JP2024527039A

JP2024527039A - ジカウイルスに対する免疫応答を誘導するための組換え抗原

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Publication number: JP2024527039A
Application number: JP2024504927A
Authority: JP
Inventors: プラド、イリスバルデス; ゴンザレス、ラザロギル; バスケス、ラウララソ; クルス、リセットエルミダ; ニエト、ジェラルド、エンリケギレン; アコスタ、カレムコバス; フェルナンデス、ヤレミスロメロ; ダルダー、アンディ、ヘススブルーノ; ポルタル、イーディススザルテ; フエンテス、ユスレイディ、デラカリダッドペレス
Original assignee: Centro de Ingenieria Genetica y Biotecnologia CIGB
Current assignee: Centro de Ingenieria Genetica y Biotecnologia CIGB
Priority date: 2021-07-28
Filing date: 2022-07-21
Publication date: 2024-07-19
Also published as: CA3227009A1; MX2024001360A; KR20240038009A; EP4378475A1; CN117979993A; WO2023006131A1; CU20210063A7; AU2022320680A1

Abstract

本発明は、ジカウイルスのカプシドタンパク質のアミノ酸２～１０４に対応するポリペプチド、またはカプシドタンパク質の前記領域と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドをポリペプチド鎖内に含む組換えキメラ抗原に関する。本発明はまた、前記組換えキメラ抗原および薬学的に許容されるワクチンアジュバントを含むワクチン組成物に関する。本発明はさらに、ジカウイルスに対する免疫応答を誘導するための薬物を製造するための、ジカウイルスのカプシドタンパク質のアミノ酸２～１０４に対応するポリペプチド、または前記セグメントと少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列をポリペプチド鎖内に含む組換えキメラ抗原の使用に関する。本発明はまた、ジカウイルスに対する免疫応答を誘導する方法であって、組換えキメラ抗原が投与される方法を開示する。

Description

本発明は、バイオテクノロジーおよび製薬産業の分野に関し、特に、ジカウイルスに対する組換えタンパク質抗原およびワクチン組成物を得ることに関する。

ジカウイルスは、フラビウイルス（Ｆｌａｖｉｖｉｒｉｄａｅ）科のフラビウイルス（Ｆｌａｖｉｖｉｒｕｓ）属に属し（Ｋｕｎｏ＆Ｃｈａｎｇ，２００７，ＡｒｃｈＶｉｒｏｌ，１５２：６８７－６９６）、これには、黄熱病ウイルス、日本脳炎ウイルス、西ナイルウイルス、ダニ媒介性脳炎ウイルス、およびデングウイルス等の他の病原体が含まれる。ジカウイルスは、熱帯および亜熱帯地域において豊富に存在する（Ｓｈａｒｍａ＆Ｌａｌ，２０１７，ＦｒｏｎｔＭｉｃｒｏｂｉｏｌ，８：１１０－）ヤブカ（Ａｅｄｅｓ）属の感染した蚊に刺されることによってヒトに伝染する（Ｋｉｎｄｈａｕｓｅｒｅｔａｌ．，２０１６，ＢｕｌｌＷｏｒｌｄＨｅａｌｔｈＯｒｇａｎ，９４：６７５－６８６Ｃ参照）。ジカは、ポリタンパク質に翻訳されるポジティブ一本鎖ＲＮＡを有するエンベロープウイルスであり、当該ポリタンパク質は、翻訳前後に１０個のタンパク質に切断される（Ｋｕｎｏ＆Ｃｈａｎｇ，２００７，ＡｒｃｈＶｉｒｏｌ，１５２：６８７－６９６）：３つの構造タンパク質および７つの非構造タンパク質が、ウイルス複製、ウイルスアセンブリ、および免疫系の回避に関与する（Ｓｉｒｏｈｉｅｔａｌ．，２０１６，Ｓｃｉｅｎｃｅ，３５２：４６７－４７０）。構造タンパク質は、カプシドタンパク質（Ｃ）、エンベロープタンパク質（Ｅ）、および膜タンパク質（Ｍ）または膜前駆体タンパク質（ＰｒＭ）である。非構造タンパク質は、ＮＳ１、ＮＳ２ａ、ＮＳ２ｂ、ＮＳ３、ＮＳ４ａ、ＮＳ４ｂ、およびＮＳ５として知られている。

これまでのところ、３回の大規模なジカウイルスのアウトブレイクがあった。最初のアウトブレイクは２００７年にミクロネジア連邦州で発生し、約７，０００人が感染したが、重篤な合併症はなかった（Ｄｕｆｆｙｅｔａｌ．，２００９，ＮＥｎｇｌＪＭｅｄ，３６０：２５３６－２５４３）。２０１３年、２回目の流行性アウトブレイクがフランス領ポリネシアで発生し、推定２８，０００人の住民がジカウイルス感染症に罹患した（Ｍｕｓｓｏｅｔａｌ．，２０１４，ＣｌｉｎＭｉｃｒｏｂｉｏｌＩｎｆｅｃｔ，２０：Ｏ５９５－Ｏ５９６）。このアウトブレイクでは、ギラン・バレー症候群等の神経学的損傷症例の発生率の増大が初めて観察された（Ｃａｏ－Ｌｏｒｍｅａｕｅｔａｌ．，２０１６，Ｌａｎｃｅｔ，３８７：１５３１－１５３９）。３回目のアウトブレイクは、２０１５年に、ブラジルにおいて、４４万～１３０万症例のジカウイルス感染症が疑われた（Ｈｅｎｎｅｓｓｅｙｅｔａｌ．，２０１６，ＭＭＷＲＭｏｒｂＭｏｒｔａｌＷｋｌｙＲｅｐ，６５：５５－５８）。当該アウトブレイクでは、神経学的損傷がある症例、具体的にはギラン・バレー症候群を患う人および小頭症を患う新生児の数が増大した（Ｓｃｈｕｌｅｒ－Ｆａｃｃｉｎｉｅｔａｌ．，２０１６，ＭＭＷＲＭｏｒｂＭｏｒｔａｌＷｋｌｙＲｅｐ，６５：５９－６２）。

２０１６年に、世界保健機関（ＷＨＯ）は、ジカウイルスによって引き起こされる疾患を「国際的に懸念される公衆衛生上の緊急事態（ＰｕｂｌｉｃＨｅａｌｔｈＥｍｅｒｇｅｎｃｙｏｆＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌＣｏｎｃｅｒｎ）」と宣言した。２０１７年には、当該疾患の伝染が４８か国において報告され、５１万件の疑いのある症例および１７万件を超える確認された症例が蓄積されたＹｕｎ＆Ｌｅｅ，２０１７，ＪＭｉｃｒｏｂｉｏｌ，５５：２０４－２１９）。２０１９年の時点で、６つのＷＨＯ地域のうちの４つ（アフリカ、東南アジア、西太平洋、およびアメリカ）に分布する８７か国が、感染した蚊の刺咬傷を介したジカウイルスの自然伝染を報告している。このウイルスについては、ベクター伝染に加えて、具体的には、性的伝染、妊娠中の母親から胎児への伝染、および輸血等の他の伝染経路の可能性がある（Ｆｒａｎｋｅｔａｌ．，２０１６，ＥｕｒｏＳｕｒｖｅｉｌｌ，２１）。

