JP2024524519A - 慢性腎臓病の治療で使用するための間葉系幹細胞 - Google Patents

慢性腎臓病の治療で使用するための間葉系幹細胞

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Abstract

本発明は、ネコおよびイヌの慢性腎臓病の治療で使用するための間葉系幹細胞（ＭＳＣ）または治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物に関する。本発明はまた、末梢血由来のＭＳＣを含む医薬組成物に関する。

Description

本発明は、イヌおよびネコの慢性腎臓病の治療で使用するための間葉系幹細胞に関する。
慢性腎臓病（ＣＫＤ）とは、時間の経過とともに腎臓の機能が持続的に低下する病気である。それは、高齢のネコおよびイヌに最もよく見られる疾患のひとつであるが、どの年齢の動物にも見られる可能性がある。健康な腎臓は、多くの重要な機能を担っており、特に注目すべきは、血液を濾過し、老廃物を排泄するために尿を作り、体内の水分バランスを保ち、特定のホルモンを生成し、電解質を調整することである。ＣＫＤでは、これらすべての調節プロセスが阻害され得るため、動物にさまざまな健康上の問題を引き起こす可能性がある。
ＣＫＤの動物は、通常は腎臓によって除去または調節される血液中の老廃物および他の化合物が蓄積することがある。この蓄積により、体調が悪くなったり、無気力になったり、手入れが行き届かなくなったり、体重が減ったりすることがある。また、尿を適切に濃縮する能力が失われ、その結果、大量に排尿し、それを補うために水を多く飲むようになることもある。尿中の重要なタンパク質およびビタミンが失われることで、代謝異常および食欲不振を引き起こすこともある。また、血圧が上昇し（高血圧）、目、脳および心臓を含む多くの重要なシステムの機能に影響を及ぼす可能性がある。ＣＫＤのネコおよびイヌにおける無気力の別の原因は、血液中の酸の蓄積である。罹患した腎臓はこれらの化合物を適切に排泄できないため、血液が酸性化、つまりアシドーシス、体内の様々な臓器系の機能に重大な影響を及ぼす可能性がある状態に陥りやすい。ＣＫＤはまた、動物の赤血球を産生する能力を低下させ得、これは血液中の赤血球濃度が低下する貧血を引き起こす可能性がある。その結果、歯ぐきの色が薄いピンク色になる、またはひどい場合には白っぽくなったり、無気力になったりする場合がある。
現時点では、ＣＫＤの根治的な治療法はないが、いくつかの治療はＣＫＤに罹患している動物を改善し、延命させることができる。治療は一般的に、血流中の有毒な老廃物の蓄積を最小限に抑えること、適切な水分補給を維持すること、電解質濃度の乱れに対処すること、適切な栄養をサポートすること、血圧をコントロールすることおよび腎臓病の進行を遅らせることを目的としている。
食生活改善は、ＣＫＤ治療の重要で証明済みの一面である。しかし、多くのネコおよびイヌは治療食を受け入れることが困難であるため、飼い主は忍耐強く、計画を守ることに専念しなければならない。ＣＫＤのネコまたはイヌの貧血は、赤血球産生を刺激するエリスロポエチン（または関連化合物）による補充療法で治療することができる。場合によっては、ドナー動物から得た血液を用いて赤血球濃度を正常に戻すために使用され得る輸血が必要になることもある。
現在までのところ、疾患の進行を止める、または罹患した腎臓を修復する既知の治療は見つかっていない。間葉系幹細胞（ＭＳＣ）は、炎症反応を調節し、組織修復を促進する細胞間相互作用を仲介する能力があるため、ヒトと動物の両方でＣＫＤの治療として検討されている。いくつかのネコおよびイヌの研究で、治療における安全性と有効性が検討され、興味深い結果が得られている。
これらの研究の大半は、腎動脈を介した関節内注射によって投与される脂肪組織または骨髄（ＢＭ）由来の自己ＭＳＣを使用している。しかし、治療で使用するための自己ＭＳＣの生産には、各個体の患者からＭＳＣを侵襲的に採取し、その後、培養能力が比較的低いことが知られているネコまたはイヌのＭＳＣを時間をかけて培養する必要がある。さらに、関節内注射は侵襲的な手技であり、鎮静剤、経験および標的診断が必要である。そのため、静脈内投与（ＩＶ）が提案されている。しかし、げっ歯類モデルでは、肺毛細血管が注射後に最初に細胞を受け取るため、静脈内投与された幹細胞の大部分が肺に捕捉されることが示されている。この「ファーストパス効果」に加え、体内の様々な炎症部位にＭＳＣを引き寄せるＭＳＣのホーミング能力が加わることで、腎臓が受け取る幹細胞の総数が減少する可能性がある。ＩＶ投与されたＭＳＣで治療されたネコは、細胞治療の安全性は証明されたものの、腎機能の改善は見られなかった。そのため、研究はＩＶ投与から離れ、ＣＫＤのネコの間質血管細胞群（ＳＶＦ）中の間葉系幹細胞（ＭＳＣ）を腎臓に動脈内送達する方向へと再び方向転換されている（Thomson, Abigail L et al.）。
従って、当技術分野では、ネコおよびイヌ科の慢性腎臓病の病的状態の進行を遅らせ、および／または回復さえさせるための、ＭＳＣの改良された使用に対する必要性が残っている。本発明は、前述の欠点の少なくとも１つを解決することを目的とする。
本発明およびその実施形態は、上記の欠点の１つまたは複数に対する解決策を提供する役割を果たす。この目的のために、本発明は、請求項１に記載のネコおよびイヌの慢性腎臓病（ＣＫＤ）の治療で使用するための間葉系幹細胞（ＭＳＣ）または治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物に関する。
実施形態において、前記ＭＳＣは静脈内投与される。実施形態において、前記ＭＳＣは、天然のＭＳＣである。実施形態において、投与される前記ＭＳＣは、異種ＭＳＣである。本発明の使用のためのＭＳＣの好ましい実施形態は、請求項２～１８のいずれかに示される。請求項１７に記載の特に好ましい実施形態では、前記治療において、慢性腎臓病と診断された、または慢性腎臓病に罹患しているネコおよびイヌのクレアチニンレベルが、前記ＭＳＣまたは組成物で治療されていないネコまたはイヌと比較して低下する。
第２の態様において、本発明は、請求項１９に記載の天然の末梢血由来のＭＳＣを含む医薬組成物に関し、前記ＭＳＣは動物由来であり、滅菌液体中に存在する。
静脈内投与は非侵襲的な手技であり、鎮静剤を必要としない。このような侵襲的な手技および／または鎮静剤の使用は、特に、すでに慢性腎臓病を発症するリスクが高い高齢の患者にとっては、リスクを伴う可能性がある。したがって、静脈内（ＩＶ）注射によるＭＳＣの全身投与は、治療への応用において大きな利点をもたらす。
コンカナバリンＡ刺激ネコ末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を用いた混合リンパ球反応（ＭＬＲ）アッセイにおける、本発明の実施形態による３００．０００ｅＰＢ－ＭＳＣを１０匹の健康なネコに静脈注射する前（０日目、Ｔ０）とした後（６週目、Ｔ３）の平均ＰＢＭＣ増殖を示す図である。 ２ヘッドガンマカメラを用いて全身を主観的に評価した、本発明の実施形態による９９ｍＴｃ標識ｅＰＢ－ＭＳＣ（低グルコースＤＭＥＭ中）の静脈注射後の異なる時点におけるネコの放射能測定値を示す図である。
本発明は、ネコおよびイヌの慢性腎臓病（ＣＫＤ）の治療で使用するための天然のＭＳＣに関するものであり、前記ＭＳＣは静脈注射により投与することができる。静脈注射は非侵襲的な手技であり、鎮静剤を必要としない。このような侵襲的な手技および／または鎮静剤の使用は、特に、慢性腎臓病を発症するリスクがすでに高い高齢の哺乳類患者にとっては、リスクを伴う可能性がある。したがって、静脈内（ＩＶ）注射によるＭＳＣの全身投与は、治療への応用において大きな利点をもたらす。
定義
他に定義されない限り、技術用語および科学用語を含め、本発明を開示する際に使用されるすべての用語は、本発明が属する技術分野における当業者によって一般的に理解される意味を有する。さらなる指針として、本発明の教示をよりよく理解するために用語の定義が含まれる。
本明細書において、以下の用語は以下の意味を有する：
本明細書で使用される「１つの（ａ）」、「１つの（ａｎ）」、および「その（ｔｈｅ）」は、文脈上明らかにそうでない場合を除き、単数および複数の参照語を指す。例として、「１つの区画」は１つまたは２つ以上の区画を指す。
本明細書において、パラメータ、量および時間持続時間などの測定可能な値を指して使用される「約」は、開示された本発明において実行するのに適切な限りにおいて、規定値の＋／－２０％以下、好ましくは＋／－１０％以下、より好ましくは＋／－５％以下、さらに好ましくは＋／－１％以下、いっそう好ましくは＋／－０．１％以下の変動を包含することを意味する。ただし、修飾語「約」が指す値自体も具体的に開示されていることを理解されたい。
本明細書で使用される「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅ）」、「含むこと（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、および「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」および「含むこと（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ ｏｆ）」は、「含む（ｉｎｃｌｕｄｅ）」、「含むこと（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」、「含む（ｉｎｃｌｕｄｅｓ）」または「含有する（ｃｏｎｔａｉｎ）」、「含有すること（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）」、「含有する（ｃｏｎｔａｉｎｓ）」と同義であり、例えば構成要素に続くものの存在を特定する包括的またはオープンエンドな用語であり、当該技術分野において既知であるか、またはそこに開示されている、追加の、言及されていない構成要素、特徴、要素、部材、ステップの存在を除外も排除もしない。
さらに、本明細書および特許請求の範囲において、第１、第２および第３などの用語は、特定されない限り、類似の要素を区別するために使用され、必ずしも連続的または時系列的な順序を説明するために使用されるものではない。このように使用される用語は、適切な状況下では交換可能であり、本明細書に記載される本発明の実施形態は、本明細書に記載または図示される以外の順序で運用可能であることを理解されたい。
端点による数値範囲の記載は、記載された端点だけでなく、その範囲に含まれるすべての数値と分数を含む。
用語「１つまたは複数」または「少なくとも１つ」、例えば、一群のメンバーのうちの１つもしくは複数または少なくとも１つのメンバーは、それ自体は明白であるが、さらなる例示によって、この用語は、特に、前記メンバーのうちの任意の１つ、または前記メンバーのうちの任意の２つ以上、例えば、前記メンバーのうちの任意の≧３、≧４、≧５、≧６または≧７等、および最大ですべての前記メンバーへの言及を包含する。
他に定義されない限り、技術用語および科学用語を含め、本発明を開示する際に使用されるすべての用語は、本発明が属する技術分野における当業者によって一般的に理解される意味を有する。さらなる指針として、本発明の教示をよりよく理解するために、本明細書で使用される用語の定義が含まれる。本明細書で使用される用語または定義は、本発明の理解を助けるためにのみ提供される。
本明細書全体を通して「一実施形態」または「ある実施形態」という言及は、実施形態に関連して記載される特定の特徴、構造または特性が、本発明の少なくとも１つの実施形態に含まれることを意味する。したがって、本明細書を通じて様々な箇所で「一実施形態において」または「ある実施形態において」という句が現れるのは、必ずしもすべてが同じ実施形態を指すわけではないが、その可能性もある。さらに、特定の特徴、構造または特性は、１つまたは複数の実施形態において、本開示から当業者に明らかであるように、任意の適切な方法で組み合わせることができる。さらに、本明細書に記載されるいくつかの実施形態は、他の実施形態に含まれるいくつかの特徴を含み他の特徴は含まないが、当業者であれば理解されるように、異なる実施形態の特徴の組み合わせは本発明の範囲内にあり、異なる実施形態を形成することが意図される。例えば、以下の特許請求の範囲において、特許請求される実施形態のいずれかを任意の組み合わせで使用することができる。
