JP2022527865A - ストレスに対するセロトニン4受容体アゴニストの予防的有効性 - Google Patents

ストレスに対するセロトニン4受容体アゴニストの予防的有効性 Download PDF

Info

Publication number
JP2022527865A
JP2022527865A JP2021560628A JP2021560628A JP2022527865A JP 2022527865 A JP2022527865 A JP 2022527865A JP 2021560628 A JP2021560628 A JP 2021560628A JP 2021560628 A JP2021560628 A JP 2021560628A JP 2022527865 A JP2022527865 A JP 2022527865A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
mice
administration
epm
group
stress
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2021560628A
Other languages
English (en)
Other versions
JPWO2020210393A5 (ja
Inventor
デニー,クリスティン,エー.
ガーディアー,アラン,エム.
デイビッド,デニス,ジェイ.
メンデス-デイビッド,インディラ
フェイ,シャーリーン
チェン,ブリアナ,ケイ.
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Columbia University of New York
Original Assignee
Columbia University of New York
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Columbia University of New York filed Critical Columbia University of New York
Publication of JP2022527865A publication Critical patent/JP2022527865A/ja
Publication of JPWO2020210393A5 publication Critical patent/JPWO2020210393A5/ja
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33Heterocyclic compounds
    • A61K31/395Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/435Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with one nitrogen as the only ring hetero atom
    • A61K31/44Non condensed pyridines; Hydrogenated derivatives thereof
    • A61K31/445Non condensed piperidines, e.g. piperocaine
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33Heterocyclic compounds
    • A61K31/395Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/435Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with one nitrogen as the only ring hetero atom
    • A61K31/44Non condensed pyridines; Hydrogenated derivatives thereof
    • A61K31/445Non condensed piperidines, e.g. piperocaine
    • A61K31/4523Non condensed piperidines, e.g. piperocaine containing further heterocyclic ring systems
    • A61K31/454Non condensed piperidines, e.g. piperocaine containing further heterocyclic ring systems containing a five-membered ring with nitrogen as a ring hetero atom, e.g. pimozide, domperidone
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33Heterocyclic compounds
    • A61K31/395Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/435Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with one nitrogen as the only ring hetero atom
    • A61K31/44Non condensed pyridines; Hydrogenated derivatives thereof
    • A61K31/445Non condensed piperidines, e.g. piperocaine
    • A61K31/4523Non condensed piperidines, e.g. piperocaine containing further heterocyclic ring systems
    • A61K31/4525Non condensed piperidines, e.g. piperocaine containing further heterocyclic ring systems containing a five-membered ring with oxygen as a ring hetero atom
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33Heterocyclic compounds
    • A61K31/395Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/435Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with one nitrogen as the only ring hetero atom
    • A61K31/44Non condensed pyridines; Hydrogenated derivatives thereof
    • A61K31/445Non condensed piperidines, e.g. piperocaine
    • A61K31/4523Non condensed piperidines, e.g. piperocaine containing further heterocyclic ring systems
    • A61K31/453Non condensed piperidines, e.g. piperocaine containing further heterocyclic ring systems containing a six-membered ring with oxygen as a ring hetero atom
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K45/00Medicinal preparations containing active ingredients not provided for in groups A61K31/00 - A61K41/00
    • A61K45/06Mixtures of active ingredients without chemical characterisation, e.g. antiphlogistics and cardiaca
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • A61P25/22Anxiolytics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • A61P25/24Antidepressants

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Psychiatry (AREA)
  • Pain & Pain Management (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

対象においてストレス誘導性情動障害またはストレス誘導性精神病を予防的に処置するための方法が、提供される。また提供されるのは、対象においてストレスレジリエンスを誘導および/または増強するための方法である。特定の実施形態において、セロトニン4受容体(5-HT4R)のアゴニスト、またはその医薬的に許容できる塩もしくは誘導体の有効量が、ストレッサに先立って対象に投与される。【選択図】2D

