JP2023109992A - Viral expression construct comprising fibroblast growth factor 21 (fgf21) coding sequence - Google Patents

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viral
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ジメネズ・センザノ,ヴェロニカ
Jimenez Cenzano Veronica
ボシュ・ツベルト,ファティマ
Bosch Tubert Fatima
ハンブリナ・パヤレス,クラウディア
Jambrina Pallares Claudia
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Abstract

To provide novel and safe antifibrotic therapeutics.SOLUTION: The invention relates to viral expression constructs and related viral vectors and nucleic acid molecules and compositions and to their use wherein the constructs and vectors are suitable for expression in mammals and comprise a nucleotide sequence encoding a Fibroblast growth factor 21 (FGF21) to be expressed in livers, adipose tissue and/or skeletal muscle.SELECTED DRAWING: None

Description

本発明は、哺乳動物における、とりわけヒトにおける代謝障害の処置において使用する
ための、肝臓の炎症および/もしくは線維症の処置において使用するための、がんの処置
において使用するための、ならびに/または健康寿命の延伸において使用するための遺伝
子治療組成物を含む医学分野に関する。
The present invention is for use in the treatment of metabolic disorders in mammals, particularly in humans, for use in the treatment of liver inflammation and/or fibrosis, for use in the treatment of cancer, and/or The field of medicine includes gene therapy compositions for use in extending healthy life expectancy.

糖尿病の罹患率は驚くべき速度で増加しており、世界的に大きな健康問題である。肥満
は、インスリン抵抗性および2型糖尿病(T2D)と強く関連している(Moller,
D.E.,and Flier,J.S.,1991. N.Engl.J.Med.
325:938-948)。そのうえ、肥満は死亡リスクを増加させ(Peeters,
A.et al.,2003. Ann.Intern.Med. 138:24-32
)、また心疾患、免疫機能障害、高血圧、関節炎、神経変性疾患およびある種のタイプの
がんの顕著なリスク因子でもある(Roberst,D.L. et al.,2010
. Annu.Rev.Med. 61:301-316;Spiegelman,B.
M. et al.,1993. J.Biol.Chem. 268:6823-68
26;Whitmer,R.A.,2007. Curr.Alzheimer Res
:117-122)。T2Dおよび肥満の臨床的重要性にもかかわらず、利用でき
る有効な処置はない。したがって、T2D-肥満の蔓延を予防し、これと戦うための新規
かつ安全なアプローチへの切迫したニーズがある。近年、肥満はがんの重要なリスク因子
であることが広く受け入れられるようになっている(Roberst,D.L. et
al.,2010. Annu.Rev.Med. 61:301-316)。近年の肥
満の蔓延を考慮すると、肥満に関係したがんリスクは、新規かつ安全なアプローチが切迫
して必要な、臨床的に重要な懸念事項である。体重およびインスリン抵抗性の増大は加齢
にも関連している。したがって、肥満および糖尿病を予防して回復させるための新規かつ
安全なアプローチは、健康寿命を延伸するために必要である。肝線維症は細胞外マトリッ
クスタンパク質、例としてコラーゲンの過剰蓄積であり、主に慢性的な肝臓の炎症に起因
する。進行した肝線維症は、肝硬変、門脈圧亢進症および肝不全に至る。それゆえに、新
規かつ安全な抗線維化治療薬が必要とされる。
The prevalence of diabetes is increasing at an alarming rate and is a major global health problem. Obesity is strongly associated with insulin resistance and type 2 diabetes (T2D) (Moller,
D. E. , and Flier, J.; S. , 1991. N. Engl. J. Med.
325: 938-948 ). Moreover, obesity increases mortality risk (Peeters,
A. et al. , 2003. Ann. Intern. Med. 138 :24-32
), and is also a significant risk factor for heart disease, immune dysfunction, hypertension, arthritis, neurodegenerative diseases and certain types of cancer (Roberst, DL et al., 2010).
. Annu. Rev. Med. 61 :301-316; Spiegelman, B.;
M. et al. , 1993. J. Biol. Chem. 268 :6823-68
26; Whitmer, R.; A. , 2007. Curr. Alzheimer Res
. 4 :117-122). Despite the clinical importance of T2D and obesity, there are no effective treatments available. Therefore, there is an urgent need for new and safe approaches to prevent and combat the T2D-obesity epidemic. In recent years, it has become widely accepted that obesity is an important risk factor for cancer (Roberst, D.L. et al.
al. , 2010. Annu. Rev. Med. 61 :301-316). Given the recent obesity epidemic, obesity-related cancer risks are a clinically important concern for which novel and safer approaches are urgently needed. Increased body weight and insulin resistance are also associated with aging. Therefore, novel and safe approaches to prevent and reverse obesity and diabetes are needed to extend healthy life expectancy. Liver fibrosis is the excessive accumulation of extracellular matrix proteins, such as collagen, and is primarily caused by chronic liver inflammation. Advanced liver fibrosis leads to cirrhosis, portal hypertension and liver failure. Therefore, new and safe anti-fibrotic therapeutic agents are needed.

線維芽細胞増殖因子21(FGF21)は、主に肝臓によって分泌されるが脂肪組織お
よび膵臓によっても分泌される増殖因子であり(Muise,E.S. et al.,
2008. Mol.Pharmacol. 74:403-412)、褐色脂肪組織(
BAT)の成長を増加させ、ならびにBATおよび白色脂肪組織(WAT)においてエネ
ルギー消費を刺激する熱産生遺伝子の発現を増加させることが示されている(Cosku
n,T. et al.,2008. Endocrinology 149:6018
-6027;Fisher,F.M. et al.,2012. Genes Dev
26:271-281;Kharitonenkov,A. et al.,200
5. J.Clin.Invest 115:1627-1635;Konishi,M
. et al.,2000. J.Biol.Chem. 275:12119-12
122;Tomlinson,E. et al.,2002. Endocrinol
ogy 143:1741-1747;Xu,J. et al.,2009. Dia
betes 58:250-259)。
Fibroblast growth factor 21 (FGF21) is a growth factor secreted primarily by the liver, but also by adipose tissue and pancreas (Muise, ES et al.,
2008. Mol. Pharmacol. 74 :403-412), brown adipose tissue (
BAT) growth and increased expression of thermogenic genes that stimulate energy expenditure in BAT and white adipose tissue (WAT) (Cosku
n, T. et al. , 2008. Endocrinology 149 :6018
-6027; Fisher, F.; M. et al. , 2012. Genes Dev
. 26 :271-281; Kharitonenkov, A.; et al. , 200
5. J. Clin. Invest 115 :1627-1635;
. et al. , 2000. J. Biol. Chem. 275 :12119-12
122; Tomlinson, E.; et al. , 2002. Endocrinol
ogy 143 :1741-1747; Xu, J.; et al. , 2009. Dia
Betes 58 :250-259).

遺伝子導入マウスにおけるFGF21の過剰発現はそれらのマウスを食餌誘導性肥満か
ら保護し(Kharitonenkov,A. et al.,2005. J.Cli
n.Invest 115:1627-1635)、ob/obマウス、db/dbマウ
スもしくは高脂肪食(HFD)給餌マウスへの、または肥満ZDFラットへのFGF21
の投与は脂肪症の強い低減を促し、血中のグルコースおよびトリグリセリドを有意に低下
させ、絶食時インスリン(insuling)レベルを減少させ、インスリン感受性を改
善した(Coskun,T. et al.,2008. Endocrinology
149:6018-6027;Kharitonenkov,A. et al.,2
005. J.Clin.Invest 115:1627-1635;Xu,J. e
t al.,2009. Diabetes 58:250-259;Adams,A.
C. et al.,2012. PLoS.One. :e38438.;Berg
lund,E.D. et al.,2009. Endocrinology 150
:4084-4093)。そのうえ、肥満の糖尿病アカゲザルへのFGF21の投与は、
空腹時血漿グルコース、フルクトサミン、トリグリセリド、インスリンおよびグルカゴン
のレベルを劇的に低減させ、少ないものの有意である体重低下を誘導した(Kharit
onenkov,A. et al.,2007. Endocrinology 14
:774-781)。
Overexpression of FGF21 in transgenic mice protects those mice from diet-induced obesity (Kharitonenkov, A. et al., 2005. J. Cli
n. Invest 115 :1627-1635), FGF21 into ob/ob, db/db or high fat diet (HFD) fed mice or into obese ZDF rats.
administration led to a strong reduction in adiposity, significantly lowered blood glucose and triglycerides, decreased fasting insulin levels, and improved insulin sensitivity (Coskun, T. et al., 2008. Endocrinology
149 :6018-6027; Kharitonenkov, A.; et al. , 2
005. J. Clin. Invest 115 :1627-1635; Xu, J.; e
tal. , 2009. Diabetes 58 :250-259; Adams, A.;
C. et al. , 2012. PLoS. One. 7 : e38438. ;Berg
lund, E. D. et al. , 2009. Endocrinology 150
: 4084-4093). Moreover, administration of FGF21 to obese diabetic rhesus monkeys
It dramatically reduced fasting plasma glucose, fructosamine, triglyceride, insulin and glucagon levels and induced a small but significant weight loss (Kharit
onenkov, A.; et al. , 2007. Endocrinology 14
8 :774-781).

天然のFGF21タンパク質は、不十分な薬物動態学的特性を呈する。これは半減期が
短く、インビボでタンパク質分解されやすく、インビトロで凝集しやすい(Huang,
J. et al.,2013. J Pharmacol Exp Ther. 34
6(2):270-80;So,W.Y. and Leung,P.S. 2016.
Med Res Rev. 36(4):672-704;Zhang,J. and
Li,Y. 2015. Front Endocrinol (Lausanne)
:168)。FGF21の半減期を延ばし、安定性および溶解性を改良するため、
様々な工学的アプローチが開発されている。現在、2つの人工的FGF21模倣物(LY
2405319およびPF-05231023)がヒトにおいて試験されている。それで
もなお、これらのFGF21模倣物は複数回の投与を必要とし、患者に著しい負担を与え
る。そのうえ、人工的FGF21模倣物/アナログは、天然のFGF21よりも免疫原性
を呈するリスクがより高いこともあり、例としてLY2405319で処置された患者は
、注射部位反応、抗薬物抗体および重篤な過敏反応を生じた(Gaich,G. et
al.,2013. Cell Metab. 18(3):333-40)。
The native FGF21 protein exhibits poor pharmacokinetic properties. It has a short half-life, is prone to proteolysis in vivo, and is prone to aggregation in vitro (Huang,
J. et al. , 2013. J Pharmacol Exp Ther. 34
6(2) :270-80; So, W.; Y. and Leung, P.; S. 2016.
Med Res Rev. 36(4) :672-704; Zhang, J.; and
Li, Y.; 2015. Front Endocrinol (Lausanne)
. 6 :168). To extend the half-life and improve the stability and solubility of FGF21,
Various engineering approaches have been developed. Currently, two artificial FGF21 mimetics (LY
2405319 and PF-05231023) have been tested in humans. Nonetheless, these FGF21 mimetics require multiple administrations and impose a significant burden on the patient. Moreover, artificial FGF21 mimetics/analogues may also be at a higher risk of exhibiting immunogenicity than native FGF21, for example patients treated with LY2405319 may experience injection site reactions, anti-drug antibodies and severe produced hypersensitivity reactions (Gaich, G. et al.
al. , 2013. Cell Metab. 18(3) :333-40).

それゆえ、既存の処置の全ての欠点を持たない、糖尿病、ならびに/または肥満、なら
びに/または肝臓の炎症および/もしくは線維症、ならびに/またはがん、ならびに/ま
たは健康寿命の延伸のための新たな処置へのニ-ズは依然としてある。
Therefore, new treatments for diabetes and/or obesity and/or liver inflammation and/or fibrosis and/or cancer and/or extension of healthy life expectancy without all the drawbacks of existing treatments. There is still a need for effective treatment.

Moller,D.E.,and Flier,J.S.,1991. N.Engl.J.Med. 325:938-948Moller, D.; E. , and Flier, J.; S. , 1991. N. Engl. J. Med. 325:938-948 Peeters,A. et al.,2003. Ann.Intern.Med. 138:24-32Peeters, A.; et al. , 2003. Ann. Intern. Med. 138:24-32 Roberst,D.L. et al.,2010. Annu.Rev.Med. 61:301-316Roberst, D.; L. et al. , 2010. Annu. Rev. Med. 61:301-316 Spiegelman,B.M. et al.,1993. J.Biol.Chem. 268:6823-6826Spiegelman, B.; M. et al. , 1993. J. Biol. Chem. 268: 6823-6826 Whitmer,R.A.,2007. Curr.Alzheimer Res. 4:117-122Whitmer, R. A. , 2007. Curr. Alzheimer Res. 4:117-122 Muise,E.S. et al.,2008. Mol.Pharmacol. 74:403-412Muise, E. S. et al. , 2008. Mol. Pharmacol. 74:403-412 Coskun,T. et al.,2008. Endocrinology 149:6018-6027Coskun, T.; et al. , 2008. Endocrinology 149:6018-6027 Fisher,F.M. et al.,2012. Genes Dev. 26:271-281Fisher, F.; M. et al. , 2012. Genes Dev. 26:271-281 Kharitonenkov,A. et al.,2005. J.Clin.Invest 115:1627-1635Kharitonenkov, A.; et al. , 2005. J. Clin. Invest 115:1627-1635 Konishi,M. et al.,2000. J.Biol.Chem. 275:12119-12122Konishi, M.; et al. , 2000. J. Biol. Chem. 275: 12119-12122 Tomlinson,E. et al.,2002. Endocrinology 143:1741-1747Tomlinson, E.; et al. , 2002. Endocrinology 143:1741-1747 Xu,J. et al.,2009. Diabetes 58:250-259Xu, J.; et al. , 2009. Diabetes 58:250-259 Adams,A.C. et al.,2012. PLoS.One. 7:e38438.Adams, A.; C. et al. , 2012. PLoS. One. 7: e38438. Berglund,E.D. et al.,2009. Endocrinology 150:4084-4093Berglund, E.; D. et al. , 2009. Endocrinology 150:4084-4093 Kharitonenkov,A. et al.,2007. Endocrinology 148:774-781Kharitonenkov, A.; et al. , 2007. Endocrinology 148:774-781 Huang,J. et al.,2013. J Pharmacol Exp Ther. 346(2):270-80Huang, J.; et al. , 2013. J Pharmacol Exp Ther. 346(2):270-80 So,W.Y. and Leung,P.S. 2016. Med Res Rev. 36(4):672-704So, W. Y. and Leung, P.; S. 2016. Med Res Rev. 36(4):672-704 Zhang,J. and Li,Y. 2015. Front Endocrinol (Lausanne). 6:168Zhang, J.; and Li, Y.; 2015. Front Endocrinol (Lausanne). 6:168 Gaich,G. et al.,2013. Cell Metab. 18(3):333-40Gaich, G.; et al. , 2013. Cell Metab. 18(3):333-40

本発明者らは、代謝障害、好ましくは糖尿病および/または肥満に対抗するため、肝臓
、脂肪組織および/または骨格筋へのアデノ随伴ウイルス(AAV)ベクター媒介性のF
GF21遺伝子導入に基づく改良された遺伝子治療戦略をデザインした。本発明の遺伝子
治療はまた、肝臓の炎症および/または線維症に対抗するためにも用いられ得る。加えて
、本発明の遺伝子治療はまた、加齢に関連した代謝障害、好ましくは糖尿病および/また
は肥満に対抗することによって、健康寿命の延伸のためにも用いられ得る。加えて、本発
明の遺伝子治療はまた、がん、好ましくは肝臓がんに対抗するためにも用いられ得る。
The present inventors have investigated adeno-associated virus (AAV) vector-mediated F-mediated induction into liver, adipose tissue and/or skeletal muscle to combat metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity.
An improved gene therapy strategy based on GF21 gene transfer was designed. Gene therapy of the present invention may also be used to combat liver inflammation and/or fibrosis. In addition, the gene therapy of the present invention can also be used for extending healthy life expectancy by combating age-related metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity. Additionally, the gene therapy of the present invention can also be used to combat cancer, preferably liver cancer.

単一のベクター遺伝子コンストラクトの作出は天然FGF21のインビボ産生を可能に
し、これは免疫原性または他の毒性のリスク低減をもたらすものである。
Creation of a single vector gene construct allows in vivo production of native FGF21, which results in reduced risk of immunogenicity or other toxicity.

しかしながら、当業者は、天然FGF21はインビボでタンパク質分解されやすく、お
よび/またはインビボでのクリアランス速度が速いものであり得ることを、当業者は知っ
ている。実験部において試験された全てのベクターは、血流中への安定な天然FGF21
の長期持続性分泌を可能にすることができることが見出された。遺伝子導入ベクターの単
回投与であっても、効力は保たれる。
However, those skilled in the art are aware that native FGF21 may be susceptible to proteolysis in vivo and/or have a rapid clearance rate in vivo. All vectors tested in the experimental department showed stable introduction of native FGF21 into the bloodstream.
It was found that the long-lasting secretion of Even a single administration of the gene transfer vector remains efficacious.

それゆえ、天然FGF21のインビボ産生のためのかかるAAVベクターの作出は、実
験部において実証されるように、当業者にとって通例的ではない。
Therefore, the generation of such AAV vectors for in vivo production of native FGF21 is not routine for those skilled in the art, as demonstrated in the experimental part.

ウイルス発現コンストラクト
第一の態様において、哺乳動物における発現に適しており、肝臓、脂肪組織および/ま
たは骨格筋において発現する線維芽細胞増殖因子21(FGF21)をコードするヌクレ
オチド配列を含むウイルス発現コンストラクトが提供される。
Viral Expression Constructs In a first aspect, a viral expression construct is suitable for expression in a mammal and comprises a nucleotide sequence encoding fibroblast growth factor 21 (FGF21) that is expressed in liver, adipose tissue and/or skeletal muscle. provided.

「ウイルス発現コンストラクト」、「哺乳動物における発現に適した」、「肝臓」、「
脂肪組織」および「骨格筋」の定義は、「一般的定義」というタイトルの記載部分におい
て提供されている。
"viral expression construct", "suitable for expression in mammals", "liver", "
Definitions of "adipose tissue" and "skeletal muscle" are provided in the description section entitled "General Definitions."

本発明のウイルス発現コンストラクト中に存在するFGF21をコードする好ましいヌ
クレオチド配列は、配列番号4、5、6、7、8、9、10または11と少なくとも60
%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、97%、98%、99
%、100%の同一性を持つ。同一性は、「一般的定義」というタイトルの記載部分にお
いて説明されるように、その配列番号の全体にわたって、またはその部分にわたって査定
され得る。
Preferred nucleotide sequences encoding FGF21 present in the viral expression constructs of the invention are SEQ ID NOs: 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 or 11 and at least 60
%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%, 99%
%, with 100% identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO or over portions thereof as explained in the description section entitled "General Definitions".

本発明のウイルス発現コンストラクト中に存在する、ヒトFGF21をコードするより
好ましいヌクレオチド配列は、配列番号4、5、6または7と少なくとも60%、65%
、70%、75%、80%、85%、90%、95%、97%、98%、99%、100
%の同一性を持つ。同一性は、「一般的定義」というタイトルの記載部分において説明さ
れるように、その配列番号の全体にわたって、またはその部分にわたって査定され得る。
配列番号4は、ヒトFGF21をコードするヌクレオチド配列である。配列番号5は、コ
ドン最適化されたヒトFGF21をコードするヌクレオチド配列、バリアント1である。
配列番号6は、コドン最適化されたヒトFGF21をコードするヌクレオチド配列、バリ
アント2である。配列番号7は、コドン最適化されたヒトFGF21をコードするヌクレ
オチド配列、バリアント3である。バリアント1、バリアント2およびバリアント3は、
同じヒトFGF21タンパク質をコードしており、異なるコドン最適化アルゴリズムによ
り得られた。本発明のウイルス発現コンストラクト中に存在する、マウスFGF21をコ
ードする別の好ましいヌクレオチド配列は、配列番号8または9と少なくとも60%、6
5%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、97%、98%、99%、1
00%の同一性を持つ。同一性は、「一般的定義」というタイトルの記載部分において説
明されるように、その配列番号の全体にわたって、またはその部分にわたって査定され得
る。配列番号8は、マウスFGF21をコードするヌクレオチド配列である。配列番号9
は、コドン最適化されたマウスFGF21をコードするヌクレオチド配列である。本発明
のウイルス発現コンストラクト中に存在する、イヌFGF21をコードする別の好ましい
ヌクレオチド配列は、配列番号10または11と少なくとも60%、65%、70%、7
5%、80%、85%、90%、95%、97%、98%、99%、100%の同一性を
持つ。同一性は、「一般的定義」というタイトルの記載部分において説明されるように、
その配列番号の全体にわたって、またはその部分にわたって査定され得る。配列番号10
は、イヌFGF21をコードするヌクレオチド配列である。配列番号11は、コドン最適
化されたイヌFGF21をコードするヌクレオチド配列である。FGF21をコードする
ヌクレオチド配列は、任意のFGF21遺伝子もしくはFGF21コーディング配列、好
ましくはヒト、マウスもしくはイヌに由来するものであってもよく;または好ましくはヒ
ト、マウスもしくはイヌに由来する変異FGF21遺伝子もしくはFGF21コーディン
グ配列、もしくはコドン最適化されたFGF21遺伝子もしくはFGF21コーディング
配列であってもよい。
A more preferred nucleotide sequence encoding human FGF21 present in a viral expression construct of the invention is SEQ ID NO: 4, 5, 6 or 7 and at least 60%, 65%
, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%, 99%, 100
have % identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO or over portions thereof as explained in the description section entitled "General Definitions".
SEQ ID NO: 4 is the nucleotide sequence encoding human FGF21. SEQ ID NO: 5 is the codon-optimized nucleotide sequence encoding human FGF21, variant 1.
SEQ ID NO:6 is a nucleotide sequence encoding codon-optimized human FGF21, variant 2. SEQ ID NO:7 is a nucleotide sequence encoding codon-optimized human FGF21, variant 3. Variant 1, Variant 2 and Variant 3 are
They encode the same human FGF21 protein and were obtained by different codon optimization algorithms. Another preferred nucleotide sequence encoding murine FGF21 present in a viral expression construct of the invention is SEQ ID NO: 8 or 9 and at least 60%, 6
5%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%, 99%, 1
00% identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO or over portions thereof as explained in the description section entitled "General Definitions". SEQ ID NO:8 is the nucleotide sequence encoding mouse FGF21. SEQ ID NO:9
is a nucleotide sequence encoding codon-optimized murine FGF21. Another preferred nucleotide sequence encoding canine FGF21 present in a viral expression construct of the invention is SEQ ID NO: 10 or 11 and at least 60%, 65%, 70%, 7
5%, 80%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%, 99%, 100% identity. Identity, as explained in the section entitled "General Definitions,"
It can be assessed over the entire SEQ ID NO or over a portion thereof. SEQ ID NO: 10
is the nucleotide sequence encoding canine FGF21. SEQ ID NO: 11 is the nucleotide sequence encoding codon-optimized canine FGF21. The nucleotide sequence encoding FGF21 may be derived from any FGF21 gene or FGF21 coding sequence, preferably human, mouse or dog; or a mutated FGF21 gene or FGF21, preferably derived from human, mouse or dog. It may be a coding sequence, or a codon-optimized FGF21 gene or FGF21 coding sequence.

本明細書中で用いられるFGF21は、当業者に知られているFGF21の活性を少な
くとも検出可能なレベルで発揮する。FGF21の活性は、インスリン感受性を向上させ
ることである。この活性は、実験部において、好ましくは例8または9において記載され
るように、インスリン負荷試験を用いて査定することができる。
As used herein, FGF21 exerts at least a detectable level of the activity of FGF21 known to those skilled in the art. The activity of FGF21 is to improve insulin sensitivity. This activity can be assessed in the experimental part, preferably using an insulin tolerance test, as described in Examples 8 or 9.

ある実施形態において、哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレ
オチド配列が:
(a)配列番号1、2または3のアミノ酸配列と少なくとも60%の配列同一性を持つア
ミノ酸配列を含むポリペプチドをコードするヌクレオチド配列
(b)配列番号4、5、6、7、8、9、10または11のヌクレオチド配列と少なくと
も60%の配列同一性を持つヌクレオチド配列
(c)遺伝暗号の縮重のためにヌクレオチド配列(b)の配列と配列が異なるヌクレオチ
ド配列
よりなる群から選択される、上記のウイルス発現コンストラクトが提供される。
In certain embodiments, a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal is:
(a) a nucleotide sequence encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence having at least 60% sequence identity with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1, 2 or 3; (b) SEQ ID NO: 4, 5, 6, 7, 8, 9 , a nucleotide sequence having at least 60% sequence identity with 10 or 11 nucleotide sequences, (c) a nucleotide sequence that differs in sequence from the sequence of nucleotide sequence (b) due to the degeneracy of the genetic code. , the viral expression constructs described above are provided.

哺乳動物における発現に適したFGF21をコードする好ましいヌクレオチド配列は、
配列番号1、2または3と少なくとも60%、65%、70%、75%、80%、85%
、90%、95%、97%、98%、99%、100%の同一性を持つアミノ酸配列を含
むポリペプチドをコードする。同一性は、「一般的定義」というタイトルの記載部分にお
いて説明されるように、その配列番号の全体にわたって、またはその部分にわたって査定
され得る。配列番号1は、ヒトのFGF21のアミノ酸配列である。配列番号2は、マウ
スのFGF21のアミノ酸配列である。配列番号3は、イヌのFGF21のアミノ酸配列
である。
A preferred nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal is
SEQ ID NO: 1, 2 or 3 with at least 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%
, 90%, 95%, 97%, 98%, 99%, 100% identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO or over portions thereof as explained in the description section entitled "General Definitions". SEQ ID NO: 1 is the amino acid sequence of human FGF21. SEQ ID NO: 2 is the amino acid sequence of mouse FGF21. SEQ ID NO: 3 is the amino acid sequence of canine FGF21.

ある実施形態において、哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレ
オチド配列ならびに要素a)、b)、c)、d)およびe):
(a)肝臓特異的プロモーター
(b)脂肪組織特異的プロモーター
(c)ユビキタスプロモーターと、肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコ
ードする少なくとも1つのヌクレオチド配列と、心臓において発現するマイクロRNAの
標的配列をコードする少なくとも1つのヌクレオチド配列との組み合わせであって、脂肪
組織における特異的発現を可能にするものである、前記組み合わせ
(d)骨格筋プロモーター、ならびに
(e)ユビキタスプロモーターとアデノ随伴ウイルス(AAV)ベクター配列との組み合
わせであって、骨格筋における特異的発現を可能にするものである、前記組み合わせ
のうちの少なくとも1つを含む、上記のウイルス発現コンストラクトが提供される。
In one embodiment, a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and elements a), b), c), d) and e):
(a) a liver-specific promoter (b) an adipose tissue-specific promoter (c) a ubiquitous promoter, at least one nucleotide sequence encoding a target sequence of a microRNA expressed in the liver, and a target sequence of a microRNA expressed in the heart (d) a skeletal muscle promoter and (e) a ubiquitous promoter and adeno-associated virus (AAV ) viral expression constructs as described above in combination with vector sequences, comprising at least one of said combinations, which allows for specific expression in skeletal muscle.

「肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列」または「肝臓において発現するm
iRNAの標的配列」または「肝臓において発現するマイクロRNAの結合部位」とは、
肝臓において発現するマイクロRNAの少なくとも一部に相補的であるまたは部分的に相
補的であるヌクレオチド配列をいう。同様に、「心臓において発現するマイクロRNAの
標的配列」または「心臓において発現するmiRNAの標的配列」または「心臓において
発現するマイクロRNAの結合部位」とは、心臓において発現するマイクロRNAの少な
くとも一部に相補的であるまたは部分的に相補的であるヌクレオチド配列をいう。本明細
書中で規定される肝臓において発現するマイクロRNAの一部または心臓において発現す
るマイクロRNAの一部とは、前記マイクロRNAの少なくとも5個または少なくとも6
個の連続したヌクレオチドのヌクレオチド配列を意味する。結合部位配列は、発現したマ
イクロRNAの少なくとも一部との完全な相補性を持つことができ、これは、配列が完全
マッチであることができてミスマッチが生じないものであり得ることを意味する。あるい
は、結合部位配列は、発現したマイクロRNAの少なくとも一部と部分的に相補的である
ことができ、これは、1個のミスマッチ/5、6個の連続したヌクレオチドが生じ得るこ
とを意味する。部分的に相補的な結合部位は、好ましくは、マイクロRNAのシード領域
と完全なまたは完全に近い相補性を含有し、これは、マイクロRNAのシード領域とその
結合部位との間にミスマッチがない(完全な相補性)または1個のミスマッチ/5、6個
の連続したヌクレオチド(完全に近い相補性)が生じ得ることを意味する。マイクロRN
Aのシード領域は、そのマイクロRNAの約ヌクレオチド2から約ヌクレオチド8までで
あるマイクロRNAの5’領域(すなわち6個のヌクレオチド)からなる。本明細書中で
規定される一部は、好ましくは、前記マイクロRNAのシード領域である。肝臓において
発現するマイクロRNAまたは心臓において発現するマイクロRNAの標的配列を含有す
るメッセンジャーRNA(mRNA)の分解は、RNA干渉経路を通じたもの、またはm
RNAの直接的な翻訳制御(阻害)を介するものであり得る。本発明は、導入遺伝子また
はコードされるタンパク質の発現の阻害においてmiRNAにより最終的に利用される経
路によって限定されるものではない。
"target sequence of microRNA expressed in the liver" or "m
The iRNA target sequence"or"binding site of the microRNA expressed in the liver"is
Refers to a nucleotide sequence that is complementary or partially complementary to at least a portion of a microRNA expressed in the liver. Similarly, a "target sequence of a heart-expressed microRNA" or "target sequence of a heart-expressed miRNA" or "binding site of a heart-expressed microRNA" refers to at least a portion of a heart-expressed microRNA A nucleotide sequence that is complementary or partially complementary to. The part of the microRNA expressed in the liver or the part of the microRNA expressed in the heart as defined herein means at least 5 or at least 6 of said microRNAs
means a nucleotide sequence of consecutive nucleotides. A binding site sequence can be perfectly complementary to at least a portion of the expressed microRNA, meaning that the sequence can be a perfect match and no mismatches occur. . Alternatively, the binding site sequence can be partially complementary to at least part of the expressed microRNA, meaning that 1 mismatch/5, 6 consecutive nucleotides can occur. . A partially complementary binding site preferably contains perfect or near-perfect complementarity with the seed region of the microRNA, which is free of mismatches between the seed region of the microRNA and its binding site. (perfect complementarity) or 1 mismatch/5, 6 consecutive nucleotides (near perfect complementarity) can occur. Micro RN
The seed region of A consists of the 5' region of the microRNA, which is from about nucleotide 2 to about nucleotide 8 of the microRNA (ie, 6 nucleotides). The part defined herein is preferably the seed region of said microRNA. Degradation of messenger RNAs (mRNAs) containing target sequences for microRNAs expressed in the liver or in the heart can be through the RNA interference pathway, or
It may be through direct translational control (inhibition) of RNA. The present invention is not limited by the pathway ultimately utilized by the miRNA in inhibiting transgene or encoded protein expression.

本発明との関連において、肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードす
るヌクレオチド配列は、配列番号12または14~23と少なくとも60%の配列同一性
または類似性を持つヌクレオチド配列を含むヌクレオチド配列により置き換えられ得る。
より好ましいヌクレオチド配列は、配列番号12または14~23と少なくとも60%、
65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、97%、98%、99%、
100%の同一性を持つ。同一性は、「一般的定義」というタイトルの記載部分において
説明されるように、その配列番号の全体にわたって、またはその部分にわたって査定され
得る。1つの実施形態において、肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコー
ドするヌクレオチド配列は、配列番号12と少なくとも60%の配列同一性または類似性
を持つヌクレオチド配列を含むヌクレオチド配列により置き換えられ得る。より好ましい
ヌクレオチド配列は、配列番号12と少なくとも60%、65%、70%、75%、80
%、85%、90%、95%、97%、98%、99%、100%の同一性を持つ。さら
なる実施形態において、肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードする、
配列番号12または14~23において規定されるヌクレオチド配列の少なくとも1コピ
ーが、本発明のウイルス発現コンストラクト中に存在する。さらなる実施形態において、
肝臓特異的マイクロRNAの標的配列をコードする、配列番号12または14~23にお
いて規定されるヌクレオチド配列の2、3、4、5、6、7または8コピーが、本発明の
ウイルス発現コンストラクト中に存在する。好ましい実施形態において、miRT122
a(配列番号12)をコードするヌクレオチド配列の1、2、3、4、5、6、7または
8コピーが、本発明のウイルス発現コンストラクト中に存在する。
In the context of the present invention, nucleotide sequences encoding target sequences for microRNAs expressed in the liver are defined by nucleotide sequences comprising nucleotide sequences having at least 60% sequence identity or similarity to SEQ ID NOs: 12 or 14-23. can be replaced.
A more preferred nucleotide sequence is SEQ ID NO: 12 or 14-23 and at least 60%
65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%, 99%,
Has 100% identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO or over portions thereof as explained in the description section entitled "General Definitions". In one embodiment, the nucleotide sequence encoding the target sequence of the microRNA expressed in the liver can be replaced by a nucleotide sequence comprising a nucleotide sequence having at least 60% sequence identity or similarity with SEQ ID NO:12. More preferred nucleotide sequences are SEQ ID NO: 12 and at least 60%, 65%, 70%, 75%, 80
%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%, 99%, 100% identity. In a further embodiment, encoding a target sequence for a microRNA expressed in the liver;
At least one copy of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NOs: 12 or 14-23 is present in the viral expression constructs of the invention. In a further embodiment,
2, 3, 4, 5, 6, 7 or 8 copies of the nucleotide sequences defined in SEQ ID NOS: 12 or 14-23, which encode the liver-specific microRNA target sequences, are included in the viral expression constructs of the invention. exist. In a preferred embodiment, miRT122
1, 2, 3, 4, 5, 6, 7 or 8 copies of the nucleotide sequence encoding a (SEQ ID NO: 12) are present in the viral expression constructs of the invention.

本明細書中で用いられる肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列は、当業者に
知られている肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列の活性を少なくとも検出可
能なレベルで発揮する。肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列の活性は、その
同族である肝臓において発現するマイクロRNAに結合することであり、および導入遺伝
子に作動的に連結されたときに肝臓における導入遺伝子発現の標的解除を媒介することで
ある。この活性は、実験部において記載されるように、qPCRにより肝臓における導入
遺伝子の発現レベルを測定することによって査定することができる。
As used herein, a liver-expressed microRNA target sequence exerts at least a detectable level the activity of a liver-expressed microRNA target sequence known to those of skill in the art. The activity of the target sequence of a microRNA expressed in the liver is to bind to its cognate microRNA expressed in the liver and to detarget transgene expression in the liver when operably linked to the transgene. is to mediate This activity can be assessed by measuring transgene expression levels in the liver by qPCR, as described in the experimental part.

本発明との関連において、心臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードす
るヌクレオチド配列は、配列番号13または23~30と少なくとも60%の配列同一性
または類似性を持つヌクレオチド配列を含むヌクレオチド配列により置き換えられ得る。
好ましいヌクレオチド配列は、配列番号13または23~30と少なくとも60%、65
%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、97%、98%、99%、10
0%の同一性を持つ。同一性は、「一般的定義」というタイトルの記載部分において説明
されるように、その配列番号の全体にわたって、またはその部分にわたって査定され得る
。1つの実施形態において、心臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードす
るヌクレオチド配列は、配列番号13と少なくとも60%の配列同一性または類似性を持
つヌクレオチド配列を含むヌクレオチド配列により置き換えられ得る。好ましいヌクレオ
チド配列は、配列番号13と少なくとも60%、65%、70%、75%、80%、85
%、90%、95%、97%、98%、99%、100%の同一性を持つ。さらなる実施
形態において、心臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードする、配列番号
13または23~30において規定されるヌクレオチド配列の少なくとも1コピーが、本
発明のウイルス発現コンストラクト中に存在する。さらなる実施形態において、心臓特異
的マイクロRNAの標的配列をコードする、配列番号13または23~30において規定
されるヌクレオチド配列の2、3、4、5、6、7または8コピーが、本発明のウイルス
発現コンストラクト中に存在する。好ましい実施形態において、miRT1(配列番号1
3)をコードするヌクレオチド配列の1、2、3、4、5、6、7または8コピーが、本
発明のウイルス発現コンストラクト中に存在する。
In the context of the present invention, nucleotide sequences encoding target sequences for microRNAs expressed in the heart are defined by nucleotide sequences comprising nucleotide sequences having at least 60% sequence identity or similarity to SEQ ID NOs: 13 or 23-30. can be replaced.
Preferred nucleotide sequences are SEQ ID NO: 13 or 23-30 and at least 60%, 65
%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%, 99%, 10
have 0% identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO or over portions thereof as explained in the description section entitled "General Definitions". In one embodiment, the nucleotide sequence encoding the target sequence of the microRNA expressed in the heart can be replaced by a nucleotide sequence comprising a nucleotide sequence with at least 60% sequence identity or similarity to SEQ ID NO:13. Preferred nucleotide sequences are SEQ ID NO: 13 and at least 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%
%, 90%, 95%, 97%, 98%, 99%, 100% identity. In a further embodiment, at least one copy of the nucleotide sequence defined in SEQ ID NOS: 13 or 23-30, which encodes a target sequence for microRNAs expressed in the heart, is present in the viral expression construct of the invention. In a further embodiment, 2, 3, 4, 5, 6, 7 or 8 copies of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NOS: 13 or 23-30 encoding the target sequence of a cardiac-specific microRNA are of the present invention. Present in viral expression constructs. In a preferred embodiment, miRT1 (SEQ ID NO: 1
1, 2, 3, 4, 5, 6, 7 or 8 copies of the nucleotide sequence encoding 3) are present in the viral expression construct of the invention.

心臓において発現するマイクロRNAの標的配列の活性は、その同族である心臓におい
て発現するマイクロRNAに結合することであり、および導入遺伝子に作動的に連結され
たときに心臓における導入遺伝子発現の標的解除を媒介することである。この活性は、実
験部において記載されるように、qPCRにより心臓における導入遺伝子の発現レベルを
測定することによって査定することができる。
The activity of the target sequence of a microRNA expressed in the heart is to bind to its cognate microRNA expressed in the heart and to detarget transgene expression in the heart when operably linked to a transgene. is to mediate This activity can be assessed by measuring transgene expression levels in the heart by qPCR, as described in the experimental section.

ある実施形態において、肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードする
ヌクレオチド配列および心臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードするヌ
クレオチド配列が配列番号12から30の配列および/またはそれらの組み合わせよりな
る群から選択される、上記のウイルス発現コンストラクトが提供される。
In certain embodiments, the nucleotide sequence encoding the target sequence of the microRNA expressed in the liver and the nucleotide sequence encoding the target sequence of the microRNA expressed in the heart consist of the sequences of SEQ ID NOs: 12 to 30 and/or combinations thereof. A viral expression construct as described above is provided which is selected from the group.

1つの実施形態において、肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードす
る配列番号12または14~23において規定されるヌクレオチド配列の少なくとも1コ
ピー、および心臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードする配列番号13
または23~30において規定されるヌクレオチド配列の少なくとも1コピーが、本発明
のウイルス発現コンストラクト中に存在する。さらなる実施形態において、肝臓において
発現するマイクロRNAの標的配列をコードする配列番号12または14~23において
規定されるヌクレオチド配列の2、3、4、5、6、7または8コピー、および心臓にお
いて発現するマイクロRNAの標的配列をコードする配列番号13または23~30にお
いて規定されるヌクレオチド配列の2、3、4、5、6、7または8コピーが、本発明の
ウイルス発現コンストラクト中に存在する。さらなる実施形態において、miRT122
a(配列番号12)をコードするヌクレオチド配列の1、2、3、4、5、6、7または
8コピー、およびmiRT1(配列番号13)をコードするヌクレオチド配列の1、2、
3、4、5、6、7または8コピーが、本発明のウイルス発現コンストラクト中に組み合
わされる。さらなる実施形態において、miRT122a(配列番号12)をコードする
ヌクレオチド配列の4コピー、およびmiRT1(配列番号13)をコードするヌクレオ
チド配列の4コピーが、本発明のウイルス発現コンストラクト中に組み合わされる。
In one embodiment, at least one copy of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NOs: 12 or 14-23 encoding a target sequence for a microRNA expressed in the liver and a sequence encoding a target sequence for a microRNA expressed in the heart. number thirteen
Alternatively, at least one copy of the nucleotide sequences defined in 23-30 is present in the viral expression constructs of the invention. In a further embodiment, 2, 3, 4, 5, 6, 7 or 8 copies of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NOS: 12 or 14-23 encoding a target sequence for a microRNA expressed in the liver and expressed in the heart 2, 3, 4, 5, 6, 7 or 8 copies of the nucleotide sequence defined in SEQ ID NOs: 13 or 23-30 encoding the target sequence of the microRNA that controls the viral expression construct of the present invention. In a further embodiment, miRT122
1, 2, 3, 4, 5, 6, 7 or 8 copies of the nucleotide sequence encoding a (SEQ ID NO: 12) and 1, 2 of the nucleotide sequence encoding miRT1 (SEQ ID NO: 13),
3, 4, 5, 6, 7 or 8 copies are combined in the viral expression constructs of the invention. In a further embodiment, 4 copies of the nucleotide sequence encoding miRT122a (SEQ ID NO: 12) and 4 copies of the nucleotide sequence encoding miRT1 (SEQ ID NO: 13) are combined in the viral expression construct of the invention.

定義「プロモーター」、「肝臓特異的プロモーター」、「脂肪組織特異的プロモーター
」、「ユビキタスプロモーター」、「骨格筋プロモーター」は、「一般的定義」というタ
イトルの記載部分において提供されている。
The definitions "promoter", "liver-specific promoter", "adipose tissue-specific promoter", "ubiquitous promoter", "skeletal muscle promoter" are provided in the description section entitled "General Definitions".

好ましいユビキタスプロモーターは、CAGプロモーターである。 A preferred ubiquitous promoter is the CAG promoter.

本発明との関連において、CAGプロモーターのヌクレオチド配列は、配列番号44と
少なくとも60%の配列同一性または類似性を持つヌクレオチド配列を含むヌクレオチド
配列により置き換えられ得る。好ましいヌクレオチド配列は、配列番号44と少なくとも
60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、97%、98%、
99%、100%の同一性を持つ。同一性は、「一般的定義」というタイトルの記載部分
において説明されるように、その配列番号の全体にわたって、またはその部分にわたって
査定され得る。
In the context of the present invention, the nucleotide sequence of the CAG promoter may be replaced by a nucleotide sequence comprising a nucleotide sequence having at least 60% sequence identity or similarity with SEQ ID NO:44. Preferred nucleotide sequences are SEQ ID NO: 44 and at least 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%,
99%, 100% identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO or over portions thereof as explained in the description section entitled "General Definitions".

別の好ましいユビキタスプロモーターは、サイトメガロウイルス(CMV)プロモータ
ーである。
Another preferred ubiquitous promoter is the cytomegalovirus (CMV) promoter.

本発明との関連において、CMVプロモーターのヌクレオチド配列は、配列番号45と
少なくとも60%の配列同一性または類似性を持つヌクレオチド配列を含むヌクレオチド
配列により置き換えられ得る。好ましいヌクレオチド配列は、配列番号45と少なくとも
60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、97%、98%、
99%、100%の同一性を持つ。同一性は、「一般的定義」というタイトルの記載部分
において説明されるように、その配列番号の全体にわたって、またはその部分にわたって
査定され得る。
In the context of the present invention, the nucleotide sequence of the CMV promoter may be replaced by a nucleotide sequence comprising a nucleotide sequence having at least 60% sequence identity or similarity with SEQ ID NO:45. Preferred nucleotide sequences are SEQ ID NO: 45 and at least 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%,
99%, 100% identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO or over portions thereof as explained in the description section entitled "General Definitions".

好ましくは、前記CMVプロモーターは、イントロン配列と一緒に用いられる。この関
連において、イントロン配列は、配列番号43と少なくとも60%の配列同一性または類
似性を持つヌクレオチド配列を含むヌクレオチド配列により置き換えられ得る。好ましい
ヌクレオチド配列は、配列番号43と少なくとも60%、65%、70%、75%、80
%、85%、90%、95%、97%、98%、99%、100%の同一性を持つ。同一
性は、「一般的定義」というタイトルの記載部分において説明されるように、その配列番
号の全体にわたって、またはその部分にわたって査定され得る。
Preferably, said CMV promoter is used together with intronic sequences. In this regard, an intron sequence may be replaced by a nucleotide sequence comprising a nucleotide sequence having at least 60% sequence identity or similarity with SEQ ID NO:43. Preferred nucleotide sequences are SEQ ID NO: 43 and at least 60%, 65%, 70%, 75%, 80
%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%, 99%, 100% identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO or over portions thereof as explained in the description section entitled "General Definitions".

好ましい肝臓特異的プロモーターは、ヒトα1-アンチトリプシン(hAAT)プロモ
ーターである。
A preferred liver-specific promoter is the human α1-antitrypsin (hAAT) promoter.

本発明との関連において、hAATプロモーターのヌクレオチド配列は、配列番号47
と少なくとも60%の配列同一性または類似性を持つヌクレオチド配列を含むヌクレオチ
ド配列により置き換えられ得る。好ましいヌクレオチド配列は、配列番号47と少なくと
も60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、97%、98%
、99%、100%の同一性を持つ。同一性は、「一般的定義」というタイトルの記載部
分において説明されるように、その配列番号の全体にわたって、またはその部分にわたっ
て査定され得る。
In the context of the present invention, the nucleotide sequence of the hAAT promoter is SEQ ID NO: 47
can be replaced by a nucleotide sequence that includes a nucleotide sequence that has at least 60% sequence identity or similarity with Preferred nucleotide sequences are SEQ ID NO: 47 and at least 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%
, 99% and 100% identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO or over portions thereof as explained in the description section entitled "General Definitions".

好ましくは、前記hAATプロモーターは、イントロン配列と一緒に用いられる。好ま
しいイントロン配列は、アポリポタンパク質Eからの肝細胞制御領域(HCR)エンハン
サーである。最も好ましいイントロン配列は、配列番号53において規定されるアポリポ
タンパク質EからのHCRエンハンサーである。この関連において、イントロン配列は、
配列番号53と少なくとも60%の配列同一性または類似性を持つヌクレオチド配列を含
むヌクレオチド配列により置き換えられ得る。好ましいヌクレオチド配列は、配列番号5
3と少なくとも60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、9
7%、98%、99%、100%の同一性を持つ。同一性は、「一般的定義」というタイ
トルの記載部分において説明されるように、その配列番号の全体にわたって、またはその
部分にわたって査定され得る。ある実施形態において、前記hAATプロモーターは、イ
ントロン配列の1、2、3、4または5コピーと一緒に用いられる。好ましい実施形態に
おいて、前記hAATプロモーターは、配列番号53において規定されるアポリポタンパ
ク質EからのHCRエンハンサーの1、2、3、4または5コピーと一緒に用いられる。
Preferably, the hAAT promoter is used together with intronic sequences. A preferred intron sequence is the hepatocyte control region (HCR) enhancer from apolipoprotein E. A most preferred intron sequence is the HCR enhancer from apolipoprotein E defined in SEQ ID NO:53. In this connection, intronic sequences are
It can be replaced by a nucleotide sequence that includes a nucleotide sequence that has at least 60% sequence identity or similarity with SEQ ID NO:53. A preferred nucleotide sequence is SEQ ID NO:5
3 and at least 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 9
7%, 98%, 99%, 100% identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO or over portions thereof as explained in the description section entitled "General Definitions". In certain embodiments, the hAAT promoter is used with 1, 2, 3, 4 or 5 copies of intronic sequences. In a preferred embodiment, the hAAT promoter is used with 1, 2, 3, 4 or 5 copies of the HCR enhancer from apolipoprotein E defined in SEQ ID NO:53.

他の肝臓特異的プロモーターは、アルブミンプロモーター、主要尿タンパク質プロモー
ター、ホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)プロモーター、肝臓
富化タンパク質アクティベータープロモーター(liver-enriched pro
tein activator promoter)、トランスチレチンプロモーター、
チロキシン結合グロブリンプロモーター、アポリポタンパク質A1プロモーター、肝臓脂
肪酸結合タンパク質プロモーターおよびフェニルアラニンヒドロキシラーゼプロモーター
である。
Other liver-specific promoters include the albumin promoter, the major urinary protein promoter, the phosphoenolpyruvate carboxykinase (PEPCK) promoter, the liver-enriched protein activator promoter (liver-enriched protein activator promoter).
tein activator promoter), transthyretin promoter,
The thyroxine binding globulin promoter, the apolipoprotein A1 promoter, the liver fatty acid binding protein promoter and the phenylalanine hydroxylase promoter.

脂肪組織特異的プロモーターは、脂肪細胞タンパク質2(aP2、脂肪酸結合タンパク
質4(FABP4)としても知られる)プロモーター、PPARyプロモーター、アディ
ポネクチンプロモーター、ホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)
プロモーター、ヒトアロマターゼチトクロムp450(p450arom)に由来するプ
ロモーター mini/aP2プロモーター(脂肪特異的なaP2エンハンサーおよび基
本のaP2プロモーターから構成される)、脱共役タンパク質1(UCP1)プロモータ
ー、mini/UCP1プロモーター(脂肪特異的なUCP1エンハンサーおよび基本の
UCP1プロモーターから構成される)、アディプシンプロモーター、レプチンプロモー
ターまたはFoxa-2プロモーターである。好ましい脂肪組織特異的プロモーターは、
mini/aP2プロモーター(配列番号54)およびmini/UCP1プロモーター
(配列番号55)である。この関連において、脂肪組織特異的プロモーター配列は、配列
番号53または配列番号54と少なくとも60%の配列同一性または類似性を持つヌクレ
オチド配列を含むヌクレオチド配列により置き換えられ得る。好ましいヌクレオチド配列
は、配列番号53または配列番号54と少なくとも60%、65%、70%、75%、8
0%、85%、90%、95%、97%、98%、99%、100%の同一性を持つ。同
一性は、「一般的定義」というタイトルの記載部分において説明されるように、その配列
番号の全体にわたって、またはその部分にわたって査定され得る。
Adipose tissue-specific promoters include adipocyte protein 2 (aP2, also known as fatty acid binding protein 4 (FABP4)) promoter, PPARy promoter, adiponectin promoter, phosphoenolpyruvate carboxykinase (PEPCK)
promoter, promoter derived from human aromatase cytochrome p450 (p450arom) mini/aP2 promoter (composed of adipose-specific aP2 enhancer and basal aP2 promoter), uncoupling protein 1 (UCP1) promoter, mini/UCP1 promoter (fat (composed of a specific UCP1 enhancer and the basal UCP1 promoter), the adipsin promoter, the leptin promoter or the Foxa-2 promoter. A preferred adipose tissue-specific promoter is
mini/aP2 promoter (SEQ ID NO:54) and mini/UCP1 promoter (SEQ ID NO:55). In this regard, the adipose tissue-specific promoter sequence may be replaced by a nucleotide sequence comprising a nucleotide sequence having at least 60% sequence identity or similarity with SEQ ID NO:53 or SEQ ID NO:54. Preferred nucleotide sequences are SEQ ID NO: 53 or SEQ ID NO: 54 and at least 60%, 65%, 70%, 75%, 8
0%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%, 99%, 100% identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO or over portions thereof as explained in the description section entitled "General Definitions".

好ましい骨格筋プロモーターは、ミオシン軽鎖プロモーター、ミオシン重鎖プロモータ
ー、デスミンプロモーター、筋クレアチンキナーゼ(MCK)プロモーター、平滑筋アル
ファ-アクチンプロモーター、CK6プロモーター、Unc-45ミオシンシャペロンB
プロモーター、MCKエンハンサーのコピーと組み合わせた基本のMCKプロモーター、
Enh358MCKプロモーター(MCKエンハンサーとMCK遺伝子の358bp近位
プロモーターとの組み合わせ)である。最も好ましい骨格筋プロモーターは、配列番号5
6において規定されるC5-12プロモーターである。この関連において、骨格筋プロモ
ーター配列は、配列番号56と少なくとも60%の配列同一性または類似性を持つヌクレ
オチド配列を含むヌクレオチド配列により置き換えられ得る。好ましいヌクレオチド配列
は、配列番号56と少なくとも60%、65%、70%、75%、80%、85%、90
%、95%、97%、98%、99%、100%の同一性を持つ。同一性は、「一般的定
義」というタイトルの記載部分において説明されるように、その配列番号の全体にわたっ
て、またはその部分にわたって査定され得る。
Preferred skeletal muscle promoters include myosin light chain promoter, myosin heavy chain promoter, desmin promoter, muscle creatine kinase (MCK) promoter, smooth muscle alpha-actin promoter, CK6 promoter, Unc-45 myosin chaperone B
promoter, the basal MCK promoter combined with a copy of the MCK enhancer;
Enh358MCK promoter (a combination of the MCK enhancer and the 358 bp proximal promoter of the MCK gene). A most preferred skeletal muscle promoter is SEQ ID NO:5
6, the C5-12 promoter. In this regard, the skeletal muscle promoter sequence may be replaced by a nucleotide sequence comprising a nucleotide sequence having at least 60% sequence identity or similarity with SEQ ID NO:56. Preferred nucleotide sequences are SEQ ID NO: 56 and at least 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%
%, 95%, 97%, 98%, 99%, 100% identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO or over portions thereof as explained in the description section entitled "General Definitions".

本明細書中で用いられるプロモーターは(特にそのプロモーター配列が所与の配列番号
と極小の同一性パーセンテージを持つものとして規定されるとき)、当業者に知られてい
るプロモーターの活性を少なくとも発揮するものである。かかる活性の定義については「
一般的定義」というタイトルの記載部分を参照されたい。好ましくは、所与の配列番号と
極小の同一性パーセンテージを持つものとして規定されるプロモーターは、当業者に知ら
れているアッセイにおいて査定されるように、それに作動可能に連結されるヌクレオチド
配列(すなわちFGF21をコードするヌクレオチド配列)の転写を制御するものである
。本発明との関連において、前記プロモーターは、上で規定されるFGF21ヌクレオチ
ド配列に作動的に連結している。1つの実施形態において、プロモーターは、細胞特異的
および/または組織特異的であり、好ましくは肝臓、脂肪組織および/または骨格筋に特
異的である。
A promoter as used herein (especially when its promoter sequence is defined as having a minimal percentage identity with a given SEQ ID NO) exhibits at least the activity of a promoter known to those skilled in the art. It is a thing. For a definition of such activity see "
See section entitled "General Definitions". Preferably, a promoter defined as having minimal percent identity to a given SEQ ID NO has a nucleotide sequence operably linked thereto (i.e. It regulates transcription of FGF21-encoding nucleotide sequence). In the context of the present invention, said promoter is operably linked to the FGF21 nucleotide sequence defined above. In one embodiment, the promoter is cell- and/or tissue-specific, preferably liver, adipose tissue and/or skeletal muscle specific.

それゆえ、いくつかのウイルス発現コンストラクトが本発明によって包含される:
哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレオチド配列を含み、および
要素a)を含むウイルス発現コンストラクト、
哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレオチド配列を含み、および
要素b)を含むウイルス発現コンストラクト、
哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレオチド配列を含み、および
要素c)を含むウイルス発現コンストラクト、
哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレオチド配列を含み、および
要素d)を含むウイルス発現コンストラクト、
哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレオチド配列を含み、および
要素e)を含むウイルス発現コンストラクト、
哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレオチド配列を含み、ならび
に要素b)および要素c)のヌクレオチド配列を含むウイルス発現コンストラクト、
哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレオチド配列を含み、ならび
に要素e)および要素c)のヌクレオチド配列を含むウイルス発現コンストラクト。
Therefore, several viral expression constructs are encompassed by the present invention:
a viral expression construct comprising a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and comprising element a);
a viral expression construct comprising a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and comprising element b);
a viral expression construct comprising a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and comprising element c);
a viral expression construct comprising a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and comprising element d);
a viral expression construct comprising a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and comprising element e);
a viral expression construct comprising a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and comprising the nucleotide sequences of elements b) and c);
A viral expression construct comprising a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and comprising the nucleotide sequences of elements e) and c).

ある実施形態において、肝臓特異的プロモーターがヒトα1-アンチトリプシン(hA
AT)プロモーターであり、ならびに/または脂肪組織特異的プロモーターがmini/
ap2プロモーターおよび/もしくはmini/UCP1プロモーターであり、ならびに
/または骨格筋プロモーターがC5-12プロモーターであり、ならびに/またはユビキ
タスプロモーターがサイトメガロウイルス(CMV)プロモーターおよび/もしくはCA
Gプロモーターである、本明細書中に記載されるウイルス発現コンストラクトが提供され
る。
In certain embodiments, the liver-specific promoter is human α1-antitrypsin (hA
AT) promoter and/or an adipose tissue-specific promoter is mini/
ap2 promoter and/or mini/UCP1 promoter and/or skeletal muscle promoter is C5-12 promoter and/or ubiquitous promoter is cytomegalovirus (CMV) promoter and/or CA
A viral expression construct described herein is provided that is a G promoter.

ある実施形態において、哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレ
オチド配列および要素a)を含み、肝臓特異的プロモーターがhAATプロモーター(配
列番号47)である、ウイルス発現コンストラクトが包含される。
In certain embodiments, viral expression constructs are included comprising a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and element a), wherein the liver-specific promoter is the hAAT promoter (SEQ ID NO: 47).

好ましい実施形態において、哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌ
クレオチド配列および要素a)を含み、AAV8-hAAT-moFGF21である、ウ
イルス発現コンストラクトが包含される。このコンストラクトは、例えば図6A中にIT
R2-hAAT-moFGF21-polyA-ITR2として描写されるウイルス発現
コンストラクトを含有し;この発現コンストラクトの配列は配列番号34中に含まれる。
In a preferred embodiment, a viral expression construct is included, comprising a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and element a), which is AAV8-hAAT-moFGF21. This construct is for example IT in FIG. 6A.
It contains a viral expression construct depicted as R2-hAAT-moFGF21-polyA-ITR2; the sequence of this expression construct is contained in SEQ ID NO:34.

このコンストラクトについて、実施例3は、驚くべきことに、静脈内投与後の高くかつ
安定な肝臓特異的発現を明らかにする。発現は、1年までの間、安定であることが示され
た(実施例12)。肥満および糖尿病の回復および処置についての広範囲に及ぶ有益な治
療効果が、ob/obマウス(実施例3および11)、高脂肪食(HFD)給餌マウス(
実施例4、12~14)および老齢のHFD給餌マウス(実施例5、12~14)におい
て示される。実施例11および16はまた、脂肪肝、肝炎および肝線維症の著しい改善を
明らかにする。実施例15は、肥満に関連したWATの炎症の改善を示す。実施例17は
、治療の長期的安全性を指し示す。実施例18は、肝臓腫瘍の予防における有益な効果を
明らかにする。実施例19は、I型糖尿病のモデルにおける治療可能性を示す。
For this construct, Example 3 surprisingly reveals high and stable liver-specific expression after intravenous administration. Expression was shown to be stable for up to 1 year (Example 12). Widespread beneficial therapeutic effects for reversal and treatment of obesity and diabetes were observed in ob/ob mice (Examples 3 and 11), high-fat diet (HFD)-fed mice (
Examples 4, 12-14) and aged HFD-fed mice (Examples 5, 12-14). Examples 11 and 16 also demonstrate significant improvement in fatty liver, hepatitis and liver fibrosis. Example 15 demonstrates amelioration of WAT inflammation associated with obesity. Example 17 indicates long-term safety of the treatment. Example 18 demonstrates beneficial effects in preventing liver tumors. Example 19 demonstrates therapeutic potential in a model of type I diabetes.

ある実施形態において、哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレ
オチド配列および要素b)を含み、脂肪組織特異的プロモーターがmini/aP2プロ
モーター(配列番号54)および/またはmini/UCP1プロモーター(配列番号5
5)である、ウイルス発現コンストラクトが包含される。
In certain embodiments, the nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and element b) comprises the adipose tissue-specific promoter is the mini/aP2 promoter (SEQ ID NO: 54) and/or the mini/UCP1 promoter (SEQ ID NO: 54) and/or the mini/UCP1 promoter (SEQ ID NO: 5
5), viral expression constructs are included.

ある実施形態において、哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレ
オチド配列および要素c)を含み、ユビキタスプロモーターがCAGプロモーター(配列
番号44)であり、肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードする少なく
とも1つのヌクレオチド配列が配列番号12または14~23よりなる群から選択され、
ならびに心臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードする少なくとも1つの
ヌクレオチド配列が配列番号13または23~30よりなる群から選択される、ウイルス
発現コンストラクトが包含される。
In one embodiment, the nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and element c), wherein the ubiquitous promoter is the CAG promoter (SEQ ID NO: 44), encodes a target sequence for microRNAs expressed in the liver. at least one nucleotide sequence is selected from the group consisting of SEQ ID NO: 12 or 14-23;
and viral expression constructs wherein at least one nucleotide sequence encoding a target sequence for a microRNA expressed in the heart is selected from the group consisting of SEQ ID NOs: 13 or 23-30.

好ましい実施形態において、哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌ
クレオチド配列および要素c)を含み、AAV9-CAG-moFGF21-dmiRT
またはAAV8-CAG-moFGF21-dmiRTである、ウイルス発現コンストラ
クトが包含される。表記dmiRTおよびdoublemiRTは等価である。これらの
コンストラクトは、例えば図1A中にITR2-CAG-moFGF21-4x miR
T122a-4x miRT1-polyA-ITR2として描写されるウイルス発現コ
ンストラクトを含有し;この発現コンストラクトの配列は配列番号32中に含まれる。
In a preferred embodiment, AAV9-CAG-moFGF21-dmiRT comprises a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and element c).
or a viral expression construct that is AAV8-CAG-moFGF21-dmiRT. The notations dmiRT and doublemiRT are equivalent. These constructs are for example ITR2-CAG-moFGF21-4x miR in FIG. 1A.
It contains a viral expression construct depicted as T122a-4x miRT1-polyA-ITR2; the sequence of this expression construct is contained in SEQ ID NO:32.

これらのコンストラクトについて、実施例1~2は、驚くべきことに、eWAT内投与
後の高くかつ安定な脂肪特異的発現を明らかにする。肥満および糖尿病の予防、回復およ
び処置のための広範囲に及ぶ有益な治療効果が、正常マウス(実施例1)およびob/o
bマウス(実施例2および10)において示される。実施例10はまた、脂肪肝の著しい
改善を明らかにする。
For these constructs, Examples 1-2 surprisingly reveal high and stable adipose-specific expression after intra-eWAT administration. A wide range of beneficial therapeutic effects for the prevention, amelioration and treatment of obesity and diabetes were demonstrated in normal mice (Example 1) and ob/o
b Shown in mice (Examples 2 and 10). Example 10 also demonstrates significant improvement in fatty liver.

ある実施形態において、哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレ
オチド配列および要素d)を含み、骨格筋プロモーターがC5-12プロモーター(配列
番号56)である、ウイルス発現コンストラクトが包含される。
In certain embodiments, viral expression constructs are included comprising a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and element d), wherein the skeletal muscle promoter is the C5-12 promoter (SEQ ID NO:56).

ある実施形態において、哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレ
オチド配列および要素e)を含み、ユビキタスプロモーターがCMVプロモーター(配列
番号45)であり、ならびにAAV血清型がAAV1である、ウイルス発現コンストラク
トが包含される。
In certain embodiments, a viral expression construct comprising a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and element e), wherein the ubiquitous promoter is the CMV promoter (SEQ ID NO: 45) and the AAV serotype is AAV1 is included.

好ましい実施形態において、哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌ
クレオチド配列および要素e)を含み、AAV1-CMV-moFGF21である、ウイ
ルス発現コンストラクトが包含される。このコンストラクトは、例えば図11A中にIT
R2-CMV-moFGF21-polyA-ITR2として描写されるウイルス発現コ
ンストラクトを含有し;この発現コンストラクトの配列は配列番号36中に含まれる。
In a preferred embodiment, a viral expression construct comprising a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and element e) is included, which is AAV1-CMV-moFGF21. This construct is shown in FIG. 11A, for example, IT
It contains a viral expression construct depicted as R2-CMV-moFGF21-polyA-ITR2; the sequence of this expression construct is contained in SEQ ID NO:36.

このコンストラクトについて、実施例20は、筋肉内投与後の高くかつ安定な骨格筋特
異的発現を明らかにする。肥満および糖尿病の予防、回復および処置のための広範囲に及
ぶ有益な治療効果が、HFD給餌マウス(実施例6および21)において示される。実施
例20は、肥満および糖尿病を予防することによる有益な健康寿命延伸効果を明らかにす
る。
For this construct, Example 20 demonstrates high and stable skeletal muscle-specific expression after intramuscular administration. A wide range of beneficial therapeutic effects for the prevention, amelioration and treatment of obesity and diabetes are demonstrated in HFD-fed mice (Examples 6 and 21). Example 20 demonstrates the beneficial health-span-extending effects of preventing obesity and diabetes.

ある実施形態において、哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレ
オチド配列ならびに要素b)および要素c)のヌクレオチド配列を含み、脂肪組織特異的
プロモーターがmini/aP2プロモーター(配列番号54)および/またはmini
/UCP1プロモーター(配列番号55)である、ウイルス発現コンストラクトが包含さ
れる。
In one embodiment, the nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and the nucleotide sequences of elements b) and c), wherein the adipose tissue-specific promoter is the mini/aP2 promoter (SEQ ID NO: 54) and/or mini
A viral expression construct is included that is the /UCP1 promoter (SEQ ID NO:55).

ある実施形態において、哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレ
オチド配列ならびに要素e)および要素c)のヌクレオチド配列を含み、ユビキタスプロ
モーターがCMVプロモーター(配列番号45)であり、ならびにAAV血清型がAAV
1である、ウイルス発現コンストラクトが包含される。
In one embodiment, the nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and the nucleotide sequences of elements e) and c) are included, the ubiquitous promoter is the CMV promoter (SEQ ID NO: 45), and the AAV serotype is AAV
1, viral expression constructs are included.

本発明の全てのコンストラクトは、従来技術のもの、例えばZhang et al.
,EBioMedicine 15(2017) 173-183において開示されるも
の、特に肝臓特異的プロモーター、好ましくはhAATである要素a)、ならびに/また
はユビキタスプロモーターと肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードす
る少なくとも1つのヌクレオチド配列、好ましくはmiRT122aと心臓において発現
するマイクロRNAの標的配列をコードする少なくとも1つのヌクレオチド配列、好まし
くはmiRT1との組み合わせであって、脂肪組織における特異的発現を可能にする組み
合わせである要素c)、ならびに/またはユビキタスプロモーター、好ましくはCMVと
アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクター配列、好ましくはAAV1との組み合わせであっ
て、骨格筋における特異的発現を可能にする組み合わせである要素e)を含むものなどよ
りも、魅力的である。Zhang et al.は、伸長因子1a(EF1a)プロモー
ターの制御下にある野生型マウスFGF21コーディング配列(EF1a-mFGF21
)を開示している(Zhang et al.,EBioMedicine 15(20
17) 173-183)。このコンストラクトは、実施例23および24において本発
明のコンストラクトと比較された。全てのインビトロおよびインビボでの実験において、
本発明の全ての発現カセットおよびAAVベクターは、標的の組織または細胞型における
FGF21のより多い発現およびオフターゲットの組織におけるFGF21のより少ない
発現を媒介しており、このことは本発明の発現カセットおよびAAVベクターのより高い
効率、同様により高い組織特異性を実証するものである。加えて、コンストラクトCMV
-moFGF21およびCAG-moFGF21-double miRTはまた、EF
1a-mFGF21と比べて、HEK293細胞においてより多いタンパク質産生および
培養培地への分泌を媒介した。そのうえ、hAAT-moFGF21およびAAV8-h
AAT-moFGF21はまた、EF1a-mFGF21およびAAV8-EF1a-m
FGF21よりも多くのFGF21の血流への分泌を媒介した。
All constructs of the present invention are those of the prior art, eg Zhang et al.
, EBioMedicine 15 (2017) 173-183, in particular element a) which is a liver-specific promoter, preferably hAAT, and/or at least one encoding a ubiquitous promoter and a target sequence of a microRNA expressed in the liver. a combination of two nucleotide sequences, preferably miRT122a, and at least one nucleotide sequence encoding a target sequence for a microRNA expressed in the heart, preferably miRT1, the combination allowing specific expression in adipose tissue. c) and/or a combination of a ubiquitous promoter, preferably CMV, and an adeno-associated virus (AAV) vector sequence, preferably AAV1, a combination that allows specific expression in skeletal muscle. More attractive than anything else. Zhang et al. contains the wild-type mouse FGF21 coding sequence (EF1a-mFGF21
) (Zhang et al., EBioMedicine 15 (20
17) 173-183). This construct was compared to the construct of the present invention in Examples 23 and 24. In all in vitro and in vivo experiments,
All of the expression cassettes and AAV vectors of the invention mediate greater expression of FGF21 in target tissues or cell types and less expression of FGF21 in off-target tissues, which indicates that the expression cassettes and AAV vectors of the invention It demonstrates higher efficiency of AAV vectors as well as higher tissue specificity. In addition, the construct CMV
-moFGF21 and CAG-moFGF21-double miRTs are also EF
It mediated greater protein production and secretion into the culture medium in HEK293 cells compared to 1a-mFGF21. Moreover, hAAT-moFGF21 and AAV8-h
AAT-moFGF21 is also EF1a-mFGF21 and AAV8-EF1a-m
It mediated the secretion of more FGF21 into the bloodstream than FGF21.

「一般的定義」というタイトルの記載部分において詳細に説明されるように、付加的な
配列が本発明のウイルス発現コンストラクト中に存在し得る。好ましい付加的配列として
は、逆位末端配列(ITR)、SV40ポリアデニル化シグナル(配列番号50)、ウサ
ギβ-グロビンポリアデニル化シグナル(配列番号51)、CMVエンハンサー配列(配
列番号46)およびアポリポタンパク質EからのHCRエンハンサー(配列番号53)が
挙げられる。本発明との関連内で、「ITR」は、1つの5‘ITRおよび1つの3’I
TRを包含することが意図され、各々AAVのゲノムに由来する。好ましいITRは、A
AV2からのものであり、配列番号48(5‘ITR)および配列番号49(3’ITR
)により表される。本発明との関連内で、CMVエンハンサー配列(配列番号46)およ
びCMVプロモーター配列(配列番号45)を2つの別々の配列としてまたは単一の配列
(配列番号52)として用いることが包含される。
Additional sequences may be present in the viral expression constructs of the invention, as detailed in the section of the description entitled "General Definitions." Preferred additional sequences include inverted terminal sequence (ITR), SV40 polyadenylation signal (SEQ ID NO:50), rabbit β-globin polyadenylation signal (SEQ ID NO:51), CMV enhancer sequence (SEQ ID NO:46) and apolipoprotein E and the HCR enhancer (SEQ ID NO: 53) from Within the context of the present invention, "ITR" means one 5'ITR and one 3'ITR
It is intended to encompass the TRs, each derived from the genome of AAV. A preferred ITR is A
from AV2, SEQ ID NO: 48 (5'ITR) and SEQ ID NO: 49 (3'ITR
). Included within the context of the present invention is the use of the CMV enhancer sequence (SEQ ID NO:46) and the CMV promoter sequence (SEQ ID NO:45) as two separate sequences or as a single sequence (SEQ ID NO:52).

これらの付加的配列の各々は、本発明のウイルス発現コンストラクト中に存在し得る(
例えば図1、2、3、4、5、6、7、8および9中に描写されるように、また図11、
31および32中に描写されるように)。
Each of these additional sequences may be present in the viral expression constructs of the invention (
For example, as depicted in FIGS. 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8 and 9, and FIG.
31 and 32).

ある実施形態において、先に規定される、哺乳動物における発現に適したFGF21を
コードするヌクレオチド配列ならびに要素a)および/またはb)および/またはc)お
よび/またはd)および/またはe)のうちの少なくとも1つを含むウイルス発現コンス
トラクトは:
- 前記コンストラクトの発現カセットに隣接するITR、
- FGF21をコードするヌクレオチド配列の3‘に位置するSV40もしくはウサギ
β-グロビンポリアデニル化シグナル、および/または
- FGF21をコードするヌクレオチド配列の5’に位置するCMVエンハンサー配列
もしくはHCRエンハンサー配列
をさらに含む。
In certain embodiments, the above-defined nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and of elements a) and/or b) and/or c) and/or d) and/or e) A viral expression construct comprising at least one of:
- ITRs flanking the expression cassette of said construct,
- an SV40 or rabbit β-globin polyadenylation signal located 3' to the nucleotide sequence encoding FGF21, and/or - a CMV or HCR enhancer sequence located 5' to the nucleotide sequence encoding FGF21.

好ましい実施形態において、先に規定される、哺乳動物における発現に適したFGF2
1をコードするヌクレオチド配列ならびに要素a)および/またはb)および/またはc
)および/またはd)および/またはe)のうちの少なくとも1つを含むウイルス発現コ
ンストラクトは、前記コンストラクトの発現カセットに隣接するITRをさらに含み、な
らびに:
- FGF21をコードするヌクレオチド配列の3‘に位置するSV40もしくはウサギ
β-グロビンポリアデニル化シグナル、および/または
- FGF21をコードするヌクレオチド配列の5’に位置するCMVエンハンサー配列
もしくはHCRエンハンサー配列
をさらに含んでもよい。
In a preferred embodiment, a FGF2 suitable for expression in mammals as defined above.
1 and elements a) and/or b) and/or c
) and/or d) and/or e) further comprises ITRs flanking the expression cassette of said construct, and:
- an SV40 or rabbit β-globin polyadenylation signal located 3' to the nucleotide sequence encoding FGF21, and/or - a CMV enhancer sequence or an HCR enhancer sequence located 5' to the nucleotide sequence encoding FGF21. good.

これらの配列は、実験部で、本明細書中で特定されるいくつかのコンストラクトにおい
て用いられた。
These sequences have been used in several constructs identified herein in the experimental department.

それゆえ、1つの実施形態において、上で規定されるこれらの好ましいウイルス発現コ
ンストラクトの各々について、ITR、SV40ポリアデニル化シグナル、ウサギβ-グ
ロビンポリアデニル化シグナル、CMVエンハンサー配列、アポリポタンパク質Eからの
HCRエンハンサー配列よりなる群から選択される付加的配列が存在し得る。
Therefore, in one embodiment, for each of these preferred viral expression constructs defined above, the ITR, the SV40 polyadenylation signal, the rabbit β-globin polyadenylation signal, the CMV enhancer sequence, the HCR enhancer from apolipoprotein E Additional sequences selected from the group consisting of sequences may be present.