「間葉系幹細胞」、「ＭＳＣ」または「間葉系間質細胞」という用語は、特定の表面抗原セットを発現し、ｉｎ ｖｉｔｒｏで培養した場合またはｉｎ ｖｉｖｏで存在する場合に、脂肪細胞、軟骨細胞および骨細胞を含むがこれらに限定されない様々な細胞型に分化することができる、多能性の自己複製細胞を指す。
「単離された」という用語は、細胞培養物または血液のような生物学的試料から細胞を物理的に同定および単離することを指し、これは、細胞培養物の検査と基準に対応する細胞の特徴付け（加えて可能で所望の場合には物理的分離）、または抗原の有無および／もしくは細胞の大きさによる細胞の自動選別（ＦＡＣＳなどによる）の何れかに基づく適切な細胞生物学的技術を適用することによって行うことができる。いくつかの実施形態において、「単離すること」または「単離」という用語は、特にフローサイトメトリーを実施することによる、細胞の物理的分離および／または定量化というさらなるステップを含み得る。
本明細書で使用される「ｉｎ ｖｉｔｒｏ」という用語は、体外または体の外側を示す。本明細書で使用される「ｉｎ ｖｉｔｒｏ」という用語は、「ｅｘ ｖｉｖｏ」を含むと理解されるべきである。「ｅｘ ｖｉｖｏ」という用語は、典型的には、身体から取り出され、体外、例えば培養容器またはバイオリアクター内で維持または増殖された組織または細胞を指す。
「継代」または「継代すること」という用語は当分野では一般的であり、培養された（間葉系幹）細胞を培養基材から、また細胞同士を剥離および分離することを指す。簡略化のため、細胞を接着培養条件下で初めて増殖させた後に行う継代を、一般に「最初の継代」（または継代１、Ｐ１）と呼ぶ。細胞は少なくとも１回、好ましくは２回以上継代してもよい。継代１以降の各継代は、例えば継代２、３、４、５、またはＰ１、Ｐ２、Ｐ３、Ｐ４、Ｐ５など、１ずつ増加する番号で呼ばれる。
「細胞培地」または「細胞培養培地」または「培地」という用語は、細胞の維持または増殖に使用できる栄養素を含む水性液体またはゲル状物を指す。細胞培地は血清を含んでもよいし、無血清でもよい。細胞培地は、成長因子を含んでもよいし、添加してもよい。
本明細書で使用する「成長因子」という用語は、様々な細胞型の増殖、成長、分化、生存および／または遊走に影響を及ぼし、単独でまたは他の物質によって調節された場合に、生物の発生的、形態的および機能的変化をもたらし得る生物学的に活性な物質を指す。成長因子は、典型的には、細胞に存在する受容体（例えば、表面または細胞内受容体）にリガンドとして結合することにより作用する。
本文脈におけるＭＳＣの「自己」投与とは、ドナー由来のＭＳＣをレシピエントに投与することをいい、レシピエントとドナーは同一である。
本文脈におけるＭＳＣの「同種間」投与とは、ドナー由来のＭＳＣをレシピエントに投与することであり、レシピエントとドナーは同種であるが、同一ではない。
本文脈におけるＭＳＣの「異種間」投与とは、ドナー由来のＭＳＣをレシピエントに投与することであり、レシピエントとドナーは異なる種に由来する。
本発明の文脈における「天然のＭＳＣ」とは、炎症性メディエーターなどの刺激環境に曝されていないＭＳＣを指す。本明細書で使用する場合、「炎症環境」または「炎症状態」とは、（ｉ）少なくとも１つの炎症誘発性免疫細胞、炎症誘発性サイトカイン、または炎症誘発性ケモカインの増加；および（ｉｉ）少なくとも１つの抗炎症性免疫細胞、抗炎症性サイトカイン、または抗炎症性ケモカインの減少を特徴とする状況または状態を指す。
「抗炎症性の」、「抗炎症」、「免疫抑制性の」および「免疫抑制剤」という用語は、局所的な炎症の少なくとも1つの徴候（熱、痛み、腫れ、発赤および機能低下などであるが、これらに限定されない）の減少を特徴とする任意の状況もしくは状態、ならびに／または（i）少なくとも1つの炎症誘発性免疫細胞、炎症誘発性サイトカインもしくは炎症誘発性サイトカインの減少；および（ii）少なくとも1つの抗炎症性免疫細胞、抗炎症性サイトカインもしくは抗炎症性ケモカインの増加を特徴とする全身状態の変化を指す。
本発明の「集団倍加時間」または「ＰＤＴ」は、次式で算出され得る：ＰＤＴ＝Ｔ／（ｌｎ（Ｎｆ／Ｎｉ）／ｌｎ（２））、ここでＴは８０％培養密度に達するまでの細胞培養時間（日単位）、Ｎｆは細胞剥離後の最終細胞数、Ｎｉは時点ゼロでの初期細胞数である。
「抗凝固剤」という用語は、血液の凝固を阻害することができる組成物を意味する。本発明で使用される抗凝固剤の例には、ＥＤＴＡまたはヘパリンが含まれる。
本発明の「バフィーコート」という用語は、凝固していない血液の画分として理解されるべきであり、これは、好ましくは、白血球と血小板を有する画分を濃縮する密度勾配遠心分離によって得られる。
「血液間相（ｂｌｏｏｄ－ｉｎｔｅｒ－ｐｈａｓｅ）」という用語は、主に赤血球と多形核細胞からなる下部画分と、主に血漿からなる上部画分の間に位置する、好ましくは密度勾配によって得られる血液の画分として理解されるべきである。血液間相は、単球、リンパ球およびＭＳＣを含む血液単核球（ＢＭＣ）の供給源である。
本明細書で使用される「懸濁液径」という用語は、懸濁液中にある細胞の平均直径として理解される。直径を測定する方法は当技術分野で既知である。可能な方法は、フローサイトメトリー、共焦点顕微鏡、イメージサイトメーター、または当技術分野で知られている他の方法である。
「治療有効量」という用語は、疾患の症状を軽減する、または状態を改善するのに有効な化合物または組成物の最小量または濃度のことである。
「治療」という用語は、病的な状態または障害の発生または進行を抑えるまたは予防するための、治療的、予防的、または防止的な措置の両方を指す。
「慢性腎臓病」（ＣＫＤ）とは、腎臓病の一種で、数ヶ月から数年の期間にわたり、腎臓の機能が徐々に低下していく。慢性腎疾患（ＣＲＤ）、慢性腎不全（ＣＲＦ）および慢性腎機能不全は同じ状態を指す。ネコまたはイヌなどの動物では、ＣＫＤの典型的な視覚的徴候としては、無気力、体重減少、尿を適切に濃縮する能力が失われたため大量に排尿し、それを補うためにより多くの水を飲む、食欲不振、目、脳および／もしくは心臓に影響を及ぼす血圧上昇（高血圧）、ならびに／または赤血球の減少（貧血）による歯茎の青白さが挙げられる。
ＣＤＫの診断後、適切な治療と患者のモニタリングを容易にするために、ＣＤＫのステージ分類が行われることがある。「ＩＲＩＳ（国際獣医腎臓病研究グループ）ステージ」は、まず、水分補給をした安定した患者において、少なくとも２回評価した空腹時血中クレアチニン濃度に基づいて決定される。ステージ１では、患者の血中クレアチニン濃度は正常であり、最終的なステージ４では、全身性の臨床症状および尿毒症の急性発症のリスクが高まっている（表１参照）。
「患者」、「被験体」、「動物」または「哺乳類」という用語は、互換的に使用され、治療される哺乳類の被験体を指す。好ましくは、哺乳動物はイヌまたはネコなどのイヌ科動物またはネコ科動物である。
本発明における「ネコ」または「ネコ科動物」とは、ネコ科のネコを指す。この科のメンバーはネコ科とも呼ばれる。現生するネコ科は、２つの亜科：ヒョウ亜科とネコ亜科に分けられる。ヒョウ亜科には５種のパンテラ（Ｐａｎｔｈｅｒａ）属と２種のウンピョウ（Ｎｅｏｆｅｌｉｓ）属が含まれ、ネコ亜科には１０属３４種が含まれ、イエネコ、チーター、サーバル、オオヤマネコおよびクーガーなどがいる。
本発明における「イヌ」または「イヌ科動物」とは、イヌ科のイヌ様肉食動物を指す。この科のメンバーはイヌ科と呼ばれる。イヌ科には３つの亜科があり、それは絶滅したボロファグス亜科とヘスペロキオン亜科、および現存するイヌ亜科である。イヌ亜科はイヌ科として知られ、イエイヌ、オオカミ、キツネ、コヨーテ、ジャッカルなどの現存種と絶滅種が含まれる。
「混合リンパ球反応（ＭＬＲ）」アッセイは、外用剤がＴ細胞増殖を刺激するか、または抑制するかを調べるために伝統的に用いられている。ＭＬＲアッセイを用いることで、ＭＳＣの免疫調節特性を調べることができる。このＭＬＲアッセイでは、レスポンダーＴ細胞を、特定の光周波数にさらされると緑色に光る蛍光色素でマークする。次に、これらのレスポンダーＴ細胞を植物マイトジェンであるコンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）で刺激して、増殖を誘導または刺激する。ＣｏｎＡは抗原非依存性のマイトジェンであり、代替的なＴ細胞刺激として使用できる。このレクチンは、Ｔ細胞刺激実験において抗原提示細胞の代用として頻繁に使用される。コンカナバリンＡは細胞表面の糖タンパク質に不可逆的に結合し、Ｔ細胞を増殖に向かわせる。これは転写因子とサイトカインの産生を迅速に刺激する方法である。Ｔ細胞が分裂を始めると、色素はその娘細胞に分配されるので、細胞分裂のたびに色素は連続的に希釈される。そのため、色の減少を見ることでＴ細胞の増殖量を測定することができる。したがって、ＭＳＣの免疫調節特性を調べるためには、これらのＭＳＣを、刺激されたレスポンダーＴ細胞に加え、数日間コインキュベートする。試験が正常に行われるかどうかを確認するために、適切な陽性対照と陰性対照を含める。コインキュベーション期間終了時に、フローサイトメトリーを用いてＴ細胞増殖量を測定し、ＭＳＣがＴ細胞増殖を抑制したかどうかを確認することができる。
説明
第１の態様において、本発明は、イヌおよびネコの慢性腎臓病（ＣＫＤ）の治療で使用するための、またはイヌおよびネコのＣＫＤを治療する方法としての、またはイヌおよびネコのＣＫＤを治療するための薬物の調製に使用するための、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）または治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物に関し、前記ＭＳＣは好ましくは天然であり、好ましくは静脈内投与される。
ＭＳＣは、その免疫調節特性から、炎症関連疾患の治療での使用が提唱されている。このような免疫調節特性は、特に慢性腎臓病の過剰な炎症プロセスを抑制し、その進行をごく短期間で遅らせる。これまでの（ネコの）研究では、慢性腎臓病の治療における安全性と有効性が検討され、非常に興味深い結果が得られている。これらの動物研究の大半は、腎動脈を介した関節内注射で投与された、脂肪組織または骨髄（ＢＭ）由来の自己ＭＳＣを使用している。しかし、治療で使用する自己ＭＳＣの生産には、各個体の患者からＭＳＣを侵襲的に採取し、その後、培養能力が比較的低いことが知られているネコまたはイヌのＭＳＣを時間をかけて培養する必要がある。さらに、関節内注射は侵襲的な手技であり、鎮静剤、経験および標的診断が必要である。
したがって、ＭＳＣの全身投与は、注射または点滴などによる静脈内（ＩＶ）投与によって有利に達成される可能性があり、治療への応用において大きな利点を提供する。しかしながら、上記で説明したように、げっ歯類モデルでは、肺毛細血管が注射後に最初に細胞を受け取るため、静脈内投与された幹細胞の大部分が肺に捕捉されることが示されている。この「ファーストパス効果」に加え、体内の様々な炎症部位にＭＳＣを引き寄せるホーミング能力により、腎臓が受け取るＭＳＣの総数が減少する可能性がある。以前の研究では、ＩＶ投与されたＭＳＣで治療されたネコは、腎機能の改善を示さなかった。そのため、研究はＩＶ投与から離れ、ＣＫＤのネコの間質血管細胞群（ＳＶＦ）中の間葉系幹細胞（ＭＳＣ）を腎臓に動脈内送達する方向へと再び方向転換されている（Thomson, Abigail L et al.）。
前記ネコは、ネコ科、好ましくはネコ亜科のネコ、より好ましくはイエネコ（Ｆｅｌｉｓ ｃａｔｕｓ）であってもよい。前記イヌは、イヌ科、好ましくはイヌ亜科のイヌ様肉食動物、より好ましくはイエイヌ（Ｃａｎｉｓ ｆａｍｉｌｉａｒｉｓ）であってもよい。
