JP2023546764A - Cd19結合分子及びその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2020年7月16日に出願された国際特許出願第PCT/CN2020/102457号の優先権の恩典を主張し、その内容は、全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本出願は、2021年7月9日に作成された、85,728バイトのサイズを有する「14651-025-228_SEQ_LISTING」という名称の、本出願と共にテキスト形式で提出された配列表を参照により組み込む。
本開示は、抗CD19単一ドメイン抗体、キメラ抗原受容体、操作された免疫エフェクター細胞、及びそれらの使用方法に関する。本開示は、さらに、治療的使用のための細胞の活性化及び増大、特に、キメラ抗原受容体ベースのT細胞免疫療法に関する。
CD19は、正常なB細胞上において、ならびに、大半のB細胞悪性腫瘍を含む様々な疾患及び状態の細胞及び組織により、発現される。CD19は、B細胞受容体依存性及び非依存性シグナル伝達の両方を調節することにより、固有のB細胞シグナル伝達閾値の確立に大いに関与する。CD19は、成熟B細胞の表面にある多分子複合体の主要なシグナル伝達コンポーネントとして機能し、体液性抗原誘導応答及び寛容誘導間のバランスを維持する上で重要な役割を果たす。以下を参照:Wang et al.,Exp Hematol Oncol.1:36(2012)(非特許文献1)。
一態様では、以下を含む、抗CD19単一ドメイン抗体(sdAb)が本明細書で提供される:(i)配列番号1のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号8のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号15のアミノ酸配列を含むCDR3、(ii)配列番号22もしくは108のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号29のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号36のアミノ酸配列を含むCDR3、(iii)配列番号2のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号9のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号16のアミノ酸配列を含むCDR3、(iv)配列番号23もしくは109のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号30のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号37のアミノ酸配列を含むCDR3、(v)配列番号3のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号10のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号17のアミノ酸配列を含むCDR3、(vi)配列番号24もしくは110のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号31のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号38のアミノ酸配列を含むCDR3、(vii)配列番号4のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号11のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号18のアミノ酸配列を含むCDR3、(viii)配列番号25もしくは111のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号32のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号39のアミノ酸配列を含むCDR3、(ix)配列番号5のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号12のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号19のアミノ酸配列を含むCDR3、(x)配列番号26もしくは112のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号33のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号40のアミノ酸配列を含むCDR3、(xi)配列番号6のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号13のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号20のアミノ酸配列を含むCDR3、(xii)配列番号27もしくは113のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号34のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号41のアミノ酸配列を含むCDR3、(xiii)配列番号7のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号14のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号21のアミノ酸配列を含むCDR3、(xiv)配列番号28もしくは114のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号35のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号42のアミノ酸配列を含むCDR3、または(xv)配列番号1のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号8のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号50のアミノ酸配列を含むCDR3、または(xvi)配列番号22もしくは108のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号103のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号36のアミノ酸配列を含むCDR3。
本開示は、部分的には、CD19、キメラ抗原受容体、またはそれを含む操作された細胞に結合する新規単一ドメイン抗体(例えば、VHHドメイン)、及びそれらの改善された特性に基づく。
本明細書に記載または参照される手法及び手順は、例えば、当業者らによる通常の方法論、例えば、Sambrook et al.,Molecular Cloning:A Laboratory Manual(3d ed.2001);Current Protocols in Molecular Biology(Ausubel et al.eds.,2003);Therapeutic Monoclonal Antibodies:From Bench to Clinic(An ed.2009);Monoclonal Antibodies:Methods and Protocols(Albitar ed.2010);及びAntibody Engineering Vols 1 and 2(Kontermann and Dubel eds.,2d ed.2010)に記載の幅広く利用された方法論などを使用して、一般に十分に理解及び/または一般に用いられるものを含む。本明細書で別途定義されない限り、本明細書で使用される技術用語及び科学用語は、当業者らにより一般に理解される意味を有する。本明細書を解釈する目的で、以下の用語の説明が適用され、適切な場合はいつでも、単数形で使用される用語は、複数形も含み、その逆も同様である。記載の用語のいずれかの説明が、参照により本明細書に組み込まれるいずれかの文書と矛盾する場合は、以下に記載の用語の説明が優先されるものとする。
5.2.1.CD19に結合する単一ドメイン抗体