感染後、臨床症状「デング熱様症候群」がヒトにおいて発症する。これは軽度または無症候性であり得、感染の約８０％は無症候性である（Ｇｒｏｓｓｉ－Ｓｏｙｓｔｅｒ＆ＬａＢｅａｕｄ，２０１７，ＣｕｒｒＯｐｉｎＰｅｄｉａｔｒ，２９：１０２－１０６）。一般に、症候性症例は軽度であり、発疹、発熱状態、関節炎、関節痛、非化膿性結膜炎、および四肢の浮腫が挙げられ得る（Ｃａｌｖｅｔｅｔａｌ．，２０１６，ＣｕｒｒＯｐｉｎＩｎｆｅｃｔＤｉｓ，２９：４５９－４６６）。頭痛、筋肉痛、眼窩後痛、腰痛、リンパ節症、および嘔吐等の他の症状も起こり得る（Ｂｒａｓｉｌｅｔａｌ．，２０１６，ＰＬｏＳＮｅｇｌＴｒｏｐＤｉｓ，１０：ｅ０００４６３６）。疾患は、多くの場合、軽度である。しかしながら、特に基礎疾患がある人々において、致命的な症例の報告がある（Ａｒｚｕｚａ－Ｏｒｔｅｇａｅｔａｌ．，２０１６，ＥｍｅｒｇＩｎｆｅｃｔＤｉｓ，２２：９２５－９２７）。

初期のデータは、ジカウイルスに対する免疫応答が、他のフラビウイルス（Ｆｌａｖｉｖｉｒｕｓ）の免疫応答と類似していることを示しており、そこでは、Ｅタンパク質に対する中和抗体（Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ＆Ｄｉａｍｏｎｄ，２０１７，ＣｕｒｒＯｐｉｎＶｉｒｏｌ，２３：５９－６７）が、感染に対する防御において、主要な要素を構成していた（Ｓａｐｐａｒａｐｕｅｔａｌ．，２０１６，Ｎａｔｕｒｅ，５４０：４４３－４４７）。Ｅタンパク質は、ビリオン表面上で最も曝露されており、宿主細胞中へのウイルスの融合および侵入に関与している（Ｌａｒｏｃｃａｅｔａｌ．，２０１６，Ｎａｔｕｒｅ，５３６：４７４－４７８）。しかしながら、フラビウイルス（Ｆｌａｖｉｖｉｒｕｓ）間、とりわけデングウイルスとジカウイルス間の高レベルの交差反応性が、双方のウイルス感染を区別する抗体の役割を妨げている（Ｋｏｓｔｙｕｃｈｅｎｋｏｅｔａｌ．，２０１６，Ｎａｔｕｒｅ，５３３：４２５－４２８）。

これまでのところ、デングウイルスについて十分に実証されているように、ジカウイルスに対して生成された抗体が、感染の抗体依存性の増強の現象を介して、別の関連フラビウイルス（Ｆｌａｖｉｖｉｒｕｓ）へのウイルス感染を促進し得るかどうかは、不明である。また、ジカウイルスに対して生成された免疫応答が、その後のデングウイルス感染に影響を及ぼし得るかどうか、もしくはその逆、または一部の患者において観察されるギラン・バレー症候群等の神経学的損傷が、直接ウイルス感染、もしくは免疫応答の二次的影響の結果であるかどうかも、知られていない（Ｐｏｌａｎｄｅｔａｌ．，２０１８，ＬａｎｃｅｔＩｎｆｅｃｔＤｉｓ，１８：ｅ２１１－ｅ２１９）。

一方、最近の研究は、ジカウイルス感染に対するＴ細胞応答の重要な役割を示している。ウイルスに免疫がある人々由来の末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を用いて、細胞性免疫応答の主な標的が同定されてきた。当該応答は主に、構造タンパク質ＣおよびｐｒＭ、ならびに非構造タンパク質ＮＳ２およびＮＳ５に向けられる（Ｘｕｅｔａｌ．，２０１６，ＰＬｏＳＣｕｒｒ，８：Ｅｌｏｎｇｅｔａｌ．，２０１７，ＣｅｌｌＨｏｓｔＭｉｃｒｏｂｅ，２１：３５－４６）。

不活化ウイルスワクチン、弱毒化ワクチン、ＤＮＡおよびｍＲＮＡワクチン、ウイルスベクターベースのワクチン、ならびにサブユニットワクチンを含む、複数の抗原送達アプローチを用いる、ジカウイルスに対する４０を超えるワクチン候補が、現在開発中である（Ｂａｒｏｕｃｈｅｔａｌ．，２０１７，Ｉｍｍｕｎｉｔｙ，４６：１７６－１８２）。しかしながら、これらのアプローチのいくつかは、その高い製造コストおよび低い安全性プロファイル等の欠点があり、サブユニットワクチンへの道が切り開かれる。

サブユニットワクチンの中には、Ｅタンパク質の８０％（Ｌｉａｎｇｅｔａｌ．，２０１８，ＰＬｏＳＯｎｅ，１３：ｅ０１９４８６０－；Ｑｕｅｔａｌ．，２０１８，ＡｎｔｉｖｉｒａｌＲｅｓ，１５４：９７－１０３）、およびＥタンパク質のドメインＩＩＩ（ＥＤＩＩＩ）（Ｑｕｅｔａｌ．，２０１８，ＡｎｔｉｖｉｒａｌＲｅｓ，１５４：９７－１０３）に基づくバリアントが存在する。具体的には、他のフラビウイルス（Ｆｌａｖｉｖｉｒｕｓ）について得られた結果に基づいて、ＥＤＩＩＩ領域が有望な免疫原として現れた（Ｂｅｌｔｒａｍｅｌｌｏｅｔａｌ．，２０１０，ＣｅｌｌＨｏｓｔＭｉｃｒｏｂｅ，８：２７１－２８３）。組換えＥＤＩＩＩ領域を用いたいくつかの研究が、マウスにおける体液性免疫応答および細胞性免疫応答の誘導、ならびにウイルスチャレンジに対する防御を示した（Ｙａｎｇｅｔａｌ．，２０１７，ＳｃｉＲｅｐ，７：７６７９－；Ｑｕｅｔａｌ．，２０１８，ＡｎｔｉｖｉｒａｌＲｅｓ，１５４：９７－１０３）。しかしながら、これらの戦略の全てが、よりヒトに近い動物モデルにおいて、これらの有望な結果を再現することができたわけではない。体液性免疫応答および細胞誘発性免疫応答を向上させるために、新規抗原、免疫系への提示の向上、または組換えサブユニットとアジュバントとの組合せを含む新規製剤が評価されている。

上記の要素に従えば、フラビウイルス（Ｆｌａｖｉｖｉｒｕｓ）に対する安全かつ有効な免疫応答を誘導することができる、ジカウイルスに対するサブユニットワクチンの開発は、依然として未解決の課題である。

本発明は、ジカウイルスのカプシドタンパク質のアミノ酸２～１０４に対応するポリペプチド、または当該ウイルスのカプシドタンパク質のそのような領域と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドをポリペプチド鎖内に含む組換えキメラ抗原を提供することによって、上述の課題を解決する。このようにして、本発明のキメラ抗原は、ウイルスに対する中和抗体の存在なしに、細胞性免疫応答を潜在的に誘導して、ウイルス量を減少させ、かつ保護を実現することができる領域を含有する。