ある実施形態では、使用する前記ＭＳＣは天然である。このような天然のＭＳＣは、まずｉｎ ｖｉｔｒｏで、炎症性メディエーターまたは炎症環境などの刺激剤に曝されていない。このような炎症環境とは、（ｉ）少なくとも１つの炎症誘発性免疫細胞、炎症誘発性サイトカイン、または炎症誘発性ケモカインの増加、および（ｉｉ）少なくとも１つの抗炎症性免疫細胞、抗炎症性サイトカイン、または抗炎症性ケモカインの減少を特徴とする状況または状態を指す。天然のＭＳＣの使用は、最小限の製造と取り扱いですぐに使用できる製品の製造を可能にし、それによって製造コストを削減できるため、好ましい選択肢となる。
好みにより、ＭＳＣは１０μｍ～１００μｍ、より好ましくは１５μｍ～８０μｍ、より好ましくは２０μｍ～７５μｍ、より好ましくは２５μｍ～５０μｍの細胞サイズを有する。ある実施形態では、本発明による使用のためのＭＳＣは、フィルターシステムによってサイズ別に選択され、ここで細胞は、４０μｍのフィルターを使用する二重ろ過ステップにかけられる。二重または複数回のろ過ステップが好ましい。後者は、単一細胞の高い集団を提供し、細胞凝集体の存在が回避される。このような細胞凝集体は、凍結による細胞の保存中に細胞死を引き起こす可能性があり、細胞の更なる下流への応用に影響を与える可能性がある。例えば、細胞凝集体は静脈内投与時に毛細血管塞栓症の発生リスクを高める可能性がある。
本発明による使用のためのＭＳＣは、様々な組織または体液、特に血液、骨髄、脂肪組織または羊膜組織に由来し得る。ＭＳＣの骨髄採取は、出血、慢性疼痛、神経血管損傷、さらには死亡と関連することが報告されている。ＭＳＣの供給源としての脂肪組織は、より安全な選択肢とみなされている。しかし、脂肪組織からＭＳＣを採取するには、ドナー動物の切開をなお必要とし、従って侵襲的な手技であることに変わりはない。血液由来のＭＳＣは、骨髄および脂肪組織由来のＭＳＣと同様の形態を示す。結果として、好みにより、ＭＳＣは、限定するわけではないが臍帯血および末梢血を含む、血液由来とする。より好ましくは、ＭＳＣは末梢血由来とする。血液は、非侵襲的で苦痛を伴わない供給源であるだけでなく、採取が簡単で安全であり、その結果、容易に入手できる。ＭＳＣまたはＭＳＣを含む血液は、ヒト、家畜および農場動物、動物園動物、スポーツ動物、ペット動物、コンパニオンアニマルおよび実験動物、例えば、マウス、ラット、ウサギ、イヌ、ネコ、ウシ、ウマ、ブタおよび霊長類、例えば、サルおよび類人猿を含むがこれらに限定されない全ての哺乳動物に由来し得；特に、ウマ、ヒト、ネコ、イヌ、げっ歯類等である。ある実施形態では、前記起源はウマである。特に、ＭＳＣは、末梢血、好ましくはウマの末梢血に由来するものであってもよく、これにより、ドナー動物に対する不快感または病的状態を最小限に抑えながら、１年に複数回のＭＳＣ採取が可能となる。
場合によっては、同種または異種ＭＳＣの使用は、健康で質の高い幹細胞ドナーの厳格な選定を提供することから、より好ましい選択肢となる。各個体の患者からＭＳＣを侵襲的に採取することおよび時間のかかる培養を避け、すぐに使用できる製品を製造することができる。イヌおよびネコのＭＳＣ培養能力は、例えばウマまたはヒトのＭＳＣと比較すると相対的に低いため、特に商業的用途、例えばイヌおよびネコのＣＫＤ治療で使用する場合には、同種のイヌまたはネコのＭＳＣよりも異種（例えばヒトまたはウマ）のＭＳＣの使用が好ましい。
したがって、特定の実施形態において、本発明のＭＳＣは、被験体への同種または異種投与に使用することができる。既に示したように、同種または異種の使用は、異なるドナーをスクリーニングし、最適なドナーを選択することができるため、ＭＳＣの品質をより良好に制御することを可能にする。機能的なＭＳＣを調製することを考えると、後者が不可欠である。これは、ＭＳＣの自己使用とは対照的で、この場合、細胞の質を確保することがより難しくなるからである。とはいえ、自己使用にも利点があり得る。ある例では、血液ＭＳＣが単離されるが、そのために、後に単離されたＭＳＣのレシピエントにもなるドナーの血液が使用された。別の例では、ドナーの血液から単離されたＭＳＣのレシピエントと好ましくは同じ科、性別または血統のドナーからの血液が使用される。特に、これらのドナーは、幹細胞を介した病態または疾患の水平伝播の危険性を回避するために、一般的な現在伝播可能な疾患または病態について検査される。好ましくは、ドナー／ドナー動物は隔離された状態で飼育される。ドナー馬を使用する場合、例えば以下のような病態、ウイルスまたは寄生虫について検査を行うことができる：馬伝染性貧血（ＥＩＡ）、馬鼻肺炎（ＥＨＶ－１、ＥＨＶ－４）、馬ウイルス性動脈炎（ＥＶＡ）、ウエストナイルウイルス（ＷＮＶ）、アフリカ馬疫（ＡＨＳ）、媾疫（トリパノソーマ）、馬ピロプラズマ病、鼻疽（マレウス、鼻疽）、馬インフルエンザ、ライムボレリア症（ＬＢ）（ライム病ボレリア、ライム病）。
ある実施形態では、本発明の使用のためのＭＳＣは、以下のマーカーＣＤ２９、ＣＤ４４、ＣＤ９０、ＣＤ１０５、ビメンチン、フィブロネクチン、Ｋｉ６７、ＣＫ１８、またはそれらの任意の組み合わせのうちの１つまたは複数が存在することによって特徴づけることができ／陽性である。さらなる実施形態において、本発明の使用のためのＭＳＣは、間葉系マーカーＣＤ２９、ＣＤ４４およびＣＤ９０の存在によって特徴付けることができる。後者によって、得られたＭＳＣの純度を分析し、ＭＳＣの割合をもとめることができる。
ＣＤ２９はインテグリンβ１遺伝子によってコードされる細胞表面受容体で、リガンドとの結合時に他のタンパク質と複合体を形成して、生理活性を調節する。ＣＤ４４抗原は細胞－細胞相互作用、細胞接着および遊走に関与する細胞表面糖タンパク質である。加えて、ＣＤ４４はヒアルロン酸のレセプターであり、オステオポンチン、コラーゲンおよびマトリックスメタロプロテイナーゼ（ＭＭＰ）のような他のリガンドとも相互作用できる。ＣＤ９０抗原は、ＭＳＣのような幹細胞のマーカーとして考えられている保存された細胞表面タンパク質である。本発明のＭＳＣはＣＤ２９／ＣＤ４４／ＣＤ９０についてトリプル陽性であるため、当業者はＭＳＣを迅速かつ明確に選択することができ、さらなる下流への応用にとって重要なＭＳＣの生物学的特性を提供する。
ある実施形態では、本発明の使用のためのＭＳＣは、主要組織適合遺伝子複合体（ＭＨＣ）クラスＩＩ分子、好ましくは現在知られている全てのＭＨＣクラスＩＩ分子が存在しないことによって特徴づけられ／陰性であり、その細胞は、ネコおよびイヌの細胞療法などの哺乳動物の細胞療法に使用できる細胞として分類される。ＭＳＣが部分的に分化していても、ＭＳＣはＭＨＣクラスＩＩ分子について陰性のままである。ＭＨＣII分子の有無の検出および発現の定量化は、フローサイトメトリーを用いて行うことができる。
別のさらなる実施形態では、ＭＳＣは造血細胞のマーカーであるＣＤ４５抗原について陰性である。
ある実施形態では、ＭＳＣはＭＨＣクラスＩＩ分子とＣＤ４５の両方について陰性である。
特に好ましい実施形態では、本発明の使用のためのＭＳＣは、間葉系マーカーＣＤ２９、ＣＤ４４およびＣＤ９０について陽性であり、ＭＨＣクラスＩＩ分子およびＣＤ４５について陰性である。
一般に、ＭＳＣはその表面にＭＨＣクラスＩ抗原を発現している。特定の実施形態において、本発明の使用のためのＭＳＣは、ＭＨＣクラスＩマーカーが低レベルであるかまたは検出されないレベルである。最も好ましい実施形態では、前記ＭＳＣは、ＭＨＣクラスＩＩマーカーについて陰性であり、ＭＨＣクラスＩマーカーが低レベルであるかまたは検出されないレベルであり、前記細胞は、極めて低い免疫原性表現型を示す。本発明のために、前記低レベルとは、全細胞の２５％未満、より好ましくは１５％未満が前記ＭＨＣ ＩまたはＭＨＣ ＩＩを発現していると理解されるべきである。ＭＨＣ ＩおよびＭＨＣ ＩＩ分子の発現の有無の検出および定量化は、フローサイトメトリーを用いて行うことができる。
ＭＳＣのこのような免疫学的特性は、細胞移植後にレシピエントの免疫系が細胞、好ましくは同種細胞または異種細胞を認識し拒絶する能力を制限する。ＭＳＣによる免疫反応を調節する因子の産生は、局所的な刺激下で適切な細胞型に分化する能力とともに、ＭＳＣを細胞療法に望ましい幹細胞にしている。
ある実施形態では、本発明の使用のためのＭＳＣは、炎症環境または状態に存在する場合、免疫調節性プロスタグランジンＥ２サイトカインを分泌する。
炎症環境または状態は、血液中の免疫細胞の動員によって特徴づけられる。炎症性メディエーターには、プロスタグランジン、ＩＬ－１β、ＴＮＦ－α、ＩＬ－６およびＩＬ－１５などの炎症性サイトカイン、ＩＬ－８などのケモカインならびにＴＮＦ－αおよびＩＦＮ－γなどの他の炎症性タンパク質が含まれる。これらのメディエーターは、主に単球、マクロファージ、Ｔ細胞、Ｂ細胞によって産生されて炎症部位に白血球を動員し、その後、刺激性と抑制性の複雑な相互作用ネットワークを刺激して、組織の破壊と炎症プロセスからの組織の治癒を同時に行う。
プロスタグランジンＥ２（ＰｇＥ２）は、プロスタグランジンファミリーのサブタイプである。ＰｇＥ２は、膜リン脂質から放出されたアラキドン酸（ＡＡ）から連続的な酵素反応によって合成される。プロスタグランジン－エンドペルオキシダーゼ合成酵素として知られるシクロオキシゲナーゼ－２（ＣＯＸ－２）は、ＡＡをプロスタグランジンＨ２（ＰｇＨ２）に変換し、ＰｇＥ２合成酵素はＰｇＨ２をＰｇＥ２に異性化する。ＣＯＸ－２は律速酵素として、成長因子、炎症性サイトカインおよび腫瘍促進物質による刺激などの生理的条件に応じてＰｇＥ２の合成を制御する。
特定の実施形態において、炎症環境に存在する前記ＭＳＣは、可溶性免疫因子プロスタグランジンＥ２（ＰｇＥ２）を１ｍＬあたり１０３～１０６ピコグラムの範囲の濃度で分泌して、ＭＳＣ制御免疫抑制を誘導または刺激する。
これらの特定の濃度範囲におけるＭＳＣのＰｇＥ２分泌は、ｉｎ ｖｉｔｒｏでの抗炎症プロセスを刺激し、適切な細胞型に分化する能力とともに、それを細胞移植に望ましいものにする。
好ましい実施形態では、本発明の使用のためのＭＳＣは：
－間葉系マーカーＣＤ２９、ＣＤ４４、ＣＤ９０について陽性であり；
－ビメンチン、フィブロネクチン、Ｋｉ６７、またはそれらの組み合わせからなる群に含まれる１つまたは複数のマーカーについて陽性であり；
－ＭＨＣクラスＩＩ分子について陰性であり；
－造血マーカーＣＤ４５について陰性であり；
－好ましくは、ＭＨＣクラスＩ分子が低レベルであるかまたは検出されないレベルであり、前記低レベルとは、全細胞の２５％未満、より好ましくは１５％未満がＭＨＣ Ｉを発現していると理解すべきである。
最も好ましい実施形態では、本発明の使用のためのＭＳＣは：
－間葉系マーカーＣＤ２９、ＣＤ４４、ＣＤ９０について陽性であり；
－ビメンチン、フィブロネクチン、Ｋｉ６７、またはそれらの組み合わせからなる群に含まれる１つまたは複数のマーカーについて陽性であり；
－ＭＨＣクラスＩＩ分子について陰性であり；
－造血マーカーＣＤ４５について陰性であり；
－好ましくは、ＭＨＣクラスＩ分子が低レベルであるかまたは検出されないレベルであり、前記低レベルとは、全細胞の２５％未満、より好ましくは１５％未満がＭＨＣ Ｉを発現していると理解すべきであり、
ここで、前記細胞は、炎症環境または状態に存在する場合、免疫調節性ＰｇＥ２サイトカインを１ｍＬ当たり１０３～１０６ピコグラムの濃度で分泌する。
別のまたはさらなる実施形態において、本発明による使用のためのＭＳＣは、炎症環境または状態に存在する場合、同じ特徴を有するが前記炎症環境または状態にさらされていないＭＳＣと比較して、ＩＬ－６、ＩＬ－１０、ＴＧＦ－β、ＮＯまたはそれらの組み合わせから選択される分子の少なくとも１つの分泌が増加し、ＩＬ－１の分泌が減少する。
好ましい実施形態において、ＭＳＣは、炎症環境または状態に存在する場合、ＩＬ－６、ＩＬ－１０、ＴＧＦ－β、ＮＯ、またはそれらの組み合わせから選択される分子の少なくとも１つの分泌が増加し、ＩＬ－１の分泌が減少する。比較は、上記に示したのと同じ特徴を有するが、前記炎症環境または状態にさらされていない間葉系幹細胞との間で行うことができる。
