JP2022532761A - 異数性の迅速検出法 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2019年5月17日に出願された米国特許仮出願第62/849,662号;2019年9月24日に出願された米国特許仮出願第62/905,327号および2020年2月6日に出願された米国特許仮出願第62/971,050号の恩典を主張する。これらの先行出願の開示内容は本出願の開示内容の一部とみなす(かつ、参照により本明細書に組み入れられる)。
本発明は、米国国立衛生研究所によって付与された助成金CA230691およびCA230400での政府の補助を伴ってなされた。米国政府は、本発明において一定の権利を有する。
本文書により、がんの診断法、非侵襲的出生前検査(NIPT)、着床前遺伝子診断および先天異常の評価において使用され得る染色体異常を同定するための方法および材料を提供する。例えば、本文書により、哺乳動物を、1つまたは複数の染色体異常と関連している疾患(例えば、がんまたは先天異常)を有すると特定するためにシーケンシングデータを評価するための方法および材料を提供する。付加的または択一的に、本文書により、がんの診断法、非侵襲的出生前検査(NIPT)、着床前遺伝子診断および先天異常の評価において使用され得るシーケンシングデータを評価するための方法および材料を提供する。
異数性は染色体数の異常と定義される。これは、がんにおいて同定された最初のゲノム異常であり(Boveri 2008 Journal of cell science 121(Supplement 1):1-84(非特許文献1);およびNowell 1976 Science 194(4260):23-28(非特許文献2))、ほとんどの組織病理学的な型のがんの>90%に存在していると推定されている(Knouse et al. 2017 Annual Review of Cancer Biology 1:335-354(非特許文献3))。がんにおける異数性は核型試験によって最初に検出され、後にマイクロアレイ、サンガーシーケンシングによって、ごく最近では超並列シーケンシング法によって評価された(Wang et al. 2002 Proceedings of the National Academy of Sciences 99(25):16156-16161(非特許文献4))。最近のシーケンシング法としては、サーキュラーバイナリーセグメンテーション(circular binary segmentation)、隠れマルコフモデル、期待値最大化および平均値シフトを使用するもの((Zhao et al. 2013 BMC bioinformatics 14(11):S1(非特許文献5))に概説されているようなもの)が挙げられる。がんのゲノムへの応用に加え、このような技術は、ダウン症および他のトリソミーを有する胎児の非侵襲的出生前検出のための根拠となる(Bianchi et al. 2015 JAMA 314(2):162-169(非特許文献6);Zhao et al. 2015 Clinical chemistry 61(4):608-616(非特許文献7))。
本開示は、1つまたは複数の染色体異常(例えば、異数性)を同定するための方法および材料に関する。一部の態様では、本開示により、哺乳動物を、1つまたは複数の染色体異常と関連している疾患または障害を有すると特定するためにアンプリコンベースシーケンシングのデータを使用するための方法および材料を提供する。例えば、本明細書に記載の方法および材料は、哺乳動物から採取された試料に適用され、哺乳動物が1つまたは複数の染色体異常を有すると特定され得る。例えば、哺乳動物は、少なくとも一部において1つまたは複数の異数性の存在に基づいて、疾患または障害を有すると特定され得る。一部の態様では、単一のプライマーペアを用いてゲノム全体のゲノム内エレメントを増幅する。例えば、本明細書に記載の単一のプライマーペアを用いて固有の反復エレメント(例えば、アンプリコン)が約1,000,000個に増幅され得る。一部の態様では、増幅された固有の反復エレメントは平均で100塩基対(bp)未満のサイズである。一部の態様では、あるアプローチ(WALDO(Within-Sample-AneupLoidy-DetectiOn、サンプル内異数性検出)と称される)を用いて、アンプリコンから得られたシーケンシングデータを評価し、1つまたは複数の染色体異常(例えば、異数性)の存在が同定され得る。本明細書に記載のように、健常人由来の1,348例の血漿試料およびがん患者由来の883例の血漿試料における異数性のアセスメントでは、がん患者由来の血漿試料の49%において異数性が検出された。
(i)1つまたは複数の遺伝子バイオマーカー、例えば、1つまたは複数の遺伝子(例えば、1つまたは複数のドライバー遺伝子、例えば少なくとも4個のドライバー遺伝子)の各々における1つまたは複数の変異(例えば、1つまたは複数のドライバー遺伝子変異)の存在に関する、例えば検出するための、値を取得、例えば直接取得または間接的に取得する工程であって、任意で、各遺伝子、例えばドライバー遺伝子は複数のがんのうちの1つのがんの存在またはリスクと関連している、工程;
(ii)複数の、例えば少なくとも4つのタンパク質バイオマーカーの各々のレベルに関する、例えば検出するための、値を取得、例えば直接取得または間接的に取得する工程であって、任意で、複数のタンパク質バイオマーカーの各々のレベルは、複数のがんのうちの1つのがんの存在またはリスクと関連している、工程;あるいは
(iii)異数性に関する、例えば検出するための、値を取得、例えば直接取得または間接的に取得する工程であって、異数性の値は、反復エレメントファミリー(REファミリー)の少なくとも2つの末端反復エレメント間に配されているゲノム配列のコピー数または長さの関数であり、REファミリーは、
(a)長鎖散在反復配列(LINE)以外のREファミリー、
(b)自身の末端反復エレメントに相補的なプライマー部分を用いて増幅されるとX nt未満の平均長さを有するアンプリコンをもたらすREファミリーであって、ここで、Xは100、105もしくは110である、REファミリー、
(c)約700bp未満の長さであるREファミリー、あるいは
(d)少なくとも100コピー/ゲノムで存在するREファミリー
を含み;
任意で、異数性は、複数のがんのうちの1つのがんの存在またはリスクと関連しており;
それにより、対象を、複数のがんのいずれか、例えば少なくとも4つのがんのいずれかの存在またはその発症リスクについて評価する、工程
を含む方法を提供する。
a)複数のアンプリコンを形成させるために、DNAサンプル中の複数の染色体配列を、プライマー部分、例えば、染色体配列に相補的な1つのプライマーまたはプライマーペアを用いて増幅する工程であって、例えばプライマー部分は、異数性の検出を可能とするのに充分な数の配列を増幅する、工程;
b)複数のアンプリコンのうちの1つまたは複数の核酸配列の少なくとも一部分を決定する工程;
c)シーケンシングされたアンプリコンを参照ゲノムにマッピングする工程;
d)DNAサンプルを複数のゲノム区間に分割する工程;
e)ゲノム区間にマッピングされたアンプリコンに関する複数の特徴を定量する工程;
f)第1のゲノム区間内のアンプリコンの複数の特徴を、1つまたは複数の異なるゲノム区間内のアンプリコンの複数の特徴と比較する工程
を含み;
増幅する工程で、異数性を検出するのに充分な数のアンプリコン、例えば少なくとも10,000、20,000、50,000または100,000個のアンプリコンが形成される。
E1. 以下の工程を含む、対象における複数のがんのいずれか、例えば少なくとも4つのがんのいずれかの存在またはその発症リスクについて対象を評価する方法:
(i)1つまたは複数の遺伝子バイオマーカー、例えば、1つまたは複数の遺伝子(例えば、1つまたは複数のドライバー遺伝子、例えば少なくとも4個のドライバー遺伝子)の各々における1つまたは複数の変異(例えば、1つまたは複数のドライバー遺伝子変異)の存在に関する、例えば検出するための、値を取得、例えば直接取得または間接的に取得する工程であって、任意で、各遺伝子、例えばドライバー遺伝子は複数のがんのうちの1つのがんの存在またはリスクと関連している、工程;
(ii)複数の、例えば少なくとも4つのタンパク質バイオマーカーの各々のレベルに関する、例えば検出するための、値を取得、例えば直接取得または間接的に取得する工程であって、任意で、複数のタンパク質バイオマーカーの各々のレベルは、複数のがんのうちの1つのがんの存在またはリスクと関連している、工程;あるいは
(iii)異数性に関する、例えば検出するための、値を取得、例えば直接取得または間接的に取得する工程であって、異数性の値は、反復エレメントファミリー(REファミリー)の少なくとも2つの末端反復エレメント間に配されているゲノム配列のコピー数または長さの関数であり、REファミリーは、
(a)長鎖散在反復配列(LINE)以外のREファミリー、
(b)自身の末端反復エレメントに相補的なプライマー部分を用いて増幅されるとX nt未満の平均長さを有する複数のアンプリコンをもたらすREファミリーであって、ここで、Xは100、105もしくは110である、REファミリー、
(c)約700bp未満の長さであるREファミリー、あるいは
(d)少なくとも100コピー/ゲノムで存在するREファミリー
を含み;
任意で、異数性は、複数のがんのうちの1つのがんの存在またはリスクと関連しており;
それにより、対象を、複数のがんのいずれか、例えば少なくとも4つのがんのいずれかの存在またはその発症リスクについて評価する、
工程。
E2. (a)(i)、(ii)および(iii)のうちの1つが直接取得される;
(b)(i)と(ii)が直接取得される;
(c)(i)と(iii)が直接取得される;
(d)(ii)と(iii)が直接取得される;または
(e)(i)、(ii)および(iii)のすべてが直接取得される、
態様E1の方法。
E3. (a)(i)、(ii)および(iii)のうちの1つが間接的に取得される;
(b)(i)と(ii)が間接的に取得される;
(c)(i)と(iii)が間接的に取得される;
(d)(ii)と(iii)が間接的に取得される;または
(e)(i)、(ii)および(iii)のすべてが間接的に取得される、
態様E1の方法。
E4. (1)遺伝子バイオマーカーを含む1つもしくは複数のサブゲノム区間もしくはアンプリコンをシーケンシングする工程;
(2)1つもしくは複数のゲノム配列を異数性について解析する工程、および/または
(3)タンパク質バイオマーカーを検出試薬と接触させる工程
を含む、態様E1~E3のいずれか1つの方法。
E5. 異数性の値が、
(a)REファミリーの少なくとも2つの末端反復エレメント間に配されているゲノム配列のコピー数;および/または
(b)反復エレメントファミリー(REファミリー)の少なくとも2つの末端反復エレメント間に配されているゲノム配列の長さ
の関数である、態様E1~E4のいずれか1つの方法。
E6. 対象から採取された生体試料が、(i)~(iii)のうちの1つ、2つまたは全部について評価される、態様E1~E5のいずれか1つの方法。
E7. 生体試料が、液状試料、例えば血液試料を含む、態様E6の方法。
E8. 生体試料が、セルフリーDNAサンプル、血漿試料または血清試料を含む、態様E6またはE7の方法。
E9. 生体試料が、セルフリーDNA、例えば循環腫瘍DNAを含む、態様E6~E8のいずれか1つの方法。
E10. (i)サンプル由来のセルフリーDNAのサブゲノム区間の配列を取得する工程;
(ii)白血球パラメータ、例えばサンプル由来の白血球DNAのサブゲノム区間の配列を取得する工程
をさらに含む、態様E1~E9のいずれか1つの方法。
E11. (i)サンプル由来のセルフリーDNAの、異数性解析のためのサブゲノム区間の配列を取得する工程;
(ii)白血球パラメータ、例えばサンプル由来の白血球DNAの、異数性解析のためのサブゲノム区間の配列を取得する工程
をさらに含む、態様E1~E10のいずれか1つの方法。
E12. セルフリーDNAサブゲノム区間またはセルフリーDNA異数性解析サンプルにみられるゲノム事象、例えば変異を評価するために(i)を(ii)と比較する工程
をさらに含む、態様E10またはE11の方法。
E13. セルフリーDNAまたは異数性解析のセルフリーDNAのサブゲノム区間におけるゲノム事象、例えば変異をさらにクラス分類する工程、例えば変異を第1のクラスまたは第2のクラスに帰属させる工程、態様E10~E12のいずれか1つの方法。
E14. セルフリーDNAまたは異数性解析のセルフリーDNAのサブゲノム区間におけるゲノム事象、例えば変異を増殖脱制御性、例えば、がん性であるとクラス分類する工程をさらに含む、態様E10~E13のいずれか1つの方法。
E15. セルフリーDNAまたは異数性解析のセルフリーDNAのサブゲノム区間におけるゲノム事象、例えば変異を増殖脱制御性以外、例えば、がん性以外であるとクラス分類する工程をさらに含む、態様E10~E13のいずれか1つの方法。
E16. セルフリーDNAまたは異数性解析のセルフリーDNAのサブゲノム区間におけるゲノム事象、例えば変異が、
(a)サブゲノム区間はセルフリーDNAでは異数性であり、サブゲノム区間が白血球では異数性でない;あるいは
(b)ゲノム事象がセルフリーDNAのサブゲノム区間に存在し、ゲノム事象は白血球のサブゲノム区間には存在しない
場合、がん性であるとクラス分類される、
態様E10~E14のいずれか1つの方法。
E17. セルフリーDNAまたは異数性解析のセルフリーDNAの(form)サブゲノム区間におけるゲノム事象、例えば変異が、
(a)サブゲノム区間はセルフリーDNAでは異数性であり、サブゲノム区間が白血球でも異数性である;あるいは
(b)ゲノム事象がセルフリーDNAのサブゲノム区間に存在し、ゲノム事象が白血球のサブゲノム区間にも存在する
場合、増殖脱制御性以外であるとクラス分類される、
態様E10~E13またはE15のいずれか1つの方法。