一態様では、CD19に結合可能な単一ドメイン抗体(例えば、VHHドメイン)が本明細書で提供される。
本明細書に記載の単一ドメイン抗体は、ヒト化単一ドメイン抗体を含む。ラクダ科種由来の単一ドメイン抗体をヒト化するための一般的な方策が記載されており(例えば、Vinckeetal.,J.Biol.Chem.,284(5):3273-3284(2009)を参照)、本明細書に開示のヒト化VHHドメインの産生に有用であってよい。ラクダ科種由来のヒト化単一ドメイン抗体の設計は、残基11、37、44、45、及び47(Kabatによる残基ナンバリング)などのVHHの特徴的な残基を含んでもよい(Muyldermans,Reviews Mol Biotech 74:277-302(2001))。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のCD19に結合する単一ドメイン抗体のアミノ酸配列修飾(複数可)が企図される。例えば、限定されないが、特異性、熱安定性、発現レベル、エフェクター機能、グリコシル化、免疫原性の低減、または溶解性を含む、抗体の結合親和性及び/または他の生物学的特性を最適化することが望ましいことある。従って、本明細書に記載のCD19に結合する単一ドメイン抗体に加えて、本明細書に記載のCD19に結合する単一ドメイン抗体のバリアントを調製することができることが企図される。例えば、適切なヌクレオチド変化をコードDNAに導入することにより、及び/または所望の抗体もしくはポリペプチドの合成により、単一ドメイン抗体バリアント調製することができる。当業者らは、アミノ酸変化が単一ドメイン抗体の翻訳後プロセスを変化させ得ることを認識する。
いくつかの実施形態では、本明細書で提供される単一ドメイン抗体は、例えば、単一ドメイン抗体への任意のタイプの分子の共有結合により、化学修飾される。抗体誘導体は、例えば、グリコシル化、アセチル化、ペグ化、リン酸化、アミド化、既知の保護/遮断基による誘導体化、タンパク質分解的切断、細胞リガンドもしくは他のタンパク質への結合、または1つ以上の免疫グロブリンドメイン(例えば、FcまたはFcの一部)へのコンジュゲーションにより化学修飾された抗体を含んでもよい。多数の化学修飾のいずれもが、限定されないが、特定の化学的切断、アセチル化、製剤化、ツニカマイシンの代謝合成などを含む既知の手法により実施され得る。抗体は、1つ以上の非古典的アミノ酸をさらに含んでもよい。
変化は、元の抗体またはポリペプチドと比較してアミノ酸配列の変化をもたらす、単一ドメイン抗体またはポリペプチドをコードする1つ以上のコドンの置換、欠失、または挿入であってよい。置換変異導入の目的の部位は、CDR及びFRを含む。
いくつかの実施形態では、親抗体と比較して、親和性、安定性、または発現レベルなどの特性が改善された抗体バリアントが、in vitro親和性成熟により調製されてもよい。自然のプロトタイプと同様に、in vitro親和性成熟は、変異及び選択の原則に基づく。抗体のライブラリーは、生物(例えば、ファージ、細菌、酵母、もしくは哺乳動物細胞)の表面上に、またはそれらのコードmRNAまたはDNAと(例えば、共有結合的または非共有結合的に)会合して提示される。表示された抗体の親和性選択により、抗体をコードする遺伝情報を運ぶ生物または複合体の分離が可能になる。ファージディスプレイなどのディスプレイ法を使用した2回または3回の変異及び選択により、通常、低ナノモル範囲の親和性を有する抗体フラグメントがもたらされる。親和性成熟抗体は、標的抗原に対してナノモルまたはさらにピコモルの親和性を有し得る。
単一ドメイン抗体の共有結合修飾は、本開示の範囲内に含まれる。共有結合修飾は、単一ドメイン抗体の標的アミノ酸残基を、有機誘導体化剤と反応させることを含む。この有機誘導体化剤は、選択された側鎖または単一ドメイン抗体のNもしくはC末端残基と反応可能である。他の修飾は、それぞれ対応するグルタミル及びアスパルチル残基へのグルタミニル及びアスパラギニル残基の脱アミド化、プロリン及びリジンのヒドロキシル化、セリルまたはトレオニル残基のヒドロキシル基のリン酸化、リジン、アルギニン、及びヒスチジン側鎖のα-アミノ基のメチル化(例えば、以下を参照:Creighton,Proteins:Structure and Molecular Properties 79-86(1983))、N末端アミンのアセチル化、ならびに任意のC末端カルボキシル基のアミド化、を含む。
単一ドメイン抗体を調製する方法が記載されている。例えば、Els Pardon et al,Nature Protocol,9(3):674(2014)を参照のこと。単一ドメイン抗体(例えば、VHH)は、当該技術分野で既知の方法を使用して、例えば、ラクダ科動物種(例えば、ラクダもしくはラマ)に免疫をして、そこからハイブリドーマを取得することにより、または当該技術分野で既知分子生物学的手法を使用して単一ドメイン抗体のライブラリーをクローニングし、続いて、選択されていないライブラリーの個々のクローンを用いたELISA、もしくはファージディスプレイの使用より選択することにより、取得され得る。
ポリクローナル抗体は、一般に、関連抗原及びアジュバントを複数回皮下(sc)または腹腔内(ip)注射することにより動物で産生される。二官能性または誘導体化剤、例えば、マレイミドベンゾイルスルホスクシンイミドエステル(システイン残基を介したコンジュゲーション)、N-ヒドロキシスクシンイミド(リジン残基を介する)、グルタルアルデヒド、無水コハク酸、SOCl2、またはR1N=C=NR(式中、R及びR1は、独立して、低級アルキル基である)を使用して、免疫されるべき種、例えば、キーホールリンペットヘモシアニン(KLH)、血清アルブミン、ウシチログロブリン、または大豆トリプシン阻害剤、において免疫原性であるタンパク質に関連抗原をコンジュゲートすることが有用であってよい。用いられ得るアジュバントの例としては、フロイントの完全アジュバント及びMPL-TDMアジュバント(モノホスホリル脂質A、合成トレハロースジコリノミコラート)が挙げられる。免疫化プロトコールは、過度の実験をすることなく当業者が選択し得る。
モノクローナル抗体は、実質的に均質な抗体の集団から得られ、すなわち、集団を構成する個々の抗体は、可能な天然に存在する突然変異及び/または微量で存在し得る翻訳後修飾(例えば、異性化、アミド化)を除いて同一である。従って、「モノクローナル」という修飾語は、別個の抗体の混合物ではないという抗体の特徴を示す。
本開示の抗体をコードするポリ核酸配列は、標準的な組み換え手法を使用して得ることができる。所望のポリ核酸配列は、ハイブリドーマ細胞などの抗体産生細胞から単離及びシーケンシングされてもよい。あるいは、ヌクレオチドシンセサイザーまたはPCR技術を使用して、ポリヌクレオチドを合成することができる。ポリペプチドをコードする配列は、得られると、原核宿主において異種ポリヌクレオチドを複製及び発現可能な組み換えベクターに挿入される。当該技術分野で入手可能及び既知の多くのベクターを、本開示の目的のために使用することができる。適切なベクターの選択は、主に、ベクターに挿入される核酸のサイズ、及びベクターで形質転換されるべき特定の宿主細胞に依存するであろう。各ベクターは、その機能(異種ポリヌクレオチドの増幅もしくは発現、またはその両方)及び存在する特定の宿主細胞との適合性に応じて、様々な構成要素を含有する。ベクター構成要素は、一般に、複製起点、選択マーカー遺伝子、プロモーター、リボソーム結合部位(RBS)、シグナル配列、異種核酸挿入物、及び転写終結配列を含むが、これらに限定されない。
真核発現の場合、ベクター構成要素は、一般に、以下の、シグナル配列、複製起点、1つ以上のマーカー遺伝子、及びエンハンサーエレメント、プロモーター、ならびに転写終結配列のうちの1つ以上を含むが、これらに限定されない。
別の態様では、本明細書で提供される単一ドメイン抗体(例えば、CD19に対するVHHドメイン)を含む結合分子が本明細書で提供される。以下のセクション5.3に記載の本明細書で提供されるキメラ抗原受容体(CAR)に加えて、いくつかの実施形態では、本明細書で提供されるCD19に対する単一ドメイン抗体は、他の結合分子の一部である。本開示の例示的な結合分子は、本明細書に記載される。
様々な実施形態では、本明細書で提供される単一ドメイン抗体は、別の薬剤、例えば、タンパク質ベースの実体と遺伝子的に融合または化学的にコンジュゲートすることができる。単一ドメイン抗体は、薬剤に化学的にコンジュゲートされても、別の方法で、薬剤に非共有結合的にコンジュゲートされてもよい。薬剤は、ペプチドもしくは抗体(またはそのフラグメント)であり得る。
