 4 0.05%, K 2 HPO 4 0.05%, MgSO 4・ 7H 2 O 0.05%, CaCl 2
・ 2H 2 O 2ppm, FeSO 4・ 7H 2 O 2ppm, MnSO 4・ 4〜6H 2 O
2ppm, ZnSO 4 · 7H 2 O 2ppm, NaCl 2ppm, biotin 200
μg /, Thiamine / HCl 100 μg /, Casamino acid 0.1
%, Yeast extract 0.1%) in a 500 ml Erlenmeyer flask, sterilized (pH 7.0 after sterilization), and then Brevibacterium flavum MJ-233-
L-11 (Microtechnical Laboratories No. 10094) was inoculated, glucose was aseptically added to a concentration of 5 g /, and cultured with shaking at 30 ° C. for 2 days.

次に、本培養培地(グルコース5%、硫酸アンモニウ
ム2.3%、KH2PO40.05%、K2HPO40.05%、MgSO4・7H2O0.
05%、FeSO4・7H2O 20ppm、MnSO4・4〜6H2O 20ppm、
ビオチン 200μg/、チアミン・HCl 100μg/、カ
ザミノ酸 0.3%、酵母エキス 0.3%)の1000mlを2
容通気撹拌槽に仕込み、滅菌(120℃、20分間)後、前
記前培養物の20mlを添加して、回転数1000rpm、通気量1
vvm、温度33℃、pH7.6にて24時間培養を行った。
Then, the culture medium (5% glucose, ammonium sulfate 2.3%, KH 2 PO 4 0.05 %, K 2 HPO 4 0.05%, MgSO 4 · 7H 2 O0.
05%, FeSO 4 · 7H 2 O 20ppm, MnSO 4 · 4~6H 2 O 20ppm,
1000ml of biotin 200μg /, thiamine / HCl 100μg /, casamino acid 0.3%, yeast extract 0.3%)
After charging into a vented agitating tank and sterilizing (120 ° C., 20 minutes), 20 ml of the above preculture was added, and the rotation speed was 1000 rpm and the aerated amount was 1
The cells were cultured at vvm, a temperature of 33 ° C. and pH 7.6 for 24 hours.

培養終了後、培養物500mlから遠心分離にて集菌後、
脱塩蒸留水にて2度洗浄した菌体を反応液〔(NH42SO
42g/;KH2PO40.5g/;KH2PO40.5g/;MgSO4・7H2O 0.
5g/;FeSO4・7H2O 20ppm;MnSO4・4〜6H2O 20ppm;チ
アミン塩酸塩 100μg/;pH7.6〕の1000mlに懸濁後、
該懸濁液を2容通気撹拌槽に仕込み、グルコース9gを
添加して、回転数300rpm、通気量0.1vvm、温度33℃、pH
7.6にて24時間反応を行った。
After cultivation, after collecting cells by centrifugation from 500 ml of culture,
The cells washed twice with demineralized distilled water were added to the reaction solution [(NH 4 ) 2 SO
4 2 g /; KH 2 PO 4 0.5 g /; KH 2 PO 4 0.5 g /; MgSO 4・ 7H 2 O 0.
5g /; FeSO 4 · 7H 2 O 20ppm; MnSO 4 · 4~6H 2 O 20ppm; was suspended in 1000ml of pH7.6],; thiamine hydrochloride 100 [mu] g /
The suspension was charged into a 2-volume aeration stirred tank, 9 g of glucose was added, the number of revolutions was 300 rpm, the amount of aeration was 0.1 vvm, the temperature was 33 ° C., and the pH was
The reaction was performed at 7.6 for 24 hours.

反応終了後、遠心分離(4000rpm、15分間、4℃)に
て除菌した上清液中のL−リジンを定量した。
After the completion of the reaction, L-lysine was quantified in the supernatant obtained by centrifugation (4000 rpm, 15 minutes, 4 ° C.).

この反応終了後の培養液500mlを、強酸性陽イオン交
換樹脂(H+型)のカラムに通してL−リジンを吸着さ
せ、水洗後、0.5Nアンモニア水で溶出させた後、L−リ
ジン画分を濃縮し、冷エタノールでL−リジンの結晶を
析出させた。結果を次に掲げる第1表に示した。
After completion of the reaction, 500 ml of the culture solution was passed through a column of a strongly acidic cation exchange resin (H + type) to adsorb L-lysine, washed with water, eluted with 0.5N aqueous ammonia, and then subjected to L-lysine extraction. The mixture was concentrated and L-lysine crystals were precipitated with cold ethanol. The results are shown in Table 1 below.

