JP2023160758A - バイオセンサ - Google Patents

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Abstract

【課題】一態様において、再現性の高い測定が可能なバイオセンサの提供。【解決手段】本開示は、一態様として、基材と、前記基材の表面に形成された２以上の電極を含む導電部と、前記導電部の少なくとも一部の上に載置された試薬層とを有するバイオセンサであって、前記試薬層の平均厚みは、５μｍ～１０μｍであり、前記試薬層の中央部の平均厚みに対する周辺部の平均厚みの差（［周辺部の平均厚み］－［中央部の平均厚み］）は、－６μｍ～＋５μｍであるバイオセンサに関する。【選択図】なし

Description

本開示は、バイオセンサ及びそれを用いた測定方法に関する。
バイオセンサは、酵素等の生体物質が配置された検出部の分子認識素子と、電極といったトランスデューサ（信号変換デバイス）とを用いた分子計測装置であって、グルコースをはじめとする様々な生体内の分析対象物の測定に用いられる。
バイオセンサは、一般に、電極と、その電極上に載置された試薬層とを有する。試薬層を形成する方法としては、酸化還元酵素及び電子伝達物質等を含む試薬液を電極上に塗布して乾燥させることにより、形成される。試薬液の塗布方法としては、例えば、ディッピング法、ディスペンサー法、スクリーン印刷法、オフセット印刷法、及びインクジェット印刷法等がある（特許文献１～３）。
特開２０１１－９９６９３号公報 特開平６－３３１７号公報 特開２０１７－５２０７７３号公報
バイオセンサを用いた、グルコースをはじめとする様々な生体物質の測定において、より高い精度（再現性）での測定が求められている。そこで、本開示は、再現性の高い測定が可能なバイオセンサ、及びそれを用いた測定方法を提供する。
本開示は、一態様として、基材と、前記基材の表面に形成された２以上の電極を含む導電部と、前記導電部の少なくとも一部の上に載置された試薬層とを有するバイオセンサであって、前記試薬層の平均厚みは、５μｍ～１０μｍであり、前記試薬層の中央部の平均厚みに対する周辺部の平均厚みの差（［周辺部の平均厚み］－［中央部の平均厚み］）は、－６μｍ～＋５μｍであるバイオセンサに関する。
本開示は、その他の態様として、本開示のバイオセンサを用いて試料中の測定対象物を電気化学的に測定する方法であって、前記バイオセンサの試薬層に試料を接触させること、前記バイオセンサの電極の間に電圧を印加すること、及び前記電圧の印加により発生した電気的信号を測定することを含む方法に関する。
本開示によれば、再現性の高い測定が可能なバイオセンサ、及びそれを用いた測定方法を提供できる。
図１は、本開示の一実施形態におけるバイオセンサ、及び該バイオセンサが使用される測定装置の外観を示す斜視図である。 図２は、本開示の一実施形態におけるバイオセンサの概略構成を示す模式図である。 図３は、実施例における試薬層の形成方法を説明するための模式図である。 図４は、実施例における試薬層の厚みの測定を説明するための模式図である。 図５は、実施例で得られた結果の一例であって、得られた試薬層における平均厚みと、周辺部と中央部との平均厚みの差との関係を示す。 図６は、実施例で得られた結果の一例であって、グルコース電流値の変動係数（％）（グルコース応答電流値再現性）と、試薬層の周辺部と中央部との平均厚みの差との関係を示す。
本発明者らは、再現性が向上されたバイオセンサを提供すべく研究を重ねた過程で、試薬層の平均厚みが５μｍ～１０μｍであって、下記式から算出される試薬層の中央部の平均厚みに対する周辺部の平均厚みの差が－６μｍ～＋５μｍである、試薬層を備えるバイオセンサであれば、高い再現性を実現できることを見出した。
［試薬層の中央部の平均厚みに対する周辺部の平均厚みの差］＝［周辺部の平均厚み］－［中央部の平均厚み］
平均厚み及び周辺部と中央部との平均厚みの差が上記範囲の試薬層であれば、試料が試薬層に供給された際に生じる試薬の溶解がほぼ均一となり、試薬の溶解ムラを抑制することができる。その結果、バイオセンサ間で発生し得る測定誤差（既知濃度の成分を測定した場合に、異なるバイオセンサ間で発生する測定結果のズレ）が低減され、再現性が向上されると推測される。但し、本開示はこのメカニズムに限定されるものではない。
また、本発明者らは、試薬層における試薬の濃度や量のムラが、試薬の溶解ムラが生じる原因となり、ひいては再現性の低下をもたらすという知見を得た。すなわち、試薬層は、通常、酸化還元酵素及び電子伝達物質等の成分を含む試薬液を塗布し、それを乾燥させることによって形成される。試薬液を塗布すると、乾燥過程で生じる濃度勾配によって周辺部から試薬が析出し、周辺部の結晶から成長する。この試薬層形成時（特に試薬の乾燥時）に生じる成分の析出のタイミングの違いが、試薬層において酸化還元酵素等の成分の濃度や量のムラの原因となる。また、１回の試薬液の滴下のみによって試薬層を形成する方法も知られているが、この場合、周辺部の試薬量が多く、中心部の試薬量が少なくなることから、試薬層において酸化還元酵素等の成分の濃度や量のムラの原因となる。
特許文献１は、液滴同士の合体による酵素量の偏りの発生を避けるために、液滴を離間するように吹き付けて試薬層を形成する方法を開示する。しかし、特許文献１の方法では、限られた範囲に十分量の試薬を載置する必要があるバイオセンサでは、十分量の試薬を載置できないという問題がある。
本発明者らは、このムラの発生を低減すべく、酸化還元酵素及び電子伝達物質等の試薬成分を含む試薬液（ドット状の試薬）を所定の間隔で（所定の距離を離間して）吐出して、液滴同士が実質的に合体しないように試薬をドット状に配置し、それを積層一体化させることで試薬層の形成を試みた。このように、ドット状の試薬を所定の間隔で配置し、かつ積層一体化することによって、試薬層形成時の乾燥ムラや、試薬層内の試薬成分の濃度や量のムラを低減することができる。また、試薬をドット状に配置し積層させることで、十分量の試薬をバイオセンサに載置することができる。
