JP2024510907A - 関心対象のタンパク質を精製するための方法 - Google Patents

Abstract

グラム陰性菌の培養物から関心対象の生体分子（タンパク質、ＤＮＡ）を精製するための方法であって、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを使用して内毒素を除去すること、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを使用して内毒素を除去すること、及び細菌性夾雑物の特異的浸出のためのクロマトグラフィーにおいて８．０～９．０のｐＨ及び２．５Ｍ～３Ｍの塩の濃度を有する溶液を使用することを含む、方法。

Description

本発明は、グラム陰性菌を発酵させることによって得られる関心対象のタンパク質を精製すること、特にフェノール系溶媒を使用せずに内毒素を精製することに関する。

グラム陰性菌からタンパク質を発酵させることは、現在、容易さ及びコストの観点から使用されている。

しかし、これらの細菌は、「内毒素」としても知られる、除去が困難であるリポ多糖型成分を合成する。

これらの成分が、患者に投与されることが意図されるタンパク質に付随される場合、特に、例えば治療的ワクチン接種において大量が投与されなければならない場合、より大量の内毒素を患者に同時に投与することを意味するので、これらの成分は特に問題である。

グラム陰性菌によって合成された関心対象のタンパク質が精製されるのを可能にする、Ｔｒｉｔｏｎ（登録商標）Ｘ－１００などのフェノール系界面活性剤を使用するクロマトグラフィー及び洗浄の様々な方法が開発されている。

しかし、これらの方法は、内毒素を十分に除去しないか、又は、環境問題を意味するフェノール系界面活性剤を使用することを伴うか、あるいは、あまり効果的ではないＭｕｓｔａｎｇ（登録商標）もしくはＳａｒｔｏｂｉｎｄ（登録商標）などの膜を使用して特定のクロマトグラフィーが追加されることを伴うか、もしくは必要とする。

“Ｄｅｔｅｒｇｅｎｔｓ ｆｏｒ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｉｎ ａｎｉｏｎ ｅｘｃｈａｎｇｅ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ”Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｄｉｓｃｌｏｓｕｒｅ，２０２１，ＩＳＳＮ ０４７４－４３５３は、内毒素を含有するＤＮＡを精製するための、還元されたＴｒｉｔｏｎ Ｘ－１００を含む種々の界面活性剤の特性を静的モードで比較する。処理後、０．４内毒素単位（ＥＵ）／μｇのプラスミドが残存し、これはＴｒｉｔｏｎ Ｘ－１００で洗浄された場合の０．３０未満と比較して高い値であり、他の界面活性剤は、より良好な精製を可能にする。

米国特許出願公開第２００３／０４１３４６号明細書は、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１１４による分配を伴う酵素Ｐ４５０ｏｘを精製するための方法における還元型Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００の使用を記載している。

米国特許出願公開第２００３／０４１３４６号

"Ｄｅｔｅｒｇｅｎｔｓ ｆｏｒ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｉｎ ａｎｉｏｎ ｅｘｃｈａｎｇｅ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ"Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｄｉｓｃｌｏｓｕｒｅ，２０２１，ＩＳＳＮ ０４７４－４３５３

本発明の第１の態様は、細菌培養物（例えば、グラム陰性、場合によりグラム陽性）から内毒素を含有する関心対象の生体分子を精製するための方法であって、
溶液中で関心対象の生体分子のコンディショニング（ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｉｎｇ）を行う工程と、
クロマトグラフィー工程であって、
（ｉ）関心対象の生体分子が支持体に結合され、
（ｉｉ）支持体に結合された関心対象の生体分子がポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含む溶液で洗浄され、次いで、支持体に結合された関心対象の生体分子がポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含まない溶液で洗浄され、及び
（ｉｉｉ）支持体に結合された関心対象の生体分子が溶出される、
クロマトグラフィー工程と、
を含む、方法である。好ましくは、関心対象の生体分子は、ＤＮＡ、ＲＮＡ又はタンパク質である。

好ましくは、０．０１％～１％（ｗ：ｖ）、好ましくは０．０５～０．５％（ｗ：ｖ）、好ましくは０．１～０．２％（ｗ：ｖ）、例えば約０．１５％（ｗ：ｖ）のポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルが、この分子を含む洗浄工程中に使用される。

有利には、生体分子を結合するための支持体はクロマトグラフィーであり、好ましくは、このクロマトグラフィーは、搭載工程、洗浄工程及び溶出工程を含む。

好ましくは、この方法では、クロマトグラフィーは陰イオン交換樹脂を使用する。

好ましくは、内毒素は、０．０１％～１％（ｗ：ｖ）、好ましくは０．０５～０．５％（ｗ：ｖ）、好ましくは０．１～０．２％（ｗ：ｖ）、例えば約０．１５％（ｗ：ｖ）のポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルの濃度を使用して除去される。

好ましくは、クロマトグラフィーの内毒素は、カラム体積の２倍～２０倍の体積、好ましくはカラム体積（ＣＶ）の約５倍の体積で除去される。

したがって、典型的には、少なくとも２カラム体積（ＣＶ）、好ましくは少なくとも３ＣＶ、好ましくは２～１０ＣＶ又は３～７ＣＶ、好ましくは約５ＣＶの、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含む溶液がクロマトグラフィーに適用され、続いて、少なくとも２カラム体積（ＣＶ）、好ましくは少なくとも３ＣＶ、好ましくは２～１０ＣＶ又は３～７ＣＶ、好ましくは約５ＣＶの、界面活性剤（ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテル）を含まない洗浄溶液が適用される。

これにより、内毒素含有量（ＥＵ）を、この工程の前のＥＵ量に対して、２０％、好ましくは１０％以下、より好ましくは５％以下、又はさらにより好ましくは２％以下、好ましくは１％以下に低下させることができる。

実際には、関心対象の生体分子がプラスミドである場合、関心対象の生体分子はカラム、例えば陰イオン交換樹脂上に搭載され、次いで、プラスミドがカラムに結合されるように、界面活性剤を含まず、適切なイオン強度を有する溶液中で平衡化され、例えば、イオン強度は、有利には、１０～６０ｍＳ／ｃｍである（塩は、有利には、実質的にＮａＣｌであり、塩は、関心対象の生体分子の結合を確実にするが、可能な限り夾雑物の結合を少なくするように添加され、洗浄及び溶出を単純化しながら良好な結合能力を提供するので、２０、３０、４０、さらには５０ｍＳ／ｃｍの最小値が好ましく、特に４０～６０ｍＳ／ｃｍの値の範囲（さらには５０～６０ｍＳ／ｃｍ）が特に好ましい）。