実施例−2 実施例−1と同様の条件にてブレビバクテリウム・フ
ラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233−L−12
(微工研菌寄 第10095号)を培養し、また実施例−1
と同様の条件にて反応させた後上清液中のL−リジンを
定量した。また、実施例−1と同様にしてL−リジンの
結晶を析出させた。結果は第2表に示した。
Example 2 Brevibacterium flavum MJ-233-L-12 under the same conditions as in Example 1
(Microbial Lab. No. 10095) and Example 1
After reacting under the same conditions as described above, L-lysine in the supernatant was quantified. Further, L-lysine crystals were precipitated in the same manner as in Example-1. The results are shown in Table 2.

実施例−1と同様の条件にて、ブレビバクテリウム・
フラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233を培養
し、また、実施例−1と同様の条件にて反応させた後上
清液中のL−リジンを定量したところ、0.06g/であっ
た。
Under the same conditions as in Example-1, Brevibacterium
Flavam (Brevibacterium flavum) MJ-233 was cultured, and reacted under the same conditions as in Example 1. After quantifying L-lysine in the supernatant, the yield was 0.06 g /.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 寺沢 真人 茨城県稲敷郡阿見町中央8丁目3番1号 三菱油化株式会社中央研究所内 (72)発明者 湯川 英明 茨城県稲敷郡阿見町中央8丁目3番1号 三菱油化株式会社中央研究所内 ──────────────────────────────────────────────────続 き Continuing from the front page (72) Inventor Masato Terasawa 8-3-1 Chuo, Ami-cho, Inashiki-gun, Ibaraki Pref. Inside the Central Research Laboratory of Mitsubishi Yuka Co., Ltd. (72) Inventor Hideaki Yukawa 8 Ami-cho, Inashiki-gun, Ibaraki Chome 3-1, Mitsubishi Yuka Corporation Central Research Laboratory

Claims (2)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】ビオチン要求性かつS−(2−アミノエチ
ル)−L−(−)システイン耐性を有し、コリネ型細菌
に属する微生物菌体の存在下、グルコースを含有する水
溶液にて酵素反応させて該溶液中にL−リジンを生成せ
しめ、これからL−リジンを採取することを特徴とする
L−リジンの製造法。
An enzyme reaction in an aqueous solution containing glucose in the presence of a microbial cell belonging to coryneform bacterium, which is biotin-requiring and has S- (2-aminoethyl) -L-(-) cysteine resistance. And producing L-lysine in the solution, and collecting L-lysine from the solution.
【請求項2】水溶液が完全合成培地である特許請求の範
囲第1項記載の方法。
2. The method according to claim 1, wherein the aqueous solution is a completely synthetic medium.
JP19060588A 1988-08-01 1988-08-01 Method for producing L-lysine Expired - Lifetime JP2721975B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP19060588A JP2721975B2 (en) 1988-08-01 1988-08-01 Method for producing L-lysine

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP19060588A JP2721975B2 (en) 1988-08-01 1988-08-01 Method for producing L-lysine

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPH0242995A JPH0242995A (en) 1990-02-13
JP2721975B2 true JP2721975B2 (en) 1998-03-04

Family

ID=16260851

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP19060588A Expired - Lifetime JP2721975B2 (en) 1988-08-01 1988-08-01 Method for producing L-lysine

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP2721975B2 (en)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2990735B2 (en) * 1990-04-20 1999-12-13 味の素株式会社 Fermentative production of L-lysine
JP2943312B2 (en) * 1990-10-29 1999-08-30 味の素株式会社 Production method of L-lysine by fermentation method

Also Published As

Publication number Publication date
JPH0242995A (en) 1990-02-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4197754B2 (en) Method for producing lactic acid or succinic acid
JPS6321479B2 (en)
JPH0362394B2 (en)
JP3704737B2 (en) Method for producing L-leucine
JP2721975B2 (en) Method for producing L-lysine
JPS6224074B2 (en)
JPH0644871B2 (en) Fermentation method for producing L-leucine
JP2516625B2 (en) Method for producing L-threonine
JP2942995B2 (en) Method for producing L-alanine
JP2582806B2 (en) Method for producing L-isoleucine
KR910008636B1 (en) Process for producing l - arginine
JP2582808B2 (en) Method for producing L-isoleucine
JP2521095B2 (en) Method for producing L-isoleucine
JPH0347838B2 (en)
JP2721990B2 (en) Method for producing L-isoleucine
JPH0822234B2 (en) Method for producing L-valine
JP2582810B2 (en) Method for producing L-isoleucine
JP2582805B2 (en) Method for producing L-threonine
JP2716470B2 (en) Method for producing L-isoleucine
JP2716473B2 (en) Method for producing L-isoleucine
JPH02295491A (en) Preparation of l-isoleucine
JP2721989B2 (en) Method for producing L-isoleucine
JPH0657155B2 (en) Method for producing L-valine
JPS6342692A (en) Production of l-isoleucine
JPH0822232B2 (en) Method for producing L-isoleucine