［バイオセンサ］
本開示は、一態様として、基材と、前記基材の表面に形成された２以上の電極を含む導電部と、前記導電部の少なくとも一部の上に載置された試薬層とを有するバイオセンサに関する。本開示のバイオセンサは、試薬層の平均厚みが、５μｍ～１０μｍであり、試薬層の中央部の平均厚みに対する周辺部の平均厚みの差（［周辺部の平均厚み］－［中央部の平均厚み］）が、－６μｍ～＋５μｍである。
本開示のバイオセンサによれば、一又は複数の実施形態において、再現性の高い測定が実現できる。本開示のバイオセンサによれば、一又は複数の実施形態において、ロット間差やロット内差が低減され、正しい応答測定値を出力し、正確な値を提供することができうる。
試薬層の平均厚みは、５μｍ～１０μｍである。試薬層の平均厚みは、より高い再現性を得られる点から、５μｍを超え、６μｍ以上、６．５μｍ以上又は７μｍ以上が好ましい。試薬層の平均厚みは、同様の観点から、９．５μｍ以下、９μｍ以下又は８．５μｍ以下が好ましい。試薬層の平均厚みは、実施例に記載の方法により測定し、算出することができる。試薬層の厚みの測定は、例えば、実施例に記載のように、試薬層の短手方向に沿った短手方向中心線（図４の矢印の位置）に沿って厚みを測定することにより行うことができる。図４は、試薬層の平均厚みの測定方法を説明するための模式図であって、試薬層のみを抜き出して記載している。なお、本開示における試薬層とは、分析対象物の測定に実質的に関与する領域に載置される試薬の層のことである。分析対象物の測定に実質的に関与する領域としては、一又は複数の実施形態において、検体が流れる流路内が挙げられる。
試薬層の中央部の平均厚みに対する周辺部の平均厚みの差（「周辺部と中央部との平均厚みの差」ともいう）は、－６μｍ～＋５μｍである。周辺部と中央部と平均厚みの差は、より高い再現性を得られる点から、－５μｍ～＋５μｍ、－４μｍ～＋４μｍ、－３μｍ～＋３μｍ、－２μｍ～＋２μｍ又は－１μｍ～＋１μｍが好ましい。また、同様の点から、－３．５μｍ～＋２．５μｍ、－３μｍ～＋２μｍ、又は－３μｍ～＋１．５μｍがより好ましい。試薬層の中央部の平均厚みに対する周辺部の平均厚みの差は、実施例に記載の方法により算出できる。
試薬層の中央部の平均厚み及び周辺部の平均厚みは、実施例に記載の方法のように、試薬層の平均厚みと同様の方法で測定した厚みを用いて算出することができる。
［試薬層の形状：角柱（直方体）］
試薬層の形状が角柱（直方体）又はそれに類する形状である場合、試薬層の中央部の平均厚みは、試薬層の短手方向中心線と長手方向中心線との交点から、短手方向にそれぞれ０．１ｍｍの幅（合計幅０．２ｍｍ、例えば、図４のＣＥ）における厚みの平均とすることもできる。検体が流れる流路が基材上に形成されたバイオセンサにおいて、その流路内に試薬層が載置され、試薬層の短手方向が検体が流路を流れる流路方向であり、試薬層の長手方向が該流路方向と直交するバイオセンサの幅方向である場合には（例えば、図２の態様）、試薬層の中央部の平均厚みは、試薬層の短手方向の中心線と長手方向の中心線との交点から向かって上流側及び下流側にそれぞれ０．１ｍｍの幅（合計幅０．２ｍｍ）における厚みの平均と言い換えることができる。
試薬層の形状が角柱（直方体）である場合、試薬層の周辺部の平均厚みは、試薬層の短手方向の両端部からそれぞれ０．１ｍｍの幅（例えば、図４のＥＮ１及びＥＮ２）の厚みの平均をいう。
［試薬層の形状：円柱］
試薬層の形状が円柱又はそれに類する形状である場合、試薬層の中央部の平均厚みは、バイオセンサの長手方向における、試薬層の中心から半径０．１ｍｍの幅の厚みの平均をいう。周辺部の平均厚みは、円周部から０．１ｍｍの幅の厚みの平均であって、バイオセンサの長手方向と平行な試薬層の中心線における試薬層の両端部（円周部）それぞれから０．１ｍｍの幅（幅０．１ｍｍ×２）の厚みの平均をいう。
試薬層の中央部の平均厚み及び周辺部の平均厚みは、実施例に記載の方法により測定し、算出することができる。
上面からみた試薬層の形状は、一又は複数の実施形態において、円形、楕円形、及び多角形等があげられる。多角形としては、一又は複数の実施形態において、三角形、四角形、矩形、五角形、六角形、七角形及び八角形等が挙げられる。試薬層は、一又は複数の実施形態において、柱状構造体ともいうことができる。試薬層は、一又は複数の実施形態において、角柱、円柱又は楕円柱であってもよい。試薬層は、一又は複数の実施形態において、四角柱であり、好ましくは略直方体である。略直方体である場合、試薬層は、一又は複数の実施形態において、その長手方向がバイオセンサの長手方向と直交するように、基材上に配置されている。
試薬層は、一又は複数の実施形態において、酸化還元酵素及び電子伝達物質を含む試薬液を、導電部が形成された基材上にドット印刷により積層することにより形成されていてもよい。より高い再現性を得られる点から、２層目以降のドット印刷は、一又は複数の実施形態において、ドット印刷によって先に配置された試薬液が乾燥した後に行うことが好ましい。
試薬層の大きさは、基材、流路及び導電部の形状等に応じて適宜決定することができる。幅７ｍｍ、長さ３０ｍｍである矩形形状の基材で、幅１．８ｍｍ、長さ４ｍｍである矩形形状の流路で、また、流路に露出した導電部のうち作用極の形状が幅１．８ｍｍ、長さ０．８ｍｍの矩形形状の場合、試薬層の幅（バイオセンサの短手方向の長さ）は、一又は複数の実施形態において、１．５ｍｍ以上、２ｍｍ以上、２．５ｍｍ以上又は３ｍｍ以上である。試薬層の幅（バイオセンサの短手方向の長さ）は、一又は複数の実施形態において、５ｍｍ以下、４．５ｍｍ以下又は４ｍｍ以下である。試薬層の長さ（バイオセンサの長手方向の長さ）は、一又は複数の実施形態において、０．５ｍｍ以上、０．６ｍｍ以上、０．８ｍｍ以上又は０．９ｍｍ以上である。試薬層の長さ（バイオセンサの長手方向の長さ）は、一又は複数の実施形態において、２ｍｍ以下、１．６ｍｍ以下又は１．４ｍｍ以下である。