いくつかの実施形態では、本開示は、1つ以上の細胞傷害剤、例えば、化学療法剤または薬物、成長阻害剤、毒素(例えば、タンパク質毒素、細菌、真菌、植物、もしくは動物起源の酵素的に活性な毒素、またはそれらのフラグメント)、あるいは放射性同位体、にコンジュゲートされている本明細書に記載の抗体(例えば、抗CD19単一ドメイン抗体)のうちのいずれかを含むイムノコンジュゲートも提供する。
別の態様では、CD19に結合する本明細書で提供される単一ドメイン抗体(例えば、VHH)を含む細胞外抗原結合ドメインを含むキメラ抗原受容体(CAR)が本明細書で提供される。本VHHドメインを含む例示的なCAR(すなわち、VHHベースのCAR)が示され、以下のセクション6に記載されるように、scFvを含む従来のCAR(すなわち、scFvベースのCAR)と比較される。
本明細書に記載のCARの細胞外抗原結合ドメインは、1つ以上(例えば、1、2、3、4、5、6、またはそれ以上のうちのいずれか1つ)の単一ドメイン抗体を含む。ペプチド結合を介して直接、またはペプチドリンカーを介して、単一ドメイン抗体を互いに融合させることができる。
本開示のCARは、1つ以上の単一ドメイン抗体を含む細胞外抗原結合ドメインを含む。sdAbは、同じまたは異なる起源のもの、及び、同じまたは異なるサイズのものであってよい。例示的なsdAbとしては、重鎖のみの抗体由来の重鎖可変ドメイン(例えば、VHHまたはVNAR)、軽鎖を天然に欠く結合分子、ヒト重鎖セグメントを発現するトランスジェニックマウスまたはラットにより産生された従来の4鎖抗体、ヒト化重鎖のみの抗体、ヒト単一ドメイン抗体に由来する単一ドメイン(例えば、VHまたはVL)、ならびに抗体に由来するもの以外の操作されたドメイン及び単一ドメイン足場が挙げられるが、これらに限定されない。本明細書に記載のCARを構築するために、本開示の上記の単一ドメイン抗体を含む、当該技術分野で既知の、または本開示により開発された任意のsdAbが、使用されてもよい。sdAbは、限定されないが、マウス、ラット、ヒト、ラクダ、ラマ、ヤツメウナギ、魚、サメ、ヤギ、ウサギ、及びウシを含む任意の種に由来し得る。本明細書で企図される単一ドメイン抗体は、ラクダ科及びサメ以外の種に由来する天然に存在する単一ドメイン抗体分子も含む。
本明細書に記載の多重特異性または多価CARにおける様々な単一ドメイン抗体は、ペプチドリンカーを介して互いに融合され得る。いくつかの実施形態では、単一ドメイン抗体は、任意のペプチドリンカーなしで互いに直接融合される。異なる単一ドメイン抗体(例えば、VHH)を連結するペプチドリンカーは、同じであっても異なっていてもよい。CARの異なるドメインは、また、ペプチドリンカーを介して互いに融合されてもよい。
本開示のCARは、細胞外抗原結合ドメインに直接的または間接的に融合することができる膜貫通ドメインを含む。膜貫通ドメインは、天然または合成の供給源のいずれかに由来し得る。本明細書で使用される場合、「膜貫通ドメイン」は、細胞膜、好ましくは、真核細胞膜において熱力学的に安定している任意のタンパク質構造を指す。本明細書に記載のCARでの使用に適合する膜貫通ドメインは、天然に存在するタンパク質から得られてもよい。あるいは、それは、合成の非天然タンパク質セグメント、例えば、細胞膜中で熱力学的に安定している疎水性タンパク質セグメント、であり得る。
本開示のCARは、細胞内シグナル伝達ドメインを含む。細胞内シグナル伝達ドメインは、CARを発現する免疫エフェクター細胞の正常なエフェクター機能の少なくとも1つの活性化に関与する。「エフェクター機能」という用語は、細胞の特殊な機能を指す。T細胞のエフェクター機能は、例えば、サイトカインの分泌を含む細胞溶解活性またはヘルパー活性であり得る。従って、「細胞質シグナル伝達ドメイン」という用語は、エフェクター機能シグナルを伝達し、細胞に特定の機能を実行するように指示するタンパク質の部分を指す。通常、細胞質シグナル伝達ドメイン全体を用いることができるが、多くの場合、鎖全体を使用する必要はない。細胞質シグナル伝達ドメインの切断部分が使用される限りにおいて、そのような切断部分は、エフェクター機能シグナルを伝達する限り、インタクト鎖の代わりに使用されてもよい。従って、細胞質シグナル伝達ドメインという用語は、エフェクター機能シグナルを伝達するのに十分な細胞質シグナル伝達ドメインの任意の切断部分を含むことを意味する。
多くの免疫エフェクター細胞は、抗原特異的シグナルの刺激に加えて、細胞増殖、分化、及び生存を促進し、細胞のエフェクター機能を活性化するために共刺激を必要とする。いくつかの実施形態では、CARは、少なくとも1つの共刺激シグナル伝達ドメインを含む。本明細書で使用される「共刺激シグナル伝達ドメイン」という用語は、エフェクター機能などの免疫応答を誘導するために細胞内でシグナル伝達を媒介するタンパク質の少なくとも一部を指す。本明細書に記載のキメラ受容体の共刺激シグナル伝達ドメインは、共刺激タンパク質由来の細胞質シグナル伝達ドメインであり得、これは、シグナルを伝達し、免疫細胞、例えば、T細胞、NK細胞、マクロファージ、好中球、または好酸球を媒介した応答を調節する。「共刺激シグナル伝達ドメイン」は、共刺激分子の細胞質部分であり得る。「共刺激分子」という用語は、共刺激リガンドと特異的に結合し、それにより、限定されないが、増殖及び生存を含む免疫細胞で共刺激応答を媒介する免疫細胞(例えば、T細胞)上に同族結合パートナーを指す。
本開示のCARは、細胞外抗原結合ドメイン及び膜貫通ドメイン間に位置するヒンジドメインを含んでもよい。ヒンジドメインは、一般に、タンパク質の2つのドメイン間に見られるアミノ酸セグメントであり、タンパク質の柔軟性と、互いに対する、ドメインの一方または両方の移動を可能にすることがある。エフェクター分子の膜貫通ドメインに対する、細胞外抗原結合ドメインのそのような柔軟性及び移動を提供する任意のアミノ酸配列を使用することができる。
本開示のCARは、ポリペプチドのN末端にシグナルペプチド(シグナル配列としても既知)を含んでもよい。一般に、シグナルペプチドは、ポリペプチドを細胞内の所望の部位に向けるペプチド配列である。いくつかの実施形態では、シグナルペプチドは、エフェクター分子を細胞の分泌経路に向け、脂質二重層へのエフェクター分子の組み込み及び固定を可能にする。天然に存在するタンパク質のシグナル配列または合成の非天然シグナル配列を含むシグナルペプチド(本明細書に記載のCARでの使用に適合)は、当業者には明らかであろう。いくつかの実施形態では、シグナルペプチドは、CD8α、GM-CSF受容体α、及びIgG1重鎖からなる群より選択される分子に由来する。いくつかの実施形態では、シグナルペプチドは、CD8αに由来する。いくつかの実施形態では、CD8αのシグナルペプチドは、配列番号72のアミノ酸配列を含む。
VHH-083 CAR、VHH-111 CAR、VHH-131 CAR、77LICA542 CAR、77LICA519 CAR、77LICA602 CAR、huVHH-773 CAR、及びhuVHH-776 CARなどの例示的なCARは、以下のセクション6に示されるように生成される。
さらに別の態様では、本明細書に記載のCARのいずれか1つを含む宿主細胞(例えば、免疫エフェクター細胞)が本明細書で提供される。
本開示は、本明細書に記載のCARのいずれか1つをクローニング及び発現するためのベクターを提供する。いくつかの実施形態では、ベクターは、哺乳動物細胞などの真核細胞における複製及び組み込みに適する。いくつかの実施形態では、ベクターは、ウイルスベクターである。ウイルスベクターの例としては、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクター、レンチウイルスベクター、レトロウイルスベクター、ワクシニアベクター、単純ヘルペスウイルスベクター、及びそれらの誘導体が含まれるが、これらに限定されない。ウイルスベクター技術は、当該技術分野で周知であり、例えば、Sambrook et al.(2001,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory,New York)、ならびに、他のウイルス学及び分子生物学のマニュアルに記載される。