好ましくは、ＭＳＣは、上記の因子のうちの２つ以上と組み合わせて、ＰｇＥ２の分泌が増加する。
ＰｇＥ２、ＩＬ－６、ＩＬ－１０、ＴＧＦ－ＢおよびＮＯは、Ｔ細胞およびＢ細胞のような主要な免疫細胞集団の増殖および機能を抑制するのに役立っている。加えて、ＭＳＣはその表面に低レベルのＭＨＣクラスＩ分子を発現し、および／または、ＭＨＣクラスＩＩ分子について陰性であり、免疫原性反応を免れている。さらに、本ＭＳＣは、上記の因子の分泌を増加させることによって白血球の増殖を抑制することができ、重ねて宿主の免疫原性反応を回避するのに役立っている。
別のまたはさらなる実施形態において、ＭＳＣは、末梢血単核球（ＰＢＭＣ）の存在下で、ＰｇＥ２、ＩＬ－６、ＩＬ－１０、ＮＯもしくはそれらの組み合わせの分泌を刺激し、および／または、ＴＮＦ－α、ＩＦＮ－γ、ＩＬ－１、ＩＬ－１３もしくはそれらの組み合わせの分泌を抑制する。別のまたはさらなる実施形態において、ＭＳＣは、ＰＢＭＣの存在下でＴＧＦ－β１の分泌を抑制する。
炎症環境において、ＭＳＣは宿主の免疫応答を調節する複数の因子を分泌する。さらに、ＭＳＣは、ＰｇＥ２、ＩＬ－６、ＩＬ－１０、ＮＯまたはそれらの組み合わせからなる群から選択される１つまたは複数の因子の分泌を誘導または刺激する刺激作用を有する。炎症環境におけるＰＢＭＣに対するＭＳＣの刺激作用の次に、ＭＳＣは、ＰＢＭＣの分泌を抑制する作用も有し、その結果、ＴＮＦ－α、ＩＦＮ－γ、ＩＬ－１、ＴＧＦ－β１、ＩＬ－１３またはそれらの組み合わせからなる群から選択される１つまたは複数の因子が減少する。ＭＳＣは炎症環境において調節作用を有し、自身をあらゆる種類の疾患、特に免疫系の障害の治療に有用なものにする。
一般に、特定の細胞型（例えば、間葉系、肝系、造血系、上皮系、内皮系マーカー）、または特定の局在（例えば、細胞内、細胞表面、または分泌型）を有する細胞マーカーを同定し、特徴付けるための技術であって、文献に発表されているものであれば、ＭＳＣの特徴付けに適切であると考えられる。このような技術は、２つのカテゴリー：解析中に細胞の完全性を維持できるものと、そのような細胞を用いて生成された抽出物（タンパク質、核酸、膜などを含む）に基づくものに分類することができる。このようなマーカーを同定し、陽性か陰性かを測定する技術の中では、免疫細胞化学または細胞培養液の分析が、（ウェスタンブロットまたはフローサイトメトリーの場合のように）少量の細胞でも、それらを破壊することなくマーカーを検出できるため好ましい。
ＭＳＣの免疫調節特性は、ＭＬＲアッセイを用いてアッセイすることができる。このＭＬＲアッセイでは、レスポンダーＴ細胞を、特定の光周波数にさらされると緑色に光る蛍光色素でマークする。次に、これらのレスポンダーＴ細胞を植物マイトジェン（ＣｏｎＡ）で刺激して、増殖を誘導または刺激する。Ｔ細胞が分裂を始めると、色素はその娘細胞に分配されるので、細胞分裂のたびに色素は連続的に希釈される。そのため、Ｔ細胞の増殖量は色の減少を見ることで測定できる。したがって、ＭＳＣの免疫調節特性を調べるためには、これらのＭＳＣを刺激されたレスポンダーＴ細胞に加え、数日間コインキュベートする。試験が正常に行われるかどうかを確認するために、適切な陽性対照と陰性対照を含める。コインキュベーション期間終了時に、フローサイトメトリーを用いてＴ細胞増殖量を測定し、ＭＳＣがＴ細胞増殖を抑制したかどうかを確認することができる。
ＭＳＣの関連する生物学的特徴は、フローサイトメトリー、免疫細胞化学、質量分析、ゲル電気泳動、イムノアッセイ（例えば、イムノブロット、ウェスタンブロット、免疫沈降、ＥＬＩＳＡ）、核酸増幅（例えば、リアルタイムＲＴ－ＰＣＲ）、酵素活性、オミックス技術（プロテオミクス、リピドミクス、グリコミクス、トランスラトミクス、トランスクリプトミクス、メタボロミクス）、および／または他の生物学的活性などの技術を用いて同定することができる。
本発明のＭＳＣは、当該技術分野において既知の任意の標準的なプロトコルによって導くことができる。ある実施形態では、前記ＭＳＣは、ＭＳＣが血液または血液相から単離され、前記細胞が基本培地、好ましくは低グルコース培地中で培養および増殖される方法を介して得ることができる。
当該技術分野で既知の基本培地配合物としては、イーグル最小必須培地（ＭＥＭ）、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、α改変最小必須培地（α－ＭＥＭ）、基本必須培地（ＢＭＥ）、イスコーブ改変ダルベッコ培地（ＩＭＤＭ）、ＢＧＪｂ培地、Ｆ－１２栄養混合物（Ｈａｍ）、リーボビッツＬ－１５、ＤＭＥＭ／Ｆ－１２、必須改変イーグル培地（ＥＭＥＭ）、ＲＰＭＩ－１６４０、１９９培地、ウェイマスの１０ＭＢ ７５２／１またはウィリアムズ培地Ｅならびにそれらの改変物および／または組み合わせが挙げられるが、これらに限定されない。上記の基本培地の組成は、当技術分野で一般に知られており、培地および／または培地補充物の濃度を、培養される細胞の必要に応じて変更または調節することは、当業者の技術の範囲内である。好ましい基本培地配合物は、ＤＭＥＭのような商業的に利用可能なものの１つであってよく、これは、ＭＳＣのｉｎ ｖｉｔｒｏ培養を維持することが報告されており、その適切な成長、増殖、所望のマーカーおよび／もしくは生物学的活性の維持、または長期保存のための成長因子の混合物を含んでいる。
このような基本培地配合物は、哺乳動物細胞の発育に必要な成分を含んでおり、それ自体が既知である。例示であって限定するものではないが、これらの成分には、無機塩（特に、Ｎａ、Ｋ、Ｍｇ、Ｃａ、Ｃｌ、Ｐおよび場合によってはＣｕ、Ｆｅ、ＳｅおよびＺｎを含む塩）、生理的緩衝液（例えば、ＨＥＰＥＳ、炭酸水素塩）、ヌクレオチド、ヌクレオシドおよび／または核酸塩基、リボース、デオキシリボース、アミノ酸、ビタミン、抗酸化剤（例えば、グルタチオン）ならびに炭素の供給源（例えば、グルコース、ピルビン酸、例えば、ピルビン酸ナトリウム、酢酸、例えば、酢酸ナトリウム）などが含まれ得る。また、多くの培地が、ピルビン酸ナトリウムの有無にかかわらず、低グルコース配合物として利用可能であることも明らかであろう。
血液または血液相からＭＳＣを単離し、該細胞を培養および増殖させる方法は当該技術分野で既知であり、例えば国際公開第２０１４／０５３４１８号または国際公開第２０１４／０５３４２０号に記載されている。
ある実施形態では、血液または血液相からＭＳＣを単離し、低グルコース培地中で前記細胞を培養および増殖させるこのような方法は、以下の：
ａ）抗凝固剤でコーティングされた試料バイアルに、ドナーから１つまたは複数の血液試料を採取するステップと；
ｂ）前記血液試料を遠心分離して、血漿相、バフィーコートおよび赤血球相からなる３相分布を得るステップと；
ｃ）前記バフィーコートを採取し、密度勾配に載せるステップと；
ｄ）ステップｃ）の密度勾配から得られた血液間相を採取するステップと；
ｅ）遠心分離により前記血液間相からＭＳＣを単離するステップと；
ｆ）２．５×１０５／ｃｍ２～５×１０５／ｃｍ２のＭＳＣを培養液に播種し、デキサメタゾン、抗生物質および血清を添加した低グルコース増殖培地中にそれらを維持するステップとを含み得る。
ある実施形態では、抗凝固剤をＭＳＣに添加してもよい。非限定的な例は、ＥＤＴＡまたはヘパリンである。
播種の回数は、最終的に純粋で生存可能な集団のＭＳＣを、許容可能な濃度で得るために極めて重要である。密に播種しすぎると、増殖中に大量の細胞死を引き起こし、ＭＳＣの集団が不均一になり、分散させすぎた播種は、ＭＳＣのコロニー形成がほとんどまたは全く起こらないため、増殖ができないか、ほとんどできないか、または増殖に時間がかかりすぎるからである。どちらの場合も、細胞の生存率に悪影響が及ぶ。
本発明の好ましい実施形態では、ＭＳＣは高い細胞生存率を有し、少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９５％、最も好ましくは１００％の前記細胞が生存している。
血液間相は、単球、リンパ球およびＭＳＣを含む血液単核球（ＢＭＣ）の供給源である。好みにより、リンパ球は３７℃で洗い流し、単球は生存に必要なサイトカインの非存在下で２週間以内に死滅させる。こうしてＭＳＣが精製される。血液間相からのＭＳＣの単離は、好ましくは、血液間相を遠心分離した後、細胞ペレットをリン酸緩衝液などの適切な緩衝液で少なくとも１回洗浄することによって行われる。
さらなる実施形態では、本発明のＭＳＣは単球およびマクロファージについて陰性であり、いずれも０％～７．５％の範囲内である。
特に、間葉系細胞は増殖培地中で少なくとも２週間維持される。好ましくは、１％デキサメタゾンを有する増殖培地が使用される。これは、ＭＳＣの特異的な特徴が前記培地中で維持されるからである。
最低２週間（１４日間）、好ましくは３週間（２１日間）後、ＭＳＣのコロニーが培養瓶の中に確認できるようになる。続くステップｇ）では、少なくとも６×１０３幹細胞／ｃｍ２が、ＭＳＣを増殖させる目的で、低グルコース、血清および抗生物質を含有する増殖培地に移される。好ましくは、ＭＳＣの増殖は最低５回の細胞継代で行われる。こうして十分な細胞を得ることができる。好ましくは、細胞は７０％～８０％のコンフルエントで分割される。ＭＳＣは最大５０継代まで培養液中で維持することができる。これを過ぎると、生命力の喪失、老化または突然変異の形成のリスクが生じる。
さらなる実施形態では、ＭＳＣの増殖中の各継代間の集団倍加時間（ＰＤＴ）は、トリプシン化後０．７～３日であることが好ましい。ＭＳＣの増殖中の各継代間の前記ＰＤＴは、好ましくは、トリプシン化後０．７～２．５日である。
好ましい実施形態では、本発明による使用のためのＭＳＣは紡錘形の形態を有する。本発明のＭＳＣの形態学的特徴付けによると、該細胞は細長い繊維芽細胞様の紡錘形細胞として分類される。このタイプの細胞は、ほとんどが三角形または星型の細胞形状を示す小さな自己複製細胞を有するＭＳＣの他の集団、および、顕著な核を有する大きな立方状または扁平なパターンを有するＭＳＣの他の集団とは異なる。生物学的マーカーとともにこのような特異的な形態学的特徴を有するＭＳＣを選択することにより、当業者は本発明のＭＳＣを単離することができる。細胞の形態学的分析は、位相差顕微鏡を用いて当業者が容易に行うことができる。さらに、フローサイトメトリーにおける前方および側方散乱図、または当業者に既知の他の技術を用いて、ＭＳＣのサイズおよび粒状性を評価することができる。
別のまたはさらに好ましい実施形態では、ＭＳＣは１０μｍ～１００μｍの懸濁液径を有する。本発明の使用のためのＭＳＣは、サイズ／懸濁液径に基づいて選択されている。好みにより、ＭＳＣは１０μｍ～１００μｍ、より好ましくは１５μｍ～８０μｍ、より好ましくは２０μｍ～７５μｍ、より好ましくは２５μｍ～５０μｍの細胞サイズを有する。好ましくは、細胞サイズに基づく細胞の選択は、ろ過ステップによって行われる。例えば、細胞濃度が１ｍＬあたり１０３～１０７ＭＳＣの範囲にあるＭＳＣは、好ましくは低グルコースＤＭＥＭ培地で希釈され、細胞が４０μｍフィルターを使用する二重ろ過ステップを経るフィルターシステムによってサイズによって選択される。二重または複数回のろ過ステップが好ましい。後者は、単一細胞の高い集団を提供し、細胞凝集体の存在を回避する。このような細胞凝集体は、凍結による細胞の保存中に細胞死を引き起こす可能性があり、細胞の更なる下流への応用に影響を及ぼす可能性がある。例えば、細胞凝集体は静脈内投与時に毛細血管塞栓症の発生リスクを高める可能性がある。
ある実施形態では、前記治療有効量のＭＳＣは、前記組成物中、１０５－１０７ＭＳＣである。
好ましい実施形態では、本発明による使用のためのＭＳＣは、静脈注射または点滴による被験体への投与用に製剤化される。
ある実施形態では、治療有効量のＭＳＣがイヌまたはネコの患者に投与され、好ましくは、患者あたり１０５－１０７ＭＳＣの用量が投与される。ある実施形態では、単一用量が投与される。