本発明の一実施形態において、キメラ抗原は、追加で、ジカウイルスＥタンパク質のＥＤＩＩＩドメインに対応するポリペプチド、またはジカウイルスエンベロープタンパク質のそのようなドメインと少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む。この場合、キメラ抗原は、中和抗体および細胞性免疫応答の双方を誘導することができる２つの潜在的保護領域を含む。これらの領域は、ＥＤＩＩＩドメイン由来の１４５アミノ酸およびウイルスカプシドタンパク質由来の１０３アミノ酸からなる。双方のウイルス領域は、ジカウイルスについて同定されていた２つの系統、アジア／アメリカ系統およびアフリカ系統を含む異なる単離株間で、高度の相同性を示す（Ｈａｄｄｏｗｅｔａｌ．，２０１２，ＰＬｏＳＮｅｇｌＴｒｏｐＤｉｓ，６：ｅ１４７７－）。これらの領域は、本発明のキメラ抗原を、ジカウイルスの様々な株による感染から保護するのに有用な分子に変換する。

本発明の一実施形態において、キメラ抗原は、追加で、そのポリペプチド鎖のＮ末端に６つのヒスチジン残基のセグメントを含む。特定の実施形態において、キメラ抗原は、配列番号９または配列番号１０として同定されるアミノ酸配列を有する。

本発明の目的は、そのポリペプチド鎖内に、ａ）ジカウイルスカプシドタンパク質のアミノ酸２～１０４に対応するポリペプチド、または当該ウイルスのカプシドタンパク質のそのような領域と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドと、ｂ）薬学的に許容されるワクチンアジュバントとを含む組換えキメラ抗原を含むワクチン組成物である。本発明の一実施形態において、アジュバントはアルミニウム塩である。

最初に、免疫を誘導するワクチン組成物の能力を、腹腔内経路によって免疫化された免疫適格マウス（ＢＡＬＢ／ｃ）における前臨床試験において評価した。当該研究では、ヒトにおける後の使用のための汎用性のために、ミョウバンをアジュバントとして用いた。加えて、ワクチン組成物を、免疫刺激デオキシリボ核酸（ｓＤＮＡ）鎖（本発明において配列番号１１と呼ぶ）と組み合わせて試験した。これにより、非凝集バリアントよりも免疫系に効率的に提示される抗原の凝集体の形成に起因して、免疫エンハンサを含まない調製物と比較した場合に、免疫原性が増大する新しいワクチン組成物の生成が可能になった。

したがって、本発明の一実施形態において、キメラ抗原に基づくワクチン組成物は加えて、配列番号１１として同定されるヌクレオチド配列を有する核酸を含む。本発明の一実施形態において、ワクチン組成物では、キメラ抗原は、用量あたり１０～１５０マイクログラムの範囲である。

ウイルスカプシド領域を含むワクチン組成物は、免疫刺激性ｓｓＤＮＡの存在に起因して、可溶性形態および凝集形態の双方とも、免疫化マウスにおいて細胞性免疫応答を生成した。この免疫は、様々なウイルス株によるチャレンジ後の動物に、部分的な保護を与えた。

ジカウイルスのＥＤＩＩＩ領域およびウイルスカプシドタンパク質領域を含むキメラタンパク質を含むワクチン組成物の場合、免疫刺激性ｓｓＤＮＡと組み合わせた後の可溶性形態および凝集形態は双方とも、免疫化マウスにおいて体液性免疫応答および有効な細胞性免疫応答を生成することができた。この免疫は、様々なウイルス株によるチャレンジ後の動物に、保護を与えた。

続いて、双方の分子の凝集バリアントを含むワクチン組成物を選択して、アジュバントとしてミョウバンも用いて、皮下接種したアカゲザル（Ｍａｃａｃａｍｕｌａｔｔａ）種の非ヒト霊長類において評価した。結果として、免疫化された動物において、ジカウイルスに対する中和抗体が生じ、そしてまた、３回の投与後に細胞性免疫応答が生じた。したがって、別の態様において、本発明は、ジカウイルスに対する免疫応答を誘導するための薬物を製造するための、上記の組換えキメラ抗原の使用を含む。

また、本発明は、ポリペプチド鎖内に、ジカカプシドタンパク質のアミノ酸２～１０４に対応するポリペプチド、またはジカウイルスカプシドタンパク質のそのような領域と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドを、そして薬学的に許容されるアジュバントを含む、薬学的に有効な量の組換えキメラ抗原を投与したヒトにおいて、ジカウイルスに対する免疫応答を誘導する方法を提供する。

本発明の一実施形態において、アジュバントはアルミニウム塩である。本発明の方法の一実施形態において、組換えキメラ抗原の薬学的に有効な量は、用量あたり１０～１５０マイクログラムの範囲内である。特定の実施形態として、本発明の方法では、配列番号１１として同定されるヌクレオチド配列を有する核酸が、加えて、組換えキメラ抗原と共に投与する。

ジカウイルスのＥＤＩＩＩ領域を用いるいくつかの研究は、マウスにおける体液性免疫応答および細胞性免疫応答の誘導、ならびにウイルスチャレンジに対する防御を示したが、これらの戦略は、霊長類において達成される良好な免疫原性結果を再現することができなかった。本発明は、ジカウイルスのサブユニットに基づいてワクチン候補を開発する試みと比較して、明らかな利点を有する。本発明のキメラ抗原は、これを含有するワクチン組成物により、非ヒト霊長類において細胞性応答および体液性応答の双方を誘導することが示された。一部には、ジカウイルスに対するこの有効な応答は、ウイルスカプシドタンパク質の１０３アミノ酸断片の包含、および抗原を免疫系に提示するより良好な方法に起因するものである。