「免疫エフェクター細胞」は、免疫エフェクター機能を実施することができる免疫細胞である。いくつかの実施形態では、免疫エフェクター細胞は、少なくともFcγRIIIを発現し、ADCCエフェクター機能を実施する。ADCCを媒介する免疫エフェクター細胞の例としては、末梢血単核細胞(PBMC)、ナチュラルキラー(NK)細胞、単球、細胞傷害性T細胞、好中球、及び好酸球が挙げられる。
いくつかの実施形態では、T細胞の増大及び遺伝子改変の前に、T細胞の供給源が対象から得られる。末梢血単核細胞、骨髄、リンパ節組織、臍帯血、胸腺組織、感染部位由来の組織、腹水、胸水、脾臓組織、及び腫瘍を含む多くの供給源から、T細胞を得ることができる。いくつかの実施形態では、当該技術分野で利用可能な任意数のT細胞株が使用されてもよい。いくつかの実施形態では、Ficoll(商標)分離などの当業者に既知の任意数の手法を使用して、対象から収集された血液の単位から、T細胞を得ることができる。いくつかの実施形態では、個体の循環血液からの細胞は、アフェレーシスにより得られる。アフェレーシス製品は、通常、T細胞、単球、顆粒球、B細胞、他の有核白血球、赤血球、及び血小板を含むリンパ球を含有する。いくつかの実施形態では、アフェレーシスにより収集された細胞は、血漿画分を除去し、その後の処理ステップのために細胞を適切な緩衝液または培地に入れるために、洗浄されてもよい。いくつかの実施形態では、細胞は、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)で洗浄される。いくつかの実施形態では、洗浄溶液は、カルシウムを欠いており、マグネシウムを欠き得るか、または全てではないが、多くの二価カチオンを欠き得る。カルシウムの不存在下での最初の活性化ステップは、活性化の拡大につながり得る。当業者らが容易に理解するように、洗浄ステップは、例えば、半自動「フロースルー」遠心分離機(例えば、Cobe2991セルプロセッサ、Baxter CytoMate、またはHaemonetics Cell Saver5)を製造者の使用説明書に従って使用することにより、当業者らに既知の方法で達成されてもよい。洗浄後、細胞は、様々な生体適合性緩衝液、例えば、Ca2+不含、Mg2+不含PBS、PlasmaLyte A、または、緩衝剤を含むかもしくは含まない他の生理食塩水、に再懸濁させてもよい。あるいは、アフェレーシスサンプルの望ましくない構成成分を除去し、細胞を培地に直接再懸濁させてもよい。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のCARを用いるT細胞の遺伝子改変の前または後に、例えば、一般に、米国特許第6,352,694号;同第6,534,055号;同第6,905,680号;同第6,692,964号;同第5,858,358号;同第6,887,466号;同第6,905,681号;同第7,144,575号;同第7,067,318号;同第7,172,869号;同第7,232,566号;同第7,175,843号;同第5,883,223号;同第6,905,874号;同第6,797,514号;同第6,867,041号;及び米国特許出願公開第20060121005号に記載の方法を使用して、T細胞を活性化及び増大することができる。
特定の実施形態では、本開示は、CD19に結合する単一ドメイン抗体をコードするポリヌクレオチド、及び本明細書に記載のCD19に結合する単一ドメイン抗体を含む融合タンパク質を提供する。本開示のポリヌクレオチドは、RNAの形態またはDNAの形態をとり得る。DNAは、cDNA、ゲノムDNA、及び合成DNAを含み;二本鎖または一本鎖であり得、一本鎖である場合、コード鎖または非コード(アンチセンス)鎖であり得る。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、cDNAの形態をとる。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、合成ポリヌクレオチドである。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号43の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な核酸は、配列番号64を有する。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号44の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な核酸は、配列番号65を有する。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号45の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号46の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号47の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号48の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号49の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号51の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な核酸は、配列番号66を有する。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号52の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な核酸は、配列番号67を有する。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号53の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号54の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号55の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号56の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な実施形態では、本明細書で提供される核酸分子は、配列番号104の配列を有する単一ドメイン抗体をコードする配列を含む。例示的な核酸は、配列番号106を有する。
一態様では、本開示は、さらに、本開示の単一ドメイン抗体、または操作された免疫エフェクター細胞を含む、単一ドメイン抗体、結合分子、もしくは治療用分子を含む医薬組成物を提供する。いくつかの実施形態では、医薬組成物は、治療有効量の単一ドメイン抗体、単一ドメイン抗体を含む結合分子もしくは治療用分子、または本開示の操作された免疫エフェクター細胞と、薬学的に許容される賦形剤とを含む。
別の態様では、抗CD19 VHH、キメラ抗原受容体(CAR)、及び/または組み換え受容体を発現する操作された細胞を含む、本明細書で提供されるCD19結合分子の使用方法及び用途が本明細書で提供される。
そのような方法及び用途は、CD19発現を発現するか、もしくはそれに関連する、及び/または細胞もしくは組織がCD19を発現する、疾患、状態、または障害を有する対象に、例えば、分子、細胞、またはそれを含有する組成物を投与することを含む、治療方法及び用途を含む。いくつかの実施形態では、分子、細胞、及び/または組成物は、疾患または障害の処置を行うのに有効な量で投与される。使用は、そのような方法及び処置における、ならびにそのような治療方法を実施するための薬品の調製における、抗体及び細胞の使用を含む。いくつかの実施形態では、方法は、疾患または状態を有するか、またはそれを有すると疑われる対象に、抗体もしくは細胞、またはそれらを含む組成物を投与することにより実施される。いくつかの実施形態では、それにより、方法は、対象の疾患または障害を処置する。
別の態様では、本明細書で提供される結合分子、例えば、CD19に結合するVHH、ならびに、1つ以上の組織もしくは細胞型に対する特定の処置の結合の検出、予測、診断、病期分類、決定、ならびに/または対象の処置決定の告知、例えば、CD19及び/もしくは抗体に認識されるそのエピトープの存在の検出のための、そのようなVHHを含有する分子(例えば、コンジュゲート及び複合体)の使用を含む方法が本明細書で提供される。