典型的には、２～１０ＣＶ、例えば３～７ＣＶのこのような溶液がカラムに適用される。次に、界面活性剤なしで洗浄する前に、界面活性剤（ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシル）が濃縮された同じ溶液がカラムに適用され（上記のように、典型的には２～１０ＣＶ、例えば３～７ＣＶ）、次いで、例えば、さらにはるかに濃縮された生理食塩水溶液、例えば１ｍｏｌ／リットルのＮａＣｌを適用することによって溶出する。

有利には、溶出は、５０～６０ｍＳ／ｃｍの伝導度を有するこの（又はある）溶液が１ｍｏｌ／リットルのＮａＣｌを含む溶液によって徐々に置き換えられる勾配を適用することによって起こる。これにより、プラスミドの再現性のある溶出及び迅速な放出を確保する。このような勾配は、線形又は非線形でよい。

本発明の関連する態様は、関心対象のタンパク質を含む細菌培養物（例えば、グラム陰性、場合によりグラム陽性）から関心対象のタンパク質を精製するための方法であって、
（ａ）溶液中で関心対象のタンパク質のコンディショニングを行う工程と、
（ｂ）保持されるべき第１の画分中の関心対象のタンパク質と、除去されるべき１つ以上の画分中の夾雑物とを回収するための一連の精製工程であって、夾雑物は内毒素を含む、一連の精製工程と、
を含み、
内毒素を除去することは、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含む溶液を添加する工程を含む、方法である。

好ましくは、この方法の一連の精製工程は、陰イオン交換樹脂を使用する捕捉クロマトグラフィー（ｃａｐｔｕｒｅ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）及び／又は疎水性相互作用クロマトグラフィーを含み、有利には陰イオン交換樹脂を使用する第１の捕捉クロマトグラフィーと、次いで第２の疎水性相互作用クロマトグラフィーとが行われ、これらの第１のクロマトグラフィー及び第２のクロマトグラフィーは、それぞれ搭載工程、洗浄工程及び溶出工程を含む。

有利には、内毒素は、第１のクロマトグラフィー及び／又は第２のクロマトグラフィーの洗浄工程中に除去され、各クロマトグラフィーは、有利には、搭載工程、洗浄工程及び溶出工程を含む。

好ましくは、内毒素は、０．０１％～１％（ｗ：ｖ）、好ましくは０．０５～０．５％（ｗ：ｖ）、好ましくは０．１～０．２％（ｗ：ｖ）、例えば約０．１５％（ｗ：ｖ）のポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルの濃度を使用して除去される。

好ましくは、第１のクロマトグラフィー及び／又は第２のクロマトグラフィーの内毒素は、カラム体積の１～１０倍の体積、好ましくはカラム体積の約５倍の体積で除去される。

この方法は、関心対象のタンパク質が配列番号１である場合、及び／又は、関心対象のタンパク質がグラム陰性菌の細胞膜周辺腔内に分泌される場合に特に有利である。

好ましくは、この方法では、陰イオン交換樹脂を使用する捕捉クロマトグラフィーは強交換体を有し、及び／又は、疎水性相互作用クロマトグラフィーはフェニル型のものである。

好ましくは、疎水性支持体を使用するクロマトグラフィーの搭載及び／又は洗浄工程は、８～９のｐＨで、及び／又は２～３Ｍの塩の濃度の存在下で行われ、及び／又は０．１ｇ／Ｌ～５ｇ／Ｌ、好ましくは０．３～２ｇ／Ｌの搭載比を有する。

好ましくは、疎水性相互作用クロマトグラフィーの溶出工程は、１０５ｍＳ／ｃｍ未満、好ましくは８０ｍＳ／ｃｍ未満及び／又は４０ｍＳ／ｃｍ超の電気伝導度を有する溶液を用いて行われる。

好ましくは、陰イオン交換クロマトグラフィーの搭載工程は、２．５～３．５ｇ／Ｌ（タンパク質重量：体積）の搭載比で行われ、並びに／又は前記溶出工程は、前記搭載及び／又は洗浄工程中に使用される電気伝導度より大きい、あるいは、２倍の電気伝導度を有する溶液を使用して行われる。

好ましくは、この精製は、Ｍｕｓｔａｎｇ（登録商標）Ｑ、Ｍｕｓｔａｎｇ（登録商標）Ｅ又はＳａｒｔｏｂｉｎｄ（登録商標）Ｑ又はＳａｒｔｏｂｉｎｄ（登録商標）ＳＴＩＣ陰イオン交換膜を通過させる工程及び／又は滅菌ろ過工程をさらに含む。

本発明の別の関連する態様は、好ましくは、ＤＮＡ（プラスミド）、（ｍ）ＲＮＡ及びペプチド、好ましくはペプチド、から選択される関心対象の生体分子をさらに含む組成物中の内毒素を除去するための、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルの使用である。

これは、関心対象の生体分子を含むこの組成物の薬学的使用、好ましくは、治療的ワクチン接種などのワクチン接種に有利である。

本発明の別の関連する態様は、フェニル基を使用する疎水性支持体を使用するクロマトグラフィーカラムからの細菌性夾雑物の特異的浸出のための、８．０～９．０のｐＨ及び２．５Ｍ～３Ｍの塩の濃度を有する洗浄溶液の使用である。

好ましくは、この洗浄溶液は、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルをさらに含む。

本発明の別の関連する態様は、陰イオン交換クロマトグラフィー、好ましくは強陰イオン交換クロマトグラフィーを使用して細菌性夾雑物ＬｉｖＫから関心対象の生体分子を分離するための、７．５～８．５、好ましくは８．０±０．２のｐＨと、１２．０ｍＳ／ｃｍ以下、好ましくは１０ｍＳ／ｃｍ未満、及び／又は７ｍＳ／ｃｍ超の伝導度とを有する溶液の使用である。

多数の関心対象の生体分子、例えばペプチドが、グラム陰性菌を発酵させることによって産生され、産生において、例えば、関心対象のペプチドは細胞膜周辺腔への標的化配列に接合され、成熟ペプチドの回収を簡略化する。微生物における発酵に対するこのアプローチ又は他のアプローチに伴う固有の問題の１つは、内毒素（ＥＵ）の存在であり、これは、少なくとも許容され得る閾値まで、内毒素が除去されなければならないことを意味する。「Ｔｒｉｔｏｎ（登録商標）」のようなフェノール系界面活性剤を使用することは、ＥＵの含有量を低下させる。しかし、このアプローチは環境問題を引き起こす。本発明者らは、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルが、Ｔｒｉｔｏｎ（登録商標）Ｘ－１００のフェノール（芳香族）基とは異なり、不飽和中心構造を基礎としているが、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルは有利に使用され得るのに対して、他の非フェノール系界面活性剤はＥＵを効果的に除去しないか、又は下流の問題を引き起こすことを特定した。