Description

関連出願の相互参照
本出願は、2019年4月9日出願の米国特許仮出願第62/831,517号、2019年6月4日出願の米国特許仮出願第62/857,075号、および2019年10月4日出願の米国特許仮出願第62/910,859号の優先権を主張するものであり、それらの出願はそれぞれ、全体として参照により本明細書に組み入れられる。
発明の分野
本発明は、セロトニン4受容体(5-ヒドロキシトリプタミン(セロトニン)受容体4、または5-HTR)アゴニスト組成物、および外傷後ストレス障害(PTSD)などのストレス誘導性情動障害の処置または防止の方法におけるそれらの使用に関する。特定の態様において、本発明の組成物は、ストレッサに先立って投与され得る。
発明の背景
ストレスへの暴露は、大うつ病性障害(MDD)および外傷後ストレス障害(PTSD)の発症の重要因子である。全米併存疾患調査によれば、男性のおよそ60%および女性の51%は、生涯のうちに1つまたは複数の外傷事象にさらされている。全人口の7.8%が人生のある時点でPTSDを経験し、女性(10.4%)は、男性[5.0%]よりも有意に高い割合でこの障害を経験する[1]。女性は、ストレス関連の不安またはうつ性障害に罹患するリスクが男性の2~3倍である[61]。伝統的に情動障害は、症状抑制のアプローチから処置されてきた。既存の薬物は、これらの慢性疾患の影響を軽減することを目的とするが、疾患そのものを治癒または防止しない。しかし、ストレスレジリエンスを増強する薬物が開発されれば、それらは潜在的に、リスクのある集団において、ストレス誘導性精神障害を防御するために用いられる可能性がある。
不安障害は、最も一般的な精神障害の1つであり、25%を超える生涯有病率(A1)および400億ドルを超える年間財政負担である(A2)。ベンゾジアゼピン(BZD)は、ほとんどの不安障害を処置するのに効果的であり、何年もの間、標準処置であり、患者の急性不安症の低減において80%を超える応答がある(A3)。しかしそれらの長期連日使用は、依存性および記憶喪失のリスクに関連づけられている。その結果それらは多くの場合、不安症を処置するセロトニン(5-HT)の役割に注目させる選択的セロトニン再取り込み阻害剤(SSRI)などのセロトニン作動薬での慢性処置に取って代わられた。しかしSSRIは、作用開始が数週間遅延し、不安症患者では40%の非応答者率であるため(A4)、新規な速効性抗不安薬の開発が求められている。
本発明者らおよび他の者たちは近年、(R,S)-ケタミンが、マウスにおいてストレスの1週間前に投与された場合にストレスに対するレジリエンス増強薬(例えば、予防薬)として作用することを報告した[2~6]。加えて、ヒト患者における限定的データは、PTSD[7]および、おそらく用量特異的様式で産後うつ(PPD)[8、9]などの精神障害を防止することにおける(R,S)-ケタミンの潜在能力を実証した。予防薬の有効性は、近年にGouldおよび共同研究者がグループII代謝型グルタミン酸受容体(mGlu2/3)アンタゴニストにも防御性があることを報告するまで[10]、(R,S)-ケタミンに限定されてきた。本発明者らは過去に、SSRI Flxが予防薬として無効であることを報告したが、他のセロトニン作動薬が効果的予防薬であり得るかどうか、かつ/またはセロトニン作動系が予防的有効性に関与するかどうかは、依然として決定されていない。
5-HTRは、うつ病および不安症を処置するための有望なターゲットである。5-HTRは、5-HTに応答してG/サイクリックアデノシン一リン酸(cAMP)/プロテインキナーゼA(PKA)シグナル伝達経路を刺激する代謝型Gタンパク質共役受容体である[11~15]。5-HTRは、心臓および副腎を含む末梢において、ならびに脳中の扁桃体(AMG)、内側前頭前野(mPFC)、側坐核(NAc)、および海馬(HPC)などの領域において高度に発現される[16、17]。5-HTRノックアウトマウスは、不安様行動およびうつ様行動の増加を提示し、一方で5-HTRの活性化は、HPC中の神経新生を刺激し、速効性抗うつ様効果を生じる[18~21]。しかし、5-HTRがストレスレジリエンスに関与するかどうか、およびどのように関与するかについては、未だに決定されていない。
ストレス誘導性情動障害の発病を防止する効果的な予防治療のアンメットニーズがある。
発明の概要
本開示は、それを必要とする対象において、ストレス誘導性情動障害またはストレス誘導性精神病を防止または遅延するための方法を提供する。方法は、ストレッサに先立って対象に、セロトニン4受容体(5-HTR)の活性化因子(例えば、セロトニン受容体(5-HTR)のアゴニスト)、またはその医薬的に許容できる塩、類似体、誘導体もしくは代謝産物を含む医薬組成物の有効量を投与することを含んでよい。
本開示はまた、必要とする対象においてストレスレジリエンスを誘導および/または増強するための方法を提供する。方法は、ストレッサに先立って対象に、セロトニン4受容体(5-HTR)の活性化因子(例えば、セロトニン受容体(5-HTR)のアゴニスト)、またはその医薬的に許容できる塩、類似体、誘導体もしくは代謝産物を含む医薬組成物の有効量を投与することを含んでよい。
5-HTRのアゴニストは、1-(4-アミノ-5-クロロ-2-メトキシフェニル)-3-[1(n-ブチル)-4-ピペリジニル]-1-プロパノンHCl(RS-67,333またはRS67333)、4-アミノ-5-クロロ-2,3-ジヒドロ-N-[1-3-メトキシプロピル)-4-ピペリジニル]-7-ベンゾフランカルボキサミド一塩酸塩(プルカロプリド)、4-[4-[4-テトラヒドロフラン-3-イルオキシ)-ベンゾ[d]イソオキサゾール-3-イルオキシメチル]-ピペリジン-1-イルメチル]-テトラヒドロピラン-4-オール(PF-04995274)、またはそれらの組み合わせを含んでよい。
医薬組成物は、ストレッサの約48時間~約3週間前に対象に投与されてよい。特定の実施形態において、医薬組成物は、ストレッサの約72時間~約2週間前に対象に投与される。特定の実施形態において、医薬組成物は、ストレッサの約1週間前に対象に投与される。
特定の実施形態において、医薬組成物は、ストレッサに先立って対象に1回投与される。
特定の実施形態において、医薬組成物は、対象に経口、静脈内、鼻内で投与されるか、または注射を介して投与される。
ストレス誘導性情動障害は、大うつ病性障害(MDD)および/または外傷後ストレス障害(PTSD)を含んでよい。特定の実施形態において、ストレス誘導性情動障害は、うつ様行動および関連の情動障害、無快感行動および関連の情動障害、不安症および関連の情動障害、認知障害および欠陥および関連の障害、ストレス誘導性恐怖、ならびにそれらの組み合わせからなる群から選択される。
追加的実施形態において、ストレス誘導性情動障害は、ストレス誘導性精神病を含む。特定の実施形態において、ストレス誘導性精神病は、うつ行動および/または不安行動を含む。
本発明の方法は、ストレス誘導性認知障害および/または低下を防止または遅延してよい。
本発明の方法は、抗うつ薬、抗不安薬、またはそれらの組み合わせの有効量を対象に投与することをさらに含んでよい。
本発明の方法は、選択的セロトニン再取り込み阻害剤(SSRI)、またはその医薬的に許容できる塩もしくは誘導体の有効量を投与することをさらに含んでよい。
本発明の方法は、フルオキセチン、パロキセチン、セルトラリン、リチウム、リルゾール、プラゾシン、ラモトリギン、イフェンプロジル、またはそれらの組み合わせの有効量を投与することをさらに含んでよい。
対象は、哺乳動物であってよい。特定の実施形態において、対象は、ヒトである。対象は、雌または雄であってよい。
特定の実施形態において、医薬組成物は、ブースターシリーズで投与される。
RS-67,333は、雄C57BL/6NTacマウスの神経内分泌モデルで誘導されたうつ様および不安様行動を防御する。(1A)実験計画。(1B)不安様行動(EPM、NSF)およびうつ様行動(ST)をテストするための行動アッセイ。(1C~1F)6週目までに、CORT投与は、VEH投与に比較した場合体重増加をもたらした。RSおよびFlx投与は、CORT処置マウスにおいて体重減少をもたらした。(1G)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を呈した。(1H)CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合に、EPMのオープンアームへの有意に少ない進入を有した。RS投与は、CORT処置マウスのEPMにおけるオープンアームへの進入数を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(1I)マウスの全群が、EPMにおいて類似の距離を移動した。(1J~1K)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、NSFにおける摂餌開始潜時を増加させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて摂餌開始潜時を減少させたが、Flx投与は減少させなかった。(1L)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、STにおける身繕い期間を減少させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて身繕い期間を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(n=9~14雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01;*** p<0.001;**** p<0.0001。VEH、ビヒクル;Veh、ビヒクル;CORT、コルチコステロン;Flx、フルオキセチン;RS、RS-67,333;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;ST、スプラッシュテスト;sec、秒;no、数;cm、センチメートル;g、グラム。 RS-67,333は、雄C57BL/6NTacマウスの神経内分泌モデルで誘導されたうつ様および不安様行動を防御する。(1A)実験計画。(1B)不安様行動(EPM、NSF)およびうつ様行動(ST)をテストするための行動アッセイ。(1C~1F)6週目までに、CORT投与は、VEH投与に比較した場合体重増加をもたらした。RSおよびFlx投与は、CORT処置マウスにおいて体重減少をもたらした。(1G)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を呈した。(1H)CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合に、EPMのオープンアームへの有意に少ない進入を有した。RS投与は、CORT処置マウスのEPMにおけるオープンアームへの進入数を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(1I)マウスの全群が、EPMにおいて類似の距離を移動した。(1J~1K)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、NSFにおける摂餌開始潜時を増加させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて摂餌開始潜時を減少させたが、Flx投与は減少させなかった。(1L)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、STにおける身繕い期間を減少させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて身繕い期間を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(n=9~14雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01;*** p<0.001;**** p<0.0001。VEH、ビヒクル;Veh、ビヒクル;CORT、コルチコステロン;Flx、フルオキセチン;RS、RS-67,333;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;ST、スプラッシュテスト;sec、秒;no、数;cm、センチメートル;g、グラム。 RS-67,333は、雄C57BL/6NTacマウスの神経内分泌モデルで誘導されたうつ様および不安様行動を防御する。(1A)実験計画。(1B)不安様行動(EPM、NSF)およびうつ様行動(ST)をテストするための行動アッセイ。(1C~1F)6週目までに、CORT投与は、VEH投与に比較した場合体重増加をもたらした。RSおよびFlx投与は、CORT処置マウスにおいて体重減少をもたらした。(1G)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を呈した。(1H)CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合に、EPMのオープンアームへの有意に少ない進入を有した。RS投与は、CORT処置マウスのEPMにおけるオープンアームへの進入数を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(1I)マウスの全群が、EPMにおいて類似の距離を移動した。(1J~1K)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、NSFにおける摂餌開始潜時を増加させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて摂餌開始潜時を減少させたが、Flx投与は減少させなかった。(1L)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、STにおける身繕い期間を減少させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて身繕い期間を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(n=9~14雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01;*** p<0.001;**** p<0.0001。VEH、ビヒクル;Veh、ビヒクル;CORT、コルチコステロン;Flx、フルオキセチン;RS、RS-67,333;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;ST、スプラッシュテスト;sec、秒;no、数;cm、センチメートル;g、グラム。 RS-67,333は、雄C57BL/6NTacマウスの神経内分泌モデルで誘導されたうつ様および不安様行動を防御する。(1A)実験計画。(1B)不安様行動(EPM、NSF)およびうつ様行動(ST)をテストするための行動アッセイ。(1C~1F)6週目までに、CORT投与は、VEH投与に比較した場合体重増加をもたらした。RSおよびFlx投与は、CORT処置マウスにおいて体重減少をもたらした。(1G)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を呈した。(1H)CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合に、EPMのオープンアームへの有意に少ない進入を有した。RS投与は、CORT処置マウスのEPMにおけるオープンアームへの進入数を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(1I)マウスの全群が、EPMにおいて類似の距離を移動した。(1J~1K)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、NSFにおける摂餌開始潜時を増加させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて摂餌開始潜時を減少させたが、Flx投与は減少させなかった。(1L)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、STにおける身繕い期間を減少させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて身繕い期間を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(n=9~14雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01;*** p<0.001;**** p<0.0001。VEH、ビヒクル;Veh、ビヒクル;CORT、コルチコステロン;Flx、フルオキセチン;RS、RS-67,333;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;ST、スプラッシュテスト;sec、秒;no、数;cm、センチメートル;g、グラム。 RS-67,333は、雄C57BL/6NTacマウスの神経内分泌モデルで誘導されたうつ様および不安様行動を防御する。(1A)実験計画。(1B)不安様行動(EPM、NSF)およびうつ様行動(ST)をテストするための行動アッセイ。(1C~1F)6週目までに、CORT投与は、VEH投与に比較した場合体重増加をもたらした。RSおよびFlx投与は、CORT処置マウスにおいて体重減少をもたらした。(1G)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を呈した。(1H)CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合に、EPMのオープンアームへの有意に少ない進入を有した。RS投与は、CORT処置マウスのEPMにおけるオープンアームへの進入数を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(1I)マウスの全群が、EPMにおいて類似の距離を移動した。(1J~1K)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、NSFにおける摂餌開始潜時を増加させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて摂餌開始潜時を減少させたが、Flx投与は減少させなかった。(1L)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、STにおける身繕い期間を減少させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて身繕い期間を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(n=9~14雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01;*** p<0.001;**** p<0.0001。VEH、ビヒクル;Veh、ビヒクル;CORT、コルチコステロン;Flx、フルオキセチン;RS、RS-67,333;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;ST、スプラッシュテスト;sec、秒;no、数;cm、センチメートル;g、グラム。 RS-67,333は、雄C57BL/6NTacマウスの神経内分泌モデルで誘導されたうつ様および不安様行動を防御する。(1A)実験計画。(1B)不安様行動(EPM、NSF)およびうつ様行動(ST)をテストするための行動アッセイ。(1C~1F)6週目までに、CORT投与は、VEH投与に比較した場合体重増加をもたらした。RSおよびFlx投与は、CORT処置マウスにおける体重減少をもたらした。(1G)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を呈した。(1H)CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合に、EPMのオープンアームへの有意に少ない進入を有した。RS投与は、CORT処置マウスのEPMにおけるオープンアームへの進入数を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(1I)マウスの全群が、EPMにおいて類似の距離を移動した。(1J~1K)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、NSFにおける摂餌開始潜時を増加させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて摂餌開始潜時を減少させたが、Flx投与は減少させなかった。(1L)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、STにおける身繕い期間を減少させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて身繕い期間を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(n=9~14雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01;*** p<0.001;**** p<0.0001。VEH、ビヒクル;Veh、ビヒクル;CORT、コルチコステロン;Flx、フルオキセチン;RS、RS-67,333;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;ST、スプラッシュテスト;sec、秒;no、数;cm、センチメートル;g、グラム。 RS-67,333は、雄C57BL/6NTacマウスの神経内分泌モデルで誘導されたうつ様および不安様行動を防御する。(1A)実験計画。(1B)不安様行動(EPM、NSF)およびうつ様行動(ST)をテストするための行動アッセイ。(1C~1F)6週目までに、CORT投与は、VEH投与に比較した場合体重増加をもたらした。RSおよびFlx投与は、CORT処置マウスにおける体重減少をもたらした。(1G)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を呈した。(1H)CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合に、EPMのオープンアームへの有意に少ない進入を有した。RS投与は、CORT処置マウスのEPMにおけるオープンアームへの進入数を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(1I)マウスの全群が、EPMにおいて類似の距離を移動した。(1J~1K)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、NSFにおける摂餌開始潜時を増加させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて摂餌開始潜時を減少させたが、Flx投与は減少させなかった。(1L)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、STにおける身繕い期間を減少させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて身繕い期間を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(n=9~14雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01;*** p<0.001;**** p<0.0001。VEH、ビヒクル;Veh、ビヒクル;CORT、コルチコステロン;Flx、フルオキセチン;RS、RS-67,333;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;ST、スプラッシュテスト;sec、秒;no、数;cm、センチメートル;g、グラム。 RS-67,333は、雄C57BL/6NTacマウスの神経内分泌モデルで誘導されたうつ様および不安様行動を防御する。(1A)実験計画。(1B)不安様行動(EPM、NSF)およびうつ様行動(ST)をテストするための行動アッセイ。(1C~1F)6週目までに、CORT投与は、VEH投与に比較した場合体重増加をもたらした。RSおよびFlx投与は、CORT処置マウスにおける体重減少をもたらした。(1G)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を呈した。(1H)CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合に、EPMのオープンアームへの有意に少ない進入を有した。RS投与は、CORT処置マウスのEPMにおけるオープンアームへの進入数を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(1I)マウスの全群が、EPMにおいて類似の距離を移動した。(1J~1K)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、NSFにおける摂餌開始潜時を増加させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて摂餌開始潜時を減少させたが、Flx投与は減少させなかった。(1L)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、STにおける身繕い期間を減少させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて身繕い期間を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(n=9~14雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01;*** p<0.001;**** p<0.0001。VEH、ビヒクル;Veh、ビヒクル;CORT、コルチコステロン;Flx、フルオキセチン;RS、RS-67,333;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;ST、スプラッシュテスト;sec、秒;no 数;cm、センチメートル;g、グラム。 RS-67,333は、雄C57BL/6NTacマウスの神経内分泌モデルで誘導されたうつ様および不安様行動を防御する。(1A)実験計画。(1B)不安様行動(EPM、NSF)およびうつ様行動(ST)をテストするための行動アッセイ。(1C~1F)6週目までに、CORT投与は、VEH投与に比較した場合体重増加をもたらした。RSおよびFlx投与は、CORT処置マウスにおける体重減少をもたらした。(1G)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を呈した。(1H)CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合に、EPMのオープンアームへの有意に少ない進入を有した。RS投与は、CORT処置マウスのEPMにおけるオープンアームへの進入数を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(1I)マウスの全群が、EPMにおいて類似の距離を移動した。(1J~1K)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、NSFにおける摂餌開始潜時を増加させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて摂餌開始潜時を減少させたが、Flx投与は減少させなかった。(1L)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、STにおける身繕い期間を減少させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて身繕い期間を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(n=9~14雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01;*** p<0.001;**** p<0.0001。VEH、ビヒクル;Veh、ビヒクル;CORT、コルチコステロン;Flx、フルオキセチン;RS、RS-67,333;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;ST、スプラッシュテスト;sec、秒;no、数;cm、センチメートル;g、グラム。 RS-67,333は、雄C57BL/6NTacマウスの神経内分泌モデルで誘導されたうつ様および不安様行動を防御する。(1A)実験計画。(1B)不安様行動(EPM、NSF)およびうつ様行動(ST)をテストするための行動アッセイ。(1C~1F)6週目までに、CORT投与は、VEH投与に比較した場合体重増加をもたらした。RSおよびFlx投与は、CORT処置マウスにおける体重減少をもたらした。(1G)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を呈した。(1H)CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合に、EPMのオープンアームへの有意に少ない進入を有した。RS投与は、CORT処置マウスのEPMにおけるオープンアームへの進入数を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(1I)マウスの全群が、EPMにおいて類似の距離を移動した。(1J~1K)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、NSFにおける摂餌開始潜時を増加させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて摂餌開始潜時を減少させたが、Flx投与は減少させなかった。(1L)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、STにおける身繕い期間を減少させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて身繕い期間を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(n=9~14雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01;*** p<0.001;**** p<0.0001。VEH、ビヒクル;Veh、ビヒクル;CORT、コルチコステロン;Flx、フルオキセチン;RS、RS-67,333;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;ST、スプラッシュテスト;sec、秒;no、数;cm、センチメートル;g、グラム。 RS-67,333は、雄C57BL/6NTacマウスの神経内分泌モデルで誘導されたうつ様および不安様行動を防御する。(1A)実験計画。(1B)不安様行動(EPM、NSF)およびうつ様行動(ST)をテストするための行動アッセイ。(1C~1F)6週目までに、CORT投与は、VEH投与に比較した場合体重増加をもたらした。RSおよびFlx投与は、CORT処置マウスにおける体重減少をもたらした。(1G)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を呈した。(1H)CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合に、EPMのオープンアームへの有意に少ない進入を有した。RS投与は、CORT処置マウスのEPMにおけるオープンアームへの進入数を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(1I)マウスの全群が、EPMにおいて類似の距離を移動した。(1J~1K)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、NSFにおける摂餌開始潜時を増加させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて摂餌開始潜時を減少させたが、Flx投与は減少させなかった。(1L)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、STにおける身繕い期間を減少させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて身繕い期間を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(n=9~14雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01;*** p<0.001;**** p<0.0001。VEH、ビヒクル;Veh、ビヒクル;CORT、コルチコステロン;Flx、フルオキセチン;RS、RS-67,333;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;ST、スプラッシュテスト;sec、秒;no、数;cm、センチメートル;g、グラム。 RS-67,333は、雄C57BL/6NTacマウスの神経内分泌モデルで誘導されたうつ様および不安様行動を防御する。(1A)実験計画。(1B)不安様行動(EPM、NSF)およびうつ様行動(ST)をテストするための行動アッセイ。(1C~1F)6週目までに、CORT投与は、VEH投与に比較した場合体重増加をもたらした。RSおよびFlx投与は、CORT処置マウスにおける体重減少をもたらした。(1G)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を呈した。(1H)CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合に、EPMのオープンアームへの有意に少ない進入を有した。RS投与は、CORT処置マウスのEPMにおけるオープンアームへの進入数を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(1I)マウスの全群が、EPMにおいて類似の距離を移動した。(1J~1K)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、NSFにおける摂餌開始潜時を増加させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて摂餌開始潜時を減少させたが、Flx投与は減少させなかった。(1L)CORT投与は、VEH投与に比較した場合に、STにおける身繕い期間を減少させた。RS投与は、CORT処置マウスにおいて身繕い期間を増加させたが、Flx投与は増加させなかった。(n=9~14雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01;*** p<0.001;**** p<0.0001。VEH、ビヒクル;Veh、ビヒクル;CORT、コルチコステロン;Flx、フルオキセチン;RS、RS-67,333;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;ST、スプラッシュテスト;sec、秒;no、数;cm、センチメートル;g、グラム。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防注射は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、新規に誘導された摂餌抑制を防止する。(2A)実験計画。(2B)30mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、CFC訓練中に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2C~2D)1.5または10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較した場合に、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2E)10mg/kgのRS-67,333を投与されたマウスは、FSTの1日目に生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合に、無動状態の低減を呈したが、1.5または30mg/kgのRS-67,333の投与では、呈しなかった。(2F~2G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(2H~2I)RS-67,333(10mg/kg)は、生理食塩水マウスに比較した場合に、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(2J~2K)マウスの両群は、同等の、EPMのオープンアームで過ごした時間、およびオープンアームへの進入を有した。(2L~2M)RS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスは、生理食塩水マウスに比較した場合に、有意に低減された摂餌開始潜時を呈した。(2N)両群のマウスは、NSF後にホームケージにおいて同等量の餌を食した。(2O)摂餌妨害後、両群のマウスは、同等量の体重を失った。(n=5~29雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム;no、数;cm、センチメートル。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 RS-67,333の単回予防投与は、雌129S6/SvEvマウスにおいて新規に誘導された食欲減退を防止するが、恐怖様またはうつ様行動を改変しない。(3A)実験計画。(3B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3C~3D)全群が、再暴露の際に同等レベルのすくみ行動を呈した。(3E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(3F~3G)マウスの全群が、FSTの2日目に同等量の無動状態を有した。(3H~3I)RS-67,333は、移動距離またはOFの中央で過ごした時間を改変しなかった。(3J)EPMのオープンアームで過ごした時間は、マウスの全群で同等であった。(3K)EPMのオープンアームへの進入は、マウスの全群で同等であった。(3L~3M)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、NSFにおける摂餌開始潜時を有意に低減した。(3N)RS-67,333の単回予防用量(10mg/kg)は、ホームケージで食した餌の量または(3O)体重を改変しなかった。(n=6~11雌マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;*** p<0.001。Sal、生理食塩水:CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;g、グラム;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防投与は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させる。(4A)実験計画。(4B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(4C~4D)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)の投与は、生理食塩水投与に比較した場合に学習された恐怖を減弱したが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)の投与は、減弱しなかった。(4E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(4F~4G)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)は、FSTの2日目に無動時間を有意に減少させたが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)は、減少させなかった。(4H)マウスの全群が、OFにおいて同等量の距離を移動した。(4I)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を過ごした。(4J)マウスの全群が、EPMのオープンアームへの同等数の進入を有した。(4K~4L)マウスの全群が、NSFにおいてペレットへの同等の接近潜時を有した。(4M)マウスの全群が、NSFのための摂餌妨害後に同等量の体重を失った。(n=5~10雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01。*** p<0.001。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal プルカロプリド;PF PF-04995274;CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防投与は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させる。(4A)実験計画。(4B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(4C~4D)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)の投与は、生理食塩水投与に比較した場合に学習された恐怖を減弱したが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)の投与は、減弱しなかった。(4E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(4F~4G)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)は、FSTの2日目に無動時間を有意に減少させたが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)は、減少させなかった。(4H)マウスの全群が、OFにおいて同等量の距離を移動した。(4I)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を過ごした。(4J)マウスの全群が、EPMのオープンアームへの同等数の進入を有した。(4K~4L)マウスの全群が、NSFにおいてペレットへの同等の接近潜時を有した。(4M)マウスの全群が、NSFのための摂餌妨害後に同等量の体重を失った。(n=5~10雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01。*** p<0.001。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;PF、PF-04995274;CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防投与は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させる。(4A)実験計画。(4B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(4C~4D)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)の投与は、生理食塩水投与に比較した場合に学習された恐怖を減弱したが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)の投与は、減弱しなかった。(4E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(4F~4G)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)は、FSTの2日目に無動時間を有意に減少させたが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)は、減少させなかった。(4H)マウスの全群が、OFにおいて同等量の距離を移動した。(4I)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を過ごした。(4J)マウスの全群が、EPMのオープンアームへの同等数の進入を有した。(4K~4L)マウスの全群が、NSFにおいてペレットへの同等の接近潜時を有した。(4M)マウスの全群が、NSFのための摂餌妨害後に同等量の体重を失った。(n=5~10雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01。*** p<0.001。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;PF、PF-04995274;CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防投与は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させる。(4A)実験計画。(4B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(4C~4D)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)の投与は、生理食塩水投与に比較した場合に学習された恐怖を減弱したが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)の投与は、減弱しなかった。(4E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(4F~4G)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)は、FSTの2日目に無動時間を有意に減少させたが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)は、減少させなかった。(4H)マウスの全群が、OFにおいて同等量の距離を移動した。(4I)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を過ごした。(4J)マウスの全群が、EPMのオープンアームへの同等数の進入を有した。(4K~4L)マウスの全群が、NSFにおいてペレットへの同等の接近潜時を有した。(4M)マウスの全群が、NSFのための摂餌妨害後に同等量の体重を失った。(n=5~10雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01。*** p<0.001。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;PF、PF-04995274;CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防投与は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させる。(4A)実験計画。(4B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(4C~4D)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)の投与は、生理食塩水投与に比較した場合に学習された恐怖を減弱したが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)の投与は、減弱しなかった。(4E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(4F~4G)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)は、FSTの2日目に無動時間を有意に減少させたが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)は、減少させなかった。(4H)マウスの全群が、OFにおいて同等量の距離を移動した。(4I)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を過ごした。(4J)マウスの全群が、EPMのオープンアームへの同等数の進入を有した。(4K~4L)マウスの全群が、NSFにおいてペレットへの同等の接近潜時を有した。(4M)マウスの全群が、NSFのための摂餌妨害後に同等量の体重を失った。(n=5~10雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01。*** p<0.001。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;PF、PF-04995274;CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防投与は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させる。(4A)実験計画。(4B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(4C~4D)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)の投与は、生理食塩水投与に比較した場合に学習された恐怖を減弱したが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)の投与は、減弱しなかった。(4E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(4F~4G)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)は、FSTの2日目に無動時間を有意に減少させたが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)は、減少させなかった。(4H)マウスの全群が、OFにおいて同等量の距離を移動した。(4I)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を過ごした。(4J)マウスの全群が、EPMのオープンアームへの同等数の進入を有した。(4K~4L)マウスの全群が、NSFにおいてペレットへの同等の接近潜時を有した。(4M)マウスの全群が、NSFのための摂餌妨害後に同等量の体重を失った。(n=5~10雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01。*** p<0.001。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;PF、PF-04995274;CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防投与は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させる。(4A)実験計画。(4B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(4C~4D)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)の投与は、生理食塩水投与に比較した場合に学習された恐怖を減弱したが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)の投与は、減弱しなかった。(4E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(4F~4G)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)は、FSTの2日目に無動時間を有意に減少させたが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)は、減少させなかった。(4H)マウスの全群が、OFにおいて同等量の距離を移動した。(4I)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を過ごした。(4J)マウスの全群が、EPMのオープンアームへの同等数の進入を有した。(4K~4L)マウスの全群が、NSFにおいてペレットへの同等の接近潜時を有した。(4M)マウスの全群が、NSFのための摂餌妨害後に同等量の体重を失った。(n=5~10雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01。*** p<0.001。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;PF、PF-04995274;CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防投与は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させる。(4A)実験計画。(4B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(4C~4D)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)の投与は、生理食塩水投与に比較した場合に学習された恐怖を減弱したが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)の投与は、減弱しなかった。(4E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(4F~4G)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)は、FSTの2日目に無動時間を有意に減少させたが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)は、減少させなかった。(4H)マウスの全群が、OFにおいて同等量の距離を移動した。(4I)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を過ごした。(4J)マウスの全群が、EPMのオープンアームへの同等数の進入を有した。(4K~4L)マウスの全群が、NSFにおいてペレットへの同等の接近潜時を有した。(4M)マウスの全群が、NSFのための摂餌妨害後に同等量の体重を失った。(n=5~10雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01。*** p<0.001。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;PF、PF-04995274;CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防投与は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させる。(4A)実験計画。(4B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(4C~4D)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)の投与は、生理食塩水投与に比較した場合に学習された恐怖を減弱したが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)の投与は、減弱しなかった。(4E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(4F~4G)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)は、FSTの2日目に無動時間を有意に減少させたが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)は、減少させなかった。(4H)マウスの全群が、OFにおいて同等量の距離を移動した。(4I)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を過ごした。(4J)マウスの全群が、EPMのオープンアームへの同等数の進入を有した。(4K~4L)マウスの全群が、NSFにおいてペレットへの同等の接近潜時を有した。(4M)マウスの全群が、NSFのための摂餌妨害後に同等量の体重を失った。(n=5~10雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01。*** p<0.001。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;PF、PF-04995274;CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防投与は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させる。(4A)実験計画。(4B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(4C~4D)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)の投与は、生理食塩水投与に比較した場合に学習された恐怖を減弱したが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)の投与は、減弱しなかった。(4E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(4F~4G)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)は、FSTの2日目に無動時間を有意に減少させたが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)は、減少させなかった。(4H)マウスの全群が、OFにおいて同等量の距離を移動した。(4I)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を過ごした。(4J)マウスの全群が、EPMのオープンアームへの同等数の進入を有した。(4K~4L)マウスの全群が、NSFにおいてペレットへの同等の接近潜時を有した。(4M)マウスの全群が、NSFのための摂餌妨害後に同等量の体重を失った。(n=5~10雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01。*** p<0.001。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;PF、PF-04995274;CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防投与は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させる。(4A)実験計画。(4B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(4C~4D)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)の投与は、生理食塩水投与に比較した場合に学習された恐怖を減弱したが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)の投与は、減弱しなかった。(4E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(4F~4G)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)は、FSTの2日目に無動時間を有意に減少させたが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)は、減少させなかった。(4H)マウスの全群が、OFにおいて同等量の距離を移動した。(4I)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を過ごした。(4J)マウスの全群が、EPMのオープンアームへの同等数の進入を有した。(4K~4L)マウスの全群が、NSFにおいてペレットへの同等の接近潜時を有した。(4M)マウスの全群が、NSFのための摂餌妨害後に同等量の体重を失った。(n=5~10雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01。*** p<0.001。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;PF、PF-04995274;CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防投与は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させる。(4A)実験計画。(4B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(4C~4D)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)の投与は、生理食塩水投与に比較した場合に学習された恐怖を減弱したが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)の投与は、減弱しなかった。(4E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(4F~4G)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)は、FSTの2日目に無動時間を有意に減少させたが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)は、減少させなかった。(4H)マウスの全群が、OFにおいて同等量の距離を移動した。(4I)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を過ごした。(4J)マウスの全群が、EPMのオープンアームへの同等数の進入を有した。(4K~4L)マウスの全群が、NSFにおいてペレットへの同等の接近潜時を有した。(4M)マウスの全群が、NSFのための摂餌妨害後に同等量の体重を失った。(n=5~10雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01。*** p<0.001。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;PF、PF-04995274;CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防投与は、雄129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させる。(4A)実験計画。(4B)全てのマウスが、CFC訓練中に同等レベルのすくみ行動を呈した。(4C~4D)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)の投与は、生理食塩水投与に比較した場合に学習された恐怖を減弱したが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)の投与は、減弱しなかった。(4E)マウスの全群が、FSTの1日目に同等量の無動状態を有した。(4F~4G)(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3mg/kg)、およびPF-04995274(10mg/kg)は、FSTの2日目に無動時間を有意に減少させたが、プルカロプリド(10mg/kg)またはPF-04995274(3mg/kg)は、減少させなかった。(4H)マウスの全群が、OFにおいて同等量の距離を移動した。(4I)マウスの全群が、EPMのオープンアームにおいて同等量の時間を過ごした。(4J)マウスの全群が、EPMのオープンアームへの同等数の進入を有した。(4K~4L)マウスの全群が、NSFにおいてペレットへの同等の接近潜時を有した。(4M)マウスの全群が、NSFのための摂餌妨害後に同等量の体重を失った。(n=5~10雄マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。p<0.05;** p<0.01。*** p<0.001。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;PF、PF-04995274;CFC、文脈的恐怖条件づけ;FST、強制水泳テスト;OF、オープンフィールド;EPM、高架式十字迷路;NSF、新規環境による摂餌抑制;min、分;sec、秒;cm、センチメートル;no、数;mg、ミリグラム;kg、キログラム。 (R,S)-ケタミンおよびプルカロプリドは、CA3における大きなAMPA駆動性シナプスバーストを低減することによる共通機序を呈する。(5A)実験計画。(5B)平均EPSC振幅は、群間で異ならなかった。(5C)EPSCの平均数(20秒の記録枠内)は、群間で異ならなかった。(5D)生理食塩水処置マウスは、典型的にはEPSCの大きなバーストを呈し(-590.8±13.85pA)、それはAMPA受容体アンタゴニストNBQXにより遮断された。これらの大きなAMPA受容体介在性シグナルは、(5E)(R,S)-ケタミン処置マウスまたは(5F)プルカロプリド処置マウスのどちらにも存在しなかった。(n=5~7マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;CA3、アンモン角3;pA、ピコアンペア;EPSC、興奮性シナプス後電流;no、数;00NBQX、2,3-ジヒドロキシ-6-ニトロ-7-スルファモイル-ベンゾ[f]キノキサリン;mg、ミリグラム;kg、キログラム;ms、ミリ秒。 (R,S)-ケタミンおよびプルカロプリドは、CA3における大きなAMPA駆動性シナプスバーストを低減することによる共通機序を呈する。(5A)実験計画。(5B)平均EPSC振幅は、群間で異ならなかった。(5C)EPSCの平均数(20秒の記録枠内)は、群間で異ならなかった。(5D)生理食塩水処置マウスは、典型的にはEPSCの大きなバーストを呈し(-590.8±13.85pA)、それはAMPA受容体アンタゴニストNBQXにより遮断された。これらの大きなAMPA受容体介在性シグナルは、(5E)(R,S)-ケタミン処置マウスまたは(5F)プルカロプリド処置マウスのどちらにも存在しなかった。(n=5~7マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;CA3、アンモン角3;pA、ピコアンペア;EPSC、興奮性シナプス後電流;no、数;00NBQX、2,3-ジヒドロキシ-6-ニトロ-7-スルファモイル-ベンゾ[f]キノキサリン;mg、ミリグラム;kg、キログラム;ms、ミリ秒。 (R,S)-ケタミンおよびプルカロプリドは、CA3における大きなAMPA駆動性シナプスバーストを低減することによる共通機序を呈する。(5A)実験計画。(5B)平均EPSC振幅は、群間で異ならなかった。(5C)EPSCの平均数(20秒の記録枠内)は、群間で異ならなかった。(5D)生理食塩水処置マウスは、典型的にはEPSCの大きなバーストを呈し(-590.8±13.85pA)、それはAMPA受容体アンタゴニストNBQXにより遮断された。これらの大きなAMPA受容体介在性シグナルは、(5E)(R,S)-ケタミン処置マウスまたは(5F)プルカロプリド処置マウスのどちらにも存在しなかった。(n=5~7マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;CA3、アンモン角3;pA、ピコアンペア;EPSC、興奮性シナプス後電流;no、数;00NBQX、2,3-ジヒドロキシ-6-ニトロ-7-スルファモイル-ベンゾ[f]キノキサリン;mg、ミリグラム;kg、キログラム;ms、ミリ秒。 (R,S)-ケタミンおよびプルカロプリドは、CA3における大きなAMPA駆動性シナプスバーストを低減することによる共通機序を呈する。(5A)実験計画。(5B)平均EPSC振幅は、群間で異ならなかった。(5C)EPSCの平均数(20秒の記録枠内)は、群間で異ならなかった。(5D)生理食塩水処置マウスは、典型的にはEPSCの大きなバーストを呈し(-590.8±13.85pA)、それはAMPA受容体アンタゴニストNBQXにより遮断された。これらの大きなAMPA受容体介在性シグナルは、(5E)(R,S)-ケタミン処置マウスまたは(5F)プルカロプリド処置マウスのどちらにも存在しなかった。(n=5~7マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;CA3、アンモン角3;pA、ピコアンペア;EPSC、興奮性シナプス後電流;no、数;00NBQX、2,3-ジヒドロキシ-6-ニトロ-7-スルファモイル-ベンゾ[f]キノキサリン;mg、ミリグラム;kg、キログラム;ms、ミリ秒。 (R,S)-ケタミンおよびプルカロプリドは、CA3における大きなAMPA駆動性シナプスバーストを低減することによる共通機序を呈する。(5A)実験計画。(5B)平均EPSC振幅は、群間で異ならなかった。(5C)EPSCの平均数(20秒の記録枠内)は、群間で異ならなかった。(5D)生理食塩水処置マウスは、典型的にはEPSCの大きなバーストを呈し(-590.8±13.85pA)、それはAMPA受容体アンタゴニストNBQXにより遮断された。これらの大きなAMPA受容体介在性シグナルは、(5E)(R,S)-ケタミン処置マウスまたは(5F)プルカロプリド処置マウスのどちらにも存在しなかった。(n=5~7マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;CA3、アンモン角3;pA、ピコアンペア;EPSC、興奮性シナプス後電流;no、数;00NBQX、2,3-ジヒドロキシ-6-ニトロ-7-スルファモイル-ベンゾ[f]キノキサリン;mg、ミリグラム;kg、キログラム;ms、ミリ秒。 (R,S)-ケタミンおよびプルカロプリドは、CA3における大きなAMPA駆動性シナプスバーストを低減することによる共通機序を呈する。(5A)実験計画。(5B)平均EPSC振幅は、群間で異ならなかった。(5C)EPSCの平均数(20秒の記録枠内)は、群間で異ならなかった。(5D)生理食塩水処置マウスは、典型的にはEPSCの大きなバーストを呈し(-590.8±13.85pA)、それはAMPA受容体アンタゴニストNBQXにより遮断された。これらの大きなAMPA受容体介在性シグナルは、(5E)(R,S)-ケタミン処置マウスまたは(5F)プルカロプリド処置マウスのどちらにも存在しなかった。(n=5~7マウス/群)。エラーバーは、±SEMを表す。Sal、生理食塩水:K、(R,S)-ケタミン;Prucal、プルカロプリド;CA3、アンモン角3;pA、ピコアンペア;EPSC、興奮性シナプス後電流;no、数;00NBQX、2,3-ジヒドロキシ-6-ニトロ-7-スルファモイル-ベンゾ[f]キノキサリン;mg、ミリグラム;kg、キログラム;ms、ミリ秒。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統において速効性抗不安様効果を誘導する。(6A、6B)実験計画。(6A)第一の動物コホートでは、ビヒクル(V)、フルオキセチン(F、18mg/kg)、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)、またはRS67333(RS、1.5mg/kg)を、行動テストの45分前に腹腔内(i.p.)注射を介して投与した。(6B)第二の動物コホートでは、行動パラダイム開始の45分前に、処置(VまたはRS、0.5μg/側)を、内側前頭前野(mPFC)に輸注し、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)を、i.p.注射を介して投与した。(6C~6Dおよび6G~6H)抗不安様効果を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(6C、6Dおよびインセット)、またはオープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率として(6D、6H)、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定した。(全身および局所注射試験で、それぞれn=10マウス/群およびn=5~9マウス/群)。(6E~6Fおよび6I~6J)新規環境による摂餌抑制(NSF)パラダイムにおいて、抗不安様効果を、10分にわたり食べなかった動物の分率として(6E、6I)、餌消費量の平均として(インセット)、または摂餌開始潜時の平均として(6F、6J)表す。(n=10マウス/群、n=4~8マウス/群)。(6C~6Dおよび6E~6F)全身投与。(6G~6Hおよび6I~6J)局所投与。