本明細書に記載の単一ドメイン抗体、キメラ抗原受容体、または操作された免疫エフェクター細胞のいずれかを含むキット、単位投薬量、及び製造物品がさらに提供される。いくつかの実施形態では、本明細書に記載の医薬組成物のいずれか1つを含有し、且つ、好ましくは、その使用説明書を提供するキットが提供される。
以下は、研究で使用される様々な方法及び材料の説明であり、本開示の作成方法及び使用方法の完全な開示及び説明を当業者らに提供するために記載され、本発明者らが本開示としてみなすものの範囲に制限することが意図されないか、以下の実験が実施され、実施され得る実験の全てであることを表すことが意図されない。現在時制で書かれた例示的な説明は、必ずしも実行されたわけではなく、むしろ、この説明は、本開示の教示に関連するデータなどを生成するために実施することができることを理解すべきである。使用される数値(例えば、量、パーセンテージなど)に関して正確性を確保するための取り組みがなされているが、いくつかの実験誤差及び偏差は、考慮されるべきである。
CD19抗原に対し高い結合親和性を有するVHHを開発するために、ラクダを、ヒトCD19タンパク質で免疫した。次に、VHHリードをスクリーニングするために、ファージディスプレイライブラリーを構築した。固有のクローンを、特異的結合に基づいて選択し、VHH相補性決定領域(CDR)、特に、抗原認識レパートリー及び結合を拡大するCDR3に従ってランク付けした。
K562.huCD19.Luc細胞株は、以下に簡単に記載される方法に従って社内で開発された。ヒトCD19コード配列(NM_001770.5)を合成し、EcoRI及びBamHIの制限部位間のpLVX-puro(Clontech、カタログ番号632164)にサブクローニングして、プラスミドpLVX-huCD19.Luc.Puroを得た。psPAX2、pMD.2G、及びpLVX-huCD19.Luc.Puroを含有するプラスミドの混合物を用いるLenti-X 293T宿主細胞の一過性トランスフェクションにより、レンチウイルスをパッケージングした。0.5×106のK562細胞(ATCC#CRL-243)に、100μLのLV-huCD19.Luc.PuroRレンチウイルスを感染させることにより形質導入した。形質導入されたK562.huCD19.Luc細胞を選択し、ピューロマイシン選択培地(10%のFBS及び5μg/mLのピューロマイシンが補充されたRPMI1640)で2~3日毎に生成した。3回の選択の後、遠心分離により細胞プールを回収した。採取された細胞を分注し、凍結保存し、さらなる使用のために準備した。
成体の雄ラクダ(Camelus bactrian)1頭に、ヒトCD19タンパク質(ACRO、カタログ番号CD9-H52H2)を2週間間隔で5回免疫した。免疫前日(Pre)及び最終免疫日(TB)に採血した。ラクダの免疫応答をELISAで評価し、血清サンプル及び固定化抗原間の結合を試験した。動物へのCD19抗原の注射により、強力な免疫応答が誘導され、血清力価は、>1:243kに達した。このデータは、抗体力価がCD19抗原免疫により著しく増加したことを示唆した。
製造者のプロトコールに従い、TRIZOL(登録商標)試薬(Thermofisher、カタログ番号15596026)を使用して、単離されたリンパ球から総RNAを抽出し、製造者の使用説明書に従い、PrimeScript(商標)1st Strand cDNA Synthesis Kit(Takara、カタログ番号6110A)を使用して、オリゴ(dT)20プライマーで、cDNAに逆転写した。2つのSfiI制限部位を導入したVHHフラグメントを増幅するように、フォワード及びリバース特異的縮重プライマー(中国特許第CN105555310B号を参照)を設計した。2段階のポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を使用して、VHHフラグメントを増幅し、第2のPCR産物をSfiIで消化し、ゲル精製し、次に、ファージミドベクター-pFL249に挿入し、これを、大腸菌細胞に電気的に導入して、ファージディスプレイVHH免疫ライブラリーを得た。
ヘルパーファージによる感染後、表面にVHHドメインを遺伝子III融合タンパク質として提示する組み換えファージ粒子が産生された。ファージ粒子を標準的な方法に従って調製し、フィルター滅菌後に、さらなる研究のために4℃で保存した。様々なパニング方策で、ファージライブラリーを使用した。1回目及び2回目のパニングでは、ビオチン化ヒトCD19抗原(Sulfo-NHS-LC-Biotin Kitで標識されたビオチン)をファージライブラリーと共にインキュベートし、続いて、Streptavidin Dynabeads(Invitogen)で捕捉した。多数回洗浄した後、結合したファージをトリエチルアミンで溶出させた。2回のパニング後に、ファージの濃縮が観察された。
個々のライブラリークローンをインキュベートし、96ディープウェルプレートで発現を誘導した。ヒトCD19抗原を特異的に認識するVHHクローンをスクリーニングするために、ELISAスクリーニングを実施した。
6.2.1.CD19 VHH CARの構築
N末端からC末端にかけて、CD8αヒンジドメイン、CD8α膜貫通ドメイン、CD137細胞質ドメイン、及びCD3ζ細胞質ドメインを含む、CARバックボーンポリペプチドをコードする核酸配列を、化学的に合成し、下流でhEF1αプロモーターに作動可能に連結されている事前改変されたレンチウイルスベクターにクローニングした。ベクター内のマルチクローニング部位(MCS)は、VHHフラグメント(複数可)のN末端に融合されたCD8αシグナルペプチドをコードする核酸配列に作動可能に連結されたKozak配列(GCCGCCACC(配列番号78))を含む核酸配列の挿入を可能にし、上流をCARバックボーン配列に作動可能に連結した。
pMDLg.pRRE(Addgene、#12251)、pRSV-REV(Addgene、#12253)、及びpMD2.G(Addgene、#12259)を含有するレンチウイルスパッケージングプラスミド混合物を、ポリエーテルイミド(PEI)との事前に最適化された比で、CAR構築物を発現するベクターと予め混合した。次に、トランスフェクション混合物をHEK293T細胞に滴加し、穏やかに混合し、続いて、6~8時間後に培地を交換した。ウイルス含有上清を、48時間及び72時間で回収し、次に、4℃で10分間、3000gで遠心分離した。レンチウイルス濃縮後、上清を注意深く捨て、ウイルスペレットをD10培地(DMEM、10%のFBS、1mMのピルビン酸ナトリウム、及び2mMのL-グルタミン)で再懸濁させた。採取されたウイルスを分注し、直ちに、-80℃で保存した。CHO哺乳動物細胞の形質導入効率により、ウイルス力価を評価及び決定した。CD19 CARのLV力価は、1×108~2×108の範囲内に達した。
ヒトPBMCを、健康なドナーから収集した。以下に記載される製造者プロトコールに従い、Miltenyi Pan T細胞単離キット(カタログ番号130-096-535)を使用して、PBMCからヒトT細胞を精製した。細胞数を計数し、細胞懸濁液を4℃、300gで10分間遠心分離した。次に、上清を吸引除去し、細胞ペレットを総細胞107個当たり40μLの緩衝液に再懸濁させた。総細胞107個当たり10μLのPan T細胞ビオチン抗体カクテルを添加し、十分に混合し、4℃で5分間インキュベートした。次に、全細胞107個当たり30μLの緩衝液を添加した。細胞107個当たり20μLのPan T細胞MicroBeadカクテルを添加した。細胞懸濁液混合物を完全に混合し、4℃でさらに10分間インキュベートした。磁気分離には、500μLの最小量(体積)が必要であった。磁気分離では、LSカラムを好適なMACSセパレーターの磁場に配置した。LSカラムを、3mLの緩衝液ですすいだ。次に、細胞懸濁液をカラムに適用し、濃縮されたT細胞画分を表した非標識細胞を含有するフロースルーを収集した。3mLの緩衝液でカラムを洗浄して、通過した非標識細胞を収集することで、追加のT細胞を収集した。これらの非標識細胞は、濃縮されたT細胞を再び表し、前のステップからのフロースルーと組み合わせた。次に、プールされた濃縮T細胞を遠心分離し、T細胞培地(RPMI1640、10%の熱不活化ウシ胎児血清(FBS)及び300IU/mLのIL-2)で再懸濁させた。製造者プロトコールに従って、T細胞培地に抗CD3/CD28 MACSiBead粒子(Miltenyi、カタログ番号130-111-160)を添加することにより、新たに単離されたT細胞を活性化した。
