JP2528124B2 - Reverse transcriptase expression plasmid and method for producing the same - Google Patents

Reverse transcriptase expression plasmid and method for producing the same

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JP2528124B2
JP2528124B2 JP62133640A JP13364087A JP2528124B2 JP 2528124 B2 JP2528124 B2 JP 2528124B2 JP 62133640 A JP62133640 A JP 62133640A JP 13364087 A JP13364087 A JP 13364087A JP 2528124 B2 JP2528124 B2 JP 2528124B2
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plasmid
reverse transcriptase
dna
dna fragment
amino acid
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智正 神田
薫 西郷
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ニッカウヰスキ−株式会社
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    • C12N9/12Transferases (2.) transferring phosphorus containing groups, e.g. kinases (2.7)
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Description

【発明の詳細な説明】 [産業上の利用分野] 本発明は逆転写酵素の発現活性が極めて高い逆転写酵
素の発現プラスミドとその製造方法に関するものであ
る。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a reverse transcriptase expression plasmid having extremely high reverse transcriptase expression activity and a method for producing the same.

[従来の技術] 遺伝子工学的手法による蛋白質の発現や、蛋白工学等
のバイオテクノロジー利用技術の開発が盛んに行なわれ
るようになってきた今日、より優れた技術開発が大いに
期待されている。この遺伝子工学において、cDNA(RNA
に相補的な塩基配列を持つDNA)作製は、イントロンの
ないDNAを得る目的のため重要な意味を有している。
[Prior Art] In the present day, the expression of proteins by genetic engineering techniques and the development of biotechnology utilization techniques such as protein engineering have been vigorously developed. In this genetic engineering, cDNA (RNA
The production of DNA having a nucleotide sequence complementary to is important for the purpose of obtaining intron-free DNA.

このcDNAを作製するに際しては、目的とする遺伝子産
物(タンパク質)の遺伝情報をもつメッセンジャー
(m)RNAから、逆転写酵素(RNA依存型DNAの合成酵
素)によりcDNAを合成しており、このcDNAを適当なベク
ターにつなぐ方法がとられ、広く利用されている。
When producing this cDNA, the cDNA is synthesized from messenger (m) RNA having the genetic information of the target gene product (protein) by reverse transcriptase (synthesis of RNA-dependent DNA). Has been widely used.

[発明が解決しようとする問題点] そこで、本発明においては、このように重要な逆転写
酵素の発現活性が高い逆転写酵素の発現プラスミドを見
出すべく、鋭意研究した結果、本発明に到達したもので
ある。
[Problems to be Solved by the Invention] Therefore, in the present invention, as a result of earnest research to find an expression plasmid of a reverse transcriptase having high expression activity of such an important reverse transcriptase, the present invention has been achieved. It is a thing.

[問題点を解決するための手段] 即ち、本発明は、新規な逆転写酵素発現プラスミドと
その製造方法を提供することを目的とするもので、この
目的は、本発明によれば、 TLNIEDEHRLHETSKEPDVSLGSTWLSDFPQAWAETGGMGLAVRQAPL
IIPLKATSTPVSIKQYPMSQEARLGIKPHIQRLLDQGILVPCQSPWNTPL
LPVKKPGTNDYRPVQDLREVNKRVEDIHPTVPNPYNLLSGLPPSHQWYTV
LDLKDAFFCLRLHPTSQPLFAFEWRDPEMGISGQLTWTRLPQGFKNSPTL
FDEALHRDLADFRIQHPDLILLQYXDDLLLAATSELDCQQGTRALLQTLG
NLGYRASAKKAQICQKQVKYLGYLLKEGQRWLTEARKETVMGQPTPKTPR
QLREFLGTAGFCRLWIPGFAEMAAPLYPLTKTGTLFNWGPDQQKAYQEIK
QALLTAPALGLPDLTKPFELFVDEKQGYAKGVLTQKLGPWRRPVAYLSKK
LDPVAAGWPPCLRMVAAIAVLTKDAGNVTMGQPLYILAPHAVEALVKQPP
DRWLSNARMTHYQALLLDTDRVQFGPVVALNPATLLPLPEEGL〔但
し、Aはアラニン(Ala)、Cはシステイン(Cys)、D
はアスパラギン酸(Asp)、Eはグルタミン酸(Glu)、
Fはフェニルアラニン(Phe)、Gはグリシン(Gly)、
Hヒスチジン(His)、Iはイソロイシン(Ile)、Kは
リジン(Lys)、Lはロイシン(Len)、Mはメチオニン
(Met)、Nはアスパラギン(Asn)、Pはプロリン(Pr
o)、Qはグルタミン(Gln)、Rはアルギニン(Ar
g)、Sはセリン(Ser)、Tはスレオニン(Thr)、V
はバリン(Val)、Wはトリプトファン(Trp)及びYは
チロシン(Tyr)を表す〕で表されるアミノ酸配列を有
する逆転写酵素を発現する逆転写酵素発現プラスミドで
あって、上記アミノ酸配列中、N末端より223番目のX
がL(ロイシン)、I(イソロイシン)、A(アラニ
ン)、F(フェニルアラニン)及びR(アルギニン)か
ら成る群より選択した1のアミノ酸であることを特徴と
する逆転写酵素発現プラスミド、および、以下の工程を
含むことを特徴とする当該逆転写酵素発現プラスミドの
製造方法(第一方法)、により達成することができる。
[Means for Solving the Problems] That is, the present invention is intended to provide a novel reverse transcriptase expression plasmid and a method for producing the same. The purpose is to provide TLNIEDEHRLHETSKEPDVSLGSTWLSDFPQAWAETGGMGLAVRQAPL according to the present invention.
IIPLKATSTPVSIKQYPMSQEARLGIKPHIQRLLDQGILVPCQSPWNTPL
LPVKKPGTNDYRPVQDLREVNKRVEDIHPTVPNPYNLLSGLPPSHQWYTV
LDLKDAFFCLRLHPTSQPLFAFEWRDPEMGISGQLTWTRLPQGFKNSPTL
FDEALHRDLADFRIQHPDLILLQYXDDLLLAATSELDCQQGTRALLQTLG
NLGYRASAKKAQICQKQVKYLGYLLKEGQRWLTEARKETVMGQPTPKTPR
QLREFLGTAGFCRLWIPGFAEMAAPLYPLTKTGTLFNWGPDQQKAYQEIK
QALLTAPALGLPDLTKPFELFVDEKQGYAKGVLTQKLGPWRRPVAYLSKK
LDPVAAGWPPCLRMVAAIAVLTKDAGNVTMGQPLYILAPHAVEALVKQPP
DRWLSNARMTHYQALLLDTDRVQFGPVVALNPATLLPLPEEGL [where A is alanine (Ala), C is cysteine (Cys), D
Is aspartic acid (Asp), E is glutamic acid (Glu),
F is phenylalanine (Phe), G is glycine (Gly),
H histidine (His), I is isoleucine (Ile), K is lysine (Lys), L is leucine (Len), M is methionine (Met), N is asparagine (Asn), P is proline (Pr).
o), Q is glutamine (Gln), R is arginine (Ar)
g), S is serine (Ser), T is threonine (Thr), V
Is a valine (Val), W represents tryptophan (Trp) and Y represents tyrosine (Tyr)], and a reverse transcriptase expression plasmid expressing a reverse transcriptase having an amino acid sequence represented by the following amino acid sequence: 223nd X from N terminus
Is a single amino acid selected from the group consisting of L (leucine), I (isoleucine), A (alanine), F (phenylalanine) and R (arginine), and a reverse transcriptase expression plasmid, and The method for producing a reverse transcriptase expression plasmid (first method), which comprises the steps of

(イ)プラスミドpKP1より逆転写酵素をコードしている
遺伝子を分離する。
(A) Isolate the gene encoding reverse transcriptase from the plasmid pKP1.

(ロ)マルチクローニングサイドを2個有し、該2個の
マルチクローニングサイトの間に3種の終止コドンを挿
入した中継ぎ塩基配列を有し、かつ前記(イ)で分離し
たDNA断片の両端部のフレームが合致するベクターを、
前記(イ)の分離操作で用いた制限酵素と同一の制限酵
素を用いてDNA断片を分離する。
(B) Having two multicloning sides, having a relay nucleotide sequence in which three kinds of stop codons are inserted between the two multicloning sites, and both ends of the DNA fragment isolated in (a) above. A vector that matches the frame of
A DNA fragment is separated using the same restriction enzyme as the restriction enzyme used in the above-mentioned (a) separation operation.

(ハ)前記(イ)及び(ロ)で得られたDNA断片を連結
する。
(C) The DNA fragments obtained in (a) and (b) above are ligated.

前記(ハ)で得られたプラスミドが有する制限酵素切
断部位のうち、該DNA断片のN末端側に位置するものを
切断し、その切り口をポリメラーゼで埋めた後、再び連
結することによりフレームをずらしたプラスミドを得
る。
Of the restriction enzyme cleavage sites possessed by the plasmid obtained in (c) above, the one located on the N-terminal side of the DNA fragment is cleaved, the cut end is filled with polymerase, and the frame is shifted by ligating again. To obtain the desired plasmid.

(ホ)前記(ニ)で得られたプラスミドを大腸菌に導入
し、白色の形質転換体コロニーを得る。
(E) The plasmid obtained in (D) above is introduced into E. coli to obtain white transformant colonies.

(ヘ)この形質転換体より調製したプラスミドDNAと、
逆転写酵素のN末端側の余分なアミノ酸配列及び該ベク
ター由来の余分なアミノ酸配列に相当する塩基配列を除
去して合成したオリゴDNAを用いて部位特異的遺伝子変
換を行い、余分なアミノ酸配列に相当する塩基配列を除
去した変異体プラスミドを作成する。
(F) A plasmid DNA prepared from this transformant,
Site-specific gene conversion was performed using oligo DNA synthesized by removing the excess amino acid sequence on the N-terminal side of the reverse transcriptase and the nucleotide sequence corresponding to the excess amino acid sequence derived from the vector to obtain the excess amino acid sequence. A mutant plasmid having the corresponding nucleotide sequence removed is prepared.

(ト)前記(ヘ)で得られた変異体プラスミドを大腸菌
に導入して形質転換を行ない、白色コロニーの中から青
色のコロニーを得ることで、上記変異体プラスミドpKP
po1−Nを導入した形質転換体を得る。
(G) The mutant plasmid pKP is obtained by introducing the mutant plasmid obtained in (f) into E. coli and performing transformation to obtain blue colonies from white colonies.
A transformant introduced with po1- N is obtained.

(チ)この形質転換体より調製したプラスミドpKPpo1
Nと、逆転写酵素のC末端側に終止コドンを挿入したオ
リゴDNAを合成し、前記(ヘ)と同様に、両末端に余分
なアミノ酸配列を含まない逆転写酵素を産生する変異体
プラスミドpKPpo1−NT1を作成する。
(H) Plasmid pKP po1 − prepared from this transformant
A mutant plasmid pKP that synthesizes N and an oligo DNA having a stop codon inserted at the C-terminal side of the reverse transcriptase and produces a reverse transcriptase containing no extra amino acid sequence at both ends in the same manner as (f) above. po1 − Create NT1.