試薬層の底面の大きさ（縦×横）は、一又は複数の実施形態において、０．５ｍｍ×１．５ｍｍ～２ｍｍ×５ｍｍである。本開示において、試薬層の縦方向は、一又は複数の実施形態において、バイオセンサの長手方向であってもよい。試薬層の横方向は、一又は複数の実施形態において、バイオセンサの短手方向であってもよい。
本開示のバイオセンサにおける試薬層は、一又は複数の実施形態において、酸化還元酵素及び電子伝達物質を含む。
［酸化還元酵素］
酸化還元酵素としては、一又は複数の実施形態において、グルコースデヒドロゲナーゼ（ＧＤＨ）、グルコースオキシダーゼ（ＧＯＤ）、コレステロールオキシダーゼ、キノヘムエタノールデヒドロゲナーゼ（ＱＨＥＤＨ（ＰＱＱ Ｅｔｈａｎｏｌ ｄｈ））、ソルビトールデヒドロゲナーゼ、Ｄ－フルクトースデヒドロゲナーゼ、Ｄ－グルコシド－３－デヒドロゲナーゼ、セロビオースデヒドロゲナーゼ、乳酸オキシダーゼ（ＬＯＤ）、乳酸デヒドロゲナーゼ（ＬＤＨ）及び尿酸デヒドロゲナーゼ等が挙げられる。
酸化還元酵素は、一又は複数の実施形態において、補酵素（触媒サブユニット又は触媒ドメインともいう）として、フラビンアデニンジヌクレオチド（ＦＡＤ）、ピロロキノリンキノリン（ＰＱＱ）、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤ）又はニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸（ＮＡＤＰ）を有していてもよい。補酵素を有する酸化還元酵素としては、一又は複数の実施形態において、ＦＡＤ－ＧＤＨ、ＰＱＱ－ＧＤＨ、ＮＡＤ－ＧＤＨ及びＮＡＤＰ－ＧＤＨ等が挙げられる。
酸化還元酵素としては、一又は複数の実施形態において、アスペルギルス・オリゼ（Aspergillus oryzae）型ＦＡＤ－ＧＤＨ（フラビンアデニンジヌクレオチド依存性グルコースデヒドロゲナーゼ又はフラビンアデニンジヌクレオチド結合型グルコースデヒドロゲナーゼ）等が挙げられる。アスペルギルス・オリゼ型ＦＡＤ－ＧＤＨとしては、一又は複数の実施形態において、特開２０１３－０８３６３４号に開示のものが使用できる。当該文献の内容は本開示の一部を構成するものとして援用される。
試薬層における酸化還元酵素の配合量は、一又は複数の実施形態において、１０００ＫＵ／ｃｍ3以下であり、好ましくは５００ＫＵ／ｃｍ3以下であり、より好ましくは３００ＫＵ以下／ｃｍ3である。試薬層における酸化還元酵素の配合量の上限は、特に限定されるものではなく、一又は複数の実施形態において、１ＫＵ／ｃｍ3以上である。試薬層における酸化還元酵素の配合量は、一又は複数の実施形態において、２００ＫＵ／ｃｍ3～３００ＫＵ／ｃｍ3であり、好ましくは２００ＫＵ／ｃｍ3～２８０ＫＵ／ｃｍ3であり、より好ましくは２１０ＫＵ／ｃｍ3～２６０ＫＵ／ｃｍ3である。本開示において、「Ｕ」は、酵素活性の単位であって、至適条件で1分間に１μｍｏｌの基質に作用する酵素量をいう。
［電子伝達物質］
電子伝達物質は、一又は複数の実施形態において、ルテニウム化合物、１－Ｍｅｔｈｏｘｙ－ＰＥＳ（１－Ｍｅｔｈｏｘｙ－５－ｅｔｈｙｌｐｈｅｎａｚｉｎｉｕｍ ｅｔｈｙｌｓｕｌｆａｔｅ、１－ｍＰＥＳ）、１－Ｍｅｔｈｏｘｙ－ＰＭＳ（１－Ｍｅｔｈｏｘｙ－５－ｍｅｔｈｙｌｐｈｅｎａｚｉｎｉｕｍ ｍｅｔｈｙｌｓｕｌｆａｔｅ、１－ｍＰＭＳ）、フェニレンジアミン化合物、キノン化合物、フェリシアン化合物、Ｃｏｅｎｚｙｍｅ Ｑ０（２，３－Ｄｉｍｅｔｈｏｘｙ－５－ｍｅｔｈｙｌ－ｐ－ｂｅｎｚｏｑｕｉｎｏｎｅ）、ＡＺＵＲＥ Ａ Ｃｈｌｏｒｉｄｅ（３－ａｍｉｎｏ－７－（ｄｉｍｅｔｈｙｌａｍｉｎｏ）ｐｈｅｎｏｔｈｉａｚｉｎ－５－ｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ）、Ｐｈｅｎｏｓａｆｒａｎｉｎ（３，７－Ｄｉａｍｉｎｏ－５－ｐｈｅｎｙｌｐｈｅｎａｎｚｉｎｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ）、６－Ａｍｉｎｏｑｕｉｎｏｘａｌｉｎｅ、及びＴｅｔｒａｔｈｉａｆｕｌｖａｌｅｎｅ等が挙げられる。
ルテニウム化合物としては、一又は複数の実施形態において、酸化型のルテニウム錯体として反応系に存在し、電子伝達物質として機能するルテニウム化合物が使用できる。ルテニウム錯体の配位子の種類はとくに限定されない。ルテニウム化合物としては、一又は複数の実施形態において下記化学式で示される酸化型ルテニウム錯体が挙げられる。
［Ｒｕ（ＮＨ3）5Ｘ］n+
Ｘとしては、ＮＨ3、ハロゲンイオン、ＣＮ、ピリジン、ニコチンアミド、またはＨ2Ｏが挙げられ、中でもＮＨ3又はハロゲンイオンが好ましい。ハロゲンイオンとしては、一又は複数の実施形態において、Ｃｌ-、Ｆ-、Ｂｒ-、及びＩ-が挙げられる。式におけるn+は、Ｘの種類により決定される酸化型ルテニウム（ＩＩＩ）錯体の価数を表す。ルテニウム錯体としては、一又は複数の実施形態において、特開２０１８－０１３４００号公報に開示のものが使用できる。当該文献の内容は本開示の一部を構成するものとして援用される。ルテニウム化合物としては、一又は複数の実施形態において、［Ｒｕ（ＮＨ3）6］2+または［Ｒｕ（ＮＨ3）6］3+などのルテニウムヘキサミン等が挙げられる。ルテニウム化合物としては、一又は複数の実施形態において、［Ｒｕ（ＮＨ3）6］Ｃｌ3等が挙げられる。
フェニレンジアミン化合物としては、一又は複数の実施形態において、Ｎ,Ｎ－Ｄｉｍｅｔｈｙｌ－１,４－ｐｈｅｎｙｌｅｎｅｄｉａｍｉｎｅ、及びＮ,Ｎ,Ｎ',Ｎ'－ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙｌ－１,４－ｐｈｅｎｙｌｅｎｅｄｉａｍｉｎｅｄｉｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ等が挙げられる。