被験体に治療上の利益をもたらす最小治療有効用量は、１回の投与あたり少なくとも１０５のＭＳＣである。好ましくは、各投与は静脈注射によるものであり、１投与あたり１０５～５×１０５ＭＳＣを含み、前記ＭＳＣは好ましくは天然および／または異種である。
ある実施形態では、前記ＭＳＣは少なくとも２回、少なくとも３回、少なくとも４回、少なくとも５回、好ましくは間隔を空けて投与される。
別のまたはさらなる実施形態において、治療はさらに以下の：ＭＳＣまたはＭＳＣを含む組成物の複数回の投与、例えばイヌまたはネコの患者あたり１０５－１０７ＭＳＣの用量の複数回の静脈内投与を含み、ここで、前記複数用量は、以下の時点の１つまたは複数を含むがこれらに限定されない、様々な時点で投与される：１日間隔、２日間隔、３日間隔、４日間隔、５日間隔、６日間隔、７日（１週間）間隔、２週間間隔、３週間間隔、４週間間隔、５週間間隔、６週間間隔、７週間間隔、８週間間隔、３ヶ月間隔、６ヶ月間隔、９ヶ月間隔、および／または１年間隔。好ましくは、各用量は少なくとも２週間間隔、より好ましくは少なくとも３週間間隔、さらにより好ましくは少なくとも４週間間隔、最も好ましくは少なくとも６週間間隔で投与される。
ある実施形態では、前記組成物は、滅菌液体中に存在する前記ＭＳＣを含む。このような滅菌液体の非限定的な例は、ダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ）などの最小必須培地（ＭＥＭ）である。前記滅菌液体は、哺乳動物患者への静脈内投与、例えば注射または点滴による投与に対して安全であるべきである。
非限定的な例として、前記滅菌液体は、基本培地のような最小必須培地である。当技術分野で知られている基本培地配合物としては、イーグル最小必須培地（ＭＥＭ）、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、α改変最小必須培地（α－ＭＥＭ）、基本必須培地（ＢＭＥ）、イスコーブ改変ダルベッコ培地（ＩＭＤＭ）、ＢＧＪｂ培地、Ｆ－１２栄養混合物（Ｈａｍ）、リーボビッツＬ－１５、ＤＭＥＭ／Ｆ－１２、必須改変イーグル培地（ＥＭＥＭ）、ＲＰＭＩ－１６４０、１９９培地、ウェイマスの１０ＭＢ ７５２／１またはウィリアムズ培地Ｅ、ならびにそれらの改変物および／または組み合わせが挙げられるが、これらに限定されない。上記の基本培地の組成は、当技術分野で一般に知られており、培地および／または培地補充物の濃度を、培養される細胞の必要に応じて変更または調節することは、当業者の技術の範囲内である。好ましい基本培地配合物は、ＤＭＥＭのような商業的に利用可能なものの１つであってよく、これは、ＭＳＣのｉｎ ｖｉｔｒｏ培養を維持することが報告されており、その適切な成長、増殖、所望のマーカーおよび／もしくは生物学的活性の維持、または長期保存のための成長因子の混合物を含んでいる。
このような基本培地配合物は、哺乳動物細胞の発育に必要な成分を含んでおり、それ自体は既知である。例示であって限定するものではないが、これらの成分には、無機塩（特に、Ｎａ、Ｋ、Ｍｇ、Ｃａ、Ｃｌ、Ｐおよび場合によってはＣｕ、Ｆｅ、ＳｅおよびＺｎを含む塩）、生理的緩衝液（例えば、ＨＥＰＥＳ、炭酸水素塩）、ヌクレオチド、ヌクレオシドおよび／または核酸塩基、リボース、デオキシリボース、アミノ酸、ビタミン、抗酸化剤（例えば、グルタチオン）ならびに炭素の供給源（例えば、グルコース、ピルビン酸、例えば、ピルビン酸ナトリウム、酢酸、例えば、酢酸ナトリウム）などが含まれ得る。また、多くの培地が、ピルビン酸ナトリウムの有無にかかわらず、低グルコース配合物として利用可能であることも明らかであろう。
好みにより、前記組成物は少なくとも７５％、より好ましくは少なくとも８０％、さらにより好ましくは少なくとも８５％、最も好ましくは少なくとも９０％の単一細胞を含み、それによって前記単一細胞は１０μｍ～１００μｍ、より好ましくは１５μｍ～８０μｍ、より好ましくは２０μｍ～７５μｍ、より好ましくは２５μｍ～５０μｍの懸濁液径を有する。前述したように、細胞の直径とその単一細胞性は、静脈内投与などの下流への応用および細胞の生命力にとって重要である。
好みにより、前記組成物は少なくとも９０％のＭＳＣを含み、より好ましくは少なくとも９５％のＭＳＣを含み、より好ましくは少なくとも９９％、最も好ましくは１００％のＭＳＣを含む。
ＭＳＣを含む滅菌液体の形態の組成物の体積および濃度は、好ましくは静脈注射に適合される。ある実施形態では、医薬組成物は、最終調整後、１ｍＬ当たり１０５－１０７細胞の濃度のＭＳＣを含む滅菌液体の形態で動物に投与することができる。
ある実施形態では、各静脈注射または点滴で治療有効量のＭＳＣが投与され、好ましくは、各注射または点滴は、１０５～１０７の用量の前記ＭＳＣを含む。
ある実施形態では、医薬組成物は、前記組成物１ｍＬ当たり１０５－１０７ＭＳＣ、好ましくは１ｍＬ当たり１０５～１０６ＭＳＣ、より好ましくは１ｍＬ当たり１０５－５×１０５ＭＳＣの治療有効量のＭＳＣを含む。
ある実施形態では、前記組成物の１投与量は、約０．５～５ｍＬ、好ましくは約０．５～５ｍＬ、好ましくは約０．５～３ｍＬ、好ましくは約０．５～２ｍＬ、より好ましくは約０．５～１．５ｍＬ、最も好ましくは約１ｍＬの体積を有する。別のまたはさらなる実施形態では、前記組成物の１投与量は、最大で約５ｍＬ、好ましくは最大で約４ｍＬ、より好ましくは最大で約３ｍＬ、さらに好ましくは最大で約２ｍＬの体積を有し、最も好ましくは、前記体積は約１ｍＬである。この量は静脈内投与に適している。
前記投与量は、バイアルまたはプレフィルドシリンジに製剤化することができる。
ある実施形態では、患者への注射ごとに投与される組成物の体積は、患者の体重に応じて適合される。別の実施形態では、患者当たり１０５－１０７ＭＳＣ、好ましくは１０５～１０６ＭＳＣ、より好ましくは１０５－５×１０５ＭＳＣ、最も好ましくは３×１０５ＭＳＣの固定された用量が投与される。
本発明者らはさらに、特に効果的な治療が、いずれかの実施形態において上述した使用のためのＭＳＣまたは使用のための医薬組成物の少なくとも２つの投与量を含む投与レジメンによって達成されることを発見した。
したがって、さらなる実施形態は、イヌおよびネコのＣＫＤの治療で使用するための医薬組成物に関し、ここで：
－前記治療は、好ましくは静脈内に、患者あたり１０５－１０７ＭＳＣの総用量を含む前記組成物の第１の量を投与するステップを含み、
－前記治療は、好ましくは静脈内に、前記組成物の第２の量を投与するステップをさらに含み、前記第２の量は、１０５－１０７ＭＳＣの第２の総用量を含み、前記ＭＳＣは、好ましくは、天然および／または異種であり、
ここで、前記第２の用量は、前記第１の量の１日後、前記第１の量の２日後、前記第１の量の３日後、前記第１の量の４日後、前記第１の量の５日後、前記第１の量の６日後、前記第１の量の７日後（１週間後）、前記第１の量の２週間後、前記第１の量の３週間後、前記第１の量の４週間後、前記第１の量の５週間後、前記第１の量の６週間後、前記第１の量の７週間後、前記第１の量の８週間後、前記第１の量の３ヶ月後、６ヶ月後、前記第１の量の９ヶ月後、および／または前記第１の量の１年後に投与される。好ましくは、各用量は、前記第１の量の少なくとも２週間後に投与され、より好ましくは、前記第１の量の少なくとも３週間後に投与され、さらにより好ましくは、前記第１の量の少なくとも４週間後に投与され、最も好ましくは、前記第１の量の少なくとも６週間後に投与される。
ある実施形態では、前記第２の用量は、前記第１の用量と同一である。別の実施形態において、前記第２の用量は、前記第１の用量よりも少ない。さらに別の実施形態では、前記第２の用量は、前記第１の用量よりも多い。
ある実施形態では、前記組成物の第３、第４および／または第５の量さえも、前記患者に、好ましくは静脈内に投与され得、前記第３、第４および／または第５の量は、１０５－１０７ＭＳＣの第３、第４および／または第５の総用量を含み、前記ＭＳＣは、好ましくは、天然および／または異種である。
ある実施形態では、前記組成物の第６またはそれ以上の量が、前記患者に、好ましくは静脈内に投与され得、ここで、前記第６またはそれ以上の量は、１０５－１０７ＭＳＣの第６またはそれ以上の総用量を含み、ここで、前記ＭＳＣは、好ましくは、天然および／または異種である。
ネコとイヌのＣＤＫの診断に際しては、適切な治療と患者のモニタリングを容易にするために、ＣＤＫのステージ分類が行うことができる。ＩＲＩＳのステージは、まず、水分補給をした安定した患者において、少なくとも２回評価した空腹時血中クレアチニン濃度に基づいて決定される。ステージ１では、患者の血中クレアチニン濃度は正常（ネコでは＜１．６ｍｇクレアチニン／ｄＬ、イヌでは＜１．４ｍｇ／クレアチニン／ｄＬ）であり、最終的なステージ４（＞５．０ｍｇクレアチニン／ｄＬ）では、全身性の臨床症状および尿毒症の急性発症のリスクが高まっている。
したがって、本発明はまた、前記実施形態のいずれかに記載のＭＳＣまたは有効量のＭＳＣを含む医薬組成物に関し、そこでは、慢性腎臓病と診断された、または慢性腎臓病に罹患しているネコおよびイヌのクレアチニンレベルが、前記ＭＳＣまたは組成物で治療されていないネコまたはイヌと比較して低下する。前記ＭＳＣまたは組成物は、好ましくは静脈内投与され、前記ＭＳＣは、好ましくは天然および／または異種である。
一実施形態では、前記ＭＳＣまたは医薬組成物を投与されたネコまたはイヌの平均クレアチニンレベルは、前記ＭＳＣまたは組成物で治療されていないネコまたはイヌの平均クレアチニンレベルと比較して、少なくとも１％、好ましくは少なくとも２％、好ましくは少なくとも３％、好ましくは少なくとも４％、好ましくは少なくとも５％、好ましくは少なくとも６％、好ましくは少なくとも７％、好ましくは少なくとも８％、好ましくは少なくとも９％、好ましくは少なくとも１０％、好ましくは少なくとも１１％、好ましくは少なくとも１２％、好ましくは少なくとも１３％、好ましくは少なくとも１４％、好ましくは少なくとも１５％、好ましくは少なくとも１６％、好ましくは少なくとも１７％、好ましくは少なくとも１８％、好ましくは少なくとも１９％、好ましくは少なくとも２０％、好ましくは少なくとも２１％、好ましくは少なくとも２２％、好ましくは少なくとも２３％、好ましくは少なくとも２４％、好ましくは少なくとも２５％、好ましくは少なくとも３０％低下する。
ＣＤＫと診断された、またはＣＤＫに罹患しているネコおよびイヌに、本発明のＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物を投与することにより、ＣＤＫに罹患している前記患者において、クレアチニンレベルの上昇などのＣＤＫの１つまたは複数の症状が、前記ＭＳＣまたはＭＳＣを含む医薬組成物を前記患者に投与する前の症状と比較して、軽減、緩和、改善および／または回復し得る。
ある実施形態では、前記ネコまたはイヌの平均クレアチニンレベルが、前記ＭＳＣまたはＭＳＣを含む医薬組成物を投与する前のネコまたはイヌのクレアチニンレベルと比較して、少なくとも１％、好ましくは少なくとも２％、好ましくは少なくとも３％、好ましくは少なくとも４％、好ましくは少なくとも５％、好ましくは少なくとも６％、好ましくは少なくとも７％、好ましくは少なくとも８％、好ましくは少なくとも９％、好ましくは少なくとも１０％、好ましくは少なくとも１１％、好ましくは少なくとも１２％、好ましくは少なくとも１３％、好ましくは少なくとも１４％、好ましくは少なくとも１５％、好ましくは少なくとも１６％、好ましくは少なくとも１７％、好ましくは少なくとも１８％、好ましくは少なくとも１９％、好ましくは少なくとも２０％、好ましくは少なくとも２１％、好ましくは少なくとも２２％、好ましくは少なくとも２３％、好ましくは少なくとも２４％、好ましくは少なくとも２５％、好ましくは少なくとも３０％低下する。
ある実施形態では、ＣＤＫと診断された、またはＣＤＫに罹患しているネコまたはイヌに、ＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物を投与することにより、前記ネコまたはイヌの生活の質（ＱｏＬ）が、前記ＭＳＣまたはＭＳＣを含む医薬組成物を投与する前の前記ネコまたはイヌの生活の質と比較して改善される。