好ましい実施形態において、ウイルス発現コンストラクトは、哺乳動物における発現に
適したFGF21をコードするヌクレオチド配列ならびに要素a)および/またはb)お
よび/またはc)および/またはd)および/またはe)のうちの少なくとも1つを含み
、ここでITR、SV40ポリアデニル化シグナル、ウサギβ-グロビンポリアデニル化
シグナル、CMVエンハンサー配列、HCRエンハンサー配列よりなる群から選択される
付加的配列が存在する。好ましいITRは、配列番号48(5’ITR)および配列番号
49(3’ITR)により表されるAAV2のものである。
In a preferred embodiment, the viral expression construct comprises a nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and elements a) and/or b) and/or c) and/or d) and/or e) Additional sequences are present, including at least one, selected from the group consisting of the ITR, the SV40 polyadenylation signal, the rabbit β-globin polyadenylation signal, the CMV enhancer sequence, the HCR enhancer sequence. Preferred ITRs are those of AAV2 represented by SEQ ID NO: 48 (5'ITR) and SEQ ID NO: 49 (3'ITR).

好ましいウイルス発現コンストラクトは、要素a)および/またはb)および/または
c)および/またはd)および/またはe)を含み、発現カセットが5’ITRおよび3
’ITRに隣接するようになっている。
A preferred viral expression construct comprises elements a) and/or b) and/or c) and/or d) and/or e), wherein the expression cassette is the 5'ITR and 3
' It is arranged to be adjacent to the ITR.

他の好ましいウイルス発現コンストラクトは、要素a)および/またはb)および/ま
たはc)および/またはd)および/またはe)を含み、発現カセットが5’ITRおよ
び3’ITRに隣接するようになっている。加えて、SV40ポリアデニル化シグナルが
存在する。
Other preferred viral expression constructs comprise elements a) and/or b) and/or c) and/or d) and/or e) such that the expression cassette is flanked by the 5'ITR and 3'ITR. ing. Additionally, an SV40 polyadenylation signal is present.

他の好ましいウイルス発現コンストラクトは、要素a)および/またはb)および/ま
たはc)および/またはd)および/またはe)を含み、発現カセットが5’ITRおよ
び3’ITRに隣接するようになっている。加えて、ウサギβ-グロビンポリアデニル化
シグナルが存在する。
Other preferred viral expression constructs comprise elements a) and/or b) and/or c) and/or d) and/or e) such that the expression cassette is flanked by the 5'ITR and 3'ITR. ing. Additionally, a rabbit β-globin polyadenylation signal is present.

他の好ましいウイルス発現コンストラクトは、要素a)および/またはb)および/ま
たはc)および/またはd)および/またはe)を含み、発現カセットが5’ITRおよ
び3’ITRに隣接するようになっている。加えて、CMVエンハンサー配列が存在する
Other preferred viral expression constructs comprise elements a) and/or b) and/or c) and/or d) and/or e) such that the expression cassette is flanked by the 5'ITR and 3'ITR. ing. Additionally, a CMV enhancer sequence is present.

他の好ましいウイルス発現コンストラクトは、要素a)および/またはb)および/ま
たはc)および/またはd)および/またはe)を含み、発現カセットが5’ITRおよ
び3’ITRに隣接するようになっている。加えて、アポリポタンパク質EからのHCR
エンハンサー配列が存在する。
Other preferred viral expression constructs comprise elements a) and/or b) and/or c) and/or d) and/or e) such that the expression cassette is flanked by the 5'ITR and 3'ITR. ing. In addition, HCR from apolipoprotein E
Enhancer sequences are present.

最も好ましいデザインされたウイルス発現コンストラクトとしては:
コンストラクトB(配列番号32を含むヌクレオチド配列により表される)、
コンストラクトD(配列番号34を含むヌクレオチド配列により表される)、
コンストラクトF(配列番号36を含むヌクレオチド配列により表される)、
コンストラクトG(配列番号37を含むヌクレオチド配列により表される)、
コンストラクトH(配列番号38を含むヌクレオチド配列により表される)、
コンストラクトI(配列番号39を含むヌクレオチド配列により表される)、
コンストラクトJ(配列番号40を含むヌクレオチド配列により表される)、
コンストラクトK(配列番号41を含むヌクレオチド配列により表される)、
コンストラクトL(配列番号4を含むヌクレオチド配列により表される2)
が挙げられる。
The most preferred designed viral expression constructs are:
Construct B (represented by a nucleotide sequence comprising SEQ ID NO:32),
Construct D (represented by a nucleotide sequence comprising SEQ ID NO:34),
Construct F (represented by a nucleotide sequence comprising SEQ ID NO: 36),
Construct G (represented by a nucleotide sequence comprising SEQ ID NO: 37),
Construct H (represented by a nucleotide sequence comprising SEQ ID NO:38),
Construct I (represented by a nucleotide sequence comprising SEQ ID NO:39),
Construct J (represented by a nucleotide sequence comprising SEQ ID NO: 40),
Construct K (represented by a nucleotide sequence comprising SEQ ID NO: 41),
Construct L (2 represented by a nucleotide sequence comprising SEQ ID NO: 4)
are mentioned.

当業者が理解するように、これらのウイルス発現コンストラクトの各々は、AAV2か
らの2個のITR(すなわち配列番号48(5’ITR)および配列番号49(3’IT
R))を既に含んでいる。
As those skilled in the art will appreciate, each of these viral expression constructs contains two ITRs from AAV2, namely SEQ ID NO: 48 (5'ITR) and SEQ ID NO: 49 (3'ITR).
R)) already included.

コンストラクトBおよびGは、ウサギβ-グロビンポリアデニル化シグナルを含む。コ
ンストラクトFは、SV40ポリアデニル化シグナル、CMVエンハンサー配列およびキ
メライントロンのヌクレオチド配列(ヒトβ-グロビンおよび免疫グロブリン重鎖遺伝子
からのイントロンから構成される)を含む。コンストラクトD、H~Lは、SV40ポリ
アデニル化シグナル、HCRエンハンサー配列およびキメライントロンのヌクレオチド配
列(ヒトβ-グロビンおよび免疫グロブリン重鎖遺伝子からのイントロンから構成される
)を含む。
Constructs B and G contain a rabbit β-globin polyadenylation signal. Construct F contains the SV40 polyadenylation signal, the CMV enhancer sequence and a chimeric intronic nucleotide sequence (composed of introns from the human β-globin and immunoglobulin heavy chain genes). Constructs D, HL contain the SV40 polyadenylation signal, the HCR enhancer sequence and the nucleotide sequence of the chimeric intron (composed of introns from the human β-globin and immunoglobulin heavy chain genes).

「一般的定義」というタイトルの一般部において説明されるように、本出願の全体を通
して、本明細書中でデザインされる好ましいコンストラクトを表す具体的なヌクレオチド
配列の配列番号(例として配列番号A、BまたはCを取り上げる)に言及するたび、これ
は:
i. 配列番号A、BまたはCと少なくとも60%の配列同一性または類似性を持つヌク
レオチド配列を含むヌクレオチド配列;
ii. 遺伝暗号の縮重のために(i)の核酸分子の配列と配列が異なるヌクレオチド配

により置き換えられ得る。
Throughout this application, as set forth in the general section entitled "General Definitions", the SEQ ID NOs of specific nucleotide sequences representing the preferred constructs designed herein (for example SEQ ID NO: A, picking up B or C), this:
i. a nucleotide sequence comprising a nucleotide sequence having at least 60% sequence identity or similarity with SEQ ID NO: A, B or C;
ii. Due to the degeneracy of the genetic code, the sequence of the nucleic acid molecule of (i) may be replaced by a different nucleotide sequence.

それぞれ所与のヌクレオチド配列とのその同一性パーセンテージ(少なくとも60%)
によって本明細書中に記載される各々のヌクレオチド配列は、さらに好ましい実施形態に
おいて、それぞれ所与のヌクレオチドと少なくとも65%、70%、75%、80%、8
5%、90%、95%、97%、98%、99%またはそれより高い同一性を持つ。好ま
しい実施形態において、配列同一性は、本明細書中で特定される配列の全長を比較するこ
とにより決定される。本明細書中で特に指示がない限り、所与の配列番号との同一性は、
完全長の(すなわちその全長にわたっての、または全体としての)前記配列に基づく同一
性または類似性を意味する。
its percentage identity (at least 60%) with a given nucleotide sequence, respectively
Each nucleotide sequence described herein by is, in a further preferred embodiment, a given nucleotide and at least 65%, 70%, 75%, 80%, 8
5%, 90%, 95%, 97%, 98%, 99% or more identity. In preferred embodiments, sequence identity is determined by comparing the full length of the sequences identified herein. Unless otherwise indicated herein, identity to a given SEQ ID is
Identity or similarity based on the full length (ie, over its entire length or in its entirety) of the sequence.

上で特定される所与の配列番号に対するその最小の同一性(すなわち少なくとも60%
)により規定されるコンストラクトは、このコンストラクトまたはウイルス発現コンスト
ラクトまたはこのコンストラクトを含むウイルスベクターまたはこのコンストラクトもし
くはベクターを含む組成物が細胞の中で、好ましくは肝細胞、脂肪組織の細胞または骨格
筋の細胞の中でFGF21の発現を誘導することができるとき、本発明の範囲内に包含さ
れる。FGF21の発現は、当業者に知られている技術を用いて査定することができる。
好ましい実施形態において、前記発現は、実験部において実施されるように査定される。
its minimal identity to a given SEQ ID NO specified above (i.e. at least 60%
) means that this construct or a viral expression construct or a viral vector comprising this construct or a composition comprising this construct or vector is expressed in cells, preferably hepatocytes, adipose tissue cells or skeletal muscle cells is included within the scope of the present invention when the expression of FGF21 can be induced in Expression of FGF21 can be assessed using techniques known to those of skill in the art.
In a preferred embodiment, said expression is assessed as performed in the laboratory.

好ましい実施形態において、ウイルス発現コンストラクトは、配列番号4、5、6、7
、8、9、10もしくは11を含むヌクレオチド配列または配列番号4、5、6、7、8
、9、10もしくは11と少なくとも60%の同一性を持つ配列または配列番号4、5、
6、7、8、9、10もしくは11と少なくとも60%、65%、70%、75%、80
%、85%、90%、95%、97%、98%、99%、100%の同一性を持つ配列に
より表されるものである。
In a preferred embodiment, the viral expression construct is SEQ ID NO: 4, 5, 6, 7
, 8, 9, 10 or 11 or SEQ ID NO: 4, 5, 6, 7, 8
, 9, 10 or 11 or SEQ ID NOs: 4, 5,
6, 7, 8, 9, 10 or 11 and at least 60%, 65%, 70%, 75%, 80
%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%, 99%, 100% identity.

ウイルスベクター
さらなる態様において、上で規定されるウイルス発現コンストラクトを含むウイルスベ
クターが提供され、ここで前記ウイルスベクターは、アデノウイルスベクター、アデノ随
伴ウイルスベクター、レトロウイルスベクターまたはレンチウイルスベクターであり、好
ましくはアデノ随伴ウイルス1(AAV1)ベクター、アデノ随伴ウイルス8(AAV8
)ベクターおよびアデノ随伴ウイルス9(AAV9)ベクターよりなる群から選択される
アデノ随伴ウイルスベクターである。
Viral Vector In a further aspect there is provided a viral vector comprising a viral expression construct as defined above, wherein said viral vector is an adenoviral vector, an adeno-associated viral vector, a retroviral vector or a lentiviral vector, preferably Adeno-associated virus 1 (AAV1) vector, adeno-associated virus 8 (AAV8
) vectors and adeno-associated virus 9 (AAV9) vectors.

「ウイルスベクター」および「アデノ随伴ウイルスベクター(AAVベクター)」は、
「一般的定義」というタイトルの記載部分においてさらに規定される。
A "viral vector" and an "adeno-associated viral vector (AAV vector)" are
Further defined in the section entitled "General Definitions".

ある実施形態において、本明細書中で先に規定される各要素およびITRまたはその部
分を含む組換えAAV(rAAV)に基づくゲノムを含むAAVベクターが用いられる。
好ましいITRは、配列番号48(5’ITR)および配列番号49(3’ITR)によ
り表されるAAV2のものである。
In certain embodiments, an AAV vector is used that comprises a recombinant AAV (rAAV)-based genome comprising each of the elements defined herein above and an ITR or portion thereof.
Preferred ITRs are those of AAV2 represented by SEQ ID NO: 48 (5'ITR) and SEQ ID NO: 49 (3'ITR).

好ましくは、前記AAVベクターは、AAV1ベクター、AAV8ベクターまたはAA
V9ベクターである。
Preferably, said AAV vector is an AAV1 vector, an AAV8 vector or an AAV
V9 vector.

本発明のウイルス発現コンストラクトおよびウイルスベクターは、好ましくは、薬剤と
しての使用のためのものである。薬剤は、好ましくは、代謝障害、好ましくは糖尿病およ
び/または肥満を予防、遅延、治癒、回復および/または処置するためのものである。糖
尿病は、1型糖尿病、2型糖尿病または一遺伝子性糖尿病であり得る。別の好ましい実施
形態において、薬剤は、肝臓の炎症および/または線維症を予防、遅延、治癒、回復およ
び/または処置するためのものである。なお別の好ましい実施形態において、薬剤は、好
ましくは、加齢に関連した代謝障害、好ましくは糖尿病および/または肥満を予防、遅延
、治癒、回復および/または処置することによって健康寿命を延伸するためのものである
。なお別の好ましい実施形態において、薬剤は、がん、好ましくは肝臓がんを予防、遅延
、治癒、回復および/または処置するためのものである。
The viral expression constructs and viral vectors of the invention are preferably for use as medicaments. The medicament is preferably for preventing, retarding, curing, ameliorating and/or treating metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity. Diabetes can be type 1 diabetes, type 2 diabetes or monogenic diabetes. In another preferred embodiment, the medicament is for preventing, retarding, curing, ameliorating and/or treating liver inflammation and/or fibrosis. In yet another preferred embodiment, the medicament preferably prevents, delays, cures, reverses and/or treats age-related metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity, to prolong healthy life expectancy. belongs to. In yet another preferred embodiment, the medicament is for preventing, delaying, curing, ameliorating and/or treating cancer, preferably liver cancer.

処置される対象は、高等哺乳動物、例としてネコ、齧歯類(好ましくはマウス、ラット
、スナネズミおよびモルモット、より好ましくはマウスおよびラット)、またはイヌ、ま
たはヒトであり得る。
The subject to be treated can be a higher mammal, such as a cat, rodent (preferably mice, rats, gerbils and guinea pigs, more preferably mice and rats), or dogs, or humans.

核酸分子
さらなる態様において、哺乳動物における発現に適しており、肝臓、脂肪組織および/
または骨格筋において発現する、哺乳動物コドンに最適化されたFGF21をコードする
ヌクレオチド配列により表される核酸分子が提供される。
In a further embodiment the nucleic acid molecule is suitable for expression in a mammal and
Alternatively, nucleic acid molecules represented by nucleotide sequences encoding mammalian codon-optimized FGF21 expressed in skeletal muscle are provided.

「コドン最適化」の定義は、「一般的定義」というタイトルの記載部分において提供さ
れている。
A definition of "codon-optimized" is provided in the description section entitled "General Definitions".

ある実施形態において、ヌクレオチド配列が配列番号4、5、6、7、8、9、10ま
たは11のヌクレオチド配列と少なくとも60%の配列同一性を持つ、上記の核酸分子が
包含される。好ましいヌクレオチド配列は、配列番号4、5、6、7、8、9、10また
は11と少なくとも65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、97%
、98%、99%、100%の同一性を持つ。
In certain embodiments, the above nucleic acid molecules are encompassed, wherein the nucleotide sequence has at least 60% sequence identity with the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 or 11. Preferred nucleotide sequences are SEQ ID NO: 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 or 11 and at least 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 97%
, 98%, 99%, 100% identity.

組成物
さらなる態様において、上で規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/または上
で規定されるウイルスベクターおよび/または上で規定される核酸分子を1または複数の
薬学的に許容される添加剤または媒体と一緒に含む組成物が提供される。
In a further aspect of the composition , the viral expression construct as defined above and/or the viral vector as defined above and/or the nucleic acid molecule as defined above are combined with one or more pharmaceutically acceptable additives or vehicles. Compositions comprising the two are provided.

この組成物は、好ましくは、遺伝子治療組成物と呼ばれる。好ましくは、組成物は、薬
学的に許容される担体、アジュバント、希釈剤、可溶化剤、賦形剤、保存剤および/また
は添加剤を含む医薬組成物である。
This composition is preferably referred to as a gene therapy composition. Preferably, the composition is a pharmaceutical composition comprising pharmaceutically acceptable carriers, adjuvants, diluents, solubilizers, excipients, preservatives and/or additives.

かかる薬学的に許容される担体、賦形剤、保存剤、可溶化剤、希釈剤および/または添
加剤は、例えば、Remington:The Science and Practi
ce of Pharmacy,20th Edition. Baltimore,M
D:Lippincott Williams & Wilkins,2000中に見い
だされ得る。
Such pharmaceutically acceptable carriers, excipients, preservatives, solubilizers, diluents and/or additives are described, for example, in Remington: The Science and Practice
ce of Pharmacy, 20th Edition. Baltimore, M.
D: can be found in Lippincott Williams & Wilkins, 2000.

好ましい実施形態において、前記組成物は、好ましくは、代謝障害、好ましくは糖尿病
および/または肥満を予防、遅延、治癒、回復および/または処置するためのものである
。糖尿病は、1型糖尿病、2型糖尿病または一遺伝子性糖尿病であり得る。別の好ましい
実施形態において、薬剤は、肝臓の炎症および/または線維症を予防、遅延、治癒、回復
および/または処置するためのものである。なお別の好ましい実施形態において、薬剤は
、好ましくは、加齢に関連した代謝障害、好ましくは糖尿病および/または肥満を予防、
遅延、治癒、回復および/または処置することによって健康寿命を延伸するためのもので
ある。なお別の好ましい実施形態において、薬剤は、がん、好ましくは肝臓がんを予防、
遅延、治癒、回復および/または処置するためのものである。処置される対象は、高等哺
乳動物、例としてネコ、齧歯類(好ましくはマウス、ラット、スナネズミおよびモルモッ
ト、より好ましくはマウスおよびラット)、またはイヌ、またはヒトであり得る。
In a preferred embodiment, said composition is preferably for preventing, delaying, curing, ameliorating and/or treating metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity. Diabetes can be type 1 diabetes, type 2 diabetes or monogenic diabetes. In another preferred embodiment, the medicament is for preventing, retarding, curing, ameliorating and/or treating liver inflammation and/or fibrosis. In yet another preferred embodiment, the medicament preferably prevents age-related metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity,
To prolong healthy life expectancy by delaying, healing, recovering and/or treating. In yet another preferred embodiment, the medicament prevents cancer, preferably liver cancer,
To delay, cure, restore and/or treat. The subject to be treated can be a higher mammal, such as a cat, rodent (preferably mice, rats, gerbils and guinea pigs, more preferably mice and rats), or dogs, or humans.

前記ウイルス発現コンストラクト、ウイルスベクターおよび/または核酸分子および/
または組成物が抗糖尿病効果および/または抗肥満効果を呈することができるとき、前記
ウイルス発現コンストラクト、ウイルスベクターおよび/または核酸分子および/または
組成物は、好ましくは、代謝障害、好ましくは糖尿病および/または肥満を予防、遅延、
治癒、回復および/または処置するために用いることができると言われる。
said viral expression constructs, viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or
or when the composition is capable of exhibiting an anti-diabetic effect and/or an anti-obesity effect, said viral expression construct, viral vector and/or nucleic acid molecule and/or composition is preferably associated with metabolic disorders, preferably diabetes and/or or prevent, delay, or prevent obesity
It is said that it can be used for healing, recovery and/or treatment.

前記ウイルス発現コンストラクト、ウイルスベクターおよび/または核酸分子および/
または組成物が抗線維効果を呈することができるとき、前記ウイルス発現コンストラクト
、ウイルスベクターおよび/または核酸分子および/または組成物は、好ましくは、肝臓
の炎症および/または線維症を予防、遅延、治癒、回復および/または処置するために用
いることができると言われる。
said viral expression constructs, viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or
or when the composition is capable of exhibiting an anti-fibrotic effect, said viral expression construct, viral vector and/or nucleic acid molecule and/or composition preferably prevents, delays, cures liver inflammation and/or fibrosis. , is said to be able to be used for recovery and/or treatment.

前記ウイルス発現コンストラクト、ウイルスベクターおよび/または核酸分子および/
または組成物が加齢の際に抗糖尿病効果および/または抗肥満効果を呈することができる
とき、前記ウイルス発現コンストラクト、ウイルスベクターおよび/または核酸分子およ
び/または組成物は、好ましくは、加齢に関連した代謝障害、好ましくは糖尿病および/
または肥満を予防、遅延、治癒、回復および/または処置することによって健康寿命の延
伸のために用いることができると言われる。
said viral expression constructs, viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or
or said viral expression construct, viral vector and/or nucleic acid molecule and/or composition is preferably anti-diabetic and/or anti-obesity effect upon aging. associated metabolic disorders, preferably diabetes and/or
Or it can be used for prolonging healthy life expectancy by preventing, delaying, curing, reversing and/or treating obesity.

前記ウイルス発現コンストラクト、ウイルスベクターおよび/または核酸分子および/
または組成物が抗がん効果を呈することができるとき、前記ウイルス発現コンストラクト
、ウイルスベクターおよび/または核酸分子および/または組成物は、好ましくは、がん
、好ましくは肝臓がんを予防、遅延、治癒、回復および/または処置するために用いるこ
とができると言われる。
said viral expression constructs, viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or
or when the composition is capable of exhibiting an anti-cancer effect, said viral expression construct, viral vector and/or nucleic acid molecule and/or composition preferably prevents, delays, delays cancer, preferably liver cancer. It is said that it can be used for healing, recovery and/or treatment.

抗糖尿病効果は、血中グルコースの処理が向上したとき、および/または耐糖能が改善
されたとき、および/またはインスリン感受性が向上したときに達せられ得る。これは、
当業者に知られている技術を用いて、または実験部において行われるように、好ましくは
例8もしくは9において査定されるように、査定することができる。この関連において、
向上(それぞれ「改善」)とは、当業者に知られているアッセイを用いた、または実験部
において行われるアッセイ、例えば血糖、血中インスリンの測定ならびに/もしくはイン
スリン負荷試験および/もしくはグルコース負荷試験の実施などを用いた、少なくとも検
出可能な向上(それぞれ検出可能な改善)を意味する。向上は、アッセイ、例えば血糖、
血中インスリンの測定ならびに/またはインスリン負荷試験および/もしくはグルコース
負荷試験の実施などを用いた、少なくとも5%、少なくとも10%、少なくとも20%、
少なくとも30%、少なくとも40%、少なくとも50%、少なくとも60%、少なくと
も70%、少なくとも80%、少なくとも90%または少なくとも100%の向上であり
得る。
Anti-diabetic effects may be achieved when blood glucose handling is improved and/or when glucose tolerance is improved and/or when insulin sensitivity is improved. this is,
It can be assessed using techniques known to those skilled in the art or as performed in the experimental part, preferably as assessed in Examples 8 or 9. In this connection:
Improvement (respectively "improvement") refers to assays using assays known to the person skilled in the art or performed in the laboratory, such as blood glucose, blood insulin measurements and/or insulin tolerance tests and/or glucose tolerance tests means at least a detectable improvement (each a detectable improvement), such as with the implementation of The improvement is in assays such as blood glucose,
at least 5%, at least 10%, at least 20%, such as by measuring blood insulin and/or performing an insulin tolerance test and/or a glucose tolerance test;
It can be an improvement of at least 30%, at least 40%, at least 50%, at least 60%, at least 70%, at least 80%, at least 90% or at least 100%.

抗肥満効果は、体重、体重増加および/または体脂肪パーセンテージが減少したときに
達せられ得る。抗肥満効果はまた、肥満度指数(BMI)、ウエスト周囲、ウエストヒッ
プ比(WHR)および/またはウエスト身長比(WHtR)が減少したときに達せられ得
る。これは、当業者に知られている技術を用いて、または実験部において行われるように
査定することができる。この関連において、「減少」(それぞれ「改善」)とは、当業者
に知られているアッセイを用いた、または実験部において行われるアッセイを用いた、少
なくとも検出可能な減少(それぞれ検出可能な改善)を意味する。抗肥満効果は、個体の
体重、BMIおよび/または組織重量の測定により評価される、肥満の予防と肥満の回復
の両方を包含する。
An anti-obesity effect can be achieved when body weight, weight gain and/or body fat percentage is reduced. Anti-obesity effects can also be achieved when body mass index (BMI), waist circumference, waist-to-hip ratio (WHR) and/or waist-to-height ratio (WHtR) are decreased. This can be assessed using techniques known to those skilled in the art or as done in the laboratory. In this context, "reduction" (respectively "improvement") means at least a detectable reduction (respectively a detectable improvement) using assays known to those skilled in the art or using assays performed in the laboratory. ). Anti-obesity effects include both prevention of obesity and amelioration of obesity as assessed by measurements of body weight, BMI and/or tissue weight of an individual.

肝臓における抗炎症効果は、マクロファージ浸潤の減少、炎症促進性サイトカインの減
少により達せられ得る。これは、当業者に知られている技術を用いて、または実験部にお
いて行われるように査定することができる。この関連において、「減少」(それぞれ「改
善」)とは、当業者に知られているアッセイを用いた、または実験部において行われるア
ッセイを用いた、少なくとも検出可能な減少(それぞれ検出可能な改善)を意味する。
Anti-inflammatory effects in the liver can be achieved by reducing macrophage infiltration, reducing pro-inflammatory cytokines. This can be assessed using techniques known to those skilled in the art or as done in the laboratory. In this context, "reduction" (respectively "improvement") means at least a detectable reduction (respectively a detectable improvement) using assays known to those skilled in the art or using assays performed in the laboratory. ).

肝臓における抗線維効果は、細胞外マトリックスタンパク質蓄積の減少、血液マーカー
(例として血漿中のIII型コラーゲンN末端プロペプチド、ヒアルロン酸、メタロプロ
テイナーゼ タイプ1(TIMP-1)の組織阻害剤、YKL-40、血清グルタミン酸
オキザロ酢酸トランスアミナーゼ(SGOT)、血清グルタミン酸ピルビン酸トランスア
ミナーゼ(SGPT)のレベル)の減少により達せられ得る。抗線維効果はまた、線維症
評点系、例えばMetavirまたはIshakなどの改善により達せられ得る。これは
、当業者に知られている技術を用いて、または実験部において行われるように査定するこ
とができる。この関連において、「減少」(それぞれ「改善」)とは、当業者に知られて
いるアッセイを用いた、または実験部において行われるアッセイを用いた、少なくとも検
出可能な減少(それぞれ検出可能な改善)を意味する。
Antifibrotic effects in the liver are associated with decreased extracellular matrix protein accumulation, blood markers such as type III collagen N-terminal propeptide in plasma, hyaluronic acid, tissue inhibitor of metalloproteinase type 1 (TIMP-1), YKL- 40, levels of serum glutamate oxaloacetate transaminase (SGOT), serum glutamate pyruvate transaminase (SGPT)). Anti-fibrotic effects can also be achieved by modification of fibrosis scoring systems such as Metavir or Ishak. This can be assessed using techniques known to those skilled in the art or as done in the laboratory. In this context, "reduction" (respectively "improvement") means at least a detectable reduction (respectively a detectable improvement) using assays known to those skilled in the art or using assays performed in the laboratory. ).

健康寿命延伸効果は、本明細書中で先に規定される抗糖尿病および/または抗肥満効果
が加齢に関連した代謝障害、好ましくは糖尿病および/または肥満の発症または進行を予
防、遅延、治癒、回復または処置するために用いられたときに達せられ得る。健康寿命延
伸効果はまた健康寿命の増大により達せられ得て、ここでは代謝障害、好ましくは糖尿病
および/または肥満に関連した症候がないまたは低減される。健康寿命延伸効果はまた、
協調性およびバランス(ロータロッド試験により査定される)、記憶(物体認識試験によ
り査定される)ならびに/または神経筋共応性(タイトロープ試験により査定される)の
改善、ミトコンドリアおよび代謝の悪化の減少(代謝およびミトコンドリア機能に関与す
る遺伝子、例えばPGC-1アルファ、ATPシンターゼおよびERRアルファなどの発
現レベルの測定により査定される)により達せられ得る。これは、当業者に知られている
技術を用いて、または実験部において行われるように査定することができる。この関連に
おいて、「増大」(それぞれ「改善」)とは、当業者に知られているアッセイを用いた、
または実験部において行われるアッセイを用いた、少なくとも検出可能な増大(それぞれ
検出可能な改善)を意味する。
The healthy life expectancy extending effect is defined hereinbefore as the anti-diabetic and/or anti-obesity effect prevents, delays, cures the onset or progression of age-related metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity. , can be reached when used to heal or treat. The effect of extending healthy life expectancy may also be achieved by increasing healthy life expectancy, wherein symptoms associated with metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity, are absent or reduced. The effect of extending healthy life expectancy is also
Improved coordination and balance (as assessed by the Rotarod test), memory (as assessed by the Object Recognition test) and/or neuromuscular coordination (as assessed by the Tightrope test), reduced mitochondrial and metabolic deterioration (assessed by measuring expression levels of genes involved in metabolic and mitochondrial function, such as PGC-1 alpha, ATP synthase and ERR alpha). This can be assessed using techniques known to those skilled in the art or as done in the laboratory. In this context, "enhancement" (respectively "improvement") means, using assays known to those skilled in the art,
or at least a detectable increase (respectively a detectable improvement) using an assay performed in the laboratory.

抗がん効果は、生涯にわたったがんの累積的発生の減少により達せられ得る。これは、
当業者に知られている技術を用いて、または実験部において行われるように査定すること
ができる。この関連において、「減少」(それぞれ「改善」)とは、当業者に知られてい
るアッセイを用いた、または実験部において行われるアッセイを用いた、少なくとも検出
可能な減少(それぞれ検出可能な改善)を意味する。
Anti-cancer effects can be achieved by reducing the cumulative incidence of cancer over a lifetime. this is,
It can be assessed using techniques known to those skilled in the art or as performed in the laboratory. In this context, "reduction" (respectively "improvement") means at least a detectable reduction (respectively a detectable improvement) using assays known to those skilled in the art or using assays performed in the laboratory. ).

抗糖尿病効果および/または抗肥満効果はまた、医師により査定される典型的な症候(
例として膵島炎、ベータ細胞の減少、体重の増加)の進行が減速したときにも認められ得
る。典型的症候の減少は、症候発生の進行の減速または症候の完全消失を意味し得る。症
候およびそれゆえにまた症候の減少は、種々の方法を用いて査定することができ、この方
法は大部分は糖尿病および/または肥満の診断において用いられるものと同じ方法であっ
て、臨床検査(clinical examination)および通例の臨床検査(l
aboratory test)を包含する。かかる方法としては、肉眼レベルの方法と
顕微鏡レベルの方法の両方、同様に分子レベルの方法、X線、生化学、免疫組織化学およ
び他のものが挙げられる。
Anti-diabetic and/or anti-obesity effects are also associated with typical symptoms assessed by physicians (
It can also be seen when the progression of insulitis, beta-cell loss, weight gain, for example, slows down. A reduction in typical symptoms can mean a slowing of the progression of symptom development or a complete disappearance of symptoms. Symptoms and therefore also reduction of symptoms can be assessed using a variety of methods, most of which are the same methods used in the diagnosis of diabetes and/or obesity, including clinical examination. examination) and routine laboratory tests (l
Aboratory test). Such methods include both macroscopic and microscopic methods, as well as molecular methods, X-ray, biochemistry, immunohistochemistry and others.

肝臓における抗炎症効果はまた、医師により査定される典型的な症候(例として疲労、
感冒様の症候、暗色尿、白色便、腹痛、食欲減退、不明な体重減少、黄疸)の進行が減速
したときにも認められ得る。典型的症候の減少は、症候発生の進行の減速または症候の完
全消失を意味し得る。症候およびそれゆえにまた症候の減少は、種々の方法を用いて査定
することができ、この方法は大部分は肝線維症の診断において用いられるものと同じ方法
であって、臨床検査(clinical examination)および通例の臨床検
査(laboratory test)を包含する。かかる方法としては、肉眼レベルの
方法と顕微鏡レベルの方法の両方、同様に分子レベルの方法、イメージング方法(弾性撮
像、X線、MRI、CT、超音波検査、血管造影)、生化学、免疫組織化学および他のも
のが挙げられる。
Anti-inflammatory effects in the liver are also associated with typical symptoms assessed by physicians (e.g. fatigue,
cold-like symptoms, dark urine, white stools, abdominal pain, decreased appetite, unexplained weight loss, jaundice) may also be seen when progression slows. A reduction in typical symptoms can mean a slowing of the progression of symptom development or complete disappearance of symptoms. Symptoms, and therefore also reduction of symptoms, can be assessed using a variety of methods, most of which are the same methods used in the diagnosis of liver fibrosis, including clinical examination. and routine laboratory tests. Such methods include both macroscopic and microscopic methods, as well as molecular methods, imaging methods (elastic imaging, X-ray, MRI, CT, ultrasonography, angiography), biochemistry, immunohistochemistry. chemistry and others.

肝臓における抗線維効果はまた、医師により査定される典型的な症候(例として肝臓の
硬さ、黄疸、食欲減退、はっきりとした思考が困難であること、肢または胃の液体貯留、
吐き気、不明な体重減少、衰弱)の進行が減速したときにも認められ得る。典型的症候の
減少は、症候発生の進行の減速または症候の完全消失を意味し得る。症候およびそれゆえ
にまた症候の減少は、種々の方法を用いて査定することができ、この方法は大部分は肝線
維症の診断において用いられるものと同じ方法であって、臨床検査(clinical
examination)および通例の臨床検査(laboratory test)を
包含する。かかる方法としては、肉眼レベルの方法と顕微鏡レベルの方法の両方、同様に
分子レベルの方法、イメージング方法(弾性撮像、X線、MRI、CT、超音波検査、血
管造影)、生化学、免疫組織化学および他のものが挙げられる。
Antifibrotic effects in the liver are also associated with typical symptoms assessed by physicians, such as liver stiffness, jaundice, decreased appetite, difficulty in thinking clearly, fluid retention in the limbs or stomach,
nausea, unexplained weight loss, weakness) may also be seen when progression slows. A reduction in typical symptoms can mean a slowing of the progression of symptom development or a complete disappearance of symptoms. Symptoms, and therefore also reduction of symptoms, can be assessed using a variety of methods, most of which are the same methods used in the diagnosis of liver fibrosis, including clinical examination.
examination) and routine laboratory tests. Such methods include both macroscopic and microscopic methods, as well as molecular methods, imaging methods (elastic imaging, X-ray, MRI, CT, ultrasonography, angiography), biochemistry, immunohistochemistry. chemistry and others.

健康寿命延伸効果はまた、医師により査定される加齢に関連した代謝障害の典型的な症
候(例としてインスリン抵抗性、耐糖能障害、体重増加)の進行が減速したときにも認め
られ得る。典型的症候の減少は、症候発生の進行の減速または症候の完全消失を意味し得
る。症候およびそれゆえにまた症候の減少は、種々の方法を用いて査定することができ、
この方法は大部分は糖尿病および/または肥満の診断において用いられるものと同じ方法
であって、臨床検査(clinical examination)および通例の臨床検
査(laboratory test)を包含する。かかる方法としては、肉眼レベルの
方法と顕微鏡レベルの方法の両方、同様に分子レベルの方法、X線、生化学、免疫組織化
学および他のものが挙げられる。
A healthy lifespan extension effect can also be seen when the progression of typical symptoms of age-related metabolic disorders (eg, insulin resistance, glucose intolerance, weight gain) as assessed by physicians slows down. A reduction in typical symptoms can mean a slowing of the progression of symptom development or a complete disappearance of symptoms. Symptoms and therefore also symptom reduction can be assessed using a variety of methods,
The methods are largely the same methods used in the diagnosis of diabetes and/or obesity and include clinical examinations and routine laboratory tests. Such methods include both macroscopic and microscopic methods, as well as molecular methods, X-ray, biochemistry, immunohistochemistry and others.

抗がん効果はまた、医師により査定される典型的な症候(例として腫瘍サイズ、不明な
体重減少、食欲減退、少量の食事後に大いに満腹感を感じること、吐き気または嘔吐、肝
臓肥大、脾臓肥大、腹部または右肩甲骨近傍の痛み、腹部の腫脹または液体貯留、掻痒、
黄疸)の進行が減速したときにも認められ得る。典型的症候の減少は、症候発生の進行の
減速または症候の完全消失を意味し得る。症候およびそれゆえにまた症候の減少は、種々
の方法を用いて査定することができ、この方法は大部分はがんの診断において用いられる
ものと同じ方法であって、臨床検査(clinical examination)およ
び通例の臨床検査(laboratory test)を包含する。かかる方法としては
、肉眼レベルの方法と顕微鏡レベルの方法の両方、同様に分子レベルの方法、イメージン
グ方法(X線、MRI、CT、超音波検査、血管造影)、生化学、免疫組織化学および他
のものが挙げられる。
Anticancer efficacy is also assessed by typical symptoms assessed by physicians (e.g., tumor size, unexplained weight loss, decreased appetite, feeling very full after eating small meals, nausea or vomiting, enlarged liver, enlarged spleen). , pain in the abdomen or near the right shoulder blade, swelling or fluid in the abdomen, pruritus,
jaundice) may also be seen when progression slows. A reduction in typical symptoms can mean a slowing of the progression of symptom development or a complete disappearance of symptoms. Symptoms and therefore also reduction of symptoms can be assessed using a variety of methods, most of which are the same methods used in cancer diagnosis, including clinical examination and Includes routine laboratory tests. Such methods include both macroscopic and microscopic methods, as well as molecular methods, imaging methods (X-ray, MRI, CT, ultrasonography, angiography), biochemistry, immunohistochemistry and others. are listed.

本発明のウイルス発現コンストラクトおよび/またはウイルスベクターおよび/または
核酸分子および/または組成物を用いた、少なくとも1週間、1ヶ月、6ヶ月、1年また
はそれより長い処置の後に上で規定される前記症候または特性が減少した(例としてもは
や検出可能でない、または減速させた)ならば、本明細書中で規定される薬剤(ウイルス
発現コンストラクト、ウイルスベクター、核酸分子、組成物)は、好ましくは、患者また
は前記患者の細胞、組織もしくは器官の1つの症候または1つの特性を緩和することがで
きる。
after treatment with a viral expression construct and/or viral vector and/or nucleic acid molecule and/or composition of the invention for at least 1 week, 1 month, 6 months, 1 year or longer, as defined above If a symptom or trait is diminished (e.g. no longer detectable or slowed), an agent (viral expression construct, viral vector, nucleic acid molecule, composition) as defined herein is preferably A symptom or a characteristic of a patient or a cell, tissue or organ of said patient can be alleviated.

本発明によって使用するための本明細書中で規定されるウイルス発現コンストラクトお
よび/またはウイルスベクターおよび/または核酸分子および/または組成物は、代謝障
害、例えば糖尿病ならびに/または肥満、肝臓の炎症および/もしくは線維症、加齢に関
連した代謝障害、ならびに/またはがんなどに罹患しているまたはこれらを発症するリス
クがある個体の細胞、組織および/または器官へのインビボでの投与に適したものであり
得て、インビボ、エクスビボまたはインビトロで投与され得る。前記ウイルス発現コンス
トラクトおよび/またはウイルスベクターおよび/または核酸分子および/または組成物
は、代謝障害、例えば糖尿病ならびに/または肥満、肝臓の炎症および/もしくは線維症
、加齢に関連した代謝障害、ならびに/またはがんなどに罹患しているまたはこれらを発
症するリスクがある個体の細胞、組織および/または器官にインビボで直接的または間接
的に投与され得て、インビボ、エクスビボまたはインビトロで直接的または間接的に投与
され得る。投与様式は、静脈内、皮下、筋肉内、髄腔内、関節内、脳室内、腹腔内、脂肪
組織内、吸入を介した、経口、鼻腔内、肝臓内、内臓内、眼内、耳内、局所(topic
)の投与および/または逆行性管内膵臓投与(retrograde intraduc
tal pancreatic administration)を介したものであり得
る。好ましい投与様式は、本出願の一部としての「実施例についての一般的手法」の中に
記載されるように、筋肉内、静脈内または脂肪組織内である。
Viral expression constructs and/or viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions as defined herein for use according to the present invention may be used in patients with metabolic disorders such as diabetes and/or obesity, liver inflammation and/or or suitable for in vivo administration to cells, tissues and/or organs of individuals suffering from or at risk of developing fibrosis, age-related metabolic disorders, and/or cancer, etc. and can be administered in vivo, ex vivo or in vitro. Said viral expression constructs and/or viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions are useful for metabolic disorders such as diabetes and/or obesity, liver inflammation and/or fibrosis, age-related metabolic disorders, and/or or can be directly or indirectly administered in vivo to cells, tissues and/or organs of an individual suffering from or at risk of developing cancer or the like, in vivo, ex vivo or in vitro, directly or indirectly can be administered on a regular basis. Modes of administration include intravenous, subcutaneous, intramuscular, intrathecal, intraarticular, intracerebroventricular, intraperitoneal, intrafatty, via inhalation, oral, intranasal, intrahepatic, intravisceral, intraocular, intraaural. , topic
) and/or retrograde intraductal pancreatic administration
through tal pancreatic administration). Preferred modes of administration are intramuscular, intravenous or intra-adipose, as described in the "General Procedures for Examples" section of this application.

本発明のウイルス発現コンストラクトおよび/またはウイルスベクターおよび/または
核酸分子および/または組成物は、当該技術分野で知られている好適な手段を用いること
により直接的または間接的に投与され得る。既に今までに達成されている進歩を考慮する
と、個体または前記個体の細胞、組織、器官に本発明のウイルス発現コンストラクトおよ
び/またはウイルスベクターおよび/または核酸分子および/または組成物を供給するた
めの手段の改良が予想される。かかる将来の改良は、もちろん、言及された本発明の効果
を達成するために取り込まれ得る。ウイルス発現コンストラクトおよび/またはウイルス
ベクターおよび/または核酸分子および/または組成物は、そのまま個体、前記個体の細
胞、組織または器官に送達することができる。疾患または症状に応じて、前記個体の細胞
、組織または器官は、本明細書中で先に規定されたものであり得る。本発明のウイルス発
現コンストラクトおよび/またはウイルスベクターおよび/または核酸分子および/また
は組成物が投与されるとき、かかるウイルス発現コンストラクトおよび/またはベクター
および/または核酸および/または組成物は、送達方法に適合した溶液中に溶解すること
が好ましい。
Viral expression constructs and/or viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions of the invention can be administered directly or indirectly by using any suitable means known in the art. In view of the advances already achieved to date, methods for supplying an individual or a cell, tissue, organ of said individual with a viral expression construct and/or a viral vector and/or a nucleic acid molecule and/or a composition according to the invention. Means improvement is expected. Such future improvements may, of course, be incorporated in order to achieve the stated advantages of the invention. Viral expression constructs and/or viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions can be delivered intact to an individual, a cell, tissue or organ of said individual. Depending on the disease or condition, said individual's cell, tissue or organ may be as previously defined herein. When viral expression constructs and/or viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions of the invention are administered, such viral expression constructs and/or vectors and/or nucleic acids and/or compositions are compatible with delivery methods. It is preferably dissolved in a diluted solution.

本明細書中に包含されるように、治療的有効用量の上述のウイルス発現コンストラクト
、ベクター、核酸分子および/または組成物は、好ましくは単回および固有の用量で、し
たがって反復の定期的投与を避けて投与される。より好ましくは、単回用量が骨格筋に、
脂肪組織にまたは静脈内に投与される。
As encompassed herein, therapeutically effective doses of the above-described viral expression constructs, vectors, nucleic acid molecules and/or compositions are preferably administered in single and unique doses, thus repeated periodic administrations. Avoid administration. More preferably, a single dose to skeletal muscle,
It is administered into adipose tissue or intravenously.

さらなる化合物が本発明の組成物中に存在し得る。前記化合物は、組成物の送達を助け
得る。以下に好適な化合物のリストが提供される:本明細書中で規定される各構成成分を
小胞またはリポソームの中に複合化またはトラップして細胞膜を通して送達する複合体、
ナノ粒子、ミセルおよび/またはリポソームを形成する能力がある化合物。これらの化合
物の多くは当該技術分野で知られている。好適な化合物は、ポリエチレンイミン(PEI
)、またはポリプロピレンイミンまたはポリエチレンイミンコポリマー(PEC)および
誘導体を包含する類似のカチオン性ポリマー、合成両親媒性物質(SAINT-18)、
リポフェクチン(商標)、DOTAPを含む。
Additional compounds may be present in the compositions of the invention. Said compounds may assist in the delivery of the composition. A list of suitable compounds is provided below: Complexes that complex or entrap each component defined herein in vesicles or liposomes for delivery across cell membranes;
Compounds capable of forming nanoparticles, micelles and/or liposomes. Many of these compounds are known in the art. A preferred compound is polyethyleneimine (PEI
), or similar cationic polymers, including polypropyleneimine or polyethyleneimine copolymers (PEC) and derivatives, synthetic amphiphiles (SAINT-18),
Lipofectin™, including DOTAP.

それらの同一性に応じて、当業者は、どの製剤タイプが本明細書中で規定される組成物
に最も適しているかを理解する。
Depending on their identity, those skilled in the art will understand which formulation type is most suitable for the compositions defined herein.

方法/使用
さらなる態様において、薬剤としての使用のための、上で規定されるウイルス発現コン
ストラクトおよび/または上で規定されるウイルスベクターおよび/または上で規定され
る核酸分子および/または上で規定される組成物が提供される。
Methods/Uses In a further aspect, a viral expression construct as defined above and/or a viral vector as defined above and/or a nucleic acid molecule as defined above and/or a nucleic acid molecule as defined above for use as a medicament. A composition is provided.

ある実施形態において、前記ウイルス発現コンストラクトおよび/またはウイルスベク
ターおよび/または核酸分子および/または組成物は、代謝障害、好ましくは糖尿病およ
び/または肥満の処置および/または予防における使用のために提供される。代謝障害の
合併症もまた包含され得る。
In certain embodiments, said viral expression constructs and/or viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions are provided for use in the treatment and/or prevention of metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity. . Complications of metabolic disorders may also be included.

別の実施形態において、前記ウイルス発現コンストラクトおよび/またはウイルスベク
ターおよび/または核酸分子および/または組成物は、肝臓の炎症および/または線維症
の処置および/または予防における使用のために提供される。肝臓の炎症および/または
線維症の合併症もまた包含され得る。
In another embodiment, said viral expression constructs and/or viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions are provided for use in the treatment and/or prevention of liver inflammation and/or fibrosis. Complications of liver inflammation and/or fibrosis may also be included.

なお別の実施形態において、前記ウイルス発現コンストラクトおよび/またはウイルス
ベクターおよび/または核酸分子および/または組成物は、好ましくは加齢に関連した代
謝障害、好ましくは糖尿病および/または肥満を予防、遅延、治癒、回復および/または
処置することによる健康寿命の延伸における使用のために提供される。
In yet another embodiment, said viral expression construct and/or viral vector and/or nucleic acid molecule and/or composition preferably prevents, delays, delays, age-related metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity. It is provided for use in extending healthy life expectancy by healing, recovery and/or treatment.

なお別の実施形態において、前記ウイルス発現コンストラクトおよび/またはウイルス
ベクターおよび/または核酸分子および/または組成物は、がん、好ましくは肝臓がんの
処置および/または予防における使用のために提供される。がんの合併症もまた包含され
得る。
In yet another embodiment, said viral expression constructs and/or viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions are provided for use in the treatment and/or prevention of cancer, preferably liver cancer. . Complications of cancer may also be included.

さらなる態様において、上で規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/または上
で規定されるウイルスベクターおよび/または上で規定される核酸分子および/または上
で規定される組成物の使用を含む、代謝障害、好ましくは糖尿病および/または肥満なら
びにそれらの合併症を予防、遅延、回復、治癒および/または処置する方法が提供される
In a further aspect a metabolic disorder comprising the use of a viral expression construct as defined above and/or a viral vector as defined above and/or a nucleic acid molecule as defined above and/or a composition as defined above, Methods are provided for preferably preventing, delaying, reversing, curing and/or treating diabetes and/or obesity and their complications.

かかる方法は、好ましくは、個体において、前記個体の細胞、組織もしくは器官におい
て代謝障害、例えば糖尿病および/もしくは肥満などの1もしくは複数の症候(複数可)
を緩和するためのものであるか、または前記個体の細胞、組織もしくは器官の1もしくは
複数の特性(複数可)もしくは症候(複数可)を緩和するものであり、この方法は、前記
個体に本明細書中で規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/またはウイルスベク
ターおよび/または核酸分子および/または組成物を投与することを含む。
Such methods preferably comprise in an individual one or more symptom(s) such as a metabolic disorder, such as diabetes and/or obesity, in a cell, tissue or organ of said individual.
or for alleviating one or more characteristic(s) or symptom(s) of a cell, tissue or organ of said individual, the method comprising: administration of viral expression constructs and/or viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions as defined herein.

さらなる態様において、上で規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/または上
で規定されるウイルスベクターおよび/または上で規定される核酸分子および/または上
で規定される組成物の使用を含む、肝臓の炎症および/または線維症ならびにそれらの合
併症を予防、遅延、回復、治癒および/または処置する方法が提供される。
In a further aspect liver inflammation comprising the use of a viral expression construct as defined above and/or a viral vector as defined above and/or a nucleic acid molecule as defined above and/or a composition as defined above and/or methods of preventing, delaying, ameliorating, curing and/or treating fibrosis and their complications.

かかる方法は、好ましくは、個体において、前記個体の細胞、組織もしくは器官におい
て肝臓の炎症および/もしくは線維症の1もしくは複数の症候(複数可)を緩和するため
のものであるか、または前記個体の細胞、組織もしくは器官の1もしくは複数の特性(複
数可)もしくは症候(複数可)を緩和するものであり、この方法は、前記個体に本明細書
中で規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/またはウイルスベクターおよび/ま
たは核酸分子および/または組成物を投与することを含む。
Such methods are preferably for alleviating, in an individual, one or more symptom(s) of liver inflammation and/or fibrosis in a cell, tissue or organ of said individual, or ameliorating one or more characteristic(s) or symptom(s) of a cell, tissue or organ of a cell, tissue or organ, the method comprising administering to said individual a viral expression construct as defined herein and/or This includes administering viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions.

さらなる態様において、上で規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/または上
で規定されるウイルスベクターおよび/または上で規定される核酸分子および/または上
で規定される組成物の使用を含む、好ましくは、加齢に関連した代謝障害、好ましくは糖
尿病および/または肥満を予防、遅延、治癒、回復および/または処置することにより健
康寿命を延伸する方法が提供される。
In a further aspect comprises the use of a viral expression construct as defined above and/or a viral vector as defined above and/or a nucleic acid molecule as defined above and/or a composition as defined above, preferably Methods are provided to extend healthy life expectancy by preventing, delaying, curing, ameliorating and/or treating age-related metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity.

かかる方法は、好ましくは、個体において、前記個体の細胞、組織もしくは器官におい
て加齢に関連した代謝障害、例えば糖尿病および/もしくは肥満などの1もしくは複数の
症候(複数可)を緩和するためのものであるか、または前記個体の細胞、組織もしくは器
官の1もしくは複数の特性(複数可)もしくは症候(複数可)を緩和するものであり、こ
の方法は、前記個体に本明細書中で規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/また
はウイルスベクターおよび/または核酸分子および/または組成物を投与することを含む
Such methods are preferably for alleviating in an individual one or more symptom(s) of age-related metabolic disorders such as diabetes and/or obesity in cells, tissues or organs of said individual. or alleviating one or more characteristic(s) or symptom(s) of a cell, tissue or organ of said individual, the method comprising: administering a viral expression construct and/or viral vector and/or nucleic acid molecule and/or composition.

さらなる態様において、上で規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/または上
で規定されるウイルスベクターおよび/または上で規定される核酸分子および/または上
で規定される組成物の使用を含む、がん、好ましくは肝臓がんならびにそれらの合併症を
予防、遅延、回復、治癒および/または処置する方法が提供される。
In a further aspect a cancer comprising the use of a viral expression construct as defined above and/or a viral vector as defined above and/or a nucleic acid molecule as defined above and/or a composition as defined above, Methods are provided to preferably prevent, delay, reverse, cure and/or treat liver cancer and their complications.

かかる方法は、好ましくは、個体において、前記個体の細胞、組織もしくは器官におい
てがん、例えば肝臓がんなどの1もしくは複数の症候(複数可)を緩和するためのもので
あるか、または前記個体の細胞、組織もしくは器官の1もしくは複数の特性(複数可)も
しくは症候(複数可)を緩和するものであり、この方法は、前記個体に本明細書中で規定
されるウイルス発現コンストラクトおよび/またはウイルスベクターおよび/または核酸
分子および/または組成物を投与することを含む。
Such methods are preferably for alleviating in an individual one or more symptom(s) such as cancer, for example liver cancer, in a cell, tissue or organ of said individual, or ameliorating one or more characteristic(s) or symptom(s) of a cell, tissue or organ of a viral expression construct as defined herein and/or This includes administering viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions.

本発明との関連において、代謝障害、好ましくは糖尿病および/または肥満を予防、遅
延、回復、治癒および/または処置するための薬剤の製造のための、本明細書中で規定さ
れるウイルス発現コンストラクトおよび/またはウイルスベクターおよび/または核酸分
子および/または組成物の使用が提供される。
In the context of the present invention, a viral expression construct as defined herein for the manufacture of a medicament for preventing, delaying, ameliorating, curing and/or treating metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity and/or use of viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions are provided.

本発明との関連において、肝臓の炎症および/または線維症を予防、遅延、治癒、回復
および/または処置するための薬剤の製造のための、本明細書中で規定されるウイルス発
現コンストラクトおよび/またはウイルスベクターおよび/または核酸分子および/また
は組成物の使用が提供される。
In the context of the present invention, a viral expression construct as defined herein and/or for the manufacture of a medicament for preventing, retarding, curing, ameliorating and/or treating liver inflammation and/or fibrosis Alternatively, use of viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions is provided.

本発明との関連において、好ましくは、加齢に関連した代謝障害、好ましくは糖尿病お
よび/または肥満を予防、遅延、治癒、回復および/または処置することにより健康寿命
を延伸するための薬剤の製造のための、本明細書中で規定されるウイルス発現コンストラ
クトおよび/またはウイルスベクターおよび/または核酸分子および/または組成物の使
用が提供される。
In the context of the present invention, preferably manufacture of a medicament for prolonging healthy life expectancy by preventing, delaying, curing, ameliorating and/or treating age-related metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity Use of the viral expression constructs and/or viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions as defined herein is provided for.

本発明との関連において、がん、好ましくは肝臓がんを予防、遅延、回復、治癒および
/または処置するための薬剤の製造のための、本明細書中で規定されるウイルス発現コン
ストラクトおよび/またはウイルスベクターおよび/または核酸分子および/または組成
物の使用が提供される。
In the context of the present invention, a viral expression construct as defined herein and/or for the manufacture of a medicament for preventing, delaying, reversing, curing and/or treating cancer, preferably liver cancer. Alternatively, use of viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions is provided.

代謝障害としては、メタボリックシンドローム、糖尿病、肥満、肥満関連併存病、糖尿
病関連併存病、高血糖症、インスリン抵抗性、耐糖能障害、脂肪肝、アルコール性肝疾患
(ALD)、非アルコール性脂肪肝疾患(NAFLD)、非アルコール性脂肪性肝炎(N
ASH)、冠動脈心疾患(CHD)、高脂血症、アテローム性動脈硬化、内分泌疾患(e
ndocrinophaties)、オステオサルコペニア肥満症候群(OSO)、糖尿
病性腎症(diabetic nephropaty)、慢性腎症(CKD)、心肥大、
糖尿病性網膜症、糖尿病性腎症、糖尿病性神経障害、関節炎、敗血症、眼の新生血管形成
、神経変性、認知症が挙げられ、またうつ病、腺腫、癌腫が挙げられ得る。
Metabolic disorders include metabolic syndrome, diabetes, obesity, obesity-related comorbidities, diabetes-related comorbidities, hyperglycemia, insulin resistance, impaired glucose tolerance, fatty liver, alcoholic liver disease (ALD), non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD), nonalcoholic steatohepatitis (N
ASH), coronary heart disease (CHD), hyperlipidemia, atherosclerosis, endocrine disease (e
ndocrinophaties), osteosarcopenic obesity syndrome (OSO), diabetic nephropathy, chronic nephropathy (CKD), cardiac hypertrophy,
Diabetic retinopathy, diabetic nephropathy, diabetic neuropathy, arthritis, sepsis, ocular neovascularization, neurodegeneration, dementia and may also include depression, adenoma, carcinoma.

糖尿病としては、糖尿病前症、高血糖症、1型糖尿病、2型糖尿病、若年発症成人型糖
尿病(MODY)、一遺伝子性糖尿病、新生児糖尿病、妊娠性糖尿病、不安定型糖尿病、
特発性糖尿病、薬物または化学物質誘発性糖尿病、Stiff-man症候群、脂肪萎縮
性糖尿病、成人潜在性自己免疫性糖尿病(LADA)が挙げられる。
Diabetes includes prediabetes, hyperglycemia, type 1 diabetes, type 2 diabetes, maturity onset diabetes of the young (MODY), monogenic diabetes, neonatal diabetes, gestational diabetes, unstable diabetes,
Idiopathic diabetes, drug- or chemical-induced diabetes, Stiff-man syndrome, lipotrophic diabetes, latent autoimmune diabetes in adults (LADA).

肥満としては、過体重、中枢/上半身肥満、末梢/下半身肥満、病的肥満、オステオサ
ルコペニア肥満症候群(OSO)、小児肥満、メンデル(一遺伝子性)症候性肥満、メン
デル非症候性肥満、多遺伝子性肥満が挙げられる。
Obesity includes overweight, central/upper body obesity, peripheral/lower body obesity, morbid obesity, osteosarcopenic obesity syndrome (OSO), childhood obesity, Mendelian (monogenic) symptomatic obesity, Mendelian non-syndromic obesity, polygenic sexual obesity.

代謝障害、糖尿病、肥満および処置される対象のタイプは、本明細書中で先に規定され
ている。
Metabolic disorders, diabetes, obesity and the type of subject to be treated are defined earlier herein.

肝臓の炎症および/または線維症としては、自己免疫性肝炎、A型、B型、C型、D型
およびE型肝炎を包含するウイルス性肝炎、アルコール性肝炎、非アルコール性脂肪性肝
炎(NASH)および肝硬変が挙げられる。
Inflammation and/or fibrosis of the liver include autoimmune hepatitis, viral hepatitis including hepatitis A, B, C, D and E, alcoholic hepatitis, non-alcoholic steatohepatitis (NASH). ) and liver cirrhosis.

がんとしては、星状細胞腫、神経膠腫、白血病、リンパ腫、黒色腫、骨髄腫、神経芽細
胞腫、肉腫(軟骨肉腫、線維肉腫、横紋筋肉腫(rhabdomyoscaroma)お
よび骨肉腫を包含する)、シュワン腫、精上皮腫、ならびに膀胱、乳房、子宮頸部、結腸
、子宮内膜、食道、胆嚢、腎臓、肝臓、肺、卵巣、前立腺、膵臓、直腸、皮膚、胃および
甲状腺の癌腫が挙げられる。好ましいがんは、肝臓がん、好ましくは肝細胞癌である。1
つの実施形態において、前記方法または使用は、インビトロで、例えば細胞培養を用いて
実施される。好ましくは、前記方法または使用は、インビボである。これらの方法/使用
の各々の特徴は、本明細書中で既に規定されている。
Cancers include astrocytoma, glioma, leukemia, lymphoma, melanoma, myeloma, neuroblastoma, sarcoma (chondrosarcoma, fibrosarcoma, rhabdomyoscaroma and osteosarcoma). ), schwannoma, seminioma, and carcinomas of the bladder, breast, cervix, colon, endometrium, esophagus, gallbladder, kidney, liver, lung, ovary, prostate, pancreas, rectum, skin, stomach, and thyroid. mentioned. A preferred cancer is liver cancer, preferably hepatocellular carcinoma. 1
In one embodiment, the method or use is performed in vitro, eg, using cell culture. Preferably said method or use is in vivo. Features of each of these methods/uses have already been defined herein.

本発明のある方法において、ウイルス発現コンストラクトおよび/またはベクターおよ
び/または核酸分子および/または組成物は、個体において代謝障害、好ましくは糖尿病
および/または肥満を処置するために用いられることが知られている付加的な化合物と組
み合わされ得る。
In certain methods of the invention, viral expression constructs and/or vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions are known to be used to treat metabolic disorders, preferably diabetes and/or obesity in individuals. It can be combined with additional compounds that are

本発明の別の方法において、ウイルス発現コンストラクトおよび/またはベクターおよ
び/または核酸分子および/または組成物は、肝臓の炎症および/または線維症を処置す
るために用いられることが知られている付加的な化合物と組み合わされ得る。
In another method of the invention, the viral expression constructs and/or vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions are known to be used to treat liver inflammation and/or fibrosis. can be combined with other compounds.

本発明のなお別の方法において、ウイルス発現コンストラクトおよび/またはベクター
および/または核酸分子および/または組成物は、健康寿命を延伸するために用いられる
ことが知られている付加的な化合物と組み合わされ得る。
In yet another method of the invention, the viral expression construct and/or vector and/or nucleic acid molecule and/or composition is combined with additional compounds known to be used to extend healthy lifespan. obtain.

本発明のなお別の方法において、ウイルス発現コンストラクトおよび/またはベクター
および/または核酸分子および/または組成物は、がん、好ましくは肝臓がんを処置する
ために用いられることが知られている付加的な化合物と組み合わされ得る。
In yet another method of the invention, the viral expression constructs and/or vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions are known to be used to treat cancer, preferably liver cancer. can be combined with a specific compound.

好ましい実施形態において、本発明による使用または方法における処置は、繰り返され
る必要はない。あるいは、本発明による使用または方法において、ウイルス発現コンスト
ラクトまたは前記組成物の前記投与は、毎年または2、3、4、5、6年ごとに繰り返さ
れ得る。
In preferred embodiments, the use or treatment in the method according to the invention need not be repeated. Alternatively, in the use or method according to the invention, said administration of the viral expression construct or said composition may be repeated annually or every 2, 3, 4, 5, 6 years.

一般的定義
同一性/類似性
本発明との関連において、線維芽細胞増殖因子21(FGF21)としてのタンパク質
断片またはポリペプチドまたはペプチドまたは派生ペプチドは、アミノ酸配列により表さ
れる。
General definition
Identity/Similarity In the context of the present invention, protein fragments or polypeptides or peptides or derivative peptides as fibroblast growth factor 21 (FGF21) are represented by amino acid sequences.

本発明との関連において、FGF21をコードする核酸分子としての核酸分子は、タン
パク質断片またはポリペプチドまたはペプチドまたは派生ペプチドをコードする核酸また
はヌクレオチドの配列により表される。核酸分子は、調節性領域を含み得る。
In the context of the present invention, a nucleic acid molecule as a nucleic acid molecule encoding FGF21 is represented by a nucleic acid or nucleotide sequence encoding a protein fragment or polypeptide or peptide or derivative peptide. Nucleic acid molecules can include regulatory regions.

所与の配列番号(Sequence Identity Number)(配列番号(
SEQ ID NO))によって本明細書中で特定される各々の核酸分子またはタンパク
質断片またはポリペプチドまたはペプチドまたは派生ペプチドまたはコンストラクトは、
開示される具体的な配列に限定されるものではないことが理解されるものである。本明細
書中で特定される各コーディング配列は、所与のタンパク質断片もしくはポリペプチドも
しくはペプチドもしくは派生ペプチドもしくはコンストラクトをコードするか、またはそ
れ自体がタンパク質断片もしくはポリペプチドもしくはコンストラクトもしくはペプチド
もしくは派生ペプチドである。本出願の全体を通して、所与のタンパク質断片またはポリ
ペプチドまたはペプチドまたは派生ペプチドをコードする具体的なヌクレオチド配列の配
列番号(例として配列番号Xを取り上げる)に言及するたび、これは:
i. 配列番号Xと少なくとも60%の配列同一性もしくは類似性を持つヌクレオチド配
列を含むヌクレオチド配列;
ii. 遺伝暗号の縮重のために(i)の核酸分子の配列と配列が異なるヌクレオチド配
列;または
iii. 配列番号Xのヌクレオチド配列によりコードされるアミノ酸配列と少なくとも
60%のアミノ酸同一性または類似性を持つアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列
により置き換えられ得る。
Given Sequence Identity Number (SEQ ID NO:
Each nucleic acid molecule or protein fragment or polypeptide or peptide or derivative peptide or construct identified herein by SEQ ID NO)) is
It is understood that there is no limitation to the specific sequences disclosed. Each coding sequence identified herein encodes a given protein fragment or polypeptide or peptide or derivative peptide or construct, or is itself a protein fragment or polypeptide or construct or peptide or derivative peptide. be. Throughout this application, whenever a reference is made to the SEQ ID NO of a specific nucleotide sequence encoding a given protein fragment or polypeptide or peptide or derivative peptide (taking SEQ ID NO X as an example), this means:
i. a nucleotide sequence comprising a nucleotide sequence having at least 60% sequence identity or similarity with SEQ ID NO:X;
ii. a nucleotide sequence that differs in sequence from the sequence of the nucleic acid molecule of (i) due to the degeneracy of the genetic code; or iii. It can be replaced by a nucleotide sequence encoding an amino acid sequence that has at least 60% amino acid identity or similarity to the amino acid sequence encoded by the nucleotide sequence of SEQ ID NO:X.

本出願の全体を通して、具体的なアミノ酸配列の配列番号(例として配列番号Yを取り
上げる)に言及するたび、これは:
配列番号Yのアミノ酸配列と少なくとも60%の配列同一性または類似性を持つアミノ酸
配列を含むポリペプチド
により置き換えられ得る。
Throughout this application, whenever we refer to a specific amino acid sequence SEQ ID NO (taking SEQ ID NO Y as an example), this:
It can be replaced by a polypeptide comprising an amino acid sequence having at least 60% sequence identity or similarity with the amino acid sequence of SEQ ID NO:Y.

それぞれ所与のヌクレオチド配列またはアミノ酸配列とのその同一性または類似性パー
センテージ(少なくとも60%)によって本明細書中に記載される各々のヌクレオチド配
列またはアミノ酸配列は、さらに好ましい実施形態において、それぞれ所与のヌクレオチ
ドまたはアミノ酸配列と少なくとも65%、70%、75%、80%、85%、90%、
95%、97%、98%、99%またはそれより高い同一性または類似性を持つ。好まし
い実施形態において、配列同一性または類似性は、本明細書中で特定される配列の全長を
比較することにより決定される。本明細書中で特に指示がない限り、所与の配列番号との
同一性または類似性は、完全長の(すなわちその全長にわたっての、または全体としての
)前記配列に基づく同一性または類似性を意味する。
Each nucleotide sequence or amino acid sequence described herein by its percentage identity or similarity (at least 60%) with a given nucleotide sequence or amino acid sequence, respectively, is in a further preferred embodiment a given and at least 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%,
95%, 97%, 98%, 99% or more identity or similarity. In preferred embodiments, sequence identity or similarity is determined by comparing the full length of the sequences identified herein. Unless otherwise indicated herein, identity or similarity to a given SEQ ID refers to identity or similarity based on said sequence in full length (i.e. over its entire length or in its entirety). means.

ノンコーディングの(すなわちプロモーターのまたは別の調節性領域の)各ヌクレオチ
ド配列は、具体的なヌクレオチド配列の配列番号(例として配列番号Aを取り上げる)と
少なくとも60%の配列同一性または類似性を持つヌクレオチド配列を含むヌクレオチド
配列により置き換えることができる。好ましいヌクレオチド配列は、配列番号Aと少なく
とも60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、97%、98
%、99%、100%の同一性を持つ。同一性は、本明細書中で説明されるように、その
配列番号の全体にわたって、またはその部分にわたって査定され得る。好ましい実施形態
において、かかるノンコーディングヌクレオチド配列、例えばプロモーターなどは、少な
くとも、当業者に知られているかかるノンコーディングヌクレオチド配列の活性、例えば
プロモーターの活性などを呈するまたは発揮する。
Each non-coding (i.e. promoter or another regulatory region) nucleotide sequence has at least 60% sequence identity or similarity with a specific nucleotide sequence SEQ ID NO (take SEQ ID NO:A as an example) It can be replaced by any nucleotide sequence, including any nucleotide sequence. Preferred nucleotide sequences are SEQ ID NO: A and at least 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%
%, 99%, 100% identity. Identity can be assessed over the entire SEQ ID NO, or over portions thereof, as described herein. In preferred embodiments, such non-coding nucleotide sequences, such as promoters, exhibit or exert at least the activity of such non-coding nucleotide sequences, such as the activity of promoters, known to those skilled in the art.

「配列同一性」は、配列を比較することにより決定される、2個もしくはそれより多く
のアミノ酸(ポリペプチドまたはタンパク質)配列間の、または2個もしくはそれより多
くの核酸(ポリヌクレオチド)配列間の関係性として本明細書中で規定される。好ましい
実施形態において、配列同一性は、2個の所与の配列番号の完全長に基づいて、またはそ
の部分に基づいて算出される。その部分とは、好ましくは、両配列番号の少なくとも10
%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%または100%
を意味する。当該分野において、「同一性」はまた、場合によって、かかる配列の文字列
間のマッチにより決定されるアミノ酸または核酸配列間の配列関連性の程度を意味する。
"Sequence identity" is between two or more amino acid (polypeptide or protein) sequences or between two or more nucleic acid (polynucleotide) sequences, as determined by comparing the sequences defined herein as the relationship of In preferred embodiments, sequence identity is calculated on the basis of the full length of two given SEQ ID NOs, or on parts thereof. The portion preferably includes at least 10 of both SEQ ID NOs.
%, 20%, 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 80%, 90% or 100%
means In the art, "identity" also refers, as the case may be, to the degree of sequence relatedness between amino acid or nucleic acid sequences as determined by matches between strings of such sequences.

2個のアミノ酸配列間の「類似性」は、1つのポリペプチドのアミノ酸配列およびその
保存的アミノ酸置換体を第二のポリペプチドの配列と比較することにより決定される。「
同一性」および「類似性」は、公知の方法により容易に算出することができ、この方法と
しては、限定されるものではないが、Computational Molecular
Biology,Lesk,A.M.,ed.,Oxford University
Press,New York,1988; Biocomputing: Info
rmatics and Genome Projects,Smith,D.W.,e
d.,Academic Press,New York,1993; Compute
r Analysis of Sequence Data,Part I,Griff
in,A.M.,and Griffin,H.G.,eds.,Humana Pre
ss,New Jersey,1994; Sequence Analysis in
Molecular Biology,von Heine,G.,Academic
Press,1987; and Sequence Analysis Prime
r,Gribskov,M. and Devereux,J.,eds.,M Sto
ckton Press,New York,1991; and Carillo,H
.,and Lipman,D.,SIAM J.Applied Math.,48:
1073(1988)中に記載されるものが挙げられる。
"Similarity" between two amino acid sequences is determined by comparing the amino acid sequence and conservative amino acid substitutions thereof of one polypeptide to the sequence of a second polypeptide. "
"Identity" and "similarity" can be easily calculated by known methods, including, but not limited to, Computational Molecular
Biology, Lesk, A.; M. , ed. , Oxford University
Press, New York, 1988;
rmatics and Genome Projects, Smith, D.; W. , e
d. , Academic Press, New York, 1993;
r Analysis of Sequence Data, Part I, Griff
in, A.I. M. , and Griffin, H.; G. , eds. , Humana Pre
ss, New Jersey, 1994;
Molecular Biology, von Heine, G.; , Academic
Press, 1987; and Sequence Analysis Prime
r, Gribskov, M.; and Devereux, J.; , eds. , M Sto
Ckton Press, New York, 1991; and Carillo, H.
. , and Lipman, D.; , SIAMJ. Applied Math. , 48:
1073 (1988).

同一性を決定するための好ましい方法は、試験される配列間の最大マッチを与えるよう
にデザインされる。同一性および類似性を決定するための方法は、公開されているコンピ
ュータープログラム中に成文化されている。2個の配列間の同一性および類似性を決定す
るための好ましいコンピュータープログラム方法としては、例としてGCGプログラムパ
ッケージ(Devereux,J.,et al.,Nucleic Acids Re
search 12(1):387(1984))、BestFit、BLASTP、B
LASTNおよびFASTA(Altschul,S.F. et al.,J.Mol
.Biol. 215:403-410(1990)が挙げられる。BLAST Xプロ
グラムは、NCBIおよび他のソーズから公開されている(BLAST Manual,
Altschul,S.,et al.,NCBI NLM NIH Bethesda
,MD 20894; Altschul,S.,et al.,J.Mol.Biol
. 215:403-410(1990)。周知のSmith Watermanアルゴ
リズムも同一性を決定するために用いられ得る。
Preferred methods to determine identity are designed to give the largest match between the sequences tested. Methods to determine identity and similarity are codified in publicly available computer programs. Preferred computer program methods for determining identity and similarity between two sequences include, for example, the GCG program package (Devereux, J., et al., Nucleic Acids Re
search 12(1):387 (1984)), BestFit, BLASTP, B.
LASTN and FASTA (Altschul, SF et al., J. Mol.
. Biol. 215:403-410 (1990). The BLAST X program is publicly available from NCBI and other sources (BLAST Manual,
Altschul, S.; , et al. , NCBI NLM NIH Bethesda
, MD 20894; , et al. , J. Mol. Biol
. 215:403-410 (1990). The well-known Smith Waterman algorithm can also be used to determine identity.

ポリペプチド配列比較のための好ましいパラメーターとしては、Algorithm:
Needleman and Wunsch,J.Mol.Biol. 48:443-
453(1970);Hentikoff and Hentikoff,Proc.N
atl.Acad.Sci.USA. 89:10915-10919(1992)から
のComparison matrix:BLOSSUM62;Gap Penalty
:12;およびGap Length Penalty:4が挙げられる。これらのパラ
メーターを有する有用なプログラムは、Madison,WIにあるGenetics
Computer Groupから「Ogap」プログラムとして公開されている。前述
のパラメーターは、アミノ酸比較のデフォルトパラメーターである(エンドギャップへの
ペナルティを伴わない)。
Preferred parameters for polypeptide sequence comparison include the Algorithm:
Needleman and Wunsch,J. Mol. Biol. 48:443-
453 (1970); Hentikoff and Hentikoff, Proc. N.
atl. Acad. Sci. USA. 89:10915-10919 (1992) Comparison matrix: BLOSSUM62; Gap Penalty
: 12; and Gap Length Penalty: 4. A useful program with these parameters is Genetics
It is published as the "Ogap" program by the Computer Group. The preceding parameters are the default parameters for amino acid comparisons (with no penalties for end gaps).

核酸比較のための好ましいパラメーターとしては、Algorithm:Needle
man and Wunsch,J.Mol.Biol. 48:443-453(19
70);Comparison matrix:matches=+10,mismat
ch=0;Gap Penalty:50;Gap Length Penalty:3
が挙げられる。Madison,WisにあるGenetics Computer G
roupからGapプログラムとして利用可能である。上で与えられたのは、核酸比較の
デフォルトパラメーターである。
Preferred parameters for nucleic acid comparison include Algorithm: Needle
Mann and Wunsch,J. Mol. Biol. 48:443-453 (19
70); Comparison matrix: matches=+10, mismat
ch=0; Gap Penalty: 50; Gap Length Penalty: 3
is mentioned. Genetics Computer G in Madison, Wis.
It is available as a Gap program from roup. Given above are the default parameters for nucleic acid comparisons.