RNAエレクトロポレーションで生成され、in vitroアッセイでスクリーニングされたCD19 CAR-T細胞の予備結果に基づいて、ヒト初代T細胞における有効性分析のためにレンチウイルスの形質導入により、CD19 CAR-T細胞を選択し、設計し、生成した。さらに、CD19 scFv CAR-T細胞を、陽性対照として評価した。24ウェルプレートのウェル当たり0.5mLの培地中、0.5×106細胞で、活性化T細胞を培養した。24時間後、T細胞が破裂している場合、0.5mLの非濃縮ウイルス上清または少量の濃縮ウイルス上清を添加し、T細胞を、1200gで1.5時間、32℃で遠心分離することにより、感染多重度(MOI)15で形質導入した。次に、形質導入された細胞を、好適な条件下で、導入遺伝子発現のために細胞培養インキュベーターに移した。T細胞は、対数成長パターンで分割し始め、細胞数(生細胞/mL)及び生存率(%)を測定することにより、これを監視した。T細胞培養物を、2日毎に新鮮な培地で補充した。T細胞は、約7~9日後に休止し始めたので、後で分析するために採取して凍結保存するために、それらを準備した。
6.3.1.細胞表面でのCD19、CD20、及びCD22抗原の発現
評価された標的細胞表面上のCD19、CD20、及びCD22の発現レベルを評価するために、1ウェルあたり5x105の細胞を、それぞれ、PE標識抗CD19、抗CD20、及び抗CD22 mAbとインキュベートし(BioLegend、それぞれ、カタログ番号302208、番号302306、及び番号302506)、QUANTI-BRITE PEビーズ(BD Bioscience、カタログ番号340495)を用いるフローサイトメトリーで評価した。アッセイ及びデータ分析を、製造者の使用説明書に従って実施した。「細胞毎の受容体数」は、示された細胞株のそれぞれにおける細胞あたりの分子のおおよその絶対数を示し、表7に示される。
腫瘍細胞に対するCD19 VHH CAR-T細胞の細胞傷害性を評価するために、上記のように産生された細胞を計数し、抗原特異的がん細胞と共培養して、殺傷力を読み取った。アッセイの変動を比較し、及び/または内部対照として機能させるために、全てのアッセイで、対照CD19 scFv CAR-T細胞を使用した。非形質導入T細胞(UnT)を、非標的指向性T細胞対照として使用した。CAR-T細胞殺傷アッセイは、CD19陽性細胞株-ヒトリンパ腫細胞株Raji(ATCC#CCL-86)、Daudi(ATCC#CCL-213)、Nalm.6(ATCC#CRL-3273)、及びK562-CD19(CD19遺伝子の安定的な過剰発現)、及びCD19陰性細胞株-K562-CD20(CD20遺伝子の安定的な過剰発現)、K562-CD22(CD22遺伝子の安定的な過剰発現)、及びK562(ATCC#CCL-243)に対して実施した。全ての細胞株を設計して、細胞の生存率/死滅のレポーターとしてホタルルシフェラーゼを発現した。形質導入された細胞をピューロマイシンで選択し、選択培地(10%のFBS及び2μg/mLのピューロマイシンが補充されたイーグル最小必須培地)で2~3日毎にリフレッシュした。3回の選択後、選択された細胞クローンを採取し、さらなる使用のために保存した。CD19 VHH CAR-T細胞の細胞傷害性を、15:1、10:1、5:1、または2:1のエフェクター対標的細胞比(E:T)で24時間測定した。それぞれの数のT細胞を一定数の標的細胞と混合することにより、アッセイを開始した。ONE-Gloルシフェラーゼアッセイ(Promega、カタログ番号E6110)により、ウェル当たりの残りのルシフェラーゼ活性を評価して、1ウェル当たりの残りの生存可能な標的細胞を定量化した。
CD19発現細胞に応答したCD19 VHH CAR-T細胞のサイトカイン産生を測定するために、CAR-T細胞を、CD19陽性細胞株-Raji.Luc、Daudi.LucもしくはNalm.6.Luc、またはCD19陰性細胞株-K562-CD20.LucもしくはK562-CD22.Lucと、E:T比15:1、10:1、5:1、または2:1で24時間共培養した後に、サイトカイン定量用のヒトIFN-γキット(Cisbio、カタログ#62HIFNGPEG)を使用して、培地を、サイトカイン分析のために採取した。マルチモードマイクロプレートリーダー(Tecan Spark)で、各ウェルの吸光度(試験物品毎に3回ずつ)を読み取った。
Raji異種移植片NCGマウスモデルにおいて、産生されたCD19 VHH CAR-T細胞の抗腫瘍活性をin vivo評価し、CD19 scFv CAR-T細胞及び非形質導入T細胞(UnT)を、対照として評価した。
腫瘍異種移植片を作成するために、NCGマウスに、Raji.Lucを静脈内注射した。Raji.Luc腫瘍細胞移植の4日後に、マウスをT細胞で処置した。マウス1匹当たり、1×106T細胞の用量で、尾静脈を介して、400μLのT細胞をマウスに静脈内注射した。各グループの4匹のマウスを、CD19 VHH CAR-T細胞またはCD19 scFv CAR-T細胞のいずれか、400μLのHBSS単独、及び対照として非形質導入T細胞(UnT)で処理した。全てのT細胞を、同じドナーから並行して調製した。体重測定を含む動物の健康状態を、週に2回監視した。動物がエンドポイントに達するまで、腫瘍成長を生物発光イメージング(BLI)により毎週監視した。
6.5.1.抗CD19 VHH-huIgG1Fc mAbのCD19受容体陽性細胞へのオンターゲット結合及びEC50
組み換えタンパク質の発現を促進するために、ヒトIgG1 Fcフラグメント配列(配列番号77)を含む抗CD19 VHH配列を、哺乳類の発現ベクターであるpcDNA3.4にクローニングした。哺乳動物宿主細胞(Expi293F)における最適な発現のために、DNAコドンをさらに最適化した。抗体を、細胞培養上清から採取し、MabSelect SuRe LXで1ステップ精製し、0.2μmのフィルターで滅菌した。精製された抗体濃度をA280により決定し、約90%の純度で、2~3mg/mLに達した。配列番号101及び配列番号102に示されるFMC63 VH-CH1及びFMC63 VL-CLのアミノ酸配列を含む抗CD19 Fab-huIgG1Fc mAbを、細胞表面結合アッセイの陽性対照として使用した。CD19陽性細胞株-Raji及び陰性細胞株(K562)を完全培地に再懸濁し、細胞濃度を、1×106細胞/mLに希釈し、1ウェル当たり2×105細胞で染色を実施した。mAbを最大濃度段階希釈し(3分の1に低減)、実験計画及びプロトコールに従って添加した。mAb及び細胞を、4℃で1時間共培養した。次に、細胞を、200μLのDPBS+0.5%のFBSで洗浄し、4℃で5分間、300gで回転させた。細胞を、検出抗体(PE結合マウス抗ヒトIgG1 Fc)(BioLegend、カタログ番号409304、1:100)で、4℃で40分間染色した。次に、細胞を再度洗浄し、NovoCyteフローサイトメーター(ACEA Biosciences)でのフローサイトメトリー分析のために、200μLのDPBS+0.5%のFBSで再懸濁させた。FACSデータをNovoexpressソフトウェアで分析し、MFI(蛍光強度の中央値)をGraphPad PRISMバージョン6.0により分析した。
上記の方法を使用して、オフターゲット結合を検証するために、抗CD19 VHH-huIgG1Fc mAbを様々なヒト細胞株で評価した。例示的な試験細胞株が表8に列挙される。mAbを1ウェル当たり1×105細胞で、インキュベートした。試験されたVHH-083-huIgG1Fc mAb及びVHH-131-huIgG1Fc mAbでは、最大のRaji細胞への結合を得る濃度で、オフターゲット細胞への非特異的結合は観察されなかった(表8)。
抗CD19 VHHのCD19抗原への結合を特性評価するために、例示的な抗CD19 VHH-huIgG1Fc mAb及び抗CD19 Fab-huIgG1Fc mAbを対で試験して、それらが、CD19抗原の特定の部位への互いの結合をブロックするかどうかを評価した。CD19抗原は、96ウェルプレートに100μL/ウェルで、0.5μg/mLの濃度で、PBS(pH7.4)のコーティングバッファーでプレートにコーティングした。最適な条件下で、競合mAbをビオチンとコンジュゲートさせ、滴定して、mAb競合試験に最適な濃度(最良のシグナル対ノイズ比)を見つけた。ストレプトアビジン-HRPとして二次抗体を用いた標準プロトコールに従って、ELISA法を適用した。データは、例示的なVHH-083-huIgG1Fc mAbが、抗CD19 Fab-huIgG1Fc mAbの同じエピトープへの結合をブロックし、2つのmAbを一緒に「ビニング」したことを示した(表9の例示的なデータを参照)。