E18. ゲノム事象が、白血球のクローン性拡大増殖、例えば加齢に伴うクローン性造血、例えば未確定の潜在能を持つクローン造血(CHIP)と関連している、態様E17の方法。
E19. (i)、(ii)および(iii)を伴う複数のがんのうちの1つのがんの検出の特異度が、(i);(ii);(iii);(i)と(ii);(i)と(iii);または(ii)と(iii)を伴う複数のがんのうちの1つのがんの検出の特異度と実質的に同じである、例えば(i);(ii);(iii);(i)と(ii);(i)と(iii);または(ii)と(iii)を伴う複数のがんのうちの1つのがんの検出の特異度より実質的に低くない、態様E1~E18のいずれか1つの方法。
E20. (i)、(ii)および(iii)を伴う複数のがんのうちの1つのがんの検出感度が、(i);(ii);(iii);(i)と(ii);(i)と(iii);または(ii)と(iii)を伴う複数のがんのうちの1つのがんの検出感度より高い、例えば約1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、2、2.5、3、3.5、4、4.5、5、5.5、6、6.5、7、7.5、8、8.5、9、9.5または10倍高い、態様E1~E19のいずれか1つの方法。
E21. (i)、(ii)および(iii)により、ある特定の特異度における、例えば所定の特異度、例えば少なくとも約90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%または100%の特異度における検出感度の上昇、例えば検出感度の約1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、2、2.5、3、3.5、4、4.5、5、5.5、6、6.5、7、7.5、8、8.5、9、9.5または10倍の上昇がもたらされる、態様E1~E20のいずれか1つの方法。
E22. 複数のがんのうちの1つのがんの検出感度の上昇によって複数のがんのうちの1つのがんの検出の特異度が影響されない、例えば低下せず、実質的に低下もしない、態様E20~E21のいずれか1つの方法。
E23. 複数のがんのうちの1つのがんの検出の特異度がプラトー状態である、態様E22の方法。
E24. REファミリーがLINE以外である、態様E1~E23のいずれか1つの方法。
E25. REファミリーが反復エレメントを含み、末端反復エレメントに対するプライマーを用いて増幅されると約110bp未満、例えば約10~110bp、約10~105bp、約10~100bp、約10~99bp、約10~98bp、約10~97bp、約10~96bp、約10~95bp、約10~94bp、約10~93bp、約10~92bp、約10~91bp、約10~90bp、約10~89bp、約10~87bp、約10~86bp、約10~85bp、約10~84bp、約10~83bp、約10~82bp、約10~81bp、約10~80bp、約10~79bp、約10~78bp、約10~77bp、約10~76bp、約10~75bp、約10~74bp、約10~73bp、約10~72bp、約10~71bp、約10~70bp、約10~65bp、約10~60bp、約10~55bp、約10~50bp、約10~40bp、約10~30bp、約10~20bp、約15~110bp、約20~110bp、約25~110bp、約30~110bp、約35~110bp、約40~110bp、約45~110bp、約50~110bp、約55~110bp 約60~110bp、約65~110bp、約70~110bp、約75~110bp、約80~110bp、約85~110bp、約90~110bp、約95~110bp、約100~110bpまたは約105~110bpの平均長さを有する複数のアンプリコンをもたらす、態様E1~E24のいずれか1つの方法。
E26. REファミリーが、表1に示される1つまたは複数の反復エレメントを含む、態様E1~E25のいずれか1つの方法。
E27. REファミリーが、SINEまたはタンデムリピート(例えば、マイクロサテライトDNA、ミニサテライトDNA、サテライトDNAもしくは多コピーを有する遺伝子のDNA(例えば、リボソームRNAをコードしているDNA))を含む、態様E1~E26のいずれか1つの方法。
E28. REファミリーがSINE、例えばAluファミリー、MIRもしくはMIR3、またはVassetzky and Kramerov(2013)Nucleic Acids Res. 41:D83-89に記載のSINEである、態様E27の方法。
E29. 異数性の値がさらに、LINE反復エレメントの末端反復エレメント間に配されているゲノム配列のコピー数または長さの関数である、態様E1~E28のいずれか1つの方法。
E30. 異数性の値がさらに、自身の末端反復エレメントに相補的なプライマーを用いて増幅されると100bp超の平均長さを有するアンプリコンをもたらす反復エレメントファミリーの末端反復エレメント間に配されている複数のゲノム配列のコピー数または長さの関数である、態様E1~E29のいずれか1つの方法。
E31. 異数性の値がさらに、
a)複数のアンプリコンを形成させるために、DNAサンプル中の複数の染色体配列を、染色体配列に相補的なプライマーペアを用いて増幅すること;
b)複数のアンプリコンのうちの1つまたは複数の核酸配列の少なくとも一部分を決定すること;
c)シーケンシングされたアンプリコンを参照ゲノムにマッピングすること;
d)DNAサンプルを複数のゲノム区間に分割すること;
e)ゲノム区間にマッピングされたアンプリコンに関する複数の特徴を定量すること;
f)第1のゲノム区間内のアンプリコンの複数の特徴を、1つまたは複数の異なるゲノム区間内のアンプリコンの複数の特徴と比較すること;および
g)増幅する工程で少なくとも100,000個のアンプリコンが形成される
の関数である、態様E1~E30のいずれか1つの方法。
E32. 異数性に関する値を得る工程を含み、該値が、REファミリーの末端反復エレメント間に配されている少なくとも約5、10、20、30、50、100、200、500または1000の異なるゲノム配列のコピー数の関数である、態様E1~E31のいずれか1つの方法。
E33. コピー数が2より大きいか、または2より小さい、態様E1~E32のいずれか1つの方法。
E34. 少なくとも約100,000個のアンプリコン、約150,000個のアンプリコン、約200,000個のアンプリコン;約250,000個のアンプリコン;約300,000個のアンプリコン;約350,000個のアンプリコン;約400,000個のアンプリコン;約450,000個のアンプリコン;約500,000個のアンプリコン;約550,000個のアンプリコン;約600,000個のアンプリコン;約650,000個のアンプリコン;約700,000個のアンプリコン;約750,000個のアンプリコン;約800,000個のアンプリコン;約850,000個のアンプリコン;約900,000個のアンプリコン;約950,000個のアンプリコン;または約1,000,000個のアンプリコンが形成される、態様E31~E33のいずれか1つの方法。
E35. 異数性に関する値を得る工程を含み、該値が、
(i)ゲノムDNAの第1のセグメント上の、REファミリーの末端反復エレメント間に配されている第1のゲノム配列のコピー数または長さ;および
(ii)ゲノムDNAの第2のセグメント上の、(例えば、同じか、または異なる)REファミリーの末端反復エレメント間に配されている第2のゲノム配列のコピー数または長さ
の関数である、態様E1~E34のいずれか1つの方法。
E36. (i)ゲノムDNAの第1のセグメントとゲノムDNAの第2のセグメントが同じ染色体の異なる腕上に存在している、例えば第1のセグメントが同じ染色体のq腕上に存在しており、第2のセグメントがp腕上に存在しているか;あるいは第1のセグメントが同じ染色体のp腕上に存在しており、第2のセグメントがq腕上に存在している;
(ii)ゲノムDNAの第1のセグメントとゲノムDNAの第2のセグメントが同じ染色体の同じ腕上に存在している、例えば第1のセグメントと第2のセグメントがともに染色体のp腕上またはq腕上に存在している;および/または
(iii)ゲノムDNAの第1のセグメントとゲノムDNAの第2のセグメントが異なる染色体、例えば非相同染色体上に存在している、
態様E35の方法。
E37. 異数性に関する値を得る工程を含み、該値が、第3の染色体上の、REファミリーの末端反復エレメント間に配されている第3のゲノム配列のコピー数または長さの関数である、態様E1~E36のいずれか1つの方法。
E38. 異数性に関する値を得る工程を含み、該値が、N番目の染色体上の、REファミリーの末端反復エレメント間に配されているN番目のゲノム配列のコピー数または長さの関数であり、ここで、Nは4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23である、態様E1~E37のいずれか1つの方法。
E39. 対象のゲノムの核酸を、REファミリーの末端反復エレメント間に配されているゲノム配列を含む配列を増幅するプライマー部分と接触させる工程を含む、態様E1~E38のいずれか1つの方法。
E40. プライマー部分がREファミリーの末端エレメントに相補的である、態様E39の方法。
E41. プライマー部分がプライマーペアを含む、態様E39またはE40の方法。
E42. プライマー部分が単一のプライマーを含み、例えば等温増幅で使用される、態様E39~E41のいずれか1つの方法。
E43. 検出されたバイオマーカー(例えば、ドライバー遺伝子変異の数)の数が、複数のがんのうちの、各遺伝子、例えばドライバー遺伝子が関連しているがんの検出感度が1つまたは複数のさらなる遺伝子バイオマーカーの検出によって実質的に上昇しないような充分な数である、態様E1~E42のいずれか1つの方法。
E44. 遺伝子バイオマーカーを検出する工程が、例えばシーケンシングによって遺伝子バイオマーカーの配列(例えば、ヌクレオチド配列)を得ることを含む、態様E1~E42のいずれか1つの方法。
E45. 得られた遺伝子バイオマーカー配列の数が、複数のがんのうちの、各遺伝子、例えばドライバー遺伝子が関連しているがんの検出感度がさらなる遺伝子バイオマーカーの1つまたは複数の配列が得られることによって実質的に上昇しないような充分な数である、態様E44の方法。
E46. バイオマーカーを検出する工程が、遺伝子バイオマーカーを含む1つまたは複数のサブゲノム区間の配列(例えば、ヌクレオチド配列)を得ることを含む、態様E1~E42のいずれか1つの方法。
E47. 得られたサブゲノム区間の配列の数が、複数のがんのうちの、各遺伝子、例えばドライバー遺伝子が関連しているがんの検出感度がさらなるサブゲノム区間の1つまたは複数の配列(例えば、ヌクレオチド配列)が得られることによって実質的に上昇しないような充分な数である、態様E46の方法。
E48. 遺伝子バイオマーカーを検出する工程が、遺伝子バイオマーカーを含むアンプリコンの配列を得ることを含む、態様E1~E42のいずれか1つの方法。
E49. 得られたアンプリコン配列の数が、複数のがんのうちの、各遺伝子、例えばドライバー遺伝子が関連しているがんの検出感度がさらなるアンプリコンの1つまたは複数の配列が得られることによって実質的に上昇しないような充分な数である、態様E48の方法。
E50. 得られたサブゲノム区間の配列の数が、複数のがんのうちの、各遺伝子、例えばドライバー遺伝子が関連しているがんの検出の特異度がさらなるサブゲノム区間の1つまたは複数の配列が得られることによって実質的に低下しないような充分な数である、態様E46の方法。
E51. 得られたアンプリコンの数が、複数のがんのうちの、複数の遺伝子の各遺伝子、例えばドライバー遺伝子が関連しているがんの検出の特異度がさらなるアンプリコンの1つまたは複数の配列が得られることによって実質的に低下しないような充分な数である、態様E48の方法。
E52. 複数のがんが4、5、6、7または8つのがんを含む、前記態様のいずれかの方法。
E53. 複数のがんが、充実性腫瘍、例えば、中皮腫(例えば、悪性胸膜中皮腫)、肺がん(例えば、非小細胞肺がん、小細胞肺がん、肺扁平上皮がんもしくは大細胞肺がん)、膵がん(例えば、膵管腺癌)、肝臓がん(例えば、肝細胞癌もしくは胆管癌)、食道がん(例えば、食道腺癌もしくは扁平上皮癌)、頭頸部がん、卵巣がん、結腸直腸がん、膀胱がん、子宮頸がん、子宮がん(子宮内膜がん)、腎臓がん、乳がん、前立腺がん、脳のがん(例えば、髄芽細胞腫もしくは膠芽細胞腫)あるいは肉腫(例えば、ユーイング肉腫、骨肉腫、横紋筋肉腫)またはその組合せから選ばれる、前記態様のいずれかの方法。
E54. 複数のがんが、肝臓がん、卵巣がん、食道がん、胃がん、膵がん、結腸直腸がん、肺がん、乳がんもしくは前立腺がんまたはその組合せから選ばれる、前記態様のいずれかの方法。
E55. 複数のがんのうちの1つまたは複数のがんが、肝臓がん、卵巣がん、食道がん、胃がん、膵がん、結腸直腸がん、肺がんまたは乳がんから選ばれる、前記態様のいずれかの方法。
E56. 複数のがんのうちの1つまたは複数のがんが血液のがんである、前記態様のいずれかの方法。
E57. 1つまたは複数の遺伝子、例えば1つまたは複数のドライバー遺伝子、例えばUS2019/0256924A1の表60および61に列記された遺伝子、例えば
由来の60以下、100以下、150以下、200以下、300以下、または400以下のサブゲノム区間またはアンプリコンがシーケンシングされる、前記態様のいずれかの方法。
E58. 1つまたは複数の遺伝子、例えば1つまたは複数のドライバー遺伝子、例えばUS2019/0256924A1の表60および61に列記された遺伝子、例えば
由来の少なくとも30、少なくとも40、少なくとも50または少なくとも60のサブゲノム区間またはアンプリコンがシーケンシングされる、前記態様のいずれかの方法。
E59. 1つまたは複数の遺伝子、例えば1つまたは複数のドライバー遺伝子、例えばUS2019/0256924A1の表60および61に列記された1つまたは複数の遺伝子、例えば