アミノ酸類似性の程度を決定する際、当業者は、当業者に明らかな、いわゆる「保存的
」アミノ酸置換を考慮してもよい。保存的アミノ酸置換とは、類似した側鎖を持つ残基の
交換可能性をいう。例えば、脂肪族側鎖を持つアミノ酸のグループはグリシン、アラニン
、バリン、ロイシンおよびイソロイシンであり;脂肪族-ヒドロキシル側鎖を持つアミノ
酸のグループはセリンおよびスレオニンであり;アミド含有側鎖を持つアミノ酸のグルー
プはアスパラギンおよびグルタミンであり;芳香族側鎖を持つアミノ酸のグループはフェ
ニルアラニン、チロシンおよびトリプトファンであり;塩基性側鎖を持つアミノ酸のグル
ープはリジン、アルギニンおよびヒスチジンであり;ならびに硫黄含油側鎖を持つアミノ
酸のグループはシステインおよびメチオニンである。好ましい保存的アミノ酸置換のグル
ープは:バリン-ロイシン-イソロイシン、フェニルアラニン-チロシン、リジン-アル
ギニン、アラニン-バリンおよびアスパラギン-グルタミンである。本明細書中に開示さ
れるアミノ酸配列の置換バリアントは、開示された配列中の少なくとも1個の残基が取り
除かれていて異なる残基がその位置に挿入されているものである。好ましくは、アミノ酸
の変化は保存的である。各々の天然起源アミノ酸についての好ましい保存的置換は、Al
aからSer;ArgからLys;AsnからGlnまたはHis;AspからGlu;
CysからSerまたはAla;GlnからAsn;GluからAsp;GlyからPr
o;HisからAsnまたはGln;IleからLeuまたはVal;LeuからIle
またはVal;LysからArg;GlnまたはGlu;MetからLeuまたはIle
;PheからMet、LeuまたはTyr;SerからThr;ThrからSer;Tr
pからTyr;TyrからTrpまたはPhe;およびValからIleまたはLeuで
ある。
In determining the degree of amino acid similarity, those skilled in the art may consider so-called "conservative" amino acid substitutions, which are apparent to those skilled in the art. Conservative amino acid substitutions refer to the interchangeability of residues with similar side chains. For example, groups of amino acids with aliphatic side chains are glycine, alanine, valine, leucine and isoleucine; groups of amino acids with aliphatic-hydroxyl side chains are serine and threonine; groups are asparagine and glutamine; groups of amino acids with aromatic side chains are phenylalanine, tyrosine and tryptophan; groups of amino acids with basic side chains are lysine, arginine and histidine; The groups of amino acids it has are cysteine and methionine. Preferred conservative amino acid substitution groups are: valine-leucine-isoleucine, phenylalanine-tyrosine, lysine-arginine, alanine-valine and asparagine-glutamine. Substitutional variants of the amino acid sequences disclosed herein are those in which at least one residue in the disclosed sequence has been removed and a different residue inserted in its place. Preferably, the amino acid changes are conservative. A preferred conservative substitution for each naturally occurring amino acid is Al
a to Ser; Arg to Lys; Asn to Gln or His; Asp to Glu;
Cys to Ser or Ala; Gln to Asn; Glu to Asp; Gly to Pr
o; His to Asn or Gln; Ile to Leu or Val; Leu to Ile
or Val; Lys to Arg; Gln or Glu; Met to Leu or Ile
Phe to Met, Leu or Tyr; Ser to Thr; Thr to Ser; Tr
p to Tyr; Tyr to Trp or Phe; and Val to Ile or Leu.

遺伝子またはコーディング配列
「遺伝子」または「コーディング配列」または「核酸」または「ヌクレオチド配列」ま
たは「核の(nucleic)」とは、特定のタンパク質、例えばFGF21などを「コ
ードする」DNAまたはRNAの領域(転写領域)をいう。コーディング配列は、適切な
制御領域、例えばプロモーターなどの制御下に置かれると、転写され(DNA)、ポリペ
プチドに翻訳される(RNA)。遺伝子は、いくつかの作動可能に連結された断片、例え
ばプロモーター、5’リーダー配列、イントロン、コーディング配列および3’非翻訳配
列または3’非翻訳領域(3’UTR)などを含み得て、これはポリアデニル化部位また
はシグナル配列を含む。キメラまたは組換え遺伝子(例えばFGF21遺伝子など)は、
天然では通常見られない遺伝子、例えばそのプロモーターが天然では転写DNA領域の一
部または全てと関連がない遺伝子などである。「遺伝子の発現」とは、遺伝子がRNAに
転写される、および/または活性タンパク質に転写されるプロセスをいう。
A gene or coding sequence "gene" or "coding sequence" or "nucleic acid" or "nucleotide sequence" or "nucleic" refers to a region of DNA or RNA that "encodes" a particular protein, such as FGF21 ( transcription region). The coding sequence is transcribed (DNA) and translated into a polypeptide (RNA) when placed under the control of appropriate control regions, such as promoters. A gene can include several operably linked segments such as a promoter, a 5' leader sequence, an intron, a coding sequence and a 3' untranslated sequence or 3' untranslated region (3'UTR). contains a polyadenylation site or signal sequence. A chimeric or recombinant gene (such as the FGF21 gene) is
Genes not normally found in nature, such as genes whose promoters are not naturally associated with some or all of the transcribed DNA region. "Gene expression" refers to the process by which a gene is transcribed into RNA and/or into an active protein.

プロモーター
本明細書中で用いられるとき、用語「プロモーター」とは、1または複数の遺伝子(ま
たはコーディング配列)の転写を制御するように機能する、その遺伝子の転写開始部位の
転写方向に対して上流に位置する核酸断片をいい、これは、DNA依存的RNAポリメラ
ーゼの結合部位、転写開始部位、ならびに限定されるものではないが転写因子結合部位、
リプレッサーおよびアクティベータータンパク質結合部位を包含する任意の他のDNA配
列、ならびにプロモーターからの転写量を調節するように直接的または間接的に作用する
ことが当業者に知られている任意の他のヌクレオチド配列の存在により構造的に特定され
る。「構成型」プロモーターは、大半の生理的および発生条件下で活性があるプロモータ
ーである。「誘導型」プロモーターは、生理的または発生的条件に応じて調節されるプロ
モーターである。「器官特異的」または「組織特異的」プロモーターは、それぞれ特異的
なタイプの器官または組織において活性があるプロモーターである。器官特異的および組
織特異的プロモーターは、主として1つの器官または組織において1または複数の遺伝子
(またはコーディング配列)の発現を調節するが、他の器官または組織においても同様に
検出可能なレベル(「漏出性」)の発現を許容することができる。他の器官または組織に
おける漏出性発現とは、当業者に知られている標準的アッセイ(例としてPCR、ウエス
タンブロット分析、ELISA)により評価される、器官特異的または組織特異的な発現
と比べて少なくとも1倍、少なくとも2倍、少なくとも3倍、少なくとも4倍または少な
くとも5倍低いものの、なお検出可能である発現を意味する。漏出性発現が検出され得る
器官または組織の最大数は、5、6、7または8個である。「脂肪組織特異的プロモータ
ー」は、脂肪組織において転写を開始する能力があるプロモーターであるが、他の(最大
5、6、7または8個の)器官または体の部分において何らかの漏出性発現をなお許容す
る。脂肪組織における転写は、脂肪組織および脂肪細胞、例えば白色脂肪細胞、褐色脂肪
細胞、ベージュ脂肪細胞、前脂肪細胞、間質血管細胞などにおいて検出することができる
。「肝臓特異的プロモーター」は、肝臓において転写を開始する能力があるプロモーター
であるが、他の(最大5、6、7または8個の)器官または体の部分において何らかの漏
出性発現をなお許容する。肝臓における転写は、肝臓組織および肝臓細胞、例えば肝細胞
、クッパー細胞および/または卵円形細胞などにおいて検出することができる。同様に、
「骨格筋プロモーター」は、骨格筋において転写を開始する能力があるプロモーターであ
るが、他の(最大5、6、7または8個の)器官または体の部分において何らかの漏出性
発現をなお許容する。骨格筋における転写は、骨格筋細胞、例えば筋細胞、筋芽細胞、衛
星細胞などにおいて検出することができる。
Promoter As used herein, the term "promoter" refers to a gene (or coding sequence) that functions to control the transcription of a gene or genes (or coding sequences) upstream relative to the direction of transcription of the transcription start site of that gene. A nucleic acid fragment located in a DNA-dependent RNA polymerase binding site, a transcription initiation site, as well as, but not limited to, a transcription factor binding site,
Any other DNA sequence containing repressor and activator protein binding sites, and any other nucleotide known to those skilled in the art to act directly or indirectly to regulate the amount of transcription from the promoter. Structurally specified by the presence of a sequence. A "constitutive" promoter is a promoter that is active under most physiological and developmental conditions. An "inducible" promoter is a promoter that is regulated depending on physiological or developmental conditions. An "organ-specific" or "tissue-specific" promoter is a promoter that is active in a specific type of organ or tissue, respectively. Organ- and tissue-specific promoters regulate the expression of one or more genes (or coding sequences) primarily in one organ or tissue, but at detectable levels ("leakage") in other organs or tissues as well. ) can be tolerated. Leaky expression in other organs or tissues is relative to organ- or tissue-specific expression as assessed by standard assays known to those skilled in the art (e.g. PCR, Western blot analysis, ELISA). It means expression that is at least 1-fold, at least 2-fold, at least 3-fold, at least 4-fold or at least 5-fold lower but still detectable. The maximum number of organs or tissues in which leaky expression can be detected is 5, 6, 7 or 8. An "adipose tissue-specific promoter" is a promoter capable of initiating transcription in adipose tissue, but still having some leaky expression in other (up to 5, 6, 7 or 8) organs or parts of the body. allow. Transcription in adipose tissue can be detected in adipose tissue and adipocytes such as white adipocytes, brown adipocytes, beige adipocytes, preadipocytes, stromal vascular cells, and the like. A "liver-specific promoter" is a promoter capable of initiating transcription in the liver, but still allowing some leaky expression in other (up to 5, 6, 7 or 8) organs or parts of the body. . Transcription in the liver can be detected in liver tissue and liver cells such as hepatocytes, Kupffer cells and/or oval cells. Similarly,
A "skeletal muscle promoter" is a promoter capable of initiating transcription in skeletal muscle, but still permitting some leaky expression in other (up to 5, 6, 7 or 8) organs or parts of the body. . Transcription in skeletal muscle can be detected in skeletal muscle cells, such as muscle cells, myoblasts, satellite cells, and the like.

「ユビキタスプロモーター」は、生物の実質的に全ての組織、器官および細胞において
活性がある。
A "ubiquitous promoter" is active in virtually all tissues, organs and cells of an organism.

FGF21をコードするヌクレオチド配列の器官特異的および/または組織特異的な発
現のために好適なプロモーターとしては、ヒトα1-アンチトリプシンプロモーター、ア
ポリポタンパク質Eからの肝細胞制御領域(HCR)エンハンサーと組み合わせたα1-
アンチトリプシンプロモーター、アルブミンプロモーター、主要尿タンパク質プロモータ
ー、ホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)プロモーター、肝臓富
化タンパク質アクティベータープロモーター、トランスチレチンプロモーター、チロキシ
ン結合グロブリンプロモーター、アポリポタンパク質A1プロモーター、肝臓脂肪酸結合
タンパク質プロモーター、フェニルアラニンヒドロキシラーゼプロモーター、脂肪細胞タ
ンパク質2(aP2、脂肪酸結合タンパク質4(FABP4)としても知られる)プロモ
ーター、PPARyプロモーター、アディポネクチンプロモーター、ホスホエノールピル
ビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)プロモーター、ヒトアロマターゼチトクロムp
450(p450arom)に由来するプロモーター mini/aP2プロモーター(
脂肪特異的なaP2エンハンサーおよび基本のaP2プロモーターから構成される)、脱
共役タンパク質1(UCP1)プロモーター、mini/UCP1プロモーター(脂肪特
異的なUCP1エンハンサーおよび基本のUCP1プロモーターから構成される)、アデ
ィプシンプロモーター、レプチンプロモーター、Foxa-2プロモーター、ミオシン軽
鎖プロモーター、ミオシン重鎖プロモーター、デスミンプロモーター、C5-12プロモ
ーター、筋クレアチンキナーゼ(MCK)プロモーター、平滑筋アルファ-アクチンプロ
モーター、CK6プロモーター、Unc-45ミオシンシャペロンBプロモーター、MC
Kエンハンサーのコピーと組み合わせた基本のMCKプロモーター、Enh358MCK
プロモーター(MCKエンハンサーとMCK遺伝子の358bp近位プロモーターとの組
み合わせ)が挙げられる。
A suitable promoter for organ-specific and/or tissue-specific expression of a nucleotide sequence encoding FGF21 includes the human α1-antitrypsin promoter in combination with the hepatocyte control region (HCR) enhancer from apolipoprotein E. α1-
antitrypsin promoter, albumin promoter, major urinary protein promoter, phosphoenolpyruvate carboxykinase (PEPCK) promoter, liver enriched protein activator promoter, transthyretin promoter, thyroxine binding globulin promoter, apolipoprotein A1 promoter, liver fatty acid binding protein promoter , phenylalanine hydroxylase promoter, adipocyte protein 2 (aP2, also known as fatty acid binding protein 4 (FABP4)) promoter, PPARy promoter, adiponectin promoter, phosphoenolpyruvate carboxykinase (PEPCK) promoter, human aromatase cytochrome p
450 (p450arom)-derived promoter mini/aP2 promoter (
(composed of adipose-specific aP2 enhancer and basal aP2 promoter), uncoupling protein 1 (UCP1) promoter, mini/UCP1 promoter (composed of adipose-specific UCP1 enhancer and basal UCP1 promoter), adipsin promoter, leptin promoter, Foxa-2 promoter, myosin light chain promoter, myosin heavy chain promoter, desmin promoter, C5-12 promoter, muscle creatine kinase (MCK) promoter, smooth muscle alpha-actin promoter, CK6 promoter, Unc-45 myosin chaperone B promoter, MC
The basal MCK promoter, Enh358MCK, combined with a copy of the K enhancer
Promoters (MCK enhancer in combination with the 358 bp proximal promoter of the MCK gene).

作動可能に連結される
「作動可能に連結される」とは、制御配列、例えばプロモーター配列または調節配列な
どが、好ましくはFGF21をコードする目的のヌクレオチド配列に対して、そのプロモ
ーターまたは制御または調節配列が細胞および/または対象における好ましくはFGF2
1をコードする目的ヌクレオチド配列の転写および/または産生もしくは発現を指示する
またはこれらに影響を与えるような位置に適切に置かれた構成として本明細書中で規定さ
れる。例えば、プロモーターがコーディング配列の転写または発現を開始または調節する
ことができるならば、そのプロモーターはコーディング配列に作動可能に連結されており
、この場合、コーディング配列はプロモーター「の制御下」にあると理解されるものであ
る。コンストラクト内に含まれる1または複数のヌクレオチド配列および/またはエレメ
ントが「任意選択の目的ヌクレオチド配列に作動可能に連結されるように構成される」と
本明細書中で規定されるとき、ひとたび前記目的ヌクレオチド配列が前記コンストラクト
中に存在すれば、前記ヌクレオチド配列および/またはエレメントは、これらのヌクレオ
チド配列および/またはエレメントが前記目的ヌクレオチド配列に全て作動可能に連結さ
れるように前記コンストラクト内に構成されるものと理解される。
" Operably linked " means that a regulatory sequence, such as a promoter sequence or regulatory sequence, is preferably linked to a nucleotide sequence of interest encoding FGF21, its promoter or regulatory or regulatory sequence. is preferably FGF2 in a cell and/or subject
1 are defined herein as appropriately positioned constructs that direct or influence the transcription and/or production or expression of a nucleotide sequence of interest that encodes 1. For example, a promoter is operably linked to a coding sequence if the promoter is capable of initiating or regulating the transcription or expression of the coding sequence, in which case the coding sequence is "under the control of" the promoter. be understood. Once one or more nucleotide sequences and/or elements contained within a construct are defined herein as "configured to be operably linked to an optional nucleotide sequence of interest", once said If nucleotide sequences are present in the construct, the nucleotide sequences and/or elements are configured within the construct such that these nucleotide sequences and/or elements are all operably linked to the target nucleotide sequence. understood as a thing.

ウイルス発現コンストラクト
発現コンストラクトは、細胞内で安定であってエピソームのままであることができるゲ
ノムを保有する。本発明との関連内で、細胞とは、コンストラクトを作製するために用い
られる細胞、またはコンストラクトが投与される細胞を包含することを意味し得る。ある
いはコンストラクトは、例として相同組換えを通じてまたは別の方法で細胞のゲノムに組
み込まれる能力がある。とりわけ好ましい発現コンストラクトは、本明細書中で規定され
るFGF21をコードするヌクレオチド配列が本明細書中で規定されるプロモーターに作
動可能に連結されており、前記プロモーターが細胞において前記ヌクレオチド配列(すな
わちコーディング配列)の発現を指示する能力を持つものである。好ましくは、前記プロ
モーターは、特異的器官および/または特異的組織の少なくとも1つの細胞において前記
ヌクレオチド配列の発現を指示する。好ましくは、前記プロモーターは、肝臓、脂肪組織
および/または骨格筋の少なくとも1つの細胞において前記ヌクレオチド配列の発現を指
示する。好ましくは、前記プロモーターは、肝臓、脂肪組織および/または骨格筋の細胞
のうちの少なくとも10%、20%、30%、40%、40%、60%、70%、80%
、90%または100%において発現を指示する。本発明との関連において、肝臓、脂肪
組織または骨格筋において発現するFGF21とは、他の器官または組織と比べて肝臓、
脂肪組織または骨格筋におけるFGF21の優先的または優勢な(少なくとも10%多い
、少なくとも20%多い、少なくとも30%多い、少なくとも40%多い、少なくとも5
0%多い、少なくとも60%多い、少なくとも70%多い、少なくとも80%多い、少な
くとも90%多い、少なくとも100%多い、少なくとも150%多い、少なくとも20
0%またはそれより多い)発現をいう。本出願の全体を通じて、発現との関連において肝
臓特異的または脂肪特異的または骨格筋特異的が言及される場合、それぞれ肝臓、脂肪組
織または骨格筋を構成する細胞型(複数可)の細胞型特異的な発現も予想される。
Viral Expression Constructs Expression constructs carry genomes that are stable in cells and can remain episomal. Within the context of the present invention, cells may be meant to include cells used to make constructs or cells to which constructs are administered. Alternatively, the construct is capable of integrating into the cell's genome, eg, through homologous recombination or otherwise. A particularly preferred expression construct is an FGF21-encoding nucleotide sequence as defined herein is operably linked to a promoter as defined herein, said promoter being activated in a cell by said nucleotide sequence (i.e. sequence) is capable of directing expression. Preferably, said promoter directs expression of said nucleotide sequence in at least one cell of a specific organ and/or specific tissue. Preferably, said promoter directs expression of said nucleotide sequence in at least one cell of liver, adipose tissue and/or skeletal muscle. Preferably, said promoter is expressed in at least 10%, 20%, 30%, 40%, 40%, 60%, 70%, 80% of liver, adipose tissue and/or skeletal muscle cells.
, indicates expression at 90% or 100%. In the context of the present invention, FGF21 expressed in liver, adipose tissue or skeletal muscle refers to liver, liver, adipose tissue or skeletal muscle as compared to other organs or tissues.
Preferential or predominant (at least 10% more, at least 20% more, at least 30% more, at least 40% more, at least 5
0% more, at least 60% more, at least 70% more, at least 80% more, at least 90% more, at least 100% more, at least 150% more, at least 20
0% or more) expression. Throughout this application, when liver-specific or adipose-specific or skeletal muscle-specific is mentioned in the context of expression, the cell-type-specific of the cell type(s) comprising liver, adipose tissue or skeletal muscle respectively expression is also expected.

本発明のウイルス発現コンストラクトは、「哺乳動物における発現に適した」形のヌク
レオチド配列を含み、これは、ウイルス発現コンストラクトが、発現のために用いられる
哺乳動物宿主細胞に基づいて選択される、発現させるヌクレオチド配列に作動的に連結さ
れた1または複数の調節性配列を包含することを意味する。好ましくは、発現のために用
いられる前記哺乳動物宿主細胞は、ヒト、マウスまたはイヌの細胞である。
The viral expression constructs of the present invention contain nucleotide sequences in a form "suitable for expression in a mammal", which means that the viral expression construct is selected based on the mammalian host cell in which it will be used for expression. It is meant to include one or more regulatory sequences operably linked to the nucleotide sequence that permits. Preferably, said mammalian host cells used for expression are human, murine or canine cells.

本発明のウイルス発現コンストラクトは、肝臓、脂肪組織および/または骨格筋におい
て発現するヌクレオチド配列を含む。
Viral expression constructs of the invention include nucleotide sequences that are expressed in liver, adipose tissue and/or skeletal muscle.

本明細書中で用いられるとき、「脂肪組織」とは、成熟脂肪細胞(すなわち脂肪細胞)
ならびに小血管、神経組織、リンパ節および間質血管細胞群(SVF)の組み合わせから
構成される組織である。SVFは、内皮細胞、線維芽細胞、脂肪細胞前駆細胞(すなわち
前脂肪細胞)、および免疫細胞、例えばマクロファージおよびT細胞などから構成される
。哺乳動物において、2つの異なるタイプの脂肪組織:白色脂肪組織(WAT)および褐
色脂肪組織(BAT)が慣例的に区別されている。哺乳動物において、脂肪組織は多貯蔵
器官(multi-depot organ)中に含有される。脂肪の貯蔵部(depo
t)としては、限定されるものではないが、精巣上体(epidydymal)WAT(
eWAT)、鼠径部WAT(iWAT)、後腹膜WAT(rWAT)、腸間膜WAT(m
WAT)、肩甲骨間BAT(iBAT)が挙げられる。
As used herein, "adipose tissue" refers to mature adipocytes (i.e. adipocytes)
and a tissue composed of a combination of small blood vessels, nerve tissue, lymph nodes and stromal vascular cells (SVF). SVF is composed of endothelial cells, fibroblasts, adipocyte precursors (ie, preadipocytes), and immune cells such as macrophages and T cells. In mammals, two different types of adipose tissue are conventionally distinguished: white adipose tissue (WAT) and brown adipose tissue (BAT). In mammals, adipose tissue is contained in a multi-depot organ. Fat depot (depo
t) includes, but is not limited to, epidydymal WAT (
eWAT), inguinal WAT (iWAT), retroperitoneal WAT (rWAT), mesenteric WAT (m
WAT), interscapular BAT (iBAT).

本明細書中で用いられるとき、「骨格筋」とは、筋線維から構成される組織をいう。筋
線維(muscle fiber)は、筋線維(myofiber)としても知られ、数
百個の筋芽細胞の融合に起因する単一の多核または合胞体の細胞であり、これらのうちの
いくつかは衛星細胞として知られる未分化細胞として成熟した筋肉内に残存している。個
々の筋線維は、筋内膜と呼ばれる結合組織に囲まれている。およそ10から100本の筋
線維が線維束(fascicle)または線維束(bundle)を形成し、これら自体
は筋周膜と呼ばれる別の結合組織層に囲まれている。最終的に、骨格筋は、筋上膜と呼ば
れる別の結合組織層に囲まれている線維束の群により形成される。筋線維に加えて、骨格
筋は、多数の血管および神経からも構成される。筋肉の端部は、骨膜または他の筋肉の結
合組織への筋肉の付着を媒介する高密度な結合組織構造である腱および腱膜に向かって集
まる。
As used herein, "skeletal muscle" refers to tissue composed of muscle fibers. A muscle fiber, also known as a myofiber, is a single multinucleated or syncytial cell resulting from the fusion of hundreds of myoblasts, some of which are satellites. It remains in mature muscle as undifferentiated cells known as cells. Individual muscle fibers are surrounded by connective tissue called endomysium. Approximately 10 to 100 muscle fibers form a fascicle or bundle, which are themselves surrounded by another layer of connective tissue called the perimysium. Ultimately, skeletal muscle is formed by a group of fiber bundles surrounded by another layer of connective tissue called the epimysium. In addition to muscle fibers, skeletal muscle is also composed of numerous blood vessels and nerves. The ends of the muscle converge toward tendons and aponeurosis, dense connective tissue structures that mediate the attachment of muscle to the periosteum or other connective tissue of muscle.

本明細書中で用いられるとき、「肝臓」とは、肝細胞から構成される組織をいう。肝細
胞は、肝臓中の細胞の約50~70%に相当する。肝細胞に加えて、肝臓は、内皮細胞、
傍類洞細胞、卵円形細胞、クッパー細胞および星状細胞(伊東細胞)から構成される。ク
ッパー細胞により活性化されると、星状細胞は筋線維芽細胞へとトランスフォームする。
中心静脈、ならびに肝動脈の前終端枝、肝門脈、胆小管およびリンパ管を含有する門脈路
(portal track)(門脈トライアッド)も肝臓において見出される。
As used herein, "liver" refers to tissue composed of hepatocytes. Hepatocytes represent approximately 50-70% of the cells in the liver. In addition to hepatocytes, the liver also contains endothelial cells,
It is composed of parasinusoidal cells, oval cells, Kupffer cells and astrocytes (Ito cells). When activated by Kupffer cells, astrocytes transform into myofibroblasts.
A central vein and a portal track (portal triad) containing the anterior terminal branch of the hepatic artery, the hepatic portal vein, bile canaliculi and lymphatics are also found in the liver.

かかる好ましい発現コンストラクトは、発現カセットを含むと言われる。本明細書中で
用いられる発現カセットは、FGF21をコードするヌクレオチド配列を含むまたはこれ
からなり、前記ヌクレオチド配列の発現を指示する能力を持つプロモーターに作動可能に
連結されている。ある実施形態において、本明細書中で用いられる発現カセットは、FG
F21をコードするヌクレオチド配列、プロモーター、ならびに肝臓において発現するマ
イクロRNAの標的配列をコードする少なくとも1つのヌクレオチド配列および心臓にお
いて発現するマイクロRNAの標的配列をコードする少なくとも1つのヌクレオチド配列
を含むまたはこれからなる。1つの実施形態において、記載された発現カセットは、それ
らの同族のマイクロRNAに完全に相補的である、肝臓において発現するマイクロRNA
および/または心臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードするヌクレオチ
ド配列を含有する。別の実施形態において、記載された発現カセットは、不完全に相補的
(1個のミスマッチ/5個の連続したヌクレオチド)である、マイクロRNA結合部位を
コードする1または複数のヌクレオチド配列(複数可)を含有する。なお別の実施形態に
おいて、発現カセットは、完全および不完全なマイクロRNA結合部位をコードする両ヌ
クレオチド配列を含有し得る。発現カセットは、それゆえ、単一の完全なマイクロRNA
標的部位、複数の完全なマイクロRNA標的部位、単一の不完全なマイクロRNA標的部
位、複数の不完全なマイクロRNA標的部位、または完全および不完全なマイクロRNA
標的部位の組み合わせをコードするヌクレオチド配列を用いることにより調節レベルに変
化をもたらすように合わせることができる。さらに、異なるマイクロRNAの標的部位を
コードするヌクレオチド配列が用いられ得て、それゆえ遺伝子を複数のマイクロRNAに
より調節することが可能になる。マイクロRNAの標的配列をコードするヌクレオチド配
列の好ましい位置は3’UTRである。しかしながら、コーディング配列または5’UT
R配列のいずれかに挿入されたヌクレオチド配列(標的配列をコードするもの)も用いら
れ得る。
Such preferred expression constructs are said to comprise an expression cassette. As used herein, an expression cassette comprises or consists of a nucleotide sequence encoding FGF21 and is operably linked to a promoter capable of directing the expression of said nucleotide sequence. In certain embodiments, the expression cassette used herein is FG
comprising or consisting of a nucleotide sequence encoding F21, a promoter, and at least one nucleotide sequence encoding a target sequence of a microRNA expressed in the liver and at least one nucleotide sequence encoding a target sequence of a microRNA expressed in the heart . In one embodiment, the described expression cassettes are microRNAs expressed in the liver that are fully complementary to their cognate microRNAs.
and/or contain nucleotide sequences encoding target sequences of microRNAs expressed in the heart. In another embodiment, the described expression cassette comprises one or more nucleotide sequence(s) encoding microRNA binding sites that are imperfectly complementary (1 mismatch/5 consecutive nucleotides). ). In yet another embodiment, the expression cassette may contain both nucleotide sequences encoding complete and incomplete microRNA binding sites. The expression cassette is therefore a single complete microRNA
target site, multiple complete microRNA target sites, single incomplete microRNA target site, multiple incomplete microRNA target sites, or complete and incomplete microRNA
Nucleotide sequences encoding a combination of target sites can be used to tailor the level of regulation. In addition, nucleotide sequences encoding different microRNA target sites can be used, thus allowing a gene to be regulated by multiple microRNAs. A preferred position for the nucleotide sequence encoding the target sequence of the microRNA is the 3'UTR. However, the coding sequence or 5'UT
A nucleotide sequence (encoding the target sequence) inserted into either of the R sequences can also be used.

マイクロRNAの標的配列をコードするヌクレオチド配列の選択は、所望の発現パター
ンにより決定される。細胞中の内因性マイクロRNAの存在は、前記マイクロRNAの標
的配列をコードするヌクレオチド配列を含有する発現コンストラクトからの遺伝子または
コーディング配列の発現を阻害する。所与の細胞型において阻害される目的の遺伝子また
はコーディング配列の発現のため、その細胞型中に存在するマイクロRNAにより認識さ
れる標的配列をコードするヌクレオチド配列が選ばれる。
The choice of nucleotide sequence encoding the microRNA target sequence is determined by the desired expression pattern. The presence of an endogenous microRNA in a cell inhibits expression of a gene or coding sequence from an expression construct containing a nucleotide sequence encoding the target sequence of said microRNA. For expression of a gene or coding sequence of interest to be inhibited in a given cell type, a nucleotide sequence is chosen that encodes a target sequence recognized by microRNAs present in that cell type.

ウイルス発現コンストラクトは、遺伝子治療において用いられることが意図される発現
コンストラクトである。これは、本明細書中で後に規定されるウイルスゲノムの一部を含
むようにデザインされる
本明細書中で開示される発現コンストラクトは、前記FGF21をコードするヌクレオ
チド配列を好適な細胞、例として培養細胞または多細胞生物の細胞の中で発現させる組換
え技術を用いて調製することができ、これは例えば、Ausubel et al.,“
Current Protocols in Molecular Biology”,
Greene Publishing and Wiley-Interscience
,New York(1987)およびSambrook and Russell(2
001、上記);などの中に記載され;両文献は参照によりその全体が本明細書中に組み
込まれる。Kunkel(1985) Proc.Natl.Acad.Sci. 82
:488(部位特異的変異導入を記載している)およびRoberts et al.(
1987) Nature 328:731-734またはWells,J.A.,et
al.(1985) Gene 34:315(カセット変異導入を記載している)も
参照されたい。
A viral expression construct is an expression construct intended for use in gene therapy. It is designed to contain a portion of the viral genome as defined herein below The expression construct disclosed herein contains a nucleotide sequence encoding said FGF21 in a suitable cell, e.g. It can be prepared using recombinant techniques for expression in cultured cells or cells of multicellular organisms, see, for example, Ausubel et al. , “
Current Protocols in Molecular Biology",
Greene Publishing and Wiley-Interscience
, New York (1987) and Sambrook and Russell (2
001, supra); and others; both documents are incorporated herein by reference in their entireties. Kunkel (1985) Proc. Natl. Acad. Sci. 82
:488 (describing site-directed mutagenesis) and Roberts et al. (
1987) Nature 328:731-734 or Wells, J.; A. ,et
al. (1985) Gene 34:315 (describing cassette mutagenesis).

典型的に、FGF21をコードする核酸またはヌクレオチド配列は、発現コンストラク
トまたは発現ベクター中で用いられる。フレーズ「発現ベクター」または「ベクター」と
は、一般に、遺伝子またはコーディング配列に適合した宿主中で遺伝子またはコーディン
グ配列の発現を起こさせる能力を持つヌクレオチド配列をいう。これらの発現ベクターは
、典型的に、好適なプロモーター配列を少なくとも包含し、任意選択で転写終結シグナル
を包含する。本明細書中に記載される、発現を起こさせるのに必要なまたは役立つ付加的
な因子を用いることもできる。FGF21をコードする核酸またはDNAまたはヌクレオ
チド配列は、インビトロ細胞培養への導入および発現の能力を持つDNAコンストラクト
中に組み込まれる。具体的には、DNAコンストラクトは、原核生物宿主、例えば細菌、
例としてE.coliなどの中での複製に適しているか、または培養される哺乳動物、植
物、昆虫(例としてSf9)、酵母、真菌または他の真核生物の細胞株の中に導入するこ
とができる。
Typically, a nucleic acid or nucleotide sequence encoding FGF21 is used in an expression construct or vector. The phrases "expression vector" or "vector" generally refer to a nucleotide sequence capable of directing expression of a gene or coding sequence in a host compatible with that gene or coding sequence. These expression vectors typically include at least suitable promoter sequences and, optionally, transcription termination signals. Additional factors necessary or helpful in effecting expression, as described herein, can also be used. A nucleic acid or DNA or nucleotide sequence encoding FGF21 is incorporated into a DNA construct capable of introduction and expression into in vitro cell culture. Specifically, the DNA construct may be used in prokaryotic hosts such as bacteria,
As an example, E. It can be introduced into mammalian, plant, insect (eg Sf9), yeast, fungal or other eukaryotic cell lines that are suitable for replication in E. coli or the like, or cultured.

特定の宿主への導入のために調製されるDNAコンストラクトは、宿主により認識され
る複製系、所望のポリペプチドをコードする意図されるDNAセグメント、ならびにポリ
ペプチドをコードするセグメントに作動可能に連結される転写および翻訳の開始および終
結調節性配列を包含し得る。用語「作動可能に連結される」は、本明細書中で既に規定さ
れている。例えば、プロモーターまたはエンハンサーは、それがコーディング配列の転写
を刺激するならば、コーディング配列に作動可能に連結されている。シグナル配列のDN
Aは、ポリペプチドの分泌に関与するタンパク質前駆体として発現するならば、ポリペプ
チドをコードするDNAに作動可能に連結されている。一般に、作動可能に連結されてい
るDNA配列は近接しており、シグナル配列の場合は近接かつリーディングフレームの中
にある。しかしながら、エンハンサーは、それらがその転写を制御するコーディング配列
と近接している必要はない。連結は、好都合な制限部位での、もしくはその代わりに挿入
されるアダプターもしくはリンカーでのライゲーションにより、または遺伝子合成により
達成される。
A DNA construct prepared for introduction into a particular host is operably linked to a replication system recognized by the host, the intended DNA segment encoding the desired polypeptide, and the segment encoding the polypeptide. can include transcription and translation initiation and termination regulatory sequences. The term "operably linked" has already been defined herein. For example, a promoter or enhancer is operably linked to a coding sequence if it stimulates transcription of the coding sequence. DN of signal sequence
A is operably linked to DNA encoding a polypeptide if it is expressed as a protein precursor that participates in the secretion of the polypeptide. Generally, DNA sequences that are operably linked are contiguous, and, in the case of a signal sequence, contiguous and in reading frame. However, enhancers need not be contiguous with the coding sequences whose transcription they control. Linking is accomplished by ligation at convenient restriction sites or at alternatively inserted adapters or linkers, or by gene synthesis.

適切なプロモーター配列の選択は、一般に、DNAセグメントの発現のために選択され
る宿主細胞に依存する。好適なプロモーター配列の例としては、当該技術分野で周知であ
る原核生物および真核生物のプロモーターが挙げられる(例として上記のSambroo
k and Russell,2001を参照されたい)。転写調節性配列は、典型的に
、宿主により認識される異種のエンハンサーまたはプロモーターを包含する。適切なプロ
モーター配列の選択は宿主に依存するが、例えばtrp、lacおよびファージプロモー
ター、tRNAプロモーターおよび解糖酵素プロモーターなどのプロモーターが知られて
いて利用可能である(例として上記のSambrook and Russell,20
01を参照されたい)。発現ベクターは、複製系ならびに転写および翻訳の調節性配列を
、ポリペプチドをコードするセグメントの挿入部位と一緒に包含する。大半の場合、複製
系は、そのベクターを作製するために用いられる細胞(E.Coliのような細菌細胞)
中でのみ機能する。大半のプラスミドおよびベクターは、ベクターが感染する細胞の中で
複製しない。実行可能な細胞株および発現ベクターの組み合わせの例は、Sambroo
k and Russell(2001、上記)およびMetzger et al.(
1988) Nature 334:31-36中に記載される。例えば、好適な発現ベ
クターは、酵母、例としてS.cerevisiae、e.g.、昆虫細胞、例としてS
f9細胞、哺乳動物細胞、例としてCHO細胞、および細菌細胞、例としてE.coli
中で発現させることができる。細胞は、それゆえに、原核生物または真核生物の宿主細胞
であり得る。細胞は、液体培地中または固体培地上での培養に適した細胞であり得る。
Selection of an appropriate promoter sequence generally depends on the host cell chosen for expression of the DNA segment. Examples of suitable promoter sequences include prokaryotic and eukaryotic promoters that are well known in the art (eg, Sambrook
K and Russell, 2001). Transcriptional regulatory sequences typically include heterologous enhancers or promoters that are recognized by the host. The selection of an appropriate promoter sequence is host dependent, but promoters such as the trp, lac and phage promoters, tRNA promoters and glycolytic enzyme promoters are known and available (eg Sambrook and Russell, 20, supra).
01). Expression vectors include a replication system and transcriptional and translational regulatory sequences, along with a site for insertion of a segment encoding a polypeptide. In most cases, the replication system is the cell (bacterial cell such as E. coli) used to make the vector.
Only works inside. Most plasmids and vectors do not replicate in the cells they infect. An example of a viable cell line and expression vector combination is Sambroo
K and Russell (2001, supra) and Metzger et al. (
1988) Nature 334 :31-36. For example, suitable expression vectors are yeast, such as S. cerevisiae. cerevisiae, e. g. , insect cells, e.g. S
f9 cells, mammalian cells such as CHO cells, and bacterial cells such as E. coli
can be expressed in The cell may therefore be a prokaryotic or eukaryotic host cell. The cells can be cells suitable for culture in liquid media or on solid media.

あるいは、宿主細胞は、多細胞生物、例えば遺伝子導入植物または動物などの一部であ
る細胞である。
Alternatively, the host cell is a cell that is part of a multicellular organism, such as a transgenic plant or animal.

ウイルスベクター
ウイルスベクターまたはウイルス遺伝子治療ベクターは、上で規定されるウイルス発現
コンストラクトを含むベクターである。
Viral vectors Viral vectors or viral gene therapy vectors are vectors comprising a viral expression construct as defined above.

ウイルスベクターまたはウイルス遺伝子治療ベクターは、遺伝子治療に適したベクター
である。遺伝子治療に適したベクターは、Anderson 1998,Nature
392:25-30;Walther and Stein,2000,Drugs
:249-71;Kay et al.,2001,Nat.Med. :33-4
0;Russell,2000,J.Gen.Virol. 81:2573-604;
Amado and Chen,1999,Science 285:674-6;Fe
derico,1999,Curr.Opin.Biotechnol.10:448-
53;Vigna and Naldini,2000,J.Gene Med.
308-16;Marin et al.,1997,Mol.Med.Today
:396-403;Peng and Russell,1999,Curr.Opin
.Biotechnol. 10:454-7;Sommerfelt,1999,J.
Gen.Virol. 80:3049-64;Reiser,2000,Gene T
her. :910-3;およびこれらにおいて引用される参考文献中に記載されてい
る。
Viral vectors or viral gene therapy vectors are vectors suitable for gene therapy. Vectors suitable for gene therapy are described in Anderson 1998, Nature
392 :25-30; Walther and Stein, 2000, Drugs 6
0 :249-71; Kay et al. , 2001, Nat. Med. 7 :33-4
0; Russell, 2000,J. Gen. Virol. 81 :2573-604;
Amado and Chen, 1999, Science 285 :674-6;
derico, 1999, Curr. Opin. Biotechnol. 10 :448-
53; Vigna and Naldini, 2000, J. Am. Gene Med. 2 :
308-16; Marin et al. , 1997, Mol. Med. Today 3
: 396-403; Peng and Russell, 1999, Curr. Opin
. Biotechnol. 10 :454-7; Sommerfelt, 1999, J. Am.
Gen. Virol. 80 :3049-64; Reiser, 2000, Gene T.
her. 7 :910-3; and in the references cited therein.

とりわけ好適な遺伝子治療ベクターとしては、アデノウイルスおよびアデノ随伴ウイル
ス(AAV)ベクターが挙げられる。これらのベクターは、滑膜細胞および肝臓細胞を包
含する広範な数の分裂および非分裂細胞型に感染する。アデノウイルスおよびAAVベク
ターの細胞侵入後のエピソーム性は、上に指し示されるように、これらのベクターを治療
用途に適したものにする(Russell,2000,J.Gen.Virol. 81
:2573-2604;Goncalves,2005,Virol J. 2(1):
43)。AAVベクターは、導入遺伝子発現の非常に安定な長期的発現をもたらすことが
知られているため、なおより好ましい(イヌにおいて最大9年間(Niemeyer e
t al,Blood. 2009 Jan 22;113(4):797-806)お
よびヒトにおいて約10年間(Buchlis,G. et al.,Blood. 2
012 Mar 29;119(13):3038-41)。好ましいアデノウイルスベ
クターは、Russell(2000、上記)により概説されるように、宿主応答を低減
させるために改変される。AAVベクターを用いた遺伝子治療方法は、Wang et
al.,2005,J Gene Med. March 9(印刷より前にEpub)
、Mandel et al.,2004,Curr Opin Mol Ther.
6(5):482-90およびMartin et al.,2004,Eye 18(
11):1049-55、Nathwani et al,N Engl J Med.
2011 Dec 22;365(25):2357-65、Apparailly
et al,Hum Gene Ther. 2005 Apr;16(4):426-
34により記載される。
Particularly suitable gene therapy vectors include adenovirus and adeno-associated virus (AAV) vectors. These vectors infect a wide number of dividing and non-dividing cell types, including synoviocytes and liver cells. The episomal nature of adenovirus and AAV vectors after cell entry makes them suitable for therapeutic use, as indicated above (Russell, 2000, J. Gen. Virol. 81
: 2573-2604; Goncalves, 2005, Virol J.; 2(1):
43). AAV vectors are even more preferred as they are known to provide very stable long-term expression of transgene expression (up to 9 years in dogs (Niemeyer et al.
tal, Blood. 2009 Jan 22;113(4):797-806) and about 10 years in humans (Buchlis, G. et al., Blood. 2
012 Mar 29;119(13):3038-41). Preferred adenoviral vectors are modified to reduce host response as reviewed by Russell (2000, supra). Gene therapy methods using AAV vectors are described in Wang et al.
al. , 2005, J Gene Med. March 9 (Epub before print)
, Mandel et al. , 2004, Curr Opin Mol Ther.
6(5):482-90 and Martin et al. , 2004, Eye 18 (
11): 1049-55, Nathwani et al, N Engl J Med.
2011 Dec 22;365(25):2357-65, Apparailly
et al, Hum Gene Ther. 2005 Apr;16(4):426-
34.

別の好適な遺伝子治療ベクターとしてはレトロウイルスベクターが挙げられる。本発明
における用途のために好ましいレトロウイルスベクターは、レンチウイルスを基にした発
現コンストラクトである。レンチウイルスベクターは、分裂および非分裂細胞に感染して
これらのゲノム中に安定的に組み込まれる能力を持つ(Amado and Chen,
1999 Science 285:674-6)。レンチウイルスを基にした発現コン
ストラクトの構築および使用のための方法は、米国特許第6,165,782号、第6,
207,455号、第6,218,181号、第6,277,633号および第6,32
3,031号、ならびにFederico(1999,Curr Opin Biote
chnol 10:448-53)およびVigna et al.(2000,J G
ene Med 2000;2:308-16)中に記載される。
Another suitable gene therapy vector is a retroviral vector. A preferred retroviral vector for use in the present invention is a lentivirus-based expression construct. Lentiviral vectors have the ability to infect dividing and non-dividing cells and integrate stably into their genome (Amado and Chen,
1999 Science 285:674-6). Methods for the construction and use of lentiviral-based expression constructs are described in US Pat. Nos. 6,165,782, 6,
207,455, 6,218,181, 6,277,633 and 6,32
3,031, and Federico (1999, Curr Opin Biote
chnol 10:448-53) and Vigna et al. (2000, J.G.
ene Med 2000;2:308-16).

他の好適な遺伝子治療ベクターとしては、アデノウイルスベクター、ヘルペスウイルス
ベクター、ポリオーマウイルスベクターまたはワクシニアウイルスベクターが挙げられる
Other suitable gene therapy vectors include adenoviral, herpes viral, polyoma viral or vaccinia viral vectors.

遺伝子治療ベクターは、発現させるFGF21をコードするヌクレオチド配列を含み、
これにより前記ヌクレオチド配列は適切な調節性配列に作動可能に連結される。かかる調
節性配列は、プロモーター配列を少なくとも含む。遺伝子治療ベクターからのFGF21
をコードするヌクレオチド配列の発現に適したプロモーターとしては、例としてCMVプ
ロモーター、例えばマウスモロニー白血病ウイルス(MMLV)、ラウス肉腫ウイルスま
たはHTLV-1などからのウイルス長鎖末端反復配列プロモーター(LTR)、シミア
ンウイルス40(SV40)初期プロモーター、CAGプロモーター、α1-アンチトリ
プシンプロモーター、mini/aP2プロモーター、mini/UCP1プロモーター
、C5-12プロモーターおよび単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼプロモーターが
挙げられる。
The gene therapy vector comprises a nucleotide sequence encoding FGF21 to be expressed,
Said nucleotide sequence is thereby operably linked to the appropriate regulatory sequences. Such regulatory sequences include at least promoter sequences. FGF21 from gene therapy vectors
Suitable promoters for the expression of a nucleotide sequence encoding include, for example, the CMV promoter, such as the viral long terminal repeat promoter (LTR) from mouse Moloney leukemia virus (MMLV), Rous sarcoma virus or HTLV-1, simian Virus 40 (SV40) early promoter, CAG promoter, α1-antitrypsin promoter, mini/aP2 promoter, mini/UCP1 promoter, C5-12 promoter and herpes simplex virus thymidine kinase promoter.

いくつかの誘導型プロモーター系は、有機または無機の低分子化合物の投与により誘導
され得ることが記載されている。かかる誘導型プロモーターとしては、重金属により制御
されるもの、例えばメタロチオニン(metallothionine)プロモーター(
Brinster et al. 1982 Nature 296:39-42;Ma
yo et al. 1982 Cell 29:99-108)など、RU-486(
プロゲステロンアンタゴニスト)により制御されるもの(Wang et al. 19
94 Proc.Natl.Acad.Sci.USA 91:8180-8184)、
ステロイドにより制御されるもの(Mader and White,1993 Pro
c.Natl.Acad.Sci.USA 90:5603-5607)、テトラサイク
リンにより制御されるもの(Gossen and Bujard 1992 Proc
.Natl.Acad.Sci.USA 89:5547-5551;米国特許第5,4
64,758号;Furth et al. 1994 Proc.Natl.Acad
.Sci.USA 91:9302-9306;Howe et al. 1995 J
.Biol.Chem. 270:14168-14174;Resnitzky et
al. 1994 Mol.Cell.Biol. 14:1669-1679;Sh
ockett et al. 1995 Proc.Natl.Acad.Sci.US
92:6522-6526)、およびVP16活性化ドメインとしてのtetRポリ
ペプチドとエストロゲン受容体のリガンド結合ドメインとから構成される複数のキメラト
ランスアクティベーター(Yee et al.,2002,US6,432,705)
により制御されるものが挙げられる。
It has been described that some inducible promoter systems can be induced by administration of organic or inorganic low-molecular-weight compounds. Such inducible promoters include those controlled by heavy metals, such as the metallothionine promoter (
Brinster et al. 1982 Nature 296 :39-42;
Yo et al. 1982 Cell 29 :99-108), RU-486 (
regulated by progesterone antagonists (Wang et al. 19
94 Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91 :8180-8184),
those controlled by steroids (Mader and White, 1993 Pro
c. Natl. Acad. Sci. USA 90 :5603-5607), those regulated by tetracyclines (Gossen and Bujard 1992 Proc
. Natl. Acad. Sci. USA 89 :5547-5551; US Patent Nos. 5,4
64,758; Furth et al. 1994 Proc. Natl. Acad
. Sci. USA 91 :9302-9306; Howe et al. 1995 J.
. Biol. Chem. 270 :14168-14174;
al. 1994 Mol. Cell. Biol. 14 :1669-1679;
Ockett et al. 1995 Proc. Natl. Acad. Sci. US
A 92 :6522-6526), and multiple chimeric transactivators composed of the tetR polypeptide as the VP16 activation domain and the ligand-binding domain of the estrogen receptor (Yee et al., 2002, US6,432,705).
Those controlled by

遺伝子治療ベクターは、さらなるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列をさらに
含んでもよい。
Gene therapy vectors may further comprise nucleotide sequences encoding additional polypeptides.

遺伝子治療ベクターは、好ましくは、本明細書中で規定される組成物または医薬組成物
中に製剤化される。この関連において、組成物または医薬組成物は、本明細書中で先に規
定される好適な医薬担体を含み得る。
Gene therapy vectors are preferably formulated in a composition or pharmaceutical composition as defined herein. In this regard, the composition or pharmaceutical composition may comprise a suitable pharmaceutical carrier as hereinbefore defined.

アデノ随伴ウイルスベクター(AAVベクター)
好ましいウイルスベクターまたは好ましい遺伝子治療ベクターは、AAVベクターであ
る。本明細書中で用いられるAAVベクターは、好ましくは、組換えAAVベクター(r
AAVベクター)を含む。本明細書中で用いられる「rAAVベクター」とは、本明細書
中で説明される、AAV血清型に由来するカプシドタンパク質のタンパク質シェルの中に
カプシド形成されるAAVゲノムの一部を含む組換えベクターをいう。AAVゲノムの一
部は、アデノ随伴ウイルス血清型、例えばAAV1、AAV2、AAV3、AAV4、A
AV5などに由来する逆位末端配列(ITR)を含有し得る。好ましいITRは、配列番
号48(5’ITR)および配列番号49(3’ITR)を含むまたはこれらからなる配
列により表されるAAV2のものである。本発明はまた、好ましくは、5’ITRとして
の配列番号48と少なくとも80%(または少なくとも81%、82%、83%、84%
、85%、86%、87%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%
、94%、95%、96%、97%、98%、99%もしくは100%)の同一性を持つ
配列および3’ITRとしての配列番号49と少なくとも80%の同一性を持つ配列の使
用を包含する。
Adeno-associated virus vector (AAV vector)
A preferred viral vector or preferred gene therapy vector is an AAV vector. AAV vectors used herein are preferably recombinant AAV vectors (r
AAV vectors). As used herein, a "rAAV vector" is a recombinant vector containing a portion of the AAV genome encapsidated within a protein shell of capsid proteins derived from the AAV serotypes described herein. A vector. A portion of the AAV genome includes adeno-associated virus serotypes such as AAV1, AAV2, AAV3, AAV4, A
It may contain inverted terminal sequences (ITRs), such as from AV5. Preferred ITRs are those of AAV2 represented by sequences comprising or consisting of SEQ ID NO:48 (5'ITR) and SEQ ID NO:49 (3'ITR). The present invention also preferably provides SEQ ID NO: 48 as the 5'ITR and at least 80% (or at least 81%, 82%, 83%, 84%
, 85%, 86%, 87%, 87%, 88%, 89%, 90%, 91%, 92%, 93%
, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% or 100%) and sequences with at least 80% identity to SEQ ID NO: 49 as the 3'ITR. contain.

カプシドタンパク質を含むタンパク質シェルは、AAV血清型、例えばAAV1、AA
V2、AAV3、AAV4、AAV5などに由来するものであり得る。好ましいAAVカ
プシドは、AAV1、AAV3、AAV8、AAV9のカプシドである。好ましいITR
は、AAV2からのものである。タンパク質シェルはまた、カプシドタンパク質シェルと
も命名され得る。rAAVベクターは1つ、または好ましくは全ての野生型AAV遺伝子
を欠失したものであり得るが、機能的なITR核酸配列をなお含み得る。機能的ITR配
列は、AAVビリオンの複製、レスキューおよびパッケージングに必要である。ITR配
列は、野生型配列であり得て、または野生型配列と少なくとも80%、85%、90%、
95%、97%、98%、99%もしくは100%の配列同一性を持ち得て、またはそれ
らが機能的なままであるかぎり例えばヌクレオチドの挿入、変異、欠失または置換によっ
て変わり得る。この関連において、機能性とは、ゲノムがカプシドシェル中に直接的にパ
ッケージングされ、次いで感染する宿主細胞または標的細胞における発現を可能にする能
力をいう。本発明との関連において、カプシドタンパク質シェルは、rAAVベクターゲ
ノムITRと異なる血清型のものであり得る。
The protein shell containing the capsid proteins is isolated from AAV serotypes such as AAV1, AA
It can be derived from V2, AAV3, AAV4, AAV5, and the like. Preferred AAV capsids are those of AAV1, AAV3, AAV8, AAV9. Preferred ITR
is from AAV2. A protein shell may also be termed a capsid protein shell. A rAAV vector may have one, or preferably all, wild-type AAV genes deleted, but may still contain functional ITR nucleic acid sequences. Functional ITR sequences are required for replication, rescue and packaging of AAV virions. The ITR sequence can be a wild-type sequence or at least 80%, 85%, 90%,
They may have 95%, 97%, 98%, 99% or 100% sequence identity or may vary, for example, by insertion, mutation, deletion or substitution of nucleotides so long as they remain functional. Functionality, in this context, refers to the ability of the genome to be packaged directly into the capsid shell and then to allow expression in infected host or target cells. In the context of the present invention, the capsid protein shell may be of a different serotype than the rAAV vector genome ITRs.

選択された核酸配列により表される核酸分子は、好ましくは、上で特定されるrAAV
ゲノムまたはITR配列の間に挿入され、これは例えばコーディング配列に作動可能に連
結された発現調節性エレメントおよび3’末端配列を含む発現コンストラクトである。前
記核酸分子は導入遺伝子と呼ばれることもある。
A nucleic acid molecule represented by a selected nucleic acid sequence is preferably a rAAV
Inserted between genomic or ITR sequences, which are, for example, expression constructs comprising expression regulatory elements and 3' terminal sequences operably linked to a coding sequence. Said nucleic acid molecule is sometimes referred to as a transgene.

「AAVヘルパー機能」とは、一般に、rAAVベクターにトランスで供給される、r
AAVの複製およびパッケージングに必要とされる相当するAAV機能をいう。AAVヘ
ルパー機能は、rAAVベクターの中に失われたAAV機能を補充するが、AAV IT
R(rAAVベクターゲノムにより提供されるもの)を欠いている。AAVヘルパー機能
は、AAVの2つの主要なORF、すなわちrepコーディング領域およびcapコーデ
ィング領域またはそれらと機能的に実質同一である配列を包含する。RepおよびCap
領域は当該技術分野で周知であり、例としてChiorini et al.(1999
,J. of Virology,Vol 73(2):1309-1319)またはU
S5,139,941を参照されたく、これらの文献は参照により本明細書中に組み込ま
れる。AAVヘルパー機能は、AAVヘルパーコンストラクト上に供給することができる
。宿主細胞へのヘルパーコンストラクトの導入は、本明細書中で特定されるrAAVベク
ター中に存在するrAAVゲノムの導入の前またはこれと同時の、例として形質転換、ト
ランスフェクションまたは形質導入によって生じさせることができる。本発明のAAVヘ
ルパーコンストラクトは、それゆえに、一方でrAAVベクターのカプシドタンパク質シ
ェルのために望まれる、ならびに他方で前記rAAVベクター中に存在するrAAVゲノ
ムの複製およびパッケージングのために望まれる血清型の組み合わせを産生するように選
ばれ得る。
"AAV helper functions" generally refer to the r
Refers to the corresponding AAV functions required for AAV replication and packaging. AAV helper functions complement lost AAV functions in rAAV vectors, whereas AAV IT
Lacks R (that provided by the rAAV vector genome). AAV helper functions encompass the two major ORFs of AAV, the rep coding region and the cap coding region, or sequences that are substantially functionally identical thereto. Rep and Cap
Regions are well known in the art, for example Chiorini et al. (1999
, J. of Virology, Vol 73(2): 1309-1319) or U.
S5,139,941, which documents are incorporated herein by reference. AAV helper functions can be provided on the AAV helper construct. Introduction of the helper construct into the host cell occurs, for example by transformation, transfection or transduction, prior to or concurrently with introduction of the rAAV genome present in the rAAV vector identified herein. can be done. The AAV helper constructs of the present invention are therefore of the desired serotype on the one hand for the capsid protein shell of the rAAV vector and on the other hand for the replication and packaging of the rAAV genome present in said rAAV vector. It can be chosen to produce a combination.

「AAVヘルパーウイルス」は、AAVの複製およびパッケージングに必要とされる付
加的な機能を提供する。好適なAAVヘルパーウイルスとしては、アデノウイルス、単純
ヘルペスウイルス(例えば1型および2型HSVなど)およびワクシニアウイルスが挙げ
られる。このヘルパーウイルスにより提供される付加的な機能はまた、US6,531,
456中に記載されるようにプラスミドを介して宿主細胞内に導入することができ、この
文献は参照により本明細書中に組み込まれる。
An "AAV helper virus" provides additional functions required for AAV replication and packaging. Suitable AAV helper viruses include adenovirus, herpes simplex virus (such as HSV types 1 and 2) and vaccinia virus. Additional functions provided by this helper virus are also described in US Pat. No. 6,531,
456, which is incorporated herein by reference.

「導入遺伝子」は、細胞の中に新たに導入された遺伝子またはコーディング配列または
核酸分子(すなわちFGF21をコードする分子)、すなわち、細胞の中に存在し得るが
通常は発現しないまたは不十分なレベルでしか発現しないものであり得る遺伝子として本
明細書中で規定される。この関連において、「不十分な」とは、前記FGF21が細胞中
で発現しているものの、本明細書中で規定される症状および/または疾患がなお発症する
ことができることを意味する。この場合、本発明は、FGF21の過剰発現を許容する。
導入遺伝子は、細胞にとって天然である配列、細胞中で自然に生じない配列を含み得て、
これは両方の組み合わせを含み得る。導入遺伝子は、細胞中でのFGF21をコードする
配列の発現のために適切な調節性配列に作動可能に連結され得る、本明細書中で先に特定
されるFGF21および/または付加的なタンパク質をコードする配列を含有し得る。好
ましくは、導入遺伝子は、宿主細胞のゲノム内に組み込まれない。
A "transgene" is a gene or coding sequence or nucleic acid molecule (i.e., a molecule encoding FGF21) newly introduced into a cell, i. defined herein as a gene that may only be expressed in In this context, "insufficient" means that although said FGF21 is expressed in cells, the symptoms and/or diseases defined herein can still develop. In this case, the present invention allows overexpression of FGF21.
A transgene can contain sequences that are native to the cell, sequences that do not naturally occur in the cell,
This may include a combination of both. The transgene comprises FGF21 and/or additional proteins identified hereinabove, which can be operably linked to appropriate regulatory sequences for expression of the FGF21-encoding sequence in a cell. It may contain a coding sequence. Preferably, the transgene is not integrated into the genome of the host cell.

「形質導入」とは、ウイルスベクターによるレシピエントの宿主細胞へのFGF21の
送達をいう。例えば、本発明のrAAVベクターによる標的細胞の形質導入は、そのベク
ター中に含有されるrAAVゲノムの形質導入細胞への導入を導く。「宿主細胞」または
「標的細胞」とは、その中へのDNA送達が起こる細胞、例えば対象の筋肉細胞などをい
う。AAVベクターは、分裂および非分裂細胞のいずれにも形質導入することができる。
"Transduction" refers to delivery of FGF21 to a recipient host cell by a viral vector. For example, transduction of a target cell with a rAAV vector of the invention leads to introduction of the rAAV genome contained in the vector into the transduced cell. "Host cell" or "target cell" refers to a cell into which DNA delivery occurs, such as a muscle cell of a subject. AAV vectors can transduce both dividing and non-dividing cells.

AAVベクターの生産
導入遺伝子をベクター化するための組換えAAV(rAAV)の生産は、以前に記載さ
れている。Ayuso E,et al.,Curr.Gene Ther. 2010
;10:423-436、Okada T,et al.,Hum.Gene Ther
. 2009;20:1013-1021、Zhang H,et al.,Hum.G
ene Ther. 2009;20:922-929およびVirag T,et a
l.,Hum.Gene Ther. 2009;20:807-817を参照されたい
。これらのプロトコールは、本発明のAAVを作出するために用いられ、または適合され
る。1つの実施形態において、生産細胞株には、本発明のポリヌクレオチド(ITRに隣
接した発現カセットを含むもの)、ならびにrepおよびcapタンパク質をコードし、
ヘルパー機能を提供するコンストラクト(複数可)が一過性でトランスフェクトされる。
別の実施形態において、細胞株は、ヘルパー機能を安定的に供給し、本発明のポリヌクレ
オチド(ITRに隣接した発現カセットを含むもの)、ならびにrepおよびcapタン
パク質をコードするコンストラクト(複数可)が一過性でトランスフェクトされる。別の
実施形態において、細胞株は、repおよびcapタンパク質ならびにヘルパー機能を安
定的に供給し、本発明のポリヌクレオチドが一過性でトランスフェクトされる。別の実施
形態において、細胞株は、repおよびcapタンパク質を安定的に供給し、本発明のポ
リヌクレオチドおよびヘルパー機能をコードするポリヌクレオチドが一過性でトランスフ
ェクトされる。なお別の実施形態において、細胞株は、本発明のポリヌクレオチド、re
pおよびcapタンパク質ならびにヘルパー機能を安定的に供給する。これらのおよび他
のAAV生産系を作製して用いる方法は、当該技術分野において記載されている。Muz
yczka N,et al.,US5,139,941、Zhou X,et al.
,US5,741,683、Samulski R,et al.,US6,057,1
52、Samulski R,et al.,US6,204,059、Samulsk
i R,et al.,US6,268,213、Rabinowitz J,et a
l.,US 6,491,907、Zolotukhin S,et al.,US6,
660,514、Shenk T,et al.,US6,951,753、Snyde
r R,et al.,US7,094,604、Rabinowitz J,et a
l.,US7,172,893、Monahan P,et al.,US7,201,
898、Samulski R,et al.,US7,229,823およびFerr
ari F,et al.,US7,439,065を参照されたい。
Production of AAV vectors Production of recombinant AAV (rAAV) to vectorize transgenes has been previously described. Ayuso E, et al. , Curr. Gene Ther. 2010
10:423-436, Okada T, et al. , Hum. Gene Ther
. 2009;20:1013-1021, Zhang H, et al. , Hum. G.
ene Ther. 2009;20:922-929 and Virag T, et al.
l. , Hum. Gene Ther. 2009;20:807-817. These protocols are used or adapted to generate the AAVs of the invention. In one embodiment, the production cell line encodes a polynucleotide of the invention (comprising an expression cassette flanked by ITRs) and rep and cap proteins,
Construct(s) providing helper functions are transiently transfected.
In another embodiment, the cell line stably supplies helper functions and a polynucleotide of the invention (including an expression cassette flanked by ITRs) and construct(s) encoding rep and cap proteins are Transiently transfected. In another embodiment, the cell line stably supplies rep and cap proteins and helper functions and is transiently transfected with a polynucleotide of the invention. In another embodiment, the cell line stably supplies rep and cap proteins and is transiently transfected with polynucleotides of the invention and polynucleotides encoding helper functions. In yet another embodiment, the cell line is a polynucleotide of the invention, re
Stably supplies p and cap proteins and helper functions. Methods of making and using these and other AAV production systems have been described in the art. Muz
Yczka N, et al. , US 5,139,941; Zhou X, et al.
, US 5,741,683; Samulski R, et al. , US 6,057, 1
52, Samulski R, et al. , US 6,204,059, Samulsk
iR, et al. , US 6,268,213, Rabinowitz J, et al.
l. , US 6,491,907; Zolotukhin S, et al. , US6,
660, 514, Shenk T, et al. , US 6,951,753, Snyde
rR, et al. , US 7,094,604, Rabinowitz J, et al.
l. , US 7,172,893; Monahan P, et al. , US 7,201,
898, Samulski R, et al. , US 7,229,823 and Ferr
ari F, et al. , US 7,439,065.

rAAVベクター中に存在するrAAVゲノムは、AAV血清型のうちの1つの逆位末
端配列領域(ITR)のヌクレオチド配列(好ましくは本明細書中で先に開示される血清
型AAV2のもの)、またはこれと実質的に同一であるヌクレオチド配列、またはこれと
少なくとも60%の同一性を持つヌクレオチド配列、および2つのITRの間に挿入され
る(好適な調節性エレメントの制御下にある)FGF21をコードするヌクレオチド配列
を少なくとも含む。ベクターゲノムは、rAAVカプシド内へのベクターゲノムの効率的
パッケージングを可能にするために隣接する5’および3’ITR配列の使用を必要とす
る。
The rAAV genome present in the rAAV vector comprises the nucleotide sequence of the inverted terminal sequence region (ITR) of one of the AAV serotypes (preferably that of serotype AAV2 previously disclosed herein), or a nucleotide sequence substantially identical to or having at least 60% identity thereto and encoding FGF21 (under the control of suitable regulatory elements) inserted between the two ITRs at least a nucleotide sequence that Vector genomes require the use of flanking 5' and 3' ITR sequences to allow efficient packaging of the vector genome into the rAAV capsid.

いくつかのAAV血清型の全ゲノムおよび対応するITRは塩基配列解析されている(
Chiorini et al. 1999,J. of Virology Vol.
73,No.2,p1309-1319)。これらは、クローニングすることができ、ま
たは例としてApplied Biosystems Inc.(Fosters,CA
,USA)から供給されるオリゴヌクレオチド合成機を用いた当該技術分野で知られてい
る化学合成により、もしくは標準的な分子生物学的技術により、作製することができる。
ITRは、AAVウイルスゲノムからクローニングすることができ、またはAAV IT
Rを含むベクターから切り取ることができる。ITRヌクレオチド配列は、標準的分子生
物学的技術を用いて、いずれかの末端で1または複数の治療的タンパク質をコードするヌ
クレオチド配列にライゲーションすることができ、またはITR間のAAV配列を所望の
ヌクレオチド配列と置き換えることができる。
Whole genomes and corresponding ITRs of several AAV serotypes have been sequenced (
Chiorini et al. 1999,J. of Virology Vol.
73, No. 2, pp 1309-1319). These can be cloned or sold by Applied Biosystems Inc., for example. (Fosters, Calif.)
can be made by chemical synthesis known in the art using an oligonucleotide synthesizer supplied by Co., Inc., USA), or by standard molecular biology techniques.
ITRs can be cloned from the AAV viral genome or AAV IT
It can be excised from a vector containing R. The ITR nucleotide sequences can be ligated at either end to a nucleotide sequence encoding one or more therapeutic proteins using standard molecular biology techniques, or the AAV sequence between the ITRs can be ligated to the desired nucleotide sequence. You can replace it with an array.

好ましくは、rAAVベクター中に存在するrAAVゲノムは、ウイルスタンパク質を
コードする何らかのヌクレオチド配列、例えばAAVのrep(複製)またはcap(カ
プシド)遺伝子などを含まない。このrAAVゲノムは、マーカーまたはレポーター遺伝
子、例えば抗生物質耐性遺伝子、蛍光タンパク質(例としてgfp)をコードする遺伝子
、または当該技術分野で知られている化学的、酵素的もしくは他の方法で検出可能および
/もしくは選択可能な生成物(例としてlacZ、aphなど)をコードする遺伝子など
をさらに含み得る。
Preferably, the rAAV genome present in the rAAV vector does not include any nucleotide sequences encoding viral proteins, such as the AAV rep (replication) or cap (capsid) genes. This rAAV genome is detectable and /or genes encoding selectable products (eg, lacZ, aph, etc.), and the like.

前記rAAVベクター中に存在するrAAVゲノムは、FGF21をコードするヌクレ
オチド配列に作動可能に連結されるプロモーター配列をさらに含む。好ましいプロモータ
ー配列は、骨格筋細胞および/または骨格筋において、肝臓細胞および/または肝臓にお
いて、ならびに脂肪細胞および/または脂肪組織において発現を与えるプロモーターであ
る。かかるプロモーターの例としては、本明細書中で先に規定されるCMV、CAG、m
ini/aP2、mini/UCP1、C5-12およびhAATプロモーターが挙げら
れる。
The rAAV genome present in said rAAV vector further comprises a promoter sequence operably linked to the nucleotide sequence encoding FGF21. Preferred promoter sequences are promoters that confer expression in skeletal muscle cells and/or muscle, in liver cells and/or liver, and in adipocytes and/or adipose tissue. Examples of such promoters include CMV, CAG, m
ini/aP2, mini/UCP1, C5-12 and hAAT promoters.

好適な3’非翻訳配列はまた、FGF21をコードするヌクレオチド配列に作動可能に
連結され得る。好適な3’非翻訳領域は、天然においてそのヌクレオチド配列に関連して
いるものであっても、または異なる遺伝子に由来するものであってもよく、例えばSV4
0ポリアデニル化シグナル(配列番号50)およびウサギβ-グロビンポリアデニル化シ
グナル(配列番号51)などである。
A suitable 3' untranslated sequence can also be operably linked to the nucleotide sequence encoding FGF21. A suitable 3' untranslated region may be that which is naturally associated with the nucleotide sequence or may be derived from a different gene, such as SV4
0 polyadenylation signal (SEQ ID NO:50) and rabbit β-globin polyadenylation signal (SEQ ID NO:51).

任意選択で、付加的なヌクレオチド配列、例えばシグナル配列、核局在シグナル、発現
エンハンサーなどをコードするヌクレオチド配列などが、FGF21をコードするヌクレ
オチド配列(複数可)に作動可能に連結されてもよい。
Optionally, additional nucleotide sequences may be operably linked to the FGF21-encoding nucleotide sequence(s), such as nucleotide sequences encoding signal sequences, nuclear localization signals, expression enhancers, and the like.

コドン最適化
「コドン最適化」とは、本明細書中で用いられるとき、既存のコーディング配列を改変
するため、またはコーディング配列をデザインするため、例えば、コーディング配列から
転写される転写産物RNA分子の発現宿主細胞もしくは生物における翻訳を改善するため
、もしくはコーディング配列の転写を改善するために利用されるプロセスをいう。コドン
最適化としては、限定されるものではないが、発現宿主生物のコドン選好に適合するよう
に、例えば哺乳動物、好ましくはマウス、イヌまたはヒト発現宿主のコドン選好に適合す
るように、コーディング配列のためのコドンを選択することを包含するプロセスが挙げら
れる。コドン最適化はまた、RNA安定性および/または翻訳に潜在的に負の影響を与え
るエレメント(例として終結配列、TATAボックス、スプライス部位、リボソーム進入
部位、反復および/もしくはGCリッチ配列ならびにRNA二次構造または不安定性モチ
ーフ)を除去する。
Codon optimization "Codon optimization" as used herein means to modify an existing coding sequence or to design a coding sequence, e.g. Refers to the process used to improve translation in an expression host cell or organism or to improve transcription of a coding sequence. Codon optimization includes, but is not limited to, coding sequences to match the codon preferences of the expression host organism, e.g., to match the codon preferences of a mammalian, preferably murine, canine or human expression host. Processes involving selecting codons for are included. Codon optimization may also include elements that potentially negatively affect RNA stability and/or translation, such as termination sequences, TATA boxes, splice sites, ribosome entry sites, repeat and/or GC-rich sequences and RNA secondary structural or instability motifs) are removed.

本書類において、およびその特許請求の範囲において、動詞「含むこと(to com
prise)」およびその語形変化は、その語の後に続く項目が包含されることを意味す
るために限定されない意味で用いられるが、具体的に言及されない項目は除外されない。
加えて、動詞「なること(to consist)」は、「から本質的になること(to
consist essentially of)」により置き換えられ得て、これは
、本明細書中で規定されるウイルス発現コンストラクト、ウイルスベクター、組成物、遺
伝子治療組成物が具体的に特定されるものよりほかの付加的な構成成分(複数可)を含み
得ることを意味し、前記付加的構成成分(複数可)は本発明の固有特性を変えない。
In this document, and in the claims thereto, the verb "to com
"prise" and variations thereof are used in a non-limiting sense to mean that items following the term are included, but do not exclude items not specifically mentioned.
In addition, the verb ``to consist'' can be changed to ``to consist''.
consist essentially of), which may be replaced by additional viral expression constructs, viral vectors, compositions, gene therapy compositions defined herein other than those specifically identified. Constituent(s) may be included, said additional constituent(s) not altering the inherent properties of the invention.

加えて、不定冠詞「a」または「an」による要素への参照は、要素が唯一無二のもの
であることを文脈が明確に必要としないかぎり、1つより多くの要素が存在する可能性を
排除しない。不定冠詞「a」または「an」は、それゆえに、通常は「少なくとも1つ」
を意味する。
In addition, references to an element by the indefinite articles "a" or "an" indicate that there may be more than one element unless the context clearly requires that the element be unique. do not exclude The indefinite article "a" or "an" is therefore usually used for "at least one"
means

語「約(approximately)」または「約(about)」は、数値との関
連で用いられるとき(約(approximately)10、約(about)10)
、好ましくは、値が所与の値10の前後1%の値であることを意味する。
The word "approximately" or "about" when used in connection with a numerical value (approximately 10, about 10)
, preferably means that the value is 1% around a given value of 10.

本明細書中で引用される全ての特許および参考文献は、その全体が参照により本明細書
中に組み込まれる。本明細書中で特定される各実施形態は、特に指示がない限り、組み合
わせてもよい。
All patents and references cited herein are hereby incorporated by reference in their entirety. Each embodiment identified in this specification may be combined unless otherwise indicated.

本発明は次の例の中でさらに説明される。これらの例は、本発明の範囲を限定するもの
ではなく、本発明を明確に説明するために役立つものであるに過ぎない。
The invention is further illustrated in the following examples. These examples do not limit the scope of the invention, but merely serve to clarify the invention.