したがって、本発明は、グラム陰性菌培養物から関心対象の生体分子（タンパク質）を精製するための方法に関する。この方法は、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルで洗浄することによってＥＵを除去することを含む。１つの特に有利なタンパク質は、ＣＲＭ １９７（配列番号１）である。このタンパク質は、好ましくは、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）の細胞膜周辺腔に分泌される。しかし、本発明は、（例えば、細胞膜周辺腔に標的化されない、細胞質の、分泌型の、他のグラム陰性宿主細胞によって、さらには同じく内毒素を産生する他の微生物において発酵された）他の手段によって得られた配列番号１に、又は他のタンパク質、さらには患者に注射され得るような細菌中で産生された他の生体分子、例えば、ＤＮＡ（例えば、プラスミド）又はＲＮＡ（例えば、メッセンジャーＲＮＡ）に適用する。

関心対象のタンパク質は、細胞膜周辺腔内で発現される場合、有利には浸透圧ショックを引き起こすことによって回収されてもよく、浸透圧ショックは、周辺質内容物を放出させ、したがって、なお細胞内に捕捉されている大量の夾雑細菌産物が容易に分離されることを可能にする。

好ましくは、本方法は、関心対象のタンパク質（例えば、配列番号１）を緩衝溶液中で回収する予備工程を含む。

有利には、この精製方法は、一連のクロマトグラフィー工程、好ましくは陰イオン交換樹脂を使用する捕捉クロマトグラフィー及び／又は疎水性支持体を使用するクロマトグラフィー（疎水性相互作用クロマトグラフィー）を含む。

好ましくは、各クロマトグラフィー工程は、搭載工程、洗浄工程及び溶出工程を含む（それぞれが含む）。

これにより、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルの存在下での洗浄と、一方又は両方のクロマトグラフィー洗浄工程、すなわち、陰イオン交換樹脂を使用する捕捉クロマトグラフィー及び／又は疎水性支持体を使用するクロマトグラフィー（疎水性相互作用クロマトグラフィー）、とを、組み合わせることが可能になる。

したがって、関心対象のタンパク質がクロマトグラフィーカラムに搭載される場合、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含む溶液による洗浄工程は、特定の工程を追加することなく、ＥＵの大部分、さらにはＥＵのほとんどすべてが浸出されることを可能にする。

好ましくは、一連のクロマトグラフィー工程は、陰イオン交換樹脂を使用する第１の捕捉クロマトグラフィー、次いで疎水性支持体を使用する第２のクロマトグラフィー（疎水性相互作用クロマトグラフィー）の順に行われる。

有利には、（クロマトグラフィー工程の一方又は両方の洗浄工程中に使用される）ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテル含有量は、０．０１％～０．７５％（ｗ：ｖ）、好ましくは０．０５～０．３％（ｗ：ｖ）、好ましくは０．１～０．２％（ｗ：ｖ）、例えば約０．１５％（ｗ：ｖ）である。

好ましくは、方法全体を通じて、特に洗浄及び／又はＥＵ除去工程中に、フェノール系溶媒は使用されない。

好ましくは、内毒素のこの除去は、カラム体積（ＣＶ）の１～２０倍、好ましくは２～１０ＣＶ、又は３～７ＣＶ、好ましくは約５ＣＶの（ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含む）洗浄溶液の体積を用いて行われる。

有利には、この内毒素除去工程の後には、同じ溶液であるが、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含まない溶液を用いる洗浄工程が続く。体積は、１～１０ＣＶ、例えば約５ＣＶが好ましい。

本発明者らは、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含む溶液の適用、次いで、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含まない溶液の適用を組み合わせて、関心対象のタンパク質（配列番号１）がこの界面活性剤を含まない溶液中で溶出されるように、（ｉ）コスト及び（ｉｉ）洗浄時間の観点での帰結にもかかわらず、このような高い値を選択した。

ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルは２８０ｎｍでＴｒｉｔｏｎ Ｘ１００の比吸光度特性を有さないので、界面活性剤を含まない溶液で必要とされる洗浄体積の計算は、事前試験において行われる。事前試験では、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルがＴｒｉｔｏｎ Ｘ－１００によって置き換えられ、すべての他のパラメータは一定である。２８０ｎｍでの吸光度をモニターすることは、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００の脱着を示し、これは、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルの脱着のために必要とされる体積の指標を与える。事前試験は繰り返されることは意図されていないので、大きな経済的問題を表すものではない。

これにより、ＥＵ含有量を、この工程前のＥＵ量に対して２０％、好ましくは１０％以下、より好ましくは５％以下、又はさらにより好ましくは２％以下、好ましくは１％以下に低下させることができる。

この方法は、関心対象のタンパク質が、（関心対象のタンパク質の重量：総タンパク質重量）６５％以上、好ましくは７０％以上、好ましくは７３％以上、好ましくは７５％以上の純度で得られることも可能にする。

この方法は、（ゲノムＤＮＡ重量：タンパク質重量、すなわち精製された関心対象のタンパク質）５ｎｇ／ｍｇ以下、好ましくは２ｎｇ／ｍｇ以下、好ましくは１ｎｇ／ｍｇ以下のゲノムＤＮＡの残存量を有する組成物中で、関心対象のタンパク質が得られることも可能にする。

本方法では、樹脂上に担持されたＱ（第四級アミン）及びＤＥＡＥ（ジエチルアミノエチル）官能基などのいくつかの種類の陰イオン交換樹脂が使用される。例えば、特に精製されるタンパク質が配列番号１のものである場合、（ポジティブモードでの）強「Ｑ」交換樹脂の使用に成功した。

陰イオン交換樹脂は、２０～１５０μｍ、好ましくは４０～１２０μｍ、好ましくは６０～１１０μｍのビーズサイズを有し得る。樹脂の性質は、精製されるタンパク質に従って選択され、適合される。

陰イオン交換樹脂を使用する捕捉クロマトグラフィーの搭載工程は、５．０～１１．０、好ましくは７．０～１０．０、好ましくは８．０～９．０のｐＨで行われ得る。精製されるタンパク質が配列番号１のタンパク質である場合、搭載工程は、好ましくは７．０～１０、例えば８．０～９．０のｐＨで行われる。