由来の少なくとも30で400以下、少なくとも40で300以下、少なくとも50で200以下、少なくとも60で150以下、または少なくとも60で100以下のサブゲノム区間またはアンプリコンがシーケンシングされる、前記態様のいずれかの方法。
E60. 遺伝子のシーケンシングが行なわれたサブゲノム区間またはアンプリコンの数が、がんの検出感度でプラトーとなる最低数の125%を超えない、150%を超えない、200%を超えない、または300%を超えない、前記態様のいずれかの方法。
E61. 遺伝子バイオマーカーの各サブゲノム区間またはアンプリコンが、6~800bp、例えば6~750bp、6~700bp、6~650bp、6~600bp、6~550bp、6~500bp、6~450bp、6~400bp、6~350bp、6~300bp、6~250bp、6~200bp、6~150bp、6~100bp、10~800bp、15~800bp、20~800bp、25~800bp、30~800bp、35~800bp、40~800bp、45~800bp、50~800bp、55~800bp、60~800bp、65~800bp、70~800bp、75~800bp、80~800bp、85~800bp、90~800bp、95~800bp、100~800bp、200~800bp、300~800bp、400~800bp、500~800bp、600~800bp、700~800bp、10~700bp、20~600bp、30~500bp、40~400bp、50~300bp、60~200bp、61~150bp、62~140bp、63~130bp、64~120bpまたは65~100bp、例えば66~80bpを含む、前記態様のいずれかの方法。
E62. 遺伝子バイオマーカーの各サブゲノム区間またはアンプリコンが、約35、約40、約45、約50、約51、約52、約53、約54、約55、約56、約57、約58、約59、約60、約61、約62、約63、約64、約65、約66、約67、約68、約69、約70、約71、約72、約73、約74、約75、約76、約77、約78、約79、約80、約81、約82、約83、約84、約85、約86、約87、約88、約89、約90、約91、約92、約93、約94、約95、約100または約110bpを含む、前記態様のいずれかの方法。
E63. 遺伝子バイオマーカーの各サブゲノム区間またはアンプリコンが、50bp以下、55bp以下、60bp以下、65bp以下、70bp以下、75bp以下、80bp以下、85bp以下、90bp以下、95bp以下、100bp以下、200bp以下、300bp以下、400bp以下、500bp以下、600bp以下、700bp以下または800bp以下を含む、前記態様のいずれかの方法。
E64. 遺伝子バイオマーカーの各サブゲノム区間またはアンプリコンが、少なくとも6bp、少なくとも10bp、少なくとも15bp、少なくとも20bp、少なくとも25bp、少なくとも30bp、少なくとも35bp、少なくとも40bp、少なくとも45bp、または少なくとも50bpを含む、前記態様のいずれかの方法。
E65. 遺伝子バイオマーカーの各サブゲノム区間またはアンプリコンが、少なくとも6pbで800bp以下、少なくとも10bpで700bp以下、少なくとも15bpで600bp以下、少なくとも20bpで600bp以下、少なくとも25bpで500bp以下、少なくとも30bpで400bp以下、少なくとも35bpで300bp以下、少なくとも40bpで200bp以下、少なくとも45bpで100bp以下、少なくとも50bpで95bp以下または少なくとも55bpで90bp以下を含む、前記態様のいずれかの方法。
E66. 遺伝子バイオマーカーの各サブゲノム区間またはアンプリコンが66~80bpを含む、前記態様のいずれかの方法。
E67. 遺伝子バイオマーカーの数のサブゲノム区間またはアンプリコンが、2000bp以下、2500bp以下、3000bp以下、3500bp以下、4000bp以下、5000bp以下、6000bp以下、7000bp以下、8000bp以下、9000bp以下、10,000bp以下、15,000bp以下または20,000bp以下を含む、前記態様のいずれかの方法。
E68. 遺伝子バイオマーカーの数のサブゲノム区間またはアンプリコンが、少なくとも200bp、少なくとも300bp、少なくとも400bp、少なくとも500bp、少なくとも600bp、少なくとも700bp、少なくとも800bp、少なくとも900bp、少なくとも1000bp、少なくとも1100bp、少なくとも1200bp、少なくとも1300bp、少なくとも1400bp、少なくとも1500bp、少なくとも1600bp、少なくとも1700bp、少なくとも1800bp、少なくとも1900bpまたは少なくとも2000bpを含む、前記態様のいずれかの方法。
E69. 遺伝子バイオマーカーの数のサブゲノム区間またはアンプリコンが、少なくとも200bpで20,000bp以下、少なくとも300bpで15,000bp以下、少なくとも400bpで10,000bp以下、少なくとも500bpで9000以下、少なくとも600bpで8000bp以下、少なくとも700bpで7000bp以下、少なくとも800bpで6000bp以下、少なくとも900bpで5000bp以下、少なくとも1000bpで4000bp以下、少なくとも1100bpで3500bp以下、少なくとも1200bpで3000bp以下、少なくとも1300bpで2500bp以下または少なくとも1500bpで2000bp以下を含む、前記態様のいずれかの方法。
E70. 遺伝子バイオマーカーの数のサブゲノム区間またはアンプリコンが、200bp+15%、300bp+15%、400bp+15%、500bp+15%、600bp+15%、700bp+15%、800bp+15%、900bp+15%、1000bp+15%、1100bp+15%、1200bp+15%、1300bp+15%、1400bp+15%、1500bp+15%、1600bp+15%、1700bp+15%、1800bp+15%、1900bp+15%、2000bp+15%、2500bp+15%、3000bp+15%、3500bp+15%、4000bp+15%、5000bp+15%、6000bp+15%、7000bp+15%、8000bp+15%、9000bp+15%、10,000bp+15%、15,000bp+15%または20,000bp+15%、例えば2000bp+15%を含む、前記態様のいずれかの方法。
E71. 遺伝子バイオマーカーの数のサブゲノム区間またはアンプリコンが2000bpを含む、前記態様のいずれかの方法。
E72. 遺伝子バイオマーカーの数のサブゲノム区間またはアンプリコンがシーケンシングされる平均深度が少なくとも5×のシーケンシング深度である、前記態様のいずれかの方法。
E73. 遺伝子バイオマーカーの数のサブゲノム区間またはアンプリコンがシーケンシングされる平均深度が500×以下のシーケンシング深度である、前記態様のいずれかの方法。
E74. 遺伝子バイオマーカーの数のサブゲノム区間またはアンプリコンがシーケンシングされる平均深度が5×~500×のシーケンシング深度である、前記態様のいずれかの方法。
E75. 前記検出する工程が、各サブゲノム区間を少なくとも50,000リード/塩基の深度までシーケンシングすることを含む、前記態様のいずれかの方法。
E76. 前記検出する工程が、各サブゲノム区間を150,000リード以下/塩基の深度までシーケンシングすることを含む、前記態様のいずれかの方法。
E77. 前記検出する工程が、各サブゲノム区間を50,000リード/塩基~150,000リード/塩基の深度までシーケンシングすることを含む、前記態様のいずれかの方法。
E78. 前記検出する工程が、各サブゲノム区間を、関心対象の前記領域内に0.0005%という低い頻度の変異が検出されるのに充分な深度でシーケンシングすることを含む、前記態様のいずれかの方法。
E79. 20bp以下、21bp以下、22bp以下、23bp以下、24bp以下、25bp以下、26bp以下、27bp以下、28bp以下、29bp以下、30bp以下、31bp以下、32bp以下、33bp以下、34bp以下、35bp以下、40bp以下、45bp以下、50bp以下、55bp以下、60bp以下、100bp以下、200bp以下または300bp以下が、各バイオマーカー、例えば各遺伝子、例えば各ドライバー遺伝子、例えばUS2019/0256924A1の表60または61に開示された各遺伝子、例えば、
についてシーケンシングされる、前記態様のいずれかの方法。
E80. 少なくとも6bp、少なくとも7bp、少なくとも8bp、少なくとも9bp、少なくとも10bp、少なくとも11bp、少なくとも12bp、少なくとも13bp、少なくとも14bp、少なくとも15bp、少なくとも16bp、少なくとも17bp、少なくとも18bp、少なくとも19bpまたは少なくとも20bpが、各バイオマーカー、例えば各遺伝子、例えば各ドライバー遺伝子、例えばUS2019/0256924A1の表60または61に開示された各遺伝子、例えば
においてシーケンシングされる、前記態様のいずれかの方法。
E81. 少なくとも6で300bp以下、少なくとも7で200bp以下、少なくとも8bpで100bp以下、少なくとも9bpで60bp以下、少なくとも10bpで55bp以下、少なくとも11bpで50bp以下、少なくとも12bpで45bp以下、少なくとも13bpで40bp以下、少なくとも14bpで35bp以下、少なくとも15bpで34bp以下、少なくとも14bpで33bp以下、少なくとも15bpで32bp以下、少なくとも16bpで31bp以下、少なくとも17bpで30bp以下、少なくとも18bpで29bp以下、少なくとも19bpで28bp以下、少なくとも20bpで27bp以下が、各バイオマーカー、例えば各遺伝子、例えば各ドライバー遺伝子、例えばUS2019/0256924A1の表60または61に開示された各遺伝子、例えば
においてシーケンシングされる、前記態様のいずれかの方法。
E82. 約33bpが、各バイオマーカー、例えば各遺伝子、例えば各ドライバー遺伝子、例えばUS2019/0256924A1の表60または61に開示された各遺伝子、例えば
においてシーケンシングされる、前記態様のいずれかの方法。
E83. バイオマーカーを検出する工程が、20bp以下、21bp以下、22bp以下、23bp以下、24bp以下、25bp以下、26bp以下、27bp以下、28bp以下、29bp以下、30bp以下、31bp以下、32bp以下、33bp以下、34bp以下、35bp以下、40bp以下、45bp以下、50bp以下、55bp以下、60bp以下、100bp以下、200bp以下または300bp以下の長さのサブゲノム区間またはアンプリコンの配列を得ることを含み、サブゲノム区間またはアンプリコンが、バイオマーカー、例えばドライバー変異を含むドライバー遺伝子を含む、前記態様のいずれかの方法。
E84. バイオマーカーを検出する工程が、少なくとも6bp、少なくとも7bp、少なくとも8bp、少なくとも9bp、少なくとも10bp、少なくとも11bp、少なくとも12bp、少なくとも13bp、少なくとも14bp、少なくとも15bp、少なくとも16bp、少なくとも17bp、少なくとも18bp、少なくとも19bpまたは少なくとも20bpの長さのサブゲノム区間またはアンプリコンの配列を得ることを含み、サブゲノム区間またはアンプリコンが、バイオマーカー、例えばドライバー変異を含むドライバー遺伝子を含む、前記態様のいずれかの方法。
E85. バイオマーカーを検出する工程が、少なくとも6で300bp以下、少なくとも7で200bp以下、少なくとも8bpで100bp以下、少なくとも9bpで60bp以下、少なくとも10bpで55bp以下、少なくとも11bpで50bp以下、少なくとも12bpで45bp以下、少なくとも13bpで40bp以下、少なくとも14bpで35bp以下、少なくとも15bpで34bp以下、少なくとも14bpで33bp以下、少なくとも15bpで32bp以下、少なくとも16bpで31bp以下、少なくとも17bpで30bp以下、少なくとも18bpで29bp以下、少なくとも19bpで28bp以下、少なくとも20bpで27bp以下の長さのサブゲノム区間またはアンプリコンの配列を得ることを含み、サブゲノム区間またはアンプリコンが、バイオマーカー、例えばドライバー変異を含むドライバー遺伝子を含む、前記態様のいずれかの方法。
E86. バイオマーカーを検出する工程が、6bp~300bp、7bp~200bpまたは8~100bp、9bp~60bp、10bp~50bp、15bp~40bp、20bp~35bpの長さのサブゲノム区間またはアンプリコンの配列を得ることを含み、サブゲノム区間またはアンプリコンが、バイオマーカー、例えばドライバー変異を含むドライバー遺伝子を含む、前記態様のいずれかの方法。
E87. バイオマーカーを検出する工程が、約33bpの長さのサブゲノム区間またはアンプリコンの配列を得ることを含み、サブゲノム区間またはアンプリコンが、バイオマーカー、例えばドライバー変異を含むドライバー遺伝子を含む、前記態様のいずれかの方法。
E88. b)生体試料において複数の、例えば少なくとも4つのタンパク質バイオマーカーの各々のレベルを検出する工程であって、複数のタンパク質バイオマーカーの各々のレベルは、複数のがんのうちの1つのがんの存在と関連している、工程;
(任意で)(c)複数のタンパク質バイオマーカーの各タンパク質バイオマーカーの検出されたレベルを、タンパク質バイオマーカーの参照レベルと比較する工程;および
d)1つまたは複数の遺伝子バイオマーカーの存在および複数のタンパク質バイオマーカーのうちの1つのタンパク質バイオマーカーのレベルが検出された場合、対象において複数のがんのうちの1つのがんが存在すると特定する工程
をさらに含む、前記態様のいずれかの方法。
E89. (i)対象がまだ、がん、例えば複数のがんから選択されるがんを有すると判定されていない、