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05;** p<0.01 vs.ビヒクル。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統において速効性抗不安様効果を誘導する。(6A、6B)実験計画。(6A)第一の動物コホートでは、ビヒクル(V)、フルオキセチン(F、18mg/kg)、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)、またはRS67333(RS、1.5mg/kg)を、行動テストの45分前に腹腔内(i.p.)注射を介して投与した。(6B)第二の動物コホートでは、行動パラダイム開始の45分前に、処置(VまたはRS、0.5μg/側)を、内側前頭前野(mPFC)に輸注し、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)を、i.p.注射を介して投与した。(6C~6Dおよび6G~6H)抗不安様効果を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(6C、6Dおよびインセット)、またはオープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率として(6D、6H)、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定した。(全身および局所注射試験で、それぞれn=10マウス/群およびn=5~9マウス/群)。(6E~6Fおよび6I~6J)新規環境による摂餌抑制(NSF)パラダイムにおいて、抗不安様効果を、10分にわたり食べなかった動物の分率として(6E、6I)、餌消費量の平均として(インセット)、または摂餌開始潜時の平均として(6F、6J)表す。(n=10マウス/群、n=4~8マウス/群)。(6C~6Dおよび6E~6F)全身投与。(6G~6Hおよび6I~6J)局所投与。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05;** p<0.01 vs.ビヒクル。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統において速効性抗不安様効果を誘導する。(6A、6B)実験計画。(6A)第一の動物コホートでは、ビヒクル(V)、フルオキセチン(F、18mg/kg)、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)、またはRS67333(RS、1.5mg/kg)を、行動テストの45分前に腹腔内(i.p.)注射を介して投与した。(6B)第二の動物コホートでは、行動パラダイム開始の45分前に、処置(VまたはRS、0.5μg/側)を、内側前頭前野(mPFC)に輸注し、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)を、i.p.注射を介して投与した。(6C~6Dおよび6G~6H)抗不安様効果を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(6C、6Dおよびインセット)、またはオープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率として(6D、6H)、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定した。(全身および局所注射試験で、それぞれn=10マウス/群およびn=5~9マウス/群)。(6E~6Fおよび6I~6J)新規環境による摂餌抑制(NSF)パラダイムにおいて、抗不安様効果を、10分にわたり食べなかった動物の分率として(6E、6I)、餌消費量の平均として(インセット)、または摂餌開始潜時の平均として(6F、6J)表す。(n=10マウス/群、n=4~8マウス/群)。(6C~6Dおよび6E~6F)全身投与。(6G~6Hおよび6I~6J)局所投与。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05;** p<0.01 vs.ビヒクル。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統において速効性抗不安様効果を誘導する。(6A、6B)実験計画。(6A)第一の動物コホートでは、ビヒクル(V)、フルオキセチン(F、18mg/kg)、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)、またはRS67333(RS、1.5mg/kg)を、行動テストの45分前に腹腔内(i.p.)注射を介して投与した。(6B)第二の動物コホートでは、行動パラダイム開始の45分前に、処置(VまたはRS、0.5μg/側)を、内側前頭前野(mPFC)に輸注し、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)を、i.p.注射を介して投与した。(6C~6Dおよび6G~6H)抗不安様効果を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(6C、6Dおよびインセット)、またはオープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率として(6D、6H)、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定した。(全身および局所注射試験で、それぞれn=10マウス/群およびn=5~9マウス/群)。(6E~6Fおよび6I~6J)新規環境による摂餌抑制(NSF)パラダイムにおいて、抗不安様効果を、10分にわたり食べなかった動物の分率として(6E、6I)、餌消費量の平均として(インセット)、または摂餌開始潜時の平均として(6F、6J)表す。(n=10マウス/群、n=4~8マウス/群)。(6C~6Dおよび6E~6F)全身投与。(6G~6Hおよび6I~6J)局所投与。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05;** p<0.01 vs.ビヒクル。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統において速効性抗不安様効果を誘導する。(6A、6B)実験計画。(6A)第一の動物コホートでは、ビヒクル(V)、フルオキセチン(F、18mg/kg)、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)、またはRS67333(RS、1.5mg/kg)を、行動テストの45分前に腹腔内(i.p.)注射を介して投与した。(6B)第二の動物コホートでは、行動パラダイム開始の45分前に、処置(VまたはRS、0.5μg/側)を、内側前頭前野(mPFC)に輸注し、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)を、i.p.注射を介して投与した。(6C~6Dおよび6G~6H)抗不安様効果を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(6C、6Dおよびインセット)、またはオープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率として(6D、6H)、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定した。(全身および局所注射試験で、それぞれn=10マウス/群およびn=5~9マウス/群)。(6E~6Fおよび6I~6J)新規環境による摂餌抑制(NSF)パラダイムにおいて、抗不安様効果を、10分にわたり食べなかった動物の分率として(6E、6I)、餌消費量の平均として(インセット)、または摂餌開始潜時の平均として(6F、6J)表す。(n=10マウス/群、n=4~8マウス/群)。(6C~6Dおよび6E~6F)全身投与。(6G~6Hおよび6I~6J)局所投与。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05;** p<0.01 vs.ビヒクル。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統において速効性抗不安様効果を誘導する。(6A、6B)実験計画。(6A)第一の動物コホートでは、ビヒクル(V)、フルオキセチン(F、18mg/kg)、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)、またはRS67333(RS、1.5mg/kg)を、行動テストの45分前に腹腔内(i.p.)注射を介して投与した。(6B)第二の動物コホートでは、行動パラダイム開始の45分前に、処置(VまたはRS、0.5μg/側)を、内側前頭前野(mPFC)に輸注し、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)を、i.p.注射を介して投与した。(6C~6Dおよび6G~6H)抗不安様効果を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(6C、6Dおよびインセット)、またはオープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率として(6D、6H)、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定した。(全身および局所注射試験で、それぞれn=10マウス/群およびn=5~9マウス/群)。(6E~6Fおよび6I~6J)新規環境による摂餌抑制(NSF)パラダイムにおいて、抗不安様効果を、10分にわたり食べなかった動物の分率として(6E、6I)、餌消費量の平均として(インセット)、または摂餌開始潜時の平均として(6F、6J)表す。(n=10マウス/群、n=4~8マウス/群)。(6C~6Dおよび6E~6F)全身投与。(6G~6Hおよび6I~6J)局所投与。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05;** p<0.01 vs.ビヒクル。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統において速効性抗不安様効果を誘導する。(6A、6B)実験計画。(6A)第一の動物コホートでは、ビヒクル(V)、フルオキセチン(F、18mg/kg)、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)、またはRS67333(RS、1.5mg/kg)を、行動テストの45分前に腹腔内(i.p.)注射を介して投与した。(6B)第二の動物コホートでは、行動パラダイム開始の45分前に、処置(VまたはRS、0.5μg/側)を、内側前頭前野(mPFC)に輸注し、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)を、i.p.注射を介して投与した。(6C~6Dおよび6G~6H)抗不安様効果を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(6C、6Dおよびインセット)、またはオープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率として(6D、6H)、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定した。(全身および局所注射試験で、それぞれn=10マウス/群およびn=5~9マウス/群)。(6E~6Fおよび6I~6J)新規環境による摂餌抑制(NSF)パラダイムにおいて、抗不安様効果を、10分にわたり食べなかった動物の分率として(6E、6I)、餌消費量の平均として(インセット)、または摂餌開始潜時の平均として(6F、6J)表す。(n=10マウス/群、n=4~8マウス/群)。(6C~6Dおよび6E~6F)全身投与。(6G~6Hおよび6I~6J)局所投与。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05;** p<0.01 vs.ビヒクル。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統において速効性抗不安様効果を誘導する。(6A、6B)実験計画。(6A)第一の動物コホートでは、ビヒクル(V)、フルオキセチン(F、18mg/kg)、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)、またはRS67333(RS、1.5mg/kg)を、行動テストの45分前に腹腔内(i.p.)注射を介して投与した。(6B)第二の動物コホートでは、行動パラダイム開始の45分前に、処置(VまたはRS、0.5μg/側)を、内側前頭前野(mPFC)に輸注し、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)を、i.p.注射を介して投与した。(6C~6Dおよび6G~6H)抗不安様効果を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(6C、6Dおよびインセット)、またはオープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率として(6D、6H)、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定した。(全身および局所注射試験で、それぞれn=10マウス/群およびn=5~9マウス/群)。(6E~6Fおよび6I~6J)新規環境による摂餌抑制(NSF)パラダイムにおいて、抗不安様効果を、10分にわたり食べなかった動物の分率として(6E、6I)、餌消費量の平均として(インセット)、または摂餌開始潜時の平均として(6F、6J)表す。(n=10マウス/群、n=4~8マウス/群)。(6C~6Dおよび6E~6F)全身投与。(6G~6Hおよび6I~6J)局所投与。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05;** p<0.01 vs.ビヒクル。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統において速効性抗不安様効果を誘導する。(6A、6B)実験計画。(6A)第一の動物コホートでは、ビヒクル(V)、フルオキセチン(F、18mg/kg)、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)、またはRS67333(RS、1.5mg/kg)を、行動テストの45分前に腹腔内(i.p.)注射を介して投与した。(6B)第二の動物コホートでは、行動パラダイム開始の45分前に、処置(VまたはRS、0.5μg/側)を、内側前頭前野(mPFC)に輸注し、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)を、i.p.注射を介して投与した。(6C~6Dおよび6G~6H)抗不安様効果を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(6C、6Dおよびインセット)、またはオープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率として(6D、6H)、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定した。(全身および局所注射試験で、それぞれn=10マウス/群およびn=5~9マウス/群)。(6E~6Fおよび6I~6J)新規環境による摂餌抑制(NSF)パラダイムにおいて、抗不安様効果を、10分にわたり食べなかった動物の分率として(6E、6I)、餌消費量の平均として(インセット)、または摂餌開始潜時の平均として(6F、6J)表す。(n=10マウス/群、n=4~8マウス/群)。(6C~6Dおよび6E~6F)全身投与。(6G~6Hおよび6I~6J)局所投与。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05;** p<0.01 vs.ビヒクル。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統において速効性抗不安様効果を誘導する。(6A、6B)実験計画。(6A)第一の動物コホートでは、ビヒクル(V)、フルオキセチン(F、18mg/kg)、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)、またはRS67333(RS、1.5mg/kg)を、行動テストの45分前に腹腔内(i.p.)注射を介して投与した。(6B)第二の動物コホートでは、行動パラダイム開始の45分前に、処置(VまたはRS、0.5μg/側)を、内側前頭前野(mPFC)に輸注し、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)を、i.p.注射を介して投与した。(6C~6Dおよび6G~6H)抗不安様効果を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(6C、6Dおよびインセット)、またはオープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率として(6D、6H)、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定した。(全身および局所注射試験で、それぞれn=10マウス/群およびn=5~9マウス/群)。(6E~6Fおよび6I~6J)新規環境による摂餌抑制(NSF)パラダイムにおいて、抗不安様効果を、10分にわたり食べなかった動物の分率として(6E、6I)、餌消費量の平均として(インセット)、または摂餌開始潜時の平均として(6F、6J)表す。(n=10マウス/群、n=4~8マウス/群)。(6C~6Dおよび6E~6F)全身投与。(6G~6Hおよび6I~6J)局所投与。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05;** p<0.01 vs.ビヒクル。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統においてmPFCのモジュレーションを通して5HT機能への速効性抗不安様効果を誘導する。(7A)RS67333(RS、1.5mg/kg)の投与前に、異なるトラックを実施して、30分間5-HTニューロンを記録した。この期間の終了時に、RS67333をi.p.投与し、30分後に、2または3回の続くトラックを、実現した。(7B)DRN 5-HTニューロンの発火周波数を、平均発火頻度として評定する。テストされたニューロン数を、各ヒストグラムに示す(合計でn=5マウスへのRS注射前および後にn=25および26)。データは、RS67333の投与前に決定されたDRN 5-HTニューロンの平均±周波数(Hz)である。(7C)異なる実験条件でのDRN 5-HTニューロンの典型的な記録。上のパネルのヒストグラムは、10秒あたりの活動電位数(AP)を表す(スケールバー)。下のパネルは、両条件でのセロトニン作動性ニューロンの、特徴がはっきりした規則的発火を表す。** p<0.01 vs.RS67333投与前。(7D)p-CPAを、3日間に1日2回、i.p.注射し、処置[ビヒクル(V)、ジアゼパム(D、1.5μg/側)およびRS(0.5μg/側)]を、内側前頭前野(mPFC)への最終p-CPA投与の24時間後および行動パラダイム開始の45分前に輸注した。(7E)p-CPA前処置による皮質5-HT枯渇を、平均5-HTレベルとして測定する(n=6~8マウス/群)。(7Fおよび7G)不安症を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(Fおよびインセット)、オープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率(7G)として、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定する(n=8~11マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群、p<0.05、##p<0.01 vs.適当な群。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統においてmPFCのモジュレーションを通して5HT機能への速効性抗不安様効果を誘導する。(7A)RS67333(RS、1.5mg/kg)の投与前に、異なるトラックを実施して、30分間5-HTニューロンを記録した。この期間の終了時に、RS67333をi.p.投与し、30分後に、2または3回の続くトラックを、実現した。(7B)DRN 5-HTニューロンの発火周波数を、平均発火頻度として評定する。テストされたニューロン数を、各ヒストグラムに示す(合計でn=5マウスへのRS注射前および後にn=25および26)。データは、RS67333の投与前に決定されたDRN 5-HTニューロンの平均±周波数(Hz)である。(7C)異なる実験条件でのDRN 5-HTニューロンの典型的な記録。上のパネルのヒストグラムは、10秒あたりの活動電位数(AP)を表す(スケールバー)。下のパネルは、両条件でのセロトニン作動性ニューロンの、特徴がはっきりした規則的発火を表す。** p<0.01 vs.RS67333投与前。(7D)p-CPAを、3日間に1日2回、i.p.注射し、処置[ビヒクル(V)、ジアゼパム(D、1.5μg/側)およびRS(0.5μg/側)]を、内側前頭前野(mPFC)への最終p-CPA投与の24時間後および行動パラダイム開始の45分前に輸注した。(7E)p-CPA前処置による皮質5-HT枯渇を、平均5-HTレベルとして測定する(n=6~8マウス/群)。(7Fおよび7G)不安症を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(Fおよびインセット)、オープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率(7G)として、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定する(n=8~11マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群、p<0.05、##p<0.01 vs.適当な群。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統においてmPFCのモジュレーションを通して5HT機能への速効性抗不安様効果を誘導する。(7A)RS67333(RS、1.5mg/kg)の投与前に、異なるトラックを実施して、30分間5-HTニューロンを記録した。この期間の終了時に、RS67333をi.p.投与し、30分後に、2または3回の続くトラックを、実現した。(7B)DRN 5-HTニューロンの発火周波数を、平均発火頻度として評定する。テストされたニューロン数を、各ヒストグラムに示す(合計でn=5マウスへのRS注射前および後にn=25および26)。データは、RS67333の投与前に決定されたDRN 5-HTニューロンの平均±周波数(Hz)である。(7C)異なる実験条件でのDRN 5-HTニューロンの典型的な記録。上のパネルのヒストグラムは、10秒あたりの活動電位数(AP)を表す(スケールバー)。下のパネルは、両条件でのセロトニン作動性ニューロンの、特徴がはっきりした規則的発火を表す。** p<0.01 vs.RS67333投与前。(7D)p-CPAを、3日間に1日2回、i.p.注射し、処置[ビヒクル(V)、ジアゼパム(D、1.5μg/側)およびRS(0.5μg/側)]を、内側前頭前野(mPFC)への最終p-CPA投与の24時間後および行動パラダイム開始の45分前に輸注した。(7E)p-CPA前処置による皮質5-HT枯渇を、平均5-HTレベルとして測定する(n=6~8マウス/群)。(7Fおよび7G)不安症を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(Fおよびインセット)、オープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率(7G)として、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定する(n=8~11マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群、p<0.05、##p<0.01 vs.適当な群。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統においてmPFCのモジュレーションを通して5HT機能への速効性抗不安様効果を誘導する。(7A)RS67333(RS、1.5mg/kg)の投与前に、異なるトラックを実施して、30分間5-HTニューロンを記録した。この期間の終了時に、RS67333をi.p.投与し、30分後に、2または3回の続くトラックを、実現した。(7B)DRN 5-HTニューロンの発火周波数を、平均発火頻度として評定する。テストされたニューロン数を、各ヒストグラムに示す(合計でn=5マウスへのRS注射前および後にn=25および26)。データは、RS67333の投与前に決定されたDRN 5-HTニューロンの平均±周波数(Hz)である。(7C)異なる実験条件でのDRN 5-HTニューロンの典型的な記録。上のパネルのヒストグラムは、10秒あたりの活動電位数(AP)を表す(スケールバー)。下のパネルは、両条件でのセロトニン作動性ニューロンの、特徴がはっきりした規則的発火を表す。** p<0.01 vs.RS67333投与前。(7D)p-CPAを、3日間に1日2回、i.p.注射し、処置[ビヒクル(V)、ジアゼパム(D、1.5μg/側)およびRS(0.5μg/側)]を、内側前頭前野(mPFC)への最終p-CPA投与の24時間後および行動パラダイム開始の45分前に輸注した。(7E)p-CPA前処置による皮質5-HT枯渇を、平均5-HTレベルとして測定する(n=6~8マウス/群)。(7Fおよび7G)不安症を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(Fおよびインセット)、オープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率(7G)として、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定する(n=8~11マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群、p<0.05、##p<0.01 vs.適当な群。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統においてmPFCのモジュレーションを通して5HT機能への速効性抗不安様効果を誘導する。(7A)RS67333(RS、1.5mg/kg)の投与前に、異なるトラックを実施して、30分間5-HTニューロンを記録した。この期間の終了時に、RS67333をi.p.投与し、30分後に、2または3回の続くトラックを、実現した。(7B)DRN 5-HTニューロンの発火周波数を、平均発火頻度として評定する。テストされたニューロン数を、各ヒストグラムに示す(合計でn=5マウスへのRS注射前および後にn=25および26)。データは、RS67333の投与前に決定されたDRN 5-HTニューロンの平均±周波数(Hz)である。(7C)異なる実験条件でのDRN 5-HTニューロンの典型的な記録。上のパネルのヒストグラムは、10秒あたりの活動電位数(AP)を表す(スケールバー)。下のパネルは、両条件でのセロトニン作動性ニューロンの、特徴がはっきりした規則的発火を表す。** p<0.01 vs.RS67333投与前。(7D)p-CPAを、3日間に1日2回、i.p.注射し、処置[ビヒクル(V)、ジアゼパム(D、1.5μg/側)およびRS(0.5μg/側)]を、内側前頭前野(mPFC)への最終p-CPA投与の24時間後および行動パラダイム開始の45分前に輸注した。(7E)p-CPA前処置による皮質5-HT枯渇を、平均5-HTレベルとして測定する(n=6~8マウス/群)。(7Fおよび7G)不安症を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(Fおよびインセット)、オープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率(7G)として、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定する(n=8~11マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群、p<0.05、##p<0.01 vs.適当な群。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統においてmPFCのモジュレーションを通して5HT機能への速効性抗不安様効果を誘導する。(7A)RS67333(RS、1.5mg/kg)の投与前に、異なるトラックを実施して、30分間5-HTニューロンを記録した。この期間の終了時に、RS67333をi.p.投与し、30分後に、2または3回の続くトラックを、実現した。(7B)DRN 5-HTニューロンの発火周波数を、平均発火頻度として評定する。テストされたニューロン数を、各ヒストグラムに示す(合計でn=5マウスへのRS注射前および後にn=25および26)。データは、RS67333の投与前に決定されたDRN 5-HTニューロンの平均±周波数(Hz)である。(7C)異なる実験条件でのDRN 5-HTニューロンの典型的な記録。上のパネルのヒストグラムは、10秒あたりの活動電位数(AP)を表す(スケールバー)。下のパネルは、両条件でのセロトニン作動性ニューロンの、特徴がはっきりした規則的発火を表す。** p<0.01 vs.RS67333投与前。(7D)p-CPAを、3日間に1日2回、i.p.注射し、処置[ビヒクル(V)、ジアゼパム(D、1.5μg/側)およびRS(0.5μg/側)]を、内側前頭前野(mPFC)への最終p-CPA投与の24時間後および行動パラダイム開始の45分前に輸注した。(7E)p-CPA前処置による皮質5-HT枯渇を、平均5-HTレベルとして測定する(n=6~8マウス/群)。(7Fおよび7G)不安症を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(Fおよびインセット)、オープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率(7G)として、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定する(n=8~11マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群、p<0.05、##p<0.01 vs.適当な群。 急性5-HT受容体刺激は、不安症BALB/cJRjマウス系統においてmPFCのモジュレーションを通して5HT機能への速効性抗不安様効果を誘導する。(7A)RS67333(RS、1.5mg/kg)の投与前に、異なるトラックを実施して、30分間5-HTニューロンを記録した。この期間の終了時に、RS67333をi.p.投与し、30分後に、2または3回の続くトラックを、実現した。(7B)DRN 5-HTニューロンの発火周波数を、平均発火頻度として評定する。テストされたニューロン数を、各ヒストグラムに示す(合計でn=5マウスへのRS注射前および後にn=25および26)。データは、RS67333の投与前に決定されたDRN 5-HTニューロンの平均±周波数(Hz)である。(7C)異なる実験条件でのDRN 5-HTニューロンの典型的な記録。上のパネルのヒストグラムは、10秒あたりの活動電位数(AP)を表す(スケールバー)。下のパネルは、両条件でのセロトニン作動性ニューロンの、特徴がはっきりした規則的発火を表す。** p<0.01 vs.RS67333投与前。(7D)p-CPAを、3日間に1日2回、i.p.注射し、処置[ビヒクル(V)、ジアゼパム(D、1.5μg/側)およびRS(0.5μg/側)]を、内側前頭前野(mPFC)への最終p-CPA投与の24時間後および行動パラダイム開始の45分前に輸注した。(7E)p-CPA前処置による皮質5-HT枯渇を、平均5-HTレベルとして測定する(n=6~8マウス/群)。(7Fおよび7G)不安症を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(Fおよびインセット)、オープンアーム内の歩行距離/合計距離の平均比率(7G)として、および平均合計歩行距離(インセット)として、高架式十字迷路(EPM)で測定する(n=8~11マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群、p<0.05、##p<0.01 vs.適当な群。 不安症BALB/cJRjマウス系統の背側縫線核における皮質終末刺激の効果。(8A)DRNにおけるグルタミン酸作動性終末の刺激後の行動結果に関するタイムライン。それぞれ高架式十字迷路(EPM)でのテストの7週間前および1週間前に、AAV5-CamKIIα-ChR2-eYFPまたはAAV5-CamKII-eYFPウイルスを、内側前頭前野(mPFC)に両側的に注射し、光ファイバーを、背側縫線核(DRN)に埋め込んだ。(8B)ウイルスの発現を、mPFC(左)およびDRN(右)において確認した。(8C~8D)光遺伝学的刺激(3分ONおよび3分OFF)の後、抗不安様効果を、レーザONとレーザOFFの間のオープンアームで過ごした時間またはパーセント時間として(8Cおよびインセット)、背側縫線核における皮質終末刺激中および刺激後のオープンアームで過ごした時間分布(インセット)、合計距離で割ったオープンアームにおける歩行距離の平均比率として(8D)、および平均合計歩行距離(インセット)(eYFP:n=12マウス/群;ChR2:n=19マウス/群)として、EPM中で測定する。プロットされた値は、平均±SEMである。レーザONとレーザOFFの間でp<0.05、** p<0.01;CHR2とeYFP群の間でp<0.05、##p<0.01。 不安症BALB/cJRjマウス系統の背側縫線核における皮質終末刺激の効果。(8A)DRNにおけるグルタミン酸作動性終末の刺激後の行動結果に関するタイムライン。それぞれ高架式十字迷路(EPM)でのテストの7週間前および1週間前に、AAV5-CamKIIα-ChR2-eYFPまたはAAV5-CamKII-eYFPウイルスを、内側前頭前野(mPFC)に両側的に注射し、光ファイバーを、背側縫線核(DRN)に埋め込んだ。(8B)ウイルスの発現を、mPFC(左)およびDRN(右)において確認した。(8C~8D)光遺伝学的刺激(3分ONおよび3分OFF)の後、抗不安様効果を、レーザONとレーザOFFの間のオープンアームで過ごした時間またはパーセント時間として(8Cおよびインセット)、背側縫線核における皮質終末刺激中および刺激後のオープンアームで過ごした時間分布(インセット)、合計距離で割ったオープンアームにおける歩行距離の平均比率として(8D)、および平均合計歩行距離(インセット)(eYFP:n=12マウス/群;ChR2:n=19マウス/群)として、EPM中で測定する。プロットされた値は、平均±SEMである。レーザONとレーザOFFの間でp<0.05、** p<0.01;CHR2とeYFP群の間でp<0.05、##p<0.01。 不安症BALB/cJRjマウス系統の背側縫線核における皮質終末刺激の効果。(8A)DRNにおけるグルタミン酸作動性終末の刺激後の行動結果に関するタイムライン。それぞれ高架式十字迷路(EPM)でのテストの7週間前および1週間前に、AAV5-CamKIIα-ChR2-eYFPまたはAAV5-CamKII-eYFPウイルスを、内側前頭前野(mPFC)に両側的に注射し、光ファイバーを、背側縫線核(DRN)に埋め込んだ。(8B)ウイルスの発現を、mPFC(左)およびDRN(右)において確認した。(8C~8D)光遺伝学的刺激(3分ONおよび3分OFF)の後、抗不安様効果を、レーザONとレーザOFFの間のオープンアームで過ごした時間またはパーセント時間として(8Cおよびインセット)、背側縫線核における皮質終末刺激中および刺激後のオープンアームで過ごした時間分布(インセット)、合計距離で割ったオープンアームにおける歩行距離の平均比率として(8D)、および平均合計歩行距離(インセット)(eYFP:n=12マウス/群;ChR2:n=19マウス/群)として、EPM中で測定する。プロットされた値は、平均±SEMである。レーザONとレーザOFFの間でp<0.05、** p<0.01;CHR2とeYFP群の間でp<0.05、##p<0.01。 不安症BALB/cJRjマウス系統の背側縫線核における皮質終末刺激の効果。(8A)DRNにおけるグルタミン酸作動性終末の刺激後の行動結果に関するタイムライン。それぞれ高架式十字迷路(EPM)でのテストの7週間前および1週間前に、AAV5-CamKIIα-ChR2-eYFPまたはAAV5-CamKII-eYFPウイルスを、内側前頭前野(mPFC)に両側的に注射し、光ファイバーを、背側縫線核(DRN)に埋め込んだ。(8B)ウイルスの発現を、mPFC(左)およびDRN(右)において確認した。(8C~8D)光遺伝学的刺激(3分ONおよび3分OFF)の後、抗不安様効果を、レーザONとレーザOFFの間のオープンアームで過ごした時間またはパーセント時間として(8Cおよびインセット)、背側縫線核における皮質終末刺激中および刺激後のオープンアームで過ごした時間分布(インセット)、合計距離で割ったオープンアームにおける歩行距離の平均比率として(8D)、および平均合計歩行距離(インセット)(eYFP:n=12マウス/群;ChR2:n=19マウス/群)として、EPM中で測定する。プロットされた値は、平均±SEMである。レーザONとレーザOFFの間でp<0.05、** p<0.01;CHR2とeYFP群の間でp<0.05、##p<0.01。 不安症BALB/cJRjマウス系統の背側縫線核(DRN)におけるグルタミン酸作動性終末の光遺伝学的阻害の後の抗不安様活性のモジュレーション。(9A)内側前頭前野(mPFC)輸注(ジアゼパム[D][1.5mg/側]またはRS67333[RS][0.5mg/側])、またはジアゼパム(1.5mg/kg腹腔内[i.p.])、RS67333(1.5mg/kg i.p.))もしくはビヒクル(V)の全身投与の後のDRNにおけるグルタミン酸作動性終末の阻害後の行動結果に関するタイムライン。AAV5-CamKII-ArchT-GFPウイルスを、テストの7週間前にmPFCに両側的に注射した。光ファイバーを、テストの1週間前にDRNに埋め込んだ。局所注射プロトコルでは、2つの注射用カニューレもmPFC内に埋め込んだ。薬物処置を、テストの45分前にmPFC中に輸注するか、またはi.p.注射した。(9B)対照CaMKII-ArchT-GFPウイルスの発現が、mPFC(左)およびDRN(右)で確認された。(9C~9F)ビヒクル、ジアゼパム、またはRSの局所輸注(9C、9D)または全身投与(9E、9F)の行動結果のために、抗不安様効果を、2期間刺激(3分の明暗周期)にわたるオープンアームで過ごした時間(9C、9E)もしくはパーセント時間として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、DRN中の皮質終末阻害の前および後のオープンアームで過ごした時間分布として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、合計時間で割ったオープンアーム(OA)での平均時間として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、平均合計歩行距離として(パネル9Dおよび9F内のインセット)、または合計距離で割ったOAでの歩行距離の平均比率として(9D、9F)、高架式十字迷路(EPM)で測定する(局所投与および全身投与でそれぞれ、n=7~11マウス/群およびn=7~9マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<.05、** p<.01 vs.ビヒクル群;p<.05、## p<.01 vs.消灯中の適当な群;p<.05、$$ p<.01 vs.点灯中のビヒクル群。 不安症BALB/cJRjマウス系統の背側縫線核(DRN)におけるグルタミン酸作動性終末の光遺伝学的阻害の後の抗不安様活性のモジュレーション。(9A)内側前頭前野(mPFC)輸注(ジアゼパム[D][1.5mg/側]またはRS67333[RS][0.5mg/側])、またはジアゼパム(1.5mg/kg腹腔内[i.p.])、RS67333(1.5mg/kg i.p.))もしくはビヒクル(V)の全身投与の後のDRNにおけるグルタミン酸作動性終末の阻害後の行動結果に関するタイムライン。AAV5-CamKII-ArchT-GFPウイルスを、テストの7週間前にmPFCに両側的に注射した。光ファイバーを、テストの1週間前にDRNに埋め込んだ。局所注射プロトコルでは、2つの注射用カニューレもmPFC内に埋め込んだ。薬物処置を、テストの45分前にmPFC中に輸注するか、またはi.p.注射した。(9B)対照CaMKII-ArchT-GFPウイルスの発現が、mPFC(左)およびDRN(右)で確認された。(9C~9F)ビヒクル、ジアゼパム、またはRSの局所輸注(9C、9D)または全身投与(9E、9F)の行動結果のために、抗不安様効果を、2期間刺激(3分の明暗周期)にわたるオープンアームで過ごした時間(9C、9E)もしくはパーセント時間として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、DRN中の皮質終末阻害の前および後のオープンアームで過ごした時間分布として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、合計時間で割ったオープンアーム(OA)での平均時間として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、平均合計歩行距離として(パネル9Dおよび9F内のインセット)、または合計距離で割ったOAでの歩行距離の平均比率として(9D、9F)、高架式十字迷路(EPM)で測定する(局所投与および全身投与でそれぞれ、n=7~11マウス/群およびn=7~9マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<.05、** p<.01 vs.ビヒクル群;p<.05、## p<.01 vs.消灯中の適当な群;p<.05、$$ p<.01 vs.点灯中のビヒクル群。 不安症BALB/cJRjマウス系統の背側縫線核(DRN)におけるグルタミン酸作動性終末の光遺伝学的阻害の後の抗不安様活性のモジュレーション。(9A)内側前頭前野(mPFC)輸注(ジアゼパム[D][1.5mg/側]またはRS67333[RS][0.5mg/側])、またはジアゼパム(1.5mg/kg腹腔内[i.p.])、RS67333(1.5mg/kg i.p.))もしくはビヒクル(V)の全身投与の後のDRNにおけるグルタミン酸作動性終末の阻害後の行動結果に関するタイムライン。AAV5-CamKII-ArchT-GFPウイルスを、テストの7週間前にmPFCに両側的に注射した。光ファイバーを、テストの1週間前にDRNに埋め込んだ。局所注射プロトコルでは、2つの注射用カニューレもmPFC内に埋め込んだ。薬物処置を、テストの45分前にmPFC中に輸注するか、またはi.p.注射した。(9B)対照CaMKII-ArchT-GFPウイルスの発現が、mPFC(左)およびDRN(右)で確認された。(9C~9F)ビヒクル、ジアゼパム、またはRSの局所輸注(9C、9D)または全身投与(9E、9F)の行動結果のために、抗不安様効果を、2期間刺激(3分の明暗周期)にわたるオープンアームで過ごした時間(9C、9E)もしくはパーセント時間として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、DRN中の皮質終末阻害の前および後のオープンアームで過ごした時間分布として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、合計時間で割ったオープンアーム(OA)での平均時間として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、平均合計歩行距離として(パネル9Dおよび9F内のインセット)、または合計距離で割ったOAでの歩行距離の平均比率として(9D、9F)、高架式十字迷路(EPM)で測定する(局所投与および全身投与でそれぞれ、n=7~11マウス/群およびn=7~9マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<.05、** p<.01 vs.ビヒクル群;p<.05、## p<.01 vs.消灯中の適当な群;p<.05、$$ p<.01 vs.点灯中のビヒクル群。 不安症BALB/cJRjマウス系統の背側縫線核(DRN)におけるグルタミン酸作動性終末の光遺伝学的阻害の後の抗不安様活性のモジュレーション。(9A)内側前頭前野(mPFC)輸注(ジアゼパム[D][1.5mg/側]またはRS67333[RS][0.5mg/側])、またはジアゼパム(1.5mg/kg腹腔内[i.p.])、RS67333(1.5mg/kg i.p.))もしくはビヒクル(V)の全身投与の後のDRNにおけるグルタミン酸作動性終末の阻害後の行動結果に関するタイムライン。AAV5-CamKII-ArchT-GFPウイルスを、テストの7週間前にmPFCに両側的に注射した。光ファイバーを、テストの1週間前にDRNに埋め込んだ。局所注射プロトコルでは、2つの注射用カニューレもmPFC内に埋め込んだ。薬物処置を、テストの45分前にmPFC中に輸注するか、またはi.p.注射した。(9B)対照CaMKII-ArchT-GFPウイルスの発現が、mPFC(左)およびDRN(右)で確認された。(9C~9F)ビヒクル、ジアゼパム、またはRSの局所輸注(9C、9D)または全身投与(9E、9F)の行動結果のために、抗不安様効果を、2期間刺激(3分の明暗周期)にわたるオープンアームで過ごした時間(9C、9E)もしくはパーセント時間として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、DRN中の皮質終末阻害の前および後のオープンアームで過ごした時間分布として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、合計時間で割ったオープンアーム(OA)での平均時間として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、平均合計歩行距離として(パネル9Dおよび9F内のインセット)、または合計距離で割ったOAでの歩行距離の平均比率として(9D、9F)、高架式十字迷路(EPM)で測定する(局所投与および全身投与でそれぞれ、n=7~11マウス/群およびn=7~9マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<.05、** p<.01 vs.ビヒクル群;p<.05、## p<.01 vs.消灯中の適当な群;p<.05、$$ p<.01 vs.点灯中のビヒクル群。 不安症BALB/cJRjマウス系統の背側縫線核(DRN)におけるグルタミン酸作動性終末の光遺伝学的阻害の後の抗不安様活性のモジュレーション。(9A)内側前頭前野(mPFC)輸注(ジアゼパム[D][1.5mg/側]またはRS67333[RS][0.5mg/側])、またはジアゼパム(1.5mg/kg腹腔内[i.p.])、RS67333(1.5mg/kg i.p.))もしくはビヒクル(V)の全身投与の後のDRNにおけるグルタミン酸作動性終末の阻害後の行動結果に関するタイムライン。AAV5-CamKII-ArchT-GFPウイルスを、テストの7週間前にmPFCに両側的に注射した。光ファイバーを、テストの1週間前にDRNに埋め込んだ。局所注射プロトコルでは、2つの注射用カニューレもmPFC内に埋め込んだ。薬物処置を、テストの45分前にmPFC中に輸注するか、またはi.p.注射した。(9B)対照CaMKII-ArchT-GFPウイルスの発現が、mPFC(左)およびDRN(右)で確認された。(9C~9F)ビヒクル、ジアゼパム、またはRSの局所輸注(9C、9D)または全身投与(9E、9F)の行動結果のために、抗不安様効果を、2期間刺激(3分の明暗周期)にわたるオープンアームで過ごした時間(9C、9E)もしくはパーセント時間として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、DRN中の皮質終末阻害の前および後のオープンアームで過ごした時間分布として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、合計時間で割ったオープンアーム(OA)での平均時間として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、平均合計歩行距離として(パネル9Dおよび9F内のインセット)、または合計距離で割ったOAでの歩行距離の平均比率として(9D、9F)、高架式十字迷路(EPM)で測定する(局所投与および全身投与でそれぞれ、n=7~11マウス/群およびn=7~9マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<.05、** p<.01 vs.ビヒクル群;p<.05、## p<.01 vs.消灯中の適当な群;p<.05、$$ p<.01 vs.点灯中のビヒクル群。 不安症BALB/cJRjマウス系統の背側縫線核(DRN)におけるグルタミン酸作動性終末の光遺伝学的阻害の後の抗不安様活性のモジュレーション。(9A)内側前頭前野(mPFC)輸注(ジアゼパム[D][1.5mg/側]またはRS67333[RS][0.5mg/側])、またはジアゼパム(1.5mg/kg腹腔内[i.p.])、RS67333(1.5mg/kg i.p.))もしくはビヒクル(V)の全身投与の後のDRNにおけるグルタミン酸作動性終末の阻害後の行動結果に関するタイムライン。AAV5-CamKII-ArchT-GFPウイルスを、テストの7週間前にmPFCに両側的に注射した。光ファイバーを、テストの1週間前にDRNに埋め込んだ。局所注射プロトコルでは、2つの注射用カニューレもmPFC内に埋め込んだ。薬物処置を、テストの45分前にmPFC中に輸注するか、またはi.p.注射した。(9B)対照CaMKII-ArchT-GFPウイルスの発現が、mPFC(左)およびDRN(右)で確認された。(9C~9F)ビヒクル、ジアゼパム、またはRSの局所輸注(9C、9D)または全身投与(9E、9F)の行動結果のために、抗不安様効果を、2期間刺激(3分の明暗周期)にわたるオープンアームで過ごした時間(9C、9E)もしくはパーセント時間として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、DRN中の皮質終末阻害の前および後のオープンアームで過ごした時間分布として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、合計時間で割ったオープンアーム(OA)での平均時間として(パネル9Cおよび9E内のインセット)、平均合計歩行距離として(パネル9Dおよび9F内のインセット)、または合計距離で割ったOAでの歩行距離の平均比率として(9D、9F)、高架式十字迷路(EPM)で測定する(局所投与および全身投与でそれぞれ、n=7~11マウス/群およびn=7~9マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<.05、** p<.01 vs.ビヒクル群;p<.05、## p<.01 vs.消灯中の適当な群;p<.05、$$ p<.01 vs.点灯中のビヒクル群。 急性全身RS67333およびジアゼパム投与により誘導された速効性抗不安様効果に関与する神経回路。セロトニン・タイプ4受容体(5-HT4R)アゴニストであるRS67333の急性全身投与は、背側縫線核(DRN)において少なくとも皮質グルタミン酸作動性終末の活性化を通して、BALB/cJRjマウスにおいて急性抗不安様効果を誘導し、過去の試験を確認する(19)。同様に、ベンゾジアゼピン(BZD)であるジアゼパムは、同様の神経回路動員を通して速効性抗不安様効果を誘導する。本発明者らのデータはまた、他の脳構造が5-HTRアゴニストの速効性抗不安様活性に関与し得ることを実証した。過去の試験は、海馬(HPC)/内側前頭前野(mPFC)(46)回路およびmPFC/扁桃体(Amy)経路(48)が動員されて、不安症様表現型をモジュレートすることを実証し、これらの回路が5-HT4Rにより誘導される速効性抗不安様効果についても調査されるべきであることを示唆する。GABA、ガンマ-アミノ酪酸。 急性5-HTRアンタゴニスト投与は、RS67333に誘導される速効性抗不安様効果を防止する。(11A)RS67333投与の15分前にGR125487(GR 1mg/kg i.p.)を投与したことを除き、処置(フルオキセチン 18mg/kg F;ジアゼパム 1.5mg/kg D;RS67333 1.5mg/kg RS;ビヒクル V)を、行動テストの45分前にi.p.投与した。(11Bおよび11C)処置投与後、不安症を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(11Bおよびインセット)、(n=4~6マウス/群)合計距離で割ったオープンアームでの歩行距離の平均比率として、または平均歩行距離として(11Cおよびインセット)、EPMで測定する。(11Dおよび11E)NSFでは、不安パラメータを、10分間にわたり食べなかった動物の分率として(11D)、餌消費量の平均(インセット)または接触開始潜時の平均(E)(n=4~6マウス/群)として表す。全ての統計学的検定およびp値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群(V);##p<0.01 vs.RS群。 急性5-HTRアンタゴニスト投与は、RS67333に誘導される速効性抗不安様効果を防止する。(11A)RS67333投与の15分前にGR125487(GR 1mg/kg i.p.)を投与したことを除き、処置(フルオキセチン 18mg/kg F;ジアゼパム 1.5mg/kg D;RS67333 1.5mg/kg RS;ビヒクル V)を、行動テストの45分前にi.p.投与した。(11Bおよび11C)処置投与後、不安症を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(11Bおよびインセット)、合計距離で割ったオープンアームでの歩行距離の平均比率として、または平均歩行距離として(11Cおよびインセット)、EPMで測定する。(11Dおよび11E)NSFでは、不安パラメータを、10分間にわたり食べなかった動物の分率として(11D)、餌消費量の平均(インセット)または接触開始潜時の平均(E)(n=4~6マウス/群)として表す。全ての統計学的検定およびp値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群(V);##p<0.01 vs.RS群。 急性5-HTRアンタゴニスト投与は、RS67333に誘導される速効性抗不安様効果を防止する。(11A)RS67333投与の15分前にGR125487(GR 1mg/kg i.p.)を投与したことを除き、処置(フルオキセチン 18mg/kg F;ジアゼパム 1.5mg/kg D;RS67333 1.5mg/kg RS;ビヒクル V)を、行動テストの45分前にi.p.投与した。(11Bおよび11C)処置投与後、不安症を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(11Bおよびインセット)、合計距離で割ったオープンアームでの歩行距離の平均比率として、または平均歩行距離として(11Cおよびインセット)、EPMで測定する。(11Dおよび11E)NSFでは、不安パラメータを、10分間にわたり食べなかった動物の分率として(11D)、餌消費量の平均(インセット)または接触開始潜時の平均(E)(n=4~6マウス/群)として表す。全ての統計学的検定およびp値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群(V);##p<0.01 vs.RS群。 急性5-HTRアンタゴニスト投与は、RS67333に誘導される速効性抗不安様効果を防止する。(11A)RS67333投与の15分前にGR125487(GR 1mg/kg i.p.)を投与したことを除き、処置(フルオキセチン 18mg/kg F;ジアゼパム 1.5mg/kg D;RS67333 1.5mg/kg RS;ビヒクル V)を、行動テストの45分前にi.p.投与した。(11Bおよび11C)処置投与後、不安症を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(11Bおよびインセット)、合計距離で割ったオープンアームでの歩行距離の平均比率として、または平均歩行距離として(11Cおよびインセット)、EPMで測定する。(11Dおよび11E)NSFでは、不安パラメータを、10分間にわたり食べなかった動物の分率として(11D)、餌消費量の平均(インセット)または接触開始潜時の平均(E)(n=4~6マウス/群)として表す。全ての統計学的検定およびp値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群(V);##p<0.01 vs.RS群。 急性5-HTRアンタゴニスト投与は、RS67333に誘導される速効性抗不安様効果を防止する。(11A)RS67333投与の15分前にGR125487(GR 1mg/kg i.p.)を投与したことを除き、処置(フルオキセチン 18mg/kg F;ジアゼパム 1.5mg/kg D;RS67333 1.5mg/kg RS;ビヒクル V)を、行動テストの45分前にi.p.投与した。(11Bおよび11C)処置投与後、不安症を、オープンアームで過ごした平均時間もしくはパーセント時間として(11Bおよびインセット)、合計距離で割ったオープンアームでの歩行距離の平均比率として、または平均歩行距離として(11Cおよびインセット)、EPMで測定する。(11Dおよび11E)NSFでは、不安パラメータを、10分間にわたり食べなかった動物の分率として(11D)、餌消費量の平均(インセット)または接触開始潜時の平均(E)(n=4~6マウス/群)として表す。全ての統計学的検定およびp値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群(V);##p<0.01 vs.RS群。 急性全身5-HTR刺激は、オープンフィールドパラダイムにおいて速効性抗不安様効果を誘導する。(12A)実験計画。ビヒクル(V)、フルオキセチン(F、18mg/kg)、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)、またはRS67333(RS、1.5mg/kg)を、BALB/cJRjマウス系統における行動テストの45分前にi.p.投与した。(12B~12C)抗不安様効果を、中央で過ごした平均パーセント時間として(12B)、中央での歩行距離/合計距離の平均比率として(12C)、および平均合計歩行距離として(インセット)OFにおいて測定した(全身ではn=5~9マウス/群)。全ての統計学的検定およびp値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群(V)。 急性全身5-HTR刺激は、オープンフィールドパラダイムにおいて速効性抗不安様効果を誘導する。(12A)実験計画。ビヒクル(V)、フルオキセチン(F、18mg/kg)、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)、またはRS67333(RS、1.5mg/kg)を、BALB/cJRjマウス系統における行動テストの45分前にi.p.投与した。(12B~12C)抗不安様効果を、中央で過ごした平均パーセント時間として(12B)、中央での歩行距離/合計距離の平均比率として(12C)、および平均合計歩行距離として(インセット)OFにおいて測定した(全身ではn=5~9マウス/群)。全ての統計学的検定およびp値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群(V)。 急性全身5-HTR刺激は、オープンフィールドパラダイムにおいて速効性抗不安様効果を誘導する。(12A)実験計画。ビヒクル(V)、フルオキセチン(F、18mg/kg)、ジアゼパム(D、1.5mg/kg)、またはRS67333(RS、1.5mg/kg)を、BALB/cJRjマウス系統における行動テストの45分前にi.p.投与した。(12B~12C)抗不安様効果を、中央で過ごした平均パーセント時間として(12B)、中央での歩行距離/合計距離の平均比率として(12C)、および平均合計歩行距離として(インセット)OFにおいて測定した(全身ではn=5~9マウス/群)。全ての統計学的検定およびp値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群(V)。 DRNにおけるmPFC終末の光遺伝学的刺激は、オープンフィールドパラダイムにおいて速効性抗不安様効果を誘導する。(13A)DRNにおける皮質グルタミン酸作動性終末の刺激後の行動結果に関するタイムライン。それぞれOFにおけるテストの7週間前および1週間前に、AAV5-CamKIIα-ChR2-eYFPまたはAAV5-CamKII-eYFPウイルスを、内側前頭前野(mPFC)に両側的に注射し、光ファイバーを、背側縫線核(DRN)に埋め込んだ。(13B~13C)抗不安様効果を、レーザONとレーザOFFの間の中央で過ごしたパーセント時間として(インセット:秒としての時間)(13B)、合計距離で割った中央における歩行距離の平均比率として(インセット:合計歩行距離)(13C)、OFで測定する(eYFP:n=8マウス/群;ChR2:n=13マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。レーザONとレーザOFFの間で** p<0.01;レーザONの際のCHR2とeYFP群の間で##p<0.01。 DRNにおけるmPFC終末の光遺伝学的刺激は、オープンフィールドパラダイムにおいて速効性抗不安様効果を誘導する。(13A)DRNにおける皮質グルタミン酸作動性終末の刺激後の行動結果に関するタイムライン。それぞれOFにおけるテストの7週間前および1週間前に、AAV5-CamKIIα-ChR2-eYFPまたはAAV5-CamKII-eYFPウイルスを、内側前頭前野(mPFC)に両側的に注射し、光ファイバーを、背側縫線核(DRN)に埋め込んだ。(13B~13C)抗不安様効果を、レーザONとレーザOFFの間の中央で過ごしたパーセント時間として(インセット:秒としての時間)(13B)、合計距離で割った中央における歩行距離の平均比率として(インセット:合計歩行距離)(13C)、OFで測定する(eYFP:n=8マウス/群;ChR2:n=13マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。レーザONとレーザOFFの間で** p<0.01;レーザONの際のCHR2とeYFP群の間で##p<0.01。 DRNにおけるmPFC終末の光遺伝学的刺激は、オープンフィールドパラダイムにおいて速効性抗不安様効果を誘導する。(13A)DRNにおける皮質グルタミン酸作動性終末の刺激後の行動結果に関するタイムライン。それぞれOFにおけるテストの7週間前および1週間前に、AAV5-CamKIIα-ChR2-eYFPまたはAAV5-CamKII-eYFPウイルスを、内側前頭前野(mPFC)に両側的に注射し、光ファイバーを、背側縫線核(DRN)に埋め込んだ。(13B~13C)抗不安様効果を、レーザONとレーザOFFの間の中央で過ごしたパーセント時間として(インセット:秒としての時間)(13B)、合計距離で割った中央における歩行距離の平均比率として(インセット:合計歩行距離)(13C)、OFで測定する(eYFP:n=8マウス/群;ChR2:n=13マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。レーザONとレーザOFFの間で** p<0.01;レーザONの際のCHR2とeYFP群の間で##p<0.01。 DRNにおけるmPFC終末の光遺伝学的阻害は、RS67333およびジアゼパムのmPFC輸注の抗不安活性を遮断する。(14A)ジアゼパム(D、1.5μg/側)、RS67333(RS、0.5μg/側)またはビヒクル(V)のmPFC輸注後の背側縫線核(DRN)における内側前頭前野(mPFC)終末の阻害の行動結果に関するタイムライン。AAV5-CamKII-ArchT-GFPウイルスを、テストの7週間前にmPFCに両側的に注射した。光ファイバーを、テストの1週間前にDRNに埋め込んだ。(14B~14C)V、DまたはRSの局所輸注の行動結果のために、抗不安様効果を、2期の刺激(3分オフおよび3分オン)にわたり中央で過ごしたパーセント時間として(14B)、mPFCから背側縫線核に発生するグルタミン酸作動性軸索終末の阻害前および阻害後に中央で過ごした時間分布として(インセット)、合計距離で割った中央における歩行距離の平均比率として(14C)、および平均合計歩行距離として(インセット)、オープンフィールド(OF)で測定する(n=6~8マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群;p<0.05、## p<0.01 vs.点灯の際の適当な群。 DRNにおけるmPFC終末の光遺伝学的阻害は、RS67333およびジアゼパムのmPFC輸注の抗不安活性を遮断する。(14A)ジアゼパム(D、1.5μg/側)、RS67333(RS、0.5μg/側)またはビヒクル(V)のmPFC輸注後の背側縫線核(DRN)における内側前頭前野(mPFC)終末の阻害の行動結果に関するタイムライン。AAV5-CamKII-ArchT-GFPウイルスを、テストの7週間前にmPFCに両側的に注射した。光ファイバーを、テストの1週間前にDRNに埋め込んだ。(14B~14C)V、DまたはRSの局所輸注の行動結果のために、抗不安様効果を、2期の刺激(3分オフおよび3分オン)にわたり中央で過ごしたパーセント時間として(14B)、mPFCから背側縫線核に発生するグルタミン酸作動性軸索終末の阻害前および阻害後に中央で過ごした時間分布として(インセット)、合計距離で割った中央における歩行距離の平均比率として(14C)、および平均合計歩行距離として(インセット)、オープンフィールド(OF)で測定する(n=6~8マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群;p<0.05、## p<0.01 vs.点灯の際の適当な群。 DRNにおけるmPFC終末の光遺伝学的阻害は、RS67333およびジアゼパムのmPFC輸注の抗不安活性を遮断する。(14A)ジアゼパム(D、1.5μg/側)、RS67333(RS、0.5μg/側)またはビヒクル(V)のmPFC輸注後の背側縫線核(DRN)における内側前頭前野(mPFC)終末の阻害の行動結果に関するタイムライン。AAV5-CamKII-ArchT-GFPウイルスを、テストの7週間前にmPFCに両側的に注射した。光ファイバーを、テストの1週間前にDRNに埋め込んだ。(14B~14C)V、DまたはRSの局所輸注の行動結果のために、抗不安様効果を、2期の刺激(3分オフおよび3分オン)にわたり中央で過ごしたパーセント時間として(14B)、mPFCから背側縫線核に発生するグルタミン酸作動性軸索終末の阻害前および阻害後に中央で過ごした時間分布として(インセット)、合計距離で割った中央における歩行距離の平均比率として(14C)、および平均合計歩行距離として(インセット)、オープンフィールド(OF)で測定する(n=6~8マウス/群)。プロットされた値は、平均±SEMである。p<0.05、** p<0.01 vs.ビヒクル群;p<0.05、## p<0.01 vs.点灯の際の適当な群。 5-HT4受容体の単回刺激は、BALB/cJRjマウスにおける長期持続性抗不安および抗うつ効果を導き得る。(15A)BALB/cJRjマウスに、スプラッシュテストを実施する45分前に、RS67333(1.5mg/kg)またはジアゼパム(1.5mg/kg)の単一用量を全身注射した。翌日、マウスは、さらなる用量のRS67333を受けることなくEPMを実施し、その後24時間後にオープンフィールドで、最後にオープンフィールドの24時間後にNSFを受けた。(15B~15C)RS67333は、単回投与後に、エピソード数に影響せずに(t=1.546;p=0.1531)、スプラッシュテストにおいて身繕い時間を増加させた(t=2.294;p<0.05)、。(15D~15E)本発明者らは、注射の24時間後、EPMにおいてRS67333の予期された抗不安効果を同定しなかった(t=0.4990;p=0.6286)。しかし、RS67333は、注射の48時間後、合計の歩いた距離に対する中央での距離の比率に影響せずに(t=1.281;p=2292)、OFの中央で過ごした時間を増加させ(t=1.924;p<0.05)(15F~15G)、注射の72時間後、熟知した環境での餌消費量に影響せずに(t=0.2203;p=0.4151)、NSFにおける摂餌の遅延を低減した(t=2.520;p<0.05)(15H~15I)。(15B~15C)スプラッシュテスト(急性効果)。(15D~15E)高架式十字迷路(長期持続性効果)。(15F~15G)オープンフィールド(長期持続性効果)。(15H~15I)新規環境による摂餌抑制(長期持続性効果)。略語:p<0.05 vs.担体、D:ジアゼパム 1.5mg/kg;i.p.:腹腔内注射、RS:RS67333 1.5mg/kg;V:担体。 5-HT4受容体の単回刺激は、BALB/cJRjマウスにおける長期持続性抗不安および抗うつ効果を導き得る。(15A)BALB/cJRjマウスに、スプラッシュテストを実施する45分前に、RS67333(1.5mg/kg)またはジアゼパム(1.5mg/kg)の単一用量を全身注射した。翌日、マウスは、さらなる用量のRS67333を受けることなくEPMを実施し、その後24時間後にオープンフィールドで、最後にオープンフィールドの24時間後にNSFを受けた。(15B~15C)RS67333は、単回投与後に、エピソード数に影響せずに(t=1.546;p=0.1531)、スプラッシュテストにおいて身繕い時間を増加させた(t=2.294;p<0.05)。(15D~15E)本発明者らは、注射の24時間後、EPMにおいてRS67333の予期された抗不安効果を同定しなかった(t=0.4990;p=0.6286)。しかし、RS67333は、注射の48時間後、合計の歩いた距離に対する中央での距離の比率に影響せずに(t=1.281;p=2292)、OFの中央で過ごした時間を増加させ(t=1.924;p<0.05)(15F~15G)、注射の72時間後、熟知した環境での餌消費量に影響せずに(t=0.2203;p=0.4151)、NSFにおける摂餌の遅延を低減した(t=2.520;p<0.05)(15H~15I)。(15B~15C)スプラッシュテスト(急性効果)。(15D~15E)高架式十字迷路(長期持続性効果)。(15F~15G)オープンフィールド(長期持続性効果)。(15H~15I)新規環境による摂餌抑制(長期持続性効果)。略語:p<0.05 vs.担体、D:ジアゼパム 1.5mg/kg;i.p.:腹腔内注射、RS:RS67333 1.5mg/kg;V:担体。 5-HT4受容体の単回刺激は、BALB/cJRjマウスにおける長期持続性抗不安および抗うつ効果を導き得る。(15A)BALB/cJRjマウスに、スプラッシュテストを実施する45分前に、RS67333(1.5mg/kg)またはジアゼパム(1.5mg/kg)の単一用量を全身注射した。翌日、マウスは、さらなる用量のRS67333を受けることなくEPMを実施し、その後24時間後にオープンフィールドで、最後にオープンフィールドの24時間後にNSFを受けた。(15B~15C)RS67333は、単回投与後に、エピソード数に影響せずに(t=1.546;p=0.1531)、スプラッシュテストにおいて身繕い時間を増加させた(t=2.294;p<0.05)。(15D~15E)本発明者らは、注射の24時間後、EPMにおいてRS67333の予期された抗不安効果を同定しなかった(t=0.4990;p=0.6286)。しかし、RS67333は、注射の48時間後、合計の歩いた距離に対する中央での距離の比率に影響せずに(t=1.281;p=2292)、OFの中央で過ごした時間を増加させ(t=1.924;p<0.05)(15F~15G)、注射の72時間後、熟知した環境での餌消費量に影響せずに(t=0.2203;p=0.4151)、NSFにおける摂餌の遅延を低減した(t=2.520;p<0.05)(15H~15I)。(15B~15C)スプラッシュテスト(急性効果)。(15D~15E)高架式十字迷路(長期持続性効果)。(15F~15G)オープンフィールド(長期持続性効果)。(15H~15I)新規環境による摂餌抑制(長期持続性効果)。略語:p<0.05 vs.担体、D:ジアゼパム 1.5mg/kg;i.p.:腹腔内注射、RS:RS67333 1.5mg/kg;V:担体。 5-HT4受容体の単回刺激は、BALB/cJRjマウスにおける長期持続性抗不安および抗うつ効果を導き得る。(15A)BALB/cJRjマウスに、スプラッシュテストを実施する45分前に、RS67333(1.5mg/kg)またはジアゼパム(1.5mg/kg)の単一用量を全身注射した。翌日、マウスは、さらなる用量のRS67333を受けることなくEPMを実施し、その後24時間後にオープンフィールドで、最後にオープンフィールドの24時間後にNSFを受けた。(15B~15C)RS67333は、単回投与後に、エピソード数に影響せずに(t=1.546;p=0.1531)、スプラッシュテストにおいて身繕い時間を増加させた(t=2.294;p<0.05)。(15D~15E)本発明者らは、注射の24時間後、EPMにおいてRS67333の予期された抗不安効果を同定しなかった(t=0.4990;p=0.6286)。しかし、RS67333は、注射の48時間後、合計の歩いた距離に対する中央での距離の比率に影響せずに(t=1.281;p=2292)、OFの中央で過ごした時間を増加させ(t=1.924;p<0.05)(15F~15G)、注射の72時間後、熟知した環境での餌消費量に影響せずに(t=0.2203;p=0.4151)、NSFにおける摂餌の遅延を低減した(t=2.520;p<0.05)(15H~15I)。(15B~15C)スプラッシュテスト(急性効果)。(15D~15E)高架式十字迷路(長期持続性効果)。(15F~15G)オープンフィールド(長期持続性効果)。(15H~15I)新規環境による摂餌抑制(長期持続性効果)。略語:p<0.05 vs.担体、D:ジアゼパム 1.5mg/kg;i.p.:腹腔内注射、RS:RS67333 1.5mg/kg;V:担体。 5-HT4受容体の単回刺激は、BALB/cJRjマウスにおける長期持続性抗不安および抗うつ効果を導き得る。(15A)BALB/cJRjマウスに、スプラッシュテストを実施する45分前に、RS67333(1.5mg/kg)またはジアゼパム(1.5mg/kg)の単一用量を全身注射した。翌日、マウスは、さらなる用量のRS67333を受けることなくEPMを実施し、その後24時間後にオープンフィールドで、最後にオープンフィールドの24時間後にNSFを受けた。(15B~15C)RS67333は、単回投与後に、エピソード数に影響せずに(t=1.546;p=0.1531)、スプラッシュテストにおいて身繕い時間を増加させた(t=2.294;p<0.05)。(15D~15E)本発明者らは、注射の24時間後、EPMにおいてRS67333の予期された抗不安効果を同定しなかった(t=0.4990;p=0.6286)。しかし、RS67333は、注射の48時間後、合計の歩いた距離に対する中央での距離の比率に影響せずに(t=1.281;p=2292)、OFの中央で過ごした時間を増加させ(t=1.924;p<0.05)(15F~15G)、注射の72時間後、熟知した環境での餌消費量に影響せずに(t=0.2203;p=0.4151)、NSFにおける摂餌の遅延を低減した(t=2.520;p<0.05)(15H~15I)。(15B~15C)スプラッシュテスト(急性効果)。(15D~15E)高架式十字迷路(長期持続性効果)。(15F~15G)オープンフィールド(長期持続性効果)。(15H~15I)新規環境による摂餌抑制(長期持続性効果)。略語:p<0.05 vs.担体、D:ジアゼパム 1.5mg/kg;i.p.:腹腔内注射、RS:RS67333 1.5mg/kg;V:担体。 5-HT4受容体の単回刺激は、BALB/cJRjマウスにおける長期持続性抗不安および抗うつ効果を導き得る。(15A)BALB/cJRjマウスに、スプラッシュテストを実施する45分前に、RS67333(1.5mg/kg)またはジアゼパム(1.5mg/kg)の単一用量を全身注射した。翌日、マウスは、さらなる用量のRS67333を受けることなくEPMを実施し、その後24時間後にオープンフィールドで、最後にオープンフィールドの24時間後にNSFを受けた。(15B~15C)RS67333は、単回投与後に、エピソード数に影響せずに(t=1.546;p=0.1531)、スプラッシュテストにおいて身繕い時間を増加させた(t=2.294;p<0.05)。(15D~15E)本発明者らは、注射の24時間後、EPMにおいてRS67333の予期された抗不安効果を同定しなかった(t=0.4990;p=0.6286)。しかし、RS67333は、注射の48時間後、OFの中央で過ごした時間を増加させ(t=1.924;p<0.05)、合計の歩いた距離に対する中央での距離の比率に影響せずに(t=1.281;p=2292)、OFの中央で過ごした時間を増加させ(t=1.924;p<0.05)(15F~15G)、注射の72時間後、熟知した環境での餌消費量に影響せずに(t=0.2203;p=0.4151)、NSFにおける摂餌の遅延を低減した(t=2.520;p<0.05)(15H~15I)。(15B~15C)スプラッシュテスト(急性効果)。(15D~15E)高架式十字迷路(長期持続性効果)。(15F~15G)オープンフィールド(長期持続性効果)。(15H~15I)新規環境による摂餌抑制(長期持続性効果)。略語:p<0.05 vs.担体、D:ジアゼパム 1.5mg/kg;i.p.:腹腔内注射、RS:RS67333 1.5mg/kg;V:担体。 5-HT4受容体の単回刺激は、BALB/cJRjマウスにおける長期持続性抗不安および抗うつ効果を導き得る。(15A)BALB/cJRjマウスに、スプラッシュテストを実施する45分前に、RS67333(1.5mg/kg)またはジアゼパム(1.5mg/kg)の単一用量を全身注射した。翌日、マウスは、さらなる用量のRS67333を受けることなくEPMを実施し、その後24時間後にオープンフィールドで、最後にオープンフィールドの24時間後にNSFを受けた。(15B~15C)RS67333は、単回投与後に、エピソード数に影響せずに(t=1.546;p=0.1531)、スプラッシュテストにおいて身繕い時間を増加させた(t=2.294;p<0.05)。(15D~15E)本発明者らは、注射の24時間後、EPMにおいてRS67333の予期された抗不安効果を同定しなかった(t=0.4990;p=0.6286)。しかし、RS67333は、注射の48時間後、合計の歩いた距離に対する中央での距離の比率に影響せずに(t=1.281;p=2292)、OFの中央で過ごした時間を増加させ(t=1.924;p<0.05)(15F~15G)、注射の72時間後、熟知した環境での餌消費量に影響せずに(t=0.2203;p=0.4151)、NSFにおける摂餌の遅延を低減した(t=2.520;p<0.05)(15H~15I)。(15B~15C)スプラッシュテスト(急性効果)。(15D~15E)高架式十字迷路(長期持続性効果)。(15F~15G)オープンフィールド(長期持続性効果)。(15H~15I)新規環境による摂餌抑制(長期持続性効果)。略語:p<0.05 vs.担体、D:ジアゼパム 1.5mg/kg;i.p.:腹腔内注射、RS:RS67333 1.5mg/kg;V:担体。 5-HT4受容体の単回刺激は、BALB/cJRjマウスにおける長期持続性抗不安および抗うつ効果を導き得る。(15A)BALB/cJRjマウスに、スプラッシュテストを実施する45分前に、RS67333(1.5mg/kg)またはジアゼパム(1.5mg/kg)の単一用量を全身注射した。翌日、マウスは、さらなる用量のRS67333を受けることなくEPMを実施し、その後24時間後にオープンフィールドで、最後にオープンフィールドの24時間後にNSFを受けた。(15B~15C)RS67333は、単回投与後に、エピソード数に影響せずに(t=1.546;p=0.1531)、スプラッシュテストにおいて身繕い時間を増加させた(t=2.294;p<0.05)。(15D~15E)本発明者らは、注射の24時間後、EPMにおいてRS67333の予期された抗不安効果を同定しなかった(t=0.4990;p=0.6286)。しかし、RS67333は、注射の48時間後、合計の歩いた距離に対する中央での距離の比率に影響せずに(t=1.281;p=2292)、OFの中央で過ごした時間を増加させ(t=1.924;p<0.05)(15F~15G)、注射の72時間後、熟知した環境での餌消費量に影響せずに(t=0.2203;p=0.4151)、NSFにおける摂餌の遅延を低減した(t=2.520;p<0.05)(15H~15I)。(15B~15C)スプラッシュテスト(急性効果)。(15D~15E)高架式十字迷路(長期持続性効果)。(15F~15G)オープンフィールド(長期持続性効果)。(15H~15I)新規環境による摂餌抑制(長期持続性効果)。略語:p<0.05 vs.担体、D:ジアゼパム 1.5mg/kg;i.p.:腹腔内注射、RS:RS67333 1.5mg/kg;V:担体。 5-HT4受容体の単回刺激は、BALB/cJRjマウスにおける長期持続性抗不安および抗うつ効果を導き得る。(15A)BALB/cJRjマウスに、スプラッシュテストを実施する45分前に、RS67333(1.5mg/kg)またはジアゼパム(1.5mg/kg)の単一用量を全身注射した。翌日、マウスは、さらなる用量のRS67333を受けることなくEPMを実施し、その後24時間後にオープンフィールドで、最後にオープンフィールドの24時間後にNSFを受けた。(15B~15C)RS67333は、単回投与後に、エピソード数に影響せずに(t=1.546;p=0.1531)、スプラッシュテストにおいて身繕い時間を増加させた(t=2.294;p<0.05)。(15D~15E)本発明者らは、注射の24時間後、EPMにおいてRS67333の予期された抗不安効果を同定しなかった(t=0.4990;p=0.6286)。しかし、RS67333は、注射の48時間後、合計の歩いた距離に対する中央での距離の比率に影響せずに(t=1.281;p=2292)、OFの中央で過ごした時間を増加させ(t=1.924;p<0.05)(15F~15G)、注射の72時間後、熟知した環境での餌消費量に影響せずに(t=0.2203;p=0.4151)、NSFにおける摂餌の遅延を低減した(t=2.520;p<0.05)(15H~15I)。(15B~15C)スプラッシュテスト(急性効果)。(15D~15E)高架式十字迷路(長期持続性効果)。(15F~15G)オープンフィールド(長期持続性効果)。(15H~15I)新規環境による摂餌抑制(長期持続性効果)。略語:p<0.05 vs.担体、D:ジアゼパム 1.5mg/kg;i.p.:腹腔内注射、RS:RS67333 1.5mg/kg;V:担体。