搭載工程のために使用される溶液は、好ましくは２．０～１５．０ｍＳ（ミリシーメンス）／ｃｍ、好ましくは５．０～１０．０ｍＳ／ｃｍの電気伝導度を有する。溶液の電気伝導度は容易に測定され、必要であれば、塩化ナトリウムなどの塩を添加することによって、あるいは、脱塩水で希釈することによって、調整される。

好ましくは、搭載工程は、１～８ｇ／Ｌ、好ましくは２～５ｇ／Ｌ、好ましくは３～４ｇ／Ｌの搭載比を含む組成物を使用して行われる。３．３ｇ／Ｌの搭載量で良好な結果が得られ、特に、このような搭載量は、夾雑タンパク質ＬｉｖＫの保持を制限することを可能にした。

洗浄工程（上記参照）は、好ましくは、搭載工程の電気伝導度と同じ電気伝導度及び同じｐＨを有する溶液を用いて行われる。したがって、電気伝導度は、好ましくは、２．０～１５．０ｍＳ（ミリシーメンス）／ｃｍ、好ましくは５．０～１０．０ｍＳ／ｃｍである。

溶出工程は、好ましくは、搭載工程の電気伝導度の２倍よりも大きく、及び／又は、９．０～２０．０ｍＳ／ｃｍ、好ましくは１２．０～１７．０ｍＳ／ｃｍの電気伝導度を有する溶液を用いて行われる。

疎水性支持体を使用するクロマトグラフィー（疎水性相互作用クロマトグラフィー）は、フェニル、ブチル及びヘキシルから選択される疎水性基で誘導体化された異なる樹脂を使用して実施される。フェニル６５０Ｍ樹脂を使用して良好な結果が得られた。搭載のためのｐＨは、好ましくは５．０～１１．０、好ましくは７．０～１０．０、好ましくは８．０～９．０である。配列番号１の場合、樹脂は、好ましくは、６５０Ｍフェニル樹脂などのフェニル樹脂であり、ｐＨは好ましくは７～１０、好ましくは８．０～９．０である。

好ましくは、疎水性樹脂（疎水性相互作用クロマトグラフィー）を使用する搭載工程は、０．５～６Ｍ、好ましくは２～３Ｍの塩（例えば、塩化ナトリウム）の濃度を使用して行われる。特に、精製されるタンパク質が配列番号１であり、疎水性樹脂がフェニル型のもの（６５０Ｍフェニル）である場合、２．０～３．０Ｍなどの高い塩濃度で良好な結果が得られた。

好ましくは、疎水性樹脂の搭載比は、０．１ｇ／Ｌ～５ｇ／Ｌ、好ましくは０．３～２ｇ／Ｌである。

精製されるタンパク質が配列番号１、及び／又は、細胞膜周辺腔で発現されるタンパク質である場合、疎水性クロマトグラフィーの洗浄工程は、有利には、高いｐＨ（８．０～９．０、例えば８．５）並びに高い塩濃度（２．３～３Ｍ ＮａＣｌ、例えば約２．６Ｍ ＮａＣｌ）で、大きな体積（例えば、５～２０ＣＶ（カラム体積）、例えば、約１５ＣＶ）を使用して行われる。これは、細胞膜周辺腔のタンパク質ＬｉｖＫを浸出させるが、配列番号１、あるいは、細胞膜周辺腔で発現される関心対象の別のタンパク質を浸出させないことを可能にする。さらに、陰イオン交換クロマトグラフィーの場合と同様に、長時間の洗浄は、そのコストにもかかわらず、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含むサブ工程と、それに続く、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含まないサブ工程を挿入することを可能にし、この界面活性剤を含まない溶液中で関心対象のタンパク質が溶出されるようにする。

クロマトグラフィー工程の後、あるいは、２つのクロマトグラフィー工程の間でも、溶液は膜を通してろ過されてよい。疎水性相互作用クロマトグラフィーの後に、「ＭｕｓｔａｎｇＥ」膜（カートリッジ）が使用され、これは内毒素含有量を（さらに）低下させる。しかし、本発明者らは、一方又は両方のクロマトグラフィー中の洗浄により、臨床使用に適合するＥＵ含有量を有する組成物が得られることを可能にするので、この工程は通常必要ではないことを認めた。

最後に、有利には、患者に注射され得る組成物を得るために、０．２２μｍの多孔度を有するフィルタを使用する（最終）滅菌ろ過工程が実行される。

本発明の関連する態様は、上記精製方法を実施することによって得られた関心対象のタンパク質を含む、哺乳動物、特にヒトに（あるいは、イヌに、又はウマに、又はウサギに、又はラクダ類に、又はサルに）注射され得る組成物である。

本発明は、上述の態様に決して限定されず、添付の特許請求の範囲から逸脱することなく修正が加えられ得ることを理解されたい。

実施例１ 関心対象のタンパク質の精製
配列番号１のタンパク質は、細胞膜周辺腔内の配列番号１の量を最大化するために、例えば２０２１年２月２６日に出願された特許出願ＢＥ２０２１／５１３７号に記載されているように、制御された条件下で、細胞膜周辺腔中の標的化ペプチドの制御下において、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）の株を用いた発酵によって産生された。

配列番号１を抽出するために選択された抽出方法は、浸透圧ショックを伴うものであり、膜又は細胞質夾雑物（ある種のプロテアーゼを含むタンパク質、内毒素及び残留ＤＮＡ）の放出を最小限に抑えながら、タンパク質が周辺質区画から高い収率で抽出されることを可能にした。

抽出条件は、高張緩衝液中への細胞の最初の再懸濁後と、これに続く、低張溶液中への希釈を連続して含む。実験条件（高張緩衝液及び低張緩衝液の性質及び比）はバッチモードにて小規模で試験され、次いで連続管型反応装置に移された。

液体クロマトグラフィーにおいて一般的に見られる条件下で沈殿が存在しないことを確認するため、及び／又は操作上の限界を定めるために、増加する生理食塩水濃度において、周辺質区画から抽出されたタンパク質、より具体的には配列番号１の溶解度を試験した。配列番号１は、ｐＨ８．５において、０～３Ｍの範囲のＮａＣｌ中で沈殿の兆候を示さないことが示された。この工程のために、本発明者らは、既に約３０％の純度で配列番号１を得ることに成功した；すべてのタンパク質の染色、試料の２倍連続希釈物（ｓｕｃｃｅｓｓｉｖｅ ２ ｉｎ ２ ｄｉｌｕｔｉｏｎｓ）を用いるＳＤＳ ＰＡＧＥ。