図のレジェンド:
図1. C57Bl6マウスにおけるAAV9-CAG-moFGF21-dmiRTベ
クターのeWAT内投与による肥満の予防。(A)AAV-CAG-moFGF21-d
oublemiRTベクターの略図。発現カセットはCAGプロモーター、コドン最適化
されたマウスFGF21コーディング配列、ならびに発現カセットの3’非翻訳領域中に
クローニングされたmiRT122a配列の4個のタンデムリピートおよびmiRT1配
列の4個のタンデムリピートを含有した。AAV2からのITRが発現カセットに隣接し
た。略図は縮尺どおりではない。CAG:ニワトリβ-アクチンプロモーター/CMVエ
ンハンサー;pA:polyA。(B)代謝組織中のFGF21の発現レベル。C57B
l6マウスのeWAT、iWAT、iBATおよび肝臓中のコドン最適化されたマウスF
GF21コーディング配列の発現レベルをRTqPCRにより測定し、Rplp0値で正
規化した(n=8~11動物/群)。(C)FGF21の循環レベル(n=8~11動物
/群)。(D-E)代謝組織中のFGF21R1(D)およびβ-Klotho(E)の
発現レベル。C57Bl6マウスのeWAT、iWAT、iBATおよび肝臓中のFGF
21受容体1(FGF21R1)およびβ-Klothoの発現レベルをRTqPCRに
より測定し、Rplp0値で正規化した(n=7動物/群)。(F)体重の進展。体重は
毎週測定した(n=8~11動物/群)。(G)動物の代表的イメージ。(H)組織の重
量。AAVベクターをeWAT内に処置した固形飼料給餌C57Bl6マウスおよびHF
D給餌C57Bl6マウスのeWAT、iWAT、rWAT、mWAT、iBATおよび
肝臓の重量(n=8~11動物/群)。分析は、1012vgのAAV9-CAG-mo
FGF21-doublemiRTまたはAAV9-CAG-nullベクターのeWA
T内投与14週後に実施した。結果は平均値±SEMとして表現される。ND、検出され
ず。HFD、高脂肪食。AU、任意単位。eWAT、精巣上体白色脂肪組織。iWAT、
鼠径部白色脂肪組織。rWAT、後腹膜白色脂肪組織。mWAT、腸間膜白色脂肪組織。
iBAT 肩甲骨間褐色脂肪組織。* p<0.05 vs AAV9-CAG-nul
l 固形飼料、** p<0.01 vs AAV9-CAG-null 固形飼料、*
** p<0.001 vs AAV9-CAG-null 固形飼料、$ p<0.0
5 vs AAV9-CAG-null HFD、$$ p<0.01 vs AAV9
-CAG-null HFD、$$$ p<0.001 vs AAV9-CAG-nu
ll HFD。
Figure legend:
Figure 1. Prevention of obesity by intra-eWAT administration of AAV9-CAG-moFGF21-dmiRT vector in C57Bl6 mice. (A) AAV-CAG-moFGF21-d
Schematic representation of the oublemiRT vector. The expression cassette contained the CAG promoter, a codon-optimized mouse FGF21 coding sequence, and four tandem repeats of miRT122a and four tandem repeats of miRT1 sequences cloned into the 3′ untranslated region of the expression cassette. . ITRs from AAV2 flanked the expression cassette. Diagrams are not to scale. CAG: chicken β-actin promoter/CMV enhancer; pA: polyA. (B) Expression levels of FGF21 in metabolic tissues. C57B
Codon-optimized mouse F in eWAT, iWAT, iBAT and liver of l6 mice
Expression levels of the GF21 coding sequence were measured by RTqPCR and normalized by Rplp0 values (n=8-11 animals/group). (C) Circulating levels of FGF21 (n=8-11 animals/group). (DE) Expression levels of FGF21R1 (D) and β-Klotho (E) in metabolic tissues. FGF in eWAT, iWAT, iBAT and liver of C57Bl6 mice
21 receptor 1 (FGF21R1) and β-Klotho expression levels were measured by RTqPCR and normalized by Rplp0 values (n=7 animals/group). (F) Weight evolution. Body weights were measured weekly (n=8-11 animals/group). (G) Representative images of animals. (H) Tissue weight. Chow-fed C57Bl6 mice treated with AAV vectors in eWAT and HF
eWAT, iWAT, rWAT, mWAT, iBAT and liver weights of D-fed C57B16 mice (n=8-11 animals/group). Analysis was performed with 10 12 vg of AAV9-CAG-mo
eWA of FGF21-doublemiRT or AAV9-CAG-null vectors
It was performed 14 weeks after intra-T administration. Results are expressed as mean ± SEM. ND, not detected. HFD, high fat diet; AU, arbitrary units. eWAT, epididymal white adipose tissue; iWAT,
Inguinal white adipose tissue. rWAT, retroperitoneal white adipose tissue; mWAT, mesenteric white adipose tissue;
iBAT Interscapular brown adipose tissue. *p<0.05 vs AAV9-CAG-null
l chow, **p<0.01 vs AAV9-CAG-null chow, *
**p<0.001 vs AAV9-CAG-null chow, $p<0.0
5 vs AAV9-CAG-null HFD, $$ p<0.01 vs AAV9
-CAG-null HFD, $$ p<0.001 vs AAV9-CAG-nu
ll HFD.

図2. AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRTベクターをeWAT
内に処置したC57Bl6マウスの脂肪組織および肝臓の組織分析。(A)AAV9-C
AG-moFGF21-doublemiRTまたはAAV9-CAG-nullベクタ
ーをeWAT内に処置した固形飼料給餌C57Bl6マウスおよびHFD給餌C57Bl
6マウスの精巣上体白色脂肪組織(eWAT)、鼠径部白色脂肪組織(iWAT)肩甲骨
間褐色脂肪組織(iBAT)および肝臓の切片の、ヘマトキシリンおよびエオシンで染色
した代表的イメージ。元の倍率×100。(B)eWATの白色脂肪細胞の平均面積(n
=4動物/群)。(C)eWATの白色脂肪細胞の面積の頻度分布(n=4動物/群)。
分析は、1012vgのAAV9-CAG-moFGF21-doublemiRTまた
はAAV9-CAG-nullベクターのeWAT内投与14週後に実施した。結果は平
均値±SEMとして表現される。HFD、高脂肪食。** p<0.01 vs AAV
9-CAG-null 固形飼料、*** p<0.001 vs AAV9-CAG-
null 固形飼料、$$ p<0.01 vs AAV9-CAG-null HFD
、$$$ p<0.001 vs AAV9-CAG-null HFD。
Figure 2. The AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT vector was eWAT
Histological analysis of adipose tissue and liver of C57Bl6 mice treated i.v. (A) AAV9-C
Chow-fed C57Bl6 mice and HFD-fed C57Bl treated with AG-moFGF21-doublemiRT or AAV9-CAG-null vector in eWAT
Representative images of sections of epididymal white adipose tissue (eWAT), inguinal white adipose tissue (iWAT), interscapular brown adipose tissue (iBAT) and liver from 6 mice stained with hematoxylin and eosin. Original magnification x 100. (B) Average area of white adipocytes in eWAT (n
= 4 animals/group). (C) Frequency distribution of white adipocyte area in eWAT (n=4 animals/group).
Analyzes were performed 14 weeks after intra-eWAT administration of 10 12 vg of AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT or AAV9-CAG-null vector. Results are expressed as mean ± SEM. HFD, high fat diet; **p<0.01 vs. AAV
9-CAG-null chow, *** p<0.001 vs AAV9-CAG-
null chow, $$ p<0.01 vs AAV9-CAG-null HFD
, $$ p<0.001 vs AAV9-CAG-null HFD.

図3. AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRTベクターをeWAT
内に処置したC57Bl6マウスにおけるエネルギー消費およびインスリン感受性の向上
。(A-B)UCP1(A)およびDio2(B)の発現レベル。iWAT中のUCP1
およびDio2の発現レベルをRTqPCRにより測定し、Rplp0値で正規化した(
n=7動物/群)。(C)エネルギー代謝。エネルギー消費(EE)は間接的開路熱量計
で測定した。酸素消費および二酸化炭素産生を同時にモニターした。データは、AAV投
与の9週後、明サイクル(基本状態)および暗サイクル(活動期)の間に取得し、体重で
調整した(n=8~11動物/群)。(D)肝臓トリグリセリド含量(n=8~10動物
/群)。(E-F)血清トリグリセリド(E)およびコレステロール(F)レベル(n=
8~11動物/群)。(G)腹腔内インスリン負荷試験。マウスに0.75Uインスリン
/kg体重の腹腔内注射を与え、指し示された時点において血中グルコースレベルを測定
した(n=6~11動物/群)。試験は、AAV投与の11週後に実施した。(H)空腹
時インスリン循環レベル。特に指示がない限り、分析は、1012vgのAAV9-CA
G-moFGF21-doublemiRTまたはAAV9-CAG-nullベクター
のeWAT内投与14週後に実施した。結果は平均値±SEMとして表現される。HFD
、高脂肪食。TG、トリグリセリド。Chol、コレステロール。* p<0.05 v
s AAV9-CAG-null 固形飼料、** p<0.01 vs AAV9-C
AG-null 固形飼料、*** p<0.001 vs AAV9-CAG-nul
l 固形飼料、$ p<0.05 vs AAV9-CAG-null HFD、$$
p<0.01 vs AAV9-CAG-null HFD、$$$ p<0.001
vs AAV9-CAG-null HFD。
Figure 3. The AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT vector was eWAT
Enhanced energy expenditure and insulin sensitivity in intra-treated C57Bl6 mice. (AB) Expression levels of UCP1 (A) and Dio2 (B). UCP1 in iWAT
and Dio2 expression levels were measured by RTqPCR and normalized with Rplp0 values (
n=7 animals/group). (C) Energy metabolism. Energy expenditure (EE) was measured with an indirect open circuit calorimeter. Oxygen consumption and carbon dioxide production were monitored simultaneously. Data were acquired during the light (basal) and dark (active) cycles after 9 weeks of AAV administration and adjusted for body weight (n=8-11 animals/group). (D) Liver triglyceride content (n=8-10 animals/group). (EF) Serum triglyceride (E) and cholesterol (F) levels (n=
8-11 animals/group). (G) Intraperitoneal insulin tolerance test. Mice were given an intraperitoneal injection of 0.75 U insulin/kg body weight and blood glucose levels were measured at the indicated time points (n=6-11 animals/group). The study was performed 11 weeks after AAV administration. (H) Fasting insulin circulating levels. Unless otherwise indicated, assays were performed with 10 12 vg of AAV9-CA
It was performed 14 weeks after intra-eWAT administration of G-moFGF21-doublemiRT or AAV9-CAG-null vector. Results are expressed as mean ± SEM. HFD
, a high-fat diet. TG, triglyceride; Chol, cholesterol; *p<0.05v
s AAV9-CAG-null chow, **p<0.01 vs AAV9-C
AG-null chow, ***p<0.001 vs AAV9-CAG-nul
l Chow, $p<0.05 vs AAV9-CAG-null HFD, $$
p<0.01 vs AAV9-CAG-null HFD, $$ p<0.001
vs AAV9-CAG-null HFD.

図4. ob/obマウスにおけるAAV8-CAG-moFGF21-dmiRTベク
ターのeWAT内投与による肥満の回復。(A)代謝組織中のFGF21の発現レベル。
ob/obマウスのeWAT、iWAT、iBATおよび肝臓中のコドン最適化されたマ
ウスFGF21コーディング配列の発現レベルをRTqPCRにより測定し、Rplp0
値で正規化した。(B)FGF21の循環レベル。(C-D)体重(C)および体重増加
(D)の進展。体重は毎週測定した。(E)組織の重量。AAVベクターをeWAT内に
処置したob/obマウスのeWAT、iWAT、rWAT、mWAT、iBATおよび
肝臓の重量。分析は、1010vg、5×1010vg、2×1011vgもしくは10
12vgのAAV8-CAG-moFGF21-doublemiRTまたは1012
gのAAV8-CAG-nullベクターのeWAT内投与16週後に実施した。結果は
平均値±SEMとして表現される。n=7~8動物/群。ND、検出されず。AU、任意
単位。eWAT、精巣上体白色脂肪組織。iWAT、鼠径部白色脂肪組織。rWAT、後
腹膜白色脂肪組織。mWAT、腸間膜白色脂肪組織。iBAT 肩甲骨間褐色脂肪組織。
* p<0.05 vs AAV8-CAG-null、** p<0.01 vs A
AV8-CAG-null、*** p<0.001 vs AAV8-CAG-nul
l。
Figure 4. Obesity reversal by intra-eWAT administration of AAV8-CAG-moFGF21-dmiRT vector in ob/ob mice. (A) Expression levels of FGF21 in metabolic tissues.
Expression levels of the codon-optimized mouse FGF21 coding sequence in eWAT, iWAT, iBAT and liver of ob/ob mice were measured by RTqPCR and Rplp0
normalized by value. (B) Circulating levels of FGF21. (CD) Evolution of body weight (C) and weight gain (D). Body weight was measured weekly. (E) Tissue weight. eWAT, iWAT, rWAT, mWAT, iBAT and liver weights of ob/ob mice treated with AAV vectors into eWAT. The assay was 10 10 vg, 5 x 10 10 vg, 2 x 10 11 vg or 10
12 vg of AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT or 10 12 v
g of AAV8-CAG-null vector in eWAT 16 weeks after administration. Results are expressed as mean ± SEM. n=7-8 animals/group. ND, not detected. AU, arbitrary units. eWAT, epididymal white adipose tissue; iWAT, inguinal white adipose tissue; rWAT, retroperitoneal white adipose tissue; mWAT, mesenteric white adipose tissue; iBAT Interscapular brown adipose tissue.
*p<0.05 vs AAV8-CAG-null, **p<0.01 vs A
AV8-CAG-null, ***p<0.001 vs AAV8-CAG-null
l.

図5. AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRTベクターをeWAT
内に処置したob/obマウスにおけるインスリン感受性の改善。(A)腹腔内インスリ
ン負荷試験。ob/obマウスに0.75Uインスリン/kg体重の腹腔内注射を与え、
指し示された時点において血中グルコースレベルを測定した。試験は、AAV投与の9週
後に実施した。(B)AAV投与2月後の空腹時インスリン循環レベル。結果は平均値±
SEMとして表現され、n=7~8動物/群である。* p<0.05 vs AAV8
-CAG-null、** p<0.01 vs AAV8-CAG-null、***
p<0.001 vs AAV8-CAG-null。
Figure 5. The AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT vector was transferred to eWAT
Improvement of insulin sensitivity in i.v. treated ob/ob mice. (A) Intraperitoneal insulin tolerance test. ob/ob mice were given an intraperitoneal injection of 0.75 U insulin/kg body weight,
Blood glucose levels were measured at the indicated time points. The study was performed 9 weeks after AAV administration. (B) Fasting circulating insulin levels two months after AAV administration. Results are mean ±
Expressed as SEM, n=7-8 animals/group. *p<0.05 vs AAV8
-CAG-null, **p<0.01 vs AAV8-CAG-null, ***
p<0.001 vs AAV8-CAG-null.

図6. ob/obマウスにおけるAAV8-hAAT-moFGF21-ベクターの静
脈内投与による肥満の回復およびグルコース代謝の好転。(A)AAV-hAAT-mo
FGF21ベクターの略図。発現カセットは、ヒトα1-アンチトリプシン(hAAT)
プロモーターおよびコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列を含有した。
AAV2からのITRが発現カセットに隣接した。略図は縮尺どおりではない。pA:p
olyA。(B)FGF21の発現レベル。ob/obマウスの肝臓中のコドン最適化さ
れたマウスFGF21コーディング配列の発現レベルをRTqPCRにより測定し、Rp
lp0値で正規化した。(C)FGF21の循環レベル。(D-E)体重(C)および体
重増加(D)の進展。体重は毎週測定した。(F)動物の代表的イメージ。(G)組織の
重量。AAVベクターを静脈内に処置したob/obマウスのeWAT、iWAT、rW
AT、mWAT、iBATおよび肝臓の重量。(H)腹腔内インスリン負荷試験。ob/
obマウスに0.75Uインスリン/kg体重の腹腔内注射を与え、指し示された時点に
おいて血中グルコースレベルを測定した。試験は、AAV投与の9週後に実施した。(I
)AAV投与3月後の空腹時インスリン循環レベル。特に指示がない限り、分析は、10
11vgもしくは5×1011vgのAAV8-hAAT-moFGF21または5×1
11vgのAAV8-hAAT-nullベクターの静脈内投与20週後に実施した。
結果は平均値±SEMとして表現される。n=9~10動物/群。ND、検出されず。A
U、任意単位。eWAT、精巣上体白色脂肪組織。iWAT、鼠径部白色脂肪組織。rW
AT、後腹膜白色脂肪組織。mWAT、腸間膜白色脂肪組織。iBAT 肩甲骨間褐色脂
肪組織。* p<0.05 vs AAV8-hAAT-null、** p<0.01
vs AAV8-hAAT-null、*** p<0.001 vs AAV8-h
AAT-null。
Figure 6. Intravenous administration of AAV8-hAAT-moFGF21-vector reverses obesity and improves glucose metabolism in ob/ob mice. (A) AAV-hAAT-mo
Schematic representation of the FGF21 vector. The expression cassette is human α1-antitrypsin (hAAT)
It contained a promoter- and codon-optimized murine FGF21 coding sequence.
ITRs from AAV2 flanked the expression cassette. Diagrams are not to scale. pA:p
oly A. (B) Expression levels of FGF21. The expression level of the codon-optimized mouse FGF21 coding sequence in the liver of ob/ob mice was measured by RTqPCR and Rp
Normalized by the lp0 value. (C) Circulating levels of FGF21. (DE) Evolution of body weight (C) and weight gain (D). Body weight was measured weekly. (F) Representative images of animals. (G) Tissue weight. eWAT, iWAT, rW in ob/ob mice treated intravenously with AAV vectors
AT, mWAT, iBAT and liver weights. (H) Intraperitoneal insulin tolerance test. ob/
ob mice were given an intraperitoneal injection of 0.75 U insulin/kg body weight and blood glucose levels were measured at the indicated time points. The study was performed 9 weeks after AAV administration. (I
) Fasting circulating insulin levels 3 months after AAV administration. Unless otherwise indicated, the analysis was performed in 10
11 vg or 5×10 11 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 or 5×1
It was performed 20 weeks after intravenous administration of 0 11 vg of AAV8-hAAT-null vector.
Results are expressed as mean±SEM. n=9-10 animals/group. ND, not detected. A.
U, arbitrary units. eWAT, epididymal white adipose tissue; iWAT, inguinal white adipose tissue; rW
AT, retroperitoneal white adipose tissue. mWAT, mesenteric white adipose tissue; iBAT Interscapular brown adipose tissue. *p<0.05 vs AAV8-hAAT-null, **p<0.01
vs AAV8-hAAT-null, ***p<0.001 vs AAV8-h
AAT-null.

図7. HFD給餌C57bl6マウスにおけるAAV-hAAT-moFGF21ベク
ターの静脈内投与による肥満の長期的回復。(A)FGF21の循環レベル。(B-C)
体重(C)および体重増加(D)の進展。体重は毎週測定した。分析は、1010vgも
しくは5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21または5×1010vg
のAAV8-hAAT-nullベクターの静脈内投与52週後に実施した。結果は平均
値±SEMとして表現され、n=9~12動物/群である。*** p<0.001 v
s AAV8-hAAT-null 固形飼料、$$ p<0.01 vs AAV8-
hAAT-null HFD、$$$ p<0.001 vs AAV8-hAAT-n
ull HFD。
Figure 7. Long-term reversal of obesity by intravenous administration of AAV-hAAT-moFGF21 vector in HFD-fed C57bl6 mice. (A) Circulating levels of FGF21. (BC)
Evolution of body weight (C) and weight gain (D). Body weight was measured weekly. Analysis was performed using 10 10 vg or 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 or 5×10 10 vg
52 weeks after intravenous administration of the AAV8-hAAT-null vector. Results are expressed as mean±SEM, n=9-12 animals/group. ***p<0.001v
s AAV8-hAAT-null chow, $$ p<0.01 vs AAV8-
hAAT-null HFD, $$p<0.001 vs AAV8-hAAT-n
ull HFD.

図8. HFD給餌C57Bl6マウスにおけるAAV-hAAT-moFGF21ベク
ターの静脈内投与によるエネルギー消費およびインスリン感受性の長期的向上。(A)エ
ネルギー代謝。エネルギー消費(EE)は間接的開路熱量計で測定した。酸素消費および
二酸化炭素産生を同時にモニターした。データは、AAV投与の4週後、明サイクル(基
本状態)および暗サイクル(活動期)の間に取得し、体重で調整した。(B)腹腔内イン
スリン負荷試験。C57Bl6マウスに0.75Uインスリン/kg体重の腹腔内注射を
与え、指し示された時点において血中グルコースレベルを測定した。試験は、AAV投与
の7週後に実施した。(C)空腹時および給餌時のインスリン循環レベル。結果は平均値
±SEMとして表現され、n=9~12動物/群である。HFD、高脂肪食。* p<0
.05 vs AAV8-hAAT-null 固形飼料、** p<0.01 vs
AAV8-hAAT-null 固形飼料、*** p<0.001 vs AAV8-
hAAT-null 固形飼料、$ p<0.05 vs AAV8-hAAT-nul
l HFD、$$ p<0.01 vs AAV8-hAAT-null HFD、$$
$ p<0.001 vs AAV8-hAAT-null HFD。
Figure 8. Long-term enhancement of energy expenditure and insulin sensitivity by intravenous administration of AAV-hAAT-moFGF21 vector in HFD-fed C57B16 mice. (A) Energy metabolism. Energy expenditure (EE) was measured with an indirect open circuit calorimeter. Oxygen consumption and carbon dioxide production were monitored simultaneously. Data were obtained 4 weeks after AAV administration during the light cycle (basal state) and dark cycle (active phase) and adjusted for body weight. (B) Intraperitoneal insulin tolerance test. C57B16 mice were given an intraperitoneal injection of 0.75 U insulin/kg body weight and blood glucose levels were measured at the indicated time points. The study was performed 7 weeks after AAV administration. (C) Fasting and fed insulin circulating levels. Results are expressed as mean±SEM, n=9-12 animals/group. HFD, high fat diet; * p < 0
. 05 vs AAV8-hAAT-null chow, **p<0.01 vs.
AAV8-hAAT-null chow, ***p<0.001 vs AAV8-
hAAT-null chow, $ p<0.05 vs AAV8-hAAT-null
l HFD, $$ p<0.01 vs AAV8-hAAT-null HFD, $$
$p<0.001 vs AAV8-hAAT-null HFD.

図9. 老齢HFD給餌マウスにおけるAAV-hAAT-moFGF21ベクターの静
脈内投与による肥満の回復。(A)FGF21の循環レベル。(B-C)体重(B)およ
び体重増加(C)の進展。体重は毎週測定した。分析は、1010vg、2×1010
gもしくは5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21または5×1010
vgのAAV8-hAAT-nullベクターの静脈内投与21週後に実施した。結果は
平均値±SEMとして表現され、n=7~8動物/群である。HFD、高脂肪食。***
p<0.05 vs AAV8-hAAT-null 固形飼料、$ p<0.05
vs AAV8-hAAT-null HFD、$$ p<0.01 vs AAV8-
hAAT-null HFD。$$$ p<0.001 vs AAV8-hAAT-n
ull HFD。
Figure 9. Obesity reversal by intravenous administration of AAV-hAAT-moFGF21 vector in aged HFD-fed mice. (A) Circulating levels of FGF21. (BC) Evolution of body weight (B) and weight gain (C). Body weight was measured weekly. Analysis is 10 10 vg, 2 x 10 10 v
g or 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 or 5×10 10
It was performed 21 weeks after intravenous administration of the vg AAV8-hAAT-null vector. Results are expressed as mean±SEM, n=7-8 animals/group. HFD, high fat diet; ***
p<0.05 vs AAV8-hAAT-null chow, $ p<0.05
vs AAV8-hAAT-null HFD, $$ p<0.01 vs AAV8-
hAAT-null HFD. $$p<0.001 vs AAV8-hAAT-n
ull HFD.

図10. 老齢HFD給餌マウスにおけるAAV-hAAT-moFGF21ベクターの
静脈内投与によるエネルギー消費およびインスリン感受性の向上。(A)エネルギー代謝
。エネルギー消費(EE)は間接的開路熱量計で測定した。酸素消費および二酸化炭素産
生を同時にモニターした。データは、AAV投与の6週後、明サイクル(基本状態)およ
び暗サイクル(活動期)の間に取得し、体重で調整した。(B)腹腔内インスリン負荷試
験。老齢C57Bl6マウスに0.75Uインスリン/kg体重の腹腔内注射を与え、指
し示された時点において血中グルコースレベルを測定した。試験は、AAV投与の9週後
に実施した。(C)空腹時および給餌時のインスリン循環レベル。結果は平均値±SEM
として表現され、n=7~8動物/群である。HFD、高脂肪食。** p<0.01
vs AAV8-hAAT-null 固形飼料、*** p<0.001 vs AA
V8-hAAT-null 固形飼料、$ p<0.05 vs AAV8-hAAT-
null HFD、$$ p<0.01 vs AAV8-hAAT-null HFD
、$$$ p<0.001 vs AAV8-hAAT-null HFD。
Figure 10. Improving energy expenditure and insulin sensitivity by intravenous administration of AAV-hAAT-moFGF21 vectors in aged HFD-fed mice. (A) Energy metabolism. Energy expenditure (EE) was measured with an indirect open circuit calorimeter. Oxygen consumption and carbon dioxide production were monitored simultaneously. Data were obtained during the light cycle (basal state) and dark cycle (active phase) 6 weeks after AAV administration and adjusted for body weight. (B) Intraperitoneal insulin tolerance test. Aged C57B16 mice were given an intraperitoneal injection of 0.75 U insulin/kg body weight and blood glucose levels were measured at the indicated time points. The study was performed 9 weeks after AAV administration. (C) Fasting and fed insulin circulating levels. Results are mean ± SEM
, n=7-8 animals/group. HFD, high fat diet; **p<0.01
vs AAV8-hAAT-null chow, *** p<0.001 vs AA
V8-hAAT-null chow, $ p<0.05 vs AAV8-hAAT-
null HFD, $$ p<0.01 vs AAV8-hAAT-null HFD
, $$ p<0.001 vs AAV8-hAAT-null HFD.

図11. C57Bl6マウスにおけるAAV-CMV-moFGF21ベクターの筋肉
内投与による体重減少。(A)AAV-CMV-moFGF21ベクターの略図。発現カ
セットは、サイトメガロウイルス(CMV)プロモーターおよびコドン最適化されたマウ
スFGF21コーディング配列を含有した。AAV2からのITRが発現カセットに隣接
した。略図は縮尺どおりではない。pA:polyA。(B)循環FGF21レベル。(
C-D)体重(C)および体重増加(D)の進展。体重は毎週測定した。結果は平均値±
SEMとして表現される。n=6~7動物/群。* p<0.05 vs AAV1-C
MV-null、** p<0.01 vs AAV1-CMV-null。図中のFG
F21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。
Figure 11. Weight loss by intramuscular administration of AAV-CMV-moFGF21 vector in C57Bl6 mice. (A) Schematic representation of the AAV-CMV-moFGF21 vector. The expression cassette contained the cytomegalovirus (CMV) promoter and codon-optimized murine FGF21 coding sequence. ITRs from AAV2 flanked the expression cassette. Diagrams are not to scale. pA: polyA. (B) Circulating FGF21 levels. (
CD) Evolution of body weight (C) and weight gain (D). Body weight was measured weekly. Results are mean ±
Expressed as SEM. n=6-7 animals/group. *p<0.05 vs AAV1-C
MV-null, **p<0.01 vs AAV1-CMV-null. FG in the figure
Labeling of F21 refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

図12. ヒトFGF21をコードするヌクレオチド配列のコドン最適化によるFGF2
1タンパク質産生の増加。(A)野生型hFGF21またはコドン最適化されたヒトFG
F21配列の3つの異なるバージョンをトランスフェクトしたHEK293細胞の培養培
地中のhFGF21タンパク質レベル。結果は平均値±SEMとして表現される。n=3
ウェル/群。ND、検出されず。* p<0.05 vs 非トランスフェクト細胞。
Figure 12. FGF2 by Codon Optimization of the Nucleotide Sequence Encoding Human FGF21
1 increased protein production. (A) Wild-type hFGF21 or codon-optimized human FG
hFGF21 protein levels in the culture medium of HEK293 cells transfected with three different versions of the F21 sequence. Results are expressed as mean ± SEM. n=3
well/group. ND, not detected. *p<0.05 vs non-transfected cells.

図13. ob/obマウスにおけるAAV8-CAG-moFGF21-dmiRTベ
クターのeWAT内投与。
Figure 13. Intra-eWAT administration of AAV8-CAG-moFGF21-dmiRT vector in ob/ob mice.

A、B nullまたはFGF21をコードするAAV8ベクターのいずれかを試験する
全ての用量でeWAT内注射したob/ob動物から得られた(A)eWATおよび(B
)肝臓組織切片のヘマトキシリン-エオシン染色の代表的イメージ。スケールバー:eW
ATについて100μm、肝臓について200μm。
(A) eWAT and (B) obtained from ob/ob animals injected intra-eWAT at all doses tested with either null or an AAV8 vector encoding FGF21.
) Representative images of hematoxylin-eosin staining of liver tissue sections. Scale bar: eW
100 μm for AT, 200 μm for liver.

C 給餌状態での血糖。 C Blood glucose in the fed state.

D AAV後3月の給餌状態での血中インスリン。 Blood insulin in the fed state 3 months after D AAV.

図中のFGF21の標識はmoFGF21を指す。 The FGF21 label in the figure refers to moFGF21.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A、B)においてn=6
~9動物/群。(C-H)においてn=4~8動物/群。(I)においてn=6~8動物
/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 Null注
射群。
Data information: All values are expressed as mean±SEM. n=6 in (A, B)
~9 animals/group. n=4-8 animals/group in (CH). n=6-8 animals/group in (I). *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 vs Null injection group.

図14. ob/obマウスのeWATへのFGF21遺伝子導入の影響。 Figure 14. Effect of FGF21 gene transfer on eWAT in ob/ob mice.

A 11週齢時にAAV8-CAG-nullベクターまたはAAV8-CAG-moF
GF21-dmiRTベクターのいずれかを4つの異なる用量(1×1010、5×10
10、2×1011、1×1012vg/マウス)でeWAT内注射された25週齢のo
b/ob動物における血清アディポネクチンレベル。
A AAV8-CAG-null vector or AAV8-CAG-moF at 11 weeks of age
Four different doses of either GF21-dmiRT vector (1×10 10 , 5×10
10 , 2×10 11 , 1×10 12 vg/mouse) at 25 weeks of age injected intra-eWAT
Serum adiponectin levels in b/ob animals.

B (A)におけるものと同じ動物のマクロファージマーカーF4/80のqRT-PC
Rによる発現定量
C AAV8-CAG-moFGF21-dmiRTベクターを受けたob/obマウス
からのeWAT切片の、マクロファージ特異的マーカーMac2についての免疫染色の代
表的イメージ。n=4~8/群。スケールバー:200μm。
B qRT-PC of the macrophage marker F4/80 of the same animal as in (A)
Expression quantification by R. Representative images of immunostaining for the macrophage-specific marker Mac2 of eWAT sections from ob/ob mice that received the AAV8-CAG-moFGF21-dmiRT vector. n=4-8/group. Scale bar: 200 μm.

D 全てのeWAT内処置群における肝臓の重量。 D Liver weights in all intra-eWAT treatment groups.

E、F (A)におけるものと同じコホートにおける給餌状態での肝臓トリグリセリドお
よびコレステロール含量。
E, F Liver triglyceride and cholesterol content in the fed state in the same cohort as in (A).

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A、B、D)においてn
=4~8動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対
null注射ob/ob群。
Data information: All values are expressed as mean±SEM. n in (A, B, D)
= 4-8 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus null injected ob/ob group.

図15. AAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置されたob/obマウス
における肥満の低減およびインスリン感受性の改善。
Figure 15. Reduced obesity and improved insulin sensitivity in ob/ob mice treated with AAV8-hAAT-moFGF21 vector.

A nullまたはFGF21をコードするAAVベクターのいずれかを1×1011
たは5×1011vg/マウスで注射されたob/ob動物から得られたeWAT組織切
片のヘマトキシリン-エオシン染色の代表的イメージ。
Representative images of hematoxylin-eosin staining of eWAT tissue sections obtained from ob/ob animals injected with either A null or AAV vectors encoding FGF21 at 1×10 11 or 5×10 11 vg/mouse.

B 全ての群における血清アディポネクチンレベル。 B Serum adiponectin levels in all groups.

C nullまたはFGF21をコードするAAVベクターのいずれかを1×1011
たは5×1011vg/マウスで注射されたob/ob動物から得られた肝臓組織切片の
ヘマトキシリン-エオシン染色の代表的イメージ。
Representative images of hematoxylin-eosin staining of liver tissue sections obtained from ob/ob animals injected with either C null or AAV vectors encoding FGF21 at 1×10 11 or 5×10 11 vg/mouse.

D 給餌時血中グルコースレベル。 D Feeding blood glucose levels.

E AAV後5月での給餌時血清インスリンレベル。 E Feeding serum insulin levels at 5 months post AAV.

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全てのデータは平均値±SEMで表現される。(A-C、E、G-H)に
おいてn=9~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.
001 対 null注射ob/ob群。
Data information: All data are expressed as mean±SEM. n=9-10 animals/group in (AC, E, GH). *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.
001 vs null injected ob/ob group.

図16. ob/obマウスに対するFGF21肝臓遺伝子導入の効果。 Figure 16. Effect of FGF21 liver gene transfer on ob/ob mice.

A AAV8-hAAT-moFGF21ベクターを受けたob/obマウスからのeW
AT切片における、マクロファージ特異的マーカーMac2についての免疫組織化学。ス
ケールバー:500μm。
A eW from ob/ob mice that received the AAV8-hAAT-moFGF21 vector
Immunohistochemistry for the macrophage-specific marker Mac2 in AT sections. Scale bar: 500 μm.

B、C 同じマウスコホートにおける炎症マーカーF4/80(B)およびTNF-α(
C)のqRT-PCRによる発現定量。
B, C Inflammatory markers F4/80 (B) and TNF-α (
Expression quantification by qRT-PCR in C).

D、E (A)におけるものと同じ実験群に属する動物から得られた肝臓の重量(D)お
よび代表的イメージ(E)。
D, E Weights (D) and representative images (E) of livers obtained from animals belonging to the same experimental groups as in (A).

F、G (A)におけるものと同じコホートにおける給餌状態での肝臓トリグリセリドお
よびコレステロール含量。
F, G Liver triglyceride and cholesterol content in the fed state in the same cohort as in (A).

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(B、D-F、H-I)に
おいてn=9~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.
001 対 null注射ob/ob群。
Data information: All values are expressed as mean±SEM. n=9-10 animals/group in (B, DF, HI). *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.
001 vs null injected ob/ob group.

図17. AAV8-hAAT-moFGF21処置は、ob/obマウスの脂肪組織に
おいてグルコース取り込みおよび熱産生に関与する遺伝子の発現を増加させる。
Figure 17. AAV8-hAAT-moFGF21 treatment increases the expression of genes involved in glucose uptake and thermogenesis in adipose tissue of ob/ob mice.

A、B 2月齢時にAAV8-hAAT-nullベクターまたはAAV8-hAAT-
moFGF21ベクターのいずれかを注射されたob/obマウスにおける肝臓PEPC
KおよびG6PaseのqRT-PCRによる発現定量。
A, B AAV8-hAAT-null vector or AAV8-hAAT- at 2 months of age
Liver PEPCs in ob/ob mice injected with either moFGF21 vector
Expression quantification by qRT-PCR of K and G6Pase.

C-F (A)におけるものと同じ動物における、eWAT、iWATおよびiBAT中
のGLUT1(C)、GLUT4(D)、HKI(E)およびHKII(F)のqRT-
PCRによる発現定量。
CF qRT-of GLUT1 (C), GLUT4 (D), HKI (E) and HKII (F) in eWAT, iWAT and iBAT in the same animals as in (A)
Expression quantification by PCR.

G (A)におけるものと同じコホートにおける、iBAT中のUCP1の相対的発現量
G Relative expression levels of UCP1 in iBAT in the same cohort as in (A).

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A-G)においてn=9
~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対
null注射ob/ob群。
Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n = 9 in (AG)
~10 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 vs.
null injection ob/ob group.

図18. AAV8媒介性の肝臓FGF21遺伝子導入はHFD誘発性肥満に対抗する。 Figure 18. AAV8-mediated hepatic FGF21 gene transfer counteracts HFD-induced obesity.

A 若年成体(上パネル)または成体(下パネル)としてAAV8-hAAT-moFG
F21ベクターで処置されたマウスから得られた精巣上体(eWAT)、鼠径部(iWA
T)および後腹膜(rWAT)白色脂肪組織貯蔵部、肝臓および四頭筋の重量。
A AAV8-hAAT-moFG as young adults (upper panel) or adults (lower panel)
Epididymal (eWAT), inguinal (iWA
T) and retroperitoneal (rWAT) white adipose tissue depot, liver and quadriceps weights.

B ベクター投与後の異なる時点でのFGF21の循環レベル。 B Circulating levels of FGF21 at different time points after vector administration.

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A-D)においてn=7
~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対
固形飼料給餌Null注射群。P<0.05、##P<0.01および###P<0.
001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。
Data information: All values are expressed as mean±SEM. n = 7 in (AD)
~10 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 vs.
Chow-fed Null injection group. #P <0.05, ## P<0.01 and ### P<0.
001 vs HFD-fed Null-injected group. HFD, high fat diet;

図19. 肝臓へのFGF21遺伝子導入はHFD誘発性肥満に対抗する。 Figure 19. FGF21 gene transfer into the liver counteracts HFD-induced obesity.

A、B 若年成体(A)または成体(B)において実施された試験の全ての実験群に属す
る動物の代表的イメージ。
A, B Representative images of animals belonging to all experimental groups of studies performed in young adults (A) or adults (B).

C 若年成体(左)または成体(右)としていくつかの用量のAAV8-hAAT-mo
FGF21で処置された動物から屠殺時に得られた精巣上体白色脂肪(eWAT)パッド
の代表的イメージ。
C Several doses of AAV8-hAAT-mo as young adults (left) or adults (right)
Representative images of epididymal white adipose (eWAT) pads obtained at sacrifice from animals treated with FGF21.

D 若年成体(左)または成体(右)として処置された動物から得られた肝臓の代表的イ
メージ。
D Representative images of livers obtained from animals treated as young adults (left) or adults (right).

E 若年成体または成体として処置された動物の肝臓中のAAVに由来するFGF21発
現。qPCRは、コドン最適化されたマウスFGF21(coFGF21)のコーディン
グ配列を特異的に検出するプライマーを使用して実施した。
E, AAV-derived FGF21 expression in livers of young adults or animals treated as adults. qPCR was performed using primers that specifically detect the coding sequence of codon-optimized murine FGF21 (coFGF21).

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(E)においてn=7~1
0動物/群。HFD、高脂肪食。ND、検出されず。
Data information: All values are expressed as mean±SEM. n = 7 to 1 in (E)
0 animals/group. HFD, high fat diet; ND, not detected.

図20. iBATおよびiWATにおけるAAV8-hAAT-moFGF21媒介性
のエネルギー消費増加および脂肪蓄積減少。
Figure 20. AAV8-hAAT-moFGF21-mediated increased energy expenditure and decreased fat accumulation in iBAT and iWAT.

A 約2月齢からHFD給餌に供され、2月後にnullまたはFGF21をコードする
ベクターのいずれかで処置された動物(若年成体)におけるオープンフィールド試験を通
じた自発運動活性の査定。
A Assessment of locomotor activity through the open field test in animals (young adults) subjected to HFD feeding from approximately 2 months of age and treated 2 months later with either null or a vector encoding FGF21.

B 若年成体(左)または成体(右)として処置された動物からのiBAT組織切片のヘ
マトキシリン-エオシン染色。
B Hematoxylin-eosin staining of iBAT tissue sections from animals treated as young adults (left) or adults (right).

C (A)におけるものと同じ動物コホートからのiBAT中のUCP1含量のウエスタ
ンブロット分析。代表的イムノブロットが示される(左)。ヒストグラムは2つの異なる
イムノブロットの濃度測定分析を描写する(右)。
C Western blot analysis of UCP1 content in iBAT from the same animal cohort as in (A). A representative immunoblot is shown (left). Histograms depict densitometric analysis of two different immunoblots (right).

D 若年成体(左)または成体(右)として処置された動物からのiWAT組織切片のヘ
マトキシリン-エオシン染色。
D Hematoxylin-eosin staining of iWAT tissue sections from animals treated as young adults (left) or adults (right).

E 若年成体または成体としてHFD給餌を開始してFGF21ベクターを受けた動物群
における、iWAT中のPhospho1のqRT-PCRによる発現定量。
E Expression quantification by qRT-PCR of Phospho1 in iWAT in young adults or in groups of animals that started HFD feeding as adults and received FGF21 vector.

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A-C)においてn=7
~10動物/群。(E)においてn=4動物/群。(G)においてn=7~10動物/群
。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 固形飼料給餌N
ull注射群。P<0.05および###P<0.001 対 HFD給餌Null注
射群。HFD、高脂肪食。
Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n = 7 in (AC)
~10 animals/group. In (E) n=4 animals/group. In (G) n=7-10 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus chow fed N
ull injection group. #P <0.05 and ### P<0.001 versus HFD-fed Null injection group. HFD, high fat diet;

図21. 肝臓への遺伝子導入後10月でのエネルギー消費。 Figure 21. Energy consumption in October after gene transfer to the liver.

A 2月齢時にHFD給餌を開始した動物コホートにおけるエネルギー消費を、AAV8
-hAAT-nullまたはAAV8-hAAT-moFGF21ベクター送達後10月
で測定した。データは、明サイクルおよび暗サイクルの間に取得した。
A. Energy expenditure in a cohort of animals that started HFD feeding at 2 months of age was measured by AAV8
- measured 10 months after hAAT-null or AAV8-hAAT-moFGF21 vector delivery. Data were acquired during the light and dark cycles.

B 同じ動物コホートからのiWAT中のUCP1含量のウエスタンブロット分析。代表
的イムノブロットが示される(左)。グラフは2つの異なるイムノブロットの濃度測定分
析を示す(右)。
B Western blot analysis of UCP1 content in iWAT from the same animal cohort. A representative immunoblot is shown (left). The graph shows the densitometric analysis of two different immunoblots (right).

C 若年成体または成体としてHFD給餌を開始してFGF21ベクターを受けた動物群
における、iWAT中のSerca2bおよびRyR2の相対的発現量。
C Relative expression levels of Serca2b and RyR2 in iWAT in young adults or groups of animals that started HFD feeding as adults and received FGF21 vectors.

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A)においてn=7~1
0動物/群。(B)においてn=4動物/群。(C)においてn=7~10動物/群。*
P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 固形飼料給餌Nul
l注射群。###P<0.001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。
Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n = 7 to 1 in (A)
0 animals/group. In (B) n=4 animals/group. In (C) n=7-10 animals/group. *
P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus chow fed Null
l injection group. ### P<0.001 vs HFD-fed Null-injected group. HFD, high fat diet;

図22. AAV8-hAAT-moFGF21媒介性の島過形成の回復。 Figure 22. Restoration of AAV8-hAAT-moFGF21-mediated islet hyperplasia.

A 若年成体としてHFD給餌を開始してFGF21ベクターを受けた動物群における空
腹時グルカゴンレベル。
A Fasting glucagon levels in a group of animals that started on HFD feeding as young adults and received the FGF21 vector.

B 成体としてHFD給餌を開始してFGF21ベクターを受けた動物群におけるβ細胞
量。
B, β-cell mass in a group of animals that began HFD feeding as adults and received the FGF21 vector.

C 成体として5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT-moFGF21を受け
た動物からの膵臓切片におけるインスリンに対する免疫染色の代表的イメージ。スケール
バー:400μm。挿入図スケールバー:100μm。
C Representative images of immunostaining for insulin in pancreatic sections from animals that received 5×10 10 vg/mouse of AAV8-hAAT-moFGF21 as adults. Scale bar: 400 μm. Inset scale bar: 100 μm.

D 若年成体(上段パネル)または成体(下段パネル)として5×1010vg/マウス
のAAV8-hAAT-moFGF21を受けた動物からの膵臓切片におけるインスリン
(濃い灰色)およびグルカゴン(薄い灰色)に対する二重免疫染色の代表的イメージ。ス
ケールバー:100μm。
D Duplicates for insulin (dark grey) and glucagon (light grey) in pancreatic sections from animals receiving 5×10 10 vg/mouse of AAV8-hAAT-moFGF21 as young adults (top panels) or adults (bottom panels). Representative images of immunostaining. Scale bar: 100 μm.

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A-C)においてn=7
~10動物/群。(D)においてn=4~5動物/群。*P<0.05、**P<0.0
1および***P<0.001 対 固形飼料給餌Null注射群。P<0.05、
P<0.01および###P<0.001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、
高脂肪食。
Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n = 7 in (AC)
~10 animals/group. In (D) n=4-5 animals/group. *P<0.05, **P<0.0
1 and ***P<0.001 vs chow-fed Null injection group. #P <0.05, #
#P <0.01 and ### P<0.001 versus HFD-fed Null injection group. HFDs,
high-fat diet.

図23. AAV8-hAAT-moFGF21での処置は耐糖能を改善する。 Figure 23. Treatment with AAV8-hAAT-moFGF21 improves glucose tolerance.

A 耐糖能は、若年成体としてHFD給餌を開始してFGF21ベクターを受けたマウス
群において、グルコースの腹腔内注射(2g/kg体重)後に試験した。
A Glucose tolerance was tested after intraperitoneal injection of glucose (2 g/kg body weight) in groups of mice that received FGF21 vector starting on HFD feeding as young adults.

B (A)中に示されるグルコース負荷試験の際の血清インスリンレベル。 B Serum insulin levels during the glucose tolerance test shown in (A).

データの情報:全てのデータは平均値±SEMで表現される。(A-D)においてn=7
~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対
固形飼料給餌Null注射群。P<0.05、##P<0.01および###P<0.
001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。
Data information: All data are expressed as mean±SEM. n = 7 in (AD)
~10 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 vs.
Chow-fed Null injection group. #P <0.05, ## P<0.01 and ### P<0.
001 vs. HFD-fed Null-injected group. HFD, high fat diet;

図24. AAV8-hAAT-moFGF21処置によるWAT肥大および炎症の回復
Figure 24. Reversal of WAT hypertrophy and inflammation by AAV8-hAAT-moFGF21 treatment.

A 若年成体(左パネル)または成体(右パネル)として固形飼料またはHFDを給餌し
てAAV8-hAAT-nullまたは5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT
-moFGF21ベクターのいずれかを投与した動物からのeWATのヘマトキシリン-
エオシン染色の代表的イメージ。HFD給餌null注射マウスの脂肪細胞はより大きか
ったが、HFD給餌FGF21処置動物の脂肪細胞はサイズが低減した。スケールバー:
100μm。
A AAV8-hAAT-null or 5×10 10 vg/mouse of AAV8-hAAT fed chow or HFD as young adults (left panel) or adults (right panel)
-Hematoxylin of eWAT from animals administered either of the moFGF21 vectors-
Representative images of eosin staining. Adipocytes in HFD-fed null-injected mice were larger, whereas adipocytes in HFD-fed FGF21-treated animals were reduced in size. Scale bar:
100 μm.

B 若年成体または成体として処置された動物におけるWAT脂肪細胞の面積の形態計測
分析。
B Morphometric analysis of WAT adipocyte area in young adults or animals treated as adults.

C、D アディポネクチン(C)およびレプチン(D)の循環レベル。 C, D Circulating levels of adiponectin (C) and leptin (D).

E 成体として5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT-moFGF21を受け
た動物からのeWAT切片におけるマクロファージ特異的マーカーMac2についての免
疫組織化学。顕微鏡写真は、HFD給餌null注射動物のeWATにおける王冠様構造
の存在を示すが(矢印および挿入図)、HFD給餌FGF21処置マウスのeWATには
ない。スケールバー:200μmおよび50μm(挿入図)。
E Immunohistochemistry for the macrophage-specific marker Mac2 in eWAT sections from animals receiving 5×10 10 vg/mouse AAV8-hAAT-moFGF21 as adults. Micrographs show the presence of crown-like structures in eWAT of HFD-fed, null-injected animals (arrows and insets), but not in eWAT of HFD-fed, FGF21-treated mice. Scale bar: 200 μm and 50 μm (inset).

F-H 成体としてHFD給餌を開始してFGF21ベクターを受けた動物群における炎
症マーカーF4/80(F)、IL1-β(G)およびTNF-α(H)のqRT-PC
Rによる発現定量。
FH qRT-PC of inflammatory markers F4/80 (F), IL1-β (G) and TNF-α (H) in a group of animals that started HFD feeding as adults and received FGF21 vector
Expression quantification by R.

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(B)においてn=4動物
/群。(F-H)においてn=7~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01お
よび***P<0.001 対 固形飼料給餌Null注射群。P<0.05、##
<0.01および###P<0.001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂
肪食。
Data information: All values are expressed as mean±SEM. In (B) n=4 animals/group. In (FH) n=7-10 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus chow-fed Null injection group. #P <0.05, ## P
<0.01 and ### P<0.001 versus HFD-fed Null-injected group. HFD, high fat diet;

図25. AAV8-hAAT-moFGF21処置動物における脂肪細胞のサイズおよ
び炎症。
Figure 25. Adipocyte size and inflammation in AAV8-hAAT-moFGF21 treated animals.

A 若年成体(上グラフ)または成体(下グラフ)として固形飼料またはHFD給餌を開
始してAAV8-hAAT-nullまたは5×1010vg/マウスのAAV8-hA
AT-moFGF21ベクターのいずれかを受けた動物群における脂肪細胞面積の頻度分
布。
A AAV8-hAAT-null or 5×10 10 vg/mouse of AAV8-hA starting on chow or HFD feeding as young adults (top graph) or adults (bottom graph)
Frequency distribution of adipocyte area in groups of animals that received either AT-moFGF21 vector.

B 若年成体として試験を開始した動物のeWATにおけるMac2免疫組織化学。HF
D給餌null注射マウスのeWATにおけるマクロファージ浸潤により形成された王冠
様構造が矢印により指し示される。スケールバー:200μmおよび50μm(挿入図)
B, Mac2 immunohistochemistry in eWAT of animals beginning the study as young adults. HF
Crown-like structures formed by macrophage infiltration in eWAT of D-fed null-injected mice are indicated by arrows. Scale bar: 200 μm and 50 μm (inset)
.

C-E (B)におけるものと同じ動物コホートにおける、炎症マーカーF4/80、C
D68およびTNF-αのqRT-PCRによる相対的発現量。
Inflammatory markers F4/80, C in the same animal cohort as in C-E (B)
Relative expression levels of D68 and TNF-α by qRT-PCR.

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A)においてn=4動物
/群。(C-E)においてn=7~10動物/群。***P<0.001 対 固形飼料
給餌Null注射群。###P<0.001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、
高脂肪食。
Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n=4 animals/group in (A). In (CE) n=7-10 animals/group. ***P<0.001 vs chow-fed Null-injected group. ### P<0.001 vs HFD-fed Null-injected group. HFDs,
high-fat diet.

図26. FGF21をコードするベクターでの処置は、脂肪肝および肝臓の炎症を回復
させる。
Figure 26. Treatment with vectors encoding FGF21 reverses fatty liver and liver inflammation.

A 固形飼料またはHFDを給餌してAAV8-hAAT-nullまたは5×1010
vg/マウスのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターのいずれかを投与した動物
から得られた肝臓切片のヘマトキシリン-エオシン染色の代表的イメージ。HFDは肝臓
中の脂肪滴蓄積を明らかに誘導し、これは若年成体および成体のいずれにおいてもAAV
8-hAAT-moFGF21処置により回復した。スケールバー:100μm。
A AAV8-hAAT-null or 5×10 10 cells fed chow or HFD
Representative images of hematoxylin-eosin staining of liver sections obtained from animals treated with either vg/mouse AAV8-hAAT-moFGF21 vectors. HFD clearly induced lipid droplet accumulation in the liver, which is consistent with AAV in both young adults and adults.
8-hAAT-moFGF21 treatment recovered. Scale bar: 100 μm.

B、C 同じ動物コホートにおける給餌時の肝臓トリグリセリドおよびコレステロール含
量。
B, C Liver triglyceride and cholesterol content at feeding in the same animal cohort.

D HFDを給餌してAAV8-hAAT-nullまたは5×1010vg/マウスの
AAV8-hAAT-moFGF21ベクターを受けた動物からの肝臓切片のマクロファ
ージ特異的マーカーMac-2についての免疫染色。矢印は王冠様構造の存在を指し示す
。スケールバー:200μmおよび50μm(挿入図)。
D Immunostaining for the macrophage-specific marker Mac-2 of liver sections from animals fed HFD and receiving AAV8-hAAT-null or 5×10 10 vg/mouse of AAV8-hAAT-moFGF21 vector. Arrows point to the presence of crown-like structures. Scale bar: 200 μm and 50 μm (inset).

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(B-C)においてn=7
~10動物/群。**P<0.01および***P<0.001 対 固形飼料給餌Nu
ll注射群。##P<0.01 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。
Data information: All values are expressed as mean±SEM. n = 7 in (BC)
~10 animals/group. **P<0.01 and ***P<0.001 versus chow-fed Nu
ll injection group. ## P<0.01 vs HFD-fed Null-injected group. HFD, high fat diet;

図27. AAV8-hAAT-moFGF21媒介性の肝線維症の好転。 Figure 27. AAV8-hAAT-moFGF21-mediated reversal of liver fibrosis.

5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT-nullまたはAAV8-hAAT
-moFGF21ベクターのいずれかを受けたHFD給餌動物におけるマッソントリクロ
ーム染色を通じた肝線維症の分析。AAV8-hAAT-moFGF21処置(右パネル
)は、nullベクターで処置された動物(左パネル)において容易に検出可能なコラー
ゲン線維(青色)の検出を著しく減少させた。スケールバー:50μm。図中のFGF2
1の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。
5×10 10 vg/mouse of AAV8-hAAT-null or AAV8-hAAT
- Analysis of liver fibrosis through Masson's trichrome staining in HFD-fed animals that received either moFGF21 vector. AAV8-hAAT-moFGF21 treatment (right panel) significantly reduced detection of readily detectable collagen fibers (blue) in null vector treated animals (left panel). Scale bar: 50 μm. FGF2 in the figure
The label of 1 refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

図28. AAV8-hAAT-moFGF21処置は肝線維症を改善する。 Figure 28. AAV8-hAAT-moFGF21 treatment ameliorates liver fibrosis.

A 5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT-nullまたはAAV8-hAA
T-moFGF21ベクターのいずれかを受けたHFD給餌動物におけるピクロシリウス
染色を通じた肝線維症の分析。AAV8-hAAT-moFGF21処置(右パネル)は
、nullベクターで処置された動物(左パネル)において容易に検出可能なコラーゲン
線維(黒色)の検出を著しく減少させた。スケールバー:50μm。
A 5×10 10 vg/mouse of AAV8-hAAT-null or AAV8-hAA
Analysis of liver fibrosis through Picrosirius staining in HFD-fed animals that received either T-moFGF21 vector. AAV8-hAAT-moFGF21 treatment (right panel) significantly reduced detection of readily detectable collagen fibers (black) in null vector treated animals (left panel). Scale bar: 50 μm.

B、C 若年成体(B)または成体(C)としてHFD給餌を開始してFGF21ベクタ
ーを受けた動物群における、肝臓中のコラーゲン1のqRT-PCRによる発現定量。
B, C Expression quantification by qRT-PCR of Collagen 1 in liver in groups of animals that received FGF21 vector starting on HFD feeding as young adults (B) or adults (C).

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(B-C)においてn=7
~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対
固形飼料給餌Null注射群。P<0.05および###P<0.001 対 HFD
給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。
Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n = 7 in (BC)
~10 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 vs.
Chow-fed Null injection group. #P <0.05 and ### P<0.001 versus HFD
Feed Null injection group. HFD, high fat diet;

図29. AAV8-hAAT-moFGF21処置動物において骨異常は認められなか
った。骨に対するFGF21遺伝子導入の長期的効果を、若年成体または成体として最も
高い用量(5×1010vg/マウス)のAAV8-hAAT-moFGF21ベクター
で処置されたHFD給餌マウスとnull注射の固形飼料またはHFD給餌動物との比較
により試験した。
Figure 29. No bone abnormalities were observed in AAV8-hAAT-moFGF21 treated animals. Long-term effects of FGF21 gene transfer on bone were evaluated in HFD-fed mice treated as young adults or with the highest dose (5×10 10 vg/mouse) of AAV8-hAAT-moFGF21 vector as adults versus chow or HFD null injections. Tested by comparison with fed animals.

A 鼻先から尾根部までの全長。 A Full length from nose tip to ridge.

B 脛骨長。 B tibia length.

C-O nullまたはFGF21をコードするAAVベクターのいずれかを投与したH
FD給餌マウスから屠殺時、すなわち動物が18月齢の時に得られた脛骨の骨端(C-J
)および骨幹(K-O)のマイクロコンピュータ断層撮影(μCT)分析。
H administered either C—O null or an AAV vector encoding FGF21
Epiphyses of tibiae (CJ
) and diaphysis (KO) microcomputed tomography (μCT) analysis.

P、Q ELISAにより測定された循環IGFBP1(P)およびIGF1(Q)のレ
ベル。
P, Q Levels of circulating IGFBP1 (P) and IGF1 (Q) measured by ELISA.

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全てのデータは平均値±SEMで表現される。(A、P-Q)においてn
=7~10動物/群。(B-O)においてn=4動物/群。**P<0.01および**
*P<0.001 対 固形飼料給餌Null注射群。HFD、高脂肪食;BMD、骨ミ
ネラル密度;BMC、骨ミネラル含量;BV、骨体積;BV/TV、骨体積/組織体積比
;BS/BV、骨表面/骨体積比;Tb.N、骨梁数;Tb.Th、骨梁幅;Tb.Sp
、骨梁間隔。
Data information: All data are expressed as mean±SEM. n in (A, PQ)
= 7-10 animals/group. n=4 animals/group in (BO). **P<0.01 and **
*P<0.001 vs chow-fed Null injection group. BMD, bone mineral density; BMC, bone mineral content; BV, bone volume; BV/TV, bone volume/tissue volume ratio; BS/BV, bone surface/bone volume ratio; N, trabecular bone number; Tb. Th, trabecular width; Tb. Sp
, trabecular spacing.

図30. AAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置されたC57Bl6マウ
スにおける血糖プロファイルの分析。血中グルコースレベルは給餌条件下で評価した。A
AV、5×1010vgまたは2×1011vgのAAV8-hAAT-moFGF21
(それぞれn=13および15)または2×1011vgのAAV8-nullベクター
(n=15)のIV投与。STZ、ストレプトゾトシンでの処置(5×50mg/kg)
。結果は平均値+SEMである。* p<0.05;*** p<0.001 vs A
AV8-hAAT-Null。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従って
moFGF21を指す。
Figure 30. Analysis of glycemic profiles in C57B16 mice treated with AAV8-hAAT-moFGF21 vector. Blood glucose levels were assessed under fed conditions. A.
AV, 5×10 10 vg or 2×10 11 vg of AAV8-hAAT-moFGF21
(n=13 and 15, respectively) or IV administration of 2×10 11 vg of AAV8-null vector (n=15). STZ, treatment with streptozotocin (5 x 50 mg/kg)
. Results are mean + SEM. *p<0.05;***p<0.001 vs A
AV8-hAAT-Null. Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

図31. 健常動物の骨格筋へのFGF21の遺伝子導入。 Figure 31. Gene transfer of FGF21 into skeletal muscle of healthy animals.

A 3×1011vg/マウスのAAV1-CMV-NullまたはAAV1-CMV-
moFGF21ベクターのいずれかを固形飼料食を給餌した健常動物の骨格筋に注射した
40週後に測定されたFGF21の循環レベル。
A 3×10 11 vg/mouse of AAV1-CMV-Null or AAV1-CMV-
Circulating levels of FGF21 measured 40 weeks after injection of either moFGF21 vector into skeletal muscle of healthy animals fed a chow diet.

B AAV1-CMV-NullまたはAAV1-CMV-moFGF21ベクターを筋
肉内注射した健常動物の筋肉および肝臓中ののAAVに由来するFGF21発現。
B AAV-derived FGF21 expression in muscle and liver of healthy animals injected intramuscularly with AAV1-CMV-Null or AAV1-CMV-moFGF21 vectors.

C 40週の追跡期間中の体重の進展。 C Evolution of body weight during the 40-week follow-up period.

D 異なる筋肉、脂肪パッドおよび肝臓の組織湿重量。 D Tissue wet weights of different muscles, fat pads and liver.

E、F 給餌状態での肝臓トリグリセリドおよびコレステロール含量。 E, F Liver triglyceride and cholesterol content in the fed state.

G 給餌時血清インスリンレベル。 G Feeding serum insulin levels.

H インスリン(0.75units/kg体重)の腹腔内注射を通じて査定され、開始
時血中グルコースのパーセンテージとして表されるインスリン感受性。
Insulin sensitivity assessed through intraperitoneal injection of H insulin (0.75 units/kg body weight) and expressed as a percentage of starting blood glucose.

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A-H)においてn=5
-7動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 N
ull注射群。
Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n = 5 in (AH)
-7 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus N
ull injection group.

図32. AAV1媒介性の骨格筋FGF21遺伝子導入はHFD誘発性肥満およびイン
スリン抵抗性に対抗する。
Figure 32. AAV1-mediated skeletal muscle FGF21 gene transfer counteracts HFD-induced obesity and insulin resistance.

A、B AAV1-CMV-moFGF21で処置された動物の体重(A)および体重増
加(B)の進展。C57Bl6マウスにHFDを約12週間給餌し、次いで3×1011
vg/マウスのAAV1-CMV-moFGF21ベクターを投与した。コントロールの
肥満マウスおよびコントロールの固形飼料給餌マウスは3×1011vgのAAV1-C
MV-nullを受けた。
A, B Evolution of body weight (A) and weight gain (B) in animals treated with AAV1-CMV-moFGF21. C57Bl6 mice were fed HFD for approximately 12 weeks and then 3 × 10 11
vg/mouse of AAV1-CMV-moFGF21 vector was administered. Control obese mice and control chow-fed mice received 3×10 11 vg of AAV1-C
Received MV-null.

C ベクター投与後異なる時点でのFGF21の循環レベル。 C Circulating levels of FGF21 at different time points after vector administration.

D、E (A、B)におけるものと同じ動物群における空腹時血中グルコース(D)およ
び給餌時血清インスリン(E)のレベル。
D,E Levels of fasting blood glucose (D) and fed serum insulin (E) in the same groups of animals as in (A,B).

F インスリン感受性を、インスリン(0.75units/kg体重)の腹腔内注射後
、全ての実験群において決定した。結果は、開始時血中グルコースレベルのパーセンテー
ジとして算出した。
F Insulin sensitivity was determined in all experimental groups after intraperitoneal injection of insulin (0.75 units/kg body weight). Results were calculated as a percentage of the starting blood glucose level.

図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。 Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure.

データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A-F)においてHFD
給餌マウス n=10動物/群;固形飼料給餌マウス n=5動物/群。***P<0.
001 対 HFD給餌null注射群。
Data Information: All values are expressed as mean±SEM. HFD in (AF)
Fed mice n=10 animals/group; chow-fed mice n=5 animals/group. ***P<0.
001 vs. HFD-fed null-injected group.

図33. ヒトFGF21をコードするヌクレオチド配列のコドン最適化によるFGF2
1循環レベルのインビボでの増加。野生型hFGF21またはコドン最適化されたヒトF
GF21配列の3つの異なるバリアントをコードするプラスミドをハイドロダイナミクス
投与したC57Bl6マウスにおけるhFGF21の循環レベル。結果は平均値±SEM
として表現される。n=9~10マウス/群。ND、検出されず。ネガティブコントロー
ル、未処置マウス。* p<0.05 vs 非処置マウス。
Figure 33. FGF2 by Codon Optimization of the Nucleotide Sequence Encoding Human FGF21
1 circulation level increase in vivo. wild-type hFGF21 or codon-optimized human F
Circulating levels of hFGF21 in C57B16 mice hydrodynamically administered plasmids encoding three different variants of the GF21 sequence. Results are mean ± SEM
is expressed as n=9-10 mice/group. ND, not detected. Negative control, untreated mice. *p<0.05 vs untreated mice.

図34. hAAT-moFGF21、CAG-moFGF21-doublemiRT
およびCMV-moFGF21発現カセットによるFGF21発現レベルのインビトロで
の増加。(A)EF1aプロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21コーディン
グ配列(EF1a-mFGF21)またはCMVプロモーターの制御下にあるコドン最適
化されたマウスFGF21コーディング配列(CMV-moFGF21)またはmiRT
122a配列の4個のタンデムリピートおよびmiRT1配列の4個のタンデムリピート
を伴った、CAGプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コー
ディング配列(CAG-moFGF21-doublemiRT)をコードするプラスミ
ドをトランスフェクトしたHEK293細胞におけるFGF21の発現レベル。(Bおよ
びC)(A)におけるものと同じ細胞における細胞内FGF21タンパク質含量(B)お
よび培養培地中のFGF21タンパク質レベル(C)。(D)EF1aプロモーターの制
御下にあるWTのマウスFGF21コーディング配列(EF1a-mFGF21)または
CMVプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配
列(CMV-moFGF21)をコードするプラスミドをトランスフェクトしたC2C1
2細胞におけるFGF21の発現レベル。(E)EF1aプロモーターの制御下にあるW
TのマウスFGF21コーディング配列(EF1a-mFGF21)またはhAATプロ
モーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21(hAAT-moFGF2
1)をコードするプラスミドをトランスフェクトしたHepG2細胞におけるFGF21
の発現レベル。qPCRは、wtおよびコドン最適化されたFGF21コーディング配列
の両方を検出するプライマーを使用して実施した。結果は平均値±SEMとして表現され
る。n=3ウェル/群。ND、検出されず。* p<0.05 vs コントロール。#
## p<0.001 vs EF1a-mFGF21。
Figure 34. hAAT-moFGF21, CAG-moFGF21-doublemiRT
and in vitro increase in FGF21 expression levels by the CMV-moFGF21 expression cassette. (A) WT mouse FGF21 coding sequence under control of EF1a promoter (EF1a-mFGF21) or codon-optimized mouse FGF21 coding sequence under control of CMV promoter (CMV-moFGF21) or miRT
A plasmid encoding a codon-optimized murine FGF21 coding sequence under the control of the CAG promoter (CAG-moFGF21-doublemiRT) with four tandem repeats of the 122a sequence and four tandem repeats of the miRT1 sequence was transfected. Expression level of FGF21 in transfected HEK293 cells. (B and C) Intracellular FGF21 protein content (B) and FGF21 protein levels in the culture medium (C) in the same cells as in (A). (D) Plasmids encoding WT mouse FGF21 coding sequence under control of EF1a promoter (EF1a-mFGF21) or codon-optimized mouse FGF21 coding sequence under control of CMV promoter (CMV-moFGF21) were transfected. C2C1
Expression level of FGF21 in 2 cells. (E) W under the control of the EF1a promoter
mouse FGF21 coding sequence of T (EF1a-mFGF21) or codon-optimized mouse FGF21 under the control of the hAAT promoter (hAAT-moFGF2
1) FGF21 in HepG2 cells transfected with a plasmid encoding
expression level. qPCR was performed using primers that detect both the wt and codon-optimized FGF21 coding sequences. Results are expressed as mean ± SEM. n=3 wells/group. ND, not detected. *p<0.05 vs control. #
## p<0.001 vs EF1a-mFGF21.

図35. hAAT-moFGF21およびCMV-moFGF21発現カセットによる
肝臓FGF21発現およびFGF21循環レベルのインビボでの増加。(A)伸長因子1
a(EF1a)プロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21コーディング配列(
EF1a-mFGF21)またはCMVプロモーターの制御下にあるコドン最適化された
マウスFGF21コーディング配列(CMV-moFGF21)またはhAATプロモー
ターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列(hAAT-
moFGF21)をコードするプラスミドをハイドロダイナミクス投与したC57Bl6
マウスの肝臓中のFGF21の発現レベル。qPCRは、wtおよびコドン最適化された
FGF21コーディング配列の両方を検出するプライマーを使用して実施した。(B)(
A)におけるものと同じコホートにおけるFGF21循環レベル。結果は平均値±SEM
として表現される。n=5マウス/群。** p<0.01 vs. EF1a-mFG
F21
図36. AAV8-hAAT-moFGF21による肝臓FGF21発現およびFGF
21循環レベルのインビボでの増加。(A)1×1010vg、2×1010vgまたは
5×1010vgの、伸長因子1a(EF1a)プロモーターの制御下にあるWTのマウ
スFGF21コーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-EF1a-m
FGF21)またはhAATプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFG
F21(AAV8-hAAT-moFGF21)を静脈内投与したC57Bl6マウスの
肝臓中のFGF21発現レベル。qPCRは、wtおよびコドン最適化されたFGF21
コーディング配列の両方を検出するプライマーを使用して実施した。(B)(A)におけ
るものと同じコホートにおけるFGF21循環レベル。分析はAAV後2週で実施した。
結果は平均値±SEMとして表現される。n=4~5マウス/群。コントロール、未処置
マウス。** p<0.01および*** p<0.001 vs. コントロール。#
# p<0.01および### p<0.001 vs. AAV8-EF1a-mFG
F21
図37. AAV8-CAG-moFGF21-dmiRTによる脂肪FGF21発現の
インビボでの増加。(A-B)2×1010vg、5×1010vgまたは1×1011
vgの、伸長因子1a(EF1a)プロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21
コーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-EF1a-mFGF21)
またはmiRT122a配列の4個のタンデムリピートおよびmiRT1配列の4個のタ
ンデムリピートを伴った、CAGプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウス
FGF21コーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-CAG-moF
GF21-doublemiRT)のいずれかをeWAT内投与したC57Bl6マウス
のeWAT(A)または肝臓(B)におけるFGF21の発現レベル。qPCRは、wt
およびコドン最適化されたFGF21コーディング配列の両方を検出するプライマーを使
用して実施した。分析はAAV後2週で実施した。結果は平均値±SEMとして表現され
る。n=4~5マウス/群。コントロール、未処置マウス。eWAT、精巣上体(epi
dydimal)白色脂肪組織。* p<0.05、** p<0.01、ならびに
図38. AAV1-CMV-moFGF21による骨格筋におけるFGF21発現のイ
ンビボでの増加。(A-B)5×1010vg、1×1011vgまたは3×1011
gの、伸長因子1a(EF1a)プロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21コ
ーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-EF1a-mFGF21)ま
たはCMVプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディン
グ配列をコードするAAV1ベクター(AAV1-CMV-FGF21)のいずれかを筋
肉内投与したC57Bl6マウスの四頭筋(A)または肝臓(B)におけるFGF21の
発現レベル。qPCRは、wtおよびコドン最適化されたFGF21コーディング配列の
両方を検出するプライマーを使用して実施した。分析はAAV後2週で実施した。結果は
平均値±SEMとして表現される。n=4~5マウス/群。コントロール、未処置マウス
。* p<0.05、** p<0.01および*** p<0.001 vs. コン
トロール。# p<0.05、## p<0.01および### p<0.001 vs
. AAV8-EF1a-mFGF21。
Figure 35. In vivo increase in hepatic FGF21 expression and circulating FGF21 levels by hAAT-moFGF21 and CMV-moFGF21 expression cassettes. (A) elongation factor 1
WT mouse FGF21 coding sequence under the control of the a(EF1a) promoter (
EF1a-mFGF21) or a codon-optimized mouse FGF21 coding sequence under the control of the CMV promoter (CMV-moFGF21) or a codon-optimized mouse FGF21 coding sequence under the control of the hAAT promoter (hAAT-
C57Bl6 hydrodynamically administered with a plasmid encoding moFGF21)
Expression levels of FGF21 in mouse liver. qPCR was performed using primers that detect both the wt and codon-optimized FGF21 coding sequences. (B) (
FGF21 circulating levels in the same cohort as in A). Results are mean ± SEM
is expressed as n=5 mice/group. **p<0.01 vs. EF1a-mFG
F21
Figure 36. Hepatic FGF21 expression and FGF by AAV8-hAAT-moFGF21
21 In vivo increase in circulation levels. ( A ) AAV8 vectors ( AAV8 -EF1a- m
FGF21) or codon-optimized mouse FG under the control of the hAAT promoter
FGF21 expression levels in the liver of C57Bl6 mice intravenously administered F21 (AAV8-hAAT-moFGF21). qPCR of wt and codon-optimized FGF21
It was performed using primers that detect both coding sequences. (B) FGF21 circulating levels in the same cohort as in (A). Analysis was performed 2 weeks after AAV.
Results are expressed as mean ± SEM. n=4-5 mice/group. Control, untreated mice. **p<0.01 and ***p<0.001 vs. Control. #
# p<0.01 and ### p<0.001 vs. AAV8-EF1a-mFG
F21
Figure 37. In vivo increase in adipose FGF21 expression by AAV8-CAG-moFGF21-dmiRT. (AB) 2×10 10 vg, 5×10 10 vg or 1×10 11
vg, WT mouse FGF21 under control of the elongation factor 1a (EF1a) promoter
AAV8 vector encoding coding sequence (AAV8-EF1a-mFGF21)
or an AAV8 vector encoding a codon-optimized murine FGF21 coding sequence under control of the CAG promoter with four tandem repeats of miRT122a sequence and four tandem repeats of miRT1 sequence (AAV8-CAG-moF
Expression levels of FGF21 in eWAT (A) or liver (B) of C57B16 mice intra-eWAT with either GF21-doublemiRT). qPCR is wt
and codon-optimized FGF21 coding sequences. Analysis was performed 2 weeks after AAV. Results are expressed as mean ± SEM. n=4-5 mice/group. Control, untreated mice. eWAT, epididymis (epi
dydimal) White adipose tissue. *p<0.05, **p<0.01, and FIG. In vivo increase of FGF21 expression in skeletal muscle by AAV1-CMV-moFGF21. (AB) 5×10 10 vg, 1×10 11 vg or 3×10 11 v
g, AAV8 vector (AAV8-EF1a-mFGF21) encoding WT mouse FGF21 coding sequence under control of elongation factor 1a (EF1a) promoter or codon-optimized mouse FGF21 coding sequence under control of CMV promoter Expression levels of FGF21 in quadriceps muscle (A) or liver (B) of C57B16 mice intramuscularly injected with either AAV1 vector encoding (AAV1-CMV-FGF21). qPCR was performed using primers that detect both the wt and codon-optimized FGF21 coding sequences. Analysis was performed 2 weeks after AAV. Results are expressed as mean ± SEM. n=4-5 mice/group. Control, untreated mice. *p<0.05, **p<0.01 and ***p<0.001 vs. Control. # p<0.05, ## p<0.01 and ### p<0.001 vs.
. AAV8-EF1a-mFGF21.

実施例の一般的手法
対象の特性
雄性C57Bl/6JマウスおよびB6.V-Lepob/OlaHsd(ob/ob
)マウスを用いた。マウスは標準食(2018S Teklad Global Die
ts(登録商標),Harlan Labs.,Inc.,Madison,WI,US
)または高脂肪食(TD.88137 Harlan Teklad Madison,
WI,US)を自由摂取させ、12時間の明暗サイクル(8:00 a.m.に点灯)お
よび安定な温度(22℃±2)の下で維持した。組織サンプリングのため、マウスを吸入
性麻酔薬イソフルラン(IsoFlo(登録商標),Abbott Laborator
ies,Abbott Park,IL,US)を使って麻酔して断頭した。目的の組織
を切除し、-80℃でまたはホルマリンを使用して分析まで保存した。全ての実験手法は
、Universitat Autonoma de BarcelonaのEthic
s Committee for Animal and Human Experim
entationにより承認されたものである。
General Procedures of the Examples Subject Characteristics Male C57B1/6J mice and B6. V-Lep ob /OlaHsd(ob/ob
) using mice. Mice were fed a standard diet (2018S Teklad Global Die
ts®, Harlan Labs. , Inc. , Madison, WI, US
) or high fat diet (TD.88137 Harlan Teklad Madison,
WI, US) were fed ad libitum and maintained under a 12 hour light-dark cycle (lights on at 8:00 am) and a stable temperature (22°C ± 2). For tissue sampling, mice were treated with the inhaled anesthetic Isoflurane (IsoFlo®, Abbott Laboratories).
ies, Abbott Park, Ill., US) and decapitated. Tissues of interest were excised and stored at −80° C. or using formalin until analysis. All experimental procedures were followed by the Ethic
s Committee for Animal and Human Experiments
It is approved by the entation.