発現ベクターｐＥＴ－２８ＡＣにおけるＺＣ（Ａ）およびＺＥＣ（Ｂ）タンパク質のコード領域のクローニング。ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ－ＰＡＧＥ）による分離、ならびにＺＥＣおよびＺＣ組換え抗原のウエスタンブロット特性評価：（Ａ）ＺＥＣタンパク質の１２．５％ＳＤＳ－ＰＡＧＥ；（Ｂ）ＺＥＣタンパク質のウエスタンブロット；（Ｃ）ＺＣタンパク質の１２．５％ＳＤＳ－ＰＡＧＥ、ならびに（Ｄ）ＺＣタンパク質のウエスタンブロット。ジカ免疫対象由来のポリクローナル抗体を用いた、ＺＣおよびＺＥＣ組換えタンパク質のＥＬＩＳＡによる抗原特性評価。この図は、ヒト血清ＳＨ１およびＳＨ２（Ａ）、ＳＨ６およびＳＨ７（Ｂ）、ＳＨ８およびＳＨ９（Ｃ）の段階希釈液との、２つの組換えタンパク質の反応性を示す。組換えタンパク質またはジカウイルスによるインビトロ刺激後のジカ免疫のある人々由来のＰＢＭＣを用いたインターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）ＥＬＩＳｐｏｔ。１０μｇのＺＣまたはＺＥＣ組換えタンパク質をインビトロ刺激に用い、そして感染多重度（ＭＯＩ）１または５を、ウイルスによるインビトロ刺激に用いた。結果を、２つの独立した実験からの、ＰＢＭＣ１００万個あたりのスポット形成単位（ＳＦＵ）の平均±標準偏差として示す。破線は、アッセイの陽性限界（５０ＳＦＵ／１００万細胞）を示す。ＺＣまたはＺＥＣタンパク質を含む組成物で免疫化したＢＡＬＢ／ｃマウスにおける体液性免疫応答を示す図である。（Ａ）ＥＬＩＳＡによって判定した抗体抗ジカウイルス。（Ｂ）インビトロウイルス中和試験によって測定した中和抗体。データを、平均±標準偏差として示す（ｎ＝１０）。異なる文字は、群間の統計学的有意差を示す（ｐ＜０．０１）。破線の水平線は、アッセイの陽性限界を示す。ＩＦＮγ ＥＬＩＳｐｏｔによって判定した、ＺＣまたはＺＥＣタンパク質で免疫化したＢＡＬＢ／ｃマウスにおける細胞媒介性免疫応答を示す図である。データは、脾臓細胞１００万個あたりのＳＦＵの平均±平均の標準誤差として示す（ｎ＝１０）。異なる文字は、群間の統計学的有意差を示す（ｐ＜０．００１）。破線の水平線は、アッセイの陽性限界を示す。ＺＣまたはＺＥＣタンパク質製剤で免疫化したＢＡＬＢ／ｃマウスにおける体液性免疫応答を示す図である。（Ａ）ＥＬＩＳＡによって測定したジカウイルス抗体。（Ｂ）インビトロウイルス中和試験によって判定した中和抗体。データを、平均±標準偏差として示す（ｎ＝１０）。異なる文字は、群間の統計学的有意差を示す（ｐ＜０．０１）。破線の水平線は、アッセイの陽性限界を示す。ＩＦＮγ ＥＬＩＳｐｏｔによって判定した、ＺＣまたはＺＥＣタンパク質で免疫化したＢＡＬＢ／ｃマウスにおける細胞媒介性免疫応答を示す図である。データは、脾臓細胞１００万個あたりのＳＦＵの平均±標準誤差として示す（ｎ＝１０）。異なる文字は、群間の統計学的有意差を示す（ｐ＜０．０１）。破線の水平線は、アッセイの陽性限界を示す。組換えタンパク質ＺＣまたはＺＥＣで免疫化して、ジカウイルスの様々な神経適合株でチャレンジしたＢＡＬＢ／ｃマウスの脳におけるウイルス血症。（Ａ）キューバ人患者から単離した株（ＺＩＫ１６株）によるウイルスチャレンジ後の保護アッセイ；（Ｂ）参照株ＭＲ７６６によるウイルスチャレンジ；（Ｃ）参照株ＢｒａｚｉｌＺＫＶ２０１５によるウイルスチャレンジ後の保護アッセイ。データは、平均±平均の標準誤差として示す（ｎ＝１０）。破線は、アッセイの検出限界を表す。異なる文字は、群間の統計学的有意差を示す（ｐ＜０．０５）。組成物ＺＥＣ＋ＤＮＡｓｓまたはＺＣ＋ＤＮＡｓｓで免疫化した非ヒト霊長類における体液性免疫応答の動態。（Ａ）ＥＬＩＳＡによって測定した抗組換えタンパク質抗体（ＺＣまたはＺＥＣ）。（Ｂ）ＥＬＩＳＡによって測定したジカウイルスに対する抗体。矢印は、各用量の投与時間を示す。破線の水平線は、アッセイの陽性限界を示す。組成物ＺＥＣ＋ＤＮＡｓｓまたはＺＣ＋ＤＮＡｓｓで免疫化した非ヒト霊長類における、ＩＦＮγ ＥＬＩＳｐｏｔによって判定した細胞媒介性免疫応答の動態。データは、ＰＢＭＣ１００万個あたりのＳＦＵの平均±平均の標準誤差として示す（ｎ＝４）。破線の水平線は、アッセイの陽性限界を示す。組成物ＺＣ＋ＤＮＡｓｓまたはＺＥＣ＋ＤＮＡｓｓで免疫化して、感染性ジカウイルス（ＺＩＫ１６株）でチャレンジした非ヒト霊長類におけるウイルス血症を示す図である。データを、平均±標準偏差として示す（ｎ＝４）。

例１．組換えタンパク質ＺＣおよびＺＥＣのクローニングおよび発現。
ベロ細胞を、症状があり、かつＺＩＫＶ感染が確認されたボランティアの尿試料および血清試料により感染させて、疾患の症状の発症後３日目から７日目に収集した。６～７日のインキュベーション後、ベロ細胞による連続継代を行って、細胞変性効果（合胞体形成）が観察されたときに培養上清を収集した。７～８回の連続継代後、調製物をベロ細胞で滴定して、７×１０^６ＰＦＵ／ｍＬのウイルス力価を得た。感染者の試料からのジカウイルスについての単離実験において、同様の結果が記載されている（Ｍｕｓｓｏｅｔａｌ．，２０１５，ＪＣｌｉｎＶｉｒｏｌ，６８：５３－５５；Ｂｏｎａｌｄｏｅｔａｌ．，２０１６，ＰＬｏＳＮｅｇｌＴｒｏｐＤｉｓ，１０：ｅ０００４８１６）。

ＲＮＡを、感染したベロ細胞の培養上清から抽出して、ウイルスカプシドおよびエンベロープタンパク質をコードするＤＮＡ鎖の増幅のための逆転写反応における鋳型として用いた。プライマーとして、双方のウイルスタンパク質の近くの、側面に位置する保存領域に結合するオリゴヌクレオチドを用いた（表１に示す）。

ＤＮＡ配列を、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって増幅してから、双方のＰＣＲ断片を配列決定して、他のジカウイルス単離株について以前に記載されたものと比較して、得られた領域の同一性を実証した。キューバ人患者の試料から単離したジカウイルスを、以降、ＺＩＫ１６と呼んだ。その後、これらの領域を、以降のクローニング工程のための特定の制限部位を有する、ＺＣおよびＥＤＩＩＩ領域に対応する領域の増幅用の鋳型として用いて、第２のＰＣＲを行った（表２）。

双方の断片を、市販のベクターｐＧＥＭｔ中にクローニングして、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉ）細胞のコンピテントＪＭ－１０９株に形質転換した。形質転換細胞を、５０μｇ／ｍＬの抗生物質アンピシリンを補充したルリア・ベルターニ（ＬＢ）培地中で３７℃にて１０時間増殖させた。これらの大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）の形質転換細胞を用いて、ＤＮＡプラスミドを得て精製した。中間構築物ｐＧＥＭｔ－ＺＣおよびｐＧＥＭｔ－ＥＤＩＩＩを、それぞれ制限酵素ＢａｍＨＩ／ＨｉｎｄＩＩＩまたはＢａｍＨＩで消化して、ジカウイルスのウイルスカプシドおよびＥＤＩＩＩ領域をコードするＤＮＡ断片を得た。