発明の詳細な記載
本開示は、対象におけるストレス誘導性情動障害またはストレス誘導性精神病を予防的に処置するための方法を提供する。また本開示に包含されるのは、対象においてストレスレジリエンスを誘導および/または増強するための方法である。特定の実施形態において、RS-67333(RS67333)、プルカロプリド、PF-04995274、またはその医薬的に許容できる塩、類似体、誘導体もしくは代謝産物などのセロトニン4受容体(5-HTR)の活性化因子(例えば、セロトニン4受容体(5-HTR)のアゴニスト)の有効量が、ストレッサに先立って対象に投与される。
本発明の薬剤/組成物は、治療利益を実現するために治療的に、または予防利益を実現するために予防的に投与されてよい。治療利益は、処置される、根底にあるストレス誘導性情動障害の根絶もしくは向上、および/または根底にある障害に関連する症状の1つもしくは複数の根絶もしくは向上を意味する。予防利益は、ストレス誘導性情動障害の開始の防止もしくは遅延、および/またはストレス誘導性情動障害に関連する症状の1つもしくは複数の開始の防止もしくは遅延を意味する。特定の実施形態において、投与される本発明の薬剤/組成物の有効量は、ストレス関連障害がより重篤な状態に発達または増悪するのを防止する。
特定の実施形態において、予防的投与のために、本発明の薬剤/組成物は、ストレス誘導性情動障害の診断が未だなされていない場合であっても、ストレス誘導性情動障害を発症するリスクのある患者に、またはストレス誘導性情動障害の生理学的症状の1つもしくは複数を報告した患者に、投与されてよい。特定の実施形態において、予防的投与は、症状が臨床的に発現する前に、根底にある障害の生理学的症状の開始を回避するために適用される。この後者の実施形態では、治療は、根底にある適応症の代わりに関連する生理学的症状に関して予防的である。特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物は、ストレッサの再発に先立って投与される。特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物は、特有の症状の開始に先立って投与される。
さらなる実施形態において、本発明は、ストレス誘導性情動障害の処置のための医薬の調製における、本発明の薬剤、あるいはその医薬的に許容できる塩もしくは溶媒和物、その生理学的機能性誘導体もしくは類似体、またはその代謝産物の使用を提供する。
状況、障害または状態の「処置すること」または「処置」は、(1)状況、障害または状態に悩まされ得る、またはその素因があり得るが、状況、障害または状態の臨床症状を未だ経験または提示していない人において発生する状況、障害または状態の臨床症状の出現を防止もしくは遅延すること、あるいは(2)状況、障害または状態を阻害すること、即ち、疾患の発症もしくはその再燃(維持的処置の場合)、または少なくとも1種の臨床症状、兆候もしくはそのテストを停止、低減または遅延すること;あるいは(3)疾患を緩和すること、即ち、状況、障害もしくは状態、または臨床もしくは亜臨床症状もしくは兆候の少なくとも1つの退縮を引き起こすこと、を包含する。
処置される対象への利益は、統計学的に有意であるか、または少なくとも患者もしくは医師に知覚できるかのどちらかである。
本発明の薬剤としては、RS-67,333(RS67333)、プルカロプリド、PF-04995274、その医薬的に許容できる塩もしくは溶媒和物、その類似体、その誘導体(例えば、その生理学的機能性誘導体または類似体)、またはその代謝産物、およびそれらの組み合わせなどの5-HTRアゴニストが挙げられる。
「予防的有効量」は、所望の予防的結果を実現するために有効な量、必要な投与量および期間を指す。特定の実施形態において、予防的用量が障害に先立って、または障害の早期段階に対象で用いられるため、予防的有効量は、治療有効量より少ない。特定の実施形態において、予防的有効量は、治療的有効量と類似しているか、同等であるか、またはそれより多い。
薬物の治療有効量、または有効量は、薬物の所望の活性を実証するのに有効な量である。「治療有効量」は、化合物、障害およびその重症度、ならびに処置される対象の年齢、体重、身体条件および応答性に応じて変動するであろう。特定の実施形態において、5-HTRアゴニスト、あるいはその医薬的に許容できる塩もしくは溶媒和物、またはその生理学的機能性誘導体もしくは類似体、またはその代謝産物の有効量は、ストレス誘導性情動障害の開始を防止もしくは遅延させるのに有効な量、および/またはストレス誘導性情動障害の症状の1つもしくは複数を軽減するのに有効な量である。
本開示は、それを必要とする対象においてストレス誘導性情動障害またはストレス誘導性精神病を防止または遅延するための方法を提供する。方法は、セロトニン4受容体(5-HTR)の活性化因子(例えば、セロトニン4受容体(5-HTR)のアゴニスト)またはその医薬的に許容できる塩、類似体、誘導体もしくは代謝産物を含む医薬組成物の有効量を、ストレッサに先立って対象に投与することを含んでよい。
本開示はまた、それを必要とする対象においてストレスレジリエンスを誘導および/または増強するための方法を提供する。方法は、セロトニン4受容体(5-HTR)の活性化因子(例えば、セロトニン4受容体(5-HTR)のアゴニスト)またはその医薬的に許容できる塩、類似体、誘導体もしくは代謝産物を含む医薬組成物の有効量を、ストレッサに先立って対象に投与することを含んでよい。
本発明の組成物は、非限定的に、鼻内、経口、経皮、眼内、腹腔内、吸入、静脈内、脳室内(ICV)、大槽内注射または輸注、皮下、インプラント、経腟、舌下、尿道(例えば、尿道坐剤)、皮下、筋肉内、静脈内、直腸、舌下、粘膜、眼科、脊髄、髄腔内、関節内、動脈内、クモ膜下、気管支およびリンパ管投与を含む、当業者に知られる任意の方法により投与されてよい。外用配合剤は、ゲル、軟膏、クリーム、エアロゾルなどの形態であってよく;鼻内配合剤は、スプレーまたは液滴として送達され得;経皮配合剤は、経皮パッチまたはイオントフォレーシスを介して投与されてよく;吸入配合剤は、ネブライザまたは類似のデバイスを用いて送達され得る。組成物はまた、錠剤、丸薬、カプセル、半固形、粉末、持続放出性配合剤、溶液、懸濁液、エリキシル、エアロゾル、または任意の他の適当な組成物の形態をとり得る。
特定の実施形態において、対象は、静脈内、経口、経皮または鼻内投与を介して、本発明の薬剤/組成物で処置される。特定の実施形態において、対象は、本発明の薬剤/組成物を注射される。
特定の実施形態において、対象は、ストレッサに先立ち、その間に、および/またはその後に、本発明の薬剤/組成物の有効量の単一用量で処置される。幾つかの態様において、対象は、ストレッサに先立ち、その間に、および/またはその後に、本発明の薬剤/組成物の有効量の複数の用量で処置される。
特定の実施形態において、5-HTRアゴニスト(RS-67,333(RS67333)、プルカロプリド、およびPF-04995274)、またはその医薬的に許容できる塩もしくは溶媒和物、その類似体、その誘導体、もしくは代謝産物は、医薬的に許容できる担体、賦形剤または希釈剤を含む組成物中で投与される。また本明細書で提供されるのは、ストレス誘導性情動障害の予防的処置における使用のための、5-HTRアゴニスト(RS-67,333(RS67333)、プルカロプリド、およびPF-04995274)、またはその医薬的に許容できる塩もしくは溶媒和物、その類似体、その誘導体、もしくはその代謝産物と、医薬的に許容できる担体、賦形剤または希釈剤を含む、医薬組成物である。
「患者」または「対象」は、哺乳動物を指し、ヒトおよび獣医学的対象を包含する。特定の実施形態において、対象は、哺乳動物である。
本発明の薬剤(例えば、5-HTR活性化因子)は、非限定的に、5-HTR活性を活性化/増加させること、5-HTRレベルを活性化/増加させること、および/または5-HTR遺伝子発現を活性化/増加させること、を含む任意の機序を通して5-HTRを活性化してよい。用語「5-HTRの活性化因子」、「5-HT4受容体の活性化因子」、「5-HT4受容体活性化因子」、および「5-HTR活性化因子」は、本明細書において互換的に用いられる。
「活性化」、「上方制御」または「増加させる」は、試験される条件に及ぼす任意の正の効果を意味し、これは、全体的または部分的であってよい。したがってタンパク質(例えば、5-HT4受容体または5-HTR)のレベルまたは活性が検出される場合、本発明の薬剤/組成物は、タンパク質(例えば、5-HTR受容体または5-HTR)のレベルまたは活性を活性化すること、上方制御すること、または増加させることが可能である。本発明の薬剤により実現されるタンパク質のレベルまたは活性の活性化または上方制御は、本発明の薬剤/組成物の非存在下でのタンパク質(例えば、5-HT4受容体または5-HTR)のレベルまたは活性に比較して、少なくとも20%、少なくとも30%、少なくとも40%、少なくとも50%、少なくとも60%、少なくとも70%、少なくとも80%、少なくとも90%、またはそれより多いなどの、少なくとも10%であってよい。
半数効果濃度(EC50)は、指定された暴露時間後に基底値と最大値の間の半量の応答を誘導する薬剤の濃度を指す。pEC50は、EC50の負の対数と定義される:
pEC50=-log10(EC50)。
特定の実施形態において、本発明の薬剤は、約3~約13、約4~約12、約5~約11、約6~約10、約6~約9、約6~約8、約6~約7、約7~約10、約7~約9、約7~約8、約8~約10、約8~約9、約9~約10、約5~約10、約6、約6.5、約7、約7.5、約8、約8.5、約9、約9.5、または約10の範囲の、5-HT4受容体活性を活性化する際のpEC50を有する。
Kiは、受容体に対する薬剤(アゴニストなどの活性化因子)の親和性を表す。放射性リガンド競合結合アッセイを利用して測定される場合、それは、放射性リガンドが存在しなければ受容体の50%を占める拮抗するリガンドのモル濃度である。pKiは、Ki値の負の対数である。
特定の実施形態において、本発明の薬剤は、約3~約13、約4~約12、約5~約11、約6~約10、約6~約9、約6~約8、約6~約7、約7~約10、約7~約9、約7~約8、約8~約10、約8~約9、約9~約10、約5~約10、約6、約6.5、約7、約7.5、約8、約8.5、約9、約9.5、または約10の範囲の、5-HT4受容体へのpKiを有する。
5-HTRアゴニスト
5-HTRは、Gタンパク質Gsを活性化しcAMP/PKAシグナル伝達経路を刺激するGタンパク質共役受容体(GPCR)であり、cAMP応答エレメント結合タンパク質(CREB)のリン酸化をもたらし、その結果、神経可塑性に関与する多数の遺伝子の発現をもたらす(A10)。5-HTRの大部分は、霊長類およびげっ歯類の脳、具体的には線条体の中型有棘ニューロン、海馬のアンモン角(CA1およびCA3)、歯状回の顆粒細胞、ならびに皮質および扁桃体のグルタミン酸作動性ニューロン(A11)で発現される。加えて、5-HTRはまた、視床下部、腹側淡蒼球、嗅球、中隔野、および黒質において見出される。5-HTRが欠如したマウスは、無快感行動および文脈依存性の不安様行動を呈し(A12)、様々な5-HTRアゴニストが、抗うつおよび抗不安様活性を発揮し得る(A6)。
ヒトにおいてまたはげっ歯類においてにかかわらず、セロトニン作動性タイプ4受容体(5-HT)の発現は、大脳辺縁系領域(PFC、HPCおよびNAc)に見出される。加えて、大脳基底核、即ち尾状核およびレンズ核(被殻および淡蒼球)、黒質、および扁桃体もまた、5-HT受容体を発現する。5-HT受容体は、線条体の遠心性脊髄GABA作動性ニューロン、海馬のアンモン角(CA1およびCA3)、歯状回の顆粒細胞、ならびに皮質、海馬および扁桃体のグルタミン酸作動性ニューロンの細胞体樹状突起レベルでおよび軸索終末のレベルで発現される。
5-HT受容体はまた、末梢レベルで、特に活性化が陽性変力効果を発揮する心臓レベルで、腸の運動性に関与する胃腸管のレベルで、コルチコステロンの分泌において役割りを担う副腎のレベルで、および平滑筋の収縮を引き起こす膀胱のレベルで、見出される。
5-HT受容体は、7つの膜貫通型ドメインを有する受容体である。N-末端領域は、細胞外環境の方に向き、一方でGsタンパク質に共役されたC-末端ドメインは、細胞質の方に向いている。例えばアゴニストによる、5-HT受容体の活性化は、cAMPの生成を担うアデニル酸シクラーゼ(AC)を刺激するGsタンパク質の動員をもたらし得る。cAMPにより活性化されるプロテインキナーゼA(PKA)は、異なるイオン電流、特にカリウム電流をモジュレートし、その阻害は、神経の過剰興奮をもたらす。PKAはまた、cAMPに対する応答エレメントを結合するタンパク質(CREB-cAMP応答エレメント結合タンパク質)をリン酸化でき、これは、認知、気分および細胞生存に関与する、神経栄養性脳因子(BDNF、脳由来神経栄養性因子)の転写の増加をもたらす。
用語「アゴニスト」は、5-HTRなどの1つまたは複数の受容体に結合しそれを活性化できる物質、薬剤または化合物を指し得る。用語「アゴニスト」は、標的タンパク質の活性または発現を増強もしくは始動するかにかかわらず、標的タンパク質(例えば、5-HTRなどの1つまたは複数の受容体)の生物学的機能を始動または増強する能力を有する化合物を指し得る。5-HTRアゴニストは、5-HT4受容体の作用を活性化する化合物であってよい。用語「アゴニスト」は、標的タンパク質の生物学的役割の文脈で定義されてよい。一実施形態において、アゴニストは、受容体(例えば、5-HTR)に結合し、受容体を活性化して生物学的応答を生じる薬剤である。本明細書で提供されるアゴニストは、標的タンパク質と特異的に相互作用し得る(例えば、結合し得る)が、標的タンパク質がメンバーであるシグナル伝達経路の他のメンバーと相互作用することにより標的タンパク質の生物学的活性を始動または増強する化合物もまた、この定義に具体的に包含される。5-HTRアゴニストは、5-HTRの作用を活性化する化合物または薬剤であってよい。5-HTRアゴニストは、直接的または間接的に5-HTRを通して作用して、または5-HTRに作用して、薬理学的効果を生じる任意の薬剤であってよい。用語「5-HTRのアゴニスト」、「5-HT4受容体のアゴニスト」、「5-HT4受容体アゴニスト」および「5-HTRアゴニスト」は、本明細書において互換的に用いられる。
5-HTRアゴニストは、5-HT4受容体に選択的であってよく、またはそれは、非選択的であり、他のセロトニン受容体でアゴニストまたはアンタゴニスト活性を呈してもよい。一実施形態において、5-HTRアゴニストは、5-HT4受容体に選択的である。
5-HTRアゴニストは、フルアゴニスト、部分アゴニスト、5-HTRアゴニスト/アンタゴニスト混合物などを包含してよい。
「フルアゴニスト」は、アゴニストが受容体で誘発され得る最大応答で受容体に結合しそれを活性化する薬剤を指し得る。薬剤は、受容体の相対数および受容体共役の差異に応じて、一部の組織ではフルアゴニストとして作用し、他の組織では部分アゴニストとして作用してよい。
「部分的アゴニスト」は、所与の受容体を結合しそれを活性化できるが、「フルアゴニスト」または完全アゴニストに比べて受容体で部分的有効性のみを有する化合物を指し得る。部分的アゴニストは、受容体占有についてフルアゴニストと競合する場合、およびフルアゴニストのみで観察される効果または活性化に比較して受容体活性化の正味の減少を生じる場合、アンタゴニストとして作用し得る。部分的アゴニストは、アゴニスト/アンタゴニスト混合物を指してよく、それは異なる用量範囲内で受容体機能に差次的に影響する。例えば、部分的アゴニストは、低用量ではアゴニストとして、および高用量ではアンタゴニストとして役立ってよい。部分的アゴニストは、フルアゴニストに比べ受容体のコンフォメーション変化を誘導するための低減された有効性(典型的には40~80%)を有する化合物であってよく、それは低用量でアゴニスト効果を誘導するが、高用量でアンタゴニスト効果を誘導し得る。
5-HTRアゴニストは、インドール、ベンズアミド、ベンゾアート、アリールケトン、またはベンズアミドであってよい。
5-HTRアゴニストの非限定的例としては、1-(4-アミノ-5-クロロ-2-メトキシフェニル)-3-[1(n-ブチル)-4-ピペリジニル]-1-プロパノンHCl(RS-67,333またはRS67333)、4-アミノ-5-クロロ-2,3-ジヒドロ-N-[1-3-メトキシプロピル)-4-ピペリジニル]-7-ベンゾフランカルボキサミド一塩酸塩(プルカロプリド)、4-[4-[4-テトラヒドロフラン-3-イルオキシ)-ベンゾ[d]イソオキサゾール-3-イルオキシメチル]-ピペリジン-1-イルメチル]-テトラヒドロピラン-4-オール(PF-04995274)、およびそれらの組み合わせが挙げられる。同じく5-HTRアゴニストの非限定的例としては、2-[1-(4-ピペロニル)ピペラジニル]ベンソチアゾール(PPB)、5-メトキシトリプタミン、PRX-03140、シサプリド、((±)-シス-4-アミノ-5-クロロ-N-[1-[3-(4-フルオロフェノキシ)プロピル]-3-メトキシ-4-ピペリジニル]-2-メトキシベンズアミド一水和物)、BIMU-8(2,3-ジヒドロ-N-((3-エンド)-8-メチル-8-アザビシクロ[3.2.1]オクタ-3-イル]-3-(1-メチルエチル)-2-オキソ-1H-ベンゾイミダゾール-1-カルボキサミド、RS67506(メチルスルホニルアミノ)エチル-4-ピペリジニル]-1-プロパノン塩酸塩)、モサプリド(4-アミノ-5-クロロ-2-エトキシ-N-[[4-((4-フルオロフェニル)メチル]-2-モルホリニル]メチル]ベンズアミドシトラート)、テガセロド(2-[(5-メトキシ-1H-インドール-3-イル)メチレン]―N-ペンチル-ヒドラジンカルボキシイミドアミドマレアート)、ML10302(4-アミノ-5-クロロ-2-メトキシ安息香酸 2-(1-ピペリジニル)エチルエステル塩酸塩)、ベルセトラグ(TD-5108)(N-[(1R,3R,5S)-8-[(2R)-2-ヒドロキシ-3-(N-メチルメタンスルホンアミド)プロピル]-8-アザビシクロ[3.2.1]オクタン-3-イル]-2-オキソ-1-(プロパン-2-イル)-1,2-ジヒドロキノリン-3-カルボキサミド)、ナロナプリド(naropride)(ATI-7505)([(3R)-1-アザビシクロ[2.2.2]オクタン-3-イル]6-[(3S,4R)-4-[(4-アミノ-5-クロロ-2-メトキシベンゾイル)アミノ]-3-メトキシピペリジン-1-イル]ヘキサノアート、シニタプリド(4-アミノ-N-[1-(シクロヘキサ-3-エン-1-イルメチル)ピペリジン-4-イル]-2-エトキシ-5-ニトロベンズアミド)、メトクロプラミド(4-アミノ-5-クロロ-N-(2-(ジエチルアミノ)エチル)-2-メトキシベンズアミド)、レンザプリド(ATL-1251、BRL24924、(±)-エンド-4-アミノ-5-クロロ-2-メトキシ-N-(1-アザビシクロ[3.3.1]ノナ-4-イル)ベンズアミド)、RQ-00000010(4-{[4-({[4-(2,2,2-トリフルオロエトキシ)-1,2-ベンゾイソオキサゾール-3-イル]オキシ}メチル)ピペリジン-1-イル]メチル}テトラヒドロ-2H-ピラン-4-カルボン酸)、SUVN-D4010(1-イソプロピル-3-{5-[1-(3-メトキシプロピル)ピペリジン-4-イル]-[1,3,4]オキサジアゾール-2-イル}-1H-インダゾール)、TD-8954(4-{(4-[(2-イソプロピル-1H-ベンゾイミダゾール-4-カルボニル)アミノ]メチル}-ピペリジン-1-イルメチル)ピペリジン-1-カルボン酸メチルエステル)、SC53116(4-アミノ-5-クロロ-N-[[(1S,7aS)-ヘキサヒドロ-1H-ピロリジン-1-イル]メチル]-2-メトキシ-ベンズアミド)、BIMU-1(3-エチル-2,3-ジヒドロ-N-(8-メチル-8-アザビシクロ[3.2.1]オクタ-3-イル)-2-オキソ-1H-ベンゾイミダゾール-1-カルボキサミド塩酸塩)、ドネコプリド(MR31147、1-(4-アミノ-5-クロロ-2-メトキシフェニル)-3-[1-(シクロヘキシルメチル)-4-ピペリジニル]プロパン-1-オン);LS650155(Caeserod、5-(8-アミノ-7-クロロ-2,3-ジヒドロベンゾ[b][1,4]ジオキシン-5-イル)-3-(1-フェネチルピペリジン-4-イル)-1,3,4-オキサジアゾール-2(3H)-オン塩酸塩);PF-00885706:N-[2-[(1R,8S)-4-[[4-(シクロブチルアミノ)-5-(トリフルオロメチル)ピリミジン-2-イル]アミノ]-11-アザトリシクロ[6.2.1.02,7]ウンデカ-2(7),3,5-トリエン-11-イル]-2-オキソエチル]アセトアミド、およびそれらの組み合わせが挙げられる。
RS-67,333は、高親和性の5-HTR部分的アゴニストである[22]。この薬物は、アルツハイマー病(AD)の5×FADマウスモデルにおいて、行動欠陥を改善すること、アミロイド斑の数およびアミロイドベータ(Aβ)種のレベルを減少させること、ならびに海馬アストログリオーシスおよびマイクログリオーシスを減少させることに効果的である[23]。RS67333は、アリールケトンである。ピペリジン上にn-ブチル基を組み入れることは、、大きな効力、最適な選択性および優れた生物学的利用度を有してアゴニスト活性を上昇させた。その大きな疎水性は、血液脳関門の通過を支援し、脳内への浸透を可能にする(Eglen et al., Pharmacological characterization of two novel and potent 5-HT4 receptor agonists, RS 67333 and RS 67506, in vitro and in vivo. Br. J. Pharmacol.1995;115(8):1387-92)。
プルカロプリドは、選択的な高親和性5-HTRアゴニストである[24]。プルカロプリドは、5-HT受容体への高い選択性を呈するがhERG(ヒトエーテル・ア・ゴー・ゴー・関連遺伝子)チャネルへの親和性を呈しない、ベンゾフランのファミリーの誘導体である。2018年に、それは、慢性便秘用にFDAの認可を受け、現在、慢性偽性腸閉塞についてテストされている。プルカロプリドはまた、健常志願者における急性(例えば、単回投与)または慢性(例えば、1週間)投与後の情動処理への効果を調査するために、2つの別個の臨床試験においてテストされた[25、26]。
PF-04995274は、強力な部分的5-HTRアゴニストである[27]。臨床試験が、健常成人における精神運動および認知機能のスコプラミン誘導性欠損について、PF-04995274を単独で、またはドネペジルと併用で評価するために実行されたが、この試験は、安全性の懸念からではなく、終了された[28]。現在、臨床試験は、PF-04995274の補助的投与がプラセボに比較して仲介された処置抵抗性うつ病(TRD)患者において情動処理および神経活性へのプラスの効果を有するかどうかをテストするために進行中である[29]。
テガセロドは、5-HT受容体の部分的アゴニストであり、5-HT(アゴニスト)および5-HT2A-C(アンタゴニスト)受容体に対して中等度の親和性を有する。
シサプリドは、5-HT受容体を活性化することにより、腸内神経系において遊離されたアセチルコリンを増加させる、副交感神経作動薬である。
シニタプリドは、5-HT1Aおよび5-HT受容体アゴニストとして、および5-HT2A受容体アンタゴニストとして作用する、ベンズアミドである。
モサプリドは、選択的5-HT受容体アゴニストであり、その主要な活性代謝産物は、5-HT受容体アンタゴニストとして作用する。
メトクロピラミドは、5-HTおよび5-HT3A受容体アゴニストである。それは、D2受容体アンタゴニストである。それはまた、M1ムスカリン作動性受容体アゴニストおよびアセチルコリンエステラーゼ阻害剤である。
SUVN-D4010は、強力な選択的かつ効果的な5-HT4受容体部分的アゴニストであり、経口経路を介する良好な生物学的利用度を有する。
5-HTRアゴニスト/アンタゴニスト混合物としては、ブスピロン、ミアンセリン、トラゾドン、およびミルタザピンが挙げられるが、これらに限定されない。
用語「セロトニン」、「5-ヒドロキシトリプタミン」および「5-HT」は、中枢神経系のセロトニン作動性ニューロンおよび胃腸管のエンテロクロマフィン細胞におけるヒドロキシル化および脱炭酸によりトリプトファンから生成される、フェノール性アミン神経伝達物質を指す。セロトニンは、メラトニンの前駆体である。
用語「医薬的に許容できる誘導体」は、レシピエントへの投与の際に活性化合物またはその活性代謝産物もしくは残渣を(直接的または間接的に)提供できる化合物の任意の医薬的に許容できる塩、溶媒和物、プロドラッグ、例えばエステル、または他の前駆体を指す。そのような塩としては、医薬的に許容できる塩基または酸付加塩、ならびに医薬的に許容できる金属塩、アンモニウム塩およびアルキル化アンモニウム塩が挙げられる。そのような誘導体は、過度の実験を行わなくとも、当業者に認識可能である。誘導体は、例えばBurger’s Medicinal Chemistry and Drug Discovery, 5th Edition, Vol 1: Principles and Practiceに記載されており、その文献は、参照により本明細書に組み入れられる。特定の実施形態において、医薬的に許容できる誘導体としては、塩、溶媒和物、エステル、カルバマート、およびリン酸エステルが挙げられる。
本発明の薬剤/組成物は、経口、静脈内(i.v.またはIV)、鼻内(i.n.またはIN)、筋肉内(i.m.またはIM)、仙骨(caudal)、髄腔内、および皮下(s.c.)経路を含む、様々な経路により投与されてよい。
医薬化合物
本発明の方法で用いられる薬剤としては、本明細書に記載された化合物の全ての水和物、溶媒和物、および複合体が挙げられる。キラル中心または他の形態の異性体中心が本発明の化合物中に存在する場合、鏡像異性体およびジアステレオマーを含む、そのような異性体または複数の異性体の全ての形態が、本明細書に含まれると企図される。キラル中心を含有する化合物は、ラセミ混合物、鏡像異性体が豊富な混合物として用いられてよく、またはラセミ混合物は、周知の技術を利用して分離されてよく、個々の鏡像異性体が、単独で使用されてよい。本開示に記載される化合物は、ラセミ形態であるか、または個々の鏡像異性体として存在してもよい。鏡像異性体は、Pure and Applied Chemistry 69, 1469-1474, (1997) IUPACに記載される技術などの公知の技術を利用して分離され得る。化合物が不飽和炭素-炭素二重結合を有する場合、シス(Z)およびトランス(E)の両方の異性体が、本開示の範囲内である。化合物がケト-エノール互変異性体などの互変異性体形態で存在し得る場合、各互変異性体形態は、均等に存在するか、または1つの形態が主に存在するかにかかわらず本開示に含まれると企図される。
本開示で用いられる化合物の構造が不斉炭素原子を含む場合、そのような化合物は、ラセミ体、ラセミ混合物、および単離された単一鏡像異性体として存在し得る。これらの化合物の全てのそのような異性体形態が、本開示に明確に含まれる。各立体中心炭素は、RまたはS立体配置であってよい。したがってそのような不斉体(例えば、全ての鏡像異性体およびジアステレオマー)から生じる異性体は、他に示されない限り、本開示の範囲内に含まれることが、理解されなければならない。そのような異性体は、”Enantiomers, Racemates and Resolutions” by J. Jacques, A. Collet and S. Wilen, Pub. John Wiley & Sons, NY, 1981に記載されるものなど、古典的な分離技術により、および立体化学で制御された合成により、実質的に純粋な形態で得ることができる。例えば、分解は、キラルカラムでの分取クロマトグラフィーにより実行されてよい。
本開示はまた、本明細書に開示された化合物に存在する原子の全ての同位体の使用を含むと企図される。同位体は、同一原子数と異なる質量数を有するそれらの原子を包含する。同位体標識された化合物は、一般に当業者に知られる従来技術により、または用いられる非標識試薬の代わりに適当な同位体標識試薬を用いた本明細書に記載のものと類似の工程により、調製され得る。
本開示の化合物は、塩形態であってよい。本明細書で用いられる「塩」は、本発明の化合物の酸または塩基、塩を作製することにより修飾された本発明の化合物の塩である。哺乳動物の処置に用いられる化合物の場合、塩は、医薬的に許容できる。医薬的に許容できる塩の例としては、アミンなどの塩基性残基の無機酸または有機酸の塩;フェノールなどの酸性残基のアルカリまたは有機塩が挙げられるが、これらに限定されない。塩は、有機または無機酸を利用して作製され得る。そのような酸性塩は、塩化物、臭化物、硫酸塩、硝酸塩、リン酸塩、スルホン酸塩、ギ酸塩、酒石酸塩、マレイン酸塩、リンゴ酸塩、クエン酸塩、安息香酸塩、サリチル酸塩、アスコルビン酸塩などである。フェノラート塩は、アルカリ土類金属塩、ナトリウム、カリウムまたはリチウムである。これに関する用語「医薬的に許容できる塩」は、本発明の化合物の相対的に非毒性の無機および有機酸または塩基の付加塩を指す。これらの塩は、本発明の化合物の最終的な単離および精製の際に、または遊離塩基もしくは遊離酸形態の本発明の精製化合物を適切な有機もしくは無機酸もしくは塩基で別々に処理すること、およびこうして形成された塩を単離することにより、その場で調製され得る。代表的な塩としては、臭化水素酸塩、塩酸塩、硫酸塩、重硫酸塩、リン酸塩、硝酸塩、酢酸塩、吉草酸塩、オレイン酸塩、パルミチン酸塩、ステアリン酸塩、ラウリン酸塩、安息香酸塩、乳酸塩、リン酸塩、トシル酸塩、クエン酸塩、マレイン酸塩、フマル酸塩、コハク酸塩、酒石酸塩、ナプシル酸塩、メシル酸塩、グルコヘプトン酸塩、ラクトビオン酸塩、およびラウリルホスホン酸塩などが挙げられる(例えば、Berge et al. (1977) ”Pharmaceutical Salts”, J. Pharm. Sci.66:1-19参照)。
本発明の方法はまた、本発明の化合物の生理学的機能性誘導体を投与することを包含する。本明細書で用いられる用語「生理学的機能性誘導体」は、本発明の化合物、またはその活性代謝産物、またはこの化合物の医薬的に許容できる塩、水和物もしくは溶媒和物を産するためにインビボで変換された化合物(例えば、薬物塩躯体)を指す。変換は、例えば血中の加水分解などの様々な機序により(例えば、代謝または化学的工程により)起こり得る。プロドラッグは、そのような誘導体であり、プロドラッグの使用の議論は、T. Higuchi and W. Stella,“Pro-drugs as Novel Delivery Systems,” Vol.14 of the A.C.S. Symposium Series、およびBioreversible Carriers in Drug Design, ed. Edward b. Roche, American Pharmaceutical Association and Pergamon Press, 1987に提供される。
投与量
特定の実施形態において、本発明の薬剤の有効量は、約0.01~約3mg/キログラム対象体重(mg/kg)、即ち約0.01mg/kg~約3mg/kg体重の用量である。特定の実施形態において、本発明の化合物の有効量は、0.001~およそ3mg/kg体重、0.001~およそ2mg/kg体重、約0.01mg/kg~約3mg/kg体重、約0.01~約2mg/kg体重、約0.01~約1.5mg/kg体重、約0.05~約1.4mg/kg体重、約0.05~約1.3mg/kg体重、約0.05~約1.2mg/kg体重、約0.05~約1.1mg/kg体重、約0.01~約1mg/kg体重、または約0.05~約0.7mg/kg体重の範囲である。幾つかの態様において、用量は、約0.05~約0.5mg/kgである。幾つかの態様において、用量は、約0.5mg/kg体重未満、約0.4mg/kg体重未満、または約0.3mg/kg体重未満である。幾つかの態様において、本発明オンの化合物の有効用量は、約0.01mg/kg~約1.5mg/kg体重の範囲の用量である。幾つかの態様において、本発明の化合物の有効用量は、約0.01mg/kg~約1mg/kg体重の範囲の用量である。幾つかの態様において、本発明の化合物の有効量は、約0.01mg/kg~約0.75mg/kg体重の範囲の用量である。幾つかの態様において、本発明の化合物の有効量は、約0.75mg/kg~約1.5mg/kg体重の範囲の用量である。幾つかの態様において、本発明の化合物の有効量は、約0.5mg/kg~約1.2mg/kg体重の範囲の用量である。幾つかの態様において、本発明の化合物の有効量は、約0.05mg/kg~約0.5mg/kgの範囲の用量である。幾つかの態様において、本発明の化合物の有効量は、約0.2mg/kgまたは約0.4mg/kg体重の用量である。幾つかの態様において、本発明の化合物の用量は、約0.01~約1mg/kg、約0.1~約0.5mg/kg、約0.8~約1.2mg/kg、約0.7~約1.1mg/kg、約0.05~約0.7mg/kg、約0.01mg/kg、約0.05mg/kg、約0.1mg/kg、約0.2mg/kg、約0.3mg/kg、約0.4mg/kg、約0.5mg/kg、約0.6mg/kg、約0.7mg/kg、約0.8mg/kg、約0.9mg/kg、約1.0mg/kg、約1.1mg/kg、約1.2mg/kg、約1.3mg/kg、約1.4mg/kg、約1.5mg/kg、約1.6mg/kg、約1.7mg/kg、約1.8mg/kg、約1.9mg/kg、約2.0mg/kg、または約3mg/kg体重である。
特定の実施形態において、投与あたりの本発明の化合物の用量は、約1~約250mg、約10mg~約300mg、約10mg~約250mg、約10~約200mg、約15~約175mg、約20~約175mg、約8mg~約32mg、約50mg~約75mg、約25~約150mg、約25~約125mg、約25~約100mg、約50~約100mg、約50mg~約75mg、約75mg~約100mg、または約75mg~約200mg、約1mg、2mg、4mg、5mg、10mg、15mg、20mg、25mg、30mg、35mg、40mg、45mg、50mg、55mg、60mg、65mg、70mg、75mg、80mg、85mg、90mg、95mg、100mg、110mg、120mg、130mg、140mg、150mg、160mg、170mg、180mg、190mg、200mg、210mg、220mg、230mg、240mg、および250mgである。幾つかの態様において、本発明の化合物の用量は、約50mgである。幾つかの態様において、本発明の化合物の用量は、約75mgである。幾つかの態様において、本発明の化合物の総用量は、約100mgである。
特定の実施形態において、本発明の薬剤の治療有効量は、薬剤の1つまたは複数の副作用をもたらすレベル未満である。
幾つかの態様において、本発明の薬剤dの(治療)有効量は、約0.01mg~約1000mg、約0.01mg~約500mg、約0.1mg~約250mg、またはその中の任意の量もしくは範囲である。別の態様において、本発明の薬剤の(治療)有効量は、例えば0.01mg、0.025mg、0.05mg、0.1mg、0.5mg、1mg、5mg、10mg、25mg、50mg、55mg、60mg、65mg、70mg、75mg、80mg、90mg、95mg、100mg、150mg、200mg、250mg、または500mgである。
特定の実施形態において、本発明の薬剤の治療有効量は、処置される、または予防的に処置される疾患/障害の条件、対象の年齢、体重、一般的健康状態、性別、および食事、薬物の投与間隔、投与経路、排泄速度、および組み合わせに応じて調整されてよい。
本発明の薬剤の初回用量は、より大きく、その後、1種または複数のより小さな維持用量が続いてよい。他の範囲が、処置への対象の応答に応じて可能である。初回用量は、次の投与用量と同じでも、またはより低くても、またはより高くてもよい。
本発明の薬剤/組成物は、1日1回、週1回、2週に1回、1日数回、週2回、1日おき、2週に1回、年4回、週に数回、週2回、月1回などで投与されてよい。処置の期間および頻度は、処置への対象の応答に依存してよい。
特定の実施形態において、対象は、本発明の薬剤/組成物を1用量、2用量、3用量、4用量、5用量、6用量、またはより多く投与されてよい。特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物の単一用量が、本発明の方法で投与される。特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物の複数の用量(例えば、2用量、3用量、4用量、5用量、6用量、7用量、8用量、9用量、10用量またはより多く)が、本発明の方法で投与される。
特定の実施形態において、対象に投与される本発明の薬剤/組成物の1つより多くの用量が存在する場合、第二の用量は、第一の用量より低い。特定の実施形態において、第二の用量は、多くとも第一の用量の量の半分、4分の1、または10分の1である量である。
用量の数および頻度は、組成物の投与への対象の応答、例えば患者の症状の1つまたは複数が改善するかどうか、および/または対象が有害反応を起こさずに組成物の投与に忍容するかどうか、に基づいて決定されてよい。
特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物は、少なくとも1日1回、少なくとも1日2回、少なくとも1日3回、またはより多く投与される。特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物は、少なくとも週1回、少なくとも週2回、少なくとも週3回、またはより頻繁に投与される。特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物は、少なくとも月2回または少なくとも月1回投与される。
本発明の方法を利用する処置は、必要な限り継続できる。
投与の時間枠
特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物は、ストレッサに先立って対象に投与される。特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物は、ストレッサに先立って、またはストレッサの後の両方で対象に投与される。特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物は、ストレッサの後に対象に投与される。特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物は、ストレッサに先立って対象に投与され、ストレッサの再発または異なるストレッサに再度先立って投与される。
特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物は、ストレッサの、約12時間~約4週間、約18時間~約4週間、約1日~約3.5週間、約2日~約3週間、約3日~約3週間、約4日~約3週間、約5日~約3週間、約6日~約3週間、約2日~約2.5週間、約3日~約2.5週間、約4日~約2.5週間、約5日~約2.5週間、約6日~約2.5週間、約1週間~約2.5週間、約1週間~約2.5週間、約1週間~約2週間、約5分間~約3日、約10分~約2日、約15分~約24時間、約20分~約12時間、約30分~約8時間、約45分~約5時間、約1時間~約12時間、約2時間~約5時間、約5分、約10分、約15分、約20分、約30分、約45分、約1時間、約2時間、約3時間、約4時間、約5時間、約6時間、約8時間、約10時間、約12時間、約15時間、約1日、約1.5日、約2日、約3日、約4日、約5日、約6日、約1週間、約8日、約9日、約10日、約11日、約12日、約13日、約2週間、約2.5週間、約3週間、約3.5週間、または約4週間前および/または後に対象に投与される。
特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物の投与は、最大2日間、最大3日間、最大4日間、最大5日間、最大6日間、最大1週間、最大2週間、最大3週間、最大4週間、約2日間、約3日間、約4日間、約5日間、約6日間、約1週間、約2週間、約3週間、約4週間、約5週間、約6週間、約7週間、約8週間、約9週間、約10週間、またはより長い期間、継続される。
特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物は、処置あたり1回、2回、少なくとも2回、少なくとも3回、少なくとも4回、少なくとも5回、少なくとも6回、少なくとも7回、少なくとも8回、少なくとも9回、またはより多く投与される。
特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物は、少なくとも1日1回、少なくとも1日2回、少なくとも1日3回、少なくとも週1回、少なくとも週2回、少なくとも週3回、少なくとも月1回、少なくとも月2回、またはより頻繁に投与される。処置は、必要な限り継続できる。本発明の薬剤/組成物は、1日1回、週1回、2週間に1回、1日数回、週2回、1日おき、2週間に1回、年4回、週に数回、週2回、月1回などで投与されてよい。処置の期間および頻度は、処置への対象の応答に依存してよい。
ストレッサ
ストレッサは、ストレスを引き起こす刺激である。それは、身体の温度、血圧、および/または他の機能の恒常性を崩壊する事象または他の要因であり得る。特定の実施形態において、ストレッサは、外傷性のまたはストレスのかかる事象である。ヒトは、脳および思考過程を洗練させてきたため、崩壊を予想することもまた、ストレッサになり得る。特定の実施形態において、ストレッサは、損傷、外傷、闘争、戦争、手術、事故、違法な傷害、児童虐待、自然災害もしくは人為的災害、衝突、悲しみ、空腹、熱、低温、化学的暴露、自己免疫疾患、感染性疾患、ウイルス感染、癌、倦怠感、物理的苦痛、神経障害、痛覚過敏、アロディニア、感情的苦痛、またはうつ病である。外傷性事象は、個人の生活もしくは身近な人の生活を脅かす事象もしくは何かの物事であってよく、または目撃された何かの物事であり得る。米国特許出願公開第20140018339号。
ストレッサは、急性であってよく、または慢性であってよい。
ストレスへの応答により改変される、数多くの生理学的工程がある。これらの中でも、コルチゾール、コルチコトロピン、カテコールアミンおよびセロトニンのレベルが改変される。これらのレベルは、急性ストレッサが除去された後、基底値に戻る(McEwen N Eng J Med 1998 338(3):171-179)。これらの生化学的なストレスマーカは順次、病的健康状態および精神社会学的障害をもたらす。結果として、ストレスは、身体的および心的健康状態において重要な役割を担う。ストレスは、疾患の開始または感受性に影響し得る。それはまた、疾患の根底に別の病理生理学的作用がある場合でも、疾患の進行または経過に影響し得る。既存の疾患からの回復もまた、ストレスのせいで遅延され得る。たとえば、ストレスは、高血圧、心臓疾患、頭痛、大腸炎、過敏性腸症候群、側頭下顎骨関節障害、癌、胃潰瘍、不眠症、皮膚障害および喘息の寄与因子である。ストレスはまた、多発性硬化症、糖尿病、ヘルペス、心的疾患、物質乱用、および暴力または攻撃的傾向の存在を特徴とする精神障害などの他の状態を悪化させ得る。特に、ストレスは、機能的身体疾患、情動障害および大うつ病性障害(MDD)に寄与する。これらは、慢性疲労症候群(CFS)、線維筋痛症(FMS)、湾岸戦争症候群、不安症および外傷後ストレス障害(PTSD)などの障害を含む。正常な運動または睡眠パターンが崩壊するストレッサ。
追加的な使用例としては、軍隊の隊員(現場の戦闘兵、戦場の外科医など)および軍隊の使役犬をストレスから防御するための軍事配備に先立った投与が挙げられる。潜在的な非軍隊使用例としては、警察、消防士、ファーストレスポンダー、救急医療技術者(EMT)、救急治療室(ER)の医師、刑務官(および受刑者)、人道支援員、および難民が挙げられるが、これらに限定されない。
特定の実施形態において、対象は、対象(初期応答者または軍隊要員など)が外傷性ストレスへの暴露の直後に外傷性ストレスに暴露される可能性がある状況に先立って、および/または対象のPTSD症状が出現する可能性があると対象が感じる時に、本発明の薬剤または組成物を投与されてよい。
ストレスへのレジリエンス
ストレスへのレジリエンスは、ストレッサ(例えば、逆境)に直面した時に、上手く適合もしくは変更する、および/または生理学的、神経学的もしくは精神的恒常性を維持する対象の能力を指す。本明細書で用いられる用語「レジリエンスを増強すること」は、ストレス誘導性情動障害に罹患することなく、および/またはより少ない事象後症状もしくは恒常性崩壊および/または日常生活の正常な活動を伴い、ストレッサ(例えば、外傷事象)を経験する対象の能力を上昇させることを指す。特定の実施形態において、レジリエンスを改善することは、ストレス誘導性情動障害を予防し得る。特定の実施形態において、レジリエンスを改善することは、ストレス誘導性情動障害の兆候、症状、または症状クラスターの少なくとも1つを低減し得る。特定の実施形態において、本発明の方法は、ストレスへの対象のレジリエンスを増強し、ストレッサ関連精神病発症の防御を支援し、ストレッサ誘導性障害の機能的結果(例えば、PTSDなど)を減少させ、医療での罹患率および死亡率を低減する。
Connor-Davidson Resilience Scale(CD-RISC)は、25項目の自記式スケールであり、それぞれが5ポイントスケール(0~4)で評価され、スコアが高いほどレジリエンスが大きいことを反映する(Connor K M & Davidson, J R T. Development of a new resilience scale: the Connor-Davidson Resilience Scale (CD-RISC). Depression and Anxiety, 2003: 18: 71-82)。
レジリエンス、精神的成長および生活満足感は、CD-RISC、Purpose in Life Scale、略語でMOS、Social Support Survey、PTGIおよびQ-LES-Qで測定されてよい。
併用療法
本発明の薬剤または組成物は、単独で対象に投与されてよく、または1種もしくは複数の他の処置/薬剤と組み合わせて対象に投与されてもよい。
特定の実施形態において、第二の薬剤は、抗うつ薬、抗不安薬、またはそれらの組み合わせである。特定の実施形態において、第二の薬剤は、セロトニン再取り込み阻害剤(SRI)、または選択的セロトニン再取り込み阻害剤(SSRI)である。特定の実施形態において、第二の薬剤は、フルオキセチン、パロキセチン、セルトラリン、リチウム、リルゾール、プラゾシン、ラモトリギン、イフェンプロジル、またはそれらの組み合わせである。特定の実施形態において、第二の薬剤は、二重セロトニンノルエピネフリン再取り込み阻害剤化合物(DRI)である。特定の実施形態において、第二の薬剤は、ベンラファキシン、デュロキセチン、ミルナシプラン、またはそれらの組み合わせである。特定の実施形態において、第二の薬剤は、非三環式三重再取り込み阻害剤(TRI)である。
特定の実施形態において、本発明の薬剤または組成物は、抗うつ薬、鎮痛薬、筋肉弛緩剤、食欲減退薬、刺激剤、抗てんかん薬、および鎮静剤/睡眠薬などの1つまたは複数の処置/薬剤と組み合わせて対象に投与される。本発明の化合物または組成物と組み合わせて投与され得る化合物の非限定的例としては、Neurontin、プレガバリン、プラミペキソール、L-DOPA、アムフェタミン、チザニジン、クロニジン、トラマドール、モルヒネ、三環式抗うつ薬、コデイン、カルバマゼピン、シブトラミン、アムフェタミン、Valium、トラゾドンおよびそれらの組み合わせが挙げられる。
特定の実施形態において、併用療法は、同じ投与剤形中での薬剤の同時の投与、別の投与剤形中での同時の投与、または薬剤の別個の投与を意味する。
特定の実施形態において、第二の薬剤/処置は、本発明の薬剤また組成物の補助的治療として用いられる。特定の実施形態において、処置は、本発明の薬剤または組成物での処置が終了した後に第二の薬剤/処置での処置が行われるフェーズを含む。特定の実施形態において、処置は、本発明の薬剤または組成物での処置と第二の薬剤/処置での処置が重複するフェーズを含む。
併用療法は、連続であり得、または同時に投与され得る。いずれの場合でも、これらの薬物および/または治療は、「共投与される」と言われる。「共投与される」は、薬物および/または治療が組み合わされた形態で投与されることを必ずしも意味しないことが、理解されなければならない(即ち、それらは、同じまたは異なる時間に同じまたは異なる部位に別々に(例えば、別の組成物または配合剤として)または一緒に(例えば、同じ配合剤または組成物中で)投与されてよい)。
特定の実施形態において、対象は、本発明の薬剤または組成物と第二の薬剤で同時に(または付随的に)処置される。特定の実施形態において、対象は、最初に本発明の薬剤または組成物で処置され、本発明の化合物または組成物の処置の終了および第二の薬剤での処置の開始が続く。特定の実施形態において、本発明の薬剤または組成物は、最初の処置として、例えば1、2または3用量の投与により用いられ、第二の薬剤は、本発明の薬剤または組成物の効果を延長するため、あるいは本発明の薬剤または組成物の効果を増幅するために、投与される。当業者は、提示された計画の他の変形例、例えば本発明の化合物または組成物での対象の処置を開始し、続いての期間で本発明の化合物または組成物の処置への補助的治療として対象が第二の薬剤で処置され、続いて本発明の化合物または組成物での処置を停止すること、が可能であることを認識するであろう。
本発明の化合物および他の医薬的活性剤(複数可)は、一緒にまたは別個に投与されてよく、別個に投与される場合、これは、同時にまたは任意の順序で連続して行われてよい。本発明の薬剤および他の医薬的活性剤(複数可)の量、ならびに投与の相対的タイミングは、所望の併用療法効果を実現するように選択されよう。
様々な実施形態において、治療(例えば、併用療法での本明細書で提供される組成物および第二の薬剤)は、5分未満の間隔をあけて、30分未満の間隔をあけて、1時間の間隔をあけて、約1時間の間隔をあけて、約1~約2時間の間隔をあけて、約2時間~約3時間の間隔をあけて、約3時間~約4時間の間隔をあけて、約4時間~約5時間の間隔をあけて、約5時間~約6時間の間隔をあけて、約6時間~約7時間の間隔をあけて、約7時間~約8時間の間隔をあけて、約8時間~約9時間の間隔をあけて、約9時間~約10時間の間隔をあけて、約10時間~約11時間の間隔をあけて、約11時間~約12時間の間隔をあけて、約12時間~18時間の間隔をあけて、18時間~24時間の間隔をあけて、24時間~36時間の間隔をあけて、36時間~48時間の間隔をあけて、48時間~52時間の間隔をあけて、52時間~60時間の間隔をあけて、60時間~72時間の間隔をあけて、72時間~84時間の間隔をあけて、84時間~96時間の間隔をあけて、または96時間~120時間の間隔をあけて、投与される。特定の実施形態において、治療は、24時間以下の間隔をあけて、または48時間以下の間隔をあけて、投与される。特定の実施形態において、2つまたは複数の治療が、患者の同じ診察内に投与される。他の実施形態において、本明細書で提供される組成物および第二の薬剤は、同時に投与される。他の実施形態において、本明細書で提供される組成物および第二の薬剤は、約2~4日の間隔をあけて、約4~6日の間隔をあけて、約1週間の間隔をあけて、約1~2週間の間隔をあけて、または2週間より長く間隔をあけて、投与される。特定の実施形態において、同じ薬剤の投与が、反復されてよく、投与は、少なくとも1日、2日、3日、5日、10日、15日、30日、45日、2か月、75日、3か月、または6か月離れていてよい。他の実施形態において、同じ薬剤の投与が、反復されてよく、投与は、少なくとも1日、2日、3日、5日、10日、15日、30日、45日、2か月、75日、3か月、または6か月離れていてよい。特定の実施形態において、本明細書で提供される組成物および第二の薬剤は、連続で一定間隔内に投与されるため、本明細書で提供される組成物は、他の薬剤と一緒に作用して、他の方法で投与された場合よりも大きな利益を提供し得る。例えば第二の活性剤は、同じ時間に、または異なる時点で任意の順序で連続して投与され得るが、同じ時間に投与されないならば、それらは、所望の治療または予防効果を提供するように充分に接近した時間に投与されなければならない。一実施形態において、本明細書で提供される組成物および第二の活性剤は、重複する時間に効果を発揮する。各第二の活性剤は、別個に、任意の適当な形態で、任意の適切な経路により投与され得る。他の実施形態において、本明細書で提供される組成物は、第二の活性剤の投与前に、それと同時に、またはその後に投与される。用語「約」は、参照値の±10%を指す。他の実施形態において、複数の過程の処置が、患者に同時に施され、即ち、個々の用量の第二の薬剤が、本明細書で提供される化合物が第二の活性剤と一緒に働き得るように、別個にしかし、ある間隔内に投与される。例えば、一成分は、2週間ごとに1回、または3週間ごとに1回投与され得る他の成分と組み合わせて、週1回投与され得る。言い換えれば、投与レジメンは、治療薬が同時にまたは同日内に投与されなくとも、同時に実行される。第二の薬剤は、本明細書で提供される化合物と相加的または相乗的に作用し得る。一実施形態において、本明細書で提供される組成物は、同じ医薬組成物中で1種または複数の第二の薬剤と同時に投与される。別の実施形態において、本明細書で提供される組成物は、別の医薬組成物中で1種または複数の第二の薬剤と同時に投与される。さらに別の実施形態において、本明細書で提供される組成物は、第二の薬剤の投与に先立って、またはそれに続いて投与される。また企図されるのは、同じまたは異なる投与経路、例えば経口および非経口による本明細書で提供される組成物および第二の薬剤の投与である。特定の実施形態において、本明細書で提供される組成物が、非限定的に毒性を含む潜在的に有害作用を生じる第二の薬剤と同時に投与される場合、第二の活性剤は有利には、有害な副作用が誘発される閾値未満に入る用量で投与され得る。
本発明の開示により包含されるのは、ストレッサに先立って対象を予防的に処置する方法である。特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物および方法は、対象におけるストレス誘導性情動障害またはストレス誘導性精神病を防止または遅延する。特定の実施形態において、ストレス誘導性情動障害としては、大うつ病性障害および外傷後ストレス障害が挙げられる。
ストレス誘導性情動障害
ストレスにより引き起こされる、または増悪される数多くの障害が存在する。本発明の薬剤/組成物および方法は、ストレス誘導性情動障害またはストレス誘導性精神病を防止または遅延し得る。本発明の薬剤/組成物および方法により防止または処置され得るストレス誘導性情動障害またはストレス誘導性精神病としては、物質乱用、拒食症、過食症、肥満、喫煙中毒および体重に関する中毒症(weight addiction)などの嗜癖性障害;広場恐怖症、不安障害、強迫性障害、パニック発作、パフォーマンス不安、恐怖症、および外傷後ストレス障害(PTSD)などの不安障害;ストレス誘導性精神障害などの精神障害;アレルギー、喘息、線維筋痛症、線維腫症(fibromytosis)、狼瘡、多発性硬化症、関節リウマチ、シェーグレン症候群、および白斑などの自己免疫疾患;骨癌、脳癌、乳癌、子宮頸癌、結腸癌、ホジキン病、白血病、肝臓癌、肺癌、リンパ腫、多発性骨髄腫、卵巣癌、膵臓癌、および前立腺癌などの癌;不整脈、動脈硬化、バージャー病、本態性高血圧、細動、僧帽弁逸脱症、動悸、末梢血管疾患、レイノー病、卒中、頻脈、およびウォルフ・パーキンソン・ホワイト症候群などの心臓血管障害;ならびに注意欠陥障害、集中力の問題、行為障害、ディスレクシア、運動亢進、言語および発語障害、ならびに学習障害などの発達障害が挙げられるが、これらに限定されない。
不安障害
本発明の薬剤/組成物および方法は、不安障害を防止または遅延し得る。不安障害の5種の主要なタイプは、パニック障害、強迫性障害、外傷後ストレス障害、全般性不安障害および恐怖症(社会不安障害とも呼ばれる社会恐怖症を含む)である。各不安障害は、独自の異なる特色を有するが、それらは全て、過剰で不合理な恐怖および畏怖という共通のテーマでひとまとめにされる。不安障害は、うつ病、摂食障害、物質乱用、または別の不安障害を随伴することが一般的である。
パニック障害は、しばしばおよび前兆なしに襲う、強い恐怖の繰り返されるエピソードを特徴とする。身体症状としては、胸痛、心臓の動悸、呼吸の短縮、めまい、腹部苦痛、非現実の感覚、および死の恐怖が挙げられる。強迫性障害は、停止または制御が不能と思われる、繰り返される望まない考えまたは強迫的行動を特徴とする。全般性不安障害は、少なくとも6か月持続する、過度にくよくよと考えることならびに日常生活の出来事および活動についての緊張を特徴とする。予期する理由がほとんどなくとも、ほぼ常に最悪なことを予想し、疲労、振戦、筋肉緊張、頭痛、または吐き気などの、身体症状を随伴する。恐怖症は、2つの主要なタイプの恐怖症、つまり社会恐怖症および限局性恐怖症に特徴づけられる。社会恐怖症の人々は、社会的状況における詮索、気後れ、または屈辱の圧倒的で何もできなくなる恐怖を有し、それは多くの潜在的に喜ばしく有意義な活動の回避をもたらす。限局性恐怖症の人々は、実際の危険がほとんどない、または全くないものに対する極度の何もできなくなる不合理な恐怖に見舞われ、その恐怖は、目標または状況の回避をもたらし、人々に彼らの生活を不必要に制限させ得る。
外傷後ストレス障害(PTSD)
典型的には、PTSDに罹患した対象は、外傷性事象に暴露され、そこでその人は、実際の、もしくは恐れを抱く死亡もしくは重篤な損傷、または自身もしくは他者の身体的インテグリティへの脅威およびその人の応答が関与する強い恐怖、無力感もしくは戦慄を含む事象もしくは複数の事象に見舞われた、それを目撃した、またはそれに直面した。
外傷への暴露の侵入記憶を繰り返すことは、PTSDの中核症状の1つである。PTSDの患者は、神経精神学的テストの際に学習および記憶の損傷を提示することが知られている。PTSDの他の中核症状としては、ストレス感度(驚愕)、緊張および不安の上昇、記憶障害、ならびに人間関係の断絶が挙げられる。
特定の実施形態において、本発明の方法は、対象における外傷後ストレス障害(PTSD)の発症を防止または阻害する。特定の実施形態において、本発明の方法は、1つまたは複数のPTSD様症状の発症を防止または阻害する。特定の実施形態において、対象は、対象(初期応答者または軍隊要員など)が外傷性ストレスに暴露される可能性がある状況に先立って、外傷性ストレスへの暴露の直後に、および/または対象のPTSD症状が出現する可能性があると対象が感じる時に、本発明の薬剤または組成物を投与されてよい。
典型的には、外傷性事象は、以下の方法の1つまたは複数で持続的に再経験される:映像、思考、または感知を含む、事象の再発および侵入的な忌まわしい回想、事象の再発性の忌まわしい夢、外傷性事象が再発したかのような活動または感情(起床時または高揚した時に起こるものを含む、経験、錯覚、幻覚および解離性フラッシュバックエピソードを追体験する感覚)、外傷性事象の態様を象徴する、またはそれと類似する内的または外的キューへの暴露の際の強い精神的苦痛、外傷性事象の態様を象徴する、またはそれと類似する内的または外的キューへの暴露の際の生理学的反応性。PTSDに罹患した個体はまた、外傷に関連する刺激の持続的回避および一般的応答性の麻痺を有し、それは以下のものの3つ以上により示される:外傷に関連する思考、感情または会話を回避する努力、外傷の回想を駆り立てる活動、場所または人々を回避する努力、外傷の重要な態様を思い出すことができない、有意義な活動への関心または参加が大きく減少すること、他者からの孤立または疎外の感情、情動範囲の制限(例えば、愛情を持つことができない)、将来を短く感じること(例えば、キャリア、結婚、子供、または通常の寿命を有することを予期しない)、以下の2つ以上:睡眠に入るまたは睡眠状態を保つことが困難であること、短気または怒りの爆発、集中が困難であること、過覚醒、過度の驚愕応答、により示される、覚醒が高まる持続的症状(外傷以前にはない)。少なくとも1か月続く動揺は、機能の社会的、職業的または他の重要な領域での臨床的に有意な苦痛または障害を引き起こす。
特定の実施形態において、本発明の化合物または組成物は、非限定的に、侵入記憶、悪夢、フラッシュバックの形態の外傷経験の再経験;外傷の備忘により惹起された感情的および身体的反応;他者から距離おくこと;活動または他のヒトへの関心の減少;感情の麻痺;外傷性備忘の回避;睡眠の乱れ、過敏性、過覚醒、集中の低下を含む、覚醒亢進の症状;驚愕反射の増加;およびそれらの組み合わせを含む、症状の1つまたは複数を防止、低減、排除または遅延する。
問題の根源が何であろうと、PTSDを有する人々の一部は、悪夢、および日中の不穏な回想の形態で外傷を繰り返し追体験する。彼らはまた、他の睡眠問題を経験し、疎外もしくは麻痺を感じ、または容易に驚愕する。彼らは、以前は楽しんだものへの関心を失い、慈愛を感じることが困難になることがある。彼らは、以前より怒りやすく、より攻撃的、または暴力的に感じることがある。外傷を思い出させる物事は、非常に苦痛であり、それは、彼らが、それらの記憶を思い出す特定の場所または状況を回避することをもたらし得る。
この障害は、うつ病、物質乱用、または1つもしくは複数の他の不安障害を随伴する場合がある。重度の場合、その人は、働くことまたは社会活動が困難である場合がある。
大うつ病性障害
大うつ病性障害は、そう病の基準を満たす気分高揚および過活動の独立したエピソードの何らかの前歴がなく負の情動および繰り返すうつ病エピソードにより特徴づけられる、症候群の一分類を指す。大うつ病性障害の複数のサブタイプが、非定型の特徴、精神病の構成要素などを有するものを含み、認識されている。うつ病エピソードの発病年齢ならびに重症度、期間および頻度は全て、大きく変動する。この障害は、いずれの年齢でも開始し得る。大うつ病性障害の症状は典型的には、数日~数週間発症する。前駆症状としては、全般性不安症、パニック発作、恐怖症またはうつ症状が挙げられ、それらは、エピソードの前に数か月間起こり得る。個々のエピソードもまた、3~12か月間、持続するが、再発はあまり多くない。ほとんどの患者は、エピソード間は無症状であるが、少数の患者は、主に高齢者で、持続的なうつ病を発症する場合がある。任意の重症度の個々のエピソードは多くの場合、ストレスのかかる生活事象によって突然引き起こされる。うつ病エピソードの共通の症状としては、集中および注意の低減;自尊心および自信の低減;自責および不徳の念、自傷または自殺の念または行動;睡眠の乱れ;ならびに食欲減退が挙げられる。特定の実施形態において、大うつ病エピソードは、精神社会的ストレッサ、例えば愛する人の死、夫婦別居、出産または重要な関係の終結に続いて起こる。
気分の低下は、毎日ほとんど変わらず、多くの場合、環境に不応答であるが、日が経つに連れ、特徴的な日周変動を示す場合がある。そう病エピソードと同様に、臨床所見は、著しい個体変動を示し、非定型の所見が、思春期で、特に一般的である。幾つかの症例では、不安、苦痛、および運動性激越が、落ち込んでいる時により顕著であり、気分変化はまた、怒りやすさ、アルコールの過剰消費、演技性行動、および前から存在する恐怖症もしくは強迫性症状の増悪などの追加的特色により、または心気症により、隠される場合がある。
精神医学的評価