組換えAAVベクター
血清型1、8または9の一本鎖AAVベクターは、HEK293細胞のトリプルトラン
スフェクションによって標準的な方法に従って作製した(Ayuso,E. et al
.,2010. Curr Gene Ther. 10(6):423-36)。細胞
を10個のローラーボトル(850cm、フラット;Corning(商標),Sig
ma-Aldrich Co.,Saint Louis,MO,US)中のDMEM
10%FBSの中で80%コンフルエンスまで培養し、AAV2 ITRに隣接した発現
カセットを保有するプラスミド、AAV2 rep遺伝子およびAAV血清型1、8また
は9のcap遺伝子を保有するヘルパープラスミド、ならびにアデノウイルスヘルパー機
能を保有するプラスミドをリン酸カルシウム法によってコトランスフェクトした。用いた
導入遺伝子は:1)発現カセットの3’非翻訳領域中にクローニングされたmiRT12
2a配列(5’CAAACACCATTGTCACACTCCA3’)(配列番号12)
の4個のタンデムリピートおよびmiRT1配列(5’TTACATACTTCTTTA
CATTCCA3’)(配列番号13)の4個のタンデムリピートが付加されたサイトメ
ガロウイルス(CMV)初期エンハンサー/ニワトリベータアクチン(CAG)プロモー
ター;2)CMVプロモーター;または3)ヒトα1-アンチトリプシンプロモーター(
hAAT)により駆動される、コドン最適化されたマウス、イヌもしくはヒトのFGF2
1またはwt FGF21をコードする配列であった。CAG、hAATまたはCMVプ
ロモーターを保有するノンコーディングのプラスミドを用いてnullベクターを作製し
た。AAVは、ポリエチレングリコール沈殿ステップおよび2回の連続したセシウムクロ
リド(CsCl)グラジエントに基づく最適化された方法を使用して精製した。この第二
世代のCsClに基づくプロトコールは、空のAAVカプシドならびにDNAおよびタン
パク質の不純物を劇的に低減させた(Ayuso,E.et al.,2010. Cu
rr Gene Ther. 10(6):423-36)。精製AAVベクターをPB
Sに対して透析し、ろ過し、-80℃で保存した。ウイルスゲノムの力価を、標準曲線と
して直線状プラスミドDNAを用いてAAV2参照標準物質について記載されたプロトコ
ールに従って、定量的PCRにより決定した(Lock M,et al.,Hum.G
ens Ther. 2010;21:1273-1285)。ベクターは、当該技術分
野で周知の分子生物学的技術に従って構築した。
Recombinant AAV Vectors Single-stranded AAV vectors of serotype 1, 8 or 9 were generated by triple transfection of HEK293 cells according to standard methods (Ayuso, E. et al.
. , 2010. Curr Gene Ther. 10(6) :423-36). Cells were placed in 10 roller bottles (850 cm 2 , flat; Corning™, Sig
Ma-Aldrich Co. , Saint Louis, MO, US).
Cultured to 80% confluence in 10% FBS, plasmids carrying expression cassettes flanked by AAV2 ITRs, helper plasmids carrying AAV2 rep genes and cap genes of AAV serotypes 1, 8 or 9, and adenovirus helpers Functional plasmids were co-transfected by the calcium phosphate method. The transgenes used were: 1) miRT12 cloned into the 3' untranslated region of the expression cassette
2a sequence (5'CAAACACCATTGTCACACTCCA3') (SEQ ID NO: 12)
4 tandem repeats of and the miRT1 sequence (5′TTACATACTTCTTTA
CATTCCA 3′) (SEQ ID NO: 13) appended with four tandem repeats of cytomegalovirus (CMV) early enhancer/chicken beta actin (CAG) promoter; 2) CMV promoter; or 3) human α1-antitrypsin promoter (
codon-optimized mouse, canine or human FGF2 driven by hAAT)
1 or wt FGF21. Null vectors were generated using non-coding plasmids carrying CAG, hAAT or CMV promoters. AAV was purified using an optimized method based on a polyethylene glycol precipitation step and two sequential cesium chloride (CsCl) gradients. This second-generation CsCl-based protocol dramatically reduced empty AAV capsids and DNA and protein impurities (Ayuso, E. et al., 2010. Cu
rr Gene Ther. 10(6) :423-36). PB the purified AAV vector
It was dialyzed against S, filtered and stored at -80°C. Viral genome titers were determined by quantitative PCR following the protocol described for AAV2 reference standards using linearized plasmid DNA as a standard curve (Lock M, et al., Hum.
ens Ther. 2010;21:1273-1285). The vector was constructed according to molecular biology techniques well known in the art.

AAVベクターのインビボeWAT内投与
ケタミン(100mg/kg)およびキシラジン(10mg/kg)の腹腔内注射を使
用してマウスを麻酔した。精巣上体白色脂肪組織を切除するために開腹を実施した。0.
001% Pluronic(登録商標) F68(Gibco)を含むPBS中にAA
Vベクターを再懸濁し、精巣上体脂肪パッドの中に直接注射した。各精巣上体脂肪パッド
に50μLのAAV溶液を2回注射した(1回の注射は睾丸の近くに、もう1回の注射は
脂肪パッドの中央に)。腹部を滅菌生理食塩水溶液ですすぎ、2層アプローチを使用して
閉じた。
In Vivo eWAT Administration of AAV Vectors Mice were anesthetized using an intraperitoneal injection of ketamine (100 mg/kg) and xylazine (10 mg/kg). A laparotomy was performed to remove the epididymal white adipose tissue. 0.
AA in PBS containing 001% Pluronic® F68 (Gibco)
The V vector was resuspended and injected directly into the epididymal fat pad. Two injections of 50 μL of AAV solution were made into each epididymal fat pad (one injection near the testicle and one injection in the middle of the fat pad). The abdomen was rinsed with sterile saline solution and closed using a two layer approach.

AAVベクターの全身投与
適量のAAV溶液を0.001% Pluronic(登録商標)を含む200μLの
PBS中で希釈し、送液の瞬間に圧をかけずに外側尾静脈の中に手技的に注射した。注射
の前に、動物を250W赤外線加熱ランプ(Philips NV,Amsterdam
,NL)下に数分間置いて血管を拡張させ、尾静脈を見やすくして容易にアクセスできる
ようにした。プラスチックの保定器(Harvard Apparatus,Holli
ston,MA,US)を用いて注射のために動物を固定した。適切な保定装置を利用し
たため、麻酔は用いなかった。30ゲージ針を使用して動物に注射した。
Systemic Administration of AAV Vectors An appropriate volume of AAV solution was diluted in 200 μL of PBS containing 0.001% Pluronic® and injected manually into the lateral tail vein without pressure at the moment of infusion. . Prior to injection, animals were placed in a 250W infrared heat lamp (Philips NV, Amsterdam).
, NL) for several minutes to dilate the vessels and make the tail vein more visible and easier to access. Plastic retainer (Harvard Apparatus, Holli
Ston, Mass., US) was used to immobilize the animals for injection. No anesthesia was used as appropriate retention devices were utilized. Animals were injected using a 30 gauge needle.

AAVベクターの筋肉内投与
ケタミン(100mg/kg)およびキシラジン(10mg/kg)の腹腔内注射を使
用してマウスを麻酔した。後肢の毛を剃り、総量180μlのベクターを各後肢の四頭筋
、腓腹筋および前脛骨筋(tibialis cranealis)中に配置した6ヶ所
の注射部位に分けて筋肉内注射により投与した。
Intramuscular Administration of AAV Vectors Mice were anesthetized using an intraperitoneal injection of ketamine (100 mg/kg) and xylazine (10 mg/kg). Hind limbs were shaved and a total volume of 180 μl of vector was administered by intramuscular injection divided into 6 injection sites placed in the quadriceps, gastrocnemius and tibialis cranealis muscles of each hind limb.

免疫組織化学的および形態計測分析
組織をホルマリン(Panreac Quimica)中で24時間固定し、パラフィ
ン中に包埋し、切片にした。組織試料をヘマトキシリン-エオシンで染色した。画像解析
ソフトウェア(analySIS 3.0;Soft Imaging System,
Center Valley,PA,EEUU)を使用して、1匹の動物あたり12枚の
、モニター付きビデオカメラに接続したNikon Eclipse E800顕微鏡(
Nikon,Tokyo,Japan)を使用して10×で取得したヘマトキシリン/エ
オシンWATイメージ中の脂肪細胞の面積を決定し、各脂肪細胞面積をμmで定量した
。平均脂肪細胞面積を各実験群について算出し、サイズ分類に応じた脂肪細胞の分布をヒ
ストグラムで表した。1群あたり4匹の動物を用いて、1匹の動物あたり少なくとも25
0個の脂肪細胞を解析した。
Immunohistochemical and Morphometric Analysis Tissues were fixed in formalin (Panreac Quimica) for 24 hours, embedded in paraffin and sectioned. Tissue samples were stained with hematoxylin-eosin. Image analysis software (analySIS 3.0; Soft Imaging System,
Center Valley, PA, EEUU) using a Nikon Eclipse E800 microscope (12 images per animal) connected to a video camera with monitor.
The area of adipocytes in hematoxylin/eosin WAT images acquired at 10× was determined using a Nikon, Tokyo, Japan), and the area of each adipocyte was quantified in μm 2 . The average adipocyte area was calculated for each experimental group and the distribution of adipocytes according to size classification was represented by histograms. At least 25 per animal with 4 animals per group
0 adipocytes were analyzed.

免疫組織化学
組織を10%ホルマリン中で12~24時間固定し、パラフィン中に包埋し、切片にし
た。切片をラット抗Mac2抗体(1:50;CL8942AP;Cedarlane)
、モルモット抗インスリン抗体(1:100;I-8510;Sigma-Aldric
h)またはウサギ抗グルカゴン抗体(1:100;219-01;Signet Lab
s)と共に4℃で一晩インキュベートした。ビオチン化ウサギ抗ラット抗体(1:300
;E0467;Dako)、ヤギ抗ウサギIgG抗体(Alexa Fluor 568
コンジュゲート)(1:200;A11011;ThermoFisher)、ヤギ抗モ
ルモットIgG抗体(Alexa Fluor 488コンジュゲート)(1:300;
A11073;ThermoFisher)またはペルオキシダーゼに結合したウサギ抗
モルモット抗体(1:300;P0141;Dako)を二次抗体として用いた。ABC
ペルオキシダーゼキット(Pierce)を免疫検出のために用いて、切片をマイヤーヘ
マトキシリン中で対比染色した。ヘキスト(B2261;Sigma-Aldrich)
を蛍光検体の核対比染色のために用いた。ピクロシリウスレッド染色およびマッソントリ
クローム染色を用いて線維症を評価した。膵臓におけるβ細胞面積のパーセンテージを、
200μm離れた2つのインスリン染色切片において、1つの切片中のインスリン+細胞
の面積をその切片の膵臓総面積で除算することによって分析した。β細胞量は、以前に記
載されているように、膵臓重量にβ細胞面積パーセンテージを乗算することにより算出し
た(Jimenez et al,2011)。
Immunohistochemistry Tissues were fixed in 10% formalin for 12-24 hours, embedded in paraffin and sectioned. Sections were treated with rat anti-Mac2 antibody (1:50; CL8942AP; Cedarlane)
, guinea pig anti-insulin antibody (1:100; I-8510; Sigma-Aldric
h) or rabbit anti-glucagon antibody (1:100; 219-01; Signet Lab
s) overnight at 4°C. biotinylated rabbit anti-rat antibody (1:300
E0467; Dako), goat anti-rabbit IgG antibody (Alexa Fluor 568
conjugate) (1:200; A11011; ThermoFisher), goat anti-guinea pig IgG antibody (Alexa Fluor 488 conjugate) (1:300;
A11073; ThermoFisher) or a rabbit anti-guinea pig antibody conjugated to peroxidase (1:300; P0141; Dako) was used as secondary antibody. ABC
Sections were counterstained in Mayer's hematoxylin using a peroxidase kit (Pierce) for immunodetection. Hoechst (B2261; Sigma-Aldrich)
was used for nuclear counterstaining of fluorescent specimens. Fibrosis was assessed using picrosirius red staining and Masson's trichrome staining. The percentage of β-cell area in the pancreas,
Two insulin-stained sections separated by 200 μm were analyzed by dividing the area of insulin+ cells in one section by the total pancreatic area of that section. β-cell mass was calculated by multiplying the pancreas weight by the β-cell area percentage as previously described (Jimenez et al, 2011).

RNA分析
脂肪貯蔵部または肝臓から、それぞれQIAzol Lysis Reagent(Q
iagen NV,Venlo,NL)またはTripure isolation r
eagent(Roche Diagnostics Corp.,Indianapo
lis,IN,US)、およびRNeasy Lipid Tissue Miniki
t(Qiagen NV,Venlo,NL)を用いることによって全RNAを得た。残
存ウイルスゲノムを除去するため、全RNAをDNAseI(Qiagen NV,Ve
nlo,NL)で処理した。RT-PCRのため、1μgのRNA試料をTranscr
iptor First Strand cDNA Synthesis Kit(04
379012001,Roche,California,USA)を用いて逆転写した
。リアルタイム定量的PCRは、SmartCyclerII(登録商標)(Cephe
id,Sunnyvale,USA)中で、EXPRESS SYBRGreen qP
CR supermix(Invitrogen(商標),Life Technolo
gies Corp.,Carslbad,CA,US)を用いて実施した。データをR
plp0値で正規化し、以前に記載されているように分析した(Pfaffl,M.,N
ucleic Acids Res. 2001;29(9):e45)。
RNA analysis QIAzol Lysis Reagent (Q
iagen NV, Venlo, NL) or Triple isolation r
reagent (Roche Diagnostics Corp., Indianapo)
lis, IN, US), and RNeasy Lipid Tissue Miniki
Total RNA was obtained by using t (Qiagen NV, Venlo, NL). To remove residual viral genome, total RNA was treated with DNAseI (Qiagen NV, Ve
nlo, NL). For RT-PCR, 1 μg of RNA sample was transcr
IPTOR First Strand cDNA Synthesis Kit (04
379012001, Roche, California, USA). Real-time quantitative PCR was performed using the SmartCycler II® (Cephe
id, Sunnyvale, USA) in EXPRESS SYBRGreen qP
CR supermix (Invitrogen™, Life Technolo
gies Corp. , Carslbad, Calif., US). data to R
Normalized by plp0 values and analyzed as previously described (Pfaffl, M., N
Ucleic Acids Res. 2001;29(9):e45).

ホルモンおよび代謝物のアッセイ
血中グルコースレベルは、Glucometer Elite(商標)アナライザー(
Bayer,Leverkusen,Germany)を使用して測定した。FGF21
の循環レベルは、定量的サンドイッチ酵素イムノアッセイMouse/Rat FGF-
21 ELISAキット(MF2100,R&Dsystems,Abingdon,U
K)により決定した。血清インスリン濃度は、Rat Insulin ELISAサン
ドイッチアッセイ(90010,Crystal Chem INC. Downers
Grove,IL 60515,USA)により決定した。組織から脂質を抽出するた
め、約100mgの凍結試料を秤量し、15mlのクロロホルム:メタノール(2:1)
中でホモジナイズした。次いで3mlのHSO 0.05%を加えることにより脂質
相および水相を分離し、それらを4℃で一晩そのままにした。相が分離したら、水性の上
相をパスツールピペットを用いて除去し、1mlの下方の脂質相をガラスチューブ中に取
り戻した。1mlのクロロホルムおよび1%溶液のTriton X-100をガラスチ
ューブに加え、これを浴の中で90℃でインキュベートすることでクロロホルムを蒸発さ
せた。クロロホルムとTriton X-100との混合物の使用により、あらゆる残存
水性粒子を脂質相から除去した。蒸発後、チューブの壁をクロロホルムで洗い流すことで
試料を濃縮し、これを再度90℃で温めることでクロロホルムを蒸発させた。沈降物が完
全に乾燥して濃縮されたら、37℃で500μlのH20 miliQを添加することに
よりこれを再懸濁した。最終的にトリグリセリドの量を市販品GPO-PAP(Roch
e Diagnostics,Basel,Switzerland)を用いて決定した
。血清トリグリセリドおよびコレステロールは、酵素アッセイキット(Horiba-A
BX,Montpellier,France)を用いて分光測定で定量した。全ての生
化学パラメーターは、Pentra 400 Analyzer(Horiba-ABX
)を用いて決定した。
Hormone and Metabolite Assays Blood glucose levels were measured using a Glucometer Elite™ Analyzer (
Bayer, Leverkusen, Germany). FGF21
circulating levels were determined by the quantitative sandwich enzyme immunoassay Mouse/Rat FGF-
21 ELISA kit (MF2100, R&D systems, Abingdon, U.S.A.
K). Serum insulin concentrations were determined using a Rat Insulin ELISA sandwich assay (90010, Crystal Chem INC. Downers
Grove, IL 60515, USA). To extract lipids from tissue, approximately 100 mg of frozen sample was weighed and added to 15 ml of chloroform:methanol (2:1).
homogenized inside. The lipid and aqueous phases were then separated by adding 3 ml of H 2 SO 4 0.05% and letting them stand at 4° C. overnight. Once the phases were separated, the upper aqueous phase was removed using a Pasteur pipette and 1 ml of the lower lipid phase was recovered in the glass tube. 1 ml of chloroform and a 1% solution of Triton X-100 was added to the glass tube, which was incubated at 90° C. in a bath to evaporate the chloroform. Any remaining aqueous particles were removed from the lipid phase by using a mixture of chloroform and Triton X-100. After evaporation, the sample was concentrated by flushing the walls of the tube with chloroform, which was again warmed to 90° C. to evaporate the chloroform. Once the sediment was completely dry and concentrated, it was resuspended by adding 500 μl H20 miliQ at 37°C. Finally, the amount of triglycerides was determined by the commercial product GPO-PAP (Roch
e Diagnostics, Basel, Switzerland). Serum triglycerides and cholesterol were measured using an enzymatic assay kit (Horiba-A
BX, Montpellier, France) was quantified spectrophotometrically. All biochemical parameters were analyzed with a Pentra 400 Analyzer (Horiba-ABX
) was determined using

血糖はGlucometer EliteTM(Bayer)を用いて決定した。グル
カゴンレベルはグルカゴンRadioimmunoassay(#GL-32K,EMD
Millipore)を用いて測定した。アディポネクチン、レプチン、IGFBP1
およびIGF1は、それぞれMouse Adiponectin ELISAキット(
80569,Crystal Chem)、Mouse Leptin ELISAキッ
ト(90030,Crystal Chem)、IGFBP1(Mouse)ELISA
キット(KA3054,Abnova)およびm/r IGF-I-ELISAキット(
E25,Mediagnost)を用いて決定した。
Blood glucose was determined using a Glucometer Elite™ (Bayer). Glucagon levels were measured by glucagon Radioimmunoassay (#GL-32K, EMD
Millipore). adiponectin, leptin, IGFBP1
and IGF1 were obtained from the Mouse Adiponectin ELISA kit (
80569, Crystal Chem), Mouse Leptin ELISA kit (90030, Crystal Chem), IGFBP1 (Mouse) ELISA
kit (KA3054, Abnova) and m/r IGF-I-ELISA kit (
E25, Mediagnost).

インスリン負荷試験
インスリン負荷試験のため、インスリン(0.75IU/kg体重;Humulin
Regular;Eli Lilly,Indianapolis,IN)を覚醒してい
る給餌マウスに腹腔内注射した。インスリン注射後の指し示された時点において尾静脈か
ら得られた血液試料中のグルコース濃度を決定した。
Insulin Tolerance Test For insulin tolerance test, insulin (0.75 IU/kg body weight; Humulin
Regular; Eli Lilly, Indianapolis, Ind.) was injected intraperitoneally into awake, fed mice. Glucose concentrations were determined in blood samples obtained from the tail vein at the indicated time points after insulin injection.

グルコース負荷試験
覚醒しているマウスを一晩(16時間)絶食させ、グルコース(2g/kg体重)を腹
腔内注射で投与した。指し示された時点において尾静脈血液試料中の血糖を測定した。同
時点で静脈血を尾静脈からチューブ(Microvette(登録商標) CB 300
,SARSTEDT)中に回収し、直ちに遠心分離することで血清を分離し、これを用い
てインスリンレベルを測定した。
Glucose Tolerance Test Awake mice were fasted overnight (16 hours) and administered glucose (2 g/kg body weight) by intraperitoneal injection. Blood glucose was measured in tail vein blood samples at the indicated time points. At the same time point, venous blood was collected via tail vein via tube (Microvette® CB 300).
, SARSTEDT) and immediately centrifuged to separate serum, which was used to measure insulin levels.

酸素測定
間接的開路熱量計(Oxylet,Panlab,Cornella,Spain)を
用いて、8個の代謝チャンバー内の酸素消費、二酸化炭素産生を同時にモニターした。マ
ウスを個別にし、代謝チャンバーに24時間順化させ、さらなる24時間、各ケージにお
いて15分毎に3分間データを収集した。データは明サイクルおよび暗サイクルから取得
し、体重で調整した。エネルギー消費を算出するため、製造業者により提供されたMet
abolismソフトウェアを用いた。
Oxygen Measurements An indirect open circuit calorimeter (Oxylet, Panlab, Cornella, Spain) was used to simultaneously monitor oxygen consumption and carbon dioxide production in eight metabolic chambers. Mice were individualized and acclimated to metabolic chambers for 24 hours, and data were collected for 3 minutes every 15 minutes in each cage for an additional 24 hours. Data were obtained from light and dark cycles and adjusted for body weight. Met provided by the manufacturer to calculate energy consumption
Abolism software was used.

HEK293、C2C12およびHepG2細胞のトランスフェクション
細胞を24ウェルプレート中で培養し、0.8μgのDNA/ウェルを、Lipofe
ctamine 2000を用いて製造業者の説明書に従ってトランスフェクトした(T
hermo Fisher Scientific)。
Transfection of HEK293, C2C12 and HepG2 Cells Cells were cultured in 24-well plates and 0.8 μg of DNA/well was
ctamine 2000 was used to transfect according to the manufacturer's instructions (T
Hermo Fisher Scientific).

骨分析
骨体積および構造をμCTにより評価した。マウス脛骨を中性緩衝ホルマリン(10%
)中で固定し、eXplore Locus CTスキャナー(General Ele
ctric)を27ミクロンの解像度で用いてスキャンした。4匹のマウス/群において
、1mm3の近位脛骨骨端および1.8mm3の皮質脛骨骨幹中の骨梁を分析した。骨パ
ラメーターはMicroView 3D Image Viewer & Analys
is Toolを使用して算出した。脛骨の長さは、顆間隆起(intercondil
ar eminence)から内果まで測定した。
Bone Analysis Bone volume and architecture were assessed by μCT. Mouse tibia was treated with neutral buffered formalin (10%
) and placed in an eXplore Locus CT scanner (General Ele
ctric) at a resolution of 27 microns. Trabeculae in 1 mm3 of proximal tibial epiphysis and 1.8 mm3 of cortical tibial diaphysis were analyzed in 4 mice/group. Bone parameters were analyzed using MicroView 3D Image Viewer & Analyzes
Calculated using is Tool. The length of the tibia is measured by the intercondylar eminence
measured from the ar eminence to the medial malleolus.

ウエスタンブロット分析
iWATおよびiBATをQIAzol Lysis Reagent(Qiagen
)中でホモジナイズし、タンパク質画分を製造業者の説明書に従って有機相から分離した
。タンパク質を12%SDS-PAGEによって分け、ウサギポリクローナル抗UCP1
抗体(ab10983;Abcam)およびウサギポリクローナル抗α-チューブリン抗
体(ab4074;Abcam)を使用したイムノブロット法によって分析した。検出は
ECL Plus検出試薬(Amersham Biosciences)を用いて実施
した。
Western Blot Analysis iWAT and iBAT were treated with QIAzol Lysis Reagent (Qiagen
) and the protein fraction was separated from the organic phase according to the manufacturer's instructions. Proteins were separated by 12% SDS-PAGE and analyzed by rabbit polyclonal anti-UCP1.
It was analyzed by immunoblotting using an antibody (ab10983; Abcam) and a rabbit polyclonal anti-α-tubulin antibody (ab4074; Abcam). Detection was performed using ECL Plus detection reagents (Amersham Biosciences).

オープンフィールド試験
オープンフィールド試験は、以前に報告されたように、9:00amから1:00pm
の間に実施した(Haurigot et al,2013)。簡潔には、動物を、水平
および垂直の運動を検出する2バンドルの光束が交差する明るく照らされたチャンバー(
41×41×30cm)(LE 8811;Panlab)の中央に置いた。運動活性お
よび探索行動を最初の6分の間に評価した。及んだ合計距離をビデオトラッキングシステ
ム(SMART Junior;Panlab)を用いて評価した。
Open Field Testing Open field testing was conducted from 9:00 am to 1:00 pm as previously reported.
(Haurigot et al, 2013). Briefly, animals were placed in a brightly lit chamber intersected by two bundles of light beams that detect horizontal and vertical movement (
41 x 41 x 30 cm) (LE 8811; Panlab). Motor activity and exploratory behavior were assessed during the first 6 minutes. Total distance covered was assessed using a video tracking system (SMART Junior; Panlab).

統計解析
全ての値は、平均値±SEMとして表現される。群間の差は、Studentのt検定
により比較された。差は、p<0.05で有意とみなされた。
Statistical Analysis All values are expressed as mean±SEM. Differences between groups were compared by Student's t-test. Differences were considered significant at p<0.05.

実施例
実施例1. C57Bl6マウスにおけるAAV-CAG-moFGF21-dmiRT
ベクターのeWAT内投与による肥満および糖尿病の予防
本発明者らは、8週齢の雄性C57Bl6において、FGF21を使用した脂肪組織の
AAV媒介性遺伝子工学が肥満および糖尿病を予防する治療的可能性を評価した。10
ウイルスゲノム(vg)の、miR122およびmiR1の標的部位を包含するCAG
ユビキタスプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディン
グ配列をコードするAAV9ベクター(AAV9-CAG-moFGF21-doubl
emiRT)(図1A)のeWAT内(eWAT:精巣上体白色脂肪組織)投与は、FG
F21の脂肪特異的過剰発現(図1B)を、同様に血流中へのタンパク質の高分泌(図1
C)を媒介した。AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT処置マウス
はまた、AAV9-CAG-nullベクター(同等の感染力を保持するが導入遺伝子を
何らコードしないベクター)と比較して、eWAT中でのFGF21受容体1(FGF2
1R1)(図1D)ならびに脂肪組織および肝臓中でのβ-Klotho(FGF21共
受容体)(図1E)の過剰発現を示した。CAG-moFGF21-doublemiR
Tコンストラクトは配列番号32中に含まれ、CAG-nullコンストラクトは配列番
号31中に含まれる。
Examples Example 1. AAV-CAG-moFGF21-dmiRT in C57Bl6 mice
Prevention of obesity and diabetes by intra-eWAT administration of vectors. bottom. 10 1
CAG encompassing miR122 and miR1 target sites of 2 viral genomes (vg)
An AAV9 vector encoding a codon-optimized mouse FGF21 coding sequence under the control of a ubiquitous promoter (AAV9-CAG-moFGF21-double
emiRT) (Fig. 1A) intra-eWAT (eWAT: epididymal white adipose tissue) administration
Adipose-specific overexpression of F21 (Fig. 1B) was similarly associated with high secretion of the protein into the blood stream (Fig. 1).
C) was mediated. AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT treated mice also showed lower levels of FGF21 receptor 1 (FGF2
1R1) (Fig. 1D) and overexpression of β-Klotho (FGF21 co-receptor) in adipose tissue and liver (Fig. 1E). CAG-moFGF21-double miR
The T construct is contained in SEQ ID NO:32 and the CAG-null construct is contained in SEQ ID NO:31.

eWATへのAAV媒介性のFGF21遺伝子導入の後、固形飼料食を給餌したマウス
は体重減少を示した(図1Fおよび1G)。高脂肪食(HFD)でチャレンジした場合、
脂肪組織中でFGF21を過剰発現した動物は実験期間中やせたままであったが、AAV
9-CAG-null処置マウスは進行的に肥満になった(図1Fおよび1G)。それら
のより低い体重に応じて、固形飼料給餌AAV9-CAG-moFGF21-doubl
emiRT処置マウスおよびHFD給餌AAV9-CAG-moFGF21-doubl
emiRT処置マウスはいずれも脂肪貯蔵部および肝臓の重量減少を示した(図1H)。
Following AAV-mediated FGF21 gene transfer into eWAT, chow-fed mice exhibited weight loss (FIGS. 1F and 1G). When challenged with a high-fat diet (HFD),
Animals that overexpressed FGF21 in adipose tissue remained lean for the duration of the experiment, whereas AAV
9-CAG-null treated mice became progressively obese (FIGS. 1F and 1G). In response to their lower body weight, chow-fed AAV9-CAG-moFGF21-double
emiRT-treated mice and HFD-fed AAV9-CAG-moFGF21-double
All emiRT-treated mice showed decreased fat depot and liver weight (Fig. 1H).

ヘマトキシリン-エオシン染色による白色脂肪組織の組織分析は、eWATおよびiW
AT(iWAT:鼠径部白色脂肪組織)中の白色脂肪細胞サイズの減少ならびにiWAT
中の複数の多房性脂肪細胞を明らかにし、このことはこの貯蔵部の褐変が起こったことを
示唆する(図2A)。形態計測分析は、AAV9-CAG-moFGF21-doubl
emiRT処置マウスにおける白色脂肪細胞の平均面積の減少をさらに確認した(図2B
)。白色脂肪細胞の面積の頻度分布はまた、群間で異なっていた。固形飼料給餌AAV9
-CAG-moFGF21-doublemiRT処置マウスおよびHFD給餌AAV9
-CAG-moFGF21-doublemiRT処置マウスは、小さい脂肪細胞数の増
加およびより少ない大きい脂肪細胞を提示した(図2C)。著しいことに、HFD給餌A
AV9-CAG-moFGF21-doublemiRT処置マウスにおける白色脂肪細
胞の面積の頻度分布は、固形飼料給餌AAV9-CAG-null処置動物のそれとほと
んど同一であった(図2C)。それゆえ、AAV9-CAG-null処置マウスにおい
て認められた脂肪細胞のHFD誘発性肥大は、FGF21を過剰発現したマウスにおいて
妨げられた。iWAT中でのUCP1およびDio2の過剰発現(図3Aおよび3B)は
、固形飼料給餌AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT処置マウスお
よびHFD給餌AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT処置マウスに
おけるiWATの褐変をさらに確認した。
Histological analysis of white adipose tissue by hematoxylin-eosin staining eWAT and iW
Reduction of White Adipocyte Size in AT (iWAT: Inguinal White Adipose Tissue) and iWAT
revealed multiple multilocular adipocytes within, suggesting that browning of this depot had occurred (Fig. 2A). Morphometric analysis showed AAV9-CAG-moFGF21-double
We further confirmed the reduction in the average area of white adipocytes in emiRT-treated mice (Fig. 2B
). The frequency distribution of white adipocyte area also differed between groups. Chow-fed AAV9
-CAG-moFGF21-doublemiRT treated mice and HFD-fed AAV9
-CAG-moFGF21-doublemiRT treated mice displayed an increase in the number of small adipocytes and fewer large adipocytes (Fig. 2C). Remarkably, HFD feeding A
The frequency distribution of white adipocyte area in AV9-CAG-moFGF21-doublemiRT-treated mice was almost identical to that of chow-fed AAV9-CAG-null-treated animals (Fig. 2C). Therefore, the HFD-induced hypertrophy of adipocytes observed in AAV9-CAG-null treated mice was prevented in mice overexpressing FGF21. Overexpression of UCP1 and Dio2 in iWAT (FIGS. 3A and 3B) further confirmed browning of iWAT in chow-fed AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT- and HFD-fed AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT-treated mice. .

iBAT(iBAT:肩甲骨間褐色脂肪組織)の組織分析は、この貯蔵部での脂質蓄積
が、AAV9-CAG-nullマウスと比較して、固形飼料給餌AAV9-CAG-m
oFGF21-doublemiRT処置マウスおよびHFD給餌AAV9-CAG-m
oFGF21-doublemiRT処置マウスにおいてより少ないことを示した(図2
A)。この結果およびiWATの褐変に応じて、明サイクルおよび暗サイクルの間のHF
D給餌AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT処置マウスのエネルギ
ー消費(図3C)は、HFD給餌AAV9-CAG-nullマウスのそれよりも高かっ
た。全体として、これらのデータは、AAV9-CAG-moFGF21-double
miRT処置マウスは熱産生活性が向上していたことを示唆する。
Histological analysis of iBAT (iBAT: interscapular brown adipose tissue) showed that lipid accumulation in this depot was significantly higher in chow-fed AAV9-CAG-m compared to AAV9-CAG-null mice.
oFGF21-doublemiRT-treated mice and HFD-fed AAV9-CAG-m
showed less in oFGF21-doublemiRT treated mice (Fig. 2).
A). Depending on this result and browning of iWAT, HF during light and dark cycles
The energy expenditure of D-fed AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT treated mice (Fig. 3C) was higher than that of HFD-fed AAV9-CAG-null mice. Overall, these data suggest that AAV9-CAG-moFGF21-double
Suggesting that miRT-treated mice had enhanced thermogenic activity.

肝臓組織切片は、固形飼料またはHFDのいずれの下でも、AAV9-CAG-nul
l処置マウスと比べてFGF21を過剰発現したマウスの肝細胞において脂質蓄積の減少
を示した(図2A)。したがって、HFD給餌AAV9-CAG-moFGF21-do
ublemiRT処置マウスでは、それらの肝臓トリグリセリド(TG)含量は正常化さ
れた(図3D)。並行して、TG、総コレステロール、HDL-コレステロールおよびL
DL-コレステロールの循環レベルはFGF21を過剰発現したHFD給餌マウスにおい
て正常化された(図3Eおよび3F)。
Liver tissue sections under either chow or HFD showed AAV9-CAG-nul
We showed reduced lipid accumulation in hepatocytes of mice that overexpressed FGF21 compared to l-treated mice (Fig. 2A). Therefore, HFD-fed AAV9-CAG-moFGF21-do
In ublemiRT-treated mice, their hepatic triglyceride (TG) content was normalized (Fig. 3D). In parallel, TG, total cholesterol, HDL-cholesterol and L
Circulating levels of DL-cholesterol were normalized in HFD-fed mice that overexpressed FGF21 (FIGS. 3E and 3F).

FGF21を過剰発現したHFD給餌マウスはHFD給餌AAV9-null処置マウ
スよりもインスリン感受性であり(図3G)、固形飼料給餌AAV9-CAG-moFG
F21-doublemiRT処置マウスおよびHFD給餌AAV9-CAG-moFG
F21-doublemiRT処置マウスはいずれも、それらのAAV9-CAG-nu
ll処置の相対物と比較してインスリン循環レベルの減少を示した(図3H)。
HFD-fed mice that overexpressed FGF21 were more insulin-sensitive than HFD-fed AAV9-null-treated mice (Fig. 3G), chow-fed AAV9-CAG-moFG
F21-doublemiRT-treated mice and HFD-fed AAV9-CAG-moFG
All F21-doublemiRT-treated mice showed their AAV9-CAG-nu
showed a decrease in circulating insulin levels compared to ll-treated counterparts (Fig. 3H).

実施例2. ob/obマウスにおけるAAV-CAG-moFGF21-dmiRTベ
クターのeWAT内投与による肥満の回復およびグルコース代謝の改善
本発明者らは、11週齢の雄性ob/obマウスにおいて、FGF21を使用した脂肪
組織のAAV媒介性遺伝子工学の抗糖尿病および抗肥満原性の治療的可能性を評価した。
このマウスはレプチンシグナル伝達を欠損しており、広く用いられる肥満および糖尿病の
遺伝モデルである。この目的を達成するため、用量応答性試験を実施した。ob/obマ
ウスに、4つの異なる用量(1010vg、5×1010vg、2×1011vgまたは
1012vg)のAAV8-CAG-moFGF21-doublemiRTベクター(
図1A)をeWAT中に局所投与した。コントロールとして、ob/ob動物に1012
vgのAAV8-CAG-nullベクターをeWAT内投与した。
Example 2. Intra-eWAT administration of AAV-CAG-moFGF21-dmiRT vector in ob/ob mice reverses obesity and improves glucose metabolism. The anti-diabetic and anti-obesogenic therapeutic potential of AAV-mediated genetic engineering was evaluated.
This mouse is deficient in leptin signaling and is a widely used genetic model of obesity and diabetes. To this end, a dose-response study was performed. ob/ob mice were injected with four different doses (10 10 vg, 5×10 10 vg, 2×10 11 vg or 10 12 vg) of the AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT vector (
FIG. 1A) was administered locally during eWAT. As a control, 10 12 in ob/ob animals
vg of AAV8-CAG-null vector was administered in eWAT.

AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRTベクターのeWAT内投与
は、白色脂肪組織におけるFGF21の特異的過剰発現を、同様に血流中へのタンパク質
の高分泌を用量依存的に媒介した(図4Aおよび4B)。具体的には、1012vgの用
量のAAV8-CAG-moFGF21-doublemiRTベクターは、eWATお
よびiWATにおけるFGF21の非常に強い過剰発現を媒介し(図4A)、最も高い循
環FGF21レベルを達成した(図4B)。対照的に、最も低い投与用量である1010
vgのAAV8-CAG-moFGF21-doublemiRTベクターは、eWAT
におけるFGF21の非常に中程度の過剰発現のみを生み出し(図4A)、この用量で処
置された動物は、AAV8-CAG-null処置動物と比較して血清FGF21レベル
に差を示さなかったが(図4B)、これはおそらくFGF21がパラクライン-オートク
ライン様式で作用したためであろう。したがって、AAV8-CAG-null処置動物
では進行的に体重が増加したが、AAV8-CAG-moFGF21-doublemi
RTベクターで処置された動物ではベクターの投与用量に比例した体重増加の減少を示し
た(図4Cおよび4D)。著しいことに、1012vgのAAV8-CAG-moFGF
21-doublemiRTベクターで処置された動物は、AAV投与後最初の2週間の
間に約15%の重量が減少し、その後は開始時体重に達するまで体重は増加した(図4C
および4D)。それゆえに、1012vgのAAV8-CAG-moFGF21-dou
blemiRTベクターをeWAT内投与した動物は、AAV8-CAG-null処置
動物と比較して、実験終了時に全体重で40%の差を示した(図4D)。一致して、10
12vgのAAV8-CAG-moFGF21-doublemiRTベクターで処置さ
れた動物は、脂肪症の著しい減少および肝臓重量の60%低減を示した(図4E)。iB
AT重量は、おそらく熱産生活性の向上のため、このマウスのコホートにおいて増加した
(図4E)。
Intra-eWAT administration of the AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT vector dose-dependently mediated specific overexpression of FGF21 in white adipose tissue, as well as high secretion of protein into the bloodstream (FIGS. 4A and 4B). . Specifically, AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT vector at a dose of 10 12 vg mediated very strong overexpression of FGF21 in eWAT and iWAT (Fig. 4A) and achieved the highest circulating FGF21 levels (Fig. 4A). 4B). In contrast, the lowest administered dose of 10 10
vg AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT vector is eWAT
(Fig. 4A), animals treated with this dose showed no difference in serum FGF21 levels compared to AAV8-CAG-null treated animals (Fig. 4A). 4B), probably because FGF21 acted in a paracrine-autocrine manner. Thus, AAV8-CAG-null treated animals progressively gained weight, whereas AAV8-CAG-moFGF21-doublemi
Animals treated with the RT vector showed a dose-proportional decrease in body weight gain (FIGS. 4C and 4D). Strikingly, 10 12 vg of AAV8-CAG-moFGF
Animals treated with the 21-doublemiRT vector lost approximately 15% of their weight during the first two weeks after AAV administration and then gained weight until reaching starting weights (Fig. 4C).
and 4D). Therefore, 10 12 vg of AAV8-CAG-moFGF21-dou
Animals receiving intra-eWAT administration of the blemiRT vector showed a 40% difference in total body weight at the end of the experiment compared to AAV8-CAG-null treated animals (Fig. 4D). in agreement, 10
Animals treated with 12 vg of AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT vector showed a marked reduction in steatosis and a 60% reduction in liver weight (Fig. 4E). iB
AT weight was increased in this cohort of mice, probably due to enhanced thermogenic activity (Fig. 4E).

5×1010vg、2×1011vgまたは1012vgのAAV8-CAG-moF
GF21-doublemiRTベクターで処置された動物は、AAV8-CAG-nu
ll処置マウスと比較してインスリン感受性の改善を提示した(図5A)。2×1011
vgまたは1012vgのAAV8-CAG-moFGF21-doublemiRTベ
クターで処置された動物はまた、AAV8-CAG-nullベクターで処置されたob
/obマウスよりも低いインスリン循環レベルを示した(図5B)。
5×10 10 vg, 2×10 11 vg or 10 12 vg of AAV8-CAG-moF
Animals treated with the GF21-doublemiRT vector showed AAV8-CAG-nu
exhibited improved insulin sensitivity compared to ll-treated mice (Fig. 5A). 2 x 10 11
vg or 10 12 vg of AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT vector-treated animals also showed ob
/ob mice exhibited lower circulating insulin levels (Fig. 5B).

実施例3. ob/obマウスにおけるAAV-hAAT-moFGF21ベクターの静
脈内投与による肥満の回復およびグルコース代謝の改善
本発明者らはまた、8週齢の雄性ob/obマウスにおいて、肝臓のAAV媒介性遺伝
子工学を使ったFGF21循環レベルの増加により仲介される抗糖尿病および抗肥満原性
効果を評価した。ob/obマウスに、1011vgまたは5×1011vgの肝臓特異
的ヒトα1-アンチトリプシン(hAAT)プロモーターの制御下にあるコドン最適化さ
れたマウスFGF21コーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-hA
AT-moFGF21)(図6A)を静脈内(IV)投与した。コントロールとして、o
b/ob動物に5×1011vgのAAV8-hAAT-nullベクターをIV投与し
た。hAAT-moFGF21コンストラクトは配列番号34中に含まれ、hAAT-n
ullコンストラクトは配列番号33中に含まれる。
Example 3. Intravenous administration of AAV-hAAT-moFGF21 vectors in ob/ob mice reverses obesity and improves glucose metabolism. Anti-diabetic and anti-obesogenic effects mediated by increased circulating levels of FGF21 used were evaluated. Ob/ob mice were transfected with AAV8 vectors ( AAV8- hA
AT-moFGF21) (Fig. 6A) was administered intravenously (IV). As a control, o
b/ob animals were administered 5×10 11 vg of AAV8-hAAT-null vector IV. The hAAT-moFGF21 construct is contained in SEQ ID NO: 34, hAAT-n
The ull construct is contained in SEQ ID NO:33.

AAV8-hAAT-moFGF21ベクターの静脈内投与は、肝臓におけるFGF2
1の特異的過剰発現を、同様に血流中へのタンパク質の高分泌を用量依存的に媒介した(
図6Bおよび6C)。具体的には、5×1011vgの用量のAAV8-hAAT-mo
FGF21ベクターは、肝臓におけるFGF21の非常に強い過剰発現を媒介し(図6B
)、最も高い循環FGF21レベルを達成した(図6C)。この用量のAAV8-hAA
T-moFGF21ベクターで処置された動物の体重は、AAV投与後最初の2週間の間
に約7%減少し、その後にわずかに増加したのに対し、AAV8-hAAT-null処
置マウスは進行的に重量を増した(図6D、6Eおよび6F)。1011vgのAAV8
-hAAT-moFGF21ベクターを投与したマウスは、AAV8-hAAT-nul
l処置動物よりも著しく少なくしか重量が増加しなかった(図6D、6Eおよび6F)。
具体的には、AAV8-hAAT-null動物は、1011vgのAAV8-hAAT
-moFGF21ベクターで処置された動物の10%の体重増加と比較して、実験終了時
に50%の体重増加を示した(図6E)。それらのより低い体重に応じて、肝臓中でFG
F21を過剰発現した動物は、とりわけ最も高い用量のベクターで処置された動物におい
て、脂肪症の有意な減少を示し、および約60%の肝臓重量の低減を示した(図6G)。
iBAT重量は両AAV8-hAAT-moFGF21処置マウス群において同様に増加
し(図6G)、これはおそらく、AAV8-hAAT-nullベクターを投与したマウ
スと比較した、これらの動物におけるより高い熱産生活性のためであろう。
Intravenous administration of AAV8-hAAT-moFGF21 vector increases FGF2
Specific overexpression of 1 also dose-dependently mediated high secretion of the protein into the bloodstream (
6B and 6C). Specifically, a dose of 5×10 11 vg of AAV8-hAAT-mo
The FGF21 vector mediated very strong overexpression of FGF21 in the liver (Fig. 6B
), which achieved the highest circulating FGF21 levels (Fig. 6C). AAV8-hAA at this dose
The body weight of animals treated with the T-moFGF21 vector decreased by approximately 7% during the first two weeks after AAV administration and increased slightly thereafter, whereas AAV8-hAAT-null treated mice progressively lost weight. Weight was increased (Figs. 6D, 6E and 6F). AAV8 at 10 11 vg
- Mice administered hAAT-moFGF21 vector are AAV8-hAAT-null
The l-treated animals gained significantly less weight (Figs. 6D, 6E and 6F).
Specifically, AAV8-hAAT-null animals were tested with 10 11 vg of AAV8-hAAT
-moFGF21 vector-treated animals showed a 50% weight gain at the end of the experiment compared to a 10% weight gain (Fig. 6E). FG in the liver in response to their lower body weight
Animals that overexpressed F21 showed a significant reduction in steatosis, especially in animals treated with the highest dose of vector, and showed a reduction in liver weight of approximately 60% (Fig. 6G).
iBAT weight increased similarly in both AAV8-hAAT-moFGF21-treated mouse groups (Fig. 6G), probably due to higher thermogenic activity in these animals compared to mice receiving the AAV8-hAAT-null vector. would be for

AAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置された動物は、AAV8-hAA
T-null処置マウスと比較してインスリン感受性の改善およびインスリン循環レベル
の減少を示した(図6Hおよび6I)。
Animals treated with the AAV8-hAAT-moFGF21 vector showed no AAV8-hAA
They showed improved insulin sensitivity and decreased circulating insulin levels compared to T-null treated mice (FIGS. 6H and 6I).

実施例4. HFD給餌マウスにおけるAAV-hAAT-moFGF21ベクターの静
脈内投与による肥満および糖尿病からの長期的回復
本発明者らはまた、肥満C57Bl6マウスにおいて、肝臓のAAV媒介性遺伝子工学
を使ったFGF21循環レベルの増加により仲介される抗糖尿病および抗肥満原性効果を
評価した。9週齢の雄性C57Bl6マウス(若年成体)にHFDを9週間給餌し、次い
で1010vgまたは5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21ベクター
をIV投与した(図6A)。AAV投与後、AAV8-hAAT-moFGF21処置マ
ウスをHFDで52週間維持した。コントロールとして、5×1010vgのAAV8-
hAAT-nullを固形飼料給餌C57Bl6マウスおよびHFD給餌C57Bl6マ
ウスにIV投与した。これらの後者2つのマウスコホートは、その後、固形飼料食または
HFDで維持した。
Example 4. Long-term recovery from obesity and diabetes by intravenous administration of AAV-hAAT-moFGF21 vectors in HFD-fed mice. antidiabetic and antiobesogenic effects mediated by Nine week old male C57B16 mice (young adults) were fed HFD for 9 weeks and then IV administered 10 10 vg or 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 vector (FIG. 6A). After AAV administration, AAV8-hAAT-moFGF21 treated mice were maintained on HFD for 52 weeks. As a control, 5×10 10 vg of AAV8-
hAAT-null was administered IV to chow-fed C57B16 and HFD-fed C57B16 mice. These latter two cohorts of mice were then maintained on a chow diet or HFD.

HFD給餌マウスにおけるAAV8-hAAT-moFGF21ベクターの静脈内投与
は、血流中へのFGF21の高分泌を用量依存的に媒介した(図7A)。
Intravenous administration of AAV8-hAAT-moFGF21 vector in HFD-fed mice dose-dependently mediated high secretion of FGF21 into the bloodstream (Fig. 7A).

HFD給餌AAV8-null処置マウスと1010vgのAAV8-hAAT-mo
FGF21ベクターを投与したHFD給餌動物との間に体重の差は認められなかった(図
7Bおよび7C)。しかしながら、5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF
21ベクターで処置されたHFD給餌動物は、AAV投与後、最初に体重が20%減少し
、次いで固形飼料給餌AAV8-hAAT-null処置マウスと同様に進行的に重量が
増加した(図7Bおよび7C)。著しいことに、AAV投与後9週以降、5×1010
gのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターを投与したHFD給餌動物と固形飼料
給餌AAV8-hAAT-null処置マウスとの間で全体重および体重増加に統計的有
意差は認められなかった(図7Bおよび7C)。
HFD-fed AAV8-null treated mice and 10 10 vg AAV8-hAAT-mo
No difference in body weight was observed between HFD-fed animals receiving FGF21 vectors (FIGS. 7B and 7C). However, 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF
HFD-fed animals treated with 21 vector initially lost 20% in body weight after AAV administration and then progressively gained weight similar to chow-fed AAV8-hAAT-null-treated mice (FIGS. 7B and 7C). ). Strikingly, after 9 weeks post AAV administration, 5×10 10 v
There were no statistically significant differences in overall body weight and body weight gain between HFD-fed animals administered 2.5 g of AAV8-hAAT-moFGF21 vector and chow-fed AAV8-hAAT-null treated mice (FIGS. 7B and 7C). .

5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置されたHFD
給餌マウスの明サイクルおよび暗サイクルの間のエネルギー消費は、固形飼料給餌AAV
8-hAAT-nullマウスおよびHFD給餌AAV8-hAAT-nullマウスの
それよりも高かった(図8A)。固形飼料給餌AAV8-hAAT-null処置動物お
よびHFD給餌AAV8-hAAT-null処置動物および1010vgのAAV8-
hAAT-moFGF21ベクターを投与したマウスの間でエネルギー消費に差は認めら
れなかった(図8A)。全体として、これらのデータは、5×1010vgのAAV8-
hAAT-moFGF21で処置されたマウスは熱産生活性が向上していたことを示唆す
る。
HFD treated with 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 vector
Energy expenditure during light and dark cycles in chow-fed AAV
8-hAAT-null and HFD-fed AAV8-hAAT-null mice (Fig. 8A). Chow-fed AAV8-hAAT-null-treated animals and HFD-fed AAV8-hAAT-null-treated animals and 10 10 vg of AAV8-
No difference in energy expenditure was observed between mice treated with the hAAT-moFGF21 vector (Fig. 8A). Overall, these data indicate that 5×10 10 vg of AAV8-
It suggests that mice treated with hAAT-moFGF21 had enhanced thermogenic activity.

1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置された動物は、A
AV8-hAAT-nullベクターを投与したHFD給餌マウスと比較してインスリン
感受性の改善を提示し、それらのインスリン感受性はAAV8-hAAT-nullベク
ターで処置された固形飼料給餌マウスのそれと同様であった(図8B)。著しいことに、
5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターを投与した動物は、A
AV8-hAAT-nullベクターを投与した固形飼料給餌マウスと比較してインスリ
ン感受性の改善を提示し、インスリン循環レベルの正常化を示した(図8Bおよび8C)
Animals treated with 10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 vector showed A
displayed improved insulin sensitivity compared to HFD-fed mice administered the AV8-hAAT-null vector, and their insulin sensitivity was similar to that of chow-fed mice treated with the AAV8-hAAT-null vector ( Figure 8B). Remarkably,
Animals receiving 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 vector showed A
Displayed improved insulin sensitivity compared to chow-fed mice administered AV8-hAAT-null vector, indicating normalization of circulating insulin levels (FIGS. 8B and 8C)
.

実施例5. 老齢HFD給餌マウスにおけるAAV-hAAT-moFGF21ベクター
の静脈内投与による肥満および糖尿病の回復
本発明者らはまた、肥満老齢(成体)C57Bl6マウスにおいてFGF21の抗糖尿
病および抗肥満原性効果を評価した。7.5月齢の雄性C57Bl6マウスにHFDを8
週間給餌し、次いで1010vg、2×1010vgまたは5×1010vgのAAV8
-hAAT-moFGF21ベクターをIV投与した(図6A)。AAV投与後、AAV
8-hAAT-moFGF21処置マウスをHFDで22週間維持した。コントロールと
して、5×1010vgのAAV8-hAAT-nullを固形飼料給餌老齢C57Bl
6マウスおよびHFD給餌老齢C57Bl6マウスにIV投与した。これらの後者2つの
マウスコホートは、その後、固形飼料食またはHFDで維持した。
Example 5. Obesity and diabetes reversal by intravenous administration of AAV-hAAT-moFGF21 vectors in aged HFD-fed mice We also evaluated the anti-diabetic and anti-obesogenic effects of FGF21 in obese aged (adult) C57B16 mice. 7.5 months old male C57B16 mice were given HFD
weekly feeding followed by 10 10 vg, 2 x 10 10 vg or 5 x 10 10 vg of AAV8
- hAAT-moFGF21 vector was administered IV (Fig. 6A). After AAV administration, AAV
8-hAAT-moFGF21 treated mice were maintained on HFD for 22 weeks. As a control, 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-null was administered to chow-fed aged C57Bl.
6 mice and HFD-fed aged C57B16 mice were administered IV. These latter two cohorts of mice were then maintained on a chow diet or HFD.

老齢HFD給餌マウスにおけるAAV8-hAAT-moFGF21ベクターの静脈内
投与は、血流中へのFGF21の高分泌を用量依存的に媒介した(図9A)。
Intravenous administration of AAV8-hAAT-moFGF21 vector in aged HFD-fed mice dose-dependently mediated high secretion of FGF21 into the bloodstream (Fig. 9A).

HFD給餌AAV8-null処置マウスと1010vgのAAV8-hAAT-mo
FGF21ベクターを投与したHFD給餌動物との間に体重の差は認められなかった(図
9Bおよび9C)。しかしながら、2×1010vgまたは5×1010vgのいずれか
のAAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置されたHFD給餌動物は、AAV
投与後、最初に体重がそれぞれ15%および20%減少した(図9Bおよび9C)。その
後、2×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置された動物
は固形飼料給餌AAV8-hAAT-null処置マウスと同様に進行的に重量が増加し
たが、5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置された動
物の体重に有意な変化は認められなかった(図9Bおよび9C)。著しいことに、AAV
投与後3週以降、5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターを投
与したHFD給餌動物と固形飼料給餌AAV8-hAAT-null処置マウスとの間で
全体重および体重増加に統計的有意差は認められなかった(図9Bおよび9C)。
HFD-fed AAV8-null treated mice and 10 10 vg AAV8-hAAT-mo
No difference in body weight was observed between HFD-fed animals receiving FGF21 vectors (FIGS. 9B and 9C). However, HFD-fed animals treated with either 2×10 10 vg or 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 vector showed no AAV
Body weight was initially reduced by 15% and 20%, respectively, after dosing (Figures 9B and 9C). Subsequently, animals treated with 2×10 10 vg AAV8-hAAT-moFGF21 vector progressively gained weight similar to chow-fed AAV8-hAAT-null treated mice, whereas 5×10 10 vg AAV8- No significant changes in body weight were observed in animals treated with the hAAT-moFGF21 vector (Figures 9B and 9C). Notably, AAV
After 3 weeks post-dosing, there was no statistically significant difference in total body weight and body weight gain between HFD-fed animals receiving 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 vector and chow-fed AAV8-hAAT-null-treated mice. was not observed (Figs. 9B and 9C).

5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置されたHFD
給餌マウスの明サイクルおよび暗サイクルの間のエネルギー消費は、固形飼料給餌AAV
8-hAAT-nullマウスおよびHFD給餌AAV8-hAAT-nullマウスの
それよりも高かった(図10A)。2×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF
21ベクターで処置された動物は、明サイクルの間のエネルギー消費の増加、および暗サ
イクルの間のエネルギー消費の増加傾向を示した(図10A)。1010vgのAAV8
-hAAT-moFGF21ベクターで処置された動物は、暗サイクルの間のエネルギー
消費の増加を示した(図10A)。固形飼料給餌AAV8-hAAT-null処置動物
およびHFD給餌AAV8-hAAT-null処置動物および1010vgのAAV8
-hAAT-moFGF21ベクターを投与したマウスの間で差は認められなかった(図
10A)。全体として、これらのデータは、AAV8-hAAT-moFGF21で処置
された老齢マウスは熱産生活性が向上していたことを示唆する。
HFD treated with 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 vector
Energy expenditure during light and dark cycles in chow-fed AAV
8-hAAT-null and HFD-fed AAV8-hAAT-null mice (FIG. 10A). 2×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF
Animals treated with the 21 vector showed increased energy expenditure during the light cycle and a trend towards increased energy expenditure during the dark cycle (Fig. 10A). 10 10 vg of AAV8
Animals treated with the -hAAT-moFGF21 vector showed increased energy expenditure during the dark cycle (Fig. 10A). Chow-fed AAV8-hAAT-null-treated animals and HFD-fed AAV8-hAAT-null-treated animals and 10 10 vg of AAV8
No differences were observed between mice treated with the -hAAT-moFGF21 vector (Fig. 10A). Altogether, these data suggest that aged mice treated with AAV8-hAAT-moFGF21 had enhanced thermogenic activity.

1010vgまたは2×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21ベクター
で処置された動物は、AAV8-hAAT-nullベクターを投与したHFD給餌マウ
スと比較してインスリン感受性の改善を提示し、それらのインスリン感受性はAAV8-
hAAT-nullベクターで処置された固形飼料給餌マウスのそれと同様であった(図
10B)。著しいことに、5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21ベク
ターを投与した動物は、AAV8-hAAT-nullベクターを投与した固形飼料給餌
マウスと比較してインスリン感受性の改善を提示した(図10A)。1010vg、2×
1010vgまたは5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターで
処置された動物は、HFD給餌AAV8-hAAT-null処置マウスよりも低い空腹
時および給餌時インスリン循環レベルを示した(図10C)。著しいことに、2×10
vgまたは5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターをIV投
与した老齢動物と固形飼料給餌AAV8-hAAT-null処置マウスとの間で給餌時
インスリン循環レベルに差は認められなかった(図10C)。
Animals treated with 10 10 vg or 2×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 vector displayed improved insulin sensitivity compared to HFD-fed mice receiving AAV8-hAAT-null vector and their insulin Susceptibility is AAV8-
It was similar to that of chow-fed mice treated with the hAAT-null vector (Fig. 10B). Remarkably, animals administered 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 vector displayed improved insulin sensitivity compared to chow-fed mice administered AAV8-hAAT-null vector (FIG. 10A). . 10 10 vg, 2x
Animals treated with 10 10 vg or 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 vector showed lower fasting and fed insulin circulating levels than HFD-fed AAV8-hAAT-null treated mice (FIG. 10C). . Remarkably, 2×10 1
There was no difference in circulating insulin levels at feeding between aged animals dosed IV with 0 vg or 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 vector and chow-fed AAV8-hAAT-null treated mice (Fig. 10C).

実施例6. C57Bl6マウスにおけるAAV-CMV-moFGF21ベクターの筋
肉内投与による体重減少の評価
本発明者らはまた、C57Bl6マウスにおいて、骨格筋のAAV媒介性遺伝子工学に
よりFGF21循環レベルを増加させる治療的可能性を評価した。骨格筋を標的とするた
め、CMVプロモーターおよびAAV1血清型を選択した。CMVプロモーターはユビキ
タスプロモーターであるが、AAV1カプシドを伴ったその使用は、以前に公開されてい
るように、肝臓に形質導入することなく非常に効率的に骨格筋を標的とすることを可能に
する(Mas et al.,Diabetes 2006;Callejas et
al.,Diabetes 2013)。
Example 6. Evaluation of Weight Loss by Intramuscular Administration of AAV-CMV-moFGF21 Vectors in C57Bl6 Mice We also evaluated the therapeutic potential of increasing circulating FGF21 levels by AAV-mediated genetic engineering of skeletal muscle in C57Bl6 mice. bottom. The CMV promoter and AAV1 serotype were chosen to target skeletal muscle. Although the CMV promoter is a ubiquitous promoter, its use with the AAV1 capsid allows very efficient targeting of skeletal muscle without transducing the liver, as previously published. (Mas et al., Diabetes 2006; Callejas et al.
al. , Diabetes 2013).

3×1011vgの用量の、ユビキタスCMVプロモーターの制御下にあるコドン最適
化されたマウスFGF21コーディング配列をコードするAAV1ベクター(AAV1-
CMV-moFGF21)(図11A)を、6から12週齢の雄性C57BL6マウスの
各後肢の四頭筋、腓腹筋および前脛骨筋(tibialis cranealis)に筋
肉内注射(5×1010vg/筋肉)により投与した。コントロールとして、齢を合わせ
たC57Bl6動物の同じ筋肉中に3×1011vgのAAV1-CMV-nullベク
ター(5×1010vg/筋肉)を筋肉内投与した。CMV-moFGF21コンストラ
クトは配列番号36中に含まれ、CMV-nullコンストラクトは配列番号35中に含
まれる。
A dose of 3×10 11 vg of an AAV1 vector encoding a codon-optimized murine FGF21 coding sequence under control of the ubiquitous CMV promoter (AAV1-
CMV-moFGF21) (FIG. 11A) was injected intramuscularly (5×10 10 vg/muscle) into the quadriceps, gastrocnemius and tibialis cranealis muscles of each hind limb of 6- to 12-week-old male C57BL6 mice. dosed. As a control, 3×10 11 vg of AAV1-CMV-null vector (5×10 10 vg/muscle) was administered intramuscularly into the same muscle of aged C57B16 animals. The CMV-moFGF21 construct is contained in SEQ ID NO:36 and the CMV-null construct is contained in SEQ ID NO:35.

AAV1-CMV-moFGF21ベクターの筋肉内投与は、血流中へのFGF21の
高分泌を媒介した(図11B)。AAV1-CMV-moFGF21ベクターで処置され
た動物は、AAV1-CMV-null処置マウスと比較して体重および体重増加の減少
を示した(図11Cおよび11D)。
Intramuscular administration of the AAV1-CMV-moFGF21 vector mediated high secretion of FGF21 into the blood stream (Fig. 11B). Animals treated with the AAV1-CMV-moFGF21 vector showed reduced body weight and weight gain compared to AAV1-CMV-null treated mice (FIGS. 11C and 11D).

実施例7. コドン最適化されたヒトFGF21ヌクレオチド配列によるタンパク質産生
の増加
コドン最適化がFGF21タンパク質産生の増加を媒介することができるかを評価する
ため、HEK293細胞に3つの異なるコドン最適化されたヒトFGF21ヌクレオチド
配列(配列番号:40~42)をコードするプラスミドをトランスフェクトした。コント
ロールとして、非トランスフェクト細胞および野生型hFGF21コーディング配列を形
質導入した細胞を用いた。3つのコドン最適化されたヒトFGF21配列およびWTのヒ
トFGF21配列の発現はhAATプロモーターの制御下にあった(配列番号47)。コ
ドン最適化されたヒトFGF21バージョン1または3を形質導入した細胞は、野生型ま
たはコドン最適化されたFGF21バリアント2と比較してより高レベルのヒトFGF2
1を培養培地中に分泌することができ(図12)、それゆえにバリアント1および3のコ
ドン最適化によるFGF21タンパク質産生の増加を実証する。
Example 7. Increased Protein Production with Codon-Optimized Human FGF21 Nucleotide Sequences Three different codon-optimized human FGF21 nucleotide sequences were placed in HEK293 cells to assess whether codon optimization can mediate increased FGF21 protein production. (SEQ ID NOS: 40-42) were transfected. As controls, non-transfected cells and cells transduced with the wild-type hFGF21 coding sequence were used. Expression of the three codon-optimized human FGF21 sequences and the WT human FGF21 sequence was under the control of the hAAT promoter (SEQ ID NO:47). Cells transduced with codon-optimized human FGF21 version 1 or 3 showed higher levels of human FGF2 compared to wild-type or codon-optimized FGF21 variant 2.
1 was able to be secreted into the culture medium (Fig. 12), thus demonstrating increased FGF21 protein production by codon optimization of variants 1 and 3.

実施例8. ヒトFGF21をコードするAAVベクターの投与によるマウスにおける肥
満および糖尿病の回復(FGF21の活性を証明するインビボ実験)
HFD給餌マウスをヒトFGF21をコードするAAVベクターで処置する。コントロ
ールとして、同じ用量のAAV-nullベクターを固形飼料給餌マウスおよびHFD給
餌マウスに投与する。
Example 8. Resilience of Obesity and Diabetes in Mice by Administration of AAV Vectors Encoding Human FGF21 (In Vivo Experiments Demonstrating the Activity of FGF21)
HFD-fed mice are treated with an AAV vector encoding human FGF21. As a control, the same dose of AAV-null vector is administered to chow-fed and HFD-fed mice.

WATの褐変およびBATの熱産生活性を誘導する、エネルギー消費を増加させる、な
らびにグルコースおよびエネルギー代謝を改善するヒトFGF21の能力を評価するため
、次の試験を実施する:
- 体重ならびに飼料および液体摂取量の週毎の測定
- 体温の測定
- 間接的熱量測定によるエネルギー消費および呼吸商の測定
- 血糖の測定
- 腹腔内グルコース負荷試験による全身グルコース処理の評価
- 腹腔内インスリン負荷試験によるインスリン感受性の評価
- 以下を包含する、組織および血清試料における分析
- 標的組織および血流中へのヒトFGF21過剰発現レベルの検査
- 形態学的および組織分析。
To assess the ability of human FGF21 to induce browning of WAT and thermogenic activity of BAT, increase energy expenditure, and improve glucose and energy metabolism, the following studies are conducted:
- weekly measurement of body weight and food and fluid intake - measurement of body temperature - measurement of energy expenditure and respiratory quotient by indirect calorimetry - measurement of blood glucose - assessment of whole body glucose disposal by intraperitoneal glucose tolerance test - intraperitoneal insulin Assessment of insulin sensitivity by challenge testing - analysis in tissue and serum samples, including - examination of human FGF21 overexpression levels in target tissues and bloodstream - morphological and histological analysis.

- ホルモンおよびサイトカインの循環レベルの決定
- 血清代謝パラメーター、例えば遊離脂肪酸、グリセロール、トリグリセリド、コレ
ステロールおよびケトン体などの決定
- 免疫組織化学による鼠径部脂肪パッド中のベージュ脂肪細胞の存在の検査ならびに
古典的な白色、褐色およびベージュ脂肪細胞のマーカーの遺伝子発現によった、褐変能力
の評価
実施例9:FGF21活性を査定するためのインビトロアッセイ
FGF21は、3T3-L1細胞におけるグルコース取り込みおよびGLUT1発現を
増加させることが予想される(Kharitonenkov,A.et al.,200
5. J.Clin.Invest 115:1627-1635)。
- determination of circulating levels of hormones and cytokines - determination of serum metabolic parameters such as free fatty acids, glycerol, triglycerides, cholesterol and ketone bodies - examination of the presence of beige adipocytes in the inguinal fat pad by immunohistochemistry and classical Evaluation of browning capacity by gene expression of markers of white, brown and beige adipocytes Example 9: In vitro assays to assess FGF21 activity FGF21 increases glucose uptake and GLUT1 expression in 3T3-L1 cells (Kharitonenkov, A. et al., 200
5. J. Clin. Invest 115 :1627-1635).

実施例10. ob/obマウスにおけるAAV8-CAG-moFGF21-dmiR
TベクターのeWAT内投与による肥満の回復およびグルコース代謝の改善:さらなる知

本発明者らはさらに、ob/obマウスにおいて、FGF21を使用した脂肪組織のA
AV媒介性遺伝子工学の抗糖尿病および抗肥満原性の治療的可能性を評価した(実施例2
を参照されたい)。
Example 10. AAV8-CAG-moFGF21-dmiR in ob/ob mice
Intra-eWAT administration of T vectors reverses obesity and improves glucose metabolism: further findings.
The anti-diabetic and anti-obesogenic therapeutic potential of AV-mediated genetic engineering was evaluated (Example 2
(see ).

AAV8-CAG-moFGF21-dmirTベクターのeWAT内注射を受けたo
b/obマウスは、精巣上体パッドの白色脂肪細胞サイズの低減を示した(図13A)。
循環アディポネクチンレベルも用量と共に増加した(図14A)。Mac2染色を通じて
評価されるeWATの炎症もベクターの用量の関数として低減し、マクロファージマーカ
ーF4/80の発現も低減した(図14BおよびC)。
received intra-eWAT injection of AAV8-CAG-moFGF21-dmirT vector o
b/ob mice showed reduced white adipocyte size in the epididymal pad (Fig. 13A).
Circulating adiponectin levels also increased with dose (Fig. 14A). eWAT inflammation, assessed through Mac2 staining, was also reduced as a function of vector dose, as was the expression of the macrophage marker F4/80 (FIGS. 14B and C).

nullベクターまたは最も低い用量のAAV8-CAG-moFGF21-dmir
Tを注射したob/obマウスの肝臓は、肝細胞における脂肪滴の蓄積を示した(図13
B)。5×1010vg/マウスまたはこれより高い用量のFGF21をコードするベク
ターの投与は、脂肪肝の発症を完全に予防し(図13B)、これは器官の重量(図14D
)ならびにその総トリグリセリドおよびコレステロール含量(図14EおよびF)と相関
した。5×1010vg/マウスの用量が治療的効力の閾値を表すというさらなる証拠が
、血糖および血中インスリンの分析から出た。1×1010vg/マウスの用量は給餌状
態で血中グルコースレベルを改変せず、インスリンレベルを部分的に低減させただけだが
、5×1010vg/マウス以上の用量は血糖および血中インスリンを完全に正常化した
(図13CおよびD)。全体として、この例は、脂肪組織においてFGF21を過剰発現
させることの治療的可能性を確認する。
null vector or lowest dose of AAV8-CAG-moFGF21-dmir
Livers of ob/ob mice injected with T showed accumulation of lipid droplets in hepatocytes (Fig. 13).
B). Administration of 5×10 10 vg/mouse or higher doses of FGF21-encoding vectors completely prevented the development of fatty liver (FIG. 13B), which significantly reduced organ weight (FIG. 14D).
) and its total triglyceride and cholesterol content (FIGS. 14E and F). Further evidence that a dose of 5×10 10 vg/mouse represents a threshold for therapeutic efficacy came from analyzes of blood glucose and blood insulin. A dose of 1×10 10 vg/mouse did not alter blood glucose levels in the fed state and only partially reduced insulin levels, whereas doses of 5×10 10 vg/mouse and higher reduced blood glucose and blood insulin levels. completely normalized (FIGS. 13C and D). Overall, this example confirms the therapeutic potential of overexpressing FGF21 in adipose tissue.

実施例11. ob/obマウスにおけるAAV8-hAAT-moFGF21ベクター
の静脈内投与による肥満の回復およびグルコース代謝の改善:さらなる知見
本発明者らはさらに、ob/obマウスにおいて、AAV8-hAAT-moFGF2
1ベクターの静脈内投与の抗糖尿病および抗肥満原性の治療的可能性を評価した(実施例
3を参照されたい)。
Example 11. Intravenous administration of AAV8-hAAT-moFGF21 vectors in ob/ob mice reverses obesity and improves glucose metabolism: further findings
The anti-diabetic and anti-obesogenic therapeutic potential of intravenous administration of 1 vector was evaluated (see Example 3).

それらのより低い体重と一致して、肝臓中でFGF21を過剰発現したob/ob動物
、とりわけ5×1011vgで処置された動物は、白色脂肪細胞の有意なサイズ減少を示
した(図15A)。これは、eWATにおけるMac2染色の減少ならびにF4/80お
よびTNF-αの発現により証明されるように(図16A-C)、循環アディポネクチン
レベルの用量依存的増加(図15B)およびWAT炎症の減少とパラレルであった。著し
いことに、5×1011vgで処置されたob/obマウスは、eWAT中の「王冠様」
構造の著しい低減を示した(図16A)。
Consistent with their lower body weight, ob/ob animals that overexpressed FGF21 in the liver, especially those treated with 5×10 11 vg, showed a significant reduction in the size of white adipocytes (FIG. 15A). ). This was evidenced by a decrease in Mac2 staining and expression of F4/80 and TNF-α in eWAT (FIGS. 16A-C), a dose-dependent increase in circulating adiponectin levels (FIG. 15B) and a decrease in WAT inflammation and was parallel. Strikingly, ob/ob mice treated with 5×10 11 vg exhibited a “crown-like”
It showed a significant reduction in structure (Fig. 16A).

7月齢のob/obマウスは著しい脂肪肝を示したが、FGF21処置ob/obマウ
スの肝臓は肝細胞における脂質の蓄積を示さなかった(図15C)。これは、治療的ベク
ターを受けたob/obマウスにおける器官重量の60%低減(図16DおよびE)と、
同様に総肝臓トリグリセリドおよびコレステロール含量の著しい低減(図16FおよびG
)と一致した。両方の用量のAAV8-hAAT-moFGF21で処置されたob/o
b動物は給餌時血糖の減少も示し、給餌状態でのそれらの血中インスリンは約70%低減
した(図15DおよびE)。
7-month-old ob/ob mice showed marked hepatic steatosis, whereas the livers of FGF21-treated ob/ob mice showed no lipid accumulation in hepatocytes (FIG. 15C). This was associated with a 60% reduction in organ weights in ob/ob mice that received therapeutic vectors (FIGS. 16D and E),
Similarly a significant reduction in total liver triglyceride and cholesterol content (Fig. 16F and G
). ob/o treated with both doses of AAV8-hAAT-moFGF21
b Animals also showed reduced fed blood glucose, and their blood insulin in the fed state was reduced by approximately 70% (FIGS. 15D and E).

本発明者らは、AAV8-hAAT-moFGF21処置後のob/obマウスにおい
て認められる循環グルコースレベルの減少が肝糖新生の抑制に起因するものであるかをホ
スホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)およびグルコース-6-ホス
ファターゼ(G6Pase)の発現をqPCRにより測定することによって評価した。P
EPCK発現の増加を示した1×1011vgのAAV8-hAAT-moFGF21で
処置された動物を除いて、AAV8-hAAT-moFGF21処置ob/obマウスの
肝臓において、これらの酵素の発現変化は認められなかった(図17AおよびB)。これ
らの結果は、肝臓におけるAAV媒介性の長期的なFGF21の発現、およびその後の循
環FGF21の増加は、肝グルコース産生を阻害することによってグルコースを低下させ
なかったことを示唆する。
We investigated whether the decrease in circulating glucose levels observed in ob/ob mice after AAV8-hAAT-moFGF21 treatment was due to suppression of hepatic gluconeogenesis by phosphoenolpyruvate carboxykinase (PEPCK) and Glucose-6-phosphatase (G6Pase) expression was assessed by measuring it by qPCR. P.
Altered expression of these enzymes was observed in livers of AAV8-hAAT-moFGF21-treated ob/ob mice, except for animals treated with 1×10 11 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 that showed increased EPCK expression. no (FIGS. 17A and B). These results suggest that AAV-mediated long-term FGF21 expression in the liver and subsequent increase in circulating FGF21 did not lower glucose by inhibiting hepatic glucose production.