キノン化合物としては、一又は複数の実施形態において、１，４－Ｎａｐｈｔｈｏｑｕｉｎｏｎｅ、２－Ｍｅｔｈｙｌ－１，４－Ｎａｐｈｔｈｏｑｕｉｎｏｎｅ（ＶＫ３）、９，１０－Ｐｈｅｎａｎｔｈｒｅｎｅｑｕｉｎｏｎｅ、１，２－Ｎａｐｈｔｈｏｑｕｉｎｏｎｅ、ｐ－Ｘｙｌｏｑｕｉｎｏｎｅ、Ｍｅｔｈｙｌｂｅｎｚｏｑｕｉｎｏｎｅ、２，６－Ｄｉｍｅｔｈｙｌｂｅｎｚｏｑｕｉｎｏｎｅ、Ｓｏｄｉｕｍ１，２－Ｎａｐｈｔｈｏｑｕｉｎｏｎｅ－４－ｓｕｌｆｏｎａｔｅ、１，４－Ａｎｔｈｒａｑｕｉｎｏｎｅ、Ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙｌｂｅｎｚｏｑｕｉｎｏｎｅ、及びＴｈｙｍｏｑｕｉｎｏｎｅ等が挙げられる。
フェリシアン化合物としては、一又は複数の実施形態において、フェリシアン化カルシウム等が挙げられる。
試薬層における電子伝達物質の配合量は、一又は複数の実施形態において、０．１ｍｍｏｌ／ｃｍ3以上であり、好ましくは０．５ｍｍｏｌ／ｃｍ3以上であり、より好ましくは１ｍｍｏｌ／ｃｍ3以上である。試薬層における電子伝達物質の配合量の上限は、特に限定されるものではなく、一又は複数の実施形態において、５０ｍｍｏｌ／ｃｍ3以下又は１０ｍｍｏｌ／ｃｍ3以下である。
試薬層は、酸化還元酵素及び電子伝達物質以外のその他の成分を含んでいてもよい。その他の成分としては、一又は複数の実施形態において、緩衝剤、アミノ酸、界面活性剤、消泡剤、及びバインダー等が挙げられる。
緩衝剤としては、一又は複数の実施形態において、リン酸緩衝剤、アミン系緩衝剤及びカルボキシル基を有する緩衝剤等が挙げられる。アミン系緩衝剤としては、一又は複数の実施形態において、Ｔｒｉｓ（tris(hydroxymethyl)aminomethane）、ＡＣＥＳ（N-(2-Acetamido)-2-aminoethanesulfonic acid）、ＣＨＥＳ（N-Cyclohexyl-2-aminoethanesulfonic acid）、ＣＡＰＳＯ（3-(Cyclohexylamino)-2-hydroxy-1-propanesulfonic acid）、ＴＡＰＳ（N-Tris(hydroxymethyl)methyl-3-aminopropanesulfonic acid）、ＣＡＰＳ（N-Cyclohexyl-3-aminopropanesulfonic acid）、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ（Bis(2-hydroxyethyl)iminotris(hydroxymethyl)methane）、ＴＡＰＳＯ（2-Hydroxy-N-tris(hydroxymethyl)methyl-3-aminopropanesulfonic acid）、ＴＥＳ（N-Tris(hydroxymethyl)methyl-2-aminoethanesulfonic acid）、Ｔｒｉｃｉｎｅ（N-[Tris(hydroxymethyl)methyl]glycine）、及びＡＤＡ（N-(2-Acetamido)iminodiacetic acid）等が挙げられる。カルボキシル基を有する緩衝剤としては、一又は複数の実施形態において、クエン酸緩衝剤、リン酸クエン酸緩衝剤、酢酸－酢酸Ｎａ緩衝剤、リンゴ酸－酢酸Ｎａ緩衝剤、マロン酸－酢酸Ｎａ緩衝剤、及びコハク酸－酢酸Ｎａ緩衝剤等が挙げられる。緩衝剤は、１種類でもよいし２種類以上を併用してもよい。緩衝剤のｐＨは、一又は複数の実施形態において、６．８～７．５であり、好ましくは６．９～７．０である。
アミノ酸としては、一又は複数の実施形態において、グリシン、セリン、リシン、及びヒスチジン等が挙げられる。
界面活性剤としては、一又は複数の実施形態において、ＴｒｉｔｏｎＸ－１００（（ｐ－ｔｅｒｔ－Ｏｃｔｙｌｐｈｅｎｏｘｙ）ｐｏｌｙｅｔｈｏｘｙｅｔｈａｎｏｌ）、Ｔｗｅｅｎ２０（Ｐｏｌｙｏｘｙｅｔｈｙｌｅｎｅ Ｓｏｒｂｉｔａｎ Ｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅ）、ドデシル硫酸ナトリウム、ペルフルオロオクタンスルホン酸、ステアリン酸ナトリウム、アルキルアミノカルボン酸（またはその塩）、カルボキシベタイン、スルホベタイン及びホスホベタイン等が挙げられる。界面活性剤は、１種類でもよいし２種類以上を併用してもよい。
バインダーとしては、一又は複数の実施形態において、樹脂バインダー及び層状無機化合物等が挙げられる。樹脂バインダーとしては、一又は複数の実施形態において、ブチラール樹脂バインダー、及びポリエステル樹脂バインダー等が挙げられる。層状無機化合物としては、ＷＯ２００５／０４３１４６に記載の層状無機化合物を使用できる。層状無機化合物としては、一又は複数の実施形態において、イオン交換能を有する膨潤性粘土鉱物等が挙げられる。層状無機化合物としては、一又は複数の実施形態において、ベントナイト、スメクタイト、バーミキュライト及び合成フッ素雲母等が挙げられる。バインダーは、１種類でもよいし２種類以上を併用してもよい。
［基材］
基材としては、一又は複数の実施形態において、シート状の絶縁性基材が挙げられる。基材の材質としては、一又は複数の実施形態において、熱可塑性樹脂、熱硬化性樹脂、ガラス、セラミック及び紙等が挙げられる。熱可塑性樹脂としては、一又は複数の実施形態において、ポリエーテルイミド（ＰＥＩ）、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、及びポリエチレン（ＰＥ）等が挙げられる。熱硬化性樹脂としては、一又は複数の実施形態において、ポリイミド樹脂及びエポキシ樹脂等が挙げられる。
［導電部］