次に、異なるクロマトグラフィー支持体が試験された。陰イオン交換体の中で、強及び弱交換体（Ｑ及びＤＥＡＥ官能基）、異なる種類のマトリックス（アガロース、メタクリラート）、構造（ビーズ及び拡がった構造）及び物理化学的条件（搭載画分のｐＨ及び伝導度）を試験した。溶出のための２つの塩濃度を比較することによって、増加する疎水性を有する５つのマトリックス（フェニル、ブチル及びヘキシル官能基）も試験した。

他の樹脂より配列番号１を結合する能力が大きいために、樹脂Ｃａｐｔｏ Ｑ及びフェニル６５０Ｍを選択し、次いで動的モードで検証した。クロマトグラフィーパラメータ（ｐＨ、伝導度、樹脂の体積当たりの搭載されたタンパク質の量）を改良するために、これらの試験を使用した。

２段階クロマトグラフィー法を実施して、９５％を超える高い収率及び純度で関心対象のタンパク質を得るために、精製列を開発した。この研究は、スクリーニング中に選択した２種類の樹脂について行った。

１．陰イオン交換樹脂による捕捉。
２．疎水性樹脂でのポリッシング（ｐｏｌｉｓｈｉｎｇ）。

最適なクロマトグラフィー順序、すなわち収率、純度並びに操作時間の間の妥協点を確立するために、陰イオン交換樹脂を用いた配列番号１の精製に影響を及ぼし得る様々な因子を研究し、スクリーニング結果と比較した。この方法が工業的条件を代表する条件下で再現され得ることを確認するために、スケールの拡大も試験した。

得られた結果は、最良の条件を選択することによって捕捉工程を最適化することを可能にした。

樹脂：Ｃａｐｔｏ Ｑ強交換体（ＤＥＡＥより優れている）、９０μｍビーズ、較正の点で正常。較正された樹脂（Ｊｅｔｔｅｄ）と比較してクロマトグラフィーの分離能がより低いにもかかわらず、これらの選択肢は、配列番号１を結合する高い能力を維持した。１０、１２、１５及び２０ｃｍという４つのカラム高さが試験され、１２ｃｍの高さが好ましく、４つの直径（１．６；２．６；１０及び１４ｃｍ）が試験され、検討される精製の規模には１４ｃｍの直径が好ましかった。

搭載：樹脂搭載工程の物理化学的条件、すなわち３．０～９．０ｍＳ／ｃｍの伝導度及び８．５のｐＨが試験された。これらの条件により、ある種の色素及び宿主タンパク質の結合を回避しながら、タンパク質は、樹脂への結合のために必要とされる高密度の負電荷をその表面上に露出させることを可能にした（ポジティブモード）。配列番号１と、関心対象のタンパク質と同様に等電点及び疎水性を有する周辺質タンパク質であるタンパク質ＬｉｖＫ（ｐＩ５．２対５．９）との間での結合部位についての競合を作出するために、搭載比も３．３ｇ／Ｌの樹脂（わずかな過搭載；２．５ｇ／ｌ及び４．２ｇ／ｌも試験された）に、流速は９０ｃｍ／ｈに設定した。この競合は、この宿主タンパク質の結合を制限する。

洗浄：洗浄工程は、ｐＨ８．５、及び、７．０ｍＳ／ｃｍで、３００ｃｍ／ｈの流速で、１０ＣＶ又は１５ＣＶ（カラム体積；５及び２０ＣＶも試験された）の体積の緩衝液（この緩衝液は、０．１５％（ｗ：ｖ）ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含むことがある；下記参照）により特徴づけられた。目的は、搭載直後に、内毒素を含む、樹脂に結合されていない不純物の大部分を除去することであった。

溶出：この工程は、樹脂に結合された不純物の共溶出を最小限に抑えながら、関心対象のタンパク質を脱離させることを目的とした。タンパク質ＬｉｖＫの一部はなお樹脂上に存在し、配列番号１と共溶出する傾向を有したので、溶出は２段階で起こった。第１の工程は、３００ｃｍ／ｈの流速で、洗浄工程の溶液の伝導度（例えば、９ｍＳ／ｃｍ）と同様の伝導度の溶液による、ｐＨ８．０での長時間１５ＣＶ洗浄からなった。ＬｉｖＫのわずかな搭載差により、ＬｉｖＫは、配列番号１を溶出するために使用される伝導度よりわずかに低い伝導度で溶出することを可能にした。配列番号１自体の溶出はアイソクラティックであり（勾配溶出も試験された）、３００ｃｍ／ｈで、（９．０～２０．０ｍＳ／ｃｍの値が試験された）洗浄溶液の電気伝導度よりもはるかに高い電気伝導度により、ｐＨ８．５で実行された。したがって、本発明者らは、溶出された配列番号１から、高分子量及び低分子量を有するタンパク質（ＳＤＳ ＰＡＧＥ分析）、並びに、ほとんどの色素及び内毒素が除去されていることを認めた。

表１：Ｃａｐｔｏ Ｑを使用したイオン交換クロマトグラフィーによる、ＣＲＭ（配列番号１）溶出工程の前に適用された第１の溶出緩衝液に対して使用された異なるパラメータの影響の比較。
注：ＬｉｖＫ／ＣＲＭ比は、溶出された画分の比である（下記参照）。

スケールアップ：異なる床形状（樹脂床の高さ、カラム直径）に対する異なるタイプの支持体（ＨｉＳｃａｌｅ及びＡｘｉｃｈｒｏｍカラム）について、また、異なる充填技術（動的軸圧縮又はＤＡＣ、圧縮（ｃｏｎｓｏｌｉｄａｔｉｏｎ）速度を増加させる）も用いて、精製列のスケールアップを研究した。上記のように、バイオリアクタから５Ｌの培養物を産生することに匹敵するものを処理するために、１４ｃｍの直径に対して、樹脂の高さは１２ｃｍに決定した。すなわち１．８４６Ｌの樹脂体積である。選択された充填方法は、移動相として水を使用することにより、圧縮工程中に流速を増加させることからなった。このプロトコルにより、この樹脂に対する製造業者の基準を満たす性能基準（分離能及び非対称性）を得ることが可能になった。様々な溶液の電気伝導度は測定することが容易であり、ＮａＣｌを添加することによって、あるいは、希釈によって適合される。電気伝導度は、使用されたすべての溶液に対して正確に設定された。この工程のために、本発明者らは、配列番号１の純度を８０％に増加させることに成功した；すべてのタンパク質の染色、試料の２倍連続希釈物を用いるＳＤＳ ＰＡＧＥ。最良の条件下で７１％の収率が得られた。