6.6.1.抗CD19 VHH抗体のヒト化
ヒトにおける免疫原性を低減させるために、ラクダ科動物VHH抗体をヒト化した。これは、免疫応答の多くが非ヒト抗体定常領域に対して生じるからである。異なるフレームワーク領域をラクダ科動物のCDRと組み合わせると、同じ抗原に特異的なヒト及びラクダ科動物のキメラ抗体が、異なるエフェクター機能を誘発し得、これにより、治療上の利点が拡大する。配列ベースのアプローチと、最も相同なヒト生殖系列配列または関連足場へのフレームワークシャッフリングを使用して、単一特異的ラクダ科動物VHHをヒト化した。非ネイティブなヒトフレームワーク足場によりサポートされているラクダ科動物のCDRの非互換性及び重要な立体配座残基の除去は、in silicoでのCDR移植、相同構造モデリング(3次立体配座及び折りたたみ)、配列アラインメント、構造ベースの復帰変異設計及びラクダ科動物VHH抗体由来の重要な配座残基の再導入により解決された。抗体のヒト化プロセスは、立体的な衝突を排除するだけでなく、抗原への結合親和性に関する機能を回復させることがある。
上記の方法を使用して、例示的なヒト化CD19 VHH CAR(huVHH-773 CAR及びhuVHH-776 CARを含む)を生成した。huVHH-773 CARのアミノ酸配列は、配列番号62である。huVHH-776 CARのアミノ酸配列は、配列番号63である。huVHH-773 CARの核酸配列は、配列番号70である。huVHH-776 CARの核酸配列は、配列番号71である。
Claims (41)
- 抗CD19単一ドメイン抗体(sdAb)であって、
(i)配列番号1のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号8のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号15のアミノ酸配列を含むCDR3、
(ii)配列番号22もしくは108のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号29のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号36のアミノ酸配列を含むCDR3、
(iii)配列番号2のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号9のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号16のアミノ酸配列を含むCDR3、
(iv)配列番号23もしくは109のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号30のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号37のアミノ酸配列を含むCDR3、
(v)配列番号3のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号10のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号17のアミノ酸配列を含むCDR3、
(vi)配列番号24もしくは110のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号31のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号38のアミノ酸配列を含むCDR3、
(vii)配列番号4のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号11のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号18のアミノ酸配列を含むCDR3、
(viii)配列番号25もしくは111のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号32のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号39のアミノ酸配列を含むCDR3、
(ix)配列番号5のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号12のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号19のアミノ酸配列を含むCDR3、
(x)配列番号26もしくは112のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号33のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号40のアミノ酸配列を含むCDR3、
(xi)配列番号6のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号13のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号20のアミノ酸配列を含むCDR3、
(xii)配列番号27もしくは113のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号34のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号41のアミノ酸配列を含むCDR3、
(xiii)配列番号7のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号14のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号21のアミノ酸配列を含むCDR3、
(xiv)配列番号28もしくは114のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号35のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号42のアミノ酸配列を含むCDR3、または
(xv)配列番号1のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号8のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号50のアミノ酸配列を含むCDR3、または
(xvi)配列番号22もしくは108のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号103のアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号36のアミノ酸配列を含むCDR3
を含む、前記抗CD19 sdAb。 - 抗CD19単一ドメイン抗体(sdAb)であって、
(i)配列番号43に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3、
(ii)配列番号44に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3、
(iii)配列番号45に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3、
(iv)配列番号46に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3、
(v)配列番号47に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3、
(vi)配列番号48に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3、
(vii)配列番号49に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3、