FGF21のグルコース低下効果はまた、脂肪細胞によるグルコース取り込みの増加お
よびエネルギー消費の亢進に帰するものである(Xu J. et al.,2009.
AJP Endocrinol.Metab. 297:E1105-E1114;D
ing X. et al.,2012. Cell Metab. 16:387-3
93;Camacho R.C. et al.,2013. Eur.J.Pharm
acol. 715:41-45;Emanuelli B. et al.,2014
. Clin.Invest. 124:515-527;Kharitonenkov
A. et al.,2005. Endocrinology 148:774-7
81;Hondares E. et al.,2010. Cell Metab.
11:206-212;Samms R.J. et al.,2015. Cell
Rep. 11:991-999)。それゆえに、本発明者らは、異なるパッドの脂肪組
織(iWAT、eWATおよびiBAT)において、グルコース取り込み機構の重要な構
成成分、例えばグルコーストランスポーターGlut1およびGlut4、グルコースリ
ン酸化酵素ヘキソキナーゼIおよびII(HKIおよびHKI)、ならびにiBATの場
合はUCP1などの発現をqPCRによって査定した。AAV8-FGF21処置ob/
obマウスにおいて、Glut1の発現はiWATおよびiBAT中で増加し(図17C
)、Glut4の発現はeWAT、iWATおよびiBAT中で増加した(図17D)。
HKIおよびHKIIは、iBAT中でのみアップレギュレートされた(図17Eおよび
F)。そのうえ、UCP1発現は、高用量のAAV8-hAAT-moFGF21ベクタ
ーで処置されたob/obマウスのiBAT中で増加した(図17G)。全体として、こ
れらの結果は、AAV8-hAAT-moFGF21ベクターでの処置後にob/obマ
ウスにおいて認められた血糖の長期的好転が、おそらく白色および褐色脂肪細胞によるグ
ルコース取り込みの増加ならびにiBATにおける熱産生の亢進に起因するものであるこ
とを示唆する。
The glucose-lowering effect of FGF21 has also been attributed to increased glucose uptake and enhanced energy expenditure by adipocytes (Xu J. et al., 2009.
AJP Endocrinol. Metab. 297 : E1105-E1114;
ingX. et al. , 2012. Cell Metab. 16 :387-3
93; Camacho R.; C. et al. , 2013. Eur. J. Pharm
acol. 715 :41-45; Emanuelli B.; et al. , 2014
. Clin. Invest. 124 :515-527;
A. et al. , 2005. Endocrinology 148 :774-7
81; Hondares E.; et al. , 2010. Cell Metab.
11 :206-212; Samms R.; J. et al. , 2015. cell
Rep. 11 :991-999). Therefore, we have identified key components of the glucose uptake machinery, such as the glucose transporters Glut1 and Glut4, the glucose kinase hexokinase I and II (HKI), in different pad adipose tissues (iWAT, eWAT and iBAT). and HKI), and in the case of iBAT, UCP1, were assessed by qPCR. AAV8-FGF21 treated ob/
In ob mice, Glut1 expression was increased in iWAT and iBAT (Fig. 17C
), Glut4 expression was increased in eWAT, iWAT and iBAT (Fig. 17D).
HKI and HKII were upregulated only in iBAT (FIGS. 17E and F). Moreover, UCP1 expression was increased in iBAT of ob/ob mice treated with high dose AAV8-hAAT-moFGF21 vector (FIG. 17G). Altogether, these results suggest that the long-term reversal of blood glucose observed in ob/ob mice after treatment with the AAV8-hAAT-moFGF21 vector is likely due to increased glucose uptake by white and brown adipocytes and increased thermogenesis in iBAT. suggesting that it is due to enhancement.

実施例12. HFD給餌マウスおよびHFD給餌老齢マウスにおけるAAV8-hAA
T-moFGF21ベクターの静脈内投与による肥満および糖尿病からの長期的回復:組
織重量の減少および1年間までの安定発現
若年成体または成体において実施された試験(実施例4および5を参照されたい)の全
ての実験群に属する動物の代表的イメージを図19A-B中に示す。
Example 12. AAV8-hAA in HFD-fed and HFD-fed aged mice
Long-term recovery from obesity and diabetes by intravenous administration of T-moFGF21 vectors: tissue weight reduction and stable expression for up to 1 year. Representative images of animals belonging to all experimental groups are shown in Figures 19A-B.

AAV8-hAAT-moFGF21処置による肥満の回復は、若年成体または成体と
して処置された動物のいずれにおいても、主要な白色脂肪組織(WAT)貯蔵部、例えば
精巣上体(eWAT)、鼠径部(iWAT)および後腹膜(rWAT)脂肪パッドなどの
重量の用量依存的減少とパラレルであった(図18Aおよび図19C)。肝臓重量のHF
D誘発性増加は、用いられる最も高い用量のベクターでのFGF21遺伝子導入によって
完全に正常化されたが、四頭筋の重量は食餌またはAAV送達により変わらなかった(図
18Aおよび図19D)。
Obesity reversal by AAV8-hAAT-moFGF21 treatment affected major white adipose tissue (WAT) depots, such as epididymis (eWAT), inguinal (iWAT), in animals treated either as young adults or as adults. and retroperitoneal (rWAT) fat pads, paralleling dose-dependent decreases in weight (FIGS. 18A and 19C). HF of liver weight
The D-induced increase was completely normalized by FGF21 gene transfer at the highest dose of vector used, whereas quadriceps weight was unchanged by diet or AAV delivery (FIGS. 18A and 19D).

両齢のAAV8-hAAT-moFGF21処置マウスは、肝臓におけるコドン最適化
されたFGF21の特異的過剰発現を示し(図19E)、これは両マウス群において用量
依存的な血流中へのFGF21の分泌を、ベクターの単回投与後1年間まで安定であり続
けるレベルでもたらす(図18B)。
AAV8-hAAT-moFGF21-treated mice of both ages showed specific overexpression of codon-optimized FGF21 in the liver (Fig. 19E), indicating a dose-dependent secretion of FGF21 into the bloodstream in both groups of mice. at levels that remain stable for up to 1 year after a single administration of vector (Figure 18B).

実施例13. HFD給餌マウスおよびHFD給餌老齢マウスにおけるAAV8-hAA
T-moFGF21ベクターの静脈内投与による肥満および糖尿病からの長期的回復:自
発運動活性の向上および熱産生メカニズムの調査
エネルギー消費の増加(実施例4および5を参照されたい)は、AAV8-hAAT-
moFGF21送達の10月後の若年成体として処置された動物においても見られた(図
21A)。
Example 13. AAV8-hAA in HFD-fed and HFD-fed aged mice
Long-term recovery from obesity and diabetes by intravenous administration of T-moFGF21 vectors: enhancement of locomotor activity and investigation of thermogenesis mechanisms.
It was also seen in animals treated as young adults 10 months after moFGF21 delivery (Fig. 21A).

この知見は、自発運動活性に対するAAV8-hAAT-moFGF21媒介性の効果
と一致した。AAV8-nullベクターを受けたHFDを給餌した動物においてオープ
ンフィールド試験中に認められた活動低下と対照的に、若年成体として5×1010vg
AAV8-hAAT-moFGF21で処置されたマウスは、固形飼料給餌null注
射動物と同程度の自発性の自発運動活性を示した。図20A中に示されるように、AAV
8-hAAT-moFGF21送達の1年後、処置された動物は長い距離を移動し、より
少ない時間しか休息せず、未処置のHFD給餌コントロールよりも多くの遅い運動および
速い運動の時間を費やした。
This finding was consistent with AAV8-hAAT-moFGF21-mediated effects on locomotor activity. 5×10 10 vg as young adults, in contrast to the hypoactivity observed during the open field test in HFD-fed animals that received the AAV8-null vector.
Mice treated with AAV8-hAAT-moFGF21 exhibited spontaneous locomotor activity comparable to chow-fed null-injected animals. As shown in FIG. 20A, AAV
One year after 8-hAAT-moFGF21 delivery, treated animals traveled longer distances, rested less, and spent more time on slow and fast exercise than untreated HFD-fed controls. .

エネルギー消費の変化が熱産生の変化を反映し得ると考え、本発明者らは、褐色脂肪組
織(BAT)の活性化の度合いを評価した。若年成体または成体として5×1010vg
AAV8-hAAT-moFGF21で処置された両マウスは、iBATにおける脂質
沈着の減少を示した(図20B)。BAT中のUCP1タンパク質含量は、若年成体とし
てAAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置されたマウスにおいて用量依存的
に増加し(図20C)、肝臓へのFGF21遺伝子導入により誘導される非シバリング性
熱産生の増加と一致した。
Believing that changes in energy expenditure may reflect changes in thermogenesis, we assessed the degree of activation of brown adipose tissue (BAT). 5×10 10 vg as a young adult or adult
Both mice treated with AAV8-hAAT-moFGF21 showed decreased lipid deposition in iBAT (FIG. 20B). UCP1 protein content in BAT was dose-dependently increased in mice treated with the AAV8-hAAT-moFGF21 vector as young adults (Fig. 20C), suggesting that the non-shivering thermogenesis induced by FGF21 gene transfer to the liver was increased. coincided with the increase.

皮下WATの褐変は、ベージュ脂肪細胞の出現を特徴としており、エネルギー消費の増
加にも関連している(Harms & Seale,2013)。褐変がAAV8-hA
AT-moFGF21処置後に認められるエネルギー消費の亢進を説明できるかを評価す
るため、iWATの組織学的評価を実施した。このパッドの重量減少と一致して(図18
A)、HFD給餌AAV8-hAAT-moFGF21処置動物の脂肪細胞はHFD給餌
null注射動物のそれよりも小さかった(図20D)。それにもかかわらず、AAV8
-hAAT-moFGF21ベクターでの処置は、若年成体または成体として処置された
動物のいずれにおいても、どの試験用量においても、iWATにおける多房性ベージュ脂
肪細胞の検出増加をもたらさなかった(図20D)。したがって、HFD給餌群間のiW
AT中UCP1タンパク質レベルに統計的有意差はなかった(図21B)。
Browning of subcutaneous WAT is characterized by the appearance of beige adipocytes and is also associated with increased energy expenditure (Harms & Seale, 2013). browning is AAV8-hA
Histological evaluation of iWAT was performed to assess whether it could explain the increased energy expenditure observed after AT-moFGF21 treatment. Consistent with this pad weight reduction (Fig. 18
A), Adipocytes in HFD-fed AAV8-hAAT-moFGF21-treated animals were smaller than those in HFD-fed null-injected animals (Fig. 20D). Nevertheless, AAV8
Treatment with the -hAAT-moFGF21 vector did not result in increased detection of multilocular beige adipocytes in iWAT at any dose tested in either young adults or animals treated as adults (Fig. 20D). Therefore, iW between HFD-fed groups
There was no statistically significant difference in UCP1 protein levels in AT (Fig. 21B).

クレアチニン駆動性基質サイクルおよび筋小胞体Ca2+-ATPase 2b(Se
rca2b)媒介性のカルシウム循環は、iWATにおける熱産生をUCP1に依存せず
に増加させることができる(Kazak L. et al.,2015. Cell
163:643-655;Ikeda K. et al.,2017. Nat.Me
d. 23:1454-1465)。クレアチニン駆動性基質サイクルに関与する酵素で
あるホスファターゼオーファン1(Phospho1)のより高レベルの発現が、齢を合
わせた固形飼料給餌コントロール群およびHFD給餌コントロール群と比べたときに、5
×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21で処置されたHFD給餌マウスの
iWATにおいて認められ(図20E)、これはクレアチニン駆動性サイクルの活性がお
そらくFGF21遺伝子導入の結果として増加したことを示唆する。カルシウム循環依存
的な熱産生メカニズムに関して、固形飼料給餌null処置動物またはHFD給餌nul
l処置動物と比べたとき、AAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置された動
物のiWATにおけるSerca2bの発現レベルの差は検出されなかった(図21C)
。他方、同サイクルに関与する別の酵素であるリアノジン受容体2(RyR2)のiWA
T発現は、null処置マウスおよびAAV8-hAAT-moFGF21処置マウスの
両方においてHFD給餌によって増加した(図21C)。全体として、これらの結果は、
カルシウム循環依存的熱産生メカニズムはAAV-FGF21処置後に認められる全身エ
ネルギー恒常性の改善に関与しないことを示唆する。
Creatinine-driven substrate cycle and sarcoplasmic reticulum Ca2+-ATPase 2b (Se
rca2b)-mediated calcium cycling can increase thermogenesis in iWAT independently of UCP1 (Kazak L. et al., 2015. Cell
163 :643-655; Ikeda K.; et al. , 2017. Nat. Me
d. 23 :1454-1465). Higher levels of expression of phosphatase orphan 1 (Phospho1), an enzyme involved in the creatinine-driven substrate cycle, were observed in 5-fold when compared to age-matched chow-fed and HFD-fed control groups.
was observed in the iWAT of HFD-fed mice treated with ×10 10 vg AAV8-hAAT-moFGF21 (FIG. 20E), suggesting that creatinine-driven cycle activity was increased, likely as a result of FGF21 gene transfer. Chow-fed null-treated animals or HFD-fed null
No differences in Serca2b expression levels in iWAT of animals treated with the AAV8-hAAT-moFGF21 vector were detected when compared to l-treated animals (FIG. 21C).
. On the other hand, the iWA of another enzyme involved in the same cycle, ryanodine receptor 2 (RyR2)
T expression was increased by HFD feeding in both null- and AAV8-hAAT-moFGF21-treated mice (Fig. 21C). Overall, these results
We suggest that calcium cycle-dependent thermogenic mechanisms are not involved in the observed improvements in whole-body energy homeostasis after AAV-FGF21 treatment.

実施例14. HFD給餌マウスおよびHFD給餌老齢マウスにおけるAAV8-hAA
T-moFGF21ベクターの静脈内投与による肥満および糖尿病からの長期的回復:グ
ルカゴンレベル、島過形成および耐糖能
そのうえ、若年成体としてAAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置された
HFD給餌動物は、HFD給餌null処置マウスと比べて、グルカゴン循環レベルの減
少を示した(図22A)。
Example 14. AAV8-hAA in HFD-fed and HFD-fed aged mice
Long-term recovery from obesity and diabetes by intravenous administration of T-moFGF21 vectors: glucagon levels, islet hyperplasia and glucose tolerance. They showed decreased circulating levels of glucagon compared to treated mice (Fig. 22A).

AAV8-null処置マウスはHFD給餌の結果として島の過形成を生じたのに対し
、AAV8-hAAT-FGF21ベクターで(2×1010または5×1010vg/
マウスの用量で)処置された動物のβ細胞量は、固形飼料食を給餌したコントロールマウ
スのそれと同様であった(図22BおよびC)。HFD給餌AAV8-hAAT-moF
GF21処置マウスからの膵臓切片のインスリンおよびグルカゴンについての二重免疫染
色は、これらの動物の島におけるα細胞およびβ細胞の正常な分布を示し、島の辺縁部に
グルカゴン発現細胞が、中心部にインスリン発現細胞が局在していた(図22D)。
AAV8-null-treated mice developed islet hyperplasia as a result of HFD feeding, whereas AAV8-hAAT-FGF21 vectors (2×10 10 or 5×10 10 vg/
β-cell mass in treated animals) was similar to that of control mice fed a chow diet (FIGS. 22B and C). HFD-fed AAV8-hAAT-moF
Double immunostaining for insulin and glucagon of pancreatic sections from GF21-treated mice showed a normal distribution of α- and β-cells in the islets of these animals, with glucagon-expressing cells in the periphery of the islets and in the center. Insulin-expressing cells were localized in the (Fig. 22D).

FGF21処置マウスにおいて耐糖能を評価するため、腹腔内グルコース負荷試験(G
TT)(2gグルコース/kg体重)をAAV投与の10週後に実施した。nullまた
はFGF21をコードするベクターのいずれかを1×1010vg/マウスの用量で注射
したHFD給餌動物はグルコース不耐性であって、GTT中にインスリン循環レベルの著
しい増加を示した(図23AおよびB)。対照的に、5×1010vg/マウスのAAV
8-hAAT-moFGF21で処置された動物は、固形飼料給餌コントロールマウスと
比べたときにグルコースクリアランスの改善を示した(図23A)。これら2つの実験群
間でインスリンレベルは区別できなかった(図23B)。これらの結果は、5×1010
vg/マウスのAAV8-hAAT-moFGF21で処置されたHFD給餌マウスにお
けるインスリン感受性の改善をさらに確認した。
To assess glucose tolerance in FGF21-treated mice, an intraperitoneal glucose tolerance test (G
TT) (2 g glucose/kg body weight) was performed 10 weeks after AAV administration. HFD-fed animals injected with either null or a vector encoding FGF21 at a dose of 1×10 10 vg/mouse were glucose intolerant and showed marked increases in circulating insulin levels during the GTT (FIGS. 23A and 23A). B). In contrast, 5×10 10 vg/mouse of AAV
Animals treated with 8-hAAT-moFGF21 showed improved glucose clearance when compared to chow-fed control mice (FIG. 23A). Insulin levels were indistinguishable between these two experimental groups (Fig. 23B). These results are 5×10 10
We further confirmed improved insulin sensitivity in HFD-fed mice treated with vg/mouse AAV8-hAAT-moFGF21.

実施例15. AAV8-hAAT-moFGF21ベクターの静脈内投与によるHFD
に関連したWAT肥大および炎症の回復
HFD給餌はWAT脂肪細胞のサイズ増加を誘導する(Sattar N. & Gi
ll J.M.R.,2014. BMC Med. 12:123)。FGF21をコ
ードするベクターの投与はこの増加に対抗した(図24A)。WATの形態計測分析は、
若年成体として1×1010または5×1010vgのベクターで処置された動物の、お
よび成体として2×1010または5×1010vgのベクターで処置されたマウスの白
色脂肪細胞の面積が、固形飼料食を給餌した動物のそれと同様であることを明らかにした
(図24B)。両FGF21処置動物群において、脂肪細胞サイズの再分布があり、より
小さい脂肪細胞の割合がより高かった(図25A)。脂肪症の減少およびWAT肥大の回
復と一致して、処置開始齢にかかわらず、最も高い用量のAAV8-hAAT-moFG
F21ベクターで処置された動物におけるアディポネクチンおよびレプチンのレベルも正
常化された(図24CおよびD)。
Example 15. HFD by intravenous administration of AAV8-hAAT-moFGF21 vector
Reversal of WAT hypertrophy and inflammation associated with HFD feeding induces an increase in WAT adipocyte size (Sattar N. & Gi
llJ. M. R. , 2014. BMC Med. 12 :123). Administration of a vector encoding FGF21 counteracted this increase (Fig. 24A). Morphometric analysis of WAT was
The area of white adipocytes of animals treated with 1×10 10 or 5×10 10 vg of vector as young adults and of mice treated with 2×10 10 or 5×10 10 vg of vector as adults was It was found to be similar to that of animals fed a chow diet (Fig. 24B). In both FGF21-treated animal groups, there was a redistribution of adipocyte size, with a higher proportion of smaller adipocytes (FIG. 25A). Consistent with reduction in adiposity and restoration of WAT hypertrophy, the highest dose of AAV8-hAAT-moFG regardless of treatment initiation age
Adiponectin and leptin levels in animals treated with the F21 vector were also normalized (FIGS. 24C and D).

肥満はまた、WATの炎症を引き起こす(Hajer G.R. et al.,20
08. Eur.Heart J. 29:2959-2571)。それゆえに、本発明
者らは、この組織における炎症をマクロファージ特異的マーカーMac2についての免疫
染色および炎症促進性分子の発現を通じて分析した。HFD給餌マウスがeWATにおい
て「王冠様」構造として表されるマクロファージの存在の増加を示したのに対し、若年成
体または成体として5×1010vg AAV8-hAAT-moFGF21で処置され
た動物にはマクロファージ浸潤の兆候がなかった(図24Eおよび図25B)。これは、
マクロファージマーカーF480およびCD68ならびに炎症促進性サイトカインTNF
αおよびIL-1βの発現の正常化とパラレルであって(図24F-Hおよび図25C-
E)、FGF21発現が肥満に関連したWATの炎症に対抗したことを指し示す。
Obesity also causes WAT inflammation (Hajer GR et al., 20
08. Eur. HeartJ. 29 :2959-2571). We therefore analyzed inflammation in this tissue through immunostaining for the macrophage-specific marker Mac2 and the expression of pro-inflammatory molecules. HFD-fed mice showed an increased presence of macrophages represented as 'crown-like' structures in eWAT, whereas animals treated with 5 x 10 10 vg AAV8-hAAT-moFGF21 as young adults or adults had no macrophages. There were no signs of invasion (Figures 24E and 25B). this is,
Macrophage markers F480 and CD68 and the pro-inflammatory cytokine TNF
In parallel with the normalization of α and IL-1β expression (FIGS. 24F-H and 25C-
E), indicating that FGF21 expression counteracted obesity-associated WAT inflammation.

実施例16. AAV8-hAAT-moFGF21ベクターの静脈内投与による脂肪肝
、肝臓の炎症および線維症の回復
肝臓の組織分析は、HFDを給餌した全てのnull処置動物は屠殺時に著しい脂肪肝
であったことを示した(図26A-D)。対照的に、若年成体または成体として5×10
10vg AAV8-hAAT-moFGF21を受けたHFD給餌マウスは、この病理
学的脂質沈着の回復を証明した(図26A)。これらの組織学的知見は、5×1010
g AAV8-hAAT-moFGF21処置動物の総肝臓トリグリセリドおよびコレス
テロール含量の著しい低減とパラレルであった(図26BおよびC)。加えて、若年成体
または成体時にHFDを給餌して5×1010vg AAV8-hAAT-moFGF2
1ベクターで処置した動物は、Mac2についての染色の欠失により証明されるように肝
臓の炎症の兆候を示さず、このMac2についての染色はnull処置HFD給餌マウス
の肝臓におけるマクロファージの存在の増加を明らかにした(図26D)。最終的に、肝
臓へのFGF21遺伝子導入は肝線維症を回復させた。コラーゲン線維は、HFDを給餌
してコントロールnullベクターを注射した動物からの肝臓切片のピクロシリウスレッ
ド染色またはマッソントリクローム染色の後に容易に検出可能であったのに対し、AAV
8-hAAT-moFGF21処置マウスの肝臓中では検出できなかった(図28Aおよ
び図27)。これらのマウスは、肝臓のコラーゲン1発現の著しい低減も示した(図28
BおよびC)。全体として、これらの知見は、AAV8-hAAT-moFGF21処置
がHFD誘発性の非アルコール性脂肪性肝炎(NASH)の発症から保護することを指し
示した。
Example 16. Intravenous Administration of AAV8-hAAT-moFGF21 Vector Restores Fatty Liver, Liver Inflammation and Fibrosis Liver tissue analysis showed that all null-treated animals fed HFD had significant hepatic steatosis at sacrifice. (FIGS. 26A-D). In contrast, 5 × 10 as young adults or adults
HFD-fed mice receiving 10 vg AAV8-hAAT-moFGF21 demonstrated reversal of this pathological lipid deposition (Fig. 26A). These histological findings were 5×10 10 v
g Paralleled the marked reduction in total liver triglyceride and cholesterol content of AAV8-hAAT-moFGF21-treated animals (FIGS. 26B and C). In addition, 5×10 10 vg AAV8-hAAT-moFGF2 in young adults or HFD-fed adults
Animals treated with 1 vector showed no signs of liver inflammation as evidenced by the lack of staining for Mac2, which indicated increased presence of macrophages in the liver of null-treated HFD-fed mice. revealed (Fig. 26D). Finally, FGF21 gene transfer to the liver reversed liver fibrosis. Collagen fibrils were readily detectable after picrosirius red or Masson's trichrome staining of liver sections from animals fed the HFD and injected with the control null vector, whereas AAV
It was not detectable in the liver of 8-hAAT-moFGF21 treated mice (Figures 28A and 27). These mice also showed a marked reduction in hepatic collagen 1 expression (Fig. 28).
B and C). Altogether, these findings indicated that AAV8-hAAT-moFGF21 treatment protected against the development of HFD-induced non-alcoholic steatohepatitis (NASH).

実施例17. 肝臓指向性AAV-FGF21処置の長期的安全性
FGF21での薬理学的処置または遺伝子導入過剰発現は、骨吸収の向上を通じた骨恒
常性の撹乱に関連しており、これは骨減少を引き起こすことがある(Wei W. et
al.,2012. Proc.Natl.Acad.Sci. 109:3143-
3148;Wang X. et al.,2015. Cell Metab. 22
:811-824;Charoenphandhu N. et al.,2017.
J.Bone Miner.Metab. 35:142-149;Talukdar
S. et al.,2016. Cell Metab. 23:427-440;K
im A.M. et al.,2017. Diabetes,Obes.Metab
)。肥満および糖尿病の処置のためのAAV8-hAAT-moFGF21の治療的可能
性を考え、本発明者らは、最も高い用量のベクターで処置された動物の骨に対する遺伝子
導入の長期的効果を評価した。屠殺時(約16.5月齢)、9または29週齢でAAV8
-hAAT-moFGF21ベクターを投与された動物において、鼻先から尾根部までの
長さおよび脛骨の長さは正常であった(図29AおよびB)。本発明者らは次いで、マイ
クロコンピュータ断層撮影(μCT)により骨構造を調べた。脛骨の近位骨端の分析は、
HFDを給餌して5×1010vg AAV8-hAAT-moFGF21を投与したマ
ウスの骨梁および皮質骨に、nullベクターで処置された齢を合わせたマウスと比較し
て有意差がないことを明らかにした。具体的には、骨ミネラル密度(BMD)(図29C
)、骨ミネラル含量(BMC)(図29D)、骨体積(BV)(図29E)、骨体積/組
織体積比(BV/TV)(図29F)、骨表面/骨体積比(BS/BV)(図29G)、
骨梁数(Tb.N)(図29H)、骨梁幅(Tb.Th)(図29I)または骨梁間隔(
Tb.Sp)(図29J)における差は記録されなかった。同様に、脛骨の骨幹における
緻密骨の分析は、HFD給餌null注射またはFGF21処置群の間でBMC、BMD
、BV、BV/TVまたはBS/BVに差がないことを示した(図29K-O)。
Example 17. Long-Term Safety of Liver-Directed AAV-FGF21 Treatment Pharmacological treatment or transgenic overexpression with FGF21 is associated with perturbation of bone homeostasis through enhanced bone resorption, which leads to bone loss. There is (Wei W. et
al. , 2012. Proc. Natl. Acad. Sci. 109 :3143-
3148; Wang X.; et al. , 2015. Cell Metab. 22
: 811-824; Charoenphandhu N.; et al. , 2017.
J. Bone Miner. Metab. 35 :142-149;
S. et al. , 2016. Cell Metab. 23 :427-440;
im A. M. et al. , 2017. Diabetes, Obes. Metab
). Given the therapeutic potential of AAV8-hAAT-moFGF21 for the treatment of obesity and diabetes, we evaluated the long-term effects of gene transfer on bone in animals treated with the highest dose of vector. AAV8 at 9 or 29 weeks of age at sacrifice (approximately 16.5 months of age)
The snout-to-tail length and tibia length were normal in animals that received the -hAAT-moFGF21 vector (Figures 29A and B). We then examined bone structure by microcomputed tomography (μCT). Analysis of the proximal epiphysis of the tibia
Demonstrating no significant differences in trabecular and cortical bone in HFD-fed mice treated with 5×10 10 vg AAV8-hAAT-moFGF21 compared to age-matched mice treated with null vector bottom. Specifically, bone mineral density (BMD) (Fig. 29C
), bone mineral content (BMC) (Fig. 29D), bone volume (BV) (Fig. 29E), bone volume/tissue volume ratio (BV/TV) (Fig. 29F), bone surface/bone volume ratio (BS/BV). (Fig. 29G),
Trabecular number (Tb.N) (Fig. 29H), trabecular width (Tb.Th) (Fig. 29I) or trabecular spacing (
Tb. Sp) (Fig. 29J) was not recorded. Similarly, analysis of compact bone in the tibia diaphysis showed that BMC, BMD
, BV, BV/TV or BS/BV (FIGS. 29K-O).

FGF21の病理学的効果は、少なくとも部分的に、肝臓によるインスリン様増殖因子
結合タンパク質1(IGFPB1)の産生増加により媒介されることが報告されている(
Wang X. et al.,2015. Cell Metab. 22:811-
824)。骨変化の欠如と一致して、高用量のAAV8-hAAT-moFGF21処置
は、null注射HFD給餌マウスと比べた時に、12月(若年成体)または6月(成体
)早く処置された動物における循環IGFBP1タンパク質レベルの増加を導かなかった
(図29P)。循環IGF1レベルも全ての実験群において正常であった(図29Q)。
全体として、これらの結果は、肝臓へのAAV媒介性FGF21遺伝子導入の骨組織に対
する安全性を支持する。
The pathological effects of FGF21 have been reported to be mediated, at least in part, by increased production of insulin-like growth factor binding protein 1 (IGFPB1) by the liver (
Wang X. et al. , 2015. Cell Metab. 22 :811-
824). Consistent with the lack of bone changes, high-dose AAV8-hAAT-moFGF21 treatment reduced circulating IGFBP1 in animals treated as early as 12 months (young adults) or 6 months (adults) when compared to null-injected HFD-fed mice. It did not lead to an increase in protein levels (Figure 29P). Circulating IGF1 levels were also normal in all experimental groups (Figure 29Q).
Overall, these results support the safety of AAV-mediated FGF21 gene transfer to liver for bone tissue.

実施例18. AAV8-hAAT-moFGF21ベクターの静脈内投与によるHFD
誘発性肝臓腫瘍の予防
長期のHFD給餌(>60週)は、C57BL/6Jマウスにおいて肝臓新生物の発生
増加に関連している(Hill-Baskin A.E. et al.,2009.
Hum.Mol.Genet. 18:2975-2988;Nakagawa H.,
2015. World J.Hepatol. :2110)。本発明者らの試験に
おいて、若年成体としてHFDを開始し、これを60週間維持した動物において、本発明
者らはnullベクターを注射した動物の66.7%(6/9)に肝臓腫瘍を見出した。
AAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置された動物はHFD誘発性の肝臓新
生物発症から保護された:5×1010vgのFGF21をコードするベクターで処置さ
れた動物の0%(0/8)が腫瘍を示し、最も低い用量(1×1010vg)で処置した
コホートにおける発生は40%(4/10)であった。固形飼料給餌マウス(0/11)
はいずれも同じ期間中に腫瘍を発症しなかった(表1)。
Example 18. HFD by intravenous administration of AAV8-hAAT-moFGF21 vector
Prevention of Induced Liver Tumors Prolonged HFD feeding (>60 weeks) is associated with increased development of liver neoplasms in C57BL/6J mice (Hill-Baskin AE et al., 2009.
Hum. Mol. Genet. 18 :2975-2988; Nakagawa H.; ,
2015. WorldJ. Hepatol. 7 :2110). In our study, in animals that started HFD as young adults and maintained it for 60 weeks, we found that 66.7% (6/9) of the animals injected with the null vector developed liver tumors. Found it.
Animals treated with the AAV8-hAAT-moFGF21 vector were protected from HFD-induced hepatic neoplastic development: 0% (0/8) of animals treated with vectors encoding 5×10 10 vg of FGF21 The incidence was 40% (4/10) in the cohort that exhibited tumors and was treated with the lowest dose (1×10 10 vg). Chow-fed mice (0/11)
none developed tumors during the same period (Table 1).

表1. 若年成体における肝臓腫瘍発生

Figure 2023109992000001
Table 1. Liver Tumor Development in Young Adults
Figure 2023109992000001

実施例19. AAV8媒介性の肝臓特異的なFGF21過剰発現によるSTZ誘発性高
血糖の好転
材料および方法
動物
本発明者らは、9週齢の雄性C57bl6マウスを用いた。マウスは標準食を自由摂取
させ、12時間の明暗サイクル(08:00時に点灯)の下で維持した。糖尿病誘発のた
め、マウスは、0.1mol/lクエン酸バッファー(pH 4.5)中に溶解されたス
トレプトゾトシン(50mg/kg)の腹腔内注射を5回、連日で受けた。血中グルコー
スレベルは、アナライザー(Glucometer Elite;Bayer,Leve
rkusen,Germany)を用いて査定した。動物のケアおよび実験手法は、Un
iversitat Autonoma de BarcelonaのEthics C
ommittee for Animal and Human Experiment
ationにより承認されたものである。
Example 19. Reversal of STZ-induced hyperglycemia by AAV8-mediated liver-specific FGF21 overexpression Materials and Methods Animals We used 9-week-old male C57bl6 mice. Mice were fed standard chow ad libitum and maintained under a 12 hour light/dark cycle (lights on at 08:00). For diabetes induction, mice received five intraperitoneal injections of streptozotocin (50 mg/kg) dissolved in 0.1 mol/l citrate buffer (pH 4.5) on consecutive days. Blood glucose levels were measured with an analyzer (Glucometer Elite; Bayer, Leve
rkusen, Germany). Animal care and laboratory procedures are
Ethics C of the iversitat Autonoma de Barcelona
ommittee for Animal and Human Experiments
ation approved.

AAVベクターのインビボ投与
全身投与のため、AAVベクターを200μlのPBS中0.001% F68 Pl
uronic(登録商標)(Gibco)の中で希釈し、尾静脈を介して注射した。
In Vivo Administration of AAV Vectors For systemic administration, AAV vectors were added to 0.001% F68 Pl in 200 μl of PBS.
Diluted in uronic® (Gibco) and injected via the tail vein.

結果
AAVに由来するFGF21の1型糖尿病に対する保護的可能性を試験するため、5×
1010vgまたは2×1011vgのhAATプロモーターの制御下にあるコドン最適
化されたマウスFGF21をコードするAAV8ベクター(AAV8-hAAT-moF
GF21)を、雄性9週齢のC57Bl6マウスにIV投与した。コントロールマウスは
、2×1011vgのAAV8-hAAT-Nullベクターを受けた。AAV投与の2
週後、全ての動物をストレプトゾトシン(STZ)(50mg/kgの5用量;1用量/
日)で処置することで糖尿病プロセスを起こした。
Results To test the protective potential of AAV-derived FGF21 against type 1 diabetes, 5x
AAV8 vectors (AAV8 - hAAT- moF
GF21) was administered IV to male 9-week-old C57B16 mice. Control mice received 2×10 11 vg of AAV8-hAAT-Null vector. 2 of AAV administration
Weeks later, all animals were treated with streptozotocin (STZ) (5 doses of 50 mg/kg;
day) caused the diabetic process.

血中グルコースレベルの分析は、moFGF21をコードするAAV8ベクターで処置
された動物はAAV8-hAAT-Nullベクターで処置されたC57Bl6マウスよ
りも低い循環グルコースレベルを示すことを明らかにした(図30)。
Analysis of blood glucose levels revealed that animals treated with AAV8 vectors encoding moFGF21 exhibited lower circulating glucose levels than C57B16 mice treated with AAV8-hAAT-Null vectors (FIG. 30).

実施例20. C57Bl6マウスにおけるAAV-CMV-moFGF21ベクターの
筋肉内投与による、加齢に関連した体重増加およびインスリン抵抗性の予防によった健康
寿命の延伸
骨格筋(Skm)は容易にアクセスできる組織であり、分泌可能な治療的タンパク質の
生産のために用いられている(Haurigot V. et al.,2010. J
.Clin.Invest. 123:3254-3271;Callejas D.
et al.,2013. Diabetes 62:1718-1729;Jaen
M.L. et al.,2017. Mol.Ther.Methods Clin.
Dev. :1-7)。Skmが循環FGF21の生きた供給源となることができるか
を調べるため、最適化されたマウスFGF21をCMVプロモーターの制御下に保有する
、Skmに対して高い向性を示す血清型1のAAVベクター(Chao L. et a
l.,2000. J.Clin.Invest. 106:1221-1228;Wu
Z. et al.,2006. J.Virol. 80:9093-9103;L
isowski L. et al.,2015. Curr.Opin.Pharma
col. 24:59-67)を用いた(AAV1-CMV-moFGF21)。ベクタ
ーを5×1010vg/筋肉の用量で、8週齢のC57Bl6マウスの両肢の四頭筋、腓
腹筋および前脛骨筋に注射した(合計用量、3×1011vg/マウス)。コントロール
動物にAAV1-CMV-Nullベクターを同じ用量で注射した。標準食を給餌した健
常マウスの使用は、本発明者らがFGF21遺伝子治療の長期的安全性を評価することを
さらに可能にした。
Example 20. Intramuscular administration of AAV-CMV-moFGF21 vectors in C57B16 mice extends healthy lifespan by preventing age-related weight gain and insulin resistance Skeletal muscle (Skm) is an easily accessible tissue that secretes It has been used for the production of potential therapeutic proteins (Haurigot V. et al., 2010. J.
. Clin. Invest. 123 :3254-3271; Callejas D.;
et al. , 2013. Diabetes 62 :1718-1729;
M. L. et al. , 2017. Mol. Ther. Methods Clin.
Dev. 6 :1-7). To investigate whether Skm can serve as a viable source of circulating FGF21, a serotype 1 AAV vector with high tropism for Skm carrying optimized murine FGF21 under the control of the CMV promoter. (Chao L. et al.
l. , 2000. J. Clin. Invest. 106 :1221-1228;
Z. et al. , 2006. J. Virol. 80 : 9093-9103;
isowski L. et al. , 2015. Curr. Opin. Pharma
col. 24 :59-67) was used (AAV1-CMV-moFGF21). Vector was injected at a dose of 5×10 10 vg/muscle into the quadriceps, gastrocnemius and tibialis anterior muscles of both limbs of 8-week-old C57B16 mice (total dose, 3×10 11 vg/mouse). Control animals were injected with the AAV1-CMV-Null vector at the same dose. The use of normal chow-fed healthy mice further allowed us to assess the long-term safety of FGF21 gene therapy.

8週齢でFGF21をコードするベクターを注射した11月齢の動物は循環FGF21
の著しい増加を示し(図31A)、これは、3つの注射した筋肉におけるベクターに由来
するFGF21の高い発現レベルとパラレルであった(図31B)。以前の報告と一致し
て、このベクター血清型、プロモーターおよび投与経路の組み合わせは、肝臓において導
入遺伝子の発現を導かなかった(図31B)。
11-month-old animals injected with a vector encoding FGF21 at 8 weeks of age circulating FGF21
(FIG. 31A), which paralleled high expression levels of vector-derived FGF21 in the three injected muscles (FIG. 31B). Consistent with previous reports, this combination of vector serotype, promoter and route of administration did not lead to transgene expression in the liver (Fig. 31B).

約10月の追跡期間の終了時、AAV1-CMV-moFGF21を筋肉内注射したマ
ウスは試験開始時の体重を維持しており、動物の加齢につれて重量が安定して増加したコ
ントロールよりも約38%痩せていた(図31C)。筋肉の重量はFGF21遺伝子導入
によりほとんど影響を受けなかったが、白色および褐色貯蔵部、同様に肝臓の重量はかな
り低減した(図31D)。実際に、分析したWATパッドの重量は>50%低減した(図
31D)。そのうえ、AAV1-CMV-moFGF21で処置されたマウスは肝臓総ト
リグリセリド含量の著しい低減を示した(図31E)。肝臓コレステロールレベルに変化
は認められなかった(図31F)。null注射動物と対照的に、AAV1-CMV-m
oFGF21で処置された動物は、約1年齢であったときに正常血糖を示し(データは示
さず)、血中インスリンが低減した(図31G)。したがって、FGF21処置マウスは
、試験終了時に著しく改善されたインスリン感受性を示した(図31H)。全体として、
この試験は、治療的に適切なレベルの循環FGF21を導くAAVベクターの投与は健康
面で長期間安全であり、加齢に関連した体重およびインスリン抵抗性の向上を回復させる
ために用いられ得ることを実証する。
At the end of the approximately 10 month follow-up period, mice injected intramuscularly with AAV1-CMV-moFGF21 maintained their body weight at the beginning of the study, and were approximately 38% lower than controls, whose weight steadily increased as the animals aged. % lean (Fig. 31C). Muscle weight was largely unaffected by FGF21 gene transfer, whereas white and brown depot weights, as well as liver weights, were significantly reduced (FIG. 31D). Indeed, the weight of the analyzed WAT pads was reduced by >50% (Fig. 31D). Moreover, mice treated with AAV1-CMV-moFGF21 showed a marked reduction in liver total triglyceride content (FIG. 31E). No change in liver cholesterol levels was observed (Fig. 31F). In contrast to null injected animals, AAV1-CMV-m
Animals treated with oFGF21 exhibited normoglycemia (data not shown) and reduced blood insulin (FIG. 31G) when they were approximately 1 year of age. Thus, FGF21-treated mice exhibited significantly improved insulin sensitivity at the end of the study (Fig. 31H). as a whole,
This study demonstrates that administration of AAV vectors leading to therapeutically relevant levels of circulating FGF21 is safe for long-term health and can be used to reverse age-related increases in body weight and insulin resistance. to demonstrate.

実施例21. HFD給餌C57Bl6マウスにおけるAAV1-CMV-moFGF2
1ベクターの筋肉内投与による肥満および糖尿病の回復。
Example 21. AAV1-CMV-moFGF2 in HFD-fed C57Bl6 mice
Obesity and diabetes reversal by intramuscular administration of 1 vector.

本発明者らは次に、AAV1-CMV-moFGF21ベクターのim投与も肥満およ
びインスリン抵抗性を回復させることができるかを評価した。この目的を達成するため、
2月齢のC57Bl6マウスに固形飼料またはHFDのいずれかを12週間給餌した。こ
れらの最初の3月の追跡の際、固形飼料給餌動物の重量は20%増加した一方、HFDを
給餌した動物は肥満になった(95%の体重増)(図32AおよびB)。ベクターを次い
で、5×1010vg/筋肉の用量で、肥満C57Bl6マウスの両肢の四頭筋、腓腹筋
および前脛骨筋に注射した(合計用量、3×1011vg/マウス)。コントロールとし
て、肥満マウスの別のコホートおよび固形飼料給餌マウスのコホートは3×1011vg
のノンコーディングnullベクター(AAV1-CMV-null)を受けた。AAV
送達後、マウスを固形飼料またはHFD給餌で維持した。AAV1-CMV-moFGF
21で処置された動物は、進行性の体重減少を経験した(図32AおよびB)。AAV1
-CMV-FGF21処置による肥満の回復は、FGF21循環レベルの増加とパラレル
であった(図32C)。
We next evaluated whether im administration of the AAV1-CMV-moFGF21 vector could also reverse obesity and insulin resistance. To this end,
Two-month-old C57B16 mice were fed either chow or HFD for 12 weeks. During these first 3-month follow-ups, chow-fed animals gained 20% in weight, while HFD-fed animals became obese (95% weight gain) (FIGS. 32A and B). Vector was then injected at a dose of 5×10 10 vg/muscle into the quadriceps, gastrocnemius and tibialis anterior muscles of both limbs of obese C57B16 mice (total dose, 3×10 11 vg/mouse). As controls, another cohort of obese mice and a cohort of chow-fed mice received 3×10 11 vg
of the non-coding null vector (AAV1-CMV-null). AAV
After delivery, mice were maintained on a chow or HFD diet. AAV1-CMV-moFGF
Animals treated with 21 experienced progressive weight loss (Figures 32A and B). AAV1
The reversal of obesity by -CMV-FGF21 treatment paralleled the increase in circulating FGF21 levels (Fig. 32C).

HFDを給餌したNull処置マウスは正常な給餌時血糖を示したが(図32D)、高
インスリン血であって(図32E)、このことはこれらのマウスがインスリン抵抗性を発
症していたことを示唆する。対照的に、AAV1-CMV-moFGF21で処置された
HFD給餌マウスは、試験終了までに正常血糖および正常血中インスリンであった(図3
2DおよびE)。そのうえ、AAV1-CMV-moFGF21を投与した動物は、それ
らのHFD給餌コントロールよりも強いインスリン感受性を示した(図32F)。
Null-treated mice fed HFD showed normal feeding blood glucose (Fig. 32D) but were hyperinsulinemia (Fig. 32E), indicating that these mice had developed insulin resistance. Suggest. In contrast, HFD-fed mice treated with AAV1-CMV-moFGF21 were normoglycemic and normo-insulin by the end of the study (Fig. 3).
2D and E). Moreover, AAV1-CMV-moFGF21-dosed animals exhibited greater insulin sensitivity than their HFD-fed controls (FIG. 32F).

実施例22. コドン最適化されたヒトFGF21ヌクレオチド配列によるFGF21循
環レベルの増加。
Example 22. Increased FGF21 circulating levels by codon-optimized human FGF21 nucleotide sequences.

コドン最適化がFGF21循環レベルの増加を媒介することができるかを評価するため
、8週齢の雄性C57Bl6マウスに、hAATプロモーターの制御下にある3つの異な
るコドン最適化されたヒトFGF21ヌクレオチド配列(配列番号40~42)をコード
するプラスミドをハイドロダイナミック注射した。コントロールとして、非処置マウスお
よびhAATプロモーターの制御下にある野生型hFGF21コーディング配列をコード
するプラスミドをハイドロダイナミック注射したマウスを用いた。
To assess whether codon optimization can mediate increased circulating levels of FGF21, 8-week-old male C57B16 mice were injected with three different codon-optimized human FGF21 nucleotide sequences under the control of the hAAT promoter ( Plasmids encoding SEQ ID NOs:40-42) were hydrodynamically injected. As controls, untreated mice and mice hydrodynamically injected with a plasmid encoding the wild-type hFGF21 coding sequence under the control of the hAAT promoter were used.

材料および方法
ハイドロダイナミック尾静脈注射によるマウスへのプラスミドのインビボ送達
プラスミドDNAを生理食塩水中で動物の平均体重(グラム)の約10%に等しい容量
(ml)に希釈し、外側尾静脈の中に5秒未満(less tan)で手技的に注射した
。注射の前に、動物を250W赤外線加熱ランプ(Philips)下に数分間置いて血
管を拡張させ、尾静脈を見やすくして容易にアクセスできるようにした。プラスチックの
保定器(Harvard Apparatus)を用いて注射のために動物を固定した。
適切な保定装置を利用するかぎり必要でないため、麻酔は用いなかった。本発明者らは2
6G 3/8インチのゲージの皮下針(BD)を用いて動物に注射したが、これは、アク
セスする静脈にぴったりと適合する最も大きい実行可能な針ゲージである。
Materials and Methods In Vivo Delivery of Plasmids to Mice by Hydrodynamic Tail Vein Injection Plasmid DNA was diluted in saline to a volume (ml) equal to approximately 10% of the animal's average body weight (grams) and injected into the lateral tail vein. Injected manually in less tan. Prior to injection, animals were placed under a 250 W infrared heat lamp (Philips) for several minutes to dilate the blood vessels and make the tail vein more visible and easily accessible. Animals were immobilized for injection using plastic restrainers (Harvard Apparatus).
No anesthesia was used as it was not necessary as long as an appropriate restraint system was used. The inventors 2
Animals were injected using a 6G 3/8 inch gauge hypodermic needle (BD), which is the largest feasible needle gauge that fits snugly into the vein being accessed.

結果
コドン最適化されたヒトFGF21バージョン2または3のいずれかで処置されたマウ
スは、野生型またはコドン最適化されたFGF21バリアント1と比較してより高レベル
のヒトFGF21を循環中に分泌することができ(図33、それゆえにバリアント2およ
び3のコドン最適化によるFGF21タンパク質産生の増加を実証する。
Results Mice treated with either codon-optimized human FGF21 version 2 or 3 secrete higher levels of human FGF21 into circulation compared to wild-type or codon-optimized FGF21 variant 1. (Fig. 33, thus demonstrating increased FGF21 protein production by codon optimization of variants 2 and 3).

実施例23. hAAT-moFGF21、CAG-moFGF21-doublemi
RTおよびCMV-moFGF21発現カセットによるFGF21の発現およびタンパク
質産生レベルのインビトロおよびインビボでの増加
材料および方法
ハイドロダイナミック尾静脈注射によるマウスへのプラスミドのインビボ送達
プラスミドDNAを生理食塩水中で動物の平均体重(グラム)の約10%に等しい容量
(ml)に希釈し、外側尾静脈の中に5秒未満(less tan)で手技的に注射した
。注射の前に、動物を250W赤外線加熱ランプ(Philips)下に数分間置いて血
管を拡張させ、尾静脈を見やすくして容易にアクセスできるようにした。プラスチックの
保定器(Harvard Apparatus)を用いて注射のために動物を固定した。
適切な保定装置を利用するかぎり必要でないため、麻酔は用いなかった。本発明者らは2
6G 3/8インチのゲージの皮下針(BD)を用いて動物に注射したが、これは、アク
セスする静脈にぴったりと適合する最も大きい実行可能な針ゲージである。
Example 23. hAAT-moFGF21, CAG-moFGF21-doublemi
In vitro and in vivo increase in FGF21 expression and protein production levels by RT and CMV-moFGF21 expression cassette Materials and methods In vivo delivery of plasmid to mice by hydrodynamic tail vein injection gram) and injected manually into the lateral tail vein in less tan. Prior to injection, animals were placed under a 250 W infrared heat lamp (Philips) for several minutes to dilate the blood vessels and make the tail vein more visible and easier to access. Animals were immobilized for injection using plastic restrainers (Harvard Apparatus).
No anesthesia was used as it was not necessary as long as a suitable restraint system was used. The inventors 2
Animals were injected using a 6G 3/8 inch gauge hypodermic needle (BD), which is the largest feasible needle gauge that fits snugly into the vein being accessed.

結果
インビトロ
HEK293細胞に、伸長因子1a(EF1a)プロモーターの制御下にあるWTのマ
ウスFGF21コーディング配列(EF1a-mFGF21)(Zhang et al
.,EBioMedicine 15(2017) 173-183)(配列番号57)
またはCMVプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディ
ング配列(CMV-moFGF21)またはmiRT122a配列の4個のタンデムリピ
ートおよびmiRT1配列の4個のタンデムリピートを伴った、CAGプロモーターの制
御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列(CAG-moFGF
21-doublemiRT)をコードするプラスミドをトランスフェクトした。コント
ロールとして、非トランスフェクト細胞を用いた。CAG-moFGF21-doubl
emiRTを形質導入したHEK293細胞は、EF1a-mFGF21を形質導入した
細胞または非形質導入細胞と比較してより高レベルのFGF21を発現した(図34A)
。そのうえ、CAG-moFGF21-doublemiRTを形質導入したHEK29
3細胞はまた、より高い細胞内FGF21タンパク質含量および培養培地中のより高いF
GF21タンパク質レベルを示した(図34BおよびC)。EF1a-mFGF21また
はCMV-moFGF21を形質導入したHEK293細胞は同様のレベルのFGF21
を発現したが(図34A)、CMV-moFGF21を形質導入したHEK293細胞は
より高い細胞内FGF21タンパク質含量および培養培地中のより高いFGF21タンパ
ク質レベルを示した(図34BおよびC)。
Results In vitro HEK293 cells were transfected with the WT mouse FGF21 coding sequence (EF1a-mFGF21) under the control of the elongation factor 1a (EF1a) promoter (Zhang et al.
. , EBioMedicine 15 (2017) 173-183) (SEQ ID NO: 57)
or codon-optimized mouse FGF21 coding sequence (CMV-moFGF21) under control of CMV promoter or under control of CAG promoter with 4 tandem repeats of miRT122a sequence and 4 tandem repeats of miRT1 sequence A codon-optimized mouse FGF21 coding sequence (CAG-moFGF
21-doublemiRT) was transfected. As a control, non-transfected cells were used. CAG-moFGF21-double
HEK293 cells transduced with emiRT expressed higher levels of FGF21 compared to cells transduced with EF1a-mFGF21 or non-transduced cells (FIG. 34A).
. Moreover, HEK29 transduced with CAG-moFGF21-doublemiRT
3 cells also showed higher intracellular FGF21 protein content and higher F in the culture medium
GF21 protein levels were shown (FIGS. 34B and C). HEK293 cells transduced with EF1a-mFGF21 or CMV-moFGF21 show similar levels of FGF21
(FIG. 34A), HEK293 cells transduced with CMV-moFGF21 exhibited higher intracellular FGF21 protein content and higher FGF21 protein levels in the culture medium (FIGS. 34B and C).

C2C12細胞に、EF1aプロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21コー
ディング配列(EF1a-mFGF21)(Zhang et al.,EBioMed
icine 15(2017) 173-183)またはCMVプロモーターの制御下に
あるコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列(CMV-moFGF21)
をコードするプラスミドをトランスフェクトした。コントロールとして、非トランスフェ
クト細胞を用いた。CMV-moFGF21を形質導入したC2C12細胞は、EF1a
-mFGF21を形質導入した細胞または非形質導入細胞と比較してより高レベルのFG
F21を発現した(図34D)。
C2C12 cells were transfected with the WT mouse FGF21 coding sequence (EF1a-mFGF21) under the control of the EF1a promoter (Zhang et al., EBioMed
icine 15 (2017) 173-183) or the codon-optimized mouse FGF21 coding sequence under the control of the CMV promoter (CMV-moFGF21)
was transfected with a plasmid encoding As a control, non-transfected cells were used. C2C12 cells transduced with CMV-moFGF21 showed EF1a
- higher levels of FG compared to cells transduced with mFGF21 or non-transduced cells
F21 was expressed (Fig. 34D).

HepG2細胞に、EF1aプロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21コー
ディング配列(EF1a-mFGF21)(Zhang et al.,EBioMed
icine 15(2017) 173-183)またはhAATプロモーターの制御下
にあるコドン最適化されたマウスFGF21をコードするプラスミド(hAAT-moF
GF21)をトランスフェクトした。コントロールとして、非トランスフェクト細胞を用
いた。hAAT-moFGF21を形質導入したHepG2細胞は、EF1a-mFGF
21を形質導入した細胞または非形質導入細胞と比較してより高レベルのFGF21を発
現した(図34E)。
HepG2 cells were transfected with the WT mouse FGF21 coding sequence (EF1a-mFGF21) under the control of the EF1a promoter (Zhang et al., EBioMed
icine 15 (2017) 173-183) or a plasmid encoding codon-optimized murine FGF21 under the control of the hAAT promoter (hAAT-moF
GF21) were transfected. As a control, non-transfected cells were used. HepG2 cells transduced with hAAT-moFGF21 are EF1a-mFGF
Higher levels of FGF21 were expressed compared to cells transduced with 21 or non-transduced cells (Fig. 34E).

インビボ
8週齢の雄性C57Bl6マウスに、5μgの、伸長因子1a(EF1a)プロモータ
ーの制御下にあるWTのマウスFGF21コーディング配列(EF1a-mFGF21)
(Zhang et al.,EBioMedicine 15(2017) 173-
183)またはCMVプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21
コーディング配列(CMV-moFGF21)またはhAATプロモーターの制御下にあ
るコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列(hAAT-moFGF21)
をコードするプラスミドをハイドロダイナミクス投与した。プラスミド投与の24時間後
の肝臓におけるFGF21発現レベル分析は、hAAT-moFGF21またはCMV-
moFGF21で処置された動物がEF1a-mFGF21を受けた動物よりもはるかに
高レベルのFGF21を発現することを明らかにした(図35A)。加えて、hAAT-
moFGF21またはCMV-moFGF21で処置された動物は、EF1a-mFGF
21を受けた動物よりも高いFGF21循環レベルを示した(図35B)。
In vivo 8-week-old male C57B16 mice were injected with 5 μg of the WT mouse FGF21 coding sequence (EF1a-mFGF21) under the control of the elongation factor 1a (EF1a) promoter.
(Zhang et al., EBioMedicine 15 (2017) 173-
183) or codon-optimized mouse FGF21 under the control of the CMV promoter
The coding sequence (CMV-moFGF21) or the codon-optimized mouse FGF21 coding sequence under the control of the hAAT promoter (hAAT-moFGF21)
was hydrodynamically administered with a plasmid encoding FGF21 expression level analysis in liver 24 hours after plasmid administration showed that hAAT-moFGF21 or CMV-
We found that animals treated with moFGF21 expressed much higher levels of FGF21 than animals that received EF1a-mFGF21 (FIG. 35A). In addition, hAAT-
Animals treated with moFGF21 or CMV-moFGF21 showed EF1a-mFGF
showed higher circulating FGF21 levels than animals receiving 21 (Fig. 35B).

実施例24. AAV8-Ef1a-mFGF21と比較したAAV8-hAAT-mo
FGF21、AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRTおよびAAV1
-CMC-moFGF21による標的組織におけるFGF21発現およびFGF21循環
レベルのインビボでの増加
肝臓での発現
雄性C57Bl6マウスに、1×1010vg、2×1010vgまたは5×1010
vgの伸長因子1a(EF1a)プロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21コ
ーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-EF1a-mFGF21)ま
たは肝臓特異的hAATプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF2
1コーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-hAAT-moFGF2
1)を静脈内投与した。AAV投与の2週後、AAV8-hAAT-moFGF21で処
置された動物は、ベクターの用量にかかわらず、AAV8-EF1a-mFGF21で処
置された動物よりも肝臓中での高いFGF21の発現レベルおよび高いFGF21循環レ
ベルの両方を示した(図36AおよびB)。
Example 24. AAV8-hAAT-mo compared to AAV8-Ef1a-mFGF21
FGF21, AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT and AAV1
- Increased FGF21 expression in target tissues and circulating levels of FGF21 in vivo by CMC-moFGF21 Liver expression Male C57B16 mice received 1 x 10 10 vg, 2 x 10 10 vg or 5 x 10 10
AAV8 vector (AAV8-EF1a-mFGF21) encoding WT mouse FGF21 coding sequence under control of vg elongation factor 1a (EF1a) promoter or codon-optimized mouse FGF2 under control of liver-specific hAAT promoter
1 coding sequence (AAV8-hAAT-moFGF2
1) was administered intravenously. Two weeks after AAV administration, animals treated with AAV8-hAAT-moFGF21 had higher expression levels of FGF21 in the liver and higher FGF21 expression than animals treated with AAV8-EF1a-mFGF21, regardless of vector dose. Both circulating levels were shown (FIGS. 36A and B).

脂肪での発現
雄性C57Bl6マウスに、2×1010vg、5×1010vgまたは1×1011
vgの、伸長因子1a(EF1a)プロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21
コーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-EF1a-mFGF21)
またはmiRT122a配列の4個のタンデムリピートおよびmiRT1配列の4個のタ
ンデムリピートを伴った、CAGプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウス
FGF21コーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-CAG-moF
GF21-doublemiRT)のいずれかをeWAT内投与した。AAV投与の2週
後、AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRTで処置された動物は、A
AV8-EF1a-mFGF21を投与した動物よりも、WAT中で高いFGF21の発
現レベルを示した(図37A)。そのうえ、AAV8-CAG-moFGF21-dou
blemiRTで処置された動物は、AAV8-EF1a-mFGF21を投与した動物
よりも肝臓中ではるかに低いFGF21の発現を示しており(図37B)、このことは、
AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRTベクターのeWAT内投与は
オフターゲットの組織における導入遺伝子発現を効率的に排除することを実証する。
Expression in Fat Male C57B16 mice received 2×10 10 vg, 5×10 10 vg or 1×10 11
vg, WT mouse FGF21 under control of the elongation factor 1a (EF1a) promoter
AAV8 vector encoding coding sequence (AAV8-EF1a-mFGF21)
or an AAV8 vector encoding a codon-optimized murine FGF21 coding sequence under the control of the CAG promoter with four tandem repeats of miRT122a sequence and four tandem repeats of miRT1 sequence (AAV8-CAG-moF
GF21-doublemiRT) were administered intra-eWAT. Two weeks after AAV administration, animals treated with AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT showed A
Animals that received AV8-EF1a-mFGF21 showed higher expression levels of FGF21 in WAT (FIG. 37A). Moreover, AAV8-CAG-moFGF21-dou
Animals treated with blemiRT showed much lower expression of FGF21 in the liver than animals treated with AAV8-EF1a-mFGF21 (FIG. 37B), indicating that
We demonstrate that intra-eWAT administration of the AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT vector efficiently eliminates transgene expression in off-target tissues.

骨格筋での発現
雄性C57Bl6マウスに、5×1010vg、1×1011vgまたは3×1011
vgの、伸長因子1a(EF1a)プロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21
コーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-EF1a-mFGF21)
またはCMVプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディ
ング配列をコードするAAV1ベクター(AAV1-CMV-FGF21)のいずれかを
筋肉内投与した。AAV投与の2週後、AAV1-CMV-FGF21で処置された動物
は、AAV8-EF1a-mFGF21を投与した動物よりも骨格筋中ではるかに高いF
GF21の発現レベルを示した(図38A)。そのうえ、AAV8-EF1a-mFGF
21で処置された動物は肝臓中でFGF21の高発現を示したが、AAV1-CMV-F
GF21ベクターの筋肉内投与は肝臓での導入遺伝子発現を効率的に排除した(図38B
)。
Expression in Skeletal Muscle Male C57B16 mice were injected with 5×10 10 vg, 1×10 11 vg or 3×10 11
vg, WT mouse FGF21 under control of the elongation factor 1a (EF1a) promoter
AAV8 vector encoding coding sequence (AAV8-EF1a-mFGF21)
or an AAV1 vector encoding a codon-optimized murine FGF21 coding sequence under control of the CMV promoter (AAV1-CMV-FGF21) was administered intramuscularly. Two weeks after AAV administration, animals treated with AAV1-CMV-FGF21 had a much higher F in skeletal muscle than animals administered AAV8-EF1a-mFGF21.
GF21 expression levels were shown (Fig. 38A). Moreover, AAV8-EF1a-mFGF
Animals treated with 21 showed high expression of FGF21 in the liver, whereas AAV1-CMV-F
Intramuscular administration of GF21 vector efficiently abolished transgene expression in the liver (Fig. 38B).
).

配列
配列番号 配列タイプ
1 ホモ・サピエンス(Homo sapiens)FGF21のアミノ酸配列
2 ムス・ムスクルス(Mus musculus)FGF21のアミノ酸配列
3 カニス・ルプス・ファミリアリス(canis lupus familia
ris)FGF21のアミノ酸配列
4 ホモ・サピエンス(Homo sapiens)FGF21のヌクレオチド配

5 コドン最適化されたホモ・サピエンス(Homo sapiens)FGF2
1-バリアント1のヌクレオチド配列
6 コドン最適化されたホモ・サピエンス(Homo sapiens)FGF2
1-バリアント2のヌクレオチド配列
7 コドン最適化されたホモ・サピエンス(Homo sapiens)FGF2
1-バリアント3のヌクレオチド配列
8 ムス・ムスクルス(Mus musculus)FGF21のヌクレオチド配

9 コドン最適化されたムス・ムスクルス(Mus musculus)FGF2
1のヌクレオチド配列
10 カニス・ルプス・ファミリアリス(canis lupus familia
ris)FGF21のヌクレオチド配列
11 コドン最適化されたカニス・ルプス・ファミリアリス(canis lupu
s familiaris)FGF21のヌクレオチド配列
12 miRT122aをコードするヌクレオチド配列
13 miRT1をコードするヌクレオチド配列
14 miRT152をコードするヌクレオチド配列
15 miRT199a-5pをコードするヌクレオチド配列
16 miRT199a-3pをコードするヌクレオチド配列
17 miRT215をコードするヌクレオチド配列
18 miRT192をコードするヌクレオチド配列
19 miRT148aをコードするヌクレオチド配列
20 miRT194をコードするヌクレオチド配列
21 miRT124をコードするヌクレオチド配列
22 miRT216をコードするヌクレオチド配列
23 miRT125をコードするヌクレオチド配列
24 miRT133aをコードするヌクレオチド配列
25 miRT206をコードするヌクレオチド配列
26 miRT130をコードするヌクレオチド配列
27 miRT99をコードするヌクレオチド配列
28 miRT208-5pをコードするヌクレオチド配列
29 miRT208a-3pをコードするヌクレオチド配列
30 miRT499-5pをコードするヌクレオチド配列
31 コンストラクトA
32 コンストラクトB
33 コンストラクトC
34 コンストラクトD
35 コンストラクトE
36 コンストラクトF
37 コンストラクトG
38 コンストラクトH
39 コンストラクトI
40 コンストラクトJ
41 コンストラクトK
42 コンストラクトL
43 ヒトβ-グロビンおよび免疫グロブリン重鎖遺伝子からのイントロンから構成
されるキメライントロンのヌクレオチド配列
44 CAGプロモーターのヌクレオチド配列
45 CMVプロモーターのヌクレオチド配列
46 CMVエンハンサーのヌクレオチド配列
47 hAATプロモーターのヌクレオチド配列
48 短縮型AAV2 5’ITR
49 短縮型AAV2 3’ITR
50 SV40ポリアデニル化シグナル
51 ウサギβ-グロビンポリアデニル化シグナル
52 CMVプロモーターおよびCMVエンハンサー配列
53 アポリポタンパク質Eからの肝細胞制御領域(HCR)エンハンサー
54 mini/aP2プロモーター
55 mini/UCP1プロモーター
56 C5-12プロモーター
57 pAAV-EF1a-mmFGF21-pA

ホモ・サピエンス(Homo sapiens)FGF21のアミノ酸配列(配列番号1

MDSDETGFEHSGLWVSVLAGLLLGACQAHPIPDSSPLLQF
GGQVRQRYLYTDDAQQTEAHLEIREDGTVGGAADQSPESL
LQLKALKPGVIQILGVKTSRFLCQRPDGALYGSLHFDPEA
CSFRELLLEDGYNVYQSEAHGLPLHLPGNKSPHRDPAPRG
PARFLPLPGLPPALPEPPGILAPQPPDVGSSDPLSMVGPS
QGRSPSYAS

ホモ・サピエンス(Homo sapiens)FGF21のヌクレオチド配列(配列番
号4)
ATGGACTCGGACGAGACCGGGTTCGAGCACTCAGGACTGT
GGGTTTCTGTGCTGGCTGGTCTTCTGCTGGGAGCCTGCCA
GGCACACCCCATCCCTGACTCCAGTCCTCTCCTGCAATTC
GGGGGCCAAGTCCGGCAGCGGTACCTCTACACAGATGATG
CCCAGCAGACAGAAGCCCACCTGGAGATCAGGGAGGATGG
GACGGTGGGGGGCGCTGCTGACCAGAGCCCCGAAAGTCTC
CTGCAGCTGAAAGCCTTGAAGCCGGGAGTTATTCAAATCT
TGGGAGTCAAGACATCCAGGTTCCTGTGCCAGCGGCCAGA
TGGGGCCCTGTATGGATCGCTCCACTTTGACCCTGAGGCC
TGCAGCTTCCGGGAGCTGCTTCTTGAGGACGGATACAATG
TTTACCAGTCCGAAGCCCACGGCCTCCCGCTGCACCTGCC
AGGGAACAAGTCCCCACACCGGGACCCTGCACCCCGAGGA
CCAGCTCGCTTCCTGCCACTACCAGGCCTGCCCCCCGCAC
TCCCGGAGCCACCCGGAATCCTGGCCCCCCAGCCCCCCGA
TGTGGGCTCCTCGGACCCTCTGAGCATGGTGGGACCTTCC
CAGGGCCGAAGCCCCAGCTACGCTTCCTGA

コドン最適化されたホモ・サピエンス(Homo sapiens)FGF21-バリア
ント1のヌクレオチド配列(配列番号5)
ATGGATTCTGATGAGACAGGCTTCGAGCACAGCGGCCTGT
GGGTTTCAGTTCTGGCTGGACTGCTGCTGGGAGCCTGTCA
GGCACACCCTATTCCAGATAGCAGCCCTCTGCTGCAGTTC
GGCGGACAAGTGCGGCAGAGATACCTGTACACCGACGACG
CCCAGCAGACAGAAGCCCACCTGGAAATCAGAGAGGATGG
CACAGTTGGCGGAGCCGCCGATCAGTCTCCTGAATCTCTG
CTCCAGCTGAAGGCCCTGAAGCCTGGCGTGATCCAGATCC
TGGGCGTGAAAACCAGCCGGTTCCTGTGCCAAAGACCTGA
CGGCGCCCTGTATGGCAGCCTGCACTTTGATCCTGAGGCC
TGCAGCTTCAGAGAGCTGCTGCTTGAGGACGGCTACAACG
TGTACCAGTCTGAGGCCCATGGCCTGCCTCTGCATCTGCC
TGGAAACAAGAGCCCTCACAGAGATCCCGCTCCTAGAGGC
CCTGCCAGATTTCTGCCTCTTCCTGGATTGCCTCCTGCTC
TGCCAGAGCCTCCTGGAATTCTGGCTCCTCAGCCTCCTGA
TGTGGGCAGCTCTGATCCTCTGAGCATGGTCGGACCTAGC
CAGGGCAGATCTCCTAGCTACGCCTCTTGA

コドン最適化されたホモ・サピエンス(Homo sapiens)FGF21-バリア
ント2のヌクレオチド配列(配列番号6)
ATGGACAGCGATGAAACCGGGTTCGAGCACAGCGGTCTGT
GGGTGTCCGTGCTGGCCGGACTGCTCCTGGGAGCCTGTCA
GGCGCACCCCATCCCTGACTCCTCGCCGCTGCTGCAATTC
GGCGGACAAGTCCGCCAGAGATACCTGTACACCGACGACG
CCCAGCAGACCGAAGCCCACCTGGAAATTCGGGAGGACGG
GACTGTGGGAGGCGCTGCAGATCAGTCACCCGAGTCCCTC
CTCCAACTGAAGGCCTTGAAGCCCGGCGTGATTCAGATCC
TGGGCGTGAAAACTTCCCGCTTCCTTTGCCAACGGCCGGA
TGGAGCTCTGTACGGATCCCTGCACTTCGACCCCGAAGCC
TGCTCATTCCGCGAGCTGCTCCTTGAGGACGGCTATAACG
TGTACCAGTCTGAGGCCCATGGACTCCCCCTGCATCTGCC
CGGCAACAAGTCCCCTCACCGGGATCCTGCCCCAAGAGGC
CCAGCTCGGTTTCTGCCTCTGCCGGGACTGCCTCCAGCGT
TGCCCGAACCCCCTGGTATCCTGGCCCCGCAACCACCTGA
CGTCGGTTCGTCGGACCCGCTGAGCATGGTCGGTCCGAGC
CAGGGAAGGTCCCCGTCCTACGCATCCTGA

コドン最適化されたホモ・サピエンス(Homo sapiens)FGF21-バリア
ント3のヌクレオチド配列(配列番号7)
ATGGATTCCGACGAAACTGGATTTGAACATTCAGGGCTGT
GGGTCTCTGTGCTGGCTGGACTGCTGCTGGGGGCTTGTCA
GGCTCACCCCATCCCTGACAGCTCCCCTCTGCTGCAGTTC
GGAGGACAGGTGCGGCAGAGATACCTGTATACCGACGATG
CCCAGCAGACAGAGGCACACCTGGAGATCAGGGAGGACGG
AACCGTGGGAGGAGCAGCCGATCAGTCTCCCGAGAGCCTG
CTGCAGCTGAAGGCCCTGAAGCCTGGCGTGATCCAGATCC
TGGGCGTGAAGACATCTCGGTTTCTGTGCCAGCGGCCCGA
CGGCGCCCTGTACGGCTCCCTGCACTTCGATCCCGAGGCC
TGTTCTTTTAGGGAGCTGCTGCTGGAGGACGGCTACAACG
TGTATCAGAGCGAGGCACACGGCCTGCCACTGCACCTGCC
TGGCAATAAGTCCCCTCACCGCGATCCAGCACCCAGGGGC
CCAGCACGCTTCCTGCCTCTGCCAGGCCTGCCCCCTGCCC
TGCCAGAGCCACCCGGCATCCTGGCCCCCCAGCCTCCAGA
TGTGGGCTCCAGCGATCCTCTGTCAATGGTGGGGCCAAGT
CAGGGGCGGAGTCCTTCATACGCATCATAA

miRT122aをコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 122aの標的配列
)(配列番号12)
5’ CAAACACCATTGTCACACTCCA 3’

miRT1をコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 1の標的配列)(配列番号
13)
5’ TTACATACTTCTTTACATTCCA 3’

miRT152をコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 152の標的配列)(
配列番号14)
5’ CCAAGTTCTGTCATGCACTGA 3’

miRT199a-5pをコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 199aの標
的配列)(配列番号15)
5’ GAACAGGTAGTCTGAACACTGGG 3’

miRT199a-3pをコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 199aの標
的配列)(配列番号16)
5’ TAACCAATGTGCAGACTACTGT 3’

miRT215をコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 215の標的配列)(
配列番号17)
5’ GTCTGTCAATTCATAGGTCAT 3’

miRT192をコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 192の標的配列)(
配列番号18)
5’ GGCTGTCAATTCATAGGTCAG 3’

miRT148aをコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 148aの標的配列
)(配列番号19)
5’ ACAAAGTTCTGTAGTGCACTGA 3’

miRT194をコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 194の標的配列)(
配列番号20)
5’ TCCACATGGAGTTGCTGTTACA 3’

miRT124をコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 124の標的配列)(
配列番号21)
5’ GGCATTCACCGCGTGCCTTA 3’

miRT216をコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 216の標的配列)(
配列番号22)
5’ TCACAGTTGCCAGCTGAGATTA 3’

miRT125をコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 125の標的配列)(
配列番号23)
5’ TCACAGGTTAAAGGGTCTCAGGGA 3’

miRT133aをコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 133aの標的配列
)(配列番号24)
5’ CAGCTGGTTGAAGGGGACCAAA 3’

miRT206をコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 206の標的配列)(
配列番号25)
5’ CCACACACTTCCTTACATTCCA 3’

miRT130をコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 130の標的配列)(
配列番号26)
5’ ATGCCCTTTTAACATTGCACTG 3’

miRT99をコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 99の標的配列)(配列
番号27)
5’ CACAAGATCGGATCTACGGGTT 3’

miRT208-5pをコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 208aの標的
配列)(配列番号28)
5’ GTATAACCCGGGCCAAAAGCTC 3’

miRT208a-3pをコードするヌクレオチド配列(マイクロRNA 208aの標
的配列)(配列番号29)
5’ ACAAGCTTTTTGCTCGTCTTAT 3’

miRT499-5pをコードするヌクレオチド配列(心臓特異的なマイクロRNA 4
99の標的配列)(配列番号30)
5’AAACATCACTGCAAGTCTTAA 3’