次に、ウイルスカプシドに対応するＤＮＡバンドを、ｐＥＴ－２８ＡＣ発現ベクター中に挿入した。このベクターは、ファージＴ７プロモータ、およびＮ末端領域の６個のヒスチジン残基の尾部を含有する。結果として、ｐＥＴ－２８ＡＣ－ＺＣ構築物を有する４つの形質転換体（図１Ａ）が得られた。それらを配列決定して、ＺＣタンパク質のコード配列の同一性（配列番号９）を確認した。次いで、構築物ｐＥＴ－２８ＡＣ－ＺＣの１つ（クローン２）を選択した。このクローンを、予めＢａｍＨＩ酵素で消化したＥＤＩＩＩＤＮＡバンドの挿入のためにＢａｍＨＩ／ＣＩＰ酵素で消化して、結果として生じる発現ベクターｐＥＴ－２８ＡＣ－ＺＥＣを得た。このベクターは、ウイルスカプシドタンパク質のＮ末端に融合したＥＤＩＩＩドメインの領域を含む。結果として、ｐＥＴ－２８ＡＣ－ＺＥＣ構築物の２つの形質転換体を選択した（図１Ｂ）。ＺＥＣタンパク質のコード配列の同一性を、配列決定によって確認した。配列表において配列番号１０と識別している。

ＺＣおよびＺＥＣキメラ組換えタンパク質の発現を、プラスミドｐＥＴ－２８ＡＣ－ＺＣ（クローン２）およびｐＥＴ－２８ＡＣ－ＺＥＣ（クローン２３）でそれぞれ形質転換した大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）のＢＬ－２１（ＤＥ３）株において実行した。１ｍＭのＩＰＴＧを加えて、ＰｈａｇｅＴ７プロモータの誘導後に、組換えタンパク質の発現を実行した。細胞バイオマスをＳＤＳ－ＰＡＧＥによって分析した。ＺＣ（配列番号９）およびＺＥＣ（配列番号１０）の過剰発現組換えタンパク質は、それぞれ１２．８ｋＤａおよび２８．５ｋＤａの分子量を有する。

例２．組換えタンパク質ＺＣおよびＺＥＣの精製および抗原特性評価。
建築物ｐＥＴ－２８ＡＣ－ＺＣ（クローン２）およびｐＥＴ－２８ＡＣ－ＺＥＣ（クローン２３）を用いた大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）のＢＬ－２１（ＤＥ３）株の形質転換から得た細胞バイオマスを、リン酸緩衝生理食塩水中に再懸濁させて、超音波の３パス後に溶解した。破壊後、双方の組換えタンパク質は、遠心分離によって得られた不溶性画分中にほとんど分配されていた。各バイオマスの不溶性画分から、組換えタンパク質を、カオトロピック剤として７Ｍ尿素を有するトリスバッファ中に可溶化して、ＳＰＳｅｐｈａｒｏｓｅＦＦマトリックスを用いるイオン交換クロマトグラフィプロセスによって精製した。目的の各タンパク質を、バッファのイオン強度を増大させることによって得た。次いで、尿素を除去して、タンパク質を、１０ｍＭトリスバッファｐＨ８．０中での６回の排除クロマトグラフィプロセスによって再度折り畳んだ。双方のクロマトグラフィプロセスの後に、ＺＣおよびＺＥＣタンパク質が、それぞれ８５％および７０％の純度で得られた（図２Ａおよび図２Ｃ）。

双方のタンパク質の抗原性の特性評価を、２つの異なる抗体源を用いるウエスタンブロットによって実行した（図２Ｂおよび図２Ｄ）。用いた抗体は、ウイルスに免疫がある人々由来のポリクローナル抗体、および６つのヒスチジン残基の尾部を認識するモノクローナル抗体（ＭＡｂ抗Ｈｉｓ）であった。ＺＥＣタンパク質は、ジカウイルス感染に免疫がある人々由来のヒトポリクローナル抗体によって認識されることが確認された。同時に、このタンパク質は、ＺＥＣタンパク質のＮ末端領域に存在するエピトープを認識する抗ＨｉｓＭＡｂにより免疫識別された。同様に、より小さいタンパク質バンドもまた、この抗体で免疫識別された。これは、ＺＥＣタンパク質の精製中に、Ｃ末端領域において分解が起こることを示している。

組換えタンパク質ＺＣのウエスタンブロット特性評価では、ウイルス感染に免疫がある人々由来のヒトポリクローナル抗体による認識は観察されなかった。この理由は、ジカウイルスのカプシドタンパク質は、天然のウイルス粒子において曝露されないためである。しかしながら、組換え抗原のＮ末端領域に存在するエピトープを認識する抗ＨｉｓＭＡｂによる認識が得られた。

組換えタンパク質の一次構造の検証、およびＺＥＣキメラポリペプチド内のＥＤＩＩＩ領域中へのジスルフィド結合の正確な形成のために、組換えタンパク質の分析を、質量分析によって実行した。各精製タンパク質に対応するバンドを、ＳＤＳ存在下でポリアクリルアミドゲル電気泳動によって分離させて、ゲルから抽出してから、酵素トリプシンで消化した。表３は、双方の試料の消化後に得られたスペクトルの質量割当てをまとめたものである。一部のシグナルが、双方の調製物において検出された。この理由は、分子のＣ末端を共有するためである。この分析後、ＺＥＣ（配列番号１０）およびＺＣ（配列番号９）タンパク質配列のそれぞれ６２．７％および４１．７％を検証することができた。加えて、ＺＥＣキメラタンパク質において見出されるＥＤＩＩＩ領域内のシステイン残基（Ｃｙｓ２７およびＣｙｓ５８）間のジスルフィド結合の正確な形成が実証された。このジスルフィド結合は、ＥＤＩＩＩ領域の適切な高次構造に不可欠であり、タンパク質Ｅの天然の構造において提示される仕方と類似する（Ｓｉｒｏｈｉｅｔａｌ．，２０１６，Ｓｃｉｅｎｃｅ，３５２：４６７－４７０；Ｓｉｒｏｈｉ＆Ｋｕｈｎ，２０１７，ＪＩｎｆｅｃｔＤｉｓ，２１６：Ｓ９３５－Ｓ９４４）。驚くべきことに、システイン残基Ｃｙｓ２７とＣｙｓ５８間のジスルフィド結合は、この領域がウイルスカプシドタンパク質に融合されて新規キメラタンパク質ＺＥＣを形成していた場合ですら、保存されていた。

加えて、双方の組換えタンパク質の抗原性の特性評価を、ヒト血清を用いるＥＬＩＳＡによって実行した。アッセイでは、組換えタンパク質ＺＣまたはＺＥＣをプレート上に固定してから、ヒトポリクローナル抗体による認識を評価した。このアッセイのために、ジカウイルス感染に免疫がある６人のボランティア由来のヒト血清（ＳＨ）を用いた。これは、疾患の急性期（ＳＨ１、ＳＨ６、およびＳＨ８）または回復期（ＳＨ２、ＳＨ７、およびＳＨ９）の間に収集した。図３において分かるように、ＺＣタンパク質について検出された低い反応性とは対照的に、ウイルスに免疫がある人々由来のポリクローナル抗体によるＺＥＣタンパク質の認識はより大きかった。この挙動は、試験した全ての血清試料について同様であり、これは、ＺＥＣキメラタンパク質内に含まれるＥＤＩＩＩドメイン領域に起因する。この領域は、ウイルス粒子の表面上に曝露されている（Ｓｉｒｏｈｉｅｔａｌ．，２０１６，Ｓｃｉｅｎｃｅ，３５２：４６７－４７０；Ｓｉｒｏｈｉ＆Ｋｕｈｎ，２０１７，ＪＩｎｆｅｃｔＤｉｓ，２１６：Ｓ９３５－Ｓ９４４）。したがって、自然感染中に生成された抗体は、ＺＥＣタンパク質を認識する。対照的に、ウイルスカプシドタンパク質は、成熟ビリオン内にエンベロープされ、この領域に対する抗体は、ジカウイルス感染中に生成されない（Ｍｕｋｈｏｐａｄｈｙａｙｅｔａｌ．，２００５，ＮａｔＲｅｖＭｉｃｒｏｂｉｏｌ，３：１３－２２）。これは、カプシド領域のみを含有するキメラタンパク質ＺＣが、ジカウイルスに感染した人々の血清によって認識されなかった理由を説明する。