(ii)対象がまだ、がん細胞、例えば複数のがんから選択されるがんの細胞を有すると判定されていない、または
(iii)対象が、がん、例えば複数のがんから選択されるがんと関連している症状を示していないか、もしくは症状を示したことがない、
前記態様のいずれかの方法。
E90. 対象が、
(i)小児科の対象もしくは若年成人(若齢成体);例えば、年齢が6ヶ月(齢)~21歳である;または
(ii)成人(成体)、例えば年齢が18歳以上である、
前記態様のいずれかの方法。
E91. サンプルが腫瘍試料、例えば生検試料(例えば、液状生検試料(例えば、循環腫瘍DNAサンプルもしくはセルフリーDNAサンプル)または充実性腫瘍の生検試料);血液試料(例えば、循環腫瘍DNAサンプルもしくはセルフリーDNAサンプル)、アフェレーシス試料、尿試料、嚢胞液試料(例えば、膵嚢胞液試料)、パパニコロー(Pap)試料、あるいは固定腫瘍試料(例えば、ホルマリン固定試料またはパラフィン包埋試料(FPPE))を含む、前記態様のいずれかの方法。
E92. 1つまたは複数、例えば複数の遺伝子が、US2019/0256924A1の表60および61の1、2、3または4つの遺伝子、例えば
を含む、前記態様のいずれかの方法。
E93. 1つまたは複数、例えば複数の遺伝子が、US2019/0256924A1の表60および61から選ばれる5、6、7または8つの遺伝子、例えば
を含む、前記態様のいずれかの方法。
E94. 1つまたは複数、例えば複数の遺伝子が、NRAS、CTNNB1、PIK3CA、FBXW7、APC、EGFR、BRAF、CDKN2A、PTEN、FGFR2、HRAS、KRAS、AKT1、TP53、PPP2R1AまたはGNASから選択される遺伝子である、前記態様のいずれかの方法。
E95. 1つまたは複数、例えば複数のバイオマーカー(例えば、1つまたは複数の遺伝子)が、KRAS、PIK3CA、HRAS、CDKN2A、TP53、AKT1、CTNNB1、APC、EGFR、GNAS、PPP2R1A、BRAF、FBXW7、PTENもしくはFGFR2またはその組合せから選ばれ、がんが、肝臓がん、卵巣がん、食道がん、胃がん、膵がん、結腸直腸がん、肺がん、乳がん、または前立腺がんから選ばれる、前記態様のいずれかの方法。
E96. 1つまたは複数、例えば複数のバイオマーカー(例えば、1つまたは複数の遺伝子)が、KRAS、PIK3CA、HRAS、CDKN2A、TP53、TERT、ERBB2、FGFR3、MET、MLLもしくはVHLまたはその組合せから選ばれ、がんが、膀胱がんまたは上部尿路上皮癌(UTUC)から選ばれる、前記態様のいずれかの方法。
E97. 1つまたは複数、例えば複数のバイオマーカー(例えば、1つまたは複数の遺伝子)が、KRAS、PIK3CA、CDKN2A、TP53、CTNNB1、PPP2R1A、BRAF、PTEN、CSMD3、FAT3、BRCAもしくはARID1Aまたはその組合せから選ばれ、がんが卵巣がんまたは子宮内膜がんである、前記態様のいずれかの方法。
E98. 1つまたは複数、例えば複数のバイオマーカー(例えば、1つまたは複数の遺伝子)が、KRAS、PIK3CA、CDKN2A、TP53、CTNNB1、GNAS、BRAF、NRAS、VHL、RNF43もしくはSMAD4またはその組合せから選ばれ、がんが膵がん、例えば膵管腺癌(PDAC)である、前記態様のいずれかの方法。
E99. 1つまたは複数、例えば複数のバイオマーカーが、5、6、7または8つのタンパク質バイオマーカーを含む、前記態様のいずれかの方法。
E100. 1つまたは複数、例えば複数のバイオマーカーが、CA19-9、CEA、HGF、OPN、CA125、プロラクチン(PRL)、TIMP-1、CA15-3、AFPまたはMPOから選択されるタンパク質バイオマーカーを含む、前記態様のいずれかの方法。
E101. 1つまたは複数の遺伝子バイオマーカーの存在を検出する工程が、
a. サンプル中に存在する複数の鋳型分子の各々に固有識別子(UID)を帰属させること;
b. 固有タグを有する各鋳型分子を増幅させてUIDファミリーを作出すること;および
c. 増幅産物を重複してシーケンシングすること
を含む、前記態様のいずれかの方法。
E102. サンプルにおける異数性の存在を検出する工程、例えば1つまたは複数の染色体の獲得または喪失を、例えば実施例6に記載のようなWALDO法を用いて検出する工程をさらに含む、前記態様のいずれかの方法。
E103. (i)体細胞変異荷重を評価する工程;(ii)発癌物質シグネチャーを評価する工程、および/または(iii)マイクロサテライト不安定性(MSI)を検出する工程を含む、態様102の方法。
E104. 2つのサンプル、例えば2つの無関連のサンプルを比較し、サンプル間の遺伝子の類似性を評価するため、またはサンプル内、例えばサンプル中のLINEエレメント内の体細胞変異を見出すために使用され得る、態様102または103の方法。
E105. 異数性の検出の特異度および/または感度の上昇がもたらされる、態様102または103の方法。
E106. 異数性の存在が1つまたは複数の染色体腕上に検出される、態様102の方法。
E107. 遺伝子マーカー、タンパク質バイオマーカーおよび/または異数性状態の値に対応して、起源またはがんの型をがんに帰属させる工程をさらに含む、前記態様のいずれかの方法。
E108. 遺伝子マーカー、タンパク質バイオマーカーおよび/または異数性状態の値に対応して、対象を、がんを有する、またはがんを発症するリスクを有すると特定する工程を含む、前記態様のいずれか1つの方法。
E109. がんを処置するために対象に治療用薬剤を投与する工程、または、対象のがんを処置するための治療用薬剤を選択する工程をさらに含む、態様E108の方法。
E110. 対象に治療用薬剤を1種類または複数種のさらなる治療用薬剤と併用して投与する、態様E109の方法。
E111. 少なくとも2、少なくとも3、少なくとも4、少なくとも5、少なくとも6、少なくとも7、少なくとも8、少なくとも9または少なくとも10種類の検出試薬を含む反応混合物であって、1種類の検出試薬が、
(i)本文書において言及される1つもしくは複数の遺伝子バイオマーカー;
(ii)本文書において言及される1つもしくは複数のタンパク質バイオマーカー;および/または
(iii)本文書において言及される反復エレメントファミリー(REファミリー)の少なくとも2つの末端反復エレメント間に配されているゲノム配列のコピー数もしくは長さ、例えば異数性
のレベルまたは存在に関する値である読み出し情報を媒介する、反応混合物。
E112. (i)の複数の検出試薬を含む、態様E111の反応混合物。
E113. (ii)の複数の検出試薬を含む、態様E111~E112のいずれかの反応混合物。
E114. (iii)の複数の検出試薬を含む、態様E111~E113のいずれかの反応混合物。
E115. 対象由来、例えば対象のサンプル由来のサンプルを含む、態様E111~E114のいずれかの反応混合物。
E116. 以下を含む、キット:
(a)少なくとも2、少なくとも3、少なくとも4、少なくとも5、少なくとも6、少なくとも7、少なくとも8、少なくとも9または少なくとも10種類の検出試薬であって、1種類の検出試薬が、
(i)本文書において言及される1つもしくは複数の遺伝子バイオマーカー;
(ii)本文書において言及される1つもしくは複数のタンパク質バイオマーカー;および/または
(iii)本文書において言及される反復エレメントファミリー(REファミリー)の少なくとも2つの末端反復エレメント間に配されているゲノム配列のコピー数もしくは長さ、例えば異数性
のレベルまたは存在に関する値である読み出し情報を媒介する、
検出試薬;ならびに
(b)キットを使用するための使用説明書。
E117. (i)の複数の検出試薬を含む、態様E116の反応混合物。
E118. (ii)の複数の検出試薬を含む、態様E116~E117のいずれかの反応混合物。
E119. (iii)の複数の検出試薬を含む、態様E116~E118のいずれかの反応混合物。
E120. 異数性状態が、第1のプライマーと第2のプライマーを用いて評価される、例えば測定される、態様E1~E110のいずれか1つの方法。
E121. 第1のプライマーが、SEQ ID NO:1と少なくとも80%、85%、90%、95%、96%、96%、98%、99%または100%同一である配列を含む、態様E120の方法。
E122. 第1のプライマーがSEQ ID NO:1の配列を含む、態様E121の方法。
E123. 第2のプライマーが、SEQ ID NO:10と少なくとも80%、85%、90%、95%、96%、96%、98%、99%または100%同一である配列を含む、態様E120の方法。
E124. 第2のプライマーがSEQ ID NO:10の配列を含む、態様E123の方法。
E125. 対象を器官または体内領域の放射線スキャン、例えばPET-CTスキャンに供する工程をさらに含む、態様E1~E110またはE120~E124のいずれか1つの方法。
E126. 器官または体内領域の放射線スキャン法によってがんを特性評価する、態様125の方法。
E127. 器官または体内領域の放射線スキャン法によってがんの場所を特定する、態様125の方法。
E128. 放射線スキャンがPET-CTスキャンである、態様E125~E127のいずれか1つの方法。
E129. 対象が複数のがんの各々の存在について評価された後に放射線スキャン法が行なわれる、態様E125~E128のいずれか1つの方法。
E130. 対象に1つまたは複数の治療介入(例えば、手術、術後補助化学療法、術前補助化学療法、放射線療法、免疫療法、標的療法および/または免疫チェックポイント阻害剤)を施す工程を含む、態様E1~E110またはE120~E129のいずれか1つの方法。
E131. 評価が、ある1つの時点またはいろいろな時点の対象由来試料を評価する工程を含む、態様E1~E110またはE120~E130のいずれか1つの方法。
E132. 対象から採取された1つまたは複数の試料、例えば多回抜取試料を評価する工程を含む、態様E1~E110またはE120~E131のいずれか1つの方法。
E133. 1つまたは複数の試料、例えば多回抜取試料が毎年、例えば互いに1年以内に採取される、E132の方法。
E134. 対象が複数のがんの各々の有無について同時に評価される、態様E1~E110またはE120~E133のいずれかの方法。
E135. 対象が複数のがんの各々の有無について共評価される、態様E1~E110またはE120~E134のいずれかの方法。
E136. 対象における複数のがんの各々の存在を、対象におけるがんの少なくとも1つの所定の期間内の、例えば同じまたは実質的に同じ臨床病期の1つまたは複数の時点で評価する工程を含む、態様E1~E110またはE120~E135のいずれかの方法。
E137. 対象から採取された試料、例えば単一の試料または多回抜取試料を評価する工程を含む、態様E1~E110またはE120~E136のいずれかの方法。
E138. 共評価が、互いに例えば1時間以内、5時間以内、24時間以内または48時間以内に採取された単一の試料、単一の試料のアリコートまたは複数の試料に対して行なわれる、態様E1~E110またはE120~E137のいずれかの方法。
E139. 対象ががんに関して無症候性である、任意の態様E1~E110またはE120~E138の方法。
E140. 対象が複数のがんのうちの1つのがんに関して無症候性である、態様E1~E110またはE120~E139のいずれかの方法。
E141. 対象が、がん細胞を有することが不明であり、がん細胞を有すると判定されてもいない、態様E1~E110またはE120~E140のいずれかの方法。
E142. 対象が、がんを有すると判定されたことがなく、がんを有すると診断されたこともない、態様E1~E110またはE120~E141のいずれかの方法。
E143. 対象が早期、例えばステージIまたはステージIIのがんを有する、態様E1~E110またはE120~E142のいずれかの方法。
E144. 対象が前転移状態である、態様E1~E110またはE120~E143のいずれかの方法。
E145. 対象が検出可能な転移を有していない、態様E1~E110またはE120~E144のいずれかの方法。
E146. 対象が、がんと関連している症状を示していない、態様E1~E110またはE120~E145のいずれかの方法。
E147. 対象にがんと臨床的に関連している1つ、2つまたはそれより多くの症状が表れていない、態様E1~E110またはE120~E146のいずれかの方法。
E148. 異数性状態が陽性である場合、対象が早期、例えばステージIまたはステージIIの、例えば表3に示すようながんを有する、態様E1~E110またはE120~E147のいずれかの方法。
E149. 異数性状態が陰性である場合、対象が早期、例えばステージIまたはステージIIの、例えば表3に示すようながんを有する、態様E1~E110またはE120~E147のいずれかの方法。
E150. 低インプットのDNAを含むサンプルにおける異数性を検出する方法。
E151. サンプルが約0.01ピコグラム(pg)~500 pgのDNAを含む、態様E1~E110またはE120~E150のいずれかの方法。
E152. サンプルが、約0.01~500pg、0.05~400pg、0.1~300pg、0.5~200pg、1~100pg、10~90pgまたは20~50pgのDNAを含む、態様E151の方法。