(リ)前記(チ)で得られた変異体プラスミドを大腸菌
に導入して形質転換を行ない、青色コロニーの中から白
色のコロニーを得ることで、該変異体プラスミドを導入
した形質転換体を得る。
(I) The mutant plasmid obtained in (h) above is introduced into Escherichia coli for transformation, and white colonies are obtained from the blue colonies to obtain a transformant into which the mutant plasmid has been introduced. .

また、本発明の逆転写酵素発現プラスミドの製造方法
(第二方法)は、さらに下記の工程(a)〜(g)を付
加させることにより、変異型の逆転写酵素発現プラスミ
ドを製造することもできる。
In addition, in the method for producing a reverse transcriptase expression plasmid (second method) of the present invention, a mutant reverse transcriptase expression plasmid may be produced by further adding the following steps (a) to (g). it can.

(a)プラスミドpSH1より逆転写酵素領域を含むDNA断
片を切り出す。
(A) A DNA fragment containing a reverse transcriptase region is cut out from the plasmid pSH1.

(b)マルチクローニングサイトを2個有し、該2個の
マルチクロニングサイトの間に3種の終止コドンを挿入
した中継ぎ塩基配列を有し、かつ前記(イ)で分離した
DNA断片の両端部のフレームが合致するベクターを、前
記(a)の分離操作で用いた制限酵素と同一の制限酵素
を用いてDNA断片を分離する。
(B) It has two multicloning sites, has a relay base sequence in which three kinds of stop codons are inserted between the two multicloning sites, and is separated in (a) above.
The DNA fragments are separated using the same restriction enzymes as those used in the above-mentioned separation operation (a) for the vector in which the frames at both ends of the DNA fragment match.

(c)前記(a)及び(b)で得られたDNA断片を連結
する。
(C) The DNA fragments obtained in (a) and (b) above are ligated.

(d)前記(c)で得られた溶液により大腸菌の形質転
換を行ない、青色の形質転換体コロニーを得る。
(D) E. coli is transformed with the solution obtained in (c) above to obtain blue transformant colonies.

(e)前記(d)で得られたプラスミドpBB9及び逆転写
酵素領域を含むDNA断片のフレームをずらした配列を有
するオリゴDNAを合成し、部位特異的遺伝子変換を行っ
て変異体プラスミドを作成後、この溶液を用いて大腸菌
に形質変換を行ない、青色コロニーの中から白色のコロ
ニーを得ることで、変異体プラスミドpBBD7を導入した
形質転換体を得る。
(E) After synthesizing an oligo DNA having an out-of-frame sequence of the plasmid pBB9 and the DNA fragment containing the reverse transcriptase region obtained in (d) above, site-specific gene conversion is performed to prepare a mutant plasmid. Using this solution, Escherichia coli was transformed, and white colonies were obtained from blue colonies to obtain a transformant into which the mutant plasmid pBBD7 was introduced.

(f)前記(e)で得られた変異体プラスミドpBBD7と
逆転写酵素領域を含むDNA中の塩基配列のうち、該アミ
ノ酸配列において第223番目のバリンをコードするコド
ンを、ロイシン、イソロイシン、アラニン、フェニルア
ラニン、及びアルギニンから成る群から選択した1のア
ミノ酸をコードするコドンに変換し、フレームを元に戻
したオリゴDNAを作成し、前記(e)と同様に、白色コ
ロニーの中から青色のコロニーを得ることで、上記変異
体プラスミドpBBDX(Xはロイシン、イソロイシン、ア
ラニン、フェニルアラニン、又はアルギニン)を導入し
た形質転換体を得る。
(F) Of the nucleotide sequences in the mutant plasmid pBBD7 obtained in (e) above and the DNA containing the reverse transcriptase region, the codon encoding the 223rd valine in the amino acid sequence was changed to leucine, isoleucine, or alanine. , Phenylalanine, and arginine are converted into a codon encoding one amino acid selected from the group consisting of, and an oligo DNA in which the frame has been restored is prepared. Thus, a transformant introduced with the mutant plasmid pBBDX (X is leucine, isoleucine, alanine, phenylalanine, or arginine) is obtained.

(g)前記(f)で得られたプラスミドpBBDX(Xはロ
イシン、イソロイシン、アラニン、フェニルアラニン、
又はアルギニン)を制限酵素を用いて処理しDNA断片を
精製し、これを上記と同一の制限酵素を用いて処理した
前記の第一方法により得られる突然変異体と連結し、得
られるDNA溶液を大腸菌に形質転換することにより形質
転換体コロニーを得、次いでプラスミドpKP−T1X(Xは
ロイシン、イソロイシン、アラニン、フェニルアラニ
ン、又はアルギニン)を得る。
(G) The plasmid pBBDX obtained in the above (f) (X is leucine, isoleucine, alanine, phenylalanine,
(Or arginine) is treated with a restriction enzyme to purify a DNA fragment, which is then ligated with the mutant obtained by the first method treated with the same restriction enzyme as above to obtain a DNA solution. A transformant colony is obtained by transforming E. coli, and then the plasmid pKP-T1X (X is leucine, isoleucine, alanine, phenylalanine, or arginine) is obtained.

一般にプラスミドにより発現した蛋白質、例えば逆転
写酵素は、そのプラスミド構築の際、結合部位に余分な
アミノ酸が付着する。この場合、本発明では逆転写酵素
を純粋な形で発現させるために、前部の制限酵素Hind I
II,Pst I,Sal I,Acc I,Hinc II,BamH I,Sma I,EcoR Iの
各切断部位の塩基配列を持つマルチクローニングサイト
を有するリンカー(以後、ポリリンカーという)、中継
ぎ配列(必ず、3種の終止コドンが入る)、後部のポリ
リンカー、lacZ′と連なって構成されているベクターを
用いて、合成DNAによる部位特異的遺伝子変換を行なう
ことにより、容易に純粋な形の蛋白質を発現させること
ができる。
In general, proteins expressed by plasmids, such as reverse transcriptase, have extra amino acids attached to their binding sites during the construction of the plasmid. In this case, according to the present invention, in order to express the reverse transcriptase in a pure form, the restriction enzyme Hind I at the front part is used.
II, Pst I, Sal I, Acc I, Hinc II, BamH I, Sma I, EcoR I linkers with multiple cloning sites that have the nucleotide sequence of each cleavage site (hereinafter, polylinker), intermediate sequence (must be, 3 types of stop codons), a polylinker in the rear part, and a vector constructed by connecting with lacZ 'are used to easily express a protein in pure form by performing site-specific gene conversion with synthetic DNA. Can be made.

そしてこのベクターのその他の構造はアンピシリン耐
性遺伝子(Ampr)、複製開始信号(Ori)を有するもの
(これをpKISベクターとよぶ)、および他の構造として
前記のほか更に従来のpUCベクターと同様に、M13の遺伝
子間領域(IG)を有しているものがある(これをpKIS1
ベクターとよぶ)。
And other structures of this vector are those having an ampicillin resistance gene (Ampr), a replication initiation signal (Ori) (this is called pKIS vector), and other structures as described above and in addition to the conventional pUC vector, Some have the intergenic region (IG) of M13 (this is called pKIS1
Called vector).

上記のベクターは、3種のフレームのポリリンカー
(前部)×3種のフレームのポリリンカー(後部)×2
(クローニングサイトが逆向きもある)から、18種類存
在するということになるのであり、これらの18種類のベ
クターを組合わせて構成したベクターシリーズを用いる
ことにより、極めて容易に純粋な蛋白質(逆転写酵素)
の発現プラスミドを作製することができる。
The above vector contains 3 types of frame polylinkers (front part) x 3 types of frame polylinkers (rear part) x 2
Since there are 18 types of cloning sites (there are also reverse cloning sites), it is extremely easy to use pure vector (reverse transcription) by using a vector series constructed by combining these 18 types of vectors. enzyme)
Can be prepared.

このベクターにおいては、第1図におけるマルチクロ
ーニングサイトであるA部分およびB部分は第1表に示
すような塩基配列を有するものである。また、これらの
塩基配列は第2表に示す通りである。
In this vector, the multi-cloning sites A and B in FIG. 1 have the nucleotide sequences shown in Table 1. The base sequences are as shown in Table 2.

また、一例としてpKISベクターのうち、pKIS801/pKIS
10801の構造の特徴部分を表わせば、第3表の如くであ
る。
In addition, as an example, of the pKIS vectors, pKIS801 / pKIS
Table 3 shows the characteristic parts of the structure of 10801.

[実施例] 以下、本発明を実施例に基いて説明する。 EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described based on examples.

まず、本発明に使用するベクターの作成方法について
説明する。
First, a method for producing the vector used in the present invention will be described.

pUC1090の作成方法 1)プラスミドpUC9(宝酒造(株)販売)10μgを制限
酵素EcoR I(50単位)及びHind III(50単位)を用いて
37℃にて1時間反応させた後、分解産物を0.7%アガロ
ース電気泳動を用いて分離しEcoR I切断部位からHind I
II切断部位までのポリリンカー断片(30塩基対)をゲル
より切り出し、フェノール処理を行なうことにより精製
した。
Construction method of pUC1090 1) Using plasmid pUC9 (sold by Takara Shuzo Co., Ltd.) 10 μg with restriction enzymes EcoR I (50 units) and Hind III (50 units)
After reacting at 37 ℃ for 1 hour, the degradation products were separated using 0.7% agarose gel electrophoresis and Hind I was digested from the EcoR I cleavage site.
The polylinker fragment (30 base pairs) up to the II cleavage site was cut out from the gel and treated with phenol for purification.

2)プラスミドpUC119(宝酒造(株)販売)10μgを制
限酵素EcoR I(50単位)及びHind III(50単位)を用い
て37℃にて1時間反応させた後、分解産物を0.7%アガ
ロース電気泳動を用いて分離し、EcoR I切断部位からHi
nd III切断部位までのポリリンカー部分を含まない断片
(約3,100塩基対)をゲルより切り出し、フェノール処
理を行なうことにより精製した。
2) After reacting 10 μg of plasmid pUC119 (sold by Takara Shuzo Co., Ltd.) with restriction enzymes EcoRI (50 units) and Hind III (50 units) for 1 hour at 37 ° C, the degradation products were electrophoresed on 0.7% agarose gel. Separated from the EcoR I cleavage site by Hi
A fragment (about 3,100 base pairs) containing no polylinker up to the nd III cleavage site was excised from the gel and purified by treating with phenol.

3) 1)で得られたポリリンカー断片0.01μgと2)
で得られたポリリンカーを含まない断片0.1μgを混合
し、T4DNAリガーゼ(2単位)を用いて4℃、12時間連
結反応を行なった。
3) 0.01 μg of the polylinker fragment obtained in 1) and 2)
0.1 μg of the polylinker-free fragment obtained in (1) was mixed, and ligation reaction was performed for 12 hours at 4 ° C. using T4 DNA ligase (2 units).