特定の実施形態において、本発明の薬剤/組成物での処置の効果または有効性は、対象および/または医療専門家、例えば対象の医師により評価される。特定の実施形態において、評価は、ストレッサおよび/または本発明の薬剤/組成物の投与に続いて、約10分以内、約15分以内、約20分以内、約25分以内、約0.5時間以内、約1時間以内、約2時間以内、約2.5時間以内、約3時間以内、約3.5時間以内、約4時間以内、約4.5時間以内、約5時間以内、約5.5時間以内、約6時間以内、約6.5時間以内、約7時間以内、約7.5時間以内、約8時間以内、約8.5時間以内、約9時間以内、約9.5時間以内、約10時間以内、約10.5時間以内、約11時間以内、約11.5時間以内、約12時間以内、約18時間以内、約1日以内、約2日以内、約3日以内、約4日以内、約5日以内、約6日以内、約1週以内、約2週以内、約3週以内、約4週以内、約1か月以内、約2か月以内、約3か月以内、約4か月以内、約5か月以内、約6か月以内、約1年以内、約2年以内に、またはより長い間の内に実行される。
本発明の方法で処置される患者の精神医学的評価は、この方法が効果的かどうかを決定するために実行され得る。特定の実施形態において、精神医学的評価は、処置前、処置の際、処置中、および/または処置後に実施されてよい。精神医学的評価が本発明の方法での処置前および処置後(および/または処置中)の両方で実施される場合、処置前の評価の結果が、処置中および/または処置後の評価の結果に比較するための基底値を提供し得る。特定の実施形態において、精神医学的評価は、処置後のみ実行される。
精神生理学的ストレステストが、身体の様々な系(即ち、筋肉系、心臓血管系、消化器系、呼吸器系および神経系)に存在するストレス誘導性不安症の量を測定するために実施され得る。これらのストレステストは、当該技術分野で日常的に用いられる。テスト結果は、個体が過剰量の生理学的不安を呈しているかどうか、およびそれが適当な時間を経て標準化されたストレス性刺激から回復し得るか否かについて決定するために、地域および国家基準の両方に比較される。
精神医学的テストは、対象をモニタリングしてストレス障害の感情的および/または社会的病因を決定するために利用され得る。これらのテストは、当該技術分野で知られており、健康関連の評定、心的健康の評定、パーソナリティーテスト、およびパーソナリティー型評定を含む。
特定の実施形態において、臨床医が施した評価および/または自記式手段が、基底状態の症候ならびに(1)障害の全体的重症度、(2)中核症状、および(3)うつ性の気分への薬物作用、を測定する目的で用いられる。
精神医学的評価のツールおよび問診票の非限定的例としては、以下の尺度が挙げられる。
Diagnostic and Statistical Manual of Mental Disorders(DSM-5)は、PTSDのための改定された診断基準を含む。American Psychiatric Association: Diagnostic and Statistical Manual of Mental Disorders, Fifth Edition. Arlington, Va., American Psychiatric Association, 2013を参照されたい。同じくptsd.va.gov/professional/PTSD-verview/dsm5_criteria_ptsd.aspを参照されたい。
Structured Clinical Interview for DSM-IV Axis I Disorders, Patient Edition(SCID-P)は、診断を支援するために臨床医により尋ねられる、情報を絞り込む質問および追跡質問を提供する、半構造化面接である。First et al., Structured Clinical Interview for DSM―IV TR Axis I Disorders, Research Version, Patient Edition (SCID-I/P). New York: New York State Psychiatric Institute, Biometrics Research; 2001。それは、人口統計学的属性、仕事、主訴、現在の疾病歴、過去の歴史、処置歴、および現在の機能についての情報を得るための概要を含む。SCID-Pの本体は、全部で51種の心的疾病を診断するように設計された9のモジュールを含む。
DSM-5のためのSCID-Pは、SCID-Patientバージョンであり、新たなDSM-5基準を取り入れるように改変されたSCIDの新版である。
Clinician-Administered PTSD Scale(CAPS)は、DSM-IVにより定義される通り、PTSDの本質的特色を評定するように設計された構造化臨床面接である。Weathers et al., Clinician-administered PTSD scale: a review of the first ten years of research. Depress Anxiety.2001; 13(3):132-156。CAPSは、診断状況のカテゴリー別等級づけおよび症状の重症度の量的指数を提供するために用いられ得る。頻度スコアおよび強度スコアの両方が、各個別の症状のために得られる。CAPSのトータルスコアは、現在のPTSD症状の頻度および強度を評定する17項目への個体の応答に基づく。CAPSのサブスケールが、特異的症状クラスターを評定するために用いられる。 トータルスコアは、0~136の範囲であり得る。
DSM-5のために臨床医が施すPTSDスケール(CAPS-5)は、PTSDの現行の(過去1か月の)診断を作成するため、PTSDの生涯診断を作成するため、および過去1週間にわたるPTSD症状を評定するために用いられ得る30項目の構造化面接である。CAPS-5は、PTSDのためのDSM-5診断に対応する30項目の問診票である。CAPS-5の言語は、DSM-5における既存の症状への変更および新しい症状の追加の両方を反映する。Weathers, F. W., et al (2013). The Clinician-Administered PTSD Scale for DSM-5(CAPS-5)。
Treatment Outcome PTSD Scale(TOP-8)は、処置への応答の変化を受けるPTSDに共通して起こる兆候および症状の評定のために具体的に設計された、簡単な面接者管理のスケールである(Davidson, J. R., & Colket, J. T.(1997).The eight-item treatment-outcome post-traumatic stress disorder scale: A brief measure to assess treatment outcome in post-traumatic stress disorder. International Clinical Psychopharmacology, 12(1), 41-45)。TOP-8は、8項目で構成され、そのそれぞれが、0~4のスケールで測定され、定義されたアンカーが各項目に与えられる。項目は、PTSDの3つの中核的特色を表し、可能な最大スコアは32である。
Hamilton Psychiatric Rating Scale for Anxiety(HAM-A)は、不安症の重症度で広く利用される観察評価尺度である。このスケールは、14項目からなる。各項目は、0~4のスケールで評価される。このスケールは、不安症の重症度および処置の過程での改善を評定するために実施される。HAM-Aトータルスコアは、14項目の合計であり、スコアは、0~56の範囲である。Hamilton M. The Assessment of Anxiety-States by Rating. Br J Med Psychol.1959; 32(1):50-55。
Montgomery-Asberg Depression Rating Scale(MADRS)は、成人におけるうつ症状の評価のため、およびそれらの症状の任意の変化の評定のために用いられる10項目の手段である。Montgomery S. A., et al., A new depression scale designed to be sensitive to change. Br J Psychiatry.1979 April; 134:382-389。10項目のそれぞれは、0~6のスケールで評価され、各項目で記述子が異なる。これらの個々の項目スコアは、一緒に相加されて合計スコアを形成し、それは0~60ポイントの範囲であり得る。
輸注の日に気分高揚を評定するために用いられるYoung Mania Rating Scale, item 1(YMRS-1)。Young R C, et al. Rating-Scale for Mania-Reliability, Validity and Sensitivity. Br J Psychiatry.1978; 133(NOV):429-435。
Brief Psychiatric Rating Scale(BPRS)は、輸注中の急性行動変化を評定するために用いられる。Overall J E et al., The Brief Psychiatric Rating-Scale. Psychol. Rep. 1962; 10(3):799-812。精神病の陽性(+)症状のための4つの重要なBPRS項目が、用いられる:概念の統合障害、幻覚による行動、猜疑心、および不自然な思考内容。精神病の陰性(-)症状を表す3項目もまた、用いられるであろう:情動の平板化、情動的ひきこもり、および運動減退。
Clinician-Administered Dissociative States Scale(CADSS)は、輸注中の解離効果を測定するために用いられる。Bremner J D, et al., Measurement of Dissociative States with the Clinician-Administered Dissociative States Scale (CADSS). J Trauma Stress. 1998; 11(1):125-136。スケールは、19の質問および8の観察評価を含み、0(全くなし)~4(極度)でスコアづけされる。CADSSは、身体知覚、環境知覚、時間知覚、記憶知覚、および非現実感の損傷を測定する。
Patient Rating Inventory of Side Effects(PRISE)は、各症状の忍容性を同定および評価することにより副作用を定性するために用いられる、患者の自記である。Levine J, Schooler N R. SAFTEE: A technique for the systematic assessment of side effects in clinical trials. Psychopharmacol Bull.1986; 22(2):343-381。
Clinical Global Impression(CGI)スケールは、精神病患者における処置応答を評定する。実施時間は、2分である。このスケールは、3項目からなる:疾病の重症度(項目1);全般的改善(項目2);および有効性指数(項目3)。項目1は、項目2(1=かなり改善された、7=かなり悪い)と同様に7ポイントスケール(1=正常、7=最も極度の疾病患者)で評価される。それぞれは、「評定されず」の追加的応答を含む。項目3は、4ポイントスケールで評価される(「なし」~「治療効果を上回る」)。
Impact of Events Scale(IES)は、外傷事象へのストレス反応の最も広く利用される自記式尺度である。Horowitz et al., Impact of Event Scale: a measure of subjective stress. Psychosom Med.1979 May; 41(3))209-218。同じく、Wilson J, Keane T M, eds. Assessing psychological trauma and PTSD. New York: Guilford; 1996:399-411で改訂されたWeiss et al., The Impact of Event Scaleを参照されたい。それは、侵入および回避の両方を測定する。Sundin et al., Impact of Event Scale: psychometric roperties. Br J Psychiatry. 2002 March; 180:205-209. Joseph S. Psychometric evaluation of Horowitz’s Impact of Event Scale: a review. J Trauma Stress.2000 January; 13(1):101-113。トータルスコアは、0~75の範囲であり得る。
Posttraumatic Stress Disorder Checklist(PCL-5)は、PTSDのDSM-5症状を反映する17項目の自記式尺度である。PCL-5は、ストレスのある状況に応答した症状を測定する(Weathers, F., et al. (1993). The PTSD checklist (PCL): Reliability, validity, and diagnostic utility. Annual Convention of the International Society for Traumatic Stress Studies, San Antonio, Tex.)。
Quick Inventory of Depressive Symptomatology, Self Report(QIDS-SR)は、過去7日以内に存在したうつ症状の重症度を評定するように設計された、16項目の自己評価式手段である。 Rush A J, Trivedi M H, Ibrahim H M et al. The 16-Item quick inventory of depressive symptomatology (QIDS), clinician rating (QIDS-C), and self-report (QIDS-SR): a psychometric evaluation in patients with chronic major depression. Biol. Psychiatry. 2003; 54(5):573-583。この16項目は、大うつ病の9の症状ドメインを含み、0~3のスケールで評価される。合計スコアは、0~5(正常)、6~10(軽度)、11~15(中等度)、16~20(中等度~重度)、および21+(重度)の範囲を含む、0~27の範囲である。
Childhood Trauma Questionnaire(CTQ)は、以下の領域において小児外傷を評定する28項目の自記式手段である:身体的、性的および精神的虐待、ならびに身体的および感情的放棄。Bernstein D P, Stein J A, Newcomb M D et al. Development and validation of a brief screening version of the Childhood Trauma Questionnaire. Child Abuse Negl.2003 February; 27(2):169-190。各項目は、1(事実でない)~5(非常に多くが真実である)のスケールで評価される。5のサブスケールがその後、合計され、スコアは各外傷カテゴリーで5~25の範囲である。
Visual Analogue Scales(VAS)は、主観的な状況変化を評定するために用いられる。Bond A, Lader M. The use of analogue scales in rating subjective feelings. Br J Med Psychol.1974; 47(3):211-218。それらは、以下の状況:不安、うつ、眠い、興奮状態(high)、空腹、および吐き気、について、主観的経験の知覚された強度(0=全て違う、10=極度)に比例して標識される100mmの水平線である。
Sheehan Disability Scale(SDS)は、自記式の不能尺度である。それは、広範囲の精神障害での処置結果として障害および変化への感度を実証してきた。SDSは、障害のおおよその現行レベルのみを質問し、その人が過去より向上したか、または悪化したかの兆候を提供せず、したがって病歴の印象により混乱されない合理的な短期間転帰の尺度となる。独立した変数は、合計スコアであり、それは3つの10ポイント項目(仕事、社会生活、および家族生活)の総数に基づき、スコアが高いほど、不能性が大きいことを反映する。Sheehan D. The Anxiety Disease. New York, N.Y.: Scribner; 1983。
Wechsler Abbreviated Scale of Intelligence 2-Subtest(WASI-2)は、語彙(言語流動性能力の推定)および行列推理(非言語流動性能力の推定)を含む、6~89歳のためのIQの合理的な簡潔尺度である。Wechsler D.Wechsler Abbreviated Scale of Intelligence San Antonio, Tex.: Psychological Corporation; 1999。それは、医療、教育、および研究環境において高範囲に利用される。平均信頼度係数は、0.96であり、再テスト信頼度は、0.88である。
Hopkins Verbal Learning Test(HVLT)は、言語の記憶獲得および遅延再生の反復可能なテストである。対象は、3回の学習試験で同じ12項目のリストを提示され、各回に各リストの項目を繰り返し質問される。遅延再生および認識条件は、後に実施される。この試験で用いられる依存性変数は、3回の試験での合計学習(獲得変数について)および合計遅延再生スコア(再生の構成要素について)を含む。Brandt J, Benedict R. Hopkins Verbal Learning Test, Revised. Odessa, Fla.: Psychological Assessment Resources; 1997。
The Profile of Mood States-Bipolar(POMS―Bi)スケールは、非臨床環境というよりむしろ主として臨床で気分および感覚を測定する。それは、治療のために個体の精神病状況を決定することを支援し得るか、または様々なパーソナリティー障害に関連した気分プロファイルを比較するために用いられ得る。それはまた、薬物処置の効果を同定する上で有用な手段である。
Post-Traumatic Cognitions Inventory(PTCI)は、33項目のスケールであり、それは1(全体的に同意しない)~7(全体的に同意する)の範囲のLikert型スケールで評価される。スケールスコアは、3つのサブスケールで形成され、それらは高度の相互相関を示す(rs=0.57~0.75)。
New Cognitionsスケールは、6項目のパイロットスケールであり、それは1(全て違う)~4(多い)の範囲のLikert型スケールで評価される。このスケールは、そこから項目が直接選択されたPost Traumatic Growth Inventory(PTGI)(新しい項目もこのスケールに添加された)、およびBrief-COPEに基づく(Carver, C. S. (1997) ”You want to measure coping but your protocol’s too long: Consider the brief COPE.” International Journal of Behavioral Medicine 4; 92-100参照)。
Medical Outcomes Study(MOS) Social Support Surveyは、機能的社会支援のレベルを評定するように設計された19項目の自記式尺度である。MOS-SSは、2つのサブスケール(情動的および道具的社会支援)を有して、潜在的な社会支援欠陥を同定する(Sherbourne, C. D. & Stewart, A. L. (1991). ”The MOS Social Support Survey.” Soc Sci Med 32(6): 705-714)。
Purpose in Life test-Short Form(PIL-SF)は、20項目のPurpose in Lifeテストのうちの簡単な4項目形態である。このスケールは、人生の目標を実現した度合い、および人生を意義深いまたは目的があると知覚した度合いを報告することを応答者に求める(Schulenberg et al 2010; Psychotherapy (Chic).2008 December; 45(4):447-63)。
Posttraumatic Growth Inventory(PTGI)-Short Versionは、PTGI自記式問診票(参照)の10項目短縮版である。それは、高度にストレスのある生活事象を経験した結果、応答者が変化した度合いを評価することを応答者に求める。項目は、5つのドメイン:他者との関係、新しい可能性、パーソナル強度、精神的変化、および命への感謝、における好ましい変化に及ぶ(Cann, A., et al. (2010). A short form of the Posttraumatic Growth Inventory. Anxiety, Stress & Coping, 23, 127-137)。
Quality of Life Enjoyment and Satisfaction Questionnaire(Q-LES-Q)は、日常的機能の様々な領域において対象により経験される喜びおよび満足感の度合いを測定する、自記式スケールである。この概要スコアは、うつ病対象の群におけるこれらの様相の信頼できるおよび妥当な尺度である(Endicott J, et al. Quality of Life Enjoyment and Satisfaction Questionnaire: A New Measure. Psychopharmacology Bulletin; 1993; 29:321-326)。
特定の実施形態において、処置される対象の自己評価が、実行される。
医薬組成物
本発明の薬剤、ならびにその塩、溶媒和物および生理学的機能性誘導体は、粗製の化学薬品として投与されることが可能であるが、有効成分を医薬組成物として提供することが可能である。したがって、本発明はさらに、本発明の化合物ならびに/またはその塩、溶媒和物および生理学的機能性誘導体と、1種または複数の医薬的に許容できる担体、希釈剤または賦形剤とを含む医薬組成物を提供する。担体(複数可)、希釈剤(複数可)または賦形剤(複数可)は、配合剤の他の成分と相溶性があり、かつレシピエントに有害でないという意味で許容できなければならない。本発明の別の態様によれば、本発明の化合物、またはその塩、溶媒和物および生理学的機能性誘導体を1種または複数の医薬的に許容できる担体、希釈剤または賦形剤と混和することを含む、医薬組成物の調製のための工程もまた、提供される。
用語「組成物」は、医薬組成物でのように、有効成分(複数可)と、担体を構成する不活性成分(医薬的に許容できる賦形剤)成分とを含む生成物、ならびに任意の2種以上の原材料の組み合わせ、複合体化もしくは凝集から、または原材料の1種もしくは複数の解離から、または原材料の1種もしくは複数の他の型の反応もしくは相互作用から、直接的または間接的にもたらされる任意の生成物を包含すると企図される。したがって、本発明の医薬組成物は、化合物20(compound 20)と、医薬的に許容できる賦形剤とを混和することにより作製される任意の組成物を包含する。
治療的使用のための許容できる賦形剤、希釈剤、および担体は、医薬の技術分野で周知であり、例えばRemington: The Science and Practice of Pharmacy. Lippincott Williams & Wilkins(A. R. Gennaro edit. 2005)に記載される。医薬的賦形剤、希釈剤および担体の選択は、意図する投与経路および標準の医薬実務に関係して選択され得る。
本明細書で用いられる、語句「医薬的に許容できる」は、人に投与される場合、生理学的に忍容性であり、かつ消化不良、めまいおよびなどのアレルギー性または類似の厄介な反応を典型的には生じない、「概ね安全と見なされる」分子物質および組成物を指す。好ましくは、本明細書で用いられる用語「医薬的に許容できる」は、動物、より詳細にはヒトにおける使用のために連邦もしくは州政府の管理当局により認可されたこと、または米国薬局方もしくは他の一般に認識された薬局方に列挙されたことを意味する。
本発明の医薬組成物は、単位用量あたり所定の量の有効成分を含有する単位投与剤型で存在してよい。そのような単位は、処置される条件、投与経路、ならびに患者の年齢、体重および状態に応じて、例えば5μg~1g、好ましくは1mg~700mg、より好ましくは5mg~100mgの本発明の化合物を含有してよい。それゆえそのような単位用量は、1日1回より多く投与されてもよい。好ましい単位投与組成物は、本明細書の先に列挙された日用量もしくは部分用量(1日に1回より多い投与の場合)またはその適当な一部の有効成分を含有するものである。さらに、そのような医薬組成物は、薬局の技術分野で周知の方法のいずれかにより調製されてよい。
本発明の医薬組成物は、任意の適当な経路による投与、例えば経口(口腔または舌下を含む)、吸入、鼻内、眼内、または非経口(静脈内および筋肉内を含む)経路による投与用に適合されてよい。本発明の組成物は、注射されてよい。そのような組成物は、薬局の技術分野で知られる任意の方法により、例えば有効成分と担体(複数可)または賦形剤(複数可)との会合をもたらすことにより、調製されてよい。
さらなる実施形態において、本発明は、経口経路による投与、ストレス誘導性情動障害の処置に適合される医薬組成物を提供する。
経口投与に適合された本発明の医薬組成物は、カプセルもしくは錠剤;粉末もしくは顆粒;水性もしくは非水性液中の溶液もしくは懸濁液;食用フォームもしくはホイップ;または水中油液体エマルジョンもしくは油中水液体エマルジョンなどの分離した単位として提供されてよい。
例えば錠剤またはカプセルの形態での経口投与の場合、活性薬物成分は、エタノール、グリセロール、水および同様のものなどの経口で非毒性の医薬的に許容できる不活性担体と組み合わせられ得る。粉末は、化合物を適切な微細なサイズに粉砕すること、および例えばデンプンまたはマンニトールなどの食用炭水化物などの類似の粉砕された医薬担体と混合すること、により調製される。香味剤、防腐剤、分散剤および着色剤もまた、存在し得る。
カプセルは、先に記載された粉末混合物を調製すること、および形成されたゼラチン被覆を充填すること、により作製される。コロイドシリカ、タルク、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸カルシウム、または固形ポリエチレングリコールなどの滑剤および潤滑剤が、充填操作の前に粉末混合物に添加され得る。寒天、炭酸カルシウム、炭酸ナトリウムなどの崩壊剤または可溶化剤もまた、カプセルが摂取された時に医薬の利用可能性を改善するために添加され得る。
その上、所望されるならば、または必要ならば、適切な結合剤、潤滑剤、崩壊剤および着色剤もまた、混合物に組み込まれ得る。適切な結合剤としては、デンプン、ゼラチン、グルコースまたはベータラクトース、トウモロコシ甘味剤などの天然糖、アラビアゴム、トラガカントまたはアルギン酸ナトリウムなどの天然および合成ゴム、カルボキシメチルセルロース、ポリエチレングリコール、ワックスおよび同様のものが挙げられる。これらの投与剤形中で使用される潤滑剤としては、オレイン酸ナトリウム、ステアリン酸ナトリウム、ステアリン酸マグネシウム、安息香酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、塩化ナトリウムなどが挙げられる。崩壊剤としては、デンプン、メチルセルロース、アガー、ベントナイト、キサンタンゴムなどが挙げられるが、これらに限定されない。錠剤は、例えば粉末混合物を調製すること、造粒またはスラッギングすること、潤滑剤および崩壊剤を添加すること、ならびに打錠すること、により配合される。粉末混合物は、先に記載された希釈剤または塩基、および場合によりカルボキシメチルセルロース、アルギナート、ゼラチンもしくはポリビニルピロリドンなどの結合剤、パラフィンなどの溶解遅延剤(solution retardant)、第四級塩などの吸収促進剤、および/またはベントナイト、カオリンもしくはリン酸二カルシウムなどの吸収剤と、適切に粉砕された、化合物を混合することにより調製される。粉末混合物は、シロップ、デンプンのり、アラビアゴム溶液(acadia mucilage)、またはセルロースもしくはポリマー材料の溶液などの結合剤と共に湿潤させること、およびスクリーンに押し通すこと、により造粒され得る。造粒の代わりとして、粉末混合物は、打錠機に通されてよく、結果として顆粒に分解された不完全成形スラッグを生じる。顆粒は、錠剤成形ダイへの粘着を防止するために、ステアリン酸、ステアリン酸塩、タルク、または鉱物油の添加により潤滑され得る。潤滑混合物をその後、打錠する。本発明の化合物はまた、易流動性の不活性担体と組み合わされ、造粒またはスラッギングステップを経ずに直接打錠され得る。セラックの密封コーティング、糖またはポリマー材料のコーティング、およびワックスの光沢コーティングからなる透明または不透明の保護コーティングが、提供され得る。色素が、異なる単位投与剤型を区別するために、これらのコーティングに添加され得る。
所与の量が所定量の化合物を含有するように、溶液、シロップ剤およびエリキシルなどの経口流体が、投与単位剤型として調製され得る。シロップは、化合物を適切な香味の水溶液に溶解させることにより調製され得、一方、エリキシルは、非毒性アルコール性ビヒクルの使用を通して調製される。懸濁液は、化合物を非毒性ビヒクルに分散させることにより配合され得る。エトキシル化イソステアリルアルコールおよびポリオキシエチレンソルビトールエーテルなどの可溶化剤および乳化剤、防腐剤、ペパーミント油などの香味添加剤、あるいは天然甘味料またはサッカリンもしくは他の人工甘味料もまた、添加され得る。
先に詳細に述べられた成分に加えて、組成物は、該当する配合剤の型への関係を有する当該技術分野で従来からある他の薬剤を含んでよく、例えば経口投与に適するものとして、香味剤を挙げることができる。
本発明の化合物の治療有効量は、例えば対象の年齢および体重、処置に必要となる正確な状態およびその重症度、配合剤の性質、ならびに投与経路を含む複数の因子に依存し、最終的には担当の医師または獣医師の裁量によるであろう。
キット
また提供されるのは、ストレス誘導性情動障害を予防的に処置する本発明の方法における使用のためのキットである。
キットは、本明細書で提供される薬剤または組成物と、本発明の方法に従った仕様に関係してヘルスケア提供者に情報を提供する使用説明書とを含み得る。キットは場合により、第二の薬剤または組成物を含有してよい。使用説明書は、印字形態で、またはフロッピーディスク、CDもしくはDVDなどの電子媒体の形態で、またはそのような使用説明書が得られるウェブサイトアドレスの形態で、提供されてよい。本明細書で提供される化合物もしくは組成物、または第二の薬剤もしくは組成物の単位用量は、対象に投与された時に化合物または組成物の治療的または予防的に有効な血漿レベルが維持され得るような投与量を含み得る。幾つかの実施形態において、化合物または組成物は、滅菌水性医薬組成物または乾燥粉末(例えば、凍結乾燥)の組成物を含み得る。幾つかの実施形態において、適切な包装が、提供される。本明細書で用いられる「包装」は、システムの中で慣例的に用いられ、本明細書で提供される化合物および/または対象への投与に適した第二の薬剤を一定限界内で保有できる固体マトリックスまたは材料を含む。そのような材料としては、ガラスおよびプラスチック(例えば、ポリエチレン、ポリプロピレン、およびポリカーボネート)の瓶、バイアル、紙、プラスチック、ならびにプラスチック-ホイル積層エンベロープなどが挙げられる。
本明細書に記載されたキットは、記載された化合物、シグナル伝達物質、生体分子および/または粒子を含有する、1つまたは複数のコンテナを含有する。キットはまた、化合物を混合、希釈および/または投与するための使用説明書を含有する。キットはまた、1つまたは複数の溶媒、界面活性剤、防腐剤および/または希釈剤(例えば、生理食塩水(0.9%NaCl)、または5%デキストロース)を有する他のコンテナ、ならびに成分を混合、希釈するための、または試料にもしくはそのような処置を必要とする患者に投与するためのコンテナを含む。
キットの組成物は、任意の適切な形態として、例えば、液体溶液としてまたは乾燥粉末として提供されてよい。提供される組成物が乾燥粉末である場合、粉末は、適切な溶媒の添加により再構成されて提供されてよく、その溶媒もまた提供されてよい。液体形態の組成物が用いられる実施形態では、液体形態は、濃縮されていても、または即時使用可能であってもよい。溶媒は、化合物および使用または投与の様式に依存するであろう。薬物組成物のための適切な溶媒は、周知であり、文献で入手可能である。溶媒は、化合物および使用または投与の様式に依存するであろう。
キットは、バイアル、試験管および同様のものなどの1つまたは複数のコンテナを密に閉じ込めて受け取るようにコンパートメント化された担体を含み、コンテナのそれぞれは、本発明の方法で用いられる別の要素の1つを含む。例えば、コンテナの1つは、アッセイにおける陽性対照を含んでよい。加えて、キットは、他の成分、例えばアッセイにおいて有用な緩衝液のためのコンテナを含んでよい。
他に示されない限り、本開示および関連の特許請求の範囲で用いられる原材料の量、特性などを表す全ての数字は、用語「約」によって全ての例で修飾されるものと理解されなければならない。したがって反することが記載されない限り、本開示および添付の特許請求の範囲に表された数値パラメータは、本発明の実施例により得られようとする所望の特性に応じて変動し得る近似値である。少なくとも、および特許請求の範囲の均等物の原理の適用を限定するつもりでなく、各数値パラメータは、少なくとも報告された有効数字の数に照らして、および通常の丸めの技術を適用することにより、解釈されるべきである。「約」が、数値列挙の始めにある場合、「約」は数値列挙の各数字を修飾していると留意されなければならない。さらに、範囲の幾つかの数値列挙において、列挙された幾つかの下限は、列挙された幾つかの上限より大きいかもしれない。当業者は、選択された部分集合が、選択された下限を超える上限の選択を必要とすることを、認識するであろう。用語「約」は、参照された値の±10%を指す。言い換えれば、数値は、述べられた値の90%~述べられた値の110%の範囲であり得る。
本発明は、以下の実施例からより良く理解されよう。しかし、議論された具体的方法および結果が単に本発明の例示であり、本発明が以下の特許請求の範囲の中でより完全に記載されることは、当業者に即座に察知されよう。
実施例
実施例1:ストレスに対する5-HT4Rアゴニストの予防的有効性
ストレスレジリエンスを増強することは、リスクのある集団におけるストレス誘導性精神障害を防御できる。本発明者らは過去に、(R,S)-ケタミンが、ストレスの1週間前に投与された場合、ストレスに対する予防薬として作用することを報告した。本発明者らは、選択的5-ヒドロキシトリプタミン(5-HT)(セロトニン)再取り込み阻害剤(SSRI)フルオキセチン(Flx)が、予防薬として無効であることを示したが、セロトニン4受容体(5-HTR)アゴニストなどの他のセロトニン作動性化合物が予防薬として作用し得ると仮定した。本発明者らは、慢性コルチコステロン(CORT)投与または文脈的恐怖条件づけ(CFC)を利用することにより、様々な親和性を有する3種の5-HTRアゴニストが2つのマウス系統でストレスを防御し得るかどうかをテストした。マウスに、生理食塩水、(R,S)-ケタミン、Flx、RS-67,333、プルカロプリド、またはPF-04995274を様々な用量で投与し、その1週間後に、マウスを、慢性CORTまたはCFCに供した。C57BL/6Nマウスにおいて、慢性Flx投与は、CORT誘導性の体重変動を減弱し、高架式十字迷路(EPM)におけるオープンアーム進入を増加させた。慢性RS-67,333投与は、CORT介在性体重変動を減弱し、うつ様および不安様行動を防御した。129S6/SvEvマウスにおいて、RS-67,333は、雄の学習された恐怖を減弱したが、雌では減弱しなかった。RS-67,333は、強制水泳テスト(FST)においてストレス誘導性うつ様行動に対し無効であったが、両方の性別で不安様行動を防止した。プルカロプリドおよびPF-04995274は、学習された恐怖を減弱し、ストレス誘導性うつ様行動を減少させた。(R,S)-ケタミンまたはプルカロプリド投与に続く電気生理学的記録は、両方の薬物がCA3におけるAMPA受容体介在性シナプス伝達を改変することを明らかにした。これらのデータは、(R,S)-ケタミンに加えて、5-HTRアゴニストも、ストレスに対する効果的な予防薬であることを示し、5-HTRが予防薬開発のための新規なターゲットであり得ることを示唆した。
ここで、本発明者らは、5-HTRはうつ病および不安症に大きく関連づけられているので、それらがストレスレジリエンスにおいて役割を有し得ると仮定した。本発明者らは、様々な親和性を有する3種の5-HTRアゴニストに試験の照準を合わせた。第一に、RS-67,333(1-(4-アミノ-5-クロロ-2-メトキシフェニル)-3-[1(n-ブチル)-4-ピペリジニル]-1-プロパノンHCl)は、高親和性の5-HTR部分的アゴニストである[22]。この薬物は、アルツハイマー病(AD)の5×FADマウスモデルにおいて、行動欠陥を改善すること、アミロイド斑の数およびアミロイドベータ(Aβ)種のレベルを減少させること、ならびに海馬アストログリオーシスおよびマイクログリオーシスを減少させることに効果的である[23]。第二に、プルカロプリド(4-アミノ-5-クロロ-2,3-ジヒドロ-N-[1-3-メトキシプロピル)-4-ピペリジニル]-7-ベンゾフランカルボキサミド一塩酸塩)は、選択的な高親和性の5-HTRアゴニストである[24]。それは、2018年に慢性便秘用にFDAの認可を受け、現在、慢性偽性腸閉塞用にテストされている。プルカロプリドは、2つの別個の臨床試験において、急性(例えば、単回投与)または慢性(例えば、1週間)投与後の健常志願者における情動処理への効果を調査するためにテストされた[25、26]。第三に、PF-04995274(4-[4-[4-テトラヒドロフラン-3-イルオキシ)-ベンゾ[d]イソオキサゾール-3-イルオキシメチル]-ピペリジン-1-イルメチル]-テトラヒドロピラン-4-オール)は、強力な部分的5-HTRアゴニストである[27]。臨床試験は、健常成人における精神運動および認知機能のスコプラミン誘導性欠損について、PF-04995274を単独で、またはドネペジルと併用で評価するために実行されたが、この試験は、安全性の懸念からではなく、終了された[28]。現在、臨床試験が、PF-04995274の補助的投与がプラセボに比較して仲介された処置抵抗性うつ病(TRD)患者において情動処理および神経活性へのプラス効果を有するかどうかをテストするために進行中である[29]。
5-HTRアゴニストがストレスへの潜在的予防薬であり得るかどうかを決定するために、本発明者らは、2つの異なる系統のマウス(C57BL/6NTacおよび129S6/SvEv)において、2つの異なるストレスモデル(急性および慢性)を利用した。本発明者らは、RS-67,333、プルカロプリド、およびPF-04995274が、学習された恐怖を減弱することを見出した。RS-67,333は、慢性投与された場合にうつ様行動を防止し、急性投与された場合に両方の性別でストレス誘導性不安様行動を防止した。プルカロプリドおよびPF-04995274は、FSTにおいてストレス誘導性うつ様行動を減少させた。予防的(R,S)-ケタミンおよび5-HTRアゴニストの共通の、または異なる機序を調査するために、本発明者らは、切片電気生理学的検査を利用して、CA3における自発的グルタミン酸作動性伝達を調査した。本発明者らは、(R,S)-ケタミンおよびプルカロプリドが、大振幅のAMPA受容体介在性シナプス電流のバーストを減弱することを見出した。これらのデータは、(R,S)-ケタミンに加えて、5-HTRアゴニストもまた、ストレスに対する効果的予防薬であり、かつAMPA関連のグルタミン酸作動性伝達を改変してストレスレジリエンスを増強し得ることを示唆する。
材料と方法
マウス:全てのマウスを、22℃の12時間(6:00~18:00)明暗コロニールームで飼育した。餌と水は随意に提供された。行動テストは、点灯期中に実施した。
C57BL/6NTacマウス:雄C57BL/6NTacマウスを、8週齢でTaconic Farms(デンマーク リレスケンスベド(Lille Skensved))から購入し、CORT処置の開始前に5匹/ケージで飼育した。全てのテストを、実験動物ケアガイドライン、およびInstitutional Animal Care and Use Committee(IACUC)(European Directive、実験動物の保護のための2010/63/EU、許可番号92-256B、許可倫理委員会(authorization ethical committee) CEEA n°262012_098)により認可されたプロトコルに準じて実行した。
129S6/SvEvマウス:雄および雌129S6/SvEvTacマウスを、7~8週齢でTaconic(ニューヨーク州ハドソン)から購入した。本明細書に記載された手順は、National Institutes of Health(NIH)規準に従って実行され、New York State Psychiatric Institute(NYSPI)のIACUCにより認可された。
ストレスモデル:
コルチコステロン(CORT)モデル:このモデルでは、グルココルチコイドレベルが、C57BL/6NTacマウスにおいて外因的に増加される。この慢性CORT上昇は、臨床性うつ病で観察されたものと類似の様式で視床下部-下垂体-副腎軸(HPA)を調節不全にする。CORT処置の用量および期間を、過去の試験に基づいて選択した[20、30]。0.45%ヒドロキシプロピル-β-シクロデキストリン(β-CD)またはビヒクル(VEH)(0.45%β-CD)に溶解されたCORT(35μg/ml、約5mg/kg/日と同等)は、光を防御するために不透明の瓶に入れられた飲水の中で随意に利用できた。VEFおよびCORT処置水を、可能性のある分解を防止するために3日ごとに交換した。
文脈的恐怖条件づけ(CFC):3-ショックCFC手順を、過去に発表された通り施した[31、32]。手短に述べると、マウスを文脈A中に置き、文脈Aに置いた180秒後、240秒後、または300秒後に32秒のショック(0.75mA)を施した。マウスを、ショックの終了の15秒後(317秒目)にその文脈から取り出した。文脈回復のため、マウスを文脈A中に300秒間戻した。
電気生理学的検査:電気生理学的検査を、過去に記載された通り実行した[33]。
統計解析:データ解析からの結果を、平均±SEMとして表した。アルファを、全ての解析で0.05に設定した。データを、GraphPad Prism v7.0またはv8.0を用いて解析した。全ての実験で、他に記載されない限り、一元配置または二元配置反復測定分散分析を、適宜データに当てはめた。有意な主効果および/または相互作用を、フィッシャーのPLSD事後解析または対応のないt検定により追跡した。全ての主効果、相互作用、およびp値を、表2に列挙する。
薬物:全ての薬物は、生理学的生理食塩水で調製し、全ての注射は、他に記載されない限り、0.1cc/10mg体重の容量で腹腔内(i.p.)に投与した。
フルオキセチン塩酸塩(Flx):Flx(BioTrend Chemicals AG, BG197、ドイツ チューリッヒ)を、CORT開始の3週間前に飲水中で投与した(18mg/kg/日)。
RS-67,333(RS):RS-67,333(Tocris Bioscience、0989、英国 ブリストル)を慢性的に、または単回注射で投与した。慢性実験では、RS-67,333(1.5mg/kg/日)を、ALZET浸透圧ミニポンプ(ALZET、Model 2004、カリフォルニア州クパーチノ)を介して投与した[30]。急性実験では、RS-67,333を、CFC開始の1週間前に1.5、10、または30mg/kg体重の単一用量で投与した。RS-67,333を、超音波ホモジナイザ(BioLogics、Model3000、バージニア州マナサス)を用いて生理食塩水に溶解した。(R,S)-ケタミン(K):(R,S)-ケタミン(Ketaset IIIケタミンHCl注射、Fort Dodge Animal Health、アイオワ州フォートドッジ)を、CFC開始の1週間前に30mg/kg体重の単一用量で投与した。30mg/kg体重の用量は、過去の試験がそれは予防的有効性のための有効用量であることを示したため、129S6/SvEv実験で選択された[S1]。
プルカロプリド:プルカロプリド(Sigma、179474-81-8、ミズーリ州セントルイス)を、CFC開始の1週間前に3または10mg/kg体重の単一用量で投与した。プルカロプリドを、超音波ホモジナイザ(BioLogics、Model3000、バージニア州マナサス)を用いて生理食塩水に溶解した。
PF-04995274:PF-04995274(Sigma、カタログNo.1331782-27-4、ミズーリ州セントルイス)を、CFC開始の1週間前に3または10mg/kg体重の単一用量で投与した。PF-04995274を、超音波ホモジナイザ(BioLogics、Model3000、バージニア州マナサス)を用いて生理食塩水に溶解した。
浸透圧ミニポンプ埋め込み:ALZET浸透圧ミニポンプ(モデル2004、0.25μl/時間、28日)を、過去に記載された通りイソフルラン麻酔の下で皮下に埋め込んだ[S2]。浸透圧ミニポンプを、皮下で2~3回/週、回転させた。
行動アッセイ:全ての実験は、New York Psychiatric Institute(NYSPI)のInstitutional Animal Care and Use Committee(IACUC)により認可された。
高架式十字迷路(EPM):テストを、過去に記載された通り実施した[S3]。手短に述べると、迷路は、床から50cmの高さに中央プラットフォームで連結された4つのアーム、つまり2つのオープンアームと、壁で閉鎖された2つのアームからなる十字形装置である。マウスを、個別にオープンアームに面した迷路の中心に置き、迷路を5分間探索させた。オープンアームで過ごした時間およびそこへの進入数を、不安指数として用いた。ビデオを、ANY-迷路行動追跡ソフトウエア(Stoelting、イリノイ州ウッド・デール)を用いてスコアづけした。
新規環境による摂餌抑制:NSFは、競合する動機づけ、つまり食衝動および明るく照らされた舞台の中央に思い切って向かう恐怖を誘発するコンフリクトテストである。古典的な抗不安薬はこの尺度を減少させるため、摂餌開始潜時が、不安様行動の指数として用いられる。NSFテストを、過去に記載された通り8分の期間で実施した[S3]。手短に述べると、テスト装置は、プラスチックボックス(50×50×20cm)からなり、その床は、およそ2cmの床敷で覆われていた。129S6/SvEv実験では、マウスを、12時間食事制限した。C57BL/6N実験では、マウスを、24時間食事制限した。テストの時間に、1つのペレット飼料(通常食)を、ボックスの中央に位置する紙のプラットフォームに置いた。各動物を、ボックスの隅に置き、ストップウォッチを直ちに始動させた。摂餌(マウスがペレットに噛みつくことと定義)開始潜時の時間を記録した。その直後に、動物を、ホームケージに移し、続く5分間にマウスが消費した餌の量を測定し、可能性のある混同要因として食欲の変化についての対照とした。
スプラッシュテスト:このテストは、マウスの鼻に10%ショ糖溶液 200μlを噴霧することからなる。身繕い期間を、Stopwatch+(Center for Behavioral Neuroscience、Georgia State University)を用いて定量した。
強制水泳テスト(FST):FSTは、典型的には潜在的なヒト抗うつ薬をスクリーニングするために、げっ歯類で利用される[S4、S5]。実際に、マウスモデルでのみケタミンを検査する多くの論文は、FSTにおいて効果を観察している[S6~S8]。FSTでは、水泳とは反対に、無動状態で過ごした時間を、うつ行動の尺度として用いる。FSTを、過去に記載された通り施した[1]。手短に述べると、マウスを、22℃の水を2/3まで充填した直径20cmおよび深さ23cmの透明プラスチックバケットの中に入れた。マウスを、側部から6分間撮影し、連続2日間、水泳テストに暴露した。無動時間を、実験群を伏せられた実験者によりスコアづけした。
オープンフィールド(OF):OFアッセイを、過去に記載された通り実施した[3]。手短に述べると、運動活性を、4つのPlexiglasオープンフィールドボックス43×43cm(MED Associates、バーモント州ジョージア)の中で定量した。2.5cm離れた向き合う壁への16のパルスモジュレート化赤外線ビームの2組で、x-y歩行動作を記録した。活動チャンバーを、100ミリ秒解像度でデータ採取するためにコンピュータインターフェースで接続した。コンピュータは、中央と周囲の領域を分割するグリッド線を画定し、中央の正方形は、壁から11cmの4本の線からなった。
電気生理学的検査:生理食塩水、(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、またはプルカロプリド(3mg/kg)注射の1週間後に、マウスを、イソフルラン吸入により麻酔し、斬首し、脳を、迅速に摘出した。CA3切片(350μm)を、95%O/5%COで平衡化された氷冷した部分的ショ糖(partial sucrose)人工脳脊髄液(ACSF)溶液:(mMで)80 NaCl、3.5KCl、4.5 MgSO、0.5 CaCl、1.25 HPO、25 NaHCO、10 グルコースおよび90 ショ糖、の中でビブラトーム(Leica VT1000S)により切り出し、同溶液中で37℃にて30分間貯蔵し、その後、使用まで室温で貯蔵した。記録を、ACSF(mMで:124 NaCl、8.5KCl、1 NaHPO、25 NaHCO、20 グルコース、1 MgCl、2 CaCl)中、30~32℃(TC324-B;Warner Instrument Corp)で行った。全細胞の電圧クランプ記録(-70mV)を、(mMで):135 K-グルコナート、5 KCl、0.1 EGTA-Na、10 HEPES、2 NaCl、5 ATP、0.4 GTP、10 ホスホクレアチン(pH7.2;280~290mOsm)を含有するパッチピペット(4~6M MΩ)を用いて得た。ビククリン(5μM)もバッチ溶液に含めて、GABARを阻害した。NBQX(20mM)を、記録の後半に添加して、AMPARシナプス電流を阻害した。パッチピペットを、マイクロピペットプラー(Model P-1000;Sutter Instruments)を用いてホウケイ酸ガラス(A-M Systems、ワシントン州スクイム)から作製した。記録を、接合部電位の修正なしに、行った。錐体細胞を、Axioskop-2 FS(Zeiss)上の赤外線微分干渉顕微鏡(IR-DIC;40倍対物)レンズを介して視覚化および標的化した。
結果
RS-67,333の慢性投与は、雄マウスにおけるストレスに対し予防的である
本発明者らは過去に、慢性Flx投与(3週間投与)が129S6/SvEvマウスにおいて予防的でないことを報告した[3]。しかし、他のセロトニン作動薬が予防薬として作用し得るかどうか、まだ決定されていなかった。ここで、本発明者らは、C57Bl/6NTac雄マウスにおいて、CORT投与の3週間前に飲水中のFlx(18mg/kg/日)または浸透圧ミニポンプでRS-67,333(1.5mg/kg/日)を投与し、続いてEPM、新規環境による摂餌抑制(NSF)、およびショ糖スプラッシュテスト(ST)を含む、一連の行動テストを行った(図1A~1B)。CORTは、過去に観察された通り、6週間の行動プロトコルにわたり体重を増加させた[34]、(図1C~1F)が、これは、FlxおよびRS-67,333投与により減弱された。
EPMにおいて、CORT+Veh、CORT+Flx、およびCORT+RS-67,333投与は、VEH+Veh投与に比較した場合オープンアームで過ごした時間を改変しなかった(図1G)。しかし、CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスと比較した場合、EPMのオープンアームへの進入数の有意な減少を呈した(図1H)。CORT+FlxおよびCORT+RS-67,333マウスは、CORT+Vehマウスと比較した場合、EPMのオープンアームへの有意に多くの進入を有した。EPMでの合計移動距離は、群のいずれの間でも差がなかった(図1I)。
次に、NSF課題を施して、不安様行動をアッセイした(図1J~1K)。CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合、ペレット飼料への接近潜時の増加を呈した。CORT+RS-67,333マウスは、CORT+Vehマウスに比較した場合、ペレットへの接近潜時の有意な減少を呈したが、CORT+Flxマウスは、呈しなかった。
最後に、STにおいて、CORT+Vehマウスは、VEH+Vehマウスに比較した場合、身繕い期間の減少を呈した(図1L)。CORT+RS-67,333は、CORT+Vehマウスに比較した場合、身繕い期間の増加を呈したが、CORT+Flxマウスは呈しなかった。これらのデータは、慢性RS-67,333が、広範囲のCORT誘導性行動異常に対し予防的であるが、慢性Flx投与は予防的でないことを示唆する。
RS-67,333の単回注射は学習された恐怖を減弱し、雄マウスにおけるストレス誘導性摂餌抑制を防御する
過去に本発明者らは、(R,S)-ケタミンの単回注射が129S6/SvEvマウスにおいてストレス誘導性うつ様行動に対し予防的であり、学習された恐怖を減弱することを示した[3]。ここで、本発明者らは、RS-67,333の単回注射が単回急性ストレッサに続く種々の不適応行動も防止し得るかどうかを決定しようとした。雄129S6/SvEvマウスに、生理食塩水またはRS-67,333(1.5、10、または30mg/kg)を注射した(図2A)。1週間後、マウスに3-ショックCFCを施した。RS-67,333を30mg/kg投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスと比較した場合、CFC訓練の際に有意に少ないすくみ行動を呈したが、1.5または10mg/kgでは呈しなかった(図2B)。5日後、マウスを、訓練の文脈に再暴露した。RS-67,333を1.5または10mg/kg投与されたマウスは、生理食塩水を投与されたマウスに比較して、有意に少ないすくみ行動を呈したが、30mg/kgでは呈しなかった、(図2C~2D)。
CFCに続いて、マウスにFSTを施した。1日目に、10mg/kgを投与されたマウスは、生理食塩水マウスと比較した場合、有意に少ない無動状態であったが、1.5または30mg/kgではそうでなかった(図2E)。しかし、2日目に、無動時間は、全群の間で同等であった(図2F~2G)。
次に、生理食塩水またはRS-67,333(10mg/kg)を投与されたマウスを、OFでテストした。両群のマウスは、同等の距離を移動し(図2H)、舞台の中央で同等量の時間過ごした(図2I)。次に、マウスをEPMでテストし、迷路のオープンアーム中およびオープンアームへの進入のどちらも、生理食塩水またはRS-67,333マウスの間で有意に異ならなかった(図2J~2K)。
最後に、マウスにNSFを施した。予防的RS-67,333(10mg/kg)を与えられたマウスは、有意に低減されたペレット接近潜時を呈した(図2L~2M)。しかし、ホームケージで食した餌および摂餌妨害後の体重減少のどちらも、群間で異ならなかった(図2N~2O)。全体としてこれらのデータは、雄129S6/SvEvマウスにおいてFSTにより測定された通り、RS-67,333の単回注射が学習された恐怖を減弱すること、およびストレス誘導性摂餌抑制を防止することにおける予防薬として効果的であるが、うつ様行動においては効果的でないことを示す。
RS-67,333の単回予防注射は雌マウスにおいてストレス誘導性不安様行動を防御する
本発明者らは次に、RS-67,333の単回注射が雌マウスにおいても予防的であり得るかどうかを決定しようとした。雌129S6/SvEvマウスに、生理食塩水またはRS-67,333(1.5または10mg/kg)を注射した(図3A)。1週間後、マウスに、3-ショックCFCを施した。マウスの全群は、CFC訓練の際に同等レベルのすくみ行動を呈した(図3B)。5日後、マウスを訓練の文脈に再暴露した。再度、マウスの全群は、同等レベルのすくみ行動を呈した(図3C~3D)。CFCに続いて、マウスにFSTを施した、FSTの1日目(図3E)および2日目(図3F~3G)に、マウスの全群は、同等レベルの無動状態を有した。
次に、マウスを、OFおよびEPMでテストした。マウスの全群は、OFにおいて同等の距離を移動し、舞台の中央で同等量の時間を過ごした(図3H~3I)。同様に、EPMにおいて、マウスは、迷路のオープンアームにおいて同等量の時間を過ごし(図3J)、オープンアームへの同等の進入数を有した(図3K)。
最後に、マウスを、NSFパラダイムでアッセイした。予防的RS-67,333(10mg/kg)は、摂餌開始潜時を有意に低減したが、RS-67,333(1.5mg/kg)は低減しなかった(図3L~3M)。ホームケージで食した餌および摂餌妨害後の体重減少はどちらも、群間で異ならなかった(図3N~3O)。全体として、これらのデータは、RS-67,333が雌129S6/SvEvマウスにおいて、学習された恐怖を減弱せず、またはストレス誘導性うつ様行動を防御しないが、NFSにおいてストレス誘導性摂餌抑制を防止し得ることを示す。
プルカロプリドまたはPF-04995274の単回予防注射は雄マウスにおいてストレスに対し予防的である
本発明者らは次に、他の5-HTRアゴニストも雄129S6/SvEvマウスにおいて予防的であり得るかどうかを決定しようとした。雄129S6/SvEvマウスに、生理食塩水、(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、プルカロプリド(3または10mg/kg)、またはPF-04995274(3または10mg/kg)を注射した(図4A)。1週間後、マウスに3-ショックCFCを施した。マウスの全群は、CFCトレーニングの際に同等レベルのすくみ行動を呈した(図4B)。5日後、マウスをトレーニングの文脈に再暴露した。本発明者が過去に発表した通り、(R,S)-ケタミンは、学習された恐怖を減弱した(図4C~4D)。興味深いことに、3mg/kgのプルカロプリドおよび10mg/kgのPF-04995274は、生理食塩水投与に比較した場合学習された恐怖を減弱したが、10mg/kgのプルカロプリドおよび3mg/kgのPF-04995274は、減弱しなかった。
CFCに続いて、マウスにFSTを施した。1日目、マウスの全群は、同等レベルの無動状態を有した(図4E)。2日目に、(R,S)-ケタミン投与は、生理食塩水投与と比較した場合無動時間を減少させた(図4F~4G)。その上、3mg/kgのプルカロプリドおよび10mg/kgのPF-04995274は、生理食塩水投与に比較した場合無動時間を減少させたが、10mg/kgのプルカロプリドおよび3mg/kgのPF-04995274は、低減しなかった。
ストレス誘導性不安様行動を次に、定量した。OFにおいて、マウスの全群は、同等の距離を移動した(図4H)。EPMにおいて、マウスの全群は、オープンアームにおいて同等量の時間を過ごし(図4I)、オープンアーム中に同等の数、進入した(図4J)。NSFパラダイムにおいて、マウスの全群は、同等量の時間、ペレットに接近した(図4K~4L)。最後に全てのマウスは、NSFパラダイムの間に同等量の体重を失った(図4M)。要約すると、これらのデータは、プルカロプリドまたはPF-04995274の単回注射が、学習された恐怖を減弱すること、およびストレス誘導性うつ様行動を減少させることにおいて、予防的有効性をもたらすことを示す。しかし、これらの薬物は、ストレス誘導性不安様行動に対しては予防的でない。
(R,S)-ケタミンおよびプルカロプリドはCA3において大きなAMPA受容体駆動性シナプス電流のバーストを低減することによる共通の機序を呈する
次に本発明者らは、(R,S)-ケタミンとプルカロプリドなどの5-HTRアゴニストの間の潜在的な共通機序を解明しようとした。具体的には、本発明者らは、予防的な(R,S)-ケタミンが、腹部CA3(vCA3)における活性を改変するがDGでは改変しないことを過去に報告したため[6]、CA3におけるグルタミン酸作動性伝達に及ぼす(R,S)-ケタミンの効果とプルカロプリドの効果の間に類似性が存在し得ると仮定した。これをテストするために、マウスに、生理食塩水、(R,S)-ケタミン(30mg/kg)、またはプルカロプリド(3mg/kg)を注射し、マウスを1週間後に安楽死させた(図5A)。本発明者らは、CA3錐体細胞において自発的興奮性シナプス後電流(EPSC)の全細胞電圧クランプ記録を実施した。本発明者らは、群間で平均EPSC振幅(図5B)またはEPSC数(図5C)に差がないことを見出した。しかし、本発明者らは、生理食塩水処置マウスが典型的に、EPSCの大きなバーストを提示し(-590.8±13.85pA)、それがAMPA受容体ブロッカーNBQXにより完全に遮断されることを見出した(図5D)。これらの大きなAMPA受容体介在性シグナルは、(R,S)-ケタミン処置マウス(図5E)およびプルカロプリド処置マウス(図5F)のどちらにも存在せず、これらの薬物が異なる受容体をターゲットとするが、それらは両者とも類似の様式でAMPA介在性シナプス伝達を改変することを示唆した。
考察
ここで、本発明者らは、5-HTRアゴニストが恐怖、うつ様、および/または不安様行動に対し予防的であり得ると仮定した。本発明者らは、種々の親和性を有する3種の5-HTRアゴニストが、ストレスを防御し得るかどうかをテストした。RS-67,333の慢性投与は、CORTのストレスに対し予防的であった。RS-67,333の単回注射は、雄の129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱したが、雌では減弱せず、両方の性別でNSFにおけるストレス誘導性摂餌抑制を防止した。RS-67,333の急性投与は、ストレス誘導性うつ様行動に対して無効であった。プルカロプリドまたはPF-04995274のどちらかの単回注射は、学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させたが、不安様行動に及ぼす効果を有しなかった。その上、(R,S)-ケタミンまたはプルカロプリドの単回注射は、CA3において大きな自発的AMPA受容体駆動性バーストを低減し、それによりどちらかの薬物がストレス誘導性の不適応行動を防御し得る、共通の機序を示した。
5-HTRは、脳全体に広く分布し、感情制御および認知機能に関係する領域で大量に発現される。5-HTRはまた、末梢全体でも大量に発現され、ENS活性および機能を調節することにおいて極めて重大な役割を担う。
この試験で選択された3種の5-HTRアゴニストは、5-HTRに対し差次的な親和性を有する(表1)。RS-67,333、プルカロプリドおよびPF-04995274は、5-HTRに対し種々の選択性および親和性を有する。これらの差は、ストレスに続く恐怖、うつ様、または不安様行動を防止することにおける薬物の予防的有効性に寄与し得る。RS-67,333およびPF-04995274は、高親和性の5-HTR部分的アゴニストであり、一方でプルカロプリドは、選択的な高親和性5-HTRアゴニストである。RS-67,333は、学習された恐怖を減弱し、新規環境による摂餌抑制を防御したが、ストレス誘導性うつ様行動を減少させなかった。プルカロプリドおよびPF-04995274は、学習された恐怖を減弱し、うつ様行動を減少させたが、不安様行動の様々な尺度への効果を有しなかった。これらのデータは、RS-67,333により呈された5-HTRについての高いpKと部分的選択性の独特の組み合わせは、不安様行動を防止するのに充分であり、一方で5-HTRでのプルカロプリドおよびPF-04995274の差次的な活性は、ストレス誘導性うつ様行動を防御することを示唆する。5-HTRがストレスレジリエンスの根底にある神経生物学的機序に寄与し得るかどうか、およびどのように寄与し得るかについて決定するために、さらなる試験が必要である。
Figure 2022527865000002
中枢神経系(CNS)および末梢内の5-HTRの発現および活性は、これらの機序への手掛かりを提供し得る。脳において、5-HTRは、HPC、AMG、およびPFCを含む、感情を処理することに関与する脳の領域で発現される[11、16、21、35、36]。5-HTRは、ドーパミンおよびアセチルコリン放出を調整すること[36]、ならびにシナプス可塑性を促進すること[36]などの、多数の他の機能に加え、カルシウムエフェクタータンパク質p11と相互作用することが知られている[37]。5-HTRは、p11と高度に共発現され、これはHPCおよびAMGにおいて受容体の表面発現を増加させ、下流のシグナル伝達経路を促進し、5-HTR刺激の抗うつ薬効果に必要である[37、38]。p11のレベルは、自殺念慮およびPTSDの尺度と相関し、自殺念慮の観念化およびPTSDのためのバイオマーカとしてのその潜在能力を示す[39~41]。加えて、PFCにおける5-HTR発現および活性は、カゼインキナーゼ2(CK2)により調節され、これはうつ様および不安様行動の重要なモジュレータであり得る[42]。5-HTRaアゴニストと、5-HTR発現および活性のこれらの細胞内調節因子に及ぼすそれらの効果を検査するさらなる試験は、予防的有効性へのさらなる手掛かりをもたらす可能性がある。
3種の5-HTRアゴニストの全てが(R,S)-ケタミンと類似の予防特性を呈したため、本発明者らは、これらの化合物がCA3における神経活性に対し同等の効果を有するかどうかを調査した。本発明者らは、(R,S)-ケタミンまたはプルカロプリドの単回注射が、EPSCの全振幅または数を顕著に変えずに、生理食塩水対照で典型的に認められるAMPA受容体介在性シナプス電流の大きなバーストを排除することを見出した。それゆえ、これらの化合物は異なる受容体をターゲットとするが、それらは、集中的な様式でAMPA受容体依存性グルタミン酸作動性伝達を改変することにより、類似の行動効果を実現し得る。(R,S)-ケタミンは、NMDA受容体を阻害することが知られているが[43~45]、出現する証拠は、(R,S)-ケタミンがAMPA受容体上でも作用してその抗うつ性効果を発揮し得ることを示す[46、47]。本発明者らの結果は、これらのデータと合致し、AMPA受容体介在性グルタミン酸作動性活性への(R,S)-ケタミンの作用が、この化合物の予防効果に寄与し得ることを示唆する。加えて、過去の試験は、5-HTRの薬理学的活性化がSchaffer側枝に沿ったCA3~CA1シナプスの長期増強(LTP)をもたらすことを示す[48]。これらのデータを組み合わせて、本発明者らの結果は、(R,S)-ケタミンおよび5-HTRアゴニストが、CA3自己連想ネットワークにおける大きな自発的AMPA受容体駆動性シナプス事象を減弱することにより、海馬回路における全体的ノイズを低減でき、関連の刺激のより大きなシグナル/ノイズ比を可能にし得ることを示唆する[49]。しかし、この推察を確認するため、およびこの潜在的機序がレジリエンスの増強に直接寄与するかどうかを検査するためには、さらなる研究が必要である。
脳内の5-HTRアゴニストの作用に加え、これらの化合物が末梢内で追加的変化を発揮する可能性がある。5-HTRは、腸神経系(ENS)、副腎、および心臓などの末梢で発現される[17]。重要なことに、5-HTRは、腸脳軸に沿った連絡を維持することにおいて重大な役割を担う。近年のデータは、ENS中の微生物叢が、腸全体に存在する5-HTRを刺激して脳中のセロトニン放出を刺激することにより、CNSと連絡することを示す[50]。同時に、数多くの過去の試験は、5-HTRの活性化が酸化ストレスに対し神経保護的であり、炎症を低減し、脳およびENS内の神経新生を刺激することを示している[50~52]。本発明者らの操作は、腸脳連絡を刺激して、神経保護および神経新生を促進し、それによりストレスに対するレジリエンスを増強する可能性がある。本発明者らは、この作用が、内側PFC(mPFC)におけるニューロン発火を増加させることおよびHPCにおける有糸分裂誘発を増強することなどの、脳での5-HTR刺激の数多くの、よく特徴づけられた結果への追加的な効果を有してきた可能性があると仮定したが[19、35]、これは、依然として決定されていない。
ストレスレジリエンスを増強する安全かつ有効な薬理学的方法を開発するために、5-HTRアゴニストの毒性を決定することが必要であろう。5-HTRは末梢全体で非常に広く発現されるため、これらの薬物への慢性暴露は、負の転帰をもたらす可能性がある[17]。本発明者らは、RS-67,333の慢性投与は有害な副作用をもたらさないことを見出した。しかし本発明者らは、心臓血管活性または肝臓毒性における変化を評定することなどの、追加的アッセイを実行しなかったため、慢性5-HTR投与が末梢臓器に負の影響を及ぼすかどうかを知ることは不可能である。それでも、本発明者らがテストした薬物は、単回投与後であってもストレスレジリエンスを増強することにおいて有効であり、慢性投与を不要にした。
ここで、本発明者らは、ストレスの神経内分泌モデルおよび恐怖に基づくストレッサの両方において、RS-67,333の本発明者らの効果を検証するために、2種の系統C57BL/6NTacおよび129S6/SvEvを使用した。C57BL/6NTacマウスにおいて、本発明者らは、予防的なRS-67,333はうつ様および不安様行動を減少させるのに効果的であることを見出し、一方で129S6/SvEvマウスでは、本発明者らは、予防的RS-67,333は学習された恐怖を減弱することおよびNSFにおいて不安様行動を予防することにおいて効果的であるが、うつ様行動を減少させることに効果的でないことを見出した。
速効性抗うつ薬として5-HTRアゴニストを検査する過去の研究はもっぱら、雄の対象を使用した[19、20、54]。しかし、過去の試験は、抗うつ薬(R,S)-ケタミンが性別に特異的な行動および神経生物学的効果を呈することを示す。発情周期をまたいで、抗うつ薬(R,S)-ケタミンの有効性は、雌マウスにおいて変動し、この変動性は、神経
栄養性因子(例えば、BDNF)のレベル変化または発情周期をまたいだNMDA受容体活性の変化に起因する可能性がある[55、56]。加えて、急性(R,S)-ケタミン投与は、雄のmPFCおよびHPCにおけるGluR1およびGluR2 AMPA受容体サブユニットの持続的増加を導く可能性があるが、雌マウスではそうではない[45、46、57、58]。雄げっ歯類において予防的有効性を示す数多くの試験にもかかわらず、今日まで1つの試験しか雌げっ歯類を検査していない[59]。Maierおよび共同研究者は、予防的(R,S)-ケタミンが、雌ラットにおいて、背側縫線核のストレス誘導性活性化を低減し、DRN依存性社会的探索欠損を排除することを示した。しかし、この試験は、今回実施したような恐怖、うつ様および不安様行動を測定しなかった。それでも、本発明者らは、RS-67,333が、雌129S6/SvEvマウスにおいて学習された恐怖を減弱せず、およびうつ様行動を防止しないが、ストレス誘導性不安様行動を防御することを示している。したがって本発明者らのデータは、5-HTRアゴニストがもっぱら、雌マウスにおける不安様行動の根底にある神経回路をターゲットにし得るが、うつ様または恐怖関連の行動の神経回路をターゲットにし得ないことを示す。本発明者らは、自身の過去の試験が雌C57BL/6NTacマウスは慢性CORTに非感受性であることを示したため、雌C57BL/6NTacマウスを使用しなかった[60]。
総括すると、本発明の試験は、2つの型のストレスに対して、および両方の性別で効果的予防薬である3種の新規化合物を同定した。これらのデータは、5-HTRが予防薬開発のための新規なターゲットであり得ること、および将来の試験が、ストレッサに先立って投与された5-HTRアゴニストがどのようにしてストレスレジリエンスをもたらすかに向けられ得ることを示唆する。
Figure 2022527865000003
Figure 2022527865000004
Figure 2022527865000005
Figure 2022527865000006
Figure 2022527865000007
Figure 2022527865000008
Figure 2022527865000009
Figure 2022527865000010
Figure 2022527865000011
Figure 2022527865000012
Figure 2022527865000013
Figure 2022527865000014
Figure 2022527865000015
Figure 2022527865000016
Figure 2022527865000017
Figure 2022527865000018
Figure 2022527865000019
Figure 2022527865000020
Figure 2022527865000021
Figure 2022527865000022
Figure 2022527865000023
Figure 2022527865000024
Figure 2022527865000025
Figure 2022527865000026
Figure 2022527865000027
Figure 2022527865000028
Figure 2022527865000029
Figure 2022527865000030
Figure 2022527865000031
Figure 2022527865000032
参考資料
1 Kessler RC, Sonnega A, Bromet E, Hughes M, Nelson CB. Posttraumatic stress disorder in the National Comorbidity Survey. Arch Gen Psychiatry.
1995;52(12):1048-60.