E153. サンプルが、少なくとも0.01 pg、少なくとも.01 pg、少なくとも0.1 pg、少なくとも1 pg. 少なくとも2 pg、少なくとも3 pg、少なくとも4 pg、少なくとも5 pg、少なくとも6 pg、少なくとも7 pg、少なくとも8 pg、少なくとも9 pg 少なくとも10pg、少なくとも11 pg、少なくとも12 pg、少なくとも13 pg、少なくとも14 pg、少なくとも15 pg、少なくとも16 pg、少なくとも17 pg、少なくとも18 pg、少なくとも19 pg、少なくとも20 pg、少なくとも21 pg、少なくとも22 pg、少なくとも23 pg、少なくとも24 pg、少なくとも25 pg、少なくとも26 pg、少なくとも27 pg、少なくとも28 pg、少なくとも29 pg、少なくとも30 pg、少なくとも31 pg、少なくとも32 pg、少なくとも33 pg、少なくとも34 pg、少なくとも35 pg、少なくとも36 pg、少なくとも37 pg、少なくとも38 pg、少なくとも39 pg、少なくとも40 pg、少なくとも50 pg、少なくとも60 pg、少なくとも70 pg、少なくとも80 pg、少なくとも90 pg、少なくとも100pg、少なくとも150pg、少なくとも200 pg、少なくとも300 pg、少なくとも350 pg、少なくとも400 pg、少なくとも450 pgまたは少なくとも500 pgのDNAを含む、態様E151の方法。
E154. 例えば本文書に開示のいずれかの方法を用いてサンプルを同定または区別する方法。
E155. 対象由来、例えば第1の対象由来のサンプル、例えば第1のサンプルが、第2の対象由来の第2のサンプルと区別される、態様E154の方法。
E156. サンプルが、多型(例えば、複数の多型、例えば一般的多型)に基づいて対象由来であると同定される、態様E154の方法。
E157. 多型、例えば一般的多型が例えば本文書に記載のような反復エレメント内に存在する、態様E156の方法。
E158. サンプルを同定および/または区別するために実施例8に開示した方法が使用される、態様E154の方法。
E159. インビトロ法である、態様E1~E110またはE120~E158のいずれかの方法。
定義
用語「ドライバー遺伝子変異」または「ドライバー変異」は、本明細書で用いる場合、(i)ドライバー遺伝子内に起こり;(ii)変異が起こる細胞に対して増殖有利性をもたらす変異を示す。細胞の増殖有利性としては、
a)ドライバー遺伝子変異を有する細胞における細胞分裂速度の増大、例えば参照細胞、例えば本来は同様の細胞、例えば変異を有する細胞に隣接する本来は同様の細胞と比べたとき、例えばドライバー遺伝子変異を有しない同じ型の細胞と比べたときの細胞分裂速度の増大;
b)ドライバー遺伝子変異を有する細胞におけるクローン性拡大増殖速度の増大、例えば参照細胞、例えば本来は同様の細胞、例えば変異を有する細胞に隣接する本来は同様の細胞と比べたとき、例えばドライバー変異を有しない同じ型の細胞と比べたときのクローン性拡大増殖速度の増大;
c)ドライバー遺伝子変異を有する細胞の子孫、例えば娘細胞である細胞の数の増加、例えば細胞がドライバー遺伝子変異を有しなかった場合に予測される子孫細胞の数と比べた子孫細胞の数の増加;
d)例えば参照細胞、例えばドライバー遺伝子変異を有しない本来は同様の細胞と比べたときの腫瘍を形成できる能力もしくは腫瘍増殖、例えば腫瘍増悪を促進できる能力の上昇の上昇;または
e)対象内の第2の、もしくは後続の部位もしくは場所における存在もしくは出現
が挙げられ得る。
が挙げられる。例示的なドライバー遺伝子としてはがん遺伝子および腫瘍抑制因子が挙げられる。一態様では、ドライバー遺伝子が、例えば本明細書に記載のような1つまたは複数のドライバー遺伝子変異を有する。一態様では、ドライバー遺伝子が、US2019/0256924A1の表60または61に列記された遺伝子である。一態様では、ドライバー遺伝子が、US2019/0256924A1の表60または61に記載の1つまたは複数の細胞プロセス、例えば細胞運命決定、細胞生存およびゲノム維持をモジュレートする遺伝子である。一態様では、ドライバー遺伝子が、US2019/0256924A1の表60または61に記載の1つまたは複数の経路をモジュレートする遺伝子である。一態様では、ドライバー遺伝子が、US2019/0256924A1の表62に記載の1つまたは複数のシグナル伝達経路をモジュレートする遺伝子である。
本文書により、試料における1つまたは複数の染色体異常(例えば、異数性)を同定するための方法および材料を提供する。一部の態様では、本明細書に記載の方法および材料が、胚における1つまたは複数の染色体異常(例えば、異数性)を同定するために使用される。一部の態様では、本明細書に記載の方法および材料が、哺乳動物(例えば、幼若哺乳動物または成体哺乳動物)における1つまたは複数の染色体異常(例えば、異数性)を同定するために使用される。例えば、哺乳動物(例えば、哺乳動物から採取された試料)は、1つまたは複数の染色体異常の有無についてアセスメントされ得る。一部の場合では、本文書により、哺乳動物を、1つまたは複数の染色体異常と関連している疾患(例えば、がん)を有すると特定するためにアンプリコンベースシーケンシングのデータを使用するための方法および材料を提供する。例えば、本明細書に記載の方法および材料は、哺乳動物から採取された試料に適用され、哺乳動物が1つまたは複数の染色体異常を有すると特定され得る。例えば、本明細書に記載の方法および材料は、哺乳動物から採取された試料に適用され、哺乳動物が、1つまたは複数の染色体異常と関連している疾患(例えば、がん)を有すると特定され得る。また、本文書により、1つまたは複数の染色体異常(例えば、本明細書に記載のとおりに同定される1つまたは複数の染色体異常)と関連している疾患または障害を同定および/または処置するための方法および材料を提供する。一部の場合では、1つまたは複数の染色体異常が、哺乳動物から採取された試料から得られたDNA(例えば、ゲノムDNA)内に同定され得る。例えば、出生前の哺乳動物(例えば、出生前のヒト)は、少なくとも一部において1つまたは複数の染色体異常の存在に基づいて疾患または障害を有すると特定され得る。一部の態様では、少なくとも一部において1つまたは複数の染色体異常に基づいて疾患または疾患を有すると特定された哺乳動物胚が、体外受精の目的でアセスメントされ得る。一部の態様では、少なくとも一部において1つまたは複数の染色体異常の存在に基づいてがんを有すると特定された哺乳動物が1つまたは複数のがん処置法で処置され得る。一部の態様では、哺乳動物が、少なくとも一部において1つまたは複数の染色体異常の存在に基づいて先天異常を有すると特定され得る。一部の態様では、本明細書において提供する方法および材料が、胚(例えば、体外受精によって得られた胚)を、着床のために子宮(例えば、ヒトの子宮)に移す前に染色体異常について検査するために使用される。
と少なくとも80%同一(例えば、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95% 少なくとも99%または100%同一)である配列を有する。一部の態様では、第2のプライマーが、
と少なくとも80%同一(例えば、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95% 少なくとも99%または100%同一)である配列を有する。一部の態様では、増幅反応が、SEQ ID NO:1を有する第1のプライマーとSEQ ID NO:10を有する第2のプライマーを含む単一のプライマーペアの使用を含む。一部の態様では、増幅反応が、SEQ ID NO:1と少なくとも80%(例えば、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、または少なくとも99%)の配列同一性を有する第1のプライマーと、SEQ ID NO:10と少なくとも80%(例えば、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、または少なくとも99%)の配列同一性を有する第2のプライマーとを含む単一のプライマーペアの使用を含む。
を用いて、前記選択された染色体腕におけるバリアントのZスコアを計算することを含み得、式中、wiはバリアントiでのUID深度であり、ZiはバリアントiのZスコアであり、kは、染色体腕において観察されたバリアントの数である。一部の態様では、アンプリコンをシーケンシングする方法が当技術分野において公知の方法を含む(例えば、米国特許出願公開第2015/0051085号;およびKinde et al. 2012 PloS ONE 7:e41162参照、これらは参照によりその全体が本明細書に組み入れられる)。一部の態様では、アンプリコンが参照ゲノム(例えば、GRC37)に対してアラインメントされる。
を用いて計算され得、式中、Riはシーケンスリードの数であり、Iは染色体腕におけるクラスターの数であり、Nは、パラメータμiおよびσi 2を伴うガウス分布であり、μiは各ゲノム区間におけるシーケンスリードの数の平均であり、σi 2は各ゲノム区間におけるシーケンスリードの分散である。染色体腕のZスコアは、任意の適切な手法を用いて計算され得る。例えば、染色体腕のZスコアは、分位点関数
を用いて計算され得る。哺乳動物のゲノムにおける異数性の存在は、Zスコアが所定の有意性閾値外である場合、哺乳動物のゲノムにおいて特定され得、哺乳動物のゲノムにおける異数性の非存在は、Zスコアが所定の有意性閾値内である場合に哺乳動物のゲノムにおいて特定され得る。所定の閾値は、検査の信頼度および偽陽性の許容数に対応し得る。例えば、有意性閾値は、±1.96、±3または±5であり得る。一部の態様では、本明細書に記載の方法および材料には教師あり機械学習が使用される。一部の態様では、教師あり機械学習により、1つまたは複数の染色体腕における小さな変化が検出され得る。例えば、教師あり機械学習により、染色体異常と関連している疾患または障害、例えば、がんまたは先天異常に多くの場合で存在する変化、例えば染色体腕の獲得または喪失が検出され得る。一部の態様では、教師あり機械学習により、着床前の胚(例えば、体外受精法によって得られた着床前の胚)に存在する変化、例えば染色体腕の獲得または喪失が検出され得る。一部の場合では、教師あり機械学習が、サンプルを異数性状態に従ってクラス分類するために使用され得る。例えば、教師あり機械学習は、ゲノムワイド異数性コールを行なうために使用され得る。一部の場合では、サポートベクターマシンモデルが、SVMスコアを得ることを含み得る。SVMスコアは、任意の適切な手法を用いて得られ得る。一部の場合では、SVMスコアが、他に記載のようにして得られ得る(例えば、Cortes 1995 Machine learning 20:273-297;およびMeyer et al. 2015 Rパッケージ version:1.6-3参照)。低リード深度では、サンプルは典型的には高い生のSVMスコアを有する。したがって、一部の場合では、生のSVM確率がサンプルのリード深度に基づいて、式
を用いて補正され得、式中、rは、リード深度が充分であると仮定したときの、ある特定のリード深度でのSVMスコア/ある特定のサンプルの最低SVMスコアの比である。AおよびBは、実施例1に記載のようにして求めることができる。例えば、A=-7.076*10^-7、x=所与のサンプルでの固有鋳型分子の数、およびB=-1.946*10^-1。
一部の態様では、異数性の検出が、哺乳動物を、がん(例えば、本明細書に記載の例示的な任意のがん)を有すると特定するために使用される。一部の態様では、1つまたは複数の遺伝子バイオマーカーの検出が、哺乳動物を、がん(例えば、本明細書に記載の例示的な任意のがん)を有すると確認するため、または特定するために使用される。一部の態様では、1つまたは複数のペプチドバイオマーカーの高値レベルが、哺乳動物を、がん(例えば、本明細書に記載の例示的な任意のがん)を有すると確認するため、または特定するために使用される。一部の態様では、本明細書に記載のようにして(例えば、異数性の検出に基づいて、および/または少なくとも一部において1つもしくは複数の遺伝子バイオマーカー(例えば、変異)の有無および/または1つもしくは複数のタンパク質バイオマーカー(例えば、ペプチド)の高値レベルに基づいて)がんを有すると特定された哺乳動物が、任意の適切な方法を用いて確認されたがんの診断を有し得る。がんと診断するため、またはがんの診断を確認するために使用され得る方法の例としては、非限定的に、身体検査(例えば、骨盤内検査)、画像検査(例えば、超音波またはCTスキャン)、細胞診および組織検査(例えば、生検)が挙げられる。
一部の態様では、異数性を検出(例えば、染色体配列(例えば、解析され得る反復エレメントの例示的な一覧については表1参照)の解析を用いて)するための本明細書において提供する方法により、がん検出の感度が、1つまたは複数の遺伝子バイオマーカーの存在をがんの指標として使用するがん検出と比べて高くなる。一部の態様では、異数性を検出(例えば、染色体配列(例えば、解析され得る反復エレメントの例示的な一覧については表1参照)の解析を用いて)するための本明細書において提供する方法により、がん検出の感度が、1つまたは複数のタンパク質バイオマーカーの存在をがんの指標として使用するがん検出と比べて高くなる。
のいずれかの1つまたは複数における遺伝子バイオマーカー(例えば、変異)の検出を含む。一部の態様では、異数性の検出を1つまたは複数の遺伝子バイオマーカー(例えば、変異)の検出と併用することにより、がん検出の特異度および/または感度が高くなる。
この実施例では、アンプリコンベースの異数性検出の新規な適合を記載する。染色体腕における変化を検出するために教師あり機械学習を使用するWALDO(Within-Sample-AneupLoidy-DetectiOn、サンプル内異数性検出)と称されるアプローチにより、これまでの方法と比べて異数性の検出感度が改善された。ここでは、DNAサンプル由来の短鎖散在反復配列(SINE)のアンプリコンを解析するためにWALDOを使用することで異数性検出の感度が高まることが示された。また、約100bpの平均長さを有する約1,000,000のSINEアンプリコンにより、検出感度も高めつつセルフリーDNAインプットの必要インプットが低減される。
プライマー