4) 3)で得られた反応生成物を、大腸菌JM83株(ar
a,△(lac−proAB),rpsL,φ80,lacZ△M15)を用いて形
質転換を行なった後、受容菌を寒天1.5%及びアンピシ
リンを1ml当り100μgを含むL寒天培地(組成:1当り
トリプトン10g、イーストエキス5g、食塩10g、pH7.5)
に塗布し、37℃にて一昼夜培養を行ないいくつかのコロ
ニー(形質転換体)を得た。
4) The reaction product obtained in 3) was used to transform E. coli JM83 strain (ar
a, △ (lac-proAB), rpsL, φ80, lacZ △ M15) were used for transformation, and then L agar medium (composition: trypton per 1 ml) containing 1.5% of agar as a recipient and 100 µg of ampicillin per ml. 10g, yeast extract 5g, salt 10g, pH 7.5)
Then, the mixture was applied to and cultured overnight at 37 ° C. to obtain some colonies (transformants).

5)コロニーの一つをアンピシリンを1mlあたり100μg
含むL液体培地10mlに移植し、37℃にて12時間振とう培
養を行ない、アルカリ−SDS法によりプラスミドDNAを分
離し、プラスミドpUC1090を得た。
5) One of the colonies was 100 μg of ampicillin per ml
The mixture was transferred to 10 ml of L liquid medium containing the cells, shake-cultured at 37 ° C. for 12 hours, and plasmid DNA was separated by the alkali-SDS method to obtain plasmid pUC1090.

pUC1080の作成方法 pUC1090の作成方法のうち、1)のプラスミドDNAと
してpUC8(宝酒造(株)販売)を、又2)のプラスミド
DNAとしてpUC118(宝酒造(株)販売)を用いることに
より、同様の操作を経て、プラスミドpUC1080を作成し
た。
Method for constructing pUC1080 Among methods for constructing pUC1090, pUC8 (sold by Takara Shuzo Co., Ltd.) is used as the plasmid DNA of 1) and the plasmid of 2).
By using pUC118 (sold by Takara Shuzo Co., Ltd.) as DNA, the plasmid pUC1080 was prepared through the same procedure.

次いで、pUC1091の作成方法を説明するが、まずpUC10
90とpUC1091、pUC1092の関係をいうと、pUC1090のポリ
リンカー部分をはさんで、前部で1塩基、後部で2塩基
欠失させたものがpUC1091で、pUC1090のポリリンカー部
分をはさんで、前部で2塩基、後部で1塩基欠失させた
ものがpUC1092である。また、pUC1080とpUC1081、pUC10
82の関係も、上記と同様である。
Next, a method for preparing pUC1091 will be described.
Speaking of the relationship between 90 and pUC1091, pUC1092, the pUC1090 polylinker portion is sandwiched, one base is deleted at the front and two bases are deleted at the back is pUC1091, the polylinker portion of pUC1090 is sandwiched, PUC1092 has two bases deleted at the front and one base deleted at the back. Also, pUC1080, pUC1081, pUC10
The relationship of 82 is the same as above.

pUC1091の作成方法 pUC1091は次の段階にわけて作成した。Method for creating pUC1091 pUC1091 was created in the following steps.

1)pUC1090より一本鎖DNAの作成 2)ポリリンカー部位の前部より一塩基欠いたオリゴヌ
クレオチドの合成 3) 1)2)を用いた突然変異体の作成 4)突然変異体より一本鎖DNAの作成 5)ポリリンカー部位の後部より2塩基欠いたオリゴヌ
クレオチドの合成 6) 4)5)を用いた再突然変異体の作成(pUC109
1) −1) pUC1090より一本鎖DNAの作成 pUC1090を大腸菌MV1184株(ara,△(lac−pro),str
A,thi,(φ80,lacZ△M15),△(srl−recA)306::Tn10
(tetr),F′:TraD36,proAB,lacIqZ△M15)を用いて形
質転換を行なった。
1) Preparation of single-stranded DNA from pUC1090 2) Synthesis of oligonucleotide lacking one base from the front of polylinker site 3) 1) Preparation of mutant using 2) 4) Single-stranded from mutant Preparation of DNA 5) Synthesis of oligonucleotide lacking 2 bases from the rear of polylinker site 6) Preparation of remutant using 4) 5) (pUC109
1) -1) Preparation of single-stranded DNA from pUC1090 pUC1090 was transformed into E. coli MV1184 strain (ara, △ (lac-pro), str
A, thi, (φ80, lacZ △ M15), △ (srl-recA) 306 :: Tn10
(Tet r ), F ′: TraD36, proAB, lacI q ZΔM15) were used for transformation.

形質転換体を、アンピシリンを1ml当り100μg含む2
×YT液体培地(組成:1当りトリプトン16g、イースト
エキス10g、食塩5g、pH7.6)10mlに植菌し、37℃にて12
時間振とう培養を行なった。
Transformants containing ampicillin at 100 μg / ml 2
× Inoculate 10 ml of YT liquid medium (composition: 16 g of tryptone, 10 g of yeast extract, 5 g of salt, pH 7.6) per 1 ml of the medium at 37 ° C.
Time shaking culture was performed.

で得られた培養液100μに、M13K07由来のヘル
パーファージ液(1010pfu/ml)を加え、37℃で30分間静
置した後、アンピシリンを1ml当り150μg、カナマイシ
ンを1ml当り70μg、チアミンを0.01%含む2×YT液体
培地10mlに加え、37℃にて24時間振とう培養を行なっ
た。
A helper phage solution (10 10 pfu / ml) derived from M13K07 was added to 100 μl of the culture obtained in the above, and the mixture was allowed to stand at 37 ° C. for 30 minutes. % Of 2 × YT liquid medium, and cultured at 37 ° C. for 24 hours with shaking.

培養液1mlを取り、遠心分離により菌体を除いた後、2
0%PEG6000及び2.5M NaCl混合溶液を200μ加え遠心分
離を行なうことにより、ファージ粒子を沈降させ、エタ
ノール沈澱処理を行なうことにより、1本鎖DNAを分離
精製、最終的に50μのTE溶液(10mM トリス塩酸、1m
M EDTA、pH8.0の溶液)に溶解させた。
Take 1 ml of the culture solution and remove the cells by centrifugation.
By adding 200μ of 0% PEG6000 and 2.5M NaCl mixed solution and centrifuging, the phage particles were precipitated, and ethanol precipitation treatment was performed to separate and purify single-stranded DNA, and finally 50μ of TE solution (10mM Tris-HCl, 1m
M EDTA, pH 8.0 solution).

収量は約2〜10μg程度であった。 The yield was about 2-10 μg.

−2) 変異部分を含む合成DNAの作成 DNA合成機を用いて第4表に示すNo.9−1−5なる配
列を有するオリゴヌクレオチドを合成し、T4DNAキナー
ゼ(2単位)を用いて37℃にて1時間反応を行ない、
5′末端部分をリン酸化させ、プライマーDNAとした。
-2) Preparation of Synthetic DNA Containing Mutated Portion An oligonucleotide having the sequence No. 9-1-5 shown in Table 4 was synthesized using a DNA synthesizer, and 37 ° C. using T4 DNA kinase (2 units). Reaction for 1 hour at
The 5'end portion was phosphorylated to obtain a primer DNA.

−3) ポリリンカー前部に変異を有する突然変異体の作成 −1)で得られた一本鎖DNA1μgと、−2)で得
られたプライマーDNA20pmolを混合して60℃で30分間、
引続き37℃で30分間保温し、アニーリングさせた後、dA
TP、dCTP、dGTP及びTTPを最終濃度が各々0.5mMとなるよ
うに加え、およびATPを25pmol加え、クレノー(KLENO
W)酵素(4単位)及びT4DNAリガーゼ(1単位)を用い
て37℃にて3時間反応を行ない、突然変異部分を含む2
本鎖DNAを合成した。
-3) Preparation of mutant having mutation in front of polylinker 1 μg of single-stranded DNA obtained in -1) and 20 pmol of primer DNA obtained in -2) were mixed at 60 ° C. for 30 minutes.
Continue to incubate at 37 ℃ for 30 minutes and anneal, then dA
TP, dCTP, dGTP and TTP were added so that the final concentration was 0.5 mM, and 25 pmol of ATP was added, and Klenow (KLENO
W) Reaction with enzyme (4 units) and T4 DNA ligase (1 unit) at 37 ° C for 3 hours, including mutation part 2
Single-stranded DNA was synthesized.

次に、反応生成物の一部(約0.1μg)を大腸菌JM83
株を用いて形質転換を行なった後、受容菌を1.5%寒
天、アンピシリンを1ml当り100μg及びX−galを0.005
%含むL寒天培地に塗布し、37℃にて一昼夜培養を行な
い、出現したコロニーの内、白色コロニーを選択した。
白色コロニーの出現率は5〜10%程度であった。
Next, a part of the reaction product (about 0.1 μg) was transferred to Escherichia coli JM83.
After transformation using the strain, the recipient bacterium was 1.5% agar, 100 μg of ampicillin per ml, and 0.005 g of X-gal.
% Of L-agar medium and cultured at 37 ° C. for 24 hours, and white colonies were selected from the colonies that appeared.
The appearance rate of white colonies was about 5 to 10%.

次いで、白色コロニーを、アンピシリンを1ml当り100
μg含むL液体培地10mlに植菌し、37℃で12時間振とう
培養を行ない、常法によりプラスミドDNAを回収した。
回収したプラスミドDNAを再び大腸菌MV1184株を用いて
形質転換を行なった後、受容菌を寒天1.5%、アンピシ
リンを1ml当り100μg、X−galを0.005%及びIPTGを1m
M含むL寒天培地に塗布し、37℃にて一昼夜培養を行な
い、白色コロニーを選択し、アンピシリンを1ml当り100
μg含むL液体培地10mlに移植し、37℃にて12時間振と
う培養を行ない、常法によりプラスミドDNAを分離し
た。
Then, white colonies were treated with ampicillin at 100 ml / ml.
The cells were inoculated into 10 ml of L liquid medium containing μg, shake-cultured at 37 ° C. for 12 hours, and plasmid DNA was recovered by a conventional method.
The recovered plasmid DNA was transformed again using Escherichia coli MV1184 strain, and the recipient bacteria were agar 1.5%, ampicillin 100 μg / ml, X-gal 0.005% and IPTG 1 m.
Stained on a L-agar medium containing M, cultured at 37 ° C for 24 hours, selected white colonies, and added 100 μl of ampicillin per ml.
The cells were transplanted into 10 ml of an L liquid medium containing μg, cultured with shaking at 37 ° C. for 12 hours, and plasmid DNA was isolated by a conventional method.

−4)突然変異一本鎖DNAの作成 −3)で得られた突然変異体プラスミドを有する大
腸菌MV1184株より、−1)と全く同じ方法を用いて突
然変異を有する一本鎖DNAを得た。
-4) Preparation of mutant single-stranded DNA A single-stranded DNA having a mutation was obtained from Escherichia coli MV1184 strain having the mutant plasmid obtained in -3) by using the same method as in -1). .

−5)ポリリンカー後部に変異を有する合成DNAの作
成 −2)と同じ方法を用いて第4表のNo.9−2−5な
る塩基配列を有する合成DNAを作成し、リン酸化を行な
いプライマーDNAを作成した。
-5) Preparation of synthetic DNA having mutation at rear part of polylinker Using the same method as in -2), prepare synthetic DNA having base sequence No. 9-2-5 in Table 4 and phosphorylate it. DNA was created.