2 Amat J, Dolzani SD, Tilden S, Christianson JP, Kubala KH, Bartholomay K, et al.
Previous Ketamine Produces an Enduring Blockade of Neurochemical and Behavioral Effects of Uncontrollable Stress. J Neurosci.2016;36(1):153-61.

3 Brachman RA, McGowan JC, Perusini JN, Lim SC, Pham TH, Faye C, et al.
Ketamine as a Prophylactic Against Stress-Induced Depressive-like Behavior. Biol Psychiatry.2016;79(9):776-86.

4 McGowan JC, LaGamma CT, Lim SC, Tsitsiklis M, Neria Y, Brachman RA, et al.
Prophylactic Ketamine Attenuates Learned Fear. Neuropsychopharmacology.2017. 5 McGowan JC, Hill C, Mastrodonato A, LaGamma CT, Kitayev A, Brachman RA, et al. Prophylactic ketamine alters nucleotide and neurotransmitter metabolism in brain and plasma following stress. Neuropsychopharmacology.2018;43(9):1813-21.

6 Mastrodonato A, Martinez R, Pavlova IP, LaGamma CT, Brachman RA, Robison AJ, et al. Ventral CA3 Activation Mediates Prophylactic Ketamine Efficacy Against Stress-Induced Depressive-like Behavior. Biol Psychiatry.2018;84(11):846-56.

7 McGhee LL, Maani CV, Garza TH, Slater TM, Petz LN, Fowler M. The
intraoperative administration of ketamine to burned U.S. service members does not increase the incidence of post-traumatic stress disorder. Mil Med.2014;179(8 Suppl):41-6.

8 Ma J-H, Wang S-Y, Yu H-Y, Li D-Y, Luo S-C, Zheng S-S, et al. Prophylactic use of ketamine reduces postpartum depression in Chinese women undergoing cesarean section. Psychiatry Research.2019.

9 Xu Y, Li Y, Huang X, Chen D, She B, Ma D. Single bolus low-dose of ketamine does not prevent postpartum depression: a randomized, double-blind, placebo-controlled, prospective clinical trial. Arch Gynecol Obstet.2017;295(5):1167-74.

10 Highland JN, Zanos P, Georgiou P, Gould TD. Group II metabotropic glutamate receptor blockade promotes stress resilience in mice. Neuropsychopharmacology. 2019.

11 Bockaert J, Claeysen S, Compan V, Dumuis A.5-HT4 receptors. Curr Drug Targets CNS Neurol Disord.2004;3(1):39-51.

12 Bockaert J, Claeysen S, Compan V, Dumuis A.5-HT(4) receptors: history, molecular pharmacology and brain functions. Neuropharmacology.2008;55(6):922-31.

13 Dumuis A, Sebben M, Bockaert J. The gastrointestinal prokinetic benzamide
derivatives are agonists at the non-classical 5-HT receptor (5-HT4) positively coupled to adenylate cyclase in neurons. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol.
1989;340(4):403-10.

14 Dumuis A, Sebben M, Bockaert J. BRL 24924: a potent agonist at a non-classical 5- HT receptor positively coupled with adenylate cyclase in colliculi neurons. Eur J Pharmacol.1989;162(2):381-4.

15 Faye C, Hen R, Guiard BP, Denny CA, Gardier AM, Mendez-David I, et al. Rapid anxiolytic effects of RS67333, a serotonin type 4 receptor agonist, and diazepam, a benzodiazepine, are mediated by projections from the prefrontal cortex to the dorsal raphe nucleus. Biological Psychiatry.

16 Bonaventure P, Hall H, Gommeren W, Cras P, Langlois X, Jurzak M, et al. Mapping of serotonin 5-HT(4) receptor mRNA and ligand binding sites in the post-mortem human brain. Synapse.2000;36(1):35-46.

17 Hegde SS, Eglen RM. Peripheral 5-HT4 receptors. Faseb j.1996;10(12):1398-407.
18 Amigo J, Diaz A, Pilar-Cuellar F, Vidal R, Martin A, Compan V, et al. The absence of 5-HT4 receptors modulates depression- and anxiety-like responses and influences the response of fluoxetine in olfactory bulbectomised mice: Adaptive changes in hippocampal neuroplasticity markers and 5-HT1A autoreceptor. Neuropharmacology. 2016;111:47-58.