導電部は、２以上の電極を含み、基材の表面に形成されている。電極は、一又は複数の実施形態において、作用極と対極とを含む電極対であってもよいし、作用極と対極と参照極とを含む３電極系であってもよい。導電部は、一又は複数の実施形態において、さらに検知極を有していてもよい。導電部が、少なくとも作用極及び対極を含む電極対を有する場合、試薬層は、一又は複数の実施形態において、少なくとも作用極上に載置されていることが好ましい。
電極の材質としては、一又は複数の実施形態において、導電性のある材質が使用できる。導電性のある材質としては、一又は複数の実施形態において、金属材料及び炭素材料等が挙げられる。金属材料としては、一又は複数の実施形態において、金（Ａｕ）、白金（Ｐｔ）、銀（Ａｇ）、ルテニウム（Ｒｕ）、パラジウム（Ｐｄ）、及びニッケル（Ｎｉ）合金等が挙げられる。ニッケル合金としては、一又は複数の実施形態において、ニッケル－バナジム合金、ニッケル－タングステン合金、及びニッケル－ルテニウム合金等が挙げられる。炭素材料としては、一又は複数の実施形態において、グラファイト、カーボンナノチューブ、グラフェン、及びメソポーラスカーボン等が挙げられる。
電極は、一又は複数の実施形態において、基材上に金属材料等の上記の材質を成膜することによって形成された薄膜電極等が挙げられる。成膜方法としては、一又は複数の実施形態において、スクリーン印刷、物理蒸着（ＰＶＤ、例えばスパッタリング）又は化学蒸着（ＣＶＤ）等が挙げられる。
本開示のバイオセンサにおける試料としては、一又は複数の実施形態において、生体試料等が挙げられる。生体試料としては、一又は複数の実施形態において、血液及び尿並びにこれら由来の試料、細胞抽出試料、及び細胞培養液等が挙げられる。
本開示のバイオセンサにおける測定対象物としては、一又は複数の実施形態において、グルコース、コレステロール、エタノール、ソルビトール、フルクトース、セロビオース、乳酸及び尿素等が挙げられる。
［バイオセンサの製造方法］
本開示のバイオセンサは、一又は複数の実施形態において、２以上の電極を含む導電部が形成された基材を準備し、導電部上に試薬液をドット印刷により試薬を積層して試薬層を形成することにより製造することができる。試薬層は、一又は複数の実施形態において、２つ以上の電極のうち少なくとも一方（作用極）上の一部に載置するように形成することが好ましい。
本開示は、その他の態様において、本開示のバイオセンサを製造する方法に関する。本開示のバイオセンサの製造方法は、基材の表面に形成された導電部の上に、試薬液をドット印刷することにより、試薬を積層して試薬層を形成することを含み、該試薬層の形成は、形成される試薬層の平均厚み、及び試薬層の中央部の平均厚みに対する周辺部の平均厚みの差が、上記の範囲となるように試薬液をドット印刷して試薬を積層することを含む。
本開示の製造方法における電極、基材、試薬、及び平均厚みは、上記の本開示のバイオセンサと同様である。
［測定方法］
本開示は、その他の態様として、本開示のバイオセンサを用いて試料中の測定対象物を電気化学的に測定する方法であって、前記バイオセンサの試薬層に試料を接触させること、前記バイオセンサの電極の間に電圧を印加すること、及び前記電圧の印加により発生した電気的信号を測定することを含む方法に関する。
本開示において「電気化学的に測定する」とは、電気化学的な測定手法を適用して測定することをいい、一又は複数の実施形態において、電流測定法、電位差測定法、電量分析法等が挙げられる。電流測定法としては、一又は複数の実施形態において、還元された電子伝達物質を電圧の印加により酸化される際に生ずる電流値を測定する方法が挙げられる。
印加する電圧としては特に制限されるものではないが、一又は複数の実施形態において、１０ｍＶ以上又は５０ｍＶ以上であり、好ましくは１００ｍＶ以上である。また、印加電圧は、一又は複数の実施形態において、１０００ｍＶ以下又は７００ｍＶ以下であり、好ましくは６００ｍＶ以下、５００ｍＶ以下、４００ｍＶ以下又は３００ｍＶ以下である。
＜実施形態＞
本開示のバイオセンサの製造方法の一例を、図面を参照して説明する。以下に説明する実施形態の構成は一例であって、本開示は実施形態の構成に限定されない。本実施形態では、インクジェットプリンタを用いたドット印刷により試薬層を形成する場合を例にとり説明する。
まず、図２に示すように、基材上に、第１電極対１０、第２電極対２０及び血液検知極３０からなる電極系（導電部）をスパッタリングによって形成する。第１電極対１０は第１作用極１１及び第１対極１２を有し、第２電極対２０は第２作用極２１及び第２対極２２を有し、当該電極系は、５つの電極によって形成されている。
つぎに、第１電極対１０（第１作用極１１及び第１対極１２）上に試薬層４０を形成する。
試薬層４０は、インクジェットプリンタを用いて、基材上の試薬載置面に所定の間隔で試薬液をドット印刷（滴下及び乾燥）することにより形成することができる。所定の間隔でのドット印刷は、例えば、基材の試薬載置面を平面視したときに、均等な間隔で並べられた複数の列の上に均等な間隔で点が並び、かつ、各列の点は配置間隔の半分ずつ互い違いになっている格子（例えば、斜方格子、菱形格子、中心矩形格子、又は二等辺三角格子）を載置面に仮想的に設け、奇数列の上の各点へのドット印刷と、偶数列の上の各点へのドット印刷とを、交互に繰り返し行うことにより行うことができる。
試薬層４０形成の一実施形態を説明する。まず、第１層目は例えば上記の奇数列の上の各点に試薬液を滴下して乾燥させることで格子状に試薬が配置される。次に、第２層目は例えば偶数列の上の各点に試薬液を滴下して乾燥させることで、第１層目とは異なる位置に格子状に試薬配置される。そして、第３層目は例えば奇数列の上の各点に試薬液を滴下して乾燥させることで、第１層目とは略同じ位置に格子状に試薬が配置される。この試薬液の滴下及び乾燥を繰り返す。その結果、例えば、第２層目を形成する際に滴下した試薬液が、第１層目の試薬の一部を溶解し乾燥することにより第２層目の試薬が配置される。第３層目及び第４層目並びにそれ以降の層においても、この試薬の一部溶解及び乾燥が繰り返し行われることで、試薬層の周辺部の平均厚みと試薬層の中心部の平均厚みとの差が、所定の範囲となる試薬層を形成でき、再現性をさらに向上できる。