−6)再突然変異体の作成 −3)と同じ方法を用いて、−4)で得られた一
本鎖DNA及び−5)で得られたプライマーDNAより日本
鎖DNAを合成、大腸菌JM83株を用いて形質転換を行なう
ことにより青色コロニーを得た。これよりプラスミドDN
Aを回収し、再び大腸菌MV1184株を用いて形質転換を行
なうことにより青色コロニーを出現させた。これよりプ
ラスミドDNAを回収することにより、ポリリンカー部分
の前後2個所に合成3塩基対欠失したプラスミドpUC109
1を得た。
-6) Preparation of remutant Using the same method as in -3), Japanese chain DNA was synthesized from the single-stranded DNA obtained in -4) and the primer DNA obtained in -5), Escherichia coli JM83 strain. A blue colony was obtained by carrying out transformation with. From this the plasmid DN
A was collected and transformed again with Escherichia coli MV1184 strain to make a blue colony appear. By recovering the plasmid DNA from this, plasmid pUC109 with a synthetic 3 base pair deletion at two positions before and after the polylinker part was recovered.
Got one.

pUC1092の作成方法 プラスミドpUC1092の作成は、前記のプラスミドpUC
1091の作成例に準じて行なった。変更点は次の通りであ
る。
Preparation method of pUC1092
This was performed according to the example of making 1091. The changes are as follows.

(1)−2)の塩基配列を第4表のNo.9−1−3とす
る。
The nucleotide sequence of (1) -2) is designated as No. 9-1-3 in Table 4.

(2)−5)の塩基配列を第4表のNO.9−1−5とす
る。
The nucleotide sequence of (2) -5) is designated as No. 9-1-5 in Table 4.

これによりプラスミドpUC1090よりポリリンカー部分
の前部を2塩基、後部を1塩基、合計3塩基欠いた突然
変異プラスミドpUC1092を得た。
As a result, a mutated plasmid pUC1092 lacking a total of 3 bases, 2 bases at the front and 1 base at the back of the polylinker portion, was obtained from the plasmid pUC1090.

pUC1081、pUC1082の作成方法 前記と同様に、プラスミドpUC1080を基本とし
てポリリンカー部分を1塩基および2塩基ずらした突然
変異プラスミドpUC1081,pUC1082を作成した。
Method for constructing pUC1081 and pUC1082 In the same manner as described above, mutant plasmids pUC1081 and pUC1082 were constructed by shifting the polylinker portion by one base and two bases based on the plasmid pUC1080.

変更点は次の通りである。 The changes are as follows.

(1)pUC1081,pUC1082共に、−1)のプラスミドと
してpUC1080を用いた。
(1) For both pUC1081 and pUC1082, pUC1080 was used as the plasmid of -1).

(2)−2)の合成DNAとして、pUC1081においては第
4表のNo.8−1−5、pUC1082においてはNo.8−2−5
を用いた。
As the synthetic DNA of (2) -2), pUC1081 has No.8-1-5 in Table 4 and pUC1082 has No.8-2-5.
Was used.

(3)−5)の合成DNAとして、pUC1081においては第
4表のNo.8−1−3、pUC1082においてはNo.8−1−5
を用いた。
No. 8-1-3 in Table 4 for pUC1081 and No. 8-1-5 for pUC1082 as synthetic DNAs of (3) -5)
Was used.

以上、基本となるプラスミドpUC1090、pUC1080及び作
成した突然変異プラスミドpUC1091、pUC1092、pUC1081
及びpUC1082の間の関係についてまとめると、第5表の
とおりとなる。
As described above, the basic plasmids pUC1090, pUC1080 and the prepared mutant plasmids pUC1091, pUC1092, pUC1081
Table 5 summarizes the relationship between pUC1082 and pUC1082.

第4表 合成DNAの塩基配列表 変異部分を含むDNA塩基配列 (9−1−5) 5′GCCAAGCTTGCGTAATCATG3′ (9−2−5) 5′AGCCAAGCTTCGTAATCATG3′ (9−1−3) 5′ACGACGGCCAGAATTCCCGG3′ (9−2−3) 5′CGACGGCCAGGAATTCCCGG3′ (8−1−5) 5′CCGGGAATTCTAATCATGGT3′ (8−2−5) 5′CCGGGAATTCAATCATGGTC3′ (8−1−3) 5′ACGGCCAGTGAAGCTTGGCT3′ (8−2−3) 5′CGGCCAGTGCAAGCTTGGCT3′ pKIS1ベクターシリーズの作成 −1)フラグメントの分離 プラスミドpUC1090 10μgを制限酵素Hind III(50単
位)及びAat II(4単位)を用いて37℃にて1時間反応
させ分解産物を0.7%アガロース電気泳動を用いて分離
し、ポリリンカー部分を含むHind III切断部位からAat
II切断部位までの断片(約1000塩基対)をゲルより切り
出し、フェノール処理を行なうことにより精製し、1090
−Lフラグメント1μgを得た。
Table 4 Synthetic DNA Nucleotide Sequence Table DNA sequence containing a mutated portion (9-1-5) 5'GCCAAGCTTGCGTAATCATG3 '(9-2-5) 5'AGCCAAGCTTCGTAATCATG3' (9-1-3) 5'ACGACGGCCAGAATTCCCGG3 '(9-1-5) 9-2-3) 5'CGACGGCCAGGAATTCCCGG3 '(8-1-5) 5'CCGGGAATTCTAATCATGGT3' (8-2-5) 5'CCGGGAATTCAATCATGGTC3 '(8-1-3) 5'ACGGCCAGTGAAGCTTGGCT3' (8-2-3) 5'CGGCCAGTGCAAGCTTGGCT3 ' Construction of pKIS1 vector series -1) Separation of fragments 10 μg of plasmid pUC1090 was reacted with restriction enzymes Hind III (50 units) and Aat II (4 units) for 1 hour at 37 ° C. to decompose the degradation products by 0.7% agarose electrophoresis. Separated from the Hind III cleavage site containing the polylinker moiety by Aat
The fragment up to the II cleavage site (about 1000 base pairs) was cut out from the gel and purified by treating with phenol.
1 μg of L fragment was obtained.

同様に、制限酵素EcoR I(50単位)及びAat II(4単
位)を用いて、ポリリンカー部分を含むEcoR I切断部位
からAat II切断部位までのDNA断片(約2200塩基対)109
0−Rフラグメント2μgを得た。
Similarly, using the restriction enzymes EcoR I (50 units) and Aat II (4 units), a DNA fragment (about 2200 base pairs) from the EcoR I cleavage site containing the polylinker moiety to the Aat II cleavage site 109
2 μg of 0-R fragment was obtained.

以下、プラスミドpUC1091、1092、1080、1081、1082
を用いて同様の操作を行なうことにより、1091−L、10
91−R、1092−L、1092−R、1080−L、1080−R、10
81−L、1081−R、1082−L及び1082−Rフラグメント
合計12種類を得た。各フラグメント、切断されるプラス
ミド及び切断する酵素の組合わせは次の通りである。
Hereinafter, plasmids pUC1091, 1092, 1080, 1081, 1082
By performing the same operation using
91-R, 1092-L, 1092-R, 1080-L, 1080-R, 10
A total of 12 81-L, 1081-R, 1082-L and 1082-R fragments were obtained. The combination of each fragment, the plasmid to be cleaved, and the enzyme to be cleaved is as follows.

−2)ジョイント配列の作成例 DNA合成機を用いて第6表に示すジョイント配列の上
鎖及び下鎖を各々合成した。
-2) Example of preparation of joint sequence The upper and lower chains of the joint sequence shown in Table 6 were each synthesized using a DNA synthesizer.

上鎖1μg及び下鎖1μgを混合し、70℃に30分間保
温し、室内に放置し徐々に冷却することによりアニーリ
ングを行ない、2本鎖DNAとした。
1 μg of the upper chain and 1 μg of the lower chain were mixed, kept at 70 ° C. for 30 minutes, allowed to stand in a room, and gradually cooled to carry out annealing to obtain double-stranded DNA.

−3)L,Rフラグメントとジョイント配列の結合 −1)で得られた1090−Lフラグメント0.1μg、1
090−Rフラグメント0.2μg及び−2)で得られたジ
ョイント配列0.01μgを、常法によりT4DNAリガーゼ
(2単位)を用いて連結反応を行なわせた。反応液を大
腸菌JM83株を用いて形質転換を行なった後、受容菌を1.
5%寒天及びアンピシリンを1ml当り100μg含むL寒天
培地に塗布し、37℃にて一昼夜培養することにより形質
転換コロニーを出現させ、アンピシリンを1ml当り100μ
g含むL液体培地10mlに移植し、37℃にて12時間振とう
培養を行なった。その後培養液より常法によりプラスミ
ドDNAを分離し、プラスミドpKIS10900を得た。
-3) Combination of L and R fragments and joint sequence 0.1 μg of 1090-L fragment obtained in -1), 1
The 090-R fragment (0.2 µg) and the joint sequence (0.01 µg) obtained in -2) were ligated using T4 DNA ligase (2 units) by a conventional method. After the reaction solution was transformed using Escherichia coli JM83, the recipient strain was 1.
5% agar and 100 μg of ampicillin per ml were applied to an L agar medium, and cultured at 37 ° C. for 24 hours to allow transformed colonies to appear.
It was transplanted to 10 ml of L liquid medium containing g and cultured at 37 ° C. for 12 hours with shaking. After that, plasmid DNA was separated from the culture solution by a conventional method to obtain a plasmid pKIS10900.

以下、フラグメントの組合わせを変えることにより、
pKIS10901、10902、10910、10911、10912、10920、1092
1、10922、10800、10801、10802、10810、10811、1081
2、10820、10821及び10822の合計18種類のpKIS1ベクタ
ーシリーズを作成した。
Hereinafter, by changing the combination of fragments,
pKIS10901, 10902, 10910, 10911, 10912, 10920, 1092
1, 10922, 10800, 10801, 10802, 10810, 10811, 1081
A total of 18 pKIS1 vector series of 2, 10820, 10821 and 10822 were created.

完成したpKIS1ベクター及びフラグメントの組合わせ
は次の通りである。
The complete pKIS1 vector and fragment combinations are as follows.

pKISベクターシリーズの作成 −1)pKIS900,901,902,910 911,912,920,921,922の作成 プラスミドpUC9 5μgを制限酵素Pvu II(24単位)を
用いて37℃にて1時間反応させた後、0.7%アガロース
電気泳動にて分離を行い、ポリリンカー部分を含まない
DNA断片(約2300塩基対)をゲルより切り出し精製し
た。又、pKIS109シリーズ(即ち、pKIS10900,10901,109
02,10910,10911,10912,10920,10921,10922)各々5μg
を同じく制限酵素Pvu II(24単位)を用いて37℃にて1
時間反応させた後、0.7%アガロース電気泳動にて分離
を行い、ポリリンカー部分を含むDNA断片(約300塩基
対)をゲルより精製した。
Construction of pKIS vector series -1) Construction of pKIS900,901,902,910 911,912,920,921,922 After reacting 5 μg of plasmid pUC9 with restriction enzyme Pvu II (24 units) for 1 hour at 37 ° C, separation was performed by 0.7% agarose electrophoresis. , Does not contain polylinker moiety
A DNA fragment (about 2300 base pairs) was excised from the gel and purified. In addition, pKIS109 series (ie pKIS10900,10901,109
02,10910,10911,10912,10920,10921,10922) 5 μg each
With the same restriction enzyme Pvu II (24 units) at 37 ° C
After reacting for a period of time, separation was carried out by 0.7% agarose electrophoresis, and a DNA fragment containing a polylinker portion (about 300 base pairs) was purified from the gel.