フェニル６５０Ｍ疎水性支持体を用いたポリッシング工程の開発
最適なクロマトグラフィー順序、すなわち収率、純度並びに操作時間の間の妥協点を確立するために、疎水性支持体を用いた配列番号１の精製に影響を及ぼし得る様々な因子を研究し、スクリーニング結果と比較した。この方法が工業的条件を代表する条件下で再現され得ることを確認するために、スケールの拡大も試験した。

異なるクロマトグラフィーパラメータを試験し、最適化した。３つの床高さ（１０ｃｍ、１８．５ｃｍ及び２０ｃｍ）及び４つの直径（１．６ｃｍ～１４ｃｍ）が試験された。高さ１８．５ｃｍ及び直径１４ｃｍの値が、検討される産生の規模にとって好ましいものであった。

樹脂：疎水性樹脂、６５μｍの較正されていないビーズ。スクリーニング中にこの樹脂を選択し、Ｃａｐｔｏ Ｑと比較して低い結合能力を考慮してポリッシング工程に置いた。

搭載：樹脂搭載工程の物理化学的条件は、８．５のｐＨ及び２．６ＭのＮａＣｌ濃度であった；２．２、２．４、２．８及び３Ｍの値が試験された。これらの条件により、ある種の色素及び宿主タンパク質の結合を回避しながら、タンパク質が、樹脂への結合のために必要とされる疎水性基を露出させること（ポジティブモード）を可能にした。

０．５ｇ／Ｌ及び１．５ｇ／Ｌなどの異なる比が試験された。高い精製収率を維持するために、搭載比を０．８ｇ／Ｌ（非常にわずかな過搭載）に設定した。６０ｃｍ／時及び１５０ｃｍ／時など、いくつかの流速を試験した。

洗浄：配列番号１の脱離を最小限に抑えながらＬｉｖＫの結合を不安定化するために、洗浄工程は、ｐＨ８．５及び２．６ＭのＮａＣｌ濃度での長時間の１５ＣＶ洗浄からなり、この緩衝液は、０．１５％（ｗ：ｖ）ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含んでもよい。以下を参照されたい。搭載と同じＮａＣｌ濃度及び流速を試験した。４つの洗浄体積：５ＣＶ、１０ＣＶ、１５ＣＶ及び２０ＣＶを試験した。１５ＣＶが最良の結果を与えた。

溶出：この工程は、樹脂に結合された不純物の共溶出を最小限に抑えながら、関心対象のタンパク質を脱離させることを目的とした。小さな体積（１ＣＶ）の溶出を可能にし、これは、配列番号１の純度に対してのみならず、クロマトグラフィーの期間及びその後の限外ろ過工程に対しても正の影響を及ぼしたので、試験された異なる伝導度の中で、高い伝導度ジャンプを有するｐＨ８．５での均一濃度溶出が選択された。実際には、１５５ｍＳ／ｃｍ～６０ｍＳ／ｃｍ未満の多数の溶出溶液を試験した。

この工程のために、本発明者らは、配列番号１の純度を９８％に増加させることに成功した；すべてのタンパク質の染色、試料の２倍連続希釈物を用いるＳＤＳ ＰＡＧＥ。最良の条件下で、配列番号１の７７％の回収率が得られた。

スケールアップ：異なる床形状（樹脂床の高さ、カラム直径）に対する異なるタイプの支持体（ＨｉＳｃａｌｅ及びＡｘｉｃｈｒｏｍカラム）上で、また、異なる充填技術（動的軸圧縮、圧縮流速を増加させる）も用いて、精製列のスケールアップを研究した。２つのサブバッチでバイオリアクタから５Ｌの培養物を産生することに匹敵するものを処理するために、１４ｃｍの直径に対して、樹脂の高さを１８．５ｃｍに決定した。すなわち２．８４６Ｌの樹脂体積である。選択された充填方法は、移動相として水を使用することによって、圧縮工程中に極めて高い一定した流速（約４５０ｃｍ／ｈ）を使用することからなった。このプロトコルにより、この樹脂に対する製造業者の基準を満たす性能基準（分離能及び非対称性）を得ることが可能になった。しかし、スケールアップは、１５０ｃｍ／ｈの動作流速が保持されることを可能にしなかった：高い塩濃度を有する溶液が樹脂床を通過されたときの、樹脂床の崩壊を回避するために、動作流速は、６０ｃｍ／ｈに下げられた。

タンパク質を調製（ｆｏｒｍｕｌａｔｅ）するために、異なる多孔度（３０、５０及び７０ｋＤａ）を有する限外ろ過膜を試験した。

限外ろ過法の第１の工程は、関心対象のタンパク質を約４．５ｍｇ／ｍＬに濃縮することからなり、第２の工程は、濃縮された残留液を１０倍大きい体積の調製緩衝液で透析ろ過することからなった。関心対象のタンパク質（配列番号１）のより良好な保持のために、３０ｋＤａ中空糸を選択した。

方法中の剪断係数を制限するので、２０Ｌ／ｍ^２／ｈに設定された動作流速が方法全体に適用された。０．１６ｍ^２の中空糸は、３～４時間にわたって、バイオリアクタ内で５Ｌの培養物に相当するタンパク質量を調製した。

（クロマトグラフィーカラムの洗浄工程中における；上述）内毒素の除去。
結果は、試験された少なくとも３つの条件に対して、内毒素を除去するのに良好な効率を示した：
Ｃａｐｔｏ Ｑ；搭載後、０．１５％ｖ／ｖポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルで洗浄工程を実施し、３つの連続工程に分けられる：
５ＣＶ緩衝液（ｐＨ及び伝導度、上記参照；例えば、３．０～９．０ｍＳ／ｃｍ）。この工程の目的は、搭載直後に、樹脂に結合されていない不純物の大部分を除去することであった。

５ＣＶの同じ緩衝液＋１．５％ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテル。ここで、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルは、内毒素を極めて著しく低下させる（ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルでの洗浄なしでの＞１０００ＥＵ／ｍｇと比較して、配列番号１の溶出画分中で＜１ＥＵ／ｍｇ）、すなわち、この界面活性剤なしでの同じ工程と比較して３Ｌｏｇ又はそれより多く低下させることによって、内毒素を除去した。さらに、この界面活性剤を使用することは、樹脂への関心対象のタンパク質の結合を妨害しなかった。