CAGプロモーターのヌクレオチド配列(配列番号44)
GACATTGATTATTGACTAGTTATTAATAGTAATCAATTAC
GGGGTCATTAGTTCATAGCCCATATATGGAGTTCCGCGTT
ACATAACTTACGGTAAATGGCCCGCCTGGCTGACCGCCCA
ACGACCCCCGCCCATTGACGTCAATAATGACGTATGTTCC
CATAGTAACGCCAATAGGGACTTTCCATTGACGTCAATGG
GTGGAGTATTTACGGTAAACTGCCCACTTGGCAGTACATC
AAGTGTATCATATGCCAAGTACGCCCCCTATTGACGTCAA
TGACGGTAAATGGCCCGCCTGGCATTATGCCCAGTACATG
ACCTTATGGGACTTTCCTACTTGGCAGTACATCTACGTAT
TAGTCATCGCTATTACCATGGTCGAGGTGAGCCCCACGTT
CTGCTTCACTCTCCCCATCTCCCCCCCCTCCCCACCCCCA
ATTTTGTATTTATTTATTTTTTAATTATTTTGTGCAGCGA
TGGGGGCGGGGGGGGGGGGGGGGCGCGCGCCAGGCGGGGC
GGGGCGGGGCGAGGGGCGGGGCGGGGCGAGGCGGAGAGGT
GCGGCGGCAGCCAATCAGAGCGGCGCGCTCCGAAAGTTTC
CTTTTATGGCGAGGCGGCGGCGGCGGCGGCCCTATAAAAA
GCGAAGCGCGCGGCGGGCGGGAGTCGCTGCGTTGCCTTCG
CCCCGTGCCCCGCTCCGCGCCGCCTCGCGCCGCCCGCCCC
GGCTCTGACTGACCGCGTTACTCCCACAGGTGAGCGGGCG
GGACGGCCCTTCTCCTCCGGGCTGTAATTAGCGCTTGGTT
TAATGACGGCTTGTTTCTTTTCTGTGGCTGCGTGAAAGCC
TTGAGGGGCTCCGGGAGGGCCCTTTGTGCGGGGGGAGCGG
CTCGGGGGGTGCGTGCGTGTGTGTGTGCGTGGGGAGCGCC
GCGTGCGGCTCCGCGCTGCCCGGCGGCTGTGAGCGCTGCG
GGCGCGGCGCGGGGCTTTGTGCGCTCCGCAGTGTGCGCGA
GGGGAGCGCGGCCGGGGGCGGTGCCCCGCGGTGCGGGGGG
CTGCGAGGGGAACAAAGGCTGCGTGCGGGGTGTGTGCGTG
GGGGGGTGAGCAGGGGGTGTGGGCGCGTCGGTCGGGCTGC
AACCCCCCCTGCACCCCCCTCCCCGAGTTGCTGAGCACGG
CCCGGCTTCGGGTGCGGGGCTCCGTACGGGGCGTGGCGCG
GGGCTCGCCGTGCCGGGCGGGGGGTGGCGGCAGGTGGGGG
TGCCGGGCGGGGCGGGGCCGCCTCGGGCCGGGGAGGGCTC
GGGGGAGGGGCGCGGCGGCCCCCGGAGCGCCGGCGGCTGT
CGAGGCGCGGCGAGCCGCAGCCATTGCCTTTTATGGTAAT
CGTGCGAGAGGGCGCAGGGACTTCCTTTGTCCCAAATCTG
TGCGGAGCCGAAATCTGGGAGGCGCCGCCGCACCCCCTCT
AGCGGGCGCGGGGCGAAGCGGTGCGGCGCCGGCAGGAAGG
AAATGGGCGGGGAGGGCCTTCGTGCGTCGCCGCGCCGCCG
TCCCCTTCTCCCTCTCCAGCCTCGGGGCTGTCCGCGGGGG
GACGGCTGCCTTCGGGGGGGACGGGGCAGGGCGGGGTTCG
GCTTCTGGCGTGTGACCGGCGGCTCTAGAGCCTCTGCTAA
CCATGTTCATGCCTTCTTCTTTTTCCTACAG

CMVプロモーターのヌクレオチド配列(配列番号45)
GTGATGCGGTTTTGGCAGTACACCAATGGGCGTGGATAGC
GGTTTGACTCACGGGGATTTCCAAGTCTCCACCCCATTGA
CGTCAATGGGAGTTTGTTTTGGCACCAAAATCAACGGGAC
TTTCCAAAATGTCGTAACAACTGCGATCGCCCGCCCCGTT
GACGCAAATGGGCGGTAGGCGTGTACGGTGGGAGGTCTAT
ATAAGCAGAGCT

CMVエンハンサーのヌクレオチド配列(配列番号46)
GGCATTGATTATTGACTAGTTATTAATAGTAATCAATTAC
GGGGTCATTAGTTCATAGCCCATATATGGAGTTCCGCGTT
ACATAACTTACGGTAAATGGCCCGCCTGGCTGACCGCCCA
ACGACCCCCGCCCATTGACGTCAATAATGACGTATGTTCC
CATAGTAACGCCAATAGGGACTTTCCATTGACGTCAATGG
GTGGAGTATTTACGGTAAACTGCCCACTTGGCAGTACATC
AAGTGTATCATATGCCAAGTCCGCCCCCTATTGACGTCAA
TGACGGTAAATGGCCCGCCTGGCATTATGCCCAGTACATG
ACCTTACGGGACTTTCCTACTTGGCAGTACATCTACGTAT
TAGTCATCGCTATTACCATG

hAATプロモーターのヌクレオチド配列(配列番号47)
GATCTTGCTACCAGTGGAACAGCCACTAAGGATTCTGCAG
TGAGAGCAGAGGGCCAGCTAAGTGGTACTCTCCCAGAGAC
TGTCTGACTCACGCCACCCCCTCCACCTTGGACACAGGAC
GCTGTGGTTTCTGAGCCAGGTACAATGACTCCTTTCGGTA
AGTGCAGTGGAAGCTGTACACTGCCCAGGCAAAGCGTCCG
GGCAGCGTAGGCGGGCGACTCAGATCCCAGCCAGTGGACT
TAGCCCCTGTTTGCTCCTCCGATAACTGGGGTGACCTTGG
TTAATATTCACCAGCAGCCTCCCCCGTTGCCCCTCTGGAT
CCACTGCTTAAATACGGACGAGGACAGGGCCCTGTCTCCT
CAGCTTCAGGCACCACCACTGACCTGGGACAGTGAAT

短縮型AAV2 5’ITR(配列番号48)
GCGCGCTC GCTCGCTCAC TGAGGCCGCC CGGGCAAAG

CCGGGCGTCG GGCGACCTTT GGTCGCCCGG CCTCAGT
GAG CGAGCGAGCG
CGCAGAGAGG GAGTGGCCAA CTCCATCACT AGGGGTT
CCT

短縮型AAV2 3’ITR(配列番号49)
AGGAACCCCT AGTGATGGAG TTGGCCACTC CCTCTCT
GCG
CGCTCGCTCG CTCACTGAGG CCGGGCGACC AAAGGTC
GCC CGACGCCCGG GCTTTGCCCG GGCGGCCTCA GTG
AGCGAGC GAGCGCGC

SV40ポリアデニル化シグナル(配列番号50)
TAAGATACATTGATGAGTTTGGACAAACCACAACTAGAAT
GCAGTGAAAAAAATGCTTTATTTGTGAAATTTGTGATGCT
ATTGCTTTATTTGTAACCATTATAAGCTGCAATAAACAAG
TT

ウサギβ-グロビンポリアデニル化シグナル(配列番号51)
GATCTTTTTCCCTCTGCCAAAAATTATGGGGACATCATGA
AGCCCCTTGAGCATCTGACTTCTGGCTAATAAAGGAAATT
TATTTTCATTGCAATAGTGTGTTGGAATTTTTTGTGTCTC
TCACTCGGAAGGACATATGGGAGGGCAAATCATTTAAAAC
ATCAGAATGAGTATTTGGTTTAGAGTTTGGCAACATATGC
CCATATGCTGGCTGCCATGAACAAAGGTTGGCTATAAAGA
GGTCATCAGTATATGAAACAGCCCCCTGCTGTCCATTCCT
TATTCCATAGAAAAGCCTTGACTTGAGGTTAGATTTTTTT
TATATTTTGTTTTGTGTTATTTTTTTCTTTAACATCCCTA
AAATTTTCCTTACATGTTTTACTAGCCAGATTTTTCCTCC
TCTCCTGACTACTCCCAGTCATAGCTGTCCCTCTTCTCTT
ATGGAGATC

CMVプロモーターおよびCMVエンハンサー配列(配列番号52)
GGCATTGATTATTGACTAGTTATTAATAGTAATCAATTAC
GGGGTCATTAGTTCATAGCCCATATATGGAGTTCCGCGTT
ACATAACTTACGGTAAATGGCCCGCCTGGCTGACCGCCCA
ACGACCCCCGCCCATTGACGTCAATAATGACGTATGTTCC
CATAGTAACGCCAATAGGGACTTTCCATTGACGTCAATGG
GTGGAGTATTTACGGTAAACTGCCCACTTGGCAGTACATC
AAGTGTATCATATGCCAAGTCCGCCCCCTATTGACGTCAA
TGACGGTAAATGGCCCGCCTGGCATTATGCCCAGTACATG
ACCTTACGGGACTTTCCTACTTGGCAGTACATCTACGTAT
TAGTCATCGCTATTACCATGGTGATGCGGTTTTGGCAGTA
CACCAATGGGCGTGGATAGCGGTTTGACTCACGGGGATTT
CCAAGTCTCCACCCCATTGACGTCAATGGGAGTTTGTTTT
GGCACCAAAATCAACGGGACTTTCCAAAATGTCGTAACAA
CTGCGATCGCCCGCCCCGTTGACGCAAATGGGCGGTAGGC
GTGTACGGTGGGAGGTCTATATAAGCAGAGCT

アポリポタンパク質Eからの肝細胞制御領域(HCR)エンハンサー(配列番号53)
CAGAGAGGTCTCTGACCTCTGCCCCAGCTCCAAGGTCAGC
AGGCAGGGAGGGCTGTGTGTTTGCTGTTTGCTGCTTGCAA
TGTTTGCCCATTTTAGGGACATGAGTAGGCTGAAGTTTGT
TCAGTGTGGACTTCAGAGGCAGCACACAAACAGC

miniaP2プロモーター(配列番号54)
GATTA
ACCCGCCATG CTACTTATCT ACTCGACATT GATTATT
GAC TAGGGGAATT
CCAGCAGGAA TCAGGTAGCT GGAGAATCGC ACAGAGC
CAT GCGATTCTTG
GCAAGCCATG CGACAAAGGC AGAAATGCAC ATTTCAC
CCA GAGAGAAGGG
ATTGATGTCA GCAGGAAGTC ACCACCCAGA GAGCAAA
TGG AGTTCCCAGA
TGCCTGACAT TTGCCTTCTT ACTGGATCAG AGTTCAC
TAG TGGAAGTGTC
ACAGCCCAAA CACTCCCCCA AAGCTCAGCC CTTCCTT
GCC TTGTAACAAT
CAAGCCGCTC CTGGATGAAC TGCTCCGCCC TCTGTCT
CTT TGGCAGGGTT
GGAGCCCACT GTGGCCTGAG CGACTTCTAT GGCTCCC
TTT TCTGTGATTT
TCATGGTTTC TGAGCTCTTT TCCCCCGCTT TATGATT
TTC TCTTTTTGTC
TCTCTCTTGC TAAACCTCCT TCGTATATAT GCCCTCT
CAG GTTTCATTTC
TGAATCATCT ACTGTGAACT ATTCCCATTG TTTGCCA
GAA GCCCCCTGGT
TCTTCCTTCT AGACACCAGG CAAGGGGCAG GAGGTAA
GAG GCAGGAGTCC
ATAAAACAGC CCTGAGAGCC TGCTGGGTCA GTGCCTG
CTG TCAGAA

miniUCP1プロモーター(配列番号55)
GACGTCACAG TGGGTCAGTC ACCCTTGATC ACACTGC
ACC AGTCTTCACC
TTTCCACGCT TCCTGCCAGA GCATGAATCA GGCTCTC
TGG GGATACCGGC
CTCACCCCTA CTGAGGCAAA CTTTCTCCCA CTTCTCA
GAG GCTCTGAGGG
CAGCAAGGTC AGCCCTTTCT TTGGAATCTA GAACCAC
TCC CTGTCTTGAG
CTGACATCAC AGGGCAGGCA GATGCAGCAG GGAAGGG
CCT GGGACTGGGA
CGTTCATCCT ACAAGAAAGC TGTGGAACTT TTCAGCA
ACA TCTCAGAAAT
CAGATCGCAC TTATTCAAAG GAGCCAGGCC CTGCTCT
GCG CCCTGGTGGA
GGCTCCTCAT GTGAAGAGTG ACAAAAGGCA CCATGTT
GTG GATACGGGGC
GAAGCCCCTC CGGTGTGTCC TCCAGGCATC ATCAGGA
ACT AGTGCCAAAG
CAGAGGTGCT GGCCAGGGCT TTGGGAGTGA CGCGCGT
CTG GGAGGCTTGT
GCGCCCAGGG CACGCCCCTG CCGATTCCCA CTAGCAG
GTC TTGGGGGACC
TGGGCCGGCT CTGCCCCTCC TCCAGCAATC GGGCTAT
AAA GCTCTTCCAA
GTCAGGGCGC AGAAGTGCCG GGCGATCCGG GCTTAAA
GAG CGAGAGGAAG
GGACGCTCAC CTTTGAGCTC CTCCACAAAT AGCCCTG
GTG GCTGCCACAG
AAGTTCGAAG TTGAGAGTTC GG

C5-12プロモーター(配列番号56)
CGGCCGTCCG CCTTCGGCAC CATCCTCACG ACACCCA
AAT ATGGCGACGG GTGAGGAATG
GTGGGGAGTT ATTTTTAGAG CGGTGAGGAA GGTGGGC
AGG CAGCAGGTGT TGGCGCTCTA
AAAATAACTC CCGGGAGTTA TTTTTAGAGC GGAGGAA
TGG TGGACACCCA AATATGGCGA
CGGTTCCTCA CCCGTCGCCA TATTTGGGTG TCCGCCC
TCG GCCGGGGCCG CATTCCTGGG
GGCCGGGCGG TGCTCCCGCC CGCCTCGATA AAAGGCT
CCG GGGCCGGCGG CGGCCCACGA
GCTACCCGGA GGAGCGGGAG GCGCCA

pAAV-EF1a-mmFGF21-pA(配列番号57)

CCTGCAGGCAGCTGCGCGCTCGCTCGCTCACTGAGGCCGC
CCGGGCAAAGCCCGGGCGTCGGGCGACCTTTGGTCGCCCG
GCCTCAGTGAGCGAGCGAGCGCGCAGAGAGGGAGTGGCCA
ACTCCATCACTAGGGGTTCCTGCGGCCGCGGCTCCGGTGC
CCGTCAGTGGGCAGAGCGCACATCGCCCACAGTCCCCGAG
AAGTTGGGGGGAGGGGTCGGCAATTGAACCGGTGCCTAGA
GAAGGTGGCGCGGGGTAAACTGGGAAAGTGATGTCGTGTA
CTGGCTCCGCCTTTTTCCCGAGGGTGGGGGAGAACCGTAT
ATAAGTGCAGTAGTCGCCGTGAACGTTCTTTTTCGCAACG
GGTTTGCCGCCAGAACACAGGTAAGTGCCGTGTGTGGTTC
CCGCGGGCCTGGCCTCTTTACGGGTTATGGCCCTTGCGTG
CCTTGAATTACTTCCACTGGCTGCAGTACGTGATTCTTGA
TCCCGAGCTTCGGGTTGGAAGTGGGTGGGAGAGTTCGAGG
CCTTGCGCTTAAGGAGCCCCTTCGCCTCGTGCTTGAGTTG
AGGCCTGGCCTGGGCGCTGGGGCCGCCGCGTGCGAATCTG
GTGGCACCTTCGCGCCTGTCTCGCTGCTTTCGATAAGTCT
CTAGCCATTTAAAATTTTTGATGACCTGCTGCGACGCTTT
TTTTCTGGCAAGATAGTCTTGTAAATGCGGGCCAAGATCT
GCACACTGGTATTTCGGTTTTTGGGGCCGCGGGCGGCGAC
GGGGCCCGTGCGTCCCAGCGCACATGTTCGGCGAGGCGGG
GCCTGCGAGCGCGGCCACCGAGAATCGGACGGGGGTAGTC
TCAAGCTGGCCGGCCTGCTCTGGTGCCTGGCCTCGCGCCG
CCGTGTATCGCCCCGCCCTGGGCGGCAAGGCTGGCCCGGT
CGGCACCAGTTGCGTGAGCGGAAAGATGGCCGCTTCCCGG
CCCTGCTGCAGGGAGCTCAAAATGGAGGACGCGGCGCTCG
GGAGAGCGGGCGGGTGAGTCACCCACACAAAGGAAAAGGG
CCTTTCCGTCCTCAGCCGTCGCTTCATGTGACTCCACGGA
GTACCGGGCGCCGTCCAGGCACCTCGATTAGTTCTCGAGC
TTTTGGAGTACGTCGTCTTTAGGTTGGGGGGAGGGGTTTT
ATGCGATGGAGTTTCCCCACACTGAGTGGGTGGAGACTGA
AGTTAGGCCAGCTTGGCACTTGATGTAATTCTCCTTGGAA
TTTGCCCTTTTTGAGTTTGGATCTTGGTTCATTCTCAAGC
CTCAGACAGTGGTTCAAAGTTTTTTTCTTCCATTTCAGGT
GTCGTGAGGAATTTCGACTGCTAGCACGCGTGATATCAAT
GGAATGGATGAGATCTAGAGTTGGGACCCTGGGACTGTGG
GTCCGACTGCTGCTGGCTGTCTTCCTGCTGGGGGTCTACC
AAGCATACCCCATCCCTGACTCCAGCCCCCTCCTCCAGTT
TGGGGGTCAAGTCCGGCAGAGGTACCTCTACACAGATGAC
GACCAAGACACTGAAGCCCACCTGGAGATCAGGGAGGATG
GAACAGTGGTAGGCGCAGCACACCGCAGTCCAGAAAGTCT
CCTGGAGCTCAAAGCCTTGAAGCCAGGGGTCATTCAAATC
CTGGGTGTCAAAGCCTCTAGGTTTCTTTGCCAACAGCCAG
ATGGAGCTCTCTATGGATCGCCTCACTTTGATCCTGAGGC
CTGCAGCTTCAGAGAACTGCTGCTGGAGGACGGTTACAAT
GTGTACCAGTCTGAAGCCCATGGCCTGCCCCTGCGTCTGC
CTCAGAAGGACTCCCCAAACCAGGATGCAACATCCTGGGG
ACCTGTGCGCTTCCTGCCCATGCCAGGCCTGCTCCACGAG
CCCCAAGACCAAGCAGGATTCCTGCCCCCAGAGCCCCCAG
ATGTGGGCTCCTCTGACCCCCTGAGCATGGTAGAGCCTTT
ACAGGGCCGAAGCCCCAGCTATGCGTCCTGAGATATCAAA
GAATTCTAAGCTTGTCGACGAATGCAATTGTTGTTAATTA
ATTGTTAACTTGTTTATTGCAGCTTATAATGGTTACAAAT
AAAGCAATAGCATCACAAATTTCACAAATAAAGCATTTTT
TTCACTGCATTCTAGTTGTGGTTTGTCCAAACTCATCAAT
GTATCTTAGTCGAGTTAATTAACGGCGGCCGCAGGAACCC
CTAGTGATGGAGTTGGCCACTCCCTCTCTGCGCGCTCGCT
CGCTCACTGAGGCCGGGCGACCAAAGGTCGCCCGACGCCC
GGGCTTTGCCCGGGCGGCCTCAGTGAGCGAGCGAGCGCGC
AGCTGCCTGCAGGGGCGCCTGATGCGGTATTTTCTCCTTA
CGCATCTGTGCGGTATTTCACACCGCATACGTCAAAGCAA
CCATAGTACGCGCCCTGTAGCGGCGCATTAAGCGCGGCGG
GTGTGGTGGTTACGCGCAGCGTGACCGCTACACTTGCCAG
CGCCCTAGCGCCCGCTCCTTTCGCTTTCTTCCCTTCCTTT
CTCGCCACGTTCGCCGGCTTTCCCCGTCAAGCTCTAAATC
GGGGGCTCCCTTTAGGGTTCCGATTTAGTGCTTTACGGCA
CCTCGACCCCAAAAAACTTGATTTGGGTGATGGTTCACGT
AGTGGGCCATCGCCCTGATAGACGGTTTTTCGCCCTTTGA
CGTTGGAGTCCACGTTCTTTAATAGTGGACTCTTGTTCCA
AACTGGAACAACACTCAACCCTATCTCGGGCTATTCTTTT
GATTTATAAGGGATTTTGCCGATTTCGGCCTATTGGTTAA
AAAATGAGCTGATTTAACAAAAATTTAACGCGAATTTTAA
CAAAATATTAACGTTTACAATTTTATGGTGCACTCTCAGT
ACAATCTGCTCTGATGCCGCATAGTTAAGCCAGCCCCGAC
ACCCGCCAACACCCGCTGACGCGCCCTGACGGGCTTGTCT
GCTCCCGGCATCCGCTTACAGACAAGCTGTGACCGTCTCC
GGGAGCTGCATGTGTCAGAGGTTTTCACCGTCATCACCGA
AACGCGCGAGACGAAAGGGCCTCGTGATACGCCTATTTTT
ATAGGTTAATGTCATGATAATAATGGTTTCTTAGACGTCA
GGTGGCACTTTTCGGGGAAATGTGCGCGGAACCCCTATTT
GTTTATTTTTCTAAATACATTCAAATATGTATCCGCTCAT
GAGACAATAACCCTGATAAATGCTTCAATAATATTGAAAA
AGGAAGAGTATGAGTATTCAACATTTCCGTGTCGCCCTTA
TTCCCTTTTTTGCGGCATTTTGCCTTCCTGTTTTTGCTCA
CCCAGAAACGCTGGTGAAAGTAAAAGATGCTGAAGATCAG
TTGGGTGCACGAGTGGGTTACATCGAACTGGATCTCAACA
GCGGTAAGATCCTTGAGAGTTTTCGCCCCGAAGAACGTTT
TCCAATGATGAGCACTTTTAAAGTTCTGCTATGTGGCGCG
GTATTATCCCGTATTGACGCCGGGCAAGAGCAACTCGGTC
GCCGCATACACTATTCTCAGAATGACTTGGTTGAGTACTC
ACCAGTCACAGAAAAGCATCTTACGGATGGCATGACAGTA
AGAGAATTATGCAGTGCTGCCATAACCATGAGTGATAACA
CTGCGGCCAACTTACTTCTGACAACGATCGGAGGACCGAA
GGAGCTAACCGCTTTTTTGCACAACATGGGGGATCATGTA
ACTCGCCTTGATCGTTGGGAACCGGAGCTGAATGAAGCCA
TACCAAACGACGAGCGTGACACCACGATGCCTGTAGCAAT
GGCAACAACGTTGCGCAAACTATTAACTGGCGAACTACTT
ACTCTAGCTTCCCGGCAACAATTAATAGACTGGATGGAGG
CGGATAAAGTTGCAGGACCACTTCTGCGCTCGGCCCTTCC
GGCTGGCTGGTTTATTGCTGATAAATCTGGAGCCGGTGAG
CGTGGGTCTCGCGGTATCATTGCAGCACTGGGGCCAGATG
GTAAGCCCTCCCGTATCGTAGTTATCTACACGACGGGGAG
TCAGGCAACTATGGATGAACGAAATAGACAGATCGCTGAG
ATAGGTGCCTCACTGATTAAGCATTGGTAACTGTCAGACC
AAGTTTACTCATATATACTTTAGATTGATTTAAAACTTCA
TTTTTAATTTAAAAGGATCTAGGTGAAGATCCTTTTTGAT
AATCTCATGACCAAAATCCCTTAACGTGAGTTTTCGTTCC
ACTGAGCGTCAGACCCCGTAGAAAAGATCAAAGGATCTTC
TTGAGATCCTTTTTTTCTGCGCGTAATCTGCTGCTTGCAA
ACAAAAAAACCACCGCTACCAGCGGTGGTTTGTTTGCCGG
ATCAAGAGCTACCAACTCTTTTTCCGAAGGTAACTGGCTT
CAGCAGAGCGCAGATACCAAATACTGTCCTTCTAGTGTAG
CCGTAGTTAGGCCACCACTTCAAGAACTCTGTAGCACCGC
CTACATACCTCGCTCTGCTAATCCTGTTACCAGTGGCTGC
TGCCAGTGGCGATAAGTCGTGTCTTACCGGGTTGGACTCA
AGACGATAGTTACCGGATAAGGCGCAGCGGTCGGGCTGAA
CGGGGGGTTCGTGCACACAGCCCAGCTTGGAGCGAACGAC
CTACACCGAACTGAGATACCTACAGCGTGAGCTATGAGAA
AGCGCCACGCTTCCCGAAGGGAGAAAGGCGGACAGGTATC
CGGTAAGCGGCAGGGTCGGAACAGGAGAGCGCACGAGGGA
GCTTCCAGGGGGAAACGCCTGGTATCTTTATAGTCCTGTC
GGGTTTCGCCACCTCTGACTTGAGCGTCGATTTTTGTGAT
GCTCGTCAGGGGGGCGGAGCCTATGGAAAAACGCCAGCAA
CGCGGCCTTTTTACGGTTCCTGGCCTTTTGCTGGCCTTTT
GCTCACATGT

伸長因子1アルファプロモーター:150から1327(1178bp)
ムス・ムスクルス(Mus musculus)FGF21:1359から(633bp

配列番号57は、短縮型AAV2 5’および3’ITRおよびSV40 polyAも
含有する(既に配列表中に包含されている、配列番号48、49および50)。
SEQ ID NO: Sequence type 1 Homo sapiens FGF21 amino acid sequence 2 Mus musculus FGF21 amino acid sequence 3 Canis lupus familiaris
ris) Amino acid sequence 4 of FGF21 Nucleotide sequence 5 of Homo sapiens FGF21 Codon-optimized Homo sapiens FGF2
1—nucleotide sequence of variant 1 6 codon-optimized Homo sapiens FGF2
1-Variant 2 nucleotide sequence 7 codon-optimized Homo sapiens FGF2
1 - Nucleotide sequence of variant 3 8 Nucleotide sequence of Mus musculus FGF21 9 Codon-optimized Mus musculus FGF2
Nucleotide sequence of 1 10 Canis lupus familiaris
ris) nucleotide sequence of FGF21 11 codon optimized canis lupus familiaris
Nucleotide sequence encoding miRT122a 13 Nucleotide sequence encoding miRT1 14 Nucleotide sequence encoding miRT152 15 Nucleotide sequence encoding miRT199a-5p 16 Nucleotide sequence encoding miRT199a-3p 17 Encoding miRT215 18 a nucleotide sequence encoding miRT192 19 a nucleotide sequence encoding miRT148a 20 a nucleotide sequence encoding miRT194 21 a nucleotide sequence encoding miRT124 22 a nucleotide sequence encoding miRT216 23 a nucleotide sequence encoding miRT125 24 a nucleotide sequence encoding miRT133a Nucleotide sequence encoding miRT206 26 Nucleotide sequence encoding miRT130 27 Nucleotide sequence encoding miRT99 28 Nucleotide sequence encoding miRT208-5p 29 Nucleotide sequence encoding miRT208a-3p 30 Nucleotide sequence encoding miRT499-5p 31 Construct A
32 Construct B
33 Construct C
34 Construct D
35 Construct E
36 Construct F
37 Construct G
38 Construct H
39 Construct I
40 Construct J
41 Construct K
42 Construct L
43 nucleotide sequence of chimeric intron composed of introns from human β-globin and immunoglobulin heavy chain genes 44 nucleotide sequence of CAG promoter 45 nucleotide sequence of CMV promoter 46 nucleotide sequence of CMV enhancer 47 nucleotide sequence of hAAT promoter 48 truncated AAV2 5'ITR
49 Truncated AAV2 3'ITR
50 SV40 polyadenylation signal 51 Rabbit β-globin polyadenylation signal 52 CMV promoter and CMV enhancer sequences 53 Hepatocyte control region (HCR) enhancer from apolipoprotein E 54 mini/aP2 promoter 55 mini/UCP1 promoter 56 C5-12 promoter 57 pAAV-EF1a-mmFGF21-pA

Homo sapiens FGF21 amino acid sequence (SEQ ID NO: 1
)
MDSDETGFEHSGLWVSVLAGLLLGACQAHPIPDSSPLLQF
GGQVRQRYLYTDDAQQTEAHLEIREDGTVGGAADQSPESL
LQLKALKPGVIQILGVKTSRFLCQRPDGALYGSLHFDPEA
CSFRELLLEDGYNVYQSEAHGLPLHLPGNKSPHRDPAPRG
PARFLPLPGLLPPALPEPPGILAPQPPDVGSSDPLSMVGPS
QGRSP YAS

Homo sapiens FGF21 nucleotide sequence (SEQ ID NO: 4)
ATGGACTCGGACGAGAGACCGGGTTCGAGCACTCAGGACTGT
GGGTTTCTGTGCTGGCTGGTCTTCTGCTGGGAGCCTGCCA
GGCACACCCCATCCCTGACTCCAGTCCTCTCCCTGCAATTC
GGGGGCCAAGTCCGGCAGCGGTACCTCTCACACAGATGATG
CCCAGCAGACAGAAGCCCCACCTGGAGATCAGGGAGGATGG
GACGGTGGGGGGGCGCTGCTGACCAGAGCCCCGAAAGTCTC
CTGCAGCTGAAGCCTTGAAGCCGGGAGTTATTCAAATCT
TGGGAGTCAAGACATCCAGGTTCCTGTGCCAGCGGCCAGA
TGGGGCCCTGTATGGATCGCTCCACTTTGACCCTGAGGCC
TGCAGCTTCCGGGAGCTGCTTCTTGAGGACGGATACAATG
TTTACCAGTCCGAAGCCCCACGGCCTCCCCGCTGCACCTGCC
AGGGAACAAGTCCCCACACCGGGACCCTGCACCCCGAGGA
CCAGCTCGCTTCCTGCCACTACCAGGCCTGCCCCCCCGCAC
TCCCGGAGCCACCCGGAATCCTGGCCCCCCCAGCCCCCCGA
TGTGGGCTCCTCGGACCCTCTGAGCATGGTGGGACCTTCC
CAGGGCCGAAGCCCCAGCTACGCTTCCTGA

Codon-optimized Homo sapiens FGF21-variant 1 nucleotide sequence (SEQ ID NO: 5)
ATGGATTCTGATGAGACAGGCTTCGAGCACAGCGGCCTGT
GGGTTTCAGTTCTGGCTGGACTGCTGCTGGGGAGCCTGTCA
GGCACACCCTATTCCAGATAGCAGCCCCTCTGCTGCAGTTC
GGCGGACAAGTGCGGCAGAGATACCTGTACACCGACGACG
CCCAGCAGACAGAAGCCCCACCTGGAAAATCAGAGAGGATGG
CACAGTTGGGCGGAGCCGCCGATCAGTCTCCTGAATCTCTG
CTCCAGCTGAAGGCCCTGAAGCCTGGCGTGATCCAGATCC
TGGGCGTGAAAACCAGCCGGTTCCTGTGCCAAAGACCTGA
CGGCGCCCTGTATGGCAGCCTGCACTTTGATCCTGAGGCC
TGCAGCTTCAGAGAGCTGCTGCTTGAGGACGGCTACAACG
TGTACCAGTCTGAGGCCCATGGCCTGCCTCTGCATCTGCC
TGGAAACAAGAGCCCCTCACAGAGATCCCCGCTCCTAGAGGC
CCTGCCAGATTTCTGCCTCTTCCTGGATTGCCTCCTGCTC
TGCCAGAGCCTCCTGGAATTCTGGCTCTCTCAGCCTCCTGA
TGTGGGCAGCTCTGATCCCTCTGAGCATGGTCGGACCTAGC
CAGGGCAGATCTCCTAGCTACGCTCTTGA

Codon-optimized Homo sapiens FGF21-Variant 2 nucleotide sequence (SEQ ID NO: 6)
ATGGACAGCGATGAAAACCGGGTTCGAGCACAGCGGTCTGT
GGGTGTCCGTGCTGGCCGGACTGCTCCTGGGAGCCTGTCA
GGCGCACCCCATCCCTGACTCCTCGCCGCTGCTGCAATTC
GGCGGACAAGTCCGCCAGAGATACCTGTACACCGACGACG
CCCAGCAGACCGAAGCCCCACCTGGAAATTCGGGAGGACGG
GACTGTGGGAGGCGCTGCAGATCAGTCACCCGAGTCCCTC
CTCCAACTGAAGGCCTTGAAGCCCCGGCGTGATTCAGATCC
TGGGCGTGAAAACTTCCCGCTTCCTTTGCCAACGGCCGGA
TGGAGCTCTCTGTACGGATCCCTGCACTTCGACCCCGAAGCC
TGCTCATTCGCGAGCTGCTCCTTGAGGACGGCTATAACG
TGTACCAGTCTGAGGCCCATGGACTCCCCCTGCCATCTGCC
CGGCAACAAGTCCCCTCACCGGGATCCTGCCCCAAGAGGC
CCAGCTCGGTTTCTGCCTCTGCCGGGGACTGCCTCCAGCGT
TGCCCGAACCCCCCTGGTATCCTGGCCCCGCAACCACCTGA
CGTCGGTTCGTCGGACCCGCTGAGCATGGTCGGTCCGAGC
CAGGGAAGGTCCCCGTCCTACGCATCCTGA

Codon-optimized Homo sapiens FGF21-variant 3 nucleotide sequence (SEQ ID NO: 7)
ATGGATTCCGACGAAAACTGGATTTGAACATTCAGGGGCTGT
GGGTCTCTGTGCTGGCTGGACTGCTGCTGGGGGCTTGTCA
GGCTCACCCCATCCCTGACAGCTCCCCCTCTGCTGCAGTTTC
GGAGGACAGGTGCGGCAGAGATACCTGTATACCGACGATG
CCCAGCAGACAGAGGCACACCTGGAGATCAGGGAGGACGG
AACCGTGGGGAGGAGCAGCCGATCAGTCTCCCGAGAGCTG
CTGCAGCTGAAGGCCCTGAAGCCTGGCGTGATCCAGATCC
TGGGCGTGAAGACATCTCGGTTTCTGTGCCAGCGGCCCGA
CGGCGCCCCTGTACGGCTCCCTGCACTTCGATCCCGAGGCC
TGTTCTTTTAGGGAGCTGCTGCTGGGAGGACGGCTACAACG
TGTATCAGAGCGAGGCACACGGCCTGCCACTGCACCTGCC
TGGCAATAAGTCCCCCTCACCGCGATCCAGCACCCCAGGGGC
CCAGCACGCTTCCTGCCTCTGCCAGGCCTGCCCCCTGCCC
TGCCAGAGCCACCCGGCATCCTGGCCCCCCAGCCCTCCAGA
TGTGGGCTCCAGCGATCCTCTGTCAATGGTGGGGCCAAGT
CAGGGGCGGAGTCCTTCATACGCATCATAA

Nucleotide sequence encoding miRT122a (target sequence of microRNA 122a) (SEQ ID NO: 12)
5'CAAACACCATTGTCACACTCCA 3'

Nucleotide sequence encoding miRT1 (target sequence of microRNA 1) (SEQ ID NO: 13)
5' TTACATACTTCTTTACATTCCA 3'

Nucleotide sequence encoding miRT152 (target sequence of microRNA 152) (
SEQ ID NO: 14)
5' CCAAGTTCTGTCATGCACTGA 3'

Nucleotide sequence encoding miRT199a-5p (target sequence of microRNA 199a) (SEQ ID NO: 15)
5' GAACAGGTAGTCTGAACACTGGG 3'

Nucleotide sequence encoding miRT199a-3p (target sequence of microRNA 199a) (SEQ ID NO: 16)
5' TAACCAATGTGCAGACTACTGT 3'

Nucleotide sequence encoding miRT215 (target sequence of microRNA 215) (
SEQ ID NO: 17)
5'GTCTGTCAATTCATAGGTCAT 3'

Nucleotide sequence encoding miRT192 (target sequence of microRNA 192) (
SEQ ID NO: 18)
5' GGCTGTCAATTCATAGGTCAG 3'

Nucleotide sequence encoding miRT148a (target sequence of microRNA 148a) (SEQ ID NO: 19)
5' ACAAAGTTCTGTAGTGCACTGA 3'

Nucleotide sequence encoding miRT194 (target sequence of microRNA 194) (
SEQ ID NO:20)
5' TCCACATGGAGTTGCTGTTACA 3'

Nucleotide sequence encoding miRT124 (target sequence of microRNA 124) (
SEQ ID NO:21)
5′ GGCATTCACCGCGTGCCTTA 3′

Nucleotide sequence encoding miRT216 (target sequence of microRNA 216) (
SEQ ID NO:22)
5' TCACAGTTGCCAGCTGAGATTA 3'

Nucleotide sequence encoding miRT125 (target sequence of microRNA 125) (
SEQ ID NO:23)
5' TCACAGGTTAAAAGGGTTCTCAGGGA 3'

Nucleotide sequence encoding miRT133a (target sequence of microRNA 133a) (SEQ ID NO: 24)
5' CAGCTGGTTGAAGGGGACCAAA 3'

Nucleotide sequence encoding miRT206 (target sequence of microRNA 206) (
SEQ ID NO:25)
5' CCACACACTTCCTTACATTCCA 3'

Nucleotide sequence encoding miRT130 (target sequence of microRNA 130) (
SEQ ID NO:26)
5' ATGCCCTTTTAACATTGCACTG 3'

Nucleotide sequence encoding miRT99 (target sequence of microRNA 99) (SEQ ID NO: 27)
5' CACAAGATCGGATCTACGGGTT 3'

Nucleotide sequence encoding miRT208-5p (target sequence of microRNA 208a) (SEQ ID NO: 28)
5' GTATAACCCGGGCCAAAAGCTC 3'

Nucleotide sequence encoding miRT208a-3p (target sequence of microRNA 208a) (SEQ ID NO:29)
5' ACAAGCTTTTTGCTCGTCTTAT 3'

Nucleotide sequence encoding miRT499-5p (cardiac-specific microRNA 4
99 target sequence) (SEQ ID NO: 30)
5'AAACATCACTGCAAGTCTTAA 3'

Nucleotide sequence of CAG promoter (SEQ ID NO:44)
GACATTGATTATTGACTAGTTATTAATAGTAATCAATTAC
GGGGTCATTAGTTCATAGCCCATATATGGAGTTCCGCGTT
ACATAACTTACGGTAAATGGCCCGCCCTGGCTGACCGCCCA
ACGACCCCGCCCCATTGACGTCAATAATGACGTATGTTCC
CATAGTAACGCCAATAGGGGACTTTCCATTGACGTCAATGG
GTGGAGTATTTACGGTAAACTGCCCACTTGGCAGTACATTC
AAGTGTATCATATGCCAAGTACGCCCCCCTATTGACGTCAA
TGACGGTAAATGGCCCGCCTGGCATTATGCCCCAGTACATG
ACCTTATGGGACTTTCCTACTTGGCAGTACATCTACGTAT
TAGTCATCGCTATTACCATGGTCGAGGTGAGCCCCACGTT
CTGCTTCACTCTCCCCATCTCCCCCCCCTCCCCCACCCCCA
ATTTTGTATTTTATTTAATTTTTTTAATTATTTTGTGCAGCGA
TGGGGGCGGGGGGGGGGGGGGGCGCGCGCGCCAGGCGGGGGC
GGGGCGGGGGCGAGGGGCGGGGCGGGGGCGAGGCGGAGAGGT
GCGGCGGCAGCCAATCAGAGCGGCGCGCTCCGAAAAGTTTTC
CTTTTATGGCGAGGCGGCGGCGGCGGCGGCCCTATAAAAAA
GCGAAGCGCGCGCGCGGGCGGGAGTCGCTGCGTTTGCCTTCG
CCCCGTGCCCCGCTCCGCGCCGCCTCGCGCCGCCCGCCCC
GGCTCTGACTGACCGCGTTACTCCCACAGGTGAGCGGGGCG
GGACGGCCCTTCTCCCTCCGGCTGTAATTAGCGCTTGGGTT
TAATGACGGCTTGTTTCTTTTCTGTGGCTGCGTGAAAGCC
TTGAGGGGCTCCGGGAGGGCCCTTGTGCGGGGGGAGCGGG
CTCGGGGGGTGCGTGCGTGTGTGTGTGCGTGGGGAGCGCC
GCGTGCGGCTCCGCGCTGCCCGGCGGCTGTGAGCGCTGCG
GGCGCGGGCGCGGGGGCTTTGTGCGCTCCGCAGTGTGCGCGA
GGGGAGCGCGGCGGGGGGCGGTGCCCCGCGGTGCGGGGGG
CTGCGAGGGGACAAAGGCTGCGTGCGGGGTGTGTGTGCGTG
GGGGGGTGAGCAGGGGGTGTGGGCGCGTCGGTCGGGCTGC
AACCCCCCCTGCACCCCCCCTCCCCGAGTTGCTGAGCACGG
CCCGGCTTCGGGTGCGGGGCTCCGTACGGGGCGTGGGCGCG
GGGCTCCGCCGTGCCGGGCGGGGGGTGGCGGCAGGTGGGGGG
TGCCGGCGGGGGCGGGGCCGCCTCGGGCCGGGGAGGGCTC
GGGGGAGGGGCGCGGCGGCCCCCGGAGCGCCGGCGGCTGT
CGAGGCGCGGCGAGCCGCAGCCATTGCCTTTTATGGTAAT
CGTGCGAGAGGCGCGCAGGACTTCCTTTGTCCCCAAATCTG
TGCGGAGCCGAAATCTGGGAGGCGCCGCCGCACCCCCTCT
AGCGGGCGCGGGGCGAAGCGGTGCGGCGCCGGCAGGAAGG
AAATGGGCGGGGAGGGCCTTCGTGCGTCGCCGCGCGCGCCG
TCCCCTTCTCCCCTCTCCAGCCTCGGGGCTGTCCGCGGGGGG
GACGGCTGCCTTCGGGGGGGACGGGGCAGGGGCGGGGTTCG
GCTTCTGGCGTGTGACCGGCGGCTCTAGAGCCTCTGCTAA
CCATGTTCATGCCTTCTTCTTTTTCCTACAG

Nucleotide sequence of CMV promoter (SEQ ID NO:45)
GTGATGCGGTTTTTGGCAGTACACCAATGGGCGTGGATAGC
GGTTTGACTCACGGGGATTTCCAAGTCTCCACCCCATTGA
CGTCAATGGGAGTTTGTTTTGGCACCAAATCAACGGGAC
TTTCCAAAATGTCGTAACAACTGCGATCGCCCCGCCCCGTT
GACGCAAATGGGCGGTAGGCGTGTACGGTGGGAGGTCTAT
ATAAGCAGAGCT

Nucleotide sequence of CMV enhancer (SEQ ID NO:46)
GGCATTGATTATTGACTAGTTATTAATAGTAATCAATTAC
GGGGTCATTAGTTCATAGCCCATATATGGAGTTCCGCGTT
ACATAACTTACGGTAAATGGCCCGCCCTGGCTGACCGCCCA
ACGACCCCGCCCCATTGACGTCAATAATGACGTATGTTCC
CATAGTAACGCCAATAGGGGACTTTCCATTGACGTCAATGG
GTGGAGTATTTACGGTAAACTGCCCACTTGGCAGTACATTC
AAGTGTATCATATGCCAAGTCCGCCCCCTATTGACGTCAA
TGACGGTAAATGGCCCGCCTGGCATTATGCCCCAGTACATG
ACCTTACGGACTTTCCTACTTGGCAGTACATCTACGTAT
TAGTCATCGCTATTACCATG

Nucleotide sequence of hAAT promoter (SEQ ID NO:47)
GATCTTGCTACCAGTGGAACAGCCACTAAGGATTCTGCAG
TGAGAGCAGAGGGCCAGCTAAGTGGTACTCTCCCAGAGAC
TGTCTGACTCACGCCACCCCCTCCACCTTTGGACACAGGAC
GCTGTGGGTTTCTGAGCCAGGTACAATGACTCCTTTCGGTA
AGTGCAGTGGAAGCTGTACACTGCCCAGGCAAAGCGTCCCG
GGCAGCGTAGGCGGCGCGACTCAGATCCCAGCCAGTGGACT
TAGCCCCTGTTTGCTCCTCCGATAACTGGGGTGACCTTGG
TTAATATTCACCAGCAGCCTCCCCCCGTTGCCCCTCTCGGAT
CCACTGCTTAAATACGGACGAGGACAGGGCCCTGTTCTCCT
CAGCTTCAGGCACCACCACTGACCTGGGACAGTGAAT

Truncated AAV2 5'ITR (SEQ ID NO: 48)
GCGCGCTC GCTCGCTCAC TGAGGCCGCC CGGGCAAAG
C.
CCGGGCGTCG GGCGACCTTTT GGTCGCCCGG CCTCAGT
GAGCGAGCGAGCG
CGCAGAGAGG GAGTGGCCAA CTCCATCACT AGGGGTT
CCT

Truncated AAV2 3'ITR (SEQ ID NO: 49)
AGGAACCCCT AGTGATGGAG TTGGCCACTC CCTCTCT
GCG
CGCTCGCTCCG CTCACTGAGG CCGGCGCGACC AAAGGTC
GCC CGACGCCCCGG GCTTTGCCCCG GGCGGCCTCA GTG
AGCGAGCGAGCGCGC

SV40 polyadenylation signal (SEQ ID NO:50)
TAAGATACATTGATGAGTTTGGACAAAACCACAACTAGAAT
GCAGTGAAAAAAAATGCTTATTTGTGAAATTTGTGGATGCT
ATTGCTTTATTTGTAACCATTATAAGCTGCAATAAAACAAG
TT

Rabbit β-globin polyadenylation signal (SEQ ID NO:51)
GATCTTTTTCCCTCTGCCAAAAATTATGGGGACATCATGA
AGCCCCTTGAGCATCTGACTTCTGGCTAATAAAAGGAAAATT
TATTTTCATTGCAATAGTGTGTTGGAATTTTTTGTGTTCTC
TCACTCGGAAGGACATATGGGAGGGCAAATCATTTAAAAC
ATCAGAATGAGTATTTGGGTTTAGAGTTTGGCAACATATGC
CCATATGCTGGCTGCCATGAACAAAGGGTTGGCTATAAAAGA
GGTCATCAGTATATGAAACAGCCCCCCTGCTGTCCATTCCT
TATTCCATAGAAAAGCCTTGACTTGAGGTTAGATTTTTTTT
TATATTTTGTTTTTGTGTTTATTTTTTTCTTTAACATCCCTA
AAATTTTCCTTACATGTTTTACTAGGCCAGAATTTTTCCTCC
TCTCCTGACTACTCCCAGTCATAGCTGTCCCTCTTCTCTT
ATGGAGATC

CMV promoter and CMV enhancer sequences (SEQ ID NO:52)
GGCATTGATTATTGACTAGTTATTAATAGTAATCAATTAC
GGGGTCATTAGTTCATAGCCCATATATGGAGTTCCGCGTT
ACATAACTTACGGTAAATGGCCCGCCCTGGCTGACCGCCCA
ACGACCCCGCCCCATTGACGTCAATAATGACGTATGTTCC
CATAGTAACGCCAATAGGGGACTTTCCATTGACGTCAATGG
GTGGAGTATTTACGGTAAACTGCCCACTTGGCAGTACATTC
AAGTGTATCATATGCCAAGTCCGCCCCCTATTGACGTCAA
TGACGGTAAATGGCCCGCCTGGCATTATGCCCCAGTACATG
ACCTTACGGACTTTCCTACTTGGCAGTACATCTACGTAT
TAGTCATCGCTATTACCATGGTGATGCGGTTTTTGGCAGTA
CACCAATGGGCGTGGATAGCGGTTTGACTCACGGGGATT
CCAAGTCTCCACCCCATTGACGTCAATGGGAGTTTGTTTTT
GGCACCAAAATCAACGGGACTTTCCAAAATGTCGTAACAA
CTGCGATCGCCCGCCCCCGTTGACGCAAATGGGCGGTAGGC
GTGTACGGTGGGAGGTCTATATAAGCAGAGCT

hepatocyte control region (HCR) enhancer from apolipoprotein E (SEQ ID NO: 53)
CAGAGAGGTCTCTGACCTCTGCCCCAGCTCCAAGGTCAGC
AGGCAGGGAGGGCTGTGTGTTTGCTGTTTGCTGCTTGCAA
TGTTTGCCCATTTTAGGGACATGAGTAGGCTGAAGTTTGT
TCAGTGTGGGACTTCAGAGGCAGCACACAAAACAGC

miniaP2 promoter (SEQ ID NO: 54)
GATTA
ACCCGCCATG CTACTTATCT ACTCGACATT GATTATT
GAC TAGGGGAATT
CCAGCAGGAA TCAGGTAGCT GGAGAATTCGC ACAGAGGC
CAT GCGATTCTTG
GCAAGCCATG CGACAAAGGC AGAAATGCAC ATTTCAC
CCA GAGAGAAGGG
ATTGATGTCA GCAGGAAGTC ACCACCCAGA GAGCAAA
TGG AGTTCCCAGA
TGCCTGACAT TTGCCTTCTT ACTGGATCAG AGTTCAC
TAG TGGAAGTGTC
ACAGCCCCAAA CACTCCCCCA AAGCTCAGCC CTTCCTT
GCC TTGTAACAAT
CAAGCCGCTC CTGGATGAAC TGCTCCGCCC TCTGTCT
CTT TGGCAGGGTT
GGAGCCCACT GTGGCCTGAG CGACTTCTAT GGCTCCC
TTT TCTGTGATTT
TCATGGTTTC TGAGCTCTTT TCCCCCGCTT TATGATT
TTC TCTTTTTGTC
TCTCTCTTGC TAAACCTCCT TCGTATATAT GCCCTCT
CAG GTTTCATTTC
TGAATCATCT ACTGTGAACT ATTCCCATTG TTTGCCA
GAA GCCCCCTGGT
TCTTCCTTCT AGACACCAGG CAAGGGGCAG GAGGTAA
GAGGCAGGAGTCC
ATAAACAGC CCTGAGAGCC TGCTGGGTCA GTGCCTG
CTG TCAGAA

miniUCP1 promoter (SEQ ID NO: 55)
GACGTCACAG TGGGTCAGTC ACCCTTGATC ACACTGC
ACC AGTC TTC ACC
TTTCCACGCT TCCTGCCAGA GCATGAATCA GGCTCTC
TGG GGATAC GGC
CTCACCCCTA CTGAGGCAAA CTTTCTCCCA CTTCTCA
GAG GCTCTGAGGG
CAGCAAGGTC AGCCCTTTCT TTGGAATCTA GAACCAC
TCC CTGTCTTGAG
CTGACATCAC AGGGCAGGCA GATGCAGCAG GGAAGGGG
CCT GGGACTGGGA
CGTTCATCCT ACAAGAAAAGC TGTGGAACTT TTCAGCA
ACA TCTCAGAAAT
CAGATCGCAC TTATTCAAAG GAGCCAGGCC CTGCTCT
GCG CCCTG GTGGA
GGCTCCTCAT GTGAAGAGTG ACAAAAGGCCA CCATGTT
GTG GATACGGGGGC
GAAGCCCCTCCGGTGTGTCCTCCAGGCATTCATCAGGA
ACT AGTGCCAAAG
CAGAGGTGCT GGCCAGGGCT TTGGGAGTGA CGCG CGT
CTG GGAGGCTTGT
GCGCCCCAGGG CACGCCCCTG CCGATTCCCA CTAGCAG
GTC TTGGGGGGACC
TGGGCCGGCT CTGCCCCTCC TCCAGCAATC GGGCTAT
AAA GCTCTTCCAA
GTCAGGGCGC AGAAGTGCCG GGCGATCCGG GCTTAAA
GAGCGAGAGGAAG
GGACGCTCAC CTTTGAGCTC CTCCACAAAAT AGCCCTG
GTG GCTGCCACAG
AAGTTCGAAGTTGAGAGTTC GG

C5-12 promoter (SEQ ID NO:56)
CGGCCGTCCG CCTTCGGCAC CATCCTCACCG ACACCCA
AAT ATGGCGACGGGTGAGGAATG
GTGGGGAGTT ATTTTTAGAG CGGTGAGGAA GGTGGGGC
AGG CAGCAGGTGT TGGCGCTCTA
AAAATA ACTC CCGGGAGTTA TTTTTAGAGC GGAGGAA
TGG TGGACACCCA AATATGGCGA
CGGTTCCTCA CCCGTCGCCA TATTTGGGTG TCCGCCC
TCG GCCGGGGGCCGCATTCCTGGG
GGCCGGGCGG TGCTCCCGCC CGCCTCGATA AAAGGCT
CCG GGGCCGGCGG CGGCCCACGA
GCTACCCGGA GGAGCGGGAG GCGCCA

pAAV-EF1a-mmFGF21-pA (SEQ ID NO: 57)

CCTGCAGGCAGCTGCGCGCTTCGCTCGCTCACTGAGGCCGC
CCGGGCAAAGCCCCGGGCGTCGGGCGACCTTTGGTCGCCCG
GCCTCAGTGAGCGCGCGCGAGCGCGCAGAGAGGGGAGTGGCCA
ACTCCATCACTAGGGGTTCCTGCGGCCCGCGGCTCCGGTGC
CCGTCAGTGGGCAGAGCGCACATCGCCCACAGTCCCCGAG
AAGTTGGGGGGGAGGGGTCGGCAATTGAACCGGTGCCTAGA
GAAGGTGGCGCGGGGTAAAACTGGGAAAAGTGATGTCGTGTA
CTGGCTCCGCCTTTTTTCCCGAGGGTGGGGGAGAACCGTAT
ATAAGTGCAGTAGTCGCCGTGAACGTTCTTTTTCGCAACG
GGTTTGGCCGCCAGAACACAGGTAAGTGCCCGTGTGTGGGTTC
CCGCGGGCCTGGCCTCTTTACGGGTTATGGCCCTTGCGTG
CCTTGAATTACTTCCACTGGCTGCAGTACGTGATTCTTGA
TCCCGAGCTTCGGGTTGGAAGTGGGTGGGAGAGTTCGAGG
CCTTGCGCTTAAGGAGCCCCTTCGCCTCGTGCTTGAGTTG
AGGCCTGGCCTGGGCGCTGGGGCCGCCGCGTGCGAATCTG
GTGGCACCTTCGCGCCTGTCTCGCTGCTTTCGATAAGTCT
CTAGCCATTTAAAATTTTTTGATGACCTGCTGCGACGCTTT
TTTTCTGGCAAGATAGTCTTGTAAATGCGGGCCAAGATCT
GCACACTGGTATTTCGGTTTTTGGGGGCCGCGGGGCGGCGAC
GGGGCCCCGTGCGTCCCAGCGCACATGTTCGGCGAGGCGGGG
GCCTGCGAGCGCGGCCACCGAGAATCGGACGGGGGTAGTC
TCAAGCTGGCCGGCCTGCTCTGGTGCCTGGCCTCGCGCCG
CCGTGTATCGCCCCGCCCTGGGCGGCCAAGGCTGGCCCGGT
CGGCACCAGTTGCGTGAGCGGAAAGATGGCCGCTTCCCGG
CCCTGCTGCAGGGAGCTCAAATGGAGGACGCGGCGCTCG
GGAGAGCGGGGCGGGTGAGTCACCCACACAAAGGAAAAGGG
CCTTTCCGTCCCTCAGCCGTCGCTTCATGTGACTCCACGGA
GTACCGGCGCGCCGTCCAGGCACCTCGATTAGTTTCTCGAGC
TTTTGGAGTACGTCGTCTTTAGGTTTGGGGGGGAGGGGTTTT
ATGCGATGGAGTTTCCCCACACTGAGTGGGTGGAGACTGA
AGTTAGGCCAGCTTGGCACTTGATGTAATTCTCCTTGGAA
TTTGCCCTTTTTGAGTTTGGATCTTGGGTTCATTCTCAAGC
CTCAGACAGTGGTTCAAAGTTTTTTTCTTCCATTTCAGGT
GTCGTGAGGAATTTCGACTGCTAGCACGCGTGATATCAAT
GGAATGGATGAGATCTAGAGTTGGGACCCTGGGGACTGTGG
GTCCGACTGCTGCTGGCTGTCTTCCTGCTGGGGGTCTACC
AAGCATACCCCATCCCTGACTCCAGCCCCCTCCTCCAGTT
TGGGGGTCAAGTCCGGCAGAGGTACCTCTCACACAGATGAC
GACCAAGACACTGAAGCCCCACCTGGAGATCAGGGAGGATG
GAACAGTGGGTAGGCGCAGCACACCGCAGTCCAGAAAGTCT
CCTGGAGCTCAAAGCCCTTGAAGCCAGGGGTCATTCAAATC
CTGGGTGTCAAAGCCCTCTAGGTTTCTTTGCCCAACAGCCCAG
ATGGAGCTCTCTATGGATCGCCTCACTTTGATCCTGAGGC
CTGCAGCTTCAGAGAACTGCTGCTGGGAGGACGGTTACAAT
GTGTACCAGTCTGAAGCCCATGGCCTGCCCCTGCGTCTGC
CTCAGAAGGACTCCCCAAAACCAGGATGCAACATCCTGGGGG
ACCTGTGCGCTTCCTGCCCATGCCAGGCCTGCTCCACGAG
CCCCAAGACCAAGCAGGATTCCTGCCCCCAGAGCCCCCAG
ATGTGGGCTCCTCTGACCCCCTGAGCATGGTAGAGCCTTTT
ACAGGGCCGAAGCCCCAGCTATGCGTCCTGAGATATCAAA
GAATTCTAAGCTTTGTCGACGAATGCAATTGTTGTTAATTA
ATTGTTAACTTGTTTTATTGCAGCTTATAATGGTTACAAAT
AAAGCAATAGCATCACAAATTTCACAAAAAAAGCATTTTT
TTCACTGCATTCTAGTTGTGGTTTGTCCAAAACTCATCAAT
GTATCTTAGTCGAGTTAATTAACGGCGGCCGCAGGAACCC
CTAGTGATGGAGTTGGCCACTCCCTCTCTGCGCGCTCGCCT
CGCTCACTGAGGCCGGGCGACCAAAGGTCGCCCGACGCCC
GGGCTTTGCCCGGGCGGCCTCAGTGAGCGAGCGAGCGCGC
AGCTGCCTGCAGGGGCGCCTGATGCGGTATTTTTCTCCTTA
CGCATCTGTGCGGTATTTCACACCGCATACGTCAAAGCAA
CCATAGTACGCGCCCTGTAGCGGCCGCATTAAGCGCGGCGG
GTGTGGTGGTTACGCGCAGCGTGACCGCTACACTTGCCAG
CGCCCTAGCGCCCCGCTCCTTTCGCTTTCTTCCCCTTCCTTT
CTCGCCACGTTCGCCGCTTTCCCCGTCAAGCTCTAAATC
GGGGGCTCCCTTTAGGGTTCCGATTTAGTGCTTTACGGCA
CCTCGACCCCAAAAAAACTTGATTTGGGGTGATGGTTCACGT
AGTGGGCCATCGCCCTGATAGACGGTTTTTCGCCCTTTTGA
CGTTGGAGTCCACGTTCTTTAATAGTGGACTCTTGTTCCA
AACTGGAACAACACTCAACCCTATCTCGGGCTATTCTTTT
GATTTATAAGGGATTTTGCCGATTTCGGCCTATTGGTTAA
AAAATGAGCTGATTTAACAAAAAAATTTAACGCGAATTTTAA
CAAATATTAACGTTTTACAATTTTATGGTGCACTCTCAGT
ACAATCTGCTCTCGATGCCGCATAGTTAAGCCAGCCCCGAC
ACCCGCCAACACCCGCTGACGCGCCCTGACGGGCTTGTCT
GCTCCCGGCATCCGCTTACAGACAAGCTGTGACCGTCTCC
GGGAGCTGCATGTGTCAGAGGTTTTTCACCGTCATCACCGA
AACGCGCGAGACGAAAGGGGCCTCGTGATACGCCTATTTTTT
ATAGGTTAATGTCATGATAATAATGGTTTCTTAGACGTCA
GGTGGCACTTTTCGGGGAAATGTGCGCGGAACCCCCTATTT
GTTTATTTTTCTAAAACATTCAAATATGTATCCGCTCAT
GAGACAATAACCCTGATAAATGCTTCAATAATATTGAAAA
AGGAAGAGTATGAGTATTCAACATTTCCGTGTCGCCCTTA
TTCCCTTTTTTGCGGCATTTTGCCTTCCTGTTTTTGCTCA
CCCAGAAACGCTGGTGAAAGTAAAGATGCTGAAGATCAG
TTGGGTGCACGAGTGGGTTACATCGAACTGGATCTCAACA
GCGGTAAGATCCTTGAGAGTTTTCGCCCCCGAAGAACGTTT
TCCAATGATGAGCACTTTTAAAGTTCTGCTATGTGGCGCG
GTATTATCCCGTATTGACGCCGGGCAAGAGCCAACTCGGGTC
GCCGCATACACTATTCTCAGAATGACTTGGGTTGAGTACTC
ACCAGTCACAGAAAAGCATCTTACGGATGGCATGACAGTA
AGAGAATTATGCAGTGCTGCCATAACCATGAGTGATAACA
CTGCGGCCAACTTACTTCTGACAACGATCGGAGGACCGAA
GGAGCTAACCGCTTTTTTGCACAACATGGGGGATCATGTA
ACTCGCCTTGATCGTTGGGAACCGGAGCTGAATGAAGCCA
TACCAAACGACGAGCGTGACACCACGATGCCTGTAGCAAT
GGCAACAACGTTGCGCAAAACTATTAACTGGCGAACTACTT
ACTCTAGCTTCCCGGCAACAATTAATAGACTGGATGGGAGG
CGGATAAAGTTGCAGGACCACTTCTGCGCTCGGCCCTTCC
GGCTGGCTGGTTTTATTGCTGATAAATCTGGAGCCGGTGAG
CGTGGGTCTCGCGGTATCATTGCAGCACTGGGGCCAGATG
GTAAGCCCTCCCGTATCGTAGTTATCTACACGACGGGGGAG
TCAGGCAACTATGGATGAACGAAATAGACAGATCGCTGAG
ATAGGTGCCTCACTGATTAAGCATTGGTAACTGTCAGACC
AAGTTTACTCATATATACTTTTAGATTGATTTAAAAACTTCA
TTTTTAATTTAAAAGGATCTAGGTGAAGATCCTTTTTGAT
AATCTCATGACCAAAATCCCTTAACGTGAGTTTTCGTTCC
ACTGAGCGTCAGACCCCGTAGAAAGATCAAAGGATCTTC
TTGAGATCCTTTTTTTTCTGCGCGTAATCTGCTGCTTGCAA
ACAAAAAAACCACCGCTACCAGCGGTGGTTTGTTTTGCCGG
ATCAAGAGCTACCAACTCTTTTTCCGAAGGTAACTGGCTT
CAGCAGAGCGCAGATACCAAATACTGTCCTTTCTAGTGTAG
CCGTAGTTAGGCCCACCACTTCAAGAACTCTGTAGCACCGC
CTACATACCTCGCTCTGCTAATCCTGTTACCAGTGGCTGC
TGCCAGTGGCGATAAGTCGTGTCTTACCGGGTTGGACTCA
AGACGATAGTTACCGGATAAGGCGCAGCGGTCGGGCTGAA
CGGGGGGTTCGTGCACACAGCCCAGCTTGGAGCGAACGAC
CTACACCGAACTGAGATACCTACAGCGTGAGCTATGAGAA
AGCGCCACGCTTCCCGAAGGGAGAAAGGCGGACAGGTATC
CGGTAAGCGGCAGGGTCGGAACAGGGAGAGCGCACGAGGGA
GCTTCCAGGGGGAAACGCCTGGTATCTTTTATAGTCCTGTC
GGGTTTCGCCACCTCTGACTTGAGCGTCGATTTTTGTGAT
GCTCGTCAGGGGGGCGGAGCCTATGGAAAAAACGCCAGCAA
CGCGGCCCTTTTTACGGTTCCTGGCCTTTTGGCTGGCCTTTTT
GCTCACATGT

Elongation factor 1 alpha promoter: 150 to 1327 (1178 bp)
From Mus musculus FGF21:1359 (633 bp
)
SEQ ID NO: 57 also contains truncated AAV2 5' and 3' ITRs and SV40 polyA (SEQ ID NOS: 48, 49 and 50, already included in the Sequence Listing).