次に、上記のpUC9由来のDNA断片0.2μg及びpKIS109
シリーズ由来のDNA断片各々0.05μgを混合し、T4DNAリ
ガーゼ(2単位)を用いて4℃、12時間連結反応を行
い、大腸菌JM83株を用いて順次形質転換を行い、形質転
換体よりプラスミドDNAを順次分離し、プラスミドpKIS9
00,901,902,910,911,912,920,921,922を得た。
Next, 0.2 μg of the above-described pUC9-derived DNA fragment and pKIS109
0.05 μg each of the DNA fragments derived from the series were mixed, ligated with T4 DNA ligase (2 units) at 4 ° C for 12 hours, and sequentially transformed with E. coli JM83 strain to obtain plasmid DNA from the transformant. Sequentially separated and plasmid pKIS9
We got 00,901,902,910,911,912,920,921,922.

−2)pKIS800,801,802,810 811,812,820,821,822の作成 −1)において、pKIS109シリーズの代りにpKIS108
シリーズ(即ち、pKIS10800,10801,10802,10810,10811,
10812,10820,10821,10822)を用いることにより、全く
同様の操作を経てプラスミドpKIS800,801,802,810,811,
820,821,822を得た。
-2) Creation of pKIS800,801,802,810 811,812,820,821,822 In -1), pKIS108 was replaced with pKIS108.
Series (ie pKIS10800,10801,10802,10810,10811,
10812,10820,10821,10822), the plasmid pKIS800,801,802,810,811,
Got 820,821,822.

上記ベクターを用いた具体的な実施例を説明する。 Specific examples using the above vector will be described.

(参考例) マウス白血球ウイルスの逆転写酵素をコードしている
pol遺伝子約2.3kb(キロ塩基対)を含むプラスミドpKP1
〔(「Proceeding National Academy Science(PNAS),
USA」vol.82,page4944〜4948,1985)に示されているプ
ラスミドpSH1のクローンのSac I−Hind III(2.3kb)を
pUC18に組み換えたもの〕2μgを、制限酵素EcoR I 10
単位とHind III 12単位により37℃で1時間処理し、0.7
%アガロース電気泳動後、逆転写酵素遺伝子を含む約2.
3kbのDNA断片をゲルより切り出し、フェノール処理を行
なうことにより精製した。また、pKIS811 2μgを、制
限酵素EcoR I(10単位)とHind III(12単位)により37
℃で1時間処理し、同様に約2.7kbのDNA断片を回収し
た。得られた2.3kbのDNA断片0.1μgと2.7kbのDNA断片
0.1μgを混合し、T4DNAリガーゼ(2単位)により16
℃、12時間処理した。このDNA溶液を用いて大腸菌JM83
株の形質転換を行ない、受容菌を、寒天1.5%、アンピ
シリン100μg/ml、X−gal 0.005%を含むL寒天培地に
塗布し、37℃にて一昼夜培養を行ない、形質転換体コロ
ニーを青色で得た。この形質転換株を、L液体培地で37
℃、12時間培養し、アルカリ−SDS法でプラスミドDNAを
調製し、pKPBとした。
(Reference example) It encodes the reverse transcriptase of mouse leukocyte virus.
Plasmid pKP1 containing approximately 2.3 kb (kilobase pairs) of the pol gene
[("Proceeding National Academy Science (PNAS),
USA "vol.82, pages 4944-4948, 1985) and cloned Sac I-Hind III (2.3 kb) of the plasmid pSH1
Recombined into pUC18] 2 μg was added to the restriction enzyme EcoR I 10
Unit and Hind III 12 units, treated at 37 ℃ for 1 hour, 0.7
% After agarose electrophoresis, approximately 2. containing reverse transcriptase gene.
A 3 kb DNA fragment was cut out from the gel and treated with phenol for purification. In addition, 2 μg of pKIS811 was added to the restriction enzyme EcoR I (10 units) and Hind III (12 units) to
It was treated at 1 ° C. for 1 hour, and a DNA fragment of about 2.7 kb was similarly recovered. 0.1 µg of the obtained 2.3 kb DNA fragment and 2.7 kb DNA fragment
Mix 0.1 μg and add 16 with T4 DNA ligase (2 units).
It was treated at ℃ for 12 hours. E. coli JM83 using this DNA solution
The strain was transformed, and the recipient cells were spread on L agar medium containing agar 1.5%, ampicillin 100 μg / ml, and X-gal 0.005%, and cultured overnight at 37 ° C. Obtained. This transformant was transformed with L liquid medium to 37
Culturing was performed at 12 ° C. for 12 hours, and a plasmid DNA was prepared by the alkali-SDS method to obtain pKPB.

pKPB 2μgを制限酵素EcoR I(10単位)、クレノー酵
素(2単位)、最終濃度が各々0.1mMのdATP、dGTP、dCT
P、TTPの混合物を加え、37℃で1時間処理し、T4DNAリ
ガーゼ(2単位)にて16℃で12時間処理した後、大腸菌
JM83株に同様に導入した。白い形質転換株のコロニーを
L液体培地に植菌し、37℃で12時間培養した後、アルカ
リ−SDS法でプラスミドDNAを調製し、pKPWとした。
2 μg of pKPB is restriction enzyme EcoRI (10 units), Klenow enzyme (2 units), and final concentration of 0.1 mM each of dATP, dGTP and dCT.
A mixture of P and TTP was added, treated at 37 ° C for 1 hour, treated with T4 DNA ligase (2 units) at 16 ° C for 12 hours, and then E. coli.
It was similarly introduced into JM83 strain. A white transformant colony was inoculated into an L liquid medium and cultured at 37 ° C. for 12 hours, and then a plasmid DNA was prepared by the alkali-SDS method to obtain pKPW.

pKPWより、逆転写酵素のN末端側の余分なアミノ酸配
列を、合成DNAを用いた部位特異的遺伝子変換を行なっ
て除去した。
An extra amino acid sequence on the N-terminal side of the reverse transcriptase was removed from pKPW by site-specific gene conversion using synthetic DNA.

pKPW 5μgを、制限酵素Pvu II(18単位)とNde l(2
0単位)により37℃、1時間処理し、0.7%アガロース電
気泳動後、約2.2kbのDNA断片を回収した。また、pKPW 5
μgを、制限酵素Sca I(18単位)と脱リン酸酵素BAP
(0.2単位)により37℃、1時間処理し、同様に約5kbの
DNA断片を回収した。得られた5.5kbおよび5kbの両DNA断
片を夫々0.6μgづつ、および50pmolの第7表aに示す
5′−リン酸化合成DNA(40塩基)を混合し、100mM NaC
l、6.6mMトリス塩酸(pH7.6)、8mM MgCl2、1mMβ−メ
ルカプトエタノール溶液とし、100℃で3分間処理した
後、30℃で30分間処理した。このDNA溶液17.2μ、5mM
dNTP(dATP、dGTP、dCTP、TTP)7μ、10mM ATP3.6
μと、クレノー酵素(4単位)、T4DNAリガーゼ(1
単位)を加え、25℃で3時間処理した。このDNA溶液を
用いて大腸菌JM83株の形質転換を行ない、アンピシリン
とX−galを含むL寒天培地上で、青いコロニーを形成
するクローンpKP pol−Nを得た。この突然変異体は約
5%の頻度で得られた。
5 μg of pKPW was added to the restriction enzymes Pvu II (18 units) and Ndel (2
(0 unit) at 37 ° C. for 1 hour, and 0.7% agarose gel electrophoresis was performed to recover a DNA fragment of about 2.2 kb. Also, pKPW 5
µg of restriction enzyme Sca I (18 units) and dephosphorylating enzyme BAP
(0.2 units) at 37 ℃ for 1 hour, similarly 5kb
The DNA fragment was recovered. The obtained 5.5 kb and 5 kb DNA fragments were mixed in an amount of 0.6 μg each, and 50 pmol of the 5′-phosphorylated synthetic DNA (40 bases) shown in Table 7a was mixed to obtain 100 mM NaC.
l, 6.6 mM Tris-HCl (pH 7.6), 8 mM MgCl 2 , 1 mM β-mercaptoethanol solution, treated at 100 ° C. for 3 minutes and then at 30 ° C. for 30 minutes. This DNA solution 17.2μ, 5mM
dNTP (dATP, dGTP, dCTP, TTP) 7μ, 10mM ATP3.6
μ, Klenow enzyme (4 units), T4 DNA ligase (1
(Unit) and added and treated at 25 ° C. for 3 hours. Using this DNA solution, Escherichia coli JM83 strain was transformed to obtain a clone pKP pol-N forming a blue colony on L agar medium containing ampicillin and X-gal. This mutant was obtained with a frequency of about 5%.

pKP pol−N(逆転写酵素とβ−ガラクトシダーゼ融
合蛋白質をコードするプラスミド)に、合成DNA(第7
表b及びc)を用いた部位特異的遺伝子変換で逆転写酵
素の純粋な頻度と思われるC末端(T1及びT2)に終止コ
ドンを導入した。
pKP pol-N (a plasmid encoding a reverse transcriptase and β-galactosidase fusion protein) was added to synthetic DNA (7th plasmid).
A site-specific gene conversion using Tables b and c) introduced a stop codon at the C-terminus (T1 and T2), which appears to be the pure frequency of reverse transcriptase.

プラスミドpKP pol−N 5μgを、制限酵素Sca I(18
単位)と脱リン酸酵素BAP(0.2単位)で37℃、1時間処
理し、同様に約4.9kbのDNA断片を回収した。
The plasmid pKP pol-N 5 μg was added to the restriction enzyme Sca I (18
Unit) and dephosphorylating enzyme BAP (0.2 units) at 37 ° C. for 1 hour, and similarly a DNA fragment of about 4.9 kb was recovered.

また、pKP pol−N 5μgを、制限酵素Kpn I(50単
位)とHind III(24単位)により37℃で1時間処理し、
同様に約2.9kbのDNA断片を回収した。4.9kb及び2.9kbの
DNA断片をそれぞれ0.6μgづつ、および50pomlの5′−
リン酸化合成DNA(第7表c)を用いて上記と同様の操
作により、白い形質転換株の突然変異体及びpKP pol−N
T2を得た。
Also, 5 μg of pKP pol-N was treated with restriction enzymes Kpn I (50 units) and Hind III (24 units) at 37 ° C for 1 hour,
Similarly, a DNA fragment of about 2.9 kb was recovered. 4.9kb and 2.9kb
0.6 µg of each DNA fragment, and 50 poml of 5'-
Using the phosphorylated synthetic DNA (Table 7c), the mutants of the white transformants and pKP pol-N were treated in the same manner as above.
Got T2.