前記生活の質は、例えば、飼い主にペットのＱｏＬを１－１０のスケールで評価するよう求める線形アナログスケールによって決定することができる。１が最高の生活の質であり、１０が最悪の生活の質である場合、生活の質を向上させるということは、前記スケールでより低いスコアを得ることを指す。１が最悪の生活の質であり、１０が最高の生活の質である場合、生活の質を向上させるということは、前記スケールでより高いスコアを得ることを指す。
ある実施形態では、前記ネコまたはイヌの生活の質（ＱｏＬ）が線形アナログスケールによって測定され、こうして得られた値は、前記ＭＳＣまたはＭＳＣを含む医薬組成物を投与する前のネコまたはイヌの値と比較して、少なくとも１０％、好ましくは少なくとも１５％、好ましくは少なくとも２０％、好ましくは少なくとも２５％、好ましくは少なくとも３０％、好ましくは少なくとも３５％、好ましくは少なくとも４０％、好ましくは少なくとも４５％、好ましくは少なくとも５０％、好ましくは少なくとも５５％、好ましくは少なくとも６０％、好ましくは少なくとも６５％、好ましくは少なくとも７０％、好ましくは少なくとも７５％、好ましくは少なくとも８０％、好ましくは少なくとも８５％、例えば８６％改善される。「値の改善」とは、より良好な生活の質を指す。
また、生活の質はスコア化スキームまたは質問票によって算出することもできる。
あつ実施形態では、ネコの生活の質は、Bijsmans et al.の論文で議論されている生活の質（ＱｏＬ）ツールで算出される（Bijsmans ES, Jepson RE, Syme HM, Elliott J, Niessen SJ. Psychometric Validation of a General Health Quality of Life Tool for Cats Used to Compare Healthy Cats and Cats with Chronic Kidney Disease. J Vet Intern Med. 2016 Jan-Feb;30(1):183-91. doi: 10.1111/jvim.13656. Epub 2015 Nov 14. PMID: 26567089; PMCID: PMC4913638.）。簡単に説明すると、質問票は４つのドメイン：一般的健康（ＧＨ）、食事（Ｅ）、行動（Ｂ）および管理（Ｍ）に分かれている。各項目は、ネコの生活に影響を与えた頻度または重大度によってスコア化され、個体差を捉えるためにすべての質問に重要度評価が含まれている。頻度または重大度の評価は－３から＋３まで、重大度の評価は０から＋３までである。一連の計算の最後には、ネコの生活の質の全体的な定量的指標となる平均加重スコアが得られる。
ある実施形態では、イヌの生活の質は、Ｌａｖａｎの論文で議論されている生活の質（ＱｏＬ）質問票によって算出される（Lavan RP. Development and validation of a survey for quality of life assessment by owners of healthy dogs. Vet J. 2013 Sep;197(3):578-82. doi: 10.1016/j.tvjl.2013.03.021. Epub 2013 Apr 29. PMID: 23639368.）。ある実施形態では、イヌの生活の質は、Ｌａｖａｎの前述の論文で議論されている生活の質（ＱｏＬ）質問票の適合版によって算出される。
ある実施形態では、前記ネコまたはイヌの生活の質（ＱｏＬ）は、スコア化スキームによって測定され、こうして得られたスコアは、前記ＭＳＣまたはＭＳＣを含む医薬組成物を投与する前のネコまたはイヌの生活の質スコアと比較して、少なくとも１０％、好ましくは少なくとも１５％、好ましくは少なくとも２０％、好ましくは少なくとも２５％、好ましくは少なくとも３０％、好ましくは少なくとも３５％、好ましくは少なくとも４０％、好ましくは少なくとも４５％、好ましくは少なくとも５０％、好ましくは少なくとも５５％、好ましくは少なくとも６０％、好ましくは少なくとも６５％、好ましくは少なくとも７０％、好ましくは少なくとも７５％、好ましくは少なくとも８０％、好ましくは少なくとも８５％、例えば８６％改善される。「スコアの改善」とは、より良好な生活の質を意味する。
ある実施形態では、ＣＤＫと診断された、またはＣＤＫに罹患している前記ネコの生活の質（ＱｏＬ）は、Bijsmans et al.の論文で議論されている生活の質（ＱｏＬ）ツールによって算出される。こうして得られたスコアは、前記ＭＳＣまたはＭＳＣを含む前記医薬組成物を投与する前のネコのＱＯＬスコアと比較して、少なくとも１０％、好ましくは少なくとも１５％、好ましくは少なくとも２０％、好ましくは少なくとも２５％、好ましくは少なくとも３０％、好ましくは少なくとも３５％、好ましくは少なくとも４０％、好ましくは少なくとも４５％、好ましくは少なくとも５０％、好ましくは少なくとも５５％、好ましくは少なくとも６０％、好ましくは少なくとも６５％、好ましくは少なくとも７０％、好ましくは少なくとも７５％、好ましくは少なくとも８０％、好ましくは少なくとも８５％、例えば８６％改善される。「スコアの改善」とは、より良好な生活の質を指す。
ある実施形態では、ＣＤＫと診断された、またはＣＤＫに罹患しているネコまたはイヌに、ＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物を投与することにより、前記ネコまたはイヌの生活の質（ＱｏＬ）は、前記ＭＳＣまたは組成物で治療されていないネコまたはイヌの生活の質と比較して改善される。
ある実施形態では、前記ネコまたはイヌの生活の質（ＱｏＬ）は、線形アナログスケールによって測定され、こうして得られた平均値は、前記ＭＳＣまたは組成物で治療していないネコまたはイヌの平均値と比較して、少なくとも１０％、好ましくは少なくとも１５％、好ましくは少なくとも２０％、好ましくは少なくとも２５％、好ましくは少なくとも３０％、好ましくは少なくとも３５％、好ましくは少なくとも４０％、好ましくは少なくとも４５％、好ましくは少なくとも５０％、好ましくは少なくとも５５％、好ましくは少なくとも６０％、好ましくは少なくとも６５％、好ましくは少なくとも７０％、好ましくは少なくとも７５％、好ましくは少なくとも８０％、好ましくは少なくとも８５％、例えば８６％改善される。
ある実施形態では、前記ネコまたはイヌの生活の質（ＱｏＬ）は、スコア化スキームによって測定され、こうして得られた平均スコアは、前記ＭＳＣまたは組成物で治療していないネコまたはイヌの生活の質平均スコアと比較して、少なくとも１０％、好ましくは少なくとも１５％、好ましくは少なくとも２０％、好ましくは少なくとも２５％、好ましくは少なくとも３０％、好ましくは少なくとも３５％、好ましくは少なくとも４０％、好ましくは少なくとも４５％、好ましくは少なくとも５０％、好ましくは少なくとも５５％、好ましくは少なくとも６０％、好ましくは少なくとも６５％、好ましくは少なくとも７０％、好ましくは少なくとも７５％、好ましくは少なくとも８０％、好ましくは少なくとも８５％、例えば８６％改善される。
ある実施形態では、ＣＤＫと診断された、またはＣＤＫに罹患しているネコの生活の質（ＱｏＬ）は、Bijsmans et al.らの論文で議論されている生活の質（ＱｏＬ）ツールによって測定され、こうして得られた平均スコアは、前記ＭＳＣまたは組成物で治療されていないネコの生活の質平均スコアと比較して、少なくとも１０％、好ましくは少なくとも１５％、好ましくは少なくとも２０％、好ましくは少なくとも２５％、好ましくは少なくとも３０％、好ましくは少なくとも３５％、好ましくは少なくとも４０％、好ましくは少なくとも４５％、好ましくは少なくとも５０％、好ましくは少なくとも５５％、好ましくは少なくとも６０％、好ましくは少なくとも６５％、好ましくは少なくとも７０％、好ましくは少なくとも７５％、好ましくは少なくとも８０％、好ましくは少なくとも８５％、例えば８６％改善される。
最後の態様において、本発明は、末梢血由来のＭＳＣを含む特定の医薬組成物に関する。前記組成物は、天然の末梢血由来のＭＳＣを含み、前記ＭＳＣは動物由来、好ましくは哺乳動物由来であり、前記組成物１ｍＬあたり１０５－１０７ＭＳＣの濃度で滅菌液体中に存在し、前記組成物の一投与量は約０．５～５ｍＬの体積を有し、前記ＭＳＣは間葉系マーカーＣＤ２９、ＣＤ４４およびＣＤ９０について陽性であり、ＭＨＣクラスＩＩ分子およびＣＤ４５について陰性であり、前記ＭＳＣは１０μｍ～１００μｍの懸濁液径を有する。
ある実施形態では、前記医薬組成物は静脈内投与される。好ましい実施形態において、前記ＭＳＣはウマ由来である。
ある実施形態では、前記組成物の一投与量は、約０．５～５ｍＬ、好ましくは約０．５～５ｍＬ、好ましくは約０．５～３ｍＬ、好ましくは約０．５～２ｍＬ、より好ましくは約０．５～１．５ｍＬ、最も好ましくは約１ｍＬの体積を有する。別のまたはさらなる実施形態では、前記組成物の一投与量は、最大で約５ｍＬ、好ましくは最大で約４ｍＬ、より好ましくは最大で約３ｍＬ、より好ましくは最大で約２ｍＬの体積を有し、最も好ましくは前記体積は約１ｍＬである。この量は静脈内投与に適している。
別のまたはさらに好ましい実施形態では、ＭＳＣは１５～８０μｍ、より好ましくは２０～７５μｍ、より好ましくは２５～５０μｍの懸濁液径を有する。
当業者であれば、慢性腎臓病の治療で使用するためのＭＳＣもしくは医薬組成物の態様、または慢性腎臓病と診断された、もしくは慢性腎臓病に罹患しているネコおよびイヌのクレアチニンレベルが、上述のＭＳＣもしくは組成物で治療されていないネコおよびイヌと比較して低下する、使用のためのＭＳＣまたは医薬組成物の態様の要素は、本発明の医薬組成物の態様に戻ることを理解するであろう。その結果、本発明の全ての態様は関連している。上述した態様の１つに記載されている全ての特徴および利点は、特定の態様と関連して記載されている場合であっても、これらの態様のいずれにも関連し得る。
本発明の使用のためのＭＳＣまたはＭＳＣを含む医薬組成物は、場合によっては上述のさらなる成分とともに、ＭＳＣまたは組成物の長期保存を可能にするために、好みにより凍結される。好ましくは、ＭＳＣまたは組成物は、－２０℃未満の温度のような低温かつ一定温度で凍結される。これらの条件は、ＭＳＣまたは組成物の保存を可能にし、ＭＳＣがその生物学的および形態学的特性、ならびに保存中および解凍後の高い細胞生存率を維持することを可能にする。
より好ましい実施形態では、本発明の使用のためのＭＳＣまたはＭＳＣを含む医薬組成物は、最高温度－８０℃で少なくとも６ヶ月間、任意で液体窒素中で保存することができる。ＭＳＣの凍結において重要な要素は、極低温培地、特にＤＭＳＯを含むものである。ＤＭＳＯは凍結プロセスにおいて培地中の氷結晶形成を防ぐが、高濃度では細胞に対して毒性を示すことがある。好ましい実施形態では、ＤＭＳＯの濃度は最大２０％、より好ましくは最大１５％、より好ましくは寒剤中のＤＭＳＯ濃度は１０％である。極低温培地は、低グルコースＤＭＥＭ（ダルベッコ改変イーグル培地）のような低グルコース培地をさらに含む。
その後、本発明の使用のためのＭＳＣまたは医薬組成物は、好ましくは、室温付近の温度、好ましくは２０℃～３７℃の温度、より好ましくは２５℃～３７℃の温度で、最大２０分間、好ましくは最大１０分間、より好ましくは最大５分間、投与前に解凍される。
さらに、ＭＳＣの生命力を保護するために、ＭＳＣまたは組成物は、好ましくは解凍後２分以内に投与される。
本発明は、本発明をさらに例示する以下の非限定的な例によってさらに説明されるが、これらは本発明の範囲を限定することを意図するものではなく、また限定すると解釈されるべきではない。
次に、本発明を以下の実施例を参照してさらに例示する。本発明は、与えられた実施例に何ら限定されるものではない。
実施例１：健康なネコにおける混合リンパ球反応（ＭＬＲ）
設定：