図1. C57Bl6マウスにおけるAAV9-CAG-moFGF21-dmiRTベクターのeWAT内投与による肥満の予防。(A)AAV-CAG-moFGF21-doublemiRTベクターの略図。発現カセットはCAGプロモーター、コドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列、ならびに発現カセットの3’非翻訳領域中にクローニングされたmiRT122a配列の4個のタンデムリピートおよびmiRT1配列の4個のタンデムリピートを含有した。AAV2からのITRが発現カセットに隣接した。略図は縮尺どおりではない。CAG:ニワトリβ-アクチンプロモーター/CMVエンハンサー;pA:polyA。(B)代謝組織中のFGF21の発現レベル。C57Bl6マウスのeWAT、iWAT、iBATおよび肝臓中のコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列の発現レベルをRTqPCRにより測定し、Rplp0値で正規化した(n=8~11動物/群)。(C)FGF21の循環レベル(n=8~11動物/群)。(D-E)代謝組織中のFGF21R1(D)およびβ-Klotho(E)の発現レベル。C57Bl6マウスのeWAT、iWAT、iBATおよび肝臓中のFGF21受容体1(FGF21R1)およびβ-Klothoの発現レベルをRTqPCRにより測定し、Rplp0値で正規化した(n=7動物/群)。(F)体重の進展。体重は毎週測定した(n=8~11動物/群)。(G)動物の代表的イメージ。(H)組織の重量。AAVベクターをeWAT内に処置した固形飼料給餌C57Bl6マウスおよびHFD給餌C57Bl6マウスのeWAT、iWAT、rWAT、mWAT、iBATおよび肝臓の重量(n=8~11動物/群)。分析は、1012vgのAAV9-CAG-moFGF21-doublemiRTまたはAAV9-CAG-nullベクターのeWAT内投与14週後に実施した。結果は平均値±SEMとして表現される。ND、検出されず。HFD、高脂肪食。AU、任意単位。eWAT、精巣上体白色脂肪組織。iWAT、鼠径部白色脂肪組織。rWAT、後腹膜白色脂肪組織。mWAT、腸間膜白色脂肪組織。iBAT 肩甲骨間褐色脂肪組織。* p<0.05 vs AAV9-CAG-null 固形飼料、** p<0.01 vs AAV9-CAG-null 固形飼料、*** p<0.001 vs AAV9-CAG-null 固形飼料、$ p<0.05 vs AAV9-CAG-null HFD、$$ p<0.01 vs AAV9-CAG-null HFD、$$$ p<0.001 vs AAV9-CAG-null HFD。Figure 1. Prevention of obesity by intra-eWAT administration of AAV9-CAG-moFGF21-dmiRT vector in C57Bl6 mice. (A) Schematic representation of the AAV-CAG-moFGF21-doublemiRT vector. The expression cassette contained the CAG promoter, a codon-optimized mouse FGF21 coding sequence, and four tandem repeats of miRT122a and four tandem repeats of miRT1 sequences cloned into the 3′ untranslated region of the expression cassette. . ITRs from AAV2 flanked the expression cassette. Diagrams are not to scale. CAG: chicken β-actin promoter/CMV enhancer; pA: polyA. (B) Expression levels of FGF21 in metabolic tissues. Expression levels of codon-optimized mouse FGF21 coding sequences in eWAT, iWAT, iBAT and liver of C57B16 mice were measured by RTqPCR and normalized by Rplp0 values (n=8-11 animals/group). (C) Circulating levels of FGF21 (n=8-11 animals/group). (DE) Expression levels of FGF21R1 (D) and β-Klotho (E) in metabolic tissues. Expression levels of FGF21 receptor 1 (FGF21R1) and β-Klotho in eWAT, iWAT, iBAT and liver of C57B16 mice were measured by RTqPCR and normalized by Rplp0 values (n=7 animals/group). (F) Weight evolution. Body weights were measured weekly (n=8-11 animals/group). (G) Representative images of animals. (H) Tissue weight. eWAT, iWAT, rWAT, mWAT, iBAT and liver weights of chow-fed C57B16 and HFD-fed C57B16 mice treated with AAV vectors into eWAT (n=8-11 animals/group). Analyzes were performed 14 weeks after intra-eWAT administration of 10 12 vg of AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT or AAV9-CAG-null vector. Results are expressed as mean ± SEM. ND, not detected. HFD, high fat diet; AU, arbitrary units. eWAT, epididymal white adipose tissue; iWAT, inguinal white adipose tissue; rWAT, retroperitoneal white adipose tissue; mWAT, mesenteric white adipose tissue; iBAT Interscapular brown adipose tissue. *p<0.05 vs AAV9-CAG-null chow, **p<0.01 vs AAV9-CAG-null chow, ***p<0.001 vs AAV9-CAG-null chow, $p <0.05 vs AAV9-CAG-null HFD, $$ p<0.01 vs AAV9-CAG-null HFD, $$p<0.001 vs AAV9-CAG-null HFD. 図2. AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRTベクターをeWAT内に処置したC57Bl6マウスの脂肪組織および肝臓の組織分析。(A)AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRTまたはAAV9-CAG-nullベクターをeWAT内に処置した固形飼料給餌C57Bl6マウスおよびHFD給餌C57Bl6マウスの精巣上体白色脂肪組織(eWAT)、鼠径部白色脂肪組織(iWAT)肩甲骨間褐色脂肪組織(iBAT)および肝臓の切片の、ヘマトキシリンおよびエオシンで染色した代表的イメージ。元の倍率×100。(B)eWATの白色脂肪細胞の平均面積(n=4動物/群)。(C)eWATの白色脂肪細胞の面積の頻度分布(n=4動物/群)。分析は、1012vgのAAV9-CAG-moFGF21-doublemiRTまたはAAV9-CAG-nullベクターのeWAT内投与14週後に実施した。結果は平均値±SEMとして表現される。HFD、高脂肪食。** p<0.01 vs AAV9-CAG-null 固形飼料、*** p<0.001 vs AAV9-CAG-null 固形飼料、$$ p<0.01 vs AAV9-CAG-null HFD、$$$ p<0.001 vs AAV9-CAG-null HFD。Figure 2. Histological analysis of adipose tissue and liver of C57Bl6 mice treated with AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT vector in eWAT. (A) Epididymal white adipose tissue (eWAT), inguinal white adipose tissue (eWAT) of chow-fed and HFD-fed C57Bl6 mice treated with AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT or AAV9-CAG-null vector in eWAT iWAT) Representative images of interscapular brown adipose tissue (iBAT) and liver sections stained with hematoxylin and eosin. Original magnification x 100. (B) Mean area of white adipocytes in eWAT (n=4 animals/group). (C) Frequency distribution of white adipocyte area in eWAT (n=4 animals/group). Analyzes were performed 14 weeks after intra-eWAT administration of 10 12 vg of AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT or AAV9-CAG-null vector. Results are expressed as mean±SEM. HFD, high fat diet; ** p<0.01 vs AAV9-CAG-null chow, *** p<0.001 vs AAV9-CAG-null chow, $$ p<0.01 vs AAV9-CAG-null HFD, $$ $p<0.001 vs AAV9-CAG-null HFD. 図3. AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRTベクターをeWAT内に処置したC57Bl6マウスにおけるエネルギー消費およびインスリン感受性の向上。(A-B)UCP1(A)およびDio2(B)の発現レベル。iWAT中のUCP1およびDio2の発現レベルをRTqPCRにより測定し、Rplp0値で正規化した(n=7動物/群)。(C)エネルギー代謝。エネルギー消費(EE)は間接的開路熱量計で測定した。酸素消費および二酸化炭素産生を同時にモニターした。データは、AAV投与の9週後、明サイクル(基本状態)および暗サイクル(活動期)の間に取得し、体重で調整した(n=8~11動物/群)。(D)肝臓トリグリセリド含量(n=8~10動物/群)。(E-F)血清トリグリセリド(E)およびコレステロール(F)レベル(n=8~11動物/群)。(G)腹腔内インスリン負荷試験。マウスに0.75Uインスリン/kg体重の腹腔内注射を与え、指し示された時点において血中グルコースレベルを測定した(n=6~11動物/群)。試験は、AAV投与の11週後に実施した。(H)空腹時インスリン循環レベル。特に指示がない限り、分析は、1012vgのAAV9-CAG-moFGF21-doublemiRTまたはAAV9-CAG-nullベクターのeWAT内投与14週後に実施した。結果は平均値±SEMとして表現される。HFD、高脂肪食。TG、トリグリセリド。Chol、コレステロール。* p<0.05 vs AAV9-CAG-null 固形飼料、** p<0.01 vs AAV9-CAG-null 固形飼料、*** p<0.001 vs AAV9-CAG-null 固形飼料、$ p<0.05 vs AAV9-CAG-null HFD、$$ p<0.01 vs AAV9-CAG-null HFD、$$$ p<0.001 vs AAV9-CAG-null HFD。Figure 3. Enhanced energy expenditure and insulin sensitivity in C57Bl6 mice treated with AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT vector in eWAT. (AB) Expression levels of UCP1 (A) and Dio2 (B). Expression levels of UCP1 and Dio2 in iWAT were measured by RTqPCR and normalized with Rplp0 values (n=7 animals/group). (C) Energy metabolism. Energy expenditure (EE) was measured with an indirect open circuit calorimeter. Oxygen consumption and carbon dioxide production were monitored simultaneously. Data were acquired during the light (basal) and dark (active) cycles after 9 weeks of AAV administration and adjusted for body weight (n=8-11 animals/group). (D) Liver triglyceride content (n=8-10 animals/group). (EF) Serum triglyceride (E) and cholesterol (F) levels (n=8-11 animals/group). (G) Intraperitoneal insulin tolerance test. Mice were given an intraperitoneal injection of 0.75 U insulin/kg body weight and blood glucose levels were measured at the indicated time points (n=6-11 animals/group). The study was performed 11 weeks after AAV administration. (H) Fasting insulin circulating levels. Unless otherwise indicated, analyzes were performed 14 weeks after intra-eWAT administration of 10 12 vg of AAV9-CAG-moFGF21-doublemiRT or AAV9-CAG-null vector. Results are expressed as mean ± SEM. HFD, high fat diet; TG, triglyceride; Chol, cholesterol; *p<0.05 vs AAV9-CAG-null chow, **p<0.01 vs AAV9-CAG-null chow, ***p<0.001 vs AAV9-CAG-null chow, $p <0.05 vs AAV9-CAG-null HFD, $$ p<0.01 vs AAV9-CAG-null HFD, $$p<0.001 vs AAV9-CAG-null HFD. 図4. ob/obマウスにおけるAAV8-CAG-moFGF21-dmiRTベクターのeWAT内投与による肥満の回復。(A)代謝組織中のFGF21の発現レベル。ob/obマウスのeWAT、iWAT、iBATおよび肝臓中のコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列の発現レベルをRTqPCRにより測定し、Rplp0値で正規化した。(B)FGF21の循環レベル。(C-D)体重(C)および体重増加(D)の進展。体重は毎週測定した。(E)組織の重量。AAVベクターをeWAT内に処置したob/obマウスのeWAT、iWAT、rWAT、mWAT、iBATおよび肝臓の重量。分析は、1010vg、5×1010vg、2×1011vgもしくは1012vgのAAV8-CAG-moFGF21-doublemiRTまたは1012vgのAAV8-CAG-nullベクターのeWAT内投与16週後に実施した。結果は平均値±SEMとして表現される。n=7~8動物/群。ND、検出されず。AU、任意単位。eWAT、精巣上体白色脂肪組織。iWAT、鼠径部白色脂肪組織。rWAT、後腹膜白色脂肪組織。mWAT、腸間膜白色脂肪組織。iBAT 肩甲骨間褐色脂肪組織。* p<0.05 vs AAV8-CAG-null、** p<0.01 vs AAV8-CAG-null、*** p<0.001 vs AAV8-CAG-null。Figure 4. Obesity reversal by intra-eWAT administration of AAV8-CAG-moFGF21-dmiRT vector in ob/ob mice. (A) Expression levels of FGF21 in metabolic tissues. Expression levels of codon-optimized mouse FGF21 coding sequences in eWAT, iWAT, iBAT and liver of ob/ob mice were measured by RTqPCR and normalized by Rplp0 values. (B) Circulating levels of FGF21. (CD) Evolution of body weight (C) and weight gain (D). Body weight was measured weekly. (E) Tissue weight. eWAT, iWAT, rWAT, mWAT, iBAT and liver weights of ob/ob mice treated with AAV vectors into eWAT. Analyzes were performed 16 weeks after intra-eWAT administration of 10 10 vg, 5×10 10 vg, 2×10 11 vg or 10 12 vg of AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT or 10 12 vg of AAV8-CAG-null vector. . Results are expressed as mean±SEM. n=7-8 animals/group. ND, not detected. AU, arbitrary units. eWAT, epididymal white adipose tissue; iWAT, inguinal white adipose tissue; rWAT, retroperitoneal white adipose tissue; mWAT, mesenteric white adipose tissue; iBAT Interscapular brown adipose tissue. *p<0.05 vs AAV8-CAG-null, **p<0.01 vs AAV8-CAG-null, ***p<0.001 vs AAV8-CAG-null. 図5. AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRTベクターをeWAT内に処置したob/obマウスにおけるインスリン感受性の改善。(A)腹腔内インスリン負荷試験。ob/obマウスに0.75Uインスリン/kg体重の腹腔内注射を与え、指し示された時点において血中グルコースレベルを測定した。試験は、AAV投与の9週後に実施した。(B)AAV投与2月後の空腹時インスリン循環レベル。結果は平均値±SEMとして表現され、n=7~8動物/群である。* p<0.05 vs AAV8-CAG-null、** p<0.01 vs AAV8-CAG-null、*** p<0.001 vs AAV8-CAG-null。Figure 5. Improvement of insulin sensitivity in ob/ob mice treated with AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT vector in eWAT. (A) Intraperitoneal insulin tolerance test. Ob/ob mice were given an intraperitoneal injection of 0.75 U insulin/kg body weight and blood glucose levels were measured at the indicated time points. The study was performed 9 weeks after AAV administration. (B) Fasting circulating insulin levels two months after AAV administration. Results are expressed as mean±SEM, n=7-8 animals/group. *p<0.05 vs AAV8-CAG-null, **p<0.01 vs AAV8-CAG-null, ***p<0.001 vs AAV8-CAG-null. 図6. ob/obマウスにおけるAAV8-hAAT-moFGF21-ベクターの静脈内投与による肥満の回復およびグルコース代謝の好転。(A)AAV-hAAT-moFGF21ベクターの略図。発現カセットは、ヒトα1-アンチトリプシン(hAAT)プロモーターおよびコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列を含有した。AAV2からのITRが発現カセットに隣接した。略図は縮尺どおりではない。pA:polyA。(B)FGF21の発現レベル。ob/obマウスの肝臓中のコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列の発現レベルをRTqPCRにより測定し、Rplp0値で正規化した。(C)FGF21の循環レベル。(D-E)体重(C)および体重増加(D)の進展。体重は毎週測定した。(F)動物の代表的イメージ。(G)組織の重量。AAVベクターを静脈内に処置したob/obマウスのeWAT、iWAT、rWAT、mWAT、iBATおよび肝臓の重量。(H)腹腔内インスリン負荷試験。ob/obマウスに0.75Uインスリン/kg体重の腹腔内注射を与え、指し示された時点において血中グルコースレベルを測定した。試験は、AAV投与の9週後に実施した。(I)AAV投与3月後の空腹時インスリン循環レベル。特に指示がない限り、分析は、1011vgもしくは5×1011vgのAAV8-hAAT-moFGF21または5×1011vgのAAV8-hAAT-nullベクターの静脈内投与20週後に実施した。結果は平均値±SEMとして表現される。n=9~10動物/群。ND、検出されず。AU、任意単位。eWAT、精巣上体白色脂肪組織。iWAT、鼠径部白色脂肪組織。rWAT、後腹膜白色脂肪組織。mWAT、腸間膜白色脂肪組織。iBAT 肩甲骨間褐色脂肪組織。* p<0.05 vs AAV8-hAAT-null、** p<0.01 vs AAV8-hAAT-null、*** p<0.001 vs AAV8-hAAT-null。Figure 6. Intravenous administration of AAV8-hAAT-moFGF21-vector reverses obesity and improves glucose metabolism in ob/ob mice. (A) Schematic representation of the AAV-hAAT-moFGF21 vector. The expression cassette contained the human α1-antitrypsin (hAAT) promoter and codon-optimized mouse FGF21 coding sequence. ITRs from AAV2 flanked the expression cassette. Diagrams are not to scale. pA: polyA. (B) Expression levels of FGF21. Expression levels of the codon-optimized mouse FGF21 coding sequence in livers of ob/ob mice were measured by RTqPCR and normalized by Rplp0 values. (C) Circulating levels of FGF21. (DE) Evolution of body weight (C) and weight gain (D). Body weight was measured weekly. (F) Representative images of animals. (G) Tissue weight. eWAT, iWAT, rWAT, mWAT, iBAT and liver weights of ob/ob mice treated intravenously with AAV vectors. (H) Intraperitoneal insulin tolerance test. Ob/ob mice were given an intraperitoneal injection of 0.75 U insulin/kg body weight and blood glucose levels were measured at the indicated time points. The study was performed 9 weeks after AAV administration. (I) Fasting circulating insulin levels 3 months after AAV administration. Unless otherwise indicated, analyzes were performed 20 weeks after intravenous administration of 10 11 vg or 5×10 11 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 or 5×10 11 vg of AAV8-hAAT-null vector. Results are expressed as mean ± SEM. n=9-10 animals/group. ND, not detected. AU, arbitrary units. eWAT, epididymal white adipose tissue; iWAT, inguinal white adipose tissue; rWAT, retroperitoneal white adipose tissue; mWAT, mesenteric white adipose tissue; iBAT Interscapular brown adipose tissue. *p<0.05 vs AAV8-hAAT-null, **p<0.01 vs AAV8-hAAT-null, ***p<0.001 vs AAV8-hAAT-null. 図7. HFD給餌C57bl6マウスにおけるAAV-hAAT-moFGF21ベクターの静脈内投与による肥満の長期的回復。(A)FGF21の循環レベル。(B-C)体重(C)および体重増加(D)の進展。体重は毎週測定した。分析は、1010vgもしくは5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21または5×1010vgのAAV8-hAAT-nullベクターの静脈内投与52週後に実施した。結果は平均値±SEMとして表現され、n=9~12動物/群である。*** p<0.001 vs AAV8-hAAT-null 固形飼料、$$ p<0.01 vs AAV8-hAAT-null HFD、$$$ p<0.001 vs AAV8-hAAT-null HFD。Figure 7. Long-term reversal of obesity by intravenous administration of AAV-hAAT-moFGF21 vector in HFD-fed C57bl6 mice. (A) Circulating levels of FGF21. (BC) Evolution of body weight (C) and weight gain (D). Body weight was measured weekly. Analyzes were performed 52 weeks after intravenous administration of 10 10 vg or 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 or 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-null vector. Results are expressed as mean±SEM, n=9-12 animals/group. *** p<0.001 vs AAV8-hAAT-null chow, $$ p<0.01 vs AAV8-hAAT-null HFD, $$ p<0.001 vs AAV8-hAAT-null HFD. 図8. HFD給餌C57Bl6マウスにおけるAAV-hAAT-moFGF21ベクターの静脈内投与によるエネルギー消費およびインスリン感受性の長期的向上。(A)エネルギー代謝。エネルギー消費(EE)は間接的開路熱量計で測定した。酸素消費および二酸化炭素産生を同時にモニターした。データは、AAV投与の4週後、明サイクル(基本状態)および暗サイクル(活動期)の間に取得し、体重で調整した。(B)腹腔内インスリン負荷試験。C57Bl6マウスに0.75Uインスリン/kg体重の腹腔内注射を与え、指し示された時点において血中グルコースレベルを測定した。試験は、AAV投与の7週後に実施した。(C)空腹時および給餌時のインスリン循環レベル。結果は平均値±SEMとして表現され、n=9~12動物/群である。HFD、高脂肪食。* p<0.05 vs AAV8-hAAT-null 固形飼料、** p<0.01 vs AAV8-hAAT-null 固形飼料、*** p<0.001 vs AAV8-hAAT-null 固形飼料、$ p<0.05 vs AAV8-hAAT-null HFD、$$ p<0.01 vs AAV8-hAAT-null HFD、$$$ p<0.001 vs AAV8-hAAT-null HFD。Figure 8. Long-term enhancement of energy expenditure and insulin sensitivity by intravenous administration of AAV-hAAT-moFGF21 vector in HFD-fed C57B16 mice. (A) Energy metabolism. Energy expenditure (EE) was measured with an indirect open circuit calorimeter. Oxygen consumption and carbon dioxide production were monitored simultaneously. Data were obtained 4 weeks after AAV administration during the light cycle (basal state) and dark cycle (active phase) and adjusted for body weight. (B) Intraperitoneal insulin tolerance test. C57B16 mice were given an intraperitoneal injection of 0.75 U insulin/kg body weight and blood glucose levels were measured at the indicated time points. The study was performed 7 weeks after AAV administration. (C) Fasting and fed insulin circulating levels. Results are expressed as mean±SEM, n=9-12 animals/group. HFD, high fat diet; *p<0.05 vs AAV8-hAAT-null chow, **p<0.01 vs AAV8-hAAT-null chow, ***p<0.001 vs AAV8-hAAT-null chow, $p <0.05 vs AAV8-hAAT-null HFD, $$ p<0.01 vs AAV8-hAAT-null HFD, $$ p<0.001 vs AAV8-hAAT-null HFD. 図9. 老齢HFD給餌マウスにおけるAAV-hAAT-moFGF21ベクターの静脈内投与による肥満の回復。(A)FGF21の循環レベル。(B-C)体重(B)および体重増加(C)の進展。体重は毎週測定した。分析は、1010vg、2×1010vgもしくは5×1010vgのAAV8-hAAT-moFGF21または5×1010vgのAAV8-hAAT-nullベクターの静脈内投与21週後に実施した。結果は平均値±SEMとして表現され、n=7~8動物/群である。HFD、高脂肪食。*** p<0.05 vs AAV8-hAAT-null 固形飼料、$ p<0.05 vs AAV8-hAAT-null HFD、$$ p<0.01 vs AAV8-hAAT-null HFD。$$$ p<0.001 vs AAV8-hAAT-null HFD。Figure 9. Obesity reversal by intravenous administration of AAV-hAAT-moFGF21 vector in aged HFD-fed mice. (A) Circulating levels of FGF21. (BC) Evolution of body weight (B) and weight gain (C). Body weight was measured weekly. Analyzes were performed 21 weeks after intravenous administration of 10 10 vg, 2×10 10 vg or 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 or 5×10 10 vg of AAV8-hAAT-null vector. Results are expressed as mean±SEM, n=7-8 animals/group. HFD, high fat diet; *** p<0.05 vs AAV8-hAAT-null chow, $ p<0.05 vs AAV8-hAAT-null HFD, $$ p<0.01 vs AAV8-hAAT-null HFD. $$p<0.001 vs AAV8-hAAT-null HFD. 図10. 老齢HFD給餌マウスにおけるAAV-hAAT-moFGF21ベクターの静脈内投与によるエネルギー消費およびインスリン感受性の向上。(A)エネルギー代謝。エネルギー消費(EE)は間接的開路熱量計で測定した。酸素消費および二酸化炭素産生を同時にモニターした。データは、AAV投与の6週後、明サイクル(基本状態)および暗サイクル(活動期)の間に取得し、体重で調整した。(B)腹腔内インスリン負荷試験。老齢C57Bl6マウスに0.75Uインスリン/kg体重の腹腔内注射を与え、指し示された時点において血中グルコースレベルを測定した。試験は、AAV投与の9週後に実施した。(C)空腹時および給餌時のインスリン循環レベル。結果は平均値±SEMとして表現され、n=7~8動物/群である。HFD、高脂肪食。** p<0.01 vs AAV8-hAAT-null 固形飼料、*** p<0.001 vs AAV8-hAAT-null 固形飼料、$ p<0.05 vs AAV8-hAAT-null HFD、$$ p<0.01 vs AAV8-hAAT-null HFD、$$$ p<0.001 vs AAV8-hAAT-null HFD。Figure 10. Improving energy expenditure and insulin sensitivity by intravenous administration of AAV-hAAT-moFGF21 vectors in aged HFD-fed mice. (A) Energy metabolism. Energy expenditure (EE) was measured with an indirect open circuit calorimeter. Oxygen consumption and carbon dioxide production were monitored simultaneously. Data were obtained during the light cycle (basal state) and dark cycle (active phase) 6 weeks after AAV administration and adjusted for body weight. (B) Intraperitoneal insulin tolerance test. Aged C57B16 mice were given an intraperitoneal injection of 0.75 U insulin/kg body weight and blood glucose levels were measured at the indicated time points. The study was performed 9 weeks after AAV administration. (C) Fasting and fed insulin circulating levels. Results are expressed as mean±SEM, n=7-8 animals/group. HFD, high fat diet; ** p<0.01 vs AAV8-hAAT-null chow, *** p<0.001 vs AAV8-hAAT-null chow, $ p<0.05 vs AAV8-hAAT-null HFD, $$ p <0.01 vs AAV8-hAAT-null HFD, $$p<0.001 vs AAV8-hAAT-null HFD. 図11. C57Bl6マウスにおけるAAV-CMV-moFGF21ベクターの筋肉内投与による体重減少。(A)AAV-CMV-moFGF21ベクターの略図。発現カセットは、サイトメガロウイルス(CMV)プロモーターおよびコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列を含有した。AAV2からのITRが発現カセットに隣接した。略図は縮尺どおりではない。pA:polyA。(B)循環FGF21レベル。(C-D)体重(C)および体重増加(D)の進展。体重は毎週測定した。結果は平均値±SEMとして表現される。n=6~7動物/群。* p<0.05 vs AAV1-CMV-null、** p<0.01 vs AAV1-CMV-null。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。Figure 11. Weight loss by intramuscular administration of AAV-CMV-moFGF21 vector in C57Bl6 mice. (A) Schematic representation of the AAV-CMV-moFGF21 vector. The expression cassette contained the cytomegalovirus (CMV) promoter and codon-optimized murine FGF21 coding sequence. ITRs from AAV2 flanked the expression cassette. Diagrams are not to scale. pA: polyA. (B) Circulating FGF21 levels. (CD) Evolution of body weight (C) and weight gain (D). Body weight was measured weekly. Results are expressed as mean ± SEM. n=6-7 animals/group. *p<0.05 vs AAV1-CMV-null, **p<0.01 vs AAV1-CMV-null. Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. 図12. ヒトFGF21をコードするヌクレオチド配列のコドン最適化によるFGF21タンパク質産生の増加。(A)野生型hFGF21またはコドン最適化されたヒトFGF21配列の3つの異なるバージョンをトランスフェクトしたHEK293細胞の培養培地中のhFGF21タンパク質レベル。結果は平均値±SEMとして表現される。n=3ウェル/群。ND、検出されず。* p<0.05 vs 非トランスフェクト細胞。Figure 12. Increased FGF21 protein production by codon optimization of the nucleotide sequence encoding human FGF21. (A) hFGF21 protein levels in the culture medium of HEK293 cells transfected with wild-type hFGF21 or three different versions of the codon-optimized human FGF21 sequence. Results are expressed as mean ± SEM. n=3 wells/group. ND, not detected. *p<0.05 vs non-transfected cells. 図13. ob/obマウスにおけるAAV8-CAG-moFGF21-dmiRTベクターのeWAT内投与。A、B nullまたはFGF21をコードするAAV8ベクターのいずれかを試験する全ての用量でeWAT内注射したob/ob動物から得られた(A)eWATおよび(B)肝臓組織切片のヘマトキシリン-エオシン染色の代表的イメージ。スケールバー:eWATについて100μm、肝臓について200μm。C 給餌状態での血糖。D AAV後3月の給餌状態での血中インスリン。図中のFGF21の標識はmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A、B)においてn=6~9動物/群。(C-H)においてn=4~8動物/群。(I)においてn=6~8動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 Null注射群。Figure 13. Intra-eWAT administration of AAV8-CAG-moFGF21-dmiRT vector in ob/ob mice. A, B. Hematoxylin-eosin staining of (A) eWAT and (B) liver tissue sections obtained from ob/ob animals injected intra-eWAT at all doses testing either null or an AAV8 vector encoding FGF21. representative image. Scale bar: 100 μm for eWAT, 200 μm for liver. C Blood glucose in the fed state. Blood insulin in the fed state 3 months after D AAV. The FGF21 label in the figure refers to moFGF21. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n=6-9 animals/group in (A, B). n=4-8 animals/group in (CH). In (I) n=6-8 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 vs Null injection group. 図14. ob/obマウスのeWATへのFGF21遺伝子導入の影響。A 11週齢時にAAV8-CAG-nullベクターまたはAAV8-CAG-moFGF21-dmiRTベクターのいずれかを4つの異なる用量(1×1010、5×1010、2×1011、1×1012vg/マウス)でeWAT内注射された25週齢のob/ob動物における血清アディポネクチンレベル。B (A)におけるものと同じ動物のマクロファージマーカーF4/80のqRT-PCRによる発現定量C AAV8-CAG-moFGF21-dmiRTベクターを受けたob/obマウスからのeWAT切片の、マクロファージ特異的マーカーMac2についての免疫染色の代表的イメージ。n=4~8/群。スケールバー:200μm。D 全てのeWAT内処置群における肝臓の重量。E、F (A)におけるものと同じコホートにおける給餌状態での肝臓トリグリセリドおよびコレステロール含量。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A、B、D)においてn=4~8動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 null注射ob/ob群。Figure 14. Effect of FGF21 gene transfer on eWAT in ob/ob mice. A At 11 weeks of age, either AAV8-CAG-null vector or AAV8-CAG-moFGF21-dmiRT vector was administered at four different doses (1×10 10 , 5×10 10 , 2×10 11 , 1×10 12 vg/day). Serum adiponectin levels in 25-week-old ob/ob animals injected intra-eWAT in mice). B. Expression quantification by qRT-PCR of the macrophage marker F4/80 in the same animals as in (A) C. eWAT sections from ob/ob mice that received the AAV8-CAG-moFGF21-dmiRT vector for the macrophage-specific marker Mac2. Representative images of immunostaining of . n=4-8/group. Scale bar: 200 μm. D Liver weights in all intra-eWAT treatment groups. E, F Liver triglyceride and cholesterol content in the fed state in the same cohort as in (A). Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n=4-8 animals/group in (A, B, D). *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus null injected ob/ob group. 図15. AAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置されたob/obマウスにおける肥満の低減およびインスリン感受性の改善。A nullまたはFGF21をコードするAAVベクターのいずれかを1×1011または5×1011vg/マウスで注射されたob/ob動物から得られたeWAT組織切片のヘマトキシリン-エオシン染色の代表的イメージ。B 全ての群における血清アディポネクチンレベル。C nullまたはFGF21をコードするAAVベクターのいずれかを1×1011または5×1011vg/マウスで注射されたob/ob動物から得られた肝臓組織切片のヘマトキシリン-エオシン染色の代表的イメージ。D 給餌時血中グルコースレベル。E AAV後5月での給餌時血清インスリンレベル。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全てのデータは平均値±SEMで表現される。(A-C、E、G-H)においてn=9~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 null注射ob/ob群。Figure 15. Reduced obesity and improved insulin sensitivity in ob/ob mice treated with AAV8-hAAT-moFGF21 vector. Representative images of hematoxylin-eosin staining of eWAT tissue sections obtained from ob/ob animals injected with either A null or AAV vectors encoding FGF21 at 1×10 11 or 5×10 11 vg/mouse. B Serum adiponectin levels in all groups. Representative images of hematoxylin-eosin staining of liver tissue sections obtained from ob/ob animals injected with either C null or AAV vectors encoding FGF21 at 1×10 11 or 5×10 11 vg/mouse. D Feeding blood glucose levels. E Feeding serum insulin levels at 5 months post AAV. Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data information: All data are expressed as mean±SEM. n=9-10 animals/group in (AC, E, GH). *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus null injected ob/ob group. 図16. ob/obマウスに対するFGF21肝臓遺伝子導入の効果。A AAV8-hAAT-moFGF21ベクターを受けたob/obマウスからのeWAT切片における、マクロファージ特異的マーカーMac2についての免疫組織化学。スケールバー:500μm。B、C 同じマウスコホートにおける炎症マーカーF4/80(B)およびTNF-α(C)のqRT-PCRによる発現定量。D、E (A)におけるものと同じ実験群に属する動物から得られた肝臓の重量(D)および代表的イメージ(E)。F、G (A)におけるものと同じコホートにおける給餌状態での肝臓トリグリセリドおよびコレステロール含量。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(B、D-F、H-I)においてn=9~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 null注射ob/ob群。Figure 16. Effect of FGF21 liver gene transfer on ob/ob mice. A, Immunohistochemistry for the macrophage-specific marker Mac2 in eWAT sections from ob/ob mice that received the AAV8-hAAT-moFGF21 vector. Scale bar: 500 μm. B, C Expression quantification by qRT-PCR of inflammatory markers F4/80 (B) and TNF-α (C) in the same cohort of mice. D, E Weights (D) and representative images (E) of livers obtained from animals belonging to the same experimental group as in (A). F, G Liver triglyceride and cholesterol content in the fed state in the same cohort as in (A). Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n=9-10 animals/group in (B, DF, HI). *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus null injected ob/ob group. 図17. AAV8-hAAT-moFGF21処置は、ob/obマウスの脂肪組織においてグルコース取り込みおよび熱産生に関与する遺伝子の発現を増加させる。A、B 2月齢時にAAV8-hAAT-nullベクターまたはAAV8-hAAT-moFGF21ベクターのいずれかを注射されたob/obマウスにおける肝臓PEPCKおよびG6PaseのqRT-PCRによる発現定量。C-F (A)におけるものと同じ動物における、eWAT、iWATおよびiBAT中のGLUT1(C)、GLUT4(D)、HKI(E)およびHKII(F)のqRT-PCRによる発現定量。G (A)におけるものと同じコホートにおける、iBAT中のUCP1の相対的発現量。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A-G)においてn=9~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 null注射ob/ob群。Figure 17. AAV8-hAAT-moFGF21 treatment increases the expression of genes involved in glucose uptake and thermogenesis in adipose tissue of ob/ob mice. A, B Expression quantification by qRT-PCR of hepatic PEPCK and G6Pase in ob/ob mice injected with either AAV8-hAAT-null vector or AAV8-hAAT-moFGF21 vector at 2 months of age. CF Expression quantification by qRT-PCR of GLUT1 (C), GLUT4 (D), HKI (E) and HKII (F) in eWAT, iWAT and iBAT in the same animals as in (A). G Relative expression levels of UCP1 in iBAT in the same cohort as in (A). Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n=9-10 animals/group in (AG). *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus null injected ob/ob group. 図18. AAV8媒介性の肝臓FGF21遺伝子導入はHFD誘発性肥満に対抗する。A 若年成体(上パネル)または成体(下パネル)としてAAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置されたマウスから得られた精巣上体(eWAT)、鼠径部(iWAT)および後腹膜(rWAT)白色脂肪組織貯蔵部、肝臓および四頭筋の重量。B ベクター投与後の異なる時点でのFGF21の循環レベル。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A-D)においてn=7~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 固形飼料給餌Null注射群。P<0.05、##P<0.01および###P<0.001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。Figure 18. AAV8-mediated hepatic FGF21 gene transfer counteracts HFD-induced obesity. A Epididymal (eWAT), inguinal (iWAT) and retroperitoneal (rWAT) white adipose tissue obtained from mice treated with the AAV8-hAAT-moFGF21 vector as young adults (top panels) or adults (bottom panels). Weight of depot, liver and quadriceps. B Circulating levels of FGF21 at different time points after vector administration. Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n=7-10 animals/group in (AD). *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus chow-fed Null injection group. #P <0.05, ## P<0.01 and ### P<0.001 versus HFD-fed Null injection group. HFD, high fat diet; 図19. 肝臓へのFGF21遺伝子導入はHFD誘発性肥満に対抗する。A、B 若年成体(A)または成体(B)において実施された試験の全ての実験群に属する動物の代表的イメージ。C 若年成体(左)または成体(右)としていくつかの用量のAAV8-hAAT-moFGF21で処置された動物から屠殺時に得られた精巣上体白色脂肪(eWAT)パッドの代表的イメージ。D 若年成体(左)または成体(右)として処置された動物から得られた肝臓の代表的イメージ。E 若年成体または成体として処置された動物の肝臓中のAAVに由来するFGF21発現。qPCRは、コドン最適化されたマウスFGF21(coFGF21)のコーディング配列を特異的に検出するプライマーを使用して実施した。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(E)においてn=7~10動物/群。HFD、高脂肪食。ND、検出されず。Figure 19. FGF21 gene transfer into the liver counteracts HFD-induced obesity. A, B Representative images of animals belonging to all experimental groups of studies performed in young adults (A) or adults (B). C Representative images of epididymal white adipose (eWAT) pads obtained at sacrifice from animals treated with several doses of AAV8-hAAT-moFGF21 as young adults (left) or adults (right). D Representative images of livers obtained from animals treated as young adults (left) or adults (right). E, AAV-derived FGF21 expression in livers of young adults or animals treated as adults. qPCR was performed using primers that specifically detect the coding sequence of codon-optimized murine FGF21 (coFGF21). Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. In (E) n=7-10 animals/group. HFD, high fat diet; ND, not detected. 図20. iBATおよびiWATにおけるAAV8-hAAT-moFGF21媒介性のエネルギー消費増加および脂肪蓄積減少。A 約2月齢からHFD給餌に供され、2月後にnullまたはFGF21をコードするベクターのいずれかで処置された動物(若年成体)におけるオープンフィールド試験を通じた自発運動活性の査定。B 若年成体(左)または成体(右)として処置された動物からのiBAT組織切片のヘマトキシリン-エオシン染色。C (A)におけるものと同じ動物コホートからのiBAT中のUCP1含量のウエスタンブロット分析。代表的イムノブロットが示される(左)。ヒストグラムは2つの異なるイムノブロットの濃度測定分析を描写する(右)。D 若年成体(左)または成体(右)として処置された動物からのiWAT組織切片のヘマトキシリン-エオシン染色。E 若年成体または成体としてHFD給餌を開始してFGF21ベクターを受けた動物群における、iWAT中のPhospho1のqRT-PCRによる発現定量。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A-C)においてn=7~10動物/群。(E)においてn=4動物/群。(G)においてn=7~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 固形飼料給餌Null注射群。P<0.05および###P<0.001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。Figure 20. AAV8-hAAT-moFGF21-mediated increased energy expenditure and decreased fat accumulation in iBAT and iWAT. A Assessment of locomotor activity through the open field test in animals (young adults) subjected to HFD feeding from approximately 2 months of age and treated 2 months later with either null or a vector encoding FGF21. B Hematoxylin-eosin staining of iBAT tissue sections from animals treated as young adults (left) or adults (right). C Western blot analysis of UCP1 content in iBAT from the same animal cohort as in (A). A representative immunoblot is shown (left). Histograms depict densitometric analysis of two different immunoblots (right). D Hematoxylin-eosin staining of iWAT tissue sections from animals treated as young adults (left) or adults (right). E Expression quantification by qRT-PCR of Phospho1 in iWAT in young adults or groups of animals that started HFD feeding as adults and received the FGF21 vector. Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n=7-10 animals/group in (AC). In (E) n=4 animals/group. In (G) n=7-10 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus chow-fed Null injection group. #P <0.05 and ### P<0.001 versus HFD-fed Null injection group. HFD, high fat diet; 図21. 肝臓への遺伝子導入後10月でのエネルギー消費。A 2月齢時にHFD給餌を開始した動物コホートにおけるエネルギー消費を、AAV8-hAAT-nullまたはAAV8-hAAT-moFGF21ベクター送達後10月で測定した。データは、明サイクルおよび暗サイクルの間に取得した。B 同じ動物コホートからのiWAT中のUCP1含量のウエスタンブロット分析。代表的イムノブロットが示される(左)。グラフは2つの異なるイムノブロットの濃度測定分析を示す(右)。C 若年成体または成体としてHFD給餌を開始してFGF21ベクターを受けた動物群における、iWAT中のSerca2bおよびRyR2の相対的発現量。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A)においてn=7~10動物/群。(B)においてn=4動物/群。(C)においてn=7~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 固形飼料給餌Null注射群。###P<0.001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。Figure 21. Energy consumption in October after gene transfer to the liver. A Energy expenditure in cohorts of animals that started HFD feeding at 2 months of age was measured 10 months after AAV8-hAAT-null or AAV8-hAAT-moFGF21 vector delivery. Data were acquired during the light and dark cycles. B Western blot analysis of UCP1 content in iWAT from the same animal cohort. A representative immunoblot is shown (left). The graph shows the densitometric analysis of two different immunoblots (right). C Relative expression levels of Serca2b and RyR2 in iWAT in young adults or groups of animals that started HFD feeding as adults and received the FGF21 vector. Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. In (A) n=7-10 animals/group. In (B) n=4 animals/group. In (C) n=7-10 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus chow-fed Null injection group. ### P<0.001 vs HFD-fed Null-injected group. HFD, high fat diet; 図22. AAV8-hAAT-moFGF21媒介性の島過形成の回復。A 若年成体としてHFD給餌を開始してFGF21ベクターを受けた動物群における空腹時グルカゴンレベル。B 成体としてHFD給餌を開始してFGF21ベクターを受けた動物群におけるβ細胞量。C 成体として5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT-moFGF21を受けた動物からの膵臓切片におけるインスリンに対する免疫染色の代表的イメージ。スケールバー:400μm。挿入図スケールバー:100μm。D 若年成体(上段パネル)または成体(下段パネル)として5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT-moFGF21を受けた動物からの膵臓切片におけるインスリン(濃い灰色)およびグルカゴン(薄い灰色)に対する二重免疫染色の代表的イメージ。スケールバー:100μm。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A-C)においてn=7~10動物/群。(D)においてn=4~5動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 固形飼料給餌Null注射群。P<0.05、##P<0.01および###P<0.001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。Figure 22. Restoration of AAV8-hAAT-moFGF21-mediated islet hyperplasia. A Fasting glucagon levels in a group of animals that started on HFD feeding as young adults and received the FGF21 vector. B, β-cell mass in a group of animals that began HFD feeding as adults and received the FGF21 vector. C Representative images of immunostaining for insulin in pancreatic sections from animals that received 5×10 10 vg/mouse of AAV8-hAAT-moFGF21 as adults. Scale bar: 400 μm. Inset scale bar: 100 μm. D Duplicates for insulin (dark grey) and glucagon (light grey) in pancreatic sections from animals receiving 5×10 10 vg/mouse of AAV8-hAAT-moFGF21 as young adults (top panels) or adults (bottom panels). Representative images of immunostaining. Scale bar: 100 μm. Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n=7-10 animals/group in (AC). In (D) n=4-5 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus chow-fed Null injection group. #P <0.05, ## P<0.01 and ### P<0.001 versus HFD-fed Null injection group. HFD, high fat diet; 図23. AAV8-hAAT-moFGF21での処置は耐糖能を改善する。A 耐糖能は、若年成体としてHFD給餌を開始してFGF21ベクターを受けたマウス群において、グルコースの腹腔内注射(2g/kg体重)後に試験した。B (A)中に示されるグルコース負荷試験の際の血清インスリンレベル。データの情報:全てのデータは平均値±SEMで表現される。(A-D)においてn=7~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 固形飼料給餌Null注射群。P<0.05、##P<0.01および###P<0.001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。Figure 23. Treatment with AAV8-hAAT-moFGF21 improves glucose tolerance. A Glucose tolerance was tested after intraperitoneal injection of glucose (2 g/kg body weight) in groups of mice that received FGF21 vector starting on HFD feeding as young adults. B Serum insulin levels during the glucose tolerance test shown in (A). Data information: All data are expressed as mean±SEM. n=7-10 animals/group in (AD). *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus chow-fed Null injection group. #P <0.05, ## P<0.01 and ### P<0.001 versus HFD-fed Null injection group. HFD, high fat diet; 図24. AAV8-hAAT-moFGF21処置によるWAT肥大および炎症の回復。A 若年成体(左パネル)または成体(右パネル)として固形飼料またはHFDを給餌してAAV8-hAAT-nullまたは5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターのいずれかを投与した動物からのeWATのヘマトキシリン-エオシン染色の代表的イメージ。HFD給餌null注射マウスの脂肪細胞はより大きかったが、HFD給餌FGF21処置動物の脂肪細胞はサイズが低減した。スケールバー:100μm。B 若年成体または成体として処置された動物におけるWAT脂肪細胞の面積の形態計測分析。C、D アディポネクチン(C)およびレプチン(D)の循環レベル。E 成体として5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT-moFGF21を受けた動物からのeWAT切片におけるマクロファージ特異的マーカーMac2についての免疫組織化学。顕微鏡写真は、HFD給餌null注射動物のeWATにおける王冠様構造の存在を示すが(矢印および挿入図)、HFD給餌FGF21処置マウスのeWATにはない。スケールバー:200μmおよび50μm(挿入図)。F-H 成体としてHFD給餌を開始してFGF21ベクターを受けた動物群における炎症マーカーF4/80(F)、IL1-β(G)およびTNF-α(H)のqRT-PCRによる発現定量。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(B)においてn=4動物/群。(F-H)においてn=7~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 固形飼料給餌Null注射群。P<0.05、##P<0.01および###P<0.001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。Figure 24. Reversal of WAT hypertrophy and inflammation by AAV8-hAAT-moFGF21 treatment. A From animals fed chow or HFD as young adults (left panel) or adults (right panel) and administered either AAV8-hAAT-null or 5×10 10 vg/mouse of AAV8-hAAT-moFGF21 vector. Representative images of hematoxylin-eosin staining of eWAT from . Adipocytes in HFD-fed null-injected mice were larger, whereas adipocytes in HFD-fed FGF21-treated animals were reduced in size. Scale bar: 100 μm. B Morphometric analysis of WAT adipocyte area in young adults or animals treated as adults. C, D Circulating levels of adiponectin (C) and leptin (D). E Immunohistochemistry for the macrophage-specific marker Mac2 in eWAT sections from animals receiving 5×10 10 vg/mouse AAV8-hAAT-moFGF21 as adults. Micrographs show the presence of crown-like structures in eWAT of HFD-fed, null-injected animals (arrows and insets), but not in eWAT of HFD-fed, FGF21-treated mice. Scale bar: 200 μm and 50 μm (inset). FH Expression quantification by qRT-PCR of inflammatory markers F4/80 (F), IL1-β (G) and TNF-α (H) in a group of animals that started HFD feeding as adults and received FGF21 vector. Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. In (B) n=4 animals/group. In (FH) n=7-10 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus chow-fed Null injection group. #P <0.05, ## P<0.01 and ### P<0.001 versus HFD-fed Null injection group. HFD, high fat diet; 図25. AAV8-hAAT-moFGF21処置動物における脂肪細胞のサイズおよび炎症。A 若年成体(上グラフ)または成体(下グラフ)として固形飼料またはHFD給餌を開始してAAV8-hAAT-nullまたは5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターのいずれかを受けた動物群における脂肪細胞面積の頻度分布。B 若年成体として試験を開始した動物のeWATにおけるMac2免疫組織化学。HFD給餌null注射マウスのeWATにおけるマクロファージ浸潤により形成された王冠様構造が矢印により指し示される。スケールバー:200μmおよび50μm(挿入図)。C-E (B)におけるものと同じ動物コホートにおける、炎症マーカーF4/80、CD68およびTNF-αのqRT-PCRによる相対的発現量。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A)においてn=4動物/群。(C-E)においてn=7~10動物/群。***P<0.001 対 固形飼料給餌Null注射群。###P<0.001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。Figure 25. Adipocyte size and inflammation in AAV8-hAAT-moFGF21 treated animals. A Animals receiving either AAV8-hAAT-null or 5×10 10 vg/mouse of AAV8-hAAT-moFGF21 vector starting on chow or HFD feeding as young adults (top graph) or adults (bottom graph). Frequency distribution of adipocyte area in groups. B, Mac2 immunohistochemistry in eWAT of animals beginning the study as young adults. Crown-like structures formed by macrophage infiltration in eWAT of HFD-fed null-injected mice are indicated by arrows. Scale bar: 200 μm and 50 μm (inset). CE Relative expression levels by qRT-PCR of inflammatory markers F4/80, CD68 and TNF-α in the same animal cohort as in (B). Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n=4 animals/group in (A). In (CE) n=7-10 animals/group. ***P<0.001 vs chow-fed Null-injected group. ### P<0.001 vs HFD-fed Null-injected group. HFD, high fat diet; 図26. FGF21をコードするベクターでの処置は、脂肪肝および肝臓の炎症を回復させる。A 固形飼料またはHFDを給餌してAAV8-hAAT-nullまたは5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターのいずれかを投与した動物から得られた肝臓切片のヘマトキシリン-エオシン染色の代表的イメージ。HFDは肝臓中の脂肪滴蓄積を明らかに誘導し、これは若年成体および成体のいずれにおいてもAAV8-hAAT-moFGF21処置により回復した。スケールバー:100μm。B、C 同じ動物コホートにおける給餌時の肝臓トリグリセリドおよびコレステロール含量。D HFDを給餌してAAV8-hAAT-nullまたは5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT-moFGF21ベクターを受けた動物からの肝臓切片のマクロファージ特異的マーカーMac-2についての免疫染色。矢印は王冠様構造の存在を指し示す。スケールバー:200μmおよび50μm(挿入図)。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(B-C)においてn=7~10動物/群。**P<0.01および***P<0.001 対 固形飼料給餌Null注射群。 P<0.01 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。Figure 26. Treatment with vectors encoding FGF21 reverses fatty liver and liver inflammation. A. Representative hematoxylin-eosin staining of liver sections obtained from animals fed chow or HFD and administered either AAV8-hAAT-null or 5×10 10 vg/mouse of AAV8-hAAT-moFGF21 vector. image. HFD clearly induced lipid droplet accumulation in the liver, which was reversed by AAV8-hAAT-moFGF21 treatment in both young adults and adults. Scale bar: 100 μm. B, C Liver triglyceride and cholesterol content at feeding in the same animal cohort. D Immunostaining for the macrophage-specific marker Mac-2 of liver sections from animals fed HFD and receiving AAV8-hAAT-null or 5×10 10 vg/mouse of AAV8-hAAT-moFGF21 vector. Arrows point to the presence of crown-like structures. Scale bar: 200 μm and 50 μm (inset). Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. In (BC) n=7-10 animals/group. **P<0.01 and ***P<0.001 versus chow-fed Null injection group. # # P<0.01 vs HFD-fed Null-injected group. HFD, high fat diet; 図27. AAV8-hAAT-moFGF21媒介性の肝線維症の好転。 5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT-nullまたはAAV8-hAAT-moFGF21ベクターのいずれかを受けたHFD給餌動物におけるマッソントリクローム染色を通じた肝線維症の分析。AAV8-hAAT-moFGF21処置(右パネル)は、nullベクターで処置された動物(左パネル)において容易に検出可能なコラーゲン線維(青色)の検出を著しく減少させた。スケールバー:50μm。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。Figure 27. AAV8-hAAT-moFGF21-mediated reversal of liver fibrosis. Analysis of liver fibrosis through Masson's Trichrome staining in HFD-fed animals receiving either 5×10 10 vg/mouse of AAV8-hAAT-null or AAV8-hAAT-moFGF21 vectors. AAV8-hAAT-moFGF21 treatment (right panel) significantly reduced detection of readily detectable collagen fibers (blue) in null vector treated animals (left panel). Scale bar: 50 μm. Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. 図28. AAV8-hAAT-moFGF21処置は肝線維症を改善する。A 5×1010vg/マウスのAAV8-hAAT-nullまたはAAV8-hAAT-moFGF21ベクターのいずれかを受けたHFD給餌動物におけるピクロシリウス染色を通じた肝線維症の分析。AAV8-hAAT-moFGF21処置(右パネル)は、nullベクターで処置された動物(左パネル)において容易に検出可能なコラーゲン線維(黒色)の検出を著しく減少させた。スケールバー:50μm。B、C 若年成体(B)または成体(C)としてHFD給餌を開始してFGF21ベクターを受けた動物群における、肝臓中のコラーゲン1のqRT-PCRによる発現定量。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(B-C)においてn=7~10動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 固形飼料給餌Null注射群。P<0.05および###P<0.001 対 HFD給餌Null注射群。HFD、高脂肪食。Figure 28. AAV8-hAAT-moFGF21 treatment ameliorates liver fibrosis. A Analysis of liver fibrosis via Picrosirius staining in HFD-fed animals receiving either AAV8-hAAT-null or AAV8-hAAT-moFGF21 vectors at 5×10 10 vg/mouse. AAV8-hAAT-moFGF21 treatment (right panel) significantly reduced detection of readily detectable collagen fibers (black) in null vector treated animals (left panel). Scale bar: 50 μm. B, C Expression quantification by qRT-PCR of Collagen 1 in liver in groups of animals that received FGF21 vector starting on HFD feeding as young adults (B) or adults (C). Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. In (BC) n=7-10 animals/group. *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 versus chow-fed Null injection group. #P <0.05 and ### P<0.001 versus HFD-fed Null injection group. HFD, high fat diet; 図29. AAV8-hAAT-moFGF21処置動物において骨異常は認められなかった。骨に対するFGF21遺伝子導入の長期的効果を、若年成体または成体として最も高い用量(5×1010vg/マウス)のAAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置されたHFD給餌マウスとnull注射の固形飼料またはHFD給餌動物との比較により試験した。A 鼻先から尾根部までの全長。B 脛骨長。C-O nullまたはFGF21をコードするAAVベクターのいずれかを投与したHFD給餌マウスから屠殺時、すなわち動物が18月齢の時に得られた脛骨の骨端(C-J)および骨幹(K-O)のマイクロコンピュータ断層撮影(μCT)分析。P、Q ELISAにより測定された循環IGFBP1(P)およびIGF1(Q)のレベル。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全てのデータは平均値±SEMで表現される。(A、P-Q)においてn=7~10動物/群。(B-O)においてn=4動物/群。**P<0.01および***P<0.001 対 固形飼料給餌Null注射群。HFD、高脂肪食;BMD、骨ミネラル密度;BMC、骨ミネラル含量;BV、骨体積;BV/TV、骨体積/組織体積比;BS/BV、骨表面/骨体積比;Tb.N、骨梁数;Tb.Th、骨梁幅;Tb.Sp、骨梁間隔。Figure 29. No bone abnormalities were observed in AAV8-hAAT-moFGF21 treated animals. Long-term effects of FGF21 gene transfer on bone were evaluated in HFD-fed mice treated as young adults or with the highest dose (5×10 10 vg/mouse) of AAV8-hAAT-moFGF21 vector as adults versus chow or HFD null injections. Tested by comparison with fed animals. A Full length from nose tip to ridge. B tibia length. Epiphysis (CJ) and diaphysis (KO) of tibiae obtained from HFD-fed mice administered either C-O null or an AAV vector encoding FGF21 at sacrifice, i.e., when animals were 18 months of age. microcomputed tomography (μCT) analysis of . P, Q Levels of circulating IGFBP1 (P) and IGF1 (Q) measured by ELISA. Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data information: All data are expressed as mean±SEM. n=7-10 animals/group in (A, PQ). n=4 animals/group in (BO). **P<0.01 and ***P<0.001 versus chow-fed Null injection group. BMD, bone mineral density; BMC, bone mineral content; BV, bone volume; BV/TV, bone volume/tissue volume ratio; BS/BV, bone surface/bone volume ratio; N, trabecular bone number; Tb. Th, trabecular width; Tb. Sp, trabecular spacing; 図30. AAV8-hAAT-moFGF21ベクターで処置されたC57Bl6マウスにおける血糖プロファイルの分析。血中グルコースレベルは給餌条件下で評価した。AAV、5×1010vgまたは2×1011vgのAAV8-hAAT-moFGF21(それぞれn=13および15)または2×1011vgのAAV8-nullベクター(n=15)のIV投与。STZ、ストレプトゾトシンでの処置(5×50mg/kg)。結果は平均値+SEMである。* p<0.05;*** p<0.001 vs AAV8-hAAT-Null。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。Figure 30. Analysis of glycemic profiles in C57B16 mice treated with AAV8-hAAT-moFGF21 vector. Blood glucose levels were assessed under fed conditions. IV administration of AAV, 5×10 10 vg or 2×10 11 vg of AAV8-hAAT-moFGF21 (n=13 and 15, respectively) or 2×10 11 vg of AAV8-null vector (n=15). STZ, treatment with streptozotocin (5 x 50 mg/kg). Results are mean + SEM. *p<0.05;***p<0.001 vs AAV8-hAAT-Null. Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. 図31. 健常動物の骨格筋へのFGF21の遺伝子導入。A 3×1011vg/マウスのAAV1-CMV-NullまたはAAV1-CMV-moFGF21ベクターのいずれかを固形飼料食を給餌した健常動物の骨格筋に注射した40週後に測定されたFGF21の循環レベル。B AAV1-CMV-NullまたはAAV1-CMV-moFGF21ベクターを筋肉内注射した健常動物の筋肉および肝臓中ののAAVに由来するFGF21発現。C 40週の追跡期間中の体重の進展。D 異なる筋肉、脂肪パッドおよび肝臓の組織湿重量。E、F 給餌状態での肝臓トリグリセリドおよびコレステロール含量。G 給餌時血清インスリンレベル。H インスリン(0.75units/kg体重)の腹腔内注射を通じて査定され、開始時血中グルコースのパーセンテージとして表されるインスリン感受性。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A-H)においてn=5-7動物/群。*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001 対 Null注射群。Figure 31. Gene transfer of FGF21 into skeletal muscle of healthy animals. A Circulating levels of FGF21 measured 40 weeks after injection of either AAV1-CMV-Null or AAV1-CMV-moFGF21 vectors of 3×10 11 vg/mouse into skeletal muscle of healthy animals fed a chow diet. B AAV-derived FGF21 expression in muscle and liver of healthy animals injected intramuscularly with AAV1-CMV-Null or AAV1-CMV-moFGF21 vectors. C Evolution of body weight during the 40-week follow-up period. D Tissue wet weights of different muscles, fat pads and liver. E, F Liver triglyceride and cholesterol content in the fed state. G Feeding serum insulin levels. Insulin sensitivity assessed through intraperitoneal injection of H insulin (0.75 units/kg body weight) and expressed as a percentage of starting blood glucose. Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. n=5-7 animals/group in (AH). *P<0.05, **P<0.01 and ***P<0.001 vs Null injection group. 図32. AAV1媒介性の骨格筋FGF21遺伝子導入はHFD誘発性肥満およびインスリン抵抗性に対抗する。A、B AAV1-CMV-moFGF21で処置された動物の体重(A)および体重増加(B)の進展。C57Bl6マウスにHFDを約12週間給餌し、次いで3×1011vg/マウスのAAV1-CMV-moFGF21ベクターを投与した。コントロールの肥満マウスおよびコントロールの固形飼料給餌マウスは3×1011vgのAAV1-CMV-nullを受けた。C ベクター投与後異なる時点でのFGF21の循環レベル。D、E (A、B)におけるものと同じ動物群における空腹時血中グルコース(D)および給餌時血清インスリン(E)のレベル。F インスリン感受性を、インスリン(0.75units/kg体重)の腹腔内注射後、全ての実験群において決定した。結果は、開始時血中グルコースレベルのパーセンテージとして算出した。図中のFGF21の標識は、この図のレジェンドに従ってmoFGF21を指す。データの情報:全ての値は平均値±SEMとして表現される。(A-F)においてHFD給餌マウス n=10動物/群;固形飼料給餌マウス n=5動物/群。***P<0.001 対 HFD給餌null注射群。Figure 32. AAV1-mediated skeletal muscle FGF21 gene transfer counteracts HFD-induced obesity and insulin resistance. A, B Evolution of body weight (A) and weight gain (B) in animals treated with AAV1-CMV-moFGF21. C57B16 mice were fed HFD for approximately 12 weeks and then administered 3×10 11 vg/mouse of AAV1-CMV-moFGF21 vector. Control obese mice and control chow-fed mice received 3×10 11 vg of AAV1-CMV-null. C Circulating levels of FGF21 at different time points after vector administration. D, E Levels of fasting blood glucose (D) and fed serum insulin (E) in the same groups of animals as in (A, B). F Insulin sensitivity was determined in all experimental groups after intraperitoneal injection of insulin (0.75 units/kg body weight). Results were calculated as a percentage of starting blood glucose levels. Labeling of FGF21 in the figure refers to moFGF21 according to the legend of this figure. Data Information: All values are expressed as mean±SEM. In (AF) HFD-fed mice n=10 animals/group; chow-fed mice n=5 animals/group. ***P<0.001 vs HFD-fed null-injected group. 図33. ヒトFGF21をコードするヌクレオチド配列のコドン最適化によるFGF21循環レベルのインビボでの増加。野生型hFGF21またはコドン最適化されたヒトFGF21配列の3つの異なるバリアントをコードするプラスミドをハイドロダイナミクス投与したC57Bl6マウスにおけるhFGF21の循環レベル。結果は平均値±SEMとして表現される。n=9~10マウス/群。ND、検出されず。ネガティブコントロール、未処置マウス。* p<0.05 vs 非処置マウス。Figure 33. In vivo increase in FGF21 circulating levels by codon optimization of the nucleotide sequence encoding human FGF21. Circulating levels of hFGF21 in C57B16 mice hydrodynamically administered with plasmids encoding wild-type hFGF21 or three different variants of the codon-optimized human FGF21 sequence. Results are expressed as mean ± SEM. n=9-10 mice/group. ND, not detected. Negative control, untreated mice. *p<0.05 vs untreated mice. 図34. hAAT-moFGF21、CAG-moFGF21-doublemiRTおよびCMV-moFGF21発現カセットによるFGF21発現レベルのインビトロでの増加。(A)EF1aプロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21コーディング配列(EF1a-mFGF21)またはCMVプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列(CMV-moFGF21)またはmiRT122a配列の4個のタンデムリピートおよびmiRT1配列の4個のタンデムリピートを伴った、CAGプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列(CAG-moFGF21-doublemiRT)をコードするプラスミドをトランスフェクトしたHEK293細胞におけるFGF21の発現レベル。(BおよびC)(A)におけるものと同じ細胞における細胞内FGF21タンパク質含量(B)および培養培地中のFGF21タンパク質レベル(C)。(D)EF1aプロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21コーディング配列(EF1a-mFGF21)またはCMVプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列(CMV-moFGF21)をコードするプラスミドをトランスフェクトしたC2C12細胞におけるFGF21の発現レベル。(E)EF1aプロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21コーディング配列(EF1a-mFGF21)またはhAATプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21(hAAT-moFGF21)をコードするプラスミドをトランスフェクトしたHepG2細胞におけるFGF21の発現レベル。qPCRは、wtおよびコドン最適化されたFGF21コーディング配列の両方を検出するプライマーを使用して実施した。結果は平均値±SEMとして表現される。n=3ウェル/群。ND、検出されず。* p<0.05 vs コントロール。### p<0.001 vs EF1a-mFGF21。Figure 34. Increased FGF21 expression levels in vitro by hAAT-moFGF21, CAG-moFGF21-doublemiRT and CMV-moFGF21 expression cassettes. (A) WT mouse FGF21 coding sequence under control of EF1a promoter (EF1a-mFGF21) or codon-optimized mouse FGF21 coding sequence under control of CMV promoter (CMV-moFGF21) or four sequences of miRT122a FGF21 in HEK293 cells transfected with a plasmid encoding a codon-optimized mouse FGF21 coding sequence under the control of the CAG promoter (CAG-moFGF21-doublemiRT) with a tandem repeat and four tandem repeats of the miRT1 sequence. expression level. (B and C) Intracellular FGF21 protein content (B) and FGF21 protein levels in the culture medium (C) in the same cells as in (A). (D) Plasmids encoding WT mouse FGF21 coding sequence under control of EF1a promoter (EF1a-mFGF21) or codon-optimized mouse FGF21 coding sequence under control of CMV promoter (CMV-moFGF21) were transfected. Expression level of FGF21 in C2C12 cells. (E) HepG2 transfected with plasmids encoding WT mouse FGF21 coding sequence under control of EF1a promoter (EF1a-mFGF21) or codon-optimized mouse FGF21 under control of hAAT promoter (hAAT-moFGF21). Expression level of FGF21 in cells. qPCR was performed using primers that detect both the wt and codon-optimized FGF21 coding sequences. Results are expressed as mean ± SEM. n=3 wells/group. ND, not detected. *p<0.05 vs control. ### p<0.001 vs EF1a-mFGF21. 図35. hAAT-moFGF21およびCMV-moFGF21発現カセットによる肝臓FGF21発現およびFGF21循環レベルのインビボでの増加。(A)伸長因子1a(EF1a)プロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21コーディング配列(EF1a-mFGF21)またはCMVプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列(CMV-moFGF21)またはhAATプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列(hAAT-moFGF21)をコードするプラスミドをハイドロダイナミクス投与したC57Bl6マウスの肝臓中のFGF21の発現レベル。qPCRは、wtおよびコドン最適化されたFGF21コーディング配列の両方を検出するプライマーを使用して実施した。(B)(A)におけるものと同じコホートにおけるFGF21循環レベル。結果は平均値±SEMとして表現される。n=5マウス/群。** p<0.01 vs. EF1a-mFGF21Figure 35. In vivo increase in hepatic FGF21 expression and circulating FGF21 levels by hAAT-moFGF21 and CMV-moFGF21 expression cassettes. (A) WT mouse FGF21 coding sequence under control of elongation factor 1a (EF1a) promoter (EF1a-mFGF21) or codon-optimized mouse FGF21 coding sequence under control of CMV promoter (CMV-moFGF21) or hAAT Expression levels of FGF21 in the liver of C57Bl6 mice hydrodynamically administered with a plasmid encoding a codon-optimized murine FGF21 coding sequence (hAAT-moFGF21) under the control of a promoter. qPCR was performed using primers that detect both the wt and codon-optimized FGF21 coding sequences. (B) FGF21 circulating levels in the same cohort as in (A). Results are expressed as mean ± SEM. n=5 mice/group. **p<0.01 vs. EF1a-mFGF21 図36. AAV8-hAAT-moFGF21による肝臓FGF21発現およびFGF21循環レベルのインビボでの増加。(A)1×1010vg、2×1010vgまたは5×1010vgの、伸長因子1a(EF1a)プロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21コーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-EF1a-mFGF21)またはhAATプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21(AAV8-hAAT-moFGF21)を静脈内投与したC57Bl6マウスの肝臓中のFGF21発現レベル。qPCRは、wtおよびコドン最適化されたFGF21コーディング配列の両方を検出するプライマーを使用して実施した。(B)(A)におけるものと同じコホートにおけるFGF21循環レベル。分析はAAV後2週で実施した。結果は平均値±SEMとして表現される。n=4~5マウス/群。コントロール、未処置マウス。** p<0.01および*** p<0.001 vs. コントロール。## p<0.01および### p<0.001 vs. AAV8-EF1a-mFGF21Figure 36. In vivo increase in hepatic FGF21 expression and circulating FGF21 levels by AAV8-hAAT-moFGF21. ( A ) AAV8 vectors ( AAV8 -EF1a- FGF21 expression levels in the liver of C57Bl6 mice intravenously injected with either mFGF21) or codon-optimized mouse FGF21 under the control of the hAAT promoter (AAV8-hAAT-moFGF21). qPCR was performed using primers that detect both the wt and codon-optimized FGF21 coding sequences. (B) FGF21 circulating levels in the same cohort as in (A). Analysis was performed 2 weeks after AAV. Results are expressed as mean±SEM. n=4-5 mice/group. Control, untreated mice. **p<0.01 and ***p<0.001 vs. Control. ## p<0.01 and ### p<0.001 vs. AAV8-EF1a-mFGF21 図37. AAV8-CAG-moFGF21-dmiRTによる脂肪FGF21発現のインビボでの増加。(A-B)2×1010vg、5×1010vgまたは1×1011vgの、伸長因子1a(EF1a)プロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21コーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-EF1a-mFGF21)またはmiRT122a配列の4個のタンデムリピートおよびmiRT1配列の4個のタンデムリピートを伴った、CAGプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-CAG-moFGF21-doublemiRT)のいずれかをeWAT内投与したC57Bl6マウスのeWAT(A)または肝臓(B)におけるFGF21の発現レベル。qPCRは、wtおよびコドン最適化されたFGF21コーディング配列の両方を検出するプライマーを使用して実施した。分析はAAV後2週で実施した。結果は平均値±SEMとして表現される。n=4~5マウス/群。コントロール、未処置マウス。eWAT、精巣上体(epidydimal)白色脂肪組織。* p<0.05、** p<0.01、ならびにFigure 37. In vivo increase in adipose FGF21 expression by AAV8-CAG-moFGF21-dmiRT. (AB) AAV8 vectors encoding 2×10 10 vg, 5×10 10 vg or 1×10 11 vg of the WT mouse FGF21 coding sequence under the control of the elongation factor 1a (EF1a) promoter (AAV8- EF1a-mFGF21) or an AAV8 vector encoding a codon-optimized murine FGF21 coding sequence under control of a CAG promoter with four tandem repeats of miRT122a sequences and four tandem repeats of miRT1 sequences (AAV8- Expression levels of FGF21 in eWAT (A) or liver (B) of C57B16 mice intra-eWAT with either CAG-moFGF21-doublemiRT). qPCR was performed using primers that detect both the wt and codon-optimized FGF21 coding sequences. Analysis was performed 2 weeks after AAV. Results are expressed as mean±SEM. n=4-5 mice/group. Control, untreated mice. eWAT, epidydimal white adipose tissue; *p<0.05, **p<0.01, and 図38. AAV1-CMV-moFGF21による骨格筋におけるFGF21発現のインビボでの増加。(A-B)5×1010vg、1×1011vgまたは3×1011vgの、伸長因子1a(EF1a)プロモーターの制御下にあるWTのマウスFGF21コーディング配列をコードするAAV8ベクター(AAV8-EF1a-mFGF21)またはCMVプロモーターの制御下にあるコドン最適化されたマウスFGF21コーディング配列をコードするAAV1ベクター(AAV1-CMV-FGF21)のいずれかを筋肉内投与したC57Bl6マウスの四頭筋(A)または肝臓(B)におけるFGF21の発現レベル。qPCRは、wtおよびコドン最適化されたFGF21コーディング配列の両方を検出するプライマーを使用して実施した。分析はAAV後2週で実施した。結果は平均値±SEMとして表現される。n=4~5マウス/群。コントロール、未処置マウス。* p<0.05、** p<0.01および*** p<0.001 vs. コントロール。# p<0.05、## p<0.01および### p<0.001 vs. AAV8-EF1a-mFGF21。Figure 38. In vivo increase of FGF21 expression in skeletal muscle by AAV1-CMV-moFGF21. (AB) AAV8 vectors encoding 5×10 10 vg, 1×10 11 vg or 3×10 11 vg of the WT mouse FGF21 coding sequence under the control of the elongation factor 1a (EF1a) promoter (AAV8- Quadriceps (A) of C57Bl6 mice intramuscularly injected with either EF1a-mFGF21) or an AAV1 vector encoding a codon-optimized mouse FGF21 coding sequence under the control of the CMV promoter (AAV1-CMV-FGF21). Or the expression level of FGF21 in the liver (B). qPCR was performed using primers that detect both the wt and codon-optimized FGF21 coding sequences. Analysis was performed 2 weeks after AAV. Results are expressed as mean ± SEM. n=4-5 mice/group. Control, untreated mice. *p<0.05, **p<0.01 and ***p<0.001 vs. Control. # p<0.05, ## p<0.01 and ### p<0.001 vs. AAV8-EF1a-mFGF21.

Claims (28)

哺乳動物における発現に適しており、肝臓、脂肪組織および/または骨格筋において発
現する線維芽細胞増殖因子21(FGF21)をコードするヌクレオチド配列を含む、ウ
イルス発現コンストラクト。
A viral expression construct suitable for mammalian expression and comprising a nucleotide sequence encoding fibroblast growth factor 21 (FGF21) expressed in liver, adipose tissue and/or skeletal muscle.
哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレオチド配列、ならびに要
素a)、b)、c)、d)およびe):
(a)肝臓特異的プロモーター
(b)脂肪組織特異的プロモーター
(c)ユビキタスプロモーターと、肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコ
ードする少なくとも1つのヌクレオチド配列と、心臓において発現するマイクロRNAの
標的配列をコードする少なくとも1つのヌクレオチド配列との組み合わせであって、脂肪
組織における特異的発現を可能にするものである、前記組み合わせ
(d)骨格筋プロモーター、ならびに
(e)ユビキタスプロモーターとアデノ随伴ウイルス(AAV)ベクター配列との組み合
わせであって、骨格筋における特異的発現を可能にするものである、前記組み合わせ
のうちの少なくとも1つを含む、請求項1に記載のウイルス発現コンストラクト。
A nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal and elements a), b), c), d) and e):
(a) a liver-specific promoter (b) an adipose tissue-specific promoter (c) a ubiquitous promoter, at least one nucleotide sequence encoding a target sequence of a microRNA expressed in the liver, and a target sequence of a microRNA expressed in the heart (d) a skeletal muscle promoter and (e) a ubiquitous promoter and adeno-associated virus (AAV 4.) The viral expression construct of claim 1, comprising at least one of said combinations in combination with vector sequences, which allows specific expression in skeletal muscle.
哺乳動物における発現に適したFGF21をコードするヌクレオチド配列が:
(a)配列番号1、2または3のアミノ酸配列と少なくとも60%の配列同一性を持つア
ミノ酸配列を含むポリペプチドをコードするヌクレオチド配列
(b)配列番号4、5、6、7、8、9、10または11のヌクレオチド配列と少なくと
も60%の配列同一性を持つヌクレオチド配列
(c)遺伝暗号の縮重のためにヌクレオチド配列(b)の配列と配列が異なるヌクレオチ
ド配列
よりなる群から選択される、請求項1または2に記載のウイルス発現コンストラクト。
A nucleotide sequence encoding FGF21 suitable for expression in a mammal is:
(a) a nucleotide sequence encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence having at least 60% sequence identity with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1, 2 or 3; (b) SEQ ID NO: 4, 5, 6, 7, 8, 9 , a nucleotide sequence having at least 60% sequence identity with 10 or 11 nucleotide sequences, (c) a nucleotide sequence that differs in sequence from the sequence of nucleotide sequence (b) due to the degeneracy of the genetic code. , the viral expression construct of claim 1 or 2.
肝臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードするヌクレオチド配列および
心臓において発現するマイクロRNAの標的配列をコードするヌクレオチド配列が配列番
号12から30の配列および/またはそれらの組み合わせよりなる群から選択される、請
求項2または3に記載のウイルス発現コンストラクト。
The nucleotide sequence encoding the target sequence of the microRNA expressed in the liver and the nucleotide sequence encoding the target sequence of the microRNA expressed in the heart are selected from the group consisting of sequences of SEQ ID NOS: 12 to 30 and/or combinations thereof , the viral expression construct of claim 2 or 3.
肝臓特異的プロモーターがヒトα1-アンチトリプシン(hAAT)プロモーターであ
り、ならびに/または脂肪組織特異的プロモーターがmini/ap2プロモーターおよ
び/もしくはmini/UCP1プロモーターであり、ならびに/または骨格筋プロモー
ターがC5-12プロモーターであり、ならびに/またはユビキタスプロモーターがサイ
トメガロウイルス(CMV)プロモーターおよび/もしくはCAGプロモーターである、
請求項2から4のいずれか一項に記載のウイルス発現コンストラクト。
the liver-specific promoter is the human α1-antitrypsin (hAAT) promoter and/or the adipose tissue-specific promoter is the mini/ap2 promoter and/or the mini/UCP1 promoter and/or the skeletal muscle promoter is C5-12 is a promoter and/or the ubiquitous promoter is the cytomegalovirus (CMV) promoter and/or the CAG promoter,
5. The viral expression construct of any one of claims 2-4.
請求項1から5のいずれか一項に記載のウイルス発現コンストラクトを含むウイルスベ
クターであって、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクター、レトロウイル
スベクターまたはレンチウイルスベクターであり、好ましくはアデノ随伴ウイルス1(A
AV1)ベクター、アデノ随伴ウイルス8(AAV8)ベクターおよびアデノ随伴ウイル
ス9(AAV9)ベクターよりなる群から選択されるアデノ随伴ウイルスベクターである
、前記ウイルスベクター。
A viral vector comprising a viral expression construct according to any one of claims 1 to 5, which is an adenoviral vector, an adeno-associated viral vector, a retroviral vector or a lentiviral vector, preferably adeno-associated virus 1 ( A.
The viral vector, which is an adeno-associated viral vector selected from the group consisting of an AV1) vector, an adeno-associated virus 8 (AAV8) vector and an adeno-associated virus 9 (AAV9) vector.
哺乳動物における発現に適しており、肝臓、脂肪組織および/または骨格筋において発
現する、哺乳動物コドンに最適化されたFGF21をコードするヌクレオチド配列により
表される核酸分子。
A nucleic acid molecule that is suitable for expression in a mammal and is represented by a mammalian codon-optimized nucleotide sequence encoding FGF21 that is expressed in liver, adipose tissue and/or skeletal muscle.
ヌクレオチド配列が、配列番号4、5、6、7、8、9、10または11のヌクレオチ
ド配列と少なくとも70%の配列同一性を持つ、請求項7に記載の核酸分子。
8. The nucleic acid molecule of claim 7, wherein the nucleotide sequence has at least 70% sequence identity with the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 or 11.
請求項1から5のいずれか一項に規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/また
は請求項6に規定されるウイルスベクターおよび/または請求項7もしくは8に規定され
る核酸分子を、1または複数の薬学的に許容される添加剤または媒体と一緒に含む、組成
物。
The viral expression construct as defined in any one of claims 1 to 5 and/or the viral vector as defined in claim 6 and/or the nucleic acid molecule as defined in claim 7 or 8 are combined with one or more pharmaceutical agents. composition together with a legally acceptable additive or vehicle.
薬剤としての使用のための、請求項1から5のいずれか一項に規定されるウイルス発現
コンストラクトおよび/または請求項6に規定されるウイルスベクターおよび/または請
求項7もしくは8に規定される核酸分子および/または請求項9に規定される組成物。
A viral expression construct as defined in any one of claims 1 to 5 and/or a viral vector as defined in claim 6 and/or a nucleic acid as defined in claim 7 or 8 for use as a medicament A molecule and/or composition as defined in claim 9.
代謝障害の処置および/または予防における使用のための、請求項1から5のいずれか
一項に規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/または請求項6に規定されるウイ
ルスベクターおよび/または請求項7もしくは8に規定される核酸分子および/または請
求項9に規定される組成物。
A viral expression construct as defined in any one of claims 1 to 5 and/or a viral vector as defined in claim 6 and/or a viral vector as defined in claim 7 or 7 for use in the treatment and/or prevention of metabolic disorders. A nucleic acid molecule as defined in 8 and/or a composition as defined in claim 9.
代謝障害が糖尿病および/または肥満である、請求項11に記載のウイルス発現コンス
トラクトおよび/またはウイルスベクターおよび/または核酸分子および/または組成物
12. The viral expression construct and/or viral vector and/or nucleic acid molecule and/or composition of claim 11, wherein the metabolic disorder is diabetes and/or obesity.
代謝障害がNASHである、請求項11に記載のウイルス発現コンストラクトおよび/
またはウイルスベクターおよび/または核酸分子および/または組成物。
12. The viral expression construct and/or of claim 11, wherein the metabolic disorder is NASH
or viral vectors and/or nucleic acid molecules and/or compositions.
肝臓の炎症および/または線維症の処置および/または予防における使用のための、請
求項1から5のいずれか一項に規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/または請
求項6に規定されるウイルスベクターおよび/または請求項7もしくは8に規定される核
酸分子および/または請求項9に規定される組成物。
A viral expression construct as defined in any one of claims 1 to 5 and/or a viral vector as defined in claim 6 for use in the treatment and/or prevention of inflammation and/or fibrosis of the liver and /or a nucleic acid molecule as defined in claim 7 or 8 and/or a composition as defined in claim 9.
健康寿命の延伸における使用のための、請求項1から5のいずれか一項に規定されるウ
イルス発現コンストラクトおよび/または請求項6に規定されるウイルスベクターおよび
/または請求項7もしくは8に規定される核酸分子および/または請求項9に規定される
組成物。
A viral expression construct as defined in any one of claims 1 to 5 and/or a viral vector as defined in claim 6 and/or a viral vector as defined in claim 7 or 8 for use in extending healthy life expectancy and/or a composition as defined in claim 9.
がん、好ましくは肝臓がんの処置および/または予防における使用のための、請求項1
から5のいずれか一項に規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/または請求項6
に規定されるウイルスベクターおよび/または請求項7もしくは8に規定される核酸分子
および/または請求項9に規定される組成物。
for use in the treatment and/or prevention of cancer, preferably liver cancer, according to claim 1
A viral expression construct as defined in any one of 5 to 5 and/or claim 6
and/or a nucleic acid molecule as defined in claim 7 or 8 and/or a composition as defined in claim 9.
請求項1から5のいずれか一項に規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/また
は請求項6に規定されるウイルスベクターおよび/または請求項7もしくは8に規定され
る核酸分子および/または請求項9に規定される組成物の使用を含む、代謝障害を予防、
遅延、回復、治癒および/または処置する方法。
A viral expression construct as defined in any one of claims 1 to 5 and/or a viral vector as defined in claim 6 and/or a nucleic acid molecule as defined in claim 7 or 8 and/or a nucleic acid molecule as defined in claim 9 prevention of metabolic disorders, including the use of prescribed compositions;
Methods of delaying, relieving, curing and/or treating.
代謝障害が糖尿病および/または肥満である、請求項17に記載の方法。 18. The method of claim 17, wherein the metabolic disorder is diabetes and/or obesity. 代謝障害がNASHである、請求項17に記載の方法。 18. The method of claim 17, wherein the metabolic disorder is NASH. 請求項1から5のいずれか一項に規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/また
は請求項6に規定されるウイルスベクターおよび/または請求項7もしくは8に規定され
る核酸分子および/または請求項9に規定される組成物の使用を含む、肝臓の炎症および
/または線維症を予防、遅延、回復、治癒および/または処置する方法。
A viral expression construct as defined in any one of claims 1 to 5 and/or a viral vector as defined in claim 6 and/or a nucleic acid molecule as defined in claim 7 or 8 and/or a nucleic acid molecule as defined in claim 9 A method of preventing, retarding, reversing, curing and/or treating liver inflammation and/or fibrosis comprising the use of the defined compositions.
請求項1から5のいずれか一項に規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/また
は請求項6に規定されるウイルスベクターおよび/または請求項7もしくは8に規定され
る核酸分子および/または請求項9に規定される組成物の使用を含む、健康寿命を延伸す
る方法。
A viral expression construct as defined in any one of claims 1 to 5 and/or a viral vector as defined in claim 6 and/or a nucleic acid molecule as defined in claim 7 or 8 and/or a nucleic acid molecule as defined in claim 9 A method of extending healthy life expectancy comprising the use of a defined composition.
請求項1から5のいずれか一項に規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/また
は請求項6に規定されるウイルスベクターおよび/または請求項7もしくは8に規定され
る核酸分子および/または請求項9に規定される組成物の使用を含む、がん、好ましくは
肝臓がんを予防、遅延、回復、治癒および/または処置する方法。
A viral expression construct as defined in any one of claims 1 to 5 and/or a viral vector as defined in claim 6 and/or a nucleic acid molecule as defined in claim 7 or 8 and/or a nucleic acid molecule as defined in claim 9 A method of preventing, delaying, reversing, curing and/or treating cancer, preferably liver cancer, comprising the use of the defined composition.
代謝障害を予防、遅延、回復、治癒および/または処置するための薬剤の製造のための
、請求項1から5のいずれか一項に規定されるウイルス発現コンストラクトおよび/また
は請求項6に規定されるウイルスベクターおよび/または請求項7もしくは8に規定され
る核酸分子および/または請求項9に規定される組成物の使用。
A viral expression construct as defined in any one of claims 1 to 5 and/or and/or a nucleic acid molecule as defined in claim 7 or 8 and/or a composition as defined in claim 9.
代謝障害が糖尿病および/または肥満である、請求項23に記載の使用。 24. Use according to claim 23, wherein the metabolic disorder is diabetes and/or obesity. 代謝障害がNASHである、請求項23に記載の使用。 24. Use according to claim 23, wherein the metabolic disorder is NASH. 肝臓の炎症および/または線維症を予防、遅延、回復、治癒および/または処置するた
めの薬剤の製造のための、請求項1から5のいずれか一項に規定されるウイルス発現コン
ストラクトおよび/または請求項6に規定されるウイルスベクターおよび/または請求項
7もしくは8に規定される核酸分子および/または請求項9に規定される組成物の使用。
A viral expression construct and/or as defined in any one of claims 1 to 5 for the manufacture of a medicament for preventing, delaying, ameliorating, curing and/or treating liver inflammation and/or fibrosis Use of a viral vector as defined in claim 6 and/or a nucleic acid molecule as defined in claim 7 or 8 and/or a composition as defined in claim 9.
健康寿命を延伸するための薬剤の製造のための、請求項1から5のいずれか一項に規定
されるウイルス発現コンストラクトおよび/または請求項6に規定されるウイルスベクタ
ーおよび/または請求項7もしくは8に規定される核酸分子および/または請求項9に規
定される組成物の使用。
A viral expression construct as defined in any one of claims 1 to 5 and/or a viral vector as defined in claim 6 and/or a viral vector as defined in claim 7 and/or claim 7 or Use of a nucleic acid molecule as defined in 8 and/or a composition as defined in claim 9.
がん、好ましくは肝臓がんを予防、遅延、回復、治癒および/または処置するための薬
剤の製造のための、請求項1から5のいずれか一項に規定されるウイルス発現コンストラ
クトおよび/または請求項6に規定されるウイルスベクターおよび/または請求項7もし
くは8に規定される核酸分子および/または請求項9に規定される組成物の使用。
A viral expression construct and/or as defined in any one of claims 1 to 5 for the manufacture of a medicament for preventing, delaying, reversing, curing and/or treating cancer, preferably liver cancer Use of a viral vector as defined in claim 6 and/or a nucleic acid molecule as defined in claim 7 or 8 and/or a composition as defined in claim 9.
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