試薬層４０を形成した基材上に、被覆領域２ｂとして矩形状の切抜部を有するスペーサ（図示せず）を配置し、その上に空気孔２ｅが形成された合成樹脂製のカバー（図示せず）を配置することによりバイオセンサを製造することができる。
本開示のバイオセンサは、一又は複数の実施形態において、血糖値計といった測定装置に使用することができる。図１に、測定装置の一例を示す。図１の測定装置１は、携帯型の血糖測定器や血糖自己測定メータ等の血糖値計として使用することができる。
図１に示すように、測定装置１は、本体１ａを備える。本体１ａは、短冊状のバイオセンサ２を挿入するための挿入口１ｂと、測定データを表示する表示画面１ｃと、外部機器とデータ通信するためのコネクタ１ｄとが設けられている。
図１に示すように、バイオセンサ２は、試料供給口２ｄと、空気孔２ｅが形成されている。試料供給口２ｄは後述する流路（図２の２ａ）と連通しており、空気孔２ｅは、試料供給口２ｄから流路（図２の２ａ）内に試料が供給されたことによる流路（図２の２ａ）内の空気を排出するために設けられている。
図２に、本開示のバイオセンサの一実施形態の模式図を示す。図２において、上側が上流側であり、下側が下流側である。
バイオセンサ２は、基材と、基材上に金属又は炭素材料を用いて形成された導電部と、導電部の上に形成された試薬層４０とを備える。導電部及び試薬層４０の上には、被覆領域２ｂとして矩形状の切抜部を有するスペーサ（図示せず）、さらにその上に空気孔２ｅが形成された合成樹脂製のカバー（図示せず）が積層される。基材、スペーサ及びカバーの積層により、スペーサの切抜部によって形成された試料供給口２ｄを有する空間が形成され、この空間が流路２ａとなる。空気孔２ｅは流路２ａの下流端付近に形成されている。
本実施形態において、基材は、幅が７ｍｍであり、長さが３０ｍｍであり、厚みが２５０μｍである。流路２ａは、幅が２ｍｍであり、長さが４ｍｍである。試薬層４０は、幅（バイオセンサの短手方向）が２．７ｍｍであり、長さ（バイオセンサの長手方向）が１ｍｍである。
導電部は、第１電極対１０としての第１作用極１１及び第１対極１２、第２電極対２０としての第２作用極２１及び第２対極２２、並びに血液検知極３０の５つの電極が、流路２ａ内においてバイオセンサ２の幅方向（短手方向）にそれぞれの電極が平行して矩形状に露出するように形成されている。流路２ａに露出した第１電極対１０、第２電極対２０及び血液検知極３０が、導入された血液（試料）と接触し、測定領域として機能する。隣接する各電極間は絶縁されている。導電部が物理蒸着によって形成された金属材料によって形成されている場合、各電極間は、レーザー光で所定の電極パターンを描くこと（トリミング）により絶縁されている。導電部が炭素材料を用いて形成された場合、所定の間隔を空けてそれぞれの電極が形成される。本実施形態の導電部（電極）は、ニッケルバナジウム合金を用いて形成されている。
各電極は、バイオセンサ２の長手方向に沿って延設され、上流端側でバイオセンサ２の幅方向に屈曲している。この屈曲部分は、上流側から、第２作用極２１、第２対極２２、第１作用極１１、第１対極１２及び血液検知極３０の順に、バイオセンサ２の幅方向に並行に位置している。各電極は、バイオセンサ２の上流端から下流端近傍までの被覆領域２ｂで前記のカバー（図示せず）で被覆されているが、下流端部分は被覆されずに露出し、この部分が本体１ａの挿入口１ｂに挿入されるコネクタ領域２ｃとなっている。このコネクタ領域２ｃでは、第１作用極１１のリード部１１ａ、第１対極１２のリード部１２ａ、第２作用極２１のリード部２１ａ、第２対極２２のリード部２２ａ及び血液検知極３０のリード部３０ａがそれぞれ露出した接点となっている。
バイオセンサ２の上流部分の幅方向中央部分において、各電極とカバー（図示せず）との間に間隙が形成されている。この間隙は、上述のとおり測定対象物を含む血液が導入され流動するキャピラリ状の流路２ａである。また、上流側から数えて２番目の電極である第２対極２２と、３番目の電極である第１作用極１１との間の間隙である非導電領域４５は、他の電極間の間隙よりも広くなっている。この非導電領域４５は、レーザー光で矩形状のパターンを電極層に描かれることによって他の電極と絶縁されて形成された領域である。
試薬層４０は、第１作用極１１の上に載置されている。この試薬層４０が載置されている領域は、下流側は第１対極１２の半ばまでに至り、上流側は非導電領域４５の半ばまでに至るが、第２対極２２までには及んでいない。換言すると、第１作用極１１と第２対極２２との間が非導電領域４５で隔てられているため、第１作用極１１に載置されている試薬層４０と第２対極２２との接触が妨げられている。バイオセンサ２の試料供給口２ｄに血液（試料）が点着されると、流路２ａの中を、毛細管力によって第２作用極２１、第２対極２２、第１作用極１１、第１対極１２及び血液検知極３０の順に下流側に流動していく。このとき、血液（試料）が第１作用極１１に至ると、第１作用極１１に載置されている試薬層４０の試薬成分が血液（試料）により溶解される。
バイオセンサ２を用いて試料中の測定対象物を電気化学的に測定する方法の一例として、試料が全血、測定対象物がグルコースである場合を例にとり説明する。
まず、全血試料をバイオセンサ２の試料供給口２ｄに接触させる。バイオセンサ２の試料供給口２ｄに全血試料が点着されると、流路２ａの中を、毛細管力によって第２作用極２１、第２対極２２、第１作用極１１、第１対極１２及び血液検知極３０の順に下流側に流動していく。このとき、全血試料が第１作用極１１に至ると、第１作用極１１に載置されている試薬層４０に含まれる試薬成分（酸化還元酵素及び電子伝達物質等）が全血試料により溶解される。