(viii)配列番号51に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3、
(ix)配列番号52に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3、
(x)配列番号53に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3、
(xi)配列番号54に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3、
(xii)配列番号55に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3、
(xiii)配列番号56に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3、または、
(xiv)配列番号104に記載のCDR1、CDR2、及びCDR3のアミノ酸配列をそれぞれ有するCDR1、CDR2、及びCDR3
を含む、前記抗CD19 sdAb。 - 前記CDR1、CDR2、またはCDR3が、Kabatナンバリングスキーム、IMGTナンバリングスキーム、AbMナンバリングスキーム、Chothiaナンバリングスキーム、Contactナンバリングスキーム、またはそれらの組み合わせに従って決定される、請求項2に記載の抗CD19 sdAb。
- 配列番号43、配列番号44、配列番号45、配列番号46、配列番号47、配列番号48、配列番号49、配列番号51、配列番号52、配列番号53、配列番号54、配列番号55、配列番号56、及び/または配列番号104に記載の1つ以上のFR領域をさらに含む、請求項1~3のいずれか1項に記載の抗CD19 sdAb。
- 配列番号43、配列番号44、配列番号45、配列番号46、配列番号47、配列番号48、配列番号49、配列番号51、配列番号52、配列番号53、配列番号54、配列番号55、配列番号56、または配列番号104のアミノ酸配列を含む、請求項1~4のいずれか1項に記載の抗CD19 sdAb。
- 配列番号43、配列番号44、配列番号45、配列番号46、配列番号47、配列番号48、配列番号49、配列番号51、配列番号52、配列番号53、配列番号54、配列番号55、配列番号56、または配列番号104の配列と少なくとも75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%、またはそれ以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むか、またはそれからなる、請求項1~4のいずれか1項に記載の抗CD19 sdAb。
- ラクダ科動物のsdAbである、請求項1または請求項2に記載の抗CD19 sdAb。
- ヒト化sdAbである、請求項1または請求項2に記載の抗CD19 sdAb。
- 薬剤に遺伝子的に融合されているかまたは化学的にコンジュゲートされている、請求項1~8のいずれか1項に記載の抗CD19 sdAb。
- (a)請求項1~9のいずれか1項に記載の抗CD19 sdAbを含む細胞外抗原結合ドメイン;
(b)膜貫通ドメイン;及び
(c)細胞内シグナル伝達ドメイン
を含む、キメラ抗原受容体(CAR)。 - 前記細胞外抗原結合ドメインが、1つ以上の追加の抗原結合ドメイン(複数可)をさらに含む、請求項10に記載のCAR。
- 前記細胞外抗原結合ドメインが、1つの追加の抗原結合ドメインをさらに含む、請求項11に記載のCAR。
- 前記細胞外抗原結合ドメインが、2つの追加の抗原結合ドメインをさらに含む、請求項11に記載のCAR。
- 前記1つ以上の追加の抗原結合ドメイン(複数可)が、CD20、CD22、CD33、CD38、BCMA、CS1、ROR1、GPC3、CD123、IL-13R、CD138、c-Met、EGFRvIII、GD-2、NY-ESO-1、MAGE A3、及び糖脂質F77からなる群より選択される1つ以上の抗原(複数可)に結合する、請求項11~13のいずれか1項に記載のCAR。
- 前記膜貫通ドメインが、CD8α、CD4、CD28、CD137、CD80、CD86、CD152、及びPD1からなる群より選択される分子に由来する、請求項10~14のいずれか1項に記載のCAR。
- 前記膜貫通ドメインが、CD8αに由来する、請求項15に記載のCAR。
- 前記細胞内シグナル伝達ドメインが、免疫エフェクター細胞の一次細胞内シグナル伝達ドメインを含む、請求項10~16のいずれか1項に記載のCAR。
- 前記一次細胞内シグナル伝達ドメインが、CD3ζに由来する、請求項17に記載のCAR。
- 前記細胞内シグナル伝達ドメインが、共刺激シグナル伝達ドメインをさらに含む、請求項17または請求項18に記載のCAR。
- 前記共刺激シグナル伝達ドメインが、CD27、CD28、CD137、OX40、CD30、CD40、CD3、LFA-1、CD2、CD7、LIGHT、NKG2C、B7-H3、CD83のリガンド、及びその組み合わせからなる群より選択される共刺激分子に由来する、請求項19に記載のCAR。
- 前記共刺激シグナル伝達ドメインが、CD137に由来する、請求項20に記載のCAR。
- 前記細胞外抗原結合ドメインのC末端と前記膜貫通ドメインのN末端との間に位置するヒンジドメインをさらに含む、請求項10~21のいずれか1項に記載のCAR。
- 前記ヒンジドメインが、CD8αに由来する、請求項22に記載のCAR。
- ポリペプチドのN末端に位置するシグナルペプチドをさらに含む、請求項10~23のいずれか1項に記載のCAR。
- 前記シグナルペプチドが、CD8αに由来する、請求項24に記載のCAR。
- 配列番号57、配列番号58、配列番号59、配列番号60、配列番号61、配列番号62、配列番号63、及び配列番号105からなる群より選択されるアミノ酸配列を含む、キメラ抗原受容体(CAR)。
- 請求項1~9のいずれか1項に記載の抗CD19 sdAbをコードする核酸配列を含む、単離核酸。
- 請求項27に記載の単離核酸を含む、ベクター。
- 請求項10~26のいずれか1項に記載のCARをコードする核酸配列を含む、単離核酸。
- 請求項29に記載の単離核酸を含む、ベクター。
- 請求項10~26のいずれか1項に記載のCAR、請求項29に記載の単離核酸、または請求項30に記載のベクターを含む、操作された免疫エフェクター細胞。
- T細胞またはB細胞である、請求項31に記載の操作された免疫エフェクター細胞。
- 請求項1~9のいずれか1項に記載の抗CD19 sdAb、請求項31もしくは請求項32に記載の操作された免疫エフェクター細胞、または請求項28もしくは請求項30に記載のベクターと、薬学的に許容される賦形剤とを含む、医薬組成物。
- 対象の疾患または障害を処置する方法であって、有効量の、請求項1~9のいずれか1項に記載の抗CD19 sdAb、請求項31もしくは請求項32に記載の操作された免疫エフェクター細胞、または請求項33に記載の医薬組成物を、前記対象に投与することを含む、前記方法。
- 前記疾患または障害が、B細胞関連疾患もしくは障害及び/またはCD19関連疾患もしくは障害である、請求項34に記載の方法。
- 前記疾患または障害が、がんである、請求項35に記載の方法。
- 前記疾患または障害が、B細胞悪性腫瘍である、請求項36に記載の方法。
- 前記B細胞悪性腫瘍が、B細胞白血病またはB細胞リンパ腫である、請求項37記載の方法。
- 前記疾患または障害が、辺縁帯リンパ腫(例えば、脾辺縁帯リンパ腫)、びまん性大細胞型B細胞リンパ腫(DLBCL)、マントル細胞リンパ腫(MCL)、原発性中枢神経系(CNS)リンパ腫、原発性縦隔B細胞リンパ腫(PMBL)、小リンパ球性リンパ腫(SLL)、B細胞前リンパ球性白血病(B-PLL)、濾胞性リンパ腫(FL)、バーキットリンパ腫、原発性眼内リンパ腫、慢性リンパ球性白血病(CLL)、急性リンパ芽球性白血病(ALL)、有毛細胞白血病(HCL)、前駆Bリンパ芽球性白血病、非ホジキンリンパ腫(NHL)、高悪性度B細胞リンパ腫(HGBL)、及び多発性骨髄腫(MM)からなる群より選択される、請求項34に記載の方法。
- 前記疾患または障害が、自己免疫及び/または炎症性疾患である、請求項34に記載の方法。
- 前記自己免疫及び/または炎症性疾患が、不適切なまたは増加したB細胞数及び/または活性化と関連する、請求項40に記載の方法。
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