５ＣＶの同じ緩衝液、但し、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルなし。この工程は、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを除去した。実際には、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルの除去は、吸光度モニタリングの事前試験において評価され、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルの代わりにＴｒｉｔｏｎ Ｘ－１００が存在したことを除いて、すべての条件は同じであり、これにより２８０ｎｍでのモニタリングを可能にした。

フェニル６５０Ｍ；Ｃａｐｔｏ Ｑと同様：
高い伝導度、例えば１５０～２００ｍＳ／ｃｍ及びｐＨ８．５の５ＣＶの緩衝液。この工程の目的は、搭載直後に、樹脂に結合されていない不純物の大部分を除去することであった。

５ＣＶの、１５０～２００ｍＳ／ｃｍ及びｐＨ８．５の緩衝液＋１．５％ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテル。ここで、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルは、内毒素を極めて著しく低下させる（ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルでの洗浄なしでの＞１０００ＥＵ／ｍｇと比較して、配列番号１の溶出画分中で＜１ＥＵ／ｍｇ）ことによって、内毒素を除去した。さらに、この界面活性剤を使用することは、樹脂への関心対象のタンパク質の結合を妨害しなかった。

５ＣＶの、１５０～２００ｍＳ／ｃｍ及びｐＨ８．５の緩衝液。この工程は、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを除去した（２８０ｎｍでの吸光度モニタリングによる事前試験；上記参照）。

イオン交換クロマトグラフィー及び疎水性相互作用クロマトグラフィーの両方に対して、Ｂｒｉｊ ３５、Ｔｗｅｅｎ ２０又はＴｗｅｅｎ ８０（試験された範囲：０．０１６～３％；ｗ：ｖ）などの他の界面活性剤が試験された。しかし、これらの界面活性剤は、内毒素の除去にあまり効果的でなかったか、あるいは、大規模使用に適合しなかった。

本発明者らはまた、Ｍｕｓｔａｎｇ Ｅマトリックスを通してろ過することによって内毒素を除去する代替方法を試みた：この種類のマトリックスは、そのコーティング中に、内毒素に対して高い親和性を有する第４級アンモニウム基を含有する。配列番号１は、試験された条件（ｐＨ、伝導度、流速）下で、この種類の支持体とほとんど又は全く親和性を有しなかった。この工程は、限外ろ過調製（ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ）後、あるいは、Ｃａｐｔｏ Ｑを用いた精製後に配置された場合、精製収率に有意に影響を及ぼすことなく、同じ内毒素除去効率を示した（ろ過後１６ＥＵ／ｍｇ）。１０ｍｌのフィルタは、バイオリアクタ中で５Ｌの培養物に相当する精製された産物の量を処理した。しかし、この代替手段は、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを使用するのと同じ程度には効果的でなかったが、補足手段として使用されてよい。

実施例２．関心対象のプラスミドの精製
５０Ｌ発酵槽中で、関心対象のプラスミドを含有する大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）細胞は流加モードで高密度に培養され、２５０ｍｇを超える関心対象のプラスミドを合成した。

細胞懸濁液がアルカリ溶解に供され、続いて中和及び沈殿に供された。

次いで、混合物が一連のろ過に供されて大きな破片を除去し、次いで限外ろ過に供されて低分子量の夾雑物を除去した。

ＮａＣｌを含む溶液Ａ（ここでは、ＴＲＩＳ緩衝液によって、ｐＨは約８．５に設定されるが、樹脂が正に帯電したままであり、ＤＮＡが負に帯電したままである限り、他のｐＨ値が可能である）で平衡化されたＴＭＡＥ樹脂に、後者のろ過の残留液を結合させ、５０～６０ｍＳ／ｃｍの伝導度を有する（本発明者らは、より低い値が可能であることを認めた）ようにした。次に、カラム体積の５倍の同じ溶液Ａがカラムに適用され、次いで、カラム体積の５倍の、０．１５％（重量基準）のポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルをさらに含む同じ溶液Ａが適用され、最後に、カラム体積の５倍の、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含まない同じ溶液Ａが適用された後、溶液Ｂ（１ｍｏｌ／ｌ ＮａＣｌ、ｐＨ８．５）の勾配で溶出した：５０～６０ｍＳ／ｃｍの伝導度を有する上記の溶液Ａの１００％から始まり、上記溶液Ｂの１００％で終わる１０ＣＶ線形勾配、次いで、２ＣＶの溶液Ｂのみ。溶出は、例えば非線形勾配を使用して、異なって行われてもよい。

次いで、プラスミドを含む画分がろ過工程に供された。

実験によれば、開始時の内毒素含有量は、３５０ＥＵ／ｍｇプラスミドから４６０ＥＵ／ｍｇプラスミドまで変動し、５ＥＵ／ｍｇプラスミドの値まで、最良の場合には、１ＥＵ／ｍｇプラスミド未満の値まで容易に低下された。

Claims (24)