そして、電極対に所定の電位を印加すると、試薬層４０内に存在する電子伝達物質と、試薬層４０の下に位置する第１作用極１１との間で電子の授受が行われ、酸化電流が流れる。これに基づいてグルコース濃度を測定することができる。印加する電圧としては、一又は複数の実施形態において、１０ｍＶ～１０００ｍＶであり、好ましくは１００ｍＶ～６００ｍＶである。
上記実施形態は、試料が血液（例えば、全血）である場合のバイオセンサの形態及び測定方法を例にとり説明したが、本開示はこれに限定されるものではなく、血液以外の尿等の様々な生体試料であっても同様に測定することができる。
本開示は以下の限定されない一又は複数の実施形態に関しうる。
［１］ 基材と、
前記基材の表面に形成された２以上の電極を含む導電部と、
前記導電部の少なくとも一部の上に載置された試薬層とを有するバイオセンサであって、
前記試薬層の平均厚みは、５μｍ～１０μｍであり、
前記試薬層の中央部の平均厚みに対する周辺部の平均厚みの差（［周辺部の平均厚み］－［中央部の平均厚み］）は、－６μｍ～＋５μｍであるバイオセンサ。
［２］ 前記試薬層は、酸化還元酵素及び電子伝達物質を含む［１］記載のバイオセンサ。
［３］ 前記試薬層は、酸化還元酵素及び電子伝達物質を含む試薬液をドット印刷により積層することにより形成されている［１］又は［２］に記載のバイオセンサ。
［４］ 前記試薬層は、略直方体である［１］から［３］のいずれかに記載のバイオセンサ。
［５］ 導電部は、少なくとも作用極及び対極を含む電極対を有し、
前記試薬層は、少なくとも前記作用極上に載置されている［１］から［４］のいずれかに記載のバイオセンサ。
［６］ 試薬層における前記酸化還元酵素の含有量は、試薬層単位体積（ｃｍ3）あたり、２００ＫＵ～３００ＫＵである、［１］から［５］のいずれかに記載のバイオセンサ。［７］ ［１］から［６］のいずれかに記載のバイオセンサを用いて試料中の測定対象物を電気化学的に測定する方法であって、
前記バイオセンサの試薬層に試料を接触させること、
前記バイオセンサの電極の間に電圧を印加すること、及び
前記電圧の印加により発生した電気的信号を測定することを含む方法。
以下、実施例により本開示をさらに詳細に説明するが、これらは例示的なものであって、本開示はこれら実施例に制限されるものではない。
（実施例１）
電極を形成した基材（ＰＥＴ、厚み２５０μｍ、長さ３０ｍｍ×幅７ｍｍ）の上に、下記の手順で、試薬をインクジェット装置でドット印刷することにより、試薬層を形成した。試薬層の形成は、室温、湿度５０％以下の条件下で行った。
＜手順＞
１．インクジェット装置の貯蔵部に試薬液を充填し、電極を形成した基材（ＰＥＴ製）上に、試薬液（粘度：２～３ｍＰａ・ｓ）の液滴を下記条件で吐出し、試薬の液滴ドット（試薬液で構成されたドット状の液滴、斑点様）を形成した（第１層目）。液滴の吐出量を１２ｎｇ（１０ｐＬ）とした。液滴を吐出する間隔（ドットの中心間距離）は７０μｍとし、格子状に吐出を行った。第１層の液滴ドットを全て形成した後、液滴ドットを乾燥させた（３０秒）。乾燥後の液滴ドットの直径は、５０～７０μｍであった。
２．つぎに、乾燥させた第１層目の液滴ドットの上に、試薬の液滴ドットを形成し、乾燥させた（第２層目）。第２層目の液滴ドットの形成は、液滴の吐出量を２３ｎｇ（１８ｐＬ）／１ドットとし、液滴ドットの中心が、第１層目の隣接する液滴ドットの中心（図３のｃ１Ａ、ｃ１Ｂ、ｃ１Ｃ及びｃ１Ｄ）を頂点とする正方形の略中心（図３のｃ２）に位置するように形成した。乾燥後の液滴ドットの直径は、９０～１００μｍであった。液滴を吐出する間隔（ドットの中心間距離）は、第１層目と同様に７０μｍであった。
３．つぎに、乾燥させた第２層目の液滴ドットの上に、試薬の液滴ドットを形成し乾燥させた（第３層目）。第３層目の液滴ドットの形成は、液滴の吐出量を２３ｎｇとし、液滴ドットの中心が、第１層目の液滴ドットの中心と略同じ位置になるようにした。
４．つぎに、乾燥させた第３層目の液滴ドットの上に、第２層目と同様にして試薬の液滴ドットを形成し乾燥させた（第４層目）。
５．最後に、乾燥させた第４層目の液滴ドットの上に、第３層目と同様にして試薬の液滴ドットを形成し乾燥させた（第５層目）。これにより、三次元積層された試薬層（略直方体（四角柱）が得られた。得られた試薬層におけるＦＡＤ－ｄｅｐｅｎｄｅｔ Ｇｌｕｃｏｓｅ Ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅの配合量は２３２ＫＵ／ｃｍ3であり、電子伝達物質の配合量は３．５６ｍｍｏｌ／ｃｍ3である。
＜液滴ドット形成条件＞
隣接するドット中心間距離（例えば、図３のｃ１Ａとｃ１Ｂとの距離（Ｘ））：７０μｍ
吐出回数：試薬層形成領域（縦１０００μｍ、横２７００μｍ、直方体）に対して、縦１４回×横３９回。
本実施例では、基材の試薬の載置面を平面視したときに、均等な間隔で並べられた複数の列の上に均等な間隔で点が並び、かつ、各列の点は配置間隔の半分ずつ互い違いになっている格子に仮想的に設け、第１層目は奇数列の上の点に液滴を滴下して乾燥させることで格子状に並んだ第１層目の液滴ドットを形成した。そして第２層目は偶数列の上の点に液滴を滴下して乾燥させることで第２層目の液滴ドットを形成した。第３層目は奇数列の上の点に液滴を滴下して乾燥させることで第３層目の液滴ドットを形成した。これを繰り返し行った。その結果、第２層目の液滴ドットを形成する際に滴下した液滴は第１層目の液滴ドットを一部溶解した後に乾燥して第２層目の液滴ドットを形成し、第３層目形成時、第４層目形成時及び第５層目形成時も同様に一部溶解及び乾燥が繰り返されるので、試薬層の周辺部の平均厚みと試薬層の中央部の平均厚みとの差が所定の範囲となる試薬層を形成できた。
試薬液の組成は、以下の通りである。
＜試薬液の組成＞