また、組換えタンパク質ＺＣおよびＺＥＣを、ＩＦＮγ ＥＬＩＳｐｏｔアッセイを用いて、ジカウイルスに特異的なメモリＴ細胞を刺激する能力について評価した。このサイトカインは、種々のフラビウイルス（Ｆｌａｖｉｖｉｒｕｓ）に対する抗ウイルス活性を介した細胞性免疫応答のメディエータとして記載されている（Ｓｈｒｅｓｔａｅｔａｌ．，２００４，ＪＶｉｒｏｌ，７８：２７０１－２７１０）。この実験のために、１０μｇ／ｍＬの組換えタンパク質ＺＣもしくはＺＥＣ、またはジカウイルスの調製物（ＭＯＩ１および５）でインビトロ刺激した、ジカウイルスに免疫があるボランティア由来のＰＢＭＣを用いた。次に、刺激後に誘導された、抗ウイルスサイトカインＩＦＮγを分泌可能なメモリＴ細胞の数を定量した。

その評価の結果を、図４に、２つの独立した実験由来の１００万細胞あたりのＳＦＵの平均±標準偏差として示す。このアッセイでは、組換えタンパク質ＺＣおよびＺＥＣによるインビトロ刺激後に、４名のボランティアのうち３名由来の試料において、ジカウイルス特異的ＩＦＮγ分泌細胞が検出された。同様に、ウイルス抗原による刺激の後に、分析した４名のボランティアのうち３名由来の試料において、ジカウイルスに特異的なＩＦＮγ分泌細胞が検出された。まとめると、これらの結果は、ＺＣおよびＺＥＣ組換えキメラタンパク質が、ジカウイルスに特異的なメモリＴ細胞に対するエピトープを含むことを実証している。逆に、これらのタンパク質抗原は、ウイルス感染によって以前に生成された細胞性免疫応答を刺激することができる。

例３．ＢＡＬＢ／ｃマウスにおける組換えタンパク質ＺＣおよびＺＥＣの免疫原性および保護能力の評価。
組換えタンパク質ＺＣおよびＺＥＣの免疫原性の評価を、雌ＢＡＬＢ／ｃマウスにおいて実行し、それぞれ１０頭の動物の４つの群を用いた。研究に含めた群を、表４に示す。

動物の免疫化のために、組換えタンパク質ＺＣまたはＺＥＣを、分子量を考慮して用い、組換えタンパク質ＺＣを接種した群には１０μｇを投与し、タンパク質ＺＥＣを接種した群には２０μｇの組換えタンパク質を投与した。双方のタンパク質を、アジュバントとしての水酸化アルミニウム（ミョウバン）中に、１．４４ｍｇ／ｍＬの最終濃度にて製剤化した。全ての群を、０日目、１５日目、そして４５日目の３回用量の各免疫原で、腹腔内経路によって免疫化した。

最後の投与の１５日後、各群の動物から採血して、血清を体液性免疫応答の評価に用いた。図５は、ＥＬＩＳＡによって測定したジカウイルスに対する抗体、およびインビトロウイルス中和試験によって評価した中和抗体の体液性免疫応答を示す。

ＥＬＩＳＡのために、プレートをジカウイルス（ＺＩＫ１６株）でコーティングしてから、血清試料をいくつかの希釈液でインキュベートし、次いで、市販の抗マウスＩｇＧコンジュゲートの適切な希釈液を加えた。図５Ａにおいて見られるように、ＺＥＣ組換えタンパク質製剤で免疫化した群、およびウイルス対照群では、ジカウイルスに対する高力価の抗体が検出された。それらの間に統計学的に有意な差（ｐ＞０．０５）はなかった。統計分析は、テューキーの多重比較検定を用いて実行した。プラセボおよび組換えタンパク質ＺＣを投与した群では、ウイルスに対する抗体は検出されず、検出されたレベルは、アッセイの陽性限界未満であった。

抗体の機能性を、最後の投与の３０日後に、インビトロでのプラーク減少ウイルス中和試験（ＰＲＮＴ）によって測定した。ＰＲＮＴのために、動物血清の希釈液を、ジカウイルス調製物（ＺＩＫ１６株）と混合した。インキュベーション期間後、混合物を用いて、２４ウェルプレートのベロ細胞に感染させた。ゆえに、残りの中和されていないウイルスは、細胞に感染して、目に見えるプラークの形成を引き起こすことができた。図５Ｂは、免疫化動物の血清中で推定したジカウイルスに対する中和抗体力価の平均±標準偏差を示す。中和力価は、プラーク数の５０％の減少が達成される最大希釈と定義した。検出された抗体応答抗ジカウイルスと同様に、タンパク質ＺＥＣ製剤で免疫化した群およびウイルス対照群では、中和抗体が検出され、幾何平均力価（ＧＭＴ）は１：２００よりも大きく、それらの間に統計学的差異（ｐ＞０．０５）はなかった。

加えて、細胞性免疫応答の誘導を、異なる製剤で免疫化した動物における最後の免疫の３０日後に研究で評価した。このアッセイのために、各群の１０頭の動物の脾臓細胞を抽出して、脾臓細胞をジカウイルスでインビトロ刺激した後に、ＩＦＮγ分泌細胞の頻度を求めた。図６は、各群における抗ウイルスサイトカインを分泌する細胞の数を示す。ＺＣおよびＺＥＣ組換えタンパク質製剤で免疫化した群では、脾臓細胞をジカウイルス（ＺＩＫ１６株）でインビトロ刺激した後に、ＩＦＮγ分泌細胞が検出され、これらの群において、応答動物１００％が得られた。ＺＣまたはＺＥＣ組換えタンパク質を投与した動物において検出されたＩＦＮγ分泌細胞の値と、プラセボ群の動物において検出されたＩＦＮγ分泌細胞の数との間に、統計学的に有意な差があった（ｐ＜０．０５）。ウイルス対照群の動物では、抗ウイルスサイトカインを分泌する細胞の数は、組換えタンパク質で免疫化した動物において検出される、ＩＦＮγを分泌する細胞のレベルと比較して、高かった（ｐ＜０．０５）。統計分析は、ＡＮＯＶＡ検定およびテューキーの多重比較を用いて実行した。

例４．組換えタンパク質ＺＣおよびＺＥＣからのヌクレオカプシド様粒子の凝集または形成。
フラビウイルスカプシドタンパク質は、ウイルス粒子アセンブリプロセス中に、ゲノムを取り囲んで保護するヌクレオカプシドを形成する（Ｄｕｆｆｙｅｔａｌ．，２００９，ＮＥｎｇｌＪＭｅｄ，３６０：２５３６－２５４３）。これらの構造的特徴を考慮して、組換えタンパク質ＺＣおよびＺＥＣを用いて、各組換えタンパク質を、免疫調節特性を有する一本鎖ＤＮＡ（本明細書ではｓｓＤＮＡと呼ばれ、配列番号１１として識別される）とインキュベートすることによって、インビトロ凝集プロセスまたはヌクレオカプシド様粒子（ＮＳＰ）の形成を実行した。