候補プライマーのリストを作成するため、hg19のRepeatMaskerトラック内の考えられ得るすべての6量体(4^6=4096)の頻度を計算した。次に、6量体から75bp上流または下流内の考えられ得るすべての4量体(4^4=256)の頻度を計算した。これらの6量体と4量体を合わせて2,097,152とおりの候補ペアを作成した。これらのペアを、単峰型分布を目指して、PCR媒介性増幅から予測される固有ゲノム座位の数、6量体とその対応する4量体との間の平均サイズ、およびこのようなサイズの分布に基づいて、さらなるアセスメントのために選択した。このフィルタリング基準によって16とおりの潜在的k量体ペアが得られ、このようなk量体ペアが3-末端に組み込まれた16とおりのプライマーペアを設計した。k量体は、当技術分野において、配列内に含まれている長さkの部分配列を示すと理解されている。
SEQ ID NO:1を有する第1のプライマーには、5’末端から3’末端に向かって、ユニバーサルプライマー配列(UPS)、固有識別子DNA配列(UID)および増幅配列を含めた。ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を、7.25 uLの水、0.125 uLの各プライマー、12.5 uLのNEBNext Ultra II Q5 Master Mix(New England Biolabsカタログ番号M0544S)および5 uLのDNAを含む25 uLの反応液で行なった。サイクル条件は、98℃で120秒を1サイクル、次いで98℃で10秒、57℃で120秒および72℃で120秒を15サイクルであった。血漿を用いた実験では、5 uL中のDNA量を0.14 ngにした。次いで、シーケンシングの前に各PCRにデュアルインデックス(バーコード)を付加するために2回目のPCRを行なった。2回目のPCRに使用したフォワードプライマーおよびリバースプライマーを表2に列記する。最初の増幅プライマーは除去せず、1回目の反応による増幅産物を1:20に希釈した。この希釈物を直接、1回目のプライマーによって導入されたUPS部位にアニーリングし、かつIllumina製フローセルとのハイブリダイゼーションに必要な5’グラフティング配列をさらに含むプライマーを使用する2回目の増幅に使用した。
Bowtie2を使用し、7つのプライマーペアの各々を用いて生成したアンプリコンのリードをヒト参照ゲノムアセンブリGRC37(Langmead et al. 2012)とアラインメントした。プライマーペア1(SEQ ID NO:1を有するプライマーとSEQ ID NO:10を有するプライマー)では、全リードの平均51.1%を固有にアラインメントすることができ、平均アンプリコンサイズは88bpであった(図1A)。図1Aに示すアンプリコンサイズには45bpのプライマーが含まれている。例えば、プライマーを含めない場合、アンプリコンは約43塩基対の平均サイズを有する(図1B)。プライマーペア1は理論的には、固有にアラインメントされ得る反復エレメントを745,184個まで増幅することができたが、平均的なサンプルには平均350,000個の反復エレメントが含まれていた。図1C参照。理論に拘束されることを望まないが、血漿試料中のアンプリコンの潜在数と実際の数の実測値との間の不一致にはいくつかの潜在的理由があった。(1)配列内の多型によってミスアラインメントが引き起こされ、「ミッシングアンプリコン」となったのかもしれない。(2)プライマー内の多型によって増幅されなかったのかもしれない。(3)各アンプリコンが異なるPCR効率を有しており、PCR中、低効率アンプリコンが打ち負かされたのかもしれない。(4)小DNA断片が優先的に増幅されて長鎖アンプリコン(>100bp)が増幅されなかったのかもしれない。(5)セルフリーDNA内のDNA断片のサイズが小さいため、セルフリーDNA内に長鎖アンプリコンが存在しなかったのかもしれない。(6)これらのサンプルに使用されたシーケンシング量が、どのアンプリコンも、特に低PCR効率を有するものも観察されるのに充分に高くなかったのかもしれない。(7)最後に、一部の反復エレメントは、どの個体にも存在しているとは限らなかったのかもしれない。SEQ ID NO:1とSEQ ID NO:10のプライマーペアによって生成したアンプリコン内には、52,762の多型が同定された。1348例の正常血漿とがん患者個体由来の883例の血漿の検査コホートにおけるヘテロ接合の部位の平均数は2,200であった。これらの部位を用いて対立遺伝子不均衡を測定し、サンプルを遺伝学的に同定し、サンプルが偶発的に一体に混合されたのかどうかを調べることができた。同じSNPを使用し、合成実験を用いて、1つのサンプルDNAの量が所与の混合物の2つのサンプルDNAの量の>4%である場合にサンプルの混合が検出され得ると推定した。
リード深度ベースの解析方法は全ゲノムシーケンシング(WGS)プロトコルに広く適用されている。リードが一様に独立して分布しているという仮定の下では、正常なコピー数の領域はポアソン分布または正規分布に従うと予測される(Zhao et al 2013 and Pirooznia et al 2015)。アンプリコンベースのプロトコルでは比較的低コストで高いカバレッジ深度が得られ、WGSの魅力的な代替法であるが、アンプリコンシーケンシングによるアラインメント済みリード、例えば上記のアッセイにより生じるものは、WGSおよびWESにより生じるものとは異なる特性を有する。このようなリードは比較的少数の離散した座位に限定されるため不連続である。また、このようなリードはランダムな分布でもなく、これにより、WGSおよびWES用に設計されたリード深度カバレッジの統計モデルを使用することが困難となっている。サンプル内異数性検出(WALDO)は、アンプリコンベースの異数性検出用に特別に設計されたアルゴリズムである(例えばDouville et al. PNAS 201 115(8):1871-1876参照)。WALDOを、上記のゲノム座位にマッピングされたシーケンスリード(例えば、SINE)に適用した。ゲノムワイド異数性スコアを使用し、サンプルが異数性の存在を有するかどうかを特定した。
コピー数変化をアセスメントするためのほとんどの慣用的なアプローチとは異なり、WALDOでは、検査サンプル中の各染色体腕由来の正規化されたリード数を他のサンプル中の各染色体腕のリード率と比較しない。かかる慣用的な比較は、制御することが困難な可変量と関連しているバッチ効果および他の人為的影響を受ける。全ゲノムシーケンシングデータを評価するため、異数性を、各々500-kbの配列を含む5344個のゲノム区間内のリード数を比較することにより検出した。サンプル内の500-kbのゲノム区間内のリード数は、同じサンプル内の他のゲノム区間のリード数と比較しただけであった(したがってWALDOにおいて「Within-Sample(サンプル内)」と表示)。先に記載のWALDOプロトコルをこの実施例において個別調整し、これによりいくつかの解析の変更がもたらされた(図2参照)。修正には、後述するような、新しい正規化工程、不確定な長さの少数コピー数変化をコールするための新しい様式、およびゲノムワイド異数性を検出するための様式の改善を含めた。このような解析の改善を、SEQ ID NO:1とSEQ ID NO:10のプライマーペアを用いて得られるアンプリコンのゲノム密度の増大と合わせると、より高い感度ならびに1 Mb未満のサイズの局所の増幅および欠失の検出が可能となった。
この実施例に記載の改善されたWALDO法は、サンプル間のばらつき量が低減された新しい正規化方法を含む。この正規化では、主成分分析(PCA)をまず、対照のシーケンシングデータに対して行なった。PCAにより、500 kbのゲノム区間の数がn=5,344から、より扱いやすいサイズの数まで低減された。対照のPCA座標を使用し、ある特定の500kb区間が、さらなるサンプルにおいて、より高い効率で増幅されるのか、またはより低い効率で増幅されるのかを、そのPCA座標に基づいて予測するためのモデル型を作出した。
データを、各々少なくとも1000万リードを含みかつ各々正常なWBCのDNAに由来する84例のおそらく正倍数性の血漿試料から選択した。合成の異数性サンプルは、いくつかの染色体腕由来のリードをこのような正常DNAサンプル由来のリードに付加すること(または取り去ること)により作出した。1、10、15または20の染色体腕に由来するリードを各サンプルに対して付加するか、または取り去った。付加および取り去りは、0.5%~1.5%の範囲の新生物細胞率を表すように設計され、厳密に1000万リードを含む合成サンプルがもたらされた。各染色体腕由来のリードは一様に付加するか、または取り去った。例えば、喪失している5つの染色体腕をモデル設計する場合、各々は同一の度合いで喪失しており、本発明者らは腫瘍のヘテロ不均一性をモデルに組み込まなかった。さらに、いずれかの染色体腕を3つより多く;例えば、4コピーの3p染色体を含む合成サンプルは作出しなかった。この単純化したアプローチでは、生物学的に妥当なすべての異数性事象が包括的にカバーされなかった。しかしながら、改変された腕の考えられ得る組合せを限定することによって、サンプルの作成がコンピューティングによりトラック可能となり、得られたサポートベクターマシンは実際に良好に機能した。単一の染色体腕にしか由来しないリードが付加された、または取り去られた、合成によって作成したサンプルにより、本発明者らは、関心対象の単一の染色体腕のみが獲得された場合または喪失した場合のWALDOのパフォーマンスを推定することが可能であった。合成サンプルを作成するための擬似コードを図5に示す。
2クラスサポートベクターマシン(SVM)をトレーニングし、正倍数性サンプルと異数性サンプルとの間の区別がなされるようにした。トレーニングセットには、少なくとも2.5Mのリードを含む正常個体由来の1348例のおそらく正倍数性の陰性クラスの血漿試料および635例の異数性サンプルを含めた。異数性クラスには、合成サンプルと実際に異数性のサンプルの混合物を含めた。SVMトレーニングは、Rにおいてe1071パッケージを用い、ラジアル基底カーネルおよびデフォルトパラメータを使用して行なった。各サンプルは、染色体腕の獲得および喪失を表す39のZスコア特徴を有した。トレーニング中、陽性クラスが陰性クラスのサイズの10%となるように、陽性クラスをランダムにサンプリングした。1つの合成サンプルに対して2つの実物サンプルの比で、陽性クラスをランダムにサンプリングした。この手順を10回のイテレーションで行なった。最終のゲノムワイド異数性スコアは、10回のイテレーションにおける生のsvmスコアの平均とした。
このアッセイのパフォーマンスを、1348例の正倍数性の血漿試料およびがん患者由来の883例の血漿試料のコホートにおいてアセスメントした(表3)。がん患者由来の試料には、乳がん、結腸直腸がん、食道がん、肝臓がん、肺がん、卵巣がん、膵臓がん、および胃がんを含めた(図3)。1348例の正倍数性サンプルのコホートにおいて本発明者らが規定した99%の特異度をもたらすカットオフを使用すると、がん試料由来の49%の血漿が異数性を有することがわかった。
本文書の結果のセクションに含めたすべてのサンプルが高品質となることを確実にするため、いくつかの除外基準を開発した。第1に、2.5Mより少ないリードのサンプルを除外した。第2に、充分な夾雑のエビデンスを有するサンプルを除外した。夾雑状態であると標示するためには、サンプルは少なくとも10個の有意な対立遺伝子不均衡型染色体腕(zスコア>=2.5)および10個より少ない有意な染色体腕の獲得または喪失(z>=2.5またはz<=-2.5)を有していなければならなかった。対立遺伝子不均衡はSNPにより判定するが、獲得または喪失はWALDOによってアセスメントした。混合実験によって調べると、多数の獲得または喪失が存在しない比較的多数の対立遺伝子不均衡型染色体腕で、別の個体由来のDNAによるサンプルの夾雑が示された。第3に、血漿の解析では、8.5%より多くのアンプリコンが94bpより大きかった(フォワードプライマーとリバースプライマーの間が50塩基対の)サンプルを除外した。かかるサンプルは白血球DNAによる夾雑状態である可能性が高かった。第4に、下記の式によって定義されるようなアッセイのダイナミックレンジ外のサンプルを除外した。
異数性をさらなるバイオマーカーとして、公表されたフレームワークに組み込むことができるかどうか、ならびに異数性およびタンパク質マーカーを伴うロジスティック回帰モデルの予測能力を、体細胞変異およびタンパク質マーカーを使用するオリジナルのロジスティック回帰モデルと比較した。
異数性の結果を、ドライバー遺伝子変異パネルおよび血漿試料におけるがん検出のための主要なバイオマーカーとして最近公表された7つのタンパク質マーカー(AFP、CA-125、CA15-3、CA19-9、CEA、HGF、OPN、TIMP1)のコレクションに対してベンチマーク評価した(図4)(Cohen et. al 2018, Science 359(6378):926-930)。異数性は、すべてのタンパク質マーカーよりパフォーマンスが優れていた。また、異数性では、変異では見逃された試料の42%および変異パネルならびにタンパク質では見逃された試料の34%を検出することができた。この異数性アッセイの高特異度および各さらなるがんバイオマーカーの有用性のため、これらの成分を合わせて、がん検出のためのマルチアナライト検査にできることが理解されよう。
着床前診断法ならびに法医学への応用には、わずか数ピコグラム(pg)のDNAで異数性が確実に検出されることが必要である。着床前診断では、胚盤胞から採取された数個の細胞がコピー数多型のアセスメントに使用される。例えば、着床前診断は、哺乳動物を、ダウン症に関連する異数性を有すると特定することを含む。本開示において取り上げた方法でのインプットDNAに関する検出限界を試験するため、21トリソミーと関連している異数性を有するサンプルを、3~225 pgの範囲のインプットDNA濃度で解析した。リードとDNAとの関係は、陰性対照(DNAなしの水のウェル)および既知濃度の正倍数性の対照を基準にした(図6)。21トリソミーの異数性は、検査された各サンプルにおいて、二倍体細胞の半分である3 pgのインプットDNAを有するものにおいてですら、検出された。21トリソミーサンプルにおいて、21番染色体以外の染色体腕は異数性でないことが見出された。この実験に使用した正倍数性の対照において、21番染色体を含む染色体腕は異数性でないことが見出された。