ＦＡＤ－ｄｅｐｅｎｄｅｔ Ｇｌｕｃｏｓｅ Ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ（商品名：Ｇｌｕｃｏｓｅ Ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ "Ａｍａｎｏ ８"、ＭＷ：１８万、天野エンザイム株式会社製）：４８ＫＵ／ｍＬ
Ｒｕ錯体（Ｒｕ（ＮＨ3）6Ｃｌ3、ＬＴ Ｍｅｔａｌ Ｃｏ． Ｌｔｄ社製）：６２６ｍＭ
１－Ｍｅｔｈｏｘｙ ＰＥＳ（１－メトキシ－５－エチルフェナジニウムエチルサルフェート、株式会社同仁化学研究所社製）：２．２７ｍＭ
リン酸バッファー（ｐＨ７．０）：３００ｍＭ
Ｇｌｙｃｉｎｅ：２質量％
ＣＨＡＰＳ：２質量％
消泡剤：０．０４質量％
［試薬層の厚みの測定］
得られた試薬層の厚みは、卓上型触針式プロファイリングシステム（商品名：ＤｅｋｔａｋＸＴ、ＢＲＵＫＥＲ製）を用いて測定した。測定は、上面からみた形状が長方形である試薬層の短手方向に延びる短手方向中心線（バイオセンサの長手方向に沿った長手方向中心線、左端から略１３５０μｍの位置を通る中心線）に沿って行った（図４の矢印方向）。
＜平均厚み＞
平均厚みは、試薬層の短手方向に沿った短手方向中心線（左端から略１３５０μｍの位置）において、一方の試薬層端部から他方の試薬層端部まで（バイオセンサの上流側から下流側まで）の高さ（試薬層の厚み）を６７０ｎｍ刻みに測定し、その相加平均を算出することにより求めた。
＜試薬層の中央部の平均厚みに対する周辺部の平均厚みの差＞
上記のように測定した試薬層の厚みのうち、両端部（バイオセンサの上流側及び下流側）（図４のＥＮ1及びＥＮ2、各幅０．１ｍｍ）の厚みを相加平均することにより両端部の平均厚み（ＴＨEN）を算出した。また、試薬層の短手方向中心線と長手方向中心線との交点を中心とする幅０．２ｍｍの厚み、すなわち試薬層の短手方向（上流側及び下流側）にそれぞれ０．１ｍｍの幅（図４のＣＥ、合計幅０．２ｍｍ）の厚みを相加平均することにより中央部の平均厚み（ＴＨCE）を算出した。得られた両端部の平均厚み（周辺部の平均厚み、ＴＨEN）と中央部の平均厚み（ＴＨCE）とを用い、下記式より試薬層の周辺部と中央部との平均厚みの差を求めた。
［周辺部と中央部との平均厚みの差］＝（ＴＨEN）－（ＴＨCE）
［グルコース電流値再現性試験］
上記の方法で試薬層を形成したバイオセンサを用いて、グルコース電流値再現性試験を行った。グルコース電流値の再現性は、各検体濃度におけるグルコース電流値（Ｃｙｃｌｉｃ Ｖｏｌｔａｍｍｅｔｒｙ、Ｃ．Ｖ．）の平均と定義した。
ポテンショスタット（アークレイ株式会社製）を使用し、０．２Ｖで電圧を印加して電流値を測定した。得られた電流値から変動係数（Ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ ｏｆ Ｖａｒｉａｔｉｏｎ、ＣＶ）（％）を得た。その結果を図６に示す。
ＣＶ（％）は値が低いとグルコース電流値の再現性が高いことを意味し、ＣＶ（％）が１．４未満であることはバイオセンサの性能において好ましい再現性を有することを示す。
＜評価条件＞
使用検体：全血検体
Ｇｌｕ／Ｈｃｔ濃度：Ｇｌｕ４５ｍｇ／ｄｌ／Ｈｃｔ４２％、Ｇｌｕ１３０ｍｇ／ｄｌ／Ｈｃｔ４２％、Ｇｌｕ３３０ｍｇ／ｄｌ／Ｈｃｔ４２％
評価数：ｎ＝１０（各濃度で実施のため、合計３０評価実施した）
図５が、得られた試薬層における平均厚みと、周辺部と中央部との平均厚みの差（高低差）との関係を示し、図６が、グルコース応答電流のＣＶ（％）（グルコース応答電流値再現性（Ｇｌｕ値再現性））と、周辺部と中央部との平均厚みの差（高低差）との関係を示す。図５及び図６のグラフ内に示す数値は、各試薬層の周辺部と中央部との平均厚みの差（高低差）である。図５では、●プロットが試薬層の平均厚みが５μｍ～１０μｍの範囲内のデータを表し、×プロットが５μｍ～１０μｍの範囲外のデータを表す。図６では、中央部と周辺部との平均厚みの差が－６μｍ～＋５μｍの範囲内に含まれるデータにおいて、Ｇｌｕ値再現性（％）が１．４％未満のデータを●プロットで表し、１．４％以上のデータを×プロットで表す。 図５及び６に示すように、試薬層の平均厚み（試薬の高さ）が５μｍ～１０μｍであり、周辺部と中央部との平均厚みの差（高低差）が－６μｍ～＋５μｍであれば、ＣＶ（％）が１．４％未満であり、ロット間やロット内差が低減され、高い再現性が得られた。

Claims (7)

  1. 基材と、
    前記基材の表面に形成された２以上の電極を含む導電部と、
    前記導電部の少なくとも一部の上に載置された試薬層と、を有するバイオセンサであって、
    前記試薬層の平均厚みは、５μｍ～１０μｍであり、
    前記試薬層の中央部の平均厚みに対する周辺部の平均厚みの差（［周辺部の平均厚み］－［中央部の平均厚み］）は、－６μｍ～＋５μｍである、バイオセンサ。
  2. 前記試薬層は、酸化還元酵素及び電子伝達物質を含む、請求項１記載のバイオセンサ。
  3. 前記試薬層は、酸化還元酵素及び電子伝達物質を含む試薬液をドット印刷により積層することにより形成されている、請求項１又は２に記載のバイオセンサ。
  4. 前記試薬層は、略直方体である、請求項１又は２に記載のバイオセンサ。
  5. 前記導電部は、少なくとも作用極及び対極を含む電極対を有し、
    前記試薬層は、少なくとも前記作用極上に載置されている、請求項１又は２に記載のバイオセンサ。
  6. 前記試薬層における前記酸化還元酵素の含有量は、試薬層単位体積（ｃｍ3）あたり、２００ＫＵ～３００ＫＵである、請求項２記載のバイオセンサ。
  7. 請求項１、２又は６に記載のバイオセンサを用いて試料中の測定対象物を電気化学的に測定する方法であって、
    前記バイオセンサの試薬層に試料を接触させること、
    前記バイオセンサの電極の間に電圧を印加すること、及び
    前記電圧の印加により発生した電気的信号を測定することを含む、方法。
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