19 Lucas G, Rymar VV, Du J, Mnie-Filali O, Bisgaard C, Manta S, et al. Serotonin(4) (5-HT(4)) receptor agonists are putative antidepressants with a rapid onset of action. Neuron.2007;55(5):712-25.

20 Mendez-David I, David DJ, Darcet F, Wu MV, Kerdine-Romer S, Gardier AM, et al.
Rapid anxiolytic effects of a 5-HT(4) receptor agonist are mediated by a neurogenesis-independent mechanism. Neuropsychopharmacology.2014;39(6):1366- 78.

21 Samuels BA, Mendez-David I, Faye C, David SA, Pierz KA, Gardier AM, et al.
Serotonin 1A and Serotonin 4 Receptors: Essential Mediators of the Neurogenic and Behavioral Actions of Antidepressants. Neuroscientist.2016;22(1):26-45.

22 Eglen RM, Bonhaus DW, Johnson LG, Leung E, Clark RD. Pharmacological characterization of two novel and potent 5-HT4 receptor agonists, RS 67333 and RS 67506, in vitro and in vivo. Br J Pharmacol.1995;115(8):1387-92.

23 Giannoni P, Gaven F, de Bundel D, Baranger K, Marchetti-Gauthier E, Roman FS, et al. Early administration of RS 67333, a specific 5-HT4 receptor agonist, prevents amyloidogenesis and behavioral deficits in the 5XFAD mouse model of Alzheimer's disease. Front Aging Neurosci.2013;5:96.

24 Prins NH, Van Haselen JF, Lefebvre RA, Briejer MR, Akkermans LM, Schuurkes JA.
Pharmacological characterization of 5-HT4 receptors mediating relaxation of canine isolated rectum circular smooth muscle. Br J Pharmacol.1999;127(6):1431-7.

25 Morris PJ, Moaddel R, Zanos P, Moore CE, Gould TD, Zarate CA, Jr., et al. Synthesis and N-Methyl-d-aspartate (NMDA) Receptor Activity of Ketamine Metabolites. Org Lett.2017;19(17):4572-75.

26 Zanos P, Gould TD. Intracellular Signaling Pathways Involved in (S)- and (R)- Ketamine Antidepressant Actions. Biol Psychiatry.2018;83(1):2-4.

27 Grimwood S, Drummond E, Zasadny K, Skaddan M, Brodney M, Coffman K, et al.
Translational receptor occupancy for the 5-HT4 partial agonist PF-04995274 in rats, non-human primates and healthy volunteers. Alzheimer's & Dementia: The Journal of the Alzheimer's Association.2011;7(4):S653.

28 Zanos P, Highland JN, Liu X, Troppoli TA, Georgiou P, Lovett J, et al. (R)-Ketamine exerts antidepressant actions partly via conversion to (2R,6R)-hydroxynorketamine, while causing adverse effects at sub-anaesthetic doses. Br J Pharmacol.
2019;176(14):2573-92.

29 Morris PJ, Moaddel R, Zanos P, Moore CE, Gould TD, Zarate CA, Jr., et al.
Correction to "Synthesis and N-Methyl-d-aspartate (NMDA) Receptor Activity of Ketamine Metabolites". Org Lett.2017;19(19):5494.

30 David DJ, Samuels BA, Rainer Q, Wang J-W, Marsteller D, Mendez I, et al.
Neurogenesis-Dependent and -Independent Effects of Fluoxetine in an Animal Model of Anxiety/Depression. Neuron.2009;62(4):479-93.

31 Denny CA, Burghardt NS, Schachter DM, Hen R, Drew MR.4- to 6-week-old adult- born hippocampal neurons influence novelty-evoked exploration and contextual fear conditioning. Hippocampus.2012;22(5):1188-201.

32 Drew MR, Denny CA, Hen R. Arrest of adult hippocampal neurogenesis in mice impairs single- but not multiple-trial contextual fear conditioning. Behav Neurosci. 2010;124(4):446-54.

33 Luna VM, Anacker C, Burghardt NS, Khandaker H, Andreu V, Millette A, et al.
Adult-born hippocampal neurons bidirectionally modulate entorhinal inputs into the dentate gyrus. Science.2019;364(6440):578.

34 David DJ, Samuels BA, Rainer Q, Wang JW, Marsteller D, Mendez I, et al.
Neurogenesis-dependent and -independent effects of fluoxetine in an animal model of anxiety/depression. Neuron.2009;62(4):479-93.

35 Lucas G, Compan V, Charnay Y, Neve RL, Nestler EJ, Bockaert J, et al.
Frontocortical 5-HT4 receptors exert positive feedback on serotonergic activity: viral transfections, subacute and chronic treatments with 5-HT4 agonists. Biol Psychiatry. 2005;57(8):918-25.

36 Eglen RM, Wong EH, Dumuis A, Bockaert J. Central 5-HT4 receptors. Trends
Pharmacol Sci.1995;16(11):391-8.

37 Warner-Schmidt JL, Flajolet M, Maller A, Chen EY, Qi H, Svenningsson P, et al.
Role of p11 in Cellular and Behavioral Effects of 5-HT4 Receptor Stimulation. The Journal of Neuroscience.2009;29(6):1937.

38 Egeland M, Warner-Schmidt J, Greengard P, Svenningsson P. Co-expression of serotonin 5-HT1B and 5-HT4 receptors in p11 containing cells in cerebral cortex, hippocampus, caudate-putamen and cerebellum. Neuropharmacology.
2011;61(3):442-50.

39 Su T-P, Zhang L, Chung M-Y, Chen Y-S, Bi Y-M, Chou Y-H, et al. Levels of the potential biomarker p11 in peripheral blood cells distinguish patients with PTSD from those with other major psychiatric disorders. Journal of Psychiatric Research.
2009;43(13):1078-85.

40 Zhang L, Su T-P, Choi K, Maree W, Li C-T, Chung M-Y, et al. P11 (S100A10) as a potential biomarker of psychiatric patients at risk of suicide. Journal of Psychiatric Research.2011;45(4):435-41.

41 Zhang L, Ursano RJ, Li H. P11: a potential biomarker for posttraumatic stress disorder. Methods Mol Biol.2012;829:453-68.

42 Castello J, LeFrancois B, Flajolet M, Greengard P, Friedman E, Rebholz H. CK2 regulates 5-HT4 receptor signaling and modulates depressive-like behavior. Mol Psychiatry.2018;23(4):872-82.

43 Autry AE, Adachi M, Nosyreva E, Na ES, Los MF, Cheng PF, et al. NMDA receptor blockade at rest triggers rapid behavioural antidepressant responses. Nature.
2011;475(7354):91-5.

44 Nosyreva E, Szabla K, Autry AE, Ryazanov AG, Monteggia LM, Kavalali ET. Acute suppression of spontaneous neurotransmission drives synaptic potentiation. J Neurosci.2013;33(16):6990-7002.

45 Zanos P, Gould TD. Mechanisms of ketamine action as an antidepressant. Mol
Psychiatry.2018;23(4):801-11.

46 Zanos P, Moaddel R, Morris PJ, Georgiou P, Fischell J, Elmer GI, et al. NMDAR inhibition-independent antidepressant actions of ketamine metabolites. Nature.
2016;533(7604):481-6.

47 Suzuki K, Nosyreva E, Hunt KW, Kavalali ET, Monteggia LM. Effects of a ketamine metabolite on synaptic NMDAR function. Nature.2017;546(7659):E1-e3.

48 Teixeira CM, Rosen ZB, Suri D, Sun Q, Hersh M, Sargin D, et al. Hippocampal 5-HT Input Regulates Memory Formation and Schaffer Collateral Excitation. Neuron. 2018;98(5):992-1004.e4.

49 Rebola N, Carta M, Mulle C. Operation and plasticity of hippocampal CA3 circuits: implications for memory encoding. Nat Rev Neurosci.2017;18(4):208-20.

50 De Vadder F, Grasset E, Manneras Holm L, Karsenty G, Macpherson AJ, Olofsson LE, et al. Gut microbiota regulates maturation of the adult enteric nervous system via enteric serotonin networks. Proc Natl Acad Sci U S A.2018;115(25):6458-63.

51 Bianco F, Bonora E, Natarajan D, Vargiolu M, Thapar N, Torresan F, et al.
Prucalopride exerts neuroprotection in human enteric neurons. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol.2016;310(10):G768-75.

52 Liu MT, Kuan YH, Wang J, Hen R, Gershon MD.5-HT4 receptor-mediated
neuroprotection and neurogenesis in the enteric nervous system of adult mice. J Neurosci.2009;29(31):9683-99.

53 Sittig LJ, Carbonetto P, Engel KA, Krauss KS, Barrios-Camacho CM, Palmer AA.
Genetic Background Limits Generalizability of Genotype-Phenotype Relationships. Neuron.2016;91(6):1253-59.

54 Darcet F, Gardier AM, David DJ, Guilloux JP. Chronic 5-HT4 receptor agonist treatment restores learning and memory deficits in a neuroendocrine mouse model of anxiety/depression. Neurosci Lett.2016;616:197-203.

55 Dossat AM, Wright KN, Strong CE, Kabbaj M. Behavioral and biochemical sensitivity to low doses of ketamine: Influence of estrous cycle in C57BL/6 mice. Neuropharmacology.2018;130:30-41.

56 Picard N, Takesian AE, Fagiolini M, Hensch TK. NMDA 2A receptors in parvalbumin cells mediate sex-specific rapid ketamine response on cortical activity. Mol Psychiatry.2019;24(6):828-38.

57 Thelen C, Flaherty E, Saurine J, Sens J, Mohamed S, Pitychoutis PM. Sex Differences in the Temporal Neuromolecular and Synaptogenic Effects of the Rapid-acting Antidepressant Drug Ketamine in the Mouse Brain. Neuroscience.2019;398:182-92.
58 Li N, Lee B, Liu RJ, Banasr M, Dwyer JM, Iwata M, et al. mTOR-dependent synapse formation underlies the rapid antidepressant effects of NMDA antagonists. Science. 2010;329(5994):959-64.

59 Dolzani SD, Baratta MV, Moss JM, Leslie NL, Tilden SG, Sorensen AT, et al.
Inhibition of a Descending Prefrontal Circuit Prevents Ketamine-Induced Stress Resilience in Females. eNeuro.2018;5(1).

60 Mekiri M, Gardier AM, David DJ, Guilloux JP. Chronic corticosterone administration effects on behavioral emotionality in female c57bl6 mice. Exp Clin Psychopharmacol. 2017;25(2):94-104.

61 Kessler RC, McGonagle KA, Zhao S, Nelson CB, Hughes M, Eshleman S, et al.
Lifetime and 12-month prevalence of DSM-III-R psychiatric disorders in the United States. Results from the National Comorbidity Survey. Arch Gen Psychiatry.
1994;51(1):8-19.

S1 Brachman RA, McGowan JC, Perusini JN, Lim SC, Pham TH, Faye C, et al.
Ketamine as a Prophylactic Against Stress-Induced Depressive-like Behavior. Biol Psychiatry.2016;79(9):776-86.

S2 Denny CA, Burghardt NS, Schachter DM, Hen R, Drew MR.4- to 6-week-old adult- born hippocampal neurons influence novelty-evoked exploration and contextual fear conditioning. Hippocampus.2012;22(5):1188-201.

S3 David DJ, Samuels BA, Rainer Q, Wang J-W, Marsteller D, Mendez I, et al.
Neurogenesis-Dependent and -Independent Effects of Fluoxetine in an Animal Model of Anxiety/Depression. Neuron.2009;62(4):479-93.

S4 Holmes PV. Rodent models of depression: reexamining validity without anthropomorphic inference. Crit Rev Neurobiol.2003;15(2):143-74.

S5 Petit-Demouliere B, Chenu F, Bourin M. Forced swimming test in mice: a review of antidepressant activity. Psychopharmacology (Berl). 2005;177(3):245-55.

S6 Lindholm JS, Autio H, Vesa L, Antila H, Lindemann L, Hoener MC, et al. The antidepressant- like effects of glutamatergic dmgs ketamine and AMPA receptor potentiator LY 451646 are preserved in bdnf(+)/(-) heterozygous null mice.
Neuropharmacology. 2012; 62( 1 ) : 391 -7.

S7 Ghasemi M, Raza M, Dehpour AR. NMDA receptor antagonists augment antidepressant- like effects of lithium in the mouse forced swimming test. J
Psychopharmacol. 2010;24(4) : 585-94.

S8 Liu RJ, Lee FS, Li XY, Bambico F, Duman RS, Aghajanian GK. Brain-derived neurotrophic factor Val66Met allele impairs basal and ketamine-stimulated synaptogenesis in prefrontal cortex. Biol Psychiatry. 2012;71(11):996-1005.
実施例2 RS67333、セロトニン・タイプ4受容体アゴニスト、およびベンゾジアゼピンであるジアゼパムの速効性抗不安効果は前頭前野から背側縫線核への投射により介在される
概要
背景:セロトニン(5-HT)4受容体(5-HTR)を活性化することは、種々の動物モデルにおいて抗不安効果を有することが示されてきた。これらの効果を担う回路を特徴づけることは、不安症を処置する新たなアプローチへの手掛かりを提示するはずである。
方法:本発明者らは、内側前頭前野(mPFC)から背側縫線核(DRN)に発生するグルタミン酸作動性軸索終末における急性5-HTR活性化が、速効性抗不安効果を誘導するかどうかを評価した。5-HTRアゴニストであるRS67333(0.5mg/側)の急性全身投与(1.5mg/kg腹腔内、i.p.)またはmPFC内輸注の抗不安効果を、マウスにおいて検査した。RS67333の抗不安効果がmPFC-DRN神経回路を動員した証拠を提供するために、DRNセロトニン(5-HT)ニューロンの発火頻度、脳内5-HT枯渇、および光遺伝学的活性化/サイレンシングのインビボ記録を実施した。
結果:RS67333の急性全身投与およびmPFC内輸注は、速効性抗不安効果を生じ、DRN 5-HT細胞発火を増加させた。セロトニン枯渇は、RS67333のmPFC輸注により誘導された抗不安効果を防止した。驚くべきことに、mPFC輸注のジアゼパム(1.5mg/側)の抗不安効果もまた、5HT枯渇により遮断された。DRNをターゲットとするmPFC終末を光遺伝学的に活性化することは、不安症を低減し、一方でこの回路をサイレンシングすることは、RS67333およびジアゼパムのmPFC輸注に誘導された抗不安効果を遮断した。最後に、急性全身RS67333またはジアゼパム投与により誘導された抗不安効果は、DRNにおける皮質のグルタミン酸作動性終末を光遺伝学的に阻害した後に部分的に遮断された。
結論:本発明者らの知見は、mPFCにおいて5-HTRを急性期に活性化すること、またはDRNにおいてmPFC錐体細胞終末をターゲットにすることが、速効性抗不安応答を生じる方策となり得ることを示唆する。
SSRIと異なり、5-HTRアゴニストであるRS67333での処置は(A13)、神経新生と独立した機序を通して速効性抗不安様/抗うつ様効果を誘導した(A5)。多くの試験が、亜慢性または慢性処置後に5-HTRモジュレーションの抗不安様/抗うつ様活性を評定したが、抗不安様プロファイルを急性期で評価したものはほとんどない。対立する証拠は、5-HTRアンタゴニストが急性抗不安様効果を有することを示唆する(A14、A15)。2つの報告は、高架式十字迷路(EPM)においてラットでの5-HTRアンタゴニストSB204070、GR113808(A15)およびSB207266A(A14、A15)の抗不安効果を示した。しかし別の試験は、EPMにおけるオープンアーム進入の数に及ぼすアンタゴニストSB204070およびGR113808の効果を検出しなかった(A15)。同様に、明暗選択テストにおける不安様行動に及ぼす5-HTRアンタゴニストの直接効果は、検出されなかった(A16)。これらの矛盾の理由は、不明である。対照的に、急性5-HTR活性化は、速効性抗不安様応答を得るための有望な薬理学的方策であることが示された。近年、RS67333の急性投与は、マウスにおいて抗不安様効果を誘導し(A17)、思春期のカンナビノイドへの慢性暴露の不安惹起効果を逆転した(A18)。
興味深いことに、内側前頭前野(mPFC)で記録された錐体ニューロンのおよそ60%は、5-HTR転写産物およびタンパク質の両方を含有する。mPFCにおけるこれらの細胞体樹状突起5-HTRの活性化は、DRNにおけるグルタミン酸放出をもたらして、5-HTニューロンの発火を刺激する(A19)。数多くの証拠もまた、DRNへのmPFC投射が不安およびうつ関連行動をモジュレートすることを示唆する(A20~A22)。実際に、PFC中のV層錐体細胞の慢性光刺激は、マウスの不安症/うつ病モデルにおいて長期持続性抗不安様効果を誘導し(A23)、DRNをターゲットとするmPFC終末の阻害は、社会的ストレスを受けたマウスにおいて不安様行動の長期持続性抑制を誘導する(A24)。最後に、近年の研究は、環境特異的適応行動におけるDRN回路への重大な役割を明らかにした(A25)。結果として、mPFCからDRNへの投射が5-HTR活性化の抗不安効果を媒介する可能性がある。
ここで、抗不安様活性を予測させる行動パラダイムを利用して、本発明者らは最初に、雄BALB/cJRj不安症マウスにおいて、RS67333またはGABAモジュレータのジアゼパムの急性全身またはmPFC内投与の結果を評価した(A26)。その後、光遺伝学的技術を利用して、本発明者らは、速効性抗不安様効果に及ぼすmPFCからDRNに発生するグルタミン酸作動性軸索終末の寄与を評定した。
材料と方法
対象
雄BALB/cJRjマウス(Janvier Labs、フランス ル・ジュネスト=サン=ティスル)は、7~8週齢で体重25~30gであり、12時間明-12時間暗のスケジュール(06:00時は明)で維持された。餌および水は、行動観察の間以外は随意に提供された。プロトコルは、国内および国際法および政策(Council directive #87-848, October 19, 1987, Ministere de l’Agriculture et de la Foret, Service Veterinaire de la Sante et de la Protection Animale, permissions # 92-256b to DJD, Institutional Animal Care and Use Committee 26 authorization #4074)を遵守した組織内ガイドラインにのっとって実行された。
薬物
1.5mg/kgで腹腔内(i.p.)投与された(A-S1)、または0.5μg/側で内側前頭前野(mPFC)に局所投与された(A-S2、A-S3)1-(4-アミノ-5-クロロ-2-メトキシフェニル)-3-(1-ブチル)-4ピペリジニル)-1-プロパン塩酸[RS67333、セロトニン4受容体(5-HTR)アゴニスト]、および1mg/kgでi.p.投与された5-フルオロ-2-メトキシ-(1-(2-((メチルスルホニル)アミノ]エチル]-4-ピペリジニル]-1H-インドール-3-メチルカルボキシラートスルファマート(GR125487、5-HTRアンタゴニスト)(1)は、生理食塩水(0.9%NaCl)溶液に溶解され、Tocris Bioscience(英国、ブリストル)から購入された。RS67333は、pKi8.7での5-HTRへの高い結合親和性を示す(A-S4、A-S5)。RS67333は、5-HTRと同等の親和性で結合されるシグマ受容体(シグマ1:pKi=8.9、およびシグマ2:pKi=8.0)を除き、他の神経伝達物質受容体に対し6.7未満のpKiを有する。ジアゼパム塩酸塩(0.5%Tween(登録商標)20溶液に溶解される、Sigma-Aldrich、フランス サン=カンタン=ファラヴィエ)を、テストの45分前に、1.5mg/kgでi.p.に(A-S6)、または1.5μg/側でmPFCに局所的に(A-S7)投与した。フルオキセチン塩酸塩(生理食塩水に溶解される、Anawa Trading、スイス チューリッヒ)を、テストの45分前に18mg/kgでi.p.投与した(A-S6)。パラクロロフェニルアラニンメチルエステル(p-CPA、Tween 1%溶液に溶解される、Sigma-Aldrich、フランス サン=カンタン=ファラヴィエ)を、150mg/kgで連続3日間、1日2回i.p.投与した(A-S8、A-S9)。
処置
RS67333、ジアゼパムまたはフルオキセチンの全身投与
RS67333(1.5mg/kg、i.p.)、ジアゼパム(1.5mg/kg、i.p.)、フルオキセチン(18mg/kg、i.p.)を、雄BALB/cJRjマウスの独立した3つのコホートでの高架式十字迷路(EPM)、新規環境による摂餌抑制(NSF)またはオープンフィールド(OF)のテストの45分前に注射した。
RS67333の抗不安様効果の選択性を確実にするために、雄BALB/cJRjマウスの新しいコホートにおいて、0.9%NaCl溶液に溶解されたGR125487(1.0mg/kg、i.p.)を、RS67333投与(1.5mg/kg、i.p.)の15分前に注射した。EPMまたはNSFは、RS67333投与の45分後に行った(A-S1)。GR125487+RS67333の共投与の行動結果を、RS67333単独、ジアゼパム(1.5mg/kg、i.p.)、フルオキセチン(18mg/kg、i.p.)およびビヒクル群(0.9%生理食塩水溶液、i.p.)に比較した。
RS67333のmPFC局所輸注
mPFC薬物輸注では、2つの両側カニューレ(bilateral cannulae)(27Gステンレス鋼カテーテル内に挿入された75μm径シリカキャピラリーチューブ)を、麻酔(抱水クロラール、400mg/kg、i.p.)の下、mPFC中に埋め込んだ[(A-S10)に従い、ブレグマからのmmでの定位座標:A=+2.10、L=±0.50、V=-2.60、A 前方;L 側面、V 腹面]。翌日、RS67333(0.5μg/側)を、EPMおよびNSFでのテストの45分前に、覚醒状態で自由に運動する雄BALB/cJRjマウスにおいて、0.2μL/分の流速で2分間連続灌流した(LEGATOTM(商標)180シリンジポンプ、KD Scientific Inc.、米国マサチューセッツ州ホリストン)。ジアゼパム(1.5mg/kg)を、陽性対照として使用した。
セロトニン枯渇
雄BALB/cJRjマウスの新しいコホートにおいて、p-CPAを、連続3日間、1日2回投与た(0900および1700時間目)。RS67333(0.5μg/側)およびジアゼパム(1.5μg/側)をその後、最後のp-CPA投与の24時間後にmPFC内に投与し、行動テスト(EPM)を局所輸注の45分後に行った。
p-CPA試験では、行動テストの直後に、動物を殺処分し前頭前野を摘出し、ELISA法(Immusmol、フランス)による5-HT濃度測定のために皮質脳ホモジネートに低減して、組織分の5-HT枯渇を確かめた。
行動テスト
高架式十字迷路
EPMは、げっ歯類の行動アッセイで広く利用されており、それは、薬理物質の抗不安効果を評定するために認証されている(A-S11)。このテストは、(A-S1)に記載された通り実施された。迷路は、床上50cmにある中央プラットフォームで連結された2つのオープンアームと、壁で閉鎖された2つのアームとを有する十字形状の装置である。マウスを個別に、オープンアームに面した迷路の中心に置き、急性全身投与またはmPFC輸注の行動結果のために5分間、および光遺伝学的実験のために6分間、迷路を探索させた。オープンアームで過ごした時間およびそこへの進入数を、不安指数として用いた。全てのパラメータを、ビデオトラッカー(EPM3C、Bioseb、フランス ヴィトロル)を用いて測定した。
新規環境による摂餌抑制
NSFは、競合の動機づけ、つまり食衝動および明るく照らされた舞台の中心に思い切って向かうことの恐怖、を誘起するコンフリクトテストである。摂餌開始潜時は、古典的な抗不安薬および慢性抗うつ薬がこの尺度を減少させるため、不安/うつ様行動の指数として用いられる。NSFテストを、過去に記載された通り10分の期間で実施した(A-S12)。手短に述べると、テスト装置は、プラスチックボックス(50×50×20cm)からなり、その床は、およそ2cmの床敷で覆われていた。行動テストの24時間前に、全ての餌をホームケージから除去した。テストの時間に、1つのペレット飼料(通常食)を、ボックスの中央に位置する白紙のプラットフォームに置いた。各動物をボックスの隅に置き、ストップウォッチを直ちに始動した。摂餌(マウスがしゃがんで、前足を使ってペレットに噛みつくことと定義)開始潜時の時間を記録した。その直後に、動物をホームケージに移し、続く5分間にマウスにより摂取された餌の量を測定し、可能性のある混同要因として食欲の変化のための対照とした。
オープンフィールドパラダイム(OF)
運動活性を、4台の39×39cmPerpexプラスチックオープンフィールドボックス(Vivo-tech/Ugo Basile、フランス サロン=ド=プロヴァンス)で定量した。この装置を、特別に設計された40×40cm赤外線バックライト(単光性波長850nm高均一性、Vivo-tech、フランス サロン=ド=プロヴァンス)で床から照光した。活性チャンバーを、バリフォーカル光学系および偏光フィルター(Vivo-tech、フランス サロン=ド=プロヴァンス)を有する4つの白黒カメラによりモニタリングした。光遺伝学的実験では、追跡検出を改善するために、光学バンドパスフィルターを特別に選択した。装備全体を、ANYMAZE バージョン6ビデオ追跡ソフトウエア(Stoelting Co/Vivo-tech、フランス サロン=ド=プロヴァンス)を用いて制御した。依存する尺度は、全身投与での10分、または光遺伝学的実験での6分のテスト期間にわたり中央に居た時間、合計歩行距離、および合計距離で割った中央を移動した歩行距離であった。
インビボ電気生理学的記録
背側縫線核(DRN)5-HTニューロンを、以下の基準に従って同定した:過去に報告された通り、緩徐な(0.5~2.5Hz)および通常の発火頻度および長期間、陽性活動電位(A-S13)。
光遺伝学的操作
ウイルス注入
オプシン発現をDRN中の皮質グルタミン酸作動性終末に選択的に標的化させるために、Karl DeisserothおよびEd Boyden (UNC Vector Core、米国ノースカロライナ州)から得られたAAV5-CaMKIIα-ChR2増強黄色蛍光タンパク質(eYFP)、AAV5-CaMKII-ArchT緑色蛍光タンパク質(GFP)またはAAV5-CaMKII-eYFPを、mPFCに両側的に注射した(ブレグマからmmでA=+2.10、L=±0.50、V=-2.60)。AAV5-CamKII-eYFPを注射されたマウスを、対照として使用した。
光ファイバーの構築
本発明者らが過去に記載した通り、全ての実験で、200μmのコア、0.37の開口数(NA)のマルチモードファイバー(ThorLabs、フランス メゾン=ラフィット)を、100mw 473mm青色および532nm緑色レーザダイオード(OEM Laser Systems、USA)に連結されたパッチケーブルを介する光刺激のために用いた(A-S14)。
光ファイバーの埋め込みおよび光遺伝学的手順
BALB/cJRjマウスに、DRNをターゲットとした光ファイバーを手術により埋め込んだ(ブレグマからのmmで、A=-4.50、L=+1.20、V=-4.0、角度15°)。200mmコア、0.37NAの光ファイバー(ThorLabs、光学系の先端に、ChR2およびArch-Tでそれぞれ~10-12および15-16mW)を、過去に記載された通り(A-S15)、473または532nmのどちらかのレーザダイオード(OEM Laser Systems、USA)に連結されたパッチケーブルを介する光刺激に用いた。行動実験では、AAV5-CaMKIIα-ChR2-eYFPマウスおよびそれらの対照が、10Hz刺激、20msパルスを3分間にわたり受け、一方で緑色光が、3分のテスト期間全体で連続してAAV5-CaMKII-ArchT-GFPに送達された。RS67333(0.5μg/側または1.5mg/kg、i.p.でmPFCに局所的に)およびジアゼパム(1.5μg/側または1.5mg/kg、i.p.でmPFCに局所的に)の類似の用量を、mPFCに輸注するか、またはi.p.投与した。DRNにおけるmPFC投射の刺激または阻害を、行動パラダイムと同時に行った。
免疫組織化学的検査
オプシン発現を確実にするために、マウスを、麻酔(100mg/mlケタミンおよび20mg/mlキシラジン、i.p.)後に経心的に灌流した(低温生理食塩水で2分間、その後、4%低温PFA)。脳を、摘出し、4℃の30%ショ糖で凍結防止した。35μm厚の冠状断を、脳全体から切除し、0.1%アジ化ナトリウムを有する1Xリン酸緩衝生理食塩水(PBS)中で貯蔵した。浮動性断片を、ブロッキング緩衝液(0.1%Triton X―100、5%正常ロバ血清(NDS)、1X PBS)中、室温で2時間インキュベートした。eYFPおよびGFPを、4℃で一晩同じ緩衝液中でウサギGFPタグ・ポリクローナル抗体(1:500、Thermo Fisher Scientific、カタログ番号A-11122)を用いて検出した。1X PBSで洗浄した後、二次Cy3-AffiniPureロバ抗ウサギ抗体(1:250、Jackson Immunoresearch、711-165-152)を、室温で2時間10%NDS緩衝液を含む1X PBS中に添加した。1X PBSで数回すすいだ後、断片をスライドに乗せ、風乾させ、Fluoromountと共にカバーガラスを掛けて、適当なフィルターを用いる共焦点顕微鏡測定(Olympus BX51)で検査した。
統計解析
平均±SEMで表されたデータ解析の結果を、Prism 8.1.2ソフトウエア(Graphpad、米国カリフォルニア州サンディエゴ)を用いて分析した。全ての実験で、スチューデント検定、一元配置または二元配置分散分析を、適宜、データに当てはめた。有意な主効果および/または相互作用を、フィッシャーのPLSD事後解析に施した。NSFでは、本発明者らは、データの正規分布がないためカプラン・マイヤー生存分析を利用し、マンテル・コックス・ログランク検定を、実験群間の差を評価するために用いた。統計学的有意性を、p<0.05に設定した。全ての統計学的検定およびp値を、表3~6に列挙する。
結果
急性全身5-HTR刺激は速効性抗不安様効果を誘導した
推定上の速効性抗不安5-HTR活性化を評定するために、ビヒクル、フルオキセチン(18mg/kg)、ジアゼパム(1.5mg/kg)、またはRS67333(1.5mg/kg)を、EPMまたはNSFにおける行動テストの45分前にi.p.投与した(図6A)。EPMでは、RS67333およびジアゼパムの急性全身注射が、BALB/cJRjマウスにおいて、ビヒクルおよびフルオキセチン投与に比較した場合、速効性抗不安様効果を誘導した。RS67333およびジアゼパムは、オープンアームで過ごした時間およびパーセント時間を増加させた(一元配置分散分析、**p<0.01 vs.ビヒクル群。図1Cおよびインセット)。この効果が自発運動活性における変化の結果であったとは考えにくく、なぜなら、このパラメータの変化は検出されず、かつ合計距離で割ったオープンアーム内での歩行距離の比率が両薬物で有意に上昇したためである(一元配置分散分析、**p<0.01 vs.ビヒクル群、図6Dおよびインセット)。
RS67333誘導性抗不安様効果の選択性を評定するために、本発明者らは、5-HTRアンタゴニストGR125487(1mg/kg、i.p.)が不安様行動へのRS67333(1.5mg/kg)の応答に影響を及ぼすかどうかについてもテストした。ここで、GR125487を、RS投与の15分前に投与した(図11A)。EPMにおいて、GR125487投与は、自発運動活性に影響せずに、オープンアームで過ごした時間およびパーセント時間の増加、または合計距離で割ったオープンアームでの歩行距離のRS67333誘導性の増加を防止した(一元配置分散分析、p<0.05、**p<0.01または##p<0.01 それぞれvs.ビヒクル群およびvs.RS67333群、図11B~11Cおよびインセット)。
別の不安関連テストであるNSFにおいて、本発明者らは、RS67333およびジアゼパムが、不安惹起様効果を誘導したフルオキセチンとは異なり、ホームケージでの餌消費量に影響せずに、生理食塩水投与に比較した場合、摂餌開始潜時を減少させた(カプラン・マイヤー生存分析および一元配置分散分析、**p<0.01 vs.ビヒクル群、インセット、図6E~6Fおよびインセット)ことを見出した。その上、GR125487は、餌消費量に影響せずに、摂餌開始潜時に及ぼすRS67333の効果を遮断した(カプラン・マイヤー生存分析および一元配置分散分析、**p<0.01または##p<0.01 それぞれvs.ビヒクル群およびRS67333群、図11D~11Eおよびインセット)。
これらの結果をさらに検証するために、本発明者らは次に、別の不安症関連テストであるオープンフィールド(OF)でRS67333、フルオキセチンおよびジアゼパムの効果をテストした(図12A~12C)。本発明者らは、フルオキセチンと異なり、急性RS67333およびジアゼパムが、自発運動活性に影響せずに、中央で過ごしたパーセント時間を増加させる(一元配置分散分析、p<0.05、**p<0.01、図12B)ことを見出した。実際に、合計距離で割った中央での歩行距離の比率は、ジアゼパムで有意に増加し、RS67333では傾向が観察された(一元配置分散分析、p<0.05、**p<0.01 vs.ビヒクル群、図12Cおよびインセット)。要約すると、これらのデータは、5-HTR活性化を介するRS67333誘導性の速効性抗不安様効果を示す。
急性皮質5-HTR活性化は速効性抗不安様効果を誘導する
5-HTRは、中枢5-HT機能不全に関係する気分障害の生理病理学的作用に関与する脳領域(A19、A28、A29)であるmPFCで発現されるため(A27)、本発明者らは、速効性抗不安様活性へのmPFCでの5-HTR活性化の寄与を検査した(図6B)。EPMでは、合計距離で割ったオープンアームでの歩行距離の比率の有意な増加が観察されたため(一元配置分散分析、p<0.05 vs.ビヒクル群、図6H)、ジアゼパム(1.5mg/kg)の全身投与で観察された通り、RS67333(1μg)の局所輸注は、自発運動活性に影響せずにオープンアームで過ごした時間およびパーセント時間を有意に増加させた(一元配置分散分析、p<0.05、**p<0.01 vs.ビヒクル群、図6Gおよびインセット)。NSFでは、RS67333およびジアゼパムの全身投与は、ホームケージでの餌消費量に影響せずに摂餌開始潜時を減少させ(カプラン・マイヤー生存分析および一元配置分散分析、p<0.05、**p<0.01 vs.ビヒクル群、図6I~6Jおよびインセット)、mPFCにおける5-HTR活性化の抗不安様効果を確認した。
背側縫線核からのセロトニンは急性RS67333およびジアゼパム投与の速効性抗不安様効果に関与する
ここで、本発明者らは、RS67333の急性投与がセロトニン作動性活性における持続的変化を誘導し得るかどうかのテストに着手した(図7)。実際に、本発明者らは、RS67333(1.5mg/kg)の急性全身投与がDRN 5-HTニューロンの放電頻度を63%増加させた(スチューデントの検定、**p<0.01 vs.RS67333前、図2B~2C)ことを見出した。
mPFC 5-HTR刺激の抗不安様効果がインタクト5-HTシステムに依存することをさらに確認するために、マウスを、RS67333(0.5μg/側)またはジアゼパム(1.5μg/側)のmPFC内輸注前に、p-CPAで3日間前処置した(図7D)。p-CPAは、ビヒクルマウスのmPFCにおいて5-HT量の平均減少86%を誘導した(二元配置分散分析、#p<0.05、##p<0.01 vs.適当なビヒクル群、図7E)。RS67333またはジアゼパムでの急性mPFC内輸注は、EPMのオープンアームで過ごした時間、パーセント時間を増加させ、オープンアームでの歩行距離/合計距離の比率が、5-HT除去p-CPAマウスにおいて消失した(abolished)(二元配置分散分析、**p<0.01 vs.ビヒクル/ビヒクルまたは#p<0.05、##p<0.01 vs.ビヒクル/適当な群、図7F~7G)。p-CPA誘導性の5-HTの枯渇は、自発運動活性に影響しなかった(図7Gのインセット)。これらの結果は、速効性抗不安様効果における5-HT神経伝達の重大な役割を指摘する。要約すると、過去に示唆されたように、RS67333(A29)、およびジアゼパムは、mPFCのモジュレーションを通して5-HT機能に作用する。
5-HTRアゴニストの速効性抗不安様効果は内側前頭前野-脳幹神経回路を動員する
情動行動は、DRNに投射するmPFC錐体ニューロンにより媒介されるが(A22)、これらの投射が抗不安様効果に関与するということを示唆する直接的証拠はない。したがって、本発明者らは、光遺伝学的方策を利用して、急性ジアゼパムまたはRS67333投与により誘導された速効性抗不安様効果への、DRNに入る皮質グルタミン酸作動性終末の特異的寄与の検査を開始した。
最初に、オプシン発現をDRNへの皮質グルタミン酸作動性投射に選択的に標的化するために、本発明者らは、DRNにおけるmPFC錐体細胞終末でChR2を特異的に発現する、AAV5-CaMKIIα-ウイルスを利用した(図8A~8B)。AAV5-CaMKIIα-CDR2-eYFP注射マウスを、AAV5-CaMKII-eYFP注射対照と比較した。EPMでは、CamKII-CDR2注射BALB/cJRjマウスのDRNにおけるmPFC投射の照光は、光OFFおよび対照群に比較して、オープンアームで過ごした時間、パーセント時間、または時間分布の変化の有意な増加を誘導した(二元配置分散分析、**p<0.01または##<p0.01 vs.光ONでのそれぞれCaMKIIα-ChR2-eYFPまたはCaMKII-eYFP、図8Cおよびインセット)。この効果が自発運動活性の変化の結果であった可能性は低く、なぜなら合計歩行距離が光ONの際のCaMKII-ChR2注射マウスにおいて減少したとしても、合計距離で割ったオープンアーム内での歩行距離の比率は、光OFFに比較して増加していたためである(二元配置分散分析、**p<0.01または##<p0.01 vs.光ONでのそれぞれCaMKIIα-ChR2-eYFPまたはCaMKII-eYFP、図3Dおよびインセット)。5-HTRアゴニストの速効性抗不安様効果が、mPFC-脳幹神経回路を動員することをさらに確認するために、本発明者らは、OFパラダイムでのDRNにおけるmPFC終末の光遺伝学的刺激の行動結果を評価した(図13A~13C)。本発明者らは、CamKII-ChR2注射BALB/cJRjマウスのDRNにおけるmPFC投射の照光は、光OFFおよび対照群に比較して中央で過ごした時間の有意な増加を誘導することを見出した(二元配置分散分析、**p<0.01 vs.光OFFの際、##P<0.01 vs.光ONの際のeYFP、図13Bおよびインセット)。この効果が自発運動活性の変化の結果であった可能性は低く、なぜなら合計歩行距離は影響されず、合計距離で割った中央での歩行距離の比率は光OFFに比較して増加したからである(二元配置分散分析、**p<0.01または##<p0.01 vs.光ONの際のCaMKIIα-ChR2-eYFPまたはCaMKII-eYFP、図13Cおよびインセット)。
次に、本発明者らは、RS67333またはジアゼパムの皮質輸注後のDRNへのmPFC投射の光遺伝学的阻害の効果を探索した(図9A)。mPFCでのAAV5-CaMKII-ArchT注射マウスは、mPFCだけでなくDRNの皮質グルタミン酸作動性終末でもArchT-GFPの強固な発現を示した(図9B)。EPMでは、CaMKII-ArchTマウスのmPFCに注射されたRS67333(0.5μg/側)およびジアゼパム(1.5μg/側)は、光OFFの際にオープンアームで過ごした時間、パーセント時間、または時間分布の変化を有意に増加させ、それらは3分間の緑色光照光中に逆転した(RS67333およびジアゼパムでの阻害でそれぞれ70±8%および85±5%、二元配置分散分析、**p<0.01または##<p0.01 vs.適当な処置での光ONでのそれぞれCaMKIIα-ArchTまたはCaMKII-GFP、図9Cおよびインセット)。同様に、急性RS67333およびジアゼパム投与は、対照に比較して、光OFF中の合計距離で割ったオープンアームでの歩行距離の比率を増加させ、光ON中に遮断され、両薬物の抗不安効果を確認した(二元配置分散分析、**p<0.01 vs.適当な処置での光OFFの際のそれぞれCaMKIIα-ArchTまたは#<P0.05 CaMKII-GFP、図9D)。歩行距離の変化は、光OFFまたは光ONの間に観察されなかった(図9Dおよびインセット)。これらの結果は、OFでも観察された(図14A~14C)。実際に、CamKII-ArchTマウスのmPFCに輸注されたRS67333(0.5μg/側)およびジアゼパム(1.5μg/側)は、DRNにおけるmPFC終末の光遺伝学的阻害により遮断される抗不安効果を誘導した。具体的には、CamKII-ArchTマウスのmPFCに注射されたRS67333およびジアゼパムは、光OFF中に中央で過ごした時間を有意に増加させ、この効果は、3分間の緑色光照光中に逆転した(RS67333およびジアゼパムでの阻害でそれぞれ85±20%および80±22%、二元配置分散分析、p<0.05、**p<0.01または#<p0.05、##<p0.01 vs.光ONの際のCaMKIIα-ArchTまたはCaMKII-GFP、図14B~14Cおよびインセット)。これらのデータは、mPFC-DRN神経回路がRS67333およびジアゼパムの両方で動員されて抗不安様効果を誘導することを裏づけている。
本発明者らはその後、DRN回路をターゲットとするmPFC終末が急性全身ジアゼパムまたはRS67333処置により誘導される速効性抗不安様効果に充分であり得るかどうかの調査に進んだ(図9A~9B)。EPMパラダイムでは、過去に示された通り、CaMKII-ArchT-mPFC注射マウスにおけるRS67333(1.5mg/kg)またはジアゼパム(1.5mg/kg)の急性全身投与は、OFF段階での自発運動活性に影響せずにオープンアームで過ごした時間、パーセント時間、および合計距離で割ったオープンアーム内の歩行距離の比率を増加させ、抗不安様効果を誘発した(二元配置分散分析、**p<0.01 vs.光OFFの際のビヒクル群、図9E~9Fおよびインセット)。DRNにおける皮質グルタミン酸作動性終末の3分間緑色光照光の間、急性RS67333またはジアゼパムが抗不安様効果を誘導したとしても、その効果の大きさは、光OFFに比較して弱かった(二元配置分散分析、§§p<0.01 vs.光ONの際のビヒクル群、#p<0.05 vs.光OFFの際の適当な群、図9E~9Fおよびインセット)。実際に、オープンアームで過ごした時間で、RS67333では24%の減少、およびジアゼパムでは17%の減少(p<0.09)が、EPMで観察された。急性全身RS67333またはジアゼパム投与後の光ONの間の、オープンアームで過ごした時間の分布、および合計距離で割ったオープンアームでの歩行距離の減少は、DRNにおけるmPFC錐体細胞終末の阻害がこれらの2種の化合物の抗不安効果を有意に低減することを確認した(二元配置分散分析、#p<0.05、##p<0.01 vs.光OFFの際の適当な群、図9E~9Fおよびインセット)。総括すると、これらのデータは、DRNにおけるmPFC終末が、RS67333およびジアゼパムの速効性抗不安効果のために動員されることを示唆する。
BALB/cJRjマウスにおける5-HT受容体アゴニストの長期活性の評価
RS67333が予防特性を備えることが示されたため、本発明者らは続いて、長期でのこの分子の知識を得ようとし、即ち、RS67333によりもたらされた抗不安性応答が経時的に持続可能であるかどうかを見つけ出そうとした。これを実現するために、BALB/cJRjマウスに、スプラッシュテストの実施の45分前に、RS67333(1.5mg/kg)またはジアゼパム(1.5mg/kg)の単一用量を全身注射した。翌日、マウスは、さらなる用量のRSを受けずにEPMを行い、その24時間後にオープンフィールドを、および最後に、オープンフィールドの24時間後にNSFを受けた(図15A)。
予想通り、RS67333は、単回投与に続き、エピソード数に影響せずに(t=1.546;p=0.1531)、スプラッシュテストにおいて身繕い時間を増加させた(t=2.294;p<0.05)(図15B~15C)。本発明者らは、注射の24時間後に、EPMにおけるRS67333の予期された抗不安効果を同定しなかった(t=0.4990;p=0.6286)(図15D~15E)。しかし、RS67333は、合計の歩いた距離に対する中央での距離の比率に影響せずに(t=1.281;p=2292)、注射の48時間後に、OFの中央で過ごした時間を増加させ(t=1.924;p<0.05)(図15F~15G)、かつ注射の72時間後に、熟知した環境での餌消費量に影響せずにt=0.2203;p=0.4151)、NSFにおいて摂餌の遅延時間を低減した(t=2.520;p<0.05)(図15H~15I)。ジアゼパムはいずれの抗うつ活性も示さず、それゆえスプラッシュテストにおいていかなる効果を同定しないことは通常である。本発明者らは同じように、ジアゼパムについていかなる長期活性も観察できなかった。
それゆえ、この試験は、再度行われるべきであるが、RSは、注射の72時間後まで持続的効果を有する可能性がある。
考察
急性5-HTR活性化および速効性抗不安様効果
本発明者らの試験は、高不安症レベルのマウス系統であるBALB/cJRjにおいて、5-HTR刺激が3つの異なる不安症パラダイム、即ちEPM、NSFおよびOFにおいてジアゼパムと類似の速効性抗不安様効果、を誘導したという証拠を提供する。興味深いことに、RS67333と異なり、フルオキセチンの急性全身投与は、不安様行動に影響せず、過去の観察を確認した(A30)。これらのデータはまた、速効性抗不安様活性が、5-HT神経伝達の全体的増加より大きな5-HTRまたは5-HT1ARなどの幾つかの重大なシナプス後受容体の選択的活性化を必要とすることを示唆する(A31)。
5-HTR活性化介在性の速効性抗不安様活性のためのmPFC-DRN回路の関与
ヒトおよびげっ歯類の両方で、5-HTRは主に、不安症などの精神障害に関与する辺縁系領域に存在する(A27、A32)。本発明者らは、速効性抗不安様効果におけるmPFCで発現される5-HTR活性化の役割を探求した。実際に、5-HTRは、全般性不安障害の患者においてグルタミン酸調節障害を示す領域であるmPFCの興奮性錐体ニューロンで発現される(A33、A34)。興味深いことに、RS67333の急性全身投与後に観察された速効性抗不安様効果は、mPFCにおけるこの5-HTRアゴニストの急性輸注により再現された。実際に、RS67333の両側的輸注の後で、ジアゼパムと同様に、EPMでのオープンアームで過ごした時間の増加があり、摂餌開始潜時の減少が、NSFで観察された。本発明者らの結果は、mPFCにおける5-HTRの過剰発現がロバストな抗不安様行動の表現型を生じることを示した過去の結果と一致している(A7、A19)。
解剖学的試験は、前辺縁/帯状皮質もまた、DRN 5-HTニューロンに豊富に投射することを示している(A35)。この関連性は、ストレスおよびうつ行動をモジュレートすることに関与する潜在的回路として大きな興味を引いた(A22)。例えば、げっ歯類における回避できないショックへのストレッサ暴露は、DRNの中部および尾側領域の5-HTニューロンのcFos発現を増加させ、不安惹起的状況におけるこの構造の神経活性化の増加を示唆した(A36)。mPFCにおける5-HTR活性化は下行性入力を介する中脳セロトニン作動性ニューロンの発火頻度を制御するという証拠もある(A19、A29、A37)。5-HTRヌルマウスのDRNにおける5-HTニューロンの自発的活性の低減および5-HT量の減少が、観察された(A38)。反対に、異なるタイムポイントでの、ラットにおけるRS67333投与は、DRN 5-HTニューロン活性に対する効果を駆動し(A19、A29、A39)、投射部位での5-HT放出を増加させる(A40)。本発明者らは、RS67333の急性全身注射がマウスにおいてDRN 5-HTニューロンの発火頻度を増強することを示し、DRNは5-HTRを発現しないという事実(A27)にもかかわらず、5-HTRアゴニストの速効性抗不安様活性はこのニューロン集団の活性化に依存することを示唆した。実際に、5-HTRアゴニストの作用の急速な開始は、mPFCを含む投射領域へのセロトニン作動性出力の増加の結果であり得る(A19、A41)。これらの結果は、全身p-CPAでの前処置による全脳5-HT量の枯渇はRS67333誘導性抗不安様表現型を防止し、一方でp-CPA単独は、過去に報告された通り行動に影響しなかった、という事実により裏づけられる(A42)。興味深いことに、5-HTRアゴニストおよびBZDは、異なる薬理学的ターゲットであるにもかかわらず、共通の抗不安様活性を類似の効率で共有し、これらの二剤による5-HT神経伝達の活性化と、おそらく共通の神経回路動員を示唆する。本発明者らの実験条件下で、ジアゼパムのmPFC内輸注の抗不安様活性は、p-CPAでの前処置により遮断され、この活性における5-HT系の参画を示唆した。
DRNにおける5-HT生成ニューロンが主に、mPFCからの単シナプス性グルタミン酸作動性入力によりモジュレートされることを知り、本発明者らは、CamKIIプロモータを用いてグルタミン酸作動性錐体ニューロンをターゲットにし、速効性抗不安様効果に関与するこのニューロン脳回路を評価した。BALB/cJRjマウスのDRNに投射するmPFCニューロンのChR2発現終末の照光は、mPFC内RS67333およびジアゼパムと類似の効果である、オープンアームで過ごした時間の増加として測定される、抗不安様効果を誘導した。この結果は、速効性抗不安様効果におけるmPFC-脳幹DRN神経回路の役割を強調する。複数の試験は、嫌悪課題(aversive challenge)への行動応答の調節におけるmPFC-DRNを暗示した。例えば、慢性社会的敗北(SD)マウスの腹内側部PFCにおける脳深部刺激(DBS)は、社会的相互作用を回復させた(A43)。同時に、ナイーブマウスにおける1時間DBSおよび慢性SDマウスにおける慢性DBSは、それぞれ、DRNにおけるcFos免疫反応性を増加させ、DRN 5-HTニューロンのSD誘導性の興奮性低下を反転させた(A43)。SDマウスにおいて、mPFC錐体細胞の慢性光活性化は、EPMにおいてオープンアームで過ごした時間を増加させ(A23)、一方で非ストレス動物における不安関連行動には、刺激は効果を有しなかった(A23、A44)。反対に、DRNにおけるmPFC終末のフォトサイレンシング(photosilencing)は、SDマウスにおける社会的相互作用の減少を防止し、不安様行動における貢献的役割を示唆した(A24)。
局所5-HTRアゴニスト輸注への行動応答が、グルタミン酸作動性mPFC錐体ニューロンがDRN 5-HTニューロン活性への5-HTRアゴニスト駆動性効果の介在物質であるという見解と一致することを確実にするために、本発明者らは、DRNに入る皮質グルタミン酸作動性終末を、光遺伝学的にサイレンシングした。これらの投射の阻害は、mPFC内RS67333およびジアゼパム投与により誘導された抗不安様行動を反転させ、皮質-縫線回路動員が速効性抗不安様活性に必須であることを確認した(A7)。興味深いことに、本発明者らの結果と一致して、近年の試験は、5-HTRノックアウトマウスにおけるmPFC-5-HTR発現の救済が、ストレスレベルを部分的に低減したことを示している(A28)。これらの結果は、5-HTRアゴニストでは驚くべきことではないが、それらは、ジアゼパムでは予期されなかった。しかし、mPFC内ムッシモール輸注(GABA受容体の直接的アゴニスト)を介する皮質GABA受容体活性化は、成体ウィスターラットの不安関連行動を減弱すると提案された(A45)。これらの知見は、5-HTRアゴニストとBZDは、異なる薬理学的ターゲットであるにもかかわらず、前頭前野-DRN脳幹神経回路動員を介して速効性抗不安様効果を誘導する共通の機序を共有することを示す。これらのグルタミン酸作動性投射が、局所介在ニューロンへの効果を介してDRN活性も調節し得るか否かが、調査されるべきである。ウイルス順行性トレーシングを用いた解剖学的試験は、DRNにおける5-HTニューロンおよびGABA介在ニューロンがmPFCの前辺縁部分からの興奮性入力を受け、DRN 5-HTニューロンへのインプットがGABA作動性ニューロンに比較して大きな割合であることを明らかにし(A35)、GABA介在ニューロンの影響が二次的であり得ることを示唆した(A37)。
mPFCの-DRN回路動員が、5-HTR活性化に関連する速効性抗不安様活性において必要なだけでなく充分であるかどうかを評価するために、本発明者らは、ジアゼパムおよびRS67333の急性全身投与の後のDRNにおけるmPFC終末の光遺伝学的阻害の結果を、調査した。DRNにおける皮質グルタミン酸作動性終末の阻害は、RS67333またはジアゼパムの急性全身投与により誘導された抗不安効果を減弱したが、防止せず、他の脳構造が、BZDおよび5-HTRアゴニストの速効性抗不安様活性に関与する可能性を示唆した。これらの結果は、海馬腹側から前頭前野(46)、前頭前野から扁桃体基底外側部(A47)、扁桃体基底外側部から海馬腹側(A48)、またはDRNから分界条床核(31)の入力のなどの他の回路も不安症関連行動に関与するため、驚くべきことではない(図10)。例えば、扁桃体基底外側部、海馬、または基底核大細胞部へのRS67333投与は、情動記憶形成および統合もモジュレートし(A49-A51)、5-HTRアゴニストの抗不安様効果がこれらの異なる大脳辺縁系領域に依存し得ることを示唆した。
興味深いことに、本発明者らは、DRNにおける皮質グルタミン酸作動性終末のサイレンシングもまた、ジアゼパムの抗不安様活性を減弱することを見出した。多くの他の構造がGABA受容体および5-HTRを発現するが、mPFC-DRN回路は、ジアゼパムおよびRS67333介在性の速効性抗不安様活性に必要なだけでなく充分であると思われる。今後の試験は、不安の表現型にも関与する脳の構造が速効性抗不安様活性のためにmPFC-DRN回路とどのように相互作用するか、およびジアゼパムが5-HTRのアンタゴニストにより用量依存的に阻害されることが示されたため(A16)mPFCにおける5-HTR発現がジアゼパムの速効性抗不安様効果を担うかどうかについても、検査すべきである。
まとめると、本発明者らの試験は、5-HTRアゴニストおよびBZDの両方の速効性抗不安様効果を媒介することにおけるmPFC-DRN回路の重要性を明らかにした。mPFCにおいて、またはより一般的にはmPFC-脳幹DRN神経回路において5-HTRを刺激することは、抗不安性効果を促進し、不安症を処置するための革新的かつ迅速な手始めの治療的アプローチになり得る。しかし、速効性抗不安薬としての5-HTRの使用は、5-HTRが中枢神経系の外側の心臓、胃腸管、副腎、および膀胱で発現されるという事実(A52)により妨害されるかもしれない。より特異的で薬物開発を受け易いmPFC-DRN回路の他の成分を同定することは価値があるかもしれない。
Figure 2022527865000033
Figure 2022527865000034
Figure 2022527865000035
Figure 2022527865000036
Figure 2022527865000037
Figure 2022527865000038
Figure 2022527865000039
Figure 2022527865000040
Figure 2022527865000041