1. 細菌培養物から内毒素を含有する関心対象の生体分子を精製するための方法であって、
   －溶液中で前記関心対象の生体分子のコンディショニングを行う工程と、
   －クロマトグラフィー工程であって、
   ｉ．前記関心対象の生体分子は、支持体に結合され、
   ｉｉ．前記支持体に結合された前記関心対象の生体分子は、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含む溶液で洗浄され、次いで、前記支持体に結合された前記関心対象の生体分子がポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含まない溶液で洗浄され、及び
   ｉｉｉ．前記支持体に結合された前記関心対象の生体分子は、溶出される、
   クロマトグラフィー工程と、
   を含む、ことを特徴とする方法。
2. 前記関心対象の生体分子がＤＮＡであり、
   少なくとも２カラム体積の、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含む前記洗浄溶液が前記支持体に適用され、
   少なくとも２カラム体積の、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含まない溶液を含む前記洗浄溶液が溶出前に適用され、
   前記洗浄溶液は１０～６０ｍＳ／ｃｍ、好ましくは４０ｍＳ／ｃｍ～６０ｍＳ／ｃｍ、さらにより好ましくは５０～６０ｍＳ／ｃｍの伝導度を有する、ことを特徴とする請求項１に記載の方法。
3. 関心対象のタンパク質を含む細菌培養物から当該関心対象のタンパク質を精製するための方法であって、
   （ａ）溶液中で前記関心対象のタンパク質のコンディショニングを行う工程と、
   （ｂ）保持されるべき第１の画分中の前記関心対象のタンパク質と、除去されるべき１つ以上の画分中の夾雑物とを回収するための一連の精製工程であって、前記夾雑物は内毒素を含む、一連の精製工程と、
   を含み、
   内毒素を除去することは、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルを含む溶液を添加する工程を含む、ことを特徴とする方法。
4. 前記一連の精製工程は、陰イオン交換樹脂を用いる捕捉クロマトグラフィー及び／又は疎水性相互作用クロマトグラフィーを含む、ことを特徴とする請求項３に記載の関心対象のタンパク質を精製するための方法。
5. 陰イオン交換樹脂を使用する第１の捕捉クロマトグラフィー、及び、次いで第２の疎水性相互作用クロマトグラフィーを行い、
   前記第１のクロマトグラフィー及び前記第２のクロマトグラフィーは、それぞれ搭載工程、洗浄工程及び溶出工程を含む、ことを特徴とする請求項４に記載の関心対象のタンパク質を精製するための方法。
6. 内毒素を除去することは、前記第１のクロマトグラフィー及び／又は前記第２のクロマトグラフィーの前記洗浄工程中に行われる、ことを特徴とする先行する請求項３～５のいずれか一項に記載の関心対象のタンパク質を精製するための方法。
7. 前記内毒素は、０．０１％～１％（ｗ：ｖ）、好ましくは０．０５～０．５％（ｗ：ｖ）、好ましくは０．１～０．２％（ｗ：ｖ）、例えば約０．１５％（ｗ：ｖ）のポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルの濃度を使用して除去される、ことを特徴とする先行する請求項３～６のいずれか一項に記載の関心対象のタンパク質を精製するための方法。
8. 前記第１のクロマトグラフィー及び／又は前記第２のクロマトグラフィーの内毒素は、前記カラム体積の１～１０倍の体積、好ましくは前記カラム体積の約５倍の体積で除去される、ことを特徴とする先行する請求項３～７のいずれかに記載の関心対象のタンパク質を精製するための方法。
9. 前記関心対象のタンパク質は、配列番号１である、ことを特徴とする先行する請求項３～８のいずれか一項に記載の関心対象のタンパク質を精製するための方法。
10. 前記関心対象のタンパク質は、グラム陰性菌の細胞膜周辺腔中に分泌される、ことを特徴とする先行する請求項３～９のいずれか一項に記載の関心対象のタンパク質を精製するための方法。
11. 陰イオン交換樹脂を使用する前記捕捉クロマトグラフィーは、強交換体を有する、ことを特徴とする先行する請求項３～１０のいずれか一項に記載の関心対象のタンパク質を精製するための方法。
12. 前記疎水性相互作用クロマトグラフィーは、フェニル型のものである、ことを特徴とする先行する請求項３～１１のいずれか一項に記載の関心対象のタンパク質を精製するための方法。
13. 疎水性支持体を使用する前記クロマトグラフィーの前記搭載及び／又は洗浄工程は、８～９のｐＨで、及び／もしくは２～３Ｍの塩の濃度の存在下で行われ、並びに／又は、０．１ｇ／Ｌ～５ｇ／Ｌ、好ましくは０．３～２ｇ／Ｌの搭載比を有する、請求項１２に記載の関心対象のタンパク質を精製するための方法。
14. 前記疎水性相互作用クロマトグラフィーの前記溶出工程は、１０５ｍＳ／ｃｍ未満、好ましくは８０ｍＳ／ｃｍ未満及び／又は４０ｍＳ／ｃｍ超の電気伝導度を有する溶液を用いて行われる、ことを特徴とする請求項１２又は１３に記載の関心対象のタンパク質を精製するための方法。
15. 前記陰イオン交換クロマトグラフィーの前記搭載工程は、２．５～３．５ｇ／Ｌ（タンパク質重量：体積）の搭載比で行われ、並びに／又は、前記溶出工程は、前記搭載及び／又は洗浄工程の間に使用される電気伝導度より大きい又は２倍の電気伝導度を有する溶液を使用して行われる、ことを特徴とする先行する請求項３～１４のいずれか一項に記載の関心対象のタンパク質を精製するための方法。
16. Ｍｕｓｔａｎｇ（登録商標）Ｑ、Ｍｕｓｔａｎｇ（登録商標）Ｅ、又は、Ｓａｒｔｏｂｉｎｄ（登録商標）Ｑ、又は、Ｓａｒｔｏｂｉｎｄ（登録商標）ＳＴＩＣ陰イオン交換膜を通過させる工程をさらに含む、ことを特徴とする先行する請求項３～１５のいずれか一項に記載の関心対象のタンパク質を精製するための方法。
17. 滅菌ろ過工程をさらに含む、ことを特徴とする先行する請求項３～１６のいずれか一項に記載の方法。
18. 組成物から内毒素を除去するための、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルの使用。
19. 除去されるべき内毒素を含む前記組成物は、ＤＮＡ（プラスミド）、ｍＲＮＡ及びペプチド、好ましくはペプチドから選択される関心対象の生体分子をさらに含む、ことを特徴とする請求項１８に記載の使用。
20. 前記組成物は、薬学的用途、好ましくは、治療的ワクチン接種などのワクチン接種のためのものである、ことを特徴とする請求項１８又は１９に記載の使用。
21. 前記内毒素の含有量（ＥＵ）は、当初のＥＵ量に対して２０％に、好ましくは１０％に、５％に、２％に、好ましくは１％以下に低減される、ことを特徴とする先行する請求項１８～２０のいずれか一項に記載の使用。
22. フェニル基を有する疎水性支持体上のクロマトグラフィーカラムからの細菌性夾雑物の特異的な浸出のための、８．０～９．０のｐＨ及び２．５Ｍ～３Ｍの塩の濃度を有する洗浄溶液の使用。
23. 前記洗浄溶液は、ポリオキシエチレン（１０）イソオクチルシクロヘキシルエーテルをさらに含む、ことを特徴とする請求項２２に記載の使用。
24. 陰イオン交換クロマトグラフィー、好ましくは強陰イオン交換クロマトグラフィーを使用して細菌性夾雑物ＬｉｖＫから関心対象の生体分子を分離するための、７．５～８．５、好ましくは８．０±０．２のｐＨ及び１２．０ｍＳ／ｃｍ以下、好ましくは１０ｍＳ／ｃｍ未満、及び／又は７ｍＳ／ｃｍ超の伝導度を有する溶液の使用。