各分子の分子量に従って、タンパク質の、ｓｓＤＮＡとの異なる組合せを、凝集反応に用いた。その後、反応混合物を２５℃にて３０分間、続いて４℃にて４時間インキュベートしてから、反応混合物を１０，０００×ｇにて遠心分離して、上清をＳＤＳ－ＰＡＧＥによって分析した。結果として、可溶性ＺＣまたはＺＥＣ組換えタンパク質は、凝集反応に用いたｓｓＤＮＡ量に応じて、評価したいくつかの組合せで、不溶性高分子量凝集体を形成することができることが観察された。その後の研究のために、目的の組換えタンパク質の約５０％の凝集になりやすい（ｆａｖｏｒ）タンパク質：ｓｓＤＮＡの特定の比率を選択した。５０％の凝集を達成するのに必要とされるｓｓＤＮＡの量は、その質量およびアミノ酸組成に従って、組換えタンパク質毎に異なった。

例５．凝集したＺＣおよびＺＥＣ組換えタンパク質の組成物の免疫原性の評価。
組換え凝集タンパク質ＺＣおよびＺＥＣの免疫原性の評価のために、それぞれ３０頭の動物を含む６つ群の雌ＢＡＬＢ／ｃマウスを用いた。研究に含めた群を、表５に示す。

動物の免疫化のために、ｓｓＤＮＡとのインキュベーション後の可溶性凝集形態の組換えキメラタンパク質ＺＣまたはＺＥＣを用いた。同様に、各分子の分子量を考慮して、ＺＣ組換えタンパク質を接種した群には１０μｇのタンパク質を投与し、ＺＥＣタンパク質を接種した群には２０μｇの組換えタンパク質を投与した。全ての製剤を、アジュバントとしてミョウバンを用いて、１．４４ｍｇ／ｍＬの最終濃度にて調製した。群に、０日目、１５日目、そして４５日目の製剤の３回用量を、腹腔内経路によって投与した。

最後の投与から１５日後、各群由来の１０頭の動物から採血して、血清を用いて、ジカウイルスに対する抗体をＥＬＩＳＡによって判定した。図７に示すように、キメラタンパク質ＺＥＣを含有する製剤を投与した群では、ウイルスに対する高力価の抗体が検出された。これらの力価は、ウイルス対照群の動物において検出されたものと同様であった（ｐ＞０．０５）。この結果は、ｓｓＤＮＡの存在に起因するＺＥＣキメラタンパク質の凝集が、ウイルスに対する抗体の生成に影響を及ぼさなかったことを示している。逆に、ＺＣおよびＺＣ＋ｓｓＤＮＡ製剤で免疫化した動物では、ジカウイルスに対する抗体力価は検出されなかった（図７Ａ）。統計分析は、クラスカル・ウォリス検定、およびダン検定を用いる事後多重比較を用いて実行した。

免疫化によって誘発された抗体の機能性を、ＰＲＮＴによる最後の投与の３０日後に分析した。図７Ｂは、ジカウイルスに対する中和抗体力価の平均±標準偏差を示す。中和力価は、プラーク数の５０％の減少が達成される最大希釈と定義する。図から分かるように、ＺＥＣ群およびＺＥＣ＋ｓｓＤＮＡ群の動物では、中和抗体が検出され、ＴＰＧは１：２００よりも大きかった。これは、ジカウイルス調製物を投与した群において検出された力価と統計学的差異（ｐ＞０．０５）がなかった。

加えて、この免疫スキームでは、免疫化動物において細胞媒介性免疫応答を誘導するＺＣおよびＺＥＣタンパク質製剤の能力を評価した。そのために、最後の投与の３０日後に、各群の１０頭の動物から脾臓細胞を抽出して、脾臓細胞をジカウイルスでインビトロで刺激した後に、ＩＦＮγ分泌細胞の頻度を求めた。図８は、各群における抗ウイルスサイトカインの分泌細胞の数を示す。図から分かるように、ＺＣおよびＺＥＣ組換えタンパク質製剤で免疫化した群では、動物の１００％がＩＦＮγ分泌細胞を有し、プラセボ群と比較して、有意差があった（ｐ＜０．０１）。統計分析は、ＡＮＯＶＡ検定およびテューキーの多重比較を用いて実行した。可溶性タンパク質製剤、およびｓｓＤＮＡを含む凝集製剤を投与した群の間で、分泌細胞数の差が観察された（ｐ＜０．０１）。逆に、凝集タンパク質を有する製剤で免疫化した群の動物におけるＩＦＮγ分泌細胞のレベルは、ジカウイルスを接種した群において検出されたものと同様であった（ｐ＞０．０５）。

例６．ＢＡＬＢ／ｃマウスにおいて、凝集組換えタンパク質ＺＣおよびＺＥＣ製剤によって誘導された保護能力の評価。
凝集組換えタンパク質ＺＣおよびＺＥＣで免疫化したＢＡＬＢ／ｃマウスにおけるウイルスチャレンジに対する保護能力を評価した。保護を、神経適合株（ｎｅｕｒｏａｄａｐｔｅｄｓｔｒａｉｎ）によるウイルスチャレンジ後の免疫化動物における脳ウイルス量を制御または減少させる能力として測定した。

チャレンジ実験のために、最後の免疫化の１ヶ月後、群あたり１０頭の動物に、ジカウイルスの３つの異なる神経適応株（ＺＩＫ１６株、ＭＲ７６６株、およびＢｒａｚｉｌＺＫＶ２０１５株）の半数致死量（ＬＤ５０）を頭蓋内接種した。ウイルスチャレンジの７日後、動物の脳を無菌条件下で抽出した。脳を細かく砕いて、これらの試料由来の上清を、ベロ細胞への感染後のウイルス量定量に用いた。

異なるジカウイルス株を用いた３つの実験について、プラセボ製剤で免疫化した動物では、脳試料において１０^４ＰＦＵ／ｍｌを超える高いウイルス量が観察された。これらの結果を図９に示す。対照的に、組換えタンパク質ＺＣ、ＺＣ＋ｓｓＤＮＡ、およびＺＥＣを含む異なる調製物を接種した群の動物では、プラセボ群と比較して、ウイルス量の減少が観察され、用いたウイルス株に応じて、一部の群について統計学的に有意であった（図９Ａ～図９Ｃ）。しかしながら、組換えタンパク質ＺＥＣ＋ｓｓＤＮＡまたはジカウイルスの製剤を投与した動物は、プラセボ群の動物と比較して、３回のチャレンジ試験において一貫して、ウイルス量の有意な減少を達成した（ｐ＜０．００１）（図９Ａ～図９Ｃ）。統計分析は、ＡＮＯＶＡ検定およびテューキーの多重比較を用いて実行した。