以上の製造工程を第2図に示す。 The above manufacturing process is shown in FIG.

得られたクローンについて逆転写酵素活性を測定し
た。
The reverse transcriptase activity of the obtained clone was measured.

まず、逆転写酵素活性の測定法を説明する。 First, a method for measuring reverse transcriptase activity will be described.

各クローンについて、大腸菌JM103株に導入したもの
を使用した。各プラスミドを持った大腸菌を、L液体培
地で37℃、12時間振とう培養した培養液0.2mlをM9液体
培地(組成:1当りリン酸2ナトリウム 18g、リン酸
1カリウム 3g、塩化アンモニウム 1g、食塩0.5g、硫
酸マグネシウム 1mM、塩化カルシウム 0.1mM、pH7.
4)(+0.2%カザミノ酸+0.2%グリセロール+5μg/m
lチアミン)10mlに加え、30℃で1時間振とう培養した
後、50μの200mM IPTGをそれぞれ加え、さらに30℃で
3時間振とう培養した。各培養液を氷中に1時間浸し、
▲OD660 10▼をそれぞれ測定した。次にM9培地を用いて
各試料を夫々▲OD660 10▼が0.2となるように希釈した
後、0.1mlをマイクロ遠心チューブに採取した、遠心し
て菌体を集めた後、緩衝液(50mMトリス塩酸、0.5mM ED
TA、0.3MNaCl、pH7.5)で菌体を洗浄し、遠心して集め
た菌体を8μの同緩衝液に撹拌した後、1μの10mg
/mlリゾチーム溶液を加え、0℃で15分間処理した。さ
らに、1%トリトンX−100、10mMジチオスレイトール
(DTT)1μを加え、0℃、10分間処理し、各粗抽出
液とした。得られた各粗抽出液に、90μの反応溶液
(30μg/ml poly rC(dG12-18)又はpoly rA(d
G12-18)、20μMdGTP又はTTP、1000CPM/pmol α−32P−
dGTP、0.5mM MnCl2又はMgCl2、50mMトリス塩酸、pH8.
3、20mMジチオスレイトール、60mM NaCl、0.1%NP−4
0)を加え、25℃で30分間処理した。反応終了後、反応
溶液30μを、DE−81ディスクにスポットし、2×SSC
(組成:0.3M NaCl、0.03Mクエン酸ナトリウム)200mlで
5分間処理を3回行ない、99.5%エタノール200mlで5
分間処理後、空気乾燥した。
For each clone, the one introduced into Escherichia coli JM103 strain was used. Escherichia coli carrying each plasmid was shake-cultured in an L liquid medium at 37 ° C for 12 hours, and 0.2 ml of the culture solution was added to an M9 liquid medium (composition: disodium phosphate 18 g, potassium 1 potassium 3 g, ammonium chloride 1 g, Salt 0.5g, magnesium sulfate 1mM, calcium chloride 0.1mM, pH 7.
4) (+ 0.2% casamino acid + 0.2% glycerol + 5μg / m
Thiamin) (10 ml) and shake-cultured at 30 ° C. for 1 hour, 50 μm of 200 mM IPTG was added, and the mixture was further shake-cultured at 30 ° C. for 3 hours. Soak each culture in ice for 1 hour,
▲ OD 660 10 ▼ was measured respectively. Next, each sample was diluted with M9 medium to an OD 660 10 of 0.2, and then 0.1 ml was collected in a microcentrifuge tube.The cells were collected by centrifugation and buffered (50 mM Tris). Hydrochloric acid, 0.5 mM ED
The cells were washed with TA, 0.3 M NaCl, pH 7.5), and the cells collected by centrifugation were stirred in 8 µ of the same buffer solution, and then 1 µ of 10 mg.
/ ml lysozyme solution was added and treated at 0 ° C for 15 minutes. Further, 1% Triton X-100 and 1 mM of 10 mM dithiothreitol (DTT) were added, and the mixture was treated at 0 ° C for 10 minutes to prepare each crude extract. 90 μl of reaction solution (30 μg / ml poly rC (dG 12-18 ) or poly rA (d
G 12-18 ), 20 μM dGTP or TTP, 1000 CPM / pmol α−32P−
dGTP, 0.5 mM MnCl 2 or MgCl 2 , 50 mM Tris-HCl, pH 8.
3, 20 mM dithiothreitol, 60 mM NaCl, 0.1% NP-4
0) was added and the mixture was treated at 25 ° C for 30 minutes. After completion of the reaction, 30μ of the reaction solution was spotted on a DE-81 disc and 2xSSC
(Composition: 0.3M NaCl, 0.03M sodium citrate) Treatment with 200ml for 5 minutes 3 times, 59.5 with 200ml of 99.5% ethanol.
After treatment for minutes, it was air dried.

乾燥したDE−81ディスクをバイアルに入れ、シンチレ
ーションカウンターでチェレンコフ効果を用いてカウン
トを測定したところ、第4図のようになった。
The dried DE-81 disc was put into a vial, and the count was measured using the Cherenkov effect with a scintillation counter.

なお、チェレンコフ効果とは、透明な媒質中を高速荷
電粒子が通過する際、その速さが媒質中の光の速度より
も大きい場合に、電磁波や光を発する現象をいう。
The Cherenkov effect is a phenomenon in which electromagnetic waves or light are emitted when fast charged particles pass through a transparent medium and the speed is higher than the speed of light in the medium.

ベクターのみを含むクローンに比べ、pKP pol−Nに
は逆転写活性が認められた。pKP pol−NT2については、
さらに活性が上昇していた。
Reverse transcription activity was observed in pKP pol-N as compared to the clone containing only the vector. For pKP pol-NT2,
The activity was further increased.

更に、カリフラワーモザイクウイルスの逆転写酵素の
アミノ酸配列より予想されるC末端(T1)に、同様に第
7表bに示す合成DNAを用いて部位特異的遺伝子変換を
行なった。
Furthermore, the C-terminal (T1) predicted from the amino acid sequence of the reverse transcriptase of cauliflower mosaic virus was subjected to site-specific gene conversion using synthetic DNA similarly shown in Table 7b.

得られたクローンpKP pol−NT1は、第4図に示したよ
うに、pKP pol−NT2より更に高い活性を示した。
The obtained clone pKP pol-NT1 showed higher activity than pKP pol-NT2, as shown in FIG.

(実施例1) 次に、モロニーマウス白血病ウイルスの変異型逆転写
酵素の発現プラスミドの作製法およびその逆転写活性に
ついて説明する。
(Example 1) Next, a method for preparing an expression plasmid for a mutant reverse transcriptase of Moloney murine leukemia virus and its reverse transcription activity will be described.

モロニーマウス白血病ウイルスの逆転写酵素におい
て、他のレトロウイルス等と最も相同性の高いアミノ酸
配列の中に変異を挿入した。その結果、天然のものとよ
く似た活性を示すものや、マンガンだけでなくマグネシ
ウムでも活性を示すもの、天然のものより活性の高いも
の等が得られた。
In the Moloney murine leukemia virus reverse transcriptase, a mutation was inserted in the amino acid sequence having the highest homology with other retroviruses. As a result, those showing activity similar to natural ones, those showing activity not only in manganese but also in magnesium, and those having higher activity than natural ones were obtained.

(作製法) モロニーマウス白血病ウイルスの逆転写酵素の最も相
同性の高いアミノ酸配列を含む領域を有するプラスミド
pBB9を作製した。逆転写酵素領域を含むクローンpSH1
(「Proceeding National Academy Science(PNAS),US
A」vol.82,page4944〜4948,1985)5μgを、制限酵素B
amH I(20単位)で37℃、1時間処理し、0.7%アガロー
ス電気泳動を用いて0.3kb(キロ塩基対)のDNA断片を切
り出し、フェノール処理を行なうことにより精製した。
一方、pKIS9002μgを制限酵素BamH I(10単位)で37
℃、1時間処理した後、同様の操作を行なうことにより
2.7kbのDNA断片を精製した。上記の逆転写酵素領域の0.
3kbとpKIS900の2.7kbのDNA断片各々0.1μgを混合し、T
4DNAリガーゼ(単位)を用いて、4℃、12時間連結反応
を行なった。反応液の一部を大腸菌JM83株を用いて形質
転換を行ない、受容菌を1.5%寒天、アンピシリン100μ
g/ml及びX−gal 0.005%を含むL寒天培地に塗布し、3
7℃にて一昼夜培養を行ない、青色の形質転換体コロニ
ーを得た。
(Construction method) A plasmid having a region containing the amino acid sequence with the highest homology to the reverse transcriptase of Moloney murine leukemia virus
pBB9 was prepared. Clone pSH1 containing reverse transcriptase region
("Proceeding National Academy Science (PNAS), US
A ”vol.82, page 4944-4948, 1985) 5 μg with restriction enzyme B
It was treated with amH I (20 units) at 37 ° C. for 1 hour, a 0.3 kb (kilobase pair) DNA fragment was cut out using 0.7% agarose electrophoresis, and purified by treating with phenol.
On the other hand, pKIS9002 μg was added with the restriction enzyme BamHI (10 units) to 37
After treating at ℃ for 1 hour,
The 2.7 kb DNA fragment was purified. 0.
0.1 μg each of 3 kb and 2.7 kb DNA fragment of pKIS900 was mixed, and T
Ligation reaction was carried out at 4 ° C. for 12 hours using 4DNA ligase (unit). A part of the reaction mixture was transformed with Escherichia coli JM83 strain, and the recipient cells were transformed with 1.5% agar and ampicillin 100μ.
Apply to L agar medium containing g / ml and X-gal 0.005%, and
Cultivation was performed overnight at 7 ° C. to obtain blue transformant colonies.

形質転換体コロニーをL液体培地(アンピシリンを1m
l当り100μg含む)10mlに植菌し、37℃にて12時間振と
う培養を行ない、常法によりプラスミドDNA pBB9を分離
した。
Transformant colonies were transferred to L liquid medium (ampicillin was
10 ml (containing 100 μg per liter) was inoculated and cultured with shaking at 37 ° C. for 12 hours to isolate plasmid DNA pBB9 by a conventional method.

pBB9 2μgを制限酵素Sca I(18単位)と脱リン酸酵
素BAP(0.2)単位を用いて、37℃で1時間処理した後、
0.7%アガロース電気泳動を用いて約3kbのDNA断片を精
製した。また、pBB9 2μgを、制限酵素EcoR I(20単
位)とPst I(20単位)を用いて37℃で1時間処理した
後同様の操作を行なうことにより、2.7kbのDNA断片を精
製し、以下の部位特異的遺伝子変換を行なった。
After treating 2 μg of pBB9 with restriction enzyme Sca I (18 units) and dephosphorylating enzyme BAP (0.2) unit at 37 ° C. for 1 hour,
A DNA fragment of about 3 kb was purified using 0.7% agarose electrophoresis. In addition, 2 µg of pBB9 was treated with restriction enzymes EcoR I (20 units) and Pst I (20 units) at 37 ° C for 1 hour, and then the same operation was performed to purify a 2.7 kb DNA fragment. Was subjected to site-specific gene conversion.