バイオバンクの低インプットのDNAを有するサンプルを、異数性または同定目的のいずれかのためにアセスメントした。本明細書に記載の方法を、10年間という長期間PCRプレート内で保存されていた793例の血漿DNAサンプルに適用した。このPCRプレートの各ウェルは、DNA体積はすべて、他の実験で使用されたものであった。5マイクロリットルの水を乾燥(空の)ウェルに添加し、次いで本明細書に記載の方法に供した。728例のサンプルにおいて、異数性が確実にアセスメントされるのに充分な数である250万個より多くのアラインメント済みリードをシーケンシングした。これらのサンプルのうち768例において、血漿DNAと同じドナー由来の他のサンプルとの同一性が確認されるのに充分な数である100万個より多くのアラインメント済みリードをシーケンシングした。
血漿cfDNAは多くの場合、採血または血漿の調製のいずれかにより白血球から漏出したDNAとの夾雑状態である。この夾雑白血球DNAは、白血球が胎児細胞(NIPT中)またはがん細胞(液状生検材料中)のいずれにも由来しないため、血漿試料での異数性検査の感度を低下させ得る。白血球ゲノムDNA(gDNA)は>1000bpの平均断片サイズを有する一方、血漿セルフリーDNAは<160bpの平均サイズを有する。PCR反応中、小断片の方がより効率的に増幅されるとすると、短い方のcfDNAが優先的に増幅されるため夾雑白血球gDNAの検出は困難である。本明細書に記載の方法の適用により、SEQ ID NO:1とSEQ ID NO:10のプライマーを用いて生成されるアンプリコンのおかげで夾雑白血球gDNAの検出が可能となった。この方法を使用し、gDNAに典型的に存在するがcfDNAには存在しない1241個のアンプリコンを同定した。これらのアンプリコンのリードをシーケンシングすることにより、血漿試料における白血球夾雑が示された。白血球DNAと血漿セルフリーDNAを混合し、本明細書に記載の方法を使用することにより、表5に示すように、>4%の白血球DNAを含むサンプルを検出することができた。
不確定な長さのコピー数バリアントを検出した。まず、各染色体腕における500 kb区間ごとの検査サンプルの実測値とWALDO予測値の比の対数を計算した。この比の対数を使用し、サーキュラーバイナリーセグメンテーションアルゴリズムを適用して各染色体腕全体におけるコピー数バリアントを見出した。サイズが≦5Mbのコピー数バリアントにはいずれもフラグが立った。各染色体腕における統計学的有意性を計算する前に、このようなフラグが立ったCNVを除去した。一般に、小CNVは、微細欠失または微細増幅、例えばディジョージ症候群(染色体22q11.2または乳がん(染色体17q12)に起こるものをアセスメントするために使用され得る。
この実施例では、異なるマルチアナライト検査でのがん検出の感度を記載する。
本明細書に記載の材料および方法を、試料(例えば、腫瘍試料または非腫瘍試料(すなわち、正常試料))から増幅された反復エレメントの配列内の体細胞変異を同定するために使用してもよい。例えば、非腫瘍試料と腫瘍試料の2種類の試料が同じ患者から入手可能な場合、一方の試料にはあるが他方にはない変異を見分けることができる。各試料について、体細胞変異の数がカウントされ、単一塩基置換(SBS)(例えば、A->T、A->Cなど)のスペクトルが測定され得る。また、試料をエクソームシーケンシングによって解析する場合、本明細書における増幅された反復エレメント内のSBSの数とエクソーム内のSBSの数との間の相関が調べられ得る。したがって、本明細書に記載の材料および方法を用いて試料における体細胞変異が同定され得る。
本明細書に記載の材料および方法を、サンプルを同定および/または区別する(例えば、ある対象由来のサンプルを第2の対象由来のサンプルと区別する)ために使用してもよい。かかる場合では、サンプルを、本明細書に記載の材料および方法によって増幅された反復エレメント内に存在する一般的多型に基づいて同定する。次いでサンプルを、一般的多型の配列をサンプル間で比較することにより他のサンプルと区別する。各アンプリコンでの各多型の遺伝子型を調べることで、遺伝子型がサンプルに帰属される。遺伝子型は、サンプルを同定する(例えば、腫瘍試料を非腫瘍試料と、またはある対象由来のサンプルを異なる対象由来のサンプルと区別する)ためにサンプル間で比較され得る。サンプルは、一致度(例えば、遺伝子型間の類似性パーセント)が<0.99であり、少なくとも5,000個のアンプリコンが充分なカバレッジを有する場合、異なるサンプル由来であるとみなされ得る。
異なるステージおよび異なる型のがんにおける異数性の検出をアセスメントするための一組の実験を行なった。この実験では、異なるステージの乳房、結腸直腸、食道、肝臓、肺、卵巣、膵臓および胃のがんを有する対象由来の血漿を本明細書に記載の方法に従って単離した。図10は、ステージI(n=109)、ステージII(n=276)およびステージIII(173)での異数性(99%の特異度における)を示す。図11は、がんのステージ(図10)ではなく、がんの型(図11)で示した図7の同じがんでの異数性(99%の特異度における)を示す。
異数性の検出を本明細書に記載のようなタンパク質バイオマーカーの検出と組み合わせた場合のがん検出の感度をアセスメントするための一組の実験を行なった。このような実験では、実施例8のものと同じコホート(例えば、異なるステージの乳房、結腸直腸、食道、肝臓、肺、卵巣、膵臓および胃のがん)由来の血漿を、異数性およびタンパク質バイオマーカーについてアッセイした。図12は、異なるステージのがん(ステージI(n=109)、ステージII(n=276)およびステージIII(n=173)における検出感度を示す。
Real Seqのパフォーマンスを他の次世代シーケンシング技術と比較してアセスメントするための一組の実験を行なった。
さまざまな濃度の腫瘍由来DNAを有するサンプルにおいてReal SEQ法を用いて異数性の検出をアセスメントするための一組の実験を行なった。血漿中に存在する変異の解析(Cohen et al., Science 359;926-930)によって変異型対立遺伝子率が測定されてある302例のサンプルのアセスメントにおいて、異数性が、変異型対立遺伝子率≧2%を有する65例のサンプルの92%、0.5%~2%の変異型対立遺伝子率を有する65例のサンプルの71%、および0.01%~0.5%の範囲の変異型対立遺伝子頻度を有する172例のサンプルの49%において検出された(図18)。これらの3つのクラスのサンプル間の異数性の差は有意であった(P<10-3、片側二項検定)。
本発明を、その詳細な説明とともに説明したが、前述の説明は実例を示すことを意図しており、本発明の範囲を限定することを意図するものではなく、本発明は、添付の特許請求の範囲の範囲によって規定されることは理解されよう。他の局面、利点および修正は以下の特許請求の範囲の範囲内である。
Claims (107)
- 以下の工程を含む、哺乳動物のゲノムにおける異数性の存在について検査する方法:
(a)複数のアンプリコンを形成させるために、DNAサンプル中の複数の染色体配列を、該染色体配列に相補的なプライマーペアを用いて増幅する工程であって、該プライマーペアは、異数性の検出を可能とするのに充分な数の配列を増幅する、工程;
(b)該複数のアンプリコンのうちの1つまたは複数の核酸配列の少なくとも一部分を決定する工程;
(c)シーケンシングされたアンプリコンを参照ゲノムにマッピングする工程;
(d)該DNAサンプルを複数のゲノム区間に分割する工程;
(e)該ゲノム区間にマッピングされたアンプリコンに関する複数の特徴を定量する工程;
(f)第1のゲノム区間内のアンプリコンの該複数の特徴を、1つまたは複数の異なるゲノム区間内のアンプリコンの該複数の特徴と比較する工程;および
(g)該増幅する工程で、異数性を検出するのに充分な数のアンプリコンが形成され、それにより、該哺乳動物の該ゲノムにおける異数性の存在が検査される工程。 - DNAサンプルが、複数の正倍数性DNAサンプルを含む、請求項1記載の方法。
- DNAサンプルが、複数の検査DNAサンプルを含む、請求項1記載の方法。
- 検査DNAが、倍数性の不明なDNAを含む、請求項3記載の方法。
- DNAサンプルが血漿に由来する、請求項1記載の方法。
- DNAサンプルが血清に由来する、請求項1記載の方法。
- DNAサンプルが、セルフリーDNAを含む、請求項1記載の方法。
- DNAサンプルが、少なくとも3ピコグラムのDNAを含む、請求項1~7のいずれか一項記載の方法。
- 哺乳動物がヒトである、請求項1~8のいずれか一項記載の方法。
- プライマーペアが、表1から選ばれる第1のプライマーおよび第2のプライマー、例えばSEQ ID NO:1を含む第1のプライマーおよびSEQ ID NO:10を含む第2のプライマー、またはSEQ ID NO:1と少なくとも80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%もしくは99%の同一性を有する第1のプライマーおよびSEQ ID NO:10と少なくとも80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%もしくは99%の同一性を有する第2のプライマーを含む、請求項1~9のいずれか一項記載の方法。
- 1つまたは複数のさらなるプライマーペアが、工程(a)のDNAサンプル中の1組または複数組のさらなる複数の染色体配列を増幅する、請求項1~10のいずれか一項記載の方法。
- アンプリコンが、表1に示される1つまたは複数の反復エレメントを含む、請求項1~11のいずれか一項記載の方法。
- アンプリコンが、固有の短鎖散在反復配列(SINE)を含む、請求項12記載の方法。
- アンプリコンの平均長さが100塩基対以下である、請求項1~13のいずれか一項記載の方法。
- アンプリコンが1つまたは複数の長鎖アンプリコンを含み、該長鎖アンプリコンの平均長さが1000塩基対以上である、請求項1~14のいずれか一項記載の方法。
- 長鎖アンプリコンが、夾雑細胞由来のDNAを含む、請求項15記載の方法。
- 夾雑細胞が白血球である、請求項16記載の方法。
- 複数のアンプリコンが、複数の、例えば2つ以上の異なる染色体上の配列を含む、請求項1~17のいずれか一項記載の方法。
- ゲノム区間が、約100個のヌクレオチド~約125,000,000個のヌクレオチドを含む、請求項1~18のいずれか一項記載の方法。
- ゲノム区間にマッピングされたアンプリコンを定量する工程が、1つまたは複数の共有アンプリコン特徴を有する複数のゲノム区間を同定することを含む、請求項1~19のいずれか一項記載の方法。
- 共有アンプリコン特徴が、マッピングされたアンプリコンの数である、請求項20記載の方法。
- 共有アンプリコン特徴が、マッピングされたアンプリコンの平均長さである、請求項20記載の方法。
- 共有アンプリコン特徴を有する複数のゲノム区間が、1つまたは複数のクラスターへ群分けされる、請求項20~22のいずれか一項記載の方法。
- 各クラスターが、約200個のゲノム区間を含む、請求項23記載の方法。
- クラスターが、規定済みクラスターを含む、請求項23記載の方法。
- ゲノム区間の比較が、検査サンプル由来の1つまたは複数のゲノム区間を規定済みクラスターとマッチさせることをさらに含む、請求項1~25のいずれか一項記載の方法。
- 検査サンプル由来のゲノム区間を規定済みクラスターとマッチさせることが、規定済みクラスターに関する所定の有意性閾値外の共有アンプリコン特徴を有する1つまたは複数のゲノム区間を同定することをさらに含む、請求項26記載の方法。
- 異数性の存在が検査される工程が、教師あり機械学習を含む、請求項1~27のいずれか一項記載の方法。
- 教師あり機械学習が、サポートベクターマシンモデルを使用する、請求項28記載の方法。
- SEQ ID NO:1と少なくとも80%同一である配列を含む第1のプライマーおよびSEQ ID NO:10と少なくとも80%同一である配列を含む第2のプライマーを含む、DNAサンプルからの複数のアンプリコンの増幅のためのプライマーペア。
- 第1のプライマーの配列がSEQ ID NO:1と少なくとも90%同一である、請求項30記載のプライマーペア。
- 第1のプライマーの配列がSEQ ID NO:1と少なくとも95%同一である、請求項30記載のプライマーペア。
- 第1のプライマーの配列が、SEQ ID NO:1と100%同一である配列であるかもしくはSEQ ID NO:1と100%同一である配列を含み、および/または、第2のプライマーの配列が、SEQ ID NO:2と100%同一である配列であるかもしくはSEQ ID NO:2と100%同一である配列を含む、請求項30記載のプライマーペア。
- 第2のプライマーの配列がSEQ ID NO:10と少なくとも90%同一である、請求項30~32のいずれか一項記載のプライマーペア。
- 第2のプライマーの配列がSEQ ID NO:10と少なくとも95%同一である、請求項30~32のいずれか一項記載のプライマーペア。
- 第2のプライマーの配列が、SEQ ID NO:10と100%同一である配列であるか、またはSEQ ID NO:10と100%同一である配列を含む、請求項30~32のいずれか一項記載のプライマーペア。
- プライマーペアを含み、該プライマーペアの第1のプライマーがSEQ ID NO:1を含み、該プライマーペアの第2のプライマーがSEQ ID NO:10を含む、DNAサンプルからの複数のアンプリコンの増幅のためのキット。
- 増幅する工程で少なくとも10,000個のアンプリコンが形成される、請求項1~29のいずれか一項記載の方法。
- 増幅する工程で少なくとも20,000個のアンプリコンが形成される、請求項1~37のいずれか一項記載の方法。
- 増幅する工程で少なくとも50,000個のアンプリコンが形成される、請求項1~37のいずれか一項記載の方法。