例７．非ヒト霊長類におけるキメラタンパク質ＺＣおよびＺＥＣの免疫原性および保護能力の評価。
ＢＡＬＢ／ｃマウスにおける前臨床研究の結果に基づいて、ｓｓＤＮＡと組み合わせてミョウバンでアジュバント化した組換えタンパク質ＺＣおよびＺＥＣを、ジカウイルス陰性非ヒト霊長類において評価した。加えて、組換えタンパク質およびアジュバントとしてのミョウバンの凝集プロセスに用いたものと同じ量のｓｓＤＮＡを投与したプラセボ群を含めた。４頭の動物を、スキームの各群に含めた。非ヒト霊長類を、それぞれ５０μｇまたは１００μｇの用量のＺＣ＋ｓｓＤＮＡまたはＺＥＣ＋ｓｓＤＮＡ凝集体製剤で３回免疫化した。製剤を２ヶ月毎に間隔を空けて（スケジュールの０、６０、そして１２０日目に）皮下投与した。各投与時（０、６０、および１２０日目）、そして各投与の３０日後（スケジュールの３０、９０および１５０日目）に動物から血液試料を採取して、誘導された体液性免疫応答を評価した。

図１０Ａは、ＥＬＩＳＡによって測定した、抗体応答抗ＺＣまたはＺＥＣ組換えタンパク質の動態を示す。図から分かるように、ＺＣ＋ｓｓＤＮＡおよびＺＥＣ＋ｓｓＤＮＡ凝集体製剤で免疫化した非ヒト霊長類における抗組換えタンパク質抗体力価は、最初の投与の３０日後に検出され始めて、その後の接種により増大する。プラセボ群の動物では、抗組換えタンパク質抗体は、評価したいずれの時点においても検出されなかった。

ジカウイルスに対する抗体応答をＥＬＩＳＡによって判定した。図１０Ｂは、検出された力価の動態を示す。ＺＥＣタンパク質＋ｓｓＤＮＡの製剤で免疫化した非ヒト霊長類における抗ウイルス抗体応答は、２回目の投与の３０日後に検出され、そして３回目の投与により増大した。対照的に、ＺＣタンパク質＋ｓｓＤＮＡの製剤で免疫化した非ヒト霊長類では、抗ウイルス抗体は、マウスにおいて得られた以前の結果と同様に、評価したいずれの時点においても検出されなかった。この結果は、主に、ジカウイルスのカプシドタンパク質が天然のウイルス粒子内にエンベロープされているためである。同様に、プラセボ群では、抗ウイルス抗体力価は、評価したいずれの時点においても検出されなかった。

一方、誘導された抗体の機能性を、ベロ細胞およびジカウイルス（ＺＩＫ１６）におけるインビトロウイルス中和試験によって判定した。これらの測定結果を表６に示す。ジカウイルス抗体応答に従って、中和抗体力価は、２回目の投与の３０日後に、凝集製剤ＺＥＣ＋ｓｓＤＮＡで免疫化した群においてのみ検出された。これについて、３回目の投与後に追加免疫を行った。中和抗体は、ＺＥＣ＋ｓｓＤＮＡ製剤を投与した全ての動物において検出され（１００％の血清転換率）、１８０日目（ウイルスチャレンジの時点）まで血清陽性のままであった。予想通り、ＺＣ＋ｓｓＤＮＡ製剤で免疫化した非ヒト霊長類では、ウイルスチャレンジ前に評価したいずれの時点においても、中和抗体は検出されなかった。これは、この群において観察されたウイルスに対する抗体応答の不在と一致する。

研究において測定した別のパラメータは、細胞性免疫応答であった。これについて、研究の３つの時点：３回目の投与の日（１２０日目）、３回目の投与の１ヶ月後（１５０日目）、およびウイルスチャレンジの日（１８０日目）に免疫化した非ヒト霊長類から、ＰＢＭＣを得た。次いで、ＰＢＭＣをインビトロで培養して、ウイルス抗原（ＺＩＫ１６株）で刺激してから、ＩＦＮγ分泌細胞数をＥＬＩＳｐｏｔアッセイによって求めた。図１１は、試験した各時点にて得られた値を示す。結果として、抗ウイルスサイトカイン分泌細胞が検出されなかった、プラセボ製剤を投与した動物とは異なり、ＺＣおよびＺＥＣ組換えタンパク質製剤で免疫した群の全ての非ヒト霊長類において、ＩＦＮγ分泌細胞が検出された。

免疫化動物におけるジカウイルスに対する保護能力を評価するために、最後の免疫化の２ヶ月後（１８０日目）に、全ての動物を感染性ウイルス（ＺＩＫ１６株、１０^３ＵＰＦ／ｍＬ）でチャレンジした。ジカのウイルス血症を、動物の血清を用いて、ベロ細胞における直接定量化によって判定した。図１２は、得られた結果を示しており、平均±ＳＥＭとして表した。図から分かるように、プラセボ製剤を投与した動物は、ウイルス血症を発症し、平均は９日であり、そしてウイルス量の平均は４００ＰＦＵ／ｍｌであった。複合製剤ＺＣ＋ｓｓＤＮＡで免疫化した群の場合、霊長類の１頭が完全に保護され、残りの３頭の動物がウイルス血症を発症し、平均は６日であり、ウイルス量は、プラセボ群と比較して低かった（統計学的有意性あり）。対照的に、ＺＥＣ＋ｓｓＤＮＡ製剤で免疫化した動物は、ウイルス血症を発症せず、完全に保護された（ウイルス量＜１０ＰＦＵ）。一般に、キメラ抗原ＺＣおよびＺＥＣは、ｓｓＤＮＡおよびアジュバントとしてのミョウバンと組み合わせた後に、凝集形態で、非ヒト霊長類においてジカウイルス複製を制御することができる免疫応答を誘導した。

Claims

ジカウイルスのカプシドタンパク質の２～１０４のアミノ酸に対応するポリペプチド、または前記ジカウイルスの前記カプシドタンパク質の当該領域とほぼ９０％の同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドをポリペプチド鎖内に含む組換えキメラ抗原。
加えて、エンベロープタンパク質のドメインＩＩＩに対応するポリペプチド、またはジカウイルスのエンベロープタンパク質のこのドメインとほぼ９０％の同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む、請求項１に記載のキメラ抗原。
加えて、ポリペプチド鎖のＮ末端に６つのヒスチジン残基のセグメントを含む、請求項１に記載のキメラ抗原。
配列番号９または配列番号１０として同定されるアミノ酸配列を有する、請求項１に記載のキメラ抗原。
請求項１～４のいずれか一項に記載の組換えキメラ抗原、および薬学的に承認されたワクチンアジュバントを含む、ワクチン組成物。
前記アジュバントがアルミニウム塩である、請求項５に記載のワクチン組成物。
前記抗原が、用量あたり１０～１５０マイクログラム提供される、請求項５に記載のワクチン組成物。
加えて、配列番号１１として同定されるヌクレオチド配列を有する核酸を含む、請求項５に記載のワクチン組成物。
ジカウイルスに対する免疫応答を誘導するための薬剤を製造するための、請求項１～４のいずれか一項に記載の組換えキメラ抗原の使用。
ヒトにおいてジカウイルスに対する免疫応答を誘導する方法であって、薬学的に有効な量の請求項１～４のいずれか一項に記載の組換えキメラ抗原、および薬学的に承認されたアジュバントが投与される、方法。
前記アジュバントがアルミニウム塩である、請求項１０に記載の方法。
前記組換えキメラ抗原の前記薬学的に有効な量が、用量あたり１０～１５０マイクログラムの範囲内である、請求項１０に記載の方法。
加えて、配列番号１１として同定されるヌクレオチド配列を有する核酸が、前記組換えキメラ抗原と組み合わせて投与される、請求項１０に記載の方法。