上記のDNA断片各0.6μgと、50pmolの5′リン酸化合
成DNA(第8表aに示す)を用いて、100℃で3分間処理
した後、30℃で30分間アニーリングを行ない、更にこの
DNA溶液17.2μに5mM dNTP 7μと10mM ATP3.6μ、
クレノー酵素(4単位)およびT4DNAリガーゼ(1単
位)を加えて、25℃で3時間処理した。このDNA溶液を
用いて大腸菌JM83株に形質転換を行ない、X−gal、ア
ンピシリンを含むL寒天培地にて形質転換体の白いコロ
ニーを得た。この形質転換体コロニーを10mlのL液体培
地に植菌し、37℃で12時間培養し、常法によりプラスミ
ドDNA(pBBD7)を分離した。
0.6 μg of each of the above DNA fragments and 50 pmol of 5'phosphorylated synthetic DNA (shown in Table 8a) were treated at 100 ° C. for 3 minutes and then annealed at 30 ° C. for 30 minutes.
DNA solution 17.2μ to 5mM dNTP 7μ and 10mM ATP 3.6μ,
Klenow enzyme (4 units) and T4 DNA ligase (1 unit) were added and treated at 25 ° C for 3 hours. Using this DNA solution, Escherichia coli JM83 strain was transformed, and white colonies of transformants were obtained on L agar medium containing X-gal and ampicillin. This transformant colony was inoculated into 10 ml of L liquid medium and cultured at 37 ° C. for 12 hours, and plasmid DNA (pBBD7) was isolated by a conventional method.

pBBD7 2μgを制限酵素Sca I(18単位)と脱リン酸酵
素BAP(0.2単位)を用いて、37℃で1時間処理し、0.7
%アガロース電気泳動を用いて3kbのDNA断片を精製し
た。また、pBBD7 2μgを、制限酵素EcoR I(20単位)
とPst I(20単位)を用いて37℃で1時間処理した後同
様の操作で、2.7kbのDNA断片を精製した。これらの3kb
と2.7kbのDNA断片を夫々0.6μgと、50pmolの5′リン
酸化合成DNA(第8表bに示す)を用いて、上記の方法
により部位特異的遺伝子変換を行なった。得られた形質
転換体の青いコロニー24個を植菌し、常法によりプラス
ミドDNAを分離した後、大腸菌JM83株に形質転換した。
2 μg of pBBD7 was treated with restriction enzyme Sca I (18 units) and dephosphorylating enzyme BAP (0.2 unit) at 37 ° C. for 1 hour and then 0.7
The 3 kb DNA fragment was purified using% agarose electrophoresis. In addition, 2 μg of pBBD7 was added to the restriction enzyme EcoR I (20 units)
, And Pst I (20 units) were treated at 37 ° C. for 1 hour, and a 2.7 kb DNA fragment was purified by the same procedure. These 3kb
Site-specific gene conversion was performed by the above method using 0.6 μg of each of the DNA fragments of 2.7 kb and 2.7 kb and 50 pmol of 5 ′ phosphorylated synthetic DNA (shown in Table 8b). Twenty-four blue colonies of the obtained transformant were inoculated, plasmid DNA was isolated by a conventional method, and then transformed into Escherichia coli JM83 strain.

24枚のプレートによりそれぞれ青いコロニーを、L液
体培地に植菌し、培養後常法によりプラスミドDNA(pBB
X)を分離した。各々のDNAをジデオキシ法によるDNAシ
ーケンシングを行ない、変換した塩基配列及びアミノ酸
を確認した。
Blue colonies were inoculated on 24 liquid plates in 24 plates, and after culturing, plasmid DNA (pBB
X) was separated. Each DNA was subjected to DNA sequencing by the dideoxy method to confirm the converted base sequence and amino acid.

各々のアミノ酸の変換したプラスミド2μgを、制限
酵素BamH I(10単位)を用いて37℃で1時間処理した後
0.7%アガロース電気泳動を用いて0.3kbのDNA断片を精
製した。また、天然の逆転写酵素発現プラスミドpKP po
l−NT1(バリン)5μgを、BamH I(50単位)を用いて
37℃で1時間処理した後同様の操作を行なうことによ
り、約4.7kbのDNA断片を精製した。この4.7kbのDNA断片
と各々のアミノ酸変異を含む0.3kbのDNA断片をそれぞれ
0.1μgづつ混合し、T4DNAリガーゼ(2単位づつ)を用
いて4℃で12時間連結反応を行なった。
2 μg of each amino acid-converted plasmid was treated with restriction enzyme BamHI (10 units) at 37 ° C. for 1 hour.
The 0.3 kb DNA fragment was purified using 0.7% agarose electrophoresis. In addition, the natural reverse transcriptase expression plasmid pKP po
l-NT1 (valine) 5μg with BamHI (50 units)
After treatment at 37 ° C for 1 hour, the same operation was performed to purify a DNA fragment of about 4.7 kb. This 4.7 kb DNA fragment and the 0.3 kb DNA fragment containing each amino acid mutation are respectively
0.1 μg of each mixture was mixed, and ligation reaction was performed for 12 hours at 4 ° C. using T4 DNA ligase (2 units each).

これらのDNA溶液を用いて大腸菌JM83株に形質転換に
行ない、アンピシリン、X−galを含むL寒天培地にて
形質転換体コロニーをそれぞれ得た。これらを、L液体
培地に植菌し、37℃、12時間振とう培養を行ない、常法
によりプラスミドDNAを分離した。
E. coli JM83 strain was transformed with these DNA solutions, and transformant colonies were obtained on L agar medium containing ampicillin and X-gal. These were inoculated into L liquid medium, shake-cultured at 37 ° C. for 12 hours, and plasmid DNA was isolated by a conventional method.

以上の製造工程を第3図に示す。 The above manufacturing process is shown in FIG.

これらはそれぞれ、pKP−T1L(ロイシン)、pKP−T1I
(イソロイシン)、pKP−T1A(アラニン)、pKP−T1F
(フェニルアラニン)、pKP−T1R(アルギニン)、pKP
−T1K(リジン)、pKP−T1D(アスパラギン酸)、pKP−
T1N(アスパラギン)、pKP−T1M(メチオニン)、pKP−
T1G(グリシン)である。
These are pKP-T1L (leucine), pKP-T1I, respectively.
(Isoleucine), pKP-T1A (alanine), pKP-T1F
(Phenylalanine), pKP-T1R (arginine), pKP
-T1K (lysine), pKP-T1D (aspartic acid), pKP-
T1N (asparagine), pKP-T1M (methionine), pKP-
T1G (glycine).

これらのクローンについて、逆転写活性を測定した。
結果を第8表に示す。
The reverse transcription activity was measured for these clones.
The results are shown in Table 8.

[発明の効果] 以上説明したように、本発明の逆転写酵素発現プラス
ミドの製造方法によれば、逆転写酵素の発現活性が極め
て高い逆転写酵素発現プラスミドを得ることができる。
[Effects of the Invention] As described above, according to the method for producing a reverse transcriptase expression plasmid of the present invention, a reverse transcriptase expression plasmid having extremely high reverse transcriptase expression activity can be obtained.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

第1図は本発明に使用するベクターの一例の遺伝子地
図、第2図は本発明の製造方法の一実施例を示す工程
図、第3図は本発明の製造方法の他の実施例を示す工程
図、第4図は逆転写活性を示すグラフである。
FIG. 1 is a gene map of an example of a vector used in the present invention, FIG. 2 is a process chart showing an embodiment of the production method of the present invention, and FIG. 3 is another embodiment of the production method of the present invention. The process chart and FIG. 4 are graphs showing the reverse transcription activity.