- 増幅する工程で少なくとも100,000個のアンプリコンが形成される、請求項1~37のいずれか一項記載の方法。
- 以下の工程を含む、対象における複数のがんの各々の存在またはその発症リスクについて対象を評価する方法:
(i)1つまたは複数のドライバー遺伝子の各々における1つまたは複数の変異の存在に関する値を取得する工程であって、ドライバー遺伝子の各々は、該複数のがんのうちの1つのがんの存在またはリスクと関連している、工程;
(ii)複数のタンパク質バイオマーカーの各々のレベルに関する値を取得する工程であって、該複数のタンパク質バイオマーカーの各々のレベルは、該複数のがんのうちの1つのがんの存在またはリスクと関連している、工程;
(iii)異数性に関する値を取得する工程であって、該異数性の値は、反復エレメントファミリー(REファミリー)の少なくとも2つの末端反復エレメント間に配されているゲノム配列のコピー数または長さの関数であり、該REファミリーは、
(a)長鎖散在反復配列(LINE)以外のREファミリー、
(b)自身の末端反復エレメントに相補的なプライマー部分を用いて増幅されるとX nt未満の平均長さを有するアンプリコンをもたらすREファミリーであって、ここで、Xは100、105もしくは110である、REファミリー、
(c)約700bp未満の長さであるREファミリー、あるいは
(d)少なくとも100コピー/ゲノムで存在するREファミリー
を含み;
該異数性は、該複数のがんのうちの1つのがんの存在またはリスクと関連しており;
それにより、該対象を、該複数のがんのいずれかの存在またはその発症リスクについて評価する、
工程。 - (i)、(ii)および(iii)のうちの1つが直接取得される、請求項42記載の方法。
- (i)と(ii)が直接取得される、請求項42記載の方法。
- (i)と(iii)が直接取得される、請求項42記載の方法。
- (i)と(ii)が直接取得される、請求項42記載の方法。
- (i)、(ii)および(iii)のすべてが直接取得される、請求項42記載の方法。
- (i)、(ii)および(iii)のうちの1つが間接的に取得される、請求項42記載の方法。
- (i)と(ii)が間接的に取得される、請求項42記載の方法。
- (i)と(iii)が間接的に取得される、請求項42記載の方法。
- (i)と(ii)が間接的に取得される、請求項42記載の方法。
- (i)、(ii)および(iii)のすべてが間接的に取得される、請求項42記載の方法。
- (1)遺伝子バイオマーカーを含む1つもしくは複数のサブゲノム区間もしくはアンプリコンをシーケンシングする工程;
(2)1つもしくは複数のゲノム配列を異数性について解析する工程、および/または
(3)タンパク質バイオマーカーを検出試薬と接触させる工程
を含む、請求項42~52のいずれか一項記載の方法。 - 異数性の値が、REファミリーの少なくとも2つの末端反復エレメント間に配されているゲノム配列のコピー数の関数である、請求項42~53のいずれか一項記載の方法。
- 異数性の値が、反復エレメントファミリー(REファミリー)の少なくとも2つの末端反復エレメント間に配されているゲノム配列の長さの関数である、請求項42~54のいずれか一項記載の方法。
- (i)サンプル由来のセルフリーDNAのサブゲノム区間の配列を取得する工程;および
(ii)該サンプル由来の白血球DNAの白血球パラメータを取得する工程
をさらに含む、請求項42~55のいずれか一項記載の方法。 - 白血球パラメータが前記サブゲノム区間の配列を含む、請求項55または56記載の方法。
- セルフリーDNAサブゲノム区間またはセルフリーDNA異数性解析サンプルにみられるゲノム事象を評価するために(i)を(ii)と比較する工程をさらに含む、請求項55または56記載の方法。
- ゲノム事象が変異を含む、請求項58記載の方法。
- (i)、(ii)および(iii)を伴う複数のがんのうちの1つのがんの検出の特異度が、(i);(ii);(iii);(i)と(ii);(i)と(iii);または(ii)と(iii)を伴う該複数のがんのうちの該1つのがんの検出の特異度と実質的に同じである、請求項42~59のいずれか一項記載の方法。
- (i)、(ii)および(iii)を伴う該複数のがんのうちの1つのがんの検出の特異度が、(i);(ii);(iii);(i)と(ii);(i)と(iii);または(ii)と(iii)を伴う該複数のがんのうちの該1つのがんの検出の特異度より実質的に低くない、請求項42~59のいずれか一項記載の方法。
- (i)、(ii)および(iii)を伴う複数のがんのうちの1つのがんの検出感度が、(i);(ii);(iii);(i)と(ii);(i)と(iii);または(ii)と(iii)を伴う該複数のがんのうちの該1つのがんの検出感度より高い、請求項42~61のいずれか一項記載の方法。
- (i)、(ii)および(iii)を伴う複数のがんのうちの1つのがんの検出感度が、(i);(ii);(iii);(i)と(ii);(i)と(iii);または(ii)と(iii)を伴う該複数のがんのうちの該1つのがんの検出感度より約1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、2、2.5、3、3.5、4、4.5、5、5.5、6、6.5、7、7.5、8、8.5、9、9.5または10倍高い、請求項62記載の方法。
- (i)、(ii)および(iii)により、ある特定の特異度における検出感度の上昇がもたらされる、請求項42~63のいずれか一項記載の方法。
- 検出感度の上昇が、特定の特異度における約1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、2、2.5、3、3.5、4、4.5、5、5.5、6、6.5、7、7.5、8、8.5、9、9.5または10倍の上昇である、請求項64記載の方法。
- 特異度が所定の特異度である、請求項64または65記載の方法。
- 所定の特異度が少なくとも約90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%または100%の特異度である、請求項66記載の方法。
- 複数のがんのうちの1つのがんの検出感度の上昇によって該複数のがんのうちの該1つのがんの検出の特異度が影響されない、請求項62~67のいずれか一項記載の方法。
- 複数のがんのうちの1つのがんの検出感度の上昇によって該複数のがんのうちの該1つのがんの検出の特異度が低下せず、実質的に低下もしない、請求項62~67のいずれか一項記載の方法。
- 複数のがんのうちの1つのがんの検出の特異度がプラトー状態である、請求項68または69記載の方法。
- 1つまたは複数の変異の存在に関する値を取得する工程が、1つまたは複数のドライバー遺伝子における1つまたは複数の変異を検出することを含む、請求項42~70のいずれか一項記載の方法。
- 1つまたは複数の変異が1つまたは複数のドライバー遺伝子変異を含む、請求項71記載の方法。
- 1つまたは複数のドライバー遺伝子が、NRAS、CTNNB1、PIK3CA、FBXW7、APC、EGFR、BRAF、CDKN2A、PTEN、FGFR2、HRAS、KRAS、AKT1、TP53、PPP2R1AまたはGNASから選ばれる、請求項42~72のいずれか一項記載の方法。
- 1つまたは複数の変異の存在が、NRAS、CTNNB1、PIK3CA、FBXW7、APC、EGFR、BRAF、CDKN2A、PTEN、FGFR2、HRAS、KRAS、AKT1、TP53、PPP2R1AまたはGNASから選ばれる少なくとも4個のドライバー遺伝子において評価される、請求項42~73のいずれか一項記載の方法。
- 1つまたは複数の変異の存在が、以下の16個のドライバー遺伝子:NRAS、CTNNB1、PIK3CA、FBXW7、APC、EGFR、BRAF、CDKN2A、PTEN、FGFR2、HRAS、KRAS、AKT1、TP53、PPP2R1AおよびGNASのすべてにおいて評価される、請求項42~74のいずれか一項記載の方法。
- 複数のタンパク質バイオマーカーの各々に関する値を取得する工程が、例えばCA19-9、CEA、HGF、OPN、CA125、プロラクチン(PRL)、TIMP-1、CA15-3、AFPまたはMPOから選ばれる該複数のタンパク質バイオマーカーの各々を検出することを含む、請求項42~75のいずれか一項記載の方法。
- 複数のタンパク質バイオマーカーが少なくとも4つのタンパク質バイオマーカーを含む、請求項76記載の方法。
- 異数性に関する値を取得する工程が、異数性を検出することを含む、請求項42~77のいずれか一項記載の方法。
- 複数のがんが少なくとも4つのがんを含む、請求項42~78のいずれか一項記載の方法。
- 対象を器官または体内領域の放射線スキャン、例えばPET-CTスキャンに供する工程をさらに含む、請求項42~79のいずれか一項記載の方法。
- 器官または体内領域の放射線スキャン法によってがんを特性評価する、請求項80記載の方法。
- 器官または体内領域の放射線スキャン法によってがんの場所を特定する、請求項80記載の方法。
- 放射線スキャンがPET-CTスキャンである、請求項80~82のいずれか一項記載の方法。
- 対象が複数のがんの各々の存在について評価された後に放射線スキャン法が行なわれる、請求項80~83のいずれか一項記載の方法。
- 対象に1つまたは複数の治療介入(例えば、手術、術後補助化学療法、術前補助化学療法、放射線療法、免疫療法、標的療法および/または免疫チェックポイント阻害剤)を施す工程を含む、請求項42~84のいずれか一項記載の方法。
- 対象ががんに関して無症候性である、請求項42~85のいずれか一項記載の方法。
- 対象が複数のがんのうちの1つのがんに関して無症候性である、請求項42~85のいずれか一項記載の方法。
- 対象が、がん細胞を有することが不明であり、がん細胞を有すると判定されてもいない、請求項42~85のいずれか一項記載の方法。
- 対象が、がんを有すると判定されたことがなく、がんを有すると診断されたこともない、請求項42~85のいずれか一項記載の方法。
- 対象が早期、例えばステージIまたはステージIIのがんを有する、請求項42~85のいずれか一項記載の方法。
- 以下を含む、キット:
(a)少なくとも2、少なくとも3、少なくとも4、少なくとも5、少なくとも6、少なくとも7、少なくとも8、少なくとも9または少なくとも10種類の検出試薬であって、1種類の検出試薬が、
(i)本文書において言及される1つもしくは複数の遺伝子バイオマーカー;
(ii)本文書において言及される1つもしくは複数のタンパク質バイオマーカー;および/または
(iii)本文書において言及される反復エレメントファミリー(REファミリー)の少なくとも2つの末端反復エレメント間に配されているゲノム配列のコピー数もしくは長さ
のレベルまたは存在に関する値である読み出し情報を媒介する、
検出試薬;ならびに
(b)該キットを使用するための使用説明書。 - 検出試薬が、ゲノム配列における異数性のレベルまたは存在に関する値である読み出し情報を媒介する、請求項91記載のキット。
- 以下の工程を含む、哺乳動物をがんの存在について検査する方法:
(a)複数のアンプリコンを形成させるために、DNAサンプル中の複数の染色体配列を、該染色体配列に相補的なプライマーペアを用いて増幅する工程;
(b)該複数のアンプリコンのうちの1つまたは複数の核酸配列の少なくとも一部分を決定する工程;
(c)シーケンシングされたアンプリコンを参照ゲノムにマッピングする工程;
(d)該DNAサンプルを複数のゲノム区間に分割する工程;
(e)該ゲノム区間にマッピングされた該アンプリコンに関する複数の特徴を定量する工程;
(f)第1のゲノム区間内のアンプリコンの該複数の特徴を、1つまたは複数の異なるゲノム区間内のアンプリコンの該複数の特徴と比較する工程;および
(g)第1のゲノム区間内のアンプリコンの該複数の特徴が1つまたは複数の異なるゲノム区間内のアンプリコンの該複数の特徴と異なる場合、該哺乳動物にがんが存在すると判定する工程。 - 増幅する工程で少なくとも100,000個のアンプリコンが形成される、請求項93記載の方法。
- がんがステージIのがんである、請求項93または94記載の方法。
- がんが肝臓がん、卵巣がん、食道がん、胃がん、膵がん、結腸直腸がん、肺がん、乳がんまたは前立腺がんである、請求項93~95のいずれか一項記載の方法。
- 第1のゲノム区間内のアンプリコンの複数の特徴が1つまたは複数の異なるゲノム区間内のアンプリコンの該複数の特徴と異なる場合、異数性が存在すると判定する工程をさらに含む、請求項93~96のいずれか一項記載の方法。
- 低インプットのDNAを含むサンプルにおいて、本文書に開示のいずれかの方法を用いて異数性を検出する方法。
- サンプルが、約0.01ピコグラム(pg)~500 pgのDNAを含む、請求項98記載の方法。
- サンプルが、対象由来の生体試料である、請求項98または99記載の方法。
- サンプルが、液状試料、血液試料、セルフリーDNAサンプル(例えば、循環腫瘍DNAサンプル)、血漿試料、血清試料;または組織試料を含む、請求項98~100のいずれか一項記載の方法。
- サンプル、例えば生体試料が、細胞(例えば、正常細胞またはがん細胞)およびセルフリーDNAを含む、請求項98~100のいずれか一項記載の方法。
- 本文書に開示のいずれかの方法を用いてサンプルを同定または区別する方法。
- 対象、例えば第1の対象由来のサンプル、例えば第1のサンプルが、第2の対象由来の第2のサンプルと区別される、請求項103記載の方法。
- サンプルが、多型(例えば、複数の多型、例えば一般的多型)に基づいて対象由来であると同定される、請求項103記載の方法。
- 多型、例えば一般的多型が、例えば本文書に記載のような反復エレメント内に存在する、請求項105記載の方法。
- インビトロ法である、請求項1~90または93~106のいずれか一項記載の方法。
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