ネコにおけるｅＰＢ（馬末梢血由来）－ＭＳＣの免疫調節特性を調べるために、１０匹の健康なネコに、本発明の実施形態に従う、３×１０５ｅＰＢ－ＭＳＣをＤＭＥＭ低グルコースおよび１０％ＤＭＳＯ中に含む組成物を、１ｍＬの体積で、３つの時点（Ｔ０、Ｔ１およびＴ２）で、各注射の間に２週間をおいて静脈（ＩＶ）注射する。健康なネコ１０匹（オス４匹、メス６匹）は、品種が異なり、特にヨーロピアンショートヘア、ヨーロピアンロングヘアおよびメインクーンであり、平均年齢は６±４歳である。
ｅＰＢ－ＭＳＣの単離と培養
既述の方法に従い、ｅＰＢ－ＭＳＣを１頭のドナー馬の頸静脈から採取した静脈血から単離する。ｅＰＢ－ＭＳＣの培養に先立ち、Broeckx et al. 2012に記載されているように、血清中の複数の感染性疾患の有無を検査する。その後、優良医薬品製造基準（Good manufacturing practice, ＧＭＰ）認定製造施設において、ＧＭＰガイドラインに従って幹細胞を継代（Ｐ）５まで培養し、生存率、形態、細胞表面マーカーの存在および集団倍化時間について特性評価を行う。特定の細胞表面マーカーの存在（表面抗原分類ＣＤ２９、ＣＤ４４およびＣＤ９０）と非存在（主要組織適合抗原（ＭＨＣ）ＩＩおよびＣＤ４５）の評価は、以前に記載されたようにフローサイトメトリーを用いて行う（Spaas et al.）。しかしながら、詳細な発現および分泌パターンは、以前に国際公開第２０２０／１８２９３５号に記載されている。
細胞生存率はトリパンブルーを用いて評価する。その後、細胞をさらにＰ１０まで培養し、トリプシン処理し、１０％ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を加えたダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ）低グルコースに最終濃度３００．０００細胞／ｍＬで再懸濁する。ｅＰＢ－ＭＳＣは、さらに使用するまで－８０℃で凍結保存する。最終製品の無菌性は、好気性細菌、嫌気性細菌、真菌、エンドトキシン、マイコプラズマが存在しないことにより検査する。
研究
すべてのネコを毎日世話係が視診し、獣医師が０日目（Ｔ０）、２週目（Ｔ１）、４週目（Ｔ２）および６週目（Ｔ３）に、直腸温、心拍数、呼吸数、粘膜の様子および毛細血管再充填時間の評価からなる全身の身体検査と、血液学的および生化学的分析を行う。
さらに、改変混合リンパ球反応（ＭＬＲ）を、各個体のネコからの新鮮な末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を用いて、Ｔ０（治療投与前）とＴ３（最後の（３回目の）治療から２週間後）に実施する。このアッセイは、ｅＰＢ－ＭＳＣの免疫調節（刺激ＰＢＭＣを介した）特性を調べるものである。ＰＢＭＣを刺激するために、コンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）とコインキュベートする。
Ｔ０、Ｔ１およびＴ２において、全身の身体検査の後、ネコに３×１０５ｅＰＢ－ＭＳＣを静脈（ｉ．ｖ．）注射した。手のひらで凍結バイアル（ｃｒｙｏｖｉａｌ）を融解した後、内容物の透明度と清澄度をチェックし、２２Ｇのｉ．ｖ．カテーテルを用いて細胞懸濁液を直ちに注射した。
ＭＬＲアッセイでは、コンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）で刺激したネコＰＢＭＣとこれらの細胞を４日間コインキュベートし、ネコＰＢＭＣの増殖を評価することで、ｅＰＢ－ＭＳＣの免疫調節特性を調べる。非刺激ネコＰＢＭＣまたは刺激ネコＰＢＭＣをそれぞれ陰性対照および陽性対照として用いる。その結果、ＰＢＭＣの増殖（％）を、カルボキシフルオセインサクシニミジルエステル７－アミノアクチノマイシンＤ（ＣＦＳＥ－７ＡＡＤ）標識法を用いたフローサイトメトリーで評価する。このアッセイは、すべてのネコについて、治療の前後に実施する。
そのために、各個体のネコからＥＤＴＡ採血管でネコの静脈血を採取し、ＨＢＳＳで希釈して同量のパーコール密度勾配に重ねた。パーコール上で遠心分離した後、ＰＢＭＣを含む間相を回収した。ＰＢＭＣを３回洗浄した。次に、各ネコのＰＢＭＣを１ｍＬ当たり１×１０６細胞の濃度にした。次に、ＰＢＭＣ細胞懸濁液１ｍＬあたり１μＬのＣＦＳＥ溶液を用いて、ＰＢＭＣをＣＦＳＥで標識した。ＣＦＳＥで標識したＰＢＭＣを洗浄し、ＭＬＲ培地（２０％ＦＢＳ、１％ＡＢ／ＡＭ（抗生物質／抗マイコプラズマ薬）および１％ＢＭＥ（Ｂ－メルカプトエタノール）１００倍補充ＤＭＥＭ）に再懸濁し、最終濃度を１ｍＬあたり２×１０６ＰＢＭＣとした。次に、陰性対照試料を除くプレートの全ウェルにＣｏｎＡ溶液を加えた。最後に、指定したネコのＰＢＭＣを関連ウェルに加えた。４日間のインキュベーション後、全試料をＦＡＣＳチューブに移し、遠心分離し、フローサイトメトリー解析のために７－ＡＡＤで染色した。
結果
両方の時点（Ｔ０とＴ３）で、刺激したネコＰＢＭＣと共培養したｅＰＢ－ＭＳＣの増殖（Ｔ０：１２．６±１０％、Ｔ３：２６．２±９．８％）は、関連する陰性対照（Ｔ０：３．４±２．７％、Ｔ３：４．９±１．３％）と比較して有意に高い（それぞれｐ値＝０．０５と０．００８）。しかし、ベースライン時（７９．７±４．７％）（ｐ値＝０．００８）と治療後（８３．２±５．７％）（ｐ値＝０．００８）では、共培養の増殖は陽性対照より有意に低い。ｅＰＢ－ＭＳＣと刺激したネコＰＢＭＣの共培養では、ベースライン（１２．６±１０％）と比較して、治療後（２６．２±９．８％）ではＰＢＭＣ増殖の平均値に有意差は認められない（ｐ値＝０．０１７）（図１）。
結論
本研究の結果は、ネコＰＢＭＣに対するｅＰＢ－ＭＳＣの免疫調節特性を確認するものである。これは、異種ｅＰＢ－ＭＳＣがネコの治療で使用できることを示している。
実施例２：健康なイヌにおけるｅＰＢ－ＭＳＣによる治療前後の混合リンパ球反応（ＭＬＲ）：
設定：
イヌにおけるｅＰＢ（馬末梢血由来）－ＭＳＣの免疫調節特性を調べるために、１２匹の健康なイヌに、本発明の実施形態に従う、３×１０５ｅＰＢ－ＭＳＣをＤＭＥＭ低グルコースおよび１０％ＤＭＳＯ中に含む組成物を、１ｍＬの体積で、３つの時点（Ｔ０、Ｔ１およびＴ２）で、各注射の間に２週間をおいて静脈（ＩＶ）注射する。
ｅＰＢ－ＭＳＣの単離と培養は、上記実施例１に記載したように行う。
研究
すべてのイヌを毎日世話係が視診し、獣医師が０日目（Ｔ０）、２週目（Ｔ１）、４週目（Ｔ２）および６週目（Ｔ３）に、直腸温、心拍数、呼吸数、粘膜の様子および毛細血管再充填時間の評価からなる全身の身体検査と、血液学的および生化学的分析を行う。
さらに、改変混合リンパ球反応（ＭＬＲ）を、各個体のイヌからの新鮮な末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を用いて、Ｔ０（治療投与前）とＴ３（最後の（３回目の）治療から２週間後）に実施する。このアッセイは、ｅＰＢ－ＭＳＣの免疫調節（刺激ＰＢＭＣを介した）特性を調べるものである。ＰＢＭＣを刺激するために、コンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）とコインキュベートする。
Ｔ０、Ｔ１およびＴ２において、全身の身体検査の後、ネコに３×１０５ｅＰＢ－ＭＳＣを静脈（ｉ．ｖ．）注射した。手のひらで凍結バイアル（ｃｒｙｏｖｉａｌ）を融解した後、内容物の透明度と清澄度をチェックし、２２Ｇのｉ．ｖ．カテーテルを用いて細胞懸濁液を直ちに注射した。
ＭＬＲアッセイでは、コンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）で刺激したイヌＰＢＭＣとこれらの細胞を４日間コインキュベートし、イヌＰＢＭＣの増殖を評価することで、ｅＰＢ－ＭＳＣの免疫調節特性を調べる。非刺激イヌＰＢＭＣまたは刺激イヌＰＢＭＣをそれぞれ陰性対照および陽性対照として用いる。その結果、ＰＢＭＣの増殖（％）を、カルボキシフルオセインサクシニミジルエステル７－アミノアクチノマイシンＤ（ＣＦＳＥ－７ＡＡＤ）標識法を用いたフローサイトメトリーで評価する。このアッセイは、すべてのイヌについて、治療の前後に実施する。
そのために、各個体のイヌからＥＤＴＡ採血管でイヌの静脈血を採取し、ＨＢＳＳで希釈して同量のパーコール密度勾配に重ねた。パーコール上で遠心分離した後、ＰＢＭＣを含む間相を回収した。ＰＢＭＣを３回洗浄した。次に、各イヌのＰＢＭＣを１ｍＬ当たり１×１０６細胞の濃度にした。次に、ＰＢＭＣ細胞懸濁液１ｍＬあたり１μＬのＣＦＳＥ溶液を用いて、ＰＢＭＣをＣＦＳＥで標識した。ＣＦＳＥで標識したＰＢＭＣを洗浄し、ＭＬＲ培地（２０％ＦＢＳ、１％ＡＢ／ＡＭ（抗生物質／抗マイコプラズマ薬）および１％ＢＭＥ（Ｂ－メルカプトエタノール）１００倍補充ＤＭＥＭ）に再懸濁し、最終濃度を１ｍＬあたり２×１０６ＰＢＭＣとした。次に、陰性対照試料を除くプレートの全ウェルにＣｏｎＡ溶液を加えた。最後に、指定したイヌのＰＢＭＣを関連ウェルに加えた。４日間のインキュベーション後、全試料をＦＡＣＳチューブに移し、遠心分離し、フローサイトメトリー解析のために７－ＡＡＤで染色した。
結果
両方の時点（Ｔ０とＴ３）で、刺激したイヌＰＢＭＣと共培養したｅＰＢ－ＭＳＣの増殖は、関連する陰性対照と比較して有意に高い。しかし、ベースライン時と治療後では、共培養の増殖は陽性対照より有意に低い。ｅＰＢ－ＭＳＣと刺激したイヌＰＢＭＣの共培養では、ベースラインと比較して、治療後ではＰＢＭＣ増殖の平均値に有意差は認められない。
結論
本研究の結果は、イヌＰＢＭＣに対するｅＰＢ－ＭＳＣの免疫調節特性を確認するものである。これは、異種ｅＰＢ－ＭＳＣがイヌの治療で使用できることを示している。
実施例３：ネコの慢性腎臓病におけるｅＰＢ－ＭＳＣの安全性と有効性
設定：
慢性腎臓病（ＣＫＤ）に罹患している１３歳のネコに、ＤＭＥＭ低グリコースおよび１０％ＤＭＳＯ中にある本発明の３×１０５ｅＰＢ－ＭＳＣを１ｍＬ静脈（ＩＶ）注射する。ネコは毎日世話係が視診し、獣医師が０日目、７日目、１４日目、２１日目および３ヶ月目に全身の身体検査を行う。獣医師は研究開始４ヵ月後にネコの世話係に電話で連絡し、動物のフォローアップを行う。０日目に、血中クレアチニン濃度に基づいてＩＲＩＳ（国際獣医腎臓病研究グループ）ステージ（表１参照）を決定する（「リスクあり」から最終ステージであるステージ４まで）。

結果
０日目にネコのＩＲＩＳステージが２と判定された。研究開始３ヵ月後のネコに、血中クレアチニン濃度の減少が見られ、ＩＲＩＳステージは１となった。最初の注射から４ヵ月後、ネコは研究前と比較して生活の質が改善し、体重が１０％増加した。
結論
この臨床例研究は、ｅＰＢ－ＭＳＣをネコに静脈注射したところ、生活の質スコアと体重が有意に改善したことを示しており、ｅＰＢ－ＭＳＣがネコの慢性腎臓病の治療に対し有望な解決策であることを示している。
実施例４：イヌの慢性腎臓病におけるｅＰＢ－ＭＳＣの安全性と有効性
設定：
慢性腎臓病（ＣＫＤ）に罹患しているイヌに、ＤＭＥＭ低グリコースおよび１０％ＤＭＳＯ中にある本発明の３×１０５ｅＰＢ－ＭＳＣを１ｍＬ静脈（ＩＶ）注射する。イヌは毎日世話係が視診し、獣医師が０日目、７日目、１４日目、２１日目および３ヶ月目に全身の身体検査を行う。獣医師は研究開始４ヵ月後にイヌの世話係に電話で連絡し、動物のフォローアップを行う。０日目に、血中クレアチニン濃度に基づいてＩＲＩＳステージを決定する（「リスクあり」から最終ステージであるステージ４まで）。
結果
０日目にイヌのＩＲＩＳステージが２と判定された。研究開始３ヵ月後のイヌに、血中クレアチニン濃度の減少が見られ、ＩＲＩＳステージは１となった。最初の注射から４ヵ月後、イヌは研究前と比較して生活の質が改善し、体重が増加した。
結論
この臨床例研究は、ｅＰＢ－ＭＳＣをイヌに静脈注射したところ、生活の質スコアと体重が有意に改善したことを示しており、ｅＰＢ－ＭＳＣがイヌの慢性腎臓病の治療に対し有望な解決策であることを示している。
実施例５：健康なネコにおけるｅＰＢ－ＭＳＣの生体内分布
設定：