Claims (2)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】TLNIEDEHRLHETSKEPDVSLGSTWLSDFPQAWAETGG
MGLAVRQAPLIIPLKATSTPVSIKQYPMSQEARLGIKPHIQRLLDQGILV
PCQSPWNTPLLPVKKPGTNDYRPVQDLREVNKRVEDIHPTVPNPYNLLSG
LPPSHQWYTVLDLKDAFFCLRLHPTSQPLFAFEWRDPEMGISGQLTWTRL
PQGFKNSPTLFDEALHRDLADFRIQHPDLILLQYXDDLLLAATSELDCQQ
GTRALLQTLGNLGYRASAKKAQICQKQVKYLGYLLKEGQRWLTEARKETV
MGQPTPKTPRQLREFLGTAGFCRLWIPGFAEMAAPLYPLTKTGTLFNWGP
DQQKAYQEIKQALLTAPALGLPDLTKPFELFVDEKQGYAKGVLTQKLGPW
RRPVAYLSKKLDPVAAGWPPCLRMVAAIAVLTKDAGNVTMGQPLVILAPH
AVEALVKQPPDRWLSNARMTHYQALLLDTDRVQFGPVVALNPATLLPLPE
EGL〔但し、Aはアラニン(Ala)、Cはシステイン(Cy
s)、Dはアスパラギン酸(Asp)、Eはグルタミン酸
(Glu)、Fはフェニルアラニン(Phe)、Gはグリシン
(Gly)、Hはヒスチジン(His)、Iはイソロイシン
(Ile)、Kはリジン(Lys)、Lはロイシン(Len)、
Mはメチオニン(Met)、Nはアスパラギン(Asn)、P
はプロリン(Pro)、Qはグルタミン(Gln)、Rはアル
ギニン(Arg)、Sはセリン(Ser)、Tはスレオニン
(Thr)、Vはバリン(Val)、Wはトリプトファン(Tr
p)及びYはチロシン(Tyr)を表す〕 で表されるアミノ酸配列を有する逆転写酵素を発現する
逆転写酵素発現プラスミドであって、 当該アミノ酸配列中、N末端より223番目のXがL(ロ
イシン)、I(イソロイシン)、A(アラニン)、F
(フェニルアラニン)及びR(アルギニン)から成る群
より選択した1のアミノ酸であることを特徴とする逆転
写酵素発現プラスミド。
1. TLNIEDEHRLHETSKEPDVSLGSTWLSDFPQAWAETGG
MGLAVRQAPLIIPLKATSTPVSIKQYPMSQEARLGIKPHIQRLLDQGILV
PCQSPWNTPLLPVKKPGTNDYRPVQDLREVNKRVEDIHPTVPNPYNLLSG
LPPSHQWYTVLDLKDAFFCLRLHPTSQPLFAFEWRDPEMGISGQLTWTRL
PQGFKNSPTLFDEALHRDLADFRIQHPDLILLQYXDDLLLAATSELDCQQ
GTRALLQTLGNLGYRASAKKAQICQKQVKYLGYLLKEGQRWLTEARKETV
MGQPTPKTPRQLREFLGTAGFCRLWIPGFAEMAAPLYPLTKTGTLFNWGP
DQQKAYQEIKQALLTAPALGLPDLTKPFELFVDEKQGYAKGVLTQKLGPW
RRPVAYLSKKLDPVAAGWPPCLRMVAAIAVLTKDAGNVTMGQPLVILAPH
AVEALVKQPPDRWLSNARMTHYQALLLDTDRVQFGPVVALNPATLLPLPE
EGL [where A is alanine (Ala), C is cysteine (Cy
s), D is aspartic acid (Asp), E is glutamic acid (Glu), F is phenylalanine (Phe), G is glycine (Gly), H is histidine (His), I is isoleucine (Ile), and K is lysine (Ile). Lys), L is leucine (Len),
M is methionine (Met), N is asparagine (Asn), P
Is proline (Pro), Q is glutamine (Gln), R is arginine (Arg), S is serine (Ser), T is threonine (Thr), V is valine (Val), W is tryptophan (Tr).
p) and Y represent tyrosine (Tyr)], which is a reverse transcriptase expression plasmid expressing a reverse transcriptase having an amino acid sequence represented by the following formula, wherein 223rd X from the N-terminal is L ( Leucine), I (isoleucine), A (alanine), F
A reverse transcriptase expression plasmid, which is one amino acid selected from the group consisting of (phenylalanine) and R (arginine).
【請求項2】TLNIEDEHRLHETSKEPDVSLGSTWLSDFPQAWAETGG
MGLAVRQAPLIIPLKATSTPVSIKQYPMSQEARLGIKPHIQRLLDQGILV
PCQSPWNTPLLPVKKPGTNDYRPVQDLREVNKRVEDIHPTVPNPYNLLSG
LPPSHQWYTVLDLKDAFFCLRLHPTSQPLFAFEWRDPEMGISGQLTWTRL
PQGFKNSPTLFDEALHRDLADFRIQHPDLILLQYXDDLLLAATSELDCQQ
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MGQPTPKTPRQLREFLGTAGFCRLWIPGFAEMAAPLYPLTKTGTLFNWGP
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EGL〔但し、Aはアラニン(Ala)、Cはシステイン(Cy
s)、Dはアスパラギン酸(Asp)、Eはグルタミン酸
(Glu)、Fはフェニルアラニン(Phe)、Gはグリシン
(Gly)、Hヒスチジン(His)、Iはイソロイシン(Il
e)、Kはリジン(Lys)、Lはロイシン(Len)、Mは
メチオニン(Met)、Nはアスパラギン(Asn)、Pはプ
ロリン(Pro)、Qはグルタミン(Gln)、Rはアルギニ
ン(Arg)、Sはセリン(Ser)、Tはスレオニン(Th
r)、Vはバリン(Val)、Wはトリプトファン(Trp)
及びYはチロシン(Tyr)を表す〕で表されるアミノ酸
配列を有し、該アミノ酸配列中、N末端より223番目の
XがL(ロイシン)、I(イソロイシン)、A(アラニ
ン)、F(フェニルアラニン)及びR(アルギニン)か
ら成る群より選択した1のアミノ酸である逆転写酵素を
発現する逆転写酵素発現プラスミドの製造方法であっ
て、 以下の工程を含むことを特徴とする逆転写酵素発現プラ
スミドの製造方法、 (イ) XがV(バリン)である該アミノ酸配列をコー
ドする遺伝子より制限酵素を用いて分離した逆転写酵素
をコードするDNA断片と、 2個のマルチクローニングサイト及び該2個のマルチク
ローニングサイトの間に挿入された3種の終止コドンを
有する中継ぎ塩基配列とを有し、かつ該DNA断片の両端
部のフレームが合致するベクターより、該制限酵素を用
いて分離したDNA断片とを連結してプラスミドを得る工
程、 (ロ)該プラスミドが有する制限酵素切断部位のうち、
該逆転写酵素をコードするDNA断片のN末端側に位置す
るものを切断し、その切り口をポリメラーゼで埋めた
後、再び連結することによりフレームをずらしたプラス
ミドを得る工程、 (ハ)(ロ)で得られたプラスミドを大腸菌に導入して
得た白色の形質転換体コロニーより調製したプラスミド
と、 逆転写酵素のN末端側の余分なアミド酸配列及び該ベク
ター由来の余分なアミノ酸配列に相当する塩基配列を除
去して合成したオリゴDNAを用いて部位特異的遺伝子変
換を行い、 余分なアミノ酸配列に相当する塩基配列を除去した変異
体プラスミドpKPpo1−Nを得る工程、 (ニ)(ハ)で得られたpKPpo1−Nを大腸菌に導入して
得た青色の形質転換体コロニーより調製したpKPpo1−N
と、 逆転写酵素のC末端側に終止コドンを挿入したオリゴDN
Aを用いて部位特異的遺伝子変換を行い、 両末端に余分なアミノ酸配列を含まない特異体プラスミ
ドpKPpo1−NT1を得る工程、 (ホ)(ニ)で得られたpKPpo1−NT1を大腸菌に導入し
て得た白色の形質転換体コロニーよりpKPpo1−NT1を調
製する工程、 (チ)プラスミドpSH1より制限酵素を用いて分離した逆
転写酵素をコードするDNA断片と、 2個のマルチクローニングサイト及び該2個のマルチク
ローニングサイトの間に挿入された3種の終止コドンを
有する中継ぎ塩基配列とを有し、かつpSH1より分離した
該DNA断片の両端部のフレームが合致するベクターよ
り、該制限酵素を用いて分離したDNA断片とを連結して
プラスミドを得る工程、 (リ)(チ)で得られた該プラスミドを大腸菌に導入し
て得た青色の形質転換体コロニーより調製したプラスミ
ドpBB9と、 逆転写酵素領域を含むDNA断片のフレームをずらした配
列を有するオリゴDNAを用いて部位特異的遺伝子変換を
行い、 変異体プラスミドpBBD7を得る工程、 (ヌ)(リ)で得られたpBBD7を大腸菌に導入して得た
白色の形質転換体コロニーより調製したプラスミドpBB7
と、 逆転写酵素領域を含むDNA中の塩基配列のうち、該アミ
ノ酸配列において第223番目のバリンをコードするコド
ンを、ロイシン、イソロイシン、アラニン、フェニルア
ラニン、及びアルギニンから成る群から選択した1のア
ミノ酸をコードするコドンに変換し、フレームを元に戻
したオリゴDNAを用いて部位特異的遺伝子変換を行い、 変異体プラスミドpBBDX(Xはロイシン、イソロイシ
ン、アラニン、フェニルアラニン、又はアルギニン)を
得る工程、 (ル)(ヌ)で得られたpBBDXを大腸菌に導入して得た
白色の形質転換体コロニーより調製したプラスミドpBBD
Xより制限酵素を用いて分離したDNA断片と、 (ホ)で調製したpKPpo1−NT1よりpBBDXの切断に用いた
制限酵素を用いて分離したDNA断片とを連結してプラス
ミドを得る工程、 (ヲ)(ル)で得られた該プラスミドを大腸菌に導入し
て得た形質転換体コロニーよりプラスミドpKP−T1X(X
はロイシン、イソロイシン、アラニン、フェニルアラニ
ン、又はアルギニン)を調製する工程。
2. TLNIEDEHRLHETSKEPDVSLGSTWLSDFPQAWAETGG
MGLAVRQAPLIIPLKATSTPVSIKQYPMSQEARLGIKPHIQRLLDQGILV
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EGL [where A is alanine (Ala), C is cysteine (Cy
s), D is aspartic acid (Asp), E is glutamic acid (Glu), F is phenylalanine (Phe), G is glycine (Gly), H histidine (His), I is isoleucine (Il).
e), K is lysine (Lys), L is leucine (Len), M is methionine (Met), N is asparagine (Asn), P is proline (Pro), Q is glutamine (Gln), and R is arginine (Arg). ), S is serine (Ser), T is threonine (Th
r), V is valine (Val), W is tryptophan (Trp)
And Y represents tyrosine (Tyr)], and in the amino acid sequence, the X at the 223rd position from the N-terminal is L (leucine), I (isoleucine), A (alanine), F ( A method for producing a reverse transcriptase expression plasmid that expresses a reverse transcriptase, which is one amino acid selected from the group consisting of phenylalanine) and R (arginine), comprising the following steps: A method for producing a plasmid, (a) A DNA fragment encoding a reverse transcriptase separated from a gene encoding the amino acid sequence in which X is V (valine) using a restriction enzyme, two multi-cloning sites and the two Vector having a repeat base sequence having 3 types of stop codons inserted between the multiple cloning sites, and the frames at both ends of the DNA fragment match The step of ligating with a DNA fragment separated using the restriction enzyme to obtain a plasmid, (b) of the restriction enzyme cleavage sites of the plasmid,
A step of cleaving a DNA fragment located on the N-terminal side of the DNA fragment encoding the reverse transcriptase, filling the cut end with a polymerase, and then ligating again to obtain a plasmid in which the frame is shifted, (c) (b) It corresponds to a plasmid prepared from a white transformant colony obtained by introducing the plasmid obtained in 1. into Escherichia coli, an extra amidic acid sequence on the N-terminal side of reverse transcriptase, and an extra amino acid sequence derived from the vector. Site-specific gene conversion using oligo DNA synthesized by removing the base sequence to obtain a mutant plasmid pKP po1- N in which the base sequence corresponding to the extra amino acid sequence is removed, (d) (c) PKP po1 -N the resulting PKP po1 -N prepared from transformant colonies blue obtained by introducing into E. coli
And an oligo DN with a stop codon inserted at the C-terminal side of the reverse transcriptase
Site-specific gene conversion using A to obtain a specific plasmid pKP po1- NT1 that does not contain extra amino acid sequences at both ends. (E) The pKP po1- NT1 obtained in (d) is transformed into E. coli. Step of preparing pKP po1- NT1 from the white transformant colony obtained by introduction, (h) DNA fragment encoding reverse transcriptase isolated from plasmid pSH1 using a restriction enzyme, and two multi-cloning sites And a vector having the intermediary nucleotide sequence having three types of stop codons inserted between the two multi-cloning sites and having the same frame at both ends of the DNA fragment separated from pSH1. A step of obtaining a plasmid by ligating with a DNA fragment separated using an enzyme, (p) A plasmid pB prepared from a blue transformant colony obtained by introducing the plasmid obtained in (h) into Escherichia coli B9 and a step of site-specific gene conversion using oligo DNA having an out-of-frame sequence of a DNA fragment containing the reverse transcriptase region to obtain mutant plasmid pBBD7 Plasmid pBB7 prepared from white transformant colonies obtained by introducing pBBD7 into Escherichia coli
And, in the base sequence in the DNA containing the reverse transcriptase region, the codon encoding the 223rd valine in the amino acid sequence is one amino acid selected from the group consisting of leucine, isoleucine, alanine, phenylalanine, and arginine. A step of obtaining a mutant plasmid pBBDX (X is leucine, isoleucine, alanine, phenylalanine, or arginine) by performing site-specific gene conversion using the oligo DNA in which the frame has been restored to its original codon, Plasmid pBBD prepared from a white transformant colony obtained by introducing the pBBDX obtained in
A step of ligating the DNA fragment isolated from X with a restriction enzyme and the DNA fragment isolated from pKP po1- NT1 prepared in (e) using the restriction enzyme used to cleave pBBDX to obtain a plasmid, The plasmid pKP-T1X (X) was isolated from a transformant colony obtained by introducing the plasmid obtained in
Is a step of preparing leucine, isoleucine, alanine, phenylalanine, or arginine).
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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Proc.Natl.Acad.Sci.USA82P.4944−4948(1985)

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