参考資料
A1. Kheirbek MA, Klemenhagen KC, Sahay A, Hen R (2012): Neurogenesis and generalization: a new approach to stratify and treat anxiety disorders. Nat Neurosci.15:1613-1620.

A2. Kessler RC, Chiu WT, Demler O, Merikangas KR, Walters EE (2005): Prevalence, severity, and comorbidity of 12-month DSM-IV disorders in the National Comorbidity Survey Replication. Arch Gen Psychiatry.62:617-627.

A3. Klein E (2002): The role of extended-release benzodiazepines in the treatment of anxiety: a risk-benefit evaluation with a focus on extended-release alprazolam. J Clin Psychiatry.63 Suppl 14:27-33.

A4. Bystritsky A (2006): Treatment-resistant anxiety disorders. Mol Psychiatry.11:805-814.

A5. Mendez-David I, David DJ, Darcet F, Wu MV, Kerdine-Romer S, Gardier AM, et al. (2014): Rapid anxiolytic effects of a 5-HT(4) receptor agonist are mediated by a neurogenesis-independent mechanism. Neuropsychopharmacology.39:1366-1378.

A6. Samuels BA, Mendez-David I, Faye C, David SA, Pierz KA, Gardier AM, et al. (2016): Serotonin 1A and Serotonin 4 Receptors: Essential Mediators of the Neurogenic and Behavioral Actions of Antidepressants. Neuroscientist.22:26-45.

A7. Castello J, LeFrancois B, Flajolet M, Greengard P, Friedman E, Rebholz H (2017): CK2 regulates 5-HT4 receptor signaling and modulates depressive-like behavior. Mol Psychiatry.

A8. Pascual-Brazo J, Castro E, Diaz A, Valdizan EM, Pilar-Cuellar F, Vidal R, et al. (2012): Modulation of neuroplasticity pathways and antidepressant-like behavioural responses following the short-term (3 and 7 days) administration of the 5-HT(4) receptor agonist RS67333. Int J Neuropsychopharmacol.15:631-643.

A9. Lucas G, Rymar VV, Du J, Mnie-Filali O, Bisgaard C, Manta S, et al. (2007):
Serotonin(4) (5-HT(4)) receptor agonists are putative antidepressants with a rapid onset of action. Neuron.55:712-725.

A10. Vidal R, Castro E, Pilar-Cuellar F, Pascual-Brazo J, Diaz A, Rojo ML, et al. (2014): Serotonin 5-HT4 receptors: A new strategy for developing fast acting antidepressants? Curr Pharm Des.20:3751-3762.

A11. Rebholz H, Friedman E, Castello J (2018): Alterations of Expression of the Serotonin 5-HT4 Receptor in Brain Disorders. Int J Mol Sci.19.

A12. Amigo J, Diaz A, Pilar-Cuellar F, Vidal R, Martin A, Compan V, et al. (2016): The absence of 5-HT4 receptors modulates depression- and anxiety-like responses and influences the response of fluoxetine in olfactory bulbectomised mice: Adaptive changes in hippocampal neuroplasticity markers and 5-HT1A autoreceptor. Neuropharmacology.
111:47-58.

A13. Bockaert J, Claeysen S, Compan V, Dumuis A (2004): 5-HT4 receptors. Curr Drug Targets CNS Neurol Disord.3:39-51.

A14. Kennett GA, Bright F, Trail B, Blackburn TP, Sanger GJ (1997): Anxiolytic-like actions of the selective 5-HT4 receptor antagonists SB 204070A and SB 207266A in rats. Neuropharmacology.36:707-712.

A15. Silvestre JS, Fernandez AG, Palacios JM (1996): Effects of 5-HT4 receptor antagonists on rat behaviour in the elevated plus-maze test. Eur J Pharmacol.309:219-222.

A16. Costall B, Naylor RJ (1997): The influence of 5-HT2 and 5-HT4 receptor antagonists to modify drug induced disinhibitory effects in the mouse light/dark test. Br J Pharmacol. 122:1105-1118.

A17. Bell R, Duke AA, Gilmore PE, Page D, Begue L (2014): Anxiolytic-like effects observed in rats exposed to the elevated zero-maze following treatment with 5-HT2/5-HT3/5-HT4 ligands. Sci Rep.4:3881.

A18. Abboussi O, Said N, Fifel K, Lakehayli S, Tazi A, El Ganouni S (2016): Behavioral effects of D3 receptor inhibition and 5-HT4 receptor activation on animals undergoing chronic cannabinoid exposure during adolescence. Metab Brain Dis.31:321-327.

A19. Lucas G, Compan V, Charnay Y, Neve RL, Nestler EJ, Bockaert J, et al. (2005): Frontocortical 5-HT4 receptors exert positive feedback on serotonergic activity: viral transfections, subacute and chronic treatments with 5-HT4 agonists. Biol Psychiatry.57:918-925.

A20. Davidson RJ (2002): Anxiety and affective style: role of prefrontal cortex and amygdala. Biol Psychiatry.51:68-80.

A21. Riga D, Matos MR, Glas A, Smit AB, Spijker S, Van den Oever MC (2014):
Optogenetic dissection of medial prefrontal cortex circuitry. Front Syst Neurosci.8:230.

A22. Warden MR, Selimbeyoglu A, Mirzabekov JJ, Lo M, Thompson KR, Kim SY, et al. (2012): A prefrontal cortex-brainstem neuronal projection that controls response to behavioural challenge. Nature.492:428-432.

A23. Kumar S, Black SJ, Hultman R, Szabo ST, DeMaio KD, Du J, et al. (2013): Cortical control of affective networks. J Neurosci.33:1116-1129.

A24. Challis C, Beck SG, Berton O (2014): Optogenetic modulation of descending prefrontocortical inputs to the dorsal raphe bidirectionally bias socioaffective choices after social defeat. Front Behav Neurosci.8:43.

A25. Seo C, Guru A, Jin M, Ito B, Sleezer B, Ho YY, et al. (2019): Intense threat switches dorsal raphe serotonin neurons to a paradoxical operational mode. Science.363:538-542.
A26. Dulawa SC, Holick KA, Gundersen B, Hen R (2004): Effects of chronic fluoxetine in animal models of anxiety and depression. Neuropsychopharmacology.29:1321-1330.

A27. Vilaro MT, Cortes R, Mengod G (2005): Serotonin 5-HT4 receptors and their mRNAs in rat and guinea pig brain: distribution and effects of neurotoxic lesions. J Comp Neurol. 484:418-439.

A28. Jean A, Laurent L, Delaunay S, Doly S, Dusticier N, Linden D, et al. (2017):
Adaptive Control of Dorsal Raphe by 5-HT4 in the Prefrontal Cortex Prevents Persistent Hypophagia following Stress. Cell Rep.21:901-909.

A29. Moha ou Maati H, Bourcier-Lucas C, Veyssiere J, Kanzari A, Heurteaux C, Borsotto M, et al. (2016): The peptidic antidepressant spadin interacts with prefrontal 5-HT(4) and mGluR(2) receptors in the control of serotonergic function. Brain Struct Funct.221:21-37.

A30. David DJ, Klemenhagen KC, Holick KA, Saxe MD, Mendez I, Santarelli L, et al. (2007): Efficacy of the MCHR1 antagonist N-[3-(1-{[4-(3,4-difluorophenoxy)phenyl]methyl}(4-piperidyl))-4-methylphenyl]-2-m ethylpropanamide (SNAP 94847) in mouse models of anxiety and depression following acute and chronic administration is independent of hippocampal neurogenesis. J Pharmacol Exp Ther.321:237-248.

A31. Garcia-Garcia AL, Canetta S, Stujenske JM, Burghardt NS, Ansorge MS, Dranovsky A, et al. (2017): Serotonin inputs to the dorsal BNST modulate anxiety in a 5-HT1A receptor-dependent manner. Mol Psychiatry.

A32. Waeber C, Sebben M, Nieoullon A, Bockaert J, Dumuis A (1994): Regional distribution and ontogeny of 5-HT4 binding sites in rodent brain. Neuropharmacology.
33:527-541.

A33. Paulesu E, Sambugaro E, Torti T, Danelli L, Ferri F, Scialfa G, et al. (2010): Neural correlates of worry in generalized anxiety disorder and in normal controls: a functional MRI study. Psychol Med.40:117-124.

A34. Wang Y, Chai F, Zhang H, Liu X, Xie P, Zheng L, et al. (2016): Cortical functional activity in patients with generalized anxiety disorder. BMC Psychiatry.16:217.

A35. Weissbourd B, Ren J, DeLoach KE, Guenthner CJ, Miyamichi K, Luo L (2014): Presynaptic partners of dorsal raphe serotonergic and GABAergic neurons. Neuron.83:645-662.

A36. Grahn RE, Will MJ, Hammack SE, Maswood S, McQueen MB, Watkins LR, et al. (1999): Activation of serotonin-immunoreactive cells in the dorsal raphe nucleus in rats exposed to an uncontrollable stressor. Brain Res.826:35-43.

A37. Lucas G (2009): Serotonin receptors, type 4: a new hope? Curr Drug Targets.
10:1085-1095.

A38. Conductier G, Dusticier N, Lucas G, Cote F, Debonnel G, Daszuta A, et al. (2006): Adaptive changes in serotonin neurons of the raphe nuclei in 5-HT(4) receptor knock-out mouse. Eur J Neurosci.24:1053-1062.

A39. Etievant A, Lambas-Senas L, Abrial E, Betry C, Haddjeri N, Lucas G (2011):
Connection re-established: neurotransmission between the medial prefrontal cortex and serotonergic neurons o ers perspectives for fast antidepressant action. Neuropsychiatry. 1:165-177.

A40. Ge J, Barnes NM (1996): 5-HT4 receptor-mediated modulation of 5-HT release in the rat hippocampus in vivo. Br J Pharmacol.117:1475-1480.

A41. Lucas G, Debonnel G (2002): 5-HT4 receptors exert a frequency-related facilitatory control on dorsal raphe nucleus 5-HT neuronal activity. Eur J Neurosci.16:817-822.

A42. du Jardin KG, Liebenberg N, Muller HK, Elfving B, Sanchez C, Wegener G (2016): Differential interaction with the serotonin system by S-ketamine, vortioxetine, and fluoxetine in a genetic rat model of depression. Psychopharmacology (Berl).233:2813-2825.

A43. Veerakumar A, Challis C, Gupta P, Da J, Upadhyay A, Beck SG, et al. (2014):
Antidepressant-like effects of cortical deep brain stimulation coincide with pro-neuroplastic adaptations of serotonin systems. Biol Psychiatry.76:203-212.

A44. Covington HE, 3rd, Lobo MK, Maze I, Vialou V, Hyman JM, Zaman S, et al. (2010): Antidepressant effect of optogenetic stimulation of the medial prefrontal cortex. J Neurosci. 30:16082-16090.

A45. Solati J, Hajikhani R, Golub Y (2013): Activation of GABAA receptors in the medial prefrontal cortex produces an anxiolytic-like response. Acta Neuropsychiatr.25:221-226.

A46. Padilla-Coreano N, Bolkan SS, Pierce GM, Blackman DR, Hardin WD, Garcia-Garcia AL, et al. (2016): Direct Ventral Hippocampal-Prefrontal Input Is Required for Anxiety-Related Neural Activity and Behavior. Neuron.89:857-866.

A47. Vialou V, Bagot RC, Cahill ME, Ferguson D, Robison AJ, Dietz DM, et al. (2014): Prefrontal cortical circuit for depression- and anxiety-related behaviors mediated by cholecystokinin: role of DeltaFosB. J Neurosci.34:3878-3887.

A48. Felix-Ortiz AC, Beyeler A, Seo C, Leppla CA, Wildes CP, Tye KM (2013): BLA to vHPC inputs modulate anxiety-related behaviors. Neuron.79:658-664.

A49. Chegini HR, Nasehi M, Zarrindast MR (2014): Differential role of the basolateral amygdala 5-HT3 and 5-HT4 serotonin receptors upon ACPA-induced anxiolytic-like behaviors and emotional memory deficit in mice. Behav Brain Res.261:114-126.

A50. Orsetti M, Dellarole A, Ferri S, Ghi P (2003): Acquisition, retention, and recall of memory after injection of RS67333, a 5-HT(4) receptor agonist, into the nucleus basalis magnocellularis of the rat. Learn Mem.10:420-426.

A51. Nasehi M, Tabatabaie M, Khakpai F, Zarrindast MR (2015): The effects of CA1 5HT4 receptors in MK801-induced amnesia and hyperlocomotion. Neurosci Lett.587:73-78.
A52. Tonini M, Pace F (2006): Drugs acting on serotonin receptors for the treatment of functional GI disorders. Dig Dis.24:59-69.

A-S1. Mendez-David I, David DJ, Darcet F, Wu MV, Kerdine-Romer S, Gardier AM, et al. (2014): Rapid anxiolytic effects of a 5-HT(4) receptor agonist are mediated by a neurogenesis-independent mechanism. Neuropsychopharmacology.39:1366-1378.

A-S2. Chegini HR, Nasehi M, Zarrindast MR (2014): Differential role of the basolateral amygdala 5-HT3 and 5-HT4 serotonin receptors upon ACPA-induced anxiolytic-like behaviors and emotional memory deficit in mice. Behav Brain Res.261:114-126.

A-S3. McMahon LR, Cunningham KA (1999): Antagonism of 5-hydroxytryptamine(4) receptors attenuates hyperactivity induced by cocaine: putative role for 5-hydroxytryptamine(4) receptors in the nucleus accumbens shell. J Pharmacol Exp Ther. 291:300-307.

A-S4. Bockaert J, Claeysen S, Compan V, Dumuis A (2004): 5-HT4 receptors. Curr Drug Targets CNS Neurol Disord.3:39-51.

A-S5. Eglen RM, Bonhaus DW, Johnson LG, Leung E, Clark RD (1995): Pharmacological characterization of two novel and potent 5-HT4 receptor agonists, RS 67333 and RS 67506, in vitro and in vivo. Br J Pharmacol.115:1387-1392.

A-S6. David DJ, Klemenhagen KC, Holick KA, Saxe MD, Mendez I, Santarelli L, et al. (2007): Efficacy of the MCHR1 antagonist N-[3-(1-{[4-(3,4-difluorophenoxy)phenyl]methyl}(4-piperidyl))-4-methylphenyl]-2-m ethylpropanamide (SNAP 94847) in mouse models of anxiety and depression following acute and chronic administration is independent of hippocampal neurogenesis. J Pharmacol Exp Ther.321:237-248.

A-S7. Petit-Demouliere B, Masse F, Cogrel N, Hascoet M, Bourin M (2009): Brain structures implicated in the four-plate test in naive and experienced Swiss mice using injection of diazepam and the 5-HT2A agonist DOI. Behav Brain Res.204:200-205.

A-S8. Redrobe JP, Bourin M, Colombel MC, Baker GB (1998): Dose-dependent noradrenergic and serotonergic properties of venlafaxine in animal models indicative of antidepressant activity. Psychopharmacology (Berl).138:1-8.

A-S9. Pham TH, Mendez-David I, Defaix C, Guiard BP, Tritschler L, David DJ, et al. (2017): Ketamine treatment involves medial prefrontal cortex serotonin to induce a rapid antidepressant-like activity in BALB/cJ mice. Neuropharmacology.112:198-209.

A-S10. Bi LL, Wang J, Luo ZY, Chen SP, Geng F, Chen YH, et al. (2013): Enhanced excitability in the infralimbic cortex produces anxiety-like behaviors. Neuropharmacology. 72:148-156.

A-S11. Walf AA, Frye CA (2007): The use of the elevated plus maze as an assay of anxiety-related behavior in rodents. Nat Protoc.2:322-328.

A-S12. David DJ, Samuels BA, Rainer Q, Wang JW, Marsteller D, Mendez I, et al. (2009): Neurogenesis-dependent and -independent effects of fluoxetine in an animal model of anxiety/depression. Neuron.62:479-493.

A-S13. Guiard BP, Chenu F, El Mansari M, Blier P (2011): Characterization of the electrophysiological properties of triple reuptake inhibitors on monoaminergic neurons. Int J Neuropsychopharmacol.14:211-223.

A-S14. Tritschler L, Kheirbek MA, Dantec YL, Mendez-David I, Guilloux JP, Faye C, et al. (2018): Optogenetic activation of granule cells in the dorsal dentate gyrus enhances dopaminergic neurotransmission in the Nucleus Accumbens. Neurosci Res.134:56-60.

A-S15. Kheirbek MA, Drew LJ, Burghardt NS, Costantini DO, Tannenholz L, Ahmari SE, et al. (2013): Differential control of learning and anxiety along the dorsoventral axis of the dentate gyrus. Neuron.77:955-968.
本発明は、本明細書に記載された具体的実施形態により範囲を限定されるものでない。事実、本明細書に記載された修正に加えて本発明の様々な修正が、前述の記載および添付の図面から当業者に明白となろう。そのような修正は、添付の特許請求の範囲に含まれるものとする。
特許、特許出願、および発行物が、本出願全体に引用されており、特に全ての開示された化学構造を含むそれらの開示は、参照により本明細書に組み入れられる。上述の発行物または文書の引用は、前述のいずれかが関係する先行技術であることの承認とすることを意図するものではなく、およびそれが、これらの発行物または文書の内容または日付に関する任意の承認を構成するものではない。本明細書で引用された参考資料は全て、各個別の発行物、特許出願または特許が具体的かつ個別に、参照により組み入れられることを示されたのと同程度に、参照により組み入れられる。
前述の明細書は、当業者に本発明を実践させるのに充分であると見なされる。本明細書に図示および記載された修正に加え、本発明の様々な修正が、前述の記載から当業者に明白となり、それらは添付の特許請求の範囲に含まれる。

Claims (21)

  1. ストレッサに先立って対象に、セロトニン4受容体(5-HTR)のアゴニスト、またはその医薬的に許容できる塩、類似体、誘導体もしくは代謝産物を含む医薬組成物の有効量を投与することを含む、対象においてストレス誘導性情動障害またはストレス誘導性精神病を防止するまたは遅延するための方法。
  2. ストレッサに先立って対象に、セロトニン4受容体(5-HTR)のアゴニスト、またはその医薬的に許容できる塩、類似体、誘導体もしくは代謝産物を含む医薬組成物の有効量を投与することを含む、対象においてストレスレジリエンスを誘導するおよび/または増強するための方法。
  3. 前記5-HTRのアゴニストが、1-(4-アミノ-5-クロロ-2-メトキシフェニル)-3-[1(n-ブチル)-4-ピペリジニル]-1-プロパノンHCl(RS-67,333)、4-アミノ-5-クロロ-2,3-ジヒドロ-N-[1-3-メトキシプロピル)-4-ピペリジニル]-7-ベンゾフランカルボキサミド一塩酸塩(プルカロプリド)、4-[4-[4-テトラヒドロフラン-3-イルオキシ)-ベンゾ[d]イソオキサゾール-3-イルオキシメチル]-ピペリジン-1-イルメチル]-テトラヒドロピラン-4-オール(PF-04995274)、またはそれらの組み合わせを含む、請求項1または2に記載の方法。
  4. 前記医薬組成物が、ストレッサの約48時間~約3週間前に前記対象に投与される、請求項1または2に記載の方法。
  5. 前記医薬組成物が、ストレッサの約72時間~約2週間前に前記対象に投与される、請求項1または2に記載の方法。
  6. 前記医薬組成物が、ストレッサの約1週間前に前記対象に投与される、請求項1または2に記載の方法。
  7. 前記医薬組成物が、ストレッサに先立って前記対象に1回投与される、請求項1または2に記載の方法。
  8. 前記医薬組成物が、前記対象に経口で、静脈内で、鼻内で、または注射を介して投与される、請求項1または2に記載の方法。
  9. 前記ストレス誘導性情動障害が、大うつ病性障害および/または外傷後ストレス障害(PTSD)を含む、請求項1に記載の方法。
  10. 前記ストレス誘導性情動障害が、うつ様行動および関連の情動障害、無快感行動および関連の情動障害、不安症および関連の情動障害、認知障害および欠陥および関連の障害、ストレス誘導性恐怖、ならびにそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項1に記載の方法。
  11. 前記ストレス誘導性情動障害が、ストレス誘導性精神病を含む、請求項1に記載の方法。
  12. 前記ストレス誘導性精神病が、うつ行動および/または不安行動を含む、請求項11に記載の方法。
  13. ストレス誘導性認知障害および/または低下を防止または遅延する、前記請求項のいずれかに記載の方法。
  14. 抗うつ薬、抗不安薬、またはそれらの組み合わせの有効量を投与することをさらに含む、前記請求項のいずれかに記載の方法。
  15. 選択的セロトニン再取り込み阻害剤(SSRI)、またはその医薬的に許容できる塩もしくは誘導体の有効量を投与することをさらに含む、前記請求項のいずれかに記載の方法。
  16. フルオキセチン、パロキセチン、セルトラリン、リチウム、リルゾール、プラゾシン、ラモトリギン、イフェンプロジル、またはそれらの組み合わせの有効量を投与することをさらに含む、前記請求項のいずれかに記載の方法。
  17. 前記対象が、哺乳動物である、前記請求項のいずれかに記載の方法。
  18. 前記対象が、ヒトである、前記請求項のいずれかに記載の方法。
  19. 前記対象が、雌である、前記請求項のいずれかに記載の方法。
  20. 前記対象が、雄である、前記請求項のいずれかに記載の方法。
  21. 前記医薬組成物が、ブースターシリーズで投与される、前記請求項のいずれかに記載の方法。
JP2021560628A 2019-04-09 2020-04-08 ストレスに対するセロトニン4受容体アゴニストの予防的有効性 Pending JP2022527865A (ja)

Applications Claiming Priority (7)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201962831517P 2019-04-09 2019-04-09
US62/831,517 2019-04-09
US201962857075P 2019-06-04 2019-06-04
US62/857,075 2019-06-04
US201962910859P 2019-10-04 2019-10-04
US62/910,859 2019-10-04
PCT/US2020/027321 WO2020210393A1 (en) 2019-04-09 2020-04-08 Prophylactic efficacy of serotonin 4 receptor agonists against stress

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2022527865A true JP2022527865A (ja) 2022-06-06
JPWO2020210393A5 JPWO2020210393A5 (ja) 2023-04-13

Family

ID=72750568

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2021560628A Pending JP2022527865A (ja) 2019-04-09 2020-04-08 ストレスに対するセロトニン4受容体アゴニストの予防的有効性

Country Status (8)

Country Link
US (1) US20220031684A1 (ja)
EP (1) EP3952852A4 (ja)
JP (1) JP2022527865A (ja)
CN (1) CN113924087A (ja)
AU (1) AU2020271839A1 (ja)
CA (1) CA3136328A1 (ja)
MX (1) MX2021012394A (ja)
WO (1) WO2020210393A1 (ja)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20230121608A1 (en) * 2020-04-07 2023-04-20 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Compositions and Methods for the Prevention of Stress-Induced Fear, Depressive-Like and Anxiety- Like Behavior
WO2024044355A2 (en) * 2022-08-25 2024-02-29 1/1The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Compositions and methods for the treatment of alzheimer's disease and other neurogenerative disease
CN118105081A (zh) * 2024-03-04 2024-05-31 天津大学 一种情绪状态与神经电生理状态调节装置、验证系统及方法

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2846559B1 (fr) * 2002-10-31 2007-06-15 Centre Nat Rech Scient Composition pharmaceutique pour la preparation d'un medicament destine a traiter et/ou a prevenir une pathologie liee a une conduite obsessionnelle
US20090170899A1 (en) * 2004-09-14 2009-07-02 Guy Debonnel Stimulators of 5-HT4 receptors and uses thereof
US9642863B2 (en) 2010-11-18 2017-05-09 White Mountain Pharma, Inc. Methods for treating chronic or unresolvable pain and/or increasing the pain threshold in a subject and pharmaceutical compositions for use therein
US11110070B2 (en) * 2015-11-17 2021-09-07 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Pharmacological prophylactics against stress-induced affective disorders and their associated symptoms

Also Published As

Publication number Publication date
EP3952852A4 (en) 2023-01-04
AU2020271839A1 (en) 2021-11-04
CN113924087A (zh) 2022-01-11
MX2021012394A (es) 2022-01-19
EP3952852A1 (en) 2022-02-16
US20220031684A1 (en) 2022-02-03
CA3136328A1 (en) 2020-10-15
WO2020210393A1 (en) 2020-10-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sales et al. Antidepressant-like effect induced by Cannabidiol is dependent on brain serotonin levels
Nguyen et al. Dextromethorphan: An update on its utility for neurological and neuropsychiatric disorders
US20220031684A1 (en) Prophylactic efficacy of serotonin 4 receptor agonists against stress
Bailey et al. Recent progress in understanding the pathophysiology of post-traumatic stress disorder: implications for targeted pharmacological treatment
Wolff et al. Ketamine: from medicine to misuse
Urits et al. Adverse effects of recreational and medical cannabis
CN114206349A (zh) 治疗神经认知障碍、慢性疼痛及减轻炎症的方法
JP2010531879A (ja) 水素化ピリド[4,3−b]インドールに基づく抗不安作用を示す薬物、その薬理学的な化合物および適用方法
US20230233485A1 (en) Pharmacological Prophylactics Against Stress-Induced Affective Disorders In Females
US20230121608A1 (en) Compositions and Methods for the Prevention of Stress-Induced Fear, Depressive-Like and Anxiety- Like Behavior
Petroianu et al. Neuropathic pain: Mechanisms and therapeutic strategies
Beretta et al. Rescuing epileptic and behavioral alterations in a Dravet syndrome mouse model by inhibiting eukaryotic elongation factor 2 kinase (eEF2K)
WO2022238507A1 (en) Therapeutic aminoindane compounds and compositions
US11083732B2 (en) Use of negative modulators of GABA receptors containing alpha5 subunits as fast acting antidepressants
US9517265B2 (en) Methods for the prevention and/or treatment of memory impairment
JP2022527386A (ja) 自閉症スペクトラム障害を治療するためのカルバモイルシクロヘキサン誘導体
JP2024507492A (ja) 精神療法を補助するためのメスカリン及びメスカリン類似体(スカリン)の効果
Cardinali et al. New developments in the treatment of primary insomnia in elderly patients: focus on prolonged-release melatonin
Gershon et al. The ideal anxiolytic
Chen Developing Novel Prophylactic Interventions for the Prevention of Stress-Induced Psychiatric Disease
Gonzalez The Role of Perineuronal Nets and Ketamine in Cocaine-Associated Memory
WO2023215338A1 (en) Compositions and methods for treating cluster headache
Zeise Clinical Neuropharmacology
Cameron Psychedelics and novel non-hallucinogenic analogs for treating neuropsychiatric disorders
Bolla Investigation on the role of Cl-homeostasis and GABAergic transmission in sleep disorders of Down syndrome and in Prader Willi syndrome: a possible contributor to cognitive impairment

Legal Events

Date Code Title Description
A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20230405

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20230405

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20240305

A601 Written request for extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601

Effective date: 20240605

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20240801