これは、ウマ末梢血由来間葉系幹細胞（ｅＰＢ－ＭＳＣ）を健康なネコに静脈注射した後の生体内分布を評価するパイロット試験である。３匹のネコ（少なくとも１０ヶ月齢、オス２匹とメス１匹）に、９９ｍＴｃ標識ｅＰＢ－ＭＳＣ（ＤＭＥＭ低グルコース培地中）（この例ではさらに動物用治験薬（ＩＶＰ）と呼ぶ）と、対照品（ＣＰ、ＤＭＥＭ低グルコース培地）を注射する。３匹の健康なネコに、ＣＰ（ＤＭＥＭに溶解した新鮮な９９ｍＴｃ、Ｔ１）と９９ｍＴｃ標識ｅＰＢ－ＭＳＣ（Ｔ３）の両方を静脈注射する（Ｔ１：０日目、Ｔ３：１４日目）。ＣＰとｅＰＢ－ＭＳＣの分布は、２ヘッドガンマカメラを用いて全身を通して主観的に評価する。最初の撮影開始は、放射性化合物の注射後１時間以内である。次に、プラセボ対照と標識ｅＰＢ－ＭＳＣ投与の６時間後と２４時間後に全身スキャンを１回ずつ行う。
結果
３匹すべてのネコをＩＶＰ（＝ｅＰＢ－ＭＳＣ）を静脈注射して治療し、有害事象をコントロールする。ＩＶＰ注射後の動物に重篤な有害事象はなく、薬物有害反応の疑いもなく、異常な臨床徴候も観察されない。
ＣＰを静脈注射すると、心臓、肺、胃、膀胱、甲状腺および唾液腺に遊離９９ｍＴｃが蓄積する。あるネコでは肝臓での取り込み増加が観察され、別のネコでは腸での放射性蓄積も測定された。最も高い取り込みが見られたのは胃であった。
ＩＶＰ（ｅＰＢ－ＭＳＣ）を静脈注射すると、肺、肝臓、腎臓および膀胱で放射性医薬品の取り込みが増加する（図２、矢印は腎臓の位置を示す）。
結論
ＩＶ注射後のｅＰＢ－ＭＳＣの生体内分布は、主に肺で観察され、肝臓と腎臓にも存在する。これらの結果は、静脈注射後のｅＰＢ－ＭＳＣのネコの腎臓への自然なホーミング挙動に対応するものであり、ネコの慢性腎臓病の治療におけるその使用をさらに支持するものである。
実施例６：健康なイヌにおけるｅＰＢ－ＭＳＣの生体内分布
設定：
これは、ウマ末梢血由来間葉系幹細胞（ｅＰＢ－ＭＳＣ）を健康なイヌに静脈注射した後の生体内分布を評価するパイロット試験である。４匹のイヌ（少なくとも１０ヶ月齢、オス２匹とメス２匹）に、９９ｍＴｃ標識ｅＰＢ－ＭＳＣ（ＤＭＥＭ低グルコース培地および１０％ＤＭＳＯ中）（この例ではさらに動物用治験薬（ＩＶＰ）と呼ぶ）と、対照品（ＣＰ、ＤＭＥＭ低グルコース培地および１０％ＤＭＳＯ）を注射する。４匹の健康なイヌに、ＣＰ（ＤＭＥＭに溶解した新鮮な９９ｍＴｃ、Ｔ１）と９９ｍＴｃ標識ｅＰＢ－ＭＳＣ（Ｔ２）の両方を静脈注射する（Ｔ１：０日目、Ｔ２：７日目）。ＣＰとｅＰＢ－ＭＳＣの分布は、２ヘッドガンマカメラを用いて全身を通して主観的に評価する。最初の撮影開始は、放射性化合物の注射後１時間以内である。次に、プラセボ対照と標識ｅＰＢ－ＭＳＣ投与の１０分後、２０分後、３０分後、４０分後、５０分後、６０分後、３ｈ、４ｈ、６ｈ、８ｈ、１２ｈおよび２４ｈ後に全身スキャンを行う。標識ｅＰＢ－ＭＳＣ投与３６時間後に追加スキャンを行う。
結果
４匹すべてのイヌをＩＶＰ（＝ｅＰＢ－ＭＳＣ）を静脈注射して治療し、有害事象を評価する。ＩＶＰまたはＣＰ注射後の動物に重篤な有害事象はなく、薬物有害反応の疑いもなく、異常な臨床徴候も観察されない。ＩＶＰ（ｅＰＢ－ＭＳＣ）の静脈注射により、肝臓における放射性医薬品の取り込みが優位に増加する。さらに、心臓、肺および膀胱でも放射性医薬品の取り込み増加が観察され、腎臓と脾臓ではわずかながら放射性医薬品の取り込み増加が観察される。
ＣＰを静脈注射すると、心臓、肺、肝臓、胃、膀胱、甲状腺および唾液腺に遊離９９ｍＴｃが蓄積する。
結論
ＩＶ注射後のｅＰＢ－ＭＳＣの生体内分布は、主に肺で観察され、心臓、肺、すい臓と腎臓にも存在する。これらの結果は、静脈注射後のｅＰＢ－ＭＳＣのイヌの腎臓への自然なホーミング挙動に対応するものであり、イヌの慢性腎臓病の治療におけるその使用をさらに支持するものである。
実施例７：ＣＫＤに罹患しているネコにおけるｅＰＢ－ＭＳＣの有効性と安全性の評価
設定：
ウマ末梢血由来間葉系幹細胞（ｅＰＢ－ＭＳＣ）の安全性と有効性を、慢性腎臓病ステージ２または３に罹患しているネコへの静脈注射後に評価した。４匹のネコをｅＰＢ－ＭＳＣ（１０％ＤＭＳＯ添加ＤＭＥＭ低グルコース培地中）（この例ではさらに動物用治験薬（ＩＶＰ）と呼ぶ）で治療し、２匹のネコをプラセボ（Ｖｅｔｉｖｅｘ９ｍｇ／ｍＬ）で治療した。治療の種類（ｅＰＢ－ＭＳＣ対Ｖｅｔｉｖｅｘ）に関係なく、すべてのネコに静脈注射を行った。１２週間のフォローアップ期間中に、血液学的および血清生化学的分析、尿分析、一般臨床評価、生活の質評価ならびに注射部位の観察を行った。生活の質は、Bijsmans et al.により報告された検証された質問票に由来する生活の質質問票に基づいて評価した(Bijsmans ES, Jepson RE, Syme HM, Elliott J, Niessen SJ. Psychometric Validation of a General Health Quality of Life Tool for Cats Used to Compare Healthy Cats and Cats with Chronic Kidney Disease. J Vet Intern Med. 2016 Jan-Feb;30(1):183-91. doi: 10.1111/jvim.13656. Epub 2015 Nov 14. PMID: 26567089; PMCID: PMC4913638.)。ＣＫＤはこのクレアチニン濃度に基づいてステージ分類されるため、考慮する必要がある重要なパラメータは血中クレアチニン濃度である（血中クレアチニン濃度が高いほどＣＫＤのステージが高い）。
結果
４匹のネコをＩＶＰ（＝ｅＰＢ－ＭＳＣ）を静脈注射して治療し、有害事象を評価した。ＩＶＰまたはプラセボ注射後、ＩＶＰまたはプラセボに関連する重篤な有害事象はなく、薬物有害反応の疑いもなく、異常な臨床症状も認められなかった。ＩＶＰ（＝ｅＰＢ－ＭＳＣ）のＩＶ注射は生活の質の向上につながった（表３）。さらに、プラセボ（＝Ｖｅｔｉｖｅｘ）で治療したネコではクレアチニン値の上昇が認められたが、ＩＶＰ（＝ｅＰＢ－ＭＳＣ）で治療したネコではクレアチニン濃度のわずかな低下が認められ、経過が良好であることが示された（表２）。ＩＶＰ（＝ｅＰＢ－ＭＳＣ）で治療したネコの平均体重は安定していた（表４）。

結論
ｅＰＢ－ＭＳＣで治療したＣＫＤステージ２または３のネコは、動物の生活の質の改善を示した。さらに、これらの治療を受けたネコのクレアチニン値は、プラセボ治療を受けたネコとは対照的にわずかな減少を示した。これらの結果は、ＣＫＤステージ２または３に罹患しているネコにおけるｅＰＢ－ＭＳＣの静脈注射後の初期有効性データを示しており、慢性腎臓病の治療におけるその使用をさらに支持するものである。
本発明は、実施例に記載され、および／または図に示された実施形態に決して限定されない。それどころか、本発明による方法は、本発明の範囲から逸脱することなく、多くの異なる方法で実現され得る。

Claims (19)

  1. ネコおよびイヌの慢性腎臓病の治療で使用するための間葉系幹細胞（ＭＳＣ）または治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  2. 前記ＭＳＣが静脈内投与される、請求項１に記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  3. 前記ＭＳＣが天然である、請求項１～２のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  4. 前記ＭＳＣが血液、好ましくは末梢血に由来する、請求項１～３のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  5. 前記ＭＳＣが同種ＭＳＣまたは異種ＭＳＣであり、好ましくは異種ＭＳＣである、請求項１～４のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  6. 前記ＭＳＣが動物由来、好ましくは哺乳動物由来、より好ましくはウマ由来である、請求項１～５のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  7. ネコおよびイヌ１匹あたり１０５－１０７ＭＳＣの用量が投与される、請求項１～６のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  8. 単一用量が投与される、請求項１～７のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  9. 複数用量が投与され、各用量は異なる時点で投与される、請求項１～８のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  10. 前記組成物の一投与量は最大で約５ｍＬの体積を有し、好ましくは前記体積は約１ｍＬである、請求項１～９のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  11. 前記ＭＳＣが、ＭＨＣクラスＩＩ分子および／またはＣＤ４５について陰性である、請求項１～１０のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  12. 前記ＭＳＣが、間葉系マーカーＣＤ２９、ＣＤ４４およびＣＤ９０について陽性であり、ＭＨＣクラスＩＩ分子およびＣＤ４５について陰性である、請求項１～１１のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  13. 前記ＭＳＣが炎症環境または状態に存在する場合、免疫調節性プロスタグランジンＥ２サイトカインを分泌する、請求項１～１２のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  14. 前記ＭＳＣが炎症性環境または状態に存在する場合、同じ特徴を有するが前記炎症性環境または状態にさらされていない細胞と比較して、ＩＬ－６、ＩＬ－１０、ＴＧＦ－β、ＮＯ、もしくはそれらの組み合わせから選択される分子の少なくとも１つの分泌が増加し；および／またはＩＬ－１の分泌が減少する、請求項１～１３のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  15. 前記ＭＳＣがＰＢＭＣの存在下にある場合、ＰｇＥ２、ＩＬ－６、ＩＬ－１０、ＮＯ、もしくはそれらの組み合わせの発現を刺激し、および／またはＰＢＭＣの存在下にある場合、ＴＮＦ－α、ＩＦＮ－γ、ＩＬ－１、ＴＧＦ－β、ＩＬ－１３、もしくはそれらの組み合わせの分泌を抑制する、請求項１～１４のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  16. 前記ＭＳＣが無菌液体中に存在する、請求項１～１５のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  17. 慢性腎臓病と診断された、または慢性腎臓病に罹患しているネコおよびイヌのクレアチニンレベルが、前記ＭＳＣまたは組成物で治療されていないネコまたはイヌと比較して低下する、請求項１～１６のいずれかに記載の使用のためのＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  18. 請求項１８に記載のＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物であって、前記ＭＳＣまたは医薬組成物が静脈内投与される、ＭＳＣまたは治療有効量のＭＳＣを含む医薬組成物。
  19. 末梢血由来ＭＳＣを含む医薬組成物であって、前記ＭＳＣは動物由来、好ましくは哺乳動物由来であり、前記組成物１ｍＬ当たり１０５－１０７ＭＳＣの濃度で滅菌液体中に存在し、前記組成物は約０．５～５ｍＬの体積を有し、前記ＭＳＣは間葉系マーカーＣＤ２９、ＣＤ４４およびＣＤ９０について陽性であり、ＭＨＣクラスＩＩ分子およびＣＤ４５について陰性であり、前記ＭＳＣは１０μｍ～１００μｍの懸濁液径を有する